parasitos gastrointestinales en aves del barrio el espino
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Estas es una Investigación realizada en El Barrio el Espino, Catacamas, Olancho, Honduras.con el fin de detectar los parasitos más comunes en la zona.TRANSCRIPT
Universidad Nacional De Agricultura
“Aprender Haciendo”
Departamento de Producción Animal
Medicina Veterinaria
Clase “2015 A”
PARASITOLOGÍA.
Dra. Nelys Herrera.
Diagnostico de parásitos gastrointestinales en las aves de traspatio del Barrio el Espino, Catacamas
Olancho.
Autores: David A. Cantarero Peralta, Gustavo Moncada, Luis Miguel Garín, Jorge Iscoa, Francis Ramírez Reyes.
Catacamas Olancho
Honduras, C.A.
2012.
CONTENIDO I. RESUMEN. ......................................................................................................................................... 1
II. INTRODUCCIÓN ........................................................................................................................... 2
III. PLANTEAMIENTO DEL PROBLEMA. ......................................................................................... 3
3.1 OBJETIVOS. ..................................................................................................................................... 3
3.1. 1 General. ..................................................................................................................................... 3
3.1.2 Específicos. ................................................................................................................................. 3
3.3 Justificación de la investigación. ......................................................................................................... 4
3.4 Viabilidad de la investigación. ............................................................................................................ 5
IV. MARCO TEÓRICO. ........................................................................................................................ 6
4.1 Principales parásitos que afectan a las aves. .................................................................................. 6
4.1.1 Capilariasis ssp. .................................................................................................................. 6
4.1.2 Oxyspirura spp. ................................................................................................................... 7
4.1.3 Ascaridia galli. .................................................................................................................... 8
4.1.4 Heterakis gallinarum. .......................................................................................................... 8
4.1.5 Eimeria ssp. ........................................................................................................................ 9
4.1.6 Railletina sp ...................................................................................................................... 10
V. METODOLOGÍA. ............................................................................................................................. 11
5.1 Descripción del sitio de investigación. ........................................................................................ 11
5.3 Manejo de la investigación. ........................................................................................................ 12
5.4 variables a evaluar. .................................................................................................................... 12
5.5 Análisis de la información. ......................................................................................................... 13
VI. RESULTADOS. ............................................................................................................................ 14
6.1 Datos obtenidos en el análisis de las muestras. .................................................................................. 14
VII. DISCUSIÓN. ................................................................................................................................. 17
VIII. CONCLUSION. ............................................................................................................................ 18
IX. RECOMENTACIONES. ................................................................................................................ 19
X. COSTO DE LA INVESTIGACION. ............................................................................................... 20
XI. ANEXOS ...................................................................................................................................... 21
10.1 Cronograma de actividades. ............................................................................................................ 21
10.2 imágenes de los parásitos encontrados. ............................................................................................ 22
XII. BIBLIOGRAFÍA. .......................................................................................................................... 23
1
I. RESUMEN.
La investigación de parásitos gastrointestinales fue realizada en el Barrio el Espino, para lo
cual se tomaron 25 muestras de heces, estas fueron elegidas al azar con un total de 4 a 5
gallinas por casa. Luego se trasladaron a laboratorio de parasitología de la Universidad
Nacional de Agricultura en una hielera a una temperatura 4oC (con el fin de evitar que se
dañaran) para realizar las pruebas de laboratorio, mediante la técnica de flotación basada en
la suspensión de huevos por la solución de sheater (solución saturada de azúcar). Se evaluó
la presencia o ausencia de parásitos en cada una de las muestras, y mediante las
características morfológicas de cada huevo se diagnostico los tipos de parásitos los cuales
fueron Ascaridia, Heterakis ssp, Capillaria sp. y Railltina ssp.
Palabras claves: muestras, investigación, heces, sheater, parásitos.
ABSTRACT.
