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NEMATODOS PARÁSITOS DE LA VID.Curso: Protección Fitosanitaria en viña

7 de agosto de 2010Ing. Agr. MSc. Vivienne Gepp

•BIBLIOGRAFÍA: •BARKER, K.R. y CAMPBELL, C.L. 1981. Sampling nematode populations. In: ZUKERMAN B.M. y ROHDE, R.A. eds. Plant Parasitic Nematodes. New York, Academic Press. Vol III. p.451-474.•CHRISTIE, J.R. 1991. Nematodos de los vegetales. Limusa, Mexkico. 275p.•SCOTTO LA MASSESE, C. 1971. Les nematodes en arboriculture et viticulture. In: Les nématodes des cultures. Journées françaises d’etudes et d’information. París. 828p. p.381-400. •LORDELLO,L.G.E. 1984. Nematóides das plantas cultivadas. 8 ed. Sao Paulo,Nobel. •MOISO, G., PIEDRA BUENA, A. y TAGLIANI, J.C. 2001. Estudio del complejo sanitario X.index-GFLV en un viñedo del Uruguay. Tesis Ing. Agr., Universidad de la República, Montevideo, Uruguay. 173p.•PEARSON, R.C.y GOHEEN, S.C. 1996. Plagas y enfermedades de la vid. Mundi Prensa, Madrid. p.55-59. •WRIGHT, D.J. 1981. Nematicides: mode of action and new approaches tochemical control. In: ZUKERMAN B.M. y ROHDE, R.A. eds. Plant ParasiticNematodes. New York, Academic Press. Vol III. p.421-450.

•University of Florida. http://edis.ifas.ufl.edu/MENU_NG_Miscellaneous

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Nematodos fitopatógenos

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Nematodos que afectan la vid

• ENDOPARÁSITOS MIGRATORIOS:– Pratylenchus spp.

• ENDOPARÁSITOS SEDENTARIOS:– Meloidogyne spp.

• SEMI-ENDOPARÁSITOS:– Tylenchulus semipenetrans

• ECTOPARÁSITOS

ENDOPARÁSITOS MIGRATORIOS:

Pratylenchus vulnus (Nematodos de la lesión), y otros: Pratylenchus penetrans, P. brachyurus, P. scribneri.

ENDOPARÁSITOS SEDENTARIOS:

Meloidogyne incognita, M. javanica, M. arenaria, M. hapla - nematodos de los nódulos radiculares

Los endoparásitos se encuentran protegidos de productos nematicidas y de enemigos naturales mientras están dentro de la raíz.

SEMI-ENDOPARÁSITOS:

Tylenchulus semipenetrans -Nematodo de los cítricos

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Ectoparásitos:• Macrophurus arbusticola• Helicotylenchus sp.• Rotylenchulus sp.• Paratylenchulus sp. • Mesocriconemella

xenoplax• Helicotylenchus sp. • Paratrichodorus sp.• Tylenchorhynchus sp.

Longidoridae:• Xiphinema spp.

Nematodos daga

• Longidorus spp. Nematodos aguja

Criconemella xenoplax = Macroposthonia xenoplax = Mesocriconema xenoplax

Longidoridae:Xiphinema spp. Nematodos daga – éstos son los más importantes dentro de los ectoparásitos. Muchos de ellos transmiten virus.

Longidorus spp. Nematodos aguja

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Uruguay

• Pratylenchus spp.• Meloidogyne spp. • Mesocriconemella xenoplax

(= Macroposthonia xenoplax)

• Helicotylenchus spp.• X. americanum, X. rivesi• Xiphinema index, X. krugi, X. surinamensis.

Casella et al. (1996) y De Leon (1998)

Casella et al. (1996) y De Leon (1998) en relevameinto en Canelones, Montevideo, San José, Durazno y Colonia: X. americanum, X. rivesi eran los vectores + comunes

Minagawa, N. y Maeso, D. 1985. Nematofauna actual en hortalizas y frutas. Investigaciones agronómicas Nº 6: 54-59.Meloidogyne (Salto), Pratylenchus, Helicotylenchus, Tylenchulus, Criconemtidae, Tylenchidae, Psilenchulus, Aphelenchus, Aphelenchoides, Xiphinema.

