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ÁREA DE CONOCIMIENTO DE CIENCIAS DEL MAR

DEPARTAMENTO DE BIOLOGÍA MARINA

POSGRADO EN CIENCIAS MARINAS Y COSTERAS

ESPECIALIDAD EN ACUACULTURA

Bases Tecnológicas para el Cultivo Integral del Ostión de Placer Crassostrea corteziensis (Hertlein, 1951)

TESIS

QUE COMO PARTE DE LOS REQUISITOS PARA OBTENER EL GRADO DE

MAESTRO EN CIENCIAS MARINAS Y COSTERAS PRESENTA:

B.M. Francisco Antonio Flores Higuera

La Paz, Baja California Sur, México Junio 2011

UNIVERSIDAD AUTÓNOMA DE

BAJA CALIFORNIA SUR

Bases tecnológicas para el cultivo integral del ostión de placer Crassostrea corteziensis (Hertlein, 1951). Flores-Higuera, F.A., 2011

Índice General.

Índice General. I

Índice de Figuras. III

Índice de Tablas. V

Resumen. VI

Abstracs VII

Dedicatoria VIII

Agradecimientos IX

1. Introducción. 1

1.1 Posición taxonomía. 6

1.2. Sinonimias. 6

1.3. Anatomía. 7

1.4. Reproducción. 8

1.5. Producción de semilla y sistemas de engorda. 10

1.6.- Infraesructura de investigacion y producción de moluscos bivalvos en México.

12

2. Antecedentes. 15

3. Justificación. 20

4. Objetivos. 21

4.1 Objetivo General. 21

4.2 Objetivos Particulares. 21

5. Material y métodos. 22

5.1 Colecta y traslado de reproductores e inducción al desove. 22

5.2 Cultivo Larval. 23

5.3 Alimentación. 26

5.4 Asentamiento y metamorfosis de larvas pedivéliger. 26

5.5 Preengorda de juveniles. 28

5.6 Siembra y preengorda en el mar. 30


5.7 Engorda a talla comercial. 31

5.8. Sitio de Cultivo. 32

5.9. Tratamientos estadísticos. 33

6. Resultados. 35

6.1 Cultivo larvario. 35

6.2. Crecimiento y supervivencia larvaria a diferente salinidad. 39

6.3. Asentamiento y metamorfosis larvaria en función a la densidad 42

6.4. Engorda en Campo. 43

6.5. Parámetros ambientales 48

7. Discusiones. 49

7.1 Crecimiento larvario. 51

7.2. Asentamiento y metamorfosis de larvas pedivéliger. 54

7.3. Engorda en el Campo. 56

8. Conclusiones. 59

10. Bibliografía. 60


Índice de Figuras.

Figura 1.- Vista externa de las conchas de C. corteziensis.

8

Figura 2.- Vista de la anatomía interna de C. corteziensis, mostrando dos organismos; maduro e inmaduro sexualmente.

8

Figura 3.- Tanques de fibra de vidrio de 400 L donde se realizó el experimento de cultivo larvario a tres salinidades.

25

Figura 4.- Drenaje de tanques de cultivo y captación de larvas en los tamices receptores.

25

Figura 5.- Tamizado selectivo de larvas de C. corteziensis utilizando mallas de diferente luz.

25

Figura 6.- Larva fijadora de ostión obtenida al concluir su periodo de vida pelágica.

25

Figura 7.- Colocación del sustrato de fijación (concha molida de ostión), sobre las charolas.

27

Figura 8.- Distribución de larvas competentes (Pedivéliger oculadas), en las charolas de fijación.

27

Figura 9.- Unidad circular utilizada para la preengorda de semilla de C. corteziensis en el CIBNOR, S.C.

28

Figura 10.- Localización del sitio de cultivo, cercano a Playa Las Glorias, en el Municipio de Guasave Sin.

32

Figura 11.-Larva de ostión de placer C. corteziensis, véliger de charnela recta mostrando el velum. 100X.

37

Figura 12.- Figura 12.- Larva véliger de charnela recta de 6 días de edad en reposo. 100X. Barra 40 m.

37

Figura 13.- Larva véliger de charnela recta de 8 días de edad. 400X ;

Barra =50 m.

37

Figura 14.- Larva véliger de charnela recta de 10 días de edad donde se aprecia la disminución del tamaño de la charnela. 400X.

Barra= 30 m

37

Figura 15.- Larva umbonada de 15 días de edad. 40X. Barra=100 38


m. Figura 16.- Larva pedivéliger temprana 18 días de edad 100X

38

Figura 17.- Larva umbonada de 20 días mostrando el pie activo.

400X.Barra=100 m.

38

Figura 18.- Postlarva (fijación o presemilla) de C. corteziensis de

25 días mostrando la disoconcha. 100X Barra=50 m.

38

Figura 19.- Crecimiento larvario (Longitudes) de C. corteziensis cultivado a salinidades de 25, 32, 39 ups, y temperatura de 27 ±1 °C .

40

Figura 20.- Supervivencia larvaria de Crassostrea corteziensis, cultivadas a tres salinidades 25 32 y 39 ups a 27 ±1 °C .

41

Figura 21.- Crecimiento (longitud±es) de C. corteziensis, durante la fase de engorda en campo, en relación a la dieta previamente utilizada durante la fase de preengorda de semilla en el laboratorio.

44

Figura 22.- Crecimiento (altura±es) de C. corteziensis, durante la engorda en campo, en función de la dieta previamente utilizada en el laboratorio durante la fase de preengorda de la semilla utilizada sembrada.

45

Figura 23.- Crecimiento (espesor±es) de C. corteziensis, durante el cultivo suspendido (engorda), en en Playa Las Glorias, Guasave Sinaloa, en función de la dieta previamente utilizada en el laboratorio durante la preengorda de la semilla utilizada.

45

Figura 24.- Crecimiento (peso±es) de C. corteziensis durante el cultivo suspendido (engorda), en Playa Las Glorias, Guasave Sinaloa, en función de la dieta previamente utilizada en el laboratorio durante la preengorda de semilla.

46

Figura 25.-Tasa instantánea de crecimiento (TIC, longitud) de C. corteziensis durante el cultivo suspendido (engorda), en Playa Las Glorias, Guasave Sinaloa, en función de la dieta de preengorda de semilla en laboratorio.

46


Índice de Tablas

Tabla. I.- Relación del tamaño de las larvas con los tamices utilizados en el cultivo larvario de Crassostrea corteziensis.

24

Tabla II. Relación del tamaño de los juveniles con los tamices utilizados en la preengorda C. corteziensis.

30

Tabla III. Ecuación de ajuste del crecimiento en larvas de Crassostrea corteziensis cultivadas a tres salinidades 25, 32, 39 ups y a 27 ±1 °C.

39

Tabla IV. Análisis de varianza de una vía para el porcentaje convertido a arco seno de la supervivencia al final del cultivo larvario de Crassostrea corteziensis a tres salinidades 25, 32 y 39 ups a 27 ±1 °C.

41

Tabla V. Resumen de resultados en la fijación larvaria de C. corteziensis en función de la densidad de cultivo.

42

Tabla VI. Análisis de varianza de una vía para evaluar resultados en la fijación larvaria de C. corteziensis en base al arco seno de la eficiencia de fijación (%).

42

Tabla VII Tasa instantánea de crecimiento (TIC, longitud) de C. corteziensis (incremento en mm), durante el cultivo suspendido (engorda), en Playa Las Glorias, Guasave Sinaloa, en función de la dieta de preengorda de semilla en laboratorio.

47

Tabla VIII. Supervivencia de Crassostrea corteziensis durante su engorda en Playas las Glorias Guasave Sinaloa, alimentadas con tres dietas durante la fase de preengorda en laboratorio.

47

Tabla IX.- Resultado del análisis de varianza una vía para la supervivencia de Crassostrea corteziensis obtenida al final de la engorda (al día 215) en Playas Las Glorias Guasave Sinaloa, en base al arco seno del porcentaje.

47

Tabla X Parámetros ambientales durante el cultivo de Crassostrea corteziensis en Playa Las Glorias Sinaloa.

48


RESUMEN

El ostión de placer Crassostrea corteziensis es una especie nativa de alto valor comercial, candidata a ocupar un lugar importante en la ostricultura del Pacífico mexicano. Por ello, es importante ampliar el conocimiento sobre la especie, tanto en sus aspectos de biología básica como en aquellos orientados al cultivo de la especie. En este trabajo se realizaron tres experimentos. El primero se orientó a determinar el crecimiento y la sobrevivencia larvaria de la especie a tres diferentes salinidades (25, 32, 39 ups), considerando temperatura, cantidad y tipo de alimento similares (27±1 ºC; 30,000 cel·mL-1) Isochrysis galbana y Chaetoceros calcitrans 1:1). Los cultivos larvarios se realizaron en cilindros de fibra de vidrio de 400 litros de capacidad, a una densidad inicial de 6 larvas.mL-1. No se encontraron diferencias significativas entre los porcentajes de supervivencia larvaria así como en las curvas de crecimiento. Un segundo experimento fue desarrollado para evaluar el proceso de fijación de larvas pedivéliger a tres densidades: 3, 7 y 10 larvas/mm2. El diseño experimental por triplicado se proyectó considerando la cuantificación volumétrica de las fijaciones obtenidas. El análisis de varianza de una vía mostró diferencias significativas (p>0.05). Las semillas obtenidas en laboratorio se preengordaron en unidades de surgencia cilindros recirculantes. Durante una primera etapa post-fijación (dos semanas), las semillas aun pequeñas se alimentaron exclusivamente con microalgas. Después de esto, se establecieron 3 tratamientos experimentales: Dieta 1).- 100% microalga (Microalga100), Dieta 2).- 50% de la dieta 1 y un complemento artificial de harina de trigo (Microalga50-Trigo) y Dieta 3).- 50% de la dieta 1 y un complemento artificial de fécula de maíz (MaizenaMR)(Microalga50-Maíz). Un tercer experimento consistió en una engorda experimental encampo, evaluando el crecimiento de la semilla para determinar algún posible efecto, favorable o desfavorable, relacionado con la dieta de preengorda precedente suministrada a la semilla en el laboratorio. De acuerdo a la comparación de curvas realizada, no se encontraron diferencias significativas (P<0.05) en el crecimiento de C. corteziensis para cada uno de los tratamientos (dieta previa de prengorda), considerando el crecimiento en longitud. Los resultados de la presente investigación han permitido confirmar que la semilla de ostión de placer puede preengordarse en el laboratorio sustituyendo el 50% de la ración diaria de la microalga por complementos artificiales de bajo costo y fácil elaboración a base de fécula de maíz y harina de trigo, disminuyendo la cantidad de microalgas suministrada, con la correspondiente reducción de los costos de operación, y sin resultados


