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UNIVERSIDAD DE GUAYAQUIL
FACULTAD DE CIENCIAS AGRARIAS
CARRERA DE INGENIERIA AGRONOMICA
“IDENTIFICACIÓN DE ENFERMEDADES EN PLANTAS
ORNAMENTALES EN LA CIUDADELA UNIVERSITARIA,
SALVADOR ALLENDE”
AUTORA:
COTALLAT SORIANO IRANIA JESENIA
TUTORA:
ING. AGR. MSC. LETICIA VIVAS VIVAS
GUAYAQUIL, SEPTIEMBRE 2018
ii
DEDICATORIA
Dedico este trabajo a Dios por estar presente día a día dándome las fuerzas
necesarias pese a las adversidades encontradas en el camino y poder culminar
sin tropiezos una etapa más de mi vida.
A mis padres ya que gracias a su apoyo incondicional durante el trayecto
de la carrera hicieron posible que pueda llegar hasta el final.
A mis hermanos por su apoyo constante, por último, a mi familia en general
ya que muchos pensaban que la carrera escogida no era la ideal, pero sin
embargo les dedico este trabajo ya que me dieron fuerza por llegar hasta lo último
y decirles ¡¡lo logre!!.
iii
AGRADECIMIENTO
A mis padres y hermanos.
A los docentes de la Universidad de Guayaquil “Facultad de Ciencias
Agrarias”.
A la Ing. Agr. Leticia Vivas MSc., subdecana de la facultad y tutora, por sus
conocimientos brindados para poder empezar con el desarrollo del trabajo de
investigación y posteriormente su finalización.
A la Ing. Laura Parismoreno por haberme brindado la ayuda necesaria en
el área del laboratorio.
A mis amigos, Carla García, Shirley León, Viviana Inca, Mariam Llanos,
Jimmy Sandoya, Rafael López, Daniel Merejildo, Jorge Alvarado, por brindarme
su ayuda incondicional para la elaboración de este trabajo, gracias por su apoyo.
iv
Sr.
Ing. Agr. Eison Valdiviezo Freire, MSc
DECANO
FACULTAD DE CIENCIAS AGRARIAS
UNIVERSIDAD DE GUAYAQUIL
Ciudad.
De mis consideraciones:
Envío a Ud. el Informe correspondiente a la tutoría realizada al Trabajo de Titulación
“Identificación de enfermedades en plantas ornamentales en la ciudadela universitaria,
Salvador Allende” de la estudiante Cotallat Soriano Irania Jesenia, indicando que ha
cumplido con todos los parámetros establecidos en la normativa vigente:
• El trabajo es el resultado de una investigación.
• El estudiante demuestra conocimiento profesional integral.
• El trabajo presenta una propuesta en el área de conocimiento.
• El nivel de argumentación es coherente con el campo de conocimiento.
Adicionalmente, se adjunta el certificado de porcentaje de similitud y la valoración del
trabajo de titulación con la respectiva calificación.
Dando por concluida esta tutoría de trabajo de titulación, CERTIFICO, para los fines
pertinentes, que la estudiante está apta para continuar con el proceso de revisión final.
Atentamente,
Ing. Agr. Leticia Viva Vivas MSc.
TUTOR DE TRABAJO DE TITULACIÓN
C.I. 1304384546
v
CERTIFICADO PORCENTAJE DE SIMILITUD
Habiendo sido nombrada Agr. Leticia Vivas Vivas MSc., tutora del trabajo
de titulación “IDENTIFICACIÓN DE ENFERMEDADES EN PLANTAS
ORNAMENTALES EN LA CIUDADELA UNIVERSITARIA, SALVADOR
ALLENDE” certifico que el presente trabajo de titulación ha sido elaborado por
Irania Jesenia Cotallat Soriano con C.I. No 0940528276, con mi respectiva
supervisión como requerimiento parcial para la obtención del título de Ingeniera
Agrónoma.
Se informa que el trabajo de titulación: “Identificación de enfermedades en
plantas ornamentales en la Ciudadela Universitaria, Salvador Allende”, ha sido
orientado durante todo el periodo de ejecución en el programa antiplagio
(URKUND) quedando el 1% de coincidencia.
vi
REPOSITORIO NACIONAL EN CIENCIA Y TECNOLOGÍA
FICHA DE REGISTRO DE TESIS/TRABAJO DE GRADUACIÓN
TÍTULO Y SUBTÍTULO: “Identificación de enfermedades en plantas ornamentales en la Ciudadela
Universitaria, Salvador Allende”
AUTOR(ES) Irania Jesenia Cotallat Soriano
REVISOR(ES)/TUTOR(ES) Ing. Agr. Ángel Jines Carrasco, MSc.
Ing. Agr. Leticia Vivas Vivas, MSc.
INSTITUCIÓN: Universidad de Guayaquil
UNIDAD/FACULTAD: Ciencias Agrarias
MAESTRÍA/ESPECIALIDAD:
GRADO OBTENIDO: Ingeniero Agrónomo
FECHA DE PUBLICACIÓN: 21-08-2018 No. DE PÁGINAS: 50
ÁREAS TEMÁTICAS: Fitopatología
PALABRAS CLAVES/ KEYWORDS: Enfermedades, hongos y patogenicidad.
RESUMEN/ABSTRACT:
Las enfermedades en las plantas ornamentales causan muerte de las mismas y en la ciudadela universitaria Salvador
Allende de la Universidad de Guayaquil, se observó que las áreas verdes estaban afectadas por agentes causales, para
ello fue necesario su identificación, se recorrió por todos los jardines de la ciudadela universitaria en las que se tomó
muestras de plantas que presentaron señales de enfermedad. Este trabajo tuvo como objetivo: 1. Identificar la
incidencia, severidad y causales de las enfermedades para conocer la causa de su muerte. 2. Determinar la
patogenicidad sobre las plantas. Las muestras se las llevó al laboratorio de la Facultad de Ciencias Agrarias para
proceder con la limpieza, se preparó la cámara húmeda para la esporulación de las mismas, posteriormente, se aislaron
los microorganismos en medio de cultivo (PDA). La identificación a nivel de género se hizo en el microscopio simple
de luz. Los hongos identificados fueron replicados y purificados en PDA, para la multiplicación masiva de los mismos
y luego realizar las pruebas de patogenicidad. Con los hongos identificados se hizo suspensiones con agua destilada
estéril para inocular las especies de plantas observadas. Por cada hongo se usó 1x106 esporas /ml de agua. Las
evaluaciones se realizaron cada 15 días en base a la escala arbitraria 0 a 5 propuesta por Cotallat y Vivas (2018). Los
géneros de hongos identificados fueron: Fusarium solani y Fusarium sp, Aspergillus niger y Cylindrocladium; siendo
la especie F. solani y el género Cylindrocladium los de mayor agresividad en plantas de lengua de suegra y cordyline.
ADJUNTO PDF: X SI NO
CONTACTO CON AUTOR/ES: Teléfono: 0960152578 E-mail: [email protected]
CONTACTO CON LA INSTITUCIÓN:
Nombre: Ing. Agr. Leticia Vivas Vivas MSc.
Teléfono: (042)288040
E-mail: [email protected]
vii
LICENCIA GRATUITA INTRANSFERIBLE Y NO EXCLUSIVA PARA EL USO
NO COMERCIAL DE LA OBRA CON FINES NO ACADÉMICOS
Yo, Irania Jesenia Cotallat Soriano con C.I. No 0940528276, certifico que los
contenidos desarrollados en este trabajo de titulación, cuyo título es “Identificación de
enfermedades en plantas ornamentales en la Ciudadela Universitaria, Salvador Allende”
son de mi absoluta propiedad y responsabilidad Y SEGÚN EL Art. 114 del CÓDIGO
ORGÁNICO DE LA ECONOMÍA SOCIAL DE LOS CONOCIMIENTOS,
CREATIVIDAD E INNOVACIÓN*, autorizo el uso de una licencia gratita intransferible
y no exclusiva para el uso no comercial de la presente obra con fines no académicos, en
favor de la Universidad de Guayaquil, para que haga uso del mismo, como fuera
pertinente.
________________________________________
Irania Jesenia Cotallat Soriano
C.I. No 0940528276
RESUMEN
*CÓDIGO ORGÁNICO DE LA ECONOMÍA SOCIAL DE LOS CONOCIMIENTOS,
CREATIVIDAD E INNOVACIÓN (registro oficial No. 899-Dic./2016) Art. 114.- De los
titulares de derechos de obras creadas en las instituciones de educación superior o centros
educativos.- En el caso de las obras creadas en centros educativos, universidades, escuelas
politécnicas, institutos superiores técnicos, tecnológicos, pedagógicos, de artes y los
conservatorios superiores, e institutos públicos como resultado de actividad académica o de
investigación tales como trabajos de titulación, proyectos de investigación o innovación,
artículos académicos, u otros análogos, sin perjuicios de que pueda existir relación de
dependencia, la titularidad de los derechos patrimoniales corresponderá a los autores. Sin
embargo, el establecimiento tendrá una licencia gratuita, intransferible y no exclusiva para el
uso no comercial de la obra con fines académicos.
viii
“IDENTIFICACIÓN DE ENFERMEDADES EN PLANTAS ORNAMENTALES
EN LA CIUDADELA UNIVERSITARIA, SALVADOR ALLENDE”
Autora: Irania Jesenia Cotallat Soriano.
Tutora: Ing. Agr. Leticia Vivas Vivas, MSc.
RESUMEN
Las enfermedades en las plantas ornamentales causan muerte de las mismas y en la ciudadela universitaria Salvador Allende de la Universidad de Guayaquil, se observó que las áreas verdes estaban afectadas por agentes causales, para ello fue necesario su identificación, se recorrió por todos los jardines de la ciudadela universitaria en las que se tomó muestras de plantas que presentaron señales de enfermedad. Este trabajo tuvo como objetivo: 1. Identificar la incidencia, severidad y causales de las enfermedades para conocer la causa de su muerte. 2. Determinar la patogenicidad sobre las plantas. Las muestras se las llevó al laboratorio de la Facultad de Ciencias Agrarias para proceder con la limpieza, se preparó la cámara húmeda para la esporulación de las mismas, posteriormente, se aislaron los microorganismos en medio de cultivo (PDA). La identificación a nivel de género se hizo en el microscopio simple de luz. Los hongos identificados fueron replicados y purificados en PDA, para la multiplicación masiva de los mismos y luego realizar las pruebas de patogenicidad. Con los hongos identificados se hizo suspensiones con agua destilada estéril para inocular las especies de plantas observadas. Por cada hongo se usó 1x106 esporas /ml de agua. Las evaluaciones se realizaron cada 15 días en base a la escala arbitraria 0 a 5 propuesta por Cotallat y Vivas (2018). Los géneros de hongos identificados fueron: Fusarium solani y Fusarium sp, Aspergillus niger y Cylindrocladium; siendo la especie F. solani y el género Cylindrocladium los de mayor agresividad en plantas de lengua de suegra y cordyline.
Palabras Claves: Enfermedades, hongos y patogenicidad.
ix
"IDENTIFICATION OF DISEASES IN ORNAMENTAL PLANTS IN THE
CIUDADELA UNIVERSITARIA, SALVADOR ALLENDE”
Author: Irania Jesenia Cotallat Soriano.
Advisor: Ing. Agr. Leticia Vivas Vivas, MSc.
ABSTRACT
Death of ornamental plants can be caused by some diseases, which is commonly observed in Salvador Allende university citadel of the University of Guayaquil, where some green areas have been highly affected. Therefore, it was necessary to identify these causal agents by going through all the gardens of the institution to collect samples of plants with signs of these diseases. The aims of this work were: 1. To identify the incidence, severity and causes of the diseases in order to know the cause of death. 2. To determine pathogenicity in plants. The samples were taken to the laboratory of the Faculty of Agricultural Sciences for the respective cleaning, the humid chamber was groomed for the sporulation of them. After that, the microorganisms were isolated in culture medium (PDA). The identification at gender level was made in the simple light microscope. The identified fungi were replicated and purified in PDA, for the massive multiplication of them as well as the conduction of the pathogenicity tests. Once the fungi were pinpointed, suspensions were made with sterile distilled water to inoculate the observed plant species. For each fungus 1x106 spores / ml of water was used. The evaluations were made every 15 days based on the arbitrary scale 0 to 5 proposed by Cotallat and Vivas (2018). The identified fungal genres were: Fusarium solani and Fusarium sp, Aspergillus niger and Cylindrocladium; being the species F. solani and the genus Cylindrocladium those with greater aggressiveness in mother tongue plants and cordyline.
