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Manejo de la hernia de la col (Plasmodiophora brassicae Woron) en el

cultivo de repollo (Brassica oleracea L.) en el Centro Agropecuario Marengo (CAM)

ANDREA BOTERO RAMÍREZIVÁN LEONARDO GÓMEZ CONTRERAS

Universidad Nacional de Colombia

Facultad de Agronomía, Departamento de Ingeniería Agronómica

Bogotá, Colombia

2013

Manejo de la hernia de la col (Plasmodiophora brassicae Woron) en el

cultivo de repollo (Brassica oleracea L.) en el Centro Agropecuario Marengo (CAM)

ANDREA BOTERO RAMÍREZIVÁN LEONARDO GÓMEZ CONTRERAS

Tesis presentada como requisito parcial para optar al título de:

Ingeniero Agrónomo

Director (a):

FITOPATOLOGA (Ph.D.) Celsa García

Línea de Investigación:

Manejo de enfermedades en hortalizas

Grupo de Investigación:

Horticultura

Universidad Nacional de Colombia

Facultad de Agronomía, Departamento de Ingeniería Agronómica

Bogotá, Colombia

2013

A nuestros padres: Laura Ramírez, Oscar

Botero; Yolanda Contreras y Pedro Gómez.

Por todos estos años de dedicación y

esfuerzo constante, entregando sus vidas

para hacer de nosotros grandes personas

contribuyendo día a día para nuestra

formación.

A nuestra directora: Celsa García

Domínguez, por todo el esfuerzo, apoyo y

dedicación brindados para hacer de nosotros

excelentes profesionales; preocupados por

las necesidades del agro colombiano.

Enseñándonos la importancia del agricultor y

sus necesidades. Siendo este para quién

debemos trabajar, a fin de lograr la

sostenibilidad del campo, manteniendo

siempre como bandera la ética profesional.

Agradecimientos

Agradecemos de forma especial por todo su apoyo y dedicación para acompañarnos en

el desarrollo de este trabajo, procurando siempre favorecer nuestro éxito en cada una de

las actividades realizadas a: María Fernanda Botero R., Diego Román Gómez C., Oscar

Fabián Gómez C., Pedro Germán Gómez C., Lina Arias Molina, Oscar Chingaté C., Jorge

Andrés Rodríguez H., Francisco Acevedo B., Rubén Cruz, Jesús Alberto León, Wadith

de León, Jairo Cuervo Andrade, Saira Espinosa, Edgar Benítez, a todos los integrantes

del CAM y a todos aquellos integrantes del equipo de trabajo del laboratorio de

Biotecnología Vegetal.

VI

Resumen

El actual trabajo de investigación se realizó con el fin de evaluar el efecto de

Trichoderma y de encalamiento sobre la enfermedad hernia de la col en repollo. El

ensayo se estaleció en un lote con historial de la enfermedad en el Centro Agropecuario

Marengo, Cundinamarca, en un diseño de bloques completos al azar con cinco

repeticiones. Se empleó repollo variedad Corazón de buey. Se aplicaron seis

tratamientos: 1) testigo sin adición de enmiendas, 2 y 3) cal dolomita, 1,0 y 2,1 ton/ha, 4)

Trichoderma koningiopsis (Th003, producto experimental de Corpoica), 5 y 6)

combinación de cal dolomita y Trichoderma. Los tratamientos con cal se aplicaron un

mes antes del trasplante, T. koningiopsis se aplicó a una dósis de 200 g de producto

formulado/ha. Se realizaron siete evaluaciones en el tiempo de incidencia y severidad de

la enfermedad, de tres variables de crecimiento de la planta y de pH del suelo. Al final del

ciclo se evaluó la población de Trichoderma. Se realizó un análisis no paramétrico de

todas las variables empleando SAS 9.2. La separación de medias se realizó por prueba

de Tukey. El tratamiento con Trichoderma tuvo la menor incidencia y severidad de la

enfermedad con respecto al resto de los tratamientos; Con este tratamiento también se

obtuvo el mayor peso seco de la planta. La aplicación de cal en dósis de 2,1 ton/ha mas

Trichoderma afectó negativamente las variables de crecimiento y presentó la mayor

intensidad de enfermedad. Los demás tratamientos tuvieron resultados intermedios. La

cantidad de Trichoderma en suelo se incrementó en una potencia en el tratamiento

donde se aplicó Tricotec, lo que no se observó en los tratamientos con Tricotec y cal.

Estos resultados permiten concluir que T. koningiopsis es una buena alternativa para el

manejo de la hernia de la col en repollo.

Palabras clave: Control biológico; Plasmodiophoridia; Patógenos de suelo; Rhizaria; Cal

dolomita.

VII

Abstract

This research was done with the aim to evaluate the Trichoderma and liming effect on

clubroot disease on cabbage. The trial was conducted in a plot with disease history in the

Agricultural Center Marengo (CAM), Cundinamarca, in a randomized complete block

design with five replicates. Cabbage Corazón de buey was used. Six treatments were

applied: 1) Control without amendments use, 2 and 3) dolomitic lime, 1.0 and 2.1 t/ha, 4)

Trichoderma koningiopsis (Th003, Corpoica’s experimental product), 5 y 6) Dolomitic lime

and Trichoderma combination. The lime treatments were applied a month before

transplanting, T. koningiopsis was applied in a 200 g of formuled product/ha dose. Seven

evaluations were done on incidence and severity disease, of three plant growth variables

and soil pH. At crop cycle end was evaluated the soil Trichoderma population. A no

parametric analysis of all variables was done using SAS 9.2. Means separation was done

by Tukey test. The Trichoderma treatment had the lowest disease incidence and severity

regarding the other treatments; with that treatment also was obtain the highest plant dry

matter. The lime application in 2.1t/ha dose and Trichoderma negatively affect the plant

growth variables and showed the highest disease intensity. Intermediate results were

shown by other treatments. The Trichoderma amount on soil was increased in a potency

were tricotec was applied, in treatments were lime and tricotec were applied it was not

observed. These results conclude that T. koningiopsis is a good clubroot management

alternative.

Keywords: Biological control; Plasmodiophoridia; Soilborne pathogens; Rhizaria;

Dolomitic lime.

VIII Manejo de la hernia de la col (Plasmodiophora brassicae Woron) en el cultivo de repollo (Brassica oleracea L.) en el Centro Agropecuario Marengo (CAM)

Contenido

Pág.

Resumen............................................................................................................................VI

Lista de figuras...................................................................................................................X

Lista de tablas...................................................................................................................XI

Lista de Símbolos y abreviaturas.....................................................................................1

Introducción........................................................................................................................2

1. Revisión de Literatura................................................................................................51.1 Plasmodiophora brassicae Woron.....................................................................5

1.1.1 Ciclo de vida............................................................................................51.1.2 Condiciones favorables para el desarrollo del patógeno.........................71.1.3 Síntomas..................................................................................................81.1.4 Manejo de la enfermedad......................................................................10

1.2 Trichoderma spp..............................................................................................161.2.1 Condiciones de crecimiento..................................................................181.2.2 Ciclo de vida..........................................................................................181.2.3 Taxonomía.............................................................................................19

1.3 Repollo.............................................................................................................191.3.1 Origen....................................................................................................191.3.2 Fenología de la planta...........................................................................191.3.3 Morfología y Función de órganos vegetativos.......................................201.3.4 Morfología y Función de los órganos Reproductivos............................211.3.5 Valor nutricional.....................................................................................211.3.6 Importancia Económica.........................................................................221.3.7 Manejo del cultivo..................................................................................23

1.4 Encalamiento....................................................................................................331.4.1 La acidez del suelo................................................................................331.4.2 Encalado................................................................................................331.4.3 Materiales encalantes............................................................................341.4.4 Calidad de los materiales encalantes....................................................351.4.5 Reacción de la cal en el suelo...............................................................351.4.6 Determinación de los requerimientos de cal.........................................36

IX

1.4.7 Encalamiento y manejo de enfermedades de suelo..............................37

2. Materiales y métodos................................................................................................392.1 Localización geográfica....................................................................................392.2 Material Vegetal...............................................................................................392.3 Etapa de semillero............................................................................................392.4 Preparación de las plántulas para el trasplante...............................................402.5 Trasplante y establecimiento del cultivo...........................................................402.6 Diseño experimental, análisis estadístico y tratamientos.................................402.7 Tratamientos....................................................................................................412.8 Muestreo de plantas.........................................................................................43

2.8.1 Severidad de la enfermedad.................................................................432.8.2 Incidencia de la enfermedad.................................................................432.8.3 Fenología...............................................................................................452.8.4 Altura de la planta..................................................................................452.8.5 Peso fresco de parte aérea y de raíz....................................................452.8.6 Peso seco de parte aérea y de raíz.......................................................452.8.7 Proporción de masa seca aérea y de raíz.............................................45

2.9 Variables evaluadas en suelo..........................................................................462.9.1 Evolución del pH del suelo...................................................................462.9.2 Aislamiento y cuantificación de Trichoderma koningiopsis Th003........46

3. Resultados.................................................................................................................493.1 Incidencia.........................................................................................................503.2 Severidad.........................................................................................................523.3 Fenología..........................................................................................................533.4 Altura................................................................................................................563.5 Peso fresco......................................................................................................563.6 Masa seca........................................................................................................583.7 Proporción de masa seca.................................................................................593.8 Trichoderma koningiopsis................................................................................613.9 pH.....................................................................................................................62

4. Discusión...................................................................................................................65

5. Conclusiones y Recomendaciones.........................................................................735.1 Conclusiones....................................................................................................735.2 Recomendaciones............................................................................................74

Anexo A: Microfotografías Agallas de raíz de repollo con presencia de los plasmodios de P. brassicae............................................................................................76

Anexo B: Ilustraciones de severidad de la Hernia de la Col en plantas de repollo...80

Anexo C: Breve análisis económico de acuerdo a los resultados obtenidos............81

Anexo D: Análisis de suelo del lote cuatro en el CAM (2012).....................................83

Anexo E: Análisis estadístico.........................................................................................84

Bibliografía......................................................................................................................219

X Manejo de la hernia de la col (Plasmodiophora brassicae Woron) en el cultivo de repollo (Brassica oleracea L.) en el Centro Agropecuario Marengo (CAM)

Lista de figurasPág.

Figura 1. Ciclo de vida de Plasmodiophora brassicae Woron.............................................7Figura 4. Escala de severidad de “Hernia de las crucíferas” (Plasmodiophora brassicae) de plantas de repollo crecidas en el segundo semestre de 2012 en el CAM....................44Figura 9. Incidencia de la Enfermedad entre los 15 y 105 ddt de plantas de repollo crecidas en el lote cuatro del CAM....................................................................................51Figura 10. Incidencia de la enfermedad durante el desarrollo de hojas y durante la formación de cabeza entre los 15 y 105 ddt de plantas de repollo..................................51Figura 8. Evolución de la severidad de “Hernia de las crucíferas” entre los 15 y 105 ddt de plantas de repollo crecidas en el lote cuatro del CAM.......................................................52Figura 3. Estados fenológicos entre los 15 y 105 ddt de plantas de repollo crecidas en el lote cuatro del CAM...........................................................................................................54Figura 4. Altura (cm) entre los 15 y 105 ddt de plantas de repollo crecidas en el lote cuatro del CAM..................................................................................................................56Figura 5. Peso Fresco Total (A), Peso Fresco de la Parte Aérea (B) y Peso Fresco Raíz (C) en gramos (g) entre los 15 y 105 ddt de plantas de repollo crecidas en el lote cuatro del CAM.............................................................................................................................57Figura 6. Peso Seco Total (A), Peso Seco de la Parte Aérea (B) y Masa Seca Raíz (C) en gramos (g) entre los 15 y 105 ddt de plantas de repollo crecidas en el lote cuatro del CAM...................................................................................................................................58Figura 7. Porcentaje de Masa Seca de la Parte Aérea y de la Raíz (g) entre los 15 y 105 ddt de plantas de repollo crecidas en el lote cuatro del CAM..........................................60Figura 11. Conteo de unidades formadoras de colonia (ufc.g suelo-1) y diámetro promedio de las colonias de Trichoderma koningiopsis Th003 .......................................................61Figura 12. Valores de pH del suelo de la parcela experimental del repollo trabajado en el lote cuatro del CAM, entre los 15 días antes del trasplante y los 102 ddt .......................63

XI

Lista de tablasPág.

Tabla 1. Composición nutricional del repollo en 100 g de producto fresco.......................22Tabla 2. Algunas plagas y enfermedades que afectan el cultivo de repollo (Jaramillo y Díaz, 2006)........................................................................................................................28Tabla 3. Costos de producción por hectárea de repollo (SIPSA, 2010)............................32Tabla 4. Severidad de “Hernia de las crucíferas” entre los 15 y 105 ddt de plantas de repollo crecidas en el lote cuatro del CAM........................................................................53Tabla 5. Porcentajes de plantas respecto a estadios fenológicos secundarios de plantas de repollo entre los 15 y 105 ddt crecidas en el lote cuatro del CAM...............................55Tabla 6. Proporción de Masa Seca de la Parte Aérea y de la Raíz (g) entre los 15 y 105 ddt de plantas de repollo crecidas en el lote cuatro del CAM..........................................61Tabla 7. Valores de pH del suelo de la parcela experimental del repollo trabajado en el lote cuatro del CAM, entre los 15 días antes del trasplante y los 102 ddt.........................62

Lista de Símbolos y abreviaturasSímbolo Término Unidad SI Definición

t tiempo s DF

m Masa gmB=

aA

aB

mA

A Área m2

∬

dx dy

A Área Ha ∬

dx dy

Superíndices

Superíndice Término

n Exponente, potencia

Abreviaturas

Abreviatura Significado

ddt

ISE

Días después del trasplante

Índice se Severidad de la Enfermedad

T0 Tratamiento Testigo o Tratamiento cero

T1, T2..,T5 Tratamiento 1, Tratamiento 2, .., Tratamiento 5

ufc Unidades formadoras de colonia

msnm Metros sobre el nivel del mar

2 Introducción

Introducción

El cultivo de hortalizas es una actividad económica que juega un papel fundamental tanto

en la seguridad alimentaria de la población, como en su aporte nutricional y alimenticio

en el contexto de una dieta sana para el ser humano.

En Colombia, el área sembrada de crucíferas supera las 3.500 hectáreas (3,84% del área

total sembrada en hortalizas en Colombia) generando empleo de más de 450.000

jornales (Jaramillo y Díaz, 2006). Cundinamarca es el departamento de mayor

producción, destacándose los municipios de Funza, Mosquera, Madrid y Facatativá

(Jaramillo y Díaz, 2006). En estos municipios se produce más del 80% del repollo

(Brassica oleraceae L. var. Capitata) y más del 90% de coliflor (Brassica oleraceae L. var.

botrytis L.) y brócoli (Brassica oleraceae L. var. Italica L.) del consumo nacional (Tamayo

y Jaramillo, 2004). Funza, Mosquera, Madrid y Facatativá, se localizan entre los 2.600 y

2.700 msnm y exhiben una temperatura media de 14ºC (FCM, 2011), condiciones

agroclimáticas adecuadas para estos cultivos siempre y cuando se realice un manejo

integrado de los mismos, que garantice la rentabilidad, sanidad y calidad del producto

cosechado.

Dentro de los problemas fitosanitarios que enfrentan los sistemas productivos de

crucíferas, uno de los más importantes es la enfermedad conocida como “Hernia de las

crucíferas”, también llamada “hernia de la col o raíz de yuca”, cuyo agente causal es

Plasmodiophora brassicae Woron. Este patógeno es catalogado como de alto impacto

económico puesto que es el causante de pérdidas que oscilan normalmente entre el 10 y

el 15% de la producción mundial de brasicaceas (Faggian y Strelkov, 2009). En la

Sabana de Bogotá, genera disminuciones de rendimiento entre el 20 y el 50% (Jaramillo

Introducción 3

y Díaz, 2006). Tales pérdidas han causado la calificación del patógeno como

cuarentenario en países que no lo poseen (Nájera, 2010). De acuerdo con múltiples

reportes, se ha encontrado que P. brassicae, es un patógeno originario de la región del

mediterráneo cerca al centro de origen del género Brassica (Howard et al., 2010). Este

protozoario, se expandió desde su centro de origen alcanzando una amplia distribución

para el año de 1860 (Howard et al., 2010). Para este año, la hernia de la col causó

grandes pérdidas en cultivos localizados en Estados Unidos, Canadá y Rusia, donde se

llevó a cabo la primera descripción del patógeno por Michael Woron (Howard et al.,

2010).

En Colombia, el primer reporte de la enfermedad fue en el municipio de Villamaría a 4 km

de Manizales (Caldas) en 1962 (De la Rotta, 1999), y 16 años más tarde (1978) en un

cultivo de coliflor en el municipio de Mosquera, Cundinamarca (De la Rotta, 1999). Luego

de la aparición de la misma, no se tomaron estrictas medidas cuarentenarias lo que

causó la diseminación de la enfermedad a Bojacá, Facatativá, Madrid y Funza (De la

Rotta, 1999). En esos municipios se cultivaban más de 1.500 hectáreas de repollo,

coliflor y brócoli, en las cuales se produjeron pérdidas en producción hasta del 90%

(Castillo y Guerrero, 2008). Tales pérdidas han obligado incluso al abandono de la

producción de crucíferas por parte de los agricultores.

Este patógeno afecta a todos los géneros y especies de la familia Brassicaceae, lo cual

se estima comprende alrededor de 300 especies y 64 géneros de especies de crucíferas

tanto cultivadas como silvestres (Márquez, 2003). Los principales estudios con respecto a

la enfermedad se han ejecutado en el género Brassica, Raphanus y Arabidopsis,

destacándose las especies cultivadas B. oleracea L. (repollo, coliflor), B. rapa L. (nabo),

B. napus L. (mostaza, canola), Raphanus sativus L. (Rábano), entre otros (Howard et al.,

2010).

Dadas las características del protozoo, y su impacto en la producción a nivel mundial de

crucíferas, se han propuesto múltiples estrategias de manejo de la hernia de la col. Las

más usadas están orientadas a la prevención, seguidas por estrategias de disminución

del inoculo presente en el suelo, propuestas que finalmente se acompañan por

mecanismos que pretenden la disminución tanto de la incidencia como de la severidad de

4 Introducción

la enfermedad en el campo (Howard et al., 2010), dichas propuestas integran métodos

culturales, biológicos y químicos (Jaramillo y Díaz, 2006).

En resumen, se puede decir que el cultivo de especies crucíferas, pese a ser de gran

importancia para la agricultura mundial, se ve fuertemente limitado en su desarrollo por la

infestación de suelos por P. brassicae, agente causal de la hernia de la col. Esta

enfermedad genera pérdidas de rendimiento, por la muerte y subdesarrollo de las

plantas, como consecuencia de la atrofia causada en las raíces, que impide la adecuada

toma y traslocación de agua y nutrientes.

Por tal razón es fundamental generar procesos de investigación que propendan por una

reducción de los niveles de daño causados por el protozoo, para así poder reincorporar

áreas infestadas a la producción de brasicaceas e incluso incrementar la rentabilidad de

aquellos sistemas que siembran tales especies en campos infestados.

1.Revisión de Literatura

1.1 Plasmodiophora brassicae Woron

1.1.1 Ciclo de vida

Plasmodiophora brassicae Woron es un protozoario y parásito obligado clasificado dentro

de el phylum Plasmodiophoromycota (perteneciente al grupo Rhizaria, uno de los grupos

principales del reino Protista), clase Phytomyxea (protistas parásitos de plantas) (Sergey,

2004). Durante el invierno en zonas estacionales ante la ausencia de especies de

crucíferas cultivadas, sobrevive a manera de esporas en reposo (Wang et al., 2012). Las

esporas, tienen una vida media de alrededor de cuatro años, pero pueden sobrevivir

hasta por 15 años en el suelo según Wakeham y White (1996), y de 3,6 a 18 años

según Nájera (2010) en sus estudios de campo. Dichas esporas sobreviven debido a que

su gruesa pared está compuesta por una combinación de quitina, proteína y lípidos que

le confieren resistencia a la degradación microbial (Dixon, 2007). Esta característica de

longevidad y sobrevivencia del patógeno es la principal razón por la cual el manejo de la

enfermedad se hace muy complicado (Wallenhammar, 1996; citado por Niwa et al.,

2008). Además dichas esporas se caracterizan por ser de pared gruesa, hialinas,

ameladas o espinadas de tamaños variables superiores a 4 µm (Dixon, 2007).

Bajo condiciones favorables de humedad y temperatura (principalmente temperaturas

mayores a 20°C), cuando las raíces de plantas susceptibles se encuentran cerca de las

esporas, los exudados estimulan la germinación de las mismas (Howard et al., 2010).

Las esporas son estructuras reproductivas, carentes de pared celular, de movimiento

ameboide y biflageladas denominadas zoosporas primarias (Dixon, 2007). Estas

zoosporas pueden moverse o transportarse a través de la humedad del suelo hasta

alcanzar los pelos de raíz del hospedero (Dixon, 2007). Una vez en los pelos de la raíz,

las zoosporas se enquistan y los penetran (Dixon, 2007). Luego, dentro de las células,

las zoosporas forman una estructura somática (producto de la división mitótica),

http://es.wikipedia.org/wiki/Planta

http://es.wikipedia.org/wiki/Par%C3%A1sito

http://es.wikipedia.org/wiki/Protista

consistente de una masa de protoplasma denominado plasmodio primario (Dixon, 2007).

