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Yuca(Manihot esculenta Crantz)

Manual de recomendaciones técnicas para sucultivo en el departamento de Cundinamarca

Martha Marina Bolaños Benavides

Yuca(Manihot esculenta Crantz)

Yuca(Manihot esculenta Crantz)Manual de recomendaciones técnicas para sucultivo en el departamento de Cundinamarca

Martha Marina Bolaños Benavides

Elias Alexander Silva Arero

Luis Felipe Castelblanco Rivera

Luis Gabriel Bautista Montealegre

Sergio Andrés Cruz Ruíz

Adriana Carolina Peña Holguín

Yuca (Manihot esculenta Crantz): Manual de recomendaciones técnicas para su cultivo en eldepartamento de Cundinamarca / Martha Marina Bolaños Benavides, Elias Alexander Silva Arero,Luis Felipe Castelblanco Rivera, Luis Gabriel Bautista Montealegre, Sergio Andrés Cruz Ruíz yAdriana Carolina Peña Holguín – Bogotá, D. C. : Corredor Tecnológico Agroindustrial, CTA-2, 2020.

98 páginas ; ilustraciones ; 24cm.Incluye referencias bibliográficas.ISBN-e: 978-958-794-370-2 ISBN obra impresa: 978-958-794-369-6

PALABRAS CLAVE: Manejo y conservación de suelos, Selección de semilla de yuca, Manejo eficientede la fertilización integrada en yuca, Manejo agronómico del cultivo de yuca, Cosecha y poscosechadel cultivo de yuca, Costos de producción del cultivo de yuca

CORREDOR TECNOLÓGICO AGROINDUSTRIAL CTA-2UNIVERSIDAD NACIONAL DE COLOMBIA, SEDE BOGOTÁCalle 44 N.º 45-67Unidad Camilo TorresEdificio 826 Bloque A-1Oficina 101Teléfono (57-1) 316 5000 Extensión 10248Bogotá, D. C. ColombiaCódigo postal: 111321

Impreso en Bogotá, D.C., ColombiaPrinted in Bogota, D.C., Colombia

PREPARACIÓN EDITORIALMesa EditorialCorredor Tecnológico Agroindustrial CTA-2

GESTOR DE CONTENIDOS:Luis Gabriel Bautista Montealegre

DISEÑO Y DESARROLLO CONTEXT:Andrés Conrado Montoya Acosta

CITACIÓN SUGERIDA: Bolaños-Benavides, M.,Silva-Arero, E., Casteblanco-Rivera, L., Bautista-Montealegre, L., Cruz-Ruiz, S. y Peña-Holguín, A. (2020).Yuca (Manihot esculenta Crantz): Manual derecomendaciones técnicas para su cultivo en eldepartamento de Cundinamarca. Bogotá, D. C.: CorredorTecnológico Agroindustrial CTA-2.

CLÁUSULA DE RESPONSABILIDAD: CTA-2 no esresponsable de las opiniones e información contenidasen el presente documento. Los autores se adjudicanexclusiva y plenamente la responsabilidad sobre sucontenido, ya sea propio o de terceros, declarando eneste último supuesto que cuentan con la autorizaciónde terceros para su publicación; adicionalmente, losautores declaran que no existe conflicto de interés conlos resultados de la investigación propiedad de talesterceros. En consecuencia, los autores seránresponsables civil, administrativa o penalmente frentea cualquier reclamo o demanda por parte de tercerosrelativa a los derechos de autor u otros derechos que sehubieran vulnerado como resultado de su contribución.

Esta obra se distribuye con una licencia Creative Commons Attribution-ShareAlike 4.0 International (CC-BY-SA 4.0)Se puede consultar en la dirección https://creativecommons.org/licenses/by-sa/4.0/deed.es

https://creativecommons.org/licenses/by-sa/4.0/deed.es

Dedicado a todas las personasque trabajan la tierra

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Corredor Tecnológico Agroindustrial CTA-2Entidad Ejecutora:Gobernación de CundinamarcaNicolás García Bustos

Gobernador

Comité DirectivoGobernación de CundinamarcaSecretaría de Ciencia, Tecnología e Innovación

Nelly Yolanda Russi Quiroga

Secretaria de Ciencia, Tecnología e Innovación

Alcaldía Mayor de Bogotá, D. C.Secretaría Distrital de Desarrollo Económico

César Augusto Carrillo Vega

Director de Economía Rural y Abastecimiento Alimentario

Universidad Nacional de ColombiaVicerrectoría de Investigación

Hernando Guillermo Gaitán Duarte

Director de Investigación y Extensión Sede Bogotá

Corporación Colombiana de Investigación AgropecuariaCentro Tibaitatá

Juan Diego Palacio Mejía

Director

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Comité Técnico CientíficoCorredor Tecnológico Agroindustrial CTA-2

Gobernación de CundinamarcaSecretaría de Ciencia, Tecnología e Innovación

John Jairo González Rodríguez

Alcaldía Mayor de Bogotá, D. C.Secretaría Distrital de Desarrollo Económico

Andrea Campuzano Becerra

Universidad Nacional de ColombiaDirección de Investigación y Extensión – Sede Bogotá

Bethsy Támara Cárdenas Riaño

Jefe de la División de Investigación

Corporación Colombiana de Investigación AgropecuariaCentro Tibaitatá

Carlos Alberto Herrera Heredia

Coordinación de Innovación Regional

Directora de proyectoIngritts Marcela García Niño

SupervisorDiego Mauricio Salas Ramírez

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El Corredor Tecnológico Agroindustrial (CTA) es una estrategia de cooperaciónentre Estado, sector productivo y academia, en la cual participan actores direc-tivos del sector agropecuario y agroindustrial de Cundinamarca y Bogotá, D. C.,con el fin de aunar esfuerzos en actividades de desarrollo y fortalecimiento dela ciencia, la tecnología y la innovación. Sus capacidades están orientadas a laformulación y ejecución de proyectos de carácter investigativo, que permitanla transferencia tecnológica al sector agropecuario y agroindustrial.

El presente documento es resultado del Subproyecto “Validar estrategias tec-nológicas disponibles en los sistemas productivos de plátano y yuca, median-te la implementación de 9 parcelas de investigación participativa agropecuaria(pipas) en municipios productores del departamento de Cundinamarca”, desa-rrollado en el marco del Corredor Tecnológico Agroindustrial CTA-2, Proyecto“Investigación, desarrollo y transferencia tecnológica en el sector agropecua-rio y agroindustrial con el fin de mejorar todo el departamento, Cundinamar-ca, Centro Oriente”, suscrito por la Gobernación de Cundinamarca, a través dela Secretaría de Ciencia, Tecnología e Innovación; la Alcaldía de Bogotá, a tra-vés de la Secretaría Distrital de Desarrollo Económico; la Universidad Nacio-nal de Colombia, y la Corporación Colombiana de Investigación Agropecuaria(AGROSAVIA, antes Corpoica). El Corredor Tecnológico Agroindustrial CTA-2es financiado con recursos del Fondo de Ciencia, Tecnología e Innovación delSistema General de Regalías.

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Contenido

Introducción . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 17

Diagnóstico del sistema productivo . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 19

Generalidades del cultivo . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 21

Producción . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 21

Orígenes e importancia del cultivo de la yuca . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 21

La planta de yuca . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 22

Fases fenológicas . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 25

Parte aérea . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 26

Parte subterránea . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 26

Materiales de siembra . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 29

Producción de semilla con calidad . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 31

Siembra de materiales in vitro . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 35

Rincón de la Fortuna . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 36

Selección de semilla para la siembra . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 38

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Manejo agronómico del cultivo . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 41

Conservación de suelos y establecimiento del cultivo de yuca . . . . . . 41

La labranza cero . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 42

Trazado en curvas a nivel . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 42

Distancia de siembra . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 45

Ahoyado . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 46

Siembra . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 46

Manejo eficiente de la fertilización integrada . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 48

Historial del lote . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 48

Meta de rendimiento . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 49

Análisis químico del suelo y su interpretación . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 49

Aplicación de correctivos . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 53

Diagnóstico de la fertilidad del suelo y del estado nutricionalde la planta . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 55

Fertilidad de los suelos . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 55

Requerimientos nutricionales . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 56

Épocas de fertilización . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 57

Formas de aplicación del fertilizante . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 58

Fertilización orgánica y biológica . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 58

Manejo integrado de enfermedades e insectos plaga . . . . . . . . . . . . . . 61

Manejo de arvenses (malezas) y coberturas . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 68

Principales arvenses que afectan el cultivo . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 69

Manejo de arvenses en el cultivo de yuca . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 72

Cosecha y poscosecha . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 75

Labores de cosecha . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 75

Labores de poscosecha . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 77

Caracterización fisicoquímica y nutricional de la yuca . . . . . . . . . . . . . 84

13

Costos de producción . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 89

Consideraciones . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 89

Referencias bibliográficas . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 91

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Agradecimientos y colaboradores

Los autores expresan especial agradecimiento a: Alvaro Eduardo Santos Ruiz,Jorge Iván Corzo Estepa, Sebastián David García Guzmán, Lina María CastilloTibavisco, John Eddier Del Río Martínez, Cristian Camilo Ortíz Díaz y Jorge LuisPuenguenan Padilla.

Los autores también agradecen a los productores y asociaciones de productoresde yuca de los municipios de Paime y Yacopí; sin su valiosa ayuda no se hubierapodido llevar a cabo el subproyecto. Al personal técnico y administrativo deAGROSAVIA, Centro de Investigación Tibaitatá, Km 14 Vía Mosquera-Bogotá,Cundinamarca, Colombia, que apoyó el desarrollo del subproyecto.

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Introducción

La yuca (Manihot esculenta Crantz) es una planta perenne cultivada a lo largodel trópico, apreciada por sus raíces con grandes contenidos de almidón y usa-da para la alimentación humana y animal, y producción de etanol, entre otros(Howeler, 2012).

Durante los últimos 25 años, la producción total de yuca ha aumentado sus-tancialmente debido a un incremento en el área sembrada y en el rendimientopromedio. Este aumento se debe en parte a los esfuerzos realizados por institu-ciones como el Centro Internacional de Agricultura Tropical (CIAT) y el Interna-tional Institute of Tropical Agriculture (IITA). Estas instituciones han desarro-llado agendas internacionales de investigación enfocadas en este cultivo, y hanlogrado liberar variedades de mejor productividad, tolerantes al estrés bióticoy abiótico.

La planta de yuca le ofrece ciertas ventajas a los productores que otras especiesno pueden brindar, ya que desde antaño ha sido seleccionada en ambientes conlimitantes hídricas y con baja oferta de nutrientes en el suelo, característicastípicas de la mayoría de los suelos en el trópico. Es así como la yuca cuenta convarios mecanismos que le permiten mantener el rendimiento en condicionesde estrés ambiental (Howeler, 2012).

Las características anteriormente mencionadas permiten vislumbrar el poten-cial productivo de este cultivo frente a condiciones adversas. Esto, sumado alas problemáticas relacionadas con el cambio climático, la erosión del suelo y la

INTRODUCCIÓN

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baja asistencia técnica en las parcelas de los pequeños productores muestra lanecesidad de promover el desarrollo de estrategias para la generación, transfe-rencia y adopción de tecnologías en este sistema agrícola, ya que su producciónhace parte fundamental de la seguridad alimentaria de las unidades agrícolas fa-miliares, así como de los mercados locales en diferentes regiones del país.

Por tal razón, dentro del marco del proyecto del Corredor Tecnológico Agroin-dustrial CTA-2 y el subproyecto “Validación de estrategias tecnológicas dispo-nibles para los cultivos de plátano y yuca, mediante la implementación de lametodología PIPA en el departamento de Cundinamarca” (que en adelante sedenominará Subproyecto Plátano y Yuca), se realizó la instalación de Parcelasde Investigación Participativas Agropecuarias (PIPA), con el fin de validar opcio-nes tecnológicas que permitieran mejorar las condiciones productivas de loscultivos, bajo un entorno de aprendizaje mutuo y actividades de transferenciade tecnología. Esto permitió la redacción del presente documento, recomenda-do para las condiciones productivas del departamento de Cundinamarca; sinembargo, las recomendaciones de manejo incluidas pueden llegar a ser valida-das y adaptadas a otras zonas agroecológicas donde se cultiva yuca.

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Diagnóstico del sistema productivo

La yuca es un producto importante para la seguridad alimentaria. Por tanto, sehace necesario mejorar su sistema de producción, hacer uso eficiente de losrecursos (suelo, agua, agroquímicos, etc.), maximizar los rendimientos y redu-cir los costos de producción. Con el fin de contribuir a la mejora del sistemaproductivo de la yuca en Cundinamarca, el Subproyecto Plátano y Yuca com-probó diferentes tecnologías en tres PIPA localizadas en las veredas El Plomoy Santa Teresa en el municipio de Paime (dos parcelas) y la vereda El Nopal enel municipio de Yacopí (una parcela), pertenecientes a la provincia de Rionegro,Cundinamarca.

Para incrementar el impacto del Subproyecto Plátano y Yuca en el sistema pro-ductivo de yuca en la provincia de Rionegro se adelantó un diagnóstico partici-pativo, el cual se basó en una caracterización de 80 productores de yuca paraidentificar las limitantes técnicas del sistema productivo en los municipios dePaime y Yacopí.

Con los resultados generales del diagnóstico participativo se pudo constatarque el sistema productivo de yuca presenta limitantes respecto a: 1) canalesde comercialización y mercados; 2) baja asistencia técnica, ya que la mayoríade decisiones técnicas se toman con base en el conocimiento tradicional o enla recomendación de otro productor; 3) desconocimiento del manejo de plagasy enfermedades; 4) desconocimiento y nula aplicación de prácticas de manejoy conservación de suelos y fertilización, lo cual es una limitante para que lasplantas puedan expresar su potencial genético de producción; 5) limitada mano

DIAGNÓSTICO DEL SISTEMA PRODUCTIVO

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de obra para realizar oportunamente prácticas culturales; 6) propagación desemillas de la propia finca o de la zona sin realizar su selección y tratamientoadecuado, y 7) falta de asociatividad, lo cual disminuye la posibilidad de quelos productores puedan acceder a mercados o participar en proyectos estatales.No obstante, el análisis permitió identificar oportunidades y fortalezas respectoa: 1) disposición para trabajar en proyectos participativos, 2) acceso a créditospor parte de los productores, 3) propiedad de los predios, y 4) diversificaciónde sus cultivos.

Por otro lado, uno de los principales problemas que ha limitado el crecimientode la cadena productiva de yuca es el deterioro fisiológico poscosecha (DFP),reflejado en un corto período de vida útil por deterioro poscosecha en menosde 48 horas de extraídas las yucas del suelo (Cenóz, López y Burgos, 2001). Estogenera pérdidas económicas que van desde leves hasta moderadas, asociadasa la vez a factores como la variedad del material vegetal, los daños mecánicosque sufren durante la cosecha y las condiciones ambientales como temperaturay humedad relativa.

Una vez desarrollado el diagnóstico, con el fin de validar opciones tecnológicasque permitieran mejorar las condiciones productivas del cultivo, en el marcodel Subproyecto Plátano y Yuca se visitaron varias fincas de posibles candida-tos que habían sido postulados por los demás agricultores para la instalaciónde las tres PIPA. Luego de esto se escogieron aquellas parcelas con condicio-nes agroclimáticas adecuadas para el desarrollo del cultivo, equidistantes conrespecto a los demás predios de productores vinculados al subproyecto, y pre-feriblemente con vías de acceso adecuadas para la movilización del personal ymateriales. Para ello, el productor seleccionado debió manifestar completa dis-ponibilidad para implementar las tecnologías, ser receptivo y estar dispuesto arealizar las labores asignadas en el desarrollo de la PIPA e igualmente, permitirla realización de eventos de transferencia de tecnología en la finca.

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Generalidades del cultivo

Producción

A nivel global durante 2011 se produjeron 252 millones de toneladas de yu-ca, en 19,6 millones de hectáreas. África Subsahariana fue el mayor productoraportando un 56 % de la producción global, seguido por Asia con un 30 % y fi-nalmente América Latina y el Caribe con un 14 %. Sin embargo, cabe resaltarque África Subsahariana a pesar de ser el mayor productor es el que presentael menor rendimiento promedio, con 10,8 toneladas por hectárea seguido porAmérica Latina y el Caribe (12,8 t/ha) y finalmente Asia con el mayor rendimien-to promedio (19,6 t/ha) (Howeler, Thomas y Lutaladio, 2013).

En Colombia, para el año 2016 los departamentos de mayor producción fueron:Meta, Bolívar, Córdoba, Cauca, Sucre, La Guajira, Atlántico, Arauca y Magda-lena que agruparon el 80 % de la producción nacional. Para el mismo año enCundinamarca se destacan los municipios de Paime, Viotá, San Cayetano, El Pe-ñón, Caparrapí y Yacopí con producciones superiores a 2500 t (DepartamentoAdministrativo Nacional de Estadística DANE, 2015).

Orígenes e importancia del cultivo de la yuca

La yuca tiene como centro de origen la región de Mesoamérica, donde fue do-mesticada por poblaciones aborígenes hace alrededor de 6000 años (Allem, 2002).