en cuanto se refiere al crecimiento y sobrevivencia de la semilla durante la etapa de engorda en el mar. ABSTRACT The Cortez oyster is a highly appreciated species for aquaculture in Mexico and a candidate for a first position in oyster-culture industry at the Pacific Northwest coast. During this study three experimental trials were realized for increase scientific an applied knowledge about this native species. First trial were designed to determine growth and survival of larvae at three different salinities (25, 32, 39 ups), with equal temperature conditions and food and feeding schedule (27±1 ºC; and 30,000 cel·mL-1 Isochrysis galbana and Chaetoceros calcitrans 1:1). Larval cultures were developed in fiberglass tanks of 400 L, at initial density of 6 larvae.mL-1. No significant differences between survival of larvae were found so similar curves of growth were obtained. A second trial was intended to evaluate setting of eyed pediveliger larvae at three densities: 3, 7 and 10 larvae.mm-2. A triplicated experimental design was intended to quantify newly set spat by means of volumetric analysis. One way ANOVA for setting process showed significant difference (p>0.05), between the three groups. The newly set spat were nursed in recirculating upwelling cylinders supplied with cultured microalgae as a natural source of food. After initial nursery stage (two weeks), the spats were fed with three different treatments : Diet 1).-100% microalgae (microalgae100), Diet 2).- 50% of Diet 1 and at complement of wheat flour, (microalgae50-wheat) and Diet 3).- 50% of Diet 1 and a complement of cornstarch (MaizenaMR) (microalgae50-cornstarch). A third trial was intended to determine effect on nursery diet supplied to spat in the hatchery, on general performance (vigor, growth, survival) of the juveniles (seed) during the grow-out phase at the field). As a result of the comparison realized between growth curves in length of the juvenile oysters, there were not found statistical differences (P >0.05) between treatments (previous hatchery diet). Global results of the present study confirms that oyster spat C. corteziensis can be nursered at the hatchery substituting 50% of daily ration of microalgae for artificial complements of low cost and easy facture. The use of cornstarch and wheat flour, decreased the quantity of microalgae supplied, with a great reduction of the cost for nursery operation, and without negative reduction on survival and growth at the field.


Dedicatoria.

A DIOS POR DARME LA OPORTUNIDAD DE LLEGAR A ESTE

MOMENTO.

A MIS PADRES EL SR. DON JOSE FLORES MARTINEZ Y DOÑA YOLANDA

HIGUERA ALVAREZ POR SE QUIENES ME HAN IMPULSADO PARA

LOGRAR MIS OBJETIVOS GRACIAS ESTE PEQUEÑO TRIUNFO ES DE

USTEDES.

A HEMANOS LULY, JOSE, CHUY, YOLY Y MONSE, POR SE MIS AMIGOS Y

POR QUE HAN SIDO MI SOSTEN EN MOMENTOS DIFICILIES

A HIJO NESTOR QUE ES MI MAYOR INSPIRACION PARA SEGUIR

ADELANTE

AL GRAN AMOR DE MI VIDA: IRASEMA QUE SIN TU EMPUJE Y APOYO

NO HUBIERA SIDO POSIBLE CONCLUIR ESTA ESTAPA.


Agradecimientos: Antes que nada quiero dar un sencillo pero justo reconocimiento a la Universidad Autónoma de Baja California Sur, a todos sus maestros y personal administrativo, por permitirme la oportunidad de formarme en sus aulas y laboratorios. Al personal de la Unidad Pichilingue de la UABCS donde realice gran parte de mi formación profesional. Al Centro de Investigaciones Biológicas del Noroeste, S.C. por las facilidades brindadas para la realización de los cultivos larvarios y preengorda de semillas. Deseo expresar mi agradecimiento a los directores de este trabajo El Dr. José Manuel Mazón Suástegui (CIBNOR) y el Dr. Cesar A. Ruiz Verdugo (UABCS) quienes con sus consejos, observaciones, ayuda y su grandísima paciencia permitieron la conclusión de este trabajo. A los miembros del comité revisor Dr. Antonio Luna González, Dra. Ana Isabel Beltrán Lugo y el M en C Miguel Robles Mungaray por sus atinados comentarios y observaciones que contribuyeron a la mejoría del escrito. A las empresas Ostrícola Guevara SA de CV por proporcionar los reproductores utilizados para este trabajo y a la Empresa Promotora del Pacífico S.A. de C.V. por su apoyo en la realización de la engorda en Playas Las Glorias Municipio de Guasave Sinaloa. Al Consejo Nacional de Ciencia y Tecnología por otorgarme una Beca para la realización de mis estudios de maestría y al proyecto # 129025 SEP-CONACyT Ciencia Básica, “Diversidad microbiana asociada a moluscos ostreidos de cultivo e interacción molecular bacteria-hospedador”, a cargo del Dr. Mazón. A todos aquellas personas que de alguna u otra forma contribuyeron a la conclusión de este trabajo GRACIAS …


1. Introducción.

La acuacultura marina animal, es una actividad dirigida a producir y engordar

organismos acuáticos, mediante la aplicación de técnicas cada vez más eficientes,

cuyos resultados la ubican en niveles de desarrollo cercanos a la agricultura y la

ganadería. La tendencia generalizada es hacia racionalizar la explotación de los

recursos acuáticos y con ello generar fuentes de alimento y de trabajo (Bardach et

al., 1990).

Los métodos de la acuicultura son interdisciplinarios y por lo tanto incluyen

varias ramas de la biología, como la morfología, fisiología, embriología, genética,

ecología, botánica y zoología; pero también incluye a la biología pesquera y a la

ingeniería, en especial a la ingeniería pesquera y la tecnología de alimentos, además

de la sociología y la economía (FAO, 2004).

Los registros de producción mas elevados en la maricultura mundial

corresponden a las macroalgas, sobre todo a la macroalgas japonesas conocidas

como kelp, y a los moluscos, destacándose principalmente el ostión del Pacífico

(Stickney, 2001). Sin embargo, como las cifras de producción se dan en peso en vivo

(incluyendo un elevado contenido de agua en las algas y las conchas en los

moluscos), las estadísticas ofrecen la impresión de que estos productos son fuentes

de alimentos y empleo mayores de lo que en realidad son (FAO, 2004).


En México durante el 2008 se obtuvieron más de 5,302 millones de pesos en

acuacultura, obtenidos por la venta de 130,049 TM de camarón, lo que representó el

57.56% de la producción acuícola nacional en el 2008 (SAGARPA-CONAPESCA, 2008).

Actualmente, la industria del cultivo del camarón en México esta en crisis debido

principalmente a la vulnerabilidad del recurso, a enfermedades, y a la variabilidad de

los precios del producto en el mercado internacional. Así mismo, el cultivo de

camarón es una actividad de alto riesgo por las altas tasas de diseminación de los

agentes patógenos en los sistemas de producción intensiva, que pueden afectar

seriamente la producción de toda una gran región. Por lo anterior, es de vital

importancia la diversificación de la acuacultura nacional a otras especies de

organismos marinos, como peces y moluscos, entre los que se encuentran los

ostiones, y particularmente el ostión de placer Crassostrea corteziensis, especie

objetivo de la presente investigación.

Los moluscos bivalvos, son organismos filtro alimentadores y se ubican en la

base de la cadena alimenticia, crecen rápido, especialmente en los trópicos y son

ampliamente demandados por los mercados globales. Por lo anterior son candidatos

ideales para la acuacultura, además, en los proyectos comerciales no se requieren

inversiones grandes ni equipos sofisticados. A pesar de esto, no se ha consolidado

esta actividad en México, debido a que no se ha considerado una conjunción de

elementos técnicos, económicos y sociales (Cáceres-Martínez, 1999).


La familia Ostreidae incluye a un gran número especies comestibles; su

distribución esta confinada a una franja de aguas costeras dentro de las latitudes 64°

N y 44° S. Su distribución vertical se extiende desde un nivel aproximadamente

medio desde la zona intermareal, hasta profundidades de 32 m. Sin embargo, las

especies comerciales rara vez se encuentran en profundidades mayores de 12 m

(Galtsoff, 1964).

En México existen 9 especies, entre nativas y exóticas, de ostiones del género

Crassostrea, que son de interés comercial (Vázquez y Arriaga, 1988), las cuales son

aprovechadas en diferentes localidades del país. Las dos especies que aportan la

mayor producción en la acuacultura nacional son Crassostrea virginica en el Golfo de

México y Crassostrea gigas en el Pacifico, esta última introducida al país en la década

de los setentas (Arriaga-Becerra y Rangel-Dávalos, 1988). Con excepción del ostión

de piedra Striostrea prismatica= (Crassostrea iridescens), la mayoría de las especies

son habitantes típicos de los esteros, desembocaduras de ríos y lagunas costeras, por

lo que son organismos muy resistentes que toleran amplios cambios en los factores

ambientales.

La introducción del ostión japonés a México representa uno de los sucesos más

importantes en la acuacultura de moluscos. Las primeras semillas se introdujeron en

el año de 1973, obteniéndose excelentes resultados en cuanto a crecimiento y

supervivencia, particularmente en las costas de Baja California, lo que impulsó a


organizar proyectos de ostricultura para su comercialización en otras regiones del

Pacífico Mexicano (Islas, 1975).

Debido a los avances logrados en el desarrollo de tecnología para el cultivo de

ostión, se han creado una gran cantidad de cooperativas acuaculturales que

desarrollan su actividad por medio de dos técnicas de cultivo intensivo, a partir de

semillas obtenidas en laboratorio. La primera técnica se basa en la siembra de las

ostrillas en bastidores hecho con malla mosquitero y madera suspendidos en lineas

madres y realizando la engorda en costales de plástico ubicados en la zona

intermareal y la segunda, en la siembra en canastas de plástico suspendidas en líneas

madre flotantes (Cáceres-Martínez et al., 1992), algunos productores combinan

ambas metodologías.

En el 2008 la producción nacional ostrícola fue de 44,452 TM de las cuales 3,981

TM corresponden a la producción de la costa del Pacífico y 4 0,472 TM, a la costa del

Golfo de México y Mar Caribe. Ese año, los estados que aportaron mayor producción

fueron Veracruz con 21,759 TM, Tabasco con 17,173 TM, Nayarit con 1,423 TM,

Tamaulipas con 1,214 TM, Baja California con 1,077 TM y Baja California Sur con 612

TM. (SAGARPA-CONAPESCA, 2010).

El valor económico de la producción total nacional ostrícola en el 2008 fue de

$161,976 lo que representó menos del 1 % del valor total de la producción pesquera

de México para consumo humano directo, por otro lado, la producción acuicola


nacional ostrícola por acuacultura fue de 42,148 TM, lo que representa un 94.82 %

de la producción ostrícola nacional y con un valor de $141,744 (SAGARPA-

CONAPESCA, 2010).

En las costas del Pacifico Mexicano, incluyendo el Golfo de California, se han

explotado intensivamente dos especies nativas: el ostión de placer C. corteziensis y el

ostión de piedra Striostrea prismatica = (Crassostrea iridescens). El ostión de placer

es una especie de rápido crecimiento ya que alcanza los 75 mm durante los primeros

7 meses de vida, es encontrado en la raíces de los mangles y tolera un gran intervalo

de salinidad (Matthiessen, 2001). En condiciones de cultivo, se ha registrado que esta

especie alcanza la talla comercial de 8 cm en 8 meses de cultivo, a partir de la

siembra de semilla de 3-4 mm producida en el laboratorio (Hoyos-Chaires y Robles-

Mungaray, 1990; Mazón-Suástegui et al., 2001a, 2001b).


