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ESCUELA POLITÉCNICA NACIONAL
FACULTAD DE INGENIERÍA CIVIL Y AMBIENTAL
EVALUACIÓN DE LA TRANSFERENCIA DE OXÍGENO CON PLANTAS ACUÁTICAS EN UN CULTIVO HIDROPÓNICO
PROYECTO PREVIO A LA OBTENCIÓN DEL TÍTULO DE INGENIERA AMBIENTAL
KARINA MARLENE LARCO ERAZO [email protected]
FÁTIMA PRISSILA PAUCAR PAUCAR
DIRECTOR: ING. MARCELO MUÑOZ, MSc. [email protected]
CODIRECTORA: ING. MARÍA BELÉN ALDÁS, MSc.
Quito, Junio 2017
II
DECLARACIÓN
Nosotras, Karina Marlene Larco Erazo, Fátima Prissila Paucar Paucar,
declaramos que el trabajo aquí descrito es de nuestra autoría; que no ha sido
presentado para ningún grado o calificación profesional; y, que hemos consultado
las referencias bibliográficas que se incluyen en este documento.
La Escuela Politécnica Nacional, puede hacer uso de los derechos
correspondientes a este trabajo, según lo establecido por la Ley de Propiedad
Intelectual, por su Reglamento y por la normatividad institucional vigente.
______________________________ ________________________________ KARINA MARLENE LARCO ERAZO FÁTIMA PRISSILA PAUCAR PAUCAR
III
CERTIFICACIÓN
Certificamos que el presente trabajo fue desarrollado por Karina Marlene Larco
Erazo, Fátima Prissila Paucar Paucar, bajo nuestra supervisión.
_____________________________ _______________________________ Ing. MARCELO MUÑOZ, MSc. Ing. MARÍA BELÉN ALDÁS, MSc. DIRECTOR DEL PROYECTO CODIRECTORA DEL PROYECTO
IV
AGRADECIMIENTOS
A lo largo de la carrera aprendí que la educación no solo era un privilegio sino una
bendición y agradezco a Dios por permitirme vivir esta experiencia.
Agradezco a mis padres, a mis hermanos Mayra, Paola, Patricio, John y Mayra,
mis sobrinas y cuñado por apoyarme no solo a finalizar mi etapa universitaria sino
por ser esos seres que me aman cada día. También agradezco a mi tía Magolita y
Jazmin quienes han sido mis confidentes por ser ángeles en mi vida.
Agradezco a Lolita y Luis B. por ayudarnos en la experimentación sin su ayuda
hubiéramos necesitado 25 horas al día.
Agradezco al Ing. Marcelo Muñoz quien nos guío con sus conocimientos, ser
paciente e incondicional, por no solo ser un profesor sino un amigo.
A la Ing. María Belén Aldás por apoyarnos, aconsejarnos y leer con dedicación
este trabajo.
A la Dra. María de Lourdes Guerra quien con sus aportes e ideas nos inspiró a la
terminación del tema, por preocuparse y ayudarnos constantemente. También
agradezco a la Dra. Miriam Steinitz ya que nos ayudó en la identificación de algas.
De igual manera, agradezco al Herbario Nacional y la Dra. Marcia Peñafiel por su
paciencia y ayuda en el montaje e identificación de las plantas.
Al Cuerpo de Bomberos de Ibarra por su disposición y ayuda en los muestreos.
Al ICB de la EPN por su ayuda en especial a Wladimir Carvajal.
Al CICAM en especial a la Ing. Carola Fierro por ayudarnos a realizar los análisis
de calidad de agua.
Agradezco a mis mejores amigas Joss, Cata, Jesy,R. Salito, Sandrita, Jesy A.
Talia, Govi y Meches; en especial a Xime por ser mi otra mitad y a mis profesores
que han sido un fuerte inspiración durante la carrera.
Finalmente, agradezco a Priss por acompañarme en este trayecto, por ser una
gran amiga y convertir los días más estresantes en los más divertidos; sin ti este
trabajo no hubiera sido lo mismo
Kary L.
V
AGRADECIMIENTOS
Agradezco a Dios por ser siempre mi guía y darme la fortaleza necesaria para
continuar cada día, a mis padres por el apoyo incondicional que solo ellos pueden
darme, por su esfuerzo, dedicación y entrega, para que llegue a cumplir esta
meta.
A mis hermanas, que han estado siempre presentes en los momentos en los que
he necesitado y con las cuales puedo contar incondicionalmente cuando tenga
alguna dificultad.
A mi esposo, por ser un gran amigo y compañero inseparable, por su apoyo
incondicional durante toda mi formación universitaria.
A mi hija, que ha sido el pilar fundamental para la culminación de esta etapa de
formación académica, quien a pesar de su corta edad ha sabido adaptarse
fácilmente a las situaciones que le ha tocado vivir.
A mis suegros, que han estado dispuestos a ayudarme con el cuidado de mi hija,
muchas gracias por su amor y entrega con ella.
Al Ing. Marcelo Muñoz, quien con su ayuda, consejo, experiencia y sobre todo
paciencia, supo guiarnos en la realización de este proyecto de titulación. Y
también mi gratitud a la Ing. María Belén Aldás por su apoyo y consejo en la
elaboración de este trabajo.
A Kary, por ser una gran compañera de tesis y sobre todo amiga, quien siempre
me ha motivado a seguir adelante para culminar esta etapa de nuestra carrera.
Un agradecimiento especial a las Ficólogas María de Lourdes Guerra y Miriam
Steinitz por su colaboración y ayuda en la identificación de las algas. Además
agradezco a la Dra. Marcia Peñafiel y al Herbario Nacional por su tiempo y
colaboración. Al ICB de la EPN por su ayuda en especial a Wladimir Carvajal.
Al CICAM, en especial a la Ing. Carola Fierro, por el apoyo brindado para la
realización de los ensayos de laboratorio.
Priss P.
VI
DEDICATORIA
Dedico todo este trabajo a mi familia en general quienes han sido el pilar
fundamental y apoyo constante en la culminación no solo de este sueño sino en
mi vida.
En especial le dedico a mi papi, mi mami, mi hermana Paola y Mayra, mis
hermanos John y Patricio, mis sobrinas Judi y Damy, mi cuñado Rubén, mi tía
Magolita y Jazmin.
Kary L.
VII
DEDICATORIA
Quiero dedicar este trabajo a mi madre, la persona que ha creído en mí cuando ni
yo misma lo hacía.
“Ella lo ha hecho todo”
San Juan Bosco
Priss P.
VIII
CONTENIDO
DECLARACIÓN………………………………………………………………….……….II CERTIFICACIÓN…………………………………………….…………………….…….III AGRADECIMIENTOS………………………………………….……..…………………IV DEDICATORIA…………………………………………………….…….……………….VI CONTENIDO………………………………………………………….……………...…VIII ÍNDICE DE IMÁGENES……………………………………………………….…………X ÍNDICE DE GRÁFICOS…………………………………………………….…..……....XI ÍNDICE DE TABLAS…………………………………………………………..……..…XII ÍNDICE DE ANEXOS…………………………………………………………….……XIV RESUMEN………………………………………………………………………….……XV ABSTRACT………………………………………………………………………...….XVII PRESENTACIÓN………………………………………………………………….…XVIII CAPÍTULO 1 .......................................................................................................... 1 ASPECTOS GENERALES ..................................................................................... 1
1. INTRODUCCIÓN ............................................................................................ 1 1.1.1 ANTECEDENTES .................................................................................. 1
1.2 JUSTIFICACIÓN ........................................................................................... 3 1.3 ALCANCE ..................................................................................................... 4 1.4 OBJETIVOS .................................................................................................. 5
1.4.1. OBJETIVO GENERAL .......................................................................... 5 1.4.2. OBJETIVO ESPECÍFICO ...................................................................... 5
CAPÍTULO 2 .......................................................................................................... 6 MARCO TEÓRICO ................................................................................................. 6
2.1. PLANTAS ACUÁTICAS ............................................................................... 6 2.1.1. DEFINICIÓN ......................................................................................... 6 2.1.2. ADAPTACIONES ANATÓMICAS Y FISIOLÓGICAS DE LAS PLANTAS ACUÁTICAS .................................................................................................... 6 2.1.3. CLASIFICACIÓN ................................................................................... 7 2.1.4. USO DE LAS PLANTAS ACUÁTICAS EN HUMEDALES ARTIFICIALES .............................................................................................. 10 2.1.5. INCONVENIENTES CON PLANTAS ACUÁTICAS ............................. 11 2.1.6. ESTADO DE LAS PLANTAS ACUÁTICAS EN EL ECUADOR ........... 11
2.2. REQUERIMIENTOS DE LAS PLANTAS ACUÁTICAS .............................. 12 2.2.1. OXÍGENO ........................................................................................... 12 2.2.2. FOTOSÍNTESIS .................................................................................. 16 2.2.3. RESPIRACIÓN.................................................................................... 19 2.2.4. NUTRIENTES DE LAS PLANTAS: ..................................................... 20
2.3. CULTIVO HIDROPÓNICO ......................................................................... 21 2.3.1. DEFINICIÓN ....................................................................................... 21 2.3.2. SOLUCIÓN NUTRITIVA ...................................................................... 21
CAPÍTULO 3 ........................................................................................................ 24 METODOLOGÍA ................................................................................................... 24
3.1. I ETAPA: MUESTREO ............................................................................... 24 3.1.1 PREVIO AL MUESTREO ..................................................................... 24 3.1.2 MUESTREO ......................................................................................... 28
IX
3.2. II ETAPA: ACLIMACIÓN ............................................................................ 34 3.2.1. PREVIO A LA ACLIMACIÓN ............................................................... 34 3.2.2. ACLIMACIÓN ................................................................................... 37
3.3. III ETAPA: ARMADO DE EQUIPO, REACTORES Y PREPARACIÓN DE CULTIVO HIDROPÓNICO ................................................................................ 39
3.3.1. ARMADO DE EQUIPO Y ESTERILIZACIÓN DE REACTORES ......... 39 Equipos y Materiales: .................................................................................... 39 3.3.2. ELABORACIÓN DEL CULTIVO HIDROPÓNICO ............................. 40 3.3.3. ARMADO DE REACTORES ............................................................. 43
3.4. IV ETAPA: EXPERIMENTACIÓN .............................................................. 45 3.5 V ETAPA: EVALUACIÓN DE LA TRANSFERENCIA DE OXÍGENO ...... 46
CAPÍTULO 4 ........................................................................................................ 48 RESULTADOS Y DISCUSIÓN ............................................................................. 48
4.1 RESULTADOS BIOLÓGICOS ................................................................ 48 4.1.1. FITOPLANCTON Y PERIFITO ............................................................ 48 4.1.2 DESINFECCIÓN DE PLANTAS ACUÁTICAS ..................................... 50 4.1.3 RESULTADOS DE ACLIMACIÓN ........................................................ 50 4.1.4 CARACTERIZACIÓN FÍSICA Y QUÍMICA DEL AGUA DE LA LAGUNA ...................................................................................................................... 52 4.1.5 ANÁLISIS ECOLÓGICOS CON PLANTAS ACUÁTICAS .................... 55
4.2 RESULTADOS DE CONCENTRACIÓN DE OXÍGENO DISUELTO .......... 56 4.2.1. CONCENTRACIÓN DE OXÍGENO DISUELTO PARA CADA ÉPOCA 56 4.2.2 CONCENTRACIÓN DE OXÍGENO DISUELTO PARA CADA ESPECIE DE PLANTA .................................................................................................. 60 4.2.3. TASA DE TRANSFERENCIA DE OXÍGENO ...................................... 62
4.3 COMPARACIÓN DE CONDICIONES NATURALES Y LABORATORIO 65 4.3.1 PARÁMETROS FÍSICOS-QUÍMICOS .................................................. 65 4.3.2 REQUERIMIENTOS NUTRICIONALES ............................................... 67
CAPÍTULO 5 ........................................................................................................ 69 CONCLUSIONES Y RECOMENDACIONES ....................................................... 69
5.1 CONCLUSIONES.................................................................................... 69 5.2 RECOMENDACIONES ............................................................................... 70
REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS ..................................................................... 72 ANEXOS………………………………………………………………………………..100
X
ÍNDICE DE IMÁGENES IMÁGEN 2.1. CLASIFICACIÓN DE LAS PLANTAS ACUÁTICAS…………..…..…8 IMAGEN 2.2. TRANSFERENCIAS DE OXÍGENO POR PLANTAS ACUÁTICAS………………………………………………………………….…………15 IMAGEN 3.1. LAGUNA DE YAHUARCOCHA…………………………………….…25 IMAGEN 3.2. PRENSADO…………………………………………………………..…35 IMAGEN 3.3. ANÁLISIS DE CLORO……………………………………………….…39 IMAGEN 3.4. ESQUEMA DE EXPERIMENTACIÓN…………………………….….44 IMAGEN 4.1. ALGAS ENCONTRADAS…………………………………….…….…50
XI
ÍNDICE DE GRÁFICOS GRÁFICO 4.1. PORCENTAJE DE GÉNEROS DE ALGAS IDENTIFICADOS…………………………………………………………………….….48 GRÁFICO 4.2. MORTANDAD SEGÚN LA ESPECIES……………………………..52 GRÁFICO 4.3. COMPARACIÓN DE LA CONCENTRACIÓN DE OD………….…61 GRÁFICO 4.4. TASA DE TRANSFERENCIA DE OXÍGENO………………….......64 GRÁFICO 4.5. COMPARACIÓN DE LOS ANÁLISIS DE NUTRIENTES…….......68
XII
ÍNDICE DE TABLAS
TABLA 2.1. ADAPTACIONES ANATÓMICAS DE LAS PLANTAS ACUÁTICAS……………………………………………………………….……………...7 TABLA 2.2. PLANTAS EMERGENTES USADAS EN LA INVESTIGACIÓN…………………………………………………………………………8 TABLA 2.3. PLANTAS ACUÁTICAS FLOTANTES USADAS EN LA INVESTIGACIÓN………………………………………………………………….……...9 TABLA 2.4. ESPECIES ACUÁTICAS INVASIVAS EN EL ECUADOR…………...12 TABLA 2.5. CLASIFICACIÓN DE LAS ALGAS………………………………..........16 TABLA 2.6. FOTOSÍNTESIS EN PLANTAS ACUÁTICAS…………………………18 TABLA 2.7. NUTRIENTES DE LAS PLANTAS……………………………………...20 TABLA 2.8. SOLUCIONES NUTRITIVAS TÍPICAS……………………….………...22 TABLA 3.1. PRECIPITACIONES EN LA COSTA………………………………..….26 TABLA 3.2. PRECIPITACIONES EN LA SIERRA…………………………………..27 TABLA 3.3. ESPECIES DE PLANTAS ACUÁTICAS SELECCIONADAS PARA LA EXPERIMENTACIÓN…………………………………………………………………..28 TABLA 3.4. MUESTREO…………………………………………………………….…29 TABLA 3.5. COORDENADAS DE LOS PUNTOS DE MUESTREO DE PLANTAS ACUÁTICAS……………………………………………………………………………..30 TABLA 3.6. COORDENADAS DE PUNTOS DE MUESTREO…………………….31 TABLA 3.7. PARÁMETRO Y EQUIPO USADO EN CAMPO………………………32 TABLA 3.8 PARÁMETROS ANALIZADOS EN LABORATORIO…………….…….32 TABLA 3.9 MACRO Y MICRONUTRIENTES ANALIZADOS……………………...33 TABLA 3.10. COMPOSICIÓN DE MICRONUTRIENTES………………….……….41 TABLA 3.11. COMPOSICIÓN NITRATO DE POTASIO……………………………41 TABLA 3.12. CANTIDAD DE NUTRIENTES PARA EL CULTIVO………………...42 TABLA 3.13.ANÁLISIS REALIZADOS DE LABORATORIO DEL CULTIVO………………………………………………………………………………....42 TABLA 4.1. GÉNEROS IDENTIFICADOS DE ALGAS……………………………..48 TABLA 4.2. NÚMERO DE PLANTAS USADAS EN LA EXPERIMENTACIÓN…………………………………………………………………..51 TABLA 4.3. RESULTADOS DE LOS ANÁLISIS DEL AGUA DE LA LAGUNA Y DATOS DE OTROS AUTORES…………………………………………...…………..53 TABLA 4.4. RESULTADOS DE ANÁLISIS DE COLIFORMES……………….……54 TABLA 4.5. HUMEDAD EN LAS PLANTAS……………………………………….…55 TABLA 4.6. RESULTADOS DEL IAF…………………………………………………56 TABLA 4.7. CONCENTRACIÓN DE OXÍGENO PARA CADA ÉPOCA…………..57 TABLA 4.8. CONCENTRACIÓN DE OXÍGENO PARA LA ÉPOCA SECA………………………………………………………………………………….….58 TABLA 4.9. CONCENTRACIÓN DE OXÍGENO PARA LA ÉPOCA LLUVIOSA……………………………………………………………………………..…59 TABLA 4.10. CONCENTRACIÓN DE OXÍGENO DISUELTO………….………….60 TABLA 4.11. TASA DE TRANSFERENCIA DE OD………………………….……..63 TABLA 4.12. DENSIDAD DE PLANTAS………………………………….………….63 TABLA 4.13. TASA DE TRANSFERENCIA POR m2 ……………………….………64
XIII
TABLA 4.14 PARÁMETROS FÍSICO QUÍMICOS DE LA LAGUNA Y DE LABORATORIO….……………………………………………………………………...66 TABLA 4.15. ANÁLISIS DE NUTRIENTES…………………………………….…….67
XIV
ÍNDICE DE ANEXOS
ANEXO 1: PLANTAS CON SU CÓDIGO DISPUESTA EN CADA REACTOR……………………………………………………………………….……..101 ANEXO 2: OXÍGENO DISUELTO DE CADA REACTOR PARA ÉPOCA SECA Y LLUVIOSA…..………………………………………………………………………….104 ANEXO 3: ESTADÍSTICA DESCRIPTIVA PARA ÉPOCA SECA Y LLUVIOSA……………………………………………………………………………...113 ANEXO 4: CARTOGRAFÍA…………………………………………………………..135 ANEXO 5: RESULTADOS DE ENSAYOS DE LAGUNA YAHUARCOCHA…….141 ANEXO 6: RESULTADOS DE ENSAYOS DE LABORATORIO………….………145 ANEXO 7: IDENTIFICACIÓN DE ALGAS……………………………………….….148 ANEXO 8. FOTOGRAFÍAS…………………………………………………………...154
XV
RESUMEN El presente trabajo de titulación pretende evaluar la transferencia de oxígeno con
plantas acuáticas en un cultivo hidropónico; para lo cual se seleccionó la
Eichornia crassipes, Miriophyllum aquaticum, Schoenoplectus californicus y Typha
domingensis provenientes de la Laguna de Yahuarcocha.
La tasa de transferencia obtenida para cada una de las especies estudiadas es
muy importante como parámetro de diseño en sistemas de tratamientos de agua
residual, ya que las plantas acuáticas son comúnmente usadas en humedales
artificiales debido a que es una alternativa ecológica y económica que aprovecha
las características de bioremediación de las plantas como degradación,absorción
y asimilación de contaminantes en sus tejidos.
Para lograr realizar esta investigación se realizaron dos muestreos
correspondientes a la época seca y lluviosa en la laguna de Yahuarcocha
recolectando en total 204 plantas. Posteriormente, se sometieron a las plantas a
un proceso de aclimación de las cuales se escogieron 38 plantas en total.
Además, se elaboró un cultivo hidropónico con la cantidad de nutrientes adecuado
para las plantas logrando condiciones aptas de las mismas durante el periodo de
experimentación. Finalmente, se midió la concentración de oxígeno disuelto cada
hora por un periodo de 12 horas durante 8 días y se calculó la tasa de
transferencia de oxígeno para cada especie.
De esta manera, se encontró que la Miriophyllum aquaticum transfiere 12,11 g *m-
2*día-1 de oxígeno, seguido por la Eichornia crassipes con 5,58 g *m-2*día-1 de
oxígeno, pero las plantas que tienen menor eficiencia en la transferencia de
oxígeno fueron Schoenoplectus californicus y Typha domingensis con 3,13 g *m-
2*día-1 y 2,34 g *m-2*día-1 respectivamente.
XVI
Para concluir, se comprobó que la tasa de transferencia producida por las plantas
acuáticas no es eficiente en comparación con las algas y el uso de las mismas en
humedales artificiales debe tener un programa control de vectores y uso posterior.
XVII
ABSTRACT
The present investigation aim is to evaluate the transfer of oxygen with the aquatic
plants in a hydroponic crop; for this purpose, Eichornia crassipes, Miriophyllum
aquaticum, Schoenoplectus californicus and Typha domingensis were selected
from Yahuarcocha Lagoon.
The transfer rate obtained for each of the species studied is very important as a
design parameter in wastewater treatment systems, since aquatic plants are
commonly used in artificial wetlands because it is an ecological and economic
alternative that takes advantage of the characteristics of bioremediation of plants
as the degradation, absorption and contamination of contaminants in tissues.
In order to carry out this research, the samples corresponding to the dry and rainy
season in the Yahuarcocha lagoon were collected, collecting a total of 204 plants.
Subsequently, the plants were subjected to a process of acclimatization of which
38 plants were selected in total. In addition, a hydroponic crop was developed with
the amount of nutrients suitable for the plants that adapts to the conditions of the
plants during the period of experimentation. Finally, the oxygen concentration in
each hour was measured for a period of 12 hours for 8 days and the rate of
oxygen transfer for each species was calculated.
In this way, it was found that the Miriophyllum aquatic transfers 12.11 g * m-2 * day-
1 oxygen, followed by the Eichornia crassipes with 5.58 g O2* m-2 * day-1 oxygen,
but plants Schoenoplectus californicus and Typha domingensis with 3.13 g O2 * m-
2 * day-1 and 2.34 g O2* m-2 * day-1, respectively, had the lowest oxygen transfer
efficiency.
To conclude, it was found that the transfer rate produced by aquatic plants is not
efficient compared to algae and the use of them in artificial wetlands must have a
vector control program and later use.
XVIII
PRESENTACIÓN
El presente trabajo de investigación se desarrolla de acuerdo a la siguiente
estructura:
El Capítulo 1 corresponde a la introducción, justificación, alcance y los objetivos
planteados para el desarrollo del presente trabajo.
En el Capítulo 2 se desarrolla el sustento bibliográfico realizando la descripción de
las plantas acuáticas, fotosíntesis, respiración, transferencia de oxígeno y los
nutrientes requeridos por estas plantas.
El Capítulo 3 contiene la metodología utilizada en el presente proyecto de
investigación, el cual está dividido en 5 etapas: Muestreo, Aclimación, Armado de
equipo, reactores y preparación de cultivo hidropónico, Experimentación y
Evaluación de la transferencia de oxígeno.
En el Capítulo 4 se realiza el análisis y discusión de los resultados obtenidos de
transferencia de oxígeno de cada especie de planta acuática estudiada y se
comparan entre sí para determinar la de mayor eficiencia.
Finalmente, en el Capítulo 5 se presentan las conclusiones y recomendaciones
que se obtuvieron después de realizar un análisis de los resultados tomando en
cuenta los objetivos proyectados; adicional se exponen los anexos que
fundamentan el trabajo de investigación realizado.
CAPÍTULO 1
ASPECTOS GENERALES
1. INTRODUCCIÓN
1.1.1 ANTECEDENTES
La cantidad mínima de agua necesaria para la sobrevivencia humana es de
alrededor de 50 litros por persona por día considerando el uso de este recurso
para consumo, saneamiento e higiene. Al ser un recurso natural, su cantidad es
limitada, estimándose un valor de 1.400 millones de km3 de agua en el ciclo
hidrológico, disponiendo alrededor de 14 millones km3 como agua dulce
(PNUMA, 2013).
La calidad de este recurso se ha visto comprometida debido a la amenaza que
presentan los ecosistemas acuáticos, ligados principalmente a la mala gestión,
despilfarro y la contaminación que afrontan los cuerpos hídricos (WWAP, 2016).
La creciente demanda está ligada a la expansión demográfica que cada vez
ocasiona una mayor competencia por el acceso a este recurso. Para el año
2025, el ser humano consumirá el 70% de agua disponible; esto teniendo en
cuenta únicamente el crecimiento demográfico; pero si el consumo de agua
sigue creciendo al ritmo actual, en 25 años la población podría usar más del 90%
de agua dulce disponible (Morató et al., 2009; Guerra et al., 2015).
Además, la actividad industrial junto con el crecimiento poblacional ha provocado
que uno de los principales problemas ambientales sea el vertido de aguas
contaminadas ocasionando deterioro ambiental y problemas de saneamiento
(Beascoechea, 2010).
2
Según la Organización Mundial de la Salud en el año 2013 (como se citó en el
Informe de las Naciones Unidas sobre el desarrollo de los Recursos Hídricos en
el Mundo 2014), 2500 millones de personas no disponen de accesos a servicios
mejorados de saneamiento ocasionando la muerte de 502000 personas en el
año 2015 debido a la ingesta de agua contaminada provocando enfermedades
hídricas.
Desde el punto de vista de saneamiento, las aguas residuales, definidas según
el Texto Unificado de Legislación Secundaria Medio Ambiente (TULSMA) como
las aguas de composición variada provenientes de las descargas de usos
distintos y que han sufrido degradación en su calidad pueden ocasionar
diferentes enfermedades hídricas como: infecciones bacterianas (fiebre tifoidea,
salmonelosis, cólera, gastroenteritis), infecciones víricas (gastroenteritis y
hepatitis A), parasitosis (coccidios, amebas, hidatidosis, cisticercosis,
nematodosis), además de hospedar vectores (Beascoechea, 2010).
El Ecuador es un país rico en recursos hídricos, de acuerdo a SENAGUA (2008)
existe una disponibilidad de agua de 22500 m3 por habitante por año, pero el
recurso se ve afectado por la escasez o nulo saneamiento que existe en
ciudades y empresas en todo el país, lo cual aporta a la contaminación de las
fuentes y ríos, producto de los desechos vertidos; limitando cada vez más el
acceso al agua en cantidad y calidad, contribuyendo a la degradación progresiva
de este recurso (Quishpe, 2014).
En el Ecuador, según el Censo de Información Ambiental en el 2012 a nivel
nacional, 9% de las empresas realizó algún tratamiento a sus aguas residuales.
De 1394 empresas solo el 3% realizó tratamiento primario, secundario, terciario
y tan solo la mitad de las empresas realizó tratamiento primario. De éstas el 55%
descargaron sus aguas residuales tratadas a la red pública de alcantarillado, el
27% lo hicieron a cauces del río, mientras que 3% las descargó al mar (INEC,
2012).
3
En el año 2013 según el Censo de Información Ambiental, el volumen de agua
consumida por 220 municipios fue de 414 000 173 m3 pero el total de volumen
de agua residual fue de 61 928 393 m3, además en el país existen ciudades
como Galápagos en las que no se realiza ningún tipo de tratamiento de agua
residual (INEC, 2013).
De lo anteriormente expuesto, se ve la necesidad de una mejora en la calidad de
las aguas, pero la falta de tratamiento de aguas residuales debido a costos de
operación, mantenimiento de la implementación de tecnologías de depuración y
el área que requieren las mismas son un inconveniente (Martelo, J. y Lara, J.,
2012 ; Montoya et al. 2010).
Por tal razón, las tecnologías no convencionales para tratamiento de aguas
residuales mediante el uso de plantas acuáticas son un medio viable para el
tratamiento de aguas residuales, porque se basan en procedimientos naturales de
depuración que no emplean aditivos químicos y eliminan sustancias
contaminantes, convirtiéndose en la solución a la grave crisis del agua ya que es
una tecnología de bajo costo, fácil construcción, mantenimiento y operación
sencilla, cuyo uso empezó en los años 70 (Morató et al., 2009; Cortijo et al., 2014;
Sánchez et al. 2013).
1.2 JUSTIFICACIÓN
A través del tiempo se han usado diversas plantas acuáticas como el carrizo,
jacinto de agua, totora y junco entre otras, para el tratamiento de aguas
residuales comprobándose su efectividad en depuración de las mismas, usando
el mecanismo de transporte de oxígeno hacia las raíces demostrado por varios
investigadores encontrándose importantes variaciones interespecíficas en la
cantidad de oxígeno liberado al medio circundante (Reddy et al 1989, Brix, 1993).
4
Las plantas acuáticas usadas para depurar aguas residuales son tolerantes a
altas concentraciones de contaminantes, tienen rápida tasa de crecimiento y alta
productividad, muchas de estas plantas han sido usadas con el fin de tratar aguas
residuales (Lacuesta y Cristóbal, 2013).
Debido a la insuficiencia de datos sobre la cantidad de oxígeno que producen las
plantas acuáticas bajo las condiciones meteorológicas y climatológicas de la
ciudad de Quito, la problemática de tratamiento de aguas residuales y escasez
de agua se propone el presente trabajo investigativo para evaluar la
transferencia de oxígeno con plantas acuáticas en un cultivo hidropónico con el
fin proveer datos experimentales requeridos para estudios más específicos como
opción de tecnología para tratamiento de aguas residuales por humedales.
El propósito de esta investigación es obtener valores de la cantidad de oxígeno
que transfieren distintas especies de plantas acuáticas, comúnmente usadas en
la depuración de aguas residuales, posteriormente hacer recomendaciones en
relación a las especies de plantas acuáticas mejor adaptadas a las condiciones
meteorológicas y climáticas de la ciudad de Quito y las especies de plantas que
transfieren la mayor cantidad de oxígeno.
1.3 ALCANCE
El conocimiento de la tasa de transferencia de oxígeno permitirá ser usado como
parámetro para el diseño de sistemas de tratamiento de aguas residuales no
convencionales mediante el cálculo de la densidad de plantas acuáticas que
necesita el sistema para un determinado caudal a tratar, disminuyendo de esta
manera los costos de ejecución de tecnologías que traten aguas residuales,
mejorando la calidad de aguas en los cuerpos de descarga y por ende la salud
pública para zonas rurales, pequeñas poblaciones o empresas que requieran
tratar sus efluentes sin metales pesados antes de la descarga al alcantarillado.
5
1.4 OBJETIVOS
1.4.1. OBJETIVO GENERAL
Evaluar la transferencia de oxígeno con plantas acuáticas en un medio de cultivo
hidropónico.
1.4.2. OBJETIVO ESPECÍFICO
· Seleccionar las plantas acuáticas para la experimentación.
· Aclimar las plantas acuáticas a las condiciones climáticas- meteorológicas
de Quito.
· Comparar la transferencia de oxígeno producida por distintas especies de
plantas acuáticas.
· Identificar la especie de planta acuática con mejores características para
transferir oxígeno.
6
CAPÍTULO 2
MARCO TEÓRICO
2.1. PLANTAS ACUÁTICAS
2.1.1. DEFINICIÓN
La definición de planta acuática es ambigua, debido a que es un grupo
heterogéneo, ya que muchos autores hacen referencia a este término
exclusivamente para plantas vasculares; en cambio otros incluyen en este grupo a
carófitos, algas filamentosas y briófitos (Cirujano, Molina, & Cezón, 2011; P.
García, Fernández, & Cirujano, 2010). Para fines de la presente investigación, se
usó la definición de plantas acuáticas para referirse solo a las plantas acuáticas
vasculares.
Por ende, las plantas acuáticas son aquellas que completan su ciclo biológico en
cuerpos de agua y son visibles a simple vista, es decir se trata de plantas
superiores con flores; presentan como cuerpo vegetativo un cormo con raíz, tallo
y hojas, como cuerpo reproductivo presentan flor, frutos y semillas (Cirujano et
al., 2011; Posada & López, 2011; Ramírez & San Martín, 2006).
2.1.2. ADAPTACIONES ANATÓMICAS Y FISIOLÓGICAS DE LAS PLANTAS
ACUÁTICAS
Las plantas acuáticas presentan modificaciones en su anatomía y fisiología que
las diferencia de las plantas terrestres (P. García et al., 2010).
2.1.2.1. Adaptaciones anatómicas
Las adaptaciones anatómicas que presentan las plantas acuáticas son las que se
presentan en la tabla 2.1:
7
TABLA 2.1. ADAPTACIONES ANATÓMICAS DE LAS PLANTAS ACUÁTICAS
Parte Función Adaptación
Cutícula y estoma Responsables de la
transpiración
Pierden su función en las plantas acuáticas, en las sumergidas la cutícula se reduce y los estomas no existen.
Colénquima y esclerénquima
Tejido de sorporte Están presentes pero reducidos sobre todo en las flotantes y sumergidas.
Aerénquima Tejido esponjoso el cual
permite flotar libremente a las plantas acuáticas
Se encuentra bien desarrollado en las plantas de estudio.
Vasos conductores
Distribuir la savia por toda la planta
Reducidos a un cilindro central.
Cloroplastos Ocurre la fotosíntesis Se ubican en la epidermis superior, aprovechando el máximo de radiación.
FUENTE: (Esteves, 1998; Roldán & Ramírez, 2008) ELABORACIÓN: Larco & Paucar; 2017 2.1.2.2. Adaptaciones fisiológicas
Las plantas acuáticas presentan una sola capa de células de cutícula y por ello
tienen una capa muy fina; en el aerénquima se almacenan los gases producidos
durante la fotosíntesis y respiración (Esteves, 1998; Oyedeji & Abowei, 2012;
Roldán & Ramírez, 2008).
Las hojas son lineares, finamente divididas o presentan heterofilia, los tallos son
siempre herbáceos de escasa consistencia ya que en su interior contienen aire y
espacios reducidos, las raíces están escasamente desarrolladas presentando
raíces adventicias, incluso en algunas plantas se encuentran atrofiadas y los
frutos aparecen ocasionalmente (P. García et al., 2010).
2.1.3. CLASIFICACIÓN
La clasificación de las plantas acuáticas ha sido propuesta desde el año 1920; sin
embargo hasta el día de hoy no existe un consenso sobre la clasificación de las
plantas acuáticas debido a que es un grupo heterogéneo (Mazzeo, 2006).
Para fines de la presente investigación, se usó la clasificación de Francisco de
Assis Esteves (1998), Moreano (2008) y Screamin Dias (2009) como se ve en la
imagen 2.1.
8
IMAGEN 2.1. CLASIFICACIÓN DE LAS PLANTAS ACUÁTICAS
FUENTE: (Scremin-Dias, 2009)
2.1.3.1. Emergentes: la raíz está enterrada en los sedimentos pero parte de los
tallos y hojas están por encima del agua; no dependen del agua para su soporte y
las estructuras reproductoras están en la parte aérea de la planta; (Núñez, Meas,
Ortega, & Olguin, 2004; Roldán & Ramírez, 2008). Además, necesitan secuestrar
oxígeno, tolerar bajos niveles de oxígeno y hacer frente a productos tóxicos
resultado de sedimento anóxico e hipóxico (Hagley, n.d.)
En la tabla 2.2 se encuentra la descripción de dos tipos de plantas emergentes las
mismas que fueron usadas en la experimentación:
TABLA 2.2. PLANTAS EMERGENTES USADAS EN LA INVESTIGACIÓN
PLANTA ACUÁTICA EMERGENTE
Schoenoplectus californicus
Typha domingensis Pers., Syn. Pl. 2: 532. 1807.
Nombre común Falso junco, tule, patronal, charanda, tule redondo.
Junco, masa de agua, pelusa, plumilla.
Descripción
Planta acuática perenne de 4 m. Flores bisexuales y frutos en forma de aquenios.
Planta vascular perenne de hasta 5 m, hojas verde pálido a amarillento de 5 a 12 mm de ancho.
