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UNIVERSIDAD CENTRAL DEL ECUADOR
FACULTAD DE INGENIERÍA QUÍMICA
CARRERA DE INGENIERÍA QUÍMICA
ESTUDIO DEL ADECUADO CRECIMIENTO DEL HONGO TRICHODERMA
HARZIANUM Y TRICHODERMA HAMATUM EN SUSTRATO SÓLIDO.
TRABAJO DE GRADO PARA LA OBTENCIÓN DEL TÍTULO DE INGENIERA
QUÍMICA
AUTORA: JUANA MARICELA POALACIN CABASCANGO
TUTORA: ING. LORENA ELIZABETH VILLARREAL VILLOTA
QUITO
2015
ii
APROBACIÓN DEL TUTOR
En calidad de Tutora del Trabajo de Grado titulado, “ESTUDIO DEL ADECUADO
CRECIMIENTO DEL HONGO TRICHODERMA HARZIANUM Y TRICHODERMA
HAMATUM EN SUSTRATO SÓLIDO”, me permito certificar que el mismo es original y ha
sido desarrollado por la señorita JUANA MARICELA POALACIN CABASCANGO, bajo mi
dirección y conforme a todas las observaciones realizadas, considero que el trabajo reúne los
requisitos necesarios.
En la ciudad de Quito, a los 30 días del mes de Abril del 2015
Ing. Lorena Elizabeth Villareal Villota MSc.
PROFESORA TUTORA
iii
AUTORIZACIÓN DE LA AUTORÍA INTELECTUAL
Yo, JUANA MARICELA POALACIN CABASCANGO en calidad de autora del trabajo de
grado realizado sobre el ESTUDIO DEL ADECUADO CRECIMIENTO DEL HONGO
TRICHODERMA HARZIANUM Y TRICHODERMA HAMATUM EN SUSTRATO SÓLIDO,
por la presente autorizo a la UNIVERSIDAD CENTRAL DEL ECUADOR, hacer uso de todos
los contenidos que me pertenecen o de parte de los que contiene esta obra, con fines
estrictamente académicos o de investigación.
Los derechos que como autor me corresponden, con excepción de la presente autorización,
seguirán vigentes a mi favor, de conformidad con lo establecido en los artículos 5, 6, 8, 19 y
demás pertinentes de la Ley de Propiedad Intelectual y su Reglamento.
Quito, 30 de Abril del 2015
Juana Maricela Poalacin Cabascango
C.C. 1804267977
v
AGRADECIMIENTO
A Dios mi guía, y mi fortaleza quien con su amor infinito me dirigió por el camino correcto,
quien me alivió en mis momentos de tristeza y me ayudó a superar los obstáculos que se me
presentaron.
A mis padres Manuel y Carme quienes con esfuerzo y sacrificio permitieron que yo culminara
con mis estudios universitarios, quienes con su cariño y amor forjaron en mí una persona de
bien.
A mi hermana querida Myrian Poalacin quien estuvo alentándome día tras día para seguir
adelante y no renunciar a mis sueños, gracias por entenderme, por tus consejos y especialmente
gracias por ser el instrumento que Dios utilizó para que Él llegara a mi corazón y encontrara el
lado alegre de la vida.
A mis amigos Luis Asero, Melissa Enríquez, Glenda Andrade, Naty Velasco, Johanna Bonilla y
Anita Peralta que siempre estuvieron cuando los necesitaba brindándome su apoyo y amistad
desinteresada, también a mis amigos Diego Pullas, Victoria Ballagán y Margoth Quillupangui
quienes siempre encontraban la forma para hacernos olvidar de los momentos de tristeza.
A la Lic. Celia Velasteguí quien siempre confió en mis capacidades, quien me alentó y ayudó a
que este trabajo se desarrollara.
A mi directora de tesis la Ing. Lorena Villareal quien con sus conocimientos me guio durante
todo el desarrollo de esta investigación.
Mary.
vi
CONTENIDO
pág
LISTA DE FIGURAS ............................................................................................................... x
LISTA DE GRÁFICOS ...........................................................................................................xi
LISTA DE TABLAS ..............................................................................................................xii
LISTA DE ANEXOS ............................................................................................................. xiv
SIMBOLOGÍA ....................................................................................................................... xv
RESUMEN ............................................................................................................................ xvi
ABSTRACT ......................................................................................................................... xvii
INTRODUCCIÓN .................................................................................................................... 1
1. MARCO TEÓRICO .............................................................................................................. 3
1.1 Los hongos .......................................................................................................................... 3
1.2 Trichoderma spp. ................................................................................................................ 4
1.2.1 Clasificación Taxonómica. ............................................................................................... 5
1.2.2 Reproducción.. ................................................................................................................. 6
1.2.3 Morfología. ...................................................................................................................... 6
1.2.3.1 Características macroscópicas. ..................................................................................... 6
1.2.3.2 Características microscópicas. ...................................................................................... 6
1.3 Trichoderma harzianum. ..................................................................................................... 7
1.4 Trichoderma hamatum ........................................................................................................ 8
1.5 Mecanismos de Acción ....................................................................................................... 9
1.5.1 Competencia. .................................................................................................................. 9
1.5.2 Micoparasitismo. .............................................................................................................. 9
1.5.3 Antibiosis.. ....................................................................................................................... 9
1.6 Factores que influyen en el crecimiento ............................................................................. 10
1.6.1 Temperatura................................................................................................................... 10
1.6.2 Humedad.. ...................................................................................................................... 10
1.6.3 Aireación. ...................................................................................................................... 10
1.6.4 pH. ................................................................................................................................. 11
vii
1.6.5 Tamaño de partícula del sustrato.................................................................................... 11
1.6.6 Exposición de luz............................................................................................................ 11
1.7 Los hongos en el control biológico .................................................................................... 11
1.8 Sustratos en la producción de Trichoderma spp. ................................................................ 12
1.9 Fermentación .................................................................................................................... 13
1.9.1 Fermentación en medio líquido. ..................................................................................... 13
1.9.2 Fermentación en medio sólido. ....................................................................................... 14
1.9.3 Comparación entre la fermentación en medio sólido y en medio líquido.. ....................... 14
1.10 Curva de crecimiento microbiano .................................................................................... 16
1.11 Aplicaciones de Trichoderma spp. ................................................................................... 17
2. PARTE EXPERIMENTAL ................................................................................................. 19
2.1 Pruebas preliminares ......................................................................................................... 19
2.2 Diseño experimental .......................................................................................................... 20
2.3 Aplicación del hongo Trichoderma en plantas ................................................................... 24
2.4 Materiales y equipos ......................................................................................................... 24
2.5 Sustancias y reactivos ........................................................................................................ 25
2.6 Procedimientos.................................................................................................................. 25
2.6.1 Producción de Trichoderma spp. . .................................................................................. 25
2.6.2 Preparación del medio de cultivo a base de agar patata dextrosa (PDA) ........................ 27
2.6.3 Procedimiento de resiembra en el medio de cultivo PDA ................................................ 27
2.6.4 Preparación del sustrato en botellas de vidrio y en fundas de polietileno ........................ 27
2.6.5 Siembra del inóculo de Trichoderma spp. en botellas y en fundas.. ................................. 28
2.6.5.1 Recuento celular.. ........................................................................................................ 28
2.6.5.2 Diluciones seriadas. .................................................................................................... 28
2.6.5.3 Cámara de Neubauer................................................................................................... 29
2.6.5.4 Cálculo matemático de la concentración. .................................................................... 31
2.6.6 Procedimiento de contaje de esporas del sustrato sólido ................................................. 32
3. DATOS .............................................................................................................................. 33
3.1 Datos preliminares ............................................................................................................ 33
3.1.1 Datos de las sustancias utilizadas. .................................................................................. 33
3.1.2 Preparación del sustrato en camineras.. ......................................................................... 33
3.1.3 Concentración del inóculo para siembra en camineras. .................................................. 34
3.1.4 Concentración de esporas producidas en camineras.. ..................................................... 34
3.2 Datos del diseño experimental ........................................................................................... 35
viii
3.2.1 Preparación del sustrato en fundas. ................................................................................ 35
3.2.2 Concentración del inóculo para siembra en fundas.. ....................................................... 36
3.2.3 Contaje de esporas producidas en fundas.. ..................................................................... 36
4. CÁLCULOS ....................................................................................................................... 39
4.1 Cálculos de las pruebas preliminares ................................................................................. 39
4.1.1 Cálculo para determinar la cantidad de agua absorbida por el sustrato.. ....................... 39
4.1.2 Cálculo del volumen total de agua adicionada en la preparación del sustrato. ............... 39
4.1.3 Cálculo de la cantidad de agua total............................................................................... 40
4.1.4 Cálculo de la masa del sustrato seco. ............................................................................. 40
4.1.5 Cálculo del porcentaje de humedad. ............................................................................... 41
4.1.6 Cálculo para determinar la concentración de esporas. ................................................... 41
4.2 Cálculos del diseño experimental....................................................................................... 42
4.2.1 Porcentaje de humedad óptimo.. ..................................................................................... 42
4.2.2 Cálculo de la cantidad de agua total. ............................................................................. 42
4.2.3 Construcción de las curvas de crecimiento ..................................................................... 43
4.3 Cálculo estadístico ............................................................................................................ 43
4.3.1 Corrección de logaritmo base 10 a logaritmo natural. .................................................... 43
4.3.2 Cálculo de la velocidad de crecimiento de las curvas...................................................... 44
4.3.3 Cálculo del Coeficiente de variación.. ............................................................................ 45
5. RESULTADOS .................................................................................................................. 46
5.1 Resultados de las pruebas preliminares .............................................................................. 46
5.1.1 Cantidad de agua presente en la preparación del sustrato en camineras.. ....................... 46
5.1.2 Resultados de porcentaje de humedad del sustrato.......................................................... 46
5.1.3 Concentración de esporas obtenida de la propagación en botellas.................................. 47
5.1.4 Curvas de concentración versus volumen de agua adicionado al sustrato. ...................... 48
5.1.5 Curvas de concentración versus porcentaje de humedad.. ............................................... 49
5.2 Resultados del diseño experimental ................................................................................... 50
5.2.1 Volumen de agua óptimo.. .............................................................................................. 50
5.2.2 Resultados de la masa de agua total.. ............................................................................. 51
5.2.3 Resultados de temperatura y % de humedad para propagar Trichoderma. ...................... 51
5.2.4 Construcción de la curva de crecimiento.. ...................................................................... 52
5.3 Curvas de crecimiento obtenidas ....................................................................................... 57
5.4 Resultados estadísticos ...................................................................................................... 60
5.4.1 Resultados de %CV.. ...................................................................................................... 62
5.4.2 Velocidad específica de crecimiento microbiano.. ........................................................... 63
ix
5.5 Selección de las mejores condiciones para producir Trichoderma spp. ............................... 63
5.5.1 Análisis comparativo del % de humedad.. ....................................................................... 63
5.5.2 Análisis comparativo de la concentración.. ..................................................................... 64
5.5.3 Análisis comparativo del coeficiente de variación (%CV).. ............................................. 65
5.5.4 Selección de las mejores condiciones.. ............................................................................ 66
5.6 Resultados de aplicación del hongo Trichoderma spp. ....................................................... 66
6. DISCUSIÓN ....................................................................................................................... 68
7. CONCLUSIONES .............................................................................................................. 70
8. RECOMENDACIONES ..................................................................................................... 72
CITAS BIBLIOGRÁFICAS ................................................................................................... 73
BIBLIOGRAFÍA .................................................................................................................... 77
ANEXOS................................................................................................................................ 79
x
LISTA DE FIGURAS
pág
Figura 1. Hifa mostrando los principales organelos celulares. .................................................... 3
Figura 2. Estructura del 6-pentil-α-pirona .................................................................................. 5
Figura 3. Características macroscópicas de Trichoderma spp. .................................................... 6
Figura 4. Características microscópicas de Trichoderma spp. .................................................... 7
Figura 5. Trichoderma harzianum ............................................................................................. 8
Figura 6. Trichoderma hamatum ............................................................................................... 8
Figura 7. Tipos de sustratos ..................................................................................................... 12
Figura 8. Curva de crecimiento microbiano ............................................................................. 16
Figura 9. Diseño experimental para la producción de esporas y construcción de la
curva de crecimiento del hongo Trichoderma harzianum (TH) ................................................ 22
Figura 10. Diseño experimental para la producción de esporas y construcción de la
curva de crecimiento del hongo Trichoderma hamatum (THa). ................................................ 23
Figura 11. Diagrama de flujo del proceso de producción de Trichoderma spp. ......................... 26
Figura 12. Diluciones seriadas ................................................................................................. 29
Figura 13. Cámara de Neubauer .............................................................................................. 30
Figura 14. Divisiones de la zona de conteo .............................................................................. 30
Figura 15. Recuento con alta concentración celular ................................................................. 31
