propagación de la vid

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1 Propagación de la Vid Propagaci Propagació n Vegetativa n Vegetativa Estaca Estaca Injerto Injerto Tejidos implicados: Meristemas (apicales / primarios, laterales / secundarios) : Gobiernan crecimiento: tejidos que contienen células capaces de dividirse. Cambium : Fina capa de tejido meristemático localizada entre la médula y la corteza (xilema y floema). Por división celular es la zona generatriz libero - leñosa. Actividad cíclica de los tejidos Primavera- otoño. Temperaturas óptimas 20°- 25°C Actividad cambial Movimiento de savia – hidratación de tejidos Rizogénesis y Callogénesis Rizogénesis - Callogénesis : procesos independientes. Rizogénesis Crecimiento de raíces jóvenes con meristema funcional. Neoformación de raíces : formación de órganos (raíces) a partir de tejidos que normalmente no las producen.

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Page 1: Propagación de la vid

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Propagación de la Vid

PropagaciPropagacióón Vegetativan Vegetativa

�� EstacaEstaca

�� InjertoInjerto

Tejidos implicados:

Meristemas (apicales / primarios, laterales / secundarios) :Gobiernan crecimiento: tejidos que contienen células capaces de dividirse.

Cambium : Fina capa de tejido meristemáticolocalizada entre la médula y la corteza (xilema y floema). Por división celular es la zona generatriz libero - leñosa.

Actividad cíclica de los tejidos

• Primavera- otoño. •Temperaturas óptimas 20°- 25°C•Actividad cambial•Movimiento de savia – hidratación de

tejidos

Rizogénesis y Callogénesis

Rizogénesis - Callogénesis : procesos independientes.

Rizogénesis

• Crecimiento de raíces jóvenes con meristemafuncional.

• Neoformación de raíces : formación de órganos (raíces) a partir de tejidos que normalmente no las producen.

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Rizogénesis• En vegetales superiores : Células aptas para originar raíces : cambium, liber y periciclo.

• Liber y periciclo: 1°desdiferenciación2°actividad mitótica

intensa3°readquisiciónestado meristemático.

•En vid la base rizogénica es el cambium(Ravaz) .

Factores biológicos que intervienen en la Rizogénesis

• Según Favre (1980) en la activación inicial intervi enen 2 factores:

1°el sistema radical de la propia planta.2°el estado de funcionamiento de los tejidos de la

estaca en el momento de su extracción:

Influencia de:

- la yema y hojas (propagación en verde)- las reservas- los reguladores de crecimiento

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Influencia de la yema y hoja en la Rizogénesis

• Yema y hoja influyen en : aparición de raíces adventicias, número, peso y longitud.•Yema• Estado fisiológico de la yema

- yema cercana desborre: estimula- yema en dormición: Inhibiría

. Ferrer et al, (1991) no encontraron diferencias e n época de extracción.• Presencia y Posición de las yemas (Bouard,1966) • Ensayos demuestran presencia de 2 factores: uno presente en la yema y otro en el entrenudo: Facto r C o complementario.

Factor C : fijo a lo largo del tallo, específico, genéticame nte determinado, presente en el cambium.

Presencia hoja : propagación en verde con hoja - 90%sin hoja: < 59%

Influencia de las reservas en la Rizogénesis

• Alta relación C/N promueve enraizamiento.• Menor producción en planta madre aumentan capacidad de enraizado de sus estacas.• Deshojados tempranos que influyen sobre las reserv as lo hacen también sobre la emisión de raíces.

Influencia genética - diferencias entre variedades ysus cruzamientos

Capacidad de Enraizamiento :

• Muy Bueno: V. riparia, V. labrusca.• Bueno: V. rupestris• Malo: V. rubra, V. cordifolia• Muy malo: V. berlandieri, V. cinerea.

• 101-14 Mtg > Rupestris > 3309 C > 99 R > Riparia > SO4 > 140 Ru> 420 A > 110R > 41 B.

Influencia de factores externos

• Hidratación del material - inmersión previa enagua.

•Humedad: 90% - evitar deshidratación de tejidos -

• Temperatura: óptima 25°- 30°C (24°- 28°)

•Oxigeno: respiración intensa de tejidos. Drenaje.

• Luz: Oscuridad favorece emisión de raíces.

Influencia de factores internos

•Teoría de Boullenne (1964): interacción hormona específica (rizocalina) - movilizada por auxina - fijada por enzima.

. Teorías multi- hormonales intervención de auxinas - giberelinas - citokininas.

• Teoría de Dore (1965): hormonas -micronutrientes (vitaminas, aminoácidos)

• Presencia de inhibidores: Importancia del lavado previo en agua

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Auxinas:

• Elongación celular: extensión de la pared - entrada agua.• Activación - represión de genes específicos.• Actúan en tropismo de las plantas.• Promueve formación de raíces (ARN).• Promueve síntesis de etileno a altas dosis. • AIA hormona natural.• AIB mas estable, mas insoluble.• IPA, ANA, 2, 4-D, MCPA, etc.

Según Julliard (1973) auxina precursor de otros elementos.

