para poster jornadas 2010
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CUANTIFICACIÓN E IDENTIFICACIÓN DE GRASA EN FRUTOS DE ZIZYPHUS MISTOL
Autores: Zamora Rueda, Gimena; Castaño, Clara Agustina
Directora: Dra. María Julia Barrionuevo
E-mail: [email protected]
Objetivo: determinar el contenido de materia grasa de los frutos de mistol por diferentes
métodos e identificar los ácidos grasos.
Introducción
Descripción general del mistol
Nombre común: Mistol
Nombre científico: Ziziphus mistol. Familia: Rhamnaceae
Árbol de la familia de las Ramnáceas típico del parque chaqueño, abundante en el Chaco
Austral y las zonas bajas del NOA así como la región septentrional de la provincia
argentina de Córdoba, además de Perú, Bolivia y Paraguay.
El mistol tiene una altura que varía entre los 4 a 9 m, con un diámetro de 2 a 6 dm;
corteza lisa, fina, engrosando con la edad. Del tronco parten abundantes ramas
pubescentes, retorcidas, dotadas de rectas y duras espinas, copa globosa, follaje
semiperenne de hojas simples.
Florece durante la primavera meridional (entre octubre y diciembre) y fructifica en el
verano meridional (entre diciembre y marzo).
La madera es bastante dura, pesada y resistente por lo que es utilizada para realizar
mangos y cabos de herramientas, radios de ruedas de carruajes, la tabladura de las
partes más resistentes de violines criollos o, para producir carbón vegetal.
el fruto se puede comer maduro y también se preparan con el mismo arropes o una
golosina llamada "bolanchao" o gualanchao, tostando. Actualmente moliendo estos frutos
se obtiene un sucedáneo del café llamado "café de mistol" utilizado en dietéticas por sus
valores nutritivos y por su baja o nula presencia de alcaloides.
Materiales y métodos ( aquí hay para agregar en el poster!!!!)
Los frutos fueron recolectados en la localidad de Termas de Río Hondo, provincia de
Santiago del Estero. Se les realizó una limpieza mecánica sin aporte de agua, luego se
liofilizaron. A continuación, se los procesó en molino obteniendo partículas desde 0,1
hasta 2 mm.
Los porcentajes se refieren a peso seco del fruto y todos los análisis se realizaron por
triplicado.
Se determino el contenido de materia grasa por triplicado con los siguientes métodos:
1. Por hidrólisis ácida : Se 3 g de muestra de mistol liofilifado de un vaso 50 ml, agregar
de alcohol etílico y mezcla. Se Adicionar 10 ml de HCl/H2O (25:11), mezclar y poner vaso
en baño de agua caliente (80ºC) bajo campana durante 30 a 40 min. Al cabo de 40 min
agregar 10 ml de etanol y enfriar. Transferir a un embudo de decantación previa filtración
por algodón. Enjuagar el vaso con 25 ml de éter etílico, poner en estufa y pesar. Luego se
adicionan 25 ml de éter de petróleo, separar el extracto etéreo filtrándolo previamente por
un embudo con sulfato de sodio anhidro y recogiéndolo en el erlenmeyer tarado
previamente. Hacer dos extracciones sucesivas con 20 ml de éter de petróleo, decantar,
separar el extracto etéreo, filtrándolo y lavando con una mezcla de 2 éteres en igual
volumen. Evaporar los extractos etéreos en rotavapor. Secar el matraz con la grasa sola
(ya evaporado el solvente orgánico) en estufa a 100ºC por aproximadamente 90 min.
Pesar hasta llegar a peso constante.
2. Por Blight and Dyer : se pesa 3 g de mistol liofilizado y llevar la muestra a 80% de
humedad. Agregar 40 ml de metanol y 20 ml de cloroformo. Llevar al omni_mixer 2
minutos . Agregar 20 ml de cloroformo y llevar 30 seg. Agregar 20 ml de agua destilada y
llevar 30 seg. Se filtra al vacio . Pasar a la probeta la muestra filtrada .Dejar reposar las
probetas hasta el otro día. Medir el volumen de cloroformo, extraer el agua de la probeta.
Poner en la estufa 2 placas por cada número de muestras, luego llevarlas al desecador
para enfriarlas. Pesarlas y luego agregarles la alícuota (aprox. 10 ml de cloroformo
contenidos en la probeta de 250 ml).Poner las placas con la alícuota en la estufa hasta
que se evapore el cloroformo . Una vez evaporado el cloroformo, llevar las placas al
desecador y una vez frías pesarlas nuevamente.
3. Por Soxhlet con éter de petróleo, fracción 35-60ºC, de acuerdo a la técnica oficial
AOAC (1995), método 920.39.
Se metilaron los lípidos obtenidos de los frutos de mistol empleando la norma española
UNE 55-037.73 del Instituto Nacional de Racionalización y Normalización (Aenor, 1991).
Perfil de ácidos grasos de los frutos de mistol: Se analizó por cromatografía gaseosa por
el método AOAC 963.22 (AOAC internacional, 1995). Se analizaron los ésteres metílicos
de los ácidos grasos por Cromatógrafo Gaseoso Agilent 6890 System Plus con Inyector
automático y detector de ionización de llama (FID). Sistema de inyección split. Columna
capilar de 30mL * 250 m I.D, 0.25 m ef HP–INNOWAX.
Resultados
En la tabla 1 se muestran los valores obtenidos de lípidos de los frutos de mistol, donde
se puede observar que no hay diferencia significativa en los tres métodos analizados.
En la tabla 2 y figura 1, se presenta la composición de los ácidos grasos de los lípidos
metilados de los frutos de mistol, se observa que tienen un mayor contenido en ácidos
grasos insaturados y poliinsaturados. Además, los ácidos linoleico y linolénico se hallan
presentes en estos lípidos que son esenciales para nuestra alimentación.
Tabla 1. Determinación de lípidos de los frutos de mistol por diferentes métodos
Métodos Hidrólisis ácida Blight and Dyer SoxhletLípidos de frutos de mistol
9,80,3 12,50,2 10,40,2
Tabla 2. Ácidos grasos de los lípidos metilados obtenidos de los frutos de mistol determinado por CG, método Cis-trans para muestras diluidas, split 1/25.
Ácidos grasos Porcentaje en peso
acido miristico C140 2,2acido palmitico C160 19,6acido palmitoleico C161 12,1acido estearico C180 15,3acido oleico C181 46,4acido linoleico C182 4,7acido linolenico C183 1,7acido araquidico C200 2,5Acido godoleico C201 2,4
Figura 1. Cromatograma obtenido por cromatógrafo gaseoso para la muestra de lípidos metilados obtenidos de los frutos de mistol
Conclusiones
De los resultados obtenidos se observa que los frutos de mistol tienen un alto contenido
de ácidos grasos insaturados y poliinsaturados y entre ellos se encontraron los ácidos
linoleico y linolénico que tienen la característica de ser ácidos grasos esenciales en
nuestra alimentación humana.
Agradecimiento
Se agradece la colaboración de la Dra. Patricia Luna Pizarro y a la Dra. Norma Samman
por la realización de los análisis de los ácidos grasos en la Facultad de Ingeniería de la
Universidad Nacional de Jujuy.