El plasmodio al cabo de unos días se fragmenta en varias porciones multinucleadas (30 a

100) formando así un zoosporangio (Castillo y Guerrero, 2008). El zoosporangio tiene un

tamaño que oscila entre los 6 y 6,5 µm de diámetro; una vez formado, se liberan al suelo

de cuatro a ocho zoosporas secundarias uninucleadas que salen a través de los poros

de la pared celular (Ruaro et al, 2010). Kageyama y Asano (2009) afirman que son de

cuatro a 16 zoosporas secundarias. Dichas esporas secundarias se pueden dirigir de

nuevo hacia los pelos radicales, pero especialmente hacia la raíz principal para invadir

células del tejido cortical y vascular, donde se generará un plasmodio secundario

(Kageyama y Asano, 2009). Allí se genera un estímulo sobre la célula vegetal para que

esta se divida (hiperplasia) y crezca de manera descontrolada (hipertrofia) (Kageyama y

Asano, 2009). Este proceso induce un incremento de cuatro a cinco veces el tamaño

normal de la célula (Velandia, 1985). Posteriormente el plasmodio genera de nuevo

esporas de resistencia que son liberadas al suelo (Agrios, 2005). La liberación ocurre

luego de la desintegración de las paredes celulares del hospedante por la acción de

microorganismos secundarios (Agrios, 2005). Dicha desintegración se ve reflejada en la

pudrición de las hernias con emanaciones de mal olor (Agrios, 2005). De esta manera se

puede decir, que se cierra el ciclo de vida de este microorganismo. Respecto a la

formación de nuevas esporas de resistencia, Dixon (2007) afirma que esta se ve

favorecida por la meiosis y el clivaje de citoplasma celular luego de la formación de los

plasmodios secundarios.

Ingram y Tommerup (1972; citados por Niwa et al., 2008) resumen el ciclo de la

enfermedad en dos fases: la primera caracterizada por la germinación de las esporas en

reposo y la subsecuente infección de los pelos de raíz, mientras que la segunda se

caracteriza por la colonización y proliferación del patógeno en la corteza de la raíz. Una

revisión más reciente realizada por Kageyama y Asano (2009), describe el ciclo de vida

del patógeno en tres estados en orden de ocurrencia: a) sobrevivencia en el suelo de las

esporas de resistencia, b) infección de los pelos de raíz y c) infección cortical (Figura 1).

Figura 1. Ciclo de vida de Plasmodiophora brassicae Woron. Tomado de Kageyama y Asano, (2009).

Revisión de literatura 7

1.1.2 Condiciones favorables para el desarrollo del patógeno

Las condiciones favorables para el desarrollo del patógeno son principalmente suelos

ácidos (pH<6.5), húmedos y cálidos; sin embargo la hernia ha sido encontrada incluso en

suelos con rango de pH entre 4,8 y 7,6 (Strelkov et al., 2006). De acuerdo con Colhoun

(1958; citado por Velandia, 1985), valores de pH entre 4,5 y 6,5 son los más favorables

para la germinación de los zoosporangios y penetración de las zoosporas en la raíz. Por

el contrario pHs iguales o mayores a 7,2 limitan el desarrollo del patógeno (Ruaro et al.,

2010). Ruaro et al. (2010) encontraron un mejor desarrollo de masa seca foliar (3,5-4,5

g•planta-1 a los 45 ddi) de plantas de col china (Brassica rapa var. pekinensis) crecidas

bajo un pH entre 6,2 y 7,3 e inoculadas con una baja concentración inoculo de P.

brassicae (1•107 esporas.ml-1).

La enfermedad es más grave en suelos ácidos y mal drenados, en estaciones de

pluviometría elevada y con temperaturas entre los 10 y 35 ºC (Cedeño et al., 2006). El

desarrollo óptimo del patógeno ocurre en temperaturas entre los 20 y 25ºC según

Cedeño et al. (2006) o entre 9 y 30 ºC según Ikegami et al. (1981; citado por Velandia,

1985).

Naiki et al. (1981; citado por Velandia, 1985), afirman que la enfermedad se desarrolla

con una humedad del suelo entre el 30 y el 90% de la capacidad de campo, con un

desarrollo óptimo entre el 45-70% de la capacidad de campo por un espacio de tiempo

de 12 a 18 horas. Faggian y Strelkov (2009) mencionan que existen diversas razas de

8 Manejo de la hernia de la col (Plasmodiophora brassicae Woron) en el cultivo de repollo (Brassica oleracea L.) en el Centro Agropecuario Marengo (CAM)

este patógeno, las cuales necesitan menos de 1000 esporas·g de suelo-1 para que se

produzca la enfermedad.

Dixon (2007) afirma que a pesar de que la acidez del suelo es el factor principal que

favorece el desarrollo de P. brassicae, la presencia de un pH alcalino no significa una

inhibición del desarrollo del patógeno cuando existen condiciones de temperatura,

humedad y potencial de inoculo (mayor a 10e3 esporas·g-1 de suelo) en el suelo

suficientemente altos. Además, incrementos en el contenido de calcio y de pH, pueden

reducir la tasa de maduración de los plasmodios y esporangios primarios en pelos de

raíz, más no inhibir completamente el desarrollo de P. brassicae (Ruaro et al., 2010). A

su vez, el boro puede ralentizar el desarrollo de hernias en el tejido cortical (Dixon, 2007).

Otros elementos del suelo tales como el nitrógeno pueden estar involucrados en la

reducción de la tasa de crecimiento y desarrollo de este patógeno (Dixon, 2007).

Es posible afirmar que casi la totalidad de especies de crucíferas, especialmente las

cultivables, presentan alta susceptibilidad a esta enfermedad, condición que hace muy

favorable el desarrollo del patógeno (Velandia et al., 1998). Esto se explica de manera

general, ya que debido a la proliferación y virulencia de las diferentes razas de P.

brassicae, no es posible desarrollar genotipos de resistencia estable a Hernia de las

crucíferas (Crisp et al., 1989; Seaman et al., 1963; Tjallingii, 1965; citados por Velandia

et al., 1998).

De manera general, las condiciones favorables para el desarrollo de esta enfermedad

dependen básicamente de cinco factores importantes: acidez del suelo, la humedad, la

temperatura, la concentración de inoculo y la susceptibilidad de las diferentes crucíferas.

1.1.3 Síntomas

Los síntomas expresados en la raíz de la planta enferma se evidencian desde la

formación y fragmentación del plasmodio secundario; donde las raíces se hinchan y se

deforman formando las denominadas hernias, tumores o agallas (Faggian y Strelkov,

2009). Tales síntomas sólo son observables si la raíz es extraída del suelo, lo que

dificulta su detección por observación directa (Faggian y Strelkov, 2009). Cuando se


presentan días soleados o en horas del medio día, las hojas de plantas enfermas sufren

marchitez, pero en la noche se tornan turgentes (Cheah et al., 2000).

Esta enfermedad se puede presentar en cualquier momento del crecimiento y desarrollo

de la planta susceptible, de tal manera que cuanto más temprana sea la infección, mayor

es el daño (ACMC, 2010; Wang et al., 2012). En infecciones tempranas, los síntomas son

más evidentes, observándose marchitez y muerte de las plantas que presentan la

enfermedad en niveles de severidad elevados (Ludwig-Müller y Schuller, 2008). Tal

marchitez y muerte de la planta, está explicada por la obstrucción en la entrada y

transporte de agua y nutrientes hacia la parte aérea de la planta; ocasionando

inicialmente un retraso en el crecimiento, el cual desencadena en la muerte de la misma

(Agrios, 2005). De esta manera, cuando la enfermedad inicia en el semillero, se dice que

hay una alta pérdida de plántulas durante el trasplante por marchitez y muerte de las

mismas ya que no logran adaptarse a las nuevas condiciones del suelo y del clima (Ávila

De Moreno, 1992). Cuando la enfermedad inicia en plantas en desarrollo, no hay una

adecuada formación de cabezas comerciales en el caso del repollo o de la inflorescencia

en coliflor, lo cual se traduce en disminuciones del rendimiento del 20-50% (Ávila De

Moreno, 1992). En canola (B. napus) y mostaza (Sinapsis alba ó B. alba), durante la

etapa de plántula, se pueden presentar marchitamientos, enanismo y amarillamientos,

mientras que en plantas infectadas en etapas posteriores de crecimiento es probable no

encontrar dichos síntomas, pero como consecuencia, se acelera la maduración haciendo

que las semillas se “arruguen”, lo que reduce el rendimiento y la calidad (contenido de

aceite) (ACMC, 2010).

Las hernias se pueden presentar en todo el sistema radical de la planta. Comúnmente se

forman pequeños tumores en raíces secundarias o pelos absorbentes y tumores de

mayor tamaño en la raíz principal (Ikegami et al, 1985; citados por Castillo y Guerrero,

2008). A su vez, las hernias inicialmente son de textura lisa y posteriormente se vuelven

rugosas y oscuras, luego se pudren y emanan un mal olor, lo cual indica el momento de

la liberación de nuevas esporas como fuente de inoculo en el suelo (Ikegami et al, 1985;

citados por Castillo y Guerrero, 2008).


1.1.4 Manejo de la enfermedad

Incuantificables esfuerzos se han llevado a cabo con el fin de manejar la hernia de las

crucíferas. En esta vía, se han integrado diversas estrategias, de las cuales se destacan

las herramientas de control químico, cultural, biológico y genético. Las más destacadas

están enfocadas a la prevención del ingreso del patógeno en áreas donde aún no se ha

detectado la enfermedad (Howard et al., 2010). No obstante, el incremento de áreas

infestadas por P. brassicae, junto con la baja efectividad de estrategias de manejo

enfocadas en una sola herramienta de control y la creciente preocupación de la sociedad

por el consumo de alimentos obtenidos a partir de sistemas de producción más justos

ambientalmente, han dirigido los esfuerzos hacia el uso de estrategias integradas que

incluyan todos los instrumentos que a continuación se describen (Donald y Porter, 2009).

Control cultural

Las estrategias de manejo cultural de la enfermedad, se enfocan en primera instancia a

la prevención del ingreso de la misma en un área determinada y en segunda instancia a

limitar el incremento del inoculo en suelo. Se recomienda la selección adecuada del

terreno de siembra (Howard et al., 2010). El área en la cual se sembrarán las especies

susceptibles a P. brassicae, deben ser suelos supresivos, los cuales según Murakami et

al. (2000), se caracterizan por presentar buen drenaje, alta capacidad de difusión de

gases y alta concentración de CO2 en el suelo, además de exhibir un pH elevado y altas

concentraciones de Ca, Mg o ácidos húmicos. Niwa et al. (2008) reportaron que la

supresión de la hernia de las crucíferas en un suelo con pH neutro causó la inhibición de

la germinación de las esporas en la rizósfera, aunque los efectos supresivos por efecto

de la neutralización y contenidos de calcio fueron diferenciales.

No obstante, no solamente los factores abióticos definen la supresividad de un suelo, ya

que según estudios llevados a cabo en Japón con dos tipos de suelo, un Haplic andosol y

un Andosol con bajo contenido húmico, se encontró que el segundo fue más supresivo al

desarrollo de la enfermedad y que el índice de severidad fue superior en suelos estériles

que en suelos que contenían la carga microbiológica original del suelo; lo que permite

concluir que tanto los factores abióticos como los bióticos, definen la supresividad de un

suelo (Murakami et al., 2000).


Por otra parte, es crucial destacar que las zoosporas del patógeno presentes en suelo,

también pueden contaminar herramientas de trabajo, botas de los trabajadores y

maquinaria entre otras, razón por la cual estos se convierten en vectores, entonces es

indispensable llevar a cabo sanitización de los mismos (Howard et al., 2010). La

sanitización, involucra tres pasos clave: en primer lugar la remoción de suelo y residuos

vegetales adheridos, en segundo lugar lavado a presión para la remoción de residuos no

removidos anteriormente y tercero, la aplicación de un desinfectante para limpiar

superficies manteniendo contacto con el mismo por al menos veinte minutos con el fin de

garantizar la muerte de las esporas remanentes (Howard et al., 2010). También se debe

tener especial cuidado con el agua de riego, evitando el uso de aguas provenientes de

zonas con presencia de la enfermedad para prevenir la diseminación de zoosporas por

medio del agua (Donald y Porter, 2009). Una herramienta recomendada para la

reducción de la incidencia de la enfermedad consiste en la aplicación de 200mg·l-1 de

agua, de hipoclorito de sodio (Donald y Porter, 2009). El tratamiento del agua de riego es

importante, ya que en estudios realizados por Donald (2009), se encontró que las

esporas de P. brassicae permanecieron viables en el agua de riego por al menos 34

meses y que la irrigación repetida con agua que contiene al menos 10 esporas·ml-1

resultó en raíces con síntomas de P. brassicae.

La rotación de cultivos, es una herramienta de control de gran importancia para disminuir

la incidencia y severidad de la enfermedad. Las rotaciones deben llevarse a cabo entre

especies susceptibles y plantas no hospederas para disminuir los niveles de inoculo de

P. brassicae en el suelo (Donald y Porter, 2009). Wallenhammar (1996) demostró que la

vida media de las zoosporas de P. brassicae es de 3,6 años, luego las rotaciones deben

ir direccionadas a una duración mayor o equivalente. No obstante cuando existen altas

densidades de inoculo, se deben establecer sistemas de rotación extremadamente largos

con el objetivo de disminuir la densidad de inoculo y con esta la incidencia y severidad de

la enfermedad. Wallenhammar (1996) encontró que se requiere un promedio de 17,3

años para disminuir el nivel de infestación en suelo de 100% a un límite por debajo de los

detectables en un bioensayo.

El control de malezas de la familia Brassicaceae resulta una herramienta de control

indispensable asociada a las demás estrategias mencionadas, ya que estas actúan como

hospederos alternos del patógeno (Howard et al., 2010).


Finalmente, se debe tener especial cuidado con el material de partida de los cultivos,

garantizando el uso de plántulas y semillas libres del patógeno (Howard et al., 2010).

Control biológico

El control biológico de la hernia de la col es una alternativa de gran interés agronómico,

de forma tal que se han adelantado importantes investigaciones, que demuestran la

importancia de la misma. Se destaca la aplicación dirigida al suelo de algunos

aislamientos del hongo Trichoderma spp. y la bacteria Streptomyces spp.. Según Cheah

et al. (2000) en un cultivo de coliflor en Palmerston Norte (Nueva Zelanda), donde

emplearon 16 aislamientos de Trichoderma spp. y uno de Streptomyces sp.; se observó

una reducción tanto de la incidencia como de la severidad de la enfermedad. Por otra

parte, el uso de fragmentos de plantas de Brassica spp, tales como B. rapa y B. napus,

se han reportado como posibles biofumigantes, puesto que pueden reducir la severidad

de la enfermedad (Cheah et al., 2001). La reducción ocurre por los altos niveles de

glucosinolatos, metabolitos secundarios que disminuyen la afectación de la planta debido

a la reducción de la capacidad de infección de las zoosporas remanentes en el suelo

(Cheah et al, 2001), no obstante el mecanismo aún no está bien entendido. Además

existen reportes importantes de otros microorganismos como Phoma glomerata, con la

cual se obtuvo un control total de la enfermedad en condiciones de invernadero por Arie

et al. (2002). Finalmente Heteroconium chaetospira se ha identificado como supresor de

la enfermedad por Narisawa et al. (1998), entre otros.

Control químico

El incremento en la cantidad de literatura con respecto al control químico de P. brassicae

en los últimos 50 años se debe especialmente al crecimiento de la industria de los

agroquímicos que ocurrió en la última mitad del siglo XX (Donald y Porter, 2009). Pese a

tal desarrollo de la industria de agroquímicos las recientes políticas con respecto a la

salud humana y la seguridad ambiental han conducido a la restricción de un gran número

de materias activas (Donald y Porter, 2009).

Para el control químico de la enfermedad, en primer lugar se encuentran los

esterilizantes parciales de suelos. En general, estos son productos altamente volátiles

con baja solubilidad en agua, y actúan sobre un amplio rango de microflora y microfauna

(White y Buczacki, 1977). En segundo lugar, se encuentran los fungicidas, nombre que

se torna inadecuado dado que P. brassicae no es un hongo, luego el nombre más


apropiado sería el de protozocida, no obstante en el documento se hará referencia al

término genérico de fungicida. Dentro de los más efectivos y ampliamente usados se

encuentran los cloruros de mercurio. Su alta toxicidad ha limitado enormemente su uso

(Donald y Porter, 2009). Uno de los grupos químicos más evaluados para el control de

hernia, son los benzimidasoles y sus precursores (Donald y Porter, 2009). Dichos

productos, se ha encontrado, que varían en su eficacia según el método de aplicación

(Tate y Eales, 1982). El mejor método consiste en la aplicación mecanizada en drench

durante el trasplante, liberando 120 ml de solución por planta (Tate y Eales, 1982).

Por otra parte se ha encontrado que la aplicación de algunos surfactantes al suelo es

efectivo para el control de la hernia; no obstante, se ha observado fitotoxicidad (Howard

et al., 2010). Velandia (1985) reporta que cuando el nivel de inoculo en el suelo es bajo,

se puede lograr un buen control con la peletización de semillas o inmersión de raíces de

las plántulas en una solución de Benomil antes del trasplante; sin embargo, en la sabana

de Bogotá el uso de este producto Benomil (Benlate) y de Metil Tiofanato no han

mostrado resultados satisfactorios.

Pese a que se ha sugerido el uso de fungicidas como medida de choque para reducir la

afectación del cultivo, el éxito ha sido limitado y más bien representa un sobrecosto en la

producción que poco mejora las condiciones del cultivo (Faggian y Strelkov, 2009), razón

por la cual se hace indispensable complementar el control químico con otras

herramientas.

Fitomejoramiento

La resistencia a la hernia de las crucíferas es una característica requerida por los

agricultores. Idealmente se busca una resistencia completa o media, lo que provee a los

productores un control relativamente económico (Donald y Porter, 2009). En realidad,

líneas comerciales con resistencia durable difícilmente se han alcanzado (Donald y

Porter, 2009). En especies de importancia económica tales como el repollo (B. oleracea

var. Capitata), coliflor (B. oleracea var. botrytis) y brócoli (B. oleracea var. Italica) el

desarrollo de genotipos resistentes es complicado ya que la resistencia se debe a genes

recesivos con un efecto complementario, sumado a que el patógeno es muy agresivo y

muta a nuevas razas (Donald y Porter, 2009).


Numerosos cultivares resistentes de B. rapa, repollo y nabo se encuentran disponibles

(Donald y Porter, 2009). El uso de tales cultivares, es una medida de control importante,

sin embargo se han observado fallas con el uso de cultivares resistentes antiguos de

repollo (Donald y Porter, 2009). Crisp et al. (1989; citado por Velandia, 1985) reportaron

el desarrollo de una nueva variedad de repollo resistente P. brassicae, denominada

Badger Shipper, producto de la investigación durante 14 años en la Universidad de

Wisconsin (Estados Unidos), dos años después, esta variedad fue retirada del mercado

ya que resultó ser susceptible a otra raza del patógeno reportada por Seaman et al

(1963). Por tal razón se ha hecho indispensable llevar a cabo manejo integrado.

Encalamiento y fertilización

El manejo de la hernia por medio del incremento del pH del suelo es uno de los métodos

de control más antiguos y más altamente usado. La incidencia y severidad de la

enfermedad es generalmente reducida a un pH de 7.2, pero un gran número de fallas se

han reportado incluso a pH superiores (Colhoun, 1958; citado por Donald y Porter, 2009).

Dichos resultados contradictorios pueden explicarse en términos del número de variables

que existen cuando se aplica algún material encalante. La distribución de las partículas

de material encalante, depende por ejemplo de la preparación del suelo, contenido de

humedad y textura, tamaño de las partículas y cantidad de cal aplicada además del

intervalo de incubación entre la aplicación y el trasplante (Donald y Porter, 2009). El

encalamiento, como herramienta de manejo de P. brassicae, es una estrategia que

incrementa el pH del suelo, lo que resulta en una afección del proceso de infección del

patógeno en la primera fase de su ciclo de vida, lo que ocurre debido a la limitación del

proceso de germinación de las esporas en los pelos radicales (Niwa et al., 2007).

Adicional a la alcalinización del medio de desarrollo de la planta, es necesario llevar a

cabo un manejo nutricional estricto dado el papel de los diferentes elementos en el

desarrollo de la enfermedad. En primer lugar, según Walker y Hooker (1945) la incidencia

de hernia aumenta con un acrecentamiento de los contenidos de Nitrógeno y Potasio en

el medio de desarrollo. La omisión del Potasio resulta en una disminución del número de

plantas enfermas (Walker y Hooker, 1945). Por otra parte el aumento de la concentración

de sales en el suelo retrasa el amarillamiento e incrementa la incidencia y severidad de la

enfermedad (Walker y Hooker, 1945). Bajos contenidos de fósforo retrasan tanto el


amarillamiento como la aparición de la enfermedad (Walker y Hooker, 1945). Por su parte

los contenidos tanto de calcio como de Boro afectan la habilidad potencial del

encalamiento para el control (Donald y Porter, 2009), siendo estos los elementos más

estudiados, su papel detallado se menciona a continuación.

El calcio, se ha encontrado que en altas concentraciones, reduce tanto la incidencia

como la severidad de la enfermedad. Tales resultados, están asociados a la función del

calcio, el cual actúa fortaleciendo la pared celular del hospedero, haciendo al mismo,

menos susceptible a la infección. En adición, este elemento inhibe la producción de

esporangios diferenciados y dehiscentes de P. brassicae en las raíces infectadas (Donald

y Porter, 2009). El incremento en el fortalecimiento de las paredes celulares de la planta

gracias a los pectatos de calcio incrementan la tolerancia de la planta a la acción de las

enzimas encargadas de la degradación de la pared celular (Punja et al., 1986).

Por su parte, el Boro no tiene efecto limitado a la infección primaria del patógeno en los

pelos radicales. Tanto la infección primaria como la secundaria se ven inhibidas por el

boro, pero no se observa efecto alguno de este elemento en el número de pelos radicales

afectados por la enfermedad, lo que permite concluir que su efecto es intracelular

(Webster y Dixon, 1991). Se ha encontrado un papel potencial del Boro en la regulación

de los niveles endógenos de auxinas. Las auxinas también activan los canales de Ca en

la membrana celular, incrementando los niveles de Ca libre en el citosol, lo que estimula

la síntesis de precursores de la pared celular (Donald y Porter, 2009). A través de la

regulación de la actividad de auxinas, el boro contribuye a la integridad de la pared

celular, afectando el movimiento de P. brassicae entre las plantas hospederas (Donald y

Porter, 2009). La regulación de auxinas, limita el desarrollo de los síntomas corticales, lo

cual está dado por la hipertrofia de las células infectadas (Donald y Porter, 2009).