Citokininas :

• Hormona de división celular.• Retarda senescencia.• Rol no específico en rizogénesis: cultivo in vitrorelación auxina/citokinina.

Giberelinas:

• Muchos autores señalan que inhiben enraizamiento.• En injerto de yema promovería

Etileno:

•Promueve enraizamiento en muchas especies •Auxina: produce etileno

Injertación

En el injerto, los parénquimas (tejido indiferenci ado),de ambos individuos, entran en contacto . Las célula s frontales se unen por la laminilla media y luego de una compresión en ambas masas, se forma el callo a part ir del cual se genera el nuevo cambium que prolonga el de ambos, regeneando la conexión vascular.

•Proliferación del cambium, en sarmientos agostados, iniciada por temperatura. (Determinación de los per íodos aptos para injertar)

•Temperatura de cicatrización ideal:

• V. riparia 25°C• V. rupestris 28°C•V. berlandieri 32°C

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Secuencia del proceso de organización anatómica de la región de injertación

Corte callo (tejido parenquimático) cambium nuevo tejido vascular xilema-floema

Diferenciación 2-3 semanas .

Tipos de injertos de mesa:ConservaciConservacióón del materialn del material

Material para injertarMaterial para injertar Material para injertarMaterial para injertarCopa - Pua

Pie

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PreparaciPreparacióón de la n de la puapua Injerto de mesaInjerto de mesa

Injerto OmegaInjerto Omega

ForzaduraForzadura

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Temperatura para la formación del callo• A temperatura > 37°C - no formación de callo.• A temperatura > 32°C - callo frágil, blando, se quie bra

• Injerto de mesa: 25 - 32°(28 - 30°) - 2 - 3 semanas.

Otros factores que intervienen

• Medio externo

• Humedad: 90%• O2 : indispensable respiración

Condiciones en la Condiciones en la forzaduraforzaduraMedio interno

• Hidratación: turgencia células

• Almidón - glúcidos: reservas que provean energía par a respiración - formación de nuevos tejidos y raíces.

• Minerales - aminoácidos: incierto pero a > N > forma ción de callo.

• Reguladores del crecimiento: auxinas

Salida de Salida de ForzaduraForzadura

Etapa de viveroEtapa de vivero

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Planta prontaPlanta pronta

ProducciProduccióón en invernn en invernááculoculo

ReposiciReposicióón en vin en viññedosedos

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Aptitud para la injertación - compatibilidad

• Compatibilidad - afinidad : grado de adaptación recíproca de las funciones fisiológicas entre el pie y la copa .

Tipos de incompatibilidad

• Incompatibilidad inmediata: cuando la planta no se desarrolla y el injerto muere prácticamente ensegui da de la brotación (clon 341 de Cabernet Sauvignon sob re clon 8245 de K 5 BB).

• Incompatibilidad diferida: cuando la muerte de la p lanta se produce en los primeros años luego de la plantac ión (clones 100 y 174 de Syrah sobre clon 5 de SO4).

•Incompatibilidad viral: La muerte se produce debido a la presencia de un virus , ya sea del portainjerto com o de la variedad (algunos clones de K 5 BB y de Syrah sobre R 110).

• Incompatibilidad fisiológica por desequilibrio horm onal: Clon 101 de Syrah sobre clon 5 de SO4 - agregado de hormona.

• Incompatibilidad nutricional por requerimientos diferentes : Moscatel o Cabernet Sauvignon sobre S O4

Desecamiento del escobajoDesecamiento del escobajo

Aptitud para la injertación

• Buena soldadura: V. riparia, V. rupestris, V. viníf era, V. labrusca y sus híbridos.

• Soldadura incompleta: V. berlandieri, V. cordifolia , V. aestivalis.

Prendimiento:

• Muy bueno: V. riparia, V. rupestris

• Bueno: SO4, 3309 C, 1103 P, 99R

• Bajo: 420A, K 5BB, 110R, 140Ru

Condiciones de planta de viveroCondiciones de planta de vivero

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Material a PropagarMaterial a Propagar

Ejemplo de la selecciEjemplo de la seleccióón n clonalclonal y de la certificaciy de la certificacióónn

Por que seleccionar material?Por que seleccionar material?

Causas de la variabilidadCausas de la variabilidad�� Variabilidad Variabilidad intravarietalintravarietal de la vidde la vid�� Origen Origen policlonalpoliclonal..-- cruzamientos naturales cruzamientos naturales y selecciy seleccióón natural posteriorn natural posterior

�� Origen monoclonal.Origen monoclonal.-- mutacionesmutaciones�� Origen patogOrigen patogéénico.nico.-- alteraciones alteraciones provocadas por algprovocadas por algúún patn patóógenogeno

Variabilidad por virusVariabilidad por virus

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Etapas de selecciEtapas de seleccióón genn genééticatica

�� SelecciSelecci óón MASAL o n MASAL o POLICLONAL : POLICLONAL : MMááximo de ximo de variabilidadvariabilidad

�� prospecciprospecci óón del n del terreno marcando terreno marcando plantasplantas que se que se destaquendestaquen