Keywords: Diseases, fungi and pathogenicity.
x
INDICE
Página
RESUMEN ................................................................................................................ viii
ABSTRACT ................................................................................................................. ix
I. INTRODUCCIÓN ..................................................................................... 1
Objetivo general: ...................................................................................................... 3
Objetivos especificos: ............................................................................................. 3
II. MARCO TEÓRICO .............................................................................................. 4
2.1. Plantas ornamentales ............................................................................ 4
2.2. Historia ....................................................................................................... 4
2.3. Tipos de plantas ornamentales........................................................... 5
2.4. Propiedades fisicoquímicas ................................................................. 6
2.5. Propagación ............................................................................................. 7
2.5.1. Sexual ........................................................................................................ 7
2.5.2. Asexual o vegetativa.............................................................................. 7
2.5.2.1. Injerto ......................................................................................................... 8
2.5.2.2. Acodo ......................................................................................................... 8
2.5.2.3. Estacas o esquejes ................................................................................ 9
2.5.2.4. Micropropagación ................................................................................... 9
2.6. Enfermedades que atacan a las plantas ornamentales ............ 10
2.6.1. Antracnosis (manchas foliares) ........................................................ 10
2.6.2. Pudrición seca o fusariosis ................................................................ 10
2.6.3. Mildiu polvoriento .................................................................................. 11
2.6.4. Moho blanco o algodonoso (Sclerotinia sclerotiorum) ............... 11
2.6.5. Roya (Puccinia sp) ............................................................................... 12
2.6.6. Moho gris (Botrytis sp) ........................................................................ 12
2.6.7. Tizón (Rhizoctonia solani) .................................................................. 13
2.6.8. Cenicillas (Odium sp) .......................................................................... 14
2.6.9. Marchitez (Pythium sp.) ...................................................................... 14
2.6.10. Podredumbre de raíz (Phytophthora sp) ........................................ 15
2.6.11. Verticilosis (Verticiullim sp) ................................................................ 15
xi
2.6.12. Manchas foliares (Alternaria sp) ....................................................... 16
2.6.13. Fumagina (Cephaleurus sp) .............................................................. 16
2.6.14. Manchas foliares (Cylindrocladium sp) .......................................... 17
2.6.15. Agallas de las hojas y flores (Exobasidium spp) ......................... 17
2.6.16. Mancha parda (Rhizoctonia solani) ................................................. 18
2.6.17. Mancha foliar (Curvularia) .................................................................. 18
2.7. Bacterias ................................................................................................. 18
2.7.1. Tizón de fuego (Erwinia amylovora) ................................................ 19
2.8. Virus que afectan a las plantas ornamentales ............................. 19
III. MATERIALES Y MÉTODOS ............................................................................. 21
3.1. Ubicación del ensayo .......................................................................... 21
3.2. Materiales usados en laboratorio ..................................................... 21
3.1.1. Cámara húmeda ................................................................................... 21
3.2.2. Observación e identificación de las muestras .............................. 21
3.2.3. Medio de cultivo .................................................................................... 21
3.2.4. Siembra de muestras identificadas ................................................. 21
3.2.5. Solución ................................................................................................... 22
3.2.6. Materiales usados en invernadero................................................... 22
3.3. Factores estudiados............................................................................. 22
3.4. Tratamientos .......................................................................................... 22
3.5. Diseño experimental ............................................................................ 23
3.6. Análisis de varianza y funcional ....................................................... 23
3.7. Manejo del experimento ..................................................................... 23
3.7.1. Recolección de muestra ..................................................................... 23
3.7.2. Limpieza de muestras ......................................................................... 24
3.7.3. Cámara húmeda ................................................................................... 25
3.7.4. Multiplicación de microorganismos en medio de cultivo ........... 26
3.7.5. Patogenicidad ........................................................................................ 31
3.8. Evaluaciones de severidad ................................................................ 34
3.10. Variables evaluadas............................................................................. 34
IV. RESULTADOS Y DISCUSIÓN ......................................................................... 35
xii
4.1. Porcentaje de plantas afectadas por enfermedades .................. 35
4.2. Hongos identificados ........................................................................... 35
4.3. Patogenicidad de hongos identificados .......................................... 37
4.4. Porcentaje de patogenicidad ............................................................. 42
V. CONCLUSIONES Y RECOMENDACIONES ................................................... 47
VI. BIBLIOGRAFÍA ................................................................................................. 48
ANEXOS .................................................................................................................... 52
xiii
ÍNDICE DE FIGURAS DEL TEXTO
Figura 1. Recolección de muestras por todos los jardines de la Ciudadela
Universitaria……………………………………………………………………………………24
Figura 2. Proceso de limpieza de las muestras en laboratorio mediante el uso de agua
destilada………………………………………………………………….…………………….25
Figura 3. Materiales para la elaboración de la cámara húmeda (A-B-C), colocación de
las muestras en caja petri (D), algodón humedecido (E), cubierta de las cajas petri (F),
numeración de muestras (G-H). ...................................................................................... 26
Figura 4. Potato dextrose agar (A), peso del medio de cultivo (B), vertida del PDA en el
agua destilada (C), disolución (D), colocación en recipientes (E), sellado de los
recipientes con papel aluminio (F-G), esterilización del medio de cultivo en la olla de
presión (H). ....................................................................................................................... 27
Figura 5. Esterilización del asa (A), observación de la muestra (B), toma de la
esporulación (C), colocación de la esporulación en el medio de cultivo (D), numeración
de las muestras (E), sellado de muestra con papel plástico (F), muestras aisladas (G),
crecimiento del hongo (H-I). ............................................................................................ 28
Figura 6. Ácido latico (A), esterilización del asa (B), toma de la muestra (C), colocación
de la muestra en la placa porta objeto (D-E), observación de las muestras (F). ........... 29
Figura 7. Esterilización del asa (A), toma de muestra (B), colocación en el medio de
cultivo (C-D), numeración en las muestras (E), sellado de muestras (F), replicas (G). . 30
Figura 8. Colocación del agua estéril en el vaso de precipitación (A), agua destilada en
el recipiente de la muestra (B), retirada del micelio (C-D), vertida de la solución en el
vaso de precipitación (E), disolución (F). ........................................................................ 31
Figura 9. Colocación de solución en la cámara de Neubauer (A), observación conteo de
esporas (B). ...................................................................................................................... 32
Figura 10. Heridas en hojas y tallos de las distintas plantas ornamentales. ................. 33
Figura 11. Aplicación de la solución en plantas ornamentales donde se realizaron las
heridas……………………………………………………………………………………….…34
Figura 12. Identificación de Fusarium solani en peregrina (A), Cylindrocladium spp en
lengua de suegra (B), Fusarium sp en cordyline, Aspergillus niger en crotón (C). ........ 36
xiv
ÍNDICE DE FIGURAS DEL ANEXO
Figura 1A. Síntomas de Fusarium sp en cordyline. ..................................................... 52
Figura 2A. Síntomas de Fusarium sp en crotón. .......................................................... 52
Figura 3A. Síntomas de Fusarium sp en peregrina. .................................................... 53
Figura 4A. Síntomas de Fusarium sp en lengua de suegra. ....................................... 53
Figura 5A. Síntomas de Aspergillus niger en cordyline ............................................... 54
Figura 6A. Síntomas de Aspergillus niger en peregrina. ............................................. 54
Figura 7A. Síntomas de Aspergillus niger en lengua de suegra.................................. 55
Figura 8A. Sintomas de Cylindrocladium sp en peregrina. .......................................... 55
Figura 9A. Síntomas de Cylindrocladium sp en crotón. ............................................... 56
Figura 10A. Síntomas de Cylindrocladium sp en cordyline. .......................................... 56
Figura 11A. Síntomas de Cylindrocladium sp en lengua de suegra. ............................. 57
Figura 12A. Síntomas de Fusarium solani en cordyline. ............................................... 57
Figura 13A. Síntomas de Fusarium solani en peregrina. ............................................... 58
Figura 14A. Síntomas de Fusarium solani en crotón. .................................................... 58
Figura 15A.Síntomas de Fusarium solani en lengua de suegra. ................................... 59
ÍNDICE DE CUADROS DEL TEXTO
Cuadro 1. Porcentaje de incidencia en plantas afectadas.. ........................................... 35
Cuadro 2. Identificación de hongos en muestras de plantas ornamentales... ............... 35
Cuadro 3. Presencia de síntomas causados por Fusarium sp en cuatro especies de
plantas ornamentales... .................................................................................................... 38
Cuadro 4. Presencia de síntomas causados por Aspergillus niger en en cuatro especies
de plantas ornamentales.................................................................................................. 39
Cuadro 5. Presencia de síntomas causados por Cylindrocladium sp n en cuatro especies
de plantas ornamentales.................................................................................................. 40
Cuadro 6. Presencia de síntomas causados por Fusarium solani n en cuatro especies
de plantas ornamentales.................................................................................................. 41
Cuadro 7. Porcentaje promedio de plantas de cordyline con diferentes síntomas después
de inoculadas por cuatro especies de hongos……………………………………..………42
Cuadro 8. Porcentaje promedio de plantas de peregrina con diferentes síntomas
después de inoculadas por cuatro especies de
hongos..…..…………………………………………………………………………………….43
xv
Cuadro 9. Porcentaje promedio de plantas de crotón con diferentes síntomas después
de inoculadas por cuatro especies de
hongos……...…………………………………………………………………………………..44
Cuadro 10. Porcentaje promedio de plantas de lengua de suegra con diferentes
síntomas después de inoculadas por cuatro especies de
hongos………...……………………………………………………………………………..…45
ÍNDICE DE CUADROS DEL ANEXO
Cuadro 1A. Inoculación del hongo Fusarium sp en cordyline. .................................... 59
Cuadro 2A. Inoculación del hongo Fusarium sp en crotón. ......................................... 60
Cuadro 3A. Inoculación del hongo Fusarium sp en peregrina. .................................... 61
Cuadro 4A. Inoculación del hongo Fusarium sp en lengua de suegra. ....................... 62
Cuadro 5A. Inoculación del hongo Aspergillus niger en cordyline............................... 63
Cuadro 6A. Inoculación del hongo Aspergillus niger en crotón. .................................. 64
Cuadro 7A. Inoculación del hongo Aspergillus niger en peregrina. ............................. 65
Cuadro 8A. Inoculación del hongo Aspergillus niger en lengua de suegra. ................ 66
Cuadro 9A. Inoculación del hongo Cylindrocladium sp en cordyline.. ......................... 67
Cuadro 10A. Inoculación del hongo Cylindrocladium sp en crotón. .............................. 68
Cuadro 11A. Inoculación del hongo Cylindrocladium sp en peregrina .......................... 69
Cuadro 12A. Inoculación del hongo Cylindrocladium sp en lengua de suegra. ............ 70
Cuadro 13A. Inoculación del hongo Fusarium solani en cordyline ................................ 71
Cuadro 14A. Inoculación del hongo Fusarium solani en crotón…………………………72
Cuadro 15A. Inoculación del hongo Fusarium solani en peregrina ............................... 73
Cuadro 16A. Inoculación del hongo Fusarium solani en lengua de suegra .................. 74
1
I. INTRODUCCIÓN
Las plantas ornamentales son fundamental para el embellecimiento de los
diversos jardines que se encuentren en áreas públicas o privadas, este tipo de
plantas se las encuentra en una amplia variedad ya sea de tamaños, colores y
formas, adaptándose a los diversos climas y condiciones que sean necesarias
logrando una excelente imagen.
En la Universidad de Guayaquil existe una superficie total de áreas verdes
de 40.738,34 m2 lo cual no incluyen las especies que se encuentran en la parte
del malecón del salado. En las 248 jardineras con 10994 plantas y se han
identificado 116 especies, las mismas que corresponden a frutales (592),
forestales (323), ornamentales (9370), palmeras (551) y medicinales (108).