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Xiphinema

• X. index• X. italiae• X. americanum• X. rivesi• X. californicum• X. diversicaudatum• X. coxi

• X. meditrraneum• X. pachtaicum• X. brevicolle• X. algeriense• X. vuittenezi• X. turcicum

Vectores de los virus: X. index y X. italiae - Grapevine fanleaf virusX. americanum - Peach rosette mosiac nepovirus,, Tomato ringspot virus (Grapevine yellow vein virus), Tobacco ringspot virusX. rivesi – Tomato ringspot virusX. diversicaudatum - Arabis mosaic virus, Strawberry ringspot virusX. coxi - Arabis mosaic virusX. californicum – Tomato ringspot virus.

Plant Viruses Online; Descriptions and Lists from the VIDE Database: http://image.fs.uidaho.edu/vide/

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Xiphinema index

Huéspedes: • vid, higuera, rosal• manzano, peral, duraznero, citrus, morera,

algodón, álamo, haya, jasmín

Huéspedes: •principales: vid, higuera, rosal, •menos reproducción en manzano, peral, duraznero, citrus, morera, algodón, álamo, haya, jasmín.

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• Daños: – raíces – planta – transmisión de virus

Xiphinema index

Daños-directos en raíces: agallas, necrosis, curvaturas, puntos hinchados, y abundancia de raíces secundarias. Hasta muerte de raíces. Disminuye hasta 65% peso de raíces. -caída prematura de hojas, disminución de rendimiento (bayas más pequeñas)-transmisión de grapevine fanleaf virus (GFLV) y arabis mosaic virus (ArMV); a plantas herbáceas grapevine yellow mosaic y Hungarian chrome mosaic virus.

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• Daños: – raíces – planta – transmisión de virus

Xiphinema index

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Xiphinema index• Biología

•Ciclo: huevo – 4 estdios larvales – adulto. Duración muy variable. •En cada muda pierde la cutícula.•Hay muy pocos machos, suele ser partenogenética.•Se alimenta cerca de punta de raíces.•Mayor población donde hay más raíces. Más bien cerca de superficie (10-30 cm, 0-30 cm).•Movimiento horizontal de 1,3-1,5 m/año. •Sobrevive 9-10 meses sin alimentarse, 4-5 años en suelos con restos de raíces de vid.•Se desarrolla entre 15 y 45ºC.•Mayor población en suelos con 50-70% arena y bajo tenor de carbonatos.

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Relación X. index - GFLV

• Adquiere y transmite en 15 min.• Especificidad – cápsula proteica• Retención

Adquiere y transmite en 15 min., virus se adhiere reversiblemente a cutícula de esófago. Cápsula proteica – especificidad1Retención: -suelo estéril: 2meses alta tran1smisión, algo hasta 8 meses.-hiquera como hospedero – 3 semanas-suelo con restos de raíces – mientras sobrevivan éstas.

AUGER, J., KOHNEMKAMPF, M., MAGUNACELAYA, J.C. y ESTERIO, M. 2001. Eficiencia de transmisión del vurus de la hoja en abanico de la vid por Xiphinema index Thorne y Allen, en Vitis rupestris cv. St. George. XI Congreso de la Sociedad Chilena de Fitopatología, Santa Crux, Chile. Dic. 2001. p.38.-Inoculación con 5-100% nematodos virulíferos - infección igual en raíces a los 68 días, no se detectó en hojas. -Se necesitan un mínimo de 200 nematodos para detectar GFLV en ellos mediante DAS-ELISA.

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Nematodos aguja

• L. attenuatus• L. elongatus• L. diadecturus• L. iranicus• L. maacrosoma• L. protae• L. sylphus

• Tomato black ringnepovirus

• Peach rosettemosaic nepovirus

• Ciclo como Xiphinema spp.