GENERALIDADES DEL CULTIVO

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Para el año 2017 fue el quinto producto básicomás importante después delmaíz,el trigo, el arroz y la papa (Organización de las Naciones Unidas para la Agricul-tura y la Alimentación [FAO], 2019). Es, a la vez, un componente básico en ladieta de más de mil millones de personas (Fondo Internacional de DesarrolloAgrícola [FIDA] y FAO, 2000), y junto con los mencionados productos y la cañade azúcar, constituyen las fuentes de calorías más importantes en las regionestropicales del mundo (Ospina y Ceballos, 2002).

La planta de yucaLa yuca es una planta arbustiva que pertenece a la familia Euphorbiaceae, la cuales cultivada por sus raíces ricas en almidón. Generalmente es producida porpequeños agricultores como un cultivo de subsistencia ya que es tolerante alos suelos pobres y las condiciones climáticas adversas (FAO, 2013).

Las características morfológicas de la yuca son altamente variables, lo cual indi-ca un alto grado de hibridación interespecífica. Existen muchos cultivares queexhiben distintas características que pueden ser usadas para la investigación. Espor esto que dar una descripción precisa de la morfología de la planta de yucaes difícil, ya que además de existir un gran número de variedades también sepueden presentar variaciones en algunos caracteres debido a la interacción delgenotipo con el ambiente.

Raíces: el sistema radical de la yuca está conformado por raíces fibrosas y tube-rosas morfológicamente similares. Sin embargo, las tuberosas en cierta etapade desarrollo comienzan a acumular almidón en el parénquima creciendo ra-dialmente; por su parte, el crecimiento longitudinal no es tan extenso como enlas fibrosas. La acumulación de almidón las convierte en un vertedero fuerteen las etapas finales del ciclo de cultivo. Cuando la planta de yuca proviene desemillas (reproducción sexual), ésta genera una raíz pivotante y es la primera enconvertirse en una raíz tuberosa (Domínguez, 1983). Por su parte, en la repro-ducción asexual con la siembra de trozos de tallos llamados cangres o estacas,se forma un sistema radical fibroso proveniente de un callo en la parte inferiorde la estaca, sin presentarse una raíz principal. La orientación de las raíces tu-berosas está determinada en cierto grado por el ángulo de siembra de la estaca.

LA PLANTA DE YUCA

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Cuando el cangre es sembrado verticalmente, se producen raíces alrededor dela callosidad que se forma en el extremo inferior del cangre y algunas raíces delas yemas axilares tienden a llenarse (Figura 1a), mientras que cuando la posi-ción de siembra es horizontal o inclinada, se desarrollan raíces a ambos ladosdel cangre lo cual tiene como consecuencia la formación de raíces tuberosas aambos lados (Figura 1b).

Figura 1 Distribución de las raíces según la posición de siembra: a) Vertical. b) Inclinada.

Fuente: Equipo CTA-2, Subproyecto Plátano y Yuca (2018), modificado de Domínguez (1983).

El ángulo de siembra no influye en el rendimiento del cultivo, pero sí es rele-vante cuando no se tiene suficiente humedad en el suelo, dado que cuando secoloca el cangre en forma vertical las raíces tienden a profundizar más en elperfil del suelo y aprovechar más el agua que se localiza a mayor profundidad.Sin embargo, esta condición implica consumo de mayor energía durante la co-secha para extraer el sistema radical. Según Domínguez (1983), los tejidos quecomponen una raíz tuberosa están divididos en tres categorías:

• Cáscara: agrupa dos tipos de tejido, el peridermo y la corteza, que tienencomo función proteger la pulpa y evitar la deshidratación (Figura 2).

• Pulpa: tejido de la raíz que más se consume; está compuesto principalmen-te por tejido secundario del xilema derivado del cambium, cuyas célulascontienen gránulos de almidón (Figura 2).


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• Fibras centrales: corresponden a un tejido de células endurecidas del xile-ma, las cuales tienen una dureza, longitud y espesor variable, y dependenprincipalmente de la variedad (Figura 2).

Figura 2 Tejidos que componen una raíz tuberosa de yuca.

Fuente: Equipo CTA-2, Subproyecto Plátano y Yuca (2018), modificado de Domínguez (1983).

Tallo: el tallo de la planta de yuca está formado por nudos y entrenudos. Losnudos son los puntos donde se une el peciolo de la hoja con el tallo. Ademásse encuentra una yema axilar protegida por una protuberancia que puede darpaso a una nueva rama, mientras que los entrenudos son las porciones del talloque se encuentran delimitadas por dos nudos sucesivos (Figura 3).

La longitud de los entrenudos puede depender, entre otros factores, de la varie-dad, la edad de la planta, el agua disponible para esta, los ataques de insectos olas condiciones de estrés en general. En la reproducción asexual de una estacase pueden desarrollar varios tallos, lo que lleva a ciertos productores a realizarun raleo de estos (Edison, 2007).

La planta de yuca tiene generalmente un sistema de ramificación simpodial e ini-cialmente los brotes que salen de la estaca llevan un crecimiento vertical lineal.Sin embargo, en un punto dado dichos ápices entran en un estado de latenciao se transforman en reproductivos, mientras que las yemas axilares cercanas

FASES FENOLÓGICAS

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al ápice retoman el desarrollo y así sucesivamente. No obstante, existen varie-dades con una fuerte dominancia apical y en consecuencia su arquitectura notiene ramificaciones, asemejándose a un sistema de ramificación monopódica.

Figura 3 Morfología del tallo de yuca.

Fuente: Equipo CTA-2, Subproyecto Plátano y Yuca (2018).

Hojas: las hojas de la yuca son simples, formadas por lámina foliar y peciolo.Son palmeadas y profundamente lobuladas, generalmente impares. Los lóbulosdel medio son de mayor tamaño que los laterales y pueden tener una longitudde 4 a 20 cm (Ceballos y de la Cruz, 2002) (Figura 4). El tamaño de las hojasvaría a través del dosel de la planta, aumenta hasta la aparición de la primeraramificación reproductiva, que se da alrededor de los cuatro meses y, a partirde la ramificación, aumenta la producción de hojas que disminuyen su tamaño.

Figura 4 Hojas de yuca tomadas en el primer (a), segundo (b) y tercer (c) tercio del dosel.


Fases fenológicasLas fases fenológicas de las plantas de yuca para aquellas variedades que soncosechadas entre los 12 y los 14 meses se pueden referenciar en dos aspectos,según el desarrollo de la parte aérea y la parte subterránea. Van desde la fase


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de establecimiento a la de maduración y desde la fase de enraizamiento a la deacumulación, respectivamente (Cadavid y López, 2015) (Figura 5).

Parte aéreaFase de establecimiento: está influenciada por la preparación que se realiceal terreno, su contenido de humedad, y el material de siembra. Va desde lasiembra hasta los dos primeros meses después de esta.

Fase de máxima actividad fisiológica: fase que va desde el segundo hasta elquinto mes después de la siembra. En esta fase se presenta mayor concentra-ción de nutrientes en las hojas superiores. En este sentido, la parte aérea iniciaun proceso de elaboración de fotoasimilados o compuestos orgánicos que luegoson distribuidos a través del floema a los órganos de almacenamiento. Debidoa que es una época crítica para garantizar el llenado, se requiere hacer un ade-cuado manejo sanitario de plagas y enfermedades.

Fase de maduración: va desde el séptimo u octavo mes hasta la cosecha. Enesta fase se logra acumulación de materia seca superior al 50 % según el tipo dematerial sembrado.

Parte subterráneaFase de enraizamiento: después de la siembra y durante el primer mes, la plan-ta depende exclusivamente de las reservas presentes en las semillas (estaca ocangre); se presenta desarrollo de raíces sin función de absorción.

Fase de tuberización: inicia entre los 30 y los 45 días después de la siembra y vahasta los tres o cuatro meses. Durante este periodo la planta define la cantidadde raíces y cuántas de estas entran a la fase de engrosamiento.

Fase de engrosamiento: fase que incluye acumulación de materia seca y dealmidón, la cual inicia entre el tercer o cuarto mes y se prolonga hasta el quintoo sexto mes después de la siembra.

Fase de acumulación: inicia entre el quinto y el sexto mes y se prolonga hastala cosecha, donde se presenta la mayor ganancia de peso. Es un periodo crítico

PARTE SUBTERRÁNEA

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donde no deben presentarse afectaciones en la parte aérea y subterránea, ta-les como ataques severos de plagas y/o enfermedades, ya que esto afectaría elcontenido de materia seca y el rendimiento con base en peso seco.

Figura 5 Ciclo fenológico del cultivo de yuca en plantas cosechadas entre los 12 y los 14 meses.

Fuente: Equipo CTA-2, Subproyecto Plátano y Yuca (2018), modificado de Cadavid y López (2015).

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Materiales de siembra

En la actualidad, gracias a los procesos de mejoramiento genético existe unagran diversidad de variedades de yuca que han llevado a un favorecimiento decaracterísticas como la fotosíntesis, el transporte de azúcares y el metabolismodel almidón, así como una disminución de la formación de compuestos ciano-génicos y la tolerancia a condiciones de estrés. Esto a su vez ha permitido queexista una amplia gama de cultivares con características contrastantes (Howeler,2012; Wang et ál., 2014). El Centro Internacional de Agricultura Tropical (CIAT)es líder en la producción de variedades de yuca con diferentes funcionalidadesy adaptadas a gran variedad de ambientes. Esta institución trabaja en el mejora-miento de la yuca desde 1969, en busca de aumentar el rendimiento por unidadde área, asegurar la estabilidad del rendimiento a lo largo del tiempo y mante-ner o mejorar la calidad del producto (Ospina y Ceballos, 2002). Cabe resaltarque, para asegurar la estabilidad de los rendimientos, el material debe tolerar oser resistente a los principales factores bióticos y abióticos que limitan la pro-ducción (Alzate, 2009). En este contexto, algunas de las variedades adaptadas aColombia son las reportadas por Ospina y Ceballos (2002) (Tabla 1).

En el marco del Subproyecto Plátano y Yuca se realizó la evaluación de los mate-riales de yuca Peruana (MPER 183), Armenia (HMC1) y Verdecita (MCOL-1505)bajo las condiciones edafoclimáticas de los municipios de Paime y Yacopí (Cun-dinamarca), que están ubicados en la provincia de Rionegro, en altitudes entrelos 960 y los 1400 msnm. Dichos materiales son ampliamente cultivados en losdepartamentos de Valle del Cauca, Cauca (norte), Quindío, Risaralda, Antioquia,

MATERIALES DE SIEMBRA

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Tabla 1 Procedencia de algunas variedades de yuca y su año de liberación en Colombia

Lugar de procedencia Material

Costa Norte ICA Negrita (1993)

Corpoica Colombiana (2000)

Corpoica Sucreña (2000)

Corpoica Caribeña (2000)

Corpoica Rojita (2000)

Valles interandinos ICA P-11, CM 40 (1984, Manquiteña)

ICA P-12, CMC 76 (1984, Verdecita)

ICA P-13 (1986, ICA Armenia)

Llanos Orientales CMC 9 (Llanera)

ICA Catamare (1990, Raya 7)

ICA Cabucán (1990)

Reina (2000)

Juan V

Brasil MCOL 2264 (Ornamental)

Fuente: Ospina y Ceballos (2002).

Santander, Norte de Santander y Tolima. A su vez son recomendados para lazona cafetera en el trópico medio, en altitudes entre los 800 y los 1200 msnm,temperaturas entre los 24 y los 28 °C y precipitaciones de 1000 a 2000 mm/año.

Las variedades evaluadas son para el consumo en fresco y la diferencia princi-pal es el momento de ramificación, es decir, cuando el tallo principal presentala primera bifurcación. En las variedades Verdecita y Peruana la ramificaciónes más temprana que en la variedad Armenia. Por otro lado, el color del pecio-lo de la variedad Verdecita es verde, a diferencia de las variedades Peruana yArmenia, que presentan una coloración rojiza (Figura 6). De acuerdo con lasevaluaciones realizadas, el material Peruana presentó unas características dedesarrollo y producción superiores a las del material utilizado tradicionalmen-te por los productores (Armenia). Su rendimiento fue de 2,4 toneladas más porhectárea que el rendimiento de la variedad Armenia, lo cual perfila a dicho ma-terial (Peruana) como una opción viable en las zonas productoras de yuca en eldepartamento de Cundinamarca.

PRODUCCIÓN DE SEMILLA CON CALIDAD

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Figura 6 Variedades Peruana (a), Armenia (b) y Verdecita (c).


Producción de semilla con calidad

El métodomás utilizado para la propagación del cultivo de yuca es el vegetativo,que consiste en la siembra de estacas de tallo de aproximadamente 20 cm delongitud con tres o cuatro yemas. Debido a que las raíces son más valoradas porparte de los productores, estos descuidan los tallos destinados para la siembra,lo que provoca su deterioro y pérdida de la calidad y/o viabilidad de las semi-llas. De acuerdo con esto, se requiere desarrollar estrategias que permitan laobtención de material de siembra de excelentes condiciones para asegurar unaproducción rentable y conservar la sanidad de la semilla. En este contexto, laproducción de semillas se puede realizar en campo mediante la propagación enáreas destinadas para tal fin (con la estrategia denominada Rincón de la Fortu-na que se detallará más adelante en este capítulo) o en laboratorio, medianteel cultivo de tejidos in vitro.

Propagación in vitro

La propagación in vitro es una técnica para la obtención de plantas nuevas apartir de una o más células, lo que permite a su vez producir a partir de unaplanta una gran cantidad de copias de esta (Figura 7 y Figura 8). Para adelan-tar esta propagación se requieren condiciones controladas, que van desde laselección en campo de una planta madre con excelentes características agronó-micas y productivas, hasta el endurecimiento en invernadero de las plántulasobtenidas.


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Figura 7 Proceso de propagación in vitro de plantas de yuca. a) Selección y extracción de puntos

de crecimiento de meristemos a propagar. b) Siembra de puntos de crecimiento en agar nutritivo. c)

Meristemo bajo condiciones de crecimiento in vitro.


Selección de variedades: en este aspecto se debe tener en cuenta la adaptaciónde las plantas a las condiciones edafoclimáticas donde van a ser sembradas,su tolerancia a plagas y enfermedades, su vigor y su rendimiento productivo(Benavides, Espitia, Bracho y Benítez, 2017).

Figura 8 Inducción de raíces en explantes de yuca. a) Explante recién sembrado. b) y c) Desarrollo de

órganos.


PRODUCCIÓN DE SEMILLA CON CALIDAD

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Micropropagación en laboratorio: mediante técnicas especializadas de labo-ratorio se obtiene el material inicial, siguiendo las etapas que se describen acontinuación.

• Selección y desinfección del material: selección y desinfección de tejidosprovenientes de plantas en perfecto estado sanitario (Figura 7a).

• Establecimiento del explante: retiro de los puntos meristemáticos e intro-ducción de estos en medios de cultivo con la composición nutricional yhormonal necesaria para su crecimiento (Figura 7b).

• Propagación: selección de brotes con buenas características de desarrolloe incorporación de estos a un medio para inducir la formación de nuevosbrotes, los cuales se subdividen y se siembran nuevamente en el medio decultivo (Figura 7c).

• Enraizamiento: una vez realizada la propagación, se seleccionan los explan-tes para inducir la formación de raíces. Este proceso se lleva a cabo colocan-do el explante en un medio con una composición de nutrientes y hormonasque permite la inducción de raíces (Figura 8).

Endurecimiento de plántulas: las plantas en laboratorio están bajo cuidadosespeciales y no pueden ser llevadas directamente a campo. Por lo anterior, serequiere que pasen por una fase transicional de endurecimiento en invernade-ro, para inducir la adaptación de las plántulas a condiciones de campo (Figura 9).En esta etapa de la propagación in vitro se deben tener en cuenta factores talescomo: a) sustrato que garantice infiltración y desarrollo de raíces; b) disponi-bilidad de agua mediante riego constante para evitar la deshidratación de lasplántulas, y c) uso de polisombra que reduzca la radiación y temperatura paramantener la turgencia de las plántulas. Cabe resaltar que las plántulas produci-das (plantas élite) deben ser llevadas al invernadero envueltas en papel húmedopara su posterior trasplante en el sustrato (Figura 9). Esta fase tiene una dura-ción aproximada de seis semanas, tiempo en el cual las plántulas contarán conlas condiciones fisiológicas necesarias para tolerar las condiciones de un viveroconvencional.


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Figura 9 Plantas propagadas in vitro (a) y etapa de endurecimiento de estas (b).


Instalación de camas de desarrollo

Una vez las plántulas han alcanzado su etapa de endurecimiento pueden serubicadas en camas de desarrollo, antes de la siembra en campo. Estos espaciosdeben contar con condiciones adecuadas para el sostenimiento de los materia-les de yuca. Las camas de desarrollo pueden ser construidas con materiales defácil adquisición y/o obtenidos en la finca, siguiendo las siguientes recomenda-ciones (Figura 10b):

• Contar con una cubierta de polisombra para regular la radiación sobre lasplántulas.

• Asegurar un cerramiento lateral con polisombra omallas, con el fin de evitarel ingreso de animales.