The investigation was conducted of gastrointestinal parasites in the Barrio Espino, for
which it took 25 stool samples, these were chosen at random with a total of 4-5 hens per
house. Then they moved to the National University of Agriculture in a cooler at a
temperature of 4 ° C (to avoid any damage to) for the analysis, which used the technique of
"float" based on the suspension of eggs by solving Sheater (saturated sugar solution). We
evaluated the presence or absence of parasites in each of the samples, and using the
morphological diagnosis of each egg types of parasites which were Ascaridia, Heterakis
spp, Capillaria sp. and Railltina ssp.
Keywords: samples, research, feces, Sheater, parasites.
2
II. INTRODUCCIÓN
El diagnostico de parásitos internos en aves de traspatio se realizó en el barrio el Espino,
perteneciente a la ciudad de Catacamas, Olancho. Está ubicado al Nor – oeste de la
Universidad Nacional de Agricultura (UNA). Con una altura de 350 msnm y una
temperatura promedio de 24°c-31°C.
El Barrio el Espino cuenta con una población de aves de traspatio muy grande, se
desconoce el número exacto, pero es de nuestro conocimiento que las explotaciones se
manejan de manera tradicional con mínimas técnicas de manejo y sin los adecuados planes
de desparasitación. Por lo que es de mucha preocupación para los pobladores, debido a que
las aves se encuentran amenazadas, por las enfermedades y cargas parasitarias que puedan
albergar. Así mismo su mayor importancia se dirige a las enfermedades que estas aves
pudiesen tener y transmitir a los humanos, convirtiéndose en zoonosis.
La explotación de las aves de traspatio es un importante renglón económico para la
población rural campesina como fuente de ingresos, y como una forma de garantizar la
seguridad alimenticia en comunidades de bajos recursos o familias humildes. Por lo
consecuente es de vital importancia la creación de programas que vayan dirigidos al control
de parásitos internos, y poner en práctica algunas medidas sanitarias para poder reducir las
cargas parasitarias en estas aves.
La presente investigación nace con el objetivo de poder descubrir los principales parásitos
internos que están afectando a esta población de aves, y al mismo tiempo poder realizar un
programa de desparasitación, donde se indiquen los tratamientos más adecuados para el
control de los parásitos encontrados. Y así de esta forma poder contribuir a aumentar los
índices de productividad y disminuir las muertes de aves por enfermedades parasitarias.
3
III. PLANTEAMIENTO DEL PROBLEMA.
3.1 OBJETIVOS.
3.1. 1 General.
• Diagnosticar los diferentes tipos de parásitos gastrointestinales que afectan las aves de
traspatio en el Barrio el Espino mediante la realización de pruebas coprologicas, que
nos determinen con exactitud la presencia o ausencia de parásitos.
3.1.2 Específicos.
• Realizar un muestreo representativo de la población de aves del Barrio el Espino.
• Utilizar la técnica de flotación para detectar los parásitos, debido a la alta sensibilidad y
lo económico que resulta la prueba.
• Identificar los diferentes parásitos que se logren encontrar en las pruebas diagnosticas
de laboratorio.
4
3.3 Justificación de la investigación.
Se estima que la prevalencia de parásitos internos en las aves de traspatio en el Barrio El
Espino es sumamente alta, debido a la falta de programas de desparasitación por lo que
resulto necesario realizar una investigación que pudiera determinar la presencia o ausencia
de estos parásitos. Es de nuestro conocimiento que las altas cargas parasitarias en la aves
causan; disminución de la conversión de alimentos afectando el crecimiento, producción y
la economía en general. Con nuestra investigación podemos generar beneficios directos a la
comunidad, mediante la información, tratamiento, control, manejo y la prevención de los
parásitos. Además, el animal aprovecharía mejor el alimento sin alterar los costos,
obteniendo mayores ganancias.
5
3.4 Viabilidad de la investigación.
Recurso Humano.
