prÁcticas de microbiologÍa clÍnica
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PRÁCTICAS DE MICROBIOLOGÍA CLÍNICA
(CURSO 2012–2013)
Prácticas de Microbiología Clínica (Curso 2012-2013) Miércoles
PRÁCTICAS A REALIZAR
ANÁLISIS CUALITATIVO
MUCOSA FARÍNGEA
X-1 Observación de halos de hemólisisen las placas de Agar Sangre nº 1 y nº 2
X-2Tinción de Gram
de presuntos cocos Gram + crecidos en:placa de Agar Sangre nº 2
X-3Observación de la placa de Agar
Salino Manitoly tinción de Gram de colonias aisladas
X-4Siembra en Agar Sangre
de cocos Gram + en sectores(placa nº 3)
METODOLOGÍA
Se parte de la placa de agar sangre nº 2 (se puede utilizar también la de AgarSalino Manitol). Después de 48 horas de incubación, debe haber colonias aisladas con un crecimiento adecuado.
a) Colocando la placa frontalmente a la luz, se observará la existencia de halos de hemólisis (α y β).
b) Podrán existir colonias de cocos Gram positivos que no sean hemolíticas.
c) Se considerará la relación tamaño de la colonia / tamaño del halo de hemólisis.
d) Se realizará una tinción de Gram a cada tipo diferente de colonias aisladas.
ANÁLISIS CUALITATIVO DE FARINGEIDENTIFICACIÓN DE COCOS GRAM POSITIVOS
SOBRE LA PLACA DE AGAR SANGRE Nº 2
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OBSERVACIÓN DE HALOS DE HEMÓLISIS
FUNDAMENTO
Los microorganismos hemolíticos liberan enzimas (hemolisinas) al medio quedestruyen los glóbulos rojos apareciendo halos de hemólisis.
METODOLOGÍA
Se trabajará con colonias aisladas y bien crecidas a las 48 horas.
Observación de la hemólisis
α-hemólisis
β-hemólisis
γ-hemólisis: no hay hemólisis
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Beta hemólisis
Lisis completa de los glóbulos rojosHalo transparente alrededor de la colonia
Alfa hemólisis
Lisis parcial de los glóbulos rojosSe abren poros en la membranaSalida de hemoglobina al medioOxidación del grupo hemoFormación de biliverdina (color verdoso)Halo verdoso alrededor de la colonia
CARACTERÍSTICAS DE BETA Y ALFA HEMÓLISIS
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β
α
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β α
γ
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IDENTIFICACIÓN PRESUNTIVA DE COLONIAS EN AGAR SANGRE
COCOS GRAM POSITIVOSColonia grande/Halo hemólisis pequeño Staphylococcus
Colonia pequeña/Halo hemólisis grande Streptococcus
BACTERIA CATALASA HEMÓLISISAGRUPACIÓN
MICROSCÓPICA
S. aureus + β Racimos
S. epidermidis + NO Racimos
S. saprophyticus + NO Racimos
Streptococcus pyogenes - β Cadenas
S. pneumoniae - αAisladasParejas
Cadenitas
S. agalactiae - β Cadenas
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OBSERVACIÓN DE MICROBIOTA DE FARINGE
Colonia Morfología celular Podría ser
GrandeAmarillenta- incoloraBeta-hemolítica
Células esféricasRacimos irregulares Staphylococcus aureus
PequeñaBlanca-grisáceaNo hemolítica
Células esféricasRacimos irregulares Staphylococcus epidermidis
GrandeBlanca-amarillentaAnaranjadaNo hemolítica
Células esféricasRacimos irregulares Staphylococcus saprophyticus
PequeñaGrisácea-traslúcidaBeta-hemolítica
Células esféricasCélulas ovoides
Aisladas-parejasCadenas
Streptococcus pyogenes
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OBSERVACIÓN DE MICROBIOTA DE FARINGE
Colonia Morfología celular Podría ser
PequeñaGrisácea-traslúcidaAlfa-hemolítica
Células esféricasCélulas ovoides
Aisladas-parejasCadenas
Streptococcus pneumoniae
PequeñaGrisAlfa-hemolíticaNo hemolítica
Células esféricasCélulas ovoides
Aisladas-parejasCadenas
Grupo ViridansStreptococcus mutans
S. SalivariusS. BovisS. mitis
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ANÁLISIS CUALITATIVO DE LAMUCOSA FARÍNGEA
Observación de la placa de Agar Salino Manitol
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Microorganismos Fermentación manitol
Colonia
Staphylococcus aureus SI Halo amarillo
S. epidermidis NO IncoloraS. urealyticus SI Halo amarilloS. xylosus SI Halo amarilloS. lentus SI Halo amarilloS. simulans SI Halo amarilloS. saprophyticus Variable Halo amarillo o
incoloroEnterococcus faecalis SI Halo amarilloE. faecium Variable Halo amarillo o
incoloroE. avium SI Halo amarilloE. durans Variable Halo amarillo o
incoloro
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TINCIÓN DE GRAM DE COLONIAS AISLADAS (BÚSQUEDA DE COCOS GRAM POSITIVOS)
Se realizará tinción de Gram de:
1. Colonias aisladas de la placa de AgarSangre nº 2 (preferentemente)
2. Colonias aisladas de la placa de AgarSalinoManitol
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Tinción de Gram
1. Extensión.2. Desecación.3. Fijación.4. Colorante: Cristal violeta, 2 minutos.5. Lavar con agua.6. Mordiente: Lugol, 2 minutos.7. Lavar abundantemente con agua.8. Decoloración: Alcohol etílico 96%, 20 segundos.9. Lavar abundantemente con agua.10. Colorante de contraste: Safranina, 3-4 minutos.11. Lavar abundantemente con agua.12. Dejar secar a temperatura ambiente.13. Observar al microscopio con objetivo de inmersión (100X).
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Gram positiva Gram negativa
Extender y fijarla preparación
Etanol
Lugol
Cristal violeta
Safranina
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Staphylococcus
Levaduras
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Corynebacterium
Enterococcus faecalis
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Neisseria
Fusobacterium
Streptococcus
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METODOLOGÍA
a) Se sembrarán aquellas colonias identificadas como cocos Gram positivos. La siembra se hará por sectores en una placa de agar sangre que llamaremos nº 3.
b) Cada alumno deberá sembrar, al menos, dos sectores de cocos Gram positivos.
ANÁLISIS CUALITATIVO DE FARINGESIEMBRA POR SECTORES DE LA PLACA
DE AGAR SANGRE Nº 3
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