SIEMBRA DE MATERIALES IN VITRO

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• Construir camas de germinación o contenedoras adaptadas para la siembra,que cuenten con el sustrato adecuado para las plantas. Es importante queel sustrato promueva el crecimiento de las raíces de las plantas y que losmateriales para la elaboración del sustrato sean de fácil consecución en elmunicipio.

• Asegurar la cercanía de una fuente de agua de buena calidad para el sumi-nistro hídrico a las plántulas, manteniendo el sustrato con una humedadcercana a la capacidad de campo.

Figura 10 a) Planta propagada in vitro. b) Adecuación de camas de desarrollo en el municipio de

Yacopí, Cundinamarca.


Siembra de materiales in vitro

En la siembra de plantas propagadas in vitro se debe tener especial cuidado enno dañar las raíces, así como asegurar la extensión total de la raíz principal decada planta en el sustrato, con lo cual se evitan deformaciones como la llamada“cola de marrano”. Las plantas propagadas tienen un costo relativamente eleva-do, por lo cual su uso no está destinado a la producción de raíces comercialessino a la producción de semillas tipo cangre, también denominadas “categoría


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básica”. Para tal fin, las plantas propagadas in vitro deben ser trasplantadas acampo y, una vez allí, se les debe dar un manejo diferenciado en espacios des-tinados a la producción de semilla, siguiendo los parámetros del Rincón de laFortuna planteados por el CIAT en colaboración con la Corporación Colombianade Investigación Agropecuaria [Corpoica] (Ceballos y Hershey, 2017) y que seexplican a continuación.

Rincón de la FortunaCon el fin de que el agricultor sea autosuficiente en la producción de semilla debuena calidad, se ha planteado una estrategia denominada el “Decálogo del Rin-cón de la Fortuna” (Ceballos y Hershey, 2017), que permite producir el materialde siembra. Dicha estrategia consiste en seguir los siguientes pasos:

1. Identificar el 10 % del área dedicada al cultivo de la yuca para la ubicacióndel Rincón de la Fortuna, área que debe ser considerada como la mejorparte del lote.

2. En el Rincón de la Fortuna se van a obtener cangres de excelente calidadque serán la semilla para el ciclo de cultivo siguiente.

3. Usar tallos de buena calidad en la siembra, pues son la base fundamentalpara asegurar el éxito del cultivo.

4. En el Rincón de la Fortuna se debe dedicar especial cuidado y atención a laeliminación de arvenses y a la oportuna fertilización con abonos orgánicosy químicos (Figura 11).

5. Vigilar con atención el Rincón de la Fortuna, recorrerlo periódicamente yretirar toda planta diferente o que presente señales de enfermedad o dehaber sido atacada por insectos.

6. Cuando llegue el momento de la cosecha, realizar esta práctica en el restodel lote menos en el Rincón de la Fortuna. La cosecha del Rincón de laFortuna se realiza únicamente cuando falten pocos días para el inicio delas lluvias y para la siembra del siguiente cultivo de yuca.

RINCÓN DE LA FORTUNA

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7. Durante la cosecha del Rincón de la Fortuna, levantar las plantas y solocosechar tallos de plantas con buena producción de raíces y que no tengansíntomas de cuero de sapo o pudrición.

8. Almacenar los tallos cosechados bajo la sombra de un árbol frondoso ycortar los cangres solo al momento de la siembra.

9. Antes de la siembra, hacer tratamiento químico (mezcla de Propineb y Clor-pifiros en sus dosis comerciales) de los tallos o cangres para curarlos. Sedebe evitar llevar tallos enfermos o con plagas al lote, pues pueden afectara todo el sistema productivo.

10. Repetir los nueve pasos mencionados y prepararse para tener una planta-ción nueva excelente.

Figura 11 Aplicación de fertilizante químico edáfico en una planta (a) y control de arvenses mediante

el plateo (b) en el Rincón de la Fortuna.



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Selección de semilla para la siembra

Los tallos que son usados para la obtención de semilla deben estar en buenestado de maduración (de 10 a 15 meses de edad). Se pueden tomar tallossecundarios cuando la ramificación está por debajo de los 1,5 m y solo tallosprimarios cuando la ramificación se da a una mayor altura (Iglesias, 1994). Laselección positiva de la semilla de yuca consiste en extraer la planta completa,verificando el estado sanitario foliar y de raíces, prestando atención a posiblesataques de insectos, como barrenadores de tallos o raíces (Figura 12). Además,se debe observar la producción de raíces para tomar cangres de las plantas demayor rendimiento (López, 2002). Durante la selección y corte de la semilla sedeben descartar tallos muy lignificados y desinfestar la herramienta de trabajo.En la Figura 13 se pueden observar los cangres cortados y seleccionados para lasiembra.

Figura 12 Selección positiva de una planta completa.

Fuente: Equipo CTA 2, Subproyecto Plátano y Yuca (2018).

SELECCIÓN DE SEMILLA PARA LA SIEMBRA

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Figura 13 Cangres cortados y seleccionados para la siembra.


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Manejo agronómico del cultivo

Es importante considerar que en el diagnóstico realizado al sistema productivode yuca en el departamento de Cundinamarca se encontró que este cultivo seencuentra generalmente asociado a café, cacao, cítricos y plátano. Por lo tanto,el manejo agronómico que hace el agricultor es el mismo para todos sus culti-vos. Considerando lo anterior, a continuación se describe el manejo agronómicoespecífico para el cultivo de yuca.

Conservación de suelos y establecimiento del

cultivo de yucaLa siembra de yuca en suelos de ladera, como los de la región de la provincia deRionegro en Cundinamarca, debe ser manejada teniendo en cuenta las siguien-tes recomendaciones con el fin de reducir las pérdidas de suelo por erosión(Cadavid y López, 2015):

• Mejora en las condiciones del material de siembra mediante la selección yel tratamiento de las estacas.

• Reducción del área sembrada empleando mejores técnicas de cultivo y dis-minuyendo la siembra en pendientes fuertes.

• Reducción en la preparación del terreno implementando labranza mínima.

MANEJO AGRONÓMICO DEL CULTIVO

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• Preparación del suelo y siembra con curvas a nivel.

• Aplicación de un plan eficiente de fertilización integrada.

• Siembra de franjas de barreras vivas.

• Cubrimiento del suelo con mulch (cubierta protectora).

• Siembra e incorporación de abonos verdes.

Los siguientes apartados se enfocan en el manejo y conservación de suelosmediante la labranza cero y la siembra con curvas a nivel.

La labranza cero

La labranza cero o siembra directa es una de las estrategias implementadas parala conservación de suelos, donde la semilla es directamente colocada en suelosin el uso previo de implementos de labranza agrícola como rastrillos, discos,rotovator, cincel, etc. El uso de este método permite la acumulación de materiaorgánica en el suelo y el secuestro de carbono, que favorece una mayor agre-gación, infiltración y aireación del suelo, reduciendo las pérdidas por erosión.La siembra de yuca bajo el sistema convencional (con el uso de rotovator) encomparación con la siembra directa no presenta diferencias en el rendimientodel cultivo (Rivas et ál., 2009), por lo que la siembra directa no solo funcionacomo una práctica de conservación, sino que puede reducir los costos de pro-ducción. Sin embargo, en suelos que presenten problemas de compactación porefecto del pisoteo de ganado, se puede considerar el uso del cincel como unaestrategia de labranza mínima.

Trazado en curvas a nivel

Los surcos para el cultivo de yuca en zonas de ladera se deben hacer imple-mentando curvas a nivel (como práctica de trazado) y bajo técnicas de labranzamínima. El trazado de los surcos debe ir en contra de la pendiente del terreno, lo

TRAZADO EN CURVAS A NIVEL

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cual facilita a su vez las labores de mantenimiento del cultivo, un mayor porcen-taje de raíces creciendo en contra de la pendiente, facilidad en los procesos decosecha y la disminución de remoción de suelo. Los arreglos más utilizados enla siembra de yuca son en cuadro y rectangular (Figura 14) y su implementacióndepende de la distancia de siembra que se vaya a manejar.

Figura 14 Sistema de trazado en cuadro (a) y rectangular (b) para plantas de yuca.


Para el trazo de las curvas a nivel se usan herramientas de fácil fabricación ymanejo como el caballete y el agronivel o nivel tipo A.

• Caballete: consiste en tres listones de madera: uno en la parte superior ydos que lo sostienen (patas). La longitud del listón superior va a estar de-terminada por la distancia entre las plantas, mientras que las dimensionesrecomendadas para las patas son de 70 cm de largo y 6 cm de ancho (Figu-ra 15a). Sin embargo, la longitud de las patas se puede ajustar a la estaturade la persona para facilitar el manejo de la herramienta. Finalmente, en laparte superior se sujeta un nivel tipo burbuja el cual permitirá identificar lavariabilidad en el nivel del terreno y ajustar las curvas.

• Agronivel o nivel tipo A: consta de dos palos de 2 m y uno de 1,25 m delargo, tres tornillos, una cuerda o pita de 2,5 m de longitud y una plomada oelemento pesado (puede ser una piedra o una botella con arena). Se juntanlos dos palos más largos y se atornillan en uno de los extremos, buscandoque la cabeza del tornillo quede salida para amarrar la cuerda con la ploma-da. El travesaño de 1,25 m se debe fijar de tal forma que la apertura final


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del instrumento coincida con la distancia entre plantas que se desea mane-jar. Al extremo de la cuerda se amarra la piedra o el elemento pesado quesirve como plomada. Se puede utilizar también un nivel de burbuja fijadoal travesaño (Figura 15b).

• Trazado del terreno: En la parte superior del lote se coloca una estaca en elpunto donde se va a iniciar el trazado. Se ubica una de las patas del nivel alpie de la estaca y la otra se gira en forma de compás (hacia arriba o abajo)hasta que la plomada —o la gota del nivel—, quede en la mitad. En ese puntose coloca otra estaca y se repite este procedimiento hasta llegar al final dela primera curva. Es común que la línea de estacas presente ángulos quedificulten la siembra, para lo cual se pueden reacomodar un poco las estacaspara que quede una línea suave sin curvas muy pronunciadas (Figura 16 yFigura 17).

Figura 15 Caballete (a) y agronivel o nivel tipo A (b) para la elaboración de curvas a nivel.


Figura 16 Corrección de la curva obtenida.


DISTANCIA DE SIEMBRA

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Figura 17 Sistema de trazado con curvas a nivel para plantas de yuca.


Distancia de siembra

La distancia entre cada sitio de siembra está definida por el tipo de materialvegetal y las condiciones ambientales. Definir una distancia de siembra adecua-da es de gran relevancia para hacer uso eficiente de los recursos, entre ellos elsuelo. Una baja densidad requiere más área para la siembra de una determina-da población, mientras que una densidad alta necesita menos área, pero puedetraer dificultades en el manejo del cultivo y problemas fitosanitarios. En estesentido, luego de evaluar dos distancias de siembra en el municipio de Yacopí,


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se encontró que una distancia de siembra de 1,5 m por 1,5 m puede lograr ma-yor rendimiento por planta en comparación con la distancia de 1 m por 1 m.

AhoyadoLuego de definir la distancia de siembra que se va a implementar y tener mar-cados los puntos donde se establecerán las plantas, se procede a realizar laapertura y preparación de los sitios donde se sembrarán las estacas de yuca ocangres. Los hoyos requieren una profundidad de 10 a 15 cm. Según los resul-tados del análisis químico de suelos, el ingeniero agrónomo debe definir si serequiere realizar la práctica de encalado. Si es necesario encalar, se debe haceral menos 30 días antes de la siembra.

SiembraSe recomienda hacer la cosecha de los cangres lo más cerca posible de la siem-bra del nuevo cultivo para evitar el deterioro en la calidad de la semilla y, encaso de ser necesario un almacenamiento, los tallos deben quedar a la sombra,en posición vertical y en contacto con el suelo para evitar su deshidratación(Figura 18a). Para evitar problemas fitosanitarios, previamente a la siembra delas estacas estas se deben desinfectar sumergiéndolas en un recipiente con unasolución de insecticida y fungicida (mezcla de Propineb y Clorpifiros en sus do-sis comerciales) (García y Rodríguez, 1994; Lozano, Toro, Castro y Belloti, 1987)(Figura 18b). La época de siembra debe estar regida por los periodos de lluvias,buscando garantizar humedad durante el periodo de brotación y evitando elexceso de lluvias que propaguen enfermedades.

La profundidad de siembra recomendada es de 10 cm, con esto se evitan posi-bles volcamientos y la exposición de las raíces (Toro y Atlee, 1983). La posicióndel cangre horizontal, vertical u oblicuo no influye en el rendimiento de la plan-ta. Sin embargo, la siembra vertical promueve una mayor profundización de lasraíces dificultando la cosecha. Por su parte, Toro y Atlee (1983) también seña-lan que la siembra horizontal puede estimular la brotación de muchos tallossecundarios, por lo cual es recomendada la siembra oblicua (Figura 19).

SIEMBRA

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Figura 18 a) Varas de yuca almacenadas. b) Desinfección de cangres.


En este sentido, en zonas de alta pendiente como las que se encuentran en losmunicipios productores de yuca del departamento de Cundinamarca, la siembraoblicua cobra relevancia ya que las estacas sembradas de esta forma garantizanel desarrollo de las plantas en contra de la pendiente. Por otro lado, en climashúmedos es recomendado dejar uno o dos puntos de crecimiento expuestospara estimular la brotación más temprana.

Figura 19 Siembra de un cangre de yuca con ahoyado oblicuo.



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De acuerdo con lo anterior, el sentido de inclinación de los nudos influye en eldesarrollo de un mayor porcentaje de raíces, lo cual presenta, a su vez, ventajaspara las prácticas de fertilización y cosecha. Esto último es debido a la disminu-ción de remoción de suelo en contra de la pendiente durante la cosecha de lasplantas. En la Figura 19 y la Figura 20 se puede observar la posición en la quese debe sembrar la estaca, para garantizar un mayor porcentaje de raíces.

Figura 20 Posicionamiento y direccionamiento de los cangres.


Manejo eficiente de la fertilización integradaEl manejo eficiente de la fertilización integrada involucra el diagnóstico de lafertilidad del suelo, conocer el historial del lote, plantearse una meta de rendi-miento, conocer la cantidad y la época en la cual la planta requiere los nutrien-tes, implementar un plan eficiente de fertilización integrada que incluya fuentesorgánicas, biológicas y químicas, y conocer las condiciones ambientales que pre-dominan en el lote de siembra. Lo anterior se complementa con el seguimientoal cultivo que permita diagnosticar posibles desbalances nutricionales y hacera tiempo los respectivos ajustes. El manejo adecuado de la fertilidad del sueloes una de las formas de prevenir su erosión, dado que permite el desarrollo deplantas más vigorosas, favoreciendo a su vez la agregación del suelo, la cual semejora mediante el empleo de biofertilizantes y de fertilizantes orgánicos.

Historial del loteLa fertilización en un terreno proveniente de un periodo en barbecho difierede la fertilización de un lote cultivado. El manejo histórico de la fertilizacióny la respuesta del cultivo a los diferentes planes de fertilización son un punto

META DE RENDIMIENTO

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de referencia para realizar ajustes a los planes de fertilización propuestos, deacuerdo con los resultados del análisis de suelo y/o foliar. Para los lotes que sesiembran por primera vez, se debe considerar la extracción total de nutrimen-tos por parte de la planta, mientras que en los lotes previamente sembradoscon yuca la extracción de la raíz toma mayor relevancia, debido a que la parteaérea puede ser incorporada cuando no es usada para alimentación animal oproducción de semilla.

Meta de rendimientoEl rendimiento de yuca en Colombia entre los años 2000 y 2009 se encontróen 10,5 t/ha. Sin embargo, para el mismo periodo otros países reportaron ren-dimientos de hasta 29,9 t/ha (Diaz, 2012) y, aunque existan zonas de Colombiacon un mayor rendimiento, estos datos reflejan una posibilidad de mejora eneste sentido. La meta de rendimiento influye directamente en la cantidad defertilizante a aplicar, dado que los requerimientos nutricionales varían según laproducción que se proyecta obtener. Para fijar una meta de rendimiento, ade-más de tener en cuenta el rendimiento potencial de cada variedad, se debe teneren cuenta el historial de producción del lote y los rendimientos alcanzados enotros predios de la zona.

Análisis químico del suelo y su interpretaciónPreviamente a la siembra del cultivo se requiere conocer el estado de fertili-dad del suelo. Para esto se cuenta con el análisis de suelo que permite conocerpropiedades químicas y físicas de un terreno en una época específica. Esta in-formación es de gran relevancia debido a que da a conocer la disponibilidadde nutrientes del suelo y es la herramienta para establecer medidas correctivasencaminadas a tener un mejor rendimiento, mediante la formulación de planesde fertilización sostenibles y eficientes. Para el diagnóstico de la fertilidad delsuelo se requiere la toma de una muestra representativa del lote a sembrar ysu envío a un laboratorio certificado, para la posterior interpretación de losresultados. Dichos procedimientos involucran los siguientes pasos:


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Toma de lamuestra y envío al laboratorio: en lotes donde se establecerá el cul-tivo por primera vez se recomienda tomar muestras de suelo dos meses antesde la siembra, mientras que para lotes que ya han sido sembrados, dichas mues-tras deben ser tomadas en las calles con una frecuencia de al menos dos años.El suelo de un lote no es completamente homogéneo y se pueden presentarcambios fuertes de pH, textura, profundidad u otras propiedades, que hacennecesario un manejo diferenciado de la fertilización.