1.1. Posición Taxonómica.

Al ostión de placer C. corteziensis se le conoce con los siguientes nombres

comunes: cortez oyster, ostión de placer, ostión de Guaymas y ostión de mangle. La

clasificación de la especie es la siguiente:

Phyllum: Mollusca

Clase: Bivalvia

Sub clase: Pteromorpha

Orden: Ostreida

Sub orden: Anisomiaria

Superfamilia: Ostreoidea

Familia: Ostreidae: (Rafinesque, 1815)

Género: Crassostrea (Sacco, 1897)

Especie: Crassostrea corteziensis (Hertlein, 1951).

1.2. Sinonímias.

Crassostrea chilensis (Philippi, 1844).

Ostrea chilensis (Philippi, 1844).

Ostrea corteziensis (Hertlein, 1951).


1.3. Anatomia.

Los ostiones, son moluscos bivalvos de simetría bilateral, provistos de una

concha externa formada por dos valvas unidas por un ligamento. Las dos valvas son

articuladas en su parte anterior, la cual generalmente es aguzada y conocida como el

extremo umbonal, la articulación que es interna abre las valvas mediante la acción de

un solo músculo aductor, fijado a cada valva generalmente en el área del centro

(Mazón-Suástegui, 1996).

El ostión de placer presenta concha de forma muy variada, pero generalmente

alargada-ovalada y más alta que larga alcanzando tallas muy grandes (hasta 25 cm);

la valva izquierda es convexa y generalmente más grande que la derecha,

regularmente presenta el umbo encorvado hacia atrás, la superficie exterior de las

valvas es lisa y presenta tenues surcos radiales. La valva derecha es aplanada, lisa o

con lamelas concéntricas, presenta un pequeño receso bajo la charnela de la valva

izquierda. La cicatriz del músculo aductor es grande no muy cóncava dorsalmente un

poco mas cercana al borde ventral que a la charnela. La valvas carecen de comatas,

el color de la superficie externa de las conchas es blanquecina, la valva derecha

presenta un a coloración ligeramente café o gris–púrpura; superficie interna blanca

brillante frecuentemente con áreas irregulares de color blanco, cicatriz del músculo

aductor ocasionalmente teñido de púrpura (Figs.1 y 2) (Fisher et al., 1995).


Figura 1. Vista externa de las conchas de C. corteziensis.

Figura 2. Vista interna de las conchas de C. corteziensis.

1.4. Reproducción.

Los ostiones del género Crassostrea son organismos hermafroditas protándricos,

es decir, en su primera madurez son machos y posteriormente maduran como

hembras, aunque no presentan una diferenciación sexual externa y solo se pueden

detectar diferencias al observar los productos sexuales al microscopio. Generalmente

desovan una sola vez al año, liberando hasta 5 x 108 de ovocitos al mar, en donde

son fecundados por los espermatozoides. Los ovocitos de 60 µm de diámetro, una

vez fecundados inician rápidamente su desarrollo y se convierten en larvas trocófora

unas pocas horas después de la fecundación, para transformarse en larvas véliger de

charnela recta a las 24 h. La etapa de vida planctónica del ostión se prolonga de dos

a tres semanas, tiempo en el cual la larva crece y modifica su forma y

comportamiento dejando su vida libre nadadora para fijarse a un sustrato mediante la

secreción de la glándula cementante localizada en el pie. A partir de este momento la


larva sufre una metamorfosis perdiendo el velum y desarrollando sus branquias, por

lo que la larva elige el sustrato y adhiere su valva izquierda a éste iniciando su vida

sésil similar a la del adulto (Mazón-Suástegui, 1996).

El ciclo reproductivo de los ostiones en zonas templadas ha sido ampliamente

estudiado; sin embargo, existe poca información para especies tropicales y

subtropicales. El ostión de placer, presenta variaciones estacionales en el estado

gonadal, presentando dos picos de maduración y desove al año (Frías-Espericueta et

al., 1997).

Las etapas del desarrollo reproductivo de C. corteziensis han sido observadas y

descritas para organismos silvestres por Cuevas-Guevara y Martínez-Guerrero (1978),

durante un ciclo anual en San Blas, Nayarit, y para organismos en cultivo en el Estero

Navopatia, Bahía de Agiabampo, Sonora, por Ruiz-García (2006). En San Blas, el

ostión de placer desova durante los meses de Marzo-Agosto con un máximo en Abril,

mientras que en Agiabampo, la especie tiene un comportamiento protrándrico y

sexualmente precoz, con dos desoves parciales, durante Mayo-Junio y Septiembre-

Octubre (Ruiz-García, 2006).

La temperatura es determinante en el desove de Crassostrea corteziensis, ya

que este se presenta solamente por arriba de los 25.5 °C. Es interesante notar que la

salinidad no ejerce -aparentemente- una marcada influencia en el desarrollo de la

gónada, sin embargo, es determinante como estímulo para desencadenar el desove.

De acuerdo con Cuevas-Guevara y Martínez-Guerrero (1978), durante el verano de


1973 en San Blas, Nayarit, se registraron variaciones importantes en la salinidad,

desde 32 ups en junio hasta 5.5 ups en septiembre, y sin embargo, esta variación no

motivó la detención del proceso de desove que la especie presentó durante ese

periodo. Por su parte, Ruiz-García (2006) no relaciona directamente la salinidad con

el proceso reproductivo del ostión de placer cultivado en el Estero Navopatia, Bahía

de Agiabampo, Sonora.

1.5. Producción de semillas y sistemas de engorda.

La producción intensiva de semilla de moluscos bivalvos en laboratorio es

actualmente una práctica común en todo el mundo, y mediante su aplicación es

posible generar la semilla requerida para la producción acuícola en casi cualquier

época del año, permitiendo la planeación y efectividad del cultivo (Bardach et al.,

1990; Helm et al., 2004; Mazón-Suástegui et al., 2001a, 2001b).

Al ser un insumo esencial en la producción, el aseguramiento de la oferta de

semilla es uno de los aspectos mas importantes que se debe resolver para establecer

la factibilidad del cultivo de cualquier especie de bivalvo. Existen dos fuentes posibles

de semilla para el cultivo: la semilla obtenida del medio natural y la obtenida por

reproducción controlada en laboratorio (Quayle y Newkirk, 1986).

En el estado de Nayarit, el cultivo de C. corteziensis se ha basado únicamente

de la colecta de semilla silvestre, utilizando para su engorda el sistema de sartas y

balsas suspendidas. A partir del 2002, en la parte central de Sinaloa se cultiva el


ostión de placer a partir de semilla individual producida en el laboratorio, utilizando

canastas ostrícolas de plástico (Mazón-Suástegui et al., 2002a; 2002a).

Para la producción de semilla en laboratorio es necesario contar con un

conocimiento amplio de la biología de la especie objetivo. Entre los aspectos más

importantes destacan las necesidades básicas para maduración de los reproductores,

las condiciones para crianza larvaria y el asentamiento de las postlarvas (Mazón-

Suástegui, 1996; Robles-Mungaray, 2004).

Una etapa fundamental que cierra el ciclo en la producción controlada de

moluscos bivalvos, es la preengorda de semillas hasta una talla manejable. Para un

adecuado manejo de los organismos a partir de la fase post-larvaria y juvenil

(fijación-semilla, spat-seed), se utilizan exitosamente diversos dispositivos con flujo

ascendente, con flujo abierto o recirculante, utilizando como alimento dietas

naturales y artificiales, o una combinación de las mismas (Mazón-Suástegui et al.,

2001a, 2002a; Mazón-Suástegui, 2005; Ruiz-Ruiz, 2008).


1.6. Infraestructura de investigación y producción de moluscos bivalvos en México.

Actualmente en el Noroeste de México existen diversos laboratorios con la

capacidad técnica, científica e infraestructura suficiente para la producción de

semillas de moluscos bivalvos nativos a escala experimental, piloto o comercial. Las

unidades experimentales pertenecen a instituciones educativas y de investigación,

como el Laboratorio de Acuacultura en la Unidad Pichilingue de la Universidad

Autónoma de Baja California Sur, y el Laboratorio de Larvicultura de Moluscos del

Centro de Investigaciones Biológicas del Noroeste, ambos en La Paz, Baja California

Sur (B.C.S.), y los laboratorios de acuacultura del Instituto de Investigaciones

Oceanológicas -UABC y del CICESE (Ensenada, Baja California), entre otros.

Entre los laboratorios privados pueden citarse a: Maxmar Mariscos S.A. de C.V.

(Ensenada, B.C.), Productos Marinos Baja en Erendida BC, Sea Farmer S.A. de C.V.

(Los Mochis, Sinaloa), Maricultura del Pacífico S.A. de C.V. (Bahía de Kino, Sonora),

Acuacultura Robles (La Paz, B.C.S.) y Bivalvos del Pacifico en Bahía Asunción BCS. El

Centro Reproductor de Especies Marinas del Estado de Sonora (CREMES)

perteneciente al Instituto de Acuacultura del Estado de Sonora (Bahía de Kino, Son.),

opera desde hace mas de 20 años a una escala de producción comercial, gracias a su

dimensión y tanques de cultivo larvario de hasta 70 m3 de capacidad, que le ha

permitido obtener grandes producciones de diversas especies de moluscos bivalvos,

incluido el ostión de placer. Otro laboratorio comercial es el de la empresa Sea


Farmers, ubicada cerca de Los Mochis, Sinaloa (Robles-Mungaray, 2004). Con 25

tanques de 25 m3 para cultivo larvario y dispositivos específicos para fijación y

preengorda de semilla, fue diseñado originalmente para producir semilla de hacha

china Atrina maura, pero ha diversificado su producción a otros moluscos bivalvos,

incluyendo el ostión de placer.

En el Centro de Transferencia Tecnológica (CTT-CIBNOR), en La Paz, B.C.S, se

dispone de un laboratorio de escala intermedia, que inició en 2005 actividades de

investigación, validación de tecnología y escalamiento productivo de semilla de ostión

de placer C. corteziensis y almeja mano de león N. subnodosus. Ahí se han producido

también semillas de almeja catarina A. ventricosus, ostión japonés C. gigas y ostión

Kumamoto C. sikamea. El CTT-CIBNOR dispone de 8 tanques de 14 m3 para cultivo

larvario y dispositivos para maduración de reproductores, fijación larvaria y

preengorda de semilla. El proyecto fue financiado por los programas Alianza Contigo

de SAGARPA y Avance de CONACYT, para estudios de Ultima milla que incluyen

diseño integral de instalaciones y prototipos para la validación y escalamiento de

tecnología para la producción de semilla de ostión de placer y almeja mano de león,

así como los estudios respectivos para su engorda en el mar, operando en vinculación

con 3 empresas privadas: Ostrícola Guevara y Acuícola Casa Blanca ambas empresas

del estado de Sinaloa y Dunas Doradas del Guerrero Negro BC (Mazón-Suástegui et

al., 2004, 2005, 2006).