Reproducción Asexual es decir por medio de reproducción vegetativa
FUENTE: (Lot et al., 2015; Bonilla-Barbosa & Santamaría, 2013; Jørgensen & León-Yánez, 1999; Curt, 2010; Enrique Peña, Madera, Sanchez, & Medina, 2013) ELABORACIÓN: Larco& Paucar; 2017
9
2.1.3.2. Sumergidas: completan su ciclo biológico dentro del agua y están
distribuidas por todo el mundo excepto en lagos de agua muy profunda y fría
como en los polos (Hasan & Chakrabarti, 2009; Roldán & Ramírez, 2008;
Scremin-Dias, 2009).
2.1.3.3. Flotante: viven en la superficie del agua y se subdividen en dos grupos que
son las no fijas y las fijas. Las no fijas (plantas de libre flotación): poseen sus
tallos y hojas sobre la superficie del agua; pero las raíces no se encuentran
adheridas a sustrato y las estructuras vegetativas y reproductivas se mantienen
emergentes (Núñez et al., 2004). Y las fijas (con hojas flotantes): tienen sus hojas
flotando sobre la superficie del agua, pero sus raíces están fijas en los sedimentos
(Núñez et al., 2004).
En la tabla 2.3 se encuentra la descripción de dos tipos de plantas flotantes las
mismas que fueron usadas en la experimentación:
TABLA 2.3. PLANTAS ACUÁTICAS FLOTANTES USADAS EN LA INVESTIGACIÓN PLANTA ACUÁTICA
Myriophyllum aquaticum (Vell.) Verd. (1753)
Eichornia crassipes
Nombre común cola de zorro, pinito, pluma de agua; yerba de sapo (Argentina)
lirio de agua, jacinto de agua, flor de bora, camalote
Descripción
*Planta acuática exótica invasiva, es perenne *Desplaza a menudo especies nativas.
*Planta acuática flotante libre perenne de agua dulce *Según UICN se encuentra en la lista de las 100 especies exóticas invasoras más dañinas en el mundo
Reproducción Fragmentación y división de semillas
Multiplicación vegetativa mediante estolones y propagación de semillas
FUENTE: (P. García, Fernández, & Cirujano, 2010; ISC, 2016;Olvera, Flores, & Díaz, 2015;Curt, 2010; Lowe S., Browne M., Boudjelas S., 2004) ELABORACIÓN POR: Larco & Paucar; 2017
10
2.1.4. USO DE LAS PLANTAS ACUÁTICAS EN HUMEDALES ARTIFICIALES
Los humedales artificiales son tecnologías no convencionales ampliamente
usados alrededor del mundo para dar tratamiento complementario a efluentes
domésticos e industriales, siendo las plantas acuáticas la base del proceso ya
que degradan, absorben y asimilan en sus tejidos los contaminantes (Acero,
Ariel, Magíster, & Civil, 2014; Beascoechea, Beascoechea, Muñoz, & Curt, n.d.).
Estos sistemas son ideales para poblaciones pequeñas, pequeñas
urbanizaciones e industrias en las que es difícil construir, operar o mantener
sistemas de tratamiento convencional (Acero et al., 2014; Metcalf & Eddy, 1995).
Los humedales artificiales son una alternativa ecológica y económicamente viable
debido a que se aprovechan las relaciones flujo de energía-nutrientes entre las
plantas acuáticas y microorganismos; porque airean el sistema radicular y facilitan
el oxígeno a los microorganismos que viven en las raíces eliminando los
contaminantes del agua residual como sólidos suspendidos, materia orgánica,
nitrógeno, fósforo, microorganismos (Caldelas, Iglesia-Turiño, Araus, Bort, &
Febrero, 2009; Das, Goswami, & Das Talukdar, 2016; Fernández,2010; Metcalf &
Eddy, 1995; Miranda & Quiroz, 2013).
Se han usado diversas plantas acuáticas con el fin de tratar aguas residuales;
por ejemplo en Alemania en el Instituto Max Plank se empleó el junco común
(Schoenoplectus lacustris) y obtuvo como resultado que esta planta acuática
podía remover sustancias orgánicas e inorgánicas (Silva, sf).
El uso extensivo de estas plantas en la remediación de aguas residuales se
debe a que son organismos que se emplean para conocer las cualidades de los
ecosistemas y su estado de conservación; es decir son bioindicadoras porque se
pueden observar fácilmente respondiendo inmediatamente a variaciones en las
condiciones físico-químicas del medio y son sensibles a la presencia de diversos
11
contaminantes e inclusive pueden acumular sustancias tóxicas en sus órganos
como metales pesados: mercurio, plomo entre otros (P. García et al., 2010).
Por ejemplo, la Myriophyllum heterophyllum Michx. y Potamogeton crispus L
han sido usadas como bioindicadoras en la absorción de plomo, la C.demersum
en cambio es indicadora de zonas contaminadas con elevada carga de
nutrientes (Kiersch, Münhleck, & Gunkel, 2004; Miranda & Quiroz, 2013).
2.1.5. INCONVENIENTES CON PLANTAS ACUÁTICAS
Las plantas acuáticas se llaman malezas acuáticas cuando su manejo se
convierte en un problema para los ecosistemas acuáticos provocando pérdida en
biodiversidad, alterando y modificando el hábitat original; además son un
problema para canales de irrigación y embalses causando eutrofización del agua
porque invaden las masas de agua e impiden el paso de la luz al interior
causando anoxia en la masa de agua (P. García et al., 2010; Roldán & Ramírez,
2008).
Otros efectos negativos causados directamente por las malezas acuáticas son la
disminución de producción de alimento humano en los hábitats acuáticos
aledaños como sitios de pesca y áreas cultivadas, obstaculización de navegación
y problemas en proyectos hidroeléctricos; además se pueden producir efectos
indirectos como hábitats favorables para el desarrollo de vectores como malaria y
esquistosomiasis (Acosta-Arce & Aguero, 2006; Pieterse, 2005).
2.1.6. ESTADO DE LAS PLANTAS ACUÁTICAS EN EL ECUADOR
Según el “Catálogo de Plantas Vasculares del Ecuador” se han identificado 111
plantas acuáticas representando el 0,7 % de la flora vascular existente en el país
(Jørgensen & León-Yánez, 1999). La vegetación acuática del Ecuador está
dominada por totorales que incluyen los géneros Scirpus, Typha y Juncus (Rial,
Terneus, León, & Tognelli, 2016).
12
Según el Registro Global de Especies Introducidas e Invasoras (GRIIS) en el
Ecuador se han registrado 2 especies invasoras de plantas acuáticas (GRIIS,
2016).
A continuación, en la tabla 2.4 se observa las especies acuáticas invasivas en el
Ecuador:
TABLA 2.4. ESPECIES ACUÁTICAS INVASIVAS EN EL ECUADOR
Nombre científico Nombre común Origen Evidencia de Impacto Eichornia crassipes Jacinto de agua Introducida No Callitriche terrestris Huenchecó Introducida No
FUENTE:(GRIIS, 2016) ELABORACIÓN: Larco & Paucar; 2017
2.2. REQUERIMIENTOS DE LAS PLANTAS ACUÁTICAS
Las plantas acuáticas necesitan de dióxido de carbono, oxígeno, macro y
micronutrientes, agua, luz para su correcto desarrollo y crecimiento (Gettys et al.,
2014).
2.2.1. OXÍGENO
El oxígeno es primordial para el metabolismo de los vegetales y su forma más
estable es el oxígeno molecular diatómico (O2), la ausencia de este elemento
cerca de las raíces de las plantas acuáticas inhibe la respiración aeróbica en la
zona radicular; permitiendo la acumulación de materiales perjudiciales (Baily-
Serres, 2009; Salisbury & Ross, 2000).
El oxígeno disuelto (OD) se refiere al oxígeno presente en el agua, este oxígeno
es producido por la fotosíntesis de plantas acuáticas y por la difusión del oxígeno
desde la atmósfera hasta el agua (Hunt & Christiansen, 2000). Otras fuentes de
oxígeno son: precipitación pluvial, afluentes y agitación moderada; en cambio el
consumo de oxígeno se da por respiración de plantas y animales (Roldán &
Ramírez, 2008).
13
2.2.1.1. Parámetros ambientales que afectan el contenido de OD en el agua
La cantidad de oxígeno presente en el agua es afectada por la temperatura, la
salinidad y la presión atmosférica.
· Temperatura: la concentración de oxígeno en agua es inversamente
proporcional a la temperatura, si se eleva la temperatura del agua a su
punto de ebullición se genera una solución libre de oxígeno (Massol, 1969).
· Salinidad: la presencia de algunos minerales en una solución reduce la
solubilidad de los gases, estas sales disueltas en agua reducen los
espacios intermoleculares disponibles para la disolución del oxígeno (Hunt
& Christiansen, 2000).
· Presión atmosférica: la solubilidad de un gas está determinada por su
presión parcial establecida en la ley de Henry, a su vez la presión parcial
de un gas es afectada por cambios en altitud y además puede ser alterada
por procesos de fotosíntesis y respiración (Peña, 2010).
2.2.1.2. Transferencia de oxígeno disuelto
La entrada de oxígeno al agua envuelve dos procesos: la entrada de oxígeno
atmosférico y la generación de oxígeno dentro del cuerpo de agua por la actividad
de organismos fotosintéticos como las plantas acuáticas y algas fotosintéticas
(Hunt & Christiansen, 2000).
Según Massol, 1969 para el primer proceso es necesario un gradiente apropiado
basado en las diferencias entre las presiones parciales de oxígeno en la
atmósfera y en el agua. La dirección y velocidad de transferencia del oxígeno al
agua dependen de tres factores:
1. La magnitud del gradiente de concentración
2. El grosor de la película superficial (la razón de difusión molecular de
oxígeno a 24°C es de sólo 2.3 x 10-5 cm2/segundos, requiriéndose años
14
para que trazas de oxígeno logren penetrar 5 metros a través de la
superficie).
3. La turbulencia (en áreas de cascadas y represas la alta presión de la
corriente de agua lleva a solución los gases atmosféricos).
Las diferencias en la concentración de oxígeno disuelto entre diferentes hábitats
acuáticos, según Wetzel, 1991 pueden explicarse a base de los siguientes
factores:
· Diferencias en la magnitud de la actividad respiratoria de plantas, animales
y microorganismos.
· Influencia de la morfología del fondo en el perfil vertical de oxígeno
(mientras mayor es la irregularidad del fondo, mayor es el área superficial
de los sedimentos ricos en materia orgánica que demandan oxígeno).
· Diferencias en la penetración de luz y por ende, en la actividad
fotosintética.
· Diferencias en la temperatura del agua.
· Entrada de minerales solubles (aumento en salinidad).
· Aumento en concentración de minerales a consecuencia de evaporación
de agua. entrada de grandes cantidades de materia orgánica oxidable.
El segundo proceso es realizado por organismos fotosintéticos como plantas
acuáticas y algas.
· Por plantas acuáticas
Las plantas acuáticas al ser organismos autótrofos realizan la fotosíntesis y
transfieren el oxígeno desde la atmósfera a través de las hojas y tallos hasta las
raíces hacia el agua como se observa en la imagen 2.2, poseen un sistema de
grandes espacios internos aéreos llamados aerénquima el cual está formado por
células que dejan toda una red de grandes espacios intercelulares; favoreciendo
el transporte de gases hacia la zona radical (Beltrano y Giménez, 2015;
Delgadillo et al., 2010; Rubio et al., 2015).
15
IMAGEN 2.2. TRANSFERENCIAS DE OXÍGENO POR PLANTAS ACUÁTICAS
FUENTE: (Gettys et al., 2014)
El mecanismo de transporte de oxígeno hacia las raíces ha sido demostrado por
varios investigadores centrándose importantes variaciones interespecíficas en la
cantidad de oxígeno liberado al medio circundante (Reddy et al 1989, Brix,
1993).
Diversas plantas acuáticas como el jacinto, carrizo, totora, junco, entre otras se
han empleado en el tratamiento de aguas residuales comprobando su alta
efectividad en depuración de aguas residuales, pero no se tiene valores exactos
de la cantidad de oxígeno que transfieren estas plantas (Celis, Junod, &
Sandoval, 2005).
Diversos estudios han estimado la transferencia de oxígeno en una variedad de
especies de plantas acuáticas, reportándose valores de transferencia de oxígeno
de entre 0.02 y 12 g O2 por m2 día -1 (Brix, 1993); de 0 y 0.5 g O2 por m2 dia-1
para plantas emergentes (Cano, 2003); estas grandes diferencias han sido
atribuidas a las diferentes técnicas experimentales empleadas y a variaciones
fisiológicas estacionales.
· Por algas
Las algas son un grupo de organismos microscópicos y macroscópicos con
metabolismo autótrofo por lo que son los principales responsables de la captación
de energía lumínica en los ecosistemas acuáticos; de esta manera el 50% de la
16
producción primaria total del planeta es realizada por algas (Dreckmann, Sentíes,
& Núnez, 2013; Mansilla & Alveal, 2004; Vallejos, n.d.).
Una de las características más importantes de las algas es su capacidad
depuradora del ambiente, a través del proceso de fotosíntesis incorporan oxígeno,
contribuyendo a la oxidación de la materia orgánica y también aumentando el
oxígeno disuelto en el agua, el cual será utilizado por las otras comunidades u
organismos que componen la flora y fauna del medio acuático donde viven (Luján
De Fabricius, 2000a).
Para la clasificación de las algas se toma en cuenta diferentes parámetros como
color, forma de movilidad, morfología, entre otros. En la tabla 2.5 se detalla la
clasificación según varios autores:
TABLA 2.5 CLASIFICACIÓN DE ALGAS
FUENTE: (Durán, 2011; Medel, n.d.; Vallejos, n.d.) ELABORACIÓN: Larco & Paucar, 2017
2.2.2. FOTOSÍNTESIS
La fotosíntesis es el proceso físico- químico que consiste en convertir la radiación
electromagnética en energía química utilizando la energía de la luz para
17
transformar el dióxido de carbono y el agua en glucosa y oxígeno; la reacción
general es: 6CO2+H2O+energía luminosa ---> C6H12O6+6O2 (Audesirk y Byers,
2003; Stryer et al.2013).
La fotosíntesis se realiza en dos fases: una dependiente de la luz llamada “fase
luminosa” y otra independiente llamada “fase oscura”; estos dos procesos
suceden en las horas de sol porque están ligados directamente, pues en la
primera se libera O2 a la atmósfera y se generan el ATP y NADPH2 son
indispensables para el funcionamiento del ciclo de fijación del carbono o ciclo de
Calvin que se lleva a cabo en la segunda fase (Audesirk, Audesik, & Byers, 2008;
Celis & Romero, 2007; Karp, 2014; Pérez, 2009).
2.2.2.1. Ruta C3 y C4
El ciclo de Calvin representa la ruta central de la reducción del CO2, las plantas
que sólo llevan a cabo este ciclo para la fijación de carbono se conocen como
plantas C3. La ruta metabólica C3 se encuentra en los organismos fotosintéticos
como las cianobacterias, algas verdes y en la mayoría de las plantas vasculares
(Benavides, n.d.). La ruta C4 se presenta en plantas con una anatomía especial
de la hoja con dos distintos tipos de células fotosintéticas, que forman una
separación de los procesos de fijación y reducción del CO2 (Audesirk et al., 2008;
Salisbury & Ross, 2000).
La ruta C4 parece un proceso relativamente ineficaz, pues se necesita ATP para
convertir el piruvato en PEP, además de las tres moléculas de ATP utilizadas en
el ciclo de Calvin. Pese a su ineficacia, la ruta C4, en combinación con el ciclo de
Calvin, supera los resultados del ciclo de Calvin por sí solo, en días calurosos y
soleados en los que la fotosíntesis es rápida y la concentración de CO2 en las
hojas puede disminuir. Cuando las temperaturas son más frías y aumenta la
concentración de CO2, el ciclo de Calvin por sí solo (ruta C3) es más eficaz en
términos energéticos, ya que necesita menos ATP (Audesirk et al., 2008; Grosso,
Tordable, & Reinoso, n.d.; Salisbury & Ross, 2000).
18
2.2.2.2. Organismos fotosintéticos
Los organismos fotosintéticos incluyen plantas terrestres, plantas acuáticas, algas
y cianobacterias; dependiendo del producto de desecho de la fotosíntesis puede
ser oxigénica (oxígeno) en las plantas y anoxigénica (azufre) en las bacterias
(Audesirk y Byers, 2003; Karp, 2014).
Las plantas terrestres y acuáticas realizan la fotosíntesis en los cloroplastos, las
cianobacterias en las tilacoides que están en el citoplasma y en las bacterias
fotosintéticas este proceso se lleva a cabo en unas estructuras llamadas
cromatóforos; los cloroplastos y los cromatóforos contienen una serie de
pigmentos para captar la luz los cuales pueden ser de cuatro clases: clorofilas,
feofitinas, carotenos y ficobilinas (Celis&Romero, 2007; Karp G., 2014).
2.2.2.3. Fotosíntesis en plantas acuáticas
Las plantas acuáticas producen oxígeno a través de la fotosíntesis durante el día
y en la noche cuando no existe luz se interrumpe el proceso, existiendo solo la
respiración (Brünner & Beck, 1990). La fotosíntesis en las diferentes plantas
acuáticas se presenta en la tabla 2.6:
TABLA 2.6. FOTOSÍNTESIS EN PLANTAS ACUÁTICAS
FUENTE:(Arizona, n.d.; Oyedeji & Abowei, 2012) ELABORACIÓN: Larco & Paucar; 2017
Planta Descripción Emergente
Las plantas de humedales a menudo usan la vía bioquímica C3 de fotosíntesis en lugar de C4. -C4 proporciona una vía posible para reciclar el CO2 de la respiración celular; las plantas que utilizan C4 tienen bajas tasas de fotorespiración y la capacidad de utilizar incluso la luz solar más intensa de manera eficiente. -C4 son más eficientes que las plantas C3 en la tasa de fijación de carbono y la cantidad de agua utilizada por unidad de carbono fijo.
Flotante
*Reciben mayor cantidad de luz que las sumergidas y muy raro compiten por la energía solar con otros organismos.
Sumergida
Las hojas de las plantas sumergidas reciben niveles más bajos de luz solar porque la energía luminosa disminuye al pasar a través de una columna de agua.
19
2.2.2.4. Factores que afectan la fotosíntesis
Según los autores Miller, E., 1967; Meyer, Anderson & Böhning, 1972 entre los
factores más importantes que afectan a la intensidad de la fotosíntesis están:
Dióxido de carbono: la concentración de CO2 en la atmósfera es alrededor del
0,03% al 0,04%, y se ha observado un aumento en la fotosíntesis cuando ésta
aumenta.
Luz: es toda la energía radiante de longitudes de onda que se encuentren dentro
del espectro visible tanto directo como reflejado e incluso luz artificial (eléctrica).
La cantidad total incidente absorbida por las hojas es generalmente del 50% y por
lo general cuando aumenta la intensidad de la luz aumenta la fotosíntesis.
Temperatura: la temperatura óptima no se ha podido establecer pues tiene un
rango bastante amplio y depende del tipo de plantas; sin embargo la actividad
fotosintética aumenta cuando existe una elevación de la temperatura.
Agua: para la fotosíntesis se usa sólo el 1% del total de agua que absorbe la
planta. Existe una disminución en la actividad fotosintética debido principalmente
a que las hojas se secan y la fotosíntesis puede disminuir en un 87%.
2.2.3. RESPIRACIÓN
Este proceso se realiza en la noche en el cual se hace un intercambio de H2O,
CO2 y O2 entre la atmósfera y las plantas, cuyo fin principal es la generación de
ATP. La respiración es el proceso contrario al de la fotosíntesis y se realiza
principalmente en las hojas aunque puede darse también en tallos y hojas
(Audesirk et al., 2008; Toro & Pinto, 2015).
20
La respiración se realiza en las mitocondrias y se divide en tres fases que son:
glucólisis, ciclo de Krebs y transporte de electrones (Monza, Doldán & Signorelli,
2009).
2.2.4. NUTRIENTES DE LAS PLANTAS:
Las plantas a través de su sistema radicular obtienen oxígeno, agua y los
nutrientes minerales necesarios para su normal crecimiento y desarrollo (Margulis
& Sagan, 2012). Los nutrientes esenciales son aquellos imprescindibles y están
implicados directamente en el metabolismo celular y cuya función es tan
específica que no pueden ser reemplazados por otros (Guillermo, Díaz, & Vargas,
2004).
Los nutrientes esenciales son los macronutrientes los cuales forman las
estructuras cuantitativamente más importantes o activas en el metabolismo, y son
requeridos en cantidades relativamente elevadas; estos son C, H, O, N, P, K, Ca,
Mg y S (Margulis & Sagan, 2012). Otro grupo de nutrientes son los
micronutrientes y entre ellos están el Fe, Mn, Cu, Zn, B, Mo, Ni y Cl; son
requeridos en menores cantidades respecto a los macronutrientes (Reyes, Sosa,
Hernández, & Guillen, 2016).
En la tabla 2.7, se encuentra detallado las funciones fisiológicas y la
sintomatología de deficiencia de los nutrientes.
TABLA 2.7 NUTRIENTES DE LAS PLANTAS
NUTRIENTE FUNCIONES FISIOLÓGICAS SINTOMATOLOGÍA DE DEFICIENCIA
Nitrógeno (N)
El 80% del N absorbido forma proteínas, el 10% ácidos nucleicos, el 5% aminoácidos solubles y el resto forma otros compuestos.
Se detiene o disminuye el crecimiento de los órganos de la planta. Aparece una coloración verde pálida en las hojas inferiores.
Fósforo (P) Componente de enzimas y proteínas (ATP, ARN y ADN)
Las hojas presentan decoloraciones irregulares color marrón-negruzco o un color purpúreo en el envés debido a la formación de pigmentos antociánicos.
Potasio (K) Activador de procesos para la conservación del estado y de la turgencia de la planta.
Aparece una coloración amarillenta en los bordes de las hojas inferiores y que continúa avanzando hacia toda la lámina foliar si la
21
NUTRIENTE FUNCIONES FISIOLÓGICAS SINTOMATOLOGÍA DE DEFICIENCIA Apertura y cierre estomático. Acumulación y translocación de los carbohidratos formados.
deficiencia persiste.
Calcio (Ca) Forma pectatos de calcio como parte de la estructura celular. Cofactor de varias enzimas
El Ca se puede llegar a acumular en los tejidos viejos y provocar un déficit en los tejidos jóvenes. Se presenta necrosis en los tejidos.
Magnesio (Mg)
Forma parte de la clorofila (forma estructural) y también es un cofactor enzimático que actúa sobre sustratos fosforilados.
Se manifiesta por una decoloración amarillenta internervial que se mueve hacia el borde de las hojas, y comienza en las hojas inferiores hacia las superiores.
Hierro (Fe)
Es de gran importancia en los sistemas redox biológicos. Forma parte estructural del citocromo, citocromo oxidasa, catalasa, peroxidasa y ferredoxina. Necesario para la reducción de nitrato y sulfato, producción de NADP y para la asimilación del N atmosférico. Está asociado a la síntesis de clorofila.
Las hojas jóvenes de la planta son las que muestran primero los signos visibles de la clorosis férrica, y pueden llegar a aparecer manchas cloróticas. Inhibición de la división celular y detención del crecimiento de la hoja.
FUENTE:(Favela, Preciado, & Benavides, 2006; Guillermo et al., 2004) REALIZACIÓN: Larco & Paucar; 2017
2.3. CULTIVO HIDROPÓNICO
2.3.1. DEFINICIÓN
Su nombre se deriva de los vocablos griegos hydro (agua) y ponos (labor), por lo
que no se trata únicamente de cultivar sobre agua sino que actualmente se busca
los mejores sustitutos del suelo (Beltrano & Gimenez, 2015).
La hidroponía es un método que se basa principalmente en la aplicación de sales
o soluciones nutritivas directamente en las raíces de las plantas a través del agua
para que éstas se desarrollen de una manera correcta. Esta técnica permite
cultivar en pequeña o gran escala sin la necesidad de utilizar el suelo como un
medio de producción (Reyes et al., 2016). n
2.3.2. SOLUCIÓN NUTRITIVA
Una solución nutritiva es, por definición, una solución acuosa que contiene
oxígeno disuelto y todos los nutrientes minerales esenciales, necesarios para el
normal crecimiento de las plantas, totalmente disociados (Smithers Oasis, 2015).
22
El éxito del cultivo hidropónico está determinado por la constitución de dicha
solución nutritiva, la relación existente entre los diferentes iones minerales, la
conductividad eléctrica y el pH (Reyes et al., 2016).
Las concentraciones de nutrientes requeridos para satisfacer las demandas
internas de las plantas difieren de acuerdo con la especie; por lo tanto, no puede
haber una solución nutritiva única con que se tendrían resultados satisfactorios
para todas ellas (Caseros et al., 2008; Reyes et al., 2016).
Los trabajos de investigación de varios científicos a lo largo del tiempo han dado
como resultado propuestas de soluciones nutritivas típicas como se muestra en la
tabla 2.8. (Margulis & Sagan, 2012).
TABLA 2.8 SOLUCIONES NUTRITIVAS TÍPICAS
Ión o Radical
Soluciones nutritivas típicas (ppm) Hoagland y Arnon
(1938) Long y Heweit
(1966) Heweit (1966)
Cooper (1975)
Steiner (1980)
NO3- 196 168 70 210 46
H2PO4- 31 40 40 84 31
SO42- 64 48 112 64 112
K+ 234 156 156 331 273 Ca2+ 160 160 160 168 180 Mg2+ 48 36 36 48 48 Na+ - 30 30 - - NH4+ 14 - 70 - -
FUENTE:Smithers Oasis, 2015 REALIZACIÓN: Larco & Paucar, 2017
2.3.2.1. Elaboración de una solución nutritiva
Para la elaboración de una solución nutritiva es necesario conocer la calidad del
agua a utilizar, midiendo la cantidad de cationes presentes para verificar el grado
de dureza de la misma (Favela et al., 2006).
Las aguas para las preparaciones de las soluciones nutritivas contienen
normalmente cantidades apreciables de CO3HCa, CO3HMg, SO4-2 y NO3
-,
pudiendo encontrarse también con frecuencia pequeñas cantidades de Fe, trazas
de Mn, Zn y B. Otro factor importante a tener en cuenta es la alcalinidad del agua,
23
es decir el equilibrio entre CO3/HCO3; esta relación es importante para determinar
la resistencia del agua a la acidificación, ya que será necesario agregar ácido
para reducir el pH a valores cercanos a 5,3-5,5 para su uso en hidroponía
(Guillermo et al., 2004).
24
CAPÍTULO 3
METODOLOGÍA
Para llevar a cabo el presente proyecto de investigación se dio cumplimiento al
artículo 6, del libro IV de la Biodiversidad, título II de la investigación, colección y
exportación de flora y fauna silvestre del Texto Unificado de Legislación
Secundaria del Ministerio del Ambiente (TULSMA); obteniendo la autorización de
investigación científica No. 10-2016-1898-IC-FAU-FLO-DPAI/MAE.
“ART. 6.- Toda investigación científica relativa a la flora y fauna
silvestre a realizarse en el Patrimonio Nacional de Áreas Naturales
por personas naturales o jurídicas, nacionales o extranjeras, requiere
de la autorización emitida por el Distrito Regional correspondiente.
Fuera del Patrimonio Nacional de Áreas Naturales, no se requiere
autorización de investigación, salvo que el proyecto respectivo
implique la recolección de especímenes o muestras.”
La investigación se realizó en las siguientes etapas: muestreo, aclimación,
armado del equipo, reactores y preparación de cultivo hidropónico,
experimentación y análisis de resultados.
3.1. I ETAPA: MUESTREO
3.1.1 PREVIO AL MUESTREO
3.1.1.1 Selección del sitio de muestreo
El sitio de muestreo seleccionado para el presente proyecto de investigación fue
la laguna de Yahuarcocha la cual posee variedad de plantas acuáticas y donde
fue posible escoger las plantas con mejores condiciones para la experimentación.
25
Además, la cercanía a la ciudad de Quito con el lugar de muestreo permitió
asegurar la calidad y conservación de las muestras.
Descripción zona de muestreo
La Laguna de Yahuarcocha, está ubicada en el norte de la provincia de Imbabura
del Ecuador, cantón Ibarra, parroquia La Dolorosa de Priorato. Es una laguna alto
andina de origen glacial, tiene un espejo de 230 ha y es una laguna poco
profunda ubicada a los 2200 m.s.n.m, el perímetro de la laguna forma parte del
Autódromo José Tobar; en la imagen 3.1. se observa la laguna Yahuarcocha y
alrededores (López-Lanús & Blanco, 2005; Polanco, 2012).
IMAGEN 3.1. LAGUNA DE YAHUARCOCHA
FUENTE:Google Map, 2016
Los ríos cercanos a la Laguna de Yahuarcocha son: río Tahuando y quebradas
como: Quebrada de San Antonio, Quebrada de Manzano Huayco, Quebrada del
Girón, Quebrada Chiquita, mostrado en el mapa cartográfico del anexo 4.
La vegetación acuática dominante (58,8%) en la laguna de Yaguarcocha es
emergente, siendo las más conocidas: Schoenoplectus, Typha, Polygonum y
Juncus, esto se debe a que estas plantas no son afectadas por fluctuaciones de
nivel de agua a diferencia de las flotantes; además poseen un sistema radical
26
rizomatoso que les permite captar nutrientes del sustrato y emerger del agua
manteniendo un intercambio gaseoso adecuado; y finalmente las condiciones de
laguna eutrofizada proporciona un ambiente favorable para estas especies. Las
plantas acuáticas flotantes se encuentran en un 23,5% entre ellas se encuentran:
Azolla caroliniana, Eichornia crassipes, Lemna minor e Hidrocotyle verticilata
(Pabón, 2015).
Clima
La etapa de muestreo se realizó a principios y mediados de enero de 2017, que
corresponde a la época seca; sin embargo durante este año se produjo un
comportamiento anómalo, influenciado por dos sistemas atmosféricos.
La primera corresponde a desprendimientos de humedad procedente de la Zona
de Convergencia Intertropical (ZCIT) que es una zona de bajas presiones
provocando importantes precipitaciones; este sistema tuvo un desplazamiento
desde Centroamérica y se ubicó cerca del Ecuador a principios del mes de Enero
afectando a la parte norte e interior litoral del país con importantes precipitaciones
como se ve en la tabla 3.1. (INAHMI, 2017).
TABLA 3.1. PRECIPITACIONES EN LA COSTA
Lugar Fecha Precipitación
Esmeraldas 9-enero-2017 31 mm
Santo Domingo de los Tsáchilas 8-enero- 2017 124 mm
Puerto Ila (Sto.Domingo de los Tsáchilas) 8-enero- 2017 139,6 mm
Pichilingue (Los Ríos) 8-enero- 2017 118,3 mm
Guayaquil 8-enero- 2017 106,0 mm
FUENTE:(INAHMI, 2017) ELABORACIÓN: Larco & Paucar, 2017
La segunda corresponde a las perturbaciones de la Amazonía que permiten el
ingreso constante de humedad por la región oriental del país provocando
27
precipitaciones de moderadas a fuertes en la región Interandina, como se observa
en la tabla 3.2. (INAHMI, 2017).
TABLA 3.2. PRECIPITACIONES EN LA SIERRA
Lugar Fecha Precipitación
Coca 5-enero-2017 85 mm
Archidona 5-enero- 2017 104,8 mm
Shell Mera 5-enero- 2017 95 mm
Puyo 5-enero- 2017 109 mm
Quito 8-enero- 2017 47,2 mm
Salcedo 5-enero- 2017 38,5 mm
FUENTE:(INAHMI, 2017) ELABORACIÓN: Larco&Paucar, 2017
Por lo tanto, desde diciembre hasta los primeros días de enero las condiciones
atmosféricas corresponden a comportamiento de época seca y a partir del 5 de
enero corresponde a comportamiento de época lluviosa debido a los fenómenos
atmosféricos presentados en el país.
La humedad relativa en Quito durante el período de experimentación fue de 76%
y la temperatura tuvo un mínimo de 9ºC y un máximo de 19ºC.
La humedad relativa en el laboratorio de hidráulica sin plantas tiene un valor con
una máxima de 55.56%± 0,40 con una temperatura ambiente de 19ºC.
3.1.1.2 Selección de plantas
Se recopiló información bibliográfica de los géneros de plantas acuáticas que son
mayormente usadas en tratamientos de aguas residuales y posteriormente, se
comparó con existentes en la laguna de Yahuarcocha. De esta manera se escogió
cuatro géneros de plantas acuáticas que se observan en la tabla 3.3:
28
TABLA 3.3. ESPECIES DE PLANTAS ACUÁTICAS SELECCIONADAS PARA LA
EXPERIMENTACIÓN
Nombre común Cola de zorro acuática Género: Myriophyllum
Nombre común Jacinto de agua
Género: Eichornia
Nombre común Totora
Género: Schoenoplectus
Nombre común Junco de laguna Género: Thypha
ELABORACIÓN: Larco & Paucar, 2017
3.1.2 MUESTREO
Los puntos de muestreo fueron escogidos después de un reconocimiento previo
alrededor de la laguna dentro del espejo del agua y a través de una caminata al
contorno de la laguna determinándose así los lugares idóneos para el muestreo
según su accesibilidad, calidad y cantidad de muestra, como se observa en la
tabla 3.4. De esta manera, se realizó un muestreo para época seca y otro para
época lluviosa.
29
TABLA 3.4. MUESTREO
Espejo de agua Contorno de la laguna
ELABORACIÓN: Larco & Paucar, 2017
Además, con el fin de caracterizar la laguna de Yahuarcocha se tomaron
muestras de agua, algas y sedimento, a fin de conocer las condiciones físico –
químicas en el medio natural de las plantas acuáticas.
3.1.2.1 Muestreo de plantas
Se recolectaron 20 individuos de cada género en la época seca y 31 individuos de
cada género en la época lluviosa, siguiendo el Protocolo de muestreo del
Ministerio de Agricultura, Alimentación y Medio Ambiente de España
(MAGRAMA).
La diferencia en cantidad de plantas recolectadas se debe a que las plantas
presentan diferentes comportamientos para época seca y lluviosa; ya que la
fisiología de éstas se modifica con el cambio de temperatura - precipitación y luz.
Equipos y materiales
· Guantes de caucho y de nitrilo
· Recipientes de plástico con tapa
· Papel film plástico industrial
· GPS
· Membrete enumerado
· Correas de sujeción de plástico
30
Procedimiento
1. Se establecieron 7 puntos de muestreo y el número de individuos de cada
género fue escogido a la cantidad y calidad existente en cada punto. A
continuación, en la tabla 3.5 se presentan los puntos de muestreo y sus
respectivas coordenadas; y en el anexo 4 se presenta el mapa de
muestreo de plantas acuáticas.
