FISIOLOGIA VEGETAL

I.- INTRODUCCION.

El potencial hdrico es una caracterstica fsica que permite explicar la circulacin del agua en las plantas, Consta de varios componentes.

Potencial hdrico= potencial osmtico+potencial de presin+potencial matricial +potencial gravitacional.

Toda estructura vegetal durante su ciclo de vida atraviesa por estados fisiolgicos (turgencia, flacidez y plasmlisis).

Turgencia : ganancia hdrica , presin osmtica>p. t. p.s. (+)

Flacidez: equilibrio hdrico, presin osmtica = p. t. p.s. (0)

Plasmlisis: perdida hdrica, presin osmtica < p. t. p.s. (-)

II.- OBJETIVOS.

Demostrar los estados fisiolgicos que experimentan los tejidos vegetales, sometidos a estudio.

Determinar el grado de absorcin de agua, parte de los tejidos en estudio vinculndose al estudio fisiolgico que presenta.

Determinar el potencial hdrico de los tejidos en experimentcion. A travs de graficos de los valores gravimtricos.

III.- MATERIALES Y MTODOS.

1.-Materiales.-

-parenquima reservante

-parenquima clorofiliano

-Solucin de sacarosa 1 mol

-Agua destilada

-Recipientes de vidrio

-Sistema de taponado

-Bistur u hoja de afeitar

-Regla milimetrada

-Balanza de presicion

-calculadora

-ambiente de laboratorio

2.-Metodos.-

1.-Parnquima reservante.

Preparacin de soluciones de sacarosa (0.0, 0.1, 0.2, 0.3, 0.4, 0.5, 0.6, 0.7, 0.8, 0.9, 1.0 mol), partiendo de una solucin patrn de 1 mol.

Con el sacabocado se obtiene muestras de parnquima reservante (papa).

Estas muestras se enjuagan con agua corriente.

Se pesa 2gr. De cada muestra en la balanza de presicion y se determina el peso p1 en total 11 muestras.

Con la regla milimetrada se miden las muestras y asi se obtienen la longitud L1.

En los baloncitos de base redonda se pone un volumen de 80 ml que es augu destilada mas la solucin ya mediad v1.

Se deposita las muestras en los baloncitos.

Se procede al taponado.

Se realiza la observacin del experimento 1.

Todas las muestras se llevan a la cmara oscura por 24 horas.

Pasado este tiempo se procede hacer la observacin del experimento 1.

Se procede a decantar el liquido de las muestras y se obtiene el volumen v2.

Se pesa las muestras p2.

Los datos gravimtricos como el peso 3, volumen 3 y longitud 3 se hallan de la diferencia de los valores 2 menos 1.

2.- parnquima clorifiliano.-

Preparacin de soluciones de sacarosa (0.0, 0.1, 0.2, 0.3, 0.4, 0.5, 0.6, 0.7, 0.8, 0.9, 1.0 mol), partiendo de una solucin patrn de 1 mol.

Se selecciona las hojas y se preparan las hojas.

Estas muestras se enjuagan con agua corriente.

Se pesa 2 gr. De cada muestra en la balanza de presicion y se determina el peso p1 en total 11 muestras.

Se deposita las muestras en los baloncitos.

Se procede al taponado.

Se realiza la observacin experimento II.

Todas las muestras se llevan a cmara oscura por 24 horas.

Pasando este tiempo se procede a hacer la observacin experimento II.

Se procede a decantar el liquido de estas muestras y se obtiene el volumen v2.

Se pesa las muestras p2.

Los datos obtenidos como el peso 3, volumen 3, y se hallan de la diferencia de los valores 2 menos 1.