Solarización

Es una técnica en la cual se genera la inactivación de las zoosporas de P. brassicae

causada por el calentamiento de aire contenido en el espacio poroso del suelo. Esto se

logra cuando se cubre y se sella la superficie del suelo húmedo a capacidad de campo

con una capa de poliestireno (Donald y Porter, 2009). Esta técnica, depende

principalmente de la temperatura alcanzada y el tiempo de exposición requerido por cada

patógeno (Donald y Porter, 2009). Jaramillo y Díaz (2006) recomiendan una duración del

tratamiento de al menos 40 días en clima frío y de al menos 20 días en clima cálido. La


humedad del sustrato juega un papel importante pues en las horas de la noche donde se

presentan las menores temperaturas, se condensa el agua evaporada en el día,

produciendo un proceso de pasteurización continua durante todo el tiempo que dure el

tratamiento, de tal forma que las fluctuaciones de temperatura entre el día y la noche,

rompen fácilmente el ciclo biológico de los fitopatógenos presentes en el suelo o sustrato

(Jaramillo y Díaz, 2006).

En un estudio realizado por Porter y Merriman (1985), reportaron que la solarización

llevada a cabo por al menos cuatro semanas causó una reducción significativa del

número de zoosporas viables en los primeros 10 cm de suelo en dos localidades en

Australia. El desarrollo de la enfermedad se evaluó en las dos localidades,

encontrándose una reducción significativa de la severidad en las primeras seis semanas

de cultivo, lo que resultó en un incremento del rendimiento de 0 a 14 t•ha -1 de repollo

(Porter y Merriman 1985).

1.2 Trichoderma spp.

Trichoderma es un género que incluye hongos de suelo oportunistas, simbiontes

avirulentos, endofíticos asintomáticos y parásitos de otros hongos. La mayor parte de las

líneas filogenéticas de estos se clasifican como imperfectos ya que no se les conoce su

estado sexual (Haggag y Soliman, 2011). No obstante, algunas especies del hongo son

morfológicamente similares al anamorfo Hypocrea (Haggag y Soliman, 2011).

Las especies de Trichoderma son hongos ascomicetos destacados por su capacidad de

biocontrol contra muchos patógenos de importancia económica (Steyaert et al., 2010).

Este se caracteriza por producir anillos concéntricos de conidiación en ciclos alternados

de luz y oscuridad (Steyaert et al., 2010). El hongo se conoce por ser un invasor precoz

de las raíces que crece rápidamente y se multiplica en la zona de rizósfera (Naher et al.,

2012).

Trichoderma spp. típicamente crece hacia la hifa del otro hongo. Acompaña su afección

con una reacción mediada por lectina y degrada la pared celular del hongo blanco por

medio de la secreción de múltiples enzimas líticas (Naher et al., 2012). Este proceso de

micoparasitismo limita el crecimiento y la actividad patogénica del hongo blanco (Naher

et al., 2012). Los hongos de este género son capaces de crecer rápidamente en muchos


sustratos, produciendo importantes metabolitos y antibióticos antifúngicos (Sadfi-Zouaoui

et al., 2009).

Trichoderma spp. además de colonizar las raíces de las plantas, ataca, parasita y

compite por la obtención de nutrientes con otros hongos (Harman, 2011). Por otra parte,

estos hongos se caracterizan por incrementar el crecimiento de la planta, proceso que

aún no se ha dilucidado por completo (Harman, 2011). Los principales mecanismos de

acción de este hongo son el micoparasitismo, la antibiosis, la competencia con otros

hongos por espacio y nutrientes, el incremento de la tolerancia al estrés por medio del

incremento del desarrollo tanto de la raíz como de la parte aérea, solubilización y

secuestro de nutrientes inorgánicos, inducción de resistencia y la inactivación de enzimas

de los patógenos (Harman, 2011).

Estos hongos emplean el micoparasitismo como uno de sus mecanismos para controlar

los fitopatógenos, lo que se logra penetrando la pared celular del hongo hospedante

empleando su contenido celular, mediante enzimas hidrolíticas tales como quitinasas,

glucanasas y proteasas (González et al., 2011). Estas enzimas se inducen por medio del

contacto con el hospedero (González et al., 2011).

Las glucanasas son enzimas que degradan ß-glucanos y se clasifican en dos grupos

según los mecanismos que empleen para la degradación del sustrato: (1) Las exo-ß-

glucanasas, hidrolizan el sustrato por ruptura secuencial de residuos de glucosa desde el

extremo no reductor y (2) las endo-ß-glucanasas, rompen aleatoriamente los sitios de

enlace β de la cadena, liberando oligosacáridos (González et al., 2011). La degradación

de los ß-glucanos por hongos se acompaña frecuentemente de la acción sinérgica de las

endo- y exo-ß-glucanasas (González et al., 2011).

Por otra parte, las paredes celulares de los fitopatógenos están en su mayoría

compuestos de 1,3-ß-glucanos y quitina y algunos protozoos que poseen los 1,3-ß-

glucanos, también contienen celulosa en lugar de quitina (González et al., 2011). Esto

explica la importancia de estas enzimas en la capacidad antagónica de T. koningiopsis y

por lo tanto en su utilidad como bioplaguicida (González et al., 2011).


1.2.1 Condiciones de crecimiento

Estos hongos se desarrollan mejor en la presencia de altas cantidades de raíces de

plantas, las cuales colonizan (Harman, 2011). Algunas líneas son altamente competitivas

en la rizósfera, por ejemplo, son capaces de colonizar y crecer en las raíces donde se

desarrollan (Harman, 2011). Las líneas más competitivas en la rizósfera se pueden

adicionar al suelo o semillas por cualquier método (Harman, 2011). Estas una vez entran

en contacto con las raíces colonizan la superficie o cortex (Harman, 2011). Si estos se

adicionan como tratamiento a semilla, la mejor línea colonizará la superficie de las raíces

aún cuando las raíces haya profundizado más de un metro (Harman, 2011). Pueden

persistir en un gran número por un periodo incluso superior a los 18 meses después de la

aplicación, no obstante la mayoría de cepas carecen de esta capacidad (Harman, 2011).

La producción de conidias típicamente recae en la manipulación de nutrientes y sustratos

para la promoción de este proceso (Steyaert et al., 2010). Además de estos elementos,

se conoce que la relación C:N, en adición con el pH del medio son los principales

factores que afectan la conidiación en Trichoderma spp. (Steyaert et al., 2010). La

conidiación en Trichoderma spp. puede ser inducida por la luz y reciente daño micelial

(Steyaert et al., 2010). La respuesta a la longitud de onda para la fotoconidiación en

Trichoderma recae en el espectro azul (Steyaert et al., 2010).

La regulación transcripcional de la expresión de genes en hongos filamentosos es

regulado por el pH del medio (Steyaert et al., 2010). La acidificación intracelular se ha

demostrado que está asociado con la fotoconidiación en Trichoderma spp. (Steyaert et

al., 2010). El pH del ambiente influencia tanto la conidiación como la morfología de la

colonia del hongo, habiendo una mayor tasa de crecimiento en pH entre 2,8 y 3,2

(Steyaert et al., 2010).

1.2.2 Ciclo de vida

Este hongo crece y se ramifica en hifas típicas con entre 5 y 10 µm de diámetro. La

esporulación asexual ocurre como una conidia unicelular usualmente verde (con

diámetros típicos entre 3 y 5 µm) que son liberadas en grandes cantidades (Harman,

2011). Intercaladamente también se forman algunas clamidosporas, las cuales son

uniceluladas aunque dos o más clamidosporas pueden fusionarse (Harman, 2011).


1.2.3 Taxonomía

La mayoría de líneas filogenéticas de Trichoderma spp. no presentan estado sexual, por

lo cual producen únicamente esporas asexuales (Harman, 2011). Pese a esto se ha

encontrado el estado sexual de algunas líneas, pero no en la líneas que usualmente se

han considerado para el uso como biocontroladores (Harman, 2011). El estado sexual,

cuando es encontrado, se encuentra en el género Hypocrea de los Ascomicetos

(Harman, 2011). La taxonomía tradicional se ha basado en diferencias morfológicas

principalmente del sistema de esporulación asexual, pero actualmente estudios

moleculares se han llevado a cabo para tales fines (Harman, 2011). En consecuencia, la

taxonomía recientemente ha pasado de nueve a al menos 33 especies (Harman, 2011).

La mayoría de las líneas se encuentran altamente adaptadas a un ciclo de vida asexual.

Existe una gran variabilidad genética en este género, la cual es producto principalmente

de recombinación parasexual, mutación y otros procesos que contribuyen a la variación

entre núcleos en un único organismo (Harman, 2011). Esto contribuye a la alta

adaptabilidad y desarrollo del hongo (Harman, 2011).

1.3 Repollo

1.3.1 Origen

El repollo fue una de las primeras plantas en ser domesticadas junto con la col crespa y

la col rábano desde el año 2500 a.c. (Jaramillo y Díaz, 2006). La familia botánica

Brassicaceae es nativa del Asia Occidental y Europa, con un ancestro común en una

planta silvestre del Mediterráneo o del Asia menor (Jaramillo y Díaz, 2006). El repollo es

originario específicamente de Europa (Inglaterra, Dinamarca, Francia, España, Holanda),

Asia Occidental y las Costas del Mediterráneo (Jaramillo y Díaz, 2006).

1.3.2 Fenología de la planta

El repollo es una planta anual, la cual forma una cabeza al final de su etapa vegetativa.

Su desarrollo comprende tres estadios principales: germinación (0), desarrollo de hojas

(1) y formación de órgano cosechable o cabeza (4) (Feller et al., 1995; Meier, 2001). Su

etapa reproductiva se conforma de cuatro estadios principales: Emergencia de la


Inflorescencia (5), desde el momento en que el brote interno de la cabeza inicia su

elongación hasta cuando los pétalos de la primera flor se hacen visibles, pero las flores

permanecen cerradas; Floración (6), desde cuando las primeras flores se abren

esporádicamente hasta que la mayoría de los pétalos se secan o se caen; los dos últimos

estadios comprenden la formación del fruto (7), maduración del mismo y de las semillas

(8) (Feller et al., 1995; Meier, 2001).

1.3.3 Morfología y Función de órganos vegetativos

El sistema radical está comprendido por una raíz principal pivotante que sirve de anclaje

a la planta, y de este se deriva un sistema fasciculado o de raíces secundarias (Valdivia

et al., 2006). Las raíces secundarias cumplen la función de tomar agua y nutrientes para

la planta (Valdivia et al., 2006). Entre los 5 y 30 cm de profundidad se encuentra

generalmente el 80% de las raíces (Valdivia et al., 2006). El tallo es herbáceo, erguido,

suculento, corto y poco ramificado, este adquiere una consistencia leñosa (Valdivia et al.,

2006). Su porte no sobrepasa los 30 cm de altura, debido a que el crecimiento en

longitud se detiene en una etapa fenológica temprana, aunque puede alcanzar de 50 a

100 cm de altura dependiendo de la variedad (Valdivia et al., 2006).

Las hojas son alternas, simples, sin estípulas, con frecuencia lobuladas de color verde

claro en el caso de repollo blanco (B. oleracea var. Capitata) o rojizas en el caso de

repollo rojo o Col Lombarda (B. oleracea var. rubra), de bordes ligeramente aserrados,

forma oval, y en el caso de las coles de Milán y repollo Savoy, son ásperas al tacto y de

aspecto rizado (Valdivia et al., 2006). Estas hojas crecen y se envuelven de una manera

muy apretada hasta formar el órgano comestible denominado cabeza, lo cual se debe a

una hipertrofia de la yema vegetativa germinal (Valdivia et al., 2006). La cabeza acumula

una reserva de nutrientes que son aprovechados por el consumidor (Valdivia et al.,

2006). Si la planta continúa con su desarrollo dichos nutrientes se movilizarían y se

metabolizarían para la emisión del tallo floral (Jaramillo y Díaz, 2006).


1.3.4 Morfología y Función de los órganos Reproductivos

Las flores se desarrollan a partir del tallo principal en racimos terminales (Marzocca,

1985). Estas son hipóginas y se componen de cuatro sépalos y cuatro pétalos, formando

una abertura terminal en forma de cruz, seis estambres, cuatro largos y dos cortos, un

estilo corto con estigma en forma de cabezuela, un ovario súpero con dos celdas

ovariales y un óvulo por celda (Marzocca, 1985). El ovario se divide en dos cavidades por

desarrollo de un falso tabique como resultado de la excrecencia de las placentas

(Jaramillo y Díaz, 2006). Cada ovario puede llegar a producir entre 20 a 30 semillas

(Jaramillo y Díaz, 2006).

El fruto es una silicua, la cual exhibe dehiscencia longitudinal a través de una hendidura

de las paredes a lo largo de la línea placentaria al momento de la madurez fisiológica,

para la dispersión natural de las semillas (Jaramillo y Díaz, 2006). La semilla es de forma

globular, con superficie lisa de un tamaño de 1,6 mm de diámetro y de color café en su

completa maduración (Jaramillo y Díaz, 2006). La floración y fructificación únicamente se

da en zonas con estaciones y bajo condiciones de temperatura baja (Valdivia et al.,

2006).

1.3.5 Valor nutricional

El repollo tiene un gran valor nutricional, que puede variar en algunos aspectos. La

cabeza comercial es una buena fuente de agua, vitamina C (ácido ascórbico), vitamina E

y minerales como el calcio y el potasio (IICA, 2006). Este producto podría no ser de

agradable consumo por algunas personas debido a su alto contenido de azufre (IICA,

2006). Las hojas de la cabeza se consumen frescas o cocidas, en ensaladas, sopas y

como acompañante o decorativo de otras comidas (IICA, 2006). Con el repollo se

prepara también el chucrut (sauerkraut), alimento originario de Asia, que consiste en la

fermentación del repollo cortado en pequeños trozos, en su propio jugo con la adición de

sal (IICA, 2006) (FAO, 2006).


Tabla 1. Composición nutricional del repollo en 100 g de producto fresco. Adaptado de Jaramillo y Díaz (2006) y FAO (2006).

1.3.6 Importancia Económica

El comercio mundial del repollo tiene gran relevancia. Entre el año 2000 y 2005, a nivel

mundial el área de producción creció en un 2,2% anual, aumentando de 2.750.000 ha a

3.127.000 ha; así mismo creció un 3,4% la producción incrementándose de 58.039.000

t•año-1 a 68.133.000 t•año-1 (CCI, 2007). Para el mismo periodo, las importaciones

crecieron de 2.548.000 t•año-1 a 3.225.000 con un crecimiento promedio anual del 4,1%

en el mundo (CCI, 2007). Por el contrario, las exportaciones tienen un mayor crecimiento

(6% promedio anual) con un aumento de 1.859.000 t•año-1 en el 2000 a 2.610.000 t•año-1

en el año 2005 (CCI, 2007).

En Colombia, no obstante, las cifras vienen en descenso. Entre el año 2000 y 2006, se

redujo el área productiva de 3.494 ha a 2.177 ha, mientras que la producción pasó de

120.766 t•año-1 a 135.456 t•año-1 en 2004, pero con un descenso a 51.000 t en 2006

(CCI, 2007). El repollo es el quinto producto hortícola de mayor consumo per cápita en

Colombia (3,3 kg.año-1) después del tomate, cebolla cabezona, cebolla de rama o junca y

la zanahoria (CCI, 2003). Por otra parte, el 80% del comercio y el consumo del repollo

nacional depende de la producción que se concentra en Cundinamarca, especialmente

en los municipios de Funza, Mosquera, Madrid y Facatativá (Jaramillo y Díaz, 2006).


1.3.7 Manejo del cultivo

Material de partida

Previo al inicio de la producción de repollo, es necesario seleccionar el material de

siembra el cual debe ser semilla certificada o registrada ante el ICA. El material debe

adaptarse a las condiciones agroecológicas de la zona de producción y satisfacer las

exigencias del mercado, para que se obtenga un buen rendimiento y producto de calidad

(Jaramillo y Díaz, 2006). En general, se buscan cultivares precoces, es decir que

presenten un ciclo de vida corto, crecimiento elevado de las pellas o cabezas que

faciliten su recolección, que presenten un color preferiblemente verde azulado, tamaños

variables con pesos que se encuentren entre los 800 y 1.500 g, siempre y cuando exista

uniformidad en estas características (Jaramillo y Díaz, 2006). Se prefieren cabezas bien

compactas, de tal forma que no se observen cámaras de aire en el interior (Jaramillo y

Díaz, 2006).

En este sentido, existen diversos tipos de repollo, como el repollo blanco de follaje liso y

compacto, el repollo morado de hojas arrugadas y menos compactas, la col de Milán o

repollo Savoy de hojas crespas (Jaramillo y Díaz, 2006). Los colores varían de verde

oscuro, verde claro, verde grisáceo a morado (Jaramillo y Díaz, 2006). Las formas varían

de redonda como el repollo “Bola Verde”, puntiaguda como el repollo “Corazón de Buey”,

ovalada o achatada (Jaramillo y Díaz, 2006).

Se distinguen variedades precoces, con un período vegetativo de hasta 90 días, y

cultivares intermedios con un período vegetativo entre 90-120 días (Jaramillo y Díaz,

2006). Sin embargo, en Colombia las variedades precoces se caracterizan por ser de

color verde muy claro, tener hojas quebradizas y cabezas “flojas” que las hacen

vulnerables a daños en el transporte y manipulación, tienden a florecer más rápidamente,

y son menos apetecidas por el consumidor (Jaramillo y Díaz, 2006). Los repollos rojos,

forman un grupo especial caracterizado por su coloración (debido a su presencia de

antocianinas), estos son de cabezas pequeñas pero muy compactas, con rendimientos

entre 85-95 t•ha-1; son más precoces que los repollos blancos, cosechándose entre los

85-94 días después del trasplante (Jaramillo y Díaz, 2006). Las variedades más

conocidas son: Red Acre, Red danish, Round Red Dutch, Mamuth Red Rocky y Ruby

batí, Sombrero Tenoro, Red Jewel, Azurro, Roxy, Grandour, Primero Normiro, Tequila,

Delus y Globe Master (Jaramillo y Díaz, 2006). Los repollos Savoy o col de Milán se


caracterizan por su color verde oscuro, hojas crespas, con venación sobresaliente y alto

contenido de fibra (Jaramillo y Díaz, 2006). Son generalmente de cabezas semiredondas

a redondas, y días a cosecha entre 90-107 días después del trasplante (Jaramillo y Díaz,

2006).

Diferentes casas comerciales ofrecen variados materiales de partida. Hoy en día se

siembran principalmente los híbridos Tequila y Delus, los cuales son los líderes del

mercado. Delus se caracteriza por ser de ciclo semi-tardío, pues se cosecha entre 115 y

120 días después del trasplante, tiene buena tolerancia a bajas temperaturas y es

medianamente resistente a la salinidad (Semillas Arroyave, 2007). Tequila es un material

de un color verde-azulado, con cabezas de mayor porte y con una resistencia intermedia

a la hernia de las crucíferas, lo que lo hace un híbrido apetecido en zonas con alta

densidad de inoculo del patógeno (Jaramillo y Díaz, 2006).

Condiciones climáticas y edáficas

En Colombia, el repollo se cultiva en zonas con alturas entre 1.600 y 2.700 msnm, y

temperaturas entre 4 y 23ºC, con un rango óptimo entre 14 a 22º C, no obstante, existen

cultivares que se desarrollan bien alrededor de los 30 ºC (Jaramillo y Díaz, 2006). El

repollo es el que muestra mayor tolerancia a las heladas de todas las crucíferas, sin

embargo, cuando se presentan temperaturas menores a 10 ºC persistentes por más de

una semana, se estimula la emisión del tallo floral en forma precoz, lo que genera la

pérdida del producto comercial (Jaramillo y Díaz, 2006). Cuando se utilizan variedades

adaptadas a clima frío y se presentan temperaturas mayores de 27 ºC, se retarda la

formación de la cabeza, dando lugar a cabezas pequeñas y de baja calidad (Jaramillo y

Díaz, 2006).

El repollo se puede desarrollar en casi todo tipo de texturas de suelo, no obstante se

desarrolla mejor en suelos de textura franca, profundos, con contenido de materia

orgánica de medio a alto, buen drenaje, buena retención de humedad y pH entre 5,5 y

6,5 (Jaramillo y Díaz, 2006). En las zonas frías de Colombia se cultiva esta planta en

suelos con mayor acidez a la indicada y es frecuente encontrar síntomas típicos de

deficiencia en fósforo y de elementos menores, lo cual disminuye el rendimiento y la

calidad del repollo; suelos con pH menor a 5,5 muestran problemas por carencias de


fósforo, potasio y magnesio (Nunez, 2000), así como una mayor incidencia y severidad

de Hernia de las crucíferas (Donald y Porter, 2004).

Etapa de Semillero

Inicia desde la siembra de la semilla hasta cuando se han formado plántulas de cuatro a

seis hojas verdaderas y una altura de 12 cm, lo cual tarda de 25 a 30 días después de la

siembra (Jaramillo y Díaz, 2006).

Los semilleros bajo condiciones protegidas son los más recomendados debido a la

capacidad de control de las variables climáticas (temperatura, humedad relativa,

precipitación), del sustrato y espacio empleado (calidad y tipo de sustrato, humedad,

nutrición, malezas, plagas y enfermedades), lo que garantiza una mayor emergencia y

sanidad de las plántulas (Jaramillo y Díaz, 2006). Estos se localizan en invernaderos

construidos en madera o metal.

