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Detección de Bacterias Patógenas: Aislamiento y Confirmación de Resultados

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Detección de Bacterias Patógenas:

Aislamiento y Confirmación de Resultados

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Detección de Salmonella

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Interpretación del crecimiento

Día

1

Día

2

Día

3

Día

4

Día

5

Día

6

Para confirmación: tome 5 colonias sospechosas de cada

plato y plaquee en Agar Nutritivo 18 - 24 h / 35 - 37 °C

Pruebas Bioquímicas/Serológicas de Confirmación

25 gr muestra

en 225 ml Agua Peptonada

16 - 20 h / 35 - 37 °C

1 ml Agua Peptonada

a 10 ml Caldo MKTT

24 h a 37°C

0.1 ml Agua Peptonada

a 10 ml Caldo RVS

24 h a 41.5°C

Agar XLD

24 h / 35-37°C

1 plato 14 cm /

2 platos 9 cm

Cualquier otro

Salmonella Agar

1 plato 14 cm /

2 platos 9 cm

4 días

11 medios

Agar XLD

24 h / 35-37°C

1 plato 14 cm /

2 platos 9 cm

Cualquier otro

Salmonella Agar

1 plato 14 cm /

2 platos 9 cm

Norma ISO 6579 para la Detección de Salmonella

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Día

1

Día

2

Día

3

Día

4

Día

5

Día

6

25 g/ml de muestra

en 225 ml Caldo Lactosa

16 - 20 h / 35 - 37 °C

1 ml de Caldo Lactosa a

10 ml Caldo TT

24 h a 35°C

1 ml de Caldo Lactosa a

10 ml selenito Cisteina

24 h a 35°C

Método FDA-BAM

para la Detección de Salmonella

4 días

9 medios

Agar XLD 24± 2 h a 35 °C

Agar Bismuto Sulfito 24± 2 h a 35 °C

Agar Hecktoen 24± 2 h a 35 °C

3 platos de cada

Caldo selectivo

Interpretación del crecimiento

Para confirmación: tome 5 colonias sospechosas de cada

plato y plaquee en Agar Nutritivo 18 - 24 h / 35 - 37 °C

Pruebas Bioquímicas/Serológicas de Confirmación

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25 g/ml de MUESTRA

en Caldo SALMOSYST®

6 h / 35 - 37 °C

Agregar 1 tableta de

SALMOSYST® SUPLEMENTO

A 10 ml de Caldo SALMOSYST®

y continúe incubando

18 h / 35 - 37 °C

AISLE EN AGARES PARA

SALMONELLA

Día

1

Día

2

Sólo 1

Medio

Enriquecimiento en 24 horas:

Caldo Salmosyst ®

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Los medios de cultivo tradicionales para

Salmonella se basan en la producción de H2S:

Desventaja:

Citrobacter y Proteus enmascaran la Salmonella

Alto número de falsos - positivos

Agar Rambach®

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Salmonella

Coliformes Proteus

Rojo Salmonella

Violeta Coliformes

Incolora Otras bacterias

Sistema Diferencial

Ssitema Selectivo

1. Salmonellae degrada el propilenglicol produciendo ácido.

El Rojo Neutro da el color rojo de las colonias

2. Las bacterias galatosidasa positivo degradan el sustrato

cromogénico produciendo colonias azul-violeta

Desoxycolato de Sodio

Principio

Agar Rambach®

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AGAR XLT4

Tergitol 4: inhibe Proteus

Citrobacter

Salmonella

Sistema Diferencial

Sistema Selectivo

Principio

Negro Salmonellae

Negro con halo amarillo Citrobacter

Incoloras con halo amarillo Bacterias Xilosa-Lactosa-Sucrosa positivo

Incoloras Otras bacterias ej. Shigella

Formación de H2S via tiosulfato

y hierro produce colonias negras

Disimilación de los azúcares produce ácido (rojo fenol cambia de rojo a amarillo

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Día

1

Día

3

Día

4

25 g/ml de muestra

en 225 ml Agua Peptonada 35-37 °C por 16-20 h

SEMBRAR

EN RAMBACH 37 °C POR 24 h

Día

2

NO Salmonella

presente

Si es positivo, se requiere confirmación por

cultivo y pruebas bioquímicas

0.1 ml AP a 10 ml Caldo RVS 42°C por 24 h

Calentar por 15 min a 95°C

Prueba Rápida Immunológica Singlepath® Salmonella para la Detección de Salmonella en