Como se mencionó anteriormente hay una amplia variedad de plantas, sin
embargo, las de mayor interés para la realización de este proyecto fueron las
plantas ornamentales; siendo estas el mayor número de que se encuentran en la
ciudadela universitaria ayudando al embellecimiento de sus jardines.
Estas plantas al igual que las demás cumplen una función importante siendo
la de purificar el aire ya sea que se encuentren en lugares externos o internos,
sin embargo, al igual que los demás cultivos son susceptibles a varias
enfermedades y cada una de ellas presentan sintomatologías distintas lo cual
requiere de la realización de todas las labores necesarias para darles el
manteniendo que merecen, de igual manera se requiere del uso de productos
químicos para el manejo de las mismas.
Una planta está enferma cuando muestra síntomas fácilmente observables,
como necrosis, clorosis, marchitez y hasta muerte de la misma, esto se debe a
que no puede cumplir con normalidad su proceso fisiológico y esto puede ser a
causa de factores bióticos y abióticos. Entre los primeros existen hongos,
bacterias, virus y nematodos; los hongos afectan al sistema vascular de la planta
(xilema y floema); igualmente las bacterias y los virus. Los factores abióticos
2
como la temperatura (altas o bajas), puede afectar su fisiología o causar la muerte
de las células, así como la humedad, luz, pH, nutrientes y utilización de
herramientas contaminadas.
Planteamiento del problema
El mayor número de plantas que se encuentran identificadas son las
ornamentales, siendo estas fundamentales para el embellecimiento de los
jardines de la ciudadela universitaria.
Las plantas ornamentales al igual que cualquier otro cultivo requiere de la
realización de todas las labores para darles el manteniendo adecuado, sin
embargo, hay una labor que no se la está llevando a cabo la cual es el tema del
manejo de enfermedades.
De acuerdo con las observaciones las plantas de ornato de la ciudadela
universitaria presentan necrosis, amarillamiento y muerte de plantas, a pesar de
que existe un Departamento de áreas verdes no cuenta con la planificación
fitosanitaria adecuada para evitar que el daño continúe y las demás plantas que
se encuentren sanas no resulten afectadas, tampoco conoce que tipo de
enfermedades están incidiendo en las mismas.
Justificación
El presente trabajo de investigación se justifica debido a que las plantas
ornamentales juegan un papel importante en el ornato de parques, avenidas,
áreas verdes, éstas son afectadas por enfermedades, en la ciudadela
universitaria donde se pudo observar que algunas plantas estaban afectadas por
fitopatógenos por la sintomatología que presentaba.
Esta investigación tiene como prioridad generar la información básica la cual
servirá como una herramienta útil para todas las personas que se involucren en
actividades relacionadas con las plantas ornamentales, podrán reconocer con
facilidad las causas y diseñar programas o alternativas para un manejo integrado
sostenible y sustentable de las diversas enfermedades.
3
Objetivo general:
Identificar que enfermedades atacan a las plantas ornamentales presentes
en la Ciudadela Universitaria.
Objetivos especificos:
1. Determinar la incidencia, severidad y causales de las enfermedades de
plantas ornamentales.
2. Determinar la patogenicidad sobre las mismas plantas hospederas.
4
II. MARCO TEÓRICO
2.1. Plantas ornamentales
Después del surgimiento de la agricultura se empezó a cultivar las
primeras plantas ornamentales ya que estas se adaptan a cualquier necesidad,
sin embargo, la búsqueda de mejorarlas no cesaba. La mayoría de estas plantas
han estado distribuidas por toda la naturaleza durante miles de años sin ser
utilizadas, pero como ahora son importantes ya se las cultiva dándoles distintos
usos (Sánchez J. , 2012).
Estas plantas se cultivan con la finalidad de mostrar su belleza, son
esenciales en la elaboración de los jardines, ya que estas son áreas previamente
diseñadas donde se puede tener un acercamiento hacia la naturaleza sin perder
el estilo de vida actual brindando una buena comodidad a todas las personas.
Entre los beneficios que brindan las plantas de ornato tenemos que se puede
producir más plantas, ayuda a mejorar la salud y calidad del suelo, no contamina
al ambiente y pueden durar durante mucho tiempo (Soto, 2017).
2.2. Historia
Los primeros viveros de plantas ornamentales que se establecieron en el
Ecuador fueron alrededor del año de 1875, esto surgió con la llegada de
inmigrantes alemanes, portugueses, españoles, italianos y japoneses.
Actualmente existen diversos viveros de dichas plantas los cuales se encuentren
en Tungurahua, Cotopaxi, Imbabura, Bolívar, Pichincha, Chimborazo, Santo
Domingo de los Tsáchilas y Milagro.
Los viveros se dividen en dos campos: interior y exterior. Las plantas de
interior se desarrollan en espacios más reducidos por lo cual requieren de
instalaciones que se encuentren debidamente equipadas y con buena tecnología.
Las de exterior requieren mayores extensiones de tierra ya que existen mayores
variedades.
5
2.3. Tipos de plantas ornamentales
Estas plantas son cultivadas y comercializadas con el objetivo de demostrar
su atractivo. Sin embargo, hay plantas que tienen doble uso, es decir, alimenticio
y ornamental como lo es el naranjo, el olivo. La importancia de estas plantas ha
incrementado con el desarrollo de la sociedad y con el aumento de las áreas
verdes ya sea de uso interior o exterior (Ríos, 2014). En la actualidad existen más
de 3000 tipos de plantas entre las cuales tenemos:
˗ Césped
˗ Arbustos: cerezo y laurel
˗ Palmeras
˗ Arboles
˗ Acuáticas: helecho acuático y lentejas de agua
˗ Trepadoras: helecho trepador, hiedra, pasionaria
˗ Tuberosas: cactus, dalia
˗ Bulbosas: jacinto, gladiolo, narciso
˗ Anuales: petunia
˗ Bambúes
˗ Planta interior: Ficus
˗ Epifitas: clavel de aire
Flores
˗ Silvestres: campanas, orquídeas, amapolas
˗ Ornamentales: rosas, violetas, claveles
6
˗ Jardín: crisantemos, tulipanes
˗ De campo: geranios, margaritas
2.4. Propiedades fisicoquímicas
Renovación de aire
A través del proceso de la fotosíntesis las plantas transforman el dióxido
de carbono en oxígeno, este ciclo lo llevan a cabo por las mañanas ya que
aprovechan la luz solar para la realización de la actividad antes mencionada.
Humidificación del ambiente
La planta tiene la capacidad de incrementar la humedad en el aire de esta
manera nos ayuda a mantener la garganta, mucosa y piel hidratada. Debido a
que el ambiente no es seco evita que padezcamos tos o irritaciones a la piel.
Eliminación de contaminantes
Tienen la capacidad de absorben gases dañinos y partículas químicas, los
cuales son transformados por las plantas en nutrientes, este proceso lo realizan
mediante la colaboración de unas bacterias que se encuentran en su raíz.
Captación de polvo
Las plantas reducen hasta un 20% de la cantidad de polvo que se encuentra
en el aire, gracias a esta limpieza la sensación de cansancio que podemos sentir
disminuye.
Mejoramiento del ánimo y bienestar
Ayuda a disminuir el estrés, aumenta el nivel de concentración, relaja.
Además, ayuda a que un enfermo se pueda recuperar más rápido (Línea verde ,
s.f).
7
2.5. Propagación
2.5.1. Sexual
La semilla es un órgano de propagación que da origen a nuevo individuo
el que posteriormente se dispersará. El éxito del nuevo individuo está
determinado por sus características fisiológicas y bioquímicas, sin embargo, hay
otros elementos que intervienen en el desarrollo como factores climáticos, el
suelo, depredadores, entre otros (Osuna, Osuna, & Fierro, 2017).
2.5.2. Asexual o vegetativa
La propagación asexual es una práctica fundamental en especies
ornamentales, frutícolas y forestales ya que estas presentan ciertos problemas al
momento de su reproducción por lo que es necesario aplicar métodos especiales.
Existen plantas que no producen semillas por lo tanto es importante la utilización
de métodos asexuales ya que se puede generar clones. Un clon es un organismo
que deriva de otro obteniéndolo a través de la reproducción no sexual el cual
procede de una sola planta el que tendrá características idénticas.
Entre las ventajas de estos métodos tenemos que; no tienen que producir
células sexuales, no gastan energías en actividades previas a la fecundación, da
lugar a un gran número de descendientes. Entre los inconvenientes se menciona
que la descendencia no posee variabilidad genética, puede que no logre
sobrevivir a un nuevo medio debido que no posee la información genética
necesaria para adaptarse a cambios, por lo tanto, esa especie podría
desaparecer.
La importancia de esta reproducción es que puede surgir mediante la
formación de tallos adventicios, raíces, injertos o por cultivo in vitro. Este método
utiliza partes vegetativas de una planta por lo que es posible realizarlo dado que
cada célula posee características genéticas que hacen necesaria la creación de
una nueva planta. Asimismo, los acodos, esquejes y las hojas tienen la capacidad
de formar raíces (Reyes, 2015).
8
2.5.2.1. Injerto
Permite heredar las características del patrón al huésped o injerto que se
reproducirá. Esta técnica se realiza mediante la unión de una planta con otra
dando como resultado un nuevo individuo.
Ventajas
˗ La especie que se multiplica no pierde la calidad.
˗ La producción de los frutos es más rápida.
˗ Mejora su desarrollo y crecimiento.
˗ Las características del patrón son trasladadas al huésped haciéndolo
resistente a enfermedades.
˗ Las plantas que se obtienen son de menor tamaño facilitando las labores
culturales.
˗ Es una buena opción para rejuvenecer un árbol viejo.
Tipos de injerto
Entre los tipos de injertos tenemos el injerto de cuña y el injerto de yema
también llamado T invertida. Sea el tipo de injerto que se quiera hacer es
necesario tener en cuenta que al momento de realizar la unión del patrón con el
huésped este tiene que coincidir con el cambium el cual es la parte interior se
encuentra luego de la corteza por donde se transportan todos los nutrientes, con
el objetivo de que prenda y así tener un injerto exitoso (Instituto nacional
tecnológico, 2016).
2.5.2.2. Acodo
Con este método se da la formación de raíces adventicias a un tallo que
todavía se encuentra sujeto a la planta de origen, posteriormente este tallo es
9
separado de la planta madre para ser sembrado. La ventaja de esta reproducción
es que la rama que se encuentra acodada continúa recibiendo minerales y agua
dado que aún sigue adherida a la planta.
Entre los usos principales tenemos que hay pantas que se reproducen de
manera natural por este método, es útil para producir plantas de gran tamaño en
un corto tiempo, cuando se utiliza la propagación por estacas y estas no enraízan
es justificable usar la reproducción del acodo (Medina, 2015).
2.5.2.3. Estacas o esquejes
Es un método importante para la propagación de arbustos ornamentales,
donde se utilizan partes de tallos con yemas, estos son enterrados los mismos
que serán capaces de originar nuevas plantas idénticas a la planta madre,
cuando las condiciones ambientales son favorables estas empiezan a emitir las
raíces.
Para obtener las estacas hay que tener en cuenta diversos factores como:
la intensidad de la luz, la alta humedad y la temperatura. Es importante evitar que
la estaca se deshidrate pues debido al corte pierden rápidamente agua por medio
de la transpiración, aun cuando la humedad relativa sea alta (Reyes, 2015).
2.5.2.4. Micropropagación
Consiste en producir plantas a partir de pequeñas porciones de ellas, esto
se lo realiza a nivel de laboratorio llamado cultivo in vitro donde se coloca tejidos
o células ya sea en tubos de ensayo o en cualquier otro recipiente que se pueda
controlar la nutrición y las condiciones ambientales, estos son plantados en un
medio de cultivo dando origen a nuevos brotes los cuales son divididos en
propágulos para ser multiplicados, finalmente desarrollan raíces obteniendo
nuevas plantas (Medina, 2015).
10
2.6. Enfermedades que atacan a las plantas ornamentales
2.6.1. Antracnosis (manchas foliares)
Esta enfermedad causada por un hongo del género Colletotricum y se lo
encuentra en algunas plantas atacando a cultivos de hortalizas, frutícolas, al
ornato, entre otros. Esta enfermedad puede estar presente durante todo el año,
sin embargo, cuando el clima es cálido o húmedo se la encuentra con mayor
severidad. Los principales síntomas de esta enfermedad son manchas foliares
oscuras de consistencia dura las cuales se extienden desde el borde de la hoja
hacia las nervaduras (Vifinex, 2001).