Dependiendo de la variedad y el tamaño de la plántula, las semillas se siembran en

bandejas de 200 alveolos cónicos de 28 cm3 de volumen y con nervaduras verticales

para un buen direccionamiento y crecimiento de las raíces, lo que genera como ventaja

un uso racional y planificado de la semilla, así como un ahorro de espacio (Jaramillo y

Díaz, 2006). A su vez, estas bandejas se ubican sobre camas levantadas y aisladas del

suelo, en material de madera o concreto (Jaramillo y Díaz, 2006).

Los sustratos más empleados son compost, humus, cascarilla de arroz, fibra de coco,

aserrín, y turba (Jaramillo y Díaz, 2006). El compost aumenta la aireación y el contenido

de humedad, absorbe nutrientes como el nitrógeno y el potasio evitando su lavado y

liberando lentamente la solución en forma de nutrientes (Jaramillo y Díaz, 2006). La

cascarilla de arroz es económica, favorece la aireación, presenta baja retención de

humedad y capilaridad, y requiere una prueba previa de germinación para descartar

residuos de herbicidas (Jaramillo y Díaz, 2006). La fibra de coco contiene 2 ppm de boro

que pueden afectar el crecimiento y desarrollo de hortalizas, por lo cual se debe lavar

hasta llevar a 0,2 ppm. El aserrín tiene un pH generalmente ácido y se le debe hacer

prueba previa de germinación (Jaramillo y Díaz, 2006).

Etapa de producción en campo


Una semana antes del trasplante se debe preparar el terreno, realizando una poda e

incorporación de malezas que representan un aporte de nutrientes, pero también es

común realizar un control químico de arvenses con el uso de productos pre-siembra, en

caso de no haber sido empleado el método de solarización (Jaramillo y Díaz, 2006). Se

recomienda realizar además un pase de rastrillo y de arado, pero esto depende de las

condiciones de humedad, estructura y textura del suelo (Jaramillo y Díaz, 2006). Sin

embargo se debe garantizar un movimiento y aireación del suelo al menos entre 25 y 30

cm para garantizar un buen desarrollo de raíces (Jaramillo y Díaz, 2006).

El día del trasplante, el suelo debe permanecer a capacidad de campo para facilitar las

labores (Jaramillo y Díaz, 2006). Las plántulas se siembran comúnmente con una

densidad de entre 50.000 y 62.500 plantas•ha-1, con distancias de siembra de 40 cm

entre plantas y de 40-50 cm entre surcos (Jaramillo y Díaz, 2006). Este sistema se

establece en eras de 1,20 m de ancho y 0,2m de alto (Jaramillo y Díaz, 2006). Se debe

humedecer generosamente el semillero justo antes de extraer las plántulas, para evitar

daños y pérdidas. En campo se deben abrir hoyos del mismo tamaño del sistema radical

de la plántula y cuando la plántula se pasa a campo, el suelo debe afirmarse bien

alrededor de esta (Jaramillo y Díaz, 2006).

Máximo a los 20 días después del trasplante, preferiblemente al momento de la siembra

se recomienda realizar una fertilización en corona, la cual debe ser acompañada por un

aporque que permita incorporar el fertilizante cerca de la rizósfera de las plantas

(Jaramillo y Díaz, 2006). La época crítica de competencia por malezas en el cultivo está

alrededor de los primeros 45 días después del trasplante, donde hay desarrollo y

crecimientos de nuevas hojas (Jaramillo y Díaz, 2006). Por esta razón se recomiendan

dos desyerbas, la primera con el aporque durante la fertilización a los 20 días después

del trasplante y la segunda entre los 40 y 50 días después del trasplante (Jaramillo y

Díaz, 2006).

No se conoce exactamente los requerimientos hídricos del repollo, por lo cual es

necesario tomar continuos registros de precipitaciones, humedad del suelo y temperatura

que permitan tomar decisiones de riego (Jaramillo y Díaz, 2006). No obstante la

evapotranspiración media diaria de la planta es de 4mm/día (Jaramillo y Díaz, 2006). Se

pueden hacer uso tensiómetros para registrar la humedad del suelo, lo cual va a permitir

conocer cuando y cuanto regar en un determinado día para mantener el suelo a


capacidad de campo (Fueyo, 1998). En épocas secas, es necesario por lo menos un

riego semanal, especialmente durante la etapa de formación de cabeza (Jaramillo y Díaz,

2006).

Fertilización

Durante la etapa de semillero, se recomienda comúnmente aplicar en horas de la tarde,

un fertilizante soluble completo en agua, tratando de humedecer el sustrato (Jaramillo y

Díaz, 2006). El elemento más limitante en esta etapa es el fósforo, siendo la deficiencia

que más se expresa con una coloración púrpura en las hojas y plántulas enanas

(Jaramillo y Díaz, 2006). Cuando se presentan plantas enanas, acompañadas con

amarillamiento de las hojas se debe a deficiencia de nitrógeno, no obstante con un

manejo adecuado de la fertilización esta es una deficiencia poco usual (Microfertisa S.A.

2011).

Se recomienda realizar un análisis de suelo previo que permita establecer un plan de

fertilización adecuado (Microfertisa S.A. 2011). Los niveles de extracción del cultivo son:

175 kg·ha-1 de N, 69. kg·ha-1 de P, 200 kg·ha-1 de K, 120 kg·ha-1 de Ca, 23 kg·ha-1 de

Mg, 20 kg·ha-1 de S, 68 g·ha-1 de B, 14 g·ha-1 de Cu, 102 g·ha-1 de Zn, 417 g·ha-1 de Mn y

596 g·ha-1 de Fe, estos niveles de extracción son para un rendimiento promedio de 40

t·ha-1 (Microfertisa S.A. 2011). Con base en estos niveles extractivos y los resultados del

análisis de suelo, debe elaborarse el plan de fertilización repartiendo la misma

preferiblemente en dos abonadas, una a los 20 ddt y la otra a los 45 ddt (Microfertisa S.A.

2011).

Plagas y enfermedades

Las plagas más limitantes en la producción del repollo son lo perforadores de cabeza,

larvas denominadas por los agricultores como “gusanos cogolleros”, los cuales inician su

ataque principalmente entre la quinta y sexta semana después del trasplante, cuando la

planta presenta más de 10 hojas verdaderas e inicia la formación de la copa o cierre del

cogollo (Álvarez et al., 1995). Estas plagas inician su ataque en los bordes, por lo cual se

debe hacer un conteo de individuos en todos los estados de desarrollo (huevos, larvas,

pupas y adultos) en 20 plantas en el borde y 10 plantas en el centro del lote (Álvarez et

al., 1995). De acuerdo con esto, el umbral de acción para repollo comercial en estados


de desarrollo.planta-1 ó ED es de 0,5 en plántula, 1,3 en estado de desarrollo o formación

de hojas, 0,5 en etapa de cierre de cogollo y 0,5 en formación de cabeza (Londoño,

2005; citado por Jaramillo y Díaz, 2006).

En la Tabla 2, se presentan algunos de los problemas más limitantes (plagas y

enfermedades) y de importancia económica que afectan al repollo y a las crucíferas

cultivables en general (Jaramillo y Díaz, 2006). Dichos problemas requieren de un

manejo integrado que involucran prácticas de control cultural, químico, y biológico con el

fin de garantizar reducir la afectación del cultivo al mínimo sin pérdidas económicas

(Álvarez et al., 1995).

Por otra parte, se pueden presentar algunos desórdenes o daños que generan pérdida

de la calidad de la cabeza, debido a toxicidad por herbicidas, fungicidas o debido a

deficiencias comunes de algunos elementos menores como molibdeno, lo que causa la

llamada “Cola de látigo”, deficiencias de boro o botoneamiento (formación prematura de

la cabeza), entre otros (Jaramillo y Díaz, 2006).

Tabla 2: Algunas plagas y enfermedades que afectan el cultivo de repollo (Jaramillo y Díaz, 2006)

Problema Momento de ataque y condiciones favorables

Síntomas o forma de reconocer su presencia

Plaga del follaje

Polilla dorso de diamante:

Plutella xylostella (L)

Ataca durante el cierre del cogollo y durante la formación de cabeza. Presencia de residuos de cosecha y baja precipitación favorecen su desarrollo.

Las larvas se ubican en el envés de las hojas haciendo orificios de tamaño variable y contorno irregular. Secretan un hilo como mecanismo de defensa al ser perturbadas.

Plaga del follaje

Lepidópteros de la familia Noctuidae: Agrotis ipsilon y Spodoptera frugiperda.

Durante las dos primeras semanas después del trasplante.

Hojas dobladas con raspaduras o cortes sobre la superficie del suelo.

Molusco, plaga del follaje

Babosas: Doroceras caruanae, Milax gagates (Draparnaud) y Limax

Durante todo el ciclo del cultivo. Ataca durante la noche, es favorecido por charcos o humedad, residuos de cosecha y malezas

Orificios en hojas con hilos sedosos o huellas brillantes sobre el follaje.


maximus Muler hospederas.

Insectos plaga rizófagos y del follaje

Cucarrones marceños: Phyllophaga obsoleta Blanchard

Clavipalpus sp. pos. Ursinus (Coleoptera)

El estado de larva comúnmente denominada “Chiza” permanece siete meses. P. obsoleta se halla entre los 2000 y 2400 msnm, mientras que C. sp. pos. ursinus predomina a 2600 msnm. La acumulación de materia orgánica de origen animal atrae a los adultos para la postura.

Las larvas son atraídas por raíces tiernas y suculentas.

Los adultos perforan las hojas, dejándolas esqueletizadas. Las larvas se comen las raíces de las plantas y trozan los tallos al nivel del cuello causando raquitismo y muerte de las mismas.

Plaga del follaje

Cogollero o gusano del

corazón de las crucíferas: Copitarsia sp. pos. decolora

Peridroma sp. pos. saucia

(Noctuidae)

Residuos de cosecha son alimento para estas plagas, y les permite pasar de un ciclo a otro. Las etapas de cierre del cogollo y cabeceo conllevan a una acumulación de vitaminas y proteínas que representan un alimento de alto valor nutritivo. Las condiciones de clima cálido y seco favorecen la permanencia de la plaga y facilitan su desarrollo.

Presencia de excrementos de las larvas sobre las hojas, acompañado de raspaduras de la epidermis o mordeduras en las hojas cercanas al cogollo.

Presencia de perforaciones en las hojas indica la presencia de larvas grandes, en cuyo caso la plaga atraviesa dos o tres hojas y se localiza al interior de la última hoja perforada.

Plaga del follaje

Áfidos o pulgones:

Brevicoryne brassicae

El incremento de población en áfidos está favorecido por las condiciones secas, con baja precipitación.

Presencia de colonias sobre las hojas, constituidas por abundantes individuos, donde se deforman las hojas que conduce a una atrofia en la formación de la cabeza.

Enfermedad de la raíz

Hernia de la col:

Plasmodiophora brassicae Woron.

En cualquier momento de todo el ciclo del cultivo, suelos ácidos, mal drenados, temperaturas medias entre 20-23ºC. Se disemina por herramientas de trabajo, agua de riego y permanece en el suelo como esporas de resistencia.

Hernias en raíz principal y en raíces secundarias. Marchitez y muerte de plantas atacadas en estados tempranos. No formación de cabezas de tamaño y forma comercial cuando los ataques se presentan durante la


formación de cogollo y cabeza.

Enfermedad del follaje causada por hongo

Mancha de Anillo, Ojo de

Sapo: Mycosphaerella brassicicola (Duby) Lindau

Condiciones de humedad relativa alta, lluvias frecuentes y temperaturas entre 15 y 18 °C. El hongo M. brassicicola se disemina por el salpique del agua de lluvia, desde las lesiones viejas hacia las hojas nuevas sanas y por medio del viento. El patógeno sobrevive en residuos de cosecha y en semilla infectada.

Presencia de lesiones redondas de color gris oscuro con un leve margen clorótico, que bajo condiciones de humedad relativa alta, presentan en su centro pequeños puntos negros, que son las estructuras reproductivas del hongo. Ocasiona necrosis generalizada y defoliación severa.

Enfermedad del follaje causada por hongo

Mancha Gris, Mancha de Alternaria:

Alternaria brassicae (Berk.) Sacc.

Alternaria brassicicola (Schein.)

Ataca durante la etapa de formación de hojas y de cabeza. Lluvias constantes y las temperaturas entre 15 y 21 °C. Ambos patógenos se transmiten en las semillas y sobreviven en malezas de la familia de las crucíferas como el alpiste (B. rapa L.) y se diseminan por el salpique del agua de lluvia. La práctica de doblar las hojas de coliflor sobre las cabezas para el blanqueo de la misma pocos días antes de la cosecha, favorece la infección del hongo a las cabezas.

Lesiones anilladas de color café claro en hojas. En condiciones de cultivo, este patógeno infecta las hojas más viejas, donde se presentan lesiones redondas con marcados anillos concéntricos de color café claro al inicio y de color café oscuro a negro al final. El tamaño de las lesiones varía de 0,5 a 2 cm de diámetro y presentan perforaciones en su centro.

Enfermedad causada por bacteria

Quemazón Bacterial, Borde de Oro:

Xanthomonas campestris pv. campestris

Condiciones de clima frío moderado (15 a 18 °C) y HR ˃70%, altas densidades de siembra o riegos constantes. La bacteria causante de la enfermedad requiere una película de agua en las hojas para progresar y se disemina por el salpique del agua de lluvia, por corrientes de agua e insectos. El patógeno se transmite en la semilla. La bacteria penetra a la planta por aberturas naturales presentes en los márgenes de las hojas y por heridas. La bacteria X. campestris pv. campestris también sobrevive en malezas crucíferas, tales como, el

Se presenta en cualquier estado de desarrollo de los cultivos de crucíferas. En el semillero, el patógeno afecta las hojas produciendo un leve amarillamiento de las mismas, mientras que en el campo, los síntomas se inician en las hojas exteriores produciéndose amarillamientos en los bordes.


alpiste (B. rapa L.), la mostaza negra (B. nigra L.) y el lepidium (Lepidium sp.).

Poscosecha

Los repollos se cosechan cuando sus cabezas están bien formadas y firmes, de tal forma

que se recolectan manualmente o con máquinas, para luego ser empacados en sacos o

canastillas para transportarlos al centro de acopio o de acondicionamiento (IICA, 2006).

La cabeza de repollo cosechada debe cumplir con requisitos mínimos de calidad tales

como: cabeza entera, compacta (que soporte manipulación y transporte), limpia y sana

(sin rajaduras, plagas ni enfermedades), de aspecto fresco, ausencia de humedad

exterior, malos olores y sabores (IICA, 2006). Simultáneamente se debe realizar una

selección o descarte de repollos que no cumplan con la calidad mínima exigida (IICA,

2006).

El producto que cumpla con la calidad, debe ser pesado para conocer su cantidad y

rendimiento, posteriormente, se debe limpiar para eliminar la suciedad y los desechos de

cosecha, se lava con agua potable y desinfectantes (generalmente cloro a una

concentración de 200 ppm) (Camelo, 2003). Estos repollos se pueden clasificar de

acuerdo a su peso en repollos grandes (˃ 2000 g), medianos (801 a 2000 g) y pequeños

(500 - 800 g) (IICA, 2006).

Para su almacenamiento y conservación, el repollo debe ser preenfriado (con aire, con

agua o al vacío) inmediatamente para remover el calor proveniente del campo y así

retardar el deterioro fisiológico, la actividad metabólica y el crecimiento de

microorganismos, además de reducir la pérdida de humedad (Camelo, 2003). A su vez,

las cabezas se pueden empacar en sacos o costales de fique, con un peso máximo de

30 kg (IICA, 2006). El producto se puede empacar en cajas de madera, canastillas

plásticas y cajas de cartón de capacidad máxima de 20 kg. Cada producto se puede

empacar por separado en bolsas de polietileno (IICA, 2006).

Este producto empacado y preenfriado debe ser almacenado en refrigeración con una

temperatura de 0 a 2ºC y humedad relativa superior a 95%, lo que garantiza una vida útil


del producto fresco de 150 a 180 días (Camelo, 2003). También se puede almacenar en

atmósferas controladas con una concentración de 2 a 3% de O2 y 5% de CO2 (IICA,

2006). No se debe almacenar con frutas en maduración, ya que es una hortaliza muy

sensible al etileno (IICA, 2006). Es importante tener en cuenta que para conducir el

producto a los centros de acopio, a los mercados o a las industrias se debe hacer en

vehículos con buenas condiciones de higiene, debidamente carpados, en horas frescas

del día y sin mezclarlos con otros materiales, preferiblemente bajo condiciones de

refrigeración (Camelo, 2003).

Costos de producción

A continuación se presentan los costos de producción en una hectárea, para un

productor mediano de repollo en un ciclo de producción de cuatro meses, en la región

cundiboyacense (SIPSA, 2010).

Tabla 3: Costos de producción por hectárea de repollo (SIPSA, 2010)


1.4 Encalamiento

1.4.1 La acidez del suelo

Un ácido es una sustancia que tiende a liberar protones (Espinosa y Molina, 1999). La

acidez de una solución está determinada por la actividad de los iones hidrógeno (H+)

(Espinosa y Molina, 1999). Una vez se conocen estos principios, se encuentra que la

acidez en un suelo está determinada por medio de la medición de la actividad del H+ en

la solución del suelo y se expresa por medio del parámetro potencial hidrógeno (pH)

(Espinosa y Molina, 1999).


La escala del pH cubre un rango que va de 0 a 14 (Espinosa y Molina, 1999). Un valor de

7 es neutro (igual número de iones H+ y OH- en la solución), mientras que valores

menores a 7 son ácidos y valores mayores son básicos (Espinosa y Molina, 1999).

CLASIFICACIÓN DE LA ACIDEZ.

La acidez se clasifica con base en su origen en las siguientes tipologías

• ACIDEZ ACTIVA: Es el hidrógeno (H+) disociado en la solución del suelo y puede

provenir de diversas fuentes (Espinosa y Molina, 1999).

• ACIDEZ INTERCAMBIABLE: Son el hidrógeno y Aluminio intercambiable (H+ y

Al3+) retenidos en los coloides del suelo por fuerzas electrostáticas (Espinosa y

Molina, 1999).

• ACIDEZ NO INTERCAMBIABLE: Son los hidrógenos en enlace covalente en la

superficie de los minerales arcillosos de carga variable (Espinosa y Molina, 1999).

• ACIDEZ POTENCIAL: Consiste en la sumatoria de la acidez intercambiable con

la acidez no intercambiable (Espinosa y Molina, 1999).

1.4.2 Encalado

El encalado consiste en la aplicación al suelo de sales básicas que neutralizan la acidez

(Espinosa y Molina, 1999). Los materiales que se utilizan como alcalinizantes son

esencialmente carbonatos, óxidos, hidróxidos y silicatos de Calcio y/o magnesio (Mg)

(Espinosa y Molina, 1999). Debido a su diferente naturaleza química, esos materiales

exhiben variación en su capacidad de neutralización (Espinosa y Molina, 1999).

1.4.3 Materiales encalantes

Los principales materiales usados para el encalamiento de suelos se describen

brevemente a continuación:

• ÓXIDO DE CALCIO (CaO): También se conoce como cal viva o cal quemada, es

un polvo blanco de manejo difícil (Castro y Gómez, 2010). Cuando se aplica al

suelo reacciona de inmediato, razón por la cual es ideal cuando se desean

resultados rápidos (Castro y Gómez, 2010). Reacciona únicamente en suelos con

alta humedad (Castro y Gómez, 2010).


• HIDRÓXIDO DE CALCIO (Ca(OH)2): Este material se conoce como cal apagada

o cal hidratada (Espinosa y Molina, 1999). Es una sustancia blanca de rápida

reacción en suelos con buen contenido de humedad (Espinosa y Molina, 1999).

• CAL AGRÍCOLA O CALCITA: Este es el material más usado para encalar los

suelos y contiene principalmente carbonato de calcio (CaCO3) (Castro y Gómez,

2010).

• CAL DOLOMITA (CaCO3·MgCO3): El material puro contiene 21,6% de Ca y

13,1% de Mg (Castro y Gómez, 2010). Pese a que este material reacciona más

lentamente que la cal agrícola tiene la ventaja de proporcionar Mg al suelo,

elemento normalmente deficiente en suelos ácidos (Castro y Gómez, 2010).

• ÓXIDO DE MAGNESIO (MgO): Este material presenta una muy alta capacidad

neutralizante, no obstante es poco soluble en agua, razón por la cual se debe

moler para tener una mayor superficie de contacto que facilite la neutralización de

la acidez (Espinosa y Molina, 1999).

• MAGNESITA: Es un producto a base de carbonato de Magnesio (MgCO3). En su

forma pura posee un contenido de Mg de 28,5% (Castro y Gómez, 2010).

• ESCORIAS INDUSTRIALES: Son residuos de la industria del acero (escorias

básicas) y la fundición del hierro (Escorias Thomas) (Espinosa y Molina, 1999).

Los dos contienen silicatos de calcio y silicatos de magnesio y neutralizan la

acidez del suelo a través de la hidrólisis del ión silicato. Su capacidad de

neutralización es similar a la de la calcita (Espinosa y Molina, 1999).

1.4.4 Calidad de los materiales encalantes

La calidad de los materiales encalantes está definida esencialmente por la pureza del

material, la forma química, el tamaño de las partículas y el poder relativo de

neutralización total (Espinosa y Molina, 1999). La Pureza química reconoce la

composición química de los materiales y los contaminantes presentes (Espinosa y

Molina, 1999). Para determinar la pureza se utiliza el criterio del equivalente químico

(EQ) que es una medida del poder de neutralización de una cal en particular. Este

mide la capacidad del material de neutralizar en comparación con el poder de

neutralización del CaCO3 químicamente puro al cual se le asigna un valor de 100%

(Castro y Gómez, 2010).


El tamaño de partícula determina la capacidad de reacción, luego a medida que se

reduce el tamaño de la partícula se incrementa el área o superficie de contacto, lo

que incrementa la capacidad de reacción del material y con esta su capacidad de

neutralización (Castro y Gómez, 2010).