Transmiten virus: L. attenuatus, L. elongatus– Tomato black ring nepovirusL. diadecturus – Peach rosette mosaic nepovirusL. apulus – Artichoke Italian latent nepovirus

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Meloidogyne

• Meloidogyne incognita, M. javanica, M. arenaria, M. hapla

• agallas• ↓ vigor

Meloidogyne incognita, M. javanica, M. arenaria son de temperaturas altas, M. hapla está adaptado a climas templados.Reducen el vigor y hacen más sensibles al estrés.

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Meloidogyne

• 25 días a 27ºC.

• 2ª estadio larval infecta • hembra engrosada • masas de huevos

Ciclo de unos 25 días a 27ºC. Hembras generalmente partenogenéticas ponen masas de huevos dentro de una matriz gelatinosa que los protege, en la superficie o dentro de la raíz. 2ª estadio larval penetra y se establece en los tejidos de la raíz, haciendo que unas células se agranden para alimentarlo por el resto de su vida. Provoca un sobrecrecimientoalrededor que forma una agalla.

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Nematodos de la lesión

• Pratylenchus vulnus• daños importantes en frutilla

(Minagawa y Maeso 1985) • también en manzano, citrus y

viñedos.• hembra fecundada → huevos → 2º

larval → raíces

Pratylenchus vulnus fue encontrado por Minagawa y Maeso (1985) causando daños importantes en frutilla. También en manzano, citrus y viñedos. También se encontró P. scribneri, pero en campo natural y cultivos de gramíneas.

Provocan daños severos en vid, desde pobre desarrollo hasta la muerte de raíces.

Hembras fecundadas depositan huevos individualmente en suelo y raíz. Emerge e infecta el 2º estadio larval. Son endoparásitos migratorios, se alimentan de células de la corteza radicular, dejándolas muertas.

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Nematodo de los cítricos

• Tylenchulus semipenetrans• disminuye notoriamente el vigor• muerte de raíces absorbentes, • masas gelatinosas que mantienen suelo

adherido a la raíz• sedentarios, se van engrosando

Tylenchulus semipenetransDisminuye notoriamente el vigorProvoca la muerte de raíces absorbentes, y las masas gelatinosas con los huevos que mantienen suelo adherido a la raíz cuando se arranca una planta.Los machos no son necesarios para la reproducción, no se alimentan, quedan en el suelo. Las hembras son sedentarias, ingresa su región cefálica a la raíz y el resto del cuerpo se van engrosando a medida que crecen y mudan de cutícula.

http://ucdnema.ucdavis.edu/imagemap/nemmap/ENT156HTML/slides/TYLENCHULUS

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Manejo de nematodos.

• CERTIFICACIÓN• Producción de plantas en suelo limpio –

muestreo de suelo.

RIOS, A. y HENRIQUEZ, E. 2001. XI Congreso de la Sociedad Chilena de Fitopatología, Santa Crux, Chile. de los viveros fiscalizados en 2000, 33% resultó no apto debido principalmente a la presencia de Pratylenchus, Meloidogyne y Xiphinema.

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Análisis de suelo

• Variación temporal• Distribución vertical

Belonolaimus longicaudatusPraylenchus brachyurusParatrichodorus minor

Barker, K. & Campbell, C. Sampling nematode populations. In: Plant parasitic nematodes. Vol. III.

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Variación estacional

Moiso, Piedra Buena, Tagliani. 2001

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Análisis de suelo

• Muestreo– en pre-plantación

– en viñedo

• ¿Cuando?