•Selección CLONAL los individuos seleccionados en la primer etapase evalúan en la misma situación agroecológica . Máximo de homogeneidad

SELECCISELECCIÓÓN CLONALN CLONAL�� Identificar dentro de la Identificar dentro de la variedad poblacivariedad poblacióónnaquellos individuos maquellos individuos máás aptos para satisfacer s aptos para satisfacer los objetivos de la seleccilos objetivos de la seleccióónn

�� Reproducirlos vegetativamente, medianteReproducirlos vegetativamente, medianteestaquillado o injerto (evitar la recombinaciestaquillado o injerto (evitar la recombinacióón n gengenéética)tica)

�� PoblaciPoblacióón homogn homogéénea de plantas nea de plantas provenientes de un mismo individuo : la provenientes de un mismo individuo : la cabeza de clon : una plantacabeza de clon : una planta

Materiales de multiplicaciMateriales de multiplicacióón n certificadocertificado

�� 44QueQue procedan de material de multiplicaciprocedan de material de multiplicacióón base o de n base o de materiales de multiplicacimateriales de multiplicacióón inicial (Cabeza de clon)n inicial (Cabeza de clon)

�� 44QueQue estestéé libre de plagas y enfermedadeslibre de plagas y enfermedades

�� 44QueQue estestéé libre de virosislibre de virosis�� 44EntrenudoEntrenudo corto infeccioso (GFLV)corto infeccioso (GFLV)�� 44mosaicomosaico de de ArabisArabis ((ArMVArMV))�� 44EnrolladoEnrollado de la vide la viñña a serotiposerotipo I y III (GLRV1, GLRV2)I y III (GLRV1, GLRV2)�� 44jaspeadojaspeado de la vid (de la vid (GFkVGFkV) ) ––solosolo para para portainjertosportainjertos--

�� Determina que la detecciDetermina que la deteccióón de virosis en este caso se debe llevar n de virosis en este caso se debe llevar a cabo por la ta cabo por la téécnica de cnica de indexajeindexaje--TestTest de Elisade Elisa

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SelecciSeleccióón sanitarian sanitaria

�� Individuo sano Test biológicos

Indicadores

•Test Serológico - ELISA

Injerto en verdeInjerto en verde

Individuo infectado

� Proceso de saneado

Cultivo in vitro - MICROINJERTO DE MERISTEMOS

Cultivo in vitro – TERMOTERAPIA

MicropropagaciMicropropagacióónn

Cabeza de clonCabeza de clonComportamiento AgronComportamiento Agronóómicomico

Ensayos de mínimo 5 años con 3 vinificaciones y degustaciones

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ConfrontaciConfrontacióón de clones del cv Merlotn de clones del cv Merlot Grafico de confrontaciGrafico de confrontacióón de n de clones cv Merlotclones cv Merlot

2006

•Margara, J. 1988. Multiplicación vegetativa y culti vo in vitro.

•Mahlstede, J.; E. Haber. 1959. Propagación de plant as.

•Riberau-Gayon, J. E. Peynaud. 1971. Ciencias y técn icas de la viña. Tomos I y II.

•Sivori, E. Et al. 1980. Fisiología vegetal. Tomo II I.

•Taiz,L; E. Zeiger. 1991. Plant Physiology .

• www.entav.fr

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�� BranasBranas J. 1974. J. 1974. ViticultureViticulture ..�� Ferrer, M. Ferrer, M. 1988 Propagaci1988 Propagaci óón de los frutales. Parte I. Montevideo. n de los frutales. Parte I. Montevideo.

Facultad de AgronomFacultad de Agronom íía.. 14 p.. (Mimeografiado).a.. 14 p.. (Mimeografiado).�� Ferrer, M. , Ferrer, M. , GuarinoniGuarinoni , A. 1988 Propagaci, A. 1988 Propagaci óón de los frutales. Parte n de los frutales. Parte

II. Montevideo. Facultad de AgronomII. Montevideo. Facultad de Agronom íía.. 21 p. (Mimeografiado).a.. 21 p. (Mimeografiado).�� Ferrer, M. , Ferrer, M. , GuarinoniGuarinoni , A., A. 1991 Influencia del medio de 1991 Influencia del medio de

enraizamiento y la fecha de extraccienraizamiento y la fecha de extracci óón del material de n del material de propagacipropagaci óón sobre la cantidad y calidad del barbado obtenido n sobre la cantidad y calidad del barbado obtenido del P.I. De vid SO4 y la determinacidel P.I. De vid SO4 y la determinaci óón de un estado fenoln de un estado fenol óógico gico crcr íítico. tico. BolBol . de . de InvInv . n. nºº 31 31 FacFac de Agr.de Agr.

�� HartmannHartmann , , H.TH.T.; .; D.ED.E. . KesterKester . 1974. Propagaci. 1974. Propagaci óón de Plantas: n de Plantas: principios y prprincipios y pr áácticas.cticas.

�� Huglin, J. ; Huglin, J. ; ScheneiderScheneider , , ChCh.1998 .1998 BiologieBiologie et et éécologiecologie de la de la vignevigne

BibliografBibliograf ííaa