Figura 16. Aplicación en plantas de fresas ............................................................................... 66
Figura 17. Resultados luego de un mes de aplicación en plantas de fresa ................................. 67
Figura 18. Aplicación de los microorganismos en plantas de mora........................................... 67
Figura 19. Resultados luego de 50 días de aplicación en plantas de moras ............................... 67
xi
LISTA DE GRÁFICOS
pág
Gráfico 1. logC = f (Va) para Trichoderma harzianum ............................................................. 48
Gráfico 2. logC = f (Va) para Trichoderma hamatum ............................................................... 49
Gráfico 3. logC = f (%H) para Trichoderma harzianum ........................................................... 49
Gráfico 4. logC = f (%H) para Trichoderma hamatum ............................................................. 50
Gráfico 5. logC = f (tiempo) para Trichoderma harzianum a condición 1................................. 57
Gráfico 6. logC = f (tiempo) para Trichoderma harzianum a condición 2................................. 57
Gráfico 7. logC = f (tiempo) para Trichoderma harzianum a condición 3................................. 58
Gráfico 8. logC = f (tiempo) para Trichoderma hamatum a condición 1 ................................... 58
Gráfico 9. logC = f (tiempo) para Trichoderma hamatum a condición 2 ................................... 59
Gráfico 10. logC = f (tiempo) para Trichoderma hamatum a condición 3 ................................. 59
Gráfico 11. Velocidad de crecimiento de Trichoderma harzianum a condición 1 ..................... 60
Gráfico 12. Velocidad de crecimiento de Trichoderma harzianum a condición 2 ..................... 60
Gráfico 13. Velocidad de crecimiento de Trichoderma harzianum a condición 3 ..................... 61
Gráfico 14. Velocidad de crecimiento de Trichoderma hamatum a condición 1 ....................... 61
Gráfico 15. Velocidad de crecimiento de Trichoderma hamatum a condición 2 ....................... 62
Gráfico 16. Velocidad de crecimiento de Trichoderma hamatum a condición 3 ....................... 62
Gráfico 17. Análisis comparativo de la humedad ..................................................................... 64
Gráfico 18. Análisis comparativo de la concentración de esporas............................................. 65
Gráfico 19. Análisis comparativo del coeficiente de variación ................................................. 65
xii
LISTA DE TABLAS
pág
Tabla 1. Comparación entre la fermentación líquida y sólida ................................................... 15
Tabla 2. Volumen de agua adicionada en la preparación del sustrato ....................................... 19
Tabla 3. Número de repeticiones realizadas ............................................................................. 21
Tabla 4. Datos de las sustancias utilizadas ............................................................................... 33
Tabla 5. Datos de preparación del sustrato para TH en camineras ............................................ 33
Tabla 6. Datos de preparación del sustrato para THa en camineras .......................................... 33
Tabla 7. Datos de concentración del inóculo para siembra en camineras .................................. 34
Tabla 8. Datos del recuento celular de TH en camineras .......................................................... 34
Tabla 9. Datos del recuento celular de THa en camineras ........................................................ 35
Tabla 10. Datos de preparación del sustrato para TH en fundas ............................................... 35
Tabla 11. Datos de preparación del sustrato para THa en fundas .............................................. 36
Tabla 12. Datos de concentración del inóculo para siembra en fundas...................................... 36
Tabla 13. Datos de contaje de esporas para Trichoderma harzianum........................................ 37
Tabla 14. Datos de contaje de esporas para Trichoderma hamatum .......................................... 38
Tabla 15. Función estimación lineal para los dos microorganismos.......................................... 43
Tabla 16. Resultados de preparación del sustrato para TH en camineras .................................. 46
Tabla 17. Resultados de preparación del sustrato para THa en camineras ................................. 46
Tabla 18. Resultados de humedad del sustrato para TH ........................................................... 47
Tabla 19. Resultados de humedad del sustrato para THa .......................................................... 47
Tabla 20. Resultados de la concentración obtenida de TH en camineras................................... 47
Tabla 21. Resultados de la concentración obtenida de THa en camineras ................................. 48
Tabla 22. Resultados de volumen de agua óptima para TH ...................................................... 50
Tabla 23. Resultados de volumen de agua óptima para THa..................................................... 51
Tabla 24. Resultados de cantidad de agua total en el sustrato de TH ........................................ 51
Tabla 25. Resultados de cantidad de agua total en el sustrato de THa....................................... 51
Tabla 26. Resultados del %H a las diferentes condiciones ....................................................... 52
Tabla 27. Resultados de concentración de TH ......................................................................... 53
Tabla 28. Resultados de concentración de THa ........................................................................ 54
xiii
Tabla 29. Resultados del logaritmo de la concentración para TH ............................................. 55
Tabla 30. Resultados del logaritmo de la concentración para THa............................................ 56
Tabla 31. Resultados estadísticos corregidos ........................................................................... 63
Tabla 32. Resultados de velocidad específica de crecimiento ................................................... 63
Tabla 33. Promedio de la Concentración ................................................................................. 64
Tabla 34. Mejores condiciones de crecimiento ........................................................................ 66
xiv
LISTA DE ANEXOS
pág
ANEXO A. Taxonomía de Trichoderma spp. .......................................................................... 80
ANEXO B. Biograma Microbiano .......................................................................................... 81
ANEXO C. Norma INEN 1690 ............................................................................................... 82
ANEXO D. Materiales necesarios ........................................................................................... 83
ANEXO E. Propagación de Trichoderma en cajas Petri ........................................................... 84
ANEXO F. Preparación del sustrato ........................................................................................ 85
ANEXO G. Esterilización del sustrato ..................................................................................... 86
ANEXO H. Preparación del inóculo ........................................................................................ 87
ANEXO I. Inoculación del sustrato ......................................................................................... 88
ANEXO J. Determinación de la concentración de esporas ....................................................... 89
ANEXO K. Incubación de las especies .................................................................................... 90
xv
SIMBOLOGÍA
TH Trichoderma harzianum
THa Trichoderma hamatum
mab masa de agua absorbida por el sustrato
mH+c masa húmeda más cedazo
mc masa del cedazo
ms masa del sustrato (arrocillo)
Va volumen de agua adicionado
Vab volumen de agua absorbido
Vad volumen de agua adicionado
ma masa de agua para preparar el sustrato
mat masa de agua total
mas masa de agua en el arrocillo
mss masa del sustrato seco
%H humedad expresado en porcentaje
C concentración de esporas
Ne Número de esporas contadas
D Dilución
T Temperatura
t tiempo
μ velocidad de crecimiento
Sμ Desviación de la pendiente
%CV Coeficiente de variación
logC logaritmo base 10 de la concentración
Concentración promedio
Vop Volumen óptimo
UFC Unidades formadoras de colonias
xvi
ESTUDIO DEL ADECUADO CRECIMIENTO DEL HONGO TRICHODERMA
HARZIANUM Y TRICHODERMA HAMATUM EN SUSTRATO SÓLIDO
RESUMEN
Se establecieron las mejores condiciones de crecimiento de los hongos Trichoderma harzianum
y Trichoderma hamatum, en arrocillo usado como sustrato sólido. Para ello, se utilizaron cepas
nativas del cantón Ambato, aisladas del suelo por el MAGAP-Tungurahua y purificadas por la
empresa “Plantsphere Laboratories (PSL)”. Se trabajó experimentalmente con cuatro
humedades de sustrato, para la primera especie: 39,6%; 37,7%; 35,7% y 33,2%, para la
segunda: 41,3%; 38,2%; 34,8% y 31%. Las esporas se incubaron a tres temperaturas: ambiente
(21°C), 25°C y 28°C, con exposición natural de luz. Con las mejores humedades obtenidas para
cada especie y temperatura, a partir de las curvas de concentración de esporas versus humedad,
se procedió a una nueva inoculación, que permitió determinar la velocidad de desarrollo de
estos microorganismos, mediante las curvas de crecimiento.
Se concluye que a 25°C y 41,3% de humedad, se reduce el tiempo de producción de estos
hongos, obteniendo para las dos especies un valor máximo de 1,5x107 UFC/mL a los 12 días de
incubación.
PALABRAS CLAVES: / CRECIMIENTO / HONGOS / TRICHODERMA HARZIANUM /
TRICHODERMA HAMATUM / SUSTRATO SÓLIDO / TEMPERATURA DE INCUBACIÓN/
xvii
STUDY OF THE APPROPRIATE GROWTH OF THE FUNGI TRICHODERMA
HARZIANUM AND TRICHODERMA HAMATUM IN A SOLID SUBSTRATE
ABSTRACT
The best conditions were established for the growth of the Trichoderma harzianum and
Trichoderma hamatum fungi, in jungle-rice used as a solid substrate. To achieve this, native
strains from the area of Ambato were used, isolated in the ground by the MAGAP-Tungurahua
(Ministry of Agriculture, Livestock, Aquaculture and Fishing – Tungurahua branch) and
purified by the company “Plantsphere Laboratories (PSL)”. The work was done experimentally
using four levels of substrate moisture, for the first specie: 39,6%; 37,7%; 35,7% and 33,2%; for
the second one: 41,3%; 38,2%; 34,8% and 31%. The spores were incubated at three different
temperatures: environment (21°C), 25°C and 28°C, with natural exposure to light. With the best
moisture for each specie and temperature, and using the curves of spore concentration versus
moisture level, a new inoculation was performed, which allowed the determination of the
growth rate presented by these microorganisms, with the application of growth curves.
The conclusion is that at 25°C and 41,3% moisture level, the production rate presented by these
fungi is reduced, obtaining in both species a maximum value of 1,5x107 UFC/mL after 12 days
of incubation.
KEYWORDS: / GROWTH / FUNGI / TRICHODERMA HARZIANUM / TRICHODERMA
HAMATUM / SOLID SUBSTRATE / INCUBATION TEMPERATURE /
1
INTRODUCCIÓN
El Ecuador es considerado un país netamente agrícola. Grandes extensiones de tierras son
cultivadas para satisfacer la demanda de los consumidores, que día tras día se incrementa por el
constante crecimiento de la población. Los agricultores elevan la productividad del campo,
garantizan sus cosechas utilizando elevadas cantidades de plaguicidas, para controlar las
enfermedades de las plantas, siendo perjudiciales para los consumidores y el medio ambiente.
Además con el paso del tiempo este uso indiscriminado de productos tóxicos se ha vuelto
ineficaz, induciendo a la generación de plagas resistentes y difíciles de controlar.
La conciencia social que se ha generado en los últimos años ante el enorme deterioro
medioambiental por el uso abusivo de compuestos contaminantes, ha generado un gran interés
en la búsqueda de nuevas estrategias de producción, que sean ambientalmente sostenibles para
el control de plagas y enfermedades.
Una de las alternativas más innovadoras para garantizar la seguridad alimentaria, para disminuir
los residuos tóxicos, los contaminantes del suelo y los recursos hídricos que alteran el equilibrio
ecológico es la utilización del control biológico, un método que recurre a la ayuda de
microorganismos antagonistas de los agentes infecciosos para controlarlos de forma natural.
En el suelo se encuentran una gran cantidad de microorganismos benéficos, entre estos el hongo
Trichoderma. Constituyen un grupo de microorganismos filamentosos, que producen sustancias
antibióticas, metabolitos antifúngicos, son competidores por espacio y nutrientes frente a otros
microorganismos. Protegen las raíces de las plantas, desdoblan la materia orgánica facilitando la
asimilación de nutrientes, son fáciles de aislar, crecen en una amplia gama de sustratos siendo
factible su propagación masiva. También tiene capacidad de adaptación y supervivencia en
cultivos de alta contaminación producida por fungicidas.
El interés actual de disminuir el impacto ambiental con producciones más limpias para proteger
los recursos naturales ha generado que hace poco tiempo estas especies adquieran un valor
comercial importante. Aunque en el mercado mundial ya se cuentan con formulados a base de
Trichoderma para el control de microorganismos, en el país existe muy poca información. Por
2
tal razón este proyecto consiste en el estudio de la adecuada producción masiva de dos especies
endémicas del cantón Ambato, Trichoderma harzianum y Trichoderma hamatum en sustrato
sólido, con ayuda de curvas de crecimiento desarrolladas a condiciones controladas.
En el crecimiento de estos hongos se estudiaron dos variables esenciales que son; la cantidad de
agua para la preparación del sustrato y la temperatura de incubación, permitiendo generar mayor
producción de esporas en un menor tiempo. Como primer punto se replicó las especies en cajas
Petri, luego se multiplicó en botellas de vidrio “camineras” y finalmente en fundas de
polietileno.
Se realizó ensayos de humedad del sustrato para determinar el mejor valor, además para generar
comparaciones las especies fueron sometidas a tres temperaturas: al ambiente (21°C), 25°C y
28°C, dando como resultado una máxima concentración de esporas a la humedad del 41,3% y
temperatura de 25°C a los doce días de tratamiento.
Como etapa final los biofungicidas obtenidos, fueron aplicados en plantas de moras y fresas
dando como resultado mayor rapidez de desarrollo, mejor intensidad del color y brillo,
indicativos de que plantas se encuentran sanas y que los microorganismos estudiados si ejercen
un efecto positivo en ellas.
Este análisis además de generar información propia y vital para el laboratorio, permitió conocer
el comportamiento de los microorganismos frente a los tratamientos realizados y optimizar dos
variables del proceso productivo, obteniendo un bio fungicida que ejercerá una acción efectiva
en los diferentes cultivos donde sean aplicados, logrando cosechas más sanas.
3
1. MARCO TEÓRICO
1.1 Los hongos
Son microorganismos eucarióticos, heterótrofos, que requieren de compuestos orgánicos para su
nutrición. Secretan enzimas hidrolíticas, como lipasas, pectinasas y proteinasas que ayudan a
descomponer una gran variedad de sustratos, para absorber los nutrientes que hay en las hojas
muertas y otros materiales orgánicos del suelo.
Se alimentan de materia orgánica muerta, por lo que se les conoce como saprofitos, estos
generalmente no causan enfermedades. Solo descomponen restos complejos de vegetales y
animales, degradándolos a sustancias químicas más sencillas que son devueltas al suelo,
aumentando así su fertilidad. [1]
Algunos hongos pueden prosperar como parásitos invadiendo a sus hospedadores vivos
causando enfermedades (hongos patógenos) en plantas, animales y seres humanos. Los hongos
fitopatógenos ejercen un gran impacto económico en la industria agrícola debido a las
enfermedades que les pueden causar a los cultivos.
Poseen una pared celular que contiene quitina, están formados por largas fibras ramificadas,
llamadas hifas, las cuales forman el cuerpo principal del hongo o micelio. En la figura 1 se
indica una hifa con los principales organelos celulares.[2]
Figura 1. Hifa mostrando los principales organelos celulares.
4
Las hifas están rodeadas de una pared celular en forma de tubo que rodea una cavidad central o
lumen, donde se encuentra el protoplasma. La pared es de consistencia rígida y está compuesta,
principalmente, de hemicelulosa y quitina (dos polímeros fibrilares, el primero de N-
acetilglucosamina y el segundo de glucosa). [3]
La reproducción puede ser: [4]
1) Asexual, por fisión binaria, gemación o formación de esporas
2) Sexual, por fusión de los núcleos de dos células afines.
Se desarrollan prácticamente sobre cualquier sustrato pero necesitan de humedad, la cual la
obtienen de la atmósfera o del medio sobre el cual están creciendo. Si las condiciones son
adversas y el hábitat se vuelve muy seco, estos sobreviven entrando en una fase latente o
produciendo esporas resistentes a la deshidratación.
Los hongos alcanzan un óptimo desarrollo en ambientes oscuros y húmedos con temperaturas
entre 22 y 30°C aunque algunos pueden crecer a temperaturas tan altas como 62 °C, tan bajas
como 0 °C o menos y toleran amplios rangos de pH de 2 a 9 pero casi todos crecen mejor en un
pH ácido. [5]
Son importantes porque permiten la elaboración de pan, cerveza, quesos maduros, bebidas
espirituosas (vinos, champañas), son la base de medicinas como la penicilina, se utilizan en la
biorremediación, en la agricultura, la horticultura y la silvicultura. Pero pueden ser dañinos
cuando pudren madera, textiles, papel, alimentos, etc. [6]
1.2 Trichoderma spp.
Las especies de este género se encuentran ampliamente distribuidas por todas las latitudes, y se
presentan naturalmente en diferentes ambientes, especialmente en aquellos que contienen
materia orgánica o desechos vegetales en descomposición. [7]
Este beneficioso hongo es filamentoso, heterótrofo, aerobio, su pared celular está compuesta de
quitina, coloniza fácilmente las raíces de las plantas, las mejora e impide que nuevos hongos
colonicen la zona donde éste se desarrolla. Son los antagonistas más utilizados para el control
biológico debido a su facilidad para ser aisladas y cultivadas en un gran número de sustratos.