Equipo de médicos veterinarios docentes y microbiólogos de la carrera de Medicina
Veterinaria.
- Dra. Nelys Herrera
- Dra. Melisa Figueroa
- Habitantes del barrio El Espino.
Recurso Económico. La presente investigación no tiene costo económico relevante, los materiales destinados
tanto para el muestreo de las aves como para los reactivos a utilizar en la técnica de
diagnóstico parasitologíco, fueron proporcionados por el laboratorio de parasitología de la
carrera de Medicina Veterinaria de la Universidad Nacional de Agricultura.
6
IV. MARCO TEÓRICO.
4.1 Principales parásitos que afectan a las aves.
4.1.1 Capilariasis ssp.
Las capilaríasis son las infecciones por nematodos del genero Capillaria. Hay especies que
infectan a las aves (galinas, pavos, patos, palomas, etc.). Donde pueden causar patologías
pero en especies que afectan humanos rara vez presentan patología, son nematodos del
tracto digestivo, respiratorio y urinario.
Ciclo biológico.
Algunas capilarías tienen un ciclo de vida libre directo mientras que otras especies
requieren un hospedero intermediario, comúnmente una lombriz de tierra. En el primer
caso, la larva infectante del primer estadio se forma dentro del huevo en 2 a 4 semanas y los
hospederos definitivos se infectan al ingerir el huevo junto con su alimento o agua de
bebida. En el segundo caso, el huevo es ingerido por una lombriz en el cual se forma la
larva infectante de primer estadio en 1 a 2 semanas y el hospedero definitivo de infesta al
consumir la lombriz como parte de una cadena alimentaria (Barriga, 2002).
Diagnostico.
Se confirma por el hallazgo de huevos en las deposiciones, o cuando se encuentra el
parásito adulto en el intestino, además es muy importante el empleo de pruebas
coprológicas.
Tratamiento.
Cumafos (30-40 partes por millón en la comida por 10-14 días) y la metiridiana (2-4 g/l en
el agua, una vez), el fenbendazol (80 partes por millón por tres días o 30-48 partes por
7
millón por cinco días en la comida, ivermectina (0.07-0.14 mg/kg subcutánea en aves).
Una sola dosis alta de fenbendazol (100mg/kg) también es efectiva.
4.1.2 Oxyspirura spp.
Los nematodos del género Oxyspirura afectan a los ojos de aves, pollos, gallinas pintadas
(gallinas de Guinea), pavos y codornices en regiones tropicales y subtropicales de América,
Asia y Oceanía. Los órganos predilectos de Oxyspirura spp. Son la membrana nictitante,
los sacos conjuntivos y los conductos nasolacrimales.
El único hospedador intermediario es Pycnoscelus surinamensis, una cucaracha de climas
tropicales y subtropicales.
Las hembras adultas de Oxyspirura depositan huevos que, a través de los ductos lacrimales
del ave infectada, pasan al intestino y alcanzan el exterior por las heces. Las cucarachas
ingieren estos huevos y en su intestino eclosionan. A los ocho días penetran en el hemocele
(cavidad corpórea entre los órganos) y se enquistan, sobre todo en los cuerpos grasos. El
desarrollo continúa hasta el estadio infectivo L3 que se alcanza unos 55 días tras la
ingestión de los huevos. Las aves afectadas muestran un comportamiento inquieto y se
rascan los ojos continuamente. La membrana nictitante está hinchada y se mueve sin
interrupción.
Control.
El levamisol y la ivermectina u otros endectocidas en forma de gotas lacrimales o por vía
oral son eficaces para controlar estos parásitos (Junquera, 2007).