Como se puede apreciar, en la región Noroeste de México se están haciendo

grandes esfuerzos para el desarrollo y la estandarización de técnicas para la

producción de semilla de especies de alto potencial como el hacha china Atrina

maura, mano de león N. subnodosus y el ostión de placer C. corteziensis (Robles-

Mungaray et al., 2001; Robles-Mungaray, 2004; Mazón-Suástegui et al., 2001a;

2002a, 2004, 2006). Sin embargo, por diversos motivos de tipo biológico, patológico,

o financiero, aun no se ha logrado consolidar una biotecnología eficiente para

garantizar la producción sostenida y a precio competitivo de semilla de ostión de

placer durante todo el año, lo cual sí se tiene a nivel mundial para el ostión japonés

C. gigas.


2. Antecedentes.

El ostión de placer, C. corteziensis, ha sido capturado artesanalmente durante

muchos años en Sonora, Sinaloa y Nayarit. Actualmente su oferta es muy reducida

debido a que las poblaciones naturales se han reducido notablemente por factores

naturales y antropogénicos como la contaminación ambiental, la reducción en los

efluentes de los ríos por la construcción de presas y el riego agrícola, y la

sobreexplotación pesquera. No obstante lo anteriormente expuesto, el ostión de

placer mantiene su demanda en un mercado regional y nacional insatisfecho, lo que

lo ubica como una de las especies nativas con mayor potencial para la acuacultura

intensiva (Mazón-Suástegui et al., 2001a, 2001b, 2002a, 2002b; Chávez-Villalba et

al., 2005, 2008).

El ostión de placer es una especie de distribución en zonas tropicales. Existe

bibliografía general como la realizada por Angell (1986), en la cual hace una amplia

descripción de las especies de ostras tropicales, abordando temas como su biología,

reproducción y técnicas de cultivo.

Existen además diversos trabajos entre los que se pueden mencionar el

realizado por Devakie y Ali (2000), los cuales determinaron el efecto de la

temperatura, la salinidad y la alimentación sobre la metamorfosis en larvas de

Crassostrea iredalei. Respecto al efecto de la salinidad sobre larvas de ostión se

puede también mencionar el trabajo realizado por Nell y Holliday (1988), quienes


evaluaron el efecto de la salinidad sobre el crecimiento y supervivencia en larvas y

juveniles de Saccostrea commercialis y de Crassostrea gigas.

Entre los estudios reportados para esta especie se pueden mencionar a Escobar

de la Llata (1979); Cortés-Guzmán y Martínez-Guerrero (1978); Cuevas-Guevara y

Martínez-Guerrero (1978); Barraza-Guardado et al. (1983); Bush-Medina y Castro-

Castro (1990); Páez-Osuna et al., (1991); Frías-Espericueta et al., (1997), con

algunos trabajos en biología y ecología.

Así como, son de destacar los trabajos realizados por Solís Celada (1982);

Robles-Mungaray y Hoyos-Chaires (1989); Hoyos-Chaires y Robles-Mungaray (1990);

Mazón-Suástegui et al., (2001a.); Mazón-Suástegui et al., (2001b), Chávez-Villalba et

al., (2005); Cáceres-Puig (2005); Leyva-Miranda (2005) y Ruiz-García (2006), con

trabajos sobre la producción de semilla en laboratorio, preengorda utilizando dietas

artificiales y la engorda en el campo, así como los trabajos de Rodríguez-Romero et al.,

(1978a); Rodríguez-Romero et al., (1978-b), en citogenética.

Para desarrollar integralmente el cultivo del ostión de placer, son muchos los

aspectos aun desconocidos o con un grado parcial de conocimiento. No se conocen y

dominan a suficiencia diversos aspectos relativos al manejo de reproductores, su

maduración en laboratorio, el desove y fertilización, cultivos larvarios, fijación y

metamorfosis de larvas pedivéliger. Sin embargo, son grandes los esfuerzos que en

diversas instituciones se han hecho para la integración de conocimientos

encaminados a desarrollar dicha biotécnia y garantizar su aplicación en escala


comercial (Robles-Mungaray y Hoyos-Chaires, 1989; Hoyos-Chaires y Robles-

Mungaray, 1990; Mazón-Suástegui et al., 2001a; 2002a).

En los 80´s se operaba un laboratorio productor de semillas de ostión en San

Blas, Nayarit y se tenía un buen nivel de desarrollo tecnológico básico, con

expectativas de lograr en un mediano plazo, la producción sostenida de semillas de

ostión de placer. La fijación larvaria se realizaba en “concha madre”, para cultivo en

sartas suspendidas en balsas flotantes. Esta situación desafortunadamente se perdió

por diversas causas, y de manera simultánea ganó terreno el cultivo intensivo de la

especie introducida C. gigas , cuyo abasto de larva fijadora y de semilla era seguro en

el mercado internacional y parcialmente asegurado en el mercado nacional (Mazón-

Suástegui, 1996).

Independientemente del mayor o menor dominio tecnológico para la producción

de semilla y para su engorda en el mar a talla comercial, otro factor limitante para el

desarrollo ostrícola y para la seguridad financiera de los ostricultores, son los eventos

masivos de mortalidad, que han ocurrido tanto en los laboratorios, como en las

granjas de engorda. La región Pacífico de la península de Baja California ha sido

afectada en una menor proporción que el estado de Sonora (Vázquez-Juárez et al.,

2006). Sin embargo, entre diciembre de 1997 y mayo de 1998 ocurrieron

mortalidades importantes de juveniles de C. gigas en una granja en San Ignacio,

B.C.S. Posteriormente, se han registrado mortalidades del 80% de juveniles


aparentemente sanos en periodos cortos de tres a cuatro días en granjas ostrícolas

de Sonora, Baja California (B.C.) y B.C.S. Estas mortalidades masivas, en algunos

casos inexplicadas y otras ocasionadas por el patógeno viral llamado Herpes Virus

(OsHV-1), han aumentado el interés académico en las especies alternativas, como C.

corteziensis, para ampliar las posibilidades de desarrollo de la ostricultura en el

noroeste de mexicano.

Las mortalidades masivas de C. gigas en B.C.S. han sido asociadas a

perturbaciones ambientales, en especial de temperatura, provocados por la corriente

calida ocasionada por El Niño (Carvalho-Saucedo, 2003). Se maneja también la

hipótesis del efecto de endogamia ocasionada por la falta de renovación del pool

genético de reproductores, a partir de la introducción de esta especie en América

(Corral-Palomares, 2003).

Como puede verse, el principal factor limitante para el cultivo del ostión de

placer es que no existe suministro asegurado de semilla de laboratorio en el mercado

nacional o internacional para sustentar cultivos comerciales. Un problema mayor es

que paralelamente a la importación de semilla de ostión japonés, se han introducido

agentes patógenos potenciales para especies nativas como C. corteziensis, lo cual

habrá que considerar seriamente para el futuro de la industria ostrícola nacional

(Vázquez-Juárez et al., 2006). Sin embargo, en instituciones como el CIBNOR se

desarrolla investigación para seleccionar pies de cría genéticamente seleccionados, lo


cual debería permitir en el mediano plazo, el cierre de fronteras a la importación de

semilla, eliminando con ello los riesgos asociados de epizootias que ya han afectado

seriamente a los productores del Pacífico mexicano.

Chávez-Villalba, et al., (2005), menciona que las poblaciones naturales de ostión

de placer se han decrecido significativamente y en algunos casos desaparecido por

causas desconocidas en los estados de Sinaloa y Sonora, adicionalmente, Cáceres-

Martínez, et al., (2008), detectaron el protozoario Perkinsus marinus en poblaciones

naturales y de cultivo en Nayarit. La presencia de este patógeno se asocia con la

introducción sin control del ostión americano C. virginica en la costa de Nayarit, y es

determinante conocer las posibles implicaciones negativas que este patógeno puede

tener en el cultivo de esta especie.


3. Justificación.

La ostricultura en el Pacifico mexicano se basa principalmente en la especie

exótica de aguas templadas C. gigas, que periódicamente presenta altas mortalidades

en el noroeste de México, con lo cual, no se puede aprovechar el gran potencial de

los sistemas lagunares altamente productivos del Pacífico mexicano, destacando los

de la zona sur de Sonora, todo Sinaloa, y Nayarit, e incluso sitios específicos en los

estados ubicados más al sur, hasta Chiapas.

Por lo anterior es necesario ofrecer alternativas biológica y tecnológicamente

viables para mejorar y ampliar la ostricultura, mediante la domesticación del ostión

nativo C. corteziensis. Para ello se requiere la estandarización de técnicas de

producción, la producción sistemática de semillas en el laboratorio y la aplicación de

las mejores zootecnias de engorda.

La existencia de numerosos cuerpos lagunares y estuarinos en la zona tropical

del Pacífico mexicano, algunos de los cuales reciben efluentes (aguas verdes) de

granjas camaronícolas, puede conjugarse con el dominio tecnológico de una ostra

nativa y ecológicamente adaptada a esas condiciones ambientales, como C.

corteziensis. Si esto se hace posible, se puede ampliar sensiblemente la frontera

ostrícola limitada de C. gigas y ampliar su cobertura a otros estados costeros

mexicanos y países centroamericanos (Mazón-Suástegui et al., 2002a, 2002b).


4. Objetivos.

4.1 Objetivo General.

Ampliar el conocimiento actualmente existente sobre el cultivo del ostión de

placer C. corteziensis, desde la producción de semilla en el laboratorio hasta su

cultivo intensivo a talla comercial.

4.2 Objetivos Particulares.

Describir el desarrollo larval de C. corteziensis en condiciones de laboratorio.

Evaluar el efecto de la salinidad durante el cultivo larvario.

Determinar el efecto de la densidad de fijación en la metamorfosis de larvas

pedivéliger y en la producción de semillas en laboratorio.

Evaluar el crecimiento, supervivencia durante la etapa de engorda en el mar

de semillas de C. corteziensis alimentadas durante la etapa de preengorda,

con tres diferentes dietas: 1) 100% microalga; 2) 50% de la ración diaria de

microalgas y un complemento artificial de harina de trigo (Microalga50-Trigo);

3) 50% de la ración diaria de microalgas y un complemento artificial de

fécula de maíz (MaizenaMR)(Microalga50-Maíz).


