morfofisiologia de invertebrados

UNIVERSIDAD AUTÓNOMA DE CIUDAD JUÁREZ

INSTITUTO DE CIENCIAS BIOMÉDICAS

DEPARTAMENTO DE CIENCIAS QUÍMICO-BIOLÓGICAS

PROGRAMA DE BIOLOGÍA

MANUAL DE PRÁCTICAS

MORFOFISIOLOGÍA DE INVERTEBRADOS

MANUAL DE PRÁCTICAS DE MORFOFISIOLOGÍA DE INVERTEBRADOS

COMPILADORES:

Principal: Ana Gatica Colima

Colaboradores: Alejandra Aguirre Terrones

Ciudad Juárez, Chihuahua

Universidad Autónoma de Ciudad Juárez

2011

105 p.

M en C Emilio Clarke Crespo

Coordinador de la Academia de Biología

D. Ph. Antonio de la Mora Covarrubias

Coordinador del Programa de Biología

Dr. Alejandro Martínez Martínez

Jefe del Departamento de Ciencias Químico-Biológicas

M.C. Hugo Staines Orozco

Director del Instituto de Ciencias Biomédicas

Aprobado por la Academia de Biología, 2011

PRÁCTICA 1

CAVIDADES CORPORALES EN ORGANISMOS DEL REINO ANIMAL………1

PRÁCTICA 2

DIRECCIÓN, PLANOS CORPORALES Y SIMETRÍA EN EL REINO ANIMAL...6

PRÁCTICA 3

INVERTEBRADOS DEL REINO ANIMAL………………………………………….13

PRÁCTICA 4

TEJIDO EPITELIAL GLANDULAR ENDOCRINO………………………………...17

PRÁCTICA 5

TEJIDO CONECTIVO, SANGRE DE INVERTEBRADOS ............................... 21

PRÁCTICA 6

TEJIDO MUSCULAR ....................................................................................... 25

PRÁCTICA 7

TEJIDO NERVIOSO ......................................................................................... 29

PRÁCTICA 8

SISTEMA TEGUMENTARIO DE ALGUNOS INVERTEBRADOS .................... 34

PRÁCTICA 9

SISTEMA TEGUMENTARIO ALACRANES ..................................................... 42

PRÁCTICA 10

SISTEMA DE SOPORTE EN PORIFERA ........................................................ 47

PRÁCTICA 11

SISTEMA MUSCULAR EN LOMBRIZ DE TIERRA ......................................... 52

PRÁCTICA 12

CONDUCTA FOTOTÁXICA EN ANIMALES INVERTEBRADOS .................... 55

PRÁCTICA 13

SISTEMA RESPIRATORIO EN ARTRÓPODOS ............................................. 62

PRÁCTICA 14

SISTEMA CIRCULATORIO EN ANÉLIDOS .................................................... 67

PRÁCTICA 15

INGESTIÓN Y DIGESTIÓN EN PLANARIA 7ERROR! BOOKMARK NOT

DEFINED.

PRÁCTICA 16

SISTEMA EXCRETOR EN LOMBRIZ DE TIERRA .......................................... 74

PRÁCTICA 17

OSMOREGULACIÓN EN ROTÍFEROS ........................................................... 77

PRÁCTICA 18

FERTILIZACIÓN Y DESARROLLO TEMPRANO EN ERIZOS DE MAR………83

PRÁCTICA 19

EFECTOS DE LA CONCENTRACIÓN SALINA EN EL DESARROLLO DE

ARTEMIA SALINA ........................................................................................... 89

PRÁCTICA 20

REGENERACIÓN EN PLANARIA ................................................................... 94

1

PRÁCTICA 1. CAVIDADES CORPORALES EN

ORGANISMOS DEL REINO ANIMAL

Introducción

Conforme el paso del tiempo evolutivo, los animales se fueron haciendo

complejos, desarrollaron una cavidad entre los intestinos, con la función de

digerir y absorber el alimento, conocido como celoma. Los animales menos

complejos, como las esponjas (Porifera), hidras, anémonas y medusas

(Cnidarios) y gusanos planos (Platyhelminthes) carecen de espacio interno

entre su pared y los intestinos.

Los gusanos redondos (Nematoda) tienen un espacio conocido como

seudoceloma o seudocele, entre la pared corporal y el intestino, también se

denomina falso celoma.

El celoma aparece en los gusanos segmentados como las lombrices de tierra

(Anelida), los insectos, arácnidos y crustáceos (Artrópoda), los caracoles,

almejas y calamares (Molusca), estrellas y erizos de mar (Equinodermata) y los

Cordados.

En los vertebrados, como en todos los invertebrados de organización superior,

la mayor parte de los órganos del cuerpo no se encuentran incluidos en tejidos

compactos o mesénquima, sino que están dentro de cavidades llenas de

líquido, que suelen llamarse cavidades celómicas.

Las cavidades celómicas se forman en los tejidos mesodérmicos, y están

revestidas de un epitelio mesodérmico llamado peritoneo.

Objetivos

El alumno se familiarizará con los conceptos básicos de cavidades corporales.

Realizará cortes para observar las cavidades corporales en animales.

Materiales

Especimenes biológicos preservados de diferentes grupos del reino animal.

Esquemas de animales sobre cavidades corporales.

2

Una charola de disección.

Un estuche de disección.

Un estereoscopio.

Papel secante.

Procedimiento

1.- Observe con detenimiento cada uno de los especímenes proporcionados.

Preferentemente un acelomado, un seudocelomado y un celomado.

2.- Observe los esquemas proporcionados sobre los tipos las tendencias en las

cavidades corporales.

3.- Realice cortes en los organismos proporcionados, tratando de visualizar las

cavidades.

Bibliografía

Audersirk, T., y G. Audersirk. 1996. Biología 3. Unidad en la Diversidad. Cuarta

Edición. Prentice Hall.

Purves, W. K., G. H. Orians, H. C. Heller, y D. Sadava. 1997. Life. The Science

of Biology. Fifth Edition. Sinauer Associates, Inc W. H. Freeman and Company.

3

Romer, A. S., y T. Parsons. 1981. Anatomía Comparada. Quinta Edición.

Interamericana. México. D. F.

Vander, A. J., Sherman, J. H., y D. S. Luciano, D. 1995. Human Physiology.

McGraw Hill Book, Co. N. Y.

Resultados

Esquematice los cortes (transversal) de los ejemplares proporcionados.

Ejemplar 1.- Ejemplar 2.- Ejemplar 3.-

Tipo de cavidad: Tipo de cavidad: Tipo de cavidad:

Cuestionario

1.- ¿Cómo es la tendencia en las cavidades corporales en los animales?

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2.- ¿Por qué los gusanos redondos presentan un pseudocele y no un celoma

verdadero?

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4

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3.- ¿En qué fase del desarrollo embrionario se da la formación de las cavidades

corporales?

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4.- Investigue y llene el cuadro siguiente

Phylum Esquema Tipo de cavidad y

características

Porifera

Equinodermata

5

Conclusiones

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Bibliografía consultada

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PRÁCTICA 2. DIRECCIÓN, PLANOS CORPORALES Y SIMETRÍA

EN EL REINO ANIMAL

Introducción

Los seres vivos se deben entender mediante formas sencillas a complejas,

como son los niveles de organización de las estructuras, primero a nivel

molecular, celular, tisular, orgánico, sistémico hasta el organismo. Los phyla

animales muestran una tendencia al incremento en la organización celular.

Los nombres para denotar dirección (anterior, posterior, dorsal y ventral) se

aplican a casi todos los vertebrados, el hombre es la excepción, debido a su

posición erguida, la cabeza y la cola están arriba y abajo, y no adelante y atrás,

y se llaman superior e inferior, y no anterior y posterior, podría decirse “craneal”

y “caudal”.

Los organismos del reino animal se caracterizan por presentar planos de

referencia, como lo son el coronal o frontal, el transverso y el medio sagital. Un

aspecto fundamental del plano corporal de un animal es su forma en general,

descrita como simetría. Un animal simétrico puede dividirse por lo menos una

vez en el plano en formas especulares o similares. Los animales que no tienen

plano de simetría se les conoce como asimétrico. La forma más sencilla es la

simetría esférica. La simetría radial tiene un eje axial principal donde sus partes

corporales se arreglan. En los animales con simetría bilateral, se pueden

dividir en imágenes especulares sólo por el plano que pasa por su cuerpo.

Con el transcurso del tiempo los animales han evolucionado y han adquirido

formas más complejas.

Objetivos

El alumno conocerá los conceptos de dirección y planos en animales.

El alumno se familiarizará con los conceptos de simetría.

Diferenciará los tipos de simetría mediante cortes.

Materiales

Especímenes biológicos preservados de diferentes grupos.

7

Esquemas de animales.

Charola de disección.

Estuche de disección.

Papel secante.