Generalmente este patógeno se encuentra en todas las partes de plantas,
los síntomas principalmente empiezan a surgir lesiones de menor tamaño en la
superficie foliar los cuales pueden tomar distintas coloraciones como pardo,
amarillento o rojizo donde el borde se lo encontrara remarcado y poco a poco
estas lesiones se van agrandando hasta que luego se secan, presentando
agujeros y por último surjan su caigan.
Debido a los daños que causa esta enfermedad se produce un
debilitamiento de la parte foliar causando una disminución del proceso de la
fotosíntesis (Carrasco C. , 2013).
2.6.2. Pudrición seca o fusariosis
Las condiciones ideales para el crecimiento de Fusarium se hacen
presentes cuando hay humedades altas y las temperaturas se encuentran entre
los 15 y 200C. Este hongo ingresa por cualquier herida que tenga la planta
causando el desarrollo del mismo, donde luego se manifiesta la pudrición, puede
permanecer años en el suelo logrando infectar a las plantas que se encuentren
en el sitio.
Los principales síntomas que presenta esta enfermedad se manifiestan en
los tallos donde aparecen lesiones de color café, las raíces pueden emanar un
11
mal olor, en las hojas causan amarillamientos (aunque puede variar este
síntoma), luego puede ocasionar la marchitez de toda la planta causando su
descenso. Esta es una enfermedad que se puede diseminar con rapidez
causando graves daños a los cultivos (Acuña, 2017).
2.6.3. Mildiu polvoriento
Esta enfermedad ataca a varios cultivos entre los cuales, plantas
ornamentales, frutales, hortalizas, entre otros. Aunque este patógeno varié de
hospedante los síntomas serán similares. Se la encuentra en climas un poco
fríos, donde la humedad relativa es alta produciendo el desarrollo con rapidez del
patógeno (Guerrero, s.f).
Los síntomas se inician con la aparición de manchas blanquecinas en forma
algodonosa las cuales se las encuentran por todas partes de la planta, estas se
van extendiendo poco a poco llegando a cubrirla por completo. En ocasionas las
flores también pueden ser afectadas por enfermedad.
Otra señal que presentan es la aparición de manchas de color amarillo en
los extremos de las hojas viejas, la punta toma una coloración marrón, a medida
que va avanzando la enfermedad contamina a las hojas jóvenes causando una
disminución de su tamaño, cambio de su coloración natural, se enrollan y
terminan por caerse. Cuando la enfermedad ha invadido a toda la planta esta se
pudre perjudicando el atractivo que presenta (Enfoque: plantas y enfermedades,
2018).
2.6.4. Moho blanco o algodonoso (Sclerotinia sclerotiorum)
Este hongo puede habitar en el suelo durante años siendo las condiciones
óptimas para su desarrollo los climas húmedos y templados (Carrasco A. , 2013).
Dependiendo de los cultivos los síntomas pueden variar, pero sin embargo
presentan ciertas características similares. El ataque comienza desde la parte
inferior de la planta causando su marchitez y finalmente la muerte.
12
Las primeras manifestaciones de la enfermedad empiezan con la presencia
de manchas húmedas donde son cubiertas por un moho algodonoso de color
blanquecino, posteriormente se forma una masa de micelio compactada llamada
esclerocios la cual presenta una coloración grisácea, luego el hongo se traslada
hacia la parte superior de la planta tomando una coloración café debido a la
marchitez que empieza a manifestarse (Verdeguer, s.f).
2.6.5. Roya (Puccinia sp)
Esta enfermedad es común en los cultivos hortícolas, y hasta se los puede
encontrar en las malezas, sin embargo, las plantas ornamentales no son la
excepción ya que también son susceptibles al ataque de este patógeno. Las altas
humedades son condiciones óptimas para el desarrollo de la enfermedad.
Los principales síntomas que causa esta enfermedad son la aparición de
manchas en las hojas donde se puede observar unas pústulas en su reverso los
cuales pueden ser de color anaranjado o amarillo, posteriormente las hojas se
secan, los tallos también resultan afectados. Con el ataque de este patógeno la
floración también se ve afectada ya que se presenta una reducción considerable
(Calvente, 2015).
2.6.6. Moho gris (Botrytis sp)
La forma de diseminación de esta enfermedad se puede dar a causa del
viento, las lluvias o por residuos vegetales. Las condiciones ambientales óptimas
que favorecen a su desarrollo se dan cuando se presentan altas humedades.
Esta enfermedad ataca a varios cultivos como hortícolas, frutales y
ornamentales, pero dependiendo de la planta variaran los síntomas, por lo
general presentan pudriciones de color gris el cual es causado por el hongo. Las
hojas se empiezan a necrosar y si las condiciones ambientes son adecuadas la
infección se acelera.
13
Las plantas que se encuentran en sus primeros estadios son muy
susceptibles que resulten infectadas, pero cuando las plantas son mayores la
infección ingresa por las heridas que han sido causadas mediante las labores
culturales como lo es la poda y es ahí donde empieza la pudrición provocando
muchas veces su marchitez.
Las flores también resultan infectadas ya que son la parte más vulnerables
de la planta al ataque de este patógeno causando la decoloración y llegando
hasta provocar la pérdida de ellas (Agroterra, 2017).
2.6.7. Tizón (Rhizoctonia solani)
Esta enfermedad es usual en plantas de origen ornamental y hortalizas,
dependiendo del cultivo los síntomas pueden variar. Las sintomatologías que se
presenten van a depender de distintos elementos causados principalmente por
las diversas condiciones ambientales, incidiendo en la relación entre el patógeno
y la planta; donde se puede dar casos de confusiones debido a que los síntomas
suelen ser poco visualizados llegando a causar cambios por alteraciones que se
presenten en el ambiente.
Este patógeno se lo puede encontrar en la planta durante mucho tiempo sin
causar daño alguno, pero cuando la planta se encuentra débil debido a que haya
sido trasplanta recientemente, presente alteración en sus funciones o que se
encuentre estresada la enfermedad se puede desarrollar inmediatamente
causando graves daños.
Presenta marchitamiento en toda la planta, las hojas se necrosan y toman
una coloración amarillenta, los tallos toman coloraciones oscuras y en el interior
de la corteza se puede encontrar exudaciones, las plantas se presentan poco
vigorosas (Garcia & Monton, s.f).
14
2.6.8. Cenicillas (Odium sp)
Es una enfermedad que se encuentra en plantas decorativas o también
llamadas de paisaje, donde hay una gran cantidad de patógenos identificados,
generalmente muestran un conjunto de hifas llamadas micelios los cuales
presentan una coloración blanquecina.
Las temperaturas adecuadas para el desarrollo de la enfermedad pueden
variar encontrándose entre rangos de 17 a 200C, sin embargo, hay hongos que
se los pueden encontrar en humedades realmente bajas, para que estos pueden
crecer necesitan alternancia entre el día y la noche y que no estén expuestas a
las condiciones ambientales naturales. La magnitud del daño va a depender de
los distintos medios lo cual es necesario tener en cuenta el estado en que se
encuentre el cultivo, el tiempo que tenga y de los diversos factores ambientales.
Cuando se presentan los primeros inicios de la enfermedad estos aparecen
en la parte superior de la hoja presentando lesiones blanquecinas y a medida que
va avanzando la cubren por completo incluso afectando al tallo y llegan a tomar
una coloración parda. Otros síntomas que causan esta enfermedad es la
disminución en el crecimiento de la hoja, se marchitan, presentan coloraciones
amarillentas, los brotes se deforman y no hay presencia de floración (Andrés,
2015).
2.6.9. Marchitez (Pythium sp.)
Esta es una enfermedad que se la puede encontrar distribuida en diversos
lugares del planeta. Este hongo puede vivir en los residuos vegetales hasta poder
volver a infectar a una nueva planta llegando a causar grandes mermas en el
cultivo. La condición óptima para el desarrollo de este patógeno son las
humedades altas.
La principal manifestación de esta enfermedad es que la planta no puede
continuar con su desarrollo normal, la raíz puede ser afectada causando que se
pudra sin embargo en ocasiones este patógeno no causa muerte inmediata de la
15
planta. Las hojas toman una coloración amarillenta causando el descenso
temprano de ellas. Ciertos patógenos pueden introducirse en la parte inferior del
tallo causando una pudrición leve de color café oscuro (Díaz Celaya, y otros,
2011).
2.6.10. Podredumbre de raíz (Phytophthora sp)
Cuando la planta ha sido atacada por esta enfermedad el primer síntoma
que presentará es la marchitez, donde la raíz ya ha sido infectada causando la
pudrición en ellas. Este patógeno se lo encuentra latente en el tallo y raíz de las
plantas, sin embargo, raras son las veces que se lo encuentra en el suelo donde
no haya restos de vegetación.
Presenta diversas formas de diseminación ya sea mediante una lluvia
intensa ya que de esta manera se puede trasladar a otras plantas o debido a los
diversos tipos de riegos causando el encharcamiento del agua debido a un mal
dren. La condición ambiental favorable para el desarrollo de este patógeno son
las altas humedades (Buechel, 2017).
2.6.11. Verticilosis (Verticiullim sp)
Este patógeno además de atacar a las plantas de ornato también resultan
afectados los cultivos hortícolas, así como también las malezas. Puede vivir en
la superficie de la tierra durante muchos años, la diseminación se lleva a cabo
mediante plantas enfermas, por el viento, las lluvias, instrumentos de trabajos
que no han sido desinfectados. Las condiciones óptimas para el desarrollo de la
enfermedad son las altas humedades.
La contaminación empieza principalmente por el sistema radicular luego se
traslada a los vasos conductores de la planta para empezar con la infección
donde internamente se produce decoloraciones en forma de anillos o la
manifestación de rayas cuando la corteza ha sufrido algún corte. Las flores y
nueva superficie foliar se empiezan a secar sin caer al suelo, la planta se
marchita, la hoja toma una coloración verde pálido y la rama se empieza a secar
16
empezando desde su ápice (Servicio de sanidad vegetal, IFAPA, & AGAPA,
2015).
2.6.12. Manchas foliares (Alternaria sp)
Esta enfermedad se puede encontrar en los desechos vegetales, cuando
las humedades son altas estas son favorables para su germinación. La forma en
que se puede diseminar es a causa del aire, por salpicaduras producidas por el
riego o la lluvia, por el uso de herramientas contaminadas, por la utilización del
mismo suelo que no ha sido desinfectado (Troy, 2018).
Cuando el patógeno ingresa a la planta la superficie foliar inferior empieza
a marchitarse de manera prematura luego empieza por trasladarse hacia las
demás partes, posteriormente estas terminan por caerse. La planta no puede
continuar con el proceso de su crecimiento natural, aparecen lesiones de color
pardo bien definidas y en ocasiones estas pueden estar definidas por aureolas
de color amarillento, a medida que las lesiones van aumentando de tamaño estas
se secan (Sánchez M. , 2018). Es necesario mencionar que cuando la planta no
se encuentra con una buena nutrición estas son más susceptibles a la infección
del patógeno.
2.6.13. Fumagina (Cephaleurus sp)
Este patógeno puede afectar a todo tipo de cultivo, se la encuentra en
climas cálidos y húmedos. Generalmente toda la superficie foliar es cubierta por
un manto de color grisáceo causando una reducción en el proceso de la
fotosíntesis, impidiendo la respiración y transpiración ocasionando que se genere
una asfixia.
Para que el desarrollo de esta enfermedad empiece es necesario la
presencia de plagas chupadoras las cuales secretan una mielecilla esencial para
que empiece la aparición del patógeno.
17
Cuando este patógeno se encuentra por toda la planta está no puede
continuar desarrollándose con normalidad afectando gravemente el atractivo del
jardín (Salgado, 2017).
2.6.14. Manchas foliares (Cylindrocladium sp)
Este hongo al igual que otros tiene varias especies. El ataque de este
patógeno no lo realiza en la zona radicular, sino que lo ocasiona en las partes
superiores de la planta.
Las primeras sintomatologías se manifiestan en la lámina foliar y son
manchas de coloraciones castaño ya sea pálido u oscuro, en ocasiones el borde
de la mancha se presenta remarcado, a medida que estas van aumentando de
tamaño se terminan uniendo.