Además no son patógenos de plantas, ni peligrosos para los humanos o animales.
5
Su presencia puede ser detectada por un ligero olor a coco en el sustrato, así como por su color
verde y blanquecino. Producen enzimas y vitaminas, “antibióticos” que al ser absorbidos por las
raíces de las plantas generan un crecimiento más rápido. En ciertos casos el antibiótico formado
es específico contra el patógeno de las plantas, garantizando así su eficacia.
La población de Trichoderma decrece especialmente cuando la humedad del ambiente
desciende por largos períodos de tiempo. Otros estudios han determinado que el pH, la
concentración de CO2, HCO3, sales y el contenido de materia orgánica son factores físicos y
químicos determinantes para la variación de la cantidad de estas especies, además de la
presencia o ausencia de otros microorganismos en el ambiente. [8]
Trichoderma spp. durante su proceso de producción genera metabolitos volátiles antifúngicos
como la lactona 6-pentil -α-pirona (6PAP) con aroma a coco, que es un líquido de color amarillo
a naranja, tiene la fórmula molecular C10H14O2. La figura 2 presenta la estructura del 6PAP. [9]
CH3(CH2)3CH2 O O
Figura 2. Estructura del 6-pentil-α-pirona
1.2.1 Clasificación Taxonómica. Las especies del género Trichoderma spp. pertenecen a un
grupo de hongos filamentosos que han sido caracterizados por sus aplicaciones en el sector
agrícola como controladores biológicos de una amplia gama de organismos patógenos.
La clasificación taxonómica del género Trichoderma es: [10]
Reino: Fungi
División Ascomycota
Subdivisión: Pezizomycota
Clase: Sordariomycetes
Orden: Hypocreales
Familia: Hypocreaceae
Género: Trichoderma
6
1.2.2 Reproducción. Las especies Trichoderma spp. se reproduce asexualmente, pueden utilizar
una gran variedad de sustratos complejos como celulosa, quitina, pectina y almidón como fuente
de carbono. Muchas cepas crecen eficientemente en medios sólidos o líquidos y en un amplio
rango de temperaturas, son relativamente tolerantes a humedades bajas y crecen en suelos
ligeramente ácidos.
1.2.3 Morfología.
1.2.3.1 Características macroscópicas. Las colonias se reconocen fácilmente por su rápido
crecimiento y sus coloraciones son: blancas – verdes o amarillo – verdosas; las áreas con
colonias se presentan con anillos concéntricos. El revés de las colonias son usualmente de
colores, amarillo, ámbar o amarillo – verde. En la figura 3 se observan las características que
presenta Trichoderma. [11]
Figura 3. Características macroscópicas de Trichoderma spp.
1.2.3.2 Características microscópicas.
Conidióforos. Son erectos, hialinos, no verticilados, en su mayoría ramificados, parecen un
árbol pequeño con un sistema de ramas irregulares de manera piramidal y pueden estar
solitarios o en grupos (figura 4). [12]
Fiálides. Son en forma de botella, pueden estar solas o en grupos, hinchada en la región
central pero delgada hacia el ápice: son hialinas y en ángulo recto con respecto a los
7
conidióforos. Es donde se forman las esporas asexuales o conidios, de gran importancia para
la identificación taxonómica a nivel de especies. [13]
Conidios. Son esporas asexuales de color verde – amarillo – blanco, con esporulación densa
que aseguran la generación del hongo durante gran parte del período vegetativo de las
plantas. Su pared está compuesta por quitina y glucanos. Su función es la reproducción
rápida, dispersión y supervivencia. [14]
Figura 4. Características microscópicas de Trichoderma spp.
La mayoría de las especies de Trichoderma tienen la capacidad de producir clamidosporas en
sustratos naturales, estructuras de vital importancia para la sobrevivencia del género en el suelo
ya que soportan condiciones ambientales adversas.
1.3 Trichoderma harzianum.
Sus colonias son de color amarillo verdoso (Figura 5). Interviene como digestor del nitrógeno
orgánico. Es tolerante a la tensión impuesta por escasez de nutrientes, se utiliza en el control
biológico como fungicida, en aplicación foliar, tratamiento de semillas y el tratamiento del suelo
para la supresión de diversos patógenos que provocan enfermedades fúngicas. También controla
el marchitamiento (una enfermedad que mata las plantas jóvenes, ennegreciendo y encogiendo
los tallos). [15]
8
Figura 5. Trichoderma harzianum
Penetra las raíces de las plantas sin causar daños, provocando cambios bioquímicos y formación
de barreras físicas. Los metabolitos que produce esta especie se encuentran relacionados con la
composición del medio en el que se encuentra, es decir los nutrientes que tiene disponible.
Disminuye su población conforme aumenta la altura sobre el nivel del mar. Su ambiente óptimo
son climas templados. [16]
1.4 Trichoderma hamatum
Al ser incorporada en el suelo adquiere un potencial como agente de biocontrol, regulando
poblaciones de nemátodos que generan un especie de marchitamiento de las plantas dañando las
raíces e impidiendo la absorción de los nutrientes. Por tal motivo mejora la supervivencia de las
plantas de caña de azúcar, de tomate de árbol, de plátano, de papa, etc. En la figura 6 se observa
a esta especie. [17]
Figura 6. Trichoderma hamatum
9
1.5 Mecanismos de Acción
El hongo Trichoderma presenta distintos mecanismos de acción para ejercer su antagonismo,
dependiendo de las características de la cepa de Trichoderma, del patógeno y las condiciones
ambientales, entre estos tenemos competencia, parasitismo y antibiosis.
1.5.1 Competencia. Para que exista competencia es necesario la escasez o limitación de un
requerimiento (espacio y/o nutrientes), por lo que la competencia puede definirse como el
comportamiento desigual de dos o más organismos ante un mismo requerimiento, siempre y
cuando la utilización por uno de ellos, reduzca la cantidad necesaria para los demás. [18]
La presencia natural de Trichoderma en diferentes ambientes demuestra que son excelentes
competidores por espacio y recursos nutricionales. Este modo de acción se ve favorecido por la
velocidad de crecimiento que presentan la mayoría de estas especies que frenan el desarrollo a
los competidores.
1.5.2 Micoparasitismo. Se refiere al hecho de que un microorganismo parasita a otro, en este
caso a un patógeno de plantas. Consiste en la utilización del patógeno como alimento por su
antagonista. [19]
Trichoderma es un hongo muy favorable porque no ataca a los seres vivos. Producen enzimas
como la β-1,3-glucanasa que ayudan a degradar las paredes celulares de las hifas del hongo a
destruir (huésped), consiguiendo así absorber los nutrientes del interior del hongo atacado.
En Biocontrol (2004) se indica que el proceso micoparasítico incluye las siguientes etapas: [20]
Crecimiento de Trichoderma.
Reconocimiento superficial del huésped.
Secreción de enzimas.
Penetración de las hifas.
Lisis del huésped.
1.5.3 Antibiosis. Se define como la inhibición del crecimiento de un microorganismo por
sustancias producidas y liberadas por otro microorganismo.
10
“Los metabolitos con actividad antifúngica secretados por Trichoderma constituyen un grupo de
compuestos volátiles y no volátiles, muy diverso en cuanto a estructura y función. Muchas cepas
de Trichoderma producen estos metabolitos secundarios, algunos de los cuales inhiben otros
microorganismos, con los que no se establece contacto físico, estas sustancias inhibitorias son
consideradas como antibióticos”. [21]
1.6 Factores que influyen en el crecimiento
1.6.1 Temperatura. La temperatura influye notablemente en el crecimiento fúngico y en la
formación y germinación de conidios. El rango de temperatura para el crecimiento de
Trichoderma se encuentra entre 10 - 40°C y tiene su óptimo de crecimiento alrededor de los 25
y 30°C. Pueden soportar temperaturas extremas y, aunque no pueden crecer, sus conidios se
mantienen viables y germinarán cuando recuperen las condiciones apropiadas. El descenso de la
temperatura provoca una ralentización del metabolismo, y es una medida que se utiliza para
frenar, en general, el deterioro de productos almacenados. [22]
1.6.2 Humedad. La actividad metabólica del hongo depende estrechamente de la humedad del
medio (sustrato), ya que esta variable influye significativamente en el crecimiento microbiano,
en la biosíntesis y la secreción de diferentes metabolitos.
Un bajo contenido de humedad limita la difusión de los nutrientes y la degradación del sustrato,
dando como resultado un bajo crecimiento microbiano. Mientras que, altos valores de humedad
en la matriz sólida disminuye la porosidad del sustrato dificultando la transferencia de oxígeno.
Por este motivo, es conveniente buscar el nivel óptimo de humedad con el objeto de optimizar el
crecimiento del microorganismo o, en su caso, obtener una mayor producción de metabolitos
(enzimas, ácidos orgánicos, etc.). [23]
En general, los contenidos de humedad encontrados en los procesos de fermentación sólida se
encuentran entre el 30% y 85%. Para cultivos bacterianos, la humedad del sustrato debe ser
superior al 70%, mientras que en el caso de los hongos filamentosos, ésta podría encontrarse en
un rango que oscila entre el 20% y el 70%. [24]
1.6.3 Aireación. Dos componentes del aire son esenciales para los hongos: el oxígeno y el
dióxido de carbono, sin embargo es necesario tener en cuenta que altas concentraciones de CO2
11
como resultado de la respiración celular se puede acumular en ambientes cerrados, inhibiendo el
crecimiento de este microorganismo. [25]
1.6.4 pH. El hongo Trichoderma soporta un rango de pH relativamente amplio para su
crecimiento. Presenta crecimiento a valores de pH comprendidos entre 2.0 y 9.0, con un
intervalo de pH óptimo que se encuentra entre 4.0 y 7.0. A pH ácido, la asimilación de
nutrientes como glucosa ejerce una influencia importante sobre el crecimiento del hongo y su
posterior esporulación. Además, procesos como la germinación, se ven afectados por la escasez
de nutrientes y por niveles de pH por encima de 9.0. [26]
1.6.5 Tamaño de partícula del sustrato. El tamaño de partícula es un factor importante a tener
en cuenta. Los sustratos de partículas pequeñas proporcionan una gran área específica, lo que
afecta de manera positiva al desarrollo del microorganismo. Sin embargo, un tamaño de
partícula demasiado pequeño, que genere a su vez un espacio interarticular reducido, disminuye
la eficiencia de la respiración/aireación dificultando el crecimiento microbiano. [27]
1.6.6 Exposición de luz. La mayoría de especies del género Trichoderma son fotosensibles,
puesto que se presentan una mayor esporulación al ser expuestas a la luz. Sin embargo, cuando
se someten a períodos alternados de luz y oscuridad, se favorece la colonización del hongo
sobre diferentes sustratos sólidos. [28]
1.7 Los hongos en el control biológico
El control biológico puede definirse como un método de control de plagas, enfermedades y
malezas que consiste en utilizar organismos vivos con objeto de controlar las poblaciones de
otros organismos. Tienen una serie de ventajas como: son más seguros, pueden persistir durante
más tiempo, producen un balance ecológico.
El control biológico se produce de forma natural sin intervención del hombre, permite modificar
el equilibrio entre las poblaciones microbianas gracias a los mecanismos de acción entre los
patógenos y los microorganismos antagonistas. Los hongos poseen un conjunto de
características que los hacen agentes de biocontrol potencialmente ideales. [29]
1. Muchas de las especies saprofitas antagonizan a la mayoría de los organismos de las plagas.
12
2. Se desarrollan fácilmente en medios de cultivo pudiendo producirse en grandes cantidades y
ser liberados al medio ambiente como esporas o fragmentos de micelio.
3. Los inóculos liberados crecerán y producirán un nuevo micelio que parasitará o inhibirá la
plaga sin causar daño a las plantas.
4. Tienen la facilidad de sobrevivir durante períodos de tiempo relativamente largos.
5. Los compuestos biológicamente activos no causan daño al medio ambiente.
1.8 Sustratos en la producción de Trichoderma spp.
Los sustratos empleados para la producción de microorganismos, en lo posible deben contener
todos los elementos necesarios para una adecuada síntesis del material celular y para la
producción de metabolitos, cuando son requeridos. [30]
En el proceso de esporulación de Trichoderma spp. la fuente de carbono (C) presente en el
sustrato es el reactivo en exceso, mientras que el contenido de nitrógeno (N) es el factor
limitante de crecimiento. La relación carbono: nitrógeno es esencial ya que de este balance
dependerá la formación de las esporas deseadas. [31]
Generalmente se utilizan compuestos procedentes de la agricultura, subproductos de la
agroindustria aunque se prefiere el desecho de compuestos orgánicos debido a que suplen la
demanda de nutrientes requeridos por los microorganismos a un bajo costo. En la figura 7 se
indican algunos tipos de sustratos. [32]
Figura 7. Tipos de sustratos
13
Arroz. Es el cereal más rico en almidón y la estructura química de este es relativamente
sencillo comparado con otros sustratos.
Esencialmente el almidón está compuesto de dos polímeros relacionados en diferentes
proporciones: amilosa (16 – 30%) y amilopectina (68 – 85%). La amilosa es un polímero de
glucosa unido por enlaces α-1,4 glucosídicos principalmente cadenas lineales. La
amilopectina es un polímero de glucosa altamente ramificado incluyendo también enlaces
α-1,6 glucosídicos en los puntos de ramificación. De esta manera el hongo Trichoderma
spp., hidroliza el polímero del almidón mediante enzimas como glucoamilasas, α –
amilasas, β – amilasas, [33]
permitiendo el crecimiento micelial y la producción de esporas.