8
4.1.3 Ascaridia galli.
Es un nematodo de la familia ascaroidea que afecta el intestino delgado de patos, pavos y
gallináceas su ciclo biológico consiste en que las hembras depositan los huevos en los
intestinos del hospedador los cuales son eliminados por las heces al exterior donde son
depositados en el pasto y si encuentran humedad, sombra, oxígeno y las temperaturas
adecuadas eclosionan en larva infectante del tercer estadio, la cual es ingerido por un
hospedero y eclosiona en los intestino, donde compite por vitaminas y minerales contra el
hospedador. Entre algunos síntomas que podemos encontrar son, obstrucciones intestinales,
enteritis, mal apetito y en algunos casos perforaciones intestinales. El tratamiento en las
aves consiste en la aplicación permanente de mebendazol controla la ascaridia, heterakis
entre otros así como Higromicina B en el alimento y levamisol en el agua son efectivos
contra todos los nematodos gastrointestinales (Barriga, 2002).
4.1.4 Heterakis gallinarum.
Son pequeños nematodos que se encuentran en el ciego de pollos, guajolotes (pavos)
gallinas de Guinea, faisanes, codornices, gansos, y otras aves silvestre son de distribución
cosmopolita. El ciclo evolutivo es directo los huevos salen con las heces, tienen una sola
célula y se desarrollan en el suelo de 12 a 15 días de 18 a 20 oC, él huevo con la 2da larva
es la infectante y las gallinas se contaminan por ingestión donde las larvas eclosionan en el
buche y molleja, pero la mayoría en el intestino delgado de donde emigran al ciego. Su
periodo prepatente es de 24 a 36 días o más, la acción patogénica de H. gallinarum ejerce
acción traumática e irritativa ligera en la mucosa cecal, donde podemos encontrar lesiones
discretas que se traducen por un ligero engrosamiento de la pared del ciego con equimosis
9
macroscópicamente el ciego aparece cubierto por pequeñas salientes nodulares que dan
aspectos mamelonado. Las infestaciones severas se observa diarreas de color verduzco con
enflaquecimiento y generalmente afecta a aves jóvenes. Los tratamientos más conocidos
tenemos: fenotiacina de 0.5 a 1 gramo por ave, sales de piperacina y fenotiacina mezcladas
muestran mejores resultados (Quiroz, 1990).
4.1.5 Eimeria ssp.
Los coccidios de las aves domesticas son responsables de grades perdidas en la industria
avícola, en los distintos países del mundo. En la gallina domestica se han estudiado las
siguientes especies: Eimeria acervulina, Eimeria brunetti, Eimeria hagani, Eimeria
máxima, Eimeria mitis, Eimeria mivati, Eimeria necatrix, Eimeria praecox y Eimeria
tenella. Lo interesante de estas especies de coccidias es que cada especie tiene la facultad
de causar daños en partes específicas del intestino.
Ellas se multiplican en las células intestinales, destruyéndolas y causando graves daños
(hemorragias, gastroenteritis catarral, mal absorción de los alimentos etc.). Para las aves
domesticas, las especies más patógenas e importantes son Eimeria tenella y e. necatrix
(Soulby, 1982).
.
Tratamiento.
Estudios realizados por Soulby (1982), muestra que el amprolio es muy efectivo contra E.
tenella, E. necatrix, y E. acervulina. La Nicarbazina se utiliza principalmente como
profiláctica; la dosis terapéutica esta próxima a la dosis toxica.
Antibióticos ionóforos como la monensina, se obtiene en la fermentación de Streptomyces
albus, y protege contra la mortalidad por todas las especies, al nivel de 0.01 a 0.0121% en
el pienso.
10
4.1.6 Railletina sp
Este cestodo se caracteriza por afectar más las aves jóvenes (pollitos, pichones, pavitos,
patitos etc.), una vez que el cisticercoide es ingerido por el hospedador definitivo; presenta
diarrea, debilidad, enflaquecimiento, paralasis y disminución de la postura.