5. Materiales y Métodos.

5.1. Colecta y traslado de reproductores e inducción al desove.

Los reproductores se colectaron en el sistema lagunar Bahía de Ceuta, Sinaloa

transportándose en seco, vía aérea al Laboratorio de Moluscos del CIBNOR en La Paz,

B.C.S. Los organismos se lavaron con un cepillo con cerdas de plástico para eliminar

epibiontes y materia orgánica. La inducción al desove se realizó mediante choques

térmicos, colocando los organismos en un recipiente con 60 L con agua de mar

filtrada a 1 µm, a 19 ºC de temperatura y 38 ups, durante 30 min. Después de ese

tiempo se cambiaron a otro recipiente similar con agua de mar a 27 ºC, repitiéndose

este paso hasta que los organismos respondieron al estimulo térmico, iniciando la

expulsión de los gametos. Una vez estimulados, los reproductores se colocaron en

una canasta tipo NestierMR, la cual se colgó en el interior de un tanque cilindro-cónico

de fibra de vidrio de 5000 L con agua de mar filtrada a 1 µm, a 27 ºC y 38 ups donde

continuó la expulsión de los gametos. Este procedimiento de estimulación se conoce

como desoves masivos o grupales (Robles-Mungaray y Serrano-Guzmán, 1995;

Mazón-Suástegui, 2005).

Para evitar el problema de poliespermia, se retiraron del tanque los machos que

expulsaron espermatozoides por lo menos una vez. Posteriormente se incrementó el

flujo de aire para que los gametos, se mantuvieran en suspensión, para obtener así

una distribución homogénea y mejores condiciones para que se llevase a cabo la

fecundación y el desarrollo embrionario subsecuente.


5.2. Cultivo larval.

Terminado el desarrollo embrionario, se evaluó la cantidad de larvas véliger de

charnela recta o larvas "D" en el tanque de cultivo, obteniendo así un indicador del

éxito del desove (Robles-Mungaray y Serrano-Guzmán, 1995; Valdez-Ramírez et al.,

2000). Para dicha cuantificación se tomó una alícuota de 20 mL en una caja de Petri

y se fijó en formol al 3%, concentrando las larvas en el centro mediante movimientos

circulares, para finalmente cuantificar la población y con la ayuda de un microscopio

compuesto.

El experimento diseñado para determinar el efecto de la salinidad se inicio al

sexto día de cultivo larvario, transfiriendo las larvas a cilindros de fibra de vidrio de

400 L de capacidad llenados previamente con agua de mar filtrada a 1 µm, a 27±1

ºC de temperatura. Un diseño aleatorio simple de un factor fue empleado para este

estudio. Los niveles (tratamientos) utilizados en este experimento fueron tres

salinidades (25, 32, 39 ups), la salinidad se logró mezclando agua de mar y agua

dulce previamente filtrada a través de un filtro de algodón de 1 µm de porosidad, con

carbón activado en su interior. Los tratamientos se realizaron por triplicado, a una

densidad inicial de 6 larvas/mL para cada uno de ellos y sus réplicas. Cada 72 h se

hizo un recambio del 100% del agua drenando por completo los cilindros de cultivo.

Las larvas se retuvieron en un tamiz de 40 µm de luz de malla (Fig. 5) y se lavaron

utilizando un tamiz con una apertura de luz de malla que permitiera el paso de la

larva de mayor tamaño encontrada en la muestra (Tabla I).


Tabla. I. Relación del tamaño de las larvas con los tamices utilizados en el cultivo larvario de C. corteziensis.

Luz de Malla (µm)

Longitud de la Larva (µm)

Luz de Malla (µm)

Longitud de la Larva (µm)

40 57 130 184

50 71 140 198

60 85 150 212

70 100 160 226

80 113 170 240

90 127 180 254

100 141 190 269

110 156 200 283

115 163 210 297

118 167 220 311

120 170 236 334

El registro del crecimiento y la supervivencia se realizó cada 72 h durante los

recambios totales de agua, siguiendo la misma metodología utilizada en la evaluación

inicial del cultivo, es decir, midiendo 30 larvas/muestra con ayuda de una reglilla

graduada adaptada al ocular del microscopio. Se tomaron fotografías para cada una

de las etapas del desarrollo larvario con una cámara Digital Nikon S1.


Figura 3. Tanques de fibra de vidrio de 400 L donde se realizó el experimento de

cultivo larvario a tres salinidades (25, 32, 39 ups).

Figura 4. Drenaje de tanques de cultivo y captación de larvas en los tamices receptores.

Figura 5. Tamizado selectivo de larvas de C. corteziensis utilizando mallas de diferente luz.

Figura 6. Larva fijadora de ostión obtenida al concluir su periodo de vida pelágica.


5.3. Alimentación.

Las larvas se alimentaron con una mezcla de las microalgas Isochrysis galbana y

Chaetoceros calcitrans (1:1), a una densidad inicial de 3 x 104 cel/ml, en los tres

tratamientos. Se realizaron recambios de agua del 100% cada 72 h. La cantidad de

alimento fue incrementándose gradualmente de acuerdo al consumo observado, para

tener al final del experimento, una concentración de 8 x 104cel/ml. Para la captación

de larvas durante los recambios de agua se utilizaron tamices de distinta luz de malla

elegidos de acuerdo al crecimiento de las mismas.

5.4. Asentamiento y metamorfosis de larvas pedivéliger.

Las larvas utilizadas para la fijación se seleccionaron por tamaño, con la ayuda

de un tamiz de 236 µm, separando solo así las larvas maduras de una longitud de

333 µm o mayores. Las larvas maduras presentan mancha ocular y pié activo,

indicadores de que ya se acerca el momento del asentamiento y la metamorfosis. Las

larvas inmaduras, de talla menor, fueron regresadas al tanque de cultivo larvario.

La fijación larvaria se realizó en charolas de fibra de vidrio con fondo malla

NitexMR de 180 µm, sobre la cual se colocó una capa de aproximadamente 1 mm de

espesor de concha molida de ostión con el fin de obtener semilla individual (Figs. 7 y

8). Se manejaron tres densidades o tratamientos de fijación: 3, 7 y 10 larvas/mm2 y

cada tratamiento se realizó por triplicado.


Las larvas en fijación fueron mantenidas con flujo continuo de agua y alimento a

razón de 0.5 L/min. Después de 48 h en fijación, se separaron los juveniles

metamorfizados con un tamiz de 315 µm, colocando de nuevo en las charolas de

fijación -por otro periodo de tiempo similar- a las larvas que aun no se habían

metamorfizado, junto con el sustrato libre de fijaciones para repetir la operación de

tamizado 48 h después, en tres ocasiones más. Las ¨fijaciones¨ así obtenidas fueron

cuantificadas volumétricamente y pasadas a unidades de preengorda con sistema de

surgencia, dentro del laboratorio.

Figura 7. Colocación del sustrato de fijación (concha molida de ostión), sobre las charolas (Diseño: Mazón-Suástegui, J.M.).

Figura 8. Distribución de larvas competentes (Pedivéliger oculadas) en las charolas de fijación (Diseño: Mazón-Suástegui, J.M.).


5.5. Preengorda de Juveniles.

Las pre-semillas obtenidas durante la fijación se mantuvieron en unidades

circulares de preengorda (Fig. 9), con 12 cilindros de falso fondo y recirculación

ascendente ("upwelling") por medio de aerosifones, cuyo diseño, componentes y

operación son descritas a detalle por Mazón-Suástegui (2005) y Mazón-Suástegui et

al., (2008).

Figura 9. Unidad circular utilizada para la preengorda de semilla de C. corteziensis en el CIBNOR, S.C. (Diseño: Mazón-Suástegui, 2005).


Durante esta etapa la limpieza fue diaria cambiando el agua y lavando los

cilindros con agua dulce para evitar la proliferación de epibiontes sobre las valvas de

los juveniles, y posteriormente las unidades de preengorda se llenaron con agua y

alimento nuevo. Cada semana se realizaba un tamizado para separar por tamaño la

semilla, utilizando una serie de tamices de tamaño progresivo (Tabla II),

manteniéndose en preengorda los organismos hasta que alcanzaron la talla de

siembra de 3 a 4 mm (Mazón-Suástegui et al., 2001a, 2002a).

Durante la etapa de preengorda, las semillas se alimentaron con tres diferentes

dietas: 1) 100% microalga; 2) 50% de la ración diaria de microalgas y un

complemento artificial de harina de trigo (Microalga50-Trigo); 3) 50% de la ración

diaria de microalgas y un complemento artificial de fécula de maíz

(MaizenaMR)(Microalga50-Maíz). Ya en campo, se llevó a cabo una engorda

experimental, evaluando el crecimiento de la semilla para determinar algún posible

efecto, favorable o desfavorable, de esta dieta de preengorda.


Tabla II. Relación del tamaño de los juveniles con los tamices utilizados en la preengorda C. corteziensis.

Luz de Malla (µm)

Tamaño del juvenil

retenido (µm)

315 445

500 707

710 1004

1200 1697

1400 1980

1600 2263

1800 2545

2200 3111

5.6. Siembra y preengorda en el mar.

La semilla fue cuantificada mediante el método volumétrico y empacada en

bolsas de malla sintética, las cuales se colocaron en hieleras de unicel con hielo en

gel, manteniendo una temperatura de 18±2 °C, Las semillas se transportaron en seco

vía aérea a la ciudad de Culiacán, y de ahí por carretera al sitio de cultivo, cerca de la

comunidad de Playa Las Glorias, Guasave, Sinaloa.

La siembra se llevó a cabo utilizando bolsas de 2,500 cm2 construidas con malla

mosquitera, estableciendo una densidad inicial de 2,000 semillas/bolsa. Las bolsas de

siembra se colocaron individualmente en canastas ostrícolas estibables tipo MIK-

PirámideMR con 3025 cm2 de área utilizable, formando módulos de 5 canastas útiles y


una tapa, que fueron atados con un cabo de polipropileno de 3/8". Estos módulos se

colocaron en una línea larga para su cultivo en suspensión. Se consideró finalizada la

etapa de preengorda una vez que se obtuvieron ostrillas con talla adecuada para

colocarse libremente sobre las canastas sin necesidad de la bolsa de siembra (Mazón-

Suástegui et al., 2001b, 2002b).

5.7. Engorda a talla comercial.

La siembra para la engorda se realizó a una densidad del 75% de ocupación

del área disponible en las canastas (Leyva-Miranda, 2005; Ruiz-García, 2006;

Contreras-Mendoza y Medina-Sánchez, 2006). Mensualmente se reemplazaron las

canastas sucias por canastas limpias y se realizaron biometrías de las ostrillas,

considerando como parámetros de respuesta la longitud, altura y espesor de la

concha en centímetros, y el peso en gramos. Se midieron 30 organismos para

considerar el supuesto de normalidad de la población (Daniel, 2005), las mediciones

se realizaron por triplicado para cada tratamiento, realizando reducciones progresivas

en el número de organismos por canasta para ajustar y conservar la densidad inicial

establecida del 75% de cobertura. Además se tomaron parámetros físicos-químicos

del agua de mar como temperatura, expresada en grados Celsius (°C), oxigeno

disuelto expresado en mg/L, salinidad expresada en ups y pH.


5.8. Sitio de cultivo.

El sitio de cultivo para la engorda se localizó en Playa Las Glorias, Guasave,

Sinaloa en el campamento de la empresa Promotora del Pacífico S.A. de C.V. La

ubicación específica de la zona de cultivo, se muestra en la figura 10.