1.9 Fermentación
Desde el punto de vista microbiológico, se entiende por fermentación aquel proceso en el que
los microorganismos producen metabolitos o biomasa, a partir de la utilización de sustancias
orgánicas, en ausencia o presencia de oxígeno. La descomposición de los sustratos se lleva a
cabo por enzimas producidas por los microorganismos. [34]
Los microorganismos implicados en los procesos fermentativos pueden obtener su energía y su
fuente de carbono por la degradación de los compuestos orgánicos. La producción comercial de
productos de fermentación ha empleado principalmente diversas especies de bacterias,
levaduras y hongos. En general, la producción masiva de microorganismos biocontroladores
puede llevarse a cabo mediante dos técnicas: fermentación líquida o sumergida y fermentación
sólida o en superficie. [35]
1.9.1 Fermentación en medio líquido. También es conocida como fermentación sumergida. En
este proceso se da la producción de microorganismos en medio líquido donde todos los
nutrientes están disueltos en el medio de cultivo y se desarrolla por medio de condiciones
fisicoquímicas. [36]
Este método es el más usado por la industria biotecnológica gracias a las siguientes ventajas: se
obtiene un producto más homogéneo, es más sencillo el control de la temperatura, aireación,
agitación, y pH, además se puede llevar a cabo la medición directa de la biomasa. [37]
14
1.9.2 Fermentación en medio sólido. Las fermentaciones en sustratos sólidos, utilizadas para el
cultivo de microorganismos en materiales sólidos que contienen o no una cantidad limitada de
agua libre, se emplea en la obtención de enzimas fúngicos por cultivo en superficie. En este
proceso el sustrato sirve como soporte para que los microorganismos crezcan sobre él. Presenta
algunas ventajas como un menor costo de inversión, la reducción del costo energético y un
menor volumen de aguas residuales producidas. [38]
La técnica de fermentación en medio sólido consiste de las siguientes etapas: [39]
1. Preparación de la mezcla sólida
2. Reducción de la carga microbiana del sustrato mediante la inyección directa de vapor de
agua o por esterilización en autoclave
3. Inoculación de la matriz sólida con un inóculo líquido
4. Ajuste de la humedad y pH
5. Puesta del medio en el fermentador
6. Inyección continua o intermitente de aire a temperatura y humedad controladas
7. Secado hasta obtener la humedad residual
8. Molienda o adecuación de tamaño de partícula
9. Obtención del ingrediente activo.
Los hongos filamentosos son los microorganismos más adaptados para crecer en sustratos
sólidos con un bajo contenido de agua libre, reduciendo la probabilidad de contaminación por
bacterias o levaduras: además tienen la capacidad de utilizar polisacáridos como fuentes de
carbono.
1.9.3 Comparación entre la fermentación en medio sólido y en medio líquido. En la tabla 1 se
observan las diferencias que presenta estas fermentaciones. [40]
15
Tabla 1. Comparación entre la fermentación líquida y sólida
Factor Fermentación líquida Fermentación sólida
Sustratos Sustratos solubles (azúcares)
Sustratos económicos de carácter
agroindustrial y biopolímeros
insolubles (almidón, celulosa,
pectina, lignina)
Agua Elevado consumo de agua Consumo limitado de agua y baja
actividad de agua
Temperatura Fácil control de la temperatura,
alta transferencia de calor
Capacidad de transferencia de calor
bajo
Aireación
Se requiere la inyección de altos
volúmenes de aire, el oxígeno
soluble es limitado
Fácil aireación y elevada superficie
de intercambio de aire / sustrato
Control de pH Fácil control de pH por la
homogeneidad del sistema
Difícil control de pH. Se deben
emplear sustancias o sustratos con
propiedades amortiguadoras
Agitación
Mecánica
Se requiere para lograr una buena
homogenización Se opera bajo condiciones estáticas
Escalamiento Disponibilidad de equipos a nivel
industrial
Necesita el diseño de nuevos equipos
y de un desarrollo ingenieril
Inoculación Fácil inoculación, proceso
continuo La inoculación de esporas es por lote
Contaminación Alto riesgo de contaminación
bacteriana
El bajo contenido de humedad hace
menos probable la contaminación por
bacterias
Gasto Energético Genera un elevado consumo
energético
Los requerimientos de energía son
bajos
Tamaño y volumen
del equipo
Se manejan altos volúmenes y la
inversión en equipos y tecnología
es elevada
Se manejan volúmenes más bajos y
el costo de los equipos es menor
Efluentes y
contaminación
Altos volúmenes de efluentes y
contaminación
Bajos volúmenes de efluentes y
contaminantes
Concentración del
producto
Dependiendo del producto de
interés
Fácil producción de propágulos y
esporas fúngicas
16
1.10 Curva de crecimiento microbiano
Esta curva representa el comportamiento del crecimiento del microorganismo a través del
tiempo. En la figura 8, se muestran las fases de crecimiento de los microorganismos. [41]
Figura 8. Curva de crecimiento microbiano
En la curva de crecimiento se diferencian cuatro fases, la fase de latencia, la fase de crecimiento
exponencial o logarítmico, la fase estacionaria y la fase de muerte celular. Aunque el tiempo de
duración de cada una de estas etapas, puede variar según el tipo de microorganismo, la familia a
la cual pertenece, entre otras características.
A) Fase de latencia.
También es conocida como fase lag; coincide con el período de adaptación del microorganismo
a las nuevas condiciones nutricionales y ambientales. Se presenta inmediatamente después de la
inoculación y su duración depende del estado fisiológico de la célula inoculada y de las
condiciones ambientales. Durante este periodo, el número de células no se incrementa, pues el
microorganismo utiliza la energía disponible con el fin de sintetizar las enzimas que requiere
para su desarrollo en el nuevo medio.
B) Fase logarítmica.
Esta fase presenta mayor interés por ser la etapa donde las células se multiplican a la máxima
velocidad, su crecimiento puede ser cuantificado con base en el número de células que se
producen por unidad de tiempo (para levaduras y bacterias) o por el aumento en la biomasa por
17
unidad de tiempo (para hongos filamentosos). La velocidad de crecimiento durante este periodo
permanece constante y es independiente de la concentración del sustrato, siempre y cuando esta
sustancia se encuentre en exceso.
C) Fase estacionaria.
En esta etapa, la velocidad de crecimiento (reproducción) del microorganismo es igual a la
velocidad de mortalidad. Si la población no se reproduce ni muere, el número de células
permanece constante y la longitud de la fase varía y depende del balance que logren las células
con el medio ambiente. Se llega a un período de equilibrio celular.
La fase estacionaria termina cuando se produce alguna de estas tres situaciones: los nutrientes se
agotan, las condiciones ambientales indispensables para la célula se modifican o cuando las
células produce metabolitos tóxicos que inhiben su reproducción.
D) Fase de muerte.
Se inicia cuando los nutrientes que están en el medio de cultivo no son suficientes para que el
microorganismo pueda producirse y aunque quedan células vivas, su número es superado por el
de las células muertas. También se debe a la acumulación de sustancias tóxicas generadas por el
metabolismo del microorganismo.
1.11 Aplicaciones de Trichoderma spp.
El hongo Trichoderma es utilizado en la industria alimenticia ya que produce enzimas
hidrolíticas tales como glucanasas, quitinasas, proteasas, y xilanasas, que son usadas como
aditivos en la elaboración de alimentos para el ganado, aves y mascotas.
El hongo Trichoderma spp. también se usa ampliamente en la producción de aditivos
alimentarios y productos relacionados. Actualmente varias enzimas de este género son utilizadas
para mejorar el proceso de elaboración de la cerveza (β-glucanasa), y en la producción de zumos
de frutas (pectinasas, celulasas, hemicelulasas). Las celulasas son aplicadas principalmente en la
cocción, el malteado, y la producción de alcohol de grano. [42]
Las celulasas producidas por el hongo Trichoderma son utilizadas en la industria textil para
suavizar y acondicionar los textiles, así como para producir polvos de lavado de alta calidad.
18
Las enzimas obtenidas a partir de estos microorganismos también son usadas en la industria del
papel para modificar las propiedades de la fibra y para reducir el contenido de lignina. [43]
Se ha demostrado que algunas especies de Trichoderma tienen potencial para ser aplicadas en la
biorremediación de sitios contaminados con sustancias de origen orgánico (hidrocarburos del
petróleo, explosivos y plaguicidas) e inorgánico (metales pesados y cianuro). [44]
También existen reportes de T. polysporum, T.koningii, T. pseudokoningii y T. harzianum con
la capacidad para degradar hidrocarburos saturados y aromáticos presentes en aceites
combustibles. Así mismo, Trichoderma sp. se ha empleado para la detoxificación de cianuro
usando dos enzimas (rodanasa y cianuro hidratasa) capaces de degradarlo. [45]
La lanctona 6PAP con aroma a coco es considerada como un agente saborizante no tóxico
utilizado para la aromatización de artículos alimenticios, lo que le confiere importante interés
comercial en la industria de alimentos y aroma. Además tiene función antifúngica.
19
2. PARTE EXPERIMENTAL
2.1 Pruebas preliminares
Para el desarrollo de esta investigación se utilizaron cepas nativas de la provincia de
Tungurahua Cantón Ambato, aisladas del suelo por el Ministerio de Agricultura Ganadería
Acuacultura y Pesca (MAGAP), identificadas y purificadas por Plantsphere Laboratories. Las
especies a estudiar fueron: Trichoderma harzianum y Trichoderma hamatum. (Ver anexo A y
B).
Como medios de propagación se emplearon: Agar Patata Dextrosa (PDA) y arrocillo, El
primero usado para reproducir las especies en cajas Petri, como respaldo de la materia prima y
el segundo empleado en la producción masiva de estos microorganismos, esta etapa fue
enfocada en la preparación de sustrato (arrocillo).
El arrocillo fue sometido a cuatro tratamientos diferentes durante la preparación (Ver tabla 2),
los criterios considerados fueron: la baja cantidad de agua en el sustrato limita la accesibilidad
de nutrientes obteniéndose un mínimo crecimiento y el exceso de humedad disminuye la
porosidad del sustrato dificultando la oxigenación.
Tabla 2. Volumen de agua adicionada en la preparación del sustrato
Especie Volumen de agua adicionado (Va), mL
1 2 3 4
Trichoderma harzianum (TH) 367 330 295 255
Trichoderma hamatum (THa) 400 340 280 220
Primero se trabajó con Trichoderma harzianum para observar cómo se desarrolla a las
condiciones planteadas y finalmente se procedió con Trichoderma hamatum, incrementándose
el rango de volumen de agua adicionado al sustrato es su preparación, para determinar hasta qué
punto es fácilmente manipulable.
20
La siembra de los microorganismos en esta fase se realizó en botellas de vidrio (camineras)
conteniendo 80 gramos de sustrato cada una, con una concentración inicial de esporas (Ci). En
la tabla 3 se muestra un resumen de las repeticiones realizadas en esta etapa.
La etapa de prueba inicial es indispensable en este proyecto. A partir de los datos obtenidos se
elaboraron curvas de concentración de esporas (logC) versus cantidad de agua adicionada al
arrocillo (Va) (Ver gráfico 1 y 2) para cada temperatura de incubación (T), importante en la
obtención de la mayor cantidad de esporas de los hongos a estudiar.
La incubación de los microorganismos se efectuó en vitrinas de vidrio, con la finalidad de
proveer luz natural al cultivo, en su base se acondicionó un foco para generar calor, este lugar se
cubrió con papel aluminio, creando un ambiente de periodos alternados de luz y obscuridad,
también se adecuó un sensor de temperatura para fijar esta variable de 25°C, 28°C y para la
temperatura a condición ambiental 21°C no se le suministró calor.
2.2 Diseño experimental
La investigación experimental está orientada al estudio del adecuado crecimiento de los
microorganismos Trichoderma harzianum y Trichoderma hamatum, en la cual se propone
modificar variables fundamentales como: cantidad de agua presente en la preparación del
sustrato y temperatura.
Las curvas obtenidas en las pruebas preliminares proporcionan datos óptimos de agua (Vop), los
cuales permitieron preparar el sustrato a una humedad establecida y generar un excelente
crecimiento las dos especies de Trichoderma. En la determinación del porcentaje de humedad
(%H), se incluyó también la humedad del arrocillo que establece la Norma INEN 1690 para su
comercialización.
En esta etapa se elaboraron las curvas de crecimiento para cada microorganismo, a las distintas
temperaturas planteadas, el proceso de propagación se efectuó en fundas de polietileno con 160g
de sustrato cada una, realizando varias repeticiones por precaución ante la contaminación de
microrganismos del ambiente y para verificar la repetibilidad del proceso. (Ver tabla 3).
21
Tabla 3. Número de repeticiones realizadas
Especie Temperatura,
°C
Volumen de
agua,
mL
Pruebas
preliminares
Diseño
experimental
# botellas #fundas
21
1
36 10 2
Trichoderma 3
harzianum 4
25
1
36 10 y 2
3
4
Trichoderma
28
1
36 10 hamatum 2
3
4
Total 96 30
En las figuras 9 y 10 para Trichoderma harzianum y Trichoderma hamatum respectivamente, se
muestra el diseño experimental utilizado en la producción de la mayor cantidad de esporas
(logC) de los microorganismos en un menor tiempo (t).
22
TH
T1
V2, Ci
V1, Ci
V3, Ci
V4, Ci
V2, Ci
V1, Ci
V3, Ci
V4, Ci
V2, Ci
V1, Ci
V3, Ci
V4, Ci
T2
T3
VoplogC = f(Va) logC = f(t)
VoplogC = f(Va)
Curva de crecimiento
logC = f(t)
VoplogC = f(Va)
Curva de crecimiento
logC = f(t)
Curva de crecimiento
Figura 9. Diseño experimental para la producción de esporas y construcción de la curva de crecimiento del hongo Trichoderma harzianum (TH)
23
THa
T1
V2, Ci
V1, Ci
V3, Ci
V4, Ci
V2, Ci
V1, Ci
V3, Ci
V4, Ci
V2, Ci
V1, Ci
V3, Ci
V4, Ci
T2
T3
Vop
Vop
Curva de crecimiento
logC = f(t)
Curva de crecimiento
Curva de crecimiento
logC = f(t)
logC = f(Va)
logC = f(Va)
logC = f(Va)
Vop
logC = f(t)
logC = f(t)
Figura 10. Diseño experimental para la producción de esporas y construcción de la curva de crecimiento del hongo Trichoderma hamatum
(THa).
24
2.3 Aplicación del hongo Trichoderma en plantas
Los mejores productos obtenidos de cada especie fueron aplicados en matas de fresas y moras,
teniendo en cuenta un testigo para observar las diferencias que presentan luego de un tiempo de
aplicación, proceso necesario para verificar que los microorganismos generados, sí, mantienen
sus características esenciales, de protección e inducción a un rápido crecimiento de las plantas.
Se utilizaron cinco plantas de fresas del mismo tamaño. A tres de ellas se aplicaron una mezcla
de las especies estudiadas, las dos restantes se las estableció como testigos. Para la aplicación en
plantas de moras se usaron tres plantas las cuales no fueron del mismo tamaño (Ver figura 18).
Sin embargo se consideró escoger a la planta más grande como testigo y a las restantes
adicionarles las especies Trichoderma harzianum y Trichoderma hamatum individualmente.
A las plantas utilizadas no se les adicionó ningún componente extra, a parte de los
microorganismos y tierra que contenía abono orgánico al momento de ser trasplantadas.