El Poder relativo de neutralización total valora en forma conjunta la pureza química y

la fineza de los materiales de encalado, esto se ejecuta por medio del índice de

eficiencia conocido como PODER RELATIVO DE NEUTRALIZACIÓN (PRNT)

(Espinosa y Molina, 1999). Este parámetro se obtiene multiplicando la eficiencia

granulométrica por el equivalente químico y este producto se divide en 100 (Espinosa

y Molina, 1999). El PRNT indica que porcentaje de la cal expresada por su EQ, es

capaz de reaccionar en un lapso de 3 meses (Castro y Gómez, 2010).

1.4.5 Reacción de la cal en el suelo

Los mecanismos de reacción de los materiales encalantes permiten la neutralización

de los iones H+ en la solución del suelo por medio de los iones OH- producidos al

entrar la cal en contacto con el agua del suelo (Castro y Gómez, 2010). Por tal razón

la cal es efectiva solamente cuando existe humedad en el suelo (Castro y Gómez,

2010).

1.4.6 Determinación de los requerimientos de cal

El pH, es un buen indicador de la acidez, no obstante, este parámetro no determina el

requerimiento de cal para llegar al rango de pH requerido en el sistema de producción

que se está desarrollando (Espinosa y Molina, 1999). La mayor parte de la acidez en

los suelos tropicales proviene del Al3+ (Castro y Gómez, 2010). La saturación de

acidez y la saturación de Al3+ determinan el porcentaje del complejo de intercambio

catiónico que está ocupado por Al3+ e H+ o por AL3+ solamente. Tales valores

configuran los mejores criterios para diagnosticar problemas de acidez (Castro y

Gómez, 2010).


Históricamente se han propuesto varios métodos para la determinación de la cantidad

del material encalante a utilizar, siendo los principales los que a continuación se

describen:

• MÉTODO DE COCHRANE, SALINAS Y SÁNCHEZ (1980): Esta es la fórmula

más sencilla, pues toma en cuenta la neutralización de parte del porcentaje de

saturación de acidez en relación con la CICE del suelo la cual se multiplica por

una constante, con la cual se cubren los factores que limitan la eficiencia de la

reacción química de la cal en el suelo (calidad del material encalante, reacciones

paralelas en el suelo y el Al no intercambiable proveniente de la materia orgánica)

(Espinosa y Molina, 1999).

CaCO3( tha )=1,8 (Al−PRS )(CICE)

100

Al= % de Al intercambiable existente en el suelo

PRS= Porcentaje de saturación de acidez deseado.

CICE= Capacidad de intercambio catiónico efectiva.

• MÉTODO DE VAN RAIJ: El principio de esta fórmula es el mismo que el anterior,

sólo que está expresado en términos de saturación de bases en lugar de acidez,

además incluye el factor f el cual está referido a la calidad del material encalante

(Espinosa & Molina, 1999).

CaCO3( tha )= (V 1−V 2 ) (CICE )

100∗f

V1= Porcentaje de saturación de bases deseado

V2= Porcentaje de saturación de bases que presenta el suelo


f= 100/PRNT

PRNT= Poder relativo de neutralización total.

• MÉTODO COMBINADO: Ésta fórmula modificada combina los criterios práctico

de las dos fórmulas anteriores (Espinosa & Molina, 1999). Se expresa en términos

de porcentaje de saturación de acidez además de involucrar el factor f de la


calidad del material encalante (Espinosa & Molina, 1999). La formula se presenta

a continuación:

CaCO3( tha )=1,5 (Al−PRS )(CICE)

100∗f

Al= Porcentaje de saturación de Al actual

PRS= Porcentaje de saturación de Al deseado


f= 100/PRNT

PRNT= Poder relativo de neutralización total.

1.4.7 Encalamiento y manejo de enfermedades de suelo

Los microorganismos y su actividad se distribuye de forma heterogénea entre los

agregados del suelo (Janusaukaite et al., 2009). Su distribución puede cambiar en

respuesta al tipo de suelo, textura y contenido de materia orgánica (Janusaukaite et al.,

2009). La organización estructurada de las partículas del suelo proveen un hábitat

heterogéneo para los microorganismos, el cual está caracterizado por diferentes

sustratos, nutrientes, concentraciones de oxígeno, contenido de agua y diversos valores

de pH (Janusaukaite et al., 2009). Dadas estas condiciones, vemos como el desarrollo

de los microorganismos está altamente determinado por el pH del medio en el cual se

desarrollan. Alteraciones del pH óptimo de desarrollo pueden implicar una disminución en

el crecimiento e infección de los organismos.

En estudios realizados por Janusaukaite et al. (2009), encontraron un mayor desarrollo

de hongos fitopatógenos en medios ácidos, lo que justifica el uso de materiales

encalantes para el manejo de los mismos en diversos sistemas de producción. Diversos

estudios, han demostrado el efecto positivo del encalamiento para el control del

enfermedades de suelo, dentro de las cuales se destacan Amillaria mellea en coníferas,

donde en estados tempranos de la planta se disminuye la infección y muerte en medios

de desarrollo tratados con materiales encalantes (Singh, 1983). En caña de azúcar

también se encontró una disminución del damping-off causado por Rhizoctonia solani

Kühn en pH entre 6 y 7,5 ya que el desarrollo micelial del patógeno se da en un pH

óptimo entre 4 y 4,5 (Watanabe et al., 2011). También se ha visto el efecto del


incremento del pH en el control de P. Brassica, patógeno para el cual se encontró que si

el pH se sube de 4,3 - 5,5 hasta 6,2-7,3 la severidad de la enfermedad se reduce hasta

un 20% en plantas de col china (B. rapa var. pekiniensis) inoculadas con 1,2·107 hasta

5·107 esporas·mL-1, así mismo la masa seca foliar y la masa seca radicular aumentan 1,5

y 2,5 g·planta-1 respectivamente, todo esto 45 ddi (Ruaro et al., 2010). Finalmente, se ha

encontrado que la aplicación de cal incrementa el pH del suelo, lo cual disminuye la

germinación de clamidosporas de Fusarium oxysporum en plantas de banano (Peng et

al., 1999).

En resumen, puede concluirse que el encalamiento es una técnica empleada desde

tiempos remotos para el manejo de diversas enfermedades gracias a que afecta el medio

óptimo de desarrollo del agente causal.

2.Materiales y métodos

2.1 Localización geográfica

El ensayo se llevó a cabo en dos etapas principales: la primera etapa corresponde a la

plantulación en semilleros llevado a cabo durante 30 días en el invernadero de

propagación de la Facultad de Agronomía de la Universidad Nacional de Colombia,

desde septiembre de 2012. La segunda etapa fue en campo, en el lote cuatro del Centro

Agropecuario Marengo localizado en el municipio de Mosquera (Cundinamarca), en el

cual se encuentra reportada la enfermedad en estudio. La fase de campo se realizó

desde el 6 de octubre de 2012 hasta el 11 de enero del 2013. El CAM presenta una

precipitación media anual entre 500 y 1000 mm y una temperatura promedio de 14 ºC,

características que junto con la relación de evapotranspiración potencial (1-2), permite

clasificar esta zona de vida como Bosque Seco Montano Bajo (bs-MB) (Holdridge, 1987)

(Espinal, 1990).

2.2 Material Vegetal

Se emplearon semillas de repollo (B. oleracea) variedad Corazón de Buey con un

porcentaje de germinación del 90%. Este material completa su ciclo de vida 90 días

después del trasplante. Las cabezas pesan de 2 a 2,5 kg, y las plantas son altamente

susceptible al patógeno P. brassicae, características que lo hacen óptimo para la

presente investigación.

2.3 Etapa de semillero

Esta etapa tuvo una duración de 30 días. Se sembraron alrededor de 1.800 semillas de

repollo en 25 bandejas plásticas para germinación. El sustrato empleado fue turba estéril;

se mantuvo una adecuada fertirrigación diaria mediante una solución nutritiva Hoagland

(Tuite, 1969), esto con el fin de garantizar un crecimiento y desarrollo homogéneo, así

como la sanidad de las plántulas.

2.4 Preparación de las plántulas para el trasplante

Dos días antes del trasplante se suspendió la fertirrigación de las plántulas con el fin de

facilitar las labores de extracción y transporte de las mismas. En el día 30 se empacaron

grupos de plántulas en bolsas plásticas transparentes de 30 x 15 cm, estas a su vez

fueron empacadas en cajas de cartón para el posterior transporte a campo.

2.5 Trasplante y establecimiento del cultivo

Se trasplantaron en total 1440 plántulas, las cuales se sembraron en 30 unidades

experimentales, con una distancia de 40 cm entre plantas y 60 cm entre hileras. Las

márgenes fueron de 20 cm, lo cual representó una densidad de 4,8 planta·m-2 ·unidad

experimental-1. El lote del ensayo se encuentra ubicado en el lote cuatro del CAM, sus

dimensiones son de 10,8 • 55,6 m para un área total de 600,5 m2.

2.6 Diseño experimental, análisis estadístico y tratamientos.

En campo se empleó un diseño experimental de Bloques Completos al Azar, siguiendo el

gradiente de humedad característico del lote. Para el análisis de los datos se realizó un

análisis no paramétrico. Para comparar los tratamientos se utilizó la prueba de Friedman.

Se realizó un análisis de varianza y una prueba de Tukey a un nivel de confianza del 95%

(α=0,05) para las variables donde se presentaran diferencias significativas. Dado el

análisis empleado, los resultados y gráficas presentadas corresponden a las medianas

de los valores de cada una de las variables, en cada tiempo y tratamiento. Se empleó un

análisis de correlación entre tratamientos mediante el método de Spearman.

Para la selección de las variables a estudiar se realizó un análisis de componentes

principales, el cual con un porcentaje acumulado del 95% de la variación permitió la

identificación de cuatro componentes. El primer componente retuvo el 64% de la

variación y representa la mayor parte de las variables (altura, pesos frescos y pesos

secos); el segundo que retuvo el 14% de la variación representa el peso seco de la parte

Materiales y Métodos 43

aérea y el contenido de agua de la parte aérea; el tercer componente retuvo el 11% de la

variación representa la proporción de masa seca de la raíz y contenido de agua de la

raíz, y finalmente el cuarto componente retuvo el 6% de la variación y representa a la

incidencia y severidad.

Para los análisis y discusiones finales, se seleccionó una variable de cada componente,

la cual corresponde a la de mayor valor dentro del mismo. Las variables seleccionadas

para cada componente se detallan a continuación:

Componente 1: Masa Seca de la Raíz

Componente 2: Masa Seca de la Parte Aérea

Componente 3: Proporción de Masa Seca de la Raíz

Componente 4: Incidencia y Severidad

Aquellas variables que no retuvieron un porcentaje significativo de la variación y debido a

que presentan una alta correlación entre sí (98-99%), no se incluyen estrictamente para

fines de discusión.

Se aplicaron seis tratamientos a describir: T0 (control sin aplicación de enmiendas); T1 (1

t•ha-1 de cal dolomita); T2 (2,1 t•ha-1 de cal dolomita); T3 (tres aplicaciones quincenales

de 200 g•ha-1 de Tricotec (T. koningiopsis (Th003 )); T4 (1 t•ha-1 cal dolomita + tres

aplicaciones quincenales de 200 g•ha-1 de Tricotec) y T5 (2,1 t•ha-1 cal dolomita + tres

aplicaciones quincenales de 200 g•ha-1 de Tricotec). De cada tratamiento se

establecieron cinco repeticiones, para un total de 30 unidades experimentales. Cada una

contaba con un área de 10 m2 con las siguientes dimensiones: 10 metros de largo por un

metro de ancho. A su vez las unidades experimentales se encontraban separadas a 80

cm entre sí para fines prácticos de movilidad, realización de muestreos, labores de

mantenimiento, entre otros.

2.7 Tratamientos

Para efectuar el ensayo se utilizó Tricotec (Producto comercial que contiene Trichoderma

koningiopsis (Th003) con una concentración de 1·109 ufc·g-1, con recomendación

44 Manejo de la hernia de la col (Plasmodiophora brassicae Woron) en el cultivo de repollo (Brassica oleracea L.) en el Centro Agropecuario Marengo

(CAM)

comercial de aplicación de 15g·m 2 en semillero o 200g·ha -1) en los tratamientos T3, T4 y

T5. La aplicación del producto se llevó a cabo cada 15 días en las bandejas de

plantulación con la dosis recomendada por el fabricante y 15 días después del trasplante.

En campo se empleó la dosis comercial de 200 g de producto ha -1. Se utilizó una

cantidad de agua de 200 l·ha-1 para la dilución y aplicación del producto. La aplicación en

invernadero se realizó planta a planta inyectando 5 ml de solución por medio de una

jeringa directamente al sustrato.

La aplicación en campo se realizó con bomba de espalda de 20 litros sin boquilla cuya

descarga era de 94 ml·seg-1, la aplicación se realizó en drench con un total de 567 litros

de agua·ha-1, con una dosis de 200 g del producto·ha-1. Dichas aplicaciones se realizaron

en horas de la mañana entre las 7:00 y 8:00 am, con el fin de garantizar una buena

incorporación del producto.

La dosis de cal con base en el análisis de suelos (Laboratorio Suelos Facultad de

Agronomía, 2012) (ver anexo D) se determinó con el uso de la fórmula que sigue:

t CaCO3=¿ SB2−SB1

100×CIC ×f ¿

Donde:

f= 100PRNT

PRNT=90

SB2=Saturación debases deseada

SB1=Saturación debases del análisis de suelos

CIC=Capacidad de intercambio catiónico

Para los tratamientos con dosis comercial de cal se empleó la dosis de 1 t·ha-1 de cal

dolomita. La aplicación de cal dolomita se realizó un mes antes del trasplante, la cual fue

incorporada con un pase de rotovator. Los tratamientos en los cuales se llevó aplicación

de cal fueron T1, T2, T4 y T5.


2.8 Muestreo de plantas

Se realizaron siete muestreos separados entre sí por 15 días iniciando 15 días después

del trasplante. Los muestreos cubrieron la duración del ciclo del cultivo, es decir un total

de 105 días. En cada uno de estos se evaluaron cinco plantas por unidad experimental,

equivalente a 25 plantas por tratamiento para un total de 150 plantas por muestreo. Las

variables respuesta se presentan a continuación:

2.8.1 Incidencia de la enfermedad

La evaluación la variable se realizó cada 15 días a partir del momento del trasplante

hasta la cosecha, en una muestra de cinco (5) plantas por unidad experimental, a las

cuales se les hizo una valoración de las raíces, cuantificando el número de plantas

enfermas con respecto al total de individuos evaluados. Los resultados de esta variable

se muestran en valores porcentuales.

2.8.2 Severidad de la enfermedad

Esta variable se evaluó empleando la escala propuesta por Wang et al. (2012), (Figura

2) donde 0=ausencia de síntomas, 1= Presencia de agallas únicamente en raíces

fibrosas, 3= presencia de pequeñas agallas en raíces laterales, 5= Agallas en raíces

secundarias o pequeñas agallas en raíz principal, 7= Abundante cantidad de agallas de

gran tamaño en raíces secundarias o agallas presentes en la raíz principal, 9= agallas

severas en raíz principal que conducen a la degradación parcial de la raíz que conduce la

planta a un estado cercano a la muerte.

La variable se evaluó cada 15 días a partir del momento del trasplante hasta la cosecha.

Dicha variable fue registrada con soporte fotográfico a cada una de las plantas.


(CAM)

Figura 2. Escala de severidad de “Hernia de las crucíferas” (Plasmodiophora brassicae) de plantas de repollo crecidas en el segundo semestre de 2012 en el CAM. Escala establecida de acuerdo con Wang et al (2012): 0=ausencia de síntomas, 1= Presencia de agallas únicamente en raíces fibrosas, 3= presencia de pequeñas agallas en raíces laterales, 5= Agallas en raíces secundarias o pequeñas agallas en raíz principal, 7= Abundante cantidad de agallas de gran tamaño en raíces secundarias o agallas presentes en la raíz principal, 9= agallas severas en raíz principal que conducen a la degradación parcial de la raíz que conduce la planta a un estado cercano a la muerte.


2.8.3 Fenología

Este parámetro se evaluó de acuerdo con la escala fenológica BBCH establecida por

Meier (2001). Se tuvieron en cuenta tres estadios principales: Germinación (0: desde 00

como semilla seca hasta 09 referido a emergencia de los cotiledones), Desarrollo de

Hojas (1: desde estadio secundario 10 referido a cotiledones completamente expandidos


(CAM)

con inicio de punto de crecimiento de la primera hoja verdadera visible hasta estadio

secundario 19 referido a nueve o más hojas verdaderas expandidas) y Formación de

Cabeza (4: desde estadio secundario 41 referido al inicio de formación de cabeza donde

las dos hojas más jóvenes no se expanden hasta estadio secundario 49 referido a

formación de cabeza comercial con forma, peso y firmeza típica). Este parámetro fue

evaluado en todos los muestreos.

2.8.4 Altura de la planta

Esta variable se midió empleando una cinta metrica a partir de la base del tallo hasta la

región apical de la planta. Los resultados se presentan en unidades de centímetros (cm).

Esta variable se midió en todos los muestreos.

2.8.5 Peso fresco de parte aérea y de raíz

Esta variable se midió utilizando una balanza de precisión en campo. La muestra para

esta variable fue de cinco (5) plantas por unidad experimental y se evaluó en todos los

muestreos.

2.8.6 Peso seco de parte aérea y de raíz

Se midió tras secar en una estufa a 70 ºC durante 168 horas el material vegetal, luego de

lo cual se pesó en una balanza de precisión. La muestra para esta variable fue de 5

plantas por unidad experimental. La variable se evaluó cada 15 días a partir del momento

del trasplante hasta la cosecha.

2.8.7 Proporción de masa seca aérea y de raíz

Con base en lo valores de masa seca de raíz y de la parte aérea se calculó la proporción

de materia seca de raíz respecto del peso fresco de raíz, así como la proporción de masa

seca de la parte aérea con respecto al peso fresco de la parte aérea, empleando la

siguiente fórmula:

Proporción demateria seca=Pesoseco(g)Peso fresco(g)


2.9 Variables evaluadas en suelo

2.9.1 Evolución del pH del suelo

Esta variable se midió con un potenciómetro en una solución suelo:agua 1:1. La medición

se llevó a cabo con el uso de suelo extraído de cada uno de los tratamientos luego del

encalado. Este suelo se colocó en macetas en el cuarto de crecimiento de la universidad

Nacional, donde se mantuvieron con una temperatura promedio de 18°C y con humedad

constante (suelo a capacidad de campo). La evaluación se llevó a cabo cada semana,

mediciones a partir de las cuales se realizó una curva que permitió conocer la evolución

del pH en cada uno de los tratamientos.

2.9.2 Aislamiento y cuantificación de Trichoderma spp.

A los 90 días después del trasplante, se tomaron muestras de suelo rizosférico de las 25

plantas extraídas (tanto en plantas con presencia de hernias como de plantas sanas) por

cada tratamiento, es decir un total de 150 muestras de suelo rizosférico. Las 25 muestras

de cada tratamiento se homogenizaron por separado en un balde limpio y se tomó una

muestra de 500 g por cada tratamiento, teniendo finalmente 6 muestras diferentes, que

luego se empacaron en bolsas plásticas marcadas. Estas muestras se conservaron por

2 días en cuarto frío a una temperatura de 4ºC y posteriormente fueron llevadas al

laboratorio de Biotecnología Vegetal de la facultad de Agronomía de la Universidad

Nacional de Colombia, sede Bogotá.

El procesamiento de las muestras se realizó homogenizando cada muestra de suelo y

tomando una submuestra de 10 g. La submuestra se colocó en 90 ml de agua destilada

estéril y se agitó durante 25 minutos para seguir el procedimiento de dilución estándar o

dilución en base 10. Se tomó una alícuota de 1 ml que se diluyó en un tubo de ensayo

con 9 ml de agua destilada estéril. Estas diluciones se continuaron por cuatro veces

consecutivas para cada tratamiento alcanzando una relación de dilución suelo:agua de

1:10000 (p/V). De esta dilución se tomaron alícuotas de 50 µL con tres repeticiones para

cada tratamiento, que se depositaron en medio de cultivo selectivo para Trichoderma

spp. (solución de 0,05 g.L-1 Rosa de Bengala + 0,05g.L-1 cloranfenicol + 39g.L-1 PDA

previamente autoclavado a 250 ºC por 2 horas). Las cajas Petri fueron incubadas en


(CAM)

cámara de crecimiento para hongos (Lab-line ® Biotronette Plant Growth Biochamber) a

una temperatura de 22 ± 4 °C. Posteriormente, se cuantificaron las unidades formadoras

de colonia en cada una de las cajas Petri a los 8 y a los 15 días. Los resultados se

expresaron en unidades de ufc.g de suelo-1, a partir de la siguiente ecuación:

UFC .gde suelo−1=(Dilución ) • (1000µL )• ¿colonias encontradasen lacajaalícuota

UFC .gde suelo−1=(10000 ) • (1000µL )• ¿colonias encontradasen la caja50µL

El criterio de aislamiento e identificación de Trichoderma spp. fue considerar la presencia

de esporulación verde típica del género (Barnett y Hunter, 1972; Bissett, 1991; citado

por Hoyos et al., 2009).

3.Resultados

Para la selección de las variables a estudiar se realizó un análisis de componentes

principales, el cual con un porcentaje acumulado del 95% de la variación permitió la

identificación de cuatro componentes. El primer componente retuvo el 64% de la

variación y representa la mayor parte de las variables (altura, pesos frescos y pesos

secos); el segundo que retuvo el 14% de la variación representa el peso seco de la parte

aérea y el contenido de agua de la parte aérea; el tercer componente retuvo el 11% de la

variación representa el porcentaje de masa seca de la raíz y contenido de agua de la

raíz, y finalmente el cuarto componente retuvo el 6% de la variación y representa a la

incidencia y severidad.