Alimentos

sólo 2 medios

sólo 2 días

SI Salmonella

presente

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Principio : Singlepath® Salmonella

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Evaluación de Singlepath® Salmonella:

aprobación AOAC

Evaluada con 105 especies de Salmonella y 58 no Salmonella

Demostró la detección de Salmonella sp a niveles bajos de contaminación: 1-10 ufc/25 gr, a partir de las siguientes matrices:

- Leche descremada en polvo

- Pimienta negra

- Alimento deshidratado de mascotas

- Coco deshidratado

- Langostinos congelados

- Carne cruda molida de res

- Carne cruda molida de pavo

Sensibilidad y especificidad: >98%

Certificate of Performance Tested Status : Certificate N° 060401

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Metodologías: Patógenos/Bacterias

Muestra

Caldo enriquecimiento Caldo enriquecimiento selectivo

= Patógeno

PCR Tiempo Real

1.- 2.-

3.- Aislamiento/identificación

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Comienzo 20 min 40 min 100 min

90 min

PCR-set up PCR

Preparación

muestra

Cultivo

enriquecido o

colonia aislada

Detección

y Análisis

En solamente 100 minutos desde el comienzo hasta el resultado

Introducción del qPCR (cuantitativo PCR)

Caldo de Enriquecimiento + muestra

(metodología tradicional, FDA, ISO)

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Convencional

Enriquecimiento No-selectivo

16 – 20h

Enriquecimiento Selectivo

24h

1. Medio Sólido

24h

2. Medio Sólido

24h

Aislamiento/Incubación

24h

Baterias Bioquímicas

4h

Verificación

Serológica 4h

Enriquecimiento No-

selectivo

16 – 24h

Preparacion Muestra

0.5h

Amplificación/Detección

1h

PCR

Tiempo ahorrado: neg. result > 2 d

pos. result > 4 d

De la Muestra al Resultado - Salmonella

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Métodos de Detección para

Listeria y L. monocytogenes

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Medios para el aislamiento de Listeria

• Agar PALCAM

– Listeria spp.

• Agar OXFORD

– Listeria spp.

• Agar Selectivo para Listeria acc. to AGOSTI & OTTAVIANI

– Listeria monocytogenes

– Medio cromogénico

– Nuevo medio obligatorio en el ISO Standard 11290 ( 2004 )

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* Los Agares PALCAM y OXFORD se basan en el desarrollo del

color negro por la hidrólisis de la esculina.

* El Agar PALCAM contiene manitol

para diferenciar Enterococci por la

fermentación del manitol (color amarillo)

Medios para el aislamiento de Listeria

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Agar Base Selectivo para Listeria ChromoCULT ALOA

Principio de funcionamiento

• Formulado bajo norma ISO 11290 (2004) y FDA-BAM 2003

• Principio de detección de Listeria monocytogenes:

1. “sustrato definido” o “sustrato cromogénico” :

detección de la enzima -D-glucosidasa

2. sustrato L-alfa fosfatidilinositol:

detección del factor de virulencia de L. monocytogenes (PI-PLC)

PI-PLC

- D Glucosidasa

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L. innocua

L. monocytogenes

Agar Chromocult® para Listeria

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Listeria spp. Listeria monocytogenes.

Agar Chromocult ALOA acc. a la Norma ISO

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Día

1

Día

3-6

25 g/ml MUESTRA

EN 225 ml CALDO FRASER A ½

CONCENTRACIÓN

30°C POR 24h

SEMBRAR

EN ALOA® + PALCAM

37°C POR 24 - 48h

Día

3-4

Método ISO 11290-Parte 1

Día

4-7

0.1 ml EN 10 ml FRASER

35 ó 37°C POR 48h

Todas las colonias que muestran color azul verdoso con halo opaco y/o color gris/verdoso con una

zona negra, son presuntivas de L. monocytogenes (colonias típicas).

Las colonias sospechosas deben ser confirmadas.

