SISTEMA DE PRODUCCION DE POSTLARVA EN CAMARONICULTURA

MARINA

l  RAFAEL ANDRES VERGARA SILGADO l  PROFESIONAL EN ACUICULTURA

SISTEMA DE PRODUCCION DE POSTLARVA EN CAMARONICULTURA

El procedimientos a seguir en un ciclo de producción de post-larvas de camarón en laboratorios comerciales es el siguiente.

Previo a una desinfección (vacío sanitario) se inicia el llenado de reservorios. 24 a 48 horas antes recepción de los nauplios en estadio de NV.

Captación de agua (punto de toma)

Captación de agua (Bombeo)

Sistema de filtración

Esterilización Carbón activado+UV

Calentamiento del agua

Sistema de aireación

Tratamiento del agua de siembra

El agua puede venir de un pozo profundo y pasada por filtración de 50-20-10-5u+2-4ppm de hipoclorito de sodio (tanques reserv) + fuerte aireación. Se neutraliza el cloro presente. De ahí se pasa a los tqs de larvicultura a sembrar en el día. Una vez en el tanque de larvicultura se le adicionan todos los tratamientos correspondientes a la siembra (EDTA, nutrientes, Vit C, Melaza)+microalgas de la especie chaetoceros sp a concentraciones de 50-80cel/ml.

Chequear distribución de la aireación. El nivel de agua para recibir nauplios en un tanque de 10 ton es aprox 5ton, posterioremente se ingresan 1 ton de agua diaria hasta tener el max.nivel de operación en mysis III. El dia de la recepción de naup. se cuentan volumetricamente. Las muestras son tomadas con pipetas automática de 1 m+ aireacion con 4 piedras y se toman 6 muestras por tanque.

l  Posteriormente se aclimatan. previo a la siembra debe haber microalgas disponibles a una concentración de 50.000 cel/ml.

l  La densidad de siembra varía de 120 – 160 naup/Lt. Inmediato a la siembra se adiciona microalgas principalmente chaetoceros sp.

l  Si la deformidad de nauplio es mayor de 15% se descartan estos lotes.

Cultivo de microalgas

Dia cultivo Estado Tipo alimento % recambio 0 NV Reserva vit+microalgas Ch Nivel 50% 1 Z1 Chaet+Micropellet 5-20u<50u 10%y/o=nivel 2 Z1 – Z2 Chaet+Micropellet 5-20u<50u 10-20%incremento 3 Z2 Chaet+Micropellet 5-20u<50u 20%incremento 4 Z2 – Z3 Chaet+micropellet 50-100u 20-30%incremento 5 Z3 Chaet+micropellet 50-100u

+artcong 20-30%incremento

6 Z3 –MI Chaet+micropellet 50-100u+artcong

Rec 20-30% 7 MI Chaet+micropellet 50-100u

+artcong Rec 30%

8 MII Chaet+micropellet 50-100u+artcong

Rec30-40% 9 MIII Chaet+micropellet 50-100u

+artcong Rec40-50%

10 MIII – PL Chaet+micropellet 50-100u+artcong

50-100%

Aspectos generales de la siembra

Aspectos del manejo en larvicultura

Más aspectos del recambio de agua en larvicultura

Dia cultivo Estado Tipo alimento % recambio 11 PL 1 Micropellet 100-250u+artviva Rec 50%-100% 12 PL 2 Micropellet 100-250u+artviva 100% 13 PL 3 Micropellet 100-250u+artviva 100% 14 PL 4 Micropellet 100-250u+artviva 100% 15 PL 5 Micropellet 250-400u+artviva 150% 16 PL 6 Micropellet 250-400u+artviva 150% 17 PL 7 Micropellet 250-400u+artviva 150% 18 PL 8 Mezclas:Micr+Sure+Nic 250+400+500u

+artviva 200%

19 PL 9 Mezclas:Micr+Sure+Nic 250+400+500u+artviva

200% 20 PL10 Mezclas:Micr+Sure+Nic 250+400+500u

+artviva 200%

21 PL 10-11 Mezclas:Micr+Sure+Nic 250+400+500u+artviva

200%

Suministro de dietas micropellets (50%P.B)

Otros insumos utilizados en la larvicultura

Hidratación y siembra de cistos de artemia salina

Cosecha de metanauplios de artemia sp)

Control de observaciones diarias

Estadíos:

Zoea I:

Caparazón ligeramente hexagonal, liso y sin espina. Clara diferenciación de cabeza y abdomen, ojos compuestos. El caparazón cubre la parte anterior del cuerpo. La porción anterior es angosta. Abdomen no segmentado. Tracto digestivo visible. La máxilulas y maxilípedos largos y funcionales.