• Manejo de la muestra

• Interpretación de resultados

Muestreo•una muestra compuesta de cada sector diferente de 1-2 Kg, 50 x 20-25 cm3 o 5 viñas•área máx. 2 ha. •en pre-plantación: en barbecho o de monte – prof. mayor•en viñedo: donde se encuentran raíces absorbentes

Momento:•mayor población – según nematodo•Xiphinema – otoño y primavera•luego de lluvia, 1 semana después

Manejo de la muestra•bolsas plásticas•identificadas•temperatura fresca 5-10ºC

Interpretación de resultados:•Vectores de virus, nem prohibidos para certificación •nematodos comunes en ese tipo de suelo?•factores que influyen:•eficiencia de met. de extracción

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Manejo

• plantas sanas• suelo • nuevo ¿nematodos?• cultivos herbáceos• frutales• si se arranca un viñedo

•plantas sanas•suelo nuevo ¿Tiene nematodos patógenos de vid?•no debería tener Xiphinema index, Meloidogyne, Pratylenchus vulnus•usado para viñedos – 3-5-10 años descanso•análisis de suelo

•muestreo•representatividad•tamaño de muestra

•si se arranca un viñedo: matar plantas antes de arrancarlas para matar raíces•BOUBAIS 1994 en Suiza recomienda 600l/ha de Round-up al 1,2% 3 a 6 meses antes de arrancar. Llevó población de nematodos por debajo del límite de detección en los análisis rutinarios pero no los eliminó.

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Manejo Cultural

• materia orgánica

• cultivos de cobertura

• sistema de riego

• movimiento de suelo

materia orgánica•hojas de 15 spp. de Brassicas•SEPULVEDA, R. y ABALLAY, E. 2001. XI Congreso de la Sociedad Chilena de Fitopatología, Santa Crux, Chile. Trozos de mostaza (Sinapsis alba) y ruda (Ruta graveolens) al o,oo2%p/v disminuyeron x10 Nº de X. index en macetas con plantines de Vitis vinifera.•5 trabajos en Chile 2001 sobre extracto y/o chips de quillay. XI Congreso de la Sociedad Chilena de Fitopatología, Santa Crux, Chile. Dic. 2001.

•cultivos de cobertura:GONZALEZ, H. Chile 2001. XI Congreso de la Sociedad Chilena de Fitopatología, Santa Crux, Chile. : Gramíneas aumentaron Pratylenchus, paratylenchulus y saprófitos, bajó X. americanum. Xiphinema indez se redujo drásticamente tanto con gramíneas como con leguminosas.

•sistema de riego

•movimiento de suelo- entre predios en herramientas, ruedas, botas, otras plantas (rosales).

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Predio A Predio B

Predio C

Las líneas blancas marcan los bordes de una zona de suelo más arenoso – se observa mayores daños.

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Control Biológico

• Pasteuria penetrans• Myrothecium verrucaria DiTera®• Bacillus thuringiensis• Paecilmyces lilacinus – Meloidogyne

javanica• Serratia marcessens, Streptomyces

avermitis – Meloidogyne incognita• Pseudomonas fluorecens – Meloidogyne

incognita

Rex Dufour, Richard Earles, George Kuepper, and Lane Greer. 1998. AlternativeNematode Control. http://www.attra.org/attra-pub/nematode.html o en pdf:http://www.attra.org/attra-pub/PDF/nematode.pdfHay varios microorganismos efectivos contra nematodos: •bacterias: Pasteuria penetrans (antes Bacillus penetrans) presente en suelos supresivos donde hay poca enfermedad, parasita nematodos, Bacillus thuringiensis produce endotoxinas nematocidas.•hongos: Paceilomyces lilacinus, Myrothecium verrucaria, Hirsutellarhossilensis, Verticullium chlamydosporium•nematodos entomofagos: Steinernema riobravis, Heterorhabditis bacteriophora.

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Resistencia

• Portainjertos resistentes:

• ingenieria genética– GNA = Galanthus nivalis agglutinin (lecitina)

No hay resistencia “a nematodos” sino a alguna especie en particular.•ligado a hipersensibilidad – su uso lleva a aumento de otras especies de nematodos dentro de la población existente, si la especie afectada es dominante, por supresión selectiva de la misma.•puede seleccionar razas virulentas.

Para Meloidogyne se citan una cantidad de portainjertos: •según Scotto La Massese(1971): Berlandieri x Riparia : SO2 – 5 BB – 8 B; Riparia x (Vinifera – Rupestris): 4010 Castel; Berlandieri x Rupestris: 99R; Solonis x Riparia: 1616C; Cordifolia – Rupestis x Riparia: 44-53 M.•Dog Ridge, Salt Creek (Ramsey) prácticamente inmunes en California•Freedom, Harmony – bastante resistentes y a filoxera.