En este caso, y cuando las áreas son grandes, se recomienda realizar una zo-nificación que agrupe las áreas con las mismas características y colectar variasmuestras de suelo para realizar su análisis independiente, con lo que se lograuna mayor eficiencia en la fertilización. La muestra de suelo enviada al labora-torio, a su vez, se compone de varias submuestras tomadas aleatoriamente enel terreno, sobre zonas que han sido categorizadas como homogéneas. Para latoma de las submuestras se sugiere realizar un recorrido donde los puntos demuestreo representen la totalidad de cada lote a muestrear (Figura 21).

Figura 21 Recorrido para toma aleatoria de muestras de suelo representativas para un terreno

heterogéneo que fue divido en tres lotes (muestras) más homogéneos.


En los lugares donde se tomen las submuestras es recomendable remover pie-dras, raíces, lombrices e insectos, así como plantas, vegetación superficial y

ANÁLISIS QUÍMICO DEL SUELO Y SU INTERPRETACIÓN

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desechos de cosecha en un área de 40 × 40 cm. Posteriormente, con un barrenose toman de 100 a 200 g de suelo y se depositan en un balde limpio. La muestratambién se puede tomar con pala o palín, haciendo un hueco en forma de ‘V’para luego transferir al balde la porción central. Para el cultivo de yuca se acon-seja tomar una submuestra que abarque los primeros 30 cm de profundidad(Figura 22).

Figura 22 Profundidad para el muestreo de suelos.


Las submuestras de suelo deben ser mezcladas y homogenizadas, y luego se de-ben poner en forma de círculo sobre una superficie limpia (de plástico o papel).El círculo se debe dividir en cuatro, desechando dos cuartiles opuestos. Unavez se separen las porciones, con el suelo restante se hace un nuevo círculoy se repite el proceso hasta tener una cantidad de muestra cercana a 1 kg (Fi-gura 23). El suelo seleccionado se debe empacar en una bolsa plástica limpia,previamente rotulada con la información sobre el tipo de cultivo a sembrar, elnombre de la finca y su ubicación, el nombre del productor y la fecha de tomade la muestra, entre otros datos.


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Figura 23 Cuarteo para la selección de la cantidad de muestra a enviar al laboratorio. De cada círculo

se toman dos cuartiles opuestos para formar el siguiente círculo y llegar a la muestra.


Interpretación del resultado de análisis de suelo: una vez se reciban los resul-tados del análisis de laboratorio, existen varias consideraciones para interpre-tarlos. Las más importantes son:

• pH: indica el grado de acidez del suelo, el cual se encuentra en un rangoque va desde cero (más acido) hasta 14 (más alcalino). Hay diversos gradosde acidez y alcalinidad del suelo, según lo lejos que estén del valor 7 de pH(neutralidad). La mayoría de las especies de plantas tienen como pH idealvalores cercanos a la neutralidad (Garrido, 1994).

• Conductividad eléctrica (CE): esta propiedad del suelo se refiere a la can-tidad de sales existentes en el perfil del suelo (Garrido, 1994). Cuando laCE supera los 2 deciSiemens por metro (dS/m) se afecta negativamente elcrecimiento y desarrollo de las plantas.

• Materia orgánica (MO): el carbono orgánico (CO) del suelo está asociadodirectamente a la materia orgánica proveniente de residuos orgánicos par-cialmente descompuestos (vegetales, animales y otros organismos), y a laactividad microbiana. Igualmente, se puede encontrar en forma de humus yen formas muy condensadas de composición próxima al carbono elemental

APLICACIÓN DE CORRECTIVOS

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(Gallardo, 2016). En condiciones naturales, el CO del suelo resulta del ba-lance entre la incorporación al suelo del material orgánico fresco y la salidade carbono del suelo en forma de CO2 a la atmósfera (Aguilera, 2000; Swift,2001), así como la erosión y la lixiviación. La cantidad de MO determina tan-to el contenido como la disponibilidad de algunos elementos en el suelo. LaMO contribuye con la mejora de la estructura, porosidad y agregación delsuelo, y la disminución de la erosión; también promueve la proliferación deorganismos benéficos del suelo (Garrido, 1994). Del mismo modo, aumentala capacidad amortiguadora del suelo y la capacidad de intercambio catió-nico (CIC), ya que cada 1 % de MO equivale a 2 cmol+/kg en la CIC. Por logeneral, la MO dividida por 20 es igual al porcentaje de nitrógeno (N) y suinterpretación depende de la temperatura. Se considera así un contenidobajo de MO cuando es < 5 % en clima frío, < 3 % en clima medio y 1,5 % enclima cálido (Labrador, 1996).

• Capacidad de intercambio catiónico (CIC): es la capacidad que tiene el sue-lo de retener nutrientes y está directamente relacionada con la textura (tipode arcilla) y el contenido de MO. En Colombia la CIC es muy variable y mien-tras más alta sea se considera que mayor será la fertilidad natural del suelo(Garrido, 1994; ICA, 1992). Los niveles de referencia de la CIC en suelos co-lombianos se clasifican en: baja (< 10 cmol+/kg), media (10 a 20 cmol+/kg)y alta (> 20 cmol+/kg) (ICA, 1992).

• Saturación de bases: hace referencia al porcentaje de los cationes principa-les: calcio (Ca), magnesio (Mg), potasio (K) y sodio (Na), con respecto al valorde la capacidad de intercambio catiónico efectiva [CICE] (Garrido, 1994).

Aplicación de correctivosPara la corrección de la acidez del suelo se dispone de diferentes materiales(Tabla 2), como los carbonatos, el sulfato de calcio, los óxidos e hidróxidos decalcio o magnesio y los silicatos, los cuales neutralizan la acidez del suelo y apor-tan bases como calcio o magnesio, las cuales ingresan al complejo de cambio ydesplazan iones de aluminio (Al) e hidrógeno (H). La CICE del suelo está com-puesta por la sumatoria de las bases de cambio (K+, Mg2+, Ca2+, Na+) más la


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acidez intercambiable (Al3+, H+) que, junto con la saturación de aluminio, sonde gran importancia para determinar las necesidades de material encalante. Mo-lina (1998) propone una fórmula que toma en cuenta las variables anteriores uni-das al Poder Relativo de Neutralización Total (PRNT), que considera la purezaquímica y la fineza de los materiales encalantes:

T/ha insumo = 1, 5 (Sat. Al − RAS) (CICE)100 × 𝑓

Donde:

• 1,5 es un valor para neutralizar el aluminio no intercambiable y hacer co-rrecciones de peso/volumen, con el fin de ajustar a una profundidad de in-corporación de 15 cm (Yost, Smyth y Li, 1990).

• Sat. Al es el porcentaje de saturación de aluminio dado por el análisis desuelo.

• RAS es el porcentaje de saturación de aluminio deseado.

• CICE es la capacidad de intercambio catiónico efectiva dada por el análisisde suelo.

• 𝑓es 100/PRNT

• PRNT es el poder relativo de neutralización total, que es el producto entreel equivalente químico y la eficiencia granulométrica de la enmienda sobre100 (Tabla 2).

El porcentaje de saturación de aluminio deseado del cultivo de yuca es 60 %,ya que es el límite tolerado por el cultivo sin que este genere pérdidas de ren-dimiento (Bertsch, 1995). Se recomienda el uso combinado de materiales en-calantes, con el fin de promover el mejoramiento integral tanto de las basescomo del fósforo aprovechable. Finalmente, hay que tener en cuenta que lascales solo reaccionan en presencia de agua, por lo que se debe garantizar quehaya humedad en el suelo para que se den las reacciones de óxido-reducciónnecesarias para neutralizar la acidez.

DIAGNÓSTICO DE LA FERTILIDAD DEL SUELO Y DEL ESTADO NUTRICIONAL DE LA PLANTA

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Tabla 2 Equivalente de CaCO3 de varios materiales de encalamiento

Nombre común Fórmula química Equivalente de CaCO3 %

Carbonato de calcio puro CaCO3 100

Caliza (cal agrícola) CaCO3 70-95

Cal viva CaO 150

Cal apagada Ca(OH)2 120

Cal dolomítica CaCO3MgCO3 110

Escorias Thomas - 60-70

Fuente: ICA (1992).

Diagnóstico de la fertilidad del suelo y del

estado nutricional de la planta

El análisis de suelo es una de las herramientas de mayor utilidad para formularun plan de fertilización, ya que permite conocer las características físicas y quí-micas de un determinado terreno en un tiempo específico. Una vez recibidos losresultados del análisis por parte del laboratorio, estos deben ser interpretadoscon la asesoría de un especialista en el tema, teniendo en cuenta parámetrostales como los niveles críticos de las propiedades químicas del suelo (Tabla 3),las condiciones de fertilidad de los suelos (Tabla 4), el estado nutricional de lasplantas (Tabla 5) y los requerimientos nutricionales del cultivo (Tabla 6).

Fertilidad de los suelos

Los niveles críticos de las propiedades químicas del suelo se enfocan en la con-ductividad eléctrica, la concentración de los elementos nitrógeno (N), fósforo(P), potasio (K), azufre (S), calcio (Ca), magnesio (Mg), hierro (Fe), manganeso(Mn) y zinc (Zn), así como la saturación de aluminio (Al) y sodio (Na). En estecontexto y partiendo de las características físicas y químicas de los suelos aptospara el cultivo de yuca reportados por Cadavid y López (2015), los suelos de losmunicipios intervenidos por el Subproyecto Plátano y Yuca (Paime y Yacopí),generalmente son deficientes en fósforo, potasio, magnesio, azufre, boro (B) y


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manganeso; cuentan con niveles medios deMO, calcio, sodio, cobre (Cu) y CICE;y alta saturación de aluminio y hierro (Tabla 4).

Tabla 3 Niveles críticos en las propiedades químicas del suelo para la producción de yuca

CE N P S Ca Mg K Sat. Al Sat. Na Fe Mn Zn

dS/m g/kg mg/kg cmol+/kg % mg/kg

0,5-0,6 < 1,5 10 8 0,25 0,12 0,15 80 < 3,0 < 2,0 5,0 1,0

Fuente: Cadavid y López (2015)

Tabla 4 Concentración de nutrientes en suelos de cada uno de los municipios donde se desarrolló la

validación de tecnologías para el cultivo de yuca en la provincia de Rionegro, Cundinamarca

Municipio Vereda MO CICE Ca Mg K Na Al P S B Cu Mn Fe Zn

Yacopí El Nopal 6,28 5,08 < 0,55 0,22 0,15 < 0,10 3,19 12,4 3,91 0,15 1,6 1,41 371 < 1,00

Paime Plomo 5,17 5,85 1,21 0,52 0,3 < 0,10 3,24 18,6 7,64 0,18 2,86 12,4 837 1,97

Paime Santa Teresa 9,99 5,06 < 0,55 0,21 0,12 < 0,10 3,08 3,91 4,34 0,18 < 1,00 < 1,00 543 1,69

Nota:Metodología semáforo: rojo: nivel bajo; verde: nivel medio y amarillo: nivel alto. Los valores deMO se dan como porcentaje (%). Los valores de CICE, Ca, Mg, K, Na y Al se dan en cmol+/kg. Los valores

de P, S, B, Cu, Mn, Fe y Zn se dan en mg/kg.


Por otro lado, complementario al análisis de suelo existe el análisis de tejidofoliar, el cual permite determinar el estado nutricional de la planta y hacer co-rrecciones en la fertilización del actual y/o próximo ciclo de cultivo (Tabla 5).

Requerimientos nutricionalesLos requerimientos nutricionales por tonelada producida de yuca tienen varia-ción de acuerdo con el tipo de material sembrado. Sin embargo, como referen-cia general se pueden tomar los niveles reportados por Cadavid (2002) para estecultivo (Tabla 6). Dichos valores son calculados a partir del rendimiento de unatonelada de yuca fresca, por lo que para diseñar el plan de fertilización estos de-ben ser multiplicados por el rendimiento esperado por el productor. Además, sedeben tener en cuenta las condiciones edafoclimáticas de la zona, conocer lasfuentes de fertilizantes disponibles en el mercado, la capacidad adquisitiva delproductor y la relación costo/beneficio, con el fin de promover la sostenibilidaddel sistema productivo.

ÉPOCAS DE FERTILIZACIÓN

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Tabla 5 Concentración de nutrientes en las láminas foliares de yuca más jóvenes completamente

expandidas (3 a 4 meses)

Niveles críticos en hoja

Elemento Deficiente Bajo Suficiente Alto Tóxico

N (%) < 4,7 4,7-5,1 5,1-5,8 > 5,8 -

P (%) < 0,30 0,30-0,36 0,36-0,50 > 0,50 -

K (%) < 1,0 1,0-1,3 1,3-2,0 > 2,0 -

Ca (%) < 0,65 0,65-0,75 0,75-0,85 > 0,85 -

Mg (%) < 0,27 0,27-0,29 0,29-0,31 > 0,31 -

S (%) < 0,24 0,24-0,26 0,26-0,30 > 0,30 -

B (ppm) < 20 20-30 30-60 60-100 > 100

Cu (ppm) < 5 5,0-6,0 43379 42278 > 15

Fe (ppm) < 100 100-200 120-140 140-200 > 200

Mn (ppm) < 45 45-50 50-120 120-250 > 250

Zn (ppm) < 25 25-30 30-60 60-120 > 120

Nota: ppm equivale a partes por millón.

Fuente: Cadavid y López (2015).

Tabla 6 Requerimientos nutricionales en kg de nutrientes para la producción de una tonelada de yuca

Nutriente N P K Ca Mg S

Requerimiento (kg/t) 4,42 0,67 3,58 1,36 0,82 0,42

Fuente: Cadavid (2002).

Épocas de fertilizaciónLa aplicación de fertilizantes en el departamento de Cundinamarca generalmen-te se realiza durante la siembra o en el desarrollo del ciclo de cultivo.

La planta de yuca durante el primer mes de siembra se abastece de las reservaspresentes en el cangre (Figura 24), por lo que una fertilización en los primeros30 días después de la siembra se hace poco eficiente, excepto si la fuente de fer-tilizante es de liberación lenta, para así evitar el lavado de nutrientes (Cadavidy López, 2015).

Las prácticas de fertilización deben hacerse antes de que la planta cumpla cua-tro meses a partir de la siembra, ya que luego de este periodo se presenta la


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movilización de los nutrientes acumulados a los tallos y las raíces, disminuyen-do así la toma de nutrientes del suelo (Ospina y Ceballos, 2002); por esto sehace necesario fraccionar la fertilización (aplicaciones a 30 y 60 días despuésde la siembra).

Figura 24 Lote 15 días después de la siembra; el cangre aun provee el alimento para el desarrollo de la

planta.


Formas de aplicación del fertilizanteCuando los cultivos de yuca son de grandes extensiones, una de las alternativaspara realizar la fertilización del cultivo es al voleo o en hilera durante la siembramediante el uso demaquinaria. Sin embargo, en unidades productivas pequeñasde monocultivo o asocio, con un alto grado de pendiente, la fertilización deberealizarse de forma manual en banda o media luna a una distancia de 10 cmdel pie de la planta, tapando luego el producto con suelo (Torres, Moreno yContreras, 1999) (Figura 25).

Fertilización orgánica y biológicaLa fertilización química debe ser complementada con el uso de fertilizantes or-gánicos y biológicos que incrementen la eficiencia y potencien los beneficios

FERTILIZACIÓN ORGÁNICA Y BIOLÓGICA

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Figura 25 Fertilización en media luna en plantas de yuca.


en la planta (nutrición y bioestimulación). El uso de abonos orgánicos contri-buye positivamente al mejoramiento de la porosidad del suelo, la capacidad deretención de nutrientes, capacidad de intercambio catiónico (CIC), y la reten-ción de humedad; también incrementa la disponibilidad de nutrientes como elnitrógeno, fósforo, azufre y los micronutrimentos. Dichos abonos deben estarcompletamente maduros para evitar problemas sanitarios. Adicionalmente, losbiofertilizantes como las micorrizas y los microorganismos solubilizadores defósforo o fijadores de nitrógeno ponen a disposición de la planta una mayorcantidad de estos nutrientes, lo cual reduce la cantidad de fertilizante químicoa aplicar. En algunos casos pueden tener influencia en procesos biológicos ymejorar la tolerancia al estrés biótico o abiótico. En este sentido, la implemen-tación de fertilización integrada con fuentes químicas, orgánicas y biológicas enla provincia de Rionegro influyó positivamente en el rendimiento de la plantade yuca, en comparación con el uso exclusivo de fertilizantes químicos.