Se caracteriza por afectar el intestino delgado al igual que las demás tenias, la cabeza
provista de ganchos y de ventosas se adhieren fuertemente a la mucosa intestinal. Los
anillos de la tenia llenos de huevos maduros llegan al exterior por medio de las heces, pero
su desarrollo no se realiza directamente, sin que necesitan de un huésped intermediario
como pequeños caracoles, moscas, hormigas, escarabajos y lombrices de tierra, en las
cuales se desarrollan al estado de cisticercoides y así llegan al hospedador definitivo.
La comprobación del parásito por medio de la heces no es segura, pero en algunas
circunstancias si se puede reconocer en heces recién expulsadas (por los anillos en forma de
pera). Es imposible evitar la ingestión de los hospedadores intermediarios, se puede
disminuir los huevecillos de tenias limpiando el estiércol local y bajando el número de
portadores de cisticercos, también podemos empolvar el excremento con insecticidas y las
praderas con medios que destruyen los caracoles y los otros huéspedes intermediarios
(Menéndez, 2007).
11
V. METODOLOGÍA.
5.1 Descripción del sitio de investigación.
La toma de muestra para el estudio fue realizado en el Barrio el Espino, perteneciente a la
ciudad de Catacamas, Olancho. Está ubicado al Nor-oeste de la Universidad Nacional de
Agricultura (UNA). Con una altura de 350 msnm y con un rango de temperatura de 24º C a
31º C.
5.2 Materiales y Equipo.
Laboratorio.
• Microscopio, Guantes, Porta objetos, Cubre objetos, Solución de sheater, Tubos de
ensayo, Gasas y Paletas.
Toma de muestra.
• Guantes.
• Hielera.
• Bolsas de hielo.
• Hisopos.
• Vaselina.
Biológicos
• Aves (gallinas de traspatio)
• Personal capacitado.
12
5.3 Manejo de la investigación.
Para realizar la investigación nos trasladamos al Barrio el Espino para obtener las muestras
(25 muestras). Las cuales se recolectaron al azar con un número de 4 o 5 aves por casa,
luego se conservaron en una hielera con una temperatura de 4ºC, para evitar que se dañaran
mientras se trasladaban al laboratorio de parasitología de la carrera de Medicina
Veterinaria en la Universidad Nacional de Agricultura para, su posterior análisis.
Para el análisis de las muestras se utilizó la técnica de ¨flotación¨ la cual se fundamenta en
la elevación de los huevos debido a la baja densidad que tienen en relación a la solución de
¨Sheater¨ (concentración saturada de azúcar).
5.4 variables a evaluar. En nuestra investigación se evaluaron las siguientes variables:
• Presencia o la ausencia de parásitos. Si se encentraba al menos un huevo de parásito
entre las muestras analizadas se determinaba que había presencia de parásitos en las
aves.
• Tipos de parásitos encontrados. Según las características morfológicas de los
huevos encontrados se pudo diferenciar los tipos de parásitos.
• Porcentaje de animales con parásitos. Se sumaron las muestras positivas (presencia
de huevos), entre el total de las muestras.
13
5.5 Análisis de la información.
Para analizar los resultados de las variables que se plantearon a investigar, se utilizo el
programa Microsoft office Excel 2007.
14
VI. RESULTADOS.
6.1 Datos obtenidos en el análisis de las muestras.
Nombre del propietario Procedencia
No.
De
ave .
Caracteristicas Fecha de toma de la muestra.
Fecha del procesamiento de
muestras
Tecnica de diagnostico
Paràsitos encontrados. Observaciones.
Doña Ricarda Barriò el espino
1 Gallo cabeza
desnuda (color rojo)
05/08/2012 05/08/2012 Flotación N.S.P
Doña Ricarda Barriò el espino 2
Gallina empedrada
(negra, café y blanco)
05/08/2012 05/08/2012 Flotación Àscaris galli.
Doña Ricarda Barriò el espino 3
Pollo negro con barba. 05/08/2012 05/08/2012 Flotación
Heterakis gallinarum y
Capillaria.