2.4 Materiales y equipos
Balanza R;(0 - 500)g Ap±0,1g
Vasos de precipitación V = 500mL Ap±100mL
Vasos de precipitación V = 100mL Ap±10mL
Frascos con tapa rosca V = 500mL Ap±100mL
Probeta graduada V = 100mL Ap±1mL
Pipeta graduada V = 25mL Ap±1mL
Pipeta Pasteur V = 3mL Ap±0,5mL
Pera de succión
Pisetas V = 500mL Ap±100mL
Cintas de pH R;(0 - 14) Ap±0,5mL
Autoclave R;(100 - 133) °C Ap± 2,4 °C
R;(0 - 30)psi Ap±0,5psi
Termohigrometro R;( 0 - 50 ) °C Ap±0,1°C
R;(30 - 90) %HR Ap±1%
Tubos de ensayo
Atomizadores V = 500mL
Gradilla de plástico
Porta y cubre objetos
Microscopio óptico Aumento: 40X
25
Cámara de Neubauer
Cámara de Siembra
Asa bacteriológica
Equipo de disección
Cajas Petri
Botellas de vidrio (camineras) V = 375mL
Mecheros de alcohol
Olla arrocera V = 1800mL
Embudo plástico mediano
Colador de cocina
Fundas de polietileno, 15 x 25 cm
Tapones de gasa y algodón
Incubadoras de vidrio (Ver anexo K)
Guantes de nitrilo
Guantes de cuero
Grapadora
Marcador para vidrio
Papel parafilm “M”
Papel toalla
2.5 Sustancias y reactivos
Agua destilada H2O(l)
Alcohol industrial (Metanol) 99,9% CH3OH
Alcohol antiséptico 70% C2H5OH
Hidróxido de sodio 0.1N NaOH(sol)
Ácido clorhídrico 0.1N HCl(sol)
Hipoclorito de sodio 4,5 p/v NaClO (sol)
Cepa de Trichoderma harzianum
Cepa de Trichoderma hamatum
Agar Patata Dextrosa (PDA)
Arrocillo
2.6 Procedimientos
2.6.1 Producción de Trichoderma spp. En la figura 11 se muestra el proceso de producción de
esporas de los hongos Trichoderma harzianum y Trichoderma hamatum planteados en esta
26
investigación. Consta de algunos subprocesos como: preparación del medio de cultivo a
condiciones donde los microorganismos puedan desarrollarse con facilidad, la esterilización que
permite disminuir la carga microbiana contaminante, la inoculación donde se provee del
material genético al medio de crecimiento, y en la incubación se condiciona al microorganismo
para observar cómo se desarrolla al tratamiento dado. Si estos se adaptan se tendrá un buen
crecimiento caso contrario no propagarán. Luego de un tiempo prudente se tiene la cosecha,
proceso en el cual se determinar la concentración con la técnica de contaje de esporas,
finalmente se almacena a temperaturas bajas para preservan el bioformulado.
También se debe tener presente la inspección constante para observar si existe contaminación.
De así serlo se esteriliza en autoclave a 1 atm y 121°C por un tiempo de 20 min para garantizar
la muerte del o los agentes contaminantes presente y así proceder a su descarte.
INCUBACIÓN
INOCULACIÓN
COSECHA
ALMACENAMIENTO
PREPARACIÓN DEL SUSTRATO
ACONDICIONAMIENTO Y ESTERILIZACIÓN DEL
SUSTRATO
CONTAMINACIÓN ESTERILIZACIÓN
DILUCIONES SERIADAS
DESCARTE
TRICHODERMA SPP.
Figura 11. Diagrama de flujo del proceso de producción de Trichoderma spp.
27
2.6.2 Preparación del medio de cultivo a base de agar patata dextrosa (PDA)
Pesar una cantidad determinada de PDA y diluirlo en agua según las especificaciones del
fabricante que son: 39 g del medio en 1000 mL de agua destilada
Ajustar el pH a 7 adicionando hidróxido de sodio 0.1 N cuando la mezcla es ácida o con
ácido clorhídrico 0.1 N si la mezcla es básica.
Calentar la mezcla hasta el punto de ebullición para que se disuelva por completo, agitar
levemente para evitar que el medio se queme o se chorree.
Esterilizar por 20 min a 121°C y 1 atm de presión
Esperar a que el envase contenedor del medio de cultivo se enfríe hasta que sea manipulable
para evitar quemaduras
Dispensar el medio en cajas Petri evitando la formación de burbujas de aire.
Esperar a que el medio se solidifique.
Nota: Evitar que el medio de cultivo en el envase alcance la temperatura ambiente, porque se
solidificará e impedirá la dosificación en las cajas Petri.
2.6.3 Procedimiento de resiembra en el medio de cultivo PDA
Tomar una caja con medio y otra con la cepa a utilizar
Coger una pequeña parte del microorganismo con el asa bacteriológica y colocarlo en el
nuevo medio donde se propagará
Rotular y sellar con papel parafilm para evitar que se contamine con microorganismos del
ambiente.
Esperar hasta que el microorganismo se desarrolle en toda la caja Petri antes de utilizarlo.
2.6.4 Preparación del sustrato en botellas de vidrio y en fundas de polietileno
Pesar 800 g de arrocillo y lavarlo hasta que el agua salga transparente, durante 5 min
aproximadamente. Escurrir el agua por el alrededor de 1 min.
Pesar el arrocillo mojado para determinar la cantidad de agua absorbida por este.
Poner el arrocillo lavado en la arrocera luego añadir la cantidad de agua necesaria para la
cocción.
Mezclar continuamente para que toda la cocción sea uniforme.
Depositar la preparación en un recipiente limpio y seco hasta que se enfríe.
Colocar una cantidad fija de sustrato en las camineras con la ayuda de un embudo.
Sellar con un tapón de algodón, previamente esterilizado.
28
Adicionar 160 g de sustrato en cada una de las fundas y sellar con dos dobleces pequeños
para evitar la contaminación con microorganismos del ambiente.
Grapar las esquinas de la funda para evitar que se riegue en el proceso de esterilización
Esterilizar en autoclave a 121°C y 1 atm de presión por un período de 20 min.
Agitar efusivamente las botellas esterilizadas para que el sustrato quede lo más suelto
posible.
2.6.5 Siembra del inóculo de Trichoderma spp. en botellas y en fundas. En este proceso es
necesario recurrir a la ayuda del recuento celular con la cámara de Neubauer para determinar la
concentración de esporas presente en un volumen determinado.
Procedimiento
Tomar la cepa a utilizar y añadir una pequeña cantidad de agua destilada esterilizada.
Separar las esporas con una asa bacteriológica y diluirlo a 100 mL
Determinar la concentración de UFC/mL con la técnica del recuento celular y la cámara de
Neubauer, realizando varias repeticiones para tener un valor más exacto.
Colocar las botellas de vidrio con el sustrato previamente esterilizadas en la cámara de
siembra
Rotular para evitar confusiones de cepa, humedad y temperatura.
Poner 2 mL de la solución madre en cada caminera y agitarlo suavemente para que las
esporas se dispersen por el sustrato.
Finalmente colocarlas en las incubadoras que se encuentran a temperatura fija.
2.6.5.1 Recuento celular. El recuento celular es una técnica que tiene por objeto determinar el
número de células que están comprendidos en una unidad de volumen de muestra.
Todos los recuentos celulares constan de 3 fases que son:
1. Dilución de la muestra (Diluciones seriadas)
2. Determinación del número de células
3. Cálculo matemático del número de células presentes en 1 mL de muestra
2.6.5.2 Diluciones seriadas. Es la dilución repetida de una solución para reducir la
concentración de una sustancia de una solución original. Frecuentemente se realiza en
experimentos que requieran soluciones altamente diluidas con gran exactitud, tales como
aquellas que impliquen curvas de concentración en una escala logarítmica. (Ver figura 12)
29
Figura 12. Diluciones seriadas
Procedimiento
Poner 9 mL de agua destilada en cada uno de los tubos de ensayo y rotularlos de la siguiente
manera 10-1, 10
-2, 10
-3, 10
-4 ,10
-5, etc.
Coger 1 ml de la solución madre y colocarlo en el primer tubo, agitarlo para que la mezcla
se homogenice. La dilución será de 10-1
.
Tomar 1 ml del tubo 10-1
y colocar en el segundo tubo de dilución 10-2
y así sucesivamente
hasta que los microorganismos puedan ser contados.
Determinar la concentración en Unidades Formadoras de Colonias (UFC) por mL con la
ayuda de la cámara de Neubauer.
2.6.5.3 Cámara de Neubauer. También conocida como hematocitómetro, es una cámara de
contaje, se utiliza para contar células u otras partículas en suspensión bajo el microscopio.
Consiste en una placa gruesa de cristal con forma de portaobjetos de unos 30 x 70 mm y unos 4
mm de grosor y un cubre objetos que suele ser un poco más grueso que los normalmente
utilizados.
30
Las más comunes son las cámaras dobles, donde existen 2 zonas de conteo, una superior y la
otra inferior, (hemisferio superior e inferior) en su parte central se encuentra grabada una
retícula cuadrangular (figura 13).
Figura 13. Cámara de Neubauer
Cada zona de conteo es un cuadrado de 3 x 3 mm como se observa en la figura 14. La depresión
central del cubreobjetos está hundida 0,1 mm respecto a la superficie, de forma que cuando se
cubre con un cubreobjetos éste dista de la superficie marcada 0,1 milímetro.
Figura 14. Divisiones de la zona de conteo
El cuadrado central se divide en 25 cuadros medianos de 0,2 mm dando un área individual de
0,04mm2, si se considera los dos hemisferios se obtiene un área total de 2mm
2. También se
Hemisferio
inferior
Hemisferio
superior
31
especifica que los cuadros medianos se subdividen en 16 cuadros pequeños, dando un total de
400 cuadrados en cada hemisferio.
En el caso que la concentración celular sea muy alta, y sea fácil perderse en el recuento se debe
utilizar un orden de conteo en forma de zig - zag. En la figura 15 se muestra el proceso de
contaje de esporas en forma de zig - zag. [46]
Figura 15. Recuento con alta concentración celular
2.6.5.4 Cálculo matemático de la concentración. El cálculo de la concentración celular permite
determinar el número de células viables presentes en 1 mL de muestra, para ello aplicamos la
siguiente ecuación:
DAS
NC
t
e
(1)
Dónde: C es la concentración de esporas, Ne es el número de esporas contadas, St es la
superficie recontada de la cámara, A es la profundidad de la cámara y D es la dilución.
32
2.6.6 Procedimiento de contaje de esporas del sustrato sólido
Pesar 1 gramo de sustrato poblado por Trichoderma spp. y colocarlo en 100 mL de agua
destilada esterilizada.
Agitar efusivamente para que la mayor cantidad de esporas se desprendan del arrocillo, esta
será la solución madre.
Realizar diluciones sucesivas para cuantificar las esporas en cámara de Neubauer.
Efectuar varios contajes para obtener un resultado más confiable.
Utilizar la ecuación respectiva para determinar la concentración de conidios (UFC/ml).
33
3. DATOS
3.1 Datos preliminares
3.1.1 Datos de las sustancias utilizadas.
Tabla 4. Datos de las sustancias utilizadas
Sustancia Variable Valor
H2O Densidad, g/ml
T = 21°C 0,9980
Arrocillo % Humedad 12
Fuente: Perry John, “Manual del Ingeniero Químico”. McGraw-Hill. pág 3-98
Norma INEN 1690
3.1.2 Preparación del sustrato en camineras. En las tabla 5 y 6 se muestra el tratamiento dado
al arrocillo con cuatro valores diferentes de agua adicionada para cada una de las especies,
Trichoderma harzianum (TH) y Trichoderma hamatum (THa).
Tabla 5. Datos de preparación del sustrato para TH en camineras
N ms, (g) mH+c, (g) mc, (g) Vad, (mL)
1 800 969 60 258
2 800 970 60 220
3 800 970 60 185
4 800 969 59 145
Tabla 6. Datos de preparación del sustrato para THa en camineras
N ms, (g) mH+c, (g) mc, (g) Vad, (mL)
1 800 970 60 290
2 800 963 59 236
3 800 971 60 169
4 800 966 60 114
34
3.1.3 Concentración del inóculo para siembra en camineras. La tabla 7 muestra la
concentración de TH y THa generadas de la liberación de esporas del PDA con la cual se
sembró cada botella para generar la producción de esporas en el nuevo sustrato (arrocillo).
Tabla 7. Datos de concentración del inóculo para siembra en camineras
Especie Concentración,
(UFC/mL)
Trichoderma harzianum
(TH) 2,1E+06
Trichoderma hamatum
(THa) 3,1E+06
3.1.4 Concentración de esporas producidas en camineras. Las tablas 8 y 9, muestran la
cantidad de esporas contadas (Ne), luego del darle cuatro tratamientos al sustrato y 15 días de
incubación a diferentes temperaturas, para cada dilución se realizaron 2 lecturas.
Tabla 8. Datos del recuento celular de TH en camineras
Temperatura,
°C N° Dilución
Ne, UFC
Lectura 1 Lectura 2
21
1 1:100 16 15
2 1:100 14 13
3 1:100 11 10
4 1:100 7 7
25
1 1:100 31 31
2 1:100 26 25
3 1:100 22 20
4 1:100 11 16
28
1 1:100 22 21
2 1:100 17 16
3 1:100 11 12
4 1:100 7 9
35
Tabla 9. Datos del recuento celular de THa en camineras
Temperatura,
°C N° Dilución
Ne, UFC
Lectura 1 Lectura 2
21
1 1:100 13 15
2 1:100 7 8
3 1:10 42 34
4 1:10 9 10
25
1 1:100 33 26
2 1:100 22 24
3 1:10 173 165
4 1:10 92 83
28
1 1:100 13 14
2 1:100 15 13
3 1:10 135 130
4 1:10 110 101
3.2 Datos del diseño experimental
Con ayuda de las tablas 5, 6, 8 y 9 se construyen curvas de logC = f (Va) que permiten obtener
los punto máximos de concentración según el volumen de agua añadido al arrocillo, estos
valores son necesarios para preparar un nuevo sustrato que será propagado en fundas de
polietileno y cuyos resultados permitirán construir curvas de crecimiento de las especies del
hongo Trichoderma estudiadas en esta investigación.
3.2.1 Preparación del sustrato en fundas. Las tablas 10 y 11 exponen los valores de masa del
sustrato utilizados y el volumen de agua adicionado a la preparación del sustrato.
Tabla 10. Datos de preparación del sustrato para TH en fundas
T, (°C) ms, (g) mH+c, (g) mc, (g) Vad, mL
21 800 1005 59 244
25 800 989 57 268
28 800 996 59 248
36
Tabla 11. Datos de preparación del sustrato para THa en fundas
T, (°C) ms, (g) mH+c, (g) mc, (g) Vad, mL
21 800 981 58 277
25 800 993 58 265
28 800 988 58 230
3.2.2 Concentración del inóculo para siembra en fundas. La tabla 12 muestra la cantidad de
esporas por mL, obtenidas de la cosecha de los mejores resultados de concentración de las
pruebas preliminares y utilizadas para inocular el nuevo sustrato.
Tabla 12. Datos de concentración del inóculo para siembra en fundas
Especie Concentración,
(UFC/ml)
Trichoderma harzianum (TH) 6,31E+05
Trichoderma hamatum (THa) 2,50E+05
3.2.3 Contaje de esporas producidas en fundas. En las tablas 13 y 14 se muestran las
cantidades de esporas producidas luego de 15 días de incubación. En cada día establecido se
realizaron cuatro lecturas para obtener datos más confiables.