Procedimiento 1.- Dirección

1.- Observe los organismos animales proporcionados por el instructor.

2.- Observe los esquemas sobre dirección.

3.- Identifique la dirección en los organismos proporcionados.

4.- Haga el ejercicio con su compañero de equipo e identifique las direcciones

de posición.

8

Procedimiento 2.- Planos corporales

1.- Observe el esquema proporcionado y determine sus planos: coronal o frontal,

el transverso y el medio sagital.

2.- Observe el cuerpo de su compañero de equipo, y defina los planos de

referencia. Haga el esquema y señale los planos.

Procedimiento 3.- Simetría

1.- Observe con detenimiento cada uno de los especímenes proporcionados

(esponja o porífera, una hidra o cnidario y un gusano plano o platelminto).

2.- Observe los esquemas proporcionados sobre los tipos de simetría de estos

especímenes.

3.- Haga modelos de plastilina de estos especímenes, y trate de hacer cortes.

4.- Haga cortes de los especímenes biológicos proporcionados, tratando de

obtener imágenes especulares.

Bibliografía



9



Romer, A. S., y T. Parsons. 1981. Anatomía Comparada. Quinta Edición.

Interamericana. México. D. F.

Vander, A. J., Sherman, J. H., y D. S. Luciano. 1995. Human Physiology.

McGraw Hill Book, Co. N. Y.

Resultados

Planos corporales. Haga el esquema y señale los planos.

10

Simetría. Registre los cortes mediante los esquemas, tanto para los

proporcionados como los elaborados con plastilina.

Esponja Cnidario Platelminto

Ejemplar:

Ejemplar:

Ejemplar:

Plastilina:

Plastilina:

Plastilina:

11

Investigue y realice un esquema de los Fila de invertebrados del reino animal

indicados.

Filum Dirección Tipo de simetría Planos

corporales

Cnidaria

Anélidos

Equinodermata

Cuestionario

1.- ¿Cual es la importancia de conocer los la dirección, planos corporales y el

tipo de simetría animal?

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2.- ¿Como son las tendencias en la simetría y cefalización corporal?

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Conclusiones

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PRÁCTICA 3. INVERTEBRADOS DEL REINO ANIMAL

Introducción

En general los miembros del reino animal son multicelulares; sus células

carecen de pared celular y forman tejidos, estos órganos y luego sistemas. Son

heterótrofos. Son diploides y se reproducen sexual y asexualmente. Casi todos

pueden percibir y responder rápidamente a los estímulos del medio y son

móviles en alguna etapa de su vida. Los ciclos de vida incluyen un periodo de

desarrollo embrionario. La mayoría son móviles, al menos en una parte de su

vida.

Los animales se clasifican en tres subreinos: el Parazoa, incluye al phylum

Porifera; el Mesozoa con el phylum Mesozoa y el Eumetazoa que se subdivide

en animales con simetría radial (Cnidaria y Ctenófora), y los de simetría bilateral

con 28 phyla, agrupados de acuerdo a las cavidades corporales.

Objetivos

El alumno conocerá los principales phyla de invertebrados del reino animal.

Describirá los invertebrados del reino animal proporcionados.

Materiales

1.- Material biológico preservado y etiquetado con un número.

2.- Estereoscopios.

Procedimiento

1.- Observe y maneje cuidadosamente el material biológico proporcionado.

2.- Seleccione cinco ejemplares de diferente phylum y haga un dibujo de cada

uno en la tabla.

3.- Describa cada uno de los ejemplares proporcionados.

Nota: el material biológico proporcionado debe manejarse con cuidado, para no

dañar algunas estructuras delicadas.

Bibliografía



14



Curtis, H., y N. S. Barnes. 1989. Biology. Fifth Edition. Worth Publishers, Inc.

Resultados

Esquema Simetría Características generales

Phylum 1:

Phylum 2:

Phylum 3:

Phylum 4:

Phylum 5:

15

Cuestionario

1.- Mencione tres características únicas de las especies del reino animal.

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________________________________________________________________

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2.- Liste el mayor número de phyla comprendidos en el reino animal.

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3.- ¿Cuál es el Phylum que le parece más interesante y porque?

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Conclusiones

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PRÁCTICA 4. TEJIDO EPITELIAL GLANDULAR ENDOCRINO

Introducción

Los tejidos glandulares son derivación o modificación de los tejidos epiteliales,

los cuales han seguido diferenciándose. Los tejidos glandulares se encargan de

la secreción de hormonas, por un proceso mediante el cual ciertas células toman

moléculas del medio que les rodea, la transforman en producto hormonales y

luego lo descargan dentro del sistema de conductos (glándulas exocrinas) o

directo al sistema circulatorio (glándulas endocrinas). Las acciones hormonales

se han estudiado en un número limitado de especies de invertebrados,

particularmente en los que tienen sistemas accesibles, por ejemplo los insectos.

Objetivos

El alumno identificará algunos tipos de tejido epitelial glandular endocrino.

Investigará las características de los epitelios.

Materiales

Microscopio

Laminillas de epitelio glandular endocrino (ovario, testículos) de insectos

Laminillas preparadas de glándula protorácica de insectos.

Procedimiento

1. Con el objetivo de menor magnificación al objetivo de 40X, observe las

laminillas proporcionadas.

2. Identifique el tipo de tejido presente.

Bibliografía

Van De Graaff, K. M., y J. L. Crawley. 1996. A Photographic Atlas for the

Anatomy & Physiology Laboratory. 3 ed. Morton Publishing Company.

Vogel G., y H. Angermann. 1979. Atlas de Biología. Ediciones Omega S. A.

Barcelona.

18

Resultados

1.- Haga un esquema de lo observado con el objetivo 40X, señale el tejido

glandular presente.

Ovario Testículo

Glándula Protorácica

2. - Llene con la información correspondiente el siguiente cuadro:

TIPOS DE EPITELIO GLANDULAR

CARACTERÍSTICAS FUNCIÓN LOCALIZACIÓN

19

Ovario

Testículo

Glándula pro torácica

Cuestionario

Describa el proceso de activación de la glándula pro torácica y la participación

de ésta en la muda de insectos.

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Conclusiones

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21

PRÁCTICA 5. TEJIDO CONECTIVO, SANGRE DE

INVERTEBRADOS

Introducción

El sistema circulatorio está conformado por células, órganos, fluídos y tejidos

asociados con el movimiento y transporte de materiales dentro del cuerpo, con

excepción de tubo digestivo, órganos excretores y otros tubos especializados

que están involucrados en la entrada y salida de sustancias.

El sistema circulatorio de los insectos es abierto y tiene un hemocele extenso. El

corazón es cerrado en su parte posterior y posee de uno a 13 pares de ostiolos

por los cuales entra la sangre. El hemocele está dividido en cavidades o senos

que afectan el patrón de circulación. La sangre contiene al menos siete

diferentes tipos de células que funcionan en la coagulación y reparación de

heridas. Los crustáceos también tienen un sistema circulatorio abierto o laguna,

no hay venas, el fluido (hemolinfa-sangre) abandona el corazón a través de las

arterias, circula por el hemocele y regresa a los senos venosos antes de entrar

de nuevo al corazón. El corazón es el órgano propulsor principal y está situado

dorsalmente. En algunos crustáceos hay corazones accesorios localizados en la

base de los apéndices o a lo largo de las arterias. La sangre es incolora y tiene

uno o varios pigmentos respiratorios disueltos en el plasma: hemoglobina y

hemocianina.

Objetivos

El alumno identificará los componentes de la sangre de un insecto y un

crustáceo.

Comparará los elementos de ambos grupos de invertebrados.

Materiales

Microscopio (1 por equipo de dos o tres alumnos).

Laminillas preparadas sobre las células sanguíneas de invertebrados

insectos (saltamonte y/o grillo) y crustáceos (langostino).

22

Procedimiento

Observación de laminillas preparadas.

1.- Observe las laminillas proporcionadas (hemolinfa de insecto y de crustáceo).

2.- Identifique los componentes celulares.

3.- Compare los componentes de ambas laminillas.

Bibliografía

Audesirk, T., y G., Audesirk. 1996. Biología 2. Anatomía y Fisiología Animal.

Cuarta edición. Prentice Hall y A. Simon. Schuster Company.

Lira, I. E., E. Montoya y M. Cuevas. 1992. Estructura y Función de los

Organismos Vivos. De Protozoarios a Cordados. Editorial Trillas.

Ruiz-Uribe, A. J., G. Aguirre-Guzmán, y V. A. Urbina-González. 2007. Citospin,

una alternativa para el estudio y caracterización morfológica de hemocitos de

camarones peneidos (Crustacea: Decapoda). Ciencia y Mar. 11(31): 33-38.

Resultados

1.- Haga un dibujo de cada uno de los componentes celulares, trate de identificar

por lo menos tres de los diferentes hemocitos (granulares, semi-granulares,

hialinos, prohemocitos, plasmatocitos, esferulocitos, oenoitoides y

adipohemocitos).