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Implementación de tipos de fertilización en la provincia

de Rionegro, Cundinamarca

En las PIPA de dos municipios de la provincia de Rionegro (Yacopí y Paime), seevaluaron tres planes de fertilización en la variedad de yuca Armenia:

a) Fertilización química: aplicación química de fertilizantes edáficos (elemen-tos mayores y menores), según el análisis de suelo. La aplicación fue frac-cionada al primer y tercer mes después de la siembra.

b) Fertilización integrada: consiste en la aplicación del 50 % de la fertilizaciónquímica edáfica, sumado a la inoculación con hongos formadores de micorri-zas arbusculares y bacterias fijadoras de nitrógeno y solubilizadoras de fósfo-ro (estas bacterias solo se aplicaron en Paime) y aportes de materia orgánica.

c) Testigo: consiste en el manejo tradicional del agricultor (sin fertilización).

Efectos de la fertilización integrada en el número de hojas

y el rendimiento de la yuca

El comportamiento en el número de hojas tiende a ser similar en los tres tra-tamientos. Sin embargo, hacia el final del ciclo de cultivo en Paime el númerode hojas con el tratamiento de fertilización integrada fue mayor que con la fer-tilización química y en el testigo. Por su parte, en Yacopí no se presentarondiferencias tan marcadas entre los tratamientos como en Paime.

El rendimiento de la yuca sí presentó un comportamiento marcado, donde lamejor respuesta se presentó con la fertilizacion integrada en ambos municipios,seguida de la fertilización química y finalmente del testigo. La fertilización quí-mica presentó una producción 1,8 veces mayor que la fertilización testigo, y lafertilización integrada 2,5 veces mayor con respecto al testigo y 1,4 veces mayoren comparación con la química. Lo anterior ratifica la importancia de hacer unuso eficiente de la fertilizacion integrada que combine fertilizantes químicos,biológicos y orgánicos, lo que permite obtener una mayor producción y reducirla aplicación de fertilizantes de síntesis química.

MANEJO INTEGRADO DE ENFERMEDADES E INSECTOS PLAGA

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Manejo integrado de enfermedades

e insectos plaga

El cultivo de yuca en otras regiones del país puede tener limitaciones por diver-sas plagas y enfermedades; sin embargo, en el diagnóstico fitosanitario realiza-do en campo en el marco del Subproyecto Plátano y Yuca no se encontraronaltas incidencias que afectaran el rendimiento de los cultivos. A continuaciónse describen los problemas fitosanitarios identificados que pueden llegar a serlimitantes en la zona de trabajo en el departamento de Cundinamarca.

Mancha parda y blanca

Las manchas parda y blanca son causadas por los hongos Cercospora henningsii yPhaeoramularia manihotis, respectivamente, y sobreviven en épocas de alta tem-peratura, sobre lesiones viejas y hojas caídas, reactivándose en las épocas dealtas precipitaciones y trasmitiéndose a hojas nuevas en el hospedero. Su dise-minación se da a través del viento y las lluvias.

Figura 26 Síntomas de mancha parda en el haz (a) y el envés (b) de la hoja en plantas de yuca.



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C. henningsii se desarrolla a temperaturas de 39 °C en plantaciones localizadas enáreas donde las temperaturas son altas. Aunque depende de la susceptibilidaddel cultivar, su desarrollo es mayor cuando el cultivo tiene más de cinco mesesde edad (Figura 26). Las plantas afectadas presentan manchas color marrón conbordes definidos y oscuros, localizados tanto en el haz como en el envés de lahoja. Adicionalmente, muestran un halo amarillo alrededor de las lesiones confondo gris oliváceo en el envés. Cuando el daño aumenta, las plantas desarrollanhojas cloróticas y secas, y puede llegar a causar defoliación severa y/o total enépocas lluviosas y cálidas (Álvarez y Llano, 2002).

Figura 27 Síntomas de mancha blanca en el haz (a) y envés (b) de la hoja en plantas de yuca.


Por su parte, P. manihotis se desarrolla a temperaturas de 33 °C y presenta le-siones más pequeñas a las inducidas por C. henningsii. Se manifiesta con puntosblancos con borde difuso en el envés de la hoja con bordes pardo-violeta ro-deados por un halo marrón o amarillento y aspecto aterciopelado grisáceo enel centro de las lesiones (Álvarez y Llano, 2002) (Figura 27). El manejo dado aestas enfermedades es mediante la reducción del exceso de humedad en la plan-tación y la aplicación de fungicidas a base de cobre (óxido de cobre y oxiclorurode cobre), realizando aspersiones de acuerdo con la presión y/o incidencia dela enfermedad y utilizando las dosis comerciales de los productos registradosante el ICA para su uso en el cultivo.


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Mancha de anillos circulares

Enfermedad causada por el hongo Phoma sp., el cual se desarrolla a una tempe-ratura promedio de 22 °C, durante la época seca en zonas cálidas. Inicialmentelas plantas afectadas presentan anillos concéntricos hacia el haz de la hoja ymanchas foliares de color marrón con márgenes indefinidos. Dichos síntomasse observan en las puntas, bordes, vena central o venas secundarias de las hojas,y pueden causar defoliación severa y muerte descendente en épocas de altasprecipitaciones, sobre las variedades susceptibles (Figura 28). Particularmente,las hojas maduras son más susceptibles al ataque; sin embargo, en algunas va-riedades de yuca se desarrolla sobre hojas jóvenes (Álvarez y Llano, 2002). Fi-nalmente, el manejo de la enfermedad se basa en la aspersión regulada concompuestos a base de azufre que cuenten con registro ICA para su uso en elcultivo.

Figura 28 Síntomas de mancha de anillos circulares en el haz (a) y envés (b) de la hoja en plantas de

yuca.


Añublo bacteriano

Enfermedad causada por la bacteria Xanthomonas axonopodis pv.Manihotis, la cualcausa muerte descendente de peciolos y tallos. Al inicio de la infección se ob-servan manchas foliares de apariencia acuosa en el envés de las hojas. Estasmanchas pueden llegar a cubrir completamente las hojas, adquieren una colora-ciónmarrón (quemazón) y se acompañan de una exudación gomosa en los tallos


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jóvenes (Álvarez y Llano, 2002) (Figura 29). Dada la importancia epidemiológi-ca de la enfermedad sobre el cultivo de yuca, su manejo se realiza de manerapreventiva mediante la selección y siembra de material sano, el tratamiento delas estacas con productos a base de cobre que cuenten con registro ICA, y lafertilización de acuerdo con el análisis de suelo. En caso de presentarse plantasafectadas, estas se deberán erradicar y, posteriormente, se le deberá aplicar almaterial enfermo una solución de formaldehído al 5 %.

Figura 29 Síntomas de añublo bacteriano en plantas de yuca.


Virus del mosaico común de la yuca

Enfermedad viral de baja incidencia en los municipios de Paime y Yacopí (Cundi-namarca). Las plantas afectadas presentan sintomatología que va desde mosai-cos (ver Figura 30), clorosis (hojas amarillas) y manchas verdes claras a oscurasdelimitadas por las nervaduras, hasta la reducción del crecimiento cuando seven expuestas a periodos prolongados de frío (Figura 30). Para su manejo serecomienda preventivamente la selección de material de propagación sano, asícomo desinfectar las herramientas utilizadas en las labores del cultivo. En casode identificar plantas jóvenes enfermas, estas deben eliminarse, mientras quepara plantas próximas a cosechar la recomendación es la quema de los tallosuna vez se hayan cosechado las raíces (Calvert y Cuervo, 2002).

Cuero de sapo

Problema fitosanitario asociado a un fitoplasma (Álvarez, Mejía, Loke, Llano yHernández, 2003). Cuando las plantas de yuca se ven expuestas a esta enferme-dad la raíz presenta depresiones con bordes que se unen semejando una red o


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Figura 30 Síntomas de virus del mosaico común de la yuca.


un panal. Adicionalmente, la cáscara se torna leñosa, gruesa, corchosa, quebra-diza y de color opaco, lo que dificulta su desprendimiento de la pulpa (Figura 31).En la parte aérea en ocasiones se pueden observar clorosis o moteados en lashojas, acompañados de un encrespamiento o curvatura de los bordes foliares(Álvarez et ál., 2015). Como medida de manejo se recomienda la selección desemillas a partir de plantas sanas, la desinfección de herramientas con deter-gente o hipoclorito de sodio, así como la eliminación de plantas con incidenciasuperior al 10 % (Calvert y Cuervo, 2002).

Figura 31 Síntomas de cuero de sapo en las raíces de yuca.

Fotografía: Luis Fernando Calle (2010).

Gusano cachón

Larva del lepidóptero Erinnyis ello (Lepidoptera: Sphingidae), que consume el folla-je de las plantas de yuca en grandes cantidades, por lo cual es considerado comouna de las plagas más importantes en este cultivo (Bellotti, Arias y Reyes, 2002)(Figura 32). El manejo que se le da a esta plaga está regido por el umbral de daño


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económico, de acuerdo con el estado fenológico de las plantas. Se ha establecidoque, en plantaciones entre dos y cinco meses con cinco larvas por planta, y plan-taciones entre siete y nueve meses con 29 larvas por planta, se podría presentardefoliación total del cultivo. Por ende, es indispensable un control preventivopara evitar el deterioro del cultivo (Bellotti et ál., 2002). En este sentido, para sumanejo se recomienda la liberación de 50 a 100 pulgadas/ha del parasitoide Tri-chogramma pretiosum (Hymenoptera: Trichogrammatidae), en los casos en que seobserven de cuatro a seis adultos de E. ello por hectárea. Dicha liberación estáacompañada de la implementación de trampas de luz hechas con mecheros. Encaso de observar de tres a cinco larvas por planta, se recomienda asperjar insec-ticidas de baja toxicidad específicos para este insecto plaga, y que cuenten conregistro ICA para su uso en el cultivo. Adicionalmente, el control microbiano conaspersiones del Bacillus thuringiensis en dosis de 2 a 3 g de producto comercial porlitro de agua provee un control efectivo, cuya eficacia aumenta cuando la larvaestá en los tres primeros instares (Herrera, 1999).

Figura 32 Larva (a), pupa (b) y adulto (c) de gusano cachón (Erinny ello).

Fuente: Colección Taxonómica Nacional de Insectos Luis María Murillo, n.º cat.: 186 (AGROSAVIA, 2017).

Hormigas cortadoras

Problema fitosanitario causado por Atta cephalotes y Acromyrmex sp. (Hymenopte-ra: Formicidae). Los insectos generan cortes de forma circular y/o en medialu-na en los folíolos, que pueden confundirse con el daño causado por el gusanocachón. Los segmentos que obtiene después de atacar las plantas son transpor-tados en sus mandíbulas hasta los nidos, donde forman una pasta; sobre estacrece el hongo Rhozites gongylophora. En casos severos de ataque los insectos


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pueden defoliar completamente las plantas (Bellotti et ál., 2002) (Figura 33). Elmanejo de esta plaga en las plantaciones se debe realizar mediante la aplica-ción de productos a base de los hongos entomopatógenos Beauveria bassiana yMetarhizium anisopliae, mezclados con hojuelas de avena y melaza, en los cami-nos realizados por las hormigas. Por otra parte, cuando se identifica una altapoblación de hormigas cortadoras, se recomienda realizar con una insufladorala aplicación de un insecticida de baja toxicidad en los caminos, entradas y alinterior del hormiguero.

Figura 33 Hormigas cortadoras Atta cephalotes (a) y Acromyrmex sp. (b).

Fuente: Colección Taxonómica Nacional de Insectos Luis María Murillo, n.º cat.: 203 (AGROSAVIA, 2017).

Mosca blanca

La especie de mayor importancia económica en Colombia es Aleurotrachelus so-cialis (Homoptera: Aleyrodidae), la cual causa daños directos al generar defor-mación, encrespamiento y moteado verde amarillento de las hojas apicales e in-termedias; y daños indirectos mediante fumagina, amarillamiento y secamientode las hojas medias y bajeras de la planta (Bellotti et ál., 2002) (Figura 34). Elmanejo se da mediante la liberación de entre 20000 y 50000 larvas por hectá-rea del depredador Chrysoperla sp. (Neuroptera: Chrysopidae) y la aspersión delentomopatógeno B. bassiana, si se observan de 1 a 50 individuos por hoja. En


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caso de que el umbral esté alrededor de los 200 individuos por hoja se procedea la aplicación de un insecticida sistémico de baja toxicidad, que cuente conregistro ICA, específico para combatir este insecto plaga.

Figura 34 a) Adulto de mosca blanca (Hemiptera: Aleyrodidae). b) Adulto del depredador

Chrysoperla sp. c) Larva del depredador Chrysoperla sp.

Fuentes: a) Lindsey (2017). b) Hectonichus (2009). c) Steinert (2004).

Trips

Se han identificado varias especies que atacan las plantas de yuca en los puntosde crecimiento. La más importante es la Frankliniella williamsi (Thysanoptera:Thripidae), la cual genera una reducción del rendimiento y la producción dematerial de siembra (Bellotti et ál., 2002) (Figura 35a). Para el caso del ataque detrips, el manejo que se debe implementar es el mismo aplicado para el controlde mosca blanca que se describe en el apartado anterior. En este sentido, laliberación de Chrysoperla sp., y la aspersión de B. bassiana se deben realizar alobservar de 7 a 10 individuos por brote; mientras que, si se observan más de 20individuos por brote, se debe realizar la aplicación de un insecticida sistémicode baja toxicidad, específico para trips. Por otro lado, otro controlador biológicoes el chinche pirata (Orius incidiosus) (Figura 35b).

Manejo de arvenses (malezas) y coberturasLa eliminación de las plantas que crecen paralelamente con los cultivos es unapráctica que se realiza desde el comienzo de la agricultura, debido a la compe-tencia que se genera por los recursos necesarios para el óptimo crecimiento delcultivo.

PRINCIPALES ARVENSES QUE AFECTAN EL CULTIVO

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Figura 35 a) Frankliniella sp. b) Chinche pirata (controlador biológico para trips).

Fuentes: a) Peairs (2010). b) Dykinga (2010).

Aunque se tiene la percepción de que la planta de yuca es rústica, esta se veafectada por la competencia de arvenses, y se llegan a reportar pérdidas cerca-nas al 30 % en del rendimiento, que pueden ascender al 50 % cuando las plantasse encuentran en competencia con arvenses durante los primeros 60 días delciclo (Calle, 2002).

Se han creado diversos métodos para el control de las arvenses, que van desdeel uso de productos químicos hasta los métodos de control mecánico, cultu-ral o genético. No obstante, la combinación de dichas técnicas arroja mejoresresultados que cuando se aplican por separado.

Principales arvenses que afectan el cultivoSon limitados los reportes de flora arvense asociada al cultivo de yuca enColombia, aunque es común encontrar listas de arvenses basadas en otros culti-vos. Sin embargo, trabajos como el de Doll, Pinstrup y Diaz (1977) y el de Doll yPiedrahita (1976) reportan ciertas especies de arvenses asociadas a este cultivo.

Guayacanaopasto cogón (Imperata cylindricaL.): es una gramínea perenne, quepresenta rizomas a lo largo de los estolones y macollos arriba de cada rizoma(Figura 36a). La planta tolera suelos con pH ácido, y se desarrolla mejor con unaalta incidencia de radiación solar. Adicionalmente, tolera el sombrío y es capazde invadir suelos húmedos y boscosos, formando finalmente colchones densos


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en el suelo, lo cual evita el crecimiento de otras especies. Sobre esta especie seha reportado la capacidad de emitir en la rizosfera compuestos alelopáticos quele confieren una ventaja en la competencia con otras plantas. Su propagaciónse da mediante semillas y/o rizomas, llegando a desarrollar un sistema radicalprofundo que limita su control manual, por lo que se recomienda hacer manejoquímico o hacer uso de leguminosas competitivas como Mucuna pruiriens.

Pasto yaraguá (Melinis minutiflora p. Beauv.): es una gramínea perenne semi-rrecta con tallos basales que se extienden de las coronas. Se dispersa con elviento y puede crecer en altitudes entre los 0 y los 2200 msnm; tolera los sue-los ácidos y puede alcanzar una altura de hasta 150 cm (Figura 36b). No formaestolones ni rizomas, pero sí raíces a partir de los nudos de los tallos, lo cualle permite extenderse por encima del suelo. Sus hojas cuentan con pubescen-cia blanca, su inflorescencia en panícula es de color rojo con semillas ligeras yaristas alargadas.

Figura 36 a) Guayacana o pasto cogón (I. cylindrica L.). b) Pasto yaraguá (M. minutiflora P. Beauv.).

Fuente: a) Djatmiko (2007). b) Rose (2004).

Helecho de carne o helecho demarrano (Pteridium aquilinum L.): es un helechode la familia Dennstaedtiaceae de hábitats húmedos y secos. Puede alcanzar unaaltura de un metro o más. Presenta un rizoma robusto y pubescente, y sus hojastienen peciolo largo de color oscuro y una lámina disectada. Dicha especie tole-ra suelos ácidos y arcillosos (Figura 37a). Para su manejo se recomienda emplear

PRINCIPALES ARVENSES QUE AFECTAN EL CULTIVO

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métodos químicos, mecánicos o manuales, los cuales pueden estar seguidos delencalamiento del suelo.

Escoba dura o malva (Sida acuta Burm. f. y Sida rhombifolia L.): estas dos es-pecies son pertenecientes a la familia Malvaceae. Generalmente presentan unaraíz profunda y pivotante. Presentan también un tallo ramificado que puede sererecto o postrado. La lámina foliar de S. rhombifolia presenta una hoja en formasque van desde romboide a oblongo-lanceolada, mientras que S. acuta presentauna hoja oblongada (Figura 37b).