El sitio presenta características adecuadas para el desarrollo del cultivo de C.

corteziensis ya que no existe un asentamiento humano grande en las cercanías y se

tiene registro de la presencia de esta especie en la zona, aunque el recurso natural

prácticamente desapareció en el Estado de Sinaloa (Mazón-Suástegui, et al., 2001a ).

Figura 10.- Localización del sitio de cultivo, cercano a Playa Las Glorias, en el Municipio de Guasave, Sinaloa.( Google Earth, 2009).


5.9. Tratamientos Estadísticos.

Para evaluar el crecimiento de las larvas de C. corteziensis se ajustó la longitud

de las larvas al modelo polinomial de segundo orden y=y0+ax+bx2 determinando los

coeficientes de correlación y las ecuaciones que describen cada una de las curvas de

crecimiento para cada una de las diferentes salinidades, mediante el Software

GrahpPad Prism. Posteriormente se realizó una comparación de las curvas de

crecimiento mediante el Software GraphPad Prism.

Para evaluar la supervivencia de los tratamientos durante el cultivo larvario se

determinó el porcentaje final de supervivencia al día 20 y se realizó una conversión

de los porcentajes resultantes a arco seno para poder evaluarlos mediante un análisis

de varianza de una vía. Al encontrarse diferencias significativas entre ellas se realizó

una prueba a posteriori de rangos múltiples (95% Tukey HDS).

Para evaluar la eficiencia de la metamorfosis a diferentes densidades, se

determinó el porcentaje de fijación como parámetro a evaluar de cada uno de los

tratamientos. Para poder comparar entre cada uno de ellos, se hizo una conversión

de los porcentajes resultantes a arco seno para poder evaluarlos mediante un análisis

de varianza de una vía. Al encontrarse diferencias significativas entre ellas se realizó

una prueba a posteriori de rangos múltiples (95% Tukey HDS).

El crecimiento de la semilla (longitud) en el campo (engorda) y su relación con

el origen de la dieta natural o artificial previamente suministrada durante la fase de


preengorda en laboratorio se ajustaron al modelo polinomial de segundo orden

y=y0+ax+bx2 determinando los coeficientes de correlación y las ecuaciones que

describen cada una de las curvas de crecimiento para cada una de las diferentes

orígenes de la pre-engorda mediante el Software GrahpPad Prism. Posteriormente se

realizó una comparación de las curvas de crecimiento mediante el Software GraphPad

Prism. Así mismo, se calculó la Tasa Instantánea de Crecimiento mensual en cada de

los tratamientos de acuerdo a la siguiente formula:

TIC=L2 – L1 (1)

Donde: L2 es igual a la longitud mensual de los ostiones en cada tratamiento y L1 es

igual a la longitud inicial promedio de los ostiones de cada tratamiento.

Para evaluar la supervivencia de los tratamientos se determinó el porcentaje

final de supervivencia y para poder comparar entre cada uno de ellos se hizo una

conversión de los porcentajes resultantes a arco seno para poder evaluarlos mediante

un análisis de varianza de una vía. Al encontrarse diferencias significativas entre ellas

se realizó una prueba a posteriori de rangos múltiples (95% Tukey HDS).


6. Resultados.

Los reproductores de C. corteziensis recibidos en el laboratorio presentaron una

talla promedio de 10 ± 2.5 cm de longitud (n=42). El estimulo térmico aplicado fue

suficiente para obtener una respuesta adecuada, por lo que los primeros organismos

que desovaron lo hicieron aproximadamente 1 h después de recibir el primer estimulo

térmico en el tanque de 5000 L.

6.1. Cultivo larvario

Las primeras larvas véliger de charnela recta se obtuvieron a las 20 h de iniciado

la primera expulsión de gametos, a una temperatura de cultivo de 27 ± 1°C. La

longitud inicial promedio de las larvas véliger a las 24 h posteriores a la fecundación

fue de 73.2 ± 2.9 µm de longitud (dorso-ventral) y 60.8 ± 1.8 µm de altura (antero-

posterior) (n=30), las larvas a esta edad ya presentaron una corona de cilios llamada

velum la cual le sirve para desplazarse y crear corriente para acercarse el alimento

(Fig. 11). En la figura 12 se pueden apreciar larvas véliger de 6 días de edad con las

que se inicio el experimento de salinidad, sus medidas promedio fueron de 110 ± 10

µm de longitud y 103.17± 7.7 µm de altura (n=30).

Conforme avanzó el cultivo, las larvas véliger fueron tomando una forma circular

perdiendo gradualmente la charnela recta (Figs. 13 y 14) y con ello la forma

característica de “D” que identifica a los primeros estadios de los moluscos bivalvos. A

los 10 días las larvas presentaron una forma casi circular y a partir del día 15 se

empezó a formar el umbo (Fig. 15). A los 18 días aparecieron las primeras larvas


pedivéliger, las cuales se caracterizan por presentar un pie funcional y la perdida

gradual del velum, así como la presencia de una mancha obscura llamada mancha

ocular (Fig. 16).

El velum inicia su regresión pudiendo moverse a distancias cortas para la

selección de un sustrato. Durante la fijación inicia un proceso de reorganización

anatómica de la larva. En estas condiciones, pierden la capacidad de desplarse en la

columna de agua por la degeneración gradual del velum (Bayne, 1982), y las larvas

se desplazan alternando el nado con desplazamientos mediante el pie (Fig. 17)

Posterior al proceso de fijación se obtienen presemillas o Fijaciones las cuales se

caracterizan por presentar un anillo de crecimiento o ¨disoconcha¨ (Fig. 18).


Figura 11. Larva véliger de C. corteziensis, de charnela recta mostrando el velum. 100X.

Figura 12. Larva véliger de charnela recta de 6 días de edad en reposo. 100X. Barra =

40 m.

Figura 13. Larva véliger de charnela recta

de 8 días de edad. 400X. Barra = 50 m.

Figura 14. Larva véliger de charnela recta de 10 días de edad donde se aprecia la disminución del tamaño de la charnela.

400X. Barra = 30 m


Figura 15. Larva umbonada de 15 días de edad. 40X. Barra =100 m.

Figura 16. Larva pediveliger temprana de 18 días de edad 100X.

Figura 17. Larva umbonada de 20 días mostrando el pie activo. 400X. Barra =100

m.

Figura 18. Postlarva (fijación o presemilla) de C. corteziensis de 25 días mostrando la

disoconcha. 100X Barra = 50 m.


6.2. Crecimiento y supervivencia larvaria a diferente salinidad.

Las curvas de crecimiento larvario de C. corteziensis (Fig. 19), se ajustan al

modelo polinomial de segundo orden y=y0+ax+bx2 con coeficientes de correlación

altos según se muestra en la tabla III. De acuerdo con la comparación de curvas

realizado, los datos indican que no existen diferencias significativas (P<0.05) entre

tratamientos.

La supervivencia para las salinidad de 25 ups fue del 20.4%; mientras que para

la salinidad de 32 ups fue de 23.3% y por último para la salinidad de 39 ups fue del

18.7% (Fig. 20). El análisis de varianza de una vía aplicado para comparar la

supervivencia larvaria, indica que no existen diferencias significativas entre los

porcentajes de supervivencia larvaria a las diferentes salinidades (P<0.05) (Tabla IV).

Tabla III. Ecuaciones de ajuste para el crecimiento de larvas de C. corteziensis, cultivadas a diferentes salinidades (25, 32, 39 ups) y temperatura de 27 ± 1 °C .

Salinidad (ups)

Ecuación de ajuste. R2

25 Y = 35.034 + 12.557x + 1.0243x2 0.9473

32 Y = 46.19 + 5.8805x + 2.1532 x2 0.9684

39 Y = 44.378 + 8.7247x + 1.7325 x2 0.979


Tiempo (días)

5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 16 17 18 19 20 21

Longitud µ

m

50

100

150

200

250

300

350

25 UPS

32 UPS

39 UPS

Figura 19.- Crecimiento larvario (Longitudes) de Crassostrea corteziensis cultivado a salinidades de 25, 32, 39 ups, y temperatura de 27 ± 1 °C .


Tiempo (días)

5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 16 17 18 19 20 21

Superv

ivenci

a %

0

10

20

30

40

50

60

70

80

90

100

110

25 UPS

32 UPS

39 UPS

Figura 20.- Supervivencia larvaria de C. corteziensis, cultivado a salinidades de 25, 32, 39 ups, y temperatura de 27 ± 1 °C .

Tabla IV. Análisis de varianza de una vía para el porcentaje convertido a arco seno, de la supervivencia al final del cultivo larvario de C. corteziensis a salinidades 25, 32 y 39 ups y temperatura de 27 ± 1 °C.

Tratamientos G l CM F P

2 0.028 0.746 0.545

3 0.037


6.3. Asentamiento y metamorfosis larvaria en función de la densidad

Los porcentajes de fijación larvaria y el número de semillas de ostión de placer

obtenidas por tratamiento se presentan en la tabla V. El análisis de varianza de una

vía mostrado en la tabla VI indica que existen diferencias significativas (p=0.00002),

en función de la densidad de fijación.

Tabla V. Resumen de resultados en la fijación larvaria de C. corteziensis en función de la densidad de cultivo.

Densidad de fijación

(Larvas/mm2)

Cantidad de Larva fijadora (No.)

Cosecha de presemilla (No.)

Eficiencia de fijación (%)

3a 906,250 435,000 48

7b 1´812,500 330,056 18.21

10c 3´353,125 855,046 25.5

a, b ,c = Literales diferentes indican diferencias significativas (p < 0.05).

Tabla VI. Análisis de varianza de una vía para evaluar resultados en la fijación larvaria de C. corteziensis en base al arco seno de la eficiencia de fijación (%).

Tratamientos g l CM F P

2 0.064534 245.7681 .000002 6 0.000263


6.4 Engorda en campo.

En 215 días de cultivo, contados a partir de la siembra en el mar, se obtuvieron

organismos de 7.16 ± 0.33 cm de longitud para el tratamiento 1 (dieta previa 100%

microalgas), mientras que para el tratamiento 2 (Dieta previa 50% microalgas y

fécula de maíz), se cosecharon organismos de 7.02 ± 0.06 cm de longitud y para el

tratamiento 3 (dieta previa 50% microalgas y harina de trigo), se obtuvieron

organismos con una longitud de 6.82 ± 0.17 cm (Figs. 21, 22 y 24).

El crecimiento (Longitud) de C. corteziensis en campo, se ajusta al modelo

binomial de segundo orden Y=Y0+ax+bx2. Se encontraron diferencias en función de

la dieta previamente utilizada en el laboratorio durante la fase de preengorda de la

semilla utilizada en campo. Se obtuvieron coeficientes de correlación R² de 0.9525

para el tratamiento 1, de 0.9661 para el tratamiento 2, y por último, para el

tratamiento 3, el coeficiente de correlación fue de 0.9463. De acuerdo a la

comparación de curvas realizada, no se encontraron diferencias significativas en el

crecimiento de C. corteziensis para cada uno de los tratamientos (dieta previa)

evaluados (p > 0.05). Sin embargo, al comparar el mediante el espesor de los

ostiones se encontraron diferencias significativas entre los tratamientos,

encontrándose dos grupos homogéneos, tratamientos 1y 3 y tratamiento 2 (Fig. 23).