TABLA 3.5. COORDENADAS DE LOS PUNTOS DE MUESTREO DE PLANTAS ACUÁTICAS
Punto X Y
Referencia Género
recolectados
Cantidad de plantas
UTM UTM Época seca
Época lluviosa
1 823752 41109 Muelle antiguo Eichornia Myriophyllum
7E y 7M 13E 13M
2 823075 40706 Eichornia 6E 5E
3 822455 39760 Playita Myriophyllum Typha Schoenoplectus
7M 7T 7S
13M 10T 10S
4 821885 41113 Salida de agua Eichornia 7E 13E
5 821868 41896 Frente a Rancho
San Vicente Myriophyllum 6M 5M
6 822149 41748 Frente al Hotel
Conquistador Typha Schoenoplectus
6T 6S
10T 10S
7 822639 41647 Alado de los
Bomberos Typha Schoenoplectus
7T 7S
11T 11S
Eichornia(E),Myriophyllum(M),Typha(T),Schoenoplectus(S) ELABORACIÓN: Larco & Paucar; 2017
2. Se recolectaron los individuos de cada especie en forma de zigzag con el
fin de asegurar la muestra representativa en cada punto; y posteriormente
fueron enumeradas desde el número 001-011-16-IC-FLO-DPAI/MAE hasta
204-011-16-IC-FLO-DPAI/MAE según lo especificado en el permiso de
investigación No. 10-2016-1898-IC-FAU-FLO-DPAI/MAE (MAGRAMA,
2013).
3. Se escogieron plantas completas, con buena apariencia, en estado
temprano de desarrollo y similares entre ellas; para lo cual se consideró
que tengan el mismo número de hojas, peso similar, número de esquejes
(Myriophyllum) y similar longitud (Schoenoplectus y Typha ).
31
4. Se usó una malla para recolectar los individuos de la Eichornia y
Myriophyllum de los puntos alejados y manualmente las de fácil acceso; sin
embargo para la Schoenoplectus y Typha se realizó la extracción con la
ayuda de un serrucho para obtener la planta con la mayor cantidad de
raíces posibles.
5. Se colocó, la Eichornia y Myriophyllum en envases plásticos (con tapa) con
agua del sitio de toma de muestra; y en el caso de la Schoenoplectus y
Typha fueron envueltas en papel film plástico industrial con sedimento en
caso de poseerlo.
3.1.2.2 Muestreo de agua
Se establecieron cinco puntos de muestreo como se detalla en la tabla 3.6; y se
observa en el anexo 4 donde se encuentra el mapa muestreo de agua:
TABLA 3.6. COORDENADAS DE PUNTOS DE MUESTREO
Punto
X Y Referencia
Observación UTM UTM
1 823772 41154 Muelle antiguo Muestreo de agua y fitoplancton
2 823747 41102 Entrada de agua Muestreo de agua
3 822746 41139 Superficie centro de laguna/2,5 y 3,5 m
Muestreo de agua y fitoplancton
4 822149 41748 A lado muelle turístico Muestreo de agua y fitoplancton
5 821702 41422 Salida de agua Muestreo de agua ELABORACIÓN: Larco & Paucar; 2017 El muestreo de agua se realizó según la Norma Técnica Ecuatoriana NTE INEN
2176: 2013: Agua. Calidad del agua. Muestreo. Técnicas de Muestreo y NTE
INEN 2226:2013: Agua. Calidad del agua. Muestreo. Diseño de los programas de
muestreo. Los parámetros físicos – químicos fueron tomados en campo y otros
fueron analizados en el Centro de Investigación y Control Ambiental (CICAM)
según Método Estándar para el análisis de agua potable y residual, 22 Edición
APHAAWWA-WEF.
32
A continuación, se presenta la tabla 3.7 con los parámetros realizados en campo
para los dos muestreos:
TABLA 3.7. PARÁMETRO Y EQUIPO USADO EN CAMPO
Parámetro Unidad Equipo usado
% de Saturación de Oxígeno % Medidor de oxígeno disuelto Hach
Conductividad µS Conductímetro portátil YSI
Turbidez m Disco de Secchi
Oxígeno disuelto mg/L Medidor de oxígeno disuelto Hach
pH -------- Tiras de pH
Presión hPa Medidor de oxígeno disuelto Hach
Profundidad m Cuerda y metro
Salinidad ppt Conductímetro portátil YSI
Temperatura °C Medidor de oxígeno disuelto Hach
ELABORACIÓN: Larco & Paucar; 2017
En la tabla 3.8 se muestran los parámetros analizados por el CICAM, los cuales
se realizaron solo para la época lluviosa. El análisis de los parámetros mostrados
se ejecutó con el fin de conocer el estado general en el cual se encuentran las
plantas en condiciones naturales:
TABLA 3.8 PARÁMETROS ANALIZADOS EN LABORATORIO
Parámetro Unidad Procedimiento
Alcalinidad total mg/L APHA 2320 B, titulación Acidez mg/L APHA 2310 B,Titulación Coliformes fecales NMP/100mL APHA 9222 D Coliformes totales NMP/100mL APHA 9222 C Color Aparente PtCo HACH Color Verdadero PtCo HACH DBO5 mg/L PEE/CICAM/06 (APHA 5210 B) DQO mg/L HACH Dureza Cálcica mg/L APHA 3500-Ca B Dureza total mg/L APHA 2340 C Sólidos sedimentables mg/L*h APHA 2540 F
Sólidos suspendidos mg/L APHA 2540 D
ELABORACIÓN: Larco & Paucar; 2017
33
Además, con el fin de conocer los nutrientes encontrados en la Laguna de
Yaguarcocha se realizó en el segundo muestreo un análisis de los
macronutrientes y micronutrientes, los cuales se detallan en la tabla 3.9:
TABLA 3.9 MACRO Y MICRONUTRIENTES ANALIZADOS
Nutriente Unidades Procedimiento
Amonio mg/L Nessler espectrofotométrico
Azufre mg/L APHA/EPA
Boro mg/L Espectrofotométrico
Calcio mg/L APHA 3500-Ca B, Titulación
Fosfatos mg/L APHA 4500 -P C, Colorimétrico
Hierro total mg/L APHA 3500 -Fe B, Colorimétrico
Magnesio mg/L APHA 3500 - Mg B
Manganeso mg/L Colorimétrico
Nitratos mg/L Colorimétrico
Nitritos mg/L APHA 4500-NO2-B,Colorimétrico
Potasio mg/L Colorimétrico
Sílice mg/L APHA 4500-Si
Zinc mg/L APHA 3500-Zn B, Colorimétrico/EPA
6020 A ELABORACIÓN: Larco & Paucar; 2017
Finalmente, los resultados se compararon con los de otros autores que han
realizado investigaciones en la laguna.
3.1.2.3 Muestreo de fitoplancton
La realización del muestreo de fitoplancton y conservación del mismo se siguió el
protocolo establecido por el Método Estándar, parte 10000: análisis biológico de
las aguas de toma de muestras (10200B).
Equipos y materiales
· Malla de fitoplancton
34
· Frascos de colecta
· Lugol
Procedimiento
1. Se ingresó la red de fitoplancton en el agua y homogeneizó tres veces.
2. Posteriormente, se ingresó la red a la profundidad requerida por un tiempo
aproximado de tres minutos.
3. Se sacó la red y lavó las paredes de la red para concentrar la mayor cantidad
de plancton.
4. Se colocó en un frasco de colecta lo obtenido en la red de fitoplancton y
finalmente se agregó lugol para su conservación.
5. Se ubicó una gota de fitoplancton en un portaobjetos y cubreobjetos, poniendo
alrededor esmalte de uñas para conservar la muestra.
6. Se observó el fitoplancton por medio de un microscopio con cámara.
3.2. II ETAPA: ACLIMACIÓN
3.2.1. PREVIO A LA ACLIMACIÓN
Una vez transportadas todas las muestras hacia la ciudad de Quito, se analizaron
las muestras de agua y fitoplancton en laboratorio.
Los recipientes de las muestras de Eichornia y Miriophyllum fueron abiertos y de
la Typha y Schoenoplectus se retiró el papel film industrial para colocarlas en
recipientes con agua de la laguna.
3.2.1.1. Prensado, secado e identificación de muestras botánicas
El prensado y secado de muestras botánicas fue realizado con el fin de identificar
correctamente a nivel de especie; para lo cual se seleccionó tres individuos de
cada género los cuales poseían todas sus partes: tallo, hojas, raíces, flores y
frutos.
35
Materiales:
- Periódico
- Tablas
- Correas
Procedimiento:
1. Se colocaron las plantas entre las hojas de papel periódico,
acomodándolas de tal forma que se pueda observar claramente sus raíces,
hojas (haz y envés) y flores; repitiendo este procedimiento para cada planta
seleccionada y colocándola una sobre otra formando una pila.
2. Se colocó la pila en medio de dos tablas y posteriormente se sujetó con
correas haciendo la mayor presión posible para que las plantas queden
prensadas, tal como se muestra en la imagen 3.2.
IMAGEN 3.2 PRENSADO
ELABORACIÓN: Larco & Paucar
3. Al día siguiente se llevó las plantas prensadas al secador del Herbario
Nacional a 60°C por tres días, para esto se colocó las plantas en papel
periódico entre una lámina de aluminio y dos de cartón.
36
4. Cuando las plantas estuvieron completamente secas se procedió a la
identificación de cada especie, mediante el uso del catálogo de plantas
vasculares del Herbario, utilizando la página web del Jardín Botánico de
Missouri (http://tropicos.org/); y bibliografía.
3.2.1.2. Recolección de perifito
La recolección del perifito se realizó antes y después de la experimentación, para
descartar el crecimiento de algas en las plantas, esta recolección se hizo al día
siguiente del muestreo.
Debido a la importancia de conservar las muestras en el mejor estado para la
posterior experimentación, se siguió la metodología propuesta en la tesis:
“Determinación de la presencia de algas epífitas en un ambiente tropical, el río
Vinces (Ecuador) y su planicie de inundación Victoria y variables ambientales que
podrían influir en su abundancia” (Guerra, 1999).
Procedimiento:
1. Se tamizó el agua de la laguna en la que se encontraban las plantas tres
veces consecutivas, para retirar el exceso de sólidos suspendidos,
sedimento y macroinvertebrados.
Para Eichornia y Myriophyllum
2. A continuación se colocó 16 L del agua de laguna tamizado en un
recipiente plástico.
3. Se colocaron cuatro plantas en la malla y se agitó dentro del agua de la
laguna, realizando tres repeticiones.
4. Se esperó que decante por cinco minutos antes de tomar la muestra.
5. Con la ayuda de un gotero se tomaron cinco muestras y se colocaron en
los tubos vacuum tainer.
37
6. Se añadió lugol para conservar las muestras, siguiendo el protocolo del
Método Estándar en la sección 10200B.4 sobre la conservación de
muestras.
7. Estos tubos se envolvieron los tubos con papel aluminio para su
conservación hasta el día de observación al microscopio.
Para Typha y Schoenoplectus
8. Para las plantas emergentes no se realizó un sacudimiento sino que se
hizo un lavado de las raíces y las hojas en donde se observaba la
presencia de algas, este lavado se hizo en 14 L de agua de laguna.
9. Se realizó el mismo procedimiento desde el paso 4 hasta el 7.
3.2.2. ACLIMACIÓN
La aclimación se define como cambios compensatorios consecuencia de la
exposición controlada a condiciones de laboratorio (HAPPOM, 2007).
Este paso es fundamental en la experimentación porque se determinó las plantas
con mejores características para realizar fotosíntesis de manera óptima, pues al
someter a las plantas a un cambio brusco de condiciones naturales en la laguna
de Yahuarcocha a condiciones controladas de laboratorio en Quito cuyas
coordenadas son 779263 y 9976614; ocasiona estrés, necrosis e incluso
mortandad en las plantas. En el anexo cartográfico 4 se detalla el mapa de
ubicación política y administrativa del lugar de muestreo y experimentación.
Procedimiento:
1. Se colocó el agua de la laguna en cuatro recipientes separados uno
para cada tipo de género de planta acuática, el tamaño varió
dependiendo de la planta.
38
2. Se colocaron todas las plantas acuáticas en los recipientes, cuidando
que todas tengan el espacio necesario para su crecimiento.
3. Las plantas emergentes también fueron atadas con pequeños plásticos
para que se mantengan erguidas.
3.2.2.1 Limpieza y desinfección de plantas
La limpieza y desinfección de las plantas se realizó una semana después del
muestreo y se optó por un procedimiento natural con el fin de evitar algún daño en
las plantas que hubieran podido afectar a los resultados de la investigación.
Materiales:
- Ácido acético (vinagre)
- Recipientes plásticos
- pH metro marca Hanna
- Probeta graduada de 25 ml
- Balde graduado de 8L
- Sobre HACH de Cloro libre
Procedimiento:
1. En un recipiente plástico se colocó agua potable a reposar, para eliminar el
cloro, aproximadamente 72 horas antes de realizar la desinfección.
2. El cloro puede afectar a las plantas por lo tanto se comprobó su
inexistencia en el agua, se tomó una muestra de 20 mL para realizar el
análisis de cloro libre usando el DPD Method 3021 cloro libre del manual
Hach y usando el test kit Hach de cloro libre, estos métodos se pueden
observar en la imagen 3.3.
39
IMAGEN 3.3. ANÁLISIS DE CLORO
ELABORACIÓN: Larco & Paucar, 2017
3. Una vez eliminado el cloro, se preparó una solución con ácido acético y
agua para la desinfección de las plantas, usando 600 mL de ácido acético
en 200 L de agua, comprobando el potencial de hidrógeno sea de 4 con un
pH metro de campo marca Hanna, asegurando una correcta desinfección
ya que mayoría de bacterias y hogos mueren a este valor de pH (Pereira
C, Herrera S, Machuca H, & Sánchez O, 2007).
4. Antes de desinfectar las plantas se realizó la limpieza de las mismas,
quitando hojas y raíces muertas. En el caso de las plantas emergentes
también se retiró todo el sedimento que se encontraba en las raíces.
5. Se sumergieron las plantas en la solución de ácido acético y agua durante
15 minutos.
6. Luego se colocaron las plantas en recipientes plásticos llenos de agua
potable reposada.
3.3. III ETAPA: ARMADO DE EQUIPO, REACTORES Y
PREPARACIÓN DE CULTIVO HIDROPÓNICO
3.3.1. ARMADO DE EQUIPO Y ESTERILIZACIÓN DE REACTORES
Equipos y Materiales:
- Recipientes plásticos de 12 L y 6 L
40
- Ácido acético
- Taladro marca Pretul
- Abreboca marca PRETUL
- Cuchillo
- Sopladora
- Tanque de GLP
Procedimiento:
1. Se realizó agujeros del mismo tamaño con la ayuda de un cuchillo
calentado con una sopladora a gas en los recipientes de 12 L para poder
introducir las raíces de las plantas emergentes.
2. En los recipientes de 6 L con la ayuda de un taladro y un abreboca se hicieron dos
agujeros con el fin de introducir la sonda de oxígeno disuelto y otro para introducir
la planta.
3. Luego se lavaron los recipientes con agua potable para retirar cualquier
impureza que se encuentre en ellos, por ejemplo residuos de su contenido
anterior, polvo, etc. Este lavado se hizo con una cantidad mínima de
detergente y con la ayuda de un cepillo para facilitar la remoción de
suciedad.
4. Se enjuagó cuidadosamente cada recipiente para retirar todo el detergente
presente.
5. A continuación se preparó una solución de ácido acético y agua con una
relación de 5 mL de ácido acético por 1 L de agua, con un pH cercano a 4.
6. Se sumergieron los recipientes plásticos de 6 L y 12 L en la solución por
quince minutos, esterilizando así los recipientes.
7. Una vez secos los recipientes se cubrieron con papel aluminio.
3.3.2. ELABORACIÓN DEL CULTIVO HIDROPÓNICO
Para la elaboración del cultivo hidropónico se usaron distintas fórmulas
encontradas en bibliografía como Hoagland y Stenitz; sin embargo ninguna dio los
41
resultados esperados, ya que estas plantas se marchitaban o morían al corto
tiempo, por esta razón, mediante pruebas piloto con diferentes cantidades de
nutrientes se encontró la cantidad adecuada que necesitan las plantas acuáticas
usadas en esta investigación permitiéndoles un óptimo desarrollo ya que se usó
cantidades adecuadas de macro y micronutrientes sin generar demanda de
oxígeno y estrés a las plantas.
Materiales y equipos:
- Micronutrientes de la marca Agripac: multimineral quelato de aminoácido
líquido fertilizante foliar con la composición que se detalla en la tabla 3.10:
TABLA 3.10. COMPOSICIÓN DE MICRONUTRIENTES
Elemento Porcentaje
(%) Quelato de aminoácido de calcio 1 Quelato de aminoácido de magnesio 1 Quelato de aminoácido de cobre 0,5 Quelato de aminoácido de hierro 0,5 Quelato de aminoácido de manganeso 0,5 Quelato de aminoácido de molibdeno 0,1 Quelato de aminoácido de zinc 0,5
ELABORACIÓN: Larco & Paucar; 2017
- Nitrato de Potasio de la marca ULTRASOK, cuya composición se muestra
en la tabla 3.11:
TABLA 3.11. COMPOSICIÓN NITRATO DE POTASIO
Elemento Porcentaje
(%) Nitrógeno (nitrato) 100 Potasio (K2O) 45,5 Insoluble 0,1
ELABORACIÓN: Larco & Paucar; 2017
- Probeta graduada de 25 mL
- Pipeta de 5ml de apreciación ±0,05 mL
42
- Pera de succión
- Balanza analítica, marca Nimbus y apreciación d=0,0001 g
- Recipientes plásticos
- Jarra graduada de 500 mL
Procedimiento
1. Se dejó reposar 400 L agua potable por 72 horas para eliminar el cloro
libre, la persistencia de este elemento se comprobó mediante el DPD
Method 3021 cloro libre del manual Hach y el test kit Hach de cloro libre.
2. Una vez eliminado el cloro libre del agua, se pesaron 2 g de nitrato de
potasio en la balanza analítica, después se midió con la probeta 25 mL de
micronutrientes para disolverlo en 500 mL de agua reposada. De esta
manera, la cantidad de nutrientes usados en 400 L para el cultivo se
muestra en la tabla 3.12.:
TABLA 3.12. CANTIDAD DE NUTRIENTES PARA EL CULTIVO
Nutrientes Relación Total para
400 L
Macronutrientes: Nitrato de potasio KNO3
2 g de Nitrato de Potasio por cada 6 L de agua reposada
133,33 g
Solución de micronutrientes
5 mL de solución de micronutrientes por cada 6 L de agua reposada
333,33 ml
ELABORACIÓN: Larco & Paucar; 2017
3. Se mezclaron todos los nutrientes de manera homogénea con el agua
reposada, y se analizaron en laboratorio 1 L de muestra de cultivo. Los
parámetros analizados se muestran en la tabla 3.13.
TABLA 3.13. ANÁLISIS REALIZADOS DE LABORATORIO DEL CULTIVO
Parámetro Unidad Procedimiento
Alcalinidad mg/L Titulación
Calcio mg/L APHA 3500 – Ca B
Conductividad µs Conductímetro marca YSI
DQO mg/L Digestor Hach DRB 200 y espectrofotómetro Hach DR 2700
43
Parámetro Unidad Procedimiento
Dureza cálcica mg/L APHA 3500 – Ca B
Dureza magnésica mg/L APHA 3500- Mg B
Dureza total mg/L APHA 2340 C
Fosfatos mg/L Espectrofotómetro Hach DR 2700
Hierro mg/L Espectrofotómetro Hach DR 2700
Magnesio mg/L APHA 3500- Mg B
Nitratos mg/L Espectrofotómetro Hach DR 2700
pH ----- pHmetro marca Oakton
Potasio mg/L Espectrofotómetro Hach DR 2700
Salinidad Ppt Conductímetro marca YSI
TDS mg/L APHA 2540 B ELABORACIÓN: Larco & Paucar; 2017
4. Por último se dispensó 6 L del cultivo preparado en cada reactor.
3.3.3. ARMADO DE REACTORES
Equipos y materiales
- Balanza digital, apreciación d=5g
- Flexómetro
- Calibrador
- Reactores esterilizados forrado en papel aluminio
Procedimiento
1. Se escogieron las plantas en mejores condiciones y sin signos de necrosis.
2. Se colocó en cada reactor una planta y se selló el orificio por el cual se
introdujo la planta usando plastilina para evitar la transferencia de oxígeno
de la atmósfera al agua.
3. Luego cada reactor se ubicó de manera estratégica para que las plantas
reciban la mayor cantidad de luz solar como se muestra en la imagen 3.3.
Las plantas de los géneros Myriophyllum y Eichornia fueron ubicadas
encima de una viga de 40 cm de alto para que sus hojas puedan captar la
mayor cantidad de luz.
44
IMAGEN 3.4. ESQUEMA DE EXPERIMENTACIÓN
ELABORACIÓN: Larco & Paucar; 2017
45
4. Se mantuvo un grupo de reactores sin plantas como control conteniendo
agua reposada y otro el cultivo hidropónico.
5. Se dejó reposar un día antes de proceder con las mediciones de oxígeno
disuelto.
3.4. IV ETAPA: EXPERIMENTACIÓN
1. Se midió la concentración de oxígeno disuelto inicial (OD) con el Oxímetro
digital marca Hach para lo cual se introdujo el sensor al agua y se dejó
estabilizar. Las mediciones de oxígeno disuelto se realizaron desde las
6:00 am hasta las 18:00 pm. Las mediciones tuvieron una duración de 8
días para las plantas pertenecientes a la época seca y 8 días para las
plantas pertenecientes a época lluviosa (J. C. González, Santana, &
Quintas, 2012).
2. Se controló el pH de la solución en los reactores, para controlar que el
agua esté en las condiciones requeridas de manera diaria.
3. Se midió la temperatura al mismo tiempo que se medía el oxígeno
disuelto con la sonda de oxígeno disuelto Hach. La temperatura es un
parámetro importante a controlar ya que determina procesos que tienen
lugar en el agua como la solubilidad de los gases y las sales así como la
proliferación de microorganismos (Lacuesta y Cristóbal, 2013).
4. Se midió la cantidad de nutrientes mediante el espectrofotómetro Hach al
inicio y final de la experimentación.
5. Finalmente, se procedió a colectar especímenes de cada especie a los
ocho días para las dos épocas. De esta manera, se pesó y midió: raíz,
tallos, hojas y área foliar la cual fue obtenida calcando el molde de la
planta en un pliego de papel bond; posteriormente fueron prensados y
llevados a la estufa a 60ºC por tres días separando la parte aérea y la
parte radical como se indicó en la etapa II previa a la aclimación.
46
3.5 V ETAPA: EVALUACIÓN DE LA TRANSFERENCIA DE
OXÍGENO
Los resultados de concentración de oxígeno disuelto para cada especie de planta
acuática correspondiente a la época seca y lluviosa se realizaron mediante
estadística descriptiva usando el programa IBM SPSS Statistics 22.0 obteniendo
la media aritmética y desviación estándar; posteriormente se discriminó datos con
el fin de eliminar valores atípicos. Luego, se realizaron los gráficos en el programa
Microsoft Excel para tener una mejor visualización de los resultados, y de esta
manera comparar entre los valores de concentración de oxígeno obtenidas.
Una vez obtenido los resultados de la concentración de oxígeno disuelto, se
calculó la tasa de transferencia de oxígeno para cada especie de planta mediante
la ecuación 3.1.
!! ="#$%
! (3.1)
Siendo:
TT: Tasa de transferencia de oxígeno (mg O2* h-1)
"#: Concentración de oxígeno disuelto en el reactor (mg*L-1)
V: Volumen de agua del reactor (L/planta)
T: tiempo de producción (12 horas)
Para determinar el área foliar se calcó el perfil de las plantas en pliegos de papel
bond y seguidamente fueron escaneadas para computarizar en el programa
Image J, los resultados fueron exportados a Microsoft Excel para realizar el
procesamiento de datos usando la estadística básica (Guerrero, Quintero, &
Naranjo, 2012). Este valor calculado se utilizó para obtener el índice de área foliar
(IAF).
47
Índice Área Foliar (IAF)
El índice de área foliar es la suma de las superficies de hojas fotosintéticamente
activas dividido para la superficie de terreno que ocupan dichas hojas, y es el
parámetro básico que relaciona la radiación que intercepta un cultivo con la
radiación total incidente, este índice se obtuvo con la utilización de la ecuación
3.2. (Hochmaier, 2010).
&'( =)*×+
),- (3.2)
Siendo:
IAF: índice de área foliar
AF: área foliar (m2)
δ: densidad de plantas
AOc: área ocupada (m2)
48
CAPÍTULO 4
RESULTADOS Y DISCUSIÓN
4.1 RESULTADOS BIOLÓGICOS
4.1.1. FITOPLANCTON Y PERIFITO
En la presente investigación se identificaron en total 55 géneros, como se indica
en la tabla 4.1:
TABLA 4.1. GÉNEROS IDENTIFICADOS DE ALGAS
Phylum Géneros
identificadas Cyanobacteria 12 Dinoflagellata 2 Euglenozoa 3 Bacillariophyta 13 Clorophyta 24 Ochrophyta 1
TOTAL 55 FUENTE: trabajo de laboratorio y gabinete ELABORACIÓN: Larco&Paucar, 2017 Los phylum que se presentan con mayor abundancia de género son: clorophyta, bacillaryophyta y cianobacterias, como se muestra en el gráfico 4.1: GRÁFICO 4.1. PORCENTAJE DE GÉNEROS DE ALGAS IDENTIFICADOS
m ELABORACIÓN: Larco & Paucar, 2017
49
Aunque existen registros escasos de algas del lago en estudio, Steinitz realizó el
estudio de la laguna desde 1975 hasta 1979 identificando abundancia de
euglonoidas, clorofitas; posteriormente Maridueña (2003) identificó 34 especies,
siendo las diatomeas el grupo con mayor variedad, seguido por las clorofitas y
cianobacterias, Saelens en (2014) encontró 43 géneros presentes siendo los más
abundantes el phylum Clorophyta, Heterokontophyta y cianobacterias y finalmente
Caicedo (2015) observó 42 géneros siendo las divisiones Euglenozoa y
Dinoflagellata las que mayor abundancia presentaron (Caicedo, 2015; Saelens,
2015).
Comparando los resultados obtenidos con años anteriores, se observa que la
laguna posee alta productividad algal en especial de cianobacterias, registrando
en el presente estudio 12 géneros que se detallan en el anexo 7 de los cuales el
más preocupante es la Cilindrospermopsis porque es un alga hepatóxica ya que
posee la tóxina cilindrospermopsina potencialmente causante de enfermedades
cuando son ingeridas o por contacto con el agua a partir de la exposición
recreacional, cuyos efectos en humanos son fiebre, dolor de cabeza, vómito y
diarrea con sangre (S. García, 2009; US EPA, 2014).
Actualmente, existe un florecimiento de Cilindrospermopsis, típico en aguas
eutrofizadas debido a fuentes puntuales como descargas de aguas residuales o
infiltración de nutrientes provenientes de agricultura y ganadería (S. García,
2009).
Muchas algas como la Merismopedia y Gonphonema se encuentran libreflotantes
entre plantas acuáticas; por lo tanto el fitoplancton identificado de la laguna,
también corresponde a géneros de perifito ya que las muestras obtenidas fueron
con agua de la laguna de Yahuarcocha (M. González & Inostroza, 2017; Luján De
Fabricius, 2000b).
50
4.1.2 DESINFECCIÓN DE PLANTAS ACUÁTICAS
Para evitar alteraciones en las concentraciones de oxígeno disuelto se realizó la
desinfección de las plantas, en la cual se comprobó que a un pH de 4 se mueren
las algas, zooplancton y macroinvertebrados; además finalizada la
experimentación se observó casi nulo crecimiento de algas como se muestra en la
imagen 4.1:
IMAGEN 4.1. ALGAS ENCONTRADAS
Sin desinfección Después de la experimentación ELABORACIÓN: Larco & Paucar, 2017
Por lo tanto, la desinfección de las plantas con ácido acético a un pH de 4 fue
exitosa ya que se logró eliminar la cantidad de organismos incluidas la
cianobacterias, consiguiendo en la experimentación un mínimo crecimiento de
algas verdes, para obtener valores de concentración de oxígeno sin interferencia
debido a que florecimiento de algas causa variaciones de pH y oxígeno disuelto
(Rissik et al, 2009).
4.1.3 RESULTADOS DE ACLIMACIÓN
El tiempo de aclimación fue de dos semanas para las plantas recolectadas en
época seca y de ocho días para las plantas recolectadas en época lluviosa.
De 51 plantas recolectadas en total para cada especie, se usaron 38 plantas
siendo 16 plantas pertenecientes a la época seca y 22 a la época lluviosa en total.
En el anexo 2 se encuentra el detalle de las plantas con el código respectivo y
ubicación en cada reactor.
51
A continuación en la tabla 4.2 se muestra el detalle de número de plantas de cada
especie usadas en la experimentación:
TABLA 4.2 NÚMERO DE PLANTAS USADAS EN LA EXPERIMENTACIÓN
Especie de planta ÉPOCA Total Seca Lluviosa
Eichornia crassipes 4 7 11 Myriophyllum aquaticum 4 8 12 Schoenoplectus californicus 4 2 6 Typha domingensis 4 5 9
TOTAL 16 22 38 ELABORACIÓN: Larco & Paucar, 2017
Cabe recalcar que la cantidad de plantas usadas fueron las que tuvieron mejor
apariencia física y las que durante las mediciones presentaron comportamientos
similares; ya que existieron plantas que lograron pasar la etapa aclimación, pero
durante las mediciones después de unos días presentaron un comportamiento
anómalo, debido a que ya demandaban oxígeno del agua porque las raíces
estaban en proceso de descomposición y por este motivo fueron retiradas de la
experimentación y no fueron tomadas en cuenta al momento de tabular los
resultados.
Asimismo, se observa de la tabla 4.2 que la menor cantidad de plantas usadas en
la experimentación pertenece a la Schoenoplectus californicus y Typha
domingensis; debido a que estas dos especies pertenecientes al grupo de las
plantas emergentes fueron las que tuvieron mayor cantidad de individuos
muertos, siendo las plantas de la época lluviosa las que mayor mortandad
presentaron; como se indica en el gráfico 4.2 la mortandad de la Schoenoplectus
californicus fue del 94% y de la Typha domingensis de 74% a diferencia de las
plantas emergentes recolectadas en la época seca en la cual murieron el 20% de
la muestra para cada especie.
52
GRÁFICO 4.2. MORTANDAD SEGÚN LA ESPECIES
ELABORACIÓN: Larco & Paucar, 2017
En cambio las especies de plantas acuáticas que presentaron mejor aclimación
fueron la Myriophyllum aquaticum y Eichornia crassipes debido a su característica
de ser plantas cosmopolitas e invasivas; es decir se pueden adaptar a cualquier
clima y altitud.
A diferencia de las plantas emergentes, éstas no tuvieron una alta mortalidad sin
embargo la cantidad de plantas que no ingresaron a la experimentación se debió
a que no presentaban las características requeridas para la investigación.
4.1.4 CARACTERIZACIÓN FÍSICA Y QUÍMICA DEL AGUA DE LA LAGUNA
De acuerdo, a los análisis de agua realizados de la laguna se encontraron los
siguientes resultados, los cuales se tabulan en la tabla 4.3, además se adjuntan
datos de otros autores.
20% 20% 20% 20% 16% 19%
74%
94%
Myriophyllum
aquaticum
Eichornia
crassipes
Typha
domingensis
Schoenoplectus
californicus
Mortandad de especies
Época seca Época lluviosa
53
TABLA 4.3 RESULTADOS DE LOS ANÁLISIS DEL AGUA DE LA LAGUNA Y DATOS DE OTROS AUTORES
Parámetros Steinitz (1979)
Proaño (2006)
Saelens (2014)
Portilla (2015)
Larco & Paucar
(2017)
Temperatura (°C)
19 20,55 20,1 21,44 23,20
pH 8,5 8,64 8,8 8,91 8,04 Conductividad (uS)
850 498 457,3 497,86 591,45
% Oxígeno de saturación
81,5 ------- 64,3 76,78 115,21
Oxígeno Disuelto (mg/L)
5,5 4,51 6,8 6,74 7,56
Profundidad Secchi (m)
1,0 0,61 1,4 0,48 0,35
FUENTE: (Caicedo, 2015; Proaño, 2006; Saelens, 2015) ELABORACIÓN: Larco & Paucar, 2017
En la tabla 4.3, se observa que en 38 años la temperatura del agua en la Laguna
de Yahuarcocha se ha incrementado en 4,2 °C; es decir 0,11°C por año la razón
se debe al calentamiento global el cual aumentó en 0,8 °C desde 1980 y al ser la
laguna un cuerpo de agua pequeño su calentamiento fue mayor (Netting, 2013).
Asimismo, el pH de la laguna es alcalino y puede llegar hasta valores de 10 con
un aumento de fotosíntesis; y está asociado al aumento de oxígeno disuelto, el
cual presenta el mayor valor en el año 2017 aunque la temperatura también se
encuentre elevada presentando la relación de temperatura y oxígeno disuelto un
comportamiento anómalo; esto se debe a la cantidad elevada de algas que se
encuentran en la laguna y con floraciones de cianobacterias aportando oxígeno
disuelto mediante fotosíntesis; el aumento de pH se debe a que las algas retiran
el CO2 y como resultado los iones bicarbonatos presentes se disocian no solo
para producir CO2 sino también OH- aumentando (Anselmo & Duncan, 1979).
Igualmente de la tabla 4.3, comparando la conductividad desde 1979 ha ido
disminuyendo pero en el 2017 aumentó con relación al año 2015. Los valores de
conductividad eléctrica son elevados causados por la acumulación de materiales
de desecho arrastrados por los afluentes que lo alimentan (Guerra, 1999).
54
En los últimos años se ha incrementado la cantidad de cianobacterias como se
observa en la tabla 4.3 ya que la laguna presenta las condiciones idóneas para la
presencia de estos organismos como temperatura elevada asociada al
calentamiento global, pH elevado y carbonato de calcio (Amador, Álvarez, &
Gallardo, 2011).
En la tabla 4.3 se observa que la laguna de Yahuarcocha desde el año 1979
hasta la actualidad, ha sido un lago eutrófico debido a que los valores obtenidos
con el disco de Secchi son menores de dos metros; en el 2017 presentó el menor
valor debido a la presencia de fitoplancton el cual no permite el ingreso de luz
solar a la columna de agua, además el porcentaje de saturación de oxígeno
sobrepasa el 100%, siendo el indicativo de un lago eutrofizado actualmente
(Roldán & Ramírez, 2008).
Otro factor importante, para que la laguna se encuentre eutrofizada es la fuerte
contaminación constante a la que es sometida, uno de los primeros indicadores
son la presencia de algunos géneros de algas como Gonphonema, Cyclotella,
Merismopedia (Luján De Fabricius, 2000b).
La presencia de las algas indicadoras de la mala calidad del agua es provocada
por contaminación con contenido de materia fecal y nutrientes, encontrándose la
mayor cantidad de coliformes fecales en la entrada de agua como se observa en
la tabla 4.4, siendo una razón la cercanía de haciendas a la laguna las cuales se
dedican a ganadería (Mueses, 2010; Carrera de la Torre, 1990).
TABLA 4.4 RESULTADOS DE ANÁLISIS DE COLIFORMES.
Punto de muestreo
Unidad
1 2 4 6 7
Parámetro Muelle antiguo
Entrada de agua
Superficie/centro
muelle turístico
salida de agua
Coliformes fecales
NMP/100mL
3,6x10 1,1x104 3,6x10 1,5x102 1,1x102
Coliformes totales
NMP/100mL
7,5x102 1,1x104 9,3x102 1,3x102 7,5x102
ELABORACIÓN: Larco & Paucar, 2017
55
De los resultados obtenidos, los cuales se detallan en el anexo 4 se observa que
la laguna se encuentra totalmente eutrofizada en todos sus puntos incluyendo el
centro.