•según Mancilla, R. Magunacelaya, J.C. y Holzapfel, E. 2001. XI Congreso de la Sociedad Chilena de Fitopatología, Santa Crux, Chile. p.67. Fueron poco dañados: Harmony, SO4, 101-14, 5bb Y110R, los primeros dos alto vigor.

Para X. index: •Aballay-E; Benavides-D-F; Vieira-A. 1998. Resistencia de algunos portainjertos a una poblacionChilena de Xiphinema index. Nematologia-Mediterranea. 1998, 26: 2, 185-188. Los híbridos: Harmony (Dog Ridge X Courdec 1613) and O39-16 (Muscadinea rotundifolia X Almeria) fueronsignificativamente más resistentes que el cv. Sultana (Vitis vinifera). Dog Ridge (Vitis champinii) and Courdec 1613 (Vitis soloni X Othello) mostraron un daño intermedio. •En California se han seleccionado Vitis rupestris x M. rotundifolia con alta resistencia a X. index, Meloidogyne y filoxera. Walker et al. 1998. Acta-Horticulurae. Nº 528; 511-515.

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Control químico

• Tratamiento en preplantación:• dosis más altas que para plantas anuales• profundidad mayor • cincel 15 días después• prueba de germinación con suelo de 15 y

50 cm• tratamiento total vs en bandas

ARAYA, R. y MAGUNACELAYA, JC. 2001. Control de Meloidogyne sp. en Vitis vinífera L. cv. Chardonnay en condiciones de invernadero con extracto de quillay, nemacur y mocap. XI Congreso de la Sociedad Chilena de Fitopatología, Santa Crux, Chile. p.38.•Nº de nematodos: mocap y nemacur > extracto y testigo.•Extracto → más raíces → mayor multiplicación de nematodos.

VALENCIA, C y MAGUNACELAYA, JC. 2001. Alternativas de cotrol de Xiphinema index en Vitisvinifera L. cv. Thompson seedless, regada por goteo en Alto Jahuel. XI Congreso de la Sociedad Chilena de Fitopatología, Santa Crux, Chile.

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BIBLIOGRAFÍA Nematodos: • BARKER, K.R. y CAMPBELL, C.L. 1981. Sampling nematode

populations. In: ZUKERMAN B.M. y ROHDE, R.A. eds. Plant ParasiticNematodes. New York, Academic Press. Vol III. p.451-474.

• CHRISTIE, J.R. 1991. Nematodos de los vegetales. Limusa, Mexkico. 275p.

• SCOTTO LA MASSESE, C. 1971. Les nematodes en arboriculture et viticulture. In: Les nématodes des cultures. Journées françaisesd’etudes et d’information. París. 828p. p.381-400.

• LORDELLO,L.G.E. 1984. Nematóides das plantas cultivadas. 8 ed. Sao Paulo,Nobel.

• MOISO, G., PIEDRA BUENA, A. y TAGLIANI, J.C. 2001. Estudio del complejo sanitario X.index-GFLV en un viñedo del Uruguay. Tesis Ing. Agr., Universidad de la República, Montevideo, Uruguay. 173p.

• PEARSON, R.C.y GOHEEN, S.C. 1996. Plagas y enfermedades de la vid. Mundi Prensa, Madrid. p.55-59.

• WRIGHT, D.J. 1981. Nematicides: mode of action and new approachesto chemical control. In: ZUKERMAN B.M. y ROHDE, R.A. eds. PlantParasitic Nematodes. New York, Academic Press. Vol III. p.421-450.

• University of Florida. http://edis.ifas.ufl.edu/MENU_NG_Miscellaneous

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DESINFECTANTES DE SUELO Y NEMATICIDAS.

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Desinfectantes y Nematicidas.