Se encontró un cestodo en la
muestra
Doña Ricarda Barriò el espino 4 Gallina color café
y amarillo 05/08/2012 05/08/2012 Flotación N.S.P
Dario Hernandez
Barriò el espino 5 Gallina colarada 05/08/2012 05/08/2012 Flotación Àscaris galli.
Dario Hernandez
Barriò el espino 6
Gallina gris plumas negras 05/08/2012 05/08/2012 Flotación N.S.P
Dario Hernandez
Barriò el espino 7 Gallina colorada
plumas negras 05/08/2012 05/08/2012 Flotación Capillaria.
Dario Hernandez
Barriò el espino
8 Gallina amarilla 05/08/2012 05/08/2012 Flotación Ascaridia
Dario Hernandez
Barriò el espino 9 Gallina
empedrada 05/08/2012 05/08/2012 Flotación Capillaria.
Alberto Zavala
Barriò el espino
10 Gallina
empedrada amarilla
05/08/2012 05/08/2012 Flotación N.S.P
Alberto Zavala
Barriò el espino 11 Pollo empedrado
negro 05/08/2012 05/08/2012 Flotación N.S.P
Alberto Zavala
Barriò el espino
12 Gallina negra plumas amarilla
05/08/2012 05/08/2012 Flotación Ascaridia
Alberto Zavala
Barriò el espino 13
Gallinas amarilla plumas grises 05/08/2012 05/08/2012 Flotación N.S.P
15
Alberto Zavala
Barriò el espino 14
Gallina amarilla plumas negras 05/08/2012 05/08/2012 Flotación N.S.P
Alberto Zavala
Barriò el espino 15
Polla negra empedrada 05/08/2012 05/08/2012 Flotación N.S.P
Luz Murillo Barriò el espino
16 Gallina amarilla 05/08/2012 05/08/2012 Flotaciòn Capillaria.
Luz Murillo Barriò el espino 17
Gallina de granja, blanca 05/08/2012 05/08/2012 Flotaciòn
Heterakis gallinarum y
Ascaridia.
Luz Murillo Barriò el espino
18 Gallina amarilla
con plumas negras.
05/08/2012 05/08/2012 Flotaciòn Capillaria.
Luz Murillo Barriò el espino 19
Gallina negra, cafè oscuro 05/08/2012 05/08/2012 Flotaciòn N.S.P
Luz Murillo Barriò el espino
20 Gallina empedrada
05/08/2012 05/08/2012 Flotaciòn N.S.P
Doña Sonia Hernàndez
Barriò el espino
21 Gallina negra empedrada
05/08/2012 05/08/2012 Flotaciòn Capillaria.
Doña Sonia Hernàndez
Barriò el espino 22
Pollo empedrado plumas negras y
blancas 05/08/2012 05/08/2012 Flotaciòn Railletina Spp y
Capillaria
Doña Sonia Hernàndez
Barriò el espino 23 Gallina amarilla 05/08/2012 05/08/2012 Flotaciòn N.S.P
Doña Sonia Hernàndez
Barriò el espino 24
Gallina color cafè oscuro 05/08/2012 05/08/2012 Flotaciòn
Ascaridia Y Heterakis
Doña Sonia Hernàndez
Barriò el espino 25 Gallina filipina 05/08/2012 05/08/2012 Flotaciòn N.S.P
16
Grafica 1. Se observa la cantidad de gallinas positivas y la cantidad de aves
negativas muestreadas.
Grafica 2. Muestra la prevalencia de parásitos encontrados en las 25
muestras, siendo la capillaria la de mayor influencia con 6/25, y la
Ascaridia en segundo lugar con 5/25.
13
1211.5
12
12.5
13
13.5
# DE AVESPOSITIVAS # DE AVES NEGATIA
TOTAL DE AVES MUESTREADAS.
5
2
6
10
2
4
6
8
Ascaridia Heteraquis Capillaria Railletina sp
Prevalencia de parásitos encontrados en las muestras.