4.1.5 ANÁLISIS ECOLÓGICOS CON PLANTAS ACUÁTICAS
4.1.5.1 Porcentaje de humedad de las plantas
Como se observa en la tabla 4.5 todas las plantas acuáticas tienen un alto
porcentaje de humedad, esto se debe a las adaptaciones anatómicas que poseen,
principalmente la arénquima que es un tejido poroso que al poseer espacios
intercelulares permite el almacenamiento de gases como el oxígeno (Roldán &
Ramírez, 2008; Scremin-Dias, 2009).
TABLA 4.5 HUMEDAD EN LAS PLANTAS
Planta Peso seco Peso húmedo Humedad
g g % Eichornia crassipes 10,25 98,74 89,62 Myriophyllum aquaticum 1,895 20,13 90,59 Typha dominguensis 52,51 438,06 88,01 Schoenoplectus californicus 19,89 172,94 88,50
ELABORACIÓN: Larco & Paucar; 2017
4.1.5.2 Índice Área Foliar (IAF)
El índice de área foliar se calculó usando la ecuación 3.2 descrita en el capítulo 3
metodología.
Ejemplo de cálculo para Eichornia crassipes:
&'( =./ × 0
.12=345467839:8
;= <5 >?
56
A continuación en la tabla 4.6 se detallan los resultados del IAF para todas las
especies de plantas acuáticas estudiadas.
TABLA 4.6 RESULTADOS DEL IAF
Planta Área Foliar Densidad de plantas Área Ocupada
IAF m2 #plantas m2
Eichornia crassipes 0,045 93 1,00 4,19
Myriophyllum aquaticum 0,015 194 1,00 2,91
Typha dominguensis 0,045 51 1,00 2,30
Schoenoplectus californicus 0,030 68 1,00 2,04 FUENTE: trabajo de laboratorio y gabinete ELABORACIÓN: Larco & Paucar, 2017
En la tabla 4.6, se observa que el índice de área foliar es mayor para la Eichornia
crassipes, seguido de la Myriophyllum aquaticum, Typha domingensis y
Schoenoplectus californicus. A medida que el valor del IAF aumenta por encima
del óptimo que es 3,5; la luz interceptada sube hasta cierto valor en el que las
hojas empiezan a producir sombreo y haciendo que parte de su follaje ya no
contribuya a la fotosíntesis (Gardner, Pearce, & Mitchel, 1985). Por lo tanto, la
Eichornia crassipes es la especie de planta que tiene menor capacidad de captura
de luz ya que el IAF es mayor a 3,5; pues la planta tiende a agruparse muy
densamente, provocando que en un área pequeña existan gran cantidad de
plantas y su superficie foliar no logre captar toda la luz solar.
4.2 RESULTADOS DE CONCENTRACIÓN DE OXÍGENO DISUELTO
El oxígeno disuelto fue medido en los reactores a una temperatura constante de
18,30 ºC ± 0,39 durante toda la experimentación.
4.2.1. CONCENTRACIÓN DE OXÍGENO DISUELTO PARA CADA ÉPOCA
A continuación en la tabla 4.7 se presentan las gráficas de concentración de
oxígeno disuelto para época seca y lluviosa:
57
TABLA 4.7. CONCENTRACIÓN DE OXÍGENO PARA CADA ÉPOCA
Eichornia crassipes
Myriophyllum aquaticum
Typha domingensis
Schoenoplectus californicus
ELABORACIÓN: Larco & Paucar, 2017
58
A pesar que la experimentación se realizó bajo condiciones controladas en
laboratorio, en los gráficos anteriores se observa que existen picos en los cuales
la concentración de oxígeno disuelto desciende o aumenta de manera anómala,
esto se debe a que la fotosíntesis es un proceso biológico que depende de
muchos factores los cuales en su mayoría fueron controlados; sin embargo la
radiación útil no fue posible controlar ya que dependía de las condiciones
meteorológicas variables en Quito.
La radiación fue un parámetro difícil de controlar, ya que para establecer
condiciones controladas de laboratorio, se necesitaría el equivalente de 20.000
lúmenes por metro cuadrado para que la luz irradiada sea similar a la luz natural
que necesita la planta; de esta manera, para esta experimentación se
necesitarían alrededor de 4667 focos de 10 watts los cuales producen entre 60 a
90 lúmenes; para el área ocupada de 14 m2; por lo tanto no era una opción viable
usar luz artificial por los altos costos económicos y energéticos.
En la tabla 4.8 se presentan los resultados obtenidos de la concentración de
oxígeno de la época seca.
TABLA 4.8. CONCENTRACIÓN DE OXÍGENO PARA LA ÉPOCA SECA
Concentración de oxígeno: Época Seca (mg/L)
Hora Eichornia crassipes
Myriophyllum aquaticum
Schoenoplectus californicus
Typha domingensis
6:00 4,91 ± 0,42 5,12 ± 0,43 3,97 ± 0,58 3,71 ± 0,52 7:00 4,93 ± 0,43 5,05 ± 0,41 4,03 ± 0,61 3,77 ± 0,55 8:00 5,01 ± 0,44 5,03 ± 0,38 3,97 ± 0,59 3,85 ± 0,46 9:00 4,99 ± 0,41 4,92 ± 0,44 4,12 ± 0,60 3,67 ± 0,53 10:00 5,02 ± 0,45 4,87 ± 0,39 3,88 ± 0,65 3,59 ± 0,52 11:00 4,98 ± 0,44 4,81 ± 0,48 3,84 ± 0,61 3,59 ± 0,54 12:00 4,99 ± 0,38 4,83 ± 0,42 3,81 ± 0,66 3,49 ± 0,46 13:00 4,95 ± 0,39 4,84 ± 0,41 3,83 ± 0,65 3,53 ± 0,47 14:00 4,96 ± 0,40 4,88 ± 0,36 3,75 ± 0,53 3,38 ± 0,50 15:00 4,98 ± 0,42 4,82 ± 0,37 3,94 ± 0,53 3,47 ± 0,49 16:00 4,76 ± 0,46 4,79 ± 0,44 3,80 ± 0,46 3,45 ± 0,43
59
Concentración de oxígeno: Época Seca (mg/L)
Hora Eichornia crassipes
Myriophyllum aquaticum
Schoenoplectus californicus
Typha domingensis
17:00 4,95 ± 0,41 4,78 ± 0,45 3,66 ± 0,56 3,39 ± 0,46 18:00 4,91 ± 0,42 4,84 ± 0,45 3,57 ± 0,5 3,38 ± 0,42
C medio 4,95 ± 0,42 4,89 ± 0,42 3,86 ± 0,58 3,56 ± 0,49
ELABORACIÓN: Larco & Paucar, 2017
Como se observa en la tabla 4.8 la desviación estándar en la época seca es
similar en todas las especies de plantas debido a que la cantidad de plantas
usadas en la experimentación fue igual para todas.
En la tabla 4.9 se presentan los resultados obtenidos de la concentración de
oxígeno de la época lluviosa.
TABLA 4.9. CONCENTRACIÓN DE OXÍGENO PARA LA ÉPOCA LLUVIOSA
Época Lluviosa
Hora Eichornia crassipes
Myriophyllum aquaticum
Schoenoplectus californicus
Typha domingensis
6:00 4,94 ± 0,14 5,51 ± 0,15 3,98 ± 0,63 4,22 ± 0,25 7:00 5,03 ± 0,12 5,49 ± 0,14 4,04 ± 0,58 4,20 ± 0,23 8:00 5,08 ± 0,11 5,53 ± 0,17 3,69 ± 0,34 4,17 ± 0,28 9:00 5,12 ± 0,12 5,45 ± 0,21 4,04 ± 0,53 4,17 ± 0,27 10:00 5,08 ± 0,18 5,52 ± 0,18 3,86 ± 0,47 4,09 ± 0,23 11:00 5,11 ± 0,13 5,43 ± 0,20 3,77 ± 0,50 4,03 ± 0,24 12:00 5,07 ± 0,12 5,45 ± 0,19 3,78 ± 0,46 4,02 ± 0,28 13:00 5,11 ± 0,13 5,55 ± 0,16 3,70 ± 0,39 3,97 ± 0,28 14:00 5,06 ± 0,14 5,54 ± 0,19 3,67 ± 0,39 3,98 ± 0,23 15:00 5,02 ± 0,14 5,52 ± 0,19 3,64 ± 0,51 3,89 ± 0,28 16:00 5,03 ± 0,13 5,50 ± 0,18 3,85 ± 0,44 3,91 ± 0,16 17:00 5,01 ± 0,14 5,50 ± 0,19 3,78 ± 0,48 4,04 ± 0,21 18:00 4,98 ± 0,12 5,47 ± 0,22 3,70 ± 0,47 4,00 ± 0,25
C medio 5,05 ± 0,13 5,50 ± 0,18 3,81 ± 0,48 4,05 ± 0,25
ELABORACIÓN: Larco & Paucar, 2017
La desviación estándar en la época lluviosa es similar en las tres especies de
plantas a excepción de la Schoenoplectus californicus cuya desviación estándar
60
es mayor porque tuvo un alta mortandad como se puede observar en el gráfico
4.3.
Comparando las tablas 4.8 y 4.9, se observa que la desviación estándar en las
plantas recolectadas en época seca presentan un mayor valor que las plantas de
la época lluviosa debido a la cantidad de plantas que se usó para la
experimentación en cada época, siendo mayor para la segunda y de esta manera
obteniendo datos menos dispersos.
4.2.2 CONCENTRACIÓN DE OXÍGENO DISUELTO PARA CADA ESPECIE DE
PLANTA
La concentración de oxígeno disuelto se obtuvo mediante la media aritmética
entre la época seca y lluviosa de cada especie de planta acuática, los resultados
se muestran en la tabla 4.10:
TABLA 4.10. CONCENTRACIÓN DE OXÍGENO DISUELTO
Planta acuática
Época seca mg/L
Época lluviosa mg/L
Promedio de OD mg/L
Eichornia crassipes 4,95 ± 0,42 5,05 ± 0,13 5,00 ± 0,28 Myriophyllum aquaticum 4,89 ± 0,42 5,50 ± 0,18 5,20 ± 0,30 Schoenoplectus californicus 3,86 ± 0,58 3,81 ± 0,48 3,84 ± 0,53 Typha domingensis 3,56 ± 0,49 4,05 ± 0,25 3,81 ± 0,37
FUENTE: trabajo de laboratorio y gabinete ELABORACIÓN: Larco & Paucar, 2017
Como se observa en la tabla 4.10 la concentración de oxígeno disuelto en la
época seca es mayor que la época lluviosa debido a la menor cantidad de
reactores por razón de su alta mortalidad. En el resto de plantas sucede lo
contrario, ya que la fotosíntesis tiene un comportamiento diferente en las épocas
estacionales, a finales de la época seca la respiración en las plantas es mayor
que la fotosíntesis y de esta manera acumula reservas de energía con el fin de
realizar el proceso fotosintético en la época lluviosa (Audesirk et al., 2008).
61
Sin embargo, en la presente investigación la diferencia de concentración de
oxígeno disuelto es moderada debido a que el agua no fue un factor limitante, las
variables como temperatura y presión atmosférica fueron controlados al ser
realizados en un laboratorio.
Las plantas acuáticas realizan el proceso de fotosíntesis para transferir oxígeno al
agua, en el gráfico 4.3 se puede observar que el valor de la concentración de
oxígeno en todas las horas se mantiene casi constante y su valor nunca llega a
cero, esto se debe a que las plantas en todas las horas de luz realizan fotosíntesis
y produce oxígeno que transfieren al agua (Audesirk et al., 2008; Martelo & Lara
Borrero, n.d.). En la noche las plantas realizan respiración usando oxígeno de la
atmósfera y de esta manera manteniendo constante el oxígeno en el agua;
además que existan valores cercanos a cero de oxígeno disuelto en el agua
implicaría la muerte de la planta (Audesirk et al., 2008; E. Miller, 1967).
También, otro factor que determinó que la concentración de oxígeno disuelto sea
mayor en las plantas flotantes invasoras que las emergentes, es la ruta de
fotosíntesis usada, ya que las primeras usan la ruta C4 siendo la más eficiente y
las emergentes usan la C3 (Arizona, n.d.; Oyedeji & Abowei, 2012) .
GRÁFICO 4.3. COMPARACIÓN DE LA CONCENTRACIÓN DE OD
ELABORACIÓN: Larco & Paucar, 2017
0,00
1,00
2,00
3,00
4,00
5,00
6,00
6:0
0
7:0
0
8:0
0
9:0
0
10
:00
11
:00
12
:00
13
:00
14
:00
15
:00
16
:00
17
:00
18
:00
Co
nce
ntr
aci
ón
de
OD
(m
g/L
)
Concentración de OD vs Tiempo
Typha domingensis
Schoenoplectus
californicus
Myriophyllum
aquaticum
Eichornia crassipes
62
En la tabla 4.10 y en el gráfico 4.3 se observa que la mayor cantidad de
concentración de oxígeno disuelto por parte de las especies de plantas acuáticas
estudiadas fue la Myriophyllum aquaticum seguido de la Eichornia crassipes con
una concentración de oxígeno 5,2 y 5,0 mg/L respectivamente.
Las plantas acuáticas emergentes Typha domingensis y Schoenoplectus
californicus presentaron la menor concentración de oxígeno transferido como se
observa en la tabla 4.10 y en el gráfico 4.3, debido a sus problemas de aclimación
cuyos valores fueron de 3,81 y 3,84 mg/L respectivamente.
4.2.3. TASA DE TRANSFERENCIA DE OXÍGENO
Los valores de concentración de oxígeno obtenidos son muy útiles para el diseño
de humedales aerobios, pues permiten obtener el número de plantas adecuadas
para el tratamiento terciario y su área ocupacional para determinado grado de
contaminación.
Para obtener la tasa de transferencia de oxígeno se utilizó la fórmula 3.1.
Cálculo de la tasa de transferencia de oxígeno (gO2*día-1*planta-1) para la
Myriophyllum aquaticum
TT =@A $ B
C
TT =
75D4EFGHI
$ JI
KLMNOM
;DPQ
TT = D5JPEFGH
Q $ KLMNOM$
;FGH
;444EFGH$D6PQ
;PRíM
SS = U5 UVW<PXYW
Zí[ $ \][^_[
63
En la tabla 4.11 se tabulan los resultados calculados de tasa de transferencia de
oxígeno para todas las especies de plantas acuáticas estudiadas.
TABLA 4.11 TASA DE TRANSFERENCIA DE OD
Planta acuática Tasa de transferencia (TT)
(g O2/día*planta) Eichornia crassipes 0,0600 Myriophyllum aquaticum 0,0624 Schoenoplectus californicus 0,0461 Typha domingensis 0,0458
ELABORACIÓN: Larco & Paucar; 2017
La densidad de plantas por m2 se obtuvo de manera empírica como se detalla en
la tabla 4.12:
TABLA 4. 12. DENSIDAD DE PLANTAS
Planta acuática Densidad de plantasP3`8
Número de plantas por m2 Eichornia crassipes 93 Myriophyllum aquaticum 194 Schoenoplectus californicus 68 Typha domingensis 51
ELABORACIÓN: Larco & Paucar; 2017
Posteriormente, usando los valores de la anterior tabla se calculó la tasa de
transferencia de oxígeno g O2 /día* m2 de la siguiente manera:
Cálculo de la tasa de transferencia (g O2/día*m2) para la Myriophyllum
aquaticum
TT = 454JD6PFGH
RíM $ KLMNOM$;96PKLMNOMa
EH
TT = ;D5;;PFGH
RíM $ EH
Finalmente, en la tabla 4.13 se expresan los resultados de TT según el número de
plantas acuáticas que se encuentran en un metro cuadrado:
64
TABLA 4.13. TASA DE TRANSFERENCIA POR m2.
Planta acuática TT
g/día* m2 Myriophyllum aquaticum 12,11 Eichornia crassipes 5,58 Typha domingensis 2,34 Schoenoplectus californicus 3,13
ELABORACIÓN: Larco & Paucar; 2017
A pesar de la inexistencia de estudios acerca de la tasa de transferencia de
oxígeno con plantas acuáticas, H. Brix en 1994 estimó de manera general que
este valor oscila entre 0,02 y 12 g*día-1* m-2; en la presente investigación se
obtuvieron valores entre 2,34 y 12, 11 g*día-1* m-2 como se observa en la tabla
4.13 y en el gráfico 4.4, para distintas especies de plantas acuáticas
encontrándose estos resultados dentro del rango esperado.
GRÁFICO 4.4 TASA DE TRANSFERENCIA DE OXÍGENO
ELABORACIÓN: Larco & Paucar; 2017
En el gráfico 4.4 se observa que la tasa de transferencia para la Myriophyllum
aquaticum y Eichornia crassipes son muy cercanos siendo el valor de TT de
0,0624 y 0,06 g*día-1*planta-1 respectivamente; sin embargo al calcular la tasa de
0
2
4
6
8
10
12
14
0
0,01
0,02
0,03
0,04
0,05
0,06
0,07
Myriophyllum
aquaticum
Eichornia
crassipes
Typha
domingensis
Schoenoplectus
californicus
Tasa de transferencia de oxígeno
TT (g/día*planta) TT g/día* m2
65
transferencia por metro cuadrado la Myriophyllum aquaticum es el doble que la
Eichornia crassipes, 12,11 y 5,58 g*día-1*m-2 respectivamente.
La diferencia de estos valores se debe que al considerar la densidad de plantas,
la Myriophyllum aquaticum ocupa menor área superficial debido a sus
características morfológicas, a diferencia de la Eichornia crassipes que le supera
en tamaño y por ende necesita mayor área superficial con menor densidad de
plantas.
Por otro lado para la Typha domingensis y Schoenoplectus californicus los
resultados obtenidos de tasa de transferencia son similares de 0,0458 y 0,0461
g*día-1*planta-1 respectivamente, sin embargo la densidad de plantas de
Schoenoplectus californicus por metro cuadrado es ligeramente mayor; los cuales
se encuentran dentro de los valores esperados de 0 y 0.5 g O2 por m2 dia-1 para
plantas emergentes (Cano, 2003).
4.3 COMPARACIÓN DE CONDICIONES NATURALES Y
LABORATORIO
4.3.1 PARÁMETROS FÍSICOS-QUÍMICOS
Se compararon los resultados obtenidos de los parámetros físicos químicos de la
laguna y del cultivo hidropónico realizado para conocer las condiciones naturales
y de laboratorio. Los valores obtenidos se detallan en la tabla 4.14.
Los parámetros como pH, temperatura y presión fueron controlados, por lo tanto
su valor es constante para todas las especies estudiadas, como se observa en la
tabla 4.14.
66
TABLA 4.14 PARÁMETROS FÍSICO QUÍMICOS DE LA LAGUNA Y DE LABORATORIO
ELABORACIÓN: Larco & Paucar, 2017
Los valores de DQO altos obtenidos al inicio de la experimentación se deben al
contenido de los micronutrientes, ya que en la formulación de los mismos
contenía quelatos a los cuales durante la digestión los desintegraba en
aminoácidos que son materia orgánica susceptibles a ser oxidados; por esta
razón el espectrofotómetro daba un valor de DQO alto (Walco S.A., 1997). Como
se observa en la tabla 4.14 al finalizar la experimentación los valores de DQO son
cero, esto se debe al consumo de la planta de los micronutrientes (quelatos).
La elevada concentración de oxígeno disuelto en la laguna se debe a los aportes
realizados por las algas fotosintéticas, puesto que su producción de oxígeno varía
entre 35 y 0,5 mg/L (Villacís Cajiao, 2005), y no por plantas acuáticas porque
como se indicó anteriormente los valores de transferencia de oxígeno son muy
bajos siendo el valor obtenido más elevado el de la Myriophylum aquaticum.
En la tabla 4.14 se observa que el valor de alcalinidad en la laguna es de 299,17
mg/L superando a los valores obtenidos en la experimentación los cuales varían
entre 2,98 y 6,5 mg/L. La razón se debe principalmente a la presencia de algas
las cuales al momento de realizar la fotosíntesis usan el CO2 que está en forma
67
libre en el agua para producir bicarbonatos, aumentando la alcalinidad y también
el pH entre 8 y 10 (Alonso, 2010).
4.3.2 REQUERIMIENTOS NUTRICIONALES
Durante la experimentación no se observó ningún síntoma descrito en la tabla 2.8
que determinara la deficiencia de macro y micronutrientes, lo cual indica que el
cultivo hidropónico realizado fue apropiado para las plantas acuáticas utilizadas
en la investigación.
En la tabla 4.15 se presentan los resultados obtenidos de los análisis de
nutrientes para cada especie de planta acuática estudiada.
TABLA 4.15. ANÁLISIS DE NUTRIENTES.
Planta Época Nitratos Fosfatos Potasio Hierro Calcio Magnesio
Eichornia crassipes Época seca 24,17 1,43 440 0,11 0,7 0,47 Época lluviosa 28,48 1,32 410 0,08 0,57 0,39
Myriophyllum aquaticum
Época seca 30,43 0,7 385 0,21 0,58 0,6 Época lluviosa 28,98 1,49 410 0,14 0,56 0,33
Schoenoplectus californicus
Época seca 27,87 0,32 375 0,05 0,7 0,29 Época lluviosa 22,35 2,28 420 0,05 0,64 0,54
Typha dominguensis Época seca 36,75 0,77 385 0,05 0,79 0,44 Época lluviosa 28,1 0,92 480 0,06 0,77 0,62
Cultivo Inicial 20 0,84 517 0,27 1 0,23 Laguna 1,74 0,465 1,3 0,08 23,17 33,33
ELABORACIÓN: Larco & Paucar; 2017
Debido a que las plantas acuáticas en la laguna están en competencia con otras
especies tanto de plantas como de animales existe una concentración menor de
nutrientes que en la experimentación en donde se colocó solo una planta acuática
por reactor, por esta razón en el gráfico 4.5 se observa una diferencia muy grande
en los valores obtenidos.
68
GRÁFICO 4.5. COMPARACIÓN DE LOS ANÁLISIS DE NUTRIENTES
(a) Eichornia crassipes (b) Miryophyllum aquaticum
(c) Schoenoplectus californicus (d) Typha domingensis
ELABORACIÓN: Larco & Paucar; 2017
Como se observa en la tabla 4.15 y en el gráfico 4.5 la concentración de nitratos y
fosfatos aumentó, esto se debe al desprendimiento de pequeños rizomas los
cuales están en descomposición en el agua.
Aunque, el potasio es el nutriente que se encuentra en mayor proporción no se
encuentra en exceso, pues las plantas solo toman la cantidad de nutrientes que
necesitan, además no se observaron cambios en las plantas durante toda la
experimentación ya que estas se mantuvieron saludables al no presentar
coloración amarilla o falta de turgencia (Favela, Preciado, & Benavides, 2006;
Guillermo et al., 2004).
69
CAPÍTULO 5
CONCLUSIONES Y RECOMENDACIONES
5.1 CONCLUSIONES
· Las plantas invasivas como la Eichornia crassipes y Myriophyllum
aquaticum se acliman fácilmente a condiciones distintas de su estado
natural de procedencia. En cambio las plantas emergentes como
Schoenoplectus californicus y Typha domingensis no tienen una buena
aclimación pues necesita de un sustrato en el cual sostenerse y que le
provea de todos los nutrientes que necesita ya que el agua no le provee
todos sus requerimientos nutricionales.
· En la laguna existió mayor cantidad de oxígeno disuelto debido a la gran
cantidad de algas verdes las cuales son aportadoras de oxígeno disuelto,
ya que la contribución de oxígeno disuelto por parte de las plantas
acuáticas es mínimo; concluyendo que la eficiencia de transferencia de
oxígeno de las algas es mayor que las plantas acuáticas.
· Las plantas acuáticas transfieren un porcentaje del oxígeno generado en la
fotosíntesis al agua, y en la noche para el proceso de respiración usan el
oxígeno de la atmósfera; por lo tanto la concentración de OD es constante
a lo largo del día.
· Las algas al estar sumergidas en el agua expulsan todo el oxígeno durante
la fotosíntesis al medio, obteniendo valores elevados de concentración de
OD y en la noche consumen este oxígeno del agua reduciendo su
concentración a valores cercanos a cero.
· El consumo de oxígeno siempre existirá en un medio acuático pero será
mínimo, debido a la presencia de bacterias y por los desprendimientos de
70
pequeños rizomas de las raíces de las plantas iniciando un proceso de
descomposición.
· Las plantas acuáticas que son eficientes en la transferencia de oxígeno son
la Myriophyllum aquaticum y Eichornia crassipes, cuyos valores fueron
12,11 g O2*día-1*m-2 y 5,58 g O2*día-1*m-2 respectivamente, estos valores
aumentan con la densidad de plantas por metro cuadrado.
· Se comprobó que las plantas acuáticas invasoras con metabolismo C4 son
más eficientes al realizar la fotosíntesis que las emergentes con
metabolismo C3, lo cual influye en los resultados obtenidos ya que las
plantas con metabolismo C4 producen mayor cantidad de oxígeno.
· El cultivo hidropónico propuesto en la presente investigación fue el óptimo
ya que las plantas presentaron condiciones saludables y se demuestra con
la turgencia de las plantas, además que no presentaron necrosis o cambio
de color en sus hojas.
· Las plantas estudiadas en esta investigación son usadas generalmente en
tratamientos de agua residual, sin embargo se comprobó que su eficiencia
en transferencia de oxígeno es muy baja, por lo tanto pueden ser usadas
siempre después de un tratamiento previo, para poblaciones pequeñas y
efluentes con carga orgánica bajas.
5.2 RECOMENDACIONES
· Se comprobó que existen problemas ambientales con el uso de plantas
acuáticas, pues promueven el crecimiento de vectores afectando la salud
pública; por ejemplo proliferación de ratas ya que éstas se alimentan de los
huevos de las aves que hacen sus nidos en las plantas emergentes o
también existen problemas asociados a propagación de mosquitos y
71
zancudos. De lo anterior expuesto, se recomienda realizar control de
vectores cuando se use plantas acuáticas para tratamiento.
· Se sugiere usar más de una especie de plantas acuáticas en tratamiento
terciario para evitar que se conviertan en invasoras; y realizar un plan de
uso posterior con las mismas. Por ejemplo; se puede usar las plantas
cosechadas en alimentación de animales, producción de biogás y
elaboración de artesanías.
· Se recomienda realizar la cosecha de las plantas acuáticas cada 21 días
con el fin de un adecuado funcionamiento del tratamiento terciario; ya que
las plantas acuáticas demandan consumo de oxígeno cuando tienen signos
de necrosis o se encuentran en estado de desarrollo adulto; por lo cual no
se recomienda el uso de plantas en mal estado o en edad avanzada.
· Se recomienda realizar la misma experimentación con las especies Typha
domingensis y Schoenoplectus californicus cultivando las plantas bajo
condiciones controladas de laboratorio para que el sistema radicular de
estas plantas crezca en su óptimo.
· La Cilindrospermopsis al ser un alga hepatóxica bioacumulable, es
actualmente un riesgo a la comunidad y un problema de salud pública; por
lo cual se recomienda la prohibición de pesca y ganadería en la laguna.
Además, se recomienda que las actividades de investigación en la laguna
sean bajo protocolos de seguridad muy estrictos.
72
REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS
Acero, D., Ariel, C., Magíster, C., & Civil, I. (2014). Tratamiento de agua residual a
través de humedales, 1–8.
Acosta-Arce, L., & Aguero, R. (2006). Información Técnica Malezas Acuáticas
Como Componentes Del Ecosistema 1, 17(2), 213–218.
Alonso, P. (2010). Alcalinidad y Dureza del Agua. México.
Amador, V. D., Álvarez, S. L., & Gallardo, M. L. (2011). Potential of planktonic
cyanobacteria as bioindicators of environmental stress in coastal ecosystems,
9(9), 112–117.
Anselmo, S., & Duncan, D. (1979). Tratamentos biológicos de águas residuárias.
Rio de Janeiro, Brasil: ABBES.
Arizona, T. U. of. (n.d.). Adaptations to Aquatic Environments. Retrieved from
https://cals.arizona.edu/azaqua/aquaplants/classnotes/AdaptationstoAquaticE
nvironments.pdf
Audesirk, T., Audesik, G., & Byers, B. (2008). Biología: La vida en la Tierra
(Octava). México: Pearson.
Baca-castillo, G. A. (2011). Soluciones nutritivas para inducir cambios de
concentración de n, p, k en plantas de mango* nutrient solutions to induce
changes in concentration of n, p, k in mango plants, 2, 867–883.
Baily-Serres, J. (2009). Plants and Oxygen. Utrech: Utrech Universiteit. Retrieved
from https://dspace.library.uu.nl/handle/1874/36206
Beascoechea, E. de M., Beascoechea, E., Muñoz, J., & Curt, M. D. (n.d.). Las
aguas residuales. Normativas. In J. Fernández (Ed.), Manual de
Fitodepuración .Filtros de macrofitas en flotación. Madrid, España: Fundación
Global Nature.
Beltrano, J., & Gimenez, O. (2015). Cultivo en hidroponía. Buenos Aires,
Argentina: Editorial de la Universidad de La Plata.
Benavides, A. (n.d.). FOTOSINTESIS : DIFERENCIAS EN LAS VIAS
73
METABOLICAS C3, C4 y CAM.
Bornette, G., & Puijalon, S. (2009). Macrophytes: ecology of aquatic plants.
Encyclopedia of Life Sciences, (March 2017), 1–9.
https://doi.org/10.1002/9780470015902.a0020475
Boyd, C. (1970). Amino Acid , Protein , and Caloric Content of Vascular Aquatic
Macrophytes. Ecological Society of America, 51(5), 902–906. Retrieved from
http://www.jstor.org/stable/1933986 .
Brünner, G., & Beck, P. (1990). Nueva guía práctica de plantas acuáticas (6ta
ed.). Postfach,Alemania: Tetra-Verlag. Retrieved from http://www.bio-
nica.info/biblioteca/Brunner1990.pdf
Caicedo, F. F. (2015). Evaluación de la dinámica poblacional del fitoplancton con
relación a las características físico -químicas del lago altoandino
Yaguarcocha. Universidad Técnica del Norte.
Caldelas, C., Iglesia-Turiño, S., Araus, J., Bort, J., & Febrero, A. (2009).
Physiological responses of Eichornia crassipes (Mart). Solms to the combined
exposure to excess nutrients and Hg. Brazilian Journal of Plant Physiology,
21(3), 175–186. https://doi.org/00.0000/S00000-000-0000-0
Caseros, A., Iones, C. De, Plagas, C. De, Florales, C., Siembras, C. De, Sombra,
P. De, … Vinculos, O. (2008). Hidroponía.
Castillo, R. (2015). Valores agregados de la biodigestión anaerobia del Jacinto de
Agua. Universidad de Cuenca.
Celis, H., & Romero, I. (2007). Fotosíntesis. In Bioquímica: Un enfoque básico
aplicado a las ciencias de la vida (Primera, pp. 677–687). México D. F.:
McGrawHill.
Cirujano, S., Molina, A. M., & Cezón, K. (2011). Flora acuática: Macrófitos.
TAXAGUA. Madrid, España: Ministerio de Ambiente de España. Retrieved
from http://www.magrama.gob.es/es/agua/formacion/06-macrofitos-
santos_cirujano_tcm7-174291.pdf
Crespo, V. (2015). Alerta con las especies exóticas invasoras de agua dulce.
74
Nuestra Ciencia, (17), 68. Retrieved from
http://www.puce.edu.ec/documentos/ciencias-exactas/revista-nuestra-
ciencia/Revista-Nuestra-Ciencia-n17.pdf
Curt, M. D. (2010). Relación de macrófitas utilizadas en fitodepuración. In N.
Antequera (Ed.), Macrófitas de interés en fitodepu (pp. 91–105).
Cochabamba, Bolivia.
Das, S., Goswami, S., & Das Talukdar, A. (2016). Physiological responses of
water hyacinth, eichhornia crassipes (Mart.) solms, to cadmium and its
phytoremediation potential. Turkish Journal of Biology, 40(1), 84–94.
https://doi.org/10.3906/biy-1411-86
Dreckmann, K., Sentíes, A., & Núnez, M. L. (2013). Biología de Algas. Iztalpa,
México: Universidad Autónoma Metropolitana.
Durán, L., Terneus, H., Gavilán, R., & Posada, J. (2011). Composición y
estructura de un ensamble de plantas acuáticas vasculares de una represa
alto andina (Santander), Colombia. Actual Biol, 33(94), 51–68.
Durán, R. V. (2011). Análisis de la transferencia electrónica in vivo mediada por
plastocianina y citocromo c6 en cianobacterias. Universidad de Sevilla,
(1796), 1–165.
Esteves, F. D. A. (1998). Fundamentos de Limnologia. (Interciencia, Ed.),
Interface (Segunda). Rio de Janeiro. https://doi.org/10.1515/znc-1987-0514
FAO. (n.d.). Cultivo de Microalgas. Retrieved from
http://www.fao.org/docrep/field/003/ab473s/AB473S02.htm
Favela, E., Preciado, P., & Benavides, A. (2006). Manual para la preparación de
soluciones nutritivas. México.
García, P., Fernández, R., & Cirujano, S. (2010). Habitantes del agua. Macrófitos.
Andalucía, España.
García, S. (2009). Cianobacterias Y Cianotoxinas. Impactos Sobre La Salud
Humana. Retrieved from
http://www.msal.gob.ar/images/stories/ministerio/intoxicaciones/cianobacteria
75
s/cianobacterias_y_cianotoxinas.pdf
Gardner, F., Pearce, R. B., & Mitchel, R. (1985). Fijación De Carbono Por Los
Cultivos. In Physiology of Crop Plants (pp. 31–57). Iowa: Iowa State
University Press. Retrieved from
http://agro.uncor.edu/~ceryol/documentos/ecofisiologia/FIJACIN_DE_CARBO
NO_POR_LOS_CULTIVOS.pdf
Gettys, L. a., Haller, W. T., & Bellaud, M. (2014). Biology and control of aquatic
plants: A best management practices handbook (First Edit).
Marietta,Georgia,USA: Aquatic Ecosystem Restoration Foundation.
González, J. C., Santana, D., & Quintas, A. P. (2012). Plantas acuáticas para el
tratamiento de agua en espejos ornamentales. Revista Amazónica Ciencia Y
Tecnología, 1(2), 1–7.
González, M., & Inostroza, I. (2017). Manual taxonómico y fotográfico de géneros
fitoplanctónicos (excl. diatomeas) de 7 lagunas del Gran
Concepción,Concepción,Chile. Concepción,Chile. Retrieved from
https://issuu.com/manualtaxfotfitoplancton-
chile/docs/manualtaxfotfitoplanctonchil
GRIIS. (2016). Invasive Species Specialist Group. Retrieved from
http://www.griis.org/search3.php
Grosso, M., Tordable, M. del C., & Reinoso, H. (n.d.). DESDE LA CÉLULA A LA
FOTOSÍNTESIS EN PLANTAS SUPERIORES.
Guerra, M. de lourdes. (1999). Determination de la presence des algues
epiphytiques dans un milieu tropical , la riviere Vinces (Equateur) et sa plaine
d’inondation La Victoria et des variables environnementaales susceptibles
d’influencer leur abondance. Université du Québec à Montréal.
Guerrero, N. R., Quintero, M. A. O., & Naranjo, J. C. P. (2012). Determinación del
Área Foliar en Fotografías Tomadas con una Cámara Web, un Teléfono
Celular o una Cámara Semiprofesional. Revista Facultad Nacional de
Agronomía, 65(1), 6399–6405. Retrieved from
76
http://www.revistas.unal.edu.co/index.php/refame/article/view/30766/38180
Guillermo, I., Díaz, G., & Vargas, O. C. (2004). Ministerio de Agricultura y
Ganadería Sistema Unificado de Información Institucional HIDROPONÍA EN
CASA : Una actividad familiar Consejo Editorial Agradecimientos.