Otro ataque que manifiesta esta enfermedad es en la parte del tallo,
presentando manchas de colores oscuros. Después de los síntomas
mencionados la planta empieza a marchitarse, aunque en ocasiones puede
intentar recuperarse, pero debido a la enfermedad la planta se encuentra
debilitada y posteriormente se produce la muerte (Douglas, 2012).
2.6.15. Agallas de las hojas y flores (Exobasidium spp)
Ataca a especies ornamentales, plantas leñosas (árboles, arbustos o
matas), entre otras especies. Este hongo se lo puede encontrar en toda la planta
causando severos daños. Dependiendo de la población de cepas (células de la
misma especie) que se presenten pueden tomar una coloración roja o marrón,
estas pueden medir entre 2 y 5 cm.
Las hojas que se encuentran sanas se las puede diferenciar de las que se
encuentran infectadas ya que presentan malformaciones en donde estas
contienen unas agallas. Los daños que presenta esta enfermedad no son
considerados de gran importancia económica, sin embargo, este daño termina
18
cuando el hongo recubre por completo a la parte infectada tomando una
coloración oscura, esta se seca y cae al suelo (Ares, 2015).
2.6.16. Mancha parda (Rhizoctonia solani)
Esta enfermedad aparece en los céspedes. Las sintomatologías que se
podrán visualizar serán manchas o a su vez formaciones de anillos las cuales
tomarán una coloración amarillenta. Las hojas presentarán pequeñas manchas
irregulares las que posteriormente empezarán a pudrirse. La diseminación de
esta enfermedad es rápida causando la muerte del césped.
2.6.17. Mancha foliar (Curvularia)
Esta enfermedad también es conocida como decaimiento. Este patógeno
no llega a ser tan agresivo si el césped ha tenido un mantenimiento adecuado,
sin embargo, puede ser un problema cuando hay daños a causa de sequía. El
pasto toma una coloración amarilla. Hay hojas que presentan otras
colaboraciones como café o negra, las más viejas se arrugan y terminan por
marchitarse. Cuando la infección ha avanzado estas se terminan cayendo
(Martinez, 2009).
2.7. Bacterias
Son organismos que han existido durante miles de años, su tamaño es
sumamente pequeño, para poder observarlos es necesario hacerlo mediante la
utilización de un microscopio. La propagación y multiplicación de estos
organismos es fácil ya que lo hacen en los materiales vegetales.
Para realizar una evaluación precisa resulta un poco dificultoso, debido a
que se pueden encontrar diversos organismos biológicos, sin embargo, las
sintomatologías que usualmente presentan son emisiones de mal olor debido a
una pudrición, presencia de tumor en las plantas, marchitez, manchado,
quemazón entre otros.
19
Las condiciones ambientes favorables para las bacterias son humedades
relativamente altas. Su diseminación es provocada por la utilización de materiales
de trabajo que no han sido desinfectados, por la realización de poda y los
residuos vegetales que han estado enfermos quedando en el mismo lugar, y
cuando no hay una buena rotación de cultivo (González, 2015).
2.7.1. Tizón de fuego (Erwinia amylovora)
Enfermedad muy grave que ataca a cultivos como frutales, ornamentales y
plantas silvestres.
La manifestación de los síntomas se presenta en la época de floración ya
las flores son susceptibles para la penetración del patógeno, como primera señal
que se puede encontrar es una necrosis. Los brotes también resultan afectados
causando marchitamiento y necrosis, las coloraciones pueden variar de marrón
a negro. Las hojas se secan en el brote.
Los daños continúan extendiéndose hasta llegar a las ramas formando
chancros donde puede permanecer la bacteria. Cuando el clima es húmedo se
producen exudados en las partes afectadas y estos pueden ser de coloraciones
blanquecinas o amarillentas, los cuales están constituidos de millones de
bacterias.
La propagación corresponde de varios factores como el clima, la
sensibilidad de la planta hacia la bacteria ya que hay variedades que son más
susceptibles al fuego bacteriano y las cantidades de bacterias en ella dependerá
de que la planta presente condiciones adecuadas para la infección (Centro de
sanidad y certificación vegetal, 2012).
2.8. Virus que afectan a las plantas ornamentales
Estos se desarrollan en el interior de la célula de la planta sin causar la
muerte de ellas, sin embargo, las sintomatologías que pueden ocasionar esta
enfermedad se manifiestan en las hojas causando alteraciones de diferentes
20
colores (llamados moteados) muy distintos al color característicos que presentan,
dependiendo de su magnitud pueden presentar un aclarado en la parte interna
de los nervios.
Pueden presentar lesiones en formas de anillo ya sea en la hoja o el tallo,
luego estas manchas se pueden borrar y vuelven aparecer cuando el ambiente
es propicio. El crecimiento de la planta también surge afectado al igual que el
desarrollo de la hoja, además estas se pueden deformar.
Estos se pueden transmitir a causa de ciertas lesiones que ocurran en las
hojas provocadas por los roces que se pueden producir entre ellas, es ahí donde
ingresa el virus para luego multiplicarse y dirigirse por toda planta. Otra forma de
contaminación suele ser mediante la utilización de las mismas herramientas sin
haberlas desinfectado, por acciones climáticas, a causa de algún animal, o por el
mismo hombre (De La Torre, 2010).
21
III. MATERIALES Y MÉTODOS
3.1. Ubicación del ensayo
La recolección de las muestras con presencia de enfermedad se realizó por
todo el campo de la ciudadela universitaria Salvador Allende, ubicada en entre
Av. Fortunato Safadi (Av. Delta) y Av. Kennedy y Malecón del Salado, Guayaquil.
El proceso de identificación de las muestras fue en el laboratorio de la
Facultad de Ciencias Agrarias, ubicada en la misma Ciudadela Universitaria,
donde se realizaron todos procedimientos necesarios para poder establecer las
identificaciones de los causales de enfermedades, el aislamiento y multiplicación
de los mismos.
La patogenicidad de los hongos identificados se realizó en una pequeña
área de la jardinera que se encuentra en la misma Facultad.
3.2. Materiales usados en laboratorio
3.1.1. Cámara húmeda
Cajas Petri, algodón, agua destilada, muestras, tijera.
3.2.2. Observación e identificación de las muestras
Microscopio, placas porta y cubre objeto, asa, muestras (pequeño
fragmento de la esporulación del hongo), acido latico.
3.2.3. Medio de cultivo
Balanza, vasos de precipitación, agua destilada, papa dextrosa agar (PDA),
espátula, agitador, matraz, papel aluminio, olla de presión, cocina.
3.2.4. Siembra de muestras identificadas
Medio de cultivo, muestras, asa, fósforos, mechero, recipientes para las
réplicas, tijera, papel aluminio, papel trasparente, marcador permanente.
22
3.2.5. Solución
Vasos de precipitación, agitador, réplicas, agua destilada estéril, placa de
neubauer, microscopio simple de luz.
3.2.6. Materiales usados en invernadero
Tiras de cañas, plástico, piola, cinta adhesiva, solución, plantas, tijera para
podar, manguera, pistola para riego
3.3. Factores estudiados
˗ Microorganismos asociados a la muerte descendente
˗ Patogenicidad de microorganismos.
3.4. Tratamientos
Los tratamientos consistieron en inocular cuatro géneros de hongos
identificados en cuatro especies de plantas más un testigo absoluto que totaliza
17 y se describen a continuación:
Tratamientos Descripción
1 Cultivo 1 – enfermedad 1
2 Cultivo 2 – enfermedad 1
3 Cultivo 3 – enfermedad 1
4 Cultivo 4 – enfermedad 1
5 Cultivo 1 – enfermedad 2
6 Cultivo 2 – enfermedad 2
7 Cultivo 3 – enfermedad 2
8 Cultivo 4 – enfermedad 2
9 Cultivo 1 – enfermedad 3
10 Cultivo 2 – enfermedad 3
11 Cultivo 3 – enfermedad 3
12 Cultivo 4 – enfermedad 3
13 Cultivo 1 – enfermedad 4
14 Cultivo 2 – enfermedad 4
15 Cultivo 3 – enfermedad 4
16 Cultivo 4 – enfermedad 4
17 Testigo sin hongo
23
3.5. Diseño experimental
Se utilizó el diseño completamente al azar con 5 unidades experimentales.
Los valores fueron transformados a raíz de √ x + 1 para mejorar su normalidad y
poder ser analizados.
3.6. Análisis de varianza y funcional
Fuente de variación Grados de libertad
Total 84
Tratamientos 16
Error experimental 68
Para las comparaciones de las medias se utilizó la prueba de Duncan=0.05.
3.7. Manejo del experimento
3.7.1. Recolección de muestra
La colecta se llevó a cabo en todos los jardines de la Ciudadela Universitaria
(Figura 1), realizando minuciosamente observaciones en todas las plantas para
poder determinar las que presenten indicios de enfermedad y posteriormente
tomar la muestra.
Cada muestra que fue recolectada se colocó en fundas de papel con el
respectivo nombre de la planta y lugar en que se tomó para diferenciar de las
demás.
24
Figura 1. Recolección de muestras por todos los jardines de la Ciudadela
Universitaria.
3.7.2. Limpieza de muestras
Se utilizó agua destilada para eliminar todo residuo que se encuentre presente
y evitar crecimiento de microorganismos saprófitos (Figura 2).
25
Figura 2. Proceso de limpieza de las muestras en laboratorio mediante el uso
de agua destilada.
3.7.3. Cámara húmeda
Se utilizaron varias cajas Petri las cuales tenían que estar completamente
limpias para que los resultados no se vean afectados. En su interior se depositó
pequeñas partes de las muestras, posteriormente, para ayudar a la esporulación
del hongo se colocó un pedazo de algodón el cual debía estar completamente
humedecido con agua destilada.
Cada dos semanas se humedecía el algodón, este procedimiento se llevó
a cabo durante un mes aproximadamente, tiempo en que demoraron las
muestras que presenten los primeros síntomas (Figura 3).
26
Figura 3. Materiales para la elaboración de la cámara húmeda (A-B-C),
colocación de las muestras en caja petri (D), algodón humedecido
(E), cubierta de las cajas petri (F), numeración de muestras (G-H).
3.7.4. Multiplicación de microorganismos en medio de cultivo
3.7.4.1. Preparación del medio de cultivo
Se utilizó el PDA (potato dextrose agar), el cual se pesó 39 gramos que
posteriormente se vertió en un vaso de precipitación donde se le agrego 1000 ml
de agua destila y con la ayuda de un agitador se lo movió bien hasta que no haya
presencia de grumos.
Se vertió una pequeña cantidad de la solución preparada en cada
recipiente, luego se selló con papel aluminio para que su esterilización, se los
colocó en una olla de presión por un tiempo aproximado de una hora. La cantidad
de recipientes fueron 40 frascos los cuales se guardaron en la estufa hasta que
se enfríen (Figura 4).
A
B
C
D E
F G H
27
Figura 4. Potato dextrose agar (A), peso del medio de cultivo (B), vertida del PDA
en el agua destilada (C), disolución (D), colocación en recipientes (E),
sellado de los recipientes con papel aluminio (F-G), esterilización del
medio de cultivo en la olla de presión (H).
3.7.4.2. Aislamiento
El aislamiento se realizó en un lugar estéril. Se lo llevó a cabo en una
improvisada cámara de flujo laminar en laboratorio de la Facultad de Ciencias
Agrarias. Las muestras de la cámara húmeda se las trasladó a la cámara de flujo
laminar, posteriormente se encendió un mechero para evitar que surja algún tipo
de contaminación.
Cuidadosamente se pasó el asa varias veces por la flama del mechero para
esterilizarla, se tomó la muestra y lentamente se pasó sobre la esporulación, se
procedió a colocarla en el medio del cultivo, se tapó con papel aluminio, se selló
con papel film y se espera a que el hongo crezca. Nuevamente se pasa el asa
por la flama del mechero para eliminar cualquier residuo que haya quedado de la
A B C D
E F G H
28
muestra anterior y se procede a realizar el mismo procedimiento con las demás
muestras. Transcurridos 20 días se observó el crecimiento del hongo (Figura 5).