Figura 37 a) Helecho de carne o helecho de marrano (P. aquilinium L.). b) Escobadura o malva (S.

rhombifolia L.).

Fuente: a) Olegiwit (s. f.). b) Daniel (2005).

Siempreviva (Commelina diffusa Burm. f.): es un arvense anual con un sistemaradical de crecimiento estolonífero. La lámina foliar es lanceolada con un ápicepuntiagudo. Tiene flores compuestas por dos pétalos azules y un pétalo centralblanco de menor tamaño; presenta numerosos estambres con anteras amarillasy dos estilos blancos (Figura 38a). Esta especie tolera suelos secos, aunque sedesarrolla mejor en condiciones húmedas y suelos fértiles. Además de propa-garse mediante estolones, el ovario de las flores fecundadas se convierte en unacápsula elipsoide bicarpelar que contiene dos semillas planas.

Coquito (Cyperus esculentus L. y Cyperus rotundus L.): es una planta perenne. Pre-senta rizomas y sus raíces pueden producir tubérculos elipsoidales. Presentaun tallo solitario, erecto y triangular. Sus inflorescencias están antecedidas por


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brácteas cafés, y cuenta con flores de color café organizadas en forma de es-piguilla (Figura 38b). Esta arvense es tolerante a la sequía. Además, puede per-manecer en el suelo en estado de latencia. Se ha reportado su capacidad deproducir compuestos alelopáticos, así como casos de resistencia a herbicidas,lo cual dificulta su erradicación.

Figura 38 a) Siempreviva (C. diffusa Burm. f.). b) Coquito (C. esculentus L. y C. rotundus L.).

Fuente: a) Zell (2009). b) Rickjpelleg (2005).

Manejo de arvenses en el cultivo de yuca

Manejo mecánico y manual: control mediante guadaña entre las calles y conmachete para el plateo, cuatro o cinco veces al año, dependiendo de la presiónde las arvenses. Se dejan los residuos sobre el terreno para generar una cober-tura que disminuya la erosión hídrica (Figura 39).

Manejo químico: aunque lo ideal es el control mecánico y manual, cuando no secuenta con la suficiente mano de obra o cuando sus costos son elevados, se reco-mienda hacer uso de herbicidas preemergentes. Sin embargo, estos controlan lasarvenses hasta 40 o 50 días, tiempo en el cual las plantas de yuca aún están peque-ñas debido a su lento crecimiento inicial, lo cual hace necesaria la aplicación deherbicidas posemergentes (Calle, 2002; Doll et ál., 1977). Adicionalmente, antes

MANEJO DE ARVENSES EN EL CULTIVO DE YUCA

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de implementar dicho control, se debe tener en cuenta la fertilidad y la humedaddel suelo, el costo de los herbicidas y la disponibilidad de los equipos para su apli-cación. En la Tabla 7 se detallan los tipos de herbicidas, su época de aplicación ylas dosis recomendadas para el manejo de arvenses en el cultivo de yuca.

Tabla 7 Herbicidas y sus combinaciones para el control de arvenses (malezas) en el cultivo de yuca

Producto Características

Nombre comercial Nombre técnico Selectividad Época deaplicación

Dosis productocomercial/ha

Tipo de arvensescontroladas

Karmex Diurón M Pre. 2,0-3,0 kg Hoja ancha

Lazo Alaclor A Pre. 3,0-4,0 l Gramíneas

Cotorán Fluometurón M Pre. 4,0-5,0 l Hoja ancha

Goal Oxifluorfén M Pre. 2,0-4,0 l Hoja ancha/gramíneas

Sencor Metribuzín M Pre. 1,0-1,5 l Gramíneas

Afalón Linurón M Pre. 2,0-3,0 kg Hoja ancha/gramíneas

Treflán Trifluralina A Psi. 2,5-3,5 l Hoja ancha/gramíneas

Dual Metolaclor A Pre. 3,0-4,0 l Gramíneas

Roundup Glifosato No selectivo Pos. 2,0-3,0 l Hoja ancha/gramíneas

Basta Glufosinato No selectivo Pos. 1,0-3,0 l Hoja ancha/gramíneas

Fusilade Fluazifop A Pos. 1,0-3,0 l Gramíneas

Gramoxone Paraquat No selectivo Pos. 2,0-3,0 l Hoja ancha/gramíneas

Karmex + Lazo M Pre. 1,0-1,5 + 1,5-2,0 Hoja ancha/gramíneas

Cotorán + Lazo M Pre. 1,0-2,5 + 1,5-2,0 Hoja ancha/gramíneas

Goal + Lazo M Pre. 1,0-2,0 + 1,5-2,0 Hoja ancha/gramíneas

Afalón + Lazo M Pre. 1,0-1,5 + 1,5-2,0 Hoja ancha/gramíneas

Karmex + Dual M Pre. 1,0-1,5 + 1,5-2,0 Hoja ancha/gramíneas

Cotorán + Dual M Pre. 1,0-2,5 + 1,5-2,0 Hoja ancha/gramíneas

Goal + Dual M Pre. 1,0-2,0 + 1,5-2,0 Hoja ancha/gramíneas

Afalón + Dual M Pre. 1,0-1,5 + 1,5-2,0 Hoja ancha/gramíneas

Nota: Dosis menor en suelos livianos y mayor en suelos pesados. M: mediana. A: alta.

Pre.: preemergentes. Pos.: posemergentes. Psi.: presiembra incorporado.

Fuente: Ospina y Ceballos (2002).

Coberturas: el uso de coberturas muertas como el mulch es una alternativa efi-caz para el control de arvenses en los cultivos de yuca debido a que compite conlas arvenses por luz, controla su crecimiento y protege el suelo de la erosión(Figura 39).


74

Figura 39 Residuos del control de malezas como cobertura muerta en el municipio de Paime

(Cundinamarca).


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Cosecha y poscosecha

Debido al rápido deterioro fisiológico de la raíz poco después de la cosechay, por consiguiente, su limitada vida útil (debido a que el almidón en la raízse transforma en dióxido de carbono y agua, y una parte se convierte en sucomponente básico, azúcar, para continuar con el proceso de respiración dela raíz), se hace necesaria la implementación de prácticas de poscosecha. Enpaíses en desarrollo, la raíz de la yuca es un alimento valioso por ser fuente deenergía, razón por la cual es necesario realizar un manejo óptimo del productocosechado, su acondicionamiento y su almacenamiento para evitar el aumentode pérdidas poscosecha (Amarachi, Oluwafemi y Umezuruike, 2015).

Labores de cosechaMomento óptimo de cosecha: escoger el momento óptimo de cosecha en yucaes una tarea difícil, pues depende de factores como la variedad, el clima y eluso que se le vaya a dar a la cosecha. De acuerdo con esto, El-Sharkaway (2007)reporta un rango de tiempo para la cosecha de la yuca entre los 6 y los 12 mesesdespués de la siembra. No obstante, existen variedades precoces que en climasfavorables pueden alcanzar un tamaño comercial de sus raíces a los 6 meses.Sin embargo, si el clima es menos favorable, la cosecha se puede retardar hastalos 9 o incluso los 12 meses (Brecht, 2002).

Factores a tener en cuentapara la cosecha: una vez se reconoce el momento óp-timo para la cosecha es necesario tener ciertas precauciones durante esta labor

COSECHA Y POSCOSECHA

76

pues, de no realizarse correctamente, la vida útil en poscosecha del productose reduce significativamente, limitando las oportunidades de comercializaciónal productor (Brecht, 2002):

• Sembrar teniendo en cuenta que la fecha de la cosecha coincida con unaépoca seca, ya que cosechar en días lluviosos es perjudicial para la vida enanaquel.

• Tener un adecuado manejo de arvenses en el plato de la planta, de lo con-trario, será más probable que durante la cosecha las raíces (yucas) se partan,debido al amarre de estas con arvenses circundantes (Ospina y Ceballos,2002).

• No cosechar plantas con alta incidencia de plagas y enfermedades, ya queesto reduce la vida poscosecha.

Destronque o destoconado: consiste en cortar la parte aérea de la planta a unaaltura de entre 20 y 30 cm del suelo con una antelación de una a dos semanas.Esta práctica se realiza para endurecer las raíces debido a la pérdida de agua yasí retardar el deterioro poscosecha (Bartz y Brecht, 2003).

Cosecha o extracción de las raíces: la extracción de las raíces se puede hacermanualmente o asistida con un cosechador (Figura 40). El primer método esexigente en energía y tiempo, pues llega a requerir entre 22 y 62 jornales/ha(Amponsah, Sheriff y Byju, 2014). Por su parte, la cosecha asistida puede rea-lizarse mediante un cosechador desarrollado por el CIAT. Dicha herramientapermite anclar con una cuchilla el tallo a una barra que hace las veces de palan-ca para multiplicar la fuerza ejercida por la persona que cosecha (Figura 40 c),lo que reduce el número de jornales/ha a entre tres y cuatro.

Separación o despitone de las raíces: una vez haya sido extraído el sistema deraíces se procede a realizar el despitone, que consiste en separar cada una delas raíces de la base del tallo o tocón con un machete previamente desinfectado(Figura 41). Es importante que no se produzcan cortes involuntarios, pues entales casos se desencadena una respuesta al estrés oxidativo, manchando laperiferia de la herida (Ospina y Ceballos, 2002).

LABORES DE POSCOSECHA

77

Figura 40 a) Cosecha de yuca manual. b) Cosecha de yuca asistida mediante cosechador.

c) Funcionamiento del cosechador manual CIAT: 1. Sujetar el tallo principal con la cuchilla. 2. Afianzar la

cuchilla al tallo y girar el cosechador en sentido horario. 3. Extraer las raíces halando suavemente.


Labores de poscosecha

Acondicionamiento en campo: se recomienda que las operaciones de acondi-cionamiento se realicen en un punto de acopio, que puede estar en una ubi-cación estratégica dentro del lote o fuera de este. Los puntos de acopio deben


78

Figura 41 Separación o despitone de las raíces de yuca del tocón.


ubicarse en lugares despejados, retirados de cualquier fuente de contaminacióncomo aguas servidas (residuales), botaderos de basura e insumos químicos y/obiológicos. Deben estar preferiblemente aislados para evitar la entrada de lluvia,sol, animales o plagas.

Selección: una vez las raíces de yuca son cosechadas y separadas del tocón, seprocede a realizar una selección descartando las que presentan daños microbio-lógicos y mecánicos severos (rajado), los cuales facilitan el ataque de microor-ganismos (Figura 42).

Limpieza y desinfección: las siguientes actividades están sujetas a un análisisde costos y al mercado destino que valore el costo adicional que esto implica.Se recomienda realizar una prelimpieza en el lugar en donde las raíces estánsiendo recolectadas, eliminando la tierra y las impurezas adheridas a la cáscaramediante el uso de un cepillo de cerdas suaves. También es recomendable lalimpieza de las raíces con agua y un cepillo de cerdas flexibles (Figura 43a).

Adicionalmente, con el uso de unas tijeras se pueden cortar las raíces pequeñasque se desprendan de las raíces tuberosas (Figura 43b). Finalmente, para lograrmayor conservación de la yuca, se puede realizar una desinfección sumergiendo


79

las raíces en una solución de hipoclorito al 0,1 % durante 15 a 30 segundos yposteriormente lavar las raíces con agua (Figura 44a y Figura 44b).

Secado: luego de la limpieza y desinfección, las raíces deben secarse por ex-posición directa al sol teniendo cuidado de retirar las raíces una vez seca lasuperficie, ya que la sobreexposición solar puede causar la deshidratación delproducto (Figura 45a).

Por otro lado, es posible secar las raíces bajo sombra colocándolas sobre unasuperficie limpia donde haya una buena aireación que garantice el secado uni-forme. Para ello se pueden implementar mallas que favorezcan la circulacióndel aire y así acelerar el proceso de secado (Figura 45b).

Figura 42 Raíz de yuca con daños mecánicos (a) y microbiológicos (b).


Figura 43 Lavado (a) y corte (b) de las raíces de yuca.



80

Figura 44 Desinfección (a) y enjuague (b) de las raíces de yuca.


Figura 45 a) Secado de la yuca por exposición directa al sol. b) Secado de la yuca mediante el uso de

mallas.


Clasificación: una vez secas las raíces de yuca, se procede a realizar una clasifi-cación de estas en tres categorías (A, B y C), según el tipo de raíz (comercial ono) y la magnitud del daño físico recibido (Tabla 8). La categoría A correspondea las raíces de yuca comerciales que tienen poco o ningún daño físico, lo quelas hace aptas para ser tratadas y conservadas. En la categoría B se clasifican lasyucas comerciales que presentan daños severos, por lo que no son aptas para


81

ser conservadas. Estas yucas se destinan principalmente para consumo humanoinmediato, alimento animal o también se pueden usar en la producción de al-midón. Las raíces de yuca no comerciales, o de categoría C, también podríandestinarse a alimentación animal para aprovechar así toda la cosecha (Alonso yGallego, 2005).

Tabla 8 Categorías en las que se clasifican las raíces de yuca para su uso

Categoría Uso de la raíz Daño físico de la raíz Frecuencia en lote (%)

A Comercial o de conservación Leve o ninguno 80-90

B Comercial Severo 5 a 10

C No comercial Presente o ausente 5 a 10

Fuente: Alonso y Gallego (2005).

Parafinado: si se busca una mayor conservación del producto, se puede realizarel parafinado de las raíces. Este método consiste en el recubrimiento con parafi-na, el cual es clave para la conservación de las raíces frescas de yuca (Fonseca ySaborío, 2001). Antes del parafinado, se deben cortar los extremos y las raícespequeñas de la superficie de la yuca, con el fin de mejorar su apariencia y eli-minar las puntas delgadas, que son propensas a quebrarse después e iniciar eldeterioro vascular. Generalmente el método de parafinado es manual: se realizasumergiendo las raíces de yuca en un recipiente con parafina a una temperaturaque fluctúa entre los 140 y los 160 °C (Figura 46a). Inicialmente, se introducela mitad de la raíz por dos a tres segundos, se saca y se espera que la películade parafina se enfríe sobre ella. Después se introduce la otra mitad. Si la tempe-ratura de la parafina es menor de 140 °C se deposita en la raíz una película deparafina muy gruesa que aumenta el consumo de este material (Figura 46b) yademás se demerita la calidad de la yuca. Por encima de los 160 °C, la parafinase evapora rápidamente y forma grumos.

Empaque: según los requerimientos del mercado, las raíces de yuca parafina-das y sin parafinar se pueden empacar en canastillas plásticas, bolsas plásticas—preferiblemente perforadas— o en cajas (Figura 47). Para el caso de las raícesparafinadas es importante resaltar que durante el empaque no se debe quebrarla parafina ya que se perdería su efecto protector.


82

Figura 46 a) Parafinado manual de raíces de yuca. b) Defecto en el parafinado de yuca por baja

temperatura.


Figura 47 Yuca fresca embolsada en paquetes de 20 kg para comercializar en plazas locales.


Métodos de conservación: luego de probar tres métodos de conservación deyuca proveniente de las PIPA de Paime en el departamento de Cundinamarca(Figura 48 y Figura 49), es recomendable el corte y la congelación del productoen bolsas plásticas, con el fin de mantener las características fisicoquímicas delas raíces de yuca por más tiempo (hasta 60 días después de la cosecha). Noobstante, el parafinado y el embolsado permiten la conservación por periodosde 45 y 30 días, respectivamente.


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Figura 48 Métodos de conservación de yuca y condiciones de almacenamiento evaluadas.


Figura 49 Tratamientos de conservación aplicados a las raíces de yuca.



84

Caracterización fisicoquímica

y nutricional de la yucaEn el marco del Subproyecto Plátano y Yuca se determinaron las característicasfísicas, químicas y nutricionales de las variedades Armenia, Peruana y Verdecitadiez meses después de la siembra, para las PIPA de los municipios de Paime yYacopí en el departamento de Cundinamarca (Tabla 9 y Tabla 10). Por su parte,esta misma caracterización se realizó para los materiales denominados por losproductores como Guajiba y Llanera, en las PIPA de los municipios de Yacopí yPaime, respectivamente (Tabla 11 y Tabla 12).

Al comparar los resultados promedio obtenidos, se observa que la variedad Ar-menia presenta el mayor contenido de carbohidratos totales y azúcares totalesy el menor contenido de proteína, grasa y cenizas. Por su parte, la variedadPeruana muestra el mayor contenido de humedad, proteína, grasa y cenizas, yel menor contenido de carbohidratos totales, almidón, materia seca, fibra cru-da y azúcares totales; mientras que la variedad Verdecita mostró los mayorescontenidos de materia seca, fibra cruda y almidón, y el menor contenido de hu-medad. En cuanto a los nutrientes presentes, se observó que el macronutrienteque se encuentra en mayor concentración es el potasio, mientras que entre losmicronutrientes es el manganeso; se presentan las mayores concentraciones enla variedad Peruana (Tabla 9). En cuanto a las características fisicoquímicas, enla variedad Armenia se apreció un mayor diámetro, mayor porcentaje de cás-cara y pH, y un menor porcentaje de ácido cianhídrico y de parte comestible.Por su parte, la variedad Peruana presentó el mayor peso, grosor de cáscara yporcentaje de ácido cianhídrico, y el menor pH y sólidos solubles totales. La va-riedad Verdecita mostró los mayores porcentajes de parte comestible, longitudy sólidos solubles totales, y el menor peso y porcentaje de cáscara (Tabla 10).