Hagley, C. (n.d.). Plants are autotrophs. Retrieved from
http://www.d.umn.edu/~vbrady/WE_website/wetlands101/WE-lectures/Plant-
adaptations.pdf
HAPPOM. (2007). Aclimatación y Adaptación : Algunos conceptos. Barcelona.
Retrieved from http://www.ub.edu/HAPPOM/actividades/pdf/flv-compadap.pdf
Hasan, M. R., & Chakrabarti, R. (2009). Submerged aquatic macrophytes. In Use
of algae and aquatic macrophytes as feed in small -scale aquaculture-A
review (pp. 75–88). Food and Agriculture Organization of the United Nations
(FAO). Retrieved from http://www.fao.org/docrep/012/i1141e/i1141e06.pdf
Hidalgo, J. C., Montano, J. J., & Sandoval, M. (2005). Recientes aplicaciones de la
depuración de aguas residuales con plantas acuáticas. Theoria, 14(1), 17–25.
Retrieved from http://www.ubiobio.cl/theoria/v/v14/a2.pdf
Hochmaier, V. (2010). Desarrollo y evaluación de métodos prácticos no
destructivos para la estimación del Area Foliar (AF) por árbol y cálculo del
Indice de Area Foliar (IAF) en montes de cerezo (Prunus avium L.). Università
degli Studi di Bologna. Retrieved from http://www.sidalc.net/cgi-
bin/wxis.exe/?IsisScript=INTA2.xis&method=post&formato=2&cantidad=1&ex
presion=mfn=061798
Hunt, R. J., & Christiansen, I. H. (2000). Understanding Dissolved Oxygen in
Streams. Information Kit., 27 pp.
INAHMI. (2017). BOLETIN DE PRENSA N ° 02. Quito, Ecuador.
ISC. (2016). Datasheet report for Myriophyllum aquaticum (parrot’s feather).
Retrieved from http://www.cabi.org/isc/datasheet/34939#toTaxonomicTree
Island, E., & Oxygen, J. G. (n.d.). Dissolved Oxygen ( DO ).
Jørgensen, P. M., & León-Yánez, S. (1999). Catalogue of the Vascular Plants of
77
Ecuador. Retrieved from
http://www.mobot.org/mobot/research/ecuador/welcomesp.shtml
Karp, G. (2014). Biología Celular y Molecular (Séptima). México D. F.: McGraw-
Hill INTERAMERICANA.
Kiersch, B., Münhleck, R., & Gunkel, G. (2004). Las macrófitas de algunos lagos
alto-andinos del Ecuador y su bajo potencial como bioindicadores de
eutrofización. Revista de Biologia Tropical, 52(4), 829–837.
Lewis, M. E. (2006). DISSOLVED OXYGEN 6 . 2, 3, 1–48.
López-Lanús, B., & Blanco, D. E. (2005). El Censo Neotropical de Aves Acuáticas
2004. Wetlands, 17, 114.
Lot, A., Olvera, M., Flores, C., & Díaz, A. (2015). Guia ilustrada de campo. Plantas
indicadoras de humedales (Primera ed). México: Universidad Nacional
Autónoma de México.
Luján De Fabricius, D. A. (2000a). LAS ALGAS, INDICADORES DE LA CALIDAD
DEL AGUA Volver a: Agua en el Cono Sur, 4(4), 1–4. Retrieved from
www.produccion-animal.com.ar
Luján De Fabricius, D. A. (2000b). LAS ALGAS, INDICADORES DE LA CALIDAD
DEL AGUA Volver a: Agua en el Cono Sur, 4(4), 1–4.
MAGRAMA. (2013). Protocolo de muestreo de otro tipo de flora acuática
(macrófitos) en lagos. Madrid, España.
Mansilla, A., & Alveal, K. (2004). Generalidades Sobre Las Macroalgas. Biologia
Marina Y Oceanografía: Conceptos Y Procesos., 16, 349–362.
Margulis, L., & Sagan, D. (2012). El proceso de nutrición en las plantas.
Martelo, J., & Lara Borrero, J. A. (n.d.). ().
Martínez, E., & Lozano. (2010). Compendios de horticultura. Horticultura SL
Ediciones.
Massol, A. (1969). Manual de ecología microbiana.
Matthews, S., & Brand, K. (2005). El Programa Mundial sobre Especies Invasoras.
78
(K. Brand, Ed.), GISP Newsletter (Primera ed). GISP. Retrieved from
http://www.issg.org/pdf/publications/GISP/Resources/SAmericaInvaded-
ES.pdf
Mazzeo, N. (2006). Ecología vegetal acuática. Retrieved from
http://hydrobio.fcien.edu.uy/index.htm
Medel, R. (n.d.). Los protictas: algas y protozoos.
Metcalf, G., & Eddy, C. (1995). Ingeniería de aguas residuales. Tratamiento,
vertido y reutilización. (3 era). Madrid, España: McGraw-Hill.
Meyer, B., Anderson, D., & Böhning, R. (1972). Introducción a la fisiología vegetal
(Tercera). Buenos Aires: EUDEBA.
Miller, E. (1967). Fisiología Vegetal (Primera). México D. F.: UTEHA.
Miller, E. (1967). Fisiología Vegetal (Primera). México D. F.: UTEHA.
Miranda, M., & Quiroz, A. (2013). Efecto Del Fotoperiodo En La Remoción De
Plomo Por Lemna Gibba L. (Lemnaceae). Polibotánica, 147–161.
Netting, R. (2013). La NASA confirma una tendencia de calentamiento climático a
largo plazo. Ciencia@NASA, p. 1. Retrieved from
http://ciencia.nasa.gov/ciencias-especiales/15jan_warming/
Núñez, L., Meas, V., Ortega, B., & Olguin, J. (2004). Fitorremediación:
fundamentos y aplicaciones. Ciencia. Revista de La Academia Mexicana …,
69–83. Retrieved from
http://scholar.google.com/scholar?hl=en&btnG=Search&q=intitle:Fitorremedia
ci?n:+fundamentos+y+aplicaciones#0
Oyedeji, A. A., & Abowei, J. F. N. (2012). The Classification , Distribution , Control
and Economic Importance of Aquatic Plants. International Jpournal of
Fisheries and Aquatic Sciences, 1(2), 118–128. Retrieved from
http://maxwellsci.com/print/ijfas/v1-118-128.pdf
Pabón, J. (2015). Distribución y evaluación de la vegetación macrofítica en el lago
de Yaguarcocha, Provincia Imbabura. Universidad Técnica del Norte.
79
Peña, E. (2010). Oxigeno disuelto Evelyn Peña (1).
Pereira C, G., Herrera S, J., Machuca H, A., & Sánchez O, M. (2007). Efecto del
pH sobre el crecimiento in vitro de hongos ectomicorrícicos recolectados de
plantaciones de Pinus radiata. Bosque (Valdivia), 28(3), 215–219.
https://doi.org/10.4067/S0717-92002007000300005
Pérez-Urria Carril, E. (2009). Fotosíntesis: Aspectos Básicos. Reduca (Biología),
2(3), 1–47.
Philbrick, C. T., & Les, D. H. (1996). Evolution of aquatic Angiosperm reproductive
systems. BioScience, 46(11), 813–826. https://doi.org/10.2307/1312967
Pieterse, A. . (FAO). (2005). Manejo de malezas acuáticas. Retrieved from
http://www.fao.org/docrep/t1147s/t1147s0f.htm
Polanco, M. (2012). Simposio Interdisciplinar. In Hatun Ñan, diseño e identidad en
el espacio patrimonial ecuatoriano (p. 11). Ibarra, Ecuador: Pontificia
Universidad Católica del Ecuador Sede Ibarra.
Posada, J., & López, M. (2011). Plantas acuáticas del altiplano del Oriente
Antioqueño, Colombia. Conicet Mendoza (Cct). Antioquia, Colombia.
Retrieved from http://www.cricyt.edu.ar/enciclopedia/terminos/PlantAcuat.htm
Proaño, M. (2006). Diagnóstico de los Recursos hídricos de ña Reserva Ecológica
Cotacaccho-Cayapas. Imbabura, Ecuador: Ministerio de Ambiente del
Ecuador.
Ramírez, C., & San Martín, C. (2006). Flora acuática. In C. N. del M. Ambiente
(Ed.), “Biodiversidad de Chile: Patrimonio y desafíos (Primera ed, pp. 358–
363). Santiago de chile. Retrieved from
http://www.mma.gob.cl/librobiodiversidad/1308/articles-45206_recurso_4.pdf
Ramos Montaño, C., Cárdenas-Avella, N. M., & Herrera Martínez, Y. (2013).
Caracterización de la comunidad de Macrófitas acuáticas en lagunas del
Páramo de La Rusia (Boyacá-Colombia) Characterization of the Community
of Aquatic Macrophytes in Lakes of La Rusia Paramo (Boyacá-Colombia).
Revista Ciencia En Desarrollo, pp. 73–82.
80
RED MAPSA. (2007). Oxígeno Disuelto.
Reyes, S. V., Sosa, R. F., Hernández, H. G., & Guillen, A. R. (2016). Cultivos
Hortícolas en hidroponia.
Rial, A. (2013). Plantas acuáticas: aspectos sobre su distribución geográfica,
condición de maleza y usos. Biota Colombiana, 14(2), 900–903.
https://doi.org/10.1021/np9701844
Rial, A., Terneus, E., León, B., & Tognelli, M. F. (2016). Estado de Conservación y
distribución de las plantas acuáticas. In Jiménez-Segura & N. Cox (Eds.),
Estado de conservación y distribución de las plantas acuáticas (pp. 87–101).
Gland, Suiza, Cambridge, UK y Arlington: UICN.
Roldán, G., & Ramírez, J. J. (2008). Fundamentos de limnología neotropical. (U.
de Antioquia, Ed.) (Segunda ed). Antioquia,Colombia. Retrieved from
https://books.google.es/books?id=FA5Jr7pXF1UC&printsec=frontcover&dq=g
abriel+roldan&hl=es&sa=X&ved=0ahUKEwibvMqI4LrSAhUX1GMKHcbwAko
Q6AEIGTAA#v=onepage&q=gabriel roldan&f=false
Saelens, P. (2015). Ecological functioning of a eutrophic, high-altitute shallow lake
in Ecuador, Laguna Yahuarcocha. KU LEUVEN. Retrieved from
http://scriptiebank.be/sites/default/files/webform/scriptie/Pauline Saelens
THESIS_0.pdf
Salisbury, F., & Ross, C. (2000). Compromiso entre fotosíntesis y respiración. In
Paraninfo (Ed.), Fisiología de las plantas (pp. 130–133). Madrid.
Scremin-Dias, E. (2009). Tropical aquatic plants: morphoanatomical adaptations.
In Tropical biology and conservation management (Vol. I, pp. 83–132). Del-
Claro, K. & Rico-Gray (orgs.). Retrieved from http://www.eolss.net/sample-
chapters/c20/e6-142-nh-03.pdf
Shine, C., Williams, N., & Gündling, L. (2000). Guía para la elaboraciób de marcos
jurídicos e institucionales relativos a las especies exóticas invasoras. Unión
Mundial para la naturaleza. Retrieved from
https://books.google.es/books?hl=es&lr=&id=06fJygNkas4C&oi=fnd&pg=PP1
81
1&dq=especie+invasora++definicion&ots=pvcI9S7mGV&sig=WShm6aLvsgC
miHGfMnDMhmF7bl8#v=onepage&q&f=false
Smithers Oasis. (2015). Manual de hidroponia. México.
US EPA. (2014). Health and Ecological Effects Nutrient Pollution Policy and Data
US EPA. Retrieved from https://www.epa.gov/nutrient-policy-data/health-and-
ecological-effects
Vallejos, S. (n.d.). Algas: Diversidad vegetal.
Villacís Cajiao, D. F. (2005). Remoción natural de microorganismos patógenos en
estanques de 20 y 35 cm de profundidad. EPN.
Walco S.A. (1997). Todo sobre los Quelatos. (Walco S.A., Ed.). Colombia.
Wetzel, R., & Likens, G. (1991). Fundamentals of Limnology Oxygen ,
Temperature and Lake Stratification.
WWAP (United Nations World Water Assessment Programme). (2016). Informe de
las Naciones Unidas sobre el Desarrollo de los Recursos Hídricos en el
Mundo 2016: Agua y Empleo. Paris.
(Erston Miller, 1967) (Meyer, Anderson, & Böhning, 1972) (Martínez & Lozano, 2010)
100
ANEXOS
101
ANEXO 1: PLANTAS CON SU CÓDIGO DISPUESTA EN
CADA REACTOR
102
A continuación se muestran a detalle el número de plantas usadas según el
reactor para la época seca:
ÉPOCA SECA
Género Número de Planta Reactor
Eichornia
053-011-16-IC-FLO-DPAI/MAE 1
051-011-16-IC-FLO-DPAI/MAE 2
041-011-16-IC-FLO-DPAI/MAE 3
046-011-16-IC-FLO-DPAI/MAE 4
Myriophyllum
061-011-16-IC-FLO-DPAI/MAE 1
062-011-16-IC-FLO-DPAI/MAE 2
063-011-16-IC-FLO-DPAI/MAE 3
064-011-16-IC-FLO-DPAI/MAE 4
Typha
017-011-16-IC-FLO-DPAI/MAE 1
016-011-16-IC-FLO-DPAI/MAE 2
003-011-16-IC-FLO-DPAI/MAE 3
002-011-16-IC-FLO-DPAI/MAE 4
Schoenoplectus
033-011-16-IC-FLO-DPAI/MAE 1
035-011-16-IC-FLO-DPAI/MAE 2
026-011-16-IC-FLO-DPAI/MAE 3
029-011-16-IC-FLO-DPAI/MAE 4
A continuación se muestran a detalle el número de plantas usadas según el
reactor para la época lluviosa:
103
ÉPOCA LLUVIOSA
Género Número de Planta Reactor
Eichornia
167-011-16-IC-FLO-DPAI/MAE 5
172-011-16-IC-FLO-DPAI/MAE 6
166-011-16-IC-FLO-DPAI/MAE 9
155-011-16-IC-FLO-DPAI/MAE 10
164-011-16-IC-FLO-DPAI/MAE 12
145-011-16-IC-FLO-DPAI/MAE 13
160-011-16-IC-FLO-DPAI/MAE 16
Myriophyllum
174-011-16-IC-FLO-DPAI/MAE 6
203-011-16-IC-FLO-DPAI/MAE 8
179-011-16-IC-FLO-DPAI/MAE 9
182-011-16-IC-FLO-DPAI/MAE 11
200-011-16-IC-FLO-DPAI/MAE 12
201-011-16-IC-FLO-DPAI/MAE 14
175-011-16-IC-FLO-DPAI/MAE 15
202-011-16-IC-FLO-DPAI/MAE 16
Typha
085-011-16-IC-FLO-DPAI/MAE 5
083-011-16-IC-FLO-DPAI/MAE 8
082-011-16-IC-FLO-DPAI/MAE 11
107-011-16-IC-FLO-DPAI/MAE 13
098-011-16-IC-FLO-DPAI/MAE 14
Schoenoplectus
136-011-16-IC-FLO-DPAI/MAE 8
121-011-16-IC-FLO-DPAI/MAE 11
104
ANEXO 2: OXÍGENO DISUELTO DE CADA REACTOR PARA
ÉPOCA SECA Y LLUVIOSA
105
Eichornia crassipes
6:00 7:00 8:00 9:00 10:00 11:00 12:00 13:00 14:00 15:00 16:00 17:00 18:00
É P O C A
S E C A
Reactor 1
Día 1 3,34 3 3,32 3,32 3,72 3,67 3,75 3,65 3,59 3,73 3,68 3,58 3,82
Día 2 3,4 3,88 3,69 3,66 3,46 3,57 3,56 4,14 3,64 3,55 3,66 3,57 3,42
Día 3 3,58 3,82 3,58 3,41 3,57 3,37 3,38 3,63 3,65 3,67 3,45 3,5 3,71
Día 4 3,66 3,8 3,76 3,82 3,67 3,42 3,72 3,79 3,76 3,65 3,78 3,61 3,96
Día 5 3,83 4,15 5,57 4,31 3,99 4,14 3,95 3,91 3,6 3,9 4,12 3,81 3,61
Día 6 4,08 4,27 4,24 4,06 4,13 3,93 4,13 4,08 4,27 3,96 3,97 3,88 3,84
Día 7 4,19 4,6 4,45 4,63 4,5 4,7 4,53 4,51 4,49 4,75 4,66 4,57 4,61
Día 8 4,38 4,39 4,47 4,34 4,36 4,11 4,12 4,22 4,13 4,09 4,1 3,99 4,08
Reactor 2
Día 1 4,47 4,5 4,36 4,62 4,58 4,55 4,34 4,45 4,53 4,12 4,28 4,3 4,38
Día 2 4,65 4,1 4,41 4,33 4,12 4,17 4,24 4,06 4,05 4,38 4,05 4,08 4,13
Día 3 4,65 4,59 4,56 4,84 4,72 4,8 4,76 4,79 4,98 4,84 4,83 4,73 4,73
Día 4 4,66 4,66 4,56 4,41 5,08 4,98 4,5 4,91 4,65 3,26 4,34 4,5 4,35
Día 5 4,73 4,63 4,85 4,94 5,03 4,86 4,85 4,82 4,66 4,87 5,1 4,84 5
Día 6 4,74 4,69 5,12 4,73 4,73 4,71 4,75 4,45 4,79 4,86 4,47 4,45 4,54
Día 7 4,78 4,98 5,21 4,92 5,07 5,12 5,06 5,12 4,97 5,05 4,84 4,86 5,06
Día 8 4,93 5,04 5,12 4,93 5,03 5,47 5,29 4,98 4,85 4,86 4,88 5,13 4,89
Reactor 3
Día 1 4,99 5,21 5,17 5,26 5,35 5,2 5,18 5,21 5,31 5,25 5,53 5,14 5,24
Día 2 5,04 5 5,15 5,14 5,09 5,11 4,99 5,18 5,2 5,07 5 4,99 5,17
Día 3 5,07 4,74 4,9 4,9 4,97 4,8 4,84 4,86 4,78 4,85 4,84 4,99 4,84
Día 4 5,08 4,79 4,71 4,84 4,77 4,73 4,91 4,86 4,93 4,65 4,57 4,86 4,7
Día 5 5,08 5,13 5,26 5,1 5,11 5,06 5,16 5,23 5,32 5,03 4,93 4,98 4,94
Día 6 5,08 5,34 5,4 5,31 5,29 5,23 5,4 5,32 5,16 5,2 5,07 5,22 5,2
Día 7 5,41 5,42 5,35 5,48 5,51 5,4 5,34 5,41 5,38 5,48 5,42 5,39 5,48
Día 8 5,45 5,45 5,51 5,43 5,52 5,48 5,49 5,54 5,37 5,5 5,33 5,5 5,52
Reactor 4
Día 1 5,45 5,28 4,07 5,33 5,44 5,43 5,47 5,25 5,56 5,43 5,36 5,35 5,29
Día 2 5,46 5,49 5,31 5,37 5,3 5,15 5,04 5,02 4,79 4,94 4,88 4,64 4,87
Día 3 5,61 5,59 5,57 5,57 5,65 5,58 5,67 5,73 5,55 5,54 2,21 5,51 5,53
Día 4 5,71 5,78 5,32 5,23 5,44 5,26 5,2 5,14 4,92 4,76 4,45 6,24 5,25
Día 5 5,8 5,5 5,6 5,72 5,61 5,54 5,51 5,4 5,4 5,47 5,41 5,28 5,2
Día 6 5,92 5,85 5,88 6,54 5,94 5,88 5,79 5,85 5,77 5,48 5,44 5,52 5,51
Día 7 5,98 6 6,3 6,54 6,6 6,56 6,49 6,52 6,43 6,44 6,38 6,17 6,33
Día 8 6,67 6,6 6,65 6,48 6,5 6,39 6,41 6,31 6,26 6,27 6,17 6,15 6,23
É P O C A
L L U V I O S A
Reactor 5
Día 1 4,91 5,02 4,96 5,07 5,12 4,99 5,12 5,04 4,97 4,96
Día 2 5,12 5,06 4,86 4,99 5,05 5,17 5 5,06 5,13 4,98 5,15 5,21 5,1
Día 3 4,95 5,01 5,08 4,91 5,04 4,96 5,04 4,95 4,95 4,88 4,76 4,95 4,84
Día 4 4,85 4,86 4,99 4,93 4,8 4,86 4,81 4,93 4,86 4,8 4,83 4,78 4,75
Día 5 4,6 4,69 4,98 4,77 4,74 4,89 4,83 4,6 4,88 4,72 4,64 4,63 4,68
Día 6 4,77 4,74 4,81 4,72 4,78 4,78 4,72 4,63 4,6 4,56 4,55 4,45 4,55
Día 7 4,26 4,46 4,66 4,78 4,53 4,61 4,48 4,53 4,53 4,41 4,31 4,41 4,39
Día 8 4,33 4,29 4,32 4,44 4,29 4,38 4,37 4,4 4,24 4,07 4,23 4,06 4,2
Reactor 6 Día 1 5,16 4,82 4,69 4,84 4,78 4,82 4,84 4,89 4,82 4,82
106
6:00 7:00 8:00 9:00 10:00 11:00 12:00 13:00 14:00 15:00 16:00 17:00 18:00
Día 2 4,69 4,83 4,79 4,98 4,88 5,12 5 5,17 5,08 4,93 4,99 5,12 4,9
Día 3 4,73 5,06 5,08 5,16 5,38 5,41 5,1 5,04 5,09 5,02 5,05 5,09 4,99
Día 4 5,12 5,09 5,11 5,19 5,1 5,04 5,02 5,09 5,08 5,01 5,03 4,86 5,04
Día 5 4,92 5,06 5,14 5,13 5,14 5,04 5 5,09 5,16 5,1 4,97 5,04 4,98
Día 6 5,24 5,06 5,13 5,2 5,28 5,15 5,23 5,12 5,21 5,04 5,09 5,12 5,09
Día 7 5,2 5,09 5,23 5,2 5,38 5,16 5,12 5,47 5,16 4,94 5,14 4,99 4,99
Día 8 5,06 5,06 5,07 5,18 5,07 5,07 4,93 4,99 4,97 4,88 4,88 4,86 4,42
Reactor 10
Día 1 5,39 5,52 5,32 5,32 5,46 5,4 5,35 5,47 5,34 5,29
Día 2 5,16 5,38 5,35 5,38 5,37 5,36 5,39 5,38 5,35 5,3 5,2 5,37 5,24
Día 3 5,22 5,17 5,32 5,39 5,41 5,41 5,33 5,38 5,45 5,27 5,29 5,28 5,22
Día 4 5,29 5,34 5,31 5,38 5,35 5,23 5,25 5,19 5,15 5,22 5,22 5,23 5,24
Día 5 5,08 5,12 5,22 5,15 5,16 5,25 5,23 5,17 5,12 5,07 5,03 5,16 5,14
Día 6 5,25 5,16 5,22 5,26 5,16 5,04 5,14 5,26 5,13 5,11 5,13 5,11 5,04
Día 7 4,91 5,12 5,19 5,13 5,15 5,06 5,15 5,16 5,08 5,05 5,07 4,99 4,96
Día 8 4,97 5 4,95 5,03 4,94 4,98 4,92 5,03 4,85 4,84 4,83 4,84 4,82
Reactor 12
Día 1 4,79 4,76 4,36 4,63 4,6 4,61 4,65 4,7 4,58 4,56
Día 2 4,38 4,55 4,59 4,58 4,61 4,66 4,53 4,92 4,5 4,59 4,68 4,66 4,54
Día 3 4,64 4,65 4,69 4,79 4,9 4,6 4,68 5,02 4,7 4,79 4,69 4,77 4,73
Día 4 4,56 4,84 5,01 4,85 4,8 4,69 5,01 4,82 4,8 4,8 4,71 4,59 4,85
Día 5 4,52 4,7 4,93 4,87 4,83 4,86 4,93 4,96 4,79 4,76 4,76 4,8 4,81
Día 6 4,7 4,78 4,94 4,92 4,87 5,15 4,92 4,94 4,89 4,89 4,85 4,81 4,87
Día 7 4,7 4,85 4,86 4,81 4,91 4,98 4,94 4,85 4,66 4,91 4,68 4,75 4,68
Día 8 4,61 4,6 4,71 4,67 4,77 4,79 4,8 4,69 4,6 4,48 4,53 4,47 4,52
Reactor 13
Día 1 5,13 4,89 4,98 4,92 4,89 5,05 5,09 5,04 4,94 5,04
Día 2 4,83 4,97 5,04 5,12 5 5,01 4,97 5,14 5,03 5,11 4,92 5,03 4,94
Día 3 4,79 4,98 4,95 5,13 5,14 5,1 5,11 5,25 5,18 5,3 5,13 5,04 4,89
Día 4 4,82 5,07 5,31 5,17 5,14 5,11 5,23 5,25 5,11 5,14 5,26 5,02 4,98
Día 5 5,21 5,1 5,12 5,04 5,26 5,16 5,34 5,12 5,07 5,09 5,1 5,12 5,16
Día 6 4,95 4,89 5,07 5,19 5,23 5,21 5,1 5,11 5,3 5,16 5,25 5,09 5,07
Día 7 5,12 5,11 5,15 5,18 5,19 5,29 5,14 5,22 5,2 5,22 5,15 5,15 5,15
Día 8 4,95 5,3 5,12 5,13 5,16 5,18 5,19 5,17 5,21 5,17 5,12 5,09 5,09
Reactor 15
Día 1 5,39 5,31 5,26 5,3 5,35 5,58 5,36 5,35 5,29 5,25
Día 2 5,38 5,15 5,18 5,19 5,4 5,43 5,41 5,39 5,27 5,19 5,22 5,24 5,07
Día 3 4,91 5,18 5,22 5,39 5,3 5,29 5,36 5,28 5,32 5,3 5,33 5,25 5,05
Día 4 4,99 5,25 5,34 5,32 5,41 5,35 5,33 5,32 5,32 5,34 5,31 5,18 5,25
Día 5 5,15 5,08 5,29 5,27 5,31 5,33 5,34 5,35 5,25 5,27 5,25 5,29 5,19
Día 6 5,14 5,22 5,23 5,38 5,34 5,32 5,39 5,42 5,34 5,18 5,21 5,14 5,14
Día 7 5,07 5,18 5,24 5,26 3,78 5,31 5,5 5,28 5,33 5,21 5,09 5,18 4,99
Día 8 5,01 5,03 5,07 5,17 5,13 5,28 5,29 5,1 5,2 5,1 5,02 4,98 4,96
Reactor 16
Día 1 5,26 5,29 5,2 5,13 5,27 5,13 5,19 5,12 5,2 5,08
Día 2 5,1 5,11 5,03 5,25 5,26 5,29 5,36 5,27 5,13 5,13 5,07 5,1 5,07
Día 3 4,99 5,18 5,28 5,26 5,25 5,23 5,24 5,28 5,34 5,27 5,16 5,15 5,09
Día 4 4,88 5,22 5,13 5,24 5,29 5,27 5,16 5,16 5,16 5,13 5,09 5,02 5,02
107
6:00 7:00 8:00 9:00 10:00 11:00 12:00 13:00 14:00 15:00 16:00 17:00 18:00
Día 5 4,75 5,08 5,21 5,18 5,22 5,06 5,13 5,19 5,07 5,09 5,02 5,04 4,99
Día 6 5,18 4,9 5,06 5,13 5,18 5,11 5,07 5,03 5,01 4,99 4,98 4,93 4,93
Día 7 4,94 4,82 4,99 5,01 5,07 5,1 5,01 5,02 4,98 4,92 4,92 4,83 4,9
Día 8 4,92 4,84 4,94 4,92 4,93 5,01 5,04 4,93 4,79 4,82 4,9 4,76 4,72
Myriophyllum Aquaticum
6:00 7:00 8:00 9:00 10:00 11:00 12:00 13:00 14:00 15:00 16:00 17:00 18:00
É P O C A
S E C A
Reactor 1
Día 1 7,06 7,1 6,78 6,56 6,96 6,93 6,94 6,87 6,7 6,77 6,43 6,24 6,47
Día 2 5,89 5,51 4,68 4,88 5,12 4,54 4,61 4,85 4,84 3,33 3,61 4,37 4,06
Día 3 3,95 4,24 4,33 4,27 4,41 4,42 4,33 4,48 4,62 4,29 4,42 4,39 4,64
Día 4 4,8 5,23 4,73 4,75 4,69 4,69 4,74 4,67 4,68 4,62 4,66 4,82 4,53
Día 5 5,28 5,54 5,31 5,35 5,32 5,09 5,15 5,3 5,17 5,16 5,24 5,15 5,03
Día 6 5,07 5,14 5,32 4,89 4,83 4,97 4,92 4,79 4,82 4,91 4,99 4,95 5,02
Día 7 5,17 5,27 5,08 5,17 5,18 5,03 5,02 4,95 5,06 4,95 4,97 5 5,06
Día 8 5,43 4,97 5,1 5,23 5,02 4,92 4,96 4,95 5,26 5,05 4,99 5,2 5,16
Reactor 2
Día 1 6,93 7,1 7,04 6,85 6,88 6,98 6,8 6,89 6,8 6,76 6,66 6,69 6,53
Día 2 5,83 5,78 5,61 5,66 5,4 5 5,04 4,92 5,09 4,97 4,16 4,48 4,46
Día 3 4,37 4,51 4,54 4,35 4,46 4,3 4,37 4,36 4,51 4,65 4,54 4,31 4,52
Día 4 4,7 4,99 4,97 4,82 4,72 4,51 4,88 4,7 4,9 4,84 4,93 4,47 4,63
Día 5 5,11 5 4,83 4,78 4,76 4,84 4,9 4,8 4,79 4,87 4,87 4,79 4,93
Día 6 4,64 4,59 4,73 4,47 4,49 4,4 4,47 4,8 4,8 4,81 4,14 4,58 4,31
Día 7 4,49 4,78 5,14 4,6 4,69 4,33 4,25 4,39 4,57 4,37 4,53 4,34 4,34
Día 8 4,62 4,46 4,63 4,58 4,4 4,34 4,3 4,25 4,4 4,43 4,57 4,26 4,55
Reactor 3
Día 1 6,72 6,63 6,4 6,44 6,67 6,68 6,62 6,51 6,34 6,02 6,46 6,13 5,46
Día 2 5,37 5,28 3,69 4,1 4,16 4,14 3,99 2,18 4,24 4,3 3,13 2,63 2,56
Día 3 3,94 4,22 3,91 3,66 3,64 3,69 3,91 3,96 3,93 4 3,79 4,2 3,51
Día 4 4,61 4,56 4,73 4,06 3,97 3,99 3,99 4,03 4,08 3,6 4,46 3,07 4,62
Día 5 5,07 5,04 4,69 4,52 4,55 4,78 4,55 4,46 4,5 4,51 4,33 4,57 4,71
Día 6 4,85 4,69 4,65 4,62 4,35 4,4 4,58 4,54 4,42 4,49 4,75 4,38 4,38
Día 7 4,86 4,48 4,89 4,74 4,66 4,47 4,38 4,43 4,53 4,5 4,47 4,78 4,36
Día 8 4,79 4,74 4,75 4,79 4,7 4,48 4,56 4,59 4,17 4,52 4,37 4,69 4,65
Reactor 4
Día 1 7,07 7,15 7,09 7,07 7,08 7,09 7,05 6,05 7,06 6,98 6,96 7,01 6,94
Día 2 6,76 6,62 6,44 6,58 6,19 5,86 6,25 6,23 6,53 6,35 1,99 6,39 5,72
Día 3 4,7 4,59 4,78 4,39 4,45 4,39 4,58 4,6 4,41 4,69 4,48 4,57 4,85
Día 4 5,07 5,12 5 4,93 4,83 4,91 5,19 5,17 5,17 5 5,03 4,93 4,82
Día 5 5,51 5,04 5,49 5,47 5,33 5,58 5,47 5,31 5,48 5,48 5,52 5,64 5,51
Día 6 5,76 5,72 5,75 5,76 5,54 5,67 5,66 5,64 5,31 5,39 5,58 5,61 5,65
Día 7 5,6 5,75 5,68 5,52 5,48 5,62 5,4 5,69 5,5 5,6 5,55 5,54 5,28