Figura 5. Esterilización del asa (A), observación de la muestra (B), toma de la
esporulación (C), colocación de la esporulación en el medio de cultivo
(D), numeración de las muestras (E), sellado de muestra con papel
plástico (F), muestras aisladas (G), crecimiento del hongo (H-I).
3.7.4.3. Identificación
Luego de realizar el aislamiento se procedió con la identificación mediante
el uso de las claves disponibles en la guía “Illustrated genera of imperfect fungi”
de H. L. Barnett y Barry B. Hunter, publicada en el año 1972.
A B C
D E F
G
H I
29
En una placa porta objeto se coloca una gota de ácido latico, se pasa el asa
por la flama del mechero, se toma una pequeña proporción de la muestra y se lo
coloca en la placa, posteriormente se procede a colocar el cubre objeto, se realiza
la observación en el microscopio con él objetivo apropiado (Figura 6).
Figura 6. Ácido latico (A), esterilización del asa (B), toma de la muestra (C),
colocación de la muestra en la placa porta objeto (D-E), observación
de las muestras (F).
3.7.4.5. Siembra
Después de haber hecho las observaciones se procedió a realizar las
réplicas (Figura 7) de las muestras identificadas las cuales consistió que de cada
muestra se realizaron 10 réplicas.
A B C
D E F
30
Figura 7. Esterilización del asa (A), toma de muestra (B), colocación en el medio
de cultivo (C-D), numeración en las muestras (E), sellado de muestras
(F), replicas (G).
A
C
B
D E
F G
31
3.7.5. Patogenicidad
3.7.5.1. Preparación de la solución
En un vaso de precipitación se colocó 200 ml de agua destila estéril y se
tomaron tres réplicas de la muestra inicial, donde se vertió una pequeña cantidad
de agua destila estéril en el recipiente, con la ayuda de una espátula o agitador
se precedió a retirar cuidadosamente todo el micelio. Luego se agregó en el vaso
de precipitación el contenido de los recipientes, con el agitador se disolvió hasta
que no haya tanta presencia del micelio (Figura 8). El mismo procedimiento se
realizó con las demás muestra de réplicas restantes.
Figura 8. Colocación del agua estéril en el vaso de precipitación (A), agua
destilada en el recipiente de la muestra (B), retirada del micelio (C-
D), vertida de la solución en el vaso de precipitación (E), disolución
(F).
B A B C
F E D
32
3.7.5.2. Conteo de esporas
Para este procedimiento se utiliza una cámara de Neubauer. Esta placa
es parecida a un porta objeto con la diferencia de que es un poco más gruesa
y en el centro tiene unas ranuras donde se colocan unas gotitas de la solución,
posteriormente la placa se lleva al microscopio para realizar la contabilización
de esporas. El mismo procedimiento se realiza con las demás muestras
(Figura 9).
Figura 9. Colocación de solución en la cámara de Neubauer (A), observación
conteo de esporas (B).
3.7.5.3. Heridas en plantas
Antes de realizar la aplicación de la solución fue necesario hacerles unas
heridas a las plantas en la parte de las hojas y tallos (Figura 10), esto se hizo
mediante el uso de una tijera de podar con la finalidad de que el patógeno puede
ingresar por las lesiones provocadas y su desarrollo sea más rápido.
A B
33
Figura 10. Heridas en hojas y tallos de las distintas plantas ornamentales.
3.7.5.4. Forma de aplicación de la solución
Para la aplicación de cada uno de los hongos identificados fue necesario
conseguir atomizadores donde se vertió la solución de cada uno de ellos, los
mismos que fueron roseados en todas las plantas (Figura 11). Luego se
colocaron dentro de una cámara plástica y se procedió a regar mediante un
microaspersor con la finalidad de darle al patógeno un ambiente favorable.
34
Figura 11. Aplicación de la solución en plantas ornamentales donde se realizaron
las heridas.
3.8. Evaluaciones de severidad
Las evaluaciones se la realizaron cada dos semanas durante mes y medio,
donde se utilizó una escala del 0 – 5. Debido a que no se pudo encontrar en las
diversas páginas web una escala específicamente que esté relacionada a las
plantas ornamentales. Escala propuesta por Cotallat y Vivas.
0 = Sin síntomas
1 = Decoloración del follaje
2 = Necrosis en follaje (5%)
3 = Necrosis y crecimiento micelial sobre hojas y tallos (25%)
4 = Necrosis en hojas y tallos (50%)
5 = Necrosis, muerte de ramas y planta (+50%).
3.10. Variables evaluadas
˗ Síntomas y signos en plantas de campo (incidencia)
˗ Síntomas y signos en plantas (patogenicidad)
35
IV. RESULTADOS Y DISCUSIÓN
4.1. Porcentaje de plantas afectadas por enfermedades
Los síntomas en las plantas ornamentales por patógenos fueron necrosis,
muerte de las ramas y de la planta. Las especies de plantas afectadas por
enfermedades fueron peregrina, crotón, cordyline y lengua de suegra; siendo el
crotón la mayormente afectada con el 33.33% seguido de la lengua de suegra
con un 20.00% de plantas con síntomas de enfermedad (Cuadro 1).
Cuadro 1. Porcentaje de incidencia de plantas afectadas.
No. Nombre común Especie Número %
1
2
3
4
Peregrina
Crotón
Cordyline
Lengua de suegra
Hibiscus rosa-sinensis
Codiaeum variegatum
Cordyline fruticosa
Sansevieria trifasciata
2 de 13
1 de 3
9 de 67
10 de 50
15.38
33.33
13.43
20.00
4.2. Hongos identificados
Los hongos identificados fueron Fusarium solani en muestra de peregrina,
Cylindrocladium sp en lengua de suegra, Fusarium sp en cordyline, y Aspergillus
en crotón (Cuadro 2), (Figura 12).
36
Cuadro 2. Identificación de hongos en muestras de plantas ornamentales.
No. Nombre común Especie Hongo
1
2
3
4
Peregrina
Crotón
Cordyline
Lengua de suegra
Hibiscus rosa-sinensis
Codiaeum variegatum
Cordyline fruticosa
Sansevieria trifasciata
Fusarium solani
Aspergillus niger
Fusarium sp
Cylindrocladium sp
Figura 12. Identificación de Fusarium solani en peregrina (A), Cylindrocladium
spp en lengua de suegra (B), Fusarium sp en cordyline, Aspergillus
niger en crotón (C).
A B
C D
37
Entre los hongos identificados las especies de Fusarium sp, han sido
reportados en cuba por Pérez at al (2011) en varios cultivos de plantas
ornamentales, especialmente en crotón. También se menciona que este género
afecta a 25 especies de plantas.
Cylindrocladium sp ha sido reportado en Chile afectando arboles de ornato
en la comuna de la Reina (Gallegos, 2005). Por su parte, A. niger se ha reportado
como causante de pudriciones en semillas en argentina.
4.3. Patogenicidad de hongos identificados
Fusarium sp (Tratamiento 1)
Las evaluaciones fueron realizadas cada dos semanas, sin embargo, la
manifestación de los síntomas se dió después de los 40 días de la inoculación.
El hongo Fusarium sp en cordyline (Cuadro 3), presentó decoloraciones del
follaje seguido de una leve necrosis (5% de severidad), después de dos semanas
de igual manera mostró la misma sintomatología y manchas blanquecinas y en
la última evaluación, la necrosis llegaba al 25% de severidad; además, la parte
interna de la hoja presentó agujeros y éstos con halo amarillento (Figura 1 anexo,
Cuadro 3A anexo).
En crotón (Cuadro 3) después de los 40 días de inoculadas con Fusarium
sp no mostró síntomas los mismos que fueron observados aproximadamente a
los 60 días cuya manifestación fue leve decoloración del follaje y en la última
evaluación necrosis con 5% de severidad (Figura 2 y cuadro 3B Anexo).
En peregrina (Cuadro 3) entre los 40 y 60 días aproximadamente los
síntomas fueron decoloración del follaje y leve necrosis es decir 5% de severidad;
desde los 60 días, algunas plantas empezaron a perder hojas (Figura 3 y cuadro
3C anexo).
38
En lengua de suegra (Cuadro 3) después de los 40 días de la inoculación el
síntoma de decoloración fue en pocas plantas, posteriormente, se observó
necrosis y crecimiento micelial en el follaje con 25% de severidad, demás,
podredumbre en la punta de la hoja, en la última evaluación la necrosis aumentó
al 50% de la superficie de la hoja (Figura 4 y cuadro 3D anexo)
Cuadro 3. Presencia de síntomas causados por Fusarium sp en cuatro
especies de plantas ornamentales.
Evaluaciones 16 julio 30 julio 13 agosto
Especie 0 1 2 3 4 5 0 1 2 3 4 5 0 1 2 3 4 5
Cordyline x x x x x x x x x x
Crotón x x x x x
Peregrina x x x x x x
Lengua de
suegra
x x x x x x x x x x x x x
0 = Sin síntomas, 1 = Decoloración del follaje, 2 = Necrosis en follaje (5%),
3 = Necrosis y crecimiento micelial sobre hojas y tallos (25%), 4 = Necrosis
en hojas y tallos (50%) y 5 = Necrosis, muerte de ramas y planta (+50%).
Aspergillus niger (Tratamiento 2)
El hongo A. niger en cordyline (Cuadro 4), inicialmente presentó
decoloración del follaje y manchas blanquecinas en el tallo; posteriormente,
necrosis leve en el follaje con 5% de severidad y en última evaluación la necrosis
ascendió al 25% de severidad (Figura 5, Cuadro 4A anexo).
En crotón (Cuadro 4), A. niger no mostró síntomas (Cuadro 4B anexo),
mientras que, en peregrina, hubo decoloración del follaje, crecimiento micelial en
39
el tallo con 25% de severidad y necrosis en el follaje con 5% de severidad (Figura
6, Cuadro 4C anexo).
En lengua de suegra (Cuadro 4) a más de la decoloración del follaje,
necrosis con 5% de severidad, crecimiento micelial en 25% y pudrición en las
puntas, a los 60 días aproximadamente se observó crecimiento micelial en la
parte superior del tallo (25%), necrosis en las hojas con 50% de severidad,
síntomas que se mantuvieron hasta la última evaluación (Figura 7 y Cuadro 4D
anexo).
Cuadro 4. Presencia de síntomas causados por Aspergillus niger en cuatro
especies de plantas ornamentales.
Evaluaciones 16 julio 30 julio 13 agosto
Especie 0 1 2 3 4 5 0 1 2 3 4 5 0 1 2 3 4 5
Cordelyne x x x x x x x x x
Crotón x x x
Peregrina x x x x x x x
Lengua de
suegra
x x x x x x x x x x x x x x
0 = Sin síntomas, 1 = Decoloración del follaje, 2 = Necrosis en follaje (5%),
3 = Necrosis y crecimiento micelial sobre hojas y tallos (25%), 4 = Necrosis
en hojas y tallos (50%) y 5 = Necrosis, muerte de ramas y planta (+50%).
Cylindrocladium sp. (Tratamiento 3)
El hongo Cylindrocladium en peregrina (Cuadro 5), los síntomas iniciales
fueron decoloración y necrosis del follaje, los mismos que se mantuvieron hasta
la última evaluación (Figura 8, Cuadro 5A anexo).
40
En crotón (Cuadro 5), entre los 40 y 60 días no mostraron síntomas y en la
última evaluación presentó leve necrosis en el follaje solo en una planta (Figura
9 y Cuadro 5B anexo).
En cordyline (Cuadro 5), inicialmente solo se observó síntomas de
decoloración del follaje en una sola planta, sin embargo, hubo manchas
blanquecinas en el tallo de varias plantas, en la siguiente evaluación hubo
necrosis con 5% de severidad, la misma que se mantuvo hasta la última
evaluación (Figura 10 y Cuadro 5C anexo).
En lengua de suegra (Cuadro 5), solo una planta mostro decoloración del
follaje, síntomas que en la siguiente evaluación estuvo acompañada de pudrición
en el ápice de la hoja y en el último registro de datos mostró una leve necrosis
con 5% de severidad (Figura 11 y Cuadro 5D anexo).
Cuadro 5. Presencia de síntomas causados por Cylindrocladium sp en cuatro
especies de plantas ornamentales.