IV.- OBSERVACIONES:

Despus de 24 horas:

Parnquima clorifiliano:

1. La textura y color se mantienen iguales.

2. Caracterstica turgente.

3. La textura del partenquima es mas suave.

4. Tejido muestra algo de flacidez.

5. Flacidez.

6. Tejido muestra estado de plasmlisis.

7. Plamolisi mas notable y mas oscuro.

8. Plasmlisis casi completa y mas oscura.

9. Color de parnquima clorifialiano es mas oscuro.

Parnquima reservante:

1. Caracterstica turgente.

2. Menos turgente, textura es mas suave.

3. Flacidez.

4. Mas flcido y el color del parnquima reservante es mas oscuro.

5. La flacidez sigue aumentando y el color sigue oscureciendo.

6. Plasmlisis ms notable.

7. Plasmlisis ms completa.

8. Plasmlisis completa y el color es completamente oscuro.

V.-Conclusiones:

1.- Partiendo de las observaciones podemos decir que las muestra de los tejidos tanto reservante como clorifiliano que no fueron sometidos a la solucin de sacarosa se mantuvieron estables y en el mismo estado fisiolgico de turgencia, ya que no sufrieron el proceso de perdida de agua debido al cambio de concentraciones entre la solucin interna o propia de la clula y la solucin externa o solucin de agua destilada con sacarosa.

2.-Es por el contrario que las muestras de los tejidos reservante y clorofiliano que si fueron sometidas al contacto con la solucin de sacarosa, fueron mostrando varios niveles de plasmlisis segn se iba incrementando la concentracin de sacarosa en cada una de las soluciones, hasta llegar a una plamolisis completa en tejidos.

3.- De la misma manera podemos ver el como se cumple la ley universal de la presin osmtica que indica que soluciones separadas por una membrana diferencialmente permeable se trasladaran desde las soluciones de menor concentracin hacia las de mayor concentracin.

I.- INTRODUCCIN.

La superficie agrcola de nuestro planeta afectada por la salinidad y alcalinidad es alrededor de mil millones de hectreas, estando presente en todos los continentes, tal como ha indicado Munns, en un reciente estudio revisin bibliogrfica sobre el tema, en los ltimos 20 aos los fisilogos han dedicado grandes esfuerzos a recopilar informacin descriptiva acerca del efecto de salinidad sobre las plantas, tratando de localizar caracteres que confieran tolerancia a la salinidad.

II.-OBJETIVOS -demostrar el efecto de diferentes dosis de salinidad en la absorcin radicular en plntulas sometidas a experimento.

-determinar en grado de absorcin de agua via radicular de la plntulas en estudio, vinculadas al estado fisiolgico.

-determinar la dosis adecuada bajo el efecto de salinidad en la absorcin radicular del agua de las plantas en experimentacin a travs de graficos con valores gravimtricos.

III.-MATERIALES Y MTODOS.-

1.-MATERIALES:1. Plntulas tiernas completas (raz, tallo, hoja) en este caso usamos plntulas de cebada

2. Solucin salina 1/mol

3. Agua destilada

4. Recipientes de vidrio (valones)

5. Pipetas y probetas graduadas

6. Sistema de taponado (bolsas de plstico y liguillas)

7. Regla milimetrada

8. Balanza de precisin

9. Calculadora

10. Ambiente de laboratorio

2. METODO:

preparar la solucin salina, la preparacin de disolucin salina partiendo de una solucin 1 mol con un contenido total de 130 ml pero con 0.00, 0.01, 0.02, 0.03, 0.04, 0.05, 0.06, 0.07, 0.08, 0.09, 0.10 mol de solucin salina, pero antes hay que hacer los clculos de volumen de solucin salina requerida para cada recipiente. Seleccin de plntulas, pesado y medicin de la longitud de la raz tallo de las mismas. Introducir las plntulas en los baloncitos, realizando el taponado con plstico y liguillas, dejando dolo la raz dentro.

El experimento tendr una duracin de 7 dias.

Seguidamente medimos el volumen de cada baloncito, pesamos cada plntula, luego medimos lonitudes de tallo y raz.

Sacamos por diferencia los pesos, volmenes, longitudes de tallo y raz finales.

Graficamos, con los datos obtenidos y sus conclusiones.

El volumen hasta la muestra 5 hay una perdida constante, en la muestra 6 se observa que la perdida es menor que en las demas muestras, con una perdida mayor en las demas muestras.

El peso hasta la muestra 9 hay una perdida constante, en la muestra 10 y 11 se ve una ganancia en el peso, mostrando que la disolucion salina 0.09 y 0.1 fueron de mejor respuesta.

Hubo mucha variacion mostrando muejor respuesta la muestra 7, con la concentracion 0.06.