Día 8 5,65 5,38 5,65 5,58 5,48 5,36 5,52 5,48 5,34 5,28 5,49 5,51 5,54
É P O C A
Reactor 6
Día 1 5,56 5,48 5,72 5,56 5,43 5,41 5,54 5,57 5,52 5,44 5,63 5,53
Día 2 5,82 5,44 5,77 5,53 5,69 5,67 5,81 5,64 5,48 5,74 5,71 5,61 5,66
Día 3 5,76 5,57 5,61 5,72 5,73 5,54 5,68 5,63 5,66 5,64 5,61 5,69 5,64
108
6:00 7:00 8:00 9:00 10:00 11:00 12:00 13:00 14:00 15:00 16:00 17:00 18:00
L L U V I O S A
Día 4 5,6 5,54 5,7 5,75 5,61 5,5 5,51 5,66 5,72 5,58 5,7 5,78 5,68
Día 5 5,75 5,61 5,75 5,61 5,45 5 5,47 5,59 5,52 5,45 5,41 5,3 5,33
Día 6 5,34 5,32 5,39 5,25 5,23 5,19 5,18 5,22 5,25 5,27 5,3 5,38 5,36
Día 7 5,57 5,5 5,43 5,42 5,32 5,11 5,15 5,38 5,15 5,14 5,1 5,1 5,1
Día 8 5,35 5,36 5,34 5,37 5,21 5,15 4,88 5,29 5,25 5,05 5,06 5,03 4,89
Reactor 8
Día 1 4,71 5,77 5,85 6,09 5,72 5,93 5,74 6,07 5,97 5,94 6 5,91
Día 2 6,06 5,81 5,92 5,84 5,87 5,92 6,07 5,99 5,95 5,93 6,02 5,94 5,91
Día 3 5,99 5,75 5,78 5,85 5,73 5,84 5,77 5,57 5,84 5,69 5,72 5,88 5,75
Día 4 5,66 5,62 5,69 5,71 5,6 5,62 5,71 5,56 5,65 5,72 5,57 5,57 5,66
Día 5 5,62 5,49 5,54 5,44 5,41 5,12 5,32 5,38 5,28 5,22 5,27 5,29 5,25
Día 6 5,37 5,23 5,38 5,26 5,13 5,25 5,26 5,39 5,17 5,2 5,21 5,3 5,27
Día 7 5,39 5,36 5,26 5,25 5,31 5,2 5,28 5,35 5,32 5,17 5,16 5,08 5,11
Día 8 5,2 5,29 5,34 5,29 5,17 5,19 5,04 5,28 4,97 4,98 5,12 5,1 5,06
Reactor 9
Día 1 5,69 5,55 5,51 5,75 5,55 5,58 5,5 5,67 5,53 5,53 5,52 5,64
Día 2 5,56 5,46 5,61 5,31 5,55 5,35 5,55 5,6 5,61 5,44 5,46 5,37 5,45
Día 3 5,4 5,36 5,33 5,51 5,44 5,36 5,28 5,5 5,29 5,42 5,3 5,32 5,35
Día 4 5,37 5,26 5,35 5,34 5,44 5,17 5,18 5,66 5,45 5,56 5,21 5,09 5,17
Día 5 5,1 5,01 5,33 5,17 5,19 4,89 5,01 5,11 4,94 4,87 5,02 5 5,01
Día 6 4,93 4,96 5,09 4,97 4,86 4,86 5 5 5,98 5,05 5,05 5,14 5,03
Día 7 5,14 4,97 5,02 5,04 5,16 4,96 5,15 5,17 5,32 5,13 4,98 4,92 4,95
Día 8 5,14 4,9 5,02 5,17 5,08 5,03 5 5,12 4,97 5,02 5,02 4,93 4,88
Reactor 11
Día 1 5,86 5,72 6,08 5,81 5,85 5,87 5,93 5,97 5,87 5,92 5,97
Día 2 6,05 5,84 6 5,78 5,8 5,94 5,99 5,95 5,86 5,82 6 5,83 5,9
Día 3 6 5,85 5,81 5,72 5,86 5,91 5,85 5,89 5,76 5,81 5,8 5,7 5,78
Día 4 5,71 5,63 5,75 5,75 5,69 5,62 5,71 5,79 5,79 5,71 5,61 5,68 5,55
Día 5 5,51 5,46 5,47 5,31 5,4 5,2 5,34 5,45 5,45 5,19 5,24 5,25 5,16
Día 6 5,17 5,3 5,34 5,16 5,08 5,15 5,2 5,21 5,16 5,07 5,11 5,03 5,05
Día 7 5,27 5,12 5,09 5,13 5,22 4,94 5,14 5,34 5,15 5,07 5,03 5 4,97
Día 8 5,04 5,09 5,01 5,13 5,2 5,04 5,04 5,15 5,1 5,04 5,02 4,96 5,06
Reactor 12
Día 1 5,65 5,84 5,86 5,68 5,64 5,77 5,69 5,72 5,68 5,93 5,72
Día 2 5,8 5,77 5,78 4,2 5,81 5,73 5,89 6 5,9 5,87 5,96 5,9 5,87
Día 3 5,62 5,86 5,87 5,84 5,89 5,94 5,86 6,1 5,99 5,92 5,97 5,95 6
Día 4 4,55 5,78 5,84 5,98 6,11 5,6 5,88 5,89 5,98 5,88 5,82 5,86 5,8
Día 5 5,65 5,55 5,59 5,65 5,71 5,52 5,63 5,76 5,76 5,66 5,67 5,55 5,52
Día 6 5,79 5,58 5,69 5,66 5,55 5,55 5,55 5,48 5,85 5,71 5,65 5,65 5,73
Día 7 5,46 5,58 5,51 5,56 5,62 5,57 5,66 5,65 5,58 5,49 5,5 5,46 5,11
Día 8 5,32 5,39 5,25 5,24 5,24 5,28 5,3 5,47 5,24 5,24 5,45 5,33 5,26
Reactor 14
Día 1 6,05 5,96 6,01 5,86 5,94 5,99 5,9 5,93 6,07 6,04 5,95
Día 2 5,97 6,04 6,03 5,7 5,96 5,94 6,04 6,05 5,96 6,03 6,08 5,71 6,13
Día 3 5,61 5,89 5,99 5,96 6,03 5,95 5,95 6,03 5,93 5,93 6,06 5,95 6
Día 4 5,54 5,77 5,84 5,76 5,67 5,74 5,66 5,81 6,04 5,74 5,78 5,77 5,71
Día 5 5,48 5,55 5,63 5,53 5,53 5,36 5,42 5,43 5,65 5,49 5,36 5,29 5,41
Día 6 5,44 5,35 5,41 5,32 5,37 5,3 5,2 5,34 5,63 5,35 5,32 5,31 5,26
109
6:00 7:00 8:00 9:00 10:00 11:00 12:00 13:00 14:00 15:00 16:00 17:00 18:00
Día 7 5,29 5,31 5,33 5,25 5,28 5,2 5,15 5,16 5,19 5,24 5,11 5,16 5,15
Día 8 5,13 5,13 5,05 5,13 4,97 4,96 4,97 5,05 5,24 5,39 5,16 5,05 5,06
Reactor 15
Día 1 5,77 5,58 5,83 5,69 5,74 5,86 5,85 5,79 5,88 5,87 5,85
Día 2 5,81 5,72 5,78 5,71 5,69 5,72 5,68 5,67 5,96 5,77 5,76 5,71 5,69
Día 3 5,46 5,53 5,65 5,58 5,57 5,54 5,57 5,89 5,64 5,63 5,63 5,71 5,63
Día 4 5,46 5,43 5,28 5,43 5,32 5,23 5,31 5,38 5,41 5,72 5,45 5,47 5,32
Día 5 5,09 5,3 5,28 5,2 5,04 5,02 5,03 5,28 5,19 5,16 4,99 5,1 5,05
Día 6 5,11 5,16 5,19 5,09 5,07 4,95 5,17 5,07 5,05 5,12 4,94 4,93 4,95
Día 7 5,08 5,06 5,2 5,07 5,1 4,95 5,06 5,15 4,98 4,91 5,07 4,9 5,02
Día 8 5,15 4,88 4,89 4,98 4,85 4,81 4,84 4,97 4,7 4,9 5,06 4,83 4,82
Reactor 16
Día 1 5,64 5,6 5,79 5,58 5,5 5,75 5,53 5,61 5,63 5,71 5,72
Día 2 5,67 5,55 5,75 6,01 5,67 5,65 5,64 5,63 5,57 5,7 5,65 5,62 5,78
Día 3 5,83 5,43 5,65 5,6 5,65 5,54 5,54 5,68 5,79 5,64 5,59 5,63 5,61
Día 4 5,81 5,49 5,55 5,65 5,63 5,36 5,53 5,48 5,48 5,55 5,49 5,46 5,53
Día 5 5,43 5,65 5,62 5,61 5,41 5,38 5,48 5,63 5,39 5,4 5,58 5,62 5,58
Día 6 5,57 5,67 5,53 5,52 5,57 5,6 5,54 5,72 5,49 5,49 5,49 5,45 5,45
Día 7 5,6 5,52 5,59 5,62 5,53 5,56 5,61 5,71 5,46 5,47 5,52 5,4 5,43
Día 8 5,55 5,48 5,56 5,45 5,36 5,51 5,39 5,43 5,28 5,32 5,5 5,31 5,4
Schoenoplectus californicus
6:00 7:00 8:00 9:00 10:00 11:00 12:00 13:00 14:00 15:00 16:00 17:00 18:00
É P O C A
S E C A
Reactor 1
Día 1 5,86 5,84 5,81 5,76 5,68 5,52 5,44 5,19 5,15 4,06 4,64 4,7 4,67
Día2 2,78 2,48 2,44 2,58 2,37 2,73 2,17 2,15 2,48 2,26 2,33 2,19 3,44
Día 3 2,61 2,71 3,24 2,77 2,78 2,36 2,22 2,2 2,72 2,75 2,54 2,77 2,69
Día 4 2,96 2,92 3,3 3,66 3,07 3,42 2,74 3,02 2,98 2,64 4,1 3,32 2,61
Día 5 2,8 2,72 2,98 3,04 3,38 3 2,51 2,59 2,69 3,11 2,54 2,44 2,87
Día 6 3,28 3,02 3,46 2,85 3,02 2,83 3,03 2,89 2,72 2,73 2,59 2,93 3,02
Día 7 3,12 3,43 3,54 3,02 3,08 3,1 3,03 2,5 3,49 3,36 3,54 2,99 3,33
Día 8 3,94 3,72 3,48 3,54 3,42 3,07 2,95 3,26 3,11 2,75 3,75 3,15 3,37
Reactor 2
Día 1 6,57 6,49 6,49 6,41 6,42 6,19 6,12 6,05 5,94 5,21 5,99 5,9 5,46
Día2 5 5,01 4,83 5,12 4,74 4,79 4,52 4,81 4,92 4,77 4,76 5,18 2,85
Día 3 4,82 4,78 4,79 4,88 4,94 4,61 4,76 4,58 4,56 4,53 4,49 4,39 4,64
Día 4 4,95 4,97 4,97 4,84 4,69 4,47 4,92 4,82 4,79 4,65 3,39 3,23 4,16
Día 5 3,67 3,81 3,51 3,92 3,75 3,74 3,51 3,9 3,36 3,26 3,41 3,84 3,68
Día 6 4 3,89 4,06 4,14 4,01 3,56 3,8 3,71 3,37 4,17 3,72 3,93 3,59
Día 7 4,05 4,41 4,41 4,12 3,91 4,2 3,76 3,8 4,16 4,11 4,16 3,61 3,86
Día 8 4 4,12 4,09 4,09 3,98 4,08 3,72 4,08 3,78 3,98 4,04 3,79 4,46
Reactor 3
Día 1 6,71 6,68 6,47 6,63 6,61 6,5 6,48 6,37 6,37 6,16 6,13 6,17 5,93
Día2 4,81 5,03 4,8 5 4,77 4,83 4,65 4,49 4,29 4,49 4,3 4,37 3,25
Día 3 4,49 4,23 4,67 4,46 4,49 4,24 4,4 4,26 4,28 4,16 4,22 4,44 4,62
Día 4 4,69 4,56 4,6 4,92 4,54 4,37 4,6 4,7 4,88 5,05 4,15 3,57 3,03
Día 5 3,94 4,03 4,13 4 4,15 3,86 4,28 3,69 3,66 3,85 3,95 3,96 3,93
110
6:00 7:00 8:00 9:00 10:00 11:00 12:00 13:00 14:00 15:00 16:00 17:00 18:00
Día 6 3,92 4,25 4,18 4,05 4,17 4,23 4,33 4,3 3,67 4,04 3,78 4,02 4,16
Día 7 4,2 4,42 4,61 4,35 4,66 4,33 4,22 4,15 3,99 4,26 4,18 4,2 4,48
Día 8 4,05 4,37 4,36 4,29 4,18 4,39 3,84 4,1 4,21 4,29 4,13 4,22 4,24
Reactor 4
Día 1 6,45 6,39 6,29 6,24 6,04 6,1 6,04 5,8 5,67 5,39 5,38 5,23 5,02
Día2 3,68 2,5 3,17 3,23 3,14 2,44 2,64 2,25 2,43 2,45 2,56 2,39 2,09
Día 3 3,25 3,17 3,32 3,06 2,95 2,91 3,23 2,94 3,23 3,05 3,52 3,18 3,51
Día 4 3,24 3,4 3,67 5,43 3,16 3,05 3,1 3,9 2,89 5,5 3,09 2,33 2,41
Día 5 3,28 3,16 3,3 3,14 3,09 3,46 2,9 2,94 2,65 2,72 3,09 3,09 3,02
Día 6 3,28 3,4 3,46 3,17 3,16 3,17 2,96 2,83 2,68 3,08 2,97 2,93 3,11
Día 7 3,66 3,67 3,57 3,66 5,48 3,48 3,6 3,41 3,66 3,76 3,44 3,42 3,52
Día 8 3,94 3,74 3,76 3,95 3,72 3,85 3,59 3,42 3,69 3,79 3,42 3,84 3,71
É P O C A L L U V I O S A
Reactor 8
Día 1 4,36 4,01 4,26 4,18 4,32 4,41 4,3 4,22 4,18
Día2 4,49 4,54 4,49 4,45 4,38 4,49 4,4 4,42 4,37 4,29 4,17 4,76 4,5
Día 3 4,67 4,6 4,57 4,56 4,55 4,55 4,47 4,35 4,2 4,19 4,09 4,25 4,3
Día 4 4,84 4,52 4,58 4,57 4,47 4,34 4,4 4,9 4,25 4,3 4,26 4,61 4,79
Día 5 4,78 4,82 3,84 4,52 4,48 4,89 4,48 4,19 4,33 4,15 4,29 4,27 3,92
Día 6 4,65 4,54 4,52 4,75 4,25 4,34 4,15 3,92 3,94 4,16 4,23 4,06 4,36
Día 7 4,59 4,56 4,64 4,52 4,34 4,29 4,3 4,07 4,11 4 4,28 4,07 4,05
Día 8 4,45 4,49 4,3 4,28 4,17 4,12 4,06 3,95 4,04 4 3,94 3,87 3,88
Reactor 11
Día 1 3,36 3,19 3,38 3,25 3,36 3,34 3,27 3,61 3,18
Día2 3,36 3,43 3,65 3,38 3,64 3,29 3,2 3,46 3,25 3,03 3,15 3,32 3,58
Día 3 3,6 3,54 3,57 3,78 3,37 3,6 3,43 3,26 3,52 3,41 3,72 2,97 2,97
Día 4 3,45 3,37 3,43 3,42 3,41 3,35 3,42 3,42 3,04 3,04 3,34 2,96 3,06
Día 5 3,29 3,46 3,25 3,29 3,06 2,97 3,05 2,95 3,21 2,53 3,49 3,01 2,73
Día 6 3,12 3,28 3,35 3,41 3,27 3,11 3,14 2,59 3,09 2,95 2,84 3,05 2,92
Día 7 3,29 3,33 3,29 3,27 3,33 3,15 3,02 3,32 3,44 2,87 2,51 3,12 2,99
Día 8 3,23 3,4 3,2 3,22 3,09 3,04 2,89 2,99 2,97 3,06 2,55 2,9 3,16
Typha domingensis
Reactor 6:00 7:00 8:00 9:00 10:00 11:00 12:00 13:00 14:00 15:00 16:00 17:00 18:00
É P O C A
S E C A
Reactor 1
Día 1 6,47 6,51 6,44 6,32 6,35 6,16 6,12 5,38 5,53 5,66 5,8 5,65 5,45
Día2 4,42 4,37 4,4 4,26 4,34 3,45 3,08 3,71 4,1 3,71 3,64 3,44 2,39
Día 3 4,2 4,68 4,3 4,16 4 4,05 4,06 4,55 4,49 4,28 4,4 4,06 4,38
Día 4 4,63 4,46 4,61 4,54 4,51 4,25 4,59 4,22 4,59 4,46 2,47 2,74 3,71
Día 5 3,52 3,77 3,8 3,18 3,62 3,38 3,43 3,66 2,55 3,41 3,2 3,2 3,54
Día 6 3,52 3,19 4,22 3,88 3,76 3,73 3,77 3,61 3,5 3,49 3,75 3,66 3,43
Día 7 4,4 4,43 4,02 3,44 3,87 4,2 3,74 4,22 4,02 4,15 3,3 3,85 3,77
Día 8 4,13 4,33 4,4 4,16 4,37 4,23 3,99 4,2 4,1 4,21 4,42 4,32 4,48
Reactor 2
Día 1 5,91 6,01 6,34 5,89 5,95 5,66 5,72 5,3 5,13 4,9 5,07 4,99 4,65
Día2 3,59 3,56 3,61 3,47 3,46 3,29 2,8 2,97 2,75 3,01 3,09 2,86 4,67
Día 3 3,91 3,78 3,85 3,82 3,83 4,33 3,57 4,28 3,35 3,48 3,98 3,73 3,63
Día 4 3,86 3,86 3,85 3,93 3,81 3,75 3,65 3,77 4,04 3,91 4,17 4,17 3,43
111
Reactor 6:00 7:00 8:00 9:00 10:00 11:00 12:00 13:00 14:00 15:00 16:00 17:00 18:00
Día 5 2,83 3,04 3,03 3,14 2,8 2,71 2,7 2,72 2,72 2,55 1,8 2,61 3,17
Día 6 3,15 2,98 3,08 2,91 2,82 2,82 3,08 3,06 2,44 2,47 2,52 2,92 2,29
Día 7 3,56 4,2 3,53 3,28 3,28 3,22 3,17 3,08 3,26 3,23 3,45 3,13 2,79
Día 8 3,79 3,7 3,78 3,7 3,38 3,42 3,35 3,29 3,38 3,26 3,16 3,31 3,23
Reactor 3
Día 1 6,29 6,16 6,06 5,75 5,71 5,81 5,57 5,5 5,1 4,44 5,13 5,16 4,94
Día2 3,88 3,61 3,67 3,79 3,54 2,23 3,64 3,46 3,32 3,37 3,13 3,32 4,26
Día 3 4,11 4,48 4,22 4,62 4,85 4,11 3,88 3,83 3,63 4,07 4,04 4,06 3,86
Día 4 4,66 4,35 4,49 4,31 4,14 4,31 4,31 4,13 4,5 3,82 3,87 4,04 4,04
Día 5 3,28 3,29 3,17 3,36 3,4 2,97 3,2 2,99 2,75 2,85 2,95 2,9 2,98
Día 6 3,13 3,49 3,8 3,57 3,25 3,25 3,23 3,33 2,86 2,9 3,02 2,94 3
Día 7 3,4 3,8 4,18 3,85 3,77 3,66 3,55 3,62 3,54 3,7 3,9 3,49 3,49
Día 8 4,03 4,17 4,17 4,2 3,91 3,97 4,02 3,55 3,73 3,83 3,85 3,79 3,26
Reactor 4
Día 1 5,69 5,29 5,39 5,01 4,78 4,93 4,42 4,04 4,06 3,79 3,8 3,7 3,21
Día2 1,96 1,84 1,97 2,06 1,97 2,11 1,93 2,08 2,21 2,09 1,99 2,13 2,53
Día 3 3,27 3,03 3,19 3,12 2,85 2,8 3,17 3,05 2,83 2,82 2,96 2,96 2,59
Día 4 3,28 3,14 3,6 3,31 3,03 3,02 3,29 3,2 3,43 3,16 2,51 2,87 2,87
Día 5 1,92 2,19 2,12 2,08 2,24 2,11 1,75 1,91 1,92 2,07 2,21 2,52 2,67
Día 6 3,44 2,72 2,74 2,86 2,27 2,22 2,57 3,33 2,86 2,73 2,62 2,44 2,42
Día 7 2,36 3,57 3,37 2,64 2,73 2,48 3,35 2,92 2,74 2,42 3,32 3,28 2,24
Día 8 2,8 2,93 2,87 2,8 2,58 2,49 2,76 2,81 2,58 2,72 3,32 2,84 3,26
É P O C A
L L U V I O S A
Reactor 5
Día 1 4,21 3,86 4,05 4,13 4,11 3,96 4,07 4,19 3,97
Día2 4,2 4,19 4,21 4,28 4,25 4,29 4,27 4,13 4,09 4,03 4,04 3,92 4,32
Día 3 4,49 4,52 5,02 4,36 4,38 4,23 4,36 4,49 4,27 4,23 4,27 4,05 4,23
Día 4 4,49 4,43 4,63 4,41 4,42 4,17 4,28 4,49 4,23 4,25 4,36 4,88 4,27
Día 5 4,53 4,66 4,7 4,39 4,38 4,37 4,59 4,15 4,1 3,99 4,22 4,15 3,92
Día 6 4,44 4,63 4,43 4,5 4,4 4,22 4,18 4,36 4,47 4,22 4,55 4,35 4,25
Día 7 3,71 4,4 4,37 4,68 4,28 4,35 4,42 4,13 4 4,3 3,94 3,91 4,22
Día 8 4,23 4,41 4,26 4,2 4,25 4,21 4,17 4,32 3,86 4,24 3,89 4,07 3,92
Reactor 8
Día 1 4,06 3,84 4,03 3,94 4 4,11 4,17 4,26 4,15
Día2 4,37 4,26 4,36 4,31 4,33 4,24 4,15 4,16 4,16 4,26 4,38 4,37 4,27
Día 3 4,49 4,44 4,56 4,5 4,35 4,44 4,27 4,41 4,26 4,27 4,32 4,15 4,25
Día 4 4,47 4,5 4,46 4,47 4,28 4,2 4,28 4,31 4,11 4,31 4,33 4,91 4,37
Día 5 4,56 4,49 4,57 4,49 4,09 4,08 4,18 4,13 4,27 4,11 4,13 4,32 4,18
Día 6 4,45 4,01 3,57 4,14 4,08 4,08 4,35 4,15 3,98 4,1 3,96 4,05 4,42
Día 7 4,36 4,26 4,32 4,14 4,03 4,05 4 3,98 4,05 3,46 3,85 4,03 3,72
Día 8 3,88 3,94 3,92 3,71 3,58 3,64 3,63 3,65 3,38 3,59 3,8 3,39 3,55
Reactor 11
Día 1 4,05 4,29 4,39 4,34 4,31 4,21 4,07 4,29 4,21
Día2 4,69 4,21 4,72 4,53 4,48 4,7 4,66 4,28 4,48 4,57 3,84 4,62 4,52
Día 3 4,35 4,75 4,83 4,69 4,46 4,71 4,69 4,69 4,64 4,67 4,53 4,39 4,63
Día 4 4,78 4,57 4,88 4,66 4,64 4,53 4,52 4,36 4,45 4,33 4,38 4,64 4,34
Día 5 4,92 4,71 4,85 4,59 4,54 4,39 4,32 4,2 4,51 3,64 4 4,18 4,59
Día 6 4,64 4,51 4,53 4,12 4,37 4,49 4,44 4,43 4,12 3,82 3,74 4,03 4,65
Día 7 4,48 4,35 4,43 4,3 4,27 4,23 4,19 4,01 4,1 3,96 3,81 4,02 3,86
112
Reactor 6:00 7:00 8:00 9:00 10:00 11:00 12:00 13:00 14:00 15:00 16:00 17:00 18:00
Día 8 4,14 3,87 3,8 3,87 4,03 3,67 3,92 3,67 3,95 3,81 3,4 3,43 3,69
Reactor 13
Día 1 3,48 3,15 3,34 3,68 3,05 3,19 3,35 3,35 3,18
Día2 4,12 4,02 3,78 3,53 3,58 4,04 3,73 3,42 3,57 3,61 3,64 3,83 3,51
Día 3 4,09 3,68 4,13 3,93 3,73 3,94 3,9 3,82 3,74 3,61 3,3 3,82 3,79
Día 4 4,01 4,09 4,11 3,8 3,99 3,9 3,86 3,97 3,86 3,69 3,82 3,86 4,02
Día 5 4,06 4,38 4,25 3,74 3,89 3,98 3,8 3,63 3,45 4,04 3,83 3,83 3,8
Día 6 3,78 3,87 3,84 3,63 3,79 3,75 3,77 3,78 3,79 3,61 3,84 3,62 3,54
Día 7 3,6 4,18 4,18 4,11 3,78 3,88 3,58 3,72 3,89 3,93 3,73 3,91 3,76
Día 8 3,72 3,68 3,62 3,78 3,23 3,58 3,38 3,5 3,29 3,54 3,33 3,68 3,6
Reactor 14
Día 1 3,33 3,8 2,57 3,4 3,09 3,1 2,63 2,3 5,08
Día2 3,8 3,26 3,42 3,59 3,46 2,87 3,47 3,13 3,35 2,91 3,21 3,09 3,46
Día 3 3,92 3,84 3,74 3,46 3,91 3,04 3,44 3,2 3,28 3,61 3,28 3,43 3,56
Día 4 3,59 3,92 3,83 3,66 3,63 3,74 3,47 3,73 3,62 3,47 4,07 2,95 3,46
Día 5 4,02 3,9 3,89 3,62 3,46 3,74 3,59 3,59 3,55 3,48 3,65 3,23 3,47
Día 6 3,31 3,59 3,78 3,51 3,24 3,48 3,56 3,25 3,32 3,29 3,42 3,45 3,71
Día 7 3,89 4,18 4,08 4,54 3,84 4,03 3,64 3,7 3,56 3,22 3,37 3,86 3,49
Día 8 4,1 4,05 4,06 3,63 3,85 3,52 3,79 3,46 3,03 3,26 3,48 3,21 3,42
113
ANEXO 3: ESTADÍSTICA DESCRIPTIVA PARA ÉPOCA SECA Y
LLUVIOSA
ÉPOCA SECA
Eichornia crassipes
Estadísticos descriptivos
114
N Rango Mínimo Máximo Media Desviación estándar Varianza
Estadístico Estadístico Estadístico Estadístico Estadístico Error
estándar Estadístico Estadístico am6 32 3,33 3,34 6,67 4,8709 ,14059 ,79531 ,633
am7 32 3,60 3,00 6,60 4,8834 ,13279 ,75119 ,564
am8 32 3,33 3,32 6,65 4,9194 ,13583 ,76836 ,590
am9 32 3,22 3,32 6,54 4,9222 ,14217 ,80425 ,647
am10 32 3,14 3,46 6,60 4,9328 ,13842 ,78304 ,613
am11 32 3,19 3,37 6,56 4,8866 ,13929 ,78797 ,621
pm12 32 3,11 3,38 6,49 4,8694 ,13512 ,76438 ,584
pm13 32 2,89 3,63 6,52 4,8856 ,12783 ,72313 ,523
pm14 32 2,84 3,59 6,43 4,8356 ,13061 ,73886 ,546
pm15 32 3,18 3,26 6,44 4,7781 ,13691 ,77446 ,600
pm16 32 4,17 2,21 6,38 4,6625 ,14692 ,83111 ,691
pm17 32 2,74 3,50 6,24 4,7916 ,13594 ,76901 ,591
pm18 32 2,91 3,42 6,33 4,7947 ,12779 ,72287 ,523
N válido (por lista) 32
Hora 6:00 7:00 8:00
9:00
10:00
11:00
12:00 13:00 14:00 15:00 16:00 17:00 18:0
0
Media + desviación estándar 5,67 5,63 5,69 5,73
5,72 5,67 5,63 5,61 5,57 5,55 5,49 5,56 5,52
Media - desviación estándar 4,08 4,13 4,15 4,12
4,15 4,1 4,1 4,16 4,1 4 3,83 4,02 4,07
6:00 7:00
8:00
9:00
10:00 11:00 12:0
0 13:0
0 14:0
0 15:0
0 16:0
0 17:0
0 18:0
0
Reactor 1
Día 1 3,34 3 3,32
3,32
3,72 3,67 3,75 3,65 3,59 3,73 3,68 3,58 3,82
Día 2 3,4 3,88
3,69
3,66
3,46 3,57 3,56 4,14 3,64 3,55 3,66 3,57 3,42
Día 3 3,58 3,82
3,58
3,41
3,57 3,37 3,38 3,63 3,65 3,67 3,45 3,5 3,71
Día 4 3,66 3,8 3,76
3,82
3,67 3,42 3,72 3,79 3,76 3,65 3,78 3,61 3,96
Día 5 3,83 4,15
5,57
4,31
3,99 4,14 3,95 3,91 3,6 3,9 4,12 3,81 3,61
Día 6 4,08 4,27
4,24
4,06
4,13 3,93 4,13 4,08 4,27 3,96 3,97 3,88 3,84
Día 7 4,19 4,6 4,45
4,63
4,5 4,7 4,53 4,51 4,49 4,75 4,66 4,57 4,61
Día 8 4,38 4,39
4,47
4,34
4,36 4,11 4,12 4,22 4,13 4,09 4,1 3,99 4,08
Reactor 2
Día 1 4,47 4,5 4,36
4,62
4,58 4,55 4,34 4,45 4,53 4,12 4,28 4,3 4,38
Día 2 4,65 4,1 4,41
4,33
4,12 4,17 4,24 4,06 4,05 4,38 4,05 4,08 4,13
Día 3 4,65 4,59
4,56
4,84
4,72 4,8 4,76 4,79 4,98 4,84 4,83 4,73 4,73
Día 4 4,66 4,66
4,56
4,41
5,08 4,98 4,5 4,91 4,65 3,26 4,34 4,5 4,35
Día 5 4,73 4,63
4,85
4,94
5,03 4,86 4,85 4,82 4,66 4,87 5,1 4,84 5
Día 6 4,74 4,69
5,12
4,73
4,73 4,71 4,75 4,45 4,79 4,86 4,47 4,45 4,54
Día 7 4,78 4,98
5,21
4,92
5,07 5,12 5,06 5,12 4,97 5,05 4,84 4,86 5,06
Día 8 4,93 5,04
5,12
4,93
5,03 5,47 5,29 4,98 4,85 4,86 4,88 5,13 4,89
Reactor Día 1 4,99 5,2 5,1 5,2 5,35 5,2 5,18 5,21 5,31 5,25 5,53 5,14 5,24
115
3 1 7 6
Día 2 5,04 5 5,15
5,14
5,09 5,11 4,99 5,18 5,2 5,07 5 4,99 5,17
Día 3 5,07 4,74
4,9 4,9 4,97 4,8 4,84 4,86 4,78 4,85 4,84 4,99 4,84
Día 4 5,08 4,79
4,71
4,84
4,77 4,73 4,91 4,86 4,93 4,65 4,57 4,86 4,7
Día 5 5,08 5,13
5,26
5,1 5,11 5,06 5,16 5,23 5,32 5,03 4,93 4,98 4,94
Día 6 5,08 5,34
5,4 5,31
5,29 5,23 5,4 5,32 5,16 5,2 5,07 5,22 5,2
Día 7 5,41 5,42
5,35
5,48
5,51 5,4 5,34 5,41 5,38 5,48 5,42 5,39 5,48
Día 8 5,45 5,45
5,51
5,43
5,52 5,48 5,49 5,54 5,37 5,5 5,33 5,5 5,52
Reactor 4
Día 1 5,45 5,28
4,07
5,33
5,44 5,43 5,47 5,25 5,56 5,43 5,36 5,35 5,29
Día 2 5,46 5,49
5,31
5,37
5,3 5,15 5,04 5,02 4,79 4,94 4,88 4,64 4,87
Día 3 5,61 5,59
5,57
5,57
5,65 5,58 5,67 5,73 5,55 5,54 2,21 5,51 5,53
Día 4 5,71 5,78
5,32
5,23
5,44 5,26 5,2 5,14 4,92 4,76 4,45 6,24 5,25
Día 5 5,8 5,5 5,6 5,72
5,61 5,54 5,51 5,4 5,4 5,47 5,41 5,28 5,2
Día 6 5,92 5,85
5,88
6,54
5,94 5,88 5,79 5,85 5,77 5,48 5,44 5,52 5,51
Día 7 5,98 6 6,3 6,54
6,6 6,56 6,49 6,52 6,43 6,44 6,38 6,17 6,33
Día 8 6,67 6,6 6,65
6,48
6,5 6,39 6,41 6,31 6,26 6,27 6,17 6,15 6,23
Estadísticos descriptivos
N Rango Mínimo Máximo Media Desviación estándar Varianza
Estadístico Estadístico Estadístico Estadístico Estadístico Error
estándar Estadístico Estadístico am6 22 1,53 4,08 5,61 4,9082 ,08972 ,42085 ,177
am7 23 1,44 4,15 5,59 4,9322 ,08929 ,42822 ,183
am8 24 1,36 4,24 5,60 5,0071 ,08892 ,43560 ,190
am9 24 1,41 4,31 5,72 4,9867 ,08390 ,41101 ,169
am10 24 1,53 4,12 5,65 5,0167 ,09137 ,44760 ,200
am11 24 1,47 4,11 5,58 4,9825 ,08928 ,43739 ,191
pm12 21 1,27 4,24 5,51 4,9929 ,08228 ,37706 ,142
pm13 22 1,40 4,14 5,54 4,9459 ,08324 ,39044 ,152
pm14 23 1,43 4,13 5,56 4,9561 ,08266 ,39645 ,157
pm15 23 1,45 4,09 5,54 4,9770 ,08716 ,41801 ,175
pm16 24 1,47 3,97 5,44 4,7642 ,09476 ,46420 ,215
pm17 22 1,44 4,08 5,52 4,9468 ,08701 ,40812 ,167
pm18 23 1,44 4,08 5,52 4,9122 ,08774 ,42078 ,177
N válido (por lista) 15
116
Hora C
6:00 4,91
7:00 4,93
8:00 5,01
9:00 4,99
10:00 5,02
11:00 4,98
12:00 4,99
13:00 4,95
14:00 4,96
15:00 4,98
16:00 4,76
17:00 4,95
18:00 4,91
Cmedia= 4,95mg/l
Myriophyllum aquaticum
Estadísticos descriptivos
N Rango Mínimo Máximo Media Desviación estándar Varianza
Estadístico Estadístico Estadístico Estadístico Estadístico Error
estándar Estadístico Estadístico HORA6 32 3,13 3,94 7,07 5,3022 ,15080 ,85307 ,728
HORA7 32 2,93 4,22 7,15 5,2881 ,14696 ,83134 ,691
HORA8 32 3,40 3,69 7,09 5,2003 ,14597 ,82571 ,682
HORA9 32 3,41 3,66 7,07 5,1075 ,15054 ,85159 ,725
HORA10 32 3,44 3,64 7,08 5,0753 ,15323 ,86680 ,751
HORA11 32 3,40 3,69 7,09 5,0125 ,15666 ,88620 ,785
HORA12 32 3,14 3,91 7,05 5,0431 ,15317 ,86647 ,751
HORA13 32 4,71 2,18 6,89 4,9638 ,16300 ,92206 ,850
HORA14 32 3,13 3,93 7,06 5,0631 ,14483 ,81930 ,671
HORA15 32 3,65 3,33 6,98 4,9841 ,15145 ,85672 ,734
HORA16 32 4,97 1,99 6,96 4,8147 ,17713 1,00201 1,004
HORA17 32 4,38 2,63 7,01 4,9278 ,16434 ,92966 ,864
HORA18 32 4,38 2,56 6,94 4,9000 ,14941 ,84518 ,714
N válido (por lista) 32
Hora 6:00 7:00 8:00 9:00 10:00 11:00 12:00 13:00 14:00 15:00 16:00 17:00 18:00
Media + desviación estándar 6,16 6,12 6,03 5,96 5,94 5,9 5,91 5,89 5,88 5,84 5,82 5,86 5,75
Media - desviación estándar 4,45 4,46 4,37 4,26 4,21 4,13 4,18 4,04 4,24 4,13 3,81 4 4,05
6:00 7:00 8:00 9:00 10:00 11:00 12:00 13:00 14:00 15:00 16:00 17:00 18:00
4,60
4,65
4,70
4,75
4,80
4,85
4,90
4,95
5,00
5,05
Co
nce
ntr
aci
ón
OD
(m
g/l
)
Concentración de OD vs Tiempo
C
Cmedia
117
6:00 7:00 8:00 9:00 10:00 11:00 12:00 13:00 14:00 15:00 16:00 17:00 18:00
Reactor 1
Día 1 7,06 7,1 6,78 6,56 6,96 6,93 6,94 6,87 6,7 6,77 6,43 6,24 6,47
Día 2 5,89 5,51 4,68 4,88 5,12 4,54 4,61 4,85 4,84 3,33 3,61 4,37 4,06
Día 3 3,95 4,24 4,33 4,27 4,41 4,42 4,33 4,48 4,62 4,29 4,42 4,39 4,64
Día 4 4,8 5,23 4,73 4,75 4,69 4,69 4,74 4,67 4,68 4,62 4,66 4,82 4,53
Día 5 5,28 5,54 5,31 5,35 5,32 5,09 5,15 5,3 5,17 5,16 5,24 5,15 5,03
Día 6 5,07 5,14 5,32 4,89 4,83 4,97 4,92 4,79 4,82 4,91 4,99 4,95 5,02