Evaluaciones 16 julio 30 julio 13 agosto
Especie 0 1 2 3 4 5 0 1 2 3 4 5 0 1 2 3 4 5
Cordyline x x x x x x x x
Crotón x x x x
Peregrina x x x x x x x x x
Lengua de
suegra
x x x x x x x
0 = Sin síntomas, 1 = Decoloración del follaje, 2 = Necrosis en follaje (5%),
3 = Necrosis y crecimiento micelial sobre hojas y tallos (25%), 4 = Necrosis en
hojas y tallos (50%) y 5 = Necrosis, muerte de ramas y planta (+50%).
41
Fusarium solani (Tratamiento 4)
El hongo Fusarium solani en peregrina (Cuadro 6), no mostró síntomas a
los 40 días después de la inoculación, posteriormente, hubo decoloración de
follaje y caída de hojas y en la última evaluación se observó necrosis leve (5%),
además una de las plantas perdió todas las hojas (Figura 12 y Cuadro 6A).
En crotón (Cuadro 6), los síntomas fueron observados en la evaluación del
30 de julio como necrosis leve (5% de severidad), la misma que se mantuvo hasta
el último registro de datos y fue acompañada de defoliación (Figura 13 y cuadro
6B anexo).
En cordyline el hongo F. solani (Cuadro 6), el primer síntoma fue una
decoloración del follaje, posteriormente se observó necrosis con 5% de severidad
y al final en ciertas plantas hubo manchas blanquecinas en los tallos (Figura 14
y Cuadro 6C anexo).
En lengua de suegra el hongo F. solani (Cuadro 6), los síntomas fueron
observados aproximadamente a los 60 días después de la inoculación, los
mismos que consistieron en decoloración del follaje, necrosis leve y pudrición en
la punta de las hojas, los mismos que se mantuvieron hasta el final de las
evaluaciones (Figura 15 y Cuadro 6D anexo).
42
4.4. Porcentaje de patogenicidad
En cordyline el hongo Fusarium sp durante las tres evaluaciones registró un
promedio de 10% de las plantas que no presentaron síntomas, 80% con
decoloración del follaje, 46,7% necrosis en follaje con grado cinco de acuerdo a
la escala arbitraria y el 10% con necrosis y crecimiento micelial. Aspergillus niger
mostró 33, 3; 13,3 y 33,3% de plantas con decoloración del follaje, necrosis y
necrosis más crecimiento micelial en su orden.
Cylindrocladium sp presentó 30% de necrosis con grado dos lo que
corresponde al 5% de daños en el follaje y fue estadísticamente igual a las
especies de A. niger y F. solani y diferente de los demás tratamientos. En cuanto
a F. solani el máximo porcentaje de daño correspondió a decoloración del follaje
y fue igual a las dos especies descritas anteriormente (Cuadro 7).
Cuadro 6. Presencia de síntomas causados por Fusarium solani en cuatro
especies de plantas ornamentales.
Evaluaciones 16 julio 30 julio 13 agosto
Especie 0 1 2 3 4 5 0 1 2 3 4 5 0 1 2 3 4 5
Cordyline x x x x x x x
Crotón x x x x
Peregrina x x x x x x
Lengua de
suegra
x x x x x x x
0 = Sin síntomas, 1 = Decoloración del follaje, 2 = Necrosis en follaje (5%), 3
= Necrosis y crecimiento micelial sobre hojas y tallos (25%), 4 = Necrosis en
hojas y tallos (50%) y 5 = Necrosis, muerte de ramas y planta (+50%).
43
Cuadro 7. Porcentaje promedio de plantas de cordyline con diferentes
síntomas después de inoculadas por cuatro especies de hongos.
No.
Cordyline (Cordyline fruticosa)
Tratamientos 01/ 1 2 3 4 5
1 Fusarium sp 10,0c2/ 80,0 a 46,7a 10,0a 0 0
2 Aspergillus niger 40,0b 33,3b 13,3ab 33,3a 0 0
3 Cylindrocladium sp 50,0b 23,3b 30,0a 0,0b 0 0
4 Fusarium solani 46,7b 43,3b 6,7b 0,0b 0 0
CV. (%) 27,12 20,37 42,13 28,34
1/ Escala arbitraria propuesta por: 0 = Sin síntomas; 1 = Decoloración del follaje; 2 = Necrosis
en follaje (5%); 3 = Necrosis y crecimiento micelial sobre hojas y tallos (25%); 4 = Necrosis
en hojas y tallos (50%); 5 = Necrosis, muerte de ramas y planta (+50%).
2/ Las cifras de las columnas con la (s) misma (s) letra (s) son iguales estadísticamente según
Duncan p =0.05
Las plantas de peregrina mostraron diferencias significativas con respecto
a los síntomas de especies de hongos estudiados (Cuadro 8).
Fusarium sp mostró 70,3% de plantas con decoloración de follaje y 13,3%
de necrosis y fue igual estadísticamente a la especie A. niger; por su parte este
hongo presento 83,3% de decoloración. Cylindrocladium sp al igual que F. solani
mostraron 50,0 y 66.7% de plantas sin síntomas.
44
Cuadro 8. Porcentaje promedio de plantas de peregrina con diferentes síntomas
después de inoculadas por cuatro especies de hongos.
Las plantas de crotón no mostraron mucha diferencia significativa con
respecto a los síntomas de especies de hongos inoculados (Cuadro 9).
Fusarium sp, A. niger y Cylindrocladium sp mostraron que el 93.33%, 100%
y 96.7% de plantas no presentaron síntomas. Fusarium solani mostró 23,3% de
plantas con necrosis y el 66,7% no mostraron síntomas.
No.
Peregrina (Hibiscus rosa-sinensis)
Tratamientos 01/ 1 2 3 4 5
1 Fusarium sp 0,0 c2/ 70,3a 13,3b 0,0 0 0
2 Aspergillus niger 0,0 c 83,3a 6,7b 6,7 0 0
3 Cylindroladium sp 50,0b 23,3b 20,0a 0,0 0 0
4 Fusarium solani 66,7b 23,3b 3,3c 0,0 0 0
CV. (%) 24,10 26,84 23,18
1/ Escala arbitraria: 0 = Sin síntomas; 1 = Decoloración del follaje; 2 = Necrosis en follaje
(5%); 3 = Necrosis y crecimiento micelial sobre hojas y tallos (25%); 4 = Necrosis en hojas
y tallos (50%); 5 = Necrosis, muerte de ramas y planta (+50%).
2/ Las cifras de las columnas con la (s) misma (s) letra (s) son iguales estadísticamente
según Duncan p =0.05
45
Cuadro 9. Porcentaje promedio de plantas con diferentes síntomas después de
inoculadas por cuatro especies de hongos.
Las plantas de lengua de suegra mostraron diferencias significativas en el
desarrollo de síntomas cuando fueron inoculadas los hongos.
Fusarium sp presentó 53,3% con decoloración del follaje, 10% con necrosis
del follaje con grado cinco, 16,7% con necrosis y crecimiento micelial y 3,33% de
necrosis en hojas y tallos con un grado de cincuenta de acuerdo a la escala
arbitraria. A. niger mostró 36,7; 10; 6,7; 3,3 y 3,3% de plantas con decoloración
del follaje, necrosis, necrosis más crecimiento micelial, necrosis en hojas y tallos
y necrosis más muerte de ramas y planta en su orden correspondiente.
Cylindrocladium sp presentó 13,3% con decoloración del follaje, 3,3% con
necrosis corresponde al 5% de daños en el follaje. En cuanto a F. solani el grado
No.
Crotón (Codiaeum variegatum)
Tratamientos 01/ 1 2 3 4 5
1 Fusarium sp 93,33a2/ 3,33a 3,33a 0 0 0
2 Aspergillus niger 100a 0,00 0,00 0 0 0
3 Cylindroladium sp 96,7a 0,00 3,33b 0 0 0
4 Fusarium solani 66,7b 0,00 23,3b 0 0 0
CV. (%) 9,8 24,7 48,02
1/ Escala arbitraria: 0 = Sin síntomas; 1 = Decoloración del follaje; 2 = Necrosis en follaje (5%);
3 = Necrosis y crecimiento micelial sobre hojas y tallos (25%); 4 = Necrosis en hojas y tallos
(50%); 5 = Necrosis, muerte de ramas y planta (+50%).
2/ Las cifras de las columnas con la (s) misma (s) letra (s) son iguales estadísticamente según
Duncan p =0.05
46
uno correspondiente a la decoloración y el dos a la necrosis presentaron el 6,7%
de daños (Cuadro 10).
Los síntomas más evidentes fueron causados por Fusarium, resultados que
coinciden con las investigaciones de Dávila et al (2016) quienes reportan los
niveles de infección causado por este hongo fueron similares a los de S.rolfsii.
Con respecto a Aspergillus niger el Sistema Argentino de vigilancia y control
de plagas reporta que este hongo es contaminante de semillas, especialmente
de maní en las que causa pudrición, deformación y decoloración, en esta
investigación las plantas de cordyline y lengua de suegra mostraron decoloración
de follaje.
Cuadro 10. Porcentaje promedio de plantas con diferentes síntomas después
de inoculadas por cuatro especies de hongos.
No.
Lengua de suegra (Sansevieria trifasciata)
Tratamientos 01/ 1 2 3 4 5
1 Fusarium sp 10c2/ 53,33a 10a 16,7a 3,33a 0
2 Aspergillus niger 56,7b 36,7a 10a 6,7b 3,33a 3,33b
3 Cylindroladium sp 83,3a 13,3b 3,33b 0 0 0
4 Fusarium solani 83,3a 6,7b 6,7b 0 0 0
CV. (%) 11,05 19,7 27,6 22,7 28,3 24,6
1/ Escala arbitraria: 0 = Sin síntomas; 1 = Decoloración del follaje; 2 = Necrosis en follaje (5%);
3 = Necrosis y crecimiento micelial sobre hojas y tallos (25%); 4 = Necrosis en hojas y tallos
(50%); 5 = Necrosis, muerte de ramas y planta (+50%).
2/ Las cifras de las columnas con la (s) misma (s) letra (s) son iguales estadísticamente según
Duncan p =0.05
47
V. CONCLUSIONES Y RECOMENDACIONES
✓ Se identificaron hongos de los géneros Fusarium solani, Fusarium sp,
Cylindrocladium sp y Aspergillus niger.
✓ Las especies de plantas ornamentales más afectadas en las áreas verdes
de la Universidad de Guayaquil fueron peregrina, crotón, cordyline y
lengua de suegra.
✓ El grado de severidad en plantas inoculadas fue superior con Fusarium
sp., siendo las especies cordyline, peregrina y lengua de suegra.
Recomendaciones
En base a los resultados que se obtuvieron de la presente investigación se
recomienda lo siguiente:
✓ Realizar monitoreos constantes de los jardines para detectar que
patógenos están afectándolos para tomar medidas de control
fitosanitarias.
✓ Estudiar alternativas de manejo de estas causales identificados.
✓ Se sugiere continuar con el proceso de la investigación el cual
requiere de la realización del control de las enfermedades.
48
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52
ANEXOS
53
Figura 13. Síntomas de Fusarium sp en cordyline.
Figura 2A. Síntomas de Fusarium sp en crotón.
54
Figura 3A. Síntomas de Fusarium sp en peregrina.
Figura 4A. Síntomas de Fusarium sp en lengua de suegra
55
Figura 5A. Síntomas de Aspergillus niger en cordyline
Figura 6A. Síntomas de Aspergillus niger en peregrina.
56
Figura 7A. Síntomas de Aspergillus niger en lengua de suegra.
.
Figura 8A. Síntomas de Cylindrocladium sp en peregrina.
57
Figura 9A. Síntomas de Cylindrocladium sp en crotón.
Figura 10A. Síntomas de Cylindrocladium sp en cordyline.
58
Figura 11A. Síntomas de Cylindrocladium sp en lengua de suegra.
Figura 12A. Síntomas de Fusarium solani en cordyline.
59
.
Figura 13A. Síntomas de Fusarium solani en peregrina.
Figura 14A. Síntomas de Fusarium solani en crotón.
Figura 15A. Síntomas de Fusarium solani en lengua de suegra.
60
Cuadro 1A. Inoculación del hongo Fusarium sp en cordyline.
