Pseudomonas aeruginosa

Equipo 11: ● López Díaz Alondra● Luna Méndez Angel Hazel● Rangel Ortiz Adrian

Características● Gram negativa● Pared celular ácido resistente● Resiste a antibiótico (betalactamicos, cefalosporinas de primera y segunda

generación, cloranfenicol y tetraciclinas) ● Persistente en el medio ambiente● Forma de bastón● Bacteria aerobia facultativa● Persiste en el agua y suelo a una temperatura de 20-43°C● Producen proteasas que degradan las proteínas inmunoreguladoras● Daña principalmente el tracto respiratorios

Caso clínico

AnamnesisPaciente : felino de 5 años , hembra, raza mestiza, peso de 3 kg.

Cartilla de vacunación actualizada: rinotraqueitis infecciosa felina, panleucopenia felina, calicivirus, rabia y leucemia felina.

Fue llevado a la Clínica Veterinaria de Antioquia (Medellín, Colombia). Con historia de rinorrea serosa en la fosa nasal derecha de evolución de seis meses, tratado con terapia antibiótica (amoxicilina, ampicilina y enrofloxacina) y mucolíticos, sin evolución clínica satisfactoria.

Examen clínico● Secreción nasal mucopurulenta unilateral● Fosa nasal derecha linfadenitis retrofaríngea● Halitosis● Gingivitis ● Ruido inspiratorio de tipo estertor● Disnea inspiratoria ● T: 39.8°C, F.C: 145 ppm, F.R: 56 rpm, pulso: 150 ppm● Reflejo tusígeno positivo● Palmo percusión negativa● Epífora unilateral en el ojo ipsilateral de la secreción nasal; ● Hiporexia de 48 horas de evolución.

Manejo clínico inicialSe canalizó en la vena cefálica externa izquierda y suministró solución salina 0,9% con dosis de 60 ml/kg/día

Por vía intramuscular:bromhexina 4 mg cada 12 horas( para manejo de la secreción nasal)

Dipirona a dosis de 28 mg/kg, por vía endovenosa (controlar la temperatura)

Nebulizaciones con acetilcisteína 150 mg en 5 ml de solución salina, cada 6 horas por 1 semana.

Examen de laboratorioSe realizó

● Hisopado nasal de la secreción , se introdujo en un tubo tipo Stuart, refrigerado a 2°C

● Tinción Gram: se determinó la presencia de un bacilo Gram negativo● Cultivo agar MacConkey, para bacterias Gram negativas, a las 48 horas se

realizó lectura de la placa ● Pruebas bioquímicas, azúcar reductor, negativo para Pseudomona spp● Pruebas de urea, zinc, citrato, lisina y TSI, para confirmar presencia del

agente(No se encontró la presencia de otros agentes bacterianos gram negativo)

● El antibiograma describió un halo de inhibición de mayor diámetro para ceftriaxona (Tabla 1).

Resultados● El hemograma demostró valores de leucocitos 12.400/µl y neutrofilia de

10.788/µl, indica la presencia de infección bacteriana● Los valores del hemoleucograma, demostraron la hemoconcentración, se

relaciona con una posible deshidratación, con aumento en la línea roja (eritrocitos 11.030.000/µl, hemoglobina 18,5 g/dl, hematocrito 51%, volumen corpuscular medio (VCM) 46,3 fl, hemoglobina corpuscular media (HCM) 16,7 pg y concentración media de hemoglobina (CMHC) 36,2 g/dl

● El resto de las pruebas demostraron normalidad (Tabla 2)● Se realizaron pruebas ELISA para FeLV y FIV (SNAP® Idexx Laboratories©,

USA), las cuales fueron negativas para ambos virus

Enfoque terapéutico

Fue sometido a

● Amikacina a dosis de 10 mg/kg endovenoso, cada 12 horas por 6 días● Acetilcisteína 70 mg/kg endovenoso cada 6 horas por una semana( manejo de

secreción nasal )● Nebulizado con 150 mg de acetilcisteína en 5 ml de solución salina 0,9%, cada

4 horas● Aplicación intranasal de oximetazolina 0,05%, 3 gotas cada 12 horas por una

semana. ● Permaneció canalizado con solución Pizarro, a razón de 50 ml/kg/día durante

los 7 días de tratamiento.