Invertebrado insecto

Célula: Célula: Célula:

23

Invertebrado crustáceo

Célula: Célula: Célula:

Cuestionario

1.- ¿Cual es la función de los hemocitos?

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2.- Investigue ¿donde se origina la hemolinfa?

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3.- ¿Cuando ocurre la formación de células sanguíneas?

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Conclusiones

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PRÁCTICA 6. TEJIDO MUSCULAR

Introducción

La unidad celular funcional del tejido muscular es la miofibrilla, que sintetiza y

conserva un grupo de proteínas responsables de la actividad contráctil. Tres

categorías de tejidos se reconocen de acuerdo a su función y estructura: el

esquelético, cardiaco y liso. Los dos primeros se conocen como estriado, debido

a la disposición de sus filamentos en forma de bandas. El músculo esquelético,

es de control voluntario, mientras que el cardiaco no. El músculo liso no presenta

estrías y resulta en una forma desordenada de filamentos de proteína contráctil,

forma las paredes de las vísceras y no está bajo el control de la voluntad.

Objetivos

El alumno conocerá los tres tipos de tejido muscular.

Distinguirá las características principales de los tres tipos de tejidos musculares.

Materiales

Microscopio

Laminillas:

1. Tejido muscular estriado de pie de molusco,

2. Tejido cardiaco molusco.

3. Tejido muscular liso de intestino de gasterópodo.

Procedimiento

1.- Con el objetivo de menor magnificación al objetivo de 40X, observe las


2.- Identifique el tipo de tejido presente.

26

Bibliografía

Audesirk, T., y G. Audesirk. 1998. Biología 3.Evolución y Ecología. Cuarta

edición. Prentice-Hall Hispanoamericana, S. A.

Starr C., y R. Taggart. 1989. Biology. The Unit and Diversity of Life. 5 ed.

Wadsworth Publishing Company, CA.


Barcelona.

Resultados

Esquemas de tejidos con base a la técnica.

Tejidos

Técnicas

Tricrómica de Gallego H-E

Liso

Cardiaco

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Estriado

voluntario

Esquema que muestra la composición de un sarcómero.

Sarcómero

Cuestionario

1.- Defina qué es un sarcomero

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2.- ¿Es igual la estructura y función del sistema muscular en vertebrados como

en invertebrados?

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Conclusiones

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PRÁCTICA 7. TEJIDO NERVIOSO

Introducción

La irritabilidad y conductividad son las propiedades fisiológicas de la unidad

celular y funcional del sistema nervioso: la neurona. Está compuesta de tres

partes integrales: el cuerpo de la célula nerviosa (pericarion), las dendritas y un

axón único que conduce impulsos en sentido distal del pericarion. Las neuronas

hacen contacto unas con otras en putos específicos llamados sinapsis. Las

colecciones de neuronas, comunicándose unas con otras en las sinapsis, son

los elementos clave de la estructura y funcionamiento de todos los sistemas

nerviosos.

Objetivos

El alumno conocerá las células del tejido nervioso.

Investigará sus funciones.

Materiales

Microscopio

Laminillas:

1. Cerebro y cordón nervioso de pulpo.

2. Cerebro de insecto.

3. Ganglio torácico insecto.

Procedimiento

1. Con el objetivo de menor magnificación al objetivo 40X observe las


2. Identifique el tejido presente.

30

Bibliografía

Audesirk, T., y G. Audesirk. 1996. Biología 2. Anatomía y Fisiología Animal.

Cuarta edición. Prentice Hall y A. Simon. Schuster Company.




Barcelona.

Resultados

1. Haga un esquema de lo observado con el objetivo 40X 2.

Pulpo Insecto

Cerebro Cordón nervioso Cerebro Ganglio torácico

31

3. Llene los cuadros siguientes:

Características Función

Pulpos

Cerebro

Cordón nervioso

Características Función

Insectos

Cerebro

Ganglio

32

Cuestionario

1.- Explique el mecanismo por el cual se da la transmisión de señales nerviosas

entre neuronas.

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2. ¿En cuales procesos se pierden las neuronas?

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3. ¿Se recuperan las neuronas perdidas?

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Conclusiones

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34

PRÁCTICA 8. SISTEMA TEGUMENTARIO DE ALGUNOS

INVERTEBRADOS

Introducción

El sistema tegumentario cumple varias funciones en los diferentes phylla del

reino animal, como es el caso de protección contra la desecación, contención,

constitución, soporte, así como defensa.

En los anélidos, la epidermis está formada por un epitelio columnar, entre las

células d este epitelio hay glándulas secretoras de moco, que en las especies

terrestre permite mantener la humedad a nivel de la epidermis, lo cual, facilita el

intercambio gaseoso y evita la desecación. También existen células epidérmicas

que a nivel de folículos epidérmicos, se llaman sacos setales que secretan las

setas, estas estructuras auxilian en el movimiento ya que brindan apoyo durante

la locomoción.

En los artrópodos el sistema tegumentario se encuentra constituido por una

secreción de las células epidérmicas y conforma la cutícula o exoesqueleto. El

exoesqueleto es una cubierta protectora que cubre al cuerpo entero y a todos los

apéndices. El exoesqueleto forma parte del integumento, el cual esta formado

por la cutícula y por una epidermis interna que secreta la cutícula y a la

membrana basal, sobre la que reposa la epidermis. La cutícula tiene valor

adaptativo inmenso, proporciona una gran protección y resistencia. Es un

complejo acelular orgánico, y es secretado por la epidermis, químicamente

constituido por la quitina y proteínas.

En los equinodermos básicamente el esqueleto está constituido por oscículos de

carbonato de calcio y carbonato de magnesio. Estas placas se encentran unidas

por fibras de tejido conectivo que constituyen el dermatoesqueleto.Objetivos

Que el alumno conozca las estructuras, origen y función del sistema

tegumentario de algunos invertebrados.

35

Materiales

Biológicos:

Una lombriz de tierra.

Un grillo, un langostino, un alacrán.

Una estrella de mar y/o un erizo de mar.


Una caja de petri de vidrio.

Un pliego de papel secante.

Un estereoscopio.

Procedimiento

Parte A.- Filum Anelida

A.1.- Sobre papel secante ponga un ejemplar de lombriz de tierra en una charola

de disección. Examine en el estereoscopio.

A.2.- Observe su movimiento por un minuto.

A.3.- Localice la parte anterior y posterior del ejemplar.

A.4.- Pase su dedo sobre la superficie dorsal y ventral desde la parte anterior a

la posterior. Registre sus resultados.

Parte B Filum Artrópoda

B.1.- Observe bajo el estereoscopio tres artrópodos.

B.2.- Identifique los segmentos de cabeza, tórax y abdomen en el grillo. Para el

langostino identifique el caparazón, rostrum, telson, primeros pares de patas y

siguientes, así como las nadadoras. Y para el alacrán, ubique los pedipalpos,

queliceros, telson, pleura y patas 3, 4, 5 y 6.

B.3.- Identifique el sistema tegumentario, registre lo que observa.

36

Parte C Filum Equinodermata

C1.- Observe bajo estereoscopio los ejemplares de estrellas de mar y erizos

proporcionados.

C2.- Compare las estructuras externas de ambos y registre sus resultados

C3.- Recuerde de limpiar su área de trabajo al finalizar y descartar el material

biológico como lo indica el instructor.

Bibliografía






Barcelona.

Resultados

1.- Anelida. Haga un esquema del ejemplar, refiriendo las estructuras

tegumentarias.

37

2.- Artrópoda. Haga un esquema de cada uno de los ejemplares, indique sus estructuras externas.

3.- Artrópoda. Haga un esquema con las características básicas de la cutícula

de un artrópodo, que incluya las principales divisiones: epicutícula, procutícula,

epidermis, exocutícula, endocutícula, glándulas diversas y células epidérmicas.

Artrópodo 1: Artrópodo 2: Artrópodo 3:

38

4.- Equinodermata. Llene el cuadro siguiente:

Características Asteroideo (estrella de mar) Equinoideo (erizo de mar)

Esquema general

Presencia de espinas

Presencia de pedicelarios

Posición de madreporito

Presencia de pies

ambulacrales

Presencia de surco ambulacral

Presencia y posición de boca

Presencia y posición de ano

Cuestionario

Preguntas Anelida

1.- ¿Describa que es lo que siente y que estructuras identifica??

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________________________________________________________________

39

2.- ¿Como es la disposición de las estructuras identificadas?

________________________________________________________________

________________________________________________________________

________________________________________________________________

3.- ¿Cual es la función de estas estructuras?

________________________________________________________________

________________________________________________________________

________________________________________________________________

4.- ¿Cual es su origen?

________________________________________________________________

________________________________________________________________

________________________________________________________________

Preguntas Artrópoda

1.- ¿Que estructuras del sistema tegumentario identifica y cual es su función?