SEMBRAR

EN ALOA® +

PALCAM

37°C POR 24 - 48h

CONFIRMACIÓN BIOQUÍMICA: GRAM (+), CATALASA (+), MOVILIDAD (+),

CAMP (+), HEMOLISIS (+), GLUCOSA (+), RHAMNOSA (+), XYLOSA (-)

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Día

1

MUESTRA

Contar todas las colonias azul-

verdoso con halo opaco

Día

2 - 3

Método para Recuento ISO 11290-Parte 2

L. monocytogenes en Alimentos

Confirmación Bioquímica

0,1 ml

Día

4 - 5

37°C 24 - 48 h

Inocule en AgarALOA®

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Día

1

Día

3-5

Día

6

25 g/ml MUESTRA

EN 225 ml Buffered LEB

30 °C por 4 h

SEMBRAR

EN ALOA®

37 °C

Por 24 – 48 h

TOMAR 5 COLONIAS TIPICAS Y SUBCULTIVAR EN AGAR TSYE, 35 ó 37°C POR 24 h

Día

2-3

CONFIRMACIÓN BIOQUÍMICA

SEMBRAR

EN ALOA®

37 °C

por 24 – 48 h

SEMBRAR

EN OXFORD

35°C

po 24 –48 h

Después 24 h Después de 48 h

Método FDA-BAM

Agregar agentes

selectivos

30 oC por 44 h

SEMBRAR

EN OXFORD

35°C

Por 24 – 48 h

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Día

1

Día

3-5

Día

6

SEMBRAR

EN AGAR

OXFORD

30, 35 ó 37 °C

por 24 – 48 h

ó Día

2

Método IDF-FIL para leche y productos lácteos

SEMBRAR

EN AGAR

PALCAM

30, 35 ó 37 °C

por 24 – 48 h

25 g/ml MUESTRA

en 225 ml LEB 30 °C por 48h

TOMAR 5 COLONIAS TIPICAS Y SUBCULTIVAR EN AGAR TSYE, 35 ó 37°C POR 24 h

CONFIRMACIÓN BIOQUÍMICA

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Día

1

Día

3-5

Día

6

25 g/ml de MUESTRA

en 225 ml Caldo UVM I

30 °C por 24 h

0.1 ml a 10 ml de

Caldo UVM II ó FRASER

35 oC por 24 h

Día

2

SEMBRAR EN

AGAR OXFORD

35 °C por 24-48h

Método USDA para carnes rojas, pollo, huevos y

medio ambiente

CONFIRMACIÓN BIOQUÍMICA

TOMAR 5 COLONIAS TIPICAS Y SUBCULTIVAR EN AGAR TSYE, 35 ó 37°C POR 24 h

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Singlepath® L´mono

- Primera prueba rápida en el mundo para la detección específica de Listeria monocytogenes

- Para el tamizaje de muestras ambientales y de alimentos, como productos lácteos, salmón ahumado, hígado de ganso

- Para la confirmación de colonias sospechosas de Listeria,

aisladas de agares selectivos como PALCAM, Chromocult®

Listeria Agar, ALOA

- Límite de Detección: 2x 106 ufc/ml

- Medio de enriquecimiento usado: Fraser, LEB, UVM

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Día

1

Día

3

25 g/ml muestra en 225 ml LEB o UVM II

a 30 °C por 21-24 h

0,1 ml en 10 ml LEB,

UVM II 30oC por 21- 24h

ALOA

30, 35 o 37 °C

por 24 h

Día

2

Si es positivo, se requieren

confirmación por cultivo o pruebas bioquímicas

Detección Rápida Immunológica de Listeria mono-

cytogenes en Alimentos con Singlepath® L ´ mono

NO Listeria mono

presente

SI Listeria mono

presente

Solo en 20

minutos

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Suspender 1 - 5 colonias

sospechosas en 250 µl de Caldo BHI

L. monocytogenes

confirmada

Agar PALCAM Agar OXFORD Agar ALOA®

L. monocytogenes

no confirmada

180 µl

1 h at 37°C

Singlepath L’ Mono® y Chromocult ALOA

Confirmación perfecta

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Enriquecimiento No-

selectivo

24 – 48h

Preparacion Muestra

0.5h

Amplificación/Detección

1h

PCR

Tiempo ahorrado: neg. result > 2 d

pos. result > 4 d

De la Muestra al Resultado – Listeria monocytogenes

Convencional

Enriquecimiento No-selectivo

24 h

Enriquecimiento

Selectivo

24 – 48 h

1. Medio Sólido

24 h

Aislamiento/Incubación

24 h

Baterias

Bioquímicas

4 h

Verificación

Serológica 4 h

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Comienzo 20 min 40 min 100 min

90 min

PCR-set up PCR

Preparación

muestra

Cultivo

enriquecido o

colonia aislada

Detección

y Análisis

En solamente 100 minutos desde el comienzo hasta el resultado

Introducción del qPCR (cuantitativo PCR)

Caldo de Enriquecimiento + muestra

(metodología tradicional, FDA, ISO)