En cuanto a los resultados promedio de la evaluación de los materiales regiona-les, se observa que la variedad de yuca cultivada en el municipio de Paime (Lla-nera) presentó el mayor contenido de humedad, carbohidratos totales, hierro,manganeso, boro y nitrógeno; mientras que el material de yuca cultivado tradi-cionalmente en Yacopí (Guajiba) mostró mayores contenidos de materia seca,proteína, fibra cruda, almidón, cenizas, potasio, calcio, zinc y cobre. Respecto

CARACTERIZACIÓN FISICOQUÍMICA Y NUTRICIONAL DE LA YUCA

85

Tabla 9 Componentes nutricionales en tres variedades de yuca, 10 meses después de la siembra, en

los municipios de Paime y Yacopí (Cundinamarca)

Variedades Armenia Peruana Verdecita

Componentes Promedio Mínimo Máximo Promedio Mínimo Máximo Promedio Mínimo Máximo

Materia seca (%) 41,45 36,01 43,97 37,90 34,02 41,48 42,36 40,64 46,49

Humedad (%) 58,55 56,03 63,99 62,10 58,52 65,98 57,64 53,51 59,36

Proteína (%) 3,48 2,82 4,03 3,86 3,59 4,28 3,78 3,34 4,34

Grasa (%) 0,28 0,20 0,37 0,56 0,25 1,43 0,49 0,23 1,49

Fibra cruda (%) 1,77 1,55 2,19 1,73 0,48 3,14 2,08 1,13 3,67

Carbohidratos totales (%) 34,40 28,21 36,75 29,48 26,15 33,30 34,26 30,90 39,08

Almidón (%) 37,19 34,16 43,35 36,65 32,17 38,55 40,90 37,22 49,15

Azúcares totales (%) 1,59 0,72 5,17 0,57 0,35 0,74 0,68 0,37 0,90

Azúcares reductores (%) 0,39 0,22 0,68 0,12 0,06 0,23 0,21 0,03 0,45

Azúcares no reductores (%) 1,21 0,16 4,49 0,45 0,27 0,57 0,47 0,34 0,57

Cenizas (%) 1,53 1,38 1,65 2,28 1,75 2,91 1,75 1,18 2,25

Minerales

N (%) 0,39 0,23 0,48 0,34 0,28 0,39 0,44 0,36 0,57

P (%) 0,10 0,07 0,14 0,10 0,07 0,12 0,10 0,08 0,11

K (%) 0,91 0,71 1,10 1,04 0,81 1,24 0,92 0,66 1,38

Ca (%) 0,040 < 0,033 0,060 0,050 < 0,033 0,070 < 0,033 < 0,033 0,040

Mg (%) 0,12 0,09 0,14 0,10 0,07 0,13 0,07 0,06 0,07

Na (%) 0,1200 < 0,0033 0,4400 0,0100 < 0,0033 0,0100 < 0,0033 < 0,0033 0,0300

S (%) 0,03 0,02 0,05 0,04 0,03 0,06 0,05 0,04 0,05

Fe (ppm) < 15,00 < 15,00 < 15,00 < 15,00 < 15,00 < 15,00 19,22 15,00 29,59

Cu (ppm) < 3,00 < 3,00 < 3,00 3,50 < 3,00 4,72 < 3,00 < 3,00 < 3,00

Mn (ppm) 11,38 5,68 17,37 57,18 3,00 300,00 4,97 < 3,00 6,32

Zn (ppm) 11,94 6,67 17,6 20,24 6,07 36,22 21,58 15,24 29,61

B (ppm) < 2,00 < 2,00 < 2,00 2,06 2,00 2,28 2,12 < 2,00 2,44

Energía (kilocalorías/100 g) 154,02 132,29 163,75 138,36 124,89 150,21 156,62 143,18 172,61



a las características fisicoquímicas, el material de Yacopí presentó los mayoresvalores de peso, porcentaje de parte comestible, longitud, diámetro y pH; mien-tras que la yuca de Paime mostró el mayor porcentaje de cáscara y contenidode sólidos solubles totales. En cuanto al contenido de ácido cianhídrico, nose observaron diferencias entre los dos materiales regionales (ver Tabla 11 yTabla 12).


86

Tabla 10 Características fisicoquímicas de tres variedades de yuca, 10 meses después de la siembra en

los municipios de Paime y Yacopí (Cundinamarca)

Variedades Armenia Peruana Verdecita

Componentes Promedio Mínimo Máximo Promedio Mínimo Máximo Promedio Mínimo Máximo

Peso total de la raíz (g) 457,17 169,80 782,80 730,27 481,60 1227,00 425,40 200,00 633,60

Cáscara de la raíz (%) 25,64 21,21 30,05 24,86 16,90 31,85 23,61 21,37 26,95

Pulpa (%) 74,36 69,95 78,79 75,14 68,15 83,10 76,39 73,05 78,63

Longitud de la raíz (cm) 35,18 25,30 47,80 34,93 26,30 51,20 48,05 34,70 61,00

Diámetro centro (cm) 4,56 3,15 5,72 3,75 1,81 6,26 4,19 3,32 5,53

Perímetro centro (cm) 15,80 11,60 18,80 48,29 17,80 107,02 14,23 11,70 19,00

Grosor de la cáscara (cm) 0,21 0,16 0,25 0,26 0,18 0,32 0,21 0,18 0,24

pH 6,87 6,68 7,01 6,43 5,78 6,85 6,77 6,54 6,95

Sólidos solubles totales ( Brix) 6,26 5,40 7,20 6,25 5,40 7,20 6,60 5,80 7,00

Acidez (% de ácido cianhídrico) 0,045 0,030 0,078 0,094 0,076 0,155 0,080 0,056 0,101


La comparación de los datos de las variedades evaluadas (Armenia, Peruana yVerdecita) y los materiales de yuca regionales (Llanera y Guajiba) mostró queestos últimos presentan valores promedio bajos de materia seca, proteína, fi-bra cruda, nitrógeno, magnesio, sodio, zinc y manganeso, y valores promediomás altos de potasio, fósforo, azufre, calcio, hierro, cobre y zinc. En cuanto alos carbohidratos totales, la yuca Llanera y la Guajiba presentaron contenidossimilares a los de las variedades Armenia y Verdecita. También presentaron con-tenidos similares de almidón y grasa comparados con la variedad Verdecita. Encuanto a las características fisicoquímicas, se observa que los materiales regio-nales (Llanera y Guajiba) presentan en promedio un mayor porcentaje de partecomestible y diámetro, pero menor peso, porcentaje de cáscara, longitud, pHy sólidos solubles totales, comparados con las otras tres variedades. Por otrolado, el contenido de ácido cianhídrico de los materiales regionales es similaral de la variedad Verdecita.

CARACTERIZACIÓN FISICOQUÍMICA Y NUTRICIONAL DE LA YUCA

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Tabla 11 Componentes nutricionales de materiales de yuca tradicionales producidos en Paime y Yacopí

(Cundinamarca), doce meses después de la siembra

Lugar/Variedad Paime (variedad Llanera) Yacopí (variedad Guajiba)

Componentes Promedio Mínimos Máximos Promedio Mínimos Máximos

Materia seca (%) 38,04 40,00 38,72 38,90 41,20 38,27

Humedad (%) 61,96 65,00 61,28 61,10 62,76 61,73

Proteína (%) 2,17 2,10 2,21 2,67 2,11 3,45

Grasa (%) 0,42 0,40 0,45 0,41 0,33 0,55

Fibra cruda (%) 0,53 0,40 0,72 0,76 0,59 1,05

Carbohidratos (%) 33,13 31,00 35,38 32,78 31,24 35,54

Almidón (%) 40,23 35,00 42,84 40,78 38,17 43,36

Azúcares totales (%) 0,74 0,70 0,83 0,75 0,64 0,84

Azúcares reductores (%) 0,18 0,10 0,22 0,15 0,06 0,24

Azúcares no reductores (%) 0,56 0,40 0,66 0,60 0,52 0,70

Cenizas (%) 1,78 1,40 2,31 2,28 2,17 2,41

Minerales

N (%) 0,35 0,30 0,45 0,25 0,24 0,27

P (%) 0,14 0,10 0,16 0,15 0,13 0,16

K (%) 2,02 1,90 2,14 2,05 1,93 2,20

Ca (%) 0,06 0,10 0,07 0,09 0,07 0,11

Mg (%) 0,06 0,0033 0,08 0,06 0,06 0,07

Na (%) 0,01 0,0033 0,02 0,01 0,01 0,01

S (%) 0,10 0,10 0,11 0,11 0,10 0,12

Fe (ppm) 25,84 15,00 44,50 15,00 15,00 15,00

Cu (ppm) 3,00 3,00 3,00 4,65 3,55 6,25

Mn (ppm) 5,04 3,00 9,13 3,00 3,00 3,00

Zn (ppm) 12,44 11,00 14,13 22,82 19,54 27,31

B (ppm) 3,80 3,50 4,02 3,29 2,84 3,68

Energía

kilocalorías/100 g 144,00 136,00 153,83 145,00 139,01 155,55




88

Tabla 12 Características fisicoquímicas de materiales de yuca tradicionales producidos en Paime y

Yacopí (Cundinamarca), 12 meses después de siembra

Lugar/Variedad Paime (variedad Llanera) Yacopí (variedad Guajiba)

Componentes Promedio Mínimos Máximos Promedio Mínimos Máximos

Peso total de la raíz (g) 466,50 275,40 883,40 545,10 638,60 1227,40

Parte comestible de la raíz (%) 78,58 61,00 84,49 81,23 74,08 85,72

Cáscara de la raíz (%) 21,42 16,00 38,91 18,77 14,28 25,92

Longitud de la raíz (cm) 26,99 21,00 39,00 29,01 19,00 52,00

Diámetro central (cm) 5,13 4,00 6,32 5,39 4,10 7,58

Grosor de la cáscara (cm) 0,19 0,10 0,29 0,21 0,13 0,28

pH 5,98 4,70 6,62 6,61 6,30 6,74

Sólidos solubles totales ( Brix) 5,70 4,70 7,00 4,60 3,60 4,90

Acidez (% de ácido cianhídrico) 0,08 0,03 0,17 0,09 0,07 0,12


89

Costos de producción

Consideraciones

La estructura de costos del cultivo de yuca difiere según el sistema de produc-ción utilizado y la región donde se establezca. Lo ideal es que cada región ofinca calcule sus propios costos de producción. Sin embargo, los valores pre-sentados en este documento fueron adaptados de los costos reportados parauna hectárea de yuca en Colombia por el Sistema de Información de Gestión yDesempeño de Organizaciones de Cadenas [SIOC] (Ministerio de Agricultura yDesarrollo Rural, 2017) (Tabla 13).

Dentro de la estructura, los costos directos representan el 81,8 %, los cuales a suvez abarcan, en su respectivo orden demayor a menor inversión: actividades decosecha (37,5 %), insumos agrícolas (19,9 %), siembra y mantenimiento (17,2 %),y preparación del terreno (7 %).

Por otra parte, los costos indirectos representan el 18,2 % del total de dineroa invertir en la siembra de una hectárea de yuca. Dentro de este concepto, losrubros de arriendo y administración representan más del 50 % de la inversión y,en caso de no requerirse dichos aportes, los costos indirectos se concentraríanen los rubros de asesoría técnica y costo financiero, respectivamente.

COSTOS DE PRODUCCIÓN

90

Tabla 13 Costos de producción para una hectárea de yuca en Colombia

Actividad Unidad Cantidad Valor unitario Valor hectárea

Preparación de suelo USD 155,00

Arada Hectárea 1 USD 99,20 USD 99,20

Rastrillada Hectárea 1 USD 55,80 USD 55,80

Siembra y mantenimiento USD 381,90

Transporte de semilla Bulto 20,00 USD 0,46 USD 9,20

Picada y tratamiento de semilla Jornal 3 USD 12,40 USD 37,20

Siembra de yuca Jornal 3 USD 12,40 USD 37,20

Resiembra Jornal 1 USD 12,40 USD 12,40

Aplicación preemergente/aguatero Global 3 USD 12,40 USD 37,20

Aplicación de fertilizantes Jornal 2 USD 12,40 USD 24,80

Aplicación de insecticidas Jornal 4 USD 12,40 USD 49,60

Limpias o deshierbes Jornal 14 USD 12,40 USD 173,60

Insumos agrícolas USD 440,30

Semilla de yuca Cangres 12000 USD 0,01 USD 120,00

Preemergentes Global 1 USD 37,20 USD 37,20

Fertilizantes Bultos 5 USD 34,10 USD 170,50

Insecticidas Litro 2 USD 27,90 USD 170,50

Empaques Unidad 150 USD 0,15 USD 22,50

Pita Rollo 1 USD 4,60 USD 4,60

Cosecha USD 827,90

Arranque de raíces Tonelada 30 USD 9,30 USD 279,00

Transporte Tonelada 30 USD 10,85 USD 325,50

Picado y secado Tonelada 8 USD 27,90 USD 223,20

Total costos directos Hectárea USD 42,20

Costos indirectos USD 402,20

Administración (5 % costos directos) USD 90,20

Asesoría técnica Hectárea 1 USD 55,80 USD 55,80

Arriendo Hectárea 1 USD 186,00 USD 186,00

Costo financiero (DTF + 2) Dólares USD 42,20

Comercialización Dólares 10 USD 2,70 USD 27,00

Costo total Hectárea USD 2206,90

Nota: DTF: Depósito a Término Fijo. Para el cálculo de los costos de producción de la tabla anterior se

tuvo en cuenta el promedio de la Tasa Representativa del Mercado para los meses de junio a noviembre

de 2018 (TRM USD 3225).

Fuente:Modificado de Ministerio de Agricultura y Desarrollo Rural (2017).

91

Referencias bibliográficas

Aguilera, S.M. (2000). Importancia de la protección de la materia orgánica en suelos (Boletín n.º 14,pp. 77-85). Universidad de Chile, Valdivia, Chile. Recuperado de http://repositorio.uchile.cl/bitstream/handle/2250/121065/Suelos_AGUILERA_2000.pdf?sequence=1&isAllowed=y

Allem, A. C. (2002). The origins and taxomomy of Cassava. En R. Hillocks, J. Thresh y A. C.Bellotti (Eds.), Cassava: Biology, Production and Utilization (pp. 1-16). Cali, Colombia: CentroInternacional de Agricultura Tropical (CIAT).

Alonso, L. y Gallego, S. (2005). Tecnologías para el manejo poscosecha del cultivo de la yuca. Cali,Colombia: Consorcio Latinoamericano y del Caribe de Apoyo a la Investigación y alDesarrollo de la Yuca (CLAYUCA).

Álvarez, E. y Llano, G. (2002). Enfermedades del cultivo de yuca y métodos de control. EnB. Ospina y H. Ceballos (Eds.), La yuca en el tercer milenio: sistemas modernos de producción,procesamiento, utilización y comercialización (pp. 131-262). Cali, Colombia: Centro Internacionalde Agricultura Tropical (CIAT).

Álvarez, E., Mejía, F., Loke, J., Llano, G. y Hernández, L. (2003). Detection of a Phytoplasma Associatedwith Frogskin Disease in Cassava (Manihot esculenta Crantz) in Colombia. Centro Internacionalde Agricultura Tropical (CIAT).

Álvarez, E., Pardo, J., Mejía, J., Santos de Oliveira, S., Zacher, M., Cardozo, L. y Gómez, Y. (2015).Manejo del ‘Cuero de Sapo’, enfermedad limitante de la yuca. Cali, Colombia: Centro Internacionalde Agricultura Tropical (CIAT).

Alzate, A. (2009). Variabilidad genética y grado de adopción de la yuca (Manihot esculenta Crantz) cultivadapor pequeños agricultores de la costa atlántica colombiana (Tesis de maestría). UniversidadNacional de Colombia, Palmira, Colombia. Recuperado de http://www.bdigital.unal.edu.co/1465/1/7205001.2009.pdf

http://repositorio.uchile.cl/bitstream/handle/2250/121065/Suelos_AGUILERA_2000.pdf?sequence=1&isAllowed=y

http://repositorio.uchile.cl/bitstream/handle/2250/121065/Suelos_AGUILERA_2000.pdf?sequence=1&isAllowed=y

http://www.bdigital.unal.edu.co/1465/1/7205001.2009.pdf

http://www.bdigital.unal.edu.co/1465/1/7205001.2009.pdf

REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS

92

Amarachi D., Oluwafemi J. y Umezuruike L. O. (2015). Postharvest handling and storage of fresh cassavaroot and products: a review. Nueva York, EE. UU.: Springer Science Business Media.

Amponsah K., Sheriff J. y Byju G. (2014). Comparative evaluation of manual cassava harvestingtechniques in Kerala, India. CIGR Journal, 16(2), 41-53.