________________________________________________________________

________________________________________________________________

________________________________________________________________

________________________________________________________________

2.- ¿Que colores detecta y a que se deben?

________________________________________________________________

________________________________________________________________

________________________________________________________________

3.- ¿Cuáles son los constituyentes principales de las partes duras de los

artrópodos?

________________________________________________________________

________________________________________________________________

40

4.- Mencione los orígenes embrionarios del sistema tegumentario en

artrópodos.

________________________________________________________________

________________________________________________________________

________________________________________________________________

________________________________________________________________

5.- ¿Porque son considerados los artrópodos, particularmente los insectos el

alimento del futuro?

________________________________________________________________

________________________________________________________________

________________________________________________________________

________________________________________________________________

________________________________________________________________

Preguntas Equinodermata

1.- ¿Qué son y cuál es la función de las espinas?

________________________________________________________________

________________________________________________________________

________________________________________________________________

2.- ¿De que está constituido el endoesqueleto de un equinodermo?

________________________________________________________________

________________________________________________________________

________________________________________________________________

3.- ¿Cuál es la función de los pies ambulacrales?

________________________________________________________________

________________________________________________________________

________________________________________________________________

41

Conclusiones

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________________________________________________________________

________________________________________________________________

________________________________________________________________

________________________________________________________________

________________________________________________________________


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________________________________________________________________

________________________________________________________________

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________________________________________________________________

42

PRÁCTICA 9. SISTEMA TEGUMENTARIO ALACRANES

Introducción

En los artrópodos el sistema tegumentario se encuentra constituido por una

secreción de las células epidérmicas y conforma la cutícula o exoesqueleto. El

exoesqueleto es una cubierta protectora que cubre al cuerpo entero y a todos los

apéndices. El exoesqueleto forma parte del integumento, el cual está formado

por la cutícula y por una epidermis interna que secreta la cutícula y a la

membrana basal, sobre la que reposa la epidermis. La cutícula tiene valor

adaptativo inmenso, proporciona una gran protección y resistencia. Es un

complejo acelular orgánico, y es secretado por la epidermis, químicamente

constituido por la quitina y proteínas.

Los escorpiones o alacranes (Scorpiones o Scorpionida) son un orden de

arácnidos con un par de apéndices conocidos como pedipalpos y una cola

provista de un aguijón. En alacranes, la cutícula brilla bajo radiación ultravioleta.

Además se estimulan bajo beta-Carboline y 7-Hidroxi-4-methilcoumarin.

Con ayuda de lámparas de luz ultravioleta, fluorescente o de luz negra puede

localizárselos fácilmente en la oscuridad, incluso tras el fallecimiento del animal.

Objetivos

Que el alumno conozca las características de la cutícula del alacrán y su

función.

Materiales

Un estereoscopio.

Alacranes preservados.

Alacranes vivos en caja de seguridad adaptada con lámpara de luz negra.

NOTA: Recuerde que se trabajará con animales venenosos. Tenga cuidado y

siga las instrucciones del laboratorísta o instructor.

43

Procedimiento

A.- Actividades con ejemplar preservado:

1.- Haga un esquema del ejemplar, refiriendo las estructuras tegumentarias.

Señale los tagmas: el prosoma y el opistosoma.

B.- Actividades con ejemplar en caja de seguridad:

1.- Siga las instrucciones.

2.- Observe al interior de la caja por los orificios.

3.- Ahora apague la luz y prenda la lámpara de luz negra.

Bibliografía



Brownell, P., y G. Polis. 2001. Scorpion Biology and Research. Oxford University

Press. New York.



44

Resultados

A.- Esquema con estructuras tegumentarias. Señale los tagmas: el prosoma y el

opistosoma del ejemplar preservado.

Cuestionario

A.- Con ejemplar preservado:

1.- ¿Qué estructuras forman el prosoma?

________________________________________________________________

________________________________________________________________

________________________________________________________________

________________________________________________________________

________________________________________________________________

2.- El opistosoma se conoce también como abdomen, se compone de trece

segmentos anillares de quitina. Describa que es la quitina.

________________________________________________________________

________________________________________________________________

________________________________________________________________

________________________________________________________________

________________________________________________________________

45

3.- Investigue cuales son los componentes de la cutícula.

________________________________________________________________

________________________________________________________________

________________________________________________________________

________________________________________________________________

________________________________________________________________

________________________________________________________________

B.- Ejemplar en caja:

1.- ¿Qué es lo que observa dentro de la caja con la luz normal y con luz negra?

________________________________________________________________

________________________________________________________________

________________________________________________________________

2.- ¿A qué se debe que con la luz negra pueda observar al alacrán?

________________________________________________________________

________________________________________________________________

________________________________________________________________

3.- ¿El alacrán se ve fluorescente o fosforescente con luz negra? Explique.

________________________________________________________________

________________________________________________________________

________________________________________________________________

________________________________________________________________

Conclusiones

________________________________________________________________

________________________________________________________________

________________________________________________________________

46

________________________________________________________________

________________________________________________________________


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________________________________________________________________

________________________________________________________________

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________________________________________________________________

47

PRÁCTICA 10. SISTEMA DE SOPORTE EN PORIFERA

Introducción

El sistema de soporte proporciona protección, mantiene la forma del cuerpo y

hace posible el antagonismos de los elementos contráctiles por lo que se

encuentra íntimamente relacionado con el movimiento.

Las esponjas poseen tres tipos de células, las células epiteliales, las células en

collarete (coanocitos) y las ameboideas (arqueocitos). Las esponjas pueden

crecer mas de un metro de altura, y el apoyo del cuerpo lo da un esqueleto

interno compuesto por espículas. Las espículas son estructuras del sistema de

sostén de los miembros del Filo Porífera, tienen varias formas y le dan rigidez a

estos organismos, son de gran utilidad en la determinación taxonómica. Las

espículas son secretadas por la mesoglea, específicamente por los arqueocitos

especializados conocidos por escleroblastos. Las espículas pueden ser de

naturaleza silícea, calcárea y proteica. Pueden proyectarse al exterior y su forma

es muy variada. Existe en las esponjas una sustancia conocida como espongina

que es también secretada por los arqueocitos especializados denominados

espongioblastos y también contribuye a dar sostén al animal.

Objetivos

El alumno se familiarizará con estructuras del sistema de soporte en esponjas

del Filum Porífera.

Materiales, equipo y reactivos por equipo

Esponja.

Un bisturí.

Dos tubos de ensayo.

Una pipeta Pasteur.

Solución acuosa de ácido nítrico al 15 % (5 ml.).

48

Agua destilada (10 ml.).

Etanol al 95 % (5 ml.).

Alcohol absoluto (10 ml.).

Xileno (5 ml.).

Cuatro portaobjetos.

Cuatro cubreobjetos.

Un marcador para rotular.

Una centrífuga.

Un microscopio.

Procedimiento A.- Espículas

La obtención de espículas de esponja se realiza de la siguiente manera:

Día 1

1.- Hacer cortes finos y pequeños de la (s) muestra (s) rotulada (s).

2.- Colocarlas las porciones en tubos de ensaye rotulado.

3.- Preparar Ácido Nítrico al 15% en solución acuosa.

4.- Agregar 5 ml a cada muestra.

5.- Dejar reposar por 24 hrs.

Día 2

1.- Macerar la muestra.

2.- Agregar 10 ml de agua destilada a cada muestra.

3.- Centrifugar a 500 rpm por 5 minutos.

4.- Decantar el sobrenadante.

5.- Agregar 5 ml de etanol al 95%.

49

6.- Dejar reposar 24 horas.

Día 3



3.- Agregar alcohol absoluto al 96 % por tres horas.

4.- Decantar a las tres horas de haber agregado el alcohol.

5.- Agregar xileno (Xilol) 5ml.



8.- Tomar una muestra.

9.- Colocar en portaobjetos.

10.- Revisar las laminillas preparadas.

Procedimiento B.- Observación de espículas

1.- Del material obtenido del procedimiento anterior (tubo de ensaye con

espículas de esponjas), tomar una muestra del sedimento, adicione cinco

mililitros de alcohol y con una pipeta Pasteur, simule el movimiento de un vortex.

2.- Tome una muestra del sedimento y colóquela en un portaobjetos y encima un

cubreobjetos.

3.- Observe con el microscopio y trate de identificar diferentes tipos de

espículas. Apoye con el esquema proporcionado.

4.- Recuerde de limpiar su área de trabajo al finalizar y descartar el material


50

Bibliografía






Barcelona.

Resultados

1.- Haga un esquema de las diferentes espículas identificadas y de qué tipo son:

Espícula 1

Tipo:

Espícula 2

Tipo:

Espícula 3

Tipo:

Espícula 4

Tipo:

Espícula 5

Tipo:

Cuestionario

1.- Liste diferentes tipos de espículas.