Día 7 5,17 5,27 5,08 5,17 5,18 5,03 5,02 4,95 5,06 4,95 4,97 5 5,06
Día 8 5,43 4,97 5,1 5,23 5,02 4,92 4,96 4,95 5,26 5,05 4,99 5,2 5,16
Reactor 2
Día 1 6,93 7,1 7,04 6,85 6,88 6,98 6,8 6,89 6,8 6,76 6,66 6,69 6,53
Día 2 5,83 5,78 5,61 5,66 5,4 5 5,04 4,92 5,09 4,97 4,16 4,48 4,46
Día 3 4,37 4,51 4,54 4,35 4,46 4,3 4,37 4,36 4,51 4,65 4,54 4,31 4,52
Día 4 4,7 4,99 4,97 4,82 4,72 4,51 4,88 4,7 4,9 4,84 4,93 4,47 4,63
Día 5 5,11 5 4,83 4,78 4,76 4,84 4,9 4,8 4,79 4,87 4,87 4,79 4,93
Día 6 4,64 4,59 4,73 4,47 4,49 4,4 4,47 4,8 4,8 4,81 4,14 4,58 4,31
Día 7 4,49 4,78 5,14 4,6 4,69 4,33 4,25 4,39 4,57 4,37 4,53 4,34 4,34
Día 8 4,62 4,46 4,63 4,58 4,4 4,34 4,3 4,25 4,4 4,43 4,57 4,26 4,55
Reactor 3
Día 1 6,72 6,63 6,4 6,44 6,67 6,68 6,62 6,51 6,34 6,02 6,46 6,13 5,46
Día 2 5,37 5,28 3,69 4,1 4,16 4,14 3,99 2,18 4,24 4,3 3,13 2,63 2,56
Día 3 3,94 4,22 3,91 3,66 3,64 3,69 3,91 3,96 3,93 4 3,79 4,2 3,51
Día 4 4,61 4,56 4,73 4,06 3,97 3,99 3,99 4,03 4,08 3,6 4,46 3,07 4,62
Día 5 5,07 5,04 4,69 4,52 4,55 4,78 4,55 4,46 4,5 4,51 4,33 4,57 4,71
Día 6 4,85 4,69 4,65 4,62 4,35 4,4 4,58 4,54 4,42 4,49 4,75 4,38 4,38
Día 7 4,86 4,48 4,89 4,74 4,66 4,47 4,38 4,43 4,53 4,5 4,47 4,78 4,36
Día 8 4,79 4,74 4,75 4,79 4,7 4,48 4,56 4,59 4,17 4,52 4,37 4,69 4,65
Reactor 4
Día 1 7,07 7,15 7,09 7,07 7,08 7,09 7,05 6,05 7,06 6,98 6,96 7,01 6,94
Día 2 6,76 6,62 6,44 6,58 6,19 5,86 6,25 6,23 6,53 6,35 1,99 6,39 5,72
Día 3 4,7 4,59 4,78 4,39 4,45 4,39 4,58 4,6 4,41 4,69 4,48 4,57 4,85
Día 4 5,07 5,12 5 4,93 4,83 4,91 5,19 5,17 5,17 5 5,03 4,93 4,82
Día 5 5,51 5,04 5,49 5,47 5,33 5,58 5,47 5,31 5,48 5,48 5,52 5,64 5,51
Día 6 5,76 5,72 5,75 5,76 5,54 5,67 5,66 5,64 5,31 5,39 5,58 5,61 5,65
Día 7 5,6 5,75 5,68 5,52 5,48 5,62 5,4 5,69 5,5 5,6 5,55 5,54 5,28
Día 8 5,65 5,38 5,65 5,58 5,48 5,36 5,52 5,48 5,34 5,28 5,49 5,51 5,54
Estadísticos descriptivos
N Rango Mínimo Máximo Media Desviación estándar Varianza
Estadístico Estadístico Estadístico Estadístico Estadístico Error
estándar Estadístico Estadístico HORA6 24 1,40 4,49 5,89 5,1196 ,08729 ,42765 ,183
HORA7 25 1,32 4,46 5,78 5,0464 ,08284 ,41422 ,172
HORA8 24 1,21 4,54 5,75 5,0304 ,07747 ,37952 ,144
HORA9 24 1,49 4,27 5,76 4,9217 ,09033 ,44252 ,196
118
HORA10 24 1,19 4,35 5,54 4,8692 ,08007 ,39226 ,154
HORA11 26 1,72 4,14 5,86 4,8092 ,09473 ,48302 ,233
HORA12 24 1,41 4,25 5,66 4,8263 ,08499 ,41638 ,173
HORA13 24 1,44 4,25 5,69 4,8383 ,08331 ,40815 ,167
HORA14 23 1,10 4,40 5,50 4,8770 ,07466 ,35804 ,128
HORA15 24 1,31 4,29 5,60 4,8200 ,07639 ,37422 ,140
HORA16 24 1,44 4,14 5,58 4,7933 ,09000 ,44092 ,194
HORA17 25 1,44 4,20 5,64 4,7812 ,08923 ,44617 ,199
HORA18 27 1,66 4,06 5,72 4,8441 ,08745 ,45441 ,206
N válido (por lista) 20 4,8905
Hora 6:00 7:00 8:00 9:00 10:00 11:00 12:00 13:00 14:00 15:00 16:00 17:00 18:00 C medio
C 5,12 5,05 5,03 4,92 4,87 4,81 4,83 4,84 4,88 4,82 4,79 4,78 4,84 4,89
Myriophyllum Aquaticum – Época Seca
Schoenoplectus californicus
Estadísticos descriptivos
N Rango Mínimo Máximo Media
Desviación
estándar Varianza Asimetría Curtosis
Estadístico
Estadístico
Estadístico
Estadístico
Estadístico
Error estánd
ar Estadísti
co Estadísti
co Estadísti
co
Error estánd
ar Estadísti
co
Error estánd
ar HORA6
32 4,10 2,61 6,71 4,1250 ,19224 1,08745 1,183 1,003 ,414 ,540 ,809
HORA7
32 4,20 2,48 6,68 4,1038 ,19935 1,12771 1,272 ,743 ,414 ,120 ,809
HORA8
32 4,05 2,44 6,49 4,1800 ,17977 1,01692 1,034 ,872 ,414 ,349 ,809
HORA9
32 4,05 2,58 6,63 4,1975 ,19253 1,08911 1,186 ,630 ,414 -,260 ,809
HORA10
32 4,24 2,37 6,61 4,1109 ,19252 1,08908 1,186 ,689 ,414 -,142 ,809
HORA11
32 4,14 2,36 6,50 3,9650 ,18770 1,06179 1,127 ,760 ,414 ,212 ,809
HORA12
32 4,31 2,17 6,48 3,8769 ,19800 1,12006 1,255 ,640 ,414 -,096 ,809
HORA13
32 4,22 2,15 6,37 3,8469 ,19459 1,10074 1,212 ,458 ,414 -,204 ,809
4,6
4,7
4,8
4,9
5
5,1
5,2
6:0
0
7:0
0
8:0
0
9:0
0
10
:00
11
:00
12
:00
13
:00
14
:00
15
:00
16
:00
17
:00
18
:00C
on
cen
tra
ció
n d
e O
D (
mg
/L)
Tiempo (horas)
C
C media
119
HORA14
32 3,94 2,43 6,37 3,8272 ,18478 1,04525 1,093 ,715 ,414 -,116 ,809
HORA15
32 3,90 2,26 6,16 3,8869 ,17403 ,98445 ,969 ,280 ,414 -,522 ,809
HORA16
32 3,80 2,33 6,13 3,8219 ,16405 ,92798 ,861 ,653 ,414 ,612 ,809
HORA17
32 3,98 2,19 6,17 3,7413 ,17422 ,98554 ,971 ,652 ,414 ,246 ,809
HORA18
32 3,84 2,09 5,93 3,7103 ,15765 ,89180 ,795 ,519 ,414 ,025 ,809
N válido (por lista)
32
Hora 6:00 7:00 8:00 9:00 10:00 11:00 12:00 13:00 14:00 15:00 16:00 17:00 18:00
Media - desviación 3,04 2,98 3,16 3,11 3,02 2,9 2,76 2,75 2,78 2,9 2,89 2,76 2,82
Media + desviación 5,21 5,23 5,2 5,29 5,2 5,03 5 4,95 4,87 4,87 4,75 4,73 4,6
Reactor 6:00 7:00 8:00 9:00 10:00 11:00 12:00 13:00 14:00 15:00 16:00 17:00 18:00
Reactor 1
Día 1 5,86 5,84 5,81 5,76 5,68 5,52 5,44 5,19 5,15 4,06 4,64 4,7 4,67
Día2 2,78 2,48 2,44 2,58 2,37 2,73 2,17 2,15 2,48 2,26 2,33 2,19 3,44
Día 3 2,61 2,71 3,24 2,77 2,78 2,36 2,22 2,2 2,72 2,75 2,54 2,77 2,69
Día 4 2,96 2,92 3,3 3,66 3,07 3,42 2,74 3,02 2,98 2,64 4,1 3,32 2,61
Día 5 2,8 2,72 2,98 3,04 3,38 3 2,51 2,59 2,69 3,11 2,54 2,44 2,87
Día 6 3,28 3,02 3,46 2,85 3,02 2,83 3,03 2,89 2,72 2,73 2,59 2,93 3,02
Día 7 3,12 3,43 3,54 3,02 3,08 3,1 3,03 2,5 3,49 3,36 3,54 2,99 3,33
Día 8 3,94 3,72 3,48 3,54 3,42 3,07 2,95 3,26 3,11 2,75 3,75 3,15 3,37
Reactor 2
Día 1 6,57 6,49 6,49 6,41 6,42 6,19 6,12 6,05 5,94 5,21 5,99 5,9 5,46
Día2 5 5,01 4,83 5,12 4,74 4,79 4,52 4,81 4,92 4,77 4,76 5,18 2,85
Día 3 4,82 4,78 4,79 4,88 4,94 4,61 4,76 4,58 4,56 4,53 4,49 4,39 4,64
Día 4 4,95 4,97 4,97 4,84 4,69 4,47 4,92 4,82 4,79 4,65 3,39 3,23 4,16
Día 5 3,67 3,81 3,51 3,92 3,75 3,74 3,51 3,9 3,36 3,26 3,41 3,84 3,68
Día 6 4 3,89 4,06 4,14 4,01 3,56 3,8 3,71 3,37 4,17 3,72 3,93 3,59
Día 7 4,05 4,41 4,41 4,12 3,91 4,2 3,76 3,8 4,16 4,11 4,16 3,61 3,86
Día 8 4 4,12 4,09 4,09 3,98 4,08 3,72 4,08 3,78 3,98 4,04 3,79 4,46
Reactor 3
Día 1 6,71 6,68 6,47 6,63 6,61 6,5 6,48 6,37 6,37 6,16 6,13 6,17 5,93
Día2 4,81 5,03 4,8 5 4,77 4,83 4,65 4,49 4,29 4,49 4,3 4,37 3,25
Día 3 4,49 4,23 4,67 4,46 4,49 4,24 4,4 4,26 4,28 4,16 4,22 4,44 4,62
Día 4 4,69 4,56 4,6 4,92 4,54 4,37 4,6 4,7 4,88 5,05 4,15 3,57 3,03
Día 5 3,94 4,03 4,13 4 4,15 3,86 4,28 3,69 3,66 3,85 3,95 3,96 3,93
Día 6 3,92 4,25 4,18 4,05 4,17 4,23 4,33 4,3 3,67 4,04 3,78 4,02 4,16
Día 7 4,2 4,42 4,61 4,35 4,66 4,33 4,22 4,15 3,99 4,26 4,18 4,2 4,48
Día 8 4,05 4,37 4,36 4,29 4,18 4,39 3,84 4,1 4,21 4,29 4,13 4,22 4,24
Reactor 4
Día 1 6,45 6,39 6,29 6,24 6,04 6,1 6,04 5,8 5,67 5,39 5,38 5,23 5,02
Día2 3,68 2,5 3,17 3,23 3,14 2,44 2,64 2,25 2,43 2,45 2,56 2,39 2,09
Día 3 3,25 3,17 3,32 3,06 2,95 2,91 3,23 2,94 3,23 3,05 3,52 3,18 3,51
Día 4 3,24 3,4 3,67 5,43 3,16 3,05 3,1 3,9 2,89 5,5 3,09 2,33 2,41
Día 5 3,28 3,16 3,3 3,14 3,09 3,46 2,9 2,94 2,65 2,72 3,09 3,09 3,02
Día 6 3,28 3,4 3,46 3,17 3,16 3,17 2,96 2,83 2,68 3,08 2,97 2,93 3,11
120
Reactor 6:00 7:00 8:00 9:00 10:00 11:00 12:00 13:00 14:00 15:00 16:00 17:00 18:00
Día 7 3,66 3,67 3,57 3,66 5,48 3,48 3,6 3,41 3,66 3,76 3,44 3,42 3,52
Día 8 3,94 3,74 3,76 3,95 3,72 3,85 3,59 3,42 3,69 3,79 3,42 3,84 3,71
Estadísticos descriptivos
N Rango Mínimo Máximo Media Desviación estándar Varianza
Estadístico Estadístico Estadístico Estadístico Estadístico Error
estándar Estadístico Estadístico HORA6 24 1,88 3,12 5,00 3,9692 ,11874 ,58172 ,338
HORA7 23 2,01 3,02 5,03 4,0257 ,12764 ,61214 ,375
HORA8 26 1,80 3,17 4,97 3,9723 ,11622 ,59260 ,351
HORA9 21 1,98 3,14 5,12 4,1205 ,13104 ,60050 ,361
HORA10 24 1,92 3,02 4,94 3,8842 ,13290 ,65109 ,424
HORA11 24 1,92 2,91 4,83 3,8421 ,12423 ,60858 ,370
HORA12 23 2,02 2,90 4,92 3,8130 ,13715 ,65773 ,433
HORA13 23 1,99 2,83 4,82 3,8261 ,13467 ,64585 ,417
HORA14 19 1,90 2,89 4,79 3,7458 ,12272 ,53494 ,286
HORA15 20 1,72 3,05 4,77 3,9385 ,11818 ,52851 ,279
HORA16 23 1,67 2,97 4,64 3,8035 ,09668 ,46368 ,215
HORA17 24 1,93 2,77 4,70 3,6621 ,11419 ,55939 ,313
HORA18 22 1,63 2,85 4,48 3,5723 ,10762 ,50477 ,255
N válido (por lista) 11
HORA 6:00 7:00 8:00 9:00 10:00 11:00 12:00 13:00 14:00 15:00 16:00 17:00 18:00 Cmedio
C (mg/L) 3,97 4,03 3,97 4,12 3,88 3,84 3,81 3,83 3,75 3,94 3,8 3,66 3,57 3,86
121
Typha domingensis
Estadísticos descriptivos
N Rango Mínimo Máximo Media Desviación estándar Varianza
Estadístico Estadístico Estadístico Estadístico Estadístico Error
estándar Estadístico Estadístico HORA6 32 4,55 1,92 6,47 3,8559 ,19324 1,09311 1,195
HORA7 32 4,67 1,84 6,51 3,9041 ,18641 1,05450 1,112
HORA8 32 4,47 1,97 6,44 3,9459 ,18392 1,04042 1,082
HORA9 32 4,26 2,06 6,32 3,7941 ,17510 ,99054 ,981
HORA10 32 4,38 1,97 6,35 3,7241 ,18318 1,03621 1,074
HORA11 32 4,05 2,11 6,16 3,5975 ,18583 1,05122 1,105
HORA12 32 4,37 1,75 6,12 3,6081 ,16932 ,95782 ,917
HORA13 32 3,59 1,91 5,50 3,6178 ,14827 ,83877 ,704
HORA14 32 3,61 1,92 5,53 3,5003 ,15849 ,89653 ,804
HORA15 32 3,59 2,07 5,66 3,4675 ,14524 ,82159 ,675
HORA16 32 4,00 1,80 5,80 3,4638 ,16077 ,90947 ,827
HORA17 32 3,52 2,13 5,65 3,4713 ,14255 ,80640 ,650
HORA18 32 3,21 2,24 5,45 3,4572 ,14584 ,82498 ,681
N válido (por lista) 32
Hora 6:00 7:00 8:00 9:00 10:00 11:00 12:00 13:00 14:00 15:00 16:00 17:00 18:00
Media + Desviación 4,95 4,96 4,99 4,78 4,76 4,65 4,57 4,46 4,4 4,29 4,37 4,28 4,28
Media-desviación 2,76 2,85 2,91 2,8 2,69 2,55 2,65 2,78 2,6 2,65 2,55 2,66 2,63
Reactor Día 6:00 7:00 8:00 9:00 10:00 11:00 12:00 13:00 14:00 15:00 16:00 17:00 18:00
REACTOR 1 Día 1 6,47 6,51 6,44 6,32 6,35 6,16 6,12 5,38 5,53 5,66 5,8 5,65 5,45
3,203,303,403,503,603,703,803,904,004,104,20
6:0
0
7:0
0
8:0
0
9:0
0
10
:00
11
:00
12
:00
13
:00
14
:00
15
:00
16
:00
17
:00
18
:00
Co
nce
ntr
aci
ón
de
OD
(m
g/L
)
Tiempo (horas)
C
C medio
122
Reactor Día 6:00 7:00 8:00 9:00 10:00 11:00 12:00 13:00 14:00 15:00 16:00 17:00 18:00
Día 2 4,42 4,37 4,4 4,26 4,34 3,45 3,08 3,71 4,1 3,71 3,64 3,44 2,39
Día 3 4,2 4,68 4,3 4,16 4 4,05 4,06 4,55 4,49 4,28 4,4 4,06 4,38
Día 4 4,63 4,46 4,61 4,54 4,51 4,25 4,59 4,22 4,59 4,46 2,47 2,74 3,71
Día 5 3,52 3,77 3,8 3,18 3,62 3,38 3,43 3,66 2,55 3,41 3,2 3,2 3,54
Día 6 3,52 3,19 4,22 3,88 3,76 3,73 3,77 3,61 3,5 3,49 3,75 3,66 3,43
Día 7 4,4 4,43 4,02 3,44 3,87 4,2 3,74 4,22 4,02 4,15 3,3 3,85 3,77
Día 8 4,13 4,33 4,4 4,16 4,37 4,23 3,99 4,2 4,1 4,21 4,42 4,32 4,48
REACTOR 2
Día 1 5,91 6,01 6,34 5,89 5,95 5,66 5,72 5,3 5,13 4,9 5,07 4,99 4,65
Día 2 3,59 3,56 3,61 3,47 3,46 3,29 2,8 2,97 2,75 3,01 3,09 2,86 4,67
Día 3 3,91 3,78 3,85 3,82 3,83 4,33 3,57 4,28 3,35 3,48 3,98 3,73 3,63
Día 4 3,86 3,86 3,85 3,93 3,81 3,75 3,65 3,77 4,04 3,91 4,17 4,17 3,43
Día 5 2,83 3,04 3,03 3,14 2,8 2,71 2,7 2,72 2,72 2,55 1,8 2,61 3,17
Día 6 3,15 2,98 3,08 2,91 2,82 2,82 3,08 3,06 2,44 2,47 2,52 2,92 2,29
Día 7 3,56 4,2 3,53 3,28 3,28 3,22 3,17 3,08 3,26 3,23 3,45 3,13 2,79
Día 8 3,79 3,7 3,78 3,7 3,38 3,42 3,35 3,29 3,38 3,26 3,16 3,31 3,23
REACTOR 3
Día 1 6,29 6,16 6,06 5,75 5,71 5,81 5,57 5,5 5,1 4,44 5,13 5,16 4,94
Día 2 3,88 3,61 3,67 3,79 3,54 2,23 3,64 3,46 3,32 3,37 3,13 3,32 4,26
Día 3 4,11 4,48 4,22 4,62 4,85 4,11 3,88 3,83 3,63 4,07 4,04 4,06 3,86
Día 4 4,66 4,35 4,49 4,31 4,14 4,31 4,31 4,13 4,5 3,82 3,87 4,04 4,04
Día 5 3,28 3,29 3,17 3,36 3,4 2,97 3,2 2,99 2,75 2,85 2,95 2,9 2,98
Día 6 3,13 3,49 3,8 3,57 3,25 3,25 3,23 3,33 2,86 2,9 3,02 2,94 3
Día 7 3,4 3,8 4,18 3,85 3,77 3,66 3,55 3,62 3,54 3,7 3,9 3,49 3,49
Día 8 4,03 4,17 4,17 4,2 3,91 3,97 4,02 3,55 3,73 3,83 3,85 3,79 3,26
REACTOR 4
Día 1 5,69 5,29 5,39 5,01 4,78 4,93 4,42 4,04 4,06 3,79 3,8 3,7 3,21
Día 2 1,96 1,84 1,97 2,06 1,97 2,11 1,93 2,08 2,21 2,09 1,99 2,13 2,53
Día 3 3,27 3,03 3,19 3,12 2,85 2,8 3,17 3,05 2,83 2,82 2,96 2,96 2,59
Día 4 3,28 3,14 3,6 3,31 3,03 3,02 3,29 3,2 3,43 3,16 2,51 2,87 2,87
Día 5 1,92 2,19 2,12 2,08 2,24 2,11 1,75 1,91 1,92 2,07 2,21 2,52 2,67
Día 6 3,44 2,72 2,74 2,86 2,27 2,22 2,57 3,33 2,86 2,73 2,62 2,44 2,42
Día 7 2,36 3,57 3,37 2,64 2,73 2,48 3,35 2,92 2,74 2,42 3,32 3,28 2,24
Día 8 2,8 2,93 2,87 2,8 2,58 2,49 2,76 2,81 2,58 2,72 3,32 2,84 3,26
Estadísticos descriptivos
N Rango Mínimo Máximo Media Desviación estándar Varianza
Estadístico Estadístico Estadístico Estadístico Estadístico Error
estándar Estadístico Estadístico HORA6 25 1,86 2,80 4,66 3,7116 ,10488 ,52439 ,275
HORA7 25 1,75 2,93 4,68 3,7684 ,10935 ,54676 ,299
HORA8 24 1,58 3,03 4,61 3,8475 ,09486 ,46471 ,216
HORA9 25 1,82 2,80 4,62 3,6664 ,10531 ,52657 ,277
HORA10 23 1,78 2,73 4,51 3,5857 ,10858 ,52073 ,271
123
HORA11 22 1,62 2,71 4,33 3,5873 ,11486 ,53876 ,290
HORA12 25 1,72 2,70 4,42 3,4884 ,09267 ,46335 ,215
HORA13 25 1,47 2,81 4,28 3,5332 ,09306 ,46530 ,217
HORA14 21 1,38 2,72 4,10 3,3795 ,10990 ,50364 ,254
HORA15 23 1,56 2,72 4,28 3,4739 ,10282 ,49312 ,243
HORA16 21 1,55 2,62 4,17 3,4533 ,09428 ,43206 ,187
HORA17 24 1,43 2,74 4,17 3,3858 ,09372 ,45915 ,211
HORA18 20 1,59 2,67 4,26 3,3800 ,09386 ,41975 ,176
N válido (por lista) 10
HORA 6:00 7:00 8:00 9:00 10:00 11:00 12:00 13:00 14:00 15:00 16:00 17:00 18:00 C medio
C (mg/L) 3,71 3,77 3,85 3,67 3,59 3,59 3,49 3,53 3,38 3,47 3,45 3,39 3,38 3,56
ÈPOCA LLUVIOSA
Schoenoplectus californicus
Estadísticos descriptivos
N Rango Mínimo Máximo Media Desviación estándar Varianza
Estadístico Estadístico Estadístico Estadístico Estadístico Error
estándar Estadístico Estadístico HORA6 14 1,72 3,12 4,84 3,9864 ,18488 ,69177 ,479
HORA7 14 1,54 3,28 4,82 3,9914 ,16560 ,61961 ,384
HORA8 14 1,44 3,20 4,64 3,9057 ,15431 ,57739 ,333
HORA9 14 1,53 3,22 4,75 3,9586 ,16174 ,60519 ,366
3,10
3,20
3,30
3,40
3,50
3,60
3,70
3,80
3,90
6:00 7:00 8:00 9:00 10:0011:0012:0013:0014:0015:0016:0017:0018:00
Co
nce
ntr
aci
ón
de
OD
(m
g/L
)
Concentración de OD vs Tiempo
124
HORA10 16 1,49 3,06 4,55 3,8456 ,14188 ,56752 ,322
HORA11 16 1,92 2,97 4,89 3,7956 ,16119 ,64477 ,416
HORA12 16 1,59 2,89 4,48 3,7531 ,15138 ,60554 ,367
HORA13 16 2,31 2,59 4,90 3,7013 ,15909 ,63636 ,405
HORA14 16 1,40 2,97 4,37 3,7150 ,13101 ,52404 ,275
HORA15 16 1,88 2,53 4,41 3,6081 ,15863 ,63453 ,403
HORA16 16 1,79 2,51 4,30 3,6519 ,16037 ,64147 ,411
HORA17 16 1,86 2,90 4,76 3,6906 ,16139 ,64557 ,417
HORA18 16 2,06 2,73 4,79 3,6606 ,16589 ,66357 ,440
N válido (por lista) 14
Hora 6:00 7:00 8:00 9:00 10:00 11:00 12:00 13:00 14:00 15:00 16:00 17:00 18:00
Media+desviacion 4,68 4,61 4,48 4,56 4,41 4,44 4,36 4,34 4,24 4,24 4,29 4,34 4,32
Media-desviacion 3,29 3,37 3,33 3,35 3,28 3,15 3,15 3,06 3,19 2,97 3,01 3,05 3
Reactor Día 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 16 17 18
REACTOR 8
Día 1 4,36 4,01 4,26 4,18 4,32 4,41 4,3 4,22 4,18
Día 2 4,49 4,54 4,49 4,45 4,38 4,49 4,4 4,42 4,37 4,29 4,17 4,76 4,5
Día 3 4,67 4,6 4,57 4,56 4,55 4,55 4,47 4,35 4,2 4,19 4,09 4,25 4,3
Día 4 4,84 4,52 4,58 4,57 4,47 4,34 4,4 4,9 4,25 4,3 4,26 4,61 4,79
Día 5 4,78 4,82 3,84 4,52 4,48 4,89 4,48 4,19 4,33 4,15 4,29 4,27 3,92
Día 6 4,65 4,54 4,52 4,75 4,25 4,34 4,15 3,92 3,94 4,16 4,23 4,06 4,36
Día 7 4,59 4,56 4,64 4,52 4,34 4,29 4,3 4,07 4,11 4 4,28 4,07 4,05
Día 8 4,45 4,49 4,3 4,28 4,17 4,12 4,06 3,95 4,04 4 3,94 3,87 3,88
REACTOR 11
Día 1 3,36 3,19 3,38 3,25 3,36 3,34 3,27 3,61 3,18
Día 2 3,36 3,43 3,65 3,38 3,64 3,29 3,2 3,46 3,25 3,03 3,15 3,32 3,58
Día 3 3,6 3,54 3,57 3,78 3,37 3,6 3,43 3,26 3,52 3,41 3,72 2,97 2,97
Día 4 3,45 3,37 3,43 3,42 3,41 3,35 3,42 3,42 3,04 3,04 3,34 2,96 3,06
Día 5 3,29 3,46 3,25 3,29 3,06 2,97 3,05 2,95 3,21 2,53 3,49 3,01 2,73
Día 6 3,12 3,28 3,35 3,41 3,27 3,11 3,14 2,59 3,09 2,95 2,84 3,05 2,92
Día 7 3,29 3,33 3,29 3,27 3,33 3,15 3,02 3,32 3,44 2,87 2,51 3,12 2,99
Día 8 3,23 3,4 3,2 3,22 3,09 3,04 2,89 2,99 2,97 3,06 2,55 2,9 3,16
Estadísticos descriptivos
N Rango Mínimo Máximo Media Desviación estándar Varianza
Estadístico Estadístico Estadístico Estadístico Estadístico Error
estándar Estadístico Estadístico HORA6 10 1,38 3,29 4,67 3,9840 ,19832 ,62715 ,393
HORA7 11 1,23 3,37 4,60 4,0409 ,17409 ,57740 ,333
HORA8 6 ,95 3,35 4,30 3,6900 ,14069 ,34462 ,119
HORA9 9 1,18 3,38 4,56 4,0356 ,17643 ,52929 ,280
HORA10 10 1,05 3,33 4,38 3,8610 ,14985 ,47386 ,225
125
HORA11 10 1,19 3,15 4,34 3,7680 ,15835 ,50075 ,251
HORA12 8 1,10 3,20 4,30 3,7750 ,16171 ,45738 ,209
HORA13 10 ,94 3,25 4,19 3,7020 ,12449 ,39367 ,155
HORA14 9 ,99 3,21 4,20 3,6744 ,13143 ,39428 ,155
HORA15 10 1,16 3,03 4,19 3,6380 ,15998 ,50592 ,256
HORA16 12 1,14 3,15 4,29 3,8525 ,12589 ,43610 ,190
HORA17 10 1,22 3,05 4,27 3,7840 ,15033 ,47540 ,226
HORA18 9 1,24 3,06 4,30 3,7011 ,15722 ,47166 ,222
N válido (por lista) 2
Hora 6:00 7:00 8:00 9:00 10:00 11:00 12:00 13:00 14:00 15:00 16:00 17:00 18:00 Cmedio
C (mg/L) 3,98 4,04 3,69 4,04 3,86 3,77 3,78 3,7 3,67 3,64 3,85 3,78 3,7 3,81
Typha domingensis
Estadísticos descriptivos
N Rango Mínimo Máximo Media Desviación estándar Varianza
Estadístico Estadístico Estadístico Estadístico Estadístico Error
estándar Estadístico Estadístico HORA6 36 1,61 3,31 4,92 4,1669 ,06651 ,39908 ,159
HORA7 36 1,49 3,26 4,75 4,1819 ,05881 ,35285 ,125
HORA8 36 2,45 2,57 5,02 4,1861 ,08208 ,49245 ,243
HORA9 36 1,29 3,40 4,69 4,0908 ,06817 ,40901 ,167
HORA10 40 1,55 3,09 4,64 4,0040 ,06270 ,39655 ,157
HORA11 40 1,84 2,87 4,71 3,9755 ,06945 ,43926 ,193
HORA12 40 2,06 2,63 4,69 3,9823 ,06922 ,43781 ,192
HORA13 40 2,39 2,30 4,69 3,9198 ,07414 ,46890 ,220
HORA14 40 2,05 3,03 5,08 3,9333 ,07205 ,45567 ,208
HORA15 39 1,76 2,91 4,67 3,8692 ,06614 ,41302 ,171
3,40
3,60
3,80
4,00
4,20
6:00 7:00 8:00 9:00 10:00 11:00 12:00 13:00 14:00 15:00 16:00 17:00 18:00
Co
nce
ntr
aci
ón
de
OD
Ox
íge
no
( m
g/L
)
Concentración de OD vs Tiempo
126
HORA16 39 1,34 3,21 4,55 3,8813 ,06000 ,37471 ,140
HORA17 39 1,96 2,95 4,91 3,9415 ,07505 ,46870 ,220
HORA18 39 1,47 3,18 4,65 3,9556 ,06330 ,39531 ,156
N válido (por lista) 35
Hora 6:00 7:00 8:00 9:00 10:00 11:00 12:00 13:00 14:00 15:00 16:00 17:00 18:00
Media+desviación 4,57 4,53 4,68 4,5 4,4 4,41 4,42 4,39 4,39 4,28 4,26 4,41 4,35
Media-desviación 3,77 3,83 3,69 3,68 3,61 3,54 3,54 3,45 3,48 3,46 3,51 3,47 3,56
Reactor Día 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 16 17 18
REACTOR 5
Día 1 4,21 3,86 4,05 4,13 4,11 3,96 4,07 4,19 3,97
Día 2 4,2 4,19 4,21 4,28 4,25 4,29 4,27 4,13 4,09 4,03 4,04 3,92 4,32
Día 3 4,49 4,52 5,02 4,36 4,38 4,23 4,36 4,49 4,27 4,23 4,27 4,05 4,23
Día 4 4,49 4,43 4,63 4,41 4,42 4,17 4,28 4,49 4,23 4,25 4,36 4,88 4,27
Día 5 4,53 4,66 4,7 4,39 4,38 4,37 4,59 4,15 4,1 3,99 4,22 4,15 3,92
Día 6 4,44 4,63 4,43 4,5 4,4 4,22 4,18 4,36 4,47 4,22 4,55 4,35 4,25
Día 7 3,71 4,4 4,37 4,68 4,28 4,35 4,42 4,13 4 4,3 3,94 3,91 4,22
Día 8 4,23 4,41 4,26 4,2 4,25 4,21 4,17 4,32 3,86 4,24 3,89 4,07 3,92
REACTOR 8
Día 1 4,06 3,84 4,03 3,94 4 4,11 4,17 4,26 4,15
Día 2 4,37 4,26 4,36 4,31 4,33 4,24 4,15 4,16 4,16 4,26 4,38 4,37 4,27
Día 3 4,49 4,44 4,56 4,5 4,35 4,44 4,27 4,41 4,26 4,27 4,32 4,15 4,25
Día 4 4,47 4,5 4,46 4,47 4,28 4,2 4,28 4,31 4,11 4,31 4,33 4,91 4,37
Día 5 4,56 4,49 4,57 4,49 4,09 4,08 4,18 4,13 4,27 4,11 4,13 4,32 4,18
Día 6 4,45 4,01 3,57 4,14 4,08 4,08 4,35 4,15 3,98 4,1 3,96 4,05 4,42
Día 7 4,36 4,26 4,32 4,14 4,03 4,05 4 3,98 4,05 3,46 3,85 4,03 3,72
Día 8 3,88 3,94 3,92 3,71 3,58 3,64 3,63 3,65 3,38 3,59 3,8 3,39 3,55
REACTOR 11
Día 1 4,05 4,29 4,39 4,34 4,31 4,21 4,07 4,29 4,21
Día 2 4,69 4,21 4,72 4,53 4,48 4,7 4,66 4,28 4,48 4,57 3,84 4,62 4,52
Día 3 4,35 4,75 4,83 4,69 4,46 4,71 4,69 4,69 4,64 4,67 4,53 4,39 4,63
Día 4 4,78 4,57 4,88 4,66 4,64 4,53 4,52 4,36 4,45 4,33 4,38 4,64 4,34
Día 5 4,92 4,71 4,85 4,59 4,54 4,39 4,32 4,2 4,51 3,64 4 4,18 4,59
Día 6 4,64 4,51 4,53 4,12 4,37 4,49 4,44 4,43 4,12 3,82 3,74 4,03 4,65
Día 7 4,48 4,35 4,43 4,3 4,27 4,23 4,19 4,01 4,1 3,96 3,81 4,02 3,86
Día 8 4,14 3,87 3,8 3,87 4,03 3,67 3,92 3,67 3,95 3,81 3,4 3,43 3,69
REACTOR 13
Día 1 3,48 3,15 3,34 3,68 3,05 3,19 3,35 3,35 3,18
Día 2 4,12 4,02 3,78 3,53 3,58 4,04 3,73 3,42 3,57 3,61 3,64 3,83 3,51
Día 3 4,09 3,68 4,13 3,93 3,73 3,94 3,9 3,82 3,74 3,61 3,3 3,82 3,79
Día 4 4,01 4,09 4,11 3,8 3,99 3,9 3,86 3,97 3,86 3,69 3,82 3,86 4,02
Día 5 4,06 4,38 4,25 3,74 3,89 3,98 3,8 3,63 3,45 4,04 3,83 3,83 3,8
Día 6 3,78 3,87 3,84 3,63 3,79 3,75 3,77 3,78 3,79 3,61 3,84 3,62 3,54
Día 7 3,6 4,18 4,18 4,11 3,78 3,88 3,58 3,72 3,89 3,93 3,73 3,91 3,76
127
Día 8 3,72 3,68 3,62 3,78 3,23 3,58 3,38 3,5 3,29 3,54 3,33 3,68 3,6
REACTOR 14
Día 1 3,33 3,8 2,57 3,4 3,09 3,1 2,63 2,3 5,08
Día 2 3,8 3,26 3,42 3,59 3,46 2,87 3,47 3,13 3,35 2,91 3,21 3,09 3,46