Bartz, J. A. y Brecht, K. J. (2003). Postharvest physiology and pathology of vegetables (pp. 636-648).Gainesville, Florida, EE. UU.: University of Florida.

Bellotti, A., Arias, B. y Reyes, J. (2002). Manejo de plagas de la yuca. En B. Ospina y H. Ceballos(Eds.), La yuca en el tercer milenio: sistemas modernos de producción, procesamiento, utilizacióny comercialización (pp. 220-233). Cali, Colombia: Centro Internacional de AgriculturaTropical (CIAT).

Benavides, J., A. Espitia, L., Bracho y N. Benítez. (2017). Producción y escalamiento de semillas limpiasde yuca. Montería, Colombia: Corpoica.

Bertsch, F. (1995). La fertilidad de los suelos y su manejo. Costa Rica, San José: AsociaciónCostarricense de la Ciencia del Suelo (ACCS).

Brecht, J. (2002). Underground Storage Organs. Postharvest Physiology and Pathology of Vegetables. NuevaYork, EE. UU.: Marcel Dekker.

Cadavid, L. (2002). Suelo y fertilización para Yuca. En B. Ospina y H. Ceballos (Eds.), La yucaen el tercer milenio: sistemas modernos de producción, procesamiento, utilización y comercialización(pp. 76-103). Cali, Colombia: Centro Internacional de Agricultura Tropical (CIAT).

Cadavid, L. y López, L. (2015). Fertilización de cultivo de yuca. Tecnologías modernas de producciónde yuca. Palmira, Colombia: Consorcio Latinoamericano y del Caribe de Apoyo a laInvestigación y al Desarrollo de la Yuca (CLAYUCA).

Calle, F. (2002). Control de malezas en el cultivo de la yuca. En B. Ospina y H. Ceballos(Eds.), La yuca en el tercer milenio: sistemas modernos de producción, procesamiento, utilización ycomercialización (pp. 126-128). Cali, Colombia: Centro Internacional de Agricultura Tropical(CIAT).

Calvert, L. y Cuervo, M. (2002). Enfermedades virales de la yuca en América del Sur. En B. Ospinay H. Ceballos, La yuca en el tercer milenio (pp. 16-32). Cali, Colombia: Centro Internacional deAgricultura Tropical (CIAT).

Ceballos, H. y de la Cruz. (2002). Taxonomía y morfología de la Yuca. En B. Ospina y H. Ceballos(Eds.), La yuca en el tercer milenio: sistemas modernos de producción, procesamiento, utilización ycomercialización (pp. 15-32). Cali, Colombia: Centro Internacional de Agricultura Tropical(CIAT).


93

Ceballos, H. y Hershey, C. (2017). Cassava (Manihot esculenta Crantz). En H. Campos y P. Caligari(Eds.), Genetic improvement of tropical crops (pp. 129-180). Cham, Suiza: Springer.

Cenóz, P. J., López, A., Burgos, A.M. (2001). Factores ambientales que regulan el deterioro poscosecha enmandioca. Recuperado de http://revistas.unne.edu.ar/index.php/agr/article/view/473

Daniel, C. D. (2005). Sida rhombifolia [Fotografía]. Recuperada del sitio web de WikimediaCommons: https://commons.wikimedia.org/wiki/File:Arrowleaf.jpg

Departamento Administrativo Nacional de Estadística [DANE] (2015). Encuesta Nacional Agropecuaria.Bogotá, Colombia. Recuperado del sitio web del DANE: https://www.dane.gov.co/index.php/estadisticas-por-tema/agropecuario/encuesta-nacional-agropecuaria-ena

Diaz, M. (2012). La yuca en el Caribe colombiano: Del cultivo ancestral a agroindustrial. EnDocumentos sobre economía regional (158, 4-63). Banco de la República de Colombia.

Djatmiko, W. A. (2007). Imperata cylindrica with spikes. Bogor, West Java, Indonesia [Fotografía].Recuperada del sitio web de Wikimedia Commons: https://commons.wikimedia.org/wiki/File:Impera_cylind_071122-1339_stgd.jpg

Doll, J. R., Pinstrup, A. y Diaz, R. (1977). An agro-economic survey of the weeds and weedingpractices in cassava (Manihot esculenta Crantz) in Colombia. En Weed Research (17, 153-160).

Doll, J. y Piedrahita, W. (1976). Methods of weed control in cassava. Cali, Colombia: CentroInternacional de Agricultura Tropical (CIAT). Recuperado de https://cgspace.cgiar.org/bitstream/handle/10568/71779/CIAT_COLOMBIA_000163_Methods_of_weed_control_in_cassava.pdf?sequence=1&isAllowed=y

Domínguez, C. E. (1983). Yuca: Investigación, producción y utilización. Cali, Colombia: CentroInternacional de Agricultura Tropical (CIAT), Programa de Yuca, Programa de las NacionesUnidas para el Desarrollo (PNUD).

Dykinga, J. (2010). Pirate bug (Orius insidiosus [Rhynchota: Anthocoridae]) feeding on whitefly nimphs [Fotografía]. Recuperado del sitio web de Wikimedia Commons:https://commons.wikimedia.org/wiki/File:Orius_insidiosus_from_USDA_2_(cropped).jpg

Edison, S. (2007). Cassava research and development strategies in India. En R. H. Howeler(Ed.), Cassava research and development in Asia: exploring new opportunities for an ancient crop(pp. 13-24). Cali, Colombia: Centro Internacional de Agricultura Tropical (CIAT).

El-Sharkaway, M. (2007). Review Physiological characteristics of cassava tolerance to prolongeddrought in the tropics: Implications for breeding cultivars adapted to seasonally dry andsemiarid environments. En Brazilian Journal of Plant Physiology, 19(4, pp: 257-286).

http://revistas.unne.edu.ar/index.php/agr/article/view/473

https://commons.wikimedia.org/wiki/File:Arrowleaf.jpg

https://www.dane.gov.co/index.php/estadisticas-por-tema/agropecuario/encuesta-nacional-agropecuaria-ena

https://www.dane.gov.co/index.php/estadisticas-por-tema/agropecuario/encuesta-nacional-agropecuaria-ena

https://commons.wikimedia.org/wiki/File:Impera_cylind_071122-1339_stgd.jpg

https://commons.wikimedia.org/wiki/File:Impera_cylind_071122-1339_stgd.jpg

https://cgspace.cgiar.org/bitstream/handle/10568/71779/CIAT_COLOMBIA_000163_Methods_of_weed_control_in_cassava.pdf?sequence=1&isAllowed=y



https://commons.wikimedia.org/wiki/File:Orius_insidiosus_from_USDA_2_(cropped).jpg


94

Fondo Internacional de Desarrollo Agrícola [FIDA] y Organización de las Naciones Unidas para laAgricultura y la Alimentación [FAO] (2000). La economía mundial de la yuca: hechos, tendencias yperspectivas. Roma, Italia.

Fonseca, J.M. y Saborío, D. (2001). Tecnología postcosecha de yuca fresca parafinada (Manihot esculentaCrantz) para exportación en Costa Rica. Costa Rica: Centro de Investigaciones Agronómicas,Convenio Postcosecha, Ministerio de Agricultura y Ganadería (MAG), Universidad de CostaRica (UCR).

Gallardo, J. (2016). La materia orgánica del suelo: Residuos orgánicos, humus, compostaje y captura decarbono. Salamanca, España: Sociedad Iberoamericanade Física y Química Ambiental.

García, M. y Rodríguez, S. (1994). Técnicas de multiplicación de material de siembra y sualmacenamiento. En Interfase entre los programas de mejoramiento, los campos de los agricultoresy mercados de la yuca en Latinoamerica. Memorias de la Tercera Reunión de Fitomejoradoresde Yuca (138, pp. 171-179). Cali, Colombia: Centro Internacional de AgriculturaTropical (CIAT). Recuperado de: http://ciat-library.ciat.cgiar.org/articulos_ciat/Digital/SB211.C3_I573C.3_Reuni%C3%B3n_Panamericana_de_Fitomejoradores_de_Yuca_3,_1994,_Cali,_Colombia.pdf#page=168

Garrido, M. (1994). Interpretación de análisis de suelos. En Hojas divulgadoras, 5 (pp. 1-40). Madrid,España: Ministerio de Agricultura Pesca y Alimentación.

Hectonichus (2009). Chrysoperla carnea [Fotografía]. Recuperada del sitio web de WikimediaCommons: https://commons.wikimedia.org/wiki/File:Chrysopidae_-_Chrysoperla_carnea-1.JPG

Herrera, C. J. (1999). Manejo integrado de plagas en el cultivo de la yuca. En Seminario TallerHacia una producción bioracional de la Yuca. Plan Municipal de Desarrollo (PMD), InstitutoInteramericano de Cooperación para la Agricultura (IICA), Biocaribe S. A. Pivijay, Carmende Bolívar, Colombia.

Howeler, H. (2012). The cassava handbook: A reference manual based on the Asian Regional Cassava TrainingCourse, held in Thailand. Bangkok, Tailandia: Centro Internacional de Agricultura Tropical(CIAT).

Howeler, R., Thomas, G. y Lutaladio, N. (2013). Save and Grow Cassava: a Guide to SustainableProduction Intensification. Roma: FAO.

Instituto Colombiano Agropecuario [ICA] (1992). Fertilización en diversos cultivos, Quinta aproximación(5ª ed.) [Manual de asistencia técnica]. Bogotá: Instituto Colombiano Agropecuario.

Iglesias, C. A. (Ed.) (1994). Memorias de la Reunión Panamericana de Fitomejoradores de Yuca. Cali,Colombia: Centro Internacional de Agricultura Tropical (CIAT).

http://ciat-library.ciat.cgiar.org/articulos_ciat/Digital/SB211.C3_I573C.3_Reuni%C3%B3n_Panamericana_de_Fitomejoradores_de_Yuca_3,_1994,_Cali,_Colombia.pdf#page=168



https://commons.wikimedia.org/wiki/File:Chrysopidae_-_Chrysoperla_carnea-1.JPG

https://commons.wikimedia.org/wiki/File:Chrysopidae_-_Chrysoperla_carnea-1.JPG


95

Labrador, J. (1996). La materia orgánica de los agroecosistemas (1ª ed.). Madrid: Ediciones Mundi-Prensa.

Lindsey, J. (2017). Aleyrodes lonicerae from Commanster, Belgian High Ardennes [Fotografía].Recuperada del sitio web de Wikimedia Commons: https://commons.wikimedia.org/wiki/File:Aleyrodes.lonicerae.-.lindsey.jpg

López, J. (2002). Semilla Vegetativa de Yuca. En B. Ospina y H. Ceballos, La yuca en el tercer milenio:sistemas modernos de producción, procesamiento, utilización y comercialización (49-75). CentroInternacional de Agricultura Tropical (CIAT).

Lozano, C., Toro, J., Castro, A y Bellotti, A. (1987). Selección y preparación de estacas de yuca parasiembra. Cali, Colombia: Centro Internacional de Agricultura Tropical (CIAT). Recuperadode: http://ciat-library.ciat.cgiar.org/Articulos_Ciat/Digital/SB211.C3_S45_Guia_1987_Selección_y_preparación_de_estacas_de_yuca_para_siembra.pdf

Ministerio de Agricultura y Desarrollo Rural (2017). Sistema de Información de Gestión y Desempeño deOrganizaciones de Cadenas (SIOC). Colombia. Recuperado de: https://sioc.minagricultura.gov.co/Yuca/Pages/default.aspx

Molina, E. (1998). Acidez de suelo y encalado. Costa Rica: Universidad de Costa Rica.

Olegiwit (s. f.). Bracken frond [Fotografía]. Recuperada del sitio web de Wikimedia Commons:https://commons.wikimedia.org/wiki/File:Fern-leaf-oliv-2.jpg

Organización de las Naciones Unidas para la Agricultura y la Alimentación [FAO]. (2013). Save andGrow: Cassava - A guide to sustainable production intensification. Roma, Italia. Recuperado dehttp://www.fao.org/3/a-i3278e.pdf

Organización de las Naciones Unidas para la Agricultura y la Alimentación [FAO]. (2019).Estadísticas por cultivo. Recuperado del sitio web de FAOSTAT http://www.fao.org/faostat/es/#data/QC

Ospina, B. y Ceballos, H. (2002). La yuca en el tercer milenio: sistemas modernos de producción,procesamiento, utilización y comercialización. Cali, Colombia: Centro Internacional deAgricultura Tropical (CIAT).

Peairs, F. (2010). Frankliniella occidentalis - western flower thrips [Fotografía]. EE. UU.: UniversidadEstatal de Colorado. Recuperado del sitio web de Wikimedia Commons: https://commons.wikimedia.org/wiki/File:Frankliniella_occidentalis_5364132-LGPT.jpg

Rickjpelleg. (2005). Nutgrass (Cyperus rotundus) flower head [Fotografía]. Recuperado del sitio web deWikimedia Commons: https://commons.wikimedia.org/wiki/File:Nutgrass_Cyperus_rotundus_flower_head.jpg

Rivas, E., Silva, R., Barrios, R., Mark, D., Coa, P., López, L., Fariñas, J., Sanabria, D. y Marcano, M.(2009). Influencia de dos sistemas de labranza y profundidades de siembra sobre

https://commons.wikimedia.org/wiki/File:Aleyrodes.lonicerae.-.lindsey.jpg

https://commons.wikimedia.org/wiki/File:Aleyrodes.lonicerae.-.lindsey.jpg

http://ciat-library.ciat.cgiar.org/Articulos_Ciat/Digital/SB211.C3_S45_Guia_1987_Selección_y_preparación_de_estacas_de_yuca_para_siembra.pdf

http://ciat-library.ciat.cgiar.org/Articulos_Ciat/Digital/SB211.C3_S45_Guia_1987_Selección_y_preparación_de_estacas_de_yuca_para_siembra.pdf

https://sioc.minagricultura.gov.co/Yuca/Pages/default.aspx

https://sioc.minagricultura.gov.co/Yuca/Pages/default.aspx

https://commons.wikimedia.org/wiki/File:Fern-leaf-oliv-2.jpg

http://www.fao.org/3/a-i3278e.pdf

http://www.fao.org/faostat/es/#data/QC

http://www.fao.org/faostat/es/#data/QC

https://commons.wikimedia.org/wiki/File:Frankliniella_occidentalis_5364132-LGPT.jpg

https://commons.wikimedia.org/wiki/File:Frankliniella_occidentalis_5364132-LGPT.jpg

https://commons.wikimedia.org/wiki/File:Nutgrass_Cyperus_rotundus_flower_head.jpg

https://commons.wikimedia.org/wiki/File:Nutgrass_Cyperus_rotundus_flower_head.jpg


96

características agronómicas de la yuca en sabanas bien drenadas del estado Monagas. EnAgronomía Tropical, 59(4, 373-379).

Rose, H. (2004). Melinis minutiflora [Fotografía]. Recuperada del sitio web de Wikimedia Commons:https://commons.wikimedia.org/wiki/File:Melinis_minutiflora_habit1_(7185542609).jpg

Steinert, E. (2004). Larva of Chrysoperla carnea with prey [Fotografía]. Recuperado del sitio web deWikimedia Commons: https://commons.wikimedia.org/wiki/File:Chrysoperla_carnea_larva02.jpg

Swift, R. S. (2001). Sequestration of carbon by soil. En Soil Science (166, 858-871).

Torres, J., Moreno, N. y Contreras, N. (1999). El cultivo de la yuca. Maracay, Venezuela: FondoNacional de Investigaciones Agrícolas, Centro de Investigaciones Agropecuarias del EstadoBarinas.

Toro, J. y Atlee, C. (1983). Prácticas agronómicas para la producción de yuca: una revisión deliteratura. En Yuca: Investigación, Producción y Utilización (pp. 167-207). Cali, Colombia: CentroInternacional de Agricultura Tropical (CIAT).

Wang, W., Feng, B., Xiao, J., Xia, Z., Zhou, X., Li, P. y Peng, M. (2014). Cassava genome froma wild ancestor to cultivated varieties. En Nature Communications (5, 1-9). Recuperado de:https://www.nature.com/articles/ncomms6110.pdf

Yost, R., Smyth, T. y Li, Z. (1990). Uso de sistemas de apoyo-decisión para hacer recomendacionesde cal y fósforo. En Taller latinoamericano de manejo de suelos tropicales (pp. 177-185).Universidad Estatal de Carolina del Norte, San José, Costa Rica.

Zell, H. (2009). Commelina communis, Commelinaceae, Common Dayflower, flower; Botanischer GartenKIT, Karlsruhe, Germany [Fotografía]. Recuperada del sitio web de Wikimedia Commons:https://commons.wikimedia.org/wiki/File:Commelina_communis_0002.JPG

https://commons.wikimedia.org/wiki/File:Melinis_minutiflora_habit1_(7185542609).jpg

https://commons.wikimedia.org/wiki/File:Chrysoperla_carnea_larva02.jpg

https://commons.wikimedia.org/wiki/File:Chrysoperla_carnea_larva02.jpg

https://www.nature.com/articles/ncomms6110.pdf

https://commons.wikimedia.org/wiki/File:Commelina_communis_0002.JPG

Este libro se compusoen Bogotá, D. C., en el año 2021,

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