EVALUACIONES - TRATAMIENTO 1
TIPO DE PLANTA: Cordyline
TIPO DE HONGO: Fusarium sp
Fecha de evaluación
# de plantas
Sin síntomas
Decoloración del follaje
Necrosis en follaje
(5%)
Necrosis y crecimiento
micelial sobre hojas
y tallos (25%)
Necrosis en hojas y tallos (50%)
Necrosis, muerte de ramas y plantas (+50%)
Observación
16-07-18
1 X
2 X X
3
X X Manchas blanquecinas en el tallo
4 X
5
X Manchas blanquecinas en el tallo
30-07-18
1 X
2 X X
3
X X Manchas blanquecinas en el tallo
4 X
5
X Manchas blanquecinas en el tallo
13-08-18
1 X
2 X X
3
X X Manchas blanquecinas en el tallo
4 X
5
X X Manchas blanquecinas
en el tallo
61
Cuadro 2A. Inoculación del hongo Fusarium sp en crotón.
EVALUACIONES – TRATAMIENTO 1
TIPO DE PLANTA: Crotón
TIPO DE HONGO: Fusarium sp
Fecha de evaluación
# de plantas
Sin síntomas
Decoloración del follaje
Necrosis en follaje
(5%)
Necrosis y crecimiento
micelial sobre hojas y tallos
(25%)
Necrosis
en hojas y tallos (50%)
Necrosis, muerte de ramas y plantas (+50%)
16-07-18
1 X
2 X
3 X
4 X
5 X
30-07-18
1 X
2 X
3 X
4 X
5 X
13-08-18
1 X
2 X
3 X
4 X
5 X
62
Cuadro 3A. Inoculación del hongo Fusarium sp en peregrina.
EVALUACIONES – TRATAMIENTO 1
TIPO DE PLANTA: Peregrina
TIPO DE HONGO: Fusarium sp
Fecha de evaluación
# de plantas
Sin síntomas
Decoloración del follaje
Necrosis en follaje
(5%)
Necrosis y crecimiento
micelial sobre hojas y tallos
(25%)
Necrosis
en hojas y tallos (50%)
Necrosis, muerte de ramas y plantas (+50%)
16-07-18
1 X
2 X X
3 X
4 X
5 X
30-07-18
1 X
2 X X
3 X
4
5 X
13-08-18
1 X
2 X
3 X X
4
5 X
63
Cuadro 4A. Inoculación del hongo Fusarium sp en lengua de suegra.
EVALUACIONES – TRATAMIENTO 1
TIPO DE PLANTA: Lengua de suegra
TIPO DE HONGO: Fusarium sp
Fecha de evaluación
# de plantas
Sin síntomas
Decoloración del follaje
Necrosis en follaje
(5%)
Necrosis y crecimiento micelial sobre hojas y tallos (25%)
Necrosis en hojas y tallos (50%)
Necrosis,
muerte de ramas y plantas (+50%)
Observación
16-07-18
1 X
2 X
3 X X
4 X
5 X
30-07-18
1 X
2 X
3 X X
4 X
5 X
13-08-18
1 X
2 X
3 X X
4 X
5 X
64
Cuadro 5A. Inoculación del hongo Aspergillus niger en cordyline.
EVALUACIONES – TRATAMIENTO 2
TIPO DE PLANTA: Cordyline
TIPO DE HONGO: Aspergillus niger
Fecha de evaluación
# de plantas
Sin síntomas
Decoloración del follaje
Necrosis en follaje
(5%)
Necrosis y crecimiento
micelial sobre hojas
y tallos (25%)
Necrosis en hojas y tallos (50%)
Necrosis,
muerte de ramas y plantas (+50%)
Observación
16-07-18
1 X
2 X
3 X
4
Manchas blanquecinas
en el tallo
5 X
30-07-18
1 X
2 X
3 X
4
Manchas blanquecinas en el tallo
5 X
13-08-18
1 X X
2 X
3 X
4
Manchas blanquecinas en el tallo
5 X
65
Cuadro 6A. Inoculación del hongo Aspergillus niger en crotón.
EVALUACIONES – TRATAMIENTO 2
TIPO DE PLANTA: Crotón
TIPO DE HONGO: Aspergillus niger
Fecha de evaluación
# de plantas
Sin síntomas
Decoloración del follaje
Necrosis en follaje
(5%)
Necrosis y crecimiento
micelial sobre hojas y tallos
(25%)
Necrosis
en hojas y tallos (50%)
Necrosis, muerte de ramas y plantas (+50%)
16-07-18
1 X
2 X
3 X
4 X
5 X
30-07-18
1 X
2 X
3 X
4 X
5 X
18-08-18
1 X
2 X
3 X
4 X
5 X
66
Cuadro 7A. Inoculación del hongo Aspergillus niger en peregrina.
EVALUACIONES – TRATAMIENTO 2
TIPO DE PLANTA: Peregrina
TIPO DE HONGO: Aspergillus niger
Fecha de evaluación
# de plantas
Sin síntomas
Decoloración del follaje
Necrosis en follaje
(5%)
Necrosis y crecimiento
micelial sobre hojas y tallos
(25%)
Necrosis y en hojas y
tallos (50%)
Necrosis, muerte de ramas y plantas (+50%)
16-07-18
1 X
2 X
3 X
4 X
5 X
30-07-18
1 X
2 X
3 X
4 X
5 X
13-08-18
1 X
2 X
3 X
4 X X
5
67
Cuadro 8A. Inoculación del hongo Aspergillus niger en lengua de suegra.
EVALUACIONES – TRATAMIENTO 2
TIPO DE PLANTA: Lengua de suegra
TIPO DE HONGO: Aspergillus niger
Fecha de evaluación
# de plantas
Sin síntomas
Decoloración del follaje
Necrosis en follaje
(5%)
Necrosis y crecimiento
micelial sobre hojas
y tallos (25%)
Necrosis en hojas y tallos (50%)
Necrosis,
muerte de ramas y plantas (+50%)
Observación
16-07-18
1 X
2 X
3 X
4 X
5 X
30-07-18
1 X
2 X
3 X
4 X
5 X
13-08-18
1 X
2 X
3 X
4 X
5 X
68
Cuadro 9A. Inoculación del hongo Cylindrocladium sp en cordyline.
EVALUACIONES – TRATAMIENTO 3
TIPO DE PLANTA: Cordyline
TIPO DE HONGO: Cylindrocladium sp
Fecha de evaluación
# de plantas
Sin síntomas
Decoloración del follaje
Necrosis en follaje
(5%)
Necrosis y crecimiento
micelial sobre hojas
y tallos (25%)
Necrosis en hojas y tallos (50%)
Necrosis,
muerte de ramas y plantas (+50%)
Observación
16-07-18
1 X
2 X
3
Manchas blanquecinas en el tallo
4 X
5 X
30-07-18
1 X
2 X
3
X
X
Manchas blanquecinas en el tallo
4 X
5 X
13-08-18
1 X
2 X
3
X
X
Manchas
blanquecinas en el tallo
4 X
5 X
69
Cuadro 10A. Inoculación del hongo Cylindrocladium sp en crotón.
EVALUACIONES – TRATAMIENTO 3
TIPO DE PLANTA: Crotón
TIPO DE HONGO: Cylindrocladium sp
Fecha de evaluación
# de plantas
Sin síntomas
Decoloración del follaje
Necrosis en follaje
(5%)
Necrosis y crecimiento
micelial sobre hojas y tallos
(25%)
Necrosis
en hojas y tallos (50%)
Necrosis, muerte de ramas y plantas (+50%)
16-07-18
1 X
2 X
3 X
4 X
5 X
30-07-18
1 X
2 X
3 X
4 X
5 X
13-08-18
1 X
2 X
3 X
4 X
5 X
70
Cuadro 11A. Inoculación del hongo Cylindrocladium sp en peregrina.
EVALUACIONES – TRATAMIENTO 3
TIPO DE PLANTA: Peregrina
TIPO DE HONGO: Cylindrocladium sp
Fecha de evaluación
# de plantas
Sin síntomas
Decoloración del follaje
Necrosis en follaje
(5%)
Necrosis y crecimiento
micelial sobre hojas y tallos
(25%)
Necrosis
en hojas y tallos (50%)
Necrosis, muerte de ramas y plantas (+50%)
16-07-18
1 X
2 X
3 X
4 X
5 X
30-07-18
1
2 X
3 X
4 X
5 X
13-08-18
1 X
2 X
3 X
4 X
5 X
71
Cuadro 12A. Identificación del hongo Cylindrocladium sp en lengua de suegra.
EVALUACIONES – TRATAMIENTO 3
TIPO DE PLANTA: Lengua de suegra
TIPO DE HONGO: Cylindrocladium sp
Fecha de evaluación
# de plantas
Sin síntomas
Decoloración del follaje
Necrosis en follaje
(5%)
Necrosis y crecimiento
micelial sobre hojas
y tallos (25%)
Necrosis en hojas y tallos (50%)
Necrosis,
muerte de ramas y plantas (+50%)
Observación
16-07-18
1 X
2 X
3 X
4 X
5 X
30-07-18
1 X
2 X
3 X
4 X Punta de la hoja poco podrida
5 X
13-08-18
1 X
2 X
3 X
4 X
5 X
72
Cuadro 13A. Inoculación del hongo Fusarium solani en cordyline.
EVALUACIONES – TRATAMIENTO 4
TIPO DE PLANTA: Cordyline
TIPO DE HONGO: Fusarium solani
Fecha de evaluación
# de plantas
Sin síntomas
Decoloración del follaje
Necrosis en follaje
(5%)
Necrosis y crecimiento
micelial sobre hojas
y tallos (25%)
Necrosis en hojas y tallos (50%)
Necrosis,
muerte de ramas y plantas (+50%)
Observación
16-07-18
1 X
2 X
3 X
4 X
5 X
30-07-18
1 X X Manchas en el tallo
2 X Manchas en el tallo
3 X
4 X
5 X
13-08-18
1 X X Manchas en el tallo
2 X Manchas en el tallo
3 Manchas en el tallo
4 X
5 X
73
Cuadro 14A. Inoculación del hongo Fusarium solani en crotón.
EVALUACIONES - TRATAMIENTO 4
TIPO DE PLANTA: Crotón
TIPO DE HONGO: Fusarium solani
Fecha de evaluación
# de plantas
Sin síntomas
Decoloración del follaje
Necrosis en follaje
(5%)
Necrosis y crecimiento
micelial sobre hojas
y tallos (25%)
Necrosis en hojas y tallos (50%)
Necrosis, muerte de ramas y plantas (+50%)
Observación
16-07-18
1 X
2 X
3 X
4 X
5 X
30-07-18
1 X Perdida de hoja
2 X
3 X
4 X
5 X
13-08-18
1 X Perdida de hoja
2 X
3 X
4 X
5 X
74
Cuadro 15A. Inoculación del hongo Fusarium solani en peregrina.
EVALUACIONES – TRATAMIENTO 4
TIPO DE PLANTA: Peregrina
TIPO DE HONGO: Fusarium solani
Fecha de evaluación
# de plantas
Sin síntomas
Decoloración del follaje
Necrosis en follaje
(5%)
Necrosis y crecimiento
micelial sobre hojas
y tallos (25%)
Necrosis en hojas y tallos (50%)
Necrosis,
muerte de ramas y plantas (+50%)
Observación
16-07-18
1 X
2 X
3 X
4 X
5 X
30-07-18
1 X
2 X
3 X Perdida de hoja
4 X Perdida de hoja
5 X
13-08-18
1 X
2 X
3 X X
4 Perdida de hoja
5 X
75
Cuadro 16A. Inoculación del hongo Fusarium solani en lengua de suegra.
EVALUACIONES – TRATAMIENTO 4
TIPO DE PLANTA: Lengua de suegra
TIPO DE HONGO: Fusarium solani
Fecha de evaluación
# de plantas
Sin síntomas
Decoloración del follaje
Necrosis en
follaje (5%)
Necrosis y crecimiento
micelial sobre hojas
y tallos (25%)
Necrosis en hojas y tallos (50%)
Necrosis,
muerte de ramas y plantas (+50%)
Observación
16-07-18
1 X
2 X
3 X
4 X
5 X
30-07-18
1 X
2
3 X
4 X
5 X X
13-08-18
1 X
2 X
3 X
4 X
5 X X