Zoea II:

Ojos compuetos y pedunculado, presencia de un rostro, un par de espinas supraorbitales bifurcadasy abdomen segmentado. El telson se halla unido al sexto somite abdominal y las espinas furcales permanecen en numero constante de siete.

Zoea III:

Urópodos birrámeos y de esppinas sobre los segmentos abdominales. Caparazón más cerrado y compacto. Las espinas supraorbitales más desarrolladas y ya no son bifurcadas. Pereiópodos rudimentarios. El numero de espinas furcales es 8 + 8.

Misys I:

Es más parecido a un pequeño camarón. Los pereíopodos más desarrollados del primero al tercero ya tienen quela rudimentaria. Se empiezan a formar las escamas antenales. El caparazón cubre los últimos somites torácicos. Las espinas supraorbitales siguen presentes. Espina hepática pequeña. Aparecen sobre el abdomen las yemas germinativas de los pleópodos. El telson es ancho, espatulado y de borde posterior convexo.

ESTADIO DE MISYS (I)

Misys II:

Pleópodos rudimentarios no segmentados. Caparazón con espinas supreorbitales y hepáticas presentes. Telson casi rectangular llevando siete pares de espinas furcales y un par de espinas laterales. El abdomen y úropodos no cambian.

ESTADIO DE MISYS (II)

Misys III:

Pleópodos largos y bisegmentados. Aparece la primera espina dorsal sobre el rostro.

ESTADIO DE MISYS (III)

Postlarva :

Es el proceso final de desarrollo larval en camarones. Los pleópodos son bien desarrollados y con largas setas. El rostro esta armado con dos o tres espinas dorsales siendo el primero el diente epigástrico. El caparazón no se modifica con respecto a la estadía anterior. Se distingue en el primer, segundo y tercero par de pleópodos con sus dáctilos.

POST-LARVAS CON APENDICES SUCIAS

ESTADIO DE POST-LARVAS

DESARROLLO DE LA LOBULACION BRANQUIAL EN POST-LARVAS PL 10

Cosecha y conteo: la cosecha se realiza con el vaciado total del tanque recolectando las larvas en un caja de cosechas dentro del cual se coloca una malla de 300 a 500 micras, la cual se llena de agua y sirve para no maltratar las postlarvas. Posteriormente se baja temperatura a la escogida para la toma de muestra, luego se sigue bajando temperatura dependiendo las horas de transporte.

Aspectos generales para cosecha

Refrigerador para agua de aclimatación (Schiller)

Cosecha: Aclimatación Pls

Cosecha: Toma de muestras Pls

l  En conteo de postlarva se utilizan diferentes métodos: l  Conteo volumetrico: es el menos sesgado y no

produce estrés en los animales. Consiste en extra polar al volumen total la cantidad contada en muestras volumetricas tomadas de ese volumen total. A un volumen determinado de agua y con fuerte agitación se toman cuatro muestras, las cuales son contadas individualmente.

2.  Sistema gravimetrico: consite en determinar la población pesandola en su totalidad y calculando cuantas postlarvas se encuentran en el peso determinado, a partir del eso individual promedio.

3.  Sistema por reducción: extr pola llos datos de volumenes pqueños a un volumen total. El volumen total del tanque de conteo se reparte en varias muestras de volumenes totales a partir de las cuales se toman sub muestras para contar las postlarvas.

Para todos los casos es importante considerar el CF como un indicador de la precisión del método de conteo

Empaque de post-larvas

Embarque de carga

Tanque de transporte de Pls

EMPAQUE Y TRANSPORTE DE PLS 80-90S

MANEJO DE LARVICULTURA EN TANQUES CIRCULARES DE 40 TON DE VOLUMEN AGUA

l  Llenado de agua 50% vol. l  Control de la temperatura.

l  Uso de tratamientos convencionales. l  Manejo de dietas secas y líquidas. l  Uso de alimento vivo artemia. l  Observaciones constantes. l  Control de calidad para envio a fincas del sector.