Las tasas de crecimiento calculadas para cada uno de los tratamientos fueron

1.89 ± 0.26 mm/dia para el tratamiento 100% microalga, 1.76 ± 0.18 mm/dia para

el tratamiento Maíz-Microalga50 y 1.6 ± 0.27 mm/dia para el tratamiento Trigo-

Microalga50 (Fig. 25).

Tiempo (Dias de Cultivo)

15 30 45 60 75 90 105 120 135 150 165 180 195 210 225

Longitud (

cm)

2

3

4

5

6

7

8

Microalga100

Microalga50

-Maíz

Microalga50

-Trigo

Figura 21. Crecimiento (longitud±es) de C. corteziensis, durante la fase de engorda en campo, en relación a la dieta previamente utilizada durante la fase de preengorda de semilla en el laboratorio.


Tiempo (Dias de cultivo).

15 30 45 60 75 90 105 120 135 150 165 180 195 210 225

Altu

ra (

cm)

0

1

2

3

4

5

6

7

Microalga100

Microalga50

-Maíz

Microalga50

-Trigo

Figura 22.- Crecimiento (altura±es) de C. corteziensis, durante la engorda en campo, en función de la dieta previamente utilizada en el laboratorio durante la fase de preengorda de la semilla.


15 30 45 60 75 90 105 120 135 150 165 180 195 210 225

Esp

eso

r (c

m)

0.5

1.0

1.5

2.0

2.5

3.0

Microalga

Maiz50

Microalga

Trigo50

Microalga

Figura 23.- Crecimiento (espesor±es) de C. corteziensis, durante el cultivo suspendido (engorda), en Playa Las Glorias, Guasave, Sinaloa, en función de la dieta previamente utilizada en el laboratorio durante la preengorda de la semilla utilizada.



15 30 45 60 75 90 105 120 135 150 165 180 195 210 225

Peso

(gr)

0

10

20

30

40

50

60

Microalga100

Microalga50-Maiz

Microalga50-Trigo

Figura 24.- Crecimiento (peso±es) de C. corteziensis durante el cultivo suspendido (engorda), en Playa Las Glorias, Guasave, Sinaloa, en función de la dieta previamente utilizada en el laboratorio durante la preengorda de semilla.

Figura 25.-Tasa instantánea de crecimiento (TIC, longitud) de C. corteziensis durante el cultivo suspendido (engorda), en Playa Las Glorias, Guasave, Sinaloa, en función de la dieta de preengorda de semilla en laboratorio.


Tabla VII. Tasa instantánea de crecimiento (TIC, longitud) de C. corteziensis (Incremento en mm), durante el cultivo suspendido (engorda), en Playa Las Glorias, Guasave, Sinaloa, en función de la dieta de preengorda de semilla en laboratorio.

Día de Cultivo TIC Microalga100 TIC Maíz-Microalga50 TIC Trigo-Microalga50

30 9.89 22.33 37.67

60 86.44 79.67 74.33

94 119.67 134.22 127.44

120 51.44 51.78 70.67

149 57.67 59.67 53.23

181 48.78 29.89 3.54

215 42.56 24.67 16.00

Tabla VIII. Supervivencia de C. corteziensis durante su engorda en Playa las Glorias, Guasave, Sinaloa, en función de la dieta de preengorda de semilla en laboratorio.

Tabla IX. Resultado del análisis de una vía para la supervivencia de C. corteziensis al final de la fase de engorda (día 215), en Playa Las Glorias, Guasave, Sinaloa, en base al arco seno del porcentaje.

Tratamientos Grados de libertad MS F P

2 0.001142 1.961 0.221095 6 0.000582

Tratamiento Semillas sembradas Ostiones cosechados.

Supervivencia final %.

Microalgas100 55,000 17,000 31 Microalgas50-Maíz 55,000 18,000 32.7 Microalgas50-Trigo 55,000 16,000 29


6.5. Parámetros ambientales.

La temperatura menor registrada en la zona de cultivo fue de 18 °C (Tabla X),

en diciembre y la mayor (32 °C) se registró en junio.

El oxígeno disuelto presentó un relación inversa a la temperatura, presentando

los valores mínimos (9.4 Mg/L), cuando se presentaron las mas altas temperaturas

(33° C) y viceversa (11 Mg/L-23.5 ° C). La salinidad presentó el valor más alto (37

ups) durante el mes de junio, coincidiendo con la temperatura más alta registrada.

Por último, los valores de pH se mantuvieron constantes (8.5), durante todo el

periodo de cultivo.

Tabla X. Parámetros ambientales registrados durante el cultivo de C. corteziensis en Playa Las Glorias Guasave, Sinaloa.

Fecha del muestreo

Días de Cultivo Temperatura Oxigeno Disuelto Salinidad pH

9-12-2003 30 23.5 11 32 8.5

8-01-2004. 60 18 10 36 9

11-02-2004. 94 20 15.2 32 8.5

9-03-2004 120 25 10.8 30 8.5

7-04-2004 149 25 10.2 32 8.5

8-05-2004. 181 28 9 38 8.5

10-06-2004. 215 33 9.4 37.5 8.5


7.- Discusión.

En Mexico la ostricultura no ha adquirido el nivel de una verdadera industria,

como lo es en paises como Corea, Francia, Estados Unidos y Japón los cuales han

desarrollado tecnologias eficientes en la produccion de la semillas, la captura de

semilla silvestre y engorda que los coloca como los primeros productores a nivel

mundial (Mazón-Suástegui, 1996). El ostión nativo C. corteziensis es ampliamente

conocido y distinguido por el consumidor nacional con el nombre común de “Ostión

de Placer”. En las estadísticas oficiales se observa una marcada disminución en la

producción pesquera de esta especie, de 800 ton en 1999 a 300 ton en 2003 (Avilés-

Quevedo y Vázquez-Hurtado, 2006).

El ostión de placer ha sido cultivado artesanalmente durante mas de 35 años en

el estado de Nayarit, sobre la base de una colecta aleatoria de semilla silvestre del

medio natural. Por esta misma razón, el crecimiento ostrícola sigue siendo limitado y

no existen aun las condiciones mínimas para asegurar el cultivo comercial de la

especie.

De acuerdo con Caceres et al., 2010, la mayor actividad acuicola de esta especie

esta centrada en el estado de Nayarit, donde la producción de cuatro cooperativas a

alcanzado 800 toneladas metricas por año. La tecnica de cultivo empleadas consisten

de balsas flotantes contruidas con marcos de madera y flotadores, los cuales pueden

ser hechos de barriles de plastico, fibra de vidrio o ambos. Cuerdas con ostiones de

placer, llamadas sartas, que son colgadas de los marcos de madera. Los productores


usan un sistema de cultivo llamado empilotados, donde las sartas son colgadas de

postes horizontales agarrados a los marcos de madera que estan anclados a el fondo

y la fijación natural de larvas dentro de las sartas ocurre entre Mayo y Agosto.

Esta es la razón por la que se ha propuesto la presente investigación, enfocada

al desarrollo e integración de tecnología para el cultivo intensivo y tecnificado de

ostión de placer en canastas ostrícolas, partiendo de semilla producida en ambiente

controlado. Entre las ventajas que esto traería consigo, está la posibilidad de

programar la siembra y la cosecha, y de obtener un producto con excelente

presentación individual para el consumidor y ventajas para el ostricultor.

Se considera que lo anterior es posible, a pesar del estancamiento del cultivo, de

su pesquería declinante y de la oferta de ostión japonés cultivado C. gigas. La

demanda del ostión de placer C. corteziensis mantiene una posición importante en el

mercado regional debido a su calidad organoléptica. En consecuencia, se confirma

que la especie es un candidato ideal para la acuacultura intensiva en bahías y

sistemas estuarinos, e inclusive en granjas camaronícolas, a partir de semilla

producida en laboratorio. Así lo demuestran los estudios realizados por Chávez-

Villalba et al., (2005, 2008); Mazón-Suástegui et al., (2001a, 2001b, 2002a, 2002b,

2004, 2006, 2008); Leyva-Miranda (2005); Contreras-Mendoza y Medina-Sánchez

(2006); Ruiz-García (2006) y Ruiz-Ruiz (2008) y el presente estudio.


7.1. Crecimiento larvario.

Los ostiones del género Crassostrea son considerados organismos eurihalinos

(Quayle y Newkirk, 1986), con la capacidad de adaptarse bien a las fluctuaciones de

temperatura y salinidad (Angel, 1986). Factores intrínsecos como lo son las

caracteristicas hereditarias, la calidad de los ovocitos y la edad de las larvas, asi como

factores extrínsecos como lo son parámetros fisicoquímicos del agua de mar, afectan

el desarrollo de los cultivos larvarios de moluscos bivalvos y su metamorfosis (Hadfiel,

1984; Valdez-Ramírez et al., 2000), siendo la temperatura, la salinidad y la calidad

del agua los principales factores que ejercen influencia directa sobre la fisiología de

los ostiones (Barraza-Guardado et al., 1983).

El ostión de placer Crassostrea corteziensis habita zonas estuarinas con grandes

variaciones estacionales de salinidad y temperatura durante el año. En el presente

trabajo las larvas de C. corteziensis se desarrollaron adecuadamente en las tres

salinidades probadas, lo que denota su capacidad de regulación osmótica (Saleudon y

Wilbur, 1983). Estos resultados evidencian que es una especie eurohalina, como lo es

la gran mayoria de los organismos que habitan zonas estuarinas. Esto pudiera facilitar

el manejo acuicola de esta especie en condiciones adversas de salinidad en estados

como B.C.S. y Sonora donde los escurrimientos pluviales son temporales y escasos,

por lo que los cuerpos de agua costeros de estos estados cuentan con salinidades

superiores a la salinidad promedio del mar.


Durante el cultivo larvario no se detectaron diferencias significativas respecto a

la superviencia en función de la salinidad (P<0.05), logrando niveles de supervivencia

de 20.3% a salinidad de 25 ups, de 23.3% a salinidad de 32 ups y de 18.7% a

salinidad de 39 ups. Nell y Holiday (1988), observaron que no existen diferencias en

el crecimiento de larvas de Saccostrea commercialis utilizando salinidades de 23, 27,

31 y 35 ups y reportan una tasa de crecimiento de 5.7 m/día en promedio y una

máxima supervivencia de 40% en la salinidad de 31 ups. A diferencia de C.

corteziensis, S. commercialis habita normalmente costas de alta energía sobre

sustratos rocosos, en condiciones oceánicas, con pocas o nulas variaciones

estacionales, por lo que se explica la consistencia de crecimiento en salinidades

similares a la salinidad promedio del mar.