Día 3 3,92 3,84 3,74 3,46 3,91 3,04 3,44 3,2 3,28 3,61 3,28 3,43 3,56
Día 4 3,59 3,92 3,83 3,66 3,63 3,74 3,47 3,73 3,62 3,47 4,07 2,95 3,46
Día 5 4,02 3,9 3,89 3,62 3,46 3,74 3,59 3,59 3,55 3,48 3,65 3,23 3,47
Día 6 3,31 3,59 3,78 3,51 3,24 3,48 3,56 3,25 3,32 3,29 3,42 3,45 3,71
Día 7 3,89 4,18 4,08 4,54 3,84 4,03 3,64 3,7 3,56 3,22 3,37 3,86 3,49
Día 8 4,1 4,05 4,06 3,63 3,85 3,52 3,79 3,46 3,03 3,26 3,48 3,21 3,42
Estadísticos descriptivos
N Rango Mínimo Máximo Media Desviación estándar Varianza
Estadístico Estadístico Estadístico Estadístico Estadístico Error
estándar Estadístico Estadístico HORA6 26 ,78 3,78 4,56 4,2200 ,04904 ,25006 ,063
HORA7 26 ,68 3,84 4,52 4,2008 ,04501 ,22950 ,053
HORA8 26 ,89 3,74 4,63 4,1738 ,05552 ,28311 ,080
HORA9 21 ,79 3,71 4,50 4,1690 ,05861 ,26859 ,072
HORA10 27 ,77 3,63 4,40 4,0926 ,04430 ,23018 ,053
HORA11 29 ,81 3,58 4,39 4,0341 ,04404 ,23715 ,056
HORA12 29 ,86 3,56 4,42 4,0228 ,05178 ,27882 ,078
HORA13 30 ,90 3,46 4,36 3,9660 ,05145 ,28179 ,079
HORA14 26 ,76 3,55 4,31 3,9827 ,04542 ,23158 ,054
HORA15 29 ,81 3,46 4,27 3,8914 ,05245 ,28246 ,080
HORA16 22 ,58 3,64 4,22 3,9141 ,03510 ,16463 ,027
HORA17 26 ,77 3,62 4,39 4,0438 ,04188 ,21354 ,046
HORA18 24 ,78 3,56 4,34 4,0004 ,05172 ,25339 ,064
N válido (por lista) 6
Hora 6:00 7:00 8:00 9:00 10:00 11:00 12:00 13:00 14:00 15:00 16:00 17:00 18:00 Cmedio
C (mg/L) 4,22 4,2 4,17 4,17 4,09 4,03 4,02 3,97 3,98 3,89 3,91 4,04 4 4,05
128
Myriophyllum Aquaticum
Estadísticos descriptivos
N Rango Mínimo Máximo Media Desviación estándar Varianza
Estadístico Estadístico Estadístico Estadístico Estadístico Error
estándar Estadístico Estadístico HORA6 56 1,51 4,55 6,06 5,4846 ,04141 ,30988 ,096
HORA7 64 1,34 4,71 6,05 5,4758 ,03622 ,28972 ,084
HORA8 59 1,14 4,89 6,03 5,5127 ,03607 ,27706 ,077
HORA9 56 1,81 4,20 6,01 5,4479 ,04299 ,32171 ,103
HORA19 64 1,26 4,85 6,11 5,5094 ,03953 ,31623 ,100
HORA11 64 1,14 4,81 5,95 5,4141 ,04017 ,32138 ,103
HORA12 64 1,23 4,84 6,07 5,4642 ,04025 ,32200 ,104
HORA13 64 1,13 4,97 6,10 5,5438 ,03651 ,29206 ,085
HORA14 64 1,37 4,70 6,07 5,5247 ,04149 ,33193 ,110
HORA15 64 1,16 4,87 6,03 5,4803 ,03974 ,31795 ,101
HORA16 64 1,14 4,94 6,08 5,4759 ,04116 ,32929 ,108
HORA17 64 1,21 4,83 6,04 5,4527 ,04253 ,34021 ,116
HORA18 64 1,31 4,82 6,13 5,4459 ,04326 ,34609 ,120
N válido (por lista) 56 5,48
Hora 6:00 7:00 8:00 9:00 10:00 11:00 12:00 13:00 14:00 15:00 16:00 17:00 18:00
Media + desviación estándar 5,79 5,77 5,79 5,77 5,83 5,74 5,79 5,84 5,86 5,8 5,81 5,79 5,79
Media - desviación estándar 5,17 5,19 5,24 5,13 5,19 5,09 5,14 5,25 5,19 5,16 5,15 5,11 5,1
6:00 7:00 8:00 9:00 10:00 11:00 12:00 13:00 14:00 15:00 16:00 17:00 18:00
Reactor 6
Día 1 5,56 5,48 5,72 5,56 5,43 5,41 5,54 5,57 5,52 5,44 5,63 5,53
Día 2 5,82 5,44 5,77 5,53 5,69 5,67 5,81 5,64 5,48 5,74 5,71 5,61 5,66
Día 3 5,76 5,57 5,61 5,72 5,73 5,54 5,68 5,63 5,66 5,64 5,61 5,69 5,64
Día 4 5,6 5,54 5,7 5,75 5,61 5,5 5,51 5,66 5,72 5,58 5,7 5,78 5,68
3,70
3,80
3,90
4,00
4,10
4,20
4,30
Co
nce
ntr
aci
ón
de
OD
(m
g/L
)
Concentración OD vs Tiempo
129
6:00 7:00 8:00 9:00 10:00 11:00 12:00 13:00 14:00 15:00 16:00 17:00 18:00
Día 5 5,75 5,61 5,75 5,61 5,45 5 5,47 5,59 5,52 5,45 5,41 5,3 5,33
Día 6 5,34 5,32 5,39 5,25 5,23 5,19 5,18 5,22 5,25 5,27 5,3 5,38 5,36
Día 7 5,57 5,5 5,43 5,42 5,32 5,11 5,15 5,38 5,15 5,14 5,1 5,1 5,1
Día 8 5,35 5,36 5,34 5,37 5,21 5,15 4,88 5,29 5,25 5,05 5,06 5,03 4,89
Reactor 8
Día 1 4,71 5,77 5,85 6,09 5,72 5,93 5,74 6,07 5,97 5,94 6 5,91
Día 2 6,06 5,81 5,92 5,84 5,87 5,92 6,07 5,99 5,95 5,93 6,02 5,94 5,91
Día 3 5,99 5,75 5,78 5,85 5,73 5,84 5,77 5,57 5,84 5,69 5,72 5,88 5,75
Día 4 5,66 5,62 5,69 5,71 5,6 5,62 5,71 5,56 5,65 5,72 5,57 5,57 5,66
Día 5 5,62 5,49 5,54 5,44 5,41 5,12 5,32 5,38 5,28 5,22 5,27 5,29 5,25
Día 6 5,37 5,23 5,38 5,26 5,13 5,25 5,26 5,39 5,17 5,2 5,21 5,3 5,27
Día 7 5,39 5,36 5,26 5,25 5,31 5,2 5,28 5,35 5,32 5,17 5,16 5,08 5,11
Día 8 5,2 5,29 5,34 5,29 5,17 5,19 5,04 5,28 4,97 4,98 5,12 5,1 5,06
Reactor 9
Día 1 5,69 5,55 5,51 5,75 5,55 5,58 5,5 5,67 5,53 5,53 5,52 5,64
Día 2 5,56 5,46 5,61 5,31 5,55 5,35 5,55 5,6 5,61 5,44 5,46 5,37 5,45
Día 3 5,4 5,36 5,33 5,51 5,44 5,36 5,28 5,5 5,29 5,42 5,3 5,32 5,35
Día 4 5,37 5,26 5,35 5,34 5,44 5,17 5,18 5,66 5,45 5,56 5,21 5,09 5,17
Día 5 5,1 5,01 5,33 5,17 5,19 4,89 5,01 5,11 4,94 4,87 5,02 5 5,01
Día 6 4,93 4,96 5,09 4,97 4,86 4,86 5 5 5,98 5,05 5,05 5,14 5,03
Día 7 5,14 4,97 5,02 5,04 5,16 4,96 5,15 5,17 5,32 5,13 4,98 4,92 4,95
Día 8 5,14 4,9 5,02 5,17 5,08 5,03 5 5,12 4,97 5,02 5,02 4,93 4,88
Reactor 11
Día 1 5,86 5,72 6,08 5,81 5,85 5,87 5,93 5,97 5,87 5,92 5,97
Día 2 6,05 5,84 6 5,78 5,8 5,94 5,99 5,95 5,86 5,82 6 5,83 5,9
Día 3 6 5,85 5,81 5,72 5,86 5,91 5,85 5,89 5,76 5,81 5,8 5,7 5,78
Día 4 5,71 5,63 5,75 5,75 5,69 5,62 5,71 5,79 5,79 5,71 5,61 5,68 5,55
Día 5 5,51 5,46 5,47 5,31 5,4 5,2 5,34 5,45 5,45 5,19 5,24 5,25 5,16
Día 6 5,17 5,3 5,34 5,16 5,08 5,15 5,2 5,21 5,16 5,07 5,11 5,03 5,05
Día 7 5,27 5,12 5,09 5,13 5,22 4,94 5,14 5,34 5,15 5,07 5,03 5 4,97
Día 8 5,04 5,09 5,01 5,13 5,2 5,04 5,04 5,15 5,1 5,04 5,02 4,96 5,06
Reactor 12
Día 1 5,65 5,84 5,86 5,68 5,64 5,77 5,69 5,72 5,68 5,93 5,72
Día 2 5,8 5,77 5,78 4,2 5,81 5,73 5,89 6 5,9 5,87 5,96 5,9 5,87
Día 3 5,62 5,86 5,87 5,84 5,89 5,94 5,86 6,1 5,99 5,92 5,97 5,95 6
Día 4 4,55 5,78 5,84 5,98 6,11 5,6 5,88 5,89 5,98 5,88 5,82 5,86 5,8
Día 5 5,65 5,55 5,59 5,65 5,71 5,52 5,63 5,76 5,76 5,66 5,67 5,55 5,52
Día 6 5,79 5,58 5,69 5,66 5,55 5,55 5,55 5,48 5,85 5,71 5,65 5,65 5,73
Día 7 5,46 5,58 5,51 5,56 5,62 5,57 5,66 5,65 5,58 5,49 5,5 5,46 5,11
Día 8 5,32 5,39 5,25 5,24 5,24 5,28 5,3 5,47 5,24 5,24 5,45 5,33 5,26
Reactor 14
Día 1 6,05 5,96 6,01 5,86 5,94 5,99 5,9 5,93 6,07 6,04 5,95
Día 2 5,97 6,04 6,03 5,7 5,96 5,94 6,04 6,05 5,96 6,03 6,08 5,71 6,13
Día 3 5,61 5,89 5,99 5,96 6,03 5,95 5,95 6,03 5,93 5,93 6,06 5,95 6
Día 4 5,54 5,77 5,84 5,76 5,67 5,74 5,66 5,81 6,04 5,74 5,78 5,77 5,71
Día 5 5,48 5,55 5,63 5,53 5,53 5,36 5,42 5,43 5,65 5,49 5,36 5,29 5,41
Día 6 5,44 5,35 5,41 5,32 5,37 5,3 5,2 5,34 5,63 5,35 5,32 5,31 5,26
Día 7 5,29 5,31 5,33 5,25 5,28 5,2 5,15 5,16 5,19 5,24 5,11 5,16 5,15
130
6:00 7:00 8:00 9:00 10:00 11:00 12:00 13:00 14:00 15:00 16:00 17:00 18:00
Día 8 5,13 5,13 5,05 5,13 4,97 4,96 4,97 5,05 5,24 5,39 5,16 5,05 5,06
Reactor 15
Día 1 5,77 5,58 5,83 5,69 5,74 5,86 5,85 5,79 5,88 5,87 5,85
Día 2 5,81 5,72 5,78 5,71 5,69 5,72 5,68 5,67 5,96 5,77 5,76 5,71 5,69
Día 3 5,46 5,53 5,65 5,58 5,57 5,54 5,57 5,89 5,64 5,63 5,63 5,71 5,63
Día 4 5,46 5,43 5,28 5,43 5,32 5,23 5,31 5,38 5,41 5,72 5,45 5,47 5,32
Día 5 5,09 5,3 5,28 5,2 5,04 5,02 5,03 5,28 5,19 5,16 4,99 5,1 5,05
Día 6 5,11 5,16 5,19 5,09 5,07 4,95 5,17 5,07 5,05 5,12 4,94 4,93 4,95
Día 7 5,08 5,06 5,2 5,07 5,1 4,95 5,06 5,15 4,98 4,91 5,07 4,9 5,02
Día 8 5,15 4,88 4,89 4,98 4,85 4,81 4,84 4,97 4,7 4,9 5,06 4,83 4,82
Reactor 16
Día 1 5,64 5,6 5,79 5,58 5,5 5,75 5,53 5,61 5,63 5,71 5,72
Día 2 5,67 5,55 5,75 6,01 5,67 5,65 5,64 5,63 5,57 5,7 5,65 5,62 5,78
Día 3 5,83 5,43 5,65 5,6 5,65 5,54 5,54 5,68 5,79 5,64 5,59 5,63 5,61
Día 4 5,81 5,49 5,55 5,65 5,63 5,36 5,53 5,48 5,48 5,55 5,49 5,46 5,53
Día 5 5,43 5,65 5,62 5,61 5,41 5,38 5,48 5,63 5,39 5,4 5,58 5,62 5,58
Día 6 5,57 5,67 5,53 5,52 5,57 5,6 5,54 5,72 5,49 5,49 5,49 5,45 5,45
Día 7 5,6 5,52 5,59 5,62 5,53 5,56 5,61 5,71 5,46 5,47 5,52 5,4 5,43
Día 8 5,55 5,48 5,56 5,45 5,36 5,51 5,39 5,43 5,28 5,32 5,5 5,31 5,4
Estadísticos descriptivos
N Rango Mínimo Máximo Media Desviación estándar Varianza
Estadístico Estadístico Estadístico Estadístico Estadístico Error
estándar Estadístico Estadístico HORA6 34 ,59 5,20 5,79 5,5109 ,02580 ,15044 ,023
HORA7 41 ,52 5,23 5,75 5,4920 ,02134 ,13662 ,019
HORA8 42 ,53 5,25 5,78 5,5331 ,02647 ,17153 ,029
HORA9 43 ,63 5,13 5,76 5,4528 ,03165 ,20752 ,043
HORA19 41 ,61 5,20 5,81 5,5198 ,02862 ,18327 ,034
HORA11 42 ,62 5,11 5,73 5,4343 ,03047 ,19750 ,039
HORA12 41 ,62 5,15 5,77 5,4546 ,03041 ,19472 ,038
HORA13 40 ,53 5,28 5,81 5,5478 ,02480 ,15685 ,025
HORA14 38 ,61 5,24 5,85 5,5371 ,03105 ,19139 ,037
HORA15 39 ,62 5,17 5,79 5,5172 ,02996 ,18708 ,035
HORA16 38 ,64 5,16 5,80 5,5029 ,02950 ,18185 ,033
HORA17 36 ,64 5,14 5,78 5,4958 ,03083 ,18500 ,034
HORA18 39 ,68 5,10 5,78 5,4731 ,03443 ,21503 ,046
N válido (por lista) 19
131
C
6:00 5,51
7:00 5,49
8:00 5,53
9:00 5,45
10:00 5,52
11:00 5,43
12:00 5,45
13:00 5,55
14:00 5,54
15:00 5,52
16:00 5,50
17:00 5,50
18:00 5,47
Cmedia= 5,50mg/l Myriophyllum Aquaticum
Eichornia crassipes
Estadísticos descriptivos
N Rango Mínimo Máximo Media Desviación estándar Varianza
Estadístico Estadístico Estadístico Estadístico Estadístico Error
estándar Estadístico Estadístico HORA6 49 1,12 4,26 5,38 4,9165 ,03690 ,25830 ,067
HORA7 49 1,09 4,29 5,38 4,9853 ,03292 ,23047 ,053
HORA8 49 1,03 4,32 5,35 5,0512 ,03060 ,21417 ,046
HORA9 56 ,95 4,44 5,39 5,0848 ,02970 ,22224 ,049
HORA19 56 1,74 3,78 5,52 5,0588 ,04084 ,30558 ,093
HORA11 56 1,07 4,36 5,43 5,0698 ,03337 ,24969 ,062
HORA12 56 1,13 4,37 5,50 5,0677 ,03281 ,24556 ,060
HORA13 56 1,07 4,40 5,47 5,0820 ,03241 ,24254 ,059
HORA14 56 1,34 4,24 5,58 5,0393 ,03558 ,26626 ,071
HORA15 56 1,29 4,07 5,36 5,0027 ,03455 ,25858 ,067
HORA16 56 1,24 4,23 5,47 4,9893 ,03394 ,25399 ,065
HORA17 56 1,31 4,06 5,37 4,9673 ,03511 ,26270 ,069
HORA18 56 1,09 4,20 5,29 4,9327 ,03184 ,23829 ,057
N válido (por lista) 49
Hora 6:00 7:00 8:00 9:00 10:00 11:00 12:00 13:00 14:00 15:00 16:00 17:00 18:00
5,36
5,38
5,40
5,42
5,44
5,46
5,48
5,50
5,52
5,54
5,56
Co
nce
ntr
aci
ón
OD
(m
g/l
)
Concentación de OD vs Tiempo
C
Cmedia
132
Media + desviación estándar 5,17 5,22 5,27 5,31 5,36 5,32 5,31 5,32 5,31 5,26 5,24 5,23 5,17
Media - desviación estándar 4,66 4,75 4,84 4,86 4,75 4,82 4,82 4,84 4,77 4,74 4,74 4,7 4,69
6:00
7:00 8:00 9:00 10:00 11:00 12:00 13:00 14:00 15:00 16:00 17:00 18:00
Reactor 5
Día 1
4,91 5,02 4,96 5,07 5,12 4,99 5,12 5,04 4,97 4,96
Día 2 5,12
5,06 4,86 4,99 5,05 5,17 5 5,06 5,13 4,98 5,15 5,21 5,1
Día 3 4,95
5,01 5,08 4,91 5,04 4,96 5,04 4,95 4,95 4,88 4,76 4,95 4,84
Día 4 4,85
4,86 4,99 4,93 4,8 4,86 4,81 4,93 4,86 4,8 4,83 4,78 4,75
Día 5 4,6
4,69 4,98 4,77 4,74 4,89 4,83 4,6 4,88 4,72 4,64 4,63 4,68
Día 6 4,77
4,74 4,81 4,72 4,78 4,78 4,72 4,63 4,6 4,56 4,55 4,45 4,55
Día 7 4,26
4,46 4,66 4,78 4,53 4,61 4,48 4,53 4,53 4,41 4,31 4,41 4,39
Día 8 4,33
4,29 4,32 4,44 4,29 4,38 4,37 4,4 4,24 4,07 4,23 4,06 4,2
Reactor 6
Día 1
5,16 4,82 4,69 4,84 4,78 4,82 4,84 4,89 4,82 4,82
Día 2 4,69
4,83 4,79 4,98 4,88 5,12 5 5,17 5,08 4,93 4,99 5,12 4,9
Día 3 4,73
5,06 5,08 5,16 5,38 5,41 5,1 5,04 5,09 5,02 5,05 5,09 4,99
Día 4 5,12
5,09 5,11 5,19 5,1 5,04 5,02 5,09 5,08 5,01 5,03 4,86 5,04
Día 5 4,92
5,06 5,14 5,13 5,14 5,04 5 5,09 5,16 5,1 4,97 5,04 4,98
Día 6 5,24
5,06 5,13 5,2 5,28 5,15 5,23 5,12 5,21 5,04 5,09 5,12 5,09
Día 7 5,2
5,09 5,23 5,2 5,38 5,16 5,12 5,47 5,16 4,94 5,14 4,99 4,99
Día 8 5,06
5,06 5,07 5,18 5,07 5,07 4,93 4,99 4,97 4,88 4,88 4,86 4,42
Reactor 10
Día 1
5,39 5,52 5,32 5,32 5,46 5,4 5,35 5,47 5,34 5,29
Día 2 5,16
5,38 5,35 5,38 5,37 5,36 5,39 5,38 5,35 5,3 5,2 5,37 5,24
Día 3 5,22
5,17 5,32 5,39 5,41 5,41 5,33 5,38 5,45 5,27 5,29 5,28 5,22
Día 4 5,29
5,34 5,31 5,38 5,35 5,23 5,25 5,19 5,15 5,22 5,22 5,23 5,24
Día 5 5,08
5,12 5,22 5,15 5,16 5,25 5,23 5,17 5,12 5,07 5,03 5,16 5,14
Día 6 5,25
5,16 5,22 5,26 5,16 5,04 5,14 5,26 5,13 5,11 5,13 5,11 5,04
Día 7 4,91
5,12 5,19 5,13 5,15 5,06 5,15 5,16 5,08 5,05 5,07 4,99 4,96
Día 8 4,97
5 4,95 5,03 4,94 4,98 4,92 5,03 4,85 4,84 4,83 4,84 4,82
Reactor 12
Día 1
4,79 4,76 4,36 4,63 4,6 4,61 4,65 4,7 4,58 4,56
Día 2 4,38
4,55 4,59 4,58 4,61 4,66 4,53 4,92 4,5 4,59 4,68 4,66 4,54
Día 3 4,64
4,65 4,69 4,79 4,9 4,6 4,68 5,02 4,7 4,79 4,69 4,77 4,73
Día 4 4,56
4,84 5,01 4,85 4,8 4,69 5,01 4,82 4,8 4,8 4,71 4,59 4,85
Día 5 4,52
4,7 4,93 4,87 4,83 4,86 4,93 4,96 4,79 4,76 4,76 4,8 4,81
Día 6 4,7
4,78 4,94 4,92 4,87 5,15 4,92 4,94 4,89 4,89 4,85 4,81 4,87
Día 7 4,7
4,85 4,86 4,81 4,91 4,98 4,94 4,85 4,66 4,91 4,68 4,75 4,68
Día 8 4,61
4,6 4,71 4,67 4,77 4,79 4,8 4,69 4,6 4,48 4,53 4,47 4,52
Reactor 13
Día 1
5,13 4,89 4,98 4,92 4,89 5,05 5,09 5,04 4,94 5,04
Día 2 4,83
4,97 5,04 5,12 5 5,01 4,97 5,14 5,03 5,11 4,92 5,03 4,94
Día 3 4,79
4,98 4,95 5,13 5,14 5,1 5,11 5,25 5,18 5,3 5,13 5,04 4,89
Día 4 4,82
5,07 5,31 5,17 5,14 5,11 5,23 5,25 5,11 5,14 5,26 5,02 4,98
Día 5 5,21
5,1 5,12 5,04 5,26 5,16 5,34 5,12 5,07 5,09 5,1 5,12 5,16
Día 6 4,95
4,89 5,07 5,19 5,23 5,21 5,1 5,11 5,3 5,16 5,25 5,09 5,07
Día 7 5,12
5,11 5,15 5,18 5,19 5,29 5,14 5,22 5,2 5,22 5,15 5,15 5,15
133
6:00
7:00 8:00 9:00 10:00 11:00 12:00 13:00 14:00 15:00 16:00 17:00 18:00
Día 8 4,95
5,3 5,12 5,13 5,16 5,18 5,19 5,17 5,21 5,17 5,12 5,09 5,09
Reactor 16
Día 1
5,39 5,31 5,26 5,3 5,35 5,58 5,36 5,35 5,29 5,25
Día 2 5,38
5,15 5,18 5,19 5,4 5,43 5,41 5,39 5,27 5,19 5,22 5,24 5,07
Día 3 4,91
5,18 5,22 5,39 5,3 5,29 5,36 5,28 5,32 5,3 5,33 5,25 5,05
Día 4 4,99
5,25 5,34 5,32 5,41 5,35 5,33 5,32 5,32 5,34 5,31 5,18 5,25
Día 5 5,15
5,08 5,29 5,27 5,31 5,33 5,34 5,35 5,25 5,27 5,25 5,29 5,19
Día 6 5,14
5,22 5,23 5,38 5,34 5,32 5,39 5,42 5,34 5,18 5,21 5,14 5,14
Día 7 5,07
5,18 5,24 5,26 3,78 5,31 5,5 5,28 5,33 5,21 5,09 5,18 4,99
Día 8 5,01
5,03 5,07 5,17 5,13 5,28 5,29 5,1 5,2 5,1 5,02 4,98 4,96
Reactor 15
Día 1
5,26 5,29 5,2 5,13 5,27 5,13 5,19 5,12 5,2 5,08
Día 2 5,1
5,11 5,03 5,25 5,26 5,29 5,36 5,27 5,13 5,13 5,07 5,1 5,07
Día 3 4,99
5,18 5,28 5,26 5,25 5,23 5,24 5,28 5,34 5,27 5,16 5,15 5,09
Día 4 4,88
5,22 5,13 5,24 5,29 5,27 5,16 5,16 5,16 5,13 5,09 5,02 5,02
Día 5 4,75
5,08 5,21 5,18 5,22 5,06 5,13 5,19 5,07 5,09 5,02 5,04 4,99
Día 6 5,18
4,9 5,06 5,13 5,18 5,11 5,07 5,03 5,01 4,99 4,98 4,93 4,93
Día 7 4,94
4,82 4,99 5,01 5,07 5,1 5,01 5,02 4,98 4,92 4,92 4,83 4,9
Día 8 4,92
4,84 4,94 4,92 4,93 5,01 5,04 4,93 4,79 4,82 4,9 4,76 4,72
Estadísticos descriptivos
N Rango Mínimo Máximo Media Desviación estándar Varianza
Estadístico Estadístico Estadístico Estadístico Estadístico Error
estándar Estadístico Estadístico HORA6 33 ,47 4,69 5,16 4,9406 ,02514 ,14442 ,021
HORA7 35 ,40 4,78 5,18 5,0254 ,02037 ,12052 ,015
HORA8 35 ,38 4,86 5,24 5,0783 ,01865 ,11036 ,012
HORA9 38 ,40 4,87 5,27 5,1192 ,01905 ,11741 ,014
HORA19 44 ,59 4,76 5,35 5,0789 ,02749 ,18238 ,033
HORA11 39 ,45 4,86 5,31 5,1133 ,02025 ,12646 ,016
HORA12 37 ,47 4,83 5,30 5,0730 ,02053 ,12485 ,016
HORA13 40 ,47 4,85 5,32 5,1085 ,02011 ,12721 ,016
HORA14 39 ,51 4,79 5,30 5,0597 ,02255 ,14085 ,020
HORA15 40 ,46 4,76 5,22 5,0228 ,02200 ,13912 ,019
HORA16 38 ,46 4,76 5,22 5,0308 ,02059 ,12695 ,016
HORA17 41 ,48 4,75 5,23 5,0063 ,02240 ,14340 ,021
HORA18 40 ,44 4,72 5,16 4,9753 ,01881 ,11899 ,014
N válido (por lista) 14
134
Hora C
6:00 4,94
7:00 5,03
8:00 5,08
9:00 5,12
10:00 5,08
11:00 5,11
12:00 5,07
13:00 5,11
14:00 5,06
15:00 5,02
16:00 5,03
17:00 5,01
18:00 4,98
Cmedia= 5,05mg/l
4,85
4,90
4,95
5,00
5,05
5,10
5,15
Co
nce
ntr
aci
ón
OD
(m
g/l
)
Concentración de OD vs Tiempo
C
Cmedia
135
ANEXO 4: CARTOGRAFÍA
136
137
138
139
140
141
ANEXO 5: RESULTADOS DE ENSAYOS DE LAGUNA
YAHUARCOCHA
142
ÉPOCA SECA
Punto de muestreo 1 2 4 6
Origen de la muestra Unidad
muelle antiguo
entrada de agua
superficie/centro
muelle turístico
Hora
9:53 11:05 12:22 13:43
pH 8 7 8 8
Oxígeno disuelto mg/l 6,01 3,35 10,85 9,38
Temperatura C 26,2 21,8 25,1 24,8
% de Saturación de Oxígeno % 96,6 49,7 170 147,6
Presión hPa 788 784 783 784
DQO mg/L 142 36 48 57
Fosfatos mg/l 0,04 0,22 2,38 0,22
Hierro total mg/l 0,07 0,06 0,06 0,07
Nitratos mg/l 3,7 1 0,9 0,5
Nitritos mg/l 0,002 0,004 0,007
Sílice mg/l 0,066 20,6 0,5 24,4
143
ÉPOCA LLUVIOSA
Punto de muestreo
1 2 4 5 6 7
Origen de la muestra
Unidad Muelle antiguo
Entrada de agua
Superficie/centro
3,5 m /centro
muelle turístico
salida de agua
Alcalinidad
total mg/L 318 222 311 311 315 318
Acidez mg/L <1 41 <1 <1 <1 <1
Coliformes fecales
NMP/100mL
3,6x10 1,1x104 3,6x10 - 1,5x102 1,1x102
Coliformes totales
NMP/100mL
7,5x102 1,1x104 9,3x102 - 1,3x102 7,5x102
Color Aparente
PtCo 293 28 274 262 282 274
Color Verdadero
PtCo 286 20 273 257 271 254
DBO5 mg/L 8 <2 3 3 3 5
DQO mg/L 37 0 65 53 59 54
Dureza Cálcica
mg/L 51 83 51 53 53 54
Dureza total mg/L 195 178 199 197 197 200
Sólidos sedimentables
mg/L*h <0,1 <0,1 <0,1 <0,1 <0,1 <0,1
Sólidos suspendidos
mg/L 28 <10 18 14 12 20
Sólidos totales
mg/L 414 364 424 420 428 408
Sólidos totales disueltos
mg/L 380 352 396 400 414 392
Turbidez NTU 28,4 2,88 23,8 21,6 25,8 23,3
RESULTADOS DE CAMPO
144
Punto de muestreo
1 2 4 5 6 7
Origen de la muestra
Unidad muelle antiguo
entrada de agua
superficie/centro
3,5 m /centro
muelle turístico
salida de agua
Hora 10:51 12:29 14:05 14:14 16:16 18:50
pH 8 7 9 9 8 9
Oxígeno disuelto
mg/l 8,44 2,84 11,89 6,5 10,41 6,21
Temperatura °C 23,3 20,9 22,7 21,8 22,2 20,6
% de Saturación de Oxígeno % 130,4 31,3 180,8 96,4 158,1 89,6
Presión hPa 787 786 785 785 784 785
Salinidad ppt 0,3 0,2 0,3 0,3 0,3 0,3
Disco de Secci m 0,37 - 0,32 - 0,35 -
Conductividad µS 600 470,4 616 622 621 619
145
ANEXO 6: RESULTADOS DE ENSAYOS DE LABORATORIO
146
CULTIVO
Parámetro Unidad Muestra 1 Muestra 2 Muestra 3 Muestra 4 Promedio
DQO mg/L 4 53 57 54 54,67
Nitratos mg/L 26,8 20 20 20 20,00
Fosfatos mg/L 0,97 0,91 0,79 0,82 0,84
Alcalinidad mg/L 3,9 5,8 6,2 6,3 6,10
pH 7,72 7,57 7,72 7,71 7,67
Potasio mg/L 400 510 560 480 516,67
Conductividad 706 706 713 716 711,67
TDS mg/L 352 396 610 590 532,00
Hierro mg/L 0,27 0,26 0,28 0,27 0,27
Salinidad ppt 0,3 0,3 0,3 0,3 0,30
Dureza cálcica mg/L 2,5 2,4 2,5 2,6 2,50
Dureza magnesica mg/L 1,1 1,2 0,9 0,8 0,97
Dureza total mg/L 3,6 3,6 3,4 3,4 3,47
Calcio mg/L 1,00 0,96 1,00 1,04 1,00
Magnesio mg/L 0,27 0,29 0,22 0,19 0,23
FUENTE: trabajo de laboratorio y gabinete
ELABORACIÓN: Larco & Paucar, 2017
A continuación, se presenta los resultados de los análisis realizados después de la
experimentación:
147
Cál
cica
Mag
nési
caT
otal
N°
mg/
Lm
g/L
mg/
Lm
gCaO
3/L
NT
Um
g/L
µS
mg/
Lm
g/L
mgC
aO3/
Lm
gCaO
3/L
mgC
aO3/
Lm
g/L
mg/
Lpp
t
Sal
inid
adC
alci
oM
agne
sio
Pla
nta
Rea
ctor
DQ
ON
itrat
osFo
sfat
osAl
calin
idad
Tur
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148
ANEXO 7: IDENTIFICACIÓN DE ALGAS
149
A continuación se detallan los géneros de algas encontradas en la investigación:
CYANOBACTERIA DINOFLAGELLATA EUGLENOZOA BACILLARIOPHYTA
*Anabaenopsis * Chroococcus * Oscillatoria * Phormidium * Raphidiopsis * Spirulina * Synechococcus * Synechococcus *Cylindrospermopsis *Merismopedia *Microcystis *Planktothrix
*Gymnodinium *Peridinium
*Euglena *Phacus *Trachelomonas
*Epithemia *Amphora *Aulacoseira *Cyclotella *Cymbella *Fragilaria *Gomphonema *Melosira *Navicula radiosa *Nitzschia *Stauroneis *Synedra Trigonium
CHLOROPHYTA
OCHROPHYTA
*Ankistrodermus *Chlamydomonas *Chlorella *Chlorogonium *Coelastrum *Cosmarium *Crucigeniella *Dyctyosphaerium *Eudorina *Golenkinia *Gonium *Lagerheimia *Micractinium *Monoraphidium *Oedogonium *Oocystis
*Pediastrum *Polyedriopsis *Scenedesmus *Staurastrum *Tetradesmus *Tetraedron *Tetrastrum *Westella
Chrysococcus
ELABORACIÓN: Larco & Paucar; 2017
En las imágenes siguientes se muestran las algas encontradas en la presente investigación:
150
Ankistrodesmus Anabaenopsis Ankistrodesmus falcatus
Aulacoseira
Cilindrospermopsis Crhrococcus
Cosmarium Diatomea
151
Epitemia Phormidium
Gonphonema Melosira
Merismopedia
Microcystis
152
Navicula radiosa Nitzschia Oedogonium
Pediastrum tetras Pediastrum simplex
Peridinium Phacus Planktothrix Raphidiopsis
Scenedesmus
153
Spirulina laxissima Synedra Synechococcus
Cyclotella Cymbella
154
ANEXO 8. FOTOGRAFÍAS
155
FOTOGRAFÍA 1. Sitio de muestreo: Laguna de Yaguarcocha
FOTOGRAFÍA 2. Sitios de muestreo
FOTOGRAFÍA 3. Plantas seleccionadas
156
FOTOGRAFÍA 4. Muestreo en la época Lluviosa
FOTOGRAFÍA 5. Esterilización de reactores
FOTOGRAFÍA 6. Preparación cultivo hidropónico
157
FOTOGRAFÍA 7. Equipos usados en laboratorio
FOTOGRAFÍA 8. Peso húmedo de las plantas
FOTOGRAFÍA 9. Reactores armados de plantas acuáticas flotantes.
158
FOTOGRAFÍA 10. Reactores armados
FOTOGRAFÍA 11. Prensado de plantas
159
FOTOGRAFÍA 12. Secado de las plantas
FOTOGRAFÍA 13. Análisis de agua de los reactores