___________________ ______________________ _________________

___________________ ______________________ _________________

___________________ ______________________ _________________

2.- ¿De que están constituídas las espículas?

________________________________________________________________

51

3.- ¿Qué utilidad tienen las espículas para la esponja?

________________________________________________________________

________________________________________________________________

________________________________________________________________

________________________________________________________________

________________________________________________________________

4.- ¿Porque son de interés taxonómico?

________________________________________________________________

________________________________________________________________

________________________________________________________________

________________________________________________________________

_____________________________________________________________

Conclusiones

________________________________________________________________

________________________________________________________________

________________________________________________________________

________________________________________________________________

________________________________________________________________


________________________________________________________________

________________________________________________________________

________________________________________________________________

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52

PRÁCTICA 11. SISTEMA MUSCULAR EN LOMBRIZ DE TIERRA

Introducción

Las lombrices de tierra son anélidos de cuerpo cilíndrico compuesto de anillos, a

cada segmentación externa corresponde una interna, excepto en el lóbulo

cefálico, que presenta una estructura particular, todos los segmentos o

metámeros tienen una constitución general idéntica, lo que se llama

segmentación homónima.

El tubo digestivo es rectilíneo, atraviesa todo el cuerpo, la abertura bucal está

situada en la cara ventral de la cabeza, y el ano en el último anillo. El espacio

entre la túnica muscular y el tubo digestivo es una cavidad secundaria conocida

como celoma. En anélidos aparece por primera vez un aparato circulatorio, con

las siguientes estructuras: un vaso dorsal y uno ventral. Cada segmento

presenta un par de metanefridios como estructuras del sistema excretor.

Haces de musculatura lisa constituyen, junto con la epidermis, una túnica

muscular no segmentada.

Objetivos

El alumno se familiarizará con el sistema muscular en lombriz de tierra.

Identificará estructuras internas en un corte transversal de lombriz de tierra.

Materiales

Laminilla preparada de un corte transversal de lombriz de tierra.

Microscopio.

Procedimiento

1.- Observe con el microscopio una laminilla preparada de corte transversal de

lombriz de tierra.

2.- Utilice pequeña a mayor magnificación.

53

3.- Observe e identifique las estructuras como cutícula, vasos sanguíneo,

intestino, cordón nervioso ventral, setas, metanefridios y el celoma.

4.- Observe el músculo presente.

Bibliografía



Hummer, P. J. Jr., A. Kaskel, J. E. Kennedy y R. F. Oram. 1979. Probing Levels

of Life. A Laboratory Manual. Charles E. Merrill Publishing Co.


Barcelona.

Resultados

Haga un esquema del corte transversal e identifique los tipos de músculo

existente en la lombriz.

54

Cuestionario

1.- ¿Qué tipos de músculo identifica?

________________________________________________________________

________________________________________________________________

________________________________________________________________

2.- ¿Cual es su función?

________________________________________________________________

________________________________________________________________

________________________________________________________________

________________________________________________________________

________________________________________________________________

________________________________________________________________

Conclusiones

________________________________________________________________

________________________________________________________________

________________________________________________________________

________________________________________________________________


________________________________________________________________

________________________________________________________________

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55

PRÁCTICA 12. CONDUCTA FOTOTÁXICA EN ANIMALES

INVERTEBRADOS

Introducción

De acuerdo a la ciencia del comportamiento, sólo se debe dar el nombre de taxis

al movimiento de orientación rápida hacia una nueva dirección, con exclusión del

desplazamiento, de manera que un movimiento orientado puede comprender

numerosos taxis (cambios de orientación).

Los animales multicelulares exhiben una conducta innata y aprendida. La

primera se define como una conducta heredada donde no se requiere

experiencia previa, la segunda depende de la experiencia diaria y no es

heredada.

Los patrones de conducta adaptativa específica pueden adaptarse, y pueden

auxiliar al organismo en la reproducción y sobrevivencia del mismo.

El grado de respuesta a un estimulo depende de la fuerza del estimulo y la

condición y experiencia pasada del organismo.

La mayoría de los animales multicelulares tiene un sistema nervioso definido. El

sistema nervioso con el sistema endocrino controla la conducta. Los animales

multicelulares tienen células especializadas, llamadas receptores que detectan

el estimulo, así como efectores que son células que responden al estimulo. El

ojo de un animal contiene receptores que perciben la luz, los músculos son los

efectores que mueven a los organismos hacia o fuera de la luz.

Objetivos

Observar, analizar y comparar la conducta fototaxica de algunos organismos

multicelulares.

Materiales

Lámpara de mano.

56

Caja de cartón.

Dos piezas de papel filtro.

Masking tape.

Tijeras.

Cartoncillo (20 cm. X 27 cm.).

Cuatro cartoncillos (4 cm. X 4cm).

Pliegues de 3 cm. X 3cm de papel celofán (rojo, verde, amarillo y azul).

Material biológico:

Dapnia sp.

Artemia salina.

Cochinillas (Isópodos).

Lombrices.

Procedimiento

1.- Construya un cono con el cartoncillo grande para que quede como la figura 1

57

2.- Construya cuatro filtros utilizando los cartoncillos pequeños y el de los

diferentes pliegues de celofán (figura 2).

3.- Construya con la caja de cartón una caja de luz restringida (figura 3).

58

4.- Realice el siguiente procedimiento para cada uno de los animales

multicelulares.

a) Daphnia: Coloque en la caja de cultivo de 15 a 20 Daphnias en su

mesa de laboratorio. Coloque encima la caja de luz restringida, permita que los

animales se adapten por dos minutos. Direccione la luz de la lámpara por el

orificio central de 3cm X 3cm al centro del cultivo por tres minutos. Observe el

cultivo por el orificio lateral.

Repita el ejercicio, ahora utilizando los cuatro filtros, uno a la vez por tres

minutos.

b) Artemia salina: repita el ejercicio.

c) Cochinillas: Coloque papel filtro húmedo en una caja petri y dos

cochinillas. Coloque encima la caja de luz restringida y siga el procedimiento

anterior.

d) Lombrices: Coloque dos lombrices en una caja petri con papel filtro

húmedo. Coloque la caja de luz restringida, permita que se adapten los

ejemplares por dos minutos. Incida la luz sin filtro en los primeros cuatro

segmentos por tres minutos, después con los filtros de color. Repita el

procedimiento ahora en la porción del clitelo y los últimos cuatro segmentos de

la lombriz.



Bibliografía


of Life.

A Laboratory Manual. Charles E. Merrill Publishing Co.

59




Barcelona.

Resultados

Registre sus resultados en el cuadro siguiente.

ESPECIMEN

Sin filtro

Filtro

Rojo Amarillo Verde Azul

Daphnia

Artemia

salina

Cochinillas

Lombriz

60

Cuestionario

¿Cual organismo respondió positivamente a la luz sin filtro?

________________________________________________________________

________________________________________________________________

________________________________________________________________

¿Cual organismo respondió negativamente a la luz sin filtro?

________________________________________________________________

________________________________________________________________

________________________________________________________________

¿Qué tiene que ver esta reacción con la sobrevivencia del organismo en el

ambiente?

________________________________________________________________

________________________________________________________________

________________________________________________________________

________________________________________________________________

________________________________________________________________

¿Los organismos que respondieron a la luz sin filtro, respondieron también a la

de filtro?

________________________________________________________________

________________________________________________________________

________________________________________________________________

¿Concuerda la respuesta con los compañeros del grupo? Explique.

________________________________________________________________

________________________________________________________________

61

________________________________________________________________

________________________________________________________________

¿Habrá algún otro estimulo fuera de la luz que pueda estar causando sesgo en

el resultado?

________________________________________________________________

________________________________________________________________

________________________________________________________________

________________________________________________________________

¿Qué otro tipo de taxis hay?

________________________________________________________________

________________________________________________________________

________________________________________________________________

________________________________________________________________

Conclusiones

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________________________________________________________________

________________________________________________________________

________________________________________________________________

________________________________________________________________

________________________________________________________________


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________________________________________________________________

________________________________________________________________

62

________________________________________________________________

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63

PRÁCTICA 13. SISTEMA RESPIRATORIO EN ARTRÓPODOS

Introducción

El intercambio de gases para el aporta el oxígeno a los músculos que permiten

el vuelo, la natación y el desplazamiento rápido en artrópodos debe ser eficiente.

En formas acuáticas como en crustáceos es por medio de branquias como se

lleva a cabo el intercambio gaseoso, donde se expone al agua una amplia

superficie de tejido lleno de vasos sanguíneos.

En ambientes terrestres, el efecto deshidratante de las superficies húmedas y

delicadas son protegidas al estar dentro del animal, permitiendo el paso del aire

por una pequeña abertura para disminuir la evaporación. La ventilación se

facilita por la abertura y cierre de los espiráculos.

La tráquea interna en insectos, son redes ramificadas que permiten acercar el

aire a las células.