17
VII. DISCUSIÓN.
En la actualidad no se cuenta con estudios realizados sobre este tipo de parasitosis, siendo
un tema importante por el grado de problemas que causan en las aves. El número de casos
positivos en estos caseríos es elevado, debido a la poca costumbre que tienen en cuanto a la
desparasitación de sus aves, por lo que es necesario realizar una desparasitación lo más
pronto posible para controlar los altos grado de infestación en las demás aves del barrio el
Espino.
18
VIII. CONCLUSIÓN.
• El parasito que presento una mayor prevalencia durante el análisis de las muestras
fue la capillaria encontrada en 6 de las 25 muestras.
• Los resultados muestran que un 52% de las aves muestreadas están infestadas.
• Los niveles elevados de parasitosis en las aves del barrio el Espino, se debe a que
las personas no tienen la costumbre de desparasitar estos animales.
19
IX. RECOMENDACIONES.
• Hacer un programa de desparasitación para bajar la prevalencia de los parásitos que
están afectando las aves.
• Tener un control de la libertad de las aves, para evitar que estas se infesten con
parásitos.
• Proporcionar agua y alimentos lo más higiénico posible.
20
X. COSTO DE LA INVESTIGACION.
La investigación no tuvo costos relevantes debido a que la universidad nos proporciono los
materiales necesarios para realizarla, pero en el siguiente cuadro damos a conocer los
posibles gastos en caso de que nuestra investigación fuese repetida por alguien que se
interese en el tema.
COSTOS DE LA INVESTIGACIÓN.
Concepto Unidad Cantidad Costos en lempiras. Subtotal
Examen de heces Examen 25 80 2000
Materiales. guantes 50 2 100 Viáticos auto 1 200 200
otros Varios 1 500 500 TOTAL
2800
21
XI. ANEXOS
10.1 Cronograma de actividades.
Actividad Fecha Lugar Responsables
Preparación de técnica de flotación
Sábado 4 de agosto de
2012
Laboratorio de parasitología veterinaria
-David cantarero -Luis Garim - Jorge Iscoa -Roger Moncada -Francis Reyes.
Muestreo de aves
Domingo 5 de agosto
de 2012
Barrio el Espino
-David cantarero -Luis Garim - Jorge Iscoa -Roger Moncada -Francis Reyes.
Procesamiento de muestras fecales
Domingo 5 de agosto
de 2012
Laboratorio de parasitología de
Medicina Veterinaria
-Dra. Nelys Herrera -Dra. Melissa Figueroa -David cantarero -Luis Garim - Jorge Iscoa -Roger Moncada -Francis Reyes.
Análisis de resultados
Lunes 6-9 de agosto de
2012
UNA
-David cantarero -Luis Garim - Jorge Iscoa -Roger Moncada -Francis Reyes.
Entrega de resultados
Lunes 13 de agosto de
2012
Oficinas de la carrera
de Medicina Veterinaria
-David cantarero -Luis Garim - Jorge Iscoa -Roger Moncada -Francis Reyes.
22
10.2 imágenes de los parásitos encontrados.
Figura 1. Huevo de Railletina sp. Figura 2. Huevo de capillaria sp.
Figura 3. Huevos de Heterakis sp y Figura 4. Huevos de capillaria sp.
Ascaridia sp.
23
XII. BIBLIOGRAFÍA.
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nematodos parásitos de los ojos de AVES (pollos, gallinas, pintadas, etc.). Disponible en:
<http://parasitosdelganado.net> consultado en agosto del 2012.
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417,419 y 429, ISBN 968-18-1674-9.
SOULBY, E.J.L. 1982, Parasitología y enfermedades parasitarias en los animales
domésticos, 7ª edi., editorial interamericana, S.A. de C. V. México D. F., pág. 639-651.
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corral (traspatio) en la ciudad de Acayucan (Tesis) Medico veterinario Zootecnista,
Veracruz, Mexico. Pág. 25-26-27.