• Desinfectantes:• Bromuro de metilo• Cloropicrina• Metam• Dazomet

• Nematicidas:• Dicloropropeno• Fenamifos• Aldicarb• Carbofuran

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Desinfestantes de suelo.

• Biocidas generales:• insectos, ácaros, nematodos, mamíferos• hongos, bacterias, plantas y semillas.• existen diferencias en efectividad dentro

de espectro de acción.

• Fumigantes - permite su difusión efectiva

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Clasificación.

• Hidrocarburos halogenados:• Bromuro de metilo• Cloropicrina

• Liberadores de metilisotiocianato:• Metam• Dazomet

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Bromuro de metilo

• gas comprimido• mayor volatilidad• requiere tapar con nylon• menor período de aireación• más amplio espectro • efectividad malezas > patógenos• afecta capa de ozono.

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Cloropicrina.

• no disponible solo• en formulación de Bromuro de metilo y de

Metam por:• fuerte olor• mayor efecto fungicida

– (Ej. Fusarium y Verticillium)

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Liberadores de metilisotiocianato.

• malezas, hongos, insectos y nematodos (excepto quistes)

• 10 - 25ºC • airear 2-3 semanas• arcilla y materia orgánica - adsorción

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Metam.

• = Metam sodio

• líquido que se hidroliza muy rápidamente a metilisotiocianato, una sustancia volátil altamente soluble en agua.

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Dazomet.

• sólido granulado• se incorpora al suelo preparado• 50 - 80% de CC• 4 - 32ºC, óptimo 10 - 27ºC• compactar suelo o regar • cubrir con nylon: áreas pequeñas o si se

necesita control total de malezas.

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Uso efectivo de fumigantes.

• Preparación de suelo

• Sellado:• importancia • métodos

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Factores que influyen en efectividad de fumigantes.

• TEXTURA: • porosidad:

– arcillosos - gran volumen

• sitios de adsorción:– arcilla y materia

orgánica

• MATERIA ORGÁNICA– agregar después– tiempo para

descomponer restos

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Factores que influyen en efectividad de fumigantes.

• Compactación del suelo: – arriba– abajo– terrones.

• Humedad del suelo:

• 50 a 70% de CC

• Temperatura del suelo: 7-27 ºC

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NEMATICIDAS.

• Fumigantes:• Dicloropropeno

• No fumigantes:• Fenamifos• Aldicarb• Carbofuran.

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Nematicidas fumigantes.

• Dicloropropeno. (1.3-D)• → nematodos y algunos artrópodos• a dosis mayores → algunas malezas,

semillas y hongos• 4 - 25º C• 50% de CC

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Nematicidas no fumigantes.

• Fenamifos.• Fosforado. • Sistémico acrópeto y (basípeto?)• Afecta insectos y ácaros• Entrada restringida 2 días.• en banda o en riego por goteo

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Nematicidas no fumigantes.

• Carbofuran.• Carbamato, insecticida sistémico y de

contacto.• + contra Xiphinema, - Meloidogyne• general (regar después) o con riego por

goteo• Entrada restringida 2 días.

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Nematicidas no fumigantes.

• Aldicarb.• Carbamato sistémico. • contaminación de aguas subterráneas• incorporar al suelo. • Entrada restringida ???

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Nematicidas no fumigantes.

• Tetratiocarbonato de sodio (Enzone)• nematodos, insectos y patógenos de suelo

• se descompone a bisulfuro de carbono

• desaparece rápidamente

• cultivo de más de 1 año

• Entrada restringida 4 días.

Enzone(r), sodium tetrathiocarbonate, is used only on grapes and citrus applied as a water application and irrigated into the soil.It breaks down in the soil to form carbon disulfide, which acts rapidly, decomposes quickly, and is effective against nematodes,soil insects, and soil borne diseases.

Clandosan(r) is a naturally occurring product derived from crab and shrimp shellsand used as a nematicide. It is a dried,powdered, chitin protein isolated from crustacean exoskeletons and blended withurea. It stimulates growth of beneficial soilmicroorganisms that control nematodes, but does not have a direct adverse effecton nematodes as such.