Para los análisis y discusiones finales, se seleccionó una variable de cada componente,

la cual corresponde a la de mayor valor dentro del mismo. Las variables seleccionadas

para cada componente se detallan a continuación:

Componente 1: Masa Seca de la Raíz

Componente 2: Masa Seca de la Parte Aérea

Componente 3: Proporción de Masa Seca de la Raíz

Componente 4: Incidencia y Severidad

Aquellas variables que no retuvieron un porcentaje significativo de la variación y debido a

que presentan una alta correlación entre sí (98-99%), no se incluyen estrictamente para

fines de discusión. Para efectos de información generada y comparación de tratamientos

se realiza una breve descripción escrita, representación gráfica y tabulada de las

mismas. Entre estos se destacan: Fenología, altura, pesos frescos y pH principalmente.

3.1 Incidencia

Siempre se presentó una mayor presencia de la enfermedad (incidencia) en plantas del

tratamiento Testigo y plantas del tratadas con 2,1t·ha-1 y T. koningiopsis a lo largo del

ciclo del cultivo.

Entre los 45 ddt y los 105 ddt hubo presencia de hernias en las raíces, los valores de

incidencia fueron: 44% a 56% con promedio de 36,57% en plantas Testigo, entre 56% a

72% con promedio de 43,43% en plantas tratadas con 2,1 t·ha-1 y T. koningiopsis, entre

el 28% al 60% con promedio de 28,6% en plantas del con encalamiento de 1 t·ha-1, entre

el 24% al 60% con promedio de 25,14% en plantas con aplicación de 2,1 t·ha-1, entre el

20 y el 48% con promedio de 22,9% en plantas con aplicación de T. koningipsis y entre el

20 y el 36% con promedio del 18,3% en plantas con dosis comercial de cal y

Trichoderma (Figura 3).

Se presenta un comportamiento ascendente hasta los 60 ddt en todos los tratamientos.

Entre los 60 y 90 ddt, se redujo la incidencia de la enfermedad en plantas con aplicación

de Trichoderma, para luego subir a los 105 ddt. En plantas Testigo y plantas de con

dosis calculada de cal y T. koningipsis se presentó un ligero descenso de la incidencia y

severidad de la enfermedad entre los 75 y 90 ddt, para luego subir hasta los 105 ddt.

Estos comportamientos de descenso de incidencia y severidad resultan incoherentes y

complejos de explicar dada la naturaleza de los síntomas, en los cuales las agallas

presentes frenan o continúan su crecimiento, pero permanecen presentes como mínima

posibilidad.

La incidencia de la enfermedad en promedio se cuadruplicó en todas las plantas desde el

periodo de formación de hojas (0 a 45 ddt) hasta la formación de la cabeza comercial (60

ddt a 105 ddt) (Figura 4). Este parámetro se incrementó por un factor de al menos 3,

observándose que el mayor aumento de la incidencia de la enfermedad se presentó en

plantas del con dosis calculada de cal y T. koningipsis (aumento del 43%), mientras que

Resultados 53

el menor se presentó en plantas con T. koningipsis y dosis comercial de cal (aumento del

20,3%).

Figura 3. Incidencia de la Enfermedad entre los 15 y 105 días después del trasplante (ddt) de plantas de repollo crecidas en el lote cuatro del CAM. Medianas con igual letra son estadísticamente iguales bajo prueba de Tukey aplicada a rangos (p˂0,05).

15 ddt 30 ddt 45 ddt 60 ddt 75 ddt 90 ddt 105 ddt0

10

20

30

40

50

60

70

80

ab

bb

ab

a

a

T0 T1T2 T3T4 T5

ddt

INCI

DEN

CIA

DE LA

EN

FERM

EDAD

(%)

Figura 4. Incidencia de la enfermedad durante el desarrollo de hojas (DH: 15 a 45 ddt) y durante la formación de cabeza (FC: 60 a 105ddt) entre los 15 y 105 días después del trasplante (ddt) de plantas de repollo crecidas en el lote cuatro del CAM.

T0 T1 T2 T3 T4 T50.0

10.0

20.0

30.0

40.0

50.0

60.0

70.0

14.79.3 8.0 10.7

6.7

18.7

53.0

43.038.0

32.0 35.0

62.0DH

FC

Tratamiento

Incid

encia

(%)

5

4

Manejo de la hernia de la col (Plasmodiophora brassicae Woron) en el cultivo de repollo (Brassica oleracea L.) en el Centro Agropecuario Marengo (CAM)

3.2 Severidad

Hasta los 30 días después del trasplante no se observaron síntomas de la enfermedad

). Entre los 30 y 60 ddt se presentó una tendencia creciente de la severidad de la

Enfermedad.

Hasta los 60 ddt y a los 90 ddt no se presentaron diferencias significativas entre el nivel

de severidad de las plantas de todos los tratamientos (Tabla 4). A los 75 ddt se

presentaron diferencias significativas de severidad únicamente entre plantas tratadas con

T. koningipsis y aquellas con aplicación del hongo y cal en dosis calculada, mientras que

a los 105 ddt, se presentaron diferencias significativas las plantas con 2,1 t·ha -1 respecto

de las medianas de severidad de plantas Testigo y aquellas con aplicación conjunta de

Trichoderma y 2,1 t·ha-1 (Tabla 4). Entre los 45 ddt y los 105 ddt plantas crecidas bajo

aplicación conjunta de Trichoderma y 2,1 t·ha-1 presentaron los mayores valores de

severidad (3 a 7), con una tendencia creciente entre los 30 ddt y los 75 ddt, reduciéndose

estos valores a los 90 ddt para volver a subir a los 105 ddt.

Figura 5. Evolución de la severidad de “Hernia de las crucíferas” entre los 15 y 105 días después del trasplante (ddt) de plantas de repollo crecidas en el lote cuatro del CAM. Medianas con igual letra son estadísticamente iguales bajo prueba de Tukey aplicada a rangos (p˂0,05).

15 ddt 30 ddt 45 ddt 60 ddt 75 ddt 90 ddt 105 ddt0

1

2

3

4

5

6

7

8

aab

b

ab

b

a aT0 (Testigo)T1 (1 t/ha cal)T2 (2,1 t/ha cal)T3 (Tricho Tec)T4 (1 t/ha cal + Tricho Tec)T5 (2,1 t/ha cal + tricho Tec)

ddt

Sev

erid

ad (M

edia

nas)

Las plantas de todos los tratamientos presentaron valores de severidad comprendidos en

la escala de severidad entre 0 y 9, sin embargo, los valores más representativos para

Resultados 55

cada uno de los tratamientos corresponden a los expuestos en la Figura 8 y la Tabla 4,

y en las ilustraciones presentadas (ver anexo A) por tratamiento (ver anexo B).

Tabla 4. Severidad de “Hernia de las crucíferas” entre los 15 y 105 días después del trasplante (ddt) de plantas de repollo crecidas en el lote cuatro del CAM. Letras diferentes representan diferencias significativas. Medianas con igual letra son estadísticamente iguales bajo prueba de Tukey aplicada a rangos (p˂0,05).

Tratamiento 15 ddt 30 ddt 45

ddt

60 ddt 75 ddt 90 ddt 105 ddt

T0 (Testigo) 0 a 0 a 0 a 0 a 3 ab 1 a 3 a

T1 (1 t/ha cal) 0 a 0 a 0 a 0 a 3 ab 3 a 0 ab

T2 (2,1 t/ha cal) 0 a 0 a 0 a 0 a 0 ab 3 a 0 b

T3 (Tricho) 0 a 0 a 0 a 0 a 0 b 0 a 0 ab

T4 (1 t/ha cal + Tricho) 0 a 0 a 0 a 0 a 1 ab 0 a 0 ab

T5 (2,1 t/ha cal + Tricho-

tec)

0 a 0 a 3 a 3 a 7 a 3 a 7 a

3.3 Fenología

En todas las plantas de todos los tratamientos, entre los 15 y 45 días después del

trasplante (ddt) se presentó el estado principal 1, es decir hasta alrededor de los 45 ddt

se completó la formación de hojas, y después de los 45 ddt se dio inicio a la formación

de cabeza (Figura 6). Durante todo el ciclo del cultivo no se presentaron diferencias

significativas entre los tratamientos. Sin embargo, a los 105 ddt mas del 50% de las

plantas con aplicación de cal en ambas dosis alcanzaron valores medianos de fenología

de 49 (tamaño de cabeza típica comercial), mientras que las plantas de los demás

tratamientos alcanzaron valores medianos de 48 (80% del tamaño de cabeza típica

comercial) (Figura 6) (Tabla 5).

A los 15 días después del trasplante las plantas presentaban entre 3-6, 2-5, 2-5, 3-6, 3-4

y 3-5 hojas verdaderas en los tratamientos Testigo, con dosis comercial de cal, con dosis

calculada de cal, con aplicación de Trichoderma, con aplicación conjunta de Trichoderma

y dosis comercial de cal, y con aplicación conjunta de Trichoderma y dosis calculada de

cal respectivamente. De esta forma, plantas testigo y plantas tratadas solamente con T.

5

6


koningiopsis presentaban mayor número de hojas con respecto a los demás

tratamientos, siendo el tratamiento testigo el de mayor número de hojas verdaderas.

Figura 6. Estados fenológicos entre los 15 y 105 días después del trasplante (ddt) de plantas de repollo crecidas en el lote cuatro del CAM. Los resultados están expresados en valores de medianas.

15 30 45 60 75 90 1050.00

10.00

20.00

30.00

40.00

50.00

60.00

a a a

a a a a

a a a

a a a a

a a a

a a a a

a a a

a aa a

aa a

a a a a

aa a

a a a aT0 (Testigo)T1 (1 t/ha cal)T2 (2,1 t/ha cal)T3 (Tricotec)T4 (1 t/ha cal + Tricotec)T5 (2,1 t/ha cal + Tricotec)

Tiempo (ddt)

Feno

logí

a (B

BCH)

El 100% de las plantas de todos los tratamientos excepto plantas tratadas con 2,1 t·ha-1

presentaban más de nueve hojas verdaderas a los 45 días después del trasplante. Para

este periodo la etapa de formación de hojas ya se había completado, para dar inicio a

formación de la cabeza (Tabla 5). A partir de los 60 días después del trasplante la

mayoría de las plantas habían iniciado la formación de cabeza, de tal forma en los

tratamientos Testigo, con aplicación exclusiva de Trichoderma y con aplicación de

Trichoderma y dosis calculada de cal el 100% del las plantas presentaban el 10% del

tamaño de la cabeza típica comercial (estadio secundario 41), mientras que las plantas

tratadas únicamente con cal en ambas dosis y aquellas tratadas con Trichoderma y 1

t·ha-1 de cal, únicamente 80% de las plantas exhibían esta fenología.

A los 75 ddt, plantas tratadas con Trichoderma y 1 t·ha-1 de cal presentaban un 92% de

plantas con cabezas entre el 10 y el 50% del tamaño de cabezas típicas comerciales; los

demás tratamientos presentaban el 100% de plantas con cabezas entre el 10 y el 50%

del tamaño de cabeza típica comercial (Tabla 5). A los 90 ddt las plantas que exhibieron

un mayor porcentaje de llenado de cabeza (estadio fenológico entre 46 y 48) fueron las

plantas a las que se les aplicó T. koningiopsis (76%) y las plantas que presentaron el

menor porcentaje fueron las plantas del Testigo (44%) y tratadas con Trichoderma y 2,1

t·ha-1 de cal (48%) (Tabla 5).

Resultados 57

A los 105 ddt todas las plantas se encontraban en estadio fenológico entre 41 y 49, de tal

forma que las plantas con T. koningiopsis presentaron el mayor porcentaje de cabezas

con el tamaño típico comercial (64%) mientras que el menor porcentaje de cabezas de

tamaño típico comercial correspondió a plantas del tratamiento Testigo (12%), seguido de

plantas del tratamiento tratadas con Trichoderma y 2,1 t·ha-1 de cal (28%) (Tabla 5).

Tabla 5. Porcentajes de plantas respecto a estadios fenológicos secundarios de plantas de repollo entre los 15 y 105 días después del trasplante (ddt) crecidas en el lote cuatro del CAM. HV: Hojas Verdaderas; 41-48: entre el 10 y el 80% del tamaño de cabeza típica comercial.

Tratamiento

Estadio fenológico15 ddt 30 ddt 45 ddt 60 ddt 75 ddt 90 ddt 105 ddt

%

T0 (Testigo)

12-18 (2 a 8 HV) 100 80 0 0 0 0 019 (≥ 9 HV) 0 20 100 0 0 0 0

41-45 0 0 0 100 100 56 1646-48 0 0 0 0 0 44 72

49 (Cabeza típica comercial) 0 0 0 0 0 0 12

T1 (1 ton ha-

1 cal)

12-18 (2 a 8 HV) 100 88 0 0 0 0 019 (≥ 9 HV) 0 12 100 20 0 0 0

41-45 0 0 0 80 100 32 1646-48 0 0 0 0 0 68 36


T2 (2,1 ton ha-1 cal)

12-18 (2 a 8 HV) 100 72 4 0 0 0 019 (≥ 9 HV) 0 28 96 20 0 0 0

41-45 0 0 0 80 100 36 446-48 0 0 0 0 0 64 44


T3 (200 g ha-1

Tricotec)

12-18 (2 a 8 HV) 100 80 0 0 0 0 019 (≥ 9 HV) 0 20 100 0 0 0 0

41-45 0 0 0 100 100 24 1646-48 0 0 0 0 0 76 20


T4 (1 ton ha-

1 cal + Tricotec)

12-18 (2 a 8 HV) 100 76 0 0 0 0 019 (≥ 9 HV) 0 24 100 20 0 0 0

41-45 0 0 0 80 92 48 1246-48 0 0 0 0 8 52 48


T5 (2,1 ton ha-1 cal + Tricotec)

12-18 (2 a 8 HV) 100 88 0 0 0 0 019 (≥ 9 HV) 0 12 100 0 0 0 0

41-45 0 0 0 100 100 52 1246-48 0 0 0 0 0 48 60


5

8


Ninguna planta se comportó como planta precoz (70 a 90 días ddt) como lo indica la casa

comercial para esta variedad (Corazón de Buey) (SEMICOL, 2008). La presencia de

repollos con forma y tamaño típico comercial (fenología 49 y peso mayor a 2 kg) se

observó hasta los 105 ddt.

3.4 Altura

La altura presenta una alta correlación con la fenología y los pesos frescos y secos

(99%), y no tuvo retuvo un porcentaje significativo en la variación estadística,

descartándose de los componentes principales. Sin embargo, se encontró que todas las

plantas presentaron un rango de altura entre los 10 y los 32 cm entre el periodo

comprendido entre los 15 ddt y los 45 ddt, es decir durante la etapa de formación de

hojas, mientras que durante la formación de cabeza estos valores variaron entre los 34-

44 cm de altura (Figura 7).

Figura 7. Altura (cm) entre los 15 y 105 días después del trasplante (ddt) de plantas de repollo crecidas en el lote cuatro del CAM.

15 30 45 60 75 90 1050.00

5.00

10.00

15.00

20.00

25.00

30.00

35.00

40.00

45.00

50.00

aa

a

aa

aa

aa

a

a a aa

a

a

a

aa

a a

a

a

aa

aa

a

aa

a

aa

aa

a

a

a

a a

a a

T0 (Testigo)T1 (1 t/ha cal)T2 (2,1 t/ha cal)T3 (Tricotec)T4 (1 t/ha cal + Tricotec)T5 (2,1 t/ha cal + Tricotec)

Tiempo (ddt)

Altu

ra (c

m)

En términos generales, se presentó una velocidad de crecimiento mayor entre los 30 y

los 45 ddt (1 cm.dia-1), en comparación al resto del ciclo del cultivo, donde hubo una

diferencia diaria aproximada de 0,2cm.dia-1 durante la formación de cabeza.

Resultados 59

3.5 Peso fresco

No se presentaron diferencias significativas entre los tratamientos durante todo el ciclo

del cultivo, con respecto al peso fresco total, peso fresco de la parte aérea y peso fresco

de la raíz (Figura 8). Sin embargo, se puede observar que al final del ciclo el mayor peso

de cabezas correspondió a las plantas a las que se les aplicó únicamente T. koningiopsis

con peso fresco mediano de 3 kg con un 64% (Figura 8) de cabezas de tamaño típico

comercial (Tabla 5).

Figura 8. Peso Fresco Total (A), Peso Fresco de la Parte Aérea (B) y Peso Fresco Raíz (C) en gramos (g) entre los 15 y 105 días después del trasplante (ddt) de plantas de repollo crecidas en el lote cuatro del CAM. Medianas con igual letra son estadísticamente iguales bajo prueba de Tukey aplicada a rangos (p˂0,05).

0.00

500.00

1000.00

1500.00

2000.00

2500.00

3000.00

3500.00

a a a aa

a

a

a a aa

a

a

a

a a a aa

a

a

a a a aa

a

a

a a a aa

a

a

a a aa

a

a

a

A. P

eso

Fres

co T

otal

(g)

0.00

500.00

1000.00

1500.00

2000.00

2500.00

3000.00

3500.00

a a a aa

a

a

a a a aa

a

a

a a a aa

a

a

a a a aa

a

a

a a a aa

a

a

a a a aa

a

a

B. P

eso

Fres

co P

arte

Ae

rea

(g)

6

0


15 30 45 60 75 90 1050.00

10.0020.0030.0040.0050.0060.0070.0080.0090.00

100.00

a aa

aa

a

a

a aa

a

a

a

a

a aa

a

a

a

a

a aa

a

a

a

a

a aa

a

a

a

a

a aa

a

a

a

aT0 (Testigo)T1 (1 t/ha cal)T2 (2,1 t/ha cal)T3 (Tricotec)T4 (1 t/ha cal + Tricotec)T5 (2,1 t/ha cal + Tricotec)

Tiempo (ddt)

C. P

eso

Fres

co R

aiz (

g)

3.6 Masa seca

Figura 9. Peso Seco Total (A), Peso Seco de la Parte Aérea (B) y Masa Seca Raíz (C) en gramos (g) entre los 15 y 105 días después del trasplante (ddt) de plantas de repollo crecidas en el lote cuatro del CAM. Medianas con igual letra son estadísticamente iguales bajo prueba de Tukey aplicada a rangos (p˂0,05).

Resultados 61

0.00

50.00

100.00

150.00

200.00

250.00

a a aa

a

aab

a aa

a

a

a ab

a aa

aa

a

ab

a aa

a

a

a

a

a aa

aa

aab

a a aa

a

a b

A. P

eso

Seco

Tot

al (g

)

0.00

50.00

100.00

150.00

200.00

250.00

a a aa

aa ab

a a aa

a

a ab

a aa a

a

aab

a a aa

a

a

a

a aa

aa

aab

a a aa

a

a b

B. P

eso

Seco

Par

te A

érea

(g)

15 30 45 60 75 90 1050.000

5.000

10.000

15.000

20.000

25.000

a a

a a

a

a

a ba

a a

a

a

a a aa a

a

a

a ab aa

a

a

a

aab a

a a

a

a

a ab aa

aa

a

T0 (Testigo) T1 (1 t/ha cal) T2 (2,1 t/ha cal) T3 (Tricotec)T4 (1 t/ha cal + Tricotec) T5 (2,1 t/ha cal + Tricotec)

Tiempo (ddt)

C. P

eso

Seco

Rai

z (g)

En cuanto a Peso Seco, a los 105 ddt, en peso seco total y peso seco de la parte aérea

se evidenciaron diferencias significativas entre las plantas con T. konigiopsis y aquellas

con T. koningiopsis y 2,1 t·ha-1 de cal, presentándose una diferencia de 102 g en el peso

seco de parte aérea, lo cual representa un 114% más del peso seco de parte aérea

respecto de plantas del tratamiento que combina la aplicación de tricotec y la dosis

calculada de cal y un 91% más del peso seco de la parte aérea respecto de plantas

6

2


Testigo (Figura 9). En peso seco de raíz se presentaron diferencias significativas entre

los tratamientos con aplicación de T. konigiopsis y con aplicación conjunta de T.

koningiopsis y 2,1 t·ha-1 de cal, a los 30 ddt, con una diferencia de 0,087 g entre plantas

de estos tratamientos.

Durante el resto del ciclo de cultivo dicha variable no presentó diferencias significativas

entre los tratamientos. No obstante, el peso seco de la raíz fue mayor a los 105 ddt en

plantas del con tricotec (20,6 g) siendo 6,7% mayor respecto del peso seco de raíz de

plantas Testigo, y 29,4% mayor respecto del menor peso seco de raíz, correspondientes

a plantas con 2,1 t·ha-1 de cal (15,92 g) (Figura 9). Dicho valor favoreció a que el peso

seco total y de la parte aérea en plantas con aplicación exclusiva de con T. konigiopsis

fuesen significativamente mayores al final del ciclo (105 ddt).

3.7 Proporción de masa seca

De acuerdo con la Figura 10 y la Error: Reference source not found se presentaron

diferencias significativas a los 90 ddt en la proporción de masa seca de la raíz respecto

del peso fresco de raíz, entre los tratamientos Testigo y con T. koningiopsis y 2,1 t·ha-1 de

cal. El comportamiento general de la proporción de materia seca de la parte aérea

(respecto de su peso fresco) ascendió entre los 30 y 60 ddt y luego descendió hasta los

105 ddt. Las proporciones de materia seca variaron entre 3,49 (Testigo a los 105 ddt) y

18,05 (tratamiento de 2,1 t·ha-1 de cal a los 60 ddt).

La materia seca de la parte aérea presentó una correlación negativa con el porcentaje de

materia seca de la raíz (-9,9%), por lo cual la relación raíz: parte aérea es cada vez

mayor. Dicha correlación se evidencia debido a que entre los 75 y 105 ddt, se puede

observar que a medida que la proporción de masa seca de la parte aérea disminuye, la

proporción de masa seca de la raíz aumenta. A los 105 ddt estos valores son 3.1, 4.05,

4.25, 4.7, 5.3 y 5.8 veces mayores que las proporciones de masa seca de la parte aérea

en los plantas de los tratamientos con tricotec, cal en dosis comercial, cal en dosis

calculada, tricotec + dosis comercial de cal, tricotec+ dosis calculada de cal y Testigo,

respectivamente. En las proporciones de masa seca de la raíz se observó una tendencia

Resultados 63

ascendente entre los 30 y 60 ddt en todas las plantas de todos los tratamientos. Dichos

valores descendieron a los 75 ddt y finalmente volvieron a ascender hasta los 105 ddt.