En algunas arañas existe el libro pulmonar que semeja una branquia interna.

Objetivos

El alumno conocerá algunas estructuras respiratorias en artrópodos.

Materiales

Pecera.

Tinta India.

Un estereoscopio.



Lamina de sistema respiratorio de arácnidos.

Material biológico:

Un langostino, una cucaracha.

64

Procedimientos

A.- Crustáceo (langostino):

1.- Obtenga un langostino de río y colóquelo en un recipiente de agua de río,

permita la aclimatación del animal del acuario.

2.- Observe los movimientos de nado, desplazamiento y respiración del animal

dentro del acuario.

3.- Observe la corriente respiratoria del langostino en el recipiente de agua.

4.- Adicione tres gotas de colorante (India) y observe el flujo de las partículas en

la corriente respiratoria.

5.- Recuerde limpiar su área de trabajo al finalizar.

B.- Insecto (cucaracha):

1.- Obtenga tejido muscular de una cucaracha.

2.- Póngalo en un portaobjetos y vierta una gota de agua, macere el tejido con

una aguja de disección.

3.- Coloque un cubreobjetos sobre el material tisular macerado.

4.- Examine la preparación de tejido.

C.- Arácnidos:

1.- Obtenga esquemas del sistema respiratorio de arácnidos.

2.- Haga una comparación.

Bibliografía



Boolootian R. A., y D. Heyneman. 1975. An Ilustrated Laboratory Text in

Zoology. 3 ed. Holt, Rinehart and Winston. N. Y.

65

Resultados

A Dibuje el langostino y señale las extremidades.

B.- Artrópodo (cucaracha).

1.- ¿Dibuje lo que observa en la laminilla que preparó del tejido de cucaracha?

66

C.- Arácnidos 1.- Haga un esquema de los tipos de sistema respiratorio.

Arácnido 1: Arácnido 2:

Cuestionario

A.- Crustáceo (langostino).

1.- ¿Que extremidades están relacionadas con cada movimiento?

Nado____________________________________________________________

________________________________________________________________

Desplazamiento___________________________________________________

________________________________________________________________

Respiración_______________________________________________________

_______________________________________________________________

2.- ¿Cómo es el flujo de partículas en la corriente de respiración?

________________________________________________________________

________________________________________________________________

________________________________________________________________

________________________________________________________________

________________________________________________________________

67

B Artrópodos (cucaracha)

1.- ¿Cual es la función de las ramificaciones branquiales?

________________________________________________________________

________________________________________________________________

________________________________________________________________

C Arácnidos

1.- Como funciona el sistema respiratorio en arañas.

________________________________________________________________

________________________________________________________________

________________________________________________________________

________________________________________________________________

________________________________________________________________

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Conclusiones

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68

PRÁCTICA 14. SISTEMA CIRCULATORIO EN ANÉLIDOS

Introducción

El sistema circulatorio de los anélidos es cerrado y la sangre está contenida en

los vasos, sobre el tubo digestivo se encuentra un vaso dorsal que corre a todo

lo largo del cuerpo, éste es contráctil y mueve la sangre hacia adelante. Cerca

de la parte anterior, el vaso está conectado con el vaso ventral, por uno o varios

pares de vasos comisurales y por una red de pequeños vasos más pequeños

que están colocados a los lados del intestino. El vaso ventral mueve la sangre

hacia atrás y en cada segmento se originan vasos pareados que irrigan la pared

del cuerpo, los órganos excretores y el tubo digestivo, después de pasar por

capilares los vasos laterales e intestinales de cada segmento, se conectan con

el vaso dorsal.

La sangre de los anélidos contiene pigmentos respiratorios disueltos en el

plasma como eritruocrorina, clorocruorina y hemeritrina. Los únicos

componentes celulares son amebocitos fagocíticos incoloros.

Particularmente en Lumbricus existen vasos longitudinales adicionales

asociados con el cordón nervioso, parte de la sangre recién oxigenada es

enviada a través de los vasos que rodean el cordón nervioso a los vasos

parietales que desembocan en el vaso dorsal.

Objetivos

Identificar los componentes del sistema circulatorio en Lumbricus terrestris.

Materiales

Material biológico

Tres Lumbricus terrestris



69

Cloroformo (25 ml.).


Papel secante.

Procedimiento

1.- Anestesié una lombriz de tierra Lumbricus terrestris al sumergirla al agua o al

colocarla en un papel secante saturado con cloroformo.

2.- Identifique las estructuras como boca, segmentos, clitelo, prostomio y ano.

3.- Coloque el ejemplar en posición dorsal hacia arriba, si es necesario,

sumérgala en agua para realizar la disección.

4.- Haga una incisión somera a unos cinco segmentos posteriores al clitelum.

5.- Realice un corte somero continuo hacia la derecha de la pared media dorsal,

ahora continué hacia la parte anterior del animal. No corte más allá del grosor de

la pared corporal. Con un bisturí corte, separe y elimine tejido.

6.- Identifique el esófago, buche, molleja, intestino, los arcos aórticos (corazones),

el vaso lateral esofágico, vaso intestinal y vasos de la cavidad lateral.



Bibliografía



Boolootian R. A., y D. Heyneman. 1975. An Ilustrated Laboratory Text in

Zoology. 3 ed. Holt, Rinehart and Winston. N. Y.



70

Resultados

1.- Haga un esquema e ilustre lo que observó en la disección general.

2.- Haga un esquema que represente el flujo sanguíneo en Lumbricus.

Cuestionario

1.- ¿A qué se refiere un sistema circulatorio cerrado?

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2.- ¿Cuantos corazones tiene la lombriz?

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3.- Comente sobre la disección del ejemplar.

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Conclusiones

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72

PRÁCTICA 15. INGESTIÓN Y DIGESTIÓN EN PLANARIA

Introducción

Los platelmintos son conocidos por gusanos planos, son los más sencillos que

presentan simetría bilateral y son acelomados. Agrupan a tres Clases, la

Turbelaria, Trematoda y Cestoda. Las planarias son de la Clase Turbelaria.

En los platelmintos aparece un tubo digestivo, el cual es incompleto por carecer

de ano, además de otras limitaciones, como la digestión intracelular. El intestino

propiamente dicho, acaba en un saco ciego. El intestino puede dividirse en tres

ramas (triclados) o más (policlados), y llega a todas partes del cuerpo,

asegurando una distribución directa de las substancias nutritivas por la falta de

un sistema sanguíneo. La faringe a menudo puede alargarse como una trompa,

la abertura bucal está generalmente en la cara ventral.

Las planarias son carnívoras, pueden localizar el alimento e ingerirlo. Pueden

alimentarse de organismos vivos, muertos o en proceso de degradación. El

alimento es ingerido por la faringe. Las células que recubren el intestino pueden

ingerir pequeñas partículas de tejido y químicamente digerirlas.

Objetivos

El alumno localizara los órganos de ingestión y digestión de una planaria.

Describirá el proceso de ingestión y digestión de una planaria.

Materiales

Material biológico

Cultivo de planaria

Pieza de hígado

Gotero

Vidrio de reloj y bisturí.

73

Procedimiento

1.- Con un gotero transfiera una planaria a un vidrio de reloj.

2.- Adicione agua al vidrio de reloj para que la planaria se deslice.

3.- Observe la planaria con el estereoscopio, e identifique la boca, la faringe y

los intestinos.

4.- Con el bisturí corte la pieza de hígado y haga trozos más pequeños. Adicione

porciones cerca de la planaria.

5.- Observe y registre lo observado, coloque una regla cerca.

6.- Después de 30 minutos de alimentarse. Examine los intestinos, registre los

cambios en forma y color.



Bibliografía





Barcelona.

Resultados

1.- Haga un esquema antes y después de alimentar a la planaria

Antes Después

74

Cuestionario

1.- Describa la acción de la faringe al ponerse en contacto con el alimento.

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________________________________________________________________

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2.- ¿Qué cambios se notaron en el intestino cuando la planaria ingería el

alimento?

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Conclusiones

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75

PRÁCTICA 16. SISTEMA EXCRETOR EN LOMBRIZ DE TIERRA

Introducción

El sistema excretor tiene como funciones la eliminación de productos de

desecho y la regulación hídrica del medio interno.

Los metanefridios pareados son los órganos de excreción en oligoquetos. Los

metanefridios están constituidos por el nefrostoma preseptal un túbulo

postseptal, que en Lumbricus puede presentar asas o espinas; antes de abrirse

al exterior sufre una dilatación para formar la vejiga.

Objetivos

Realizar una disección en una lombriz.

Identificar las estructuras excretoras denominadas nefridios.

Materiales

Material biológico

Dos lombrices de tierra.



Agujas o alfileres (30).

Alcohol etílico al 95 % (25 ml.).


Papel secante.

Procedimiento

1.- Envuelva por unos ocho minutos a la lombriz de tierra en un papel secante

saturado de alcohol etílico al 95%.