Pruebas para ayudar al diagnósticoRadiología:Toma placa de rayos X, latero-laterales y ventro-dorsales de cabeza y tórax para descartar enfermedad respiratoria crónica, piotórax, traqueítis, colapso traqueal y lesiones en cavidad nasal

Hubo cambios en la porción rostral del seno frontal, de aspecto radioopaco,con presencia de material purulento (Figura 2), en la vista ventro-dorsal se observa radioopacidad en la cavidad nasal derecha y alteración en la densidad del seno frontal derecho (Figura 3)

Es compatible con cuadro de sinusitis y rinitis crónica.

A las 24 horas, el paciente fue sometido a rinoscopia, bajo sedación con xilacina 0,3 mg/kg, tiletamina 2 mg/kg y zolazepam 0,5 mg/kg endovenoso.

Se pudo determinar la obstrucción de la cavidad nasal del lado derecho, con un material mucopurulento denso de color verde oliva; se intentó hacer aspirado, pero el contenido no lo permitió.

Evolución: El paciente permaneció hospitalizado durante una semana, con el plan terapéutico mencionado anteriormente.

No respondió a ninguna de las terapias, se decide realizar trepanación del seno frontal derecho, donde se encuentra el material purulento encapsulado.

Tratamiento quirúrgico● Se premédico con xilacina 0,2 mg/kg, atropina 0,04 mg/kg, propofol 2 mg/kg

vía venosa, se intubó, anestesió con isofluorano 1 CAM y se realizó trepanación del seno frontal, incidiendo la piel de la región frontal derecha,.

● Se realizó lavado del seno frontal, con solución salina 0,9%; se retiró el material purulento, permaneció con drenaje tubular y la piel fue suturada con polipropileno 3-0.

● Por último se realizó lavados cada 12 horas con solución salina 0,9% durante una semana.

Respuesta al tratamientoEl paciente continúo con terapia antibiótica con ceftriaxona 25 mg/kg endovenoso cada 12 horas por una semana

El manejo analgésico se hizo con tramadol 3 mg/kg vía venosa cada 12 horas por 5 días y ketoprofeno 4 mg/kg, cada 24 horas endovenoso por 3 días. Después de una semana, hubo mejoría , ya no presentaba rinorrea (Figura 5), aumento de apetito

Se realizó 2do. hemograma, el cual mostró cambios, disminuyendo los valores de leucocitos y neutrófilos (Tabla 3). A la semana se dio de alta.

Discusión ● La bacteria presenta una gran resistencia a los

antibióticos, además de presentar una gran capacidad adaptativa a las condiciones del medio donde se encuentra, es por eso que el paciente llevaba una evolución de la infección a pesar de tener un tratamiento previo con antibióticos.

● Es una bacteria oportunista, que afecta a animales inmunosuprimidos

● Es de los principales responsables en causar infecciones nosocomiales, por lo que podemos deducir que el paciente enfermo antes y en su estancia en el hospital adquirió la bacteria.

● La bacteria es capaz de producir una cápsula extracelular, que forma parte de la biopelícula secretada como mecanismo de evasión para anticuerpos y la fagocitosis de las células inmunológicas

● Debido a la multi-resistencia de la bacteria es recomendable no prescribir antimicrobianos innecesarios y buscar alternativas efectivas para combatir la resistencia bacteriana.

● Como tratamiento alternativo contra este tipo de bacterias, es el uso de de nuevas moléculas con actividad antibacteriana, como las bacteriocinas.

Bibliografía● https://scielo.conicyt.cl/scielo.php?script=sci_arttext&pid=

S0716-10182019000200180

● http://vip.ucaldas.edu.co/vetzootec/index.php/english-version/91-coleccion-articulos-espanol/134-rinosinusitis-cronica-felina-por-pseudomona-aeruginosa