Figura 10. Proporción de Masa Seca (g/g) de la Parte Aérea y de la Raíz respecto de sus pesos frescos respectivamente, entre los 15 y 105 días después del trasplante (ddt) de plantas de repollo crecidas en el lote cuatro del CAM. Medianas con igual letra son estadísticamente iguales bajo prueba de Tukey aplicada a rangos (p˂0,05).

La menor proporción de materia seca de raíz se presentó en zonas tratadas con 1 t·ha-1

de cal (0,074), mientras que el mayor valor se presentó a los 105 ddt en plantas con

aplicación de tricotec (0,22). Durante todo el ciclo, los valores de proporción de materia

seca de raíz en orden de mayor a menor de los tratamientos fueron: aplicación de tricotec

(0,143), tricotec aplicado en conjunto con dosis comercial de cal (0,14), aplicación de cal

en dosis calculada (0,13), aplicación de cal en dosis comercial (0,122), Testigo (0,121) y

plantas tratadas con tricotec y 2,1 t·ha-1 de cal (0,111).

Tabla 6. Proporción de Masa Seca de la Parte Aérea y de la Raíz (g) entre los 15 y 105 días después del trasplante (ddt) de plantas de repollo crecidas en el lote cuatro del CAM. Medianas con igual letra son estadísticamente iguales bajo prueba de Tukey aplicada a rangos (p˂0,05).

Tratamiento 15 ddt 30 ddt 45 ddt 60 ddt 75 ddt 90 ddt 105 ddt

Proporción de

Masa Seca

Parte Aérea

T0 (Testigo) 0,01 a 0,103 a 0,10 a 0,154 a 0,112 a 0,101 a 0,035 a

T1 (1 t/ha cal) 0,105 a 0,091 a 0,102 a 0,163 a 0,124 a 0,126 a 0,05 a

T2 (2,1 t/ha cal) 0,0975 a 0,087 a 0,106 a 0,181 a 0,116 a 0,09 a 0,048 a

6

4


T3 (200 g ha-1 Tricotec) 0,10 a 0,0884 a 0,092 a 0,145 a 0,137 a 0,082 a 0,07 a

T4 (1 t/ha cal + Tricotec) 0,11,5 a 0,0861 a 0,111 a 0,138 a 0,106 a 0,089 a 0,041 a

T5 (2,1 t/ha cal + Tricotec) 0,117 a 0,101 a 0,10 a 0,143 a 0,103 a 0,094 a 0,035 a

Proporción de

Masa Seca Raíz

T0 (Testigo) 0,11 a 0,084 a 0,122 a 0,184 a 0,120 a 0,183 a 0,201

T1 (1 t/ha cal) 0,08 a 0,071 a 0,143 a 0,181 a 0,113 a 0,122 ab 0,201

T2 (2,1 t/ha cal) 0,10 a 0,088 a 0,144 a 0,152 a 0,120 a 0,135 ab 0,206

T3 (200 g ha-1 Tricotec) 0,10 a 0,087 a 0,156 a 0,161 a 0,133 a 0,143 ab 0,220

T4 (1 t/ha cal + Tricotec) 0,10 a 0,086 a 0,149 a 0,174 a 0,105 a 0,136 ab 0,194

T5 (2,1 t/ha cal + Tricotec) 0,10 a 0,103 a 0,141 a 0,145 a 0,111 a 0,111 b 0,183

3.8 Trichoderma spp.

Se puede observar que a los 90 ddt la presencia de Trichoderma spp fue

significativamente mayor en suelo rizosférico tratado únicamente con Tricotec con

respecto al suelo de los demás tratamientos, siendo este valor de 2,67x105 ufc.g de

suelo-1. Suelos tratados con la combinación de Tricotec y aplicación de cal presentaron

seis veces menor presencia de Trichoderma spp.. Se deduce que en este tratamiento

existe mayor presencia de T. koningiopsis (Th003) que en suelos a los que no se les

aplicó Tricotec (200 g·ha-1). Suelos a los que no se les aplicó tricotec, contaban con 2,22

x 104 ufc.g suelo-1 de Trichoderma spp.. Se confirma, que existe mayor presencia de este

microorganismo actuando en plantas tratadas con el producto comercial (Figura 11).

Figura 11. Conteo de unidades formadoras de colonia (ufc.g suelo-1) de Trichoderma koningiopsis Th003 de muestras de suelo de la parcela experimental del lote cuatro del CAM donde fueron crecidas las plantas de repollo.

T0 T1 T2 T3 T4 T50.00E+005.00E+041.00E+051.50E+052.00E+052.50E+053.00E+05

ufc/g de suelo

Tratamiento

ufc/

g de

suel

o

Resultados 65

3.9 pH

Los valores de pH presentaron un comportamiento variable a lo largo del ciclo del cultivo.

No se observa una tendencia clara ni constante durante el tiempo de medición (Figura

12).

Se presentaron diferencias significativas entre los valores de pH de suelos tratados con

2,1 ton.ha-1 cal únicamente y suelos del tratamiento Testigo 15 días después de la

aplicación de cal al suelo (15 días antes del trasplante), en el día del trasplante (día 0),

así como a los 102 ddt. A los 30 ddt se presentaron diferencias significativas entre

valores de pH de suelos tratados únicamente con Trichoderma y los tratados con

Trichoderma y 2,1 t·ha-1 de cal.

Se observa que a los 102 ddt, aquellos suelos que exhibieron los valores de pH mayores

(6,32 en suelos con T. koningiopsis y 2,1 t·ha-1 de cal) y menores (5,96 en Testigo), la

intensidad de la enfermedad fue superior.

Suelos tratados solamente con T. koningiopsis presentaron valores intermedios de pH

(6,085) y diferencias significativas en incidencia y severidad con respecto al tratamiento

que combina aplicación de T. koningiopsis y 2,1 t·ha-1 de cal y el Testigo. Todos los

valores de pH medidos (individuales) variaron de 5,13 hasta 7,58.

Únicamente en el tratamiento que combina aplicación de tricotec y 2,1 t·ha-1 de cal, se

observaron pH iguales o superiores a 7,2.

Tabla 7. Valores de pH del suelo de la parcela experimental del repollo trabajado en el lote cuatro del CAM, entre los 15 días antes del trasplante y los 102 ddt, equivalente a los 15 y 117 días después de la aplicación edáfica de cal. Medianas con igual letra son estadísticamente iguales bajo prueba de Tukey aplicada a rangos (p˂0,05).

Tratamiento

-15

ddt

-8

ddt

0

ddt

8

ddt

15

ddt

30

ddt

45

ddt

60

ddt

75

ddt

102

ddt

T0 6,26 b 6,625

a

6,47 b 6,4 a 6,54 a 6,05 b 6,07 a 6,595

a

6,06 a 5,96 b

T1 (1 t/ha cal) 6,44

ab

6,66 a 6,55

ab

6,39 a 6,73 a 6,33 ab 6,26 a 6,575

a

6,27 a 6,2 ab

T2 (2,1 t/ha cal) 6,37

ab

6,54 a 6,53

ab

6,4 a 6,69 a 6,245

ab

6,285

a

6,6 a 6,27 a 6,18 ab

T3 (200 g ha-1 Tricotec) 6,34 6,57 a 6,57 6,31 a 6,5 a 6 b 6,295 6,63 a 6,3 a 6,085

6

6


ab ab a ab

T4 (1 t/ha cal + Tricotec) 6,25 b 6,71 a 6,54

ab

6,35 a 6,64 a 6,3 ab 6,24 a 6,66 a 6,21 a 6,145

ab

T5 (2,1 t/ha cal +

Tricotec)

6,48 a 6,57 a 6,65 a 6,38 a 6,63 a 6,46 a 6,24 a 6,67 a 6,27 a 6,32 a

Figura 12. Valores de pH del suelo de la parcela experimental del repollo trabajado en el lote cuatro del CAM, entre los 15 días antes del trasplante y los 102 ddt, equivalente a los 15 y 117 días después de la aplicación edáfica de cal. Medianas con igual letra son estadísticamente iguales bajo prueba de Tukey aplicada a rangos (p˂0,05) (ver Tabla pH).

-15 -8 0 8 15 30 45 60 75 1025.4

5.6

5.8

6

6.2

6.4

6.6

6.8

ab

T0 T1 T2 T3T4 T5

ddt

ph

4.Discusión

En el actual ensayo se observó la aparición de los primeros síntomas de la enfermedad a

los 45 ddt. Una vez hubo aparición de la sintomatología, se encontró una evolución

diferencial entre los tratamientos a lo largo del ciclo de cultivo. En los resultados se

encontró que T. koningiopsis tuvo un efecto positivo sobre el control de la enfermedad.

Tal control, se ve reflejado en la menor incidencia y severidad de la misma en las plantas

a las que se les aplicó tricotec a lo largo del ciclo. La reducción en la infección de P.

brassicae en las plantas con Trichoderma, permitió un mayor desarrollo de la zona de

raíces con respecto a las plantas de los demás tratamientos, presentándose diferencias

significativas con respecto a la aplicación combinada de T. koningiopsis y 2,1 t·ha-1 de

cal, donde se observó la mayor incidencia y severidad de la enfermedad durante el ciclo

de cultivo (Figura 4).

El mayor desarrollo de la zona de raíces de las plantas tratadas con tricotec,

posiblemente permitió una mayor capacidad en la toma y transporte de nutrientes, lo que

se explica por la diferencia estadísticamente significativa observada en la acumulación

de masa seca de la planta a los 105 días después del trasplante (Figura 9). Tales

resultados se confirman con la mayor acumulación de materia seca total y de la parte

aérea de las plantas del tratamiento con T. koningipsis con respecto al Testigo y al

tratamiento que combina T. koningiopsis y 2,1 t·ha-1 de cal. Esto se explica por el hecho

de que la proporción de masa seca raíz:parte aérea fue más equilibrada en plantas del

tratamiento de Trichoderma (3,1) que en los demás tratamientos, especialmente

respecto de los tratamientos Testigo y la combinación de T. koningiopsis y 2,1 t·ha-1 de

cal donde las proporciones de materia seca raíz:parte aérea fueron de 5,3 y 5,8,

respectivamente.

El incremento de masa seca de raíz, está dada, ya que P. brassicae, es un protozoario

que causa atrofia del sistema de raíces de las plantas, lo que causa una disminución en

la toma y traslocación de agua y nutrientes (Agrios, 2005; Ludwing-Muller, 2009), los

cuales son indispensables para el crecimiento y desarrollo de la planta, luego al no haber

buena asimilación de los mismos, la acumulación de masa seca se limita. Dicha

limitación en la acumulación de masa seca, da lugar a una baja tasa de acumulación en

la parte aérea con respecto a la acumulación observada en las raíces atrofiadas que se

configuran en un vertedero fuerte de fotoasimilados de T0 y T5 (Evans y Schols, 1995;

Muller et al., 2009).

La incidencia y severidad de la enfermedad, presentaron un comportamiento similar

durante todo el ciclo de cultivo. Los primeros síntomas observables de la misma se

encontraron 30 días después del trasplante. Estos resultados, difieren de los encontrados

por Devos et al. (2005), quienes en plantas de col china crecidas en München

(Alemania) observaron los primeros síntomas visibles (agallas distinguibles) 20 días

después de la inoculación. Tales diferencias, están dadas probablemente por la variación

en las condiciones medio-ambientales de desarrollo, especialmente ya que en la

investigación de Devos et al. (2005), las plantas se desarrollaron en un ambiente

controlado, el cual se mantuvo estable favoreciendo el desarrollo del patógeno, mientras

que, el actual ensayo se realizó en campo, donde las condiciones medio-ambientales no

se pueden controlar, lo que pudo limitar el desarrollo del patógeno y con esto retardar la

aparición de los síntomas (ver anexos A y B).

Una vez se presentaron los síntomas de la enfermedad, la severidad de la misma

exhibió una tendencia creciente sin mostrar diferencias estadísticamente significativas

hasta los 75 días después del trasplante. A los 75 ddt y 105 ddt se presentaron

diferencias significativas de severidad únicamente entre plantas del tratamiento T3 y T5.

Se encontró la menor severidad en T3, mientras que los demás tratamientos presentaron

resultados intermedios. En orden de mayor a menor severidad los tratamientos se

comportaron así, T5, T0, T1, T4, T2 y T3.

La menor severidad de T3, es el resultado de la aplicación de T. koningiopsis Th003,

hongo que se adaptó y desarrolló llegando a un total de 2,67x105 ufc•g de suelo-1. En

este tratamiento, se puede confirmar el efecto de T. koningiopsis Th003 como

biocontrolador, resultados que coinciden con los observados por Cheah et al. (2000),

quienes encontraron una reducción de la severidad de la enfermedad con la aplicación

de Trichodema spp. entre el 58% y el 42% con respecto a plantas si inocular. Tales

resultados, son producto de la actividad biocontroladora de T. koningiopsis Th003,

Discusión 69

mecanismo que aún no se encuentra del todo claro. No obstante, esta se asocia a varias

características del hongo dentro de las cuales se encuentra la producción de un conjunto

de metabolitos que afectan el crecimiento del microorganismo (Chea et al., 2000). T.

koningiopsis Th003, como agente controlador de P. brassicae, actúa produciendo

enzimas que degradan la pared celular de diferentes organismos fitopatógenos, dentro

de las cuales se destacan celulasas, quitinasas y glucanasas entre otras, además de

sustancias antibióticas (Vinale et al., 2008).

Es fundamental, destacar que las líneas del hongo, se han clasificado por Howell (1998)

en dos grupos: las “Q”, que son capaces de producir gliotoxinas antibióticas y las “P” que

producen un compuesto relacionado con la gliovirina en lugar de las gliotoxinas. Dicha

diferenciación en el tipo de metabolitos producidos, modifica los organismos blanco del

hongo, siendo así las líneas “Q”, las más efectivas para el biocontrol de protozoarios

(Howell, 1998). Dicha diferenciación en las líneas de Trichoderma spp., permiten inferir,

que la línea empleada para el actual experimento es una línea “Q”, la cual exhibe una

elevada producción de gliotoxinas, las cuales limitan el desarrollo de P. brassicae, lo que

dio lugar a los resultados mencionados.

Por su parte la mayor severidad encontrada en T5, donde se aplicaron 2,1 t•ha-1 de cal y

T. koningiopsis Th003, es el resultado de la baja adaptación del hongo, la cual se debe

como se mencionó anteriormente al incremento del pH del suelo. Este fue más cercano a

la alcalinidad que a la acidez, lo que afectó el desarrollo de T. koningiopsis Th003. Esta

baja adaptación del biocontrolador, desencadenó en un espacio más adecuado para el

establecimiento del patógeno. Allí se redujo la competencia por espacio y nutrientes con

T. koningiopsis Th003, ya que tanto P. brassicae como T. koningiopsis Th003, son

organismos que colonizan las raíces del hospedero, proceso que facilitó la infección.

Es indispensable recalcar que tanto P. brassicae como T. koningiopsis Th003, son

organismos que se adaptan mejor a condiciones de acidez, no obstante, T. koningiopsis

Th003, presenta un pH óptimo de desarrollo más ácido (pH óptimo de 2,8 a 3,2) (Steyaert

et al., 2010), mientras que P. brassicae se desarrolla de forma ideal en zonas con un pH

entre 5,5 y 6,5 (Donald y Porter, 2004). Con base en dichas características, se puede

comprender mejor la severidad observada en T5, tratamiento donde se obtuvo un pH que

osciló entre 6,2 y 6,5 (Tabla 7), lo que acompañado de la baja adaptación de T.

koningiopsis Th003 facilitó el proceso infeccioso.

70 Manejo de la hernia de la col (Plasmodiophora brassicae Woron) en el cultivo de repollo (Brassica oleracea L.) en el Centro Agropecuario

Marengo (CAM)

Por su parte, T0, T1, T2 y T4, mostraron un resultado intermedio. Los tratamientos,

donde se aplicó cal (T1 y T2), no mostraron un control efectivo de la enfermedad. Esto se

debe a que según estudios de Donald y Porter (2004 y 2009) el control de P. brassicae,

se alcanza con un pH superior a la 7,2. Si se revisan lo pH máximos alcanzados en T1

(6,73) y T2 (6,69), fueron inferiores a 7,2, razón por la cual es necesario revisar el efecto

del encalamiento sobre el patógeno con dosis superiores de encalamiento hasta alcanzar

pH superiores; no obstante tales estudios deben acompañarse de un análisis técnico-

económico que permita ratificar la utilidad del tratamiento para el agricultor en su sistema

de producción.

Por su parte en plantas Testigo (T0), no se alcanzaron niveles de severidad tan altos

como los de T5. En este tratamiento, no se llevó a cabo ningún incremento del pH por

medio de la aplicación de cal, que afectara la actividad de las cepas nativas de diversos

microorganismos que compitieran con el patógeno. Esto permitió a la microflora y

microfauna preexistentes, seguir actuando y así permitir el desarrollo del protozoario de

forma más limitada que la vista para T5, lo que resultó en una menor severidad.

En cuanto a T4, no hubo mayor afectación en la severidad con respecto a T0. En este

tratamiento se llevó a cabo la aplicación de Tricotec acompañado de 1 t•ha-1 de cal, de

forma que, pese a que hubo un incremento de pH, este no fue el suficiente como para

afectar fuertemente la acción de T. koningiopsis Th003, en su papel como competidor

con P. brassicae. El leve incremento de pH no permitió la adaptación de un mayor

número de colonias de T. koningiopsis Th003, pero tampoco afectó la acción de las

cepas ya existentes, lo que resulto en un nivel de severidad intermedio.

A los 90 ddt, se observa una disminución generalizada de la incidencia y severidad de la

enfermedad que resulta inusual ( y Figura 3). Dichas disminuciones, deben estudiarse de

forma cuidadosa y clara para evitar interpretaciones erradas. Tales bajas, para este caso

se interpretan como una posible ralentización del avance de la enfermedad, la cual en

comparación con el crecimiento de la planta da lugar a la observación de una reducción

de la incidencia y severidad de la enfermedad para tal periodo.

Una hipotésis inicial se asocia al comportamiento de la enfermedad durante la

finalización de la tercera etapa del ciclo de vida del patógeno, donde la masa de la agalla

Discusión 71

se va perdiendo por efecto de la liberación de las esporas y la degradación microbiana

dando lugar a una disminución en su tamaño (Kageyama y Asano, 2009). Por otra parte,

la tasa de crecimiento y desarrollo de la raíz entre los 60 y 75 ddt fue mayor a la tasa de

crecimiento de este órgano entre los 45 y 60 ddt. Esto implica densidad superior de

raíces que significan una mayor probabilidad de presencia de raíces sanas con respecto

de las afectadas, dando lugar a un incremento de la actividad metabólica secundaria o de

defensa (liberación de glucosinolatos) (Muller et al., 2009). Esto reduce el grado de

severidad observado. A partir de este momento las plantas tuvieron la oportunidad de

crecer y acumular masa seca en las hojas, las cuales luego se constituyeron en una

fuente de carbohidratos hacia las agallas (vertederos) (Muller et al., 2009). Mientras

tanto, las esporas del suelo generaron nuevos ciclos de infección que dieron lugar al

aumento de la severidad e incidencia de la enfermedad a los 105 ddt, en plantas Testigo

y del T5, donde las condiciones de crecimiento para el patógeno eran más favorables, a

diferencia de plantas con tratamientos de cal y T. koningiopsis Th003 separadamente.

Esto se soporta por el trabajo realizado por Evans y Schols (1995), quienes reportaron un

incremento en la tasa de traslocación de fotosintatos marcados con 14CO2 desde las

hojas hacia las raíces con agallas en comparación con plantas control, en plantas de B.

rapa.

Se ha demostrado que las agallas (los plasmodios) además de ser un vertedero de

carbohidratos, son demandantes de auxinas (el ácido Indol Acético AIA) y de citoquinias,

dando lugar a un aumento de división y expansión celular, que inducen una mayor

actividad de XTH (Xiloglucano endotransglicosilasas/hidrolasas) (Devos et al., 2005) en

células epidermales de pelos radicales infectados. Estos XTHs son enzimas que cortan y

unen cadenas de xiloglucanos, permitiendo la expansión de la pared celular, debido a la

posibilidad de separación de las microfibrillas de celulosa (Iglesias, 2007).

Pese a que en las variables fenología y peso fresco de la planta, las diferencias no fueron

estadísticamente significativas, la pequeña variación alcanzada en las plantas tratadas

únicamente con T. koningiopsis Th003 (T3), puede representar un incremento en la

producción de los sistemas comerciales, lo cual resulta en una mayor ganancia para el

agricultor (ver anexo C). No obstante, en la variable peso seco de la parte aérea, se

encontraron diferencias significativas entre T3 y T5 a los 105 días después del trasplante,

observándose los mayores pesos secos para T3, lo que representa una mayor


Marengo (CAM)

acumulación de materia seca a lo largo del ciclo, configurando a este tratamiento como el

mejor con respecto al rendimiento ofrecido.

Tal incremento en el crecimiento y peso de las plantas para T3, puede asociarse a la

función de T. koningiopsis Th003 como promotor de crecimiento (Naher et al., 2012;

Serna-Cock, et al., 2011; Viterbo, et al., 2010; Naseby, et al., 2000; Sharma, et al., 2012).