37
Tabla 13. Datos de contaje de esporas para Trichoderma harzianum
Tiempo,
Días
T1 = 21°C T2 = 25°C T3 = 28°C
Dilución Lectura, UFC
Dilución Lectura, UFC
Dilución Lectura, UFC
1 2 3 4 1 2 3 4 1 2 3 4
3 1:10 17 19 21 24 1:10 22 24 26 18 1:10 22 26 28 22
5 1:10 113 101 82 122 1:10 122 122 101 92 1:100 16 15 11 13
7 1:100 18 14 9 14 1:100 12 16 17 24 1:100 24 16 15 20
9 1:100 22 25 23 19 1:100 35 23 22 27 1:100 20 22 21 27
12 1:100 20 27 24 34 1:100 32 30 27 30 1:100 30 23 24 26
14 1:100 38 24 19 29 1:100 27 32 26 30 1:100 23 31 25 27
17 1:100 27 28 26 30 1:100 26 29 28 32 1:100 26 27 26 28
20 1:100 21 24 31 27 1:100 22 21 25 23 1:100 24 28 26 26
24 1:100 24 22 19 20 1:100 20 23 18 17 1:100 16 14 18 15
27 1:100 17 15 16 15 1:100 15 18 17 15 1:100 14 13 12 13
30 1:100 13 10 14 13 1:100 12 12 13 11 1:100 9 9 8 10
38
Tabla 14. Datos de contaje de esporas para Trichoderma hamatum
Tiempo,
Días
T1 = 21°C T2 = 25°C T3 = 28°C
Dilución Lectura, UFC
Dilución Lectura, UFC
Dilución Lectura, UFC
1 2 3 4 1 2 3 4 1 2 3 4
3 1:10 11 9 10 12 1:10 13 16 14 15 1:10 15 15 14 9
5 1:10 94 121 119 109 1:10 129 117 109 124 1:10 59 71 68 68
7 1:100 11 13 15 15 1:10 18 16 19 18 1:100 11 13 10 12
9 1:100 15 16 23 15 1:100 25 23 24 23 1:100 18 25 16 16
12 1:100 25 23 26 24 1:100 22 37 30 28 1:100 21 22 20 27
14 1:100 25 23 28 24 1:100 27 30 27 33 1:100 21 18 25 25
17 1:100 23 28 27 22 1:100 30 29 28 31 1:100 22 25 19 24
20 1:100 22 25 27 27 1:100 25 27 25 35 1:100 18 23 20 22
24 1:100 24 23 27 25 1:100 27 28 27 26 1:100 12 14 13 12
27 1:100 17 19 20 19 1:100 19 23 21 21 1:100 11 8 9 10
30 1:100 10 11 12 12 1:100 11 13 9 10 1:10 56 48 51 52
39
4. CÁLCULOS
4.1 Cálculos de las pruebas preliminares
4.1.1 Cálculo para determinar la cantidad de agua absorbida por el sustrato. El sustrato
(arrocillo) debe ser lavado para eliminar residuos no deseados y suciedad, pero durante este
proceso absorbe agua debido a su porosidad. Por tal razón se debe determinar la cantidad de
agua retenida.
(2)
Donde:
mab = masa absorbida
mH+c = masa del sustrato húmedo + cedazo
mc = masa del cedazo
ms = masa del sustrato
4.1.2 Cálculo del volumen total de agua adicionada en la preparación del sustrato.
(3)
Donde:
Va = Volumen de agua para preparar el sustrato
Vab = Volumen de agua absorbido
Vad = Volumen de agua adicionado
40
4.1.3 Cálculo de la cantidad de agua total. Es la cantidad de agua presente al momento de
preparar el sustrato. Para este cálculo se necesita la humedad que contiene el arrocillo, la cual
fue tomada de la norma INEN 1690 (Ver tabla 6).
(4)
Donde:
mat = masa de agua total
ma = masa de agua para preparar el sustrato
mas = masa de agua en el arrocillo seco
4.1.4 Cálculo de la masa del sustrato seco. Es la masa del arrocillo utilizado restándole el 12 %
de agua que contiene el sustrato.
(5)
41
Donde:
mss = masa del sustrato seco
ms = masa del sustrato
mas = masa de agua presente en el arrocillo
4.1.5 Cálculo del porcentaje de humedad. Este cálculo determina la cantidad de agua que
contiene el medio de propagación expresado en porcentaje.
atss
at
mm
mH
% (6)
Donde
%H = porcentaje de humedad
mat = masa de agua total
maa = masa del sustrato seco
4.1.6 Cálculo para determinar la concentración de esporas. Para determinar la concentración
de esporas se utilizó la ecuación (1).
Donde:
Nc = Número de células contadas
42
St = Superficie recontada de la cámara
A = Profundidad de la cámara
D = Dilución
4.2 Cálculos del diseño experimental
4.2.1 Porcentaje de humedad óptimo. Con los datos obtenidos de las pruebas preliminares se
construye los gráficos 1 y 2 las cuales mediante interpolación y extrapolación permiten conocer
la cantidad de agua necesaria para preparar el sustrato, según el microorganismo y la
temperatura utilizada en el proceso de propagación.
4.2.2 Cálculo de la cantidad de agua total.
(7)
43
4.2.3 Construcción de las curvas de crecimiento
Las curvas de crecimiento de los microorganismos se construyeron a las diferentes temperaturas
y gracias a las pruebas preliminares, ya que en estas se determinan la mejor cantidad de agua
adicionada al sustrato para producir las especies. Los datos para los gráficos 5, 6, 7, 8, 9 y 10 se
generaron con la técnica del recuento celular en tiempos establecidos.
4.3 Cálculo estadístico
Los cálculos estadísticos se realizaron con los resultados generados para construir las curvas de
crecimiento, específicamente se utilizó la fase de latencia y la fase logarítmica de cada una de
las gráficas de las especies Trichoderma harzianum y Trichoderma hamatum.
Uso de Microsoft Excel
Con la ayuda de la función Estimación lineal de la hoja de cálculo Excel, se calcula la
pendiente (m), el intercepto (b), el coeficiente de determinación (R2) y sus respectivas
desviaciones o errores típicos (Ver tabla 15). La pendiente, el intercepto y el ajuste también
pueden calcularse con la función regresión lineal realizándolo en cada una de las curvas.
Tabla 15. Función estimación lineal para los dos microorganismos
TH THa
T1 = 21°C T2 = 25°C T3 = 28°C T1 = 21°C T2 = 25°C T3 = 28°C
m 0,1557 0,1644 0,1523 0,1877 0,1968 0,1850
Sm 0,0160 0,0152 0,0182 0,0252 0,0209 0,0145
b 5,7171 5,7238 5,8179 5,4252 5,4788 5,4037
Sb 0,0993 0,0947 0,1130 0,1565 0,1296 0,0903
R2 0,8635 0,8858 0,8238 0,7873 0,8556 0,9151
SLc 0,1706 0,1627 0,1941 0,2689 0,2227 0,1552
4.3.1 Corrección de logaritmo base 10 a logaritmo natural. Se requiere una corrección, puesto
que los resultados obtenidos para la construcción de las curvas de crecimiento están trabajados
44
con log(x) pero deben ser expresados en función de ln(x), Por tal motivo los resultados de la
tabla 17 deben ser corregidos, a excepción del ajuste de las curvas ya que éste es independiente.
Cálculo modelo para la curva de Trichoderma hamatum a 21°C
Para esta corrección se utilizan valores de pendiente e intercepto presentes en la tabla 15 o
directamente de la linealización, en los gráficos estadísticos (Ver gráficos 11, 12, 13, 14, 15 y
16)
(8)
( )
(9)
4.3.2 Cálculo de la velocidad de crecimiento de las curvas. Las ecuaciones exponenciales son
difíciles de manejar. Por tal motivo se las debe modificar en otras más sencillas como una recta.
La transformación se realiza aplicando logaritmos en los dos términos a la ecuación 10.
(10)
Donde:
X = número de células
Xo = número de células iniciales
μ = velocidad de crecimiento
t = tiempo de incubación
(11)
45
Comparando la ecuación 9 y 11 se aprecia que la pendiente es igual a la velocidad de
crecimiento
4.3.3 Cálculo del Coeficiente de variación. Permite comprobar la variabilidad de los datos,
utilizando la pendiente y su desviación.
100*%
SCV (12)
Donde:
%CV = coeficiente de variación
Sμ = desviación de la pendiente
μ = pendiente
( )
46
5. RESULTADOS
5.1 Resultados de las pruebas preliminares
5.1.1 Cantidad de agua presente en la preparación del sustrato en camineras. Las tablas 16 y
17 muestra la cantidad de agua total utilizada en la preparación del sustrato de los dos
microorganismos propagados en las camineras.
Tabla 16. Resultados de preparación del sustrato para TH en camineras
N ms,
(g)
mH+c,
(g)
mc,
(g)
mab,
(g)
Vab,
(g)
Vad,
(mL)
Va,
(mL)
1 800 969 60 109 109,2 258 367
2 800 970 60 110 110,2 220 330
3 800 970 60 110 110,2 185 295
4 800 969 59 110 110,2 145 255
Tabla 17. Resultados de preparación del sustrato para THa en camineras
N ms,
(g)
mH+c,
(g)
mc,
(g)
mab,
(g)
Vab,
(g)
Vad,
(mL)
Va,
(mL)
1 800 970 60 110 110,2 290 400
2 800 963 59 104 104,1 236 340
3 800 971 60 111 111,2 169 280
4 800 966 60 106 106,1 114 220
5.1.2 Resultados de porcentaje de humedad del sustrato. Las tablas 18 y 19 muestran las
humedades con las que se trabajó en la preparación del medio de cultivo para estas especies.
47
Tabla 18. Resultados de humedad del sustrato para TH
N ma, (g) mas, (g) mat, (g) mss,(g) %H
1 366,4 96 462,4 704 39,6
2 329,5 96 425,5 704 37,7
3 294,6 96 390,6 704 35,7
4 254,6 96 350,6 704 33,2
Tabla 19. Resultados de humedad del sustrato para THa
N ma, (g) mas, (g) mat, (g) mss,(g) %H
1 399,4 96 495,4 704 41,3
2 339,5 96 435,5 704 38,2
3 279,6 96 375,6 704 34,8
4 219,7 96 315,7 704 31,0
5.1.3 Concentración de esporas obtenida de la propagación en botellas. Las tablas 20 y 21
muestran la cantidad de UFC por mL obtenidas a las diferentes temperaturas de incubación y a
la cantidad de agua total utilizada en la preparación del sustrato.
Tabla 20. Resultados de la concentración obtenida de TH en camineras
T, °C Va, mL Dilución C, UFC/ml ,
UFC/mL log
C1 C2
21
367 1:100 8,00E+06 7,50E+06 7,75E+06 6,89
330 1:100 7,00E+06 6,50E+06 6,75E+06 6,83
295 1:100 5,50E+06 5,00E+06 5,25E+06 6,72
255 1:100 3,50E+06 3,50E+06 3,50E+06 6,54
25
367 1:100 1,55E+07 1,55E+07 1,55E+07 7,19
330 1:100 1,30E+07 1,25E+07 1,28E+07 7,11
295 1:100 1,10E+07 1,00E+07 1,05E+07 7,02
255 1:100 5,50E+06 8,00E+06 6,75E+06 6,83
28
367 1:100 1,10E+07 1,05E+07 1,08E+07 7,03
330 1:100 8,50E+06 8,00E+06 8,25E+06 6,92
295 1:100 5,50E+06 6,00E+06 5,75E+06 6,76
255 1:100 3,50E+06 4,50E+06 4,00E+06 6,60
48
Tabla 21. Resultados de la concentración obtenida de THa en camineras
T, °C Va, ml Dilución C, UFC/ml ,
UFC/mL log
C1 C2
21
400 1:100 6,50E+06 7,50E+06 7,00E+06 6,85
340 1:100 3,50E+06 4,00E+06 3,75E+06 6,57
280 1:10 2,10E+06 1,70E+06 1,90E+06 6,28
220 1:10 4,50E+05 5,00E+05 4,75E+05 5,68
25
400 1:100 1,65E+07 1,30E+07 1,48E+07 7,17
340 1:100 1,10E+07 1,20E+07 1,15E+07 7,06
280 1:10 8,65E+06 8,25E+06 8,45E+06 6,93
220 1:10 4,60E+06 4,15E+06 4,38E+06 6,64
28
400 1:100 6,50E+06 7,00E+06 6,75E+06 6,83
340 1:100 7,50E+06 6,50E+06 7,00E+06 6,85
280 1:10 6,75E+06 6,50E+06 6,63E+06 6,82
220 1:10 5,50E+06 5,05E+06 5,28E+06 6,72
5.1.4 Curvas de concentración versus volumen de agua adicionado al sustrato. Los gráficos 1
y 2 indican la cantidad de agua que se adiciona al sustrato en su preparación, para obtener una
máxima concentración de esporas a las diferentes temperaturas de incubación.
Gráfico 1. logC = f (Va) para Trichoderma harzianum
logC = -2E-05Va2 + 0,0148Va + 3,9895
R² = 0,9999
logC = -2E-05Va2 + 0,014Va + 4,3981
R² = 0,9955
logC = -2E-07Va3 + 0,0002Va
2 - 0,0602Va + 11,958 R² = 1
6,50
6,60
6,70
6,80
6,90
7,00
7,10
7,20
7,30
250 300 350 400
logC
Va, mL
T1 = 21°C
T2 = 25°C
T3 = 28°C
49
Gráfico 2. logC = f (Va) para Trichoderma hamatum
5.1.5 Curvas de concentración versus porcentaje de humedad. En los gráficos 3 y 4 se aprecia
la concentración y el volumen de agua que contiene el sustrato expresado en porcentaje.
Gráfico 3. logC = f (%H) para Trichoderma harzianum
logc = -5E-05Va2 + 0,0435Va - 1,937
R² = 0,9975
logC = -3E-05Va2 + 0,0228Va + 2,7338
R² = 0,9977
logC = -2E-05Va2 + 0,0133Va + 4,6275
R² = 0,9973 5,60
5,80
6,00
6,20
6,40
6,60
6,80
7,00
7,20
7,40
200 250 300 350 400
logC
Va, mL
T1 = 21°C
T2 = 25°C
T3 = 28°C
6,50
6,60
6,70
6,80
6,90
7,00
7,10
7,20
7,30
32 34 36 38 40 42
logC
%H
T1 = 21°C
T2 = 25°C
T3 = 28°C
50
Gráfico 4. logC = f (%H) para Trichoderma hamatum
5.2 Resultados del diseño experimental
5.2.1 Volumen de agua óptimo. En las tablas 22 y 23, se muestran los resultados obtenidos por
extrapolación e interpolación de las curvas de concentración versus el volumen total de agua
(Ver gráficos 1 y 2), los valores representan las mejores condiciones para preparar el sustrato de
las especies Trichoderma harzianum y Trichoderma hamatum a las tres temperaturas.