La época reproductiva y el desarrollo larvario de C. corteziensis en condiciones

naturales ocurre durante los meses de verano en las zonas estuarinas de la costa

occidental del Golfo de California, donde la salinidad se ve reducida

considerablemente por los grandes efluentes de agua dulce y una temperatura que

supera los 31 ºC. En consecuencia, las larvas de ostión de placer están sometidas a

grandes presiones ambientales, lo que ha hecho que se adapten muy bien a estas

condiciones adversas (Cuevas-Guevara y Martínez-Guerrero, 1978).

En este sentido Saleudon y Wilbur (1983) señalan que los bivalvos, cuando son

sometidos a altas salinidades, utilizan gran parte de la energía obtenida del alimento

para regular su concentración interna y esto les ocasiona un estrés. Durante el


presente trabajo no se obtuvieron evidencias de una perdida de energía considerable

que se reflejara en una baja supervivencia o lento crecimiento de las larvas sometidas

a diferentes salinidades. Por el contrario, se registraron valores de supervivencia y

crecimiento similares para los tres tratamientos evaluados y los obtenidos en cultivos

larvarios previos con salinidades de 36 ups (Robles-Mungaray, Com. Pers.).

Sin embargo, se tienen reportes de acuacultores de Nayarit en el sentido de que

durante la época de lluvias las salinidades son inferiores a las 5 ups, lo cual incide

negativamente en sus cultivos alcanzando mortalidades de hasta el 50% (Com. Pers.,

S.C.P.P. Ostricamichin, S.C. de RL. de C.V.).

Así mismo Ruiz-Garcia (2006), reporta para un cultivo de C. corteziensis

sembrado en Enero estero de Navopatia Bahia de Agiabampo Municipio de

Huatabampo Sonora, salinidades de 36-37 ups al inicio del experimento, sin embargo

hacia inicio finales del verano, inicio de otoño (Septiembre-Octubre), se registrron

salinidades de hasta 39 ups, lo que resulto en una disminucion del crecimiento en los

ostiones sometidos al experimento.


7.2. Asentamiento y metamorfosis de larvas pedivéliger

El efecto de la densidad sobre el cultivo larvario de moluscos bivalvos durante

sus primeras etapas ha sido poco estudiado (Ibarra et al., 1997). Sin embargo,

existen trabajos que señalan que la densidad es uno de los factores importantes que

afecta directamente diversas etapas del cultivo promoviendo la competencia entre los

individuos sometidos a confinamiento, principalmente por alimentos y espacio (Collet

et al., 1999).

En los laboratorios de producción de semilla de ostión, la densidad de cultivo a

utilizarse durante el periodo de fijación depende en gran medida de la disponibilidad

de larvas competentes, así como del espacio disponible para llevar a acabo este

proceso. La densidad es un factor primordial durante la fijación larvaria de ostiones

del género Crassostrea, ya que un número excesivo de larvas pedivéliger por unidad

de superficie ocasiona una disminución del porcentaje de supervivencia (Jones y

Jones, 1988).

El tiempo para la fijación de la larva pediveliger varía de acuerdo a las especies

y a la latitud. En el caso de especies de aguas templadas como C. gigas, la fijación se

da aproximadamente en 48 h (Henderson, 1983; Supan, 1978; Jones y Jones, 1988).

En especies tropicales como Crassostrea helcheri y Crassostrea iredalei, la fijación

ocurre a las 96 h (Devakie y Ali, 2000).


Durante la fijación inicia un proceso de reorganización anatómica de la larva, lo

que provoca un cese de la alimentación durante 2 o 3 horas, si las condiciones del

medioambiente no son las adecuadas se puede retrasar la metamorfosis. En estas

condiciones, pierden la capacidad de desplazarse en la columna de agua por la

degeneración y perdida gradual del velo, creciendo el pie y los filamentos branquiales

empiezan a parecer (Bayne, 1982).

En el presente trabajo se observó que la densidad tiene un efecto inverso sobre

el éxito en la fijación y metamorfosis, confirmando resultados previos (Mazón-

Suástegui et al., 2002a). Sin embargo, la eficiencia del proceso y por ende, la

productividad del dispositivo de fijación utilizado, puede medirse en función del

porcentaje de metamorfosis o en función de la producción de semilla. A densidad de

3 larvas/mm2 se obtuvo una supervivencia promedio de 48%. Sin embargo, con la

misma área de fijación disponible, pero a una densidad de 10 larvas/mm2, y un

porcentaje de supervivencia promedio menor (25.5%), se obtuvo un mayor número

de semillas, es decir, una mayor productividad y por lo tanto una mayor rentabilidad

económica (Tabla VIII).

Robert y Gerard (1999) obtuvieron porcentajes de fijación superiores al 50% en

larvas de C. gigas en una instalación comercial, lo que es comparativo y congruente

con los resultados obtenidos con C. corteziensis durante el presente trabajo. La

disponibilidad de larvas competentes para la fijación definitivamente es un factor


importante, que marca la pauta al tomar la decisión sobre la densidad de fijación más

adecuada y productiva. Al tener un número limitado de larvas y una misma capacidad

instalada en charolas de fijación, se puede utilizar la densidad menor, con el fin de

obtener un porcentaje mayor de supervivencia. Sin embargo, cuando la disponibilidad

de larva fijadora oculada es abundante y no se tiene mercado para ella, se puede

optar por densidades altas, que no obstante un menor rendimiento porcentual,

proveerán una mayor cantidad de semilla.

7.3. Engorda en campo

El ostion de placer C. corteziensis es una especie tipicamente tropical por lo que

su desarrollo està estrechamente ligado a los cambios ambientales, principalmente la

temperatura del agua (Frías-Espericueta et al., 1997). La dinamica de crecimiento de

la especie esta estrechamente ligada a la temperatura, lo cual se pudo comprobar en

este trabajo. Conforme se presentó un incremento en la temperatura del agua en el

sitio de cultivo, el crecimiento de los organismos se aceleró, reflejandose en el

aumento de la tasa instantanea de crecimiento (Fig. 25), con valores de 1.89 ± 0.26

mm/dia para el tratamiento (dieta previa en laboratorio), Microalga100, de 1.76 ± 0.18

mm/dia para el tratamiento de Maíz-Microalga50 y de 1.6 ± 0.27 mm/dia para el

tratamiento Trigo-Microalga50. El crecimiento para el tratamiento de Trigo-Microalga50

en longitud se detuvo aparentemente en el dia 120 de cultivo esto pudiera atribuirse

ya sea la densidad utilizada o a factores ambientales, sin embargo, esta observaciòn


no es concluyente ya que se tiene un resultado parcial de la curva de crecimiento

(Leyva-Miranda, 2005).

En trabajos previos se ha reportado que la dieta previamente utilizada durante

la preengorda de semilla de ostión de placer en el laboratorio tiene efectos directos

sobre el crecimiento de dicha semilla durante la engorda en el mar. Leyva-Miranda

(2005) reportó diferencias significativas en el crecimiento de C. corteziensis durante

su engorda en el Estero el Riíto, al sur del estado de Sonora, encontrando los

mejores resultados con las semillas que se alimentaron con la dieta mixta a base de

microalgas y fécula de maíz, logrando tallas de 5.37cm en 216 días de cultivo. En el

presente trabajo, de acuerdo al análisis realizado, no se encontraron diferencias

significativas entre el crecimiento de C. corteziensis en campo, atribuibles a la dieta

previamente suministrada a la semilla durante la etapa de preengorda en laboratorio

(p > 0.05).

El crecimiento y supervivencia de los organismos en cultivo es la suma de

factores tan diversos como la edad del organismo, informacion genética,

alimentación, temperatura, época de siembra, etc. (Angell, 1986; Devakie y Ali,

2000). Sin embargo, algunos factores como la temperatura del agua y la edad del

organismo, parecen tener una relación más directa en el ritmo de crecimiento del

ostión de placer (Fig. 27), ya que la tasa instantánea de crecimiento se ve

directamente influida por la temperatura, presentándose tasas más elevadas con

temperaturas por encima de los 25 °C.


Cáceres-Puig et al. (2007), observó durante la fase de preengorda en el

laboratorio que C. corteziensis un crecimiento optimo a los 28 °C disminuyendo este

por encima de los 30 °C y teniendo como límite superior de la especie los 32 °C.

Chávez-Villalba et al. (2005) reportan una talla de 71.3 ± 1.9 mm en 13 meses

de cultivo a partir de semillas de 4 mm de longitud sembradas en Noviembre en La

Bahía de San Francisco cerca de Guaymas, Sonora, en dicho trabajo se observa que

la tasa instantánea de crecimiento en invierno fue la menor con un valor de 2.85 ±

1.45.

En el presente trabajo se observaron tasas instantáneas de crecimiento por

encima de estos valores (Tabla VII), alcanzando una talla de 71.7 ± 0.93 mm a los 7

meses de cultivo, sembrando los organismos en diciembre, lo cual nos indica que la

zona de cultivo en Las Glorias es más adecuada para esta especie.

Finalmente, los resultados de la presente investigación han permitido confirmar

que la semilla de ostión de placer puede preengordarse en el laboratorio sustituyendo

el 50% de la ración diaria de la microalga por complementos artificiales de bajo costo

y fácil elaboración a base de fécula de maíz y harina de trigo, disminuyendo la

cantidad de microalgas suministrada, con la correspondiente reducción de los costos

de operación, y sin variaciones en los resultados de supervivencia en la posterior

etapa de engorda en el mar (Leyva-Valencia, 2005; Ruiz-Ruiz, 2008; Mazón-

Suástegui et al., 2008).


8. Conclusiones

En el presente trabajo, no hubo diferencias significativas en el crecimiento

larvario atribuible a las salinidades de 25, 32 y 39 ups probadas durante el

cultivo larvario de Crassostrea corteziensis en condiciones de laboratorio.

Durante la fijación, las tres densidades probadas 3, 7 y 10 larvas/mm2 fueron

diferentes entre sí por lo que habría que hacer una valoración costo-beneficio

de acuerdo a la disponibilidad de espacio de fijación y de larvas fijadora para

tomar una decisión para utilizar una u otra densidad.

La dieta durante la preengorda aparentemente no influye en el crecimiento en

etapas posteriores del cultivo. Los resultados de engorda son considerados

aceptables al obtener adultos comerciales de 7.16 ±0.33cm para la dieta 1;

7.02 ±0.05 cm para la dieta 2 y 6.82 ±0.16 cm de longitud para la dieta 3 en

215 días de cultivo, a partir de semilla producidas en laboratorio con un ahorro

del 50% de consumo de microalga durante la preengorda.

El suministro de complementos a la dieta de C. corteziensis durante la

preengorda ocasiona la reducción de costos de producción al disminuir la

producción de microalgas sin comprometer el desempeño del ostión de placer

durante la engorda.

El cultivo de C. corteziensis, nativo del Golfo de California, podría convertirse

en una alternativa ecológica, tecnológica y económicamente viable para

generar riqueza y beneficio social en la región noroeste de México, si se

garantiza la producción masiva de semilla a un precio competitivo.


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Poster.

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