2.- Cuando este anestesiada, colóquela ventralmente en la charola de disección.

76

3.- Mantenga húmedo el papel secante.

4.- Coloque una aguja en el quinto segmento anterior.

5.- Estire la lombriz y coloque una aguja en el octavo segmento final.

6.- Identifique el vaso dorsal medio e inserte un bisturí (filo de la tijera) en el lado

derecho de este vaso sanguíneo en la porción posterior hasta la porción anterior.

7.- Al hacer la disección se encontrará septos dividiendo cada segmento.

8.- Utilice una navaja de bisturí para eliminarlos y para separar la pared corporal

de los órganos internos.

9.- Utilice alfileres cada diez o 12 segmentos para visualizar la anatomía interna.

10.- Registre sus observaciones.



Bibliografía





Resultados

1.- Haga un esquema de los órganos internos y señale los nefridios.

77

Cuestionario

1.- ¿Que productos se desechan por los nefridios?

________________________________________________________________

________________________________________________________________

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2.- ¿En qué segmentos no se encuentran los nefridios?

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Conclusiones

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PRÁCTICA 17. OSMOREGULACIÓN EN ROTÍFEROS

Introducción

Todos los organismos se enfrentan con problemas osmóticos. Los animales han

desarrollado una variedad de mecanismos que emplean para mantener las

concentraciones osmóticas internas apropiadas y prevenir el desarrollo de

presiones osmóticas que puedan provocar problemas.

Osmorregulación: es el término acuñado por Rudolph Höber en 1902, que se

refiere a los procesos relacionados con la regulación de la presión osmótica y la

concentración de sales. Estos procesos han tenido un efecto importante en la

especialización y diversificación de las especies a lo largo de la evolución.

La osmorregulación implica el mantenimiento de una concentración osmótica

interna diferente de la del medio, además de la regulación de la composición y

de las concentraciones iónicas en diversos compartimentos para asegurar el

funcionamiento correcto de las células y tejidos.

Objetivos

El alumno observará la capacidad osmoreguladora de los rotíferos.

Se determinará la concentración optima a la cual los rotíferos de la especie

Plationus patulus llevan a cabo sus funciones vitales.

Materiales

Material biológico

Cultivo de rotíferos de la especie Plationus patulus

Cuatro cajas de petri por equipo

Agua destilada

Soluciones de diferentes concentraciones de NaCl

Estereoscopio

Pipetas pasteur

79

Procedimiento

1.- Etiquete cada caja petri, según la concentración de sal que se vaya a verter

en ella:

1. Agua destilada

2. 10 ppt NaCl

3. 30 ppt NaCl.

4. 50 ppt NaCl.

2.- Coloque en cada una de las 4 cajas petri 10 rotiferos del cultivo, trate de

eliminar el exceso de agua, e inmediatamente después, agréguele 8 ml de agua

destilada o de las solucione que correspondan.

3.- Observe bajo el estereoscopio que pasa con los rotíferos.

4.- Mantenga los experimentos durante cinco días para determinar el

rendimiento promedio total y determinar cómo influye la salinidad en el proceso

reproductivo de los rotíferos.

Bibliografía

Lowe, C., S. Kemp, A. Bates y D. Montagnes. 2005. Evidence that the rotifer

Brachionus plicatilis is not an osmoconformer. Marine Biology 146: 923- 929

Walsh, E., T. Schröder, R. Wallace, J. Ríos y R. Rico. 2008. Rotifers from

selected inland saline waters in the Chihuahuan Desert of Mexico. Saline

Systems 2008, 4:7

Wallace, R. y T. Snell. 2001. Phylum Rotifera. En: Ecology and Classification of

North American Freshwater Invertebrates. Thorp J. y A. Covich Editores.

Segunda edición. Academic Press. Pp. 1056.

80

Resultados

1.- Reporte en el cuadro siguiente el porcentaje de sobrevivencia de los rotíferos

para cada experimento:

Porcentaje de superviviencia

Agua destilada

NaCl 10 PPT

NaCl 30 PPT

NaCl 50 PPT

2.- Reporte el rendimiento promedio total de las poblaciones con la siguiente

fórmula:

Nf = número final de ind.ml-1

No = número inicial de ind.ml-1

t = tiempo (d= días)

Rendimiento ind. ml.dia

Agua destilada

NaCl 10 PPT

NaCl 30 PPT

NaCl 50 PPT

81

3.- Grafique el rendimiento en ind. ml. día-1 contra las diferentes concentraciones

de salinidad utilizadas.

Cuestionario

1.- ¿Cuál es el mecanismo de osmoregulación que poseen los rotíferos?

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2.- Defina que es la presión osmótica

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3.- Defina los siguientes términos y de ejemplos de animales que se caractericen

por esta condición:

Osmoconformes.-

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Hiporeguladores.-

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________________________________________________________________

Hiperreguladores.-

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Stenohalinos.-

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Eurihalinos.-

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Conclusiones

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PRÁCTICA 18. FERTILIZACIÓN Y DESARROLLO TEMPRANO EN

ERIZOS DE MAR

Introducción

El desarrollo de un huevo fertilizado a un grupo de sistemas interdependientes y

complejos que formaran un individuo adulto, es un proceso fascinante, que

comprende las fases de segmentación, gastrulación, formación de mesodermos

y organogénesis. Los factores que determinan el tipo de desarrollo en un

embrión son la cantidad de vitelo, la posición y distribución en el huevo, los

cuáles afectaran los patrones de segmentación y los eventos subsecuentes. En

huevos de organismos primitivos, como los erizos de mar, el vitelo es poco y su

distribución es equilibrada en el citoplasma, éste tipo de huevo se denomina

isolecito. Para inducir la liberación de gametos del erizo de mar, se puede utilizar

una solución de cloruro de potasio a la cavidad corporal o por una estimulación

de corriente eléctrica débil. Cada hembra puede liberar un billón de óvulos y los

machos varios billones de espermatozoides. Después de que el espermatozoide

penetra el óvulo se genera la membrana de fertilización. La primera

segmentación ocurre entre los 50 y 70 minutos después de la formación de la

membrana, posteriormente ocurren dos segmentaciones más, y luego la

generación de una blástula que es un conjunto de células organizadas, que

después se transformarán a una gástrula con doble capa germinal donde es

posible observar un blastoporo que después formará el arquenteron. Se formará

una tercera capa germinal, el mesodermo entre el ectodermo y endodermo.

Estas capas germinales después darán origen a varios tejidos y órganos del

sistema animal. Posteriormente, surgen las larvas de los erizos de mar,

denominadas pluteo que nadan libremente en el mar, tienen simetría bilateral y

cuando se transforman a individuos adultos tienen simetría radial.

Objetivos

El alumno observará la fertilización en erizo de mar.

85

El alumno conocerá los patrones de desarrollo embrionario temprano en erizo.

Materiales, equipo y reactivos

Material biológico

Un erizo hembra y un macho.

Placa de vidrio 15 X 10 cm.

Un vaso de precipitado de 250 ml.

Una caja petri de vidrio.

Dos probetas de vidrio de 100 ml.

Dos pipetas de vidrio.

Un portaobjeto con depresión.

Un microscopio.

Un cronómetro o reloj.

Solución 0.5 M KCl (2 ml.).

Agua de mar (250 ml)

Procedimiento

1.- El instructor obtendrá un par de individuos (hembra y macho) de erizo de mar

por equipo.

2.- Se inyectara a la cavidad corporal de cada erizo, vía la membrana suave que

esta alrededor de la boca un volumen de 2.0 ml de cloruro de potasio 0.5 M.

3.-Coloque los erizos en posición oral sobre una placa de vidrio hasta que

empiecen a liberar los gametos del gonoporo en la región aboral.

4.- Continúe el procedimiento para cada individuo independientemente:

Erizo hembra: colocar la parte aboral del erizo en un vaso de precipitado que

contenga 25 ml de agua de mar, una vez que se hayan caído los óvulos y

86

precipitado al fondo del vaso, tire el agua y reemplácela con agua de mar fresca,

repita el proceso dos veces más hasta tener una solución de óvulos. Prepare

una suspensión de óvulos, de la siguiente manera: adicione cinco gotas de

solución con gametos femeninos (óvulos) a una probeta de 100 mL con agua

destilada. Los óvulos duraran cinco a seis horas a 40F.

Erizo macho: colocar la parte aboral del erizo macho en una caja petri para

recolectar esperma, tape la caja petri y colóquela en un lugar frío. Para utilizar el

esperma, debe diluir una a dos gotas de esperma en 10 mL de agua de mar en

una probeta. Debe utilizarse el esperma en menos de 30 minutos, una vez

hecha esta solución.

5.- Coloque con una pipeta una gota de óvulos a un portaobjeto con depresión,

adicione una gota de suspensión diluida de esperma al portaobjeto.