Tabla 22. Resultados de volumen de agua óptima para TH
Temperatura,
(°C)
logC,
(UFC/mL)
Vop,
mL
21 6,90 390
25 7,20 400
28 7,04 385
5,60
5,80
6,00
6,20
6,40
6,60
6,80
7,00
7,20
7,40
30,0 32,0 34,0 36,0 38,0 40,0 42,0
logC
%H
T1 = 21°C
T2 = 25°C
T3 = 28°C
51
Tabla 23. Resultados de volumen de agua óptima para THa
Temperatura,
(°C)
logC,
(UFC/mL)
Vop,
mL
21 6,80 400
25 7,16 400
28 6,83 360
5.2.2 Resultados de la masa de agua total. Las tablas 24 y 25 indican la cantidad de agua total
utilizada para preparar el sustrato de los microorganismos.
Tabla 24. Resultados de cantidad de agua total en el sustrato de TH
Temperatura,
°C
ms,
(g)
mH+c,
(g)
mc,
(g)
Vad,
(mL)
mad,
g)
mat,
(g)
21 800 1005 59 244 243,7 485,7
25 800 989 57 268 267,6 495,6
28 800 996 59 248 247,7 480,7
Tabla 25. Resultados de cantidad de agua total en el sustrato de THa
Temperatura,
°C
ms,
(g)
mH+c,
(g)
mc,
(g)
Vad,
(mL)
mad,
g)
mat,
(g)
21 800 981 58 277 276,6 495,6
25 800 993 58 265 264,6 495,6
28 800 988 58 230 229,7 455,7
5.2.3 Resultados de temperatura y % de humedad para propagar Trichoderma. En la tabla 26
se muestra el porcentaje de humedad en la preparación del sustrato a las diferentes temperaturas
y el nombre que se designó para englobar a los resultados finales de las variables utilizadas en la
propagación de Trichoderma harzianum y Trichoderma hamatum.
52
Tabla 26. Resultados del %H a las diferentes condiciones
Condición Temperatura,
°C
% Humedad
Trichoderma
harzianum
Trichoderma
hamatum
1 21 40,82 41,31
2 25 41,31 41,32
3 28 40,57 39,29
5.2.4 Construcción de la curva de crecimiento. En las tablas 27 y 28 se expone la
concentración obtenida en los diferentes días de incubación a las temperaturas establecidas,
mientras que en las tablas 29 y 30 se muestran los datos para construir las curvas de crecimiento
de los microorganismos Trichoderma harzianum y Trichoderma hamatum.
53
Tabla 27. Resultados de concentración de TH
Tiempo,
Días
Condición 1 Condición 2 Condición 3
Concentración, UFC/mL Concentración, UFC/mL Concentración, UFC/mL
C1 C2 C3 C4 C1 C2 C3 C4 C1 C2 C3 C4
0 6,31E+05 6,31E+05 6,31E+05
3 8,50E+05 9,50E+05 1,05E+06 1,20E+06 1,10E+06 1,20E+06 1,30E+06 9,00E+05 1,10E+06 1,30E+06 1,40E+06 1,10E+06
5 5,65E+06 5,05E+06 4,10E+06 6,10E+06 6,10E+06 6,10E+06 5,05E+06 4,60E+06 8,00E+06 7,50E+06 5,50E+06 6,50E+06
7 9,00E+06 7,00E+06 4,50E+06 7,00E+06 6,00E+06 8,00E+06 8,50E+06 1,20E+07 1,20E+07 8,00E+06 7,50E+06 1,00E+07
9 1,10E+07 1,25E+07 1,15E+07 9,50E+06 1,75E+07 1,15E+07 1,10E+07 1,35E+07 1,00E+07 1,10E+07 1,05E+07 1,35E+07
12 1,00E+07 1,35E+07 1,20E+07 1,70E+07 1,60E+07 1,50E+07 1,35E+07 1,50E+07 1,50E+07 1,15E+07 1,20E+07 1,30E+07
14 1,90E+07 1,20E+07 9,50E+06 1,45E+07 1,35E+07 1,60E+07 1,30E+07 1,50E+07 1,15E+07 1,55E+07 1,25E+07 1,35E+07
17 1,35E+07 1,40E+07 1,30E+07 1,50E+07 1,30E+07 1,45E+07 1,40E+07 1,60E+07 1,30E+07 1,35E+07 1,30E+07 1,40E+07
20 1,05E+07 1,20E+07 1,55E+07 1,35E+07 1,10E+07 1,05E+07 1,25E+07 1,15E+07 1,20E+07 1,40E+07 1,30E+07 1,30E+07
24 1,20E+07 1,10E+07 9,50E+06 1,00E+07 1,00E+07 1,15E+07 9,00E+06 8,50E+06 8,00E+06 7,00E+06 9,00E+06 7,50E+06
27 8,50E+06 7,50E+06 8,00E+06 7,50E+06 7,50E+06 9,00E+06 8,50E+06 7,50E+06 7,00E+06 6,50E+06 6,00E+06 6,50E+06
30 6,50E+06 5,00E+06 7,00E+06 6,50E+06 6,00E+06 6,00E+06 6,50E+06 5,50E+06 4,50E+06 4,50E+06 4,00E+06 5,00E+06
54
Tabla 28. Resultados de concentración de THa
Tiempo,
Días
Condición 1 Condición 2 Condición 3
Concentración, UFC/mL Concentración, UFC/mL Concentración, UFC/mL
C1 C2 C3 C4 C1 C2 C3 C4 C1 C2 C3 C4
0 2,50E+05 2,50E+05 2,50E+05
3 5,50E+05 4,50E+05 5,00E+05 6,00E+05 6,50E+05 8,00E+05 7,00E+05 7,50E+05 7,50E+05 7,50E+05 7,00E+05 4,50E+05
5 4,70E+06 6,05E+06 5,95E+06 5,45E+06 6,45E+06 5,85E+06 5,45E+06 6,20E+06 2,95E+06 3,55E+06 3,40E+06 3,40E+06
7 5,50E+06 6,50E+06 7,50E+06 7,50E+06 9,00E+06 8,00E+06 9,50E+06 9,00E+06 5,50E+06 6,50E+06 5,00E+06 6,00E+06
9 7,50E+06 8,00E+06 1,15E+07 7,50E+06 1,25E+07 1,15E+07 1,20E+07 1,15E+07 9,00E+06 1,25E+07 8,00E+06 8,00E+06
12 1,25E+07 1,15E+07 1,30E+07 1,20E+07 1,10E+07 1,85E+07 1,50E+07 1,40E+07 1,05E+07 1,10E+07 1,00E+07 1,35E+07
14 1,25E+07 1,15E+07 1,40E+07 1,20E+07 1,35E+07 1,50E+07 1,35E+07 1,65E+07 1,05E+07 9,00E+06 1,25E+07 1,25E+07
17 1,15E+07 1,40E+07 1,35E+07 1,10E+07 1,50E+07 1,45E+07 1,40E+07 1,55E+07 1,10E+07 1,25E+07 9,50E+06 1,20E+07
20 1,10E+07 1,25E+07 1,35E+07 1,35E+07 1,25E+07 1,35E+07 1,25E+07 1,75E+07 9,00E+06 1,15E+07 1,00E+07 1,10E+07
24 1,20E+07 1,15E+07 1,35E+07 1,25E+07 1,35E+07 1,40E+07 1,35E+07 1,30E+07 6,00E+06 7,00E+06 6,50E+06 6,00E+06
27 8,50E+06 9,50E+06 1,00E+07 9,50E+06 9,50E+06 1,15E+07 1,05E+07 1,05E+07 5,50E+06 4,00E+06 4,50E+06 5,00E+06
30 5,00E+06 5,50E+06 6,00E+06 6,00E+06 5,50E+06 6,50E+06 4,50E+06 5,00E+06 2,80E+06 2,40E+06 2,55E+06 2,60E+06
55
Tabla 29. Resultados del logaritmo de la concentración para TH
Tiempo,
Días
Condición 1 Condición 2 Condición 3
logC1 logC2 logC3 logC4 logC1 logC2 logC3 logC4 logC1 logC2 logC3 logC4
0 5,80 5,80 5,80
3 5,93 5,98 6,02 6,08 6,04 6,08 6,11 5,95 6,04 6,11 6,15 6,04
5 6,75 6,70 6,61 6,79 6,79 6,79 6,70 6,66 6,90 6,88 6,74 6,81
7 6,95 6,85 6,65 6,85 6,78 6,90 6,93 7,08 7,08 6,90 6,88 7,00
9 7,04 7,10 7,06 6,98 7,24 7,06 7,04 7,13 7,00 7,04 7,02 7,13
12 7,00 7,13 7,08 7,23 7,20 7,18 7,13 7,18 7,18 7,06 7,08 7,11
14 7,28 7,08 6,98 7,16 7,13 7,20 7,11 7,18 7,06 7,19 7,10 7,13
17 7,13 7,15 7,11 7,18 7,11 7,16 7,15 7,20 7,11 7,13 7,11 7,15
20 7,02 7,08 7,19 7,13 7,04 7,02 7,10 7,06 7,08 7,15 7,11 7,11
24 7,08 7,04 6,98 7,00 7,00 7,06 6,95 6,93 6,90 6,85 6,95 6,88
27 6,93 6,88 6,90 6,88 6,88 6,95 6,93 6,88 6,85 6,81 6,78 6,81
30 6,81 6,70 6,85 6,81 6,78 6,78 6,81 6,74 6,65 6,65 6,60 6,70
56
Tabla 30. Resultados del logaritmo de la concentración para THa
Tiempo,
Días
Condición 1 Condición 2 Condición 3
logC1 logC2 logC3 logC4 logC1 logC2 logC3 logC4 logC1 logC2 logC3 logC4
0 5,40 5,40 5,40
3 5,74 5,65 5,70 5,78 5,81 5,90 5,85 5,88 5,88 5,88 5,85 5,65
5 6,67 6,78 6,77 6,74 6,81 6,77 6,74 6,79 6,47 6,55 6,53 6,53
7 6,74 6,81 6,88 6,88 6,95 6,90 6,98 6,95 6,74 6,81 6,70 6,78
9 6,88 6,90 7,06 6,88 7,10 7,06 7,08 7,06 6,95 7,10 6,90 6,90
12 7,10 7,06 7,11 7,08 7,04 7,27 7,18 7,15 7,02 7,04 7,00 7,13
14 7,10 7,06 7,15 7,08 7,13 7,18 7,13 7,22 7,02 6,95 7,10 7,10
17 7,06 7,15 7,13 7,04 7,18 7,16 7,15 7,19 7,04 7,10 6,98 7,08
20 7,04 7,10 7,13 7,13 7,10 7,13 7,10 7,24 6,95 7,06 7,00 7,04
24 7,08 7,06 7,13 7,10 7,13 7,15 7,13 7,11 6,78 6,85 6,81 6,78
27 6,93 6,98 7,00 6,98 6,98 7,06 7,02 7,02 6,74 6,60 6,65 6,70
30 6,70 6,74 6,78 6,78 6,74 6,81 6,65 6,70 6,45 6,38 6,41 6,41
57
5.3 Curvas de crecimiento obtenidas
Los gráficos 5, 6, 7, 8, 9 y 10 indican las curvas de crecimiento construidas a las diferentes
condiciones de temperatura y humedad para las especies Trichoderma harzianum y
Trichoderma hamatum.
Gráfico 5. logC = f (tiempo) para Trichoderma harzianum a condición 1
Gráfico 6. logC = f (tiempo) para Trichoderma harzianum a condición 2
5,50
5,75
6,00
6,25
6,50
6,75
7,00
7,25
7,50
0 5 10 15 20 25 30 35
logC
(U
FC/m
l)
Tiempo, días
5,50
5,75
6,00
6,25
6,50
6,75
7,00
7,25
7,50
0 5 10 15 20 25 30 35
logC
(U
FC/m
l)
Tiempo, días
58
Gráfico 7. logC = f (tiempo) para Trichoderma harzianum a condición 3
Gráfico 8. logC = f (tiempo) para Trichoderma hamatum a condición 1
5,50
5,75
6,00
6,25
6,50
6,75
7,00
7,25
7,50
0 5 10 15 20 25 30 35
logC
(U
FC/m
l)
Tiempo, días
5,00
5,50
6,00
6,50
7,00
7,50
0 5 10 15 20 25 30 35
logC
(U
FC/m
l)
Tiempo, días
59
Gráfico 9. logC = f (tiempo) para Trichoderma hamatum a condición 2
Gráfico 10. logC = f (tiempo) para Trichoderma hamatum a condición 3
5,00
5,50
6,00
6,50
7,00
7,50
0 5 10 15 20 25 30 35
logC
(U
FC/m
l)
Tiempo, días
5,00
5,50
6,00
6,50
7,00
7,50
0 5 10 15 20 25 30 35
logC
(U
FC/m
l)
Tiempo, días
60
5.4 Resultados estadísticos
Los gráficos 11, 12, 13, 14, 15 y 16 muestran la velocidad de crecimiento obtenidas a las
diferentes condiciones para los dos microorganismos las cuales coinciden con los valores de la
tabla 15.