Hasta la muestra 5 hay efectos negativos, a partir de la muestra 6 se ve mejores resultados.3.-CONCLUSIONES.- 1.-En cuanto al volumen de solucin absorbido no se encuentra una lgica ya que la grafica muestra dos zonas muy demarcadas pero con ninguna proporcin lgica, que debera haber una correlacin a mas sal debera ocasionar una ganancia o perdida en forma escalonada en la absorcin del solucin pero en cambio se ve un total desorden y que solo hay dos grande diferencias y mas nada

2.- En la longitud tanto al tallo de podr ver que igual que con el caso anterior tampoco se encuentra lgica ya que hay tanto ganancia pero tambin se puede notar perdidas y no es en proporciones escalonadas sino que tambin se encuentra tal como el caso anterior. 3.- En la longitud del tallo tambin hay una distorsin pero no hay mucha variacin pero hubo un ligero aumento en la longitud de raz pero tampoco hay una coherencia en los datos obtenidos.

I.- GENERALIDADES.-

a.- fase imbibiente (semilla)

b.- fase imbibido o embebido (agua)

Esto dar como consecuencia:

Incremento de peso y volumen de la semilla.

Descenso o decremento del volumen en el sistema.

Elevacin de temperatura del sistema.

II.- OBJETIVOS.-

1.- demostrar el incremento de peso y volumen de semillas de diferente cultivo y variedad sometidas a experimentacin.

2.- determinar el grado de absorcin de agua por parte de las semillas en estudio vinculndolas al estado fisiolgico.

3.-Determinar el grado de absorcin imbibicin de las semillas en experimentacin a travs de graficas con valores gravimtricos de los resultados obtenidos, p3, v3.

4.- realizar los anlisis estadsticos consistentes en ANVA prueba F significancia al 1-5% .

III.- MATERIALES Y MTODOS.-

1.- MATERIALES.-

Semilla seca seleccionada Agua destilada.

Recipientes de vidrio.

Sistema de taponado.

Balanza de precisin.

Datos y tablas de estadstica.

Calculadora.

Ambiente de laboratorio.

2.-METODO.-

a.- imbibicin proceso a 24 horas.

Seleccin de semillas seca de diferente variedad.

Registro de peso p1=10gr.

Con ayuda de una probeta medimos 100 ml. De agua destilada.

Incorporacin a cada recipiente de agua y semillas.

Se procede al taponado con el sistema propuesto los recipientes para practicar las observaciones al inicio del experimento.

Decantar y obtener v2.b.- imbibicin diseo.

Seleccin de semilla seca de un cultivo definido con variedades.

Registro de peso p1=10gr.

Con ayuda de una probeta medimos 100 ml. De agua destilada

Incorporar, toponear y observar.

Dejar en laboratorio por 24 horas.

CUADRO N 01 REGISTROS ORDENADOS DE PESO P3-DISEO DE SEMILLAS DE MAIZ A 24HRS DE IMBIBICIONBLOQ.

REPET.TRATAMIENTOSREPET.

TOTALREPET.

PROM.

ABCDE

I5.36.25.46.25.528.65.72

II5.26.06.15.75.728.75.74

III5.65.85.75.68.030.76.14

TRAT.16.11817.217.519.288.0GT

PROM. TRAT5.366.05.735.836.45.86PROM DE PRO

OM52431

GT = 88= 5.86

N 15TC = GT = 516.26

N TOTALN REP.N TRAT.

X 522.462584.141553.94

r ( RAZON DISEO)153

X/r(RD)522.46516.82517.31

TC516.26516.26516.26

SC6.20.561.72

F DE V SC GL CM FC FT1-5% SIG.1-5%

TOTAL 6.2 14

REP. 0.56 2 0.28 0.57TRAT. 1.72 4 0.43 0.87ERROR 3.92 8 0.49CV=CME X100

P DE P CV= 11.94 % PARA CV LABORATORIO 0-10-15% SE TOLERA

PARA CV DE CAMPO 0-30-35%

EXPERIMENTO N 2

DOSIS Y EFECTO DE SALINIDAD DE LA ABSORCION RADICULAR EN PLANTULAS

EXPERIMENTO N 1

DETERMINACION DEL POTENCIAL HDRICO EN LOS TEJIDOS VEGETALES

EXPERIMENTO N 3

IMBIBICION DE SEMILLAS

EPF - INFORMESUNSAAC-ZOOTECNIA