6.- Examine bajo el microscopio con alta magnificación. Observe el tiempo y

trate de identificar las secuencias de desarrollo en el huevo fertilizado de erizo

de mar. Utilice el siguiente cuadro para orientarse. La tasa de desarrollo varía

con la temperatura, por ello debe vigilar que no exceda a 25C.



Pasos en la secuencia Tiempo aproximado

1.-Formación de la membrana de fertilización 2 a 5 minutos

2.- Primera segmentación 50 a 70 minutos

3.- Segunda segmentación 78 a 107 minutos

4.- Tercera segmentación 103 a 145 minutos

5.- Blástula 6 horas

6.- Formación de la blástula 7 a 10 horas

7.- Gástrula 12 a 20 horas

8.- Larva pluteo 24 a 48 horas

87

Bibliografía


edición. Pren tice- Hall Hispanoamericana, S. A.

Abramoff P., y R. G. Thomson. 1982. Laboratory Outlines in Biology III. W. H.

Freeman and Company. San Francisco.


Barcelona.

Resultados

1.- Haga un esquema de lo observado en cada paso.

Paso 1.-

Paso 2.- Paso 3.- Paso 4.-

Paso 5.-

Paso 6.- Paso 7.- Paso 8.-

88

Cuestionario

1.- ¿Como responden los espermatozoides con la presencia de los gametos

femeninos?

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2.- ¿Cual puede ser la causa de esta respuesta por los espermatozoides?

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3.- ¿Qué tipos de huevo hay con respecto a la cantidad de vitelo? ¿Y con

respecto al reparto del vitelo?

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Conclusiones

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PRÁCTICA 19. EFECTOS DE LA CONCENTRACIÓN SALINA EN

EL DESARROLLO DE Artemia salina

Introducción

Artemia salina es un crustáceo que vive en ambientes salinos, soportando varios

rangos de concentración salina. Viven en el océano o en pequeñas pozas de

agua. Cuando son sexualmente maduros presentan once pares de apéndices en

forma de pluma. Cuando una Artemia crece y se desarrolla, muda su piel unas

12 veces, durante el desarrollo, el número de segmentos corporales y de pelos

se incrementan. La concentración de sal en el medio donde crecen afecta la tasa

de crecimiento.

Objetivos

El alumno comparará los efectos de varias concentraciones de sal en Artemia

salina.

Materiales

Material biológico

Huevecillos de Artemia salina y cultivo de Artemia salina.

Metil celulosa (3ml).

Portaobjetos y cubreobjetos.

Microscopio compuesto.

Pica dientes (3 ó 4).

100 ml de cloruro de sodio a diferentes concentraciones: 0.1 %, 0.5 %,

1 %, 2 %, 4 % y 8%.

25 ml de suspensión de levadura (Para todo el grupo).

Seis frascos de comida para bebe y plumón para marcar los frascos.

91

Procedimiento

1.- Coloque cada una de las diferentes soluciones a cada uno de los frascos de

comida para bebe y etiquételos.

2.- Coloque 0.1 cm³de huevecillos de Artemia salina en cada frasco.

3.- Ponga los frascos en un lugar seguro y verifique que siempre haya huevecillos

en el agua y no en las paredes arriba del nivel de la solución.

4.- Observe por dos días si eclosionaron los huevecillos de Artemia salina en los

cultivos, si fue positivo, aliméntelos con una gota de sus pensión de levadura (un

cultivo de Euglena también puede funcionar).

5.- Continué observando y alimentando los cultivos diariamente por ocho a diez

días.

6.- Utilice la técnica siguiente para observar las Artemias de cada solución salina

en el tiempo:

a) Ponga una gota de metil celulosa en un portaobjetos limpio, con un palillo

forme un anillo no mayor a 1 cm. de metil celulosa.

b) Coloque 10 larvas del cultivo de Artemia salina dentro del anillo de metil

celulosa y coloque encima un cubreobjetos.

c) Observe con el microscopio a baja magnificación.

d) Localice la mancha ocular, los apéndices y pelos de la larva de Artemia salina.

e) Mida la longitud de las diez larvas en mm., para cada concentración por diez

días. Registre sus resultados.



Bibliografía



92

Audesirk, T., y G. Audesirk. 1998. Biología 3. Evolución y Ecología. Cuarta


Purves, W. K., G. H. Orians, H. C. Heller y D. Sadava. 1997. Life. The Science


Resultados

1.- Compare la longitud de los organismos en cada solución salina. Llene el

siguiente cuadro con el promedio de sus resultados:

Día

Concentración salina

0.1 0.5 1 2 4 8

1

2

3

4

5

6

7

8

9

10

2.- Compare sus resultados con los otros equipos. Discuta.

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Cuestionario

1.- ¿En qué solución fue más rápido el desarrollo? ¿Porqué?

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2.- ¿En qué solución fue más pobre el desarrollo? ¿Por qué?

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3.- Compare sus resultados con respecto a los obtenidos por sus compañeros

de clase

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Conclusiones

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PRÁCTICA 20. REGENERACIÓN EN PLANARIA

Introducción

La Clase Turbelaria que comprende a los platelmintos de vida libre como las

planarias, consta de animales con sistemas reproductivos complejos, con

fertilización interna. Las planarias son hermafroditas, y cuando copulan,

depositan esperma al saco copulatorio del otro individuo, este esperma viajará

en tubos especializados conocidos como oviductos, y así, fertilizar los óvulos

maduros.

Los gusanos planos también pueden reproducirse asexualmente. Las formas de

vida libre se reproducen al ocurrir una constricción en la mitad del cuerpo, y

generan dos mitades, donde cada una de las cuales reproduce las partes

faltantes.

Las planarias son gusanos planos, que viven en cuerpos de agua dulce como

lagunas y arroyos, se alimentan de materia orgánica. Las planarias se pueden

reproducir por medio asexual, por el proceso de regeneración, esto es: si una

planaria pierde una parte corporal, puede regenerar nuevo tejido mediante el

existente. Si una porción del cuerpo se desprende por algún mecanismos, ésta

porción, puede regenerar a un organismo completo, el cuál tendrá la misma

información genética del organismo que se desprendió.

Objetivos

El alumno se familiarizará con la reproducción por regeneración.

Realizará diversos cortes en planarias para lograr la regeneración.

Materiales

Material biológico

18 planarias

Diez cajas petri.

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Un bisturí.

Portaobjetos.

Un marcador.

Agua pasteurizada.

Estereoscopio.

Procedimiento

1.- Coloque una planaria en un vidrio de reloj y observe con el estereoscopio las

manchas oculares y la faringe.

2.- Coloque un par de planarias y extiéndalas en un portaobjeto limpio, realice los

siguientes cortes:

a) Corte las cabezas de las planarias inmediatamente debajo de las aurículas

(esquema 1a). Coloque con un cepillo de pelos de camello las cabezas en una

caja petri con agua pasteurizada. Las otras porciones colóquelas en otra caja petri

con agua pasteurizada. Coloque las cajas petri en un área fresca. Marque con

plumón las cajas petri. No alimente las planarias durante el proceso de

regeneración.

b) Haga un corte longitudinal de las planarias (esquema 1b). Coloque las mitades

derechas en una caja petri con agua pasteurizada, y las partes izquierdas en otra

caja de petri con agua pasteurizada.

97

c) Ahora haga dos cortes resultando en tres secciones de una planaria (esquema

1c). Coloque cada sección en una caja petri con agua pasteurizada. Recuerde

que debe marcar las cajas petri y utilizar una brocha de pelo de camello.

d) Haga un corte longitudinal de una tercera parte iniciando de la parte posterior

(esquema 1d). En las otras planarias, haga un corte longitudinal de una tercera

parte iniciando anteriormente (esquema 1e). Coloque las planarias en caja petri

con agua pasteurizada y mantenga el corte por cuatro días.

98

3.- Observe las secciones de las planarias en el primer, tercer, séptimo y

catorceavo día después de los cortes. Registre los cambios, haga diagramas de

lo observado.

4.- Remueva partes muertas.



Bibliografía







Barcelona.

Resultados

1.- Seleccione tres cortes y haga un dibujo de lo observado a través del tiempo.

Corte 1:

Día 1

Día 3

Día 7

Día 14

99

Corte 2:

Día 1

Día 3

Día 7

Día 14

Corte 3:

Día 1

Día 3

Día 7

Día 14

Cuestionario

1.- ¿Reconoció diferencias en longitud, grosor, color en la planaria regenerada?

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2.- ¿Cual sección de la planaria se convirtió en una completa?

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3.- ¿Cuales planarias presentaron cambios de color en el margen del corte?

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4.- ¿Existe diferencia entre el tejido nuevo y el viejo?

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5.- ¿Cual sección creció aparentemente rápido?

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6.- ¿Porque el material genético de la planaria regenerada es igual que el del

pariente?

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Conclusiones

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morfofisiologia de invertebrados

Documents