Gráfico 11. Velocidad de crecimiento de Trichoderma harzianum a condición 1
Gráfico 12. Velocidad de crecimiento de Trichoderma harzianum a condición 2
logC = 0,1557 t + 5,7171 R² = 0,8635
5,40
5,70
6,00
6,30
6,60
6,90
7,20
7,50
0 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10
logC
(U
FC/m
l)
tiempo, días
logC = 0,1644 t + 5,7238 R² = 0,8858
5,50
5,80
6,10
6,40
6,70
7,00
7,30
7,60
0 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10
logC
(U
FC/m
l)
tiempo, días
61
Gráfico 13. Velocidad de crecimiento de Trichoderma harzianum a condición 3
Gráfico 14. Velocidad de crecimiento de Trichoderma hamatum a condición 1
logC = 0,1523 t + 5,8179 R² = 0,8238
5,50
5,80
6,10
6,40
6,70
7,00
7,30
0 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10
logC
(U
FC/m
l)
tiempo, días
logC = 0,1877 t + 5,4252 R² = 0,7873
5,00
5,50
6,00
6,50
7,00
7,50
0 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10
logC
(U
FC/m
l)
tiempo, días
62
Gráfico 15. Velocidad de crecimiento de Trichoderma hamatum a condición 2
Gráfico 16. Velocidad de crecimiento de Trichoderma hamatum a condición 3
5.4.1 Resultados de %CV. La tabla 31 muestra los resultados corregidos y el coeficiente de
variación a las diferentes temperaturas para Trichoderma harzianum y Trichoderma hamatum.
logC = 0,1968 t + 5,4788 R² = 0,8556
5,00
5,50
6,00
6,50
7,00
7,50
0 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10
logC
(U
FC/m
l)
tiempo, días
logC = 0,185 t + 5,4037 R² = 0,9151
5,00
5,50
6,00
6,50
7,00
7,50
0 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10
logC
(U
FC/m
l)
tiempo, días
63
Tabla 31. Resultados estadísticos corregidos
Trichoderma harzianum Trichoderma hamatum
Condición 1 Condición 2 Condición 3 Condición 1 Condición 2 Condición 3
μ 0,3585 0,3787 0,3507 0,4324 0,4531 0,4260
Sμ 0,0368 0,0351 0,0419 0,0580 0,0481 0,0335
b 13,166 13,182 13,399 12,494 12,618 12,445
Sb 0,2286 0,2181 0,2602 0,3605 0,2986 0,2081
r2 0,8635 0,8858 0,8238 0,7873 0,8556 0,9151
SLc 0,3928 0,3747 0,4470 0,6192 0,5129 0,3574
%CV 10,27 9,27 11,94 13,42 10,61 7,86
5.4.2 Velocidad específica de crecimiento microbiano. La tabla 32 muestra la velocidad
específica de crecimiento para cada microorganismo.
Tabla 32. Resultados de velocidad específica de crecimiento
Trichoderma harzianum Trichoderma hamatum
Condición μ μ
1 0,3585
0,3627
0,4324
0,4372 2 0,3787 0,4531
3 0,3507 0,4260
5.5 Selección de las mejores condiciones para producir Trichoderma spp.
De acuerdo con los resultados obtenidos en las gráficas de preparación del sustrato, en las
curvas de crecimiento y en el análisis estadístico se seleccionan las mejores condiciones para
propagar las dos especies nativas de Trichoderma spp.
5.5.1 Análisis comparativo del % de humedad. El grafico 17 muestra el porcentaje de humedad
requerido por el sustrato versus la temperatura utilizada en la propagación de los
microorganismos Trichoderma harzianum y Trichoderma hamatum.
64
Gráfico 17. Análisis comparativo de la humedad
5.5.2 Análisis comparativo de la concentración. En la tabla 33 se observa la concentración
promedio, valores obtenidos gracias a la repetibilidad de contaje de esporas, observándose que
en las condiciones 1 y 2 se tiene la máxima concentración en un menor tiempo (12 días).
Tabla 33. Promedio de la Concentración
Trichoderma hamatum Trichoderma harzianum
Dia Condición 1 Condición 2 Condición 3 Condición 1 Condición 2 Condición 3
0 6,3E+05 6,3E+05 6,3E+05 2,5E+05 2,5E+05 2,5E+05
3 1,0E+06 1,1E+06 1,2E+06 5,3E+05 7,3E+05 6,6E+05
5 5,2E+06 5,5E+06 6,9E+06 5,5E+06 6,0E+06 3,3E+06
7 6,9E+06 8,6E+06 9,4E+06 6,8E+06 8,9E+06 5,8E+06
9 1,1E+07 1,3E+07 1,1E+07 8,6E+06 1,2E+07 9,4E+06
12 1,3E+07 1,5E+07 1,3E+07 1,2E+07 1,5E+07 1,1E+07
14 1,4E+07 1,4E+07 1,3E+07 1,3E+07 1,5E+07 1,1E+07
17 1,4E+07 1,4E+07 1,3E+07 1,3E+07 1,5E+07 1,1E+07
20 1,3E+07 1,1E+07 1,3E+07 1,3E+07 1,4E+07 1,0E+07
24 1,1E+07 9,8E+06 7,9E+06 1,2E+07 1,4E+07 6,4E+06
27 7,9E+06 8,1E+06 6,5E+06 9,4E+06 1,1E+07 4,8E+06
30 6,3E+06 6,0E+06 4,5E+06 5,6E+06 5,4E+06 2,6E+06
Trichoderma harzianum Trichoderma hamatum
40,82 41,31
41,31 41,32
40,57 39,29
% H
um
ed
ad
T = 21°C T = 25°C T = 28°C
65
Gráfico 18. Análisis comparativo de la concentración de esporas
5.5.3 Análisis comparativo del coeficiente de variación (%CV). En el gráfico 19 se observa el
porcentaje de la desviación de los datos obtenidos en las lecturas del recuento celular, versus las
condiciones de tratamiento realizadas para las dos especies.
Gráfico 19. Análisis comparativo del coeficiente de variación
1,3E+07 1,2E+07
1,5E+07 1,5E+07
1,3E+07 1,1E+07
Trichoderma harzianum Trichoderma hamatum
con
cen
tra
ció
n U
FC/m
L
T = 21°C T = 25°C T = 28°C
10,27
13,42
9,27
10,61
11,94
7,86
0,00
2,00
4,00
6,00
8,00
10,00
12,00
14,00
16,00
Trichoderma harzianum Trichoderma hamatum
Co
efic
ien
te d
e v
aria
ció
n
%
Condición 1
Condición 2
Condición 3
66
5.5.4 Selección de las mejores condiciones. En la tabla 34 se resumen las condiciones que
aprobaron el criterio de mayor producción de esporas de los hongos Trichoderma harzianum y
Trichoderma hamatum.
Tabla 34. Mejores condiciones de crecimiento
Especie %H Concentración
UFC/mL %CV Condición
Trichoderma harzianum 41,31 1,5E+07 9, 27 2
Trichoderma hamatum 41,32 1,5E+07 10, 61 2
5.6 Resultados de aplicación del hongo Trichoderma spp.
Las figuras 16, 17, 18 y 19 muestran plantas de fresa y moras antes y luego de ser aplicado
Trichoderma harzianum y Trichoderma hamatum. En las fresas se aplicó una mezcla de los dos
microorganismos, mientas que en las moras la aplicación de las especies fue individual. En los
dos tratamientos se dejaron plantas como testigo para poder comparar su desarrollo.
Figura 16. Aplicación en plantas de fresas
67
Figura 17. Resultados luego de un mes de aplicación en plantas de fresa
Figura 18. Aplicación de los microorganismos en plantas de mora
Figura 19. Resultados luego de 50 días de aplicación en plantas de moras
68
6. DISCUSIÓN
6.1 Pruebas preliminares
Durante la preparación del sustrato, se establecieron rangos de humedad amplios, para
observar la influencia que esta variable presenta en el crecimiento de los dos hongos
filamentosos. Luego de varios días de incubación se apreció que la tonalidad del color verde
característico del género Trichoderma variaba según la cantidad de agua utilizada. Esta
relación se comprobó durante el contaje de esporas, ya que la muestra de color verde más
intenso dio como resultado una mayor concentración de esporas que la de menor coloración.
De las gráficas logC en función del volumen de agua adicionado al sustrato (Ver gráficos 1
y 2) se observa que la interpolación y extrapolación de la curvas permite determinar el
punto óptimo de crecimiento a cada temperatura de incubación, sin embargo para 21°C y
25°C de Trichoderma hamatum se observa cantidades altas para llegar al óptimo Vop,
produciendo desconfianza de los resultados obtenidos. Motivo por el cual fue necesario
recurrir a la práctica donde se estableció que 400 mL de agua es el valor máximo para
obtener una moderada manipulación del sustrato.
6.2 Diseño experimental
En el proceso de inoculación las concentraciones de esporas utilizadas son diferentes (Ver
tablas 7 y 12), lo cual llevaría a pensar que la producción desarrollada en botellas y fundas
sería desigual, pero luego de unos días de crecimiento de los hongos se observa que esto no
influye significativamente ya que se obtuvo valores similares, pudiéndose evidenciar en las
tablas 20, 21, 27 y 28.
Los resultados de porcentaje de humedad obtenidos (Ver tabla 26) se encuentran alrededor
del 40%, valores que se están dentro del rango (20 - 70%) establecido en la teoría (Ver cita
24). Sin embargo en esta tabla se puede observar que a 28°C se requiere una menor
humedad; este fenómeno se justifica que a mayor temperatura existe un mayor riesgo de
contaminación con microorganismos del ambiente.
69
En el análisis comparativo de la concentración de esporas (Ver tabla 33) se aprecia que el
máximo crecimiento se obtiene a los 12 días de incubación para las condiciones 2 y 3,
mientras que cuando se trabaja a temperatura ambiente (condición 1) se requiere de mayor
tiempo (14 días). Lo cual indica que cuando se modifica las variables humedad del sustrato
y temperatura se reduce el tiempo de producción de esporas Trichoderma.
Las velocidades específicas de crecimiento microbiano obtenidas (Ver tabla 32) muestran
valores similares entre las mismas especies, pero si se compara entre las dos especies
estudiadas se observa que estas difieren, pudiéndose evidenciar que la especie Trichoderma
hamatum que se desarrolla con mayor rapidez.
Para Trichoderma hamatum se acepta el %CV = 10,6 (Ver tabla 31 y gráfico 17) a pesar de
tener un valor menor a 28°C. Para esta decisión se basó en la concentración (Ver tabla 33) y
en la curva obtenida de las pruebas preliminares (Ver gráfico 2), donde a 25°C se obtiene la
mayor concentración de esporas y se justifica que pudo existir contaminación lo que generó
que el %CV sea un poco alto. No obstante son valores aceptables para los microorganismos.
6.3 Aplicación de Trichoderma spp. en plantas
Las especies aplicadas en las plantas de fresas ejercen un efecto positivo pues generan un
desarrollo y producción de frutos más rápido en comparación con las que no fueron
aplicadas. Además se observa un tamaño de hojas más grande, las plantas se tornan más
verdes y brillosas siendo estos indicativos de que se encuentran sanas (Ver figuras 16 y 17)
En las plantas de moras se observa que luego de un tiempo de aplicación estas se
desarrollan con mayor rapidez en comparación con la testigo que a pesar de haber sido la
más grande, transcurrido los 2 meses la planta que contiene Trichoderma Hamatum supero
en tamaño. Estas observaciones indican que el microorganismo ejerce todas sus
características de protección en las raíces de las plantas (Ver figuras 18 y 19).
70
7. CONCLUSIONES
7.1 Pruebas preliminares
La tonalidad del color verde que presenta Trichoderma es un indicativo de la concentración
de esporas, mientras más verde se presente la muestra, mayor será la cantidad de unidades
formadoras de colonias, existiendo una relación directa entre la intensidad del color y la
manifestación de conidios.
El sustrato utilizado y la cantidad de agua adicionada es una relación 2:1, pues se comprobó
que un valor superior dificulta la manipulación del sustrato, reduce el crecimiento, limita la
adecuada oxigenación de la matriz sólida y el crecimiento solo se realiza en la superficie.
7.2 Diseño Experimental
La concentración de inoculo utilizado para sembrar los microorganismos no influye
significativamente en la producción de esporas, viéndose reflejado en la similitud que existe
entre las dos propagaciones.
En la producción Trichoderma una temperatura de 28°C incrementa la formación de gotas
de agua, limitando el crecimiento de estos hongos filamentosos, presentando un mayor
riesgo de contaminación con microorganismos del ambiente.
Modificando las variables humedad del sustrato y temperatura se generan resultados
positivos en la experimentación, pues reduce el tiempo de producción de los hongos
Trichoderma harzianum y Trichoderma hamatum.
La velocidad específica de crecimiento es independiente para cada microorganismo, según
los resultados obtenidos la especie Trichoderma hamatum se adapta más rápido al medio,
desarrollándose con mayor velocidad en comparación con Trichoderma harzianum.
71
Los resultados del coeficiente de variación obtenidos son aceptables, considerando que se
trabajó con microorganismos donde los errores producidos pueden ser altos, debido a la
contaminación con microorganismos del ambiente y al equipo utilizado en el contaje de
esporas.
Se concluye que la temperatura de 25°C y 41,3 % de humedad son las condiciones más
adecuadas para producir estos biofungicidas, en un menor tiempo, obteniéndose como
máximo, 1,5x107 UFC/mL para Trichoderma harzianum y 1,5x10
7 UFC/mL de
Trichoderma hamatum a los 12 días de tratamiento.
7.3 Aplicación de Trichoderma spp. en plantas
Los microorganismos aplicados independientes o en mezcla, ejercen aspectos positivos a las
plantas de fresas y moras, generando un mayor desarrollo, además de producir frutos de
muy buena calidad en el caso de las fresas. Los frutos de las moras no se pudo calificar
porque requerían mayor tiempo.
72
8. RECOMENDACIONES
Implementar un mechero bunsen en el laboratorio, con el propósito de incrementar el área
de esterilización al momento de toma de muestras para el recuento celular.
Elaborar un manual propio del laboratorio de recopilación de experiencias obtenidas durante
el proceso de propagación de Trichoderma spp. teniendo en cuenta aspectos como: normas
de bioseguridad y focos de contaminación.
Realizar un estudio de propagación de Trichoderma spp. utilizando diferentes sustratos para
determinar crecimiento versus costo.
Implementar una cámara de flujo laminar para reducir la contaminación causada por
microorganismo del ambiente al momento de las inoculaciones.
Aplicar el producto obtenido en diferentes especies de plantas para determinar su
efectividad.
Difundir a la colectividad agrícola los beneficios que brinda Trichoderma en los diferentes
cultivos con la finalidad de obtener productos orgánicos de calidad.
73
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83
ANEXO D. Materiales necesarios
Figura D.1. Materia prima
Figura D.2. Material de limpieza
Figura D.3. Autoclave
Figura D.4. Tapones limpios y secos
84
ANEXO E. Propagación de Trichoderma en cajas Petri
Figura E.1. Preparación del medio de cultivo PDA
Figura E.2. Inoculación del microorganismo en cajas Petri
85
ANEXO F. Preparación del sustrato
Figura F.1. Lavado del arrocillo
Figura F.2. Escurrido del arrocillo
Figura F.3. Adición del agua para la
cocción del arrocillo
Figura F.4. Sustrato de arrocillo
86
ANEXO G. Esterilización del sustrato
Figura G.1. Llenado de botellas
Figura G.2. Sustrato en botellas selladas con
tapones
Figura G.3. Sustrato en fundas
Figura G.4. Esterilización en autoclave
87
ANEXO H. Preparación del inóculo
Figura H.1. Peso de sustrato propagado
Figura H.2. Liberación de esporas en agua
estéril
Figura H.3. Solución madre de Trichoderma spp.
88
ANEXO I. Inoculación del sustrato
Figura I.1. Material listo para ser inoculado en la cámara de siembra
Figura I.2. Inoculación en botellas
Figura I.3. Inoculación en fundas
89
ANEXO J. Determinación de la concentración de esporas
Figura J.1. Diluciones seriadas
Figura J.2. Contaje de esporas