Dicho efecto positivo del hongo, está explicado por diversas funciones del mismo dentro

de las cuales se destacan: la capacidad de controlar microorganismos fitopatógenos, los

cuales limitan el crecimiento vegetal; el estímulo de las plantas para producir promotores

de crecimiento tales como hormonas (principalmente auxinas); incremento de la

absorción de nutrientes por medio del aumento de la disponibilidad de los mismos

(solubilización de fósforo (Rudresh et al., 2005)); la reducción de la concentración en

suelo de sustancias que inhiben el crecimiento vegetal (Naher et al.,2012), incremento

del crecimiento de raíces, lo cual favorece la toma de nutrientes y agua (Serna-Cock et

al., 2011) y disminución de la producción de etileno por efecto de la reducción de su

precursor (ACC) gracias a la actividad del ACCD producido por el hongo (Viterbo et al.,

2010), entre otros.

Dicho aumento del crecimiento y peso final de las plantas, bajo la aplicación de

Trichoderma spp., también se observó por diversos autores en cultivos como palma de

aceite, tomate, cacao, soya, guisante, caña y garbanzo entre otros. En palma de aceite,

se encontró que la inoculación de las plantas con el hongo causó un incremento de 1µg/g

del contenido de clorofila con respecto a plantas sin la inoculación (0,5 µg/g en plantas

no inoculadas y 1,5 µg/g en plantas inoculadas), además de observarse un aumento del

peso de hojas y raíces en comparación con el testigo (Naher et al., 2012).

En caña de azúcar Serna-Cock et al. (2011), encontraron mayor longitud de raíces en

plantas inoculadas con T. lignorum (33 cm) con respecto al control (22 cm), además de

un mayor número de raíces (50 raíces en plantas inoculadas contra 20 raíces en el

testigo) y hojas, igualmente se aumentó la longitud del tallo. En guisante, plantas

inoculadas exhibieron un peso de la parte aérea superior en un 15% con respecto al

testigo, y un peso de raíces mayor en un 22% (Naseby et al., 2000).

En tomate, se encontró mayor peso de la parte aérea de las plántulas inoculadas,

aumento que osciló entre el 16,67% y el 800% (Fontenelle et al., 2011). En soya, plantas

Discusión 73

afectadas por Fusarium oxysporum que fueron inoculadas con Trichoderma spp. tuvieron

una altura superior a las plantas no tratadas en un 194% y 141%, además de un

rendimiento superior, siendo este de 66 por planta contra 41 en el testigo (Rojan et al.,

2010). En trigo Sharma et al. (2012), observaron un rendimiento superior de las plantas

inoculadas con Trichoderma spp. de 36,25 a 36,73 Q/ha en Jaipur y de 36,88 a 50,12

Q/ha en Kota.

Debe destacarse, que el aumento en el crecimiento y rendimiento, no se observó en las

plantas tratadas con T. koningiopsis Th003 y cal (T4 y T5), dado que este es un hongo

cuya adaptación es directamente dependiente del medio de desarrollo. Trichoderma

spp., es un hongo que se adapta a condiciones de acidez, alcanzando un mejor

establecimiento en zonas con pH bajo (pH óptimo de 2,8 a 3,2) (Steyaert et al., 2010);

luego el encalamiento en los tratamientos T4 y T5, resultó en un incremento del pH del

suelo para T4 y T5 (ver Figura 12) con respecto al T3, lo que causó una limitación para el

establecimiento y crecimiento del hongo, afectando su acción sinérgica con la planta.

Tales resultados se confirman con los conteos de unidades formadoras de colonia de T.

koningiopsis Th003 en el final de ciclo, las cuales para T3 fueron de 2,67x105 ufc.g de

suelo-1 contra 5 x104ufc.g de suelo-1 en los tratamientos 4 y 5.

5.Conclusiones y Recomendaciones

5.1 Conclusiones

El tratamiento con sola aplicación de Tricotec (I.A: T. koningiopsis Th003) (T3) mostró los

mejores resultados en cuanto a la reducción de la incidencia y severidad de la

enfermedad, acumulación de materia seca y porcentaje de cabezas comerciales, lo que

podría verse reflejado en un impacto económico favorable para el agricultor. Por tal

razón, para las condiciones del lote cuatro del CAM, no se recomienda aplicar cal sola ni

en mezcla con T. koningiopsis Th003 en las dosis utilizadas en este trabajo para el

control de la hernia. Estadísticamente no resulta adecuado combinar 2,1 ton•ha-1 de cal

dolomita con T. koningiopsis Th003 (producto comercial Tricotec) ya que dicha mezcla

aumenta la incidencia y la severidad de la enfermedad en comparación con los demás

tratamientos.

Aplicar Tricotec en combinación con 2,1 ton.ha-1 de cal dolomita (T5) conduce a un

efecto negativo sobre el control de la enfermedad, lo que se refleja en valores de masa

seca y fresca inferiores a los observados en los demás tratamientos.

De acuerdo a otros estudios realizados, el efecto positivo encontrado en el presente

trabajo por aplicación de T. koningiopsis Th003 podría deberse a su capacidad de

promover el crecimiento de raíces, mejoramiento de la absorción de agua y nutrientes por

solubilización de fósforo, sumado a otras funciones relacionadas con el control de

microorganismos fitopatógenos, reducción de la concentración de sustancias del suelo

que inhiben el crecimiento vegetal, así como la disminución de la producción de etileno

por parte de la planta.

En términos de peso fresco de cabezas (peso fresco de parte aérea) y proporción de

cabezas comerciales (forma y tamaño típico comercial), todos los tratamientos resultaron

tener valores similares.

Sin embargo, los repollos de mayor peso alcanzados y con mayor proporción de cabezas

comerciales fueron aquellos tratados únicamente con T. koningiopsis Th003 (T3:

Tricotec en dosis de 200 g•ha-1), seguido de plantas tratadas únicamente con 2,1 ton ha-1

de cal (T2).

En resumen, se puede decir que la aplicación de T. koningiopsis Th003, es un control

eficiente para el manejo de P. Brassicae en el cultivo de repollo en el CAM. No obstante,

se recomienda llevar a cabo estudios más profundos que permitan obtener resultados

más puntuales con el fin de generar recomendaciones aplicables comercialmente. Para

tal fin, es indispensable reconocer la fisiología e interacción planta-patógeno-

biocontrolador, para evitar el uso de prácticas que afecten dicha relación dando lugar a

procesos que desfavorezcan el control de P. brassicae, tales como la aplicación de

materiales encalantes en conjunto con el uso de T. koningiopsis Th003. Esto finalmente

se traduce en un mejor manejo de los recursos disponibles, aumentándose así la

rentabilidad final para el agricultor.

5.2 Recomendaciones

Para futuros estudios, se recomienda en primer lugar evaluar diferentes dosis te T.

koningiopsis Th003. Por otra parte, es indispensable conocer las épocas y frecuencias de

aplicación necesarias para la aplicación del hongo a fin de ajustar la recomendación para

la aplicación del mismo. Para la evaluación de T. koningiopsis Th003 , se debe hacer

investigación juiciosa con respecto a la dosis más apropiada para el uso de este hongo

para el control de la hernia de las crucíferas. Se recomienda llevar a cabo nuevas

investigaciones que busquen la identificación de nuevas especies que pueden llegar a

ser más efectivas para el control de esta enfermedad. Finalmente, es indispensable que

se evalúen diversos métodos de aplicación de las esporas de los productos que

contengan al hongo, para hacer más efectiva su aplicación.

Anexo B. Nombrar el anexo B de acuerdo con su contenido 77

Por otra parte, es recomendado llevar a cabo evaluaciones con dosis aumentadas de cal

para reconocer si con un incremento del superior a 7,2, se obtiene control de la

enfermedad. Es crucial, destacar que estas investigaciones deben ir acompañadas de un

análisis técnico-económico que las valide.

Para futuros estudios, se recomienda llevar a cabo una cuantificación del inóculo

presente en suelo y en el agua de riego por métodos moleculares, a fin de llevar a cabo

análisis más precisos y completos de la enfermedad.

Finalmente es clave emplear para próximos estudios materiales de repollo comerciales

susceptibles, para hacer estudios más ajustados a la producción comercial, además de

implementar estas técnicas en investigaciones con otras especies cultivadas tales como

brócoli y coliflor, entre otras.


Marengo (CAM)

Anexo A: Microfotografías Agallas de raíz de repollo con presencia de los plasmodios de P. brassicae.

Metodología de obtención de cortes y microfotografías.

Se tomaron muestras de agallas de raíces (aquellas tratadas con 2,1 ton.ha -

1+TRICOTEC) los 105 días después del trasplante, es decir, al final del ensayo. Las muestras fueron empacadas en bolsas plásticas y almacenadas en una nevera portátil para reducir su degradación durante el tiempo de transporte y antes del procesamiento en el laboratorio de Fitopatología de la Facultad de Agronomía de la Universidad Nacional, sede Bogotá.

Las agallas fueron lavadas y limpiadas con agua común de la llave. Se cortaron las muestras en trozos de 5 mm aproximadamente. El procesamiento posterior realizado a dichos trozos de agallas se describe brevemente a continuación:

A. Fijación: con fijador Craf III (Fijador Navashin), el cual está compuesto por una solución madre de la siguiente manera: 30% por una solución acuosa (al 1%) de trióxido de cromo, 20% de ácido acético glacial (al 10%), 10% de Formaldehido (37-40%) y 40% de agua destilada para un total de 100% de fijador Craff (Sandoval, 2005). Dicha fijación se realizó por un periodo de 24 horas, en tubos plásticos de 50 ml. Esta solución Craff III es usada comúnmente para tejidos semileñosos o de buena consistencia. Existen soluciones Craff I y II para materiales muy delicados y suaves (Sandoval, 2005).


La solución madre es una mezcla que se debe hacer justo antes de la fijación, en volúmenes iguales de dos soluciones stock, las cuales son: Solución A (1 g de trióxido de cromo+ 7 ml de ácido acético galcial + 92 mL de agua destilada) y Solución B ( 30 mL de formaldehido al 37-40% + 70 ml de agua destilada) (Sandoval, 2005).

El líquido de fijación pierde sus efectos en pocas horas, para pasar a funcionar como un medio endurecedor y preservante del tejido, permitiendo que dicho material permanezca en condiciones adecuadas por al menos 5 años (Sandoval, 2005).

B. Deshidratación : Los trozos fueron sumergidos durante 7 días en diferentes concentraciones de alcohol (70%, 80%, 85%, 90%, 96%, 96% y 96%). Posteriormente se continuó con la deshidratación en terbutanol al 96% y al 99% durante dos días más.

C. Confección de bloques: Las muestras se extrajeron de la solución de alcohol, permitiendo el mayor escurrimiento del mismo. Luego se realizó una inmersión de los trozos o muestras en parafina a 56°C durante 12 a 24 horas con el fin de que la parafina impregnase a todo los tejidos. Posteriormente se colocaron los trozos en unos recipientes metálicos con su respectiva tapa abierta plástica y allí se añadió la parafina. Estos bloques de parafina con las muestras se dejaron secar a temperatura ambiente por 25 minutos y posteriormente se introdujeron a la nevera durante 5 minutos para facilitar la separación del bloque de parafina con el recipiente.

D. Cortes: Los bloques de parafina con las muestras adentro fueron separadas de los recipientes y llevadas al microtomo el cual realiza cortes de 15 a 20 μm de espesor. Los cortes fueron realizados y puestos a flotar sobre agua destilada tibia, para facilitar luego la manipulación, disposición y adhesión de cada corte sobre el portaobjetos. Posteriormente se removió la parafina con xilol, alcohol descendente y lavado con agua corriente entes de la tinción.

E. Tinción y elaboración final de las láminas histológicas: Esta se realizó con una solución de Fast Green (1 g Fast-green, 95 cm Alcohol 96%, 70 cm esencia de clavos, 25 cm de etilenglicol) el cual es usado para teñir de verde el citoplasma y de rojo los núcleos celulares, xilema (y plasmodios de hernia en este caso).

Finalmente se añadió una gota de resina sobre el corte ubicado en el portaobjetos y se colocó un cubreobjetos. Se dejó secar y finalmente las muestras fueron llevadas al microscopio para toma de microfotografías en la Clínica de Plantas de la Universidad Nacional.


Marengo (CAM)

Las microfotografías se muestran a continuación:


Anexo A1: Microfotografías de agalla sobre tejido vascular y cortical de raíz principal de repollo (tamaño A: 4x; Tamaño B: 10X; Tamaño C: 40X).

Anexo A2: Microfotografía de agalla sobre tejido vascular y cortical de raíz principal de repollo. El corte es transversal. (tamaño: 4x).

Anexo A3: Microfotografía de corte longitudinal de raíz secundaria sana de repollo (tamaño: 10x).


Marengo (CAM)

Anexo A4: Dos microfotografías de Corte transversal de zona vascular de agalla de raíz principal en repollo.

Anexo B: Ilustraciones de severidad de la Hernia de la Col en plantas de repollo


Anexo C: Breve análisis económico de acuerdo a los resultados obtenidos


Marengo (CAM)

Se realizó un análisis económico breve (solo para cabezas comerciales a los 105 ddt) en el cual, teniendo en cuenta los siguientes factores:

Peso fresco mediano de cada cabeza de repollo de cada tratamiento obtenido en el trabajo

Porcentaje de cabezas con fenología 49 (teóricamente todas son comerciales en cuanto a forma principalmente, el tamaño puede variar respecto del peso)

Precio de venta en mercado distribuidor o de plaza en Bogotá (Corabastos), el cual es muy elástico y varía entre 200 y 900$/kg en la sabana de Bogotá. DATOS REALES COLOMBIA

Precio de venta productor --˃ mercado (asumiendo un 75% el precio de venta en mercado al consumidor)

TABLA. COMPARATIVO ECONOMOCIO (COSTOS-GANANCIAS) PARA CABEZAS COMERCIALES. ENTIENDASE CABEZAS COMERCIALES AQUELLAS CON FORMA TIPICA COMERCIAL (FENOLOGIA 49 EN ESCALA BBCH). El tamaño varía respecto del peso, ya que peso y tamaño (altura y/o diámetro) tienen una alta correlación (99%). El costo unitario es estimado y se basa a partir del costo unitario y costos de producción/ha en repollo en la sabana de bogota (SIPSA, 2010), el cual varia por el uso diferencial de insumos (cal y tricho-tec) para cada tratamiento.

A B C D E F G H I J K L

Trat.

Peso fresco cabezas (g)

Precio de venta productor ($ pesos/kg)

Costo unitario ($/kg)

# de cabezas en comerciales en 100 cabezas) (ver tabla ff)

Ganancia bruta por cabezas comerciales ($ pesos)

Costo Total por cabezas comerciales($ pesos)

Ganancia neta por cabezas comerciales ($ pesos)

% de ganancia por cabezas comerciales

Diferencia de ganancia respecto testigo (T0)

Diferencia de % de ganancia respecto testigo (T0)

# de veces que se gana más respecto al testigo (T0)

T0 2600 300 213 12 9360 6645,6 $2714,4 40,8% $0,0 0,0% 1,0

T1 2440 300 215 48 35136 25180,8 $9955,2 39,5% $7240,8 266,8% 3,7

T2 2800 300 220 52 43680 32032 $11648 36,4% $8933,6 329,1% 4,3

T3 3024 300 230 64 58060,8 44513,3 $13547,5 30,4% $10833,1 399,1% 5,0T4 2480 300 232 40 29760 23014,4 $6745,6 29,3% $4031,2 148,5% 2,5

T5 2608 300 237 28 21907,2 17306,7 $4600,51 26,6% $1886,1 69,5% 1,7

Además teniendo en cuenta que independientemente del peso, todas las cabezas se venden

a un mismo precio ya que todas cumplen con la FORMA típica comercia, se observa que a

pesar de que el porcentaje de ganancia (análogo a rentabilidad) es menor en cabezas de T3,

respecto del testigo, la ganancia neta en dinero es 5 veces mayor a la que se obtendría con

cabezas comerciales testigo, plus de ganancia debido a que el peso unitario de cada cabeza

es mayor (3 kg en comparación con una cabeza de 2,6 kg a pesar de que no hayan

Diferencias estadísticamente significativas).


Anexo D: Análisis de suelo del lote cuatro en el CAM (2012)


Marengo (CAM)

Anexo E: Análisis estadístico

CORRELACION NO PARAMETRICA DE SPEARMAN PARA VARIABLES CONTINUAS 187900:00 Tuesday, July 1, 2008


Procedimiento CORR

17 Variables: malt mpft mpfpa mpfr mmst mmspa mmsr mpmspampmsr mcaa mcar mat mapa mar mfen minc msev

Estadísticos simples

Variable N Media Dev tip Mediana Mínimo Máximo

malt 210 30.32448 12.11619 34.50000 6.90000 48.40000 mpft 210 693.93243 935.86933 240.32800 1.30600 3580 mpfpa 210 658.96429 905.64287 208.29700 0.66000 3456 mpfr 210 33.61519 34.56603 23.38000 0.50600 131.28000 mmst 210 56.27990 63.50966 32.74000 0.13000 312.70000 mmspa 210 50.85867 58.27299 27.75500 0.06200 306.72000 mmsr 210 5.38916 6.28765 3.37000 0.04200 26.58000 mpmspa 210 11.05545 3.90879 10.99100 3.14800 20.45000 mpmsr 210 14.36270 4.79827 14.19800 4.90000 27.94200 mcaa 210 88.94464 3.90891 89.00900 79.55000 96.85200 mcar 210 85.63734 4.79829 85.80200 72.05800 95.10000 mat 210 637.65259 883.43631 207.37900 1.06200 3363 mapa 210 608.10566 859.52097 186.12300 0.58600 3272 mar 210 28.22605 28.70821 20.11000 0.36200 110.50000 mfen 210 32.29429 14.06594 41.80000 12.60000 49.00000 minc 210 0.30095 0.29752 0.20000 0 1.00000 msev 210 1.68857 1.92798 1.20000 0 8.60000

Coeficientes de correlación Spearman, N = 210 Prob > |r| suponiendo H0: Rho=0

malt mpft mpfpa mpfr mmst mmspa mmsr mpmspa mpmsr

malt 1.00000 0.95180 0.95117 0.92198 0.94809 0.94681 0.92394 -0.25932 0.51316<.0001 <.0001 <.0001 <.0001 <.0001 <.0001 0.0001 <.0001

mpft 0.95180 1.00000 0.99904 0.97176 0.97523 0.97142 0.96270 -0.35372 0.49923<.0001 <.0001 <.0001 <.0001 <.0001 <.0001 <.0001 <.0001

mpfpa 0.95117 0.99904 1.00000 0.96684 0.97460 0.97108 0.95923 -0.36044 0.50048<.0001 <.0001 <.0001 <.0001 <.0001 <.0001 <.0001 <.0001

mpfr 0.92198 0.97176 0.96684 1.00000 0.95671 0.94920 0.97070 -0.28886 0.46645<.0001 <.0001 <.0001 <.0001 <.0001 <.0001 <.0001 <.0001

mmst 0.94809 0.97523 0.97460 0.95671 1.00000 0.99882 0.95519 -0.20304 0.50632<.0001 <.0001 <.0001 <.0001 <.0001 <.0001 0.0031 <.0001

mmspa 0.94681 0.97142 0.97108 0.94920 0.99882 1.00000 0.94552 -0.19406 0.49291<.0001 <.0001 <.0001 <.0001 <.0001 <.0001 0.0048 <.0001


Marengo (CAM)

CORRELACION NO PARAMETRICA DE SPEARMAN PARA VARIABLES CONTINUAS 1880 00:00 Tuesday, July 1, 2008

Procedimiento CORR


malt mpft mpfpa mpfr mmst mmspa mmsr mpmspa mpmsr

mmsr 0.92394 0.96270 0.95923 0.97070 0.95519 0.94552 1.00000 -0.26628 0.62723<.0001 <.0001 <.0001 <.0001 <.0001 <.0001 <.0001 <.0001

mpmspa -0.25932 -0.35372 -0.36044 -0.28886 -0.20304 -0.19406 -0.26628 1.00000 -0.08120 0.0001 <.0001 <.0001 <.0001 0.0031 0.0048 <.0001 0.2414

mpmsr 0.51316 0.49923 0.50048 0.46645 0.50632 0.49291 0.62723 -0.08120 1.00000<.0001 <.0001 <.0001 <.0001 <.0001 <.0001 <.0001 0.2414

mcaa 0.25930 0.35368 0.36040 0.28881 0.20301 0.19402 0.26625 -1.00000 0.08128 0.0001 <.0001 <.0001 <.0001 0.0031 0.0048 <.0001 <.0001 0.2409

mcar -0.51322 -0.49923 -0.50048 -0.46645 -0.50631 -0.49290 -0.62722 0.08122 -1.00000<.0001 <.0001 <.0001 <.0001 <.0001 <.0001 <.0001 0.2412 <.0001

mat 0.95093 0.99969 0.99884 0.97085 0.97231 0.96850 0.96084 -0.36556 0.49548<.0001 <.0001 <.0001 <.0001 <.0001 <.0001 <.0001 <.0001 <.0001

mapa 0.94958 0.99846 0.99961 0.96486 0.97090 0.96737 0.95684 -0.37402 0.49732<.0001 <.0001 <.0001 <.0001 <.0001 <.0001 <.0001 <.0001 <.0001

mar 0.91616 0.96736 0.96237 0.99848 0.95080 0.94385 0.96043 -0.28672 0.43425<.0001 <.0001 <.0001 <.0001 <.0001 <.0001 <.0001 <.0001 <.0001

mfen 0.95186 0.98354 0.98275 0.95918 0.97453 0.97194 0.95337 -0.30160 0.50545<.0001 <.0001 <.0001 <.0001 <.0001 <.0001 <.0001 <.0001 <.0001

minc 0.55480 0.58896 0.58707 0.62110 0.59207 0.59000 0.59272 -0.05076 0.24617<.0001 <.0001 <.0001 <.0001 <.0001 <.0001 <.0001 0.4644 0.0003

msev 0.56855 0.62160 0.61796 0.67362 0.61281 0.60826 0.62708 -0.10593 0.21107<.0001 <.0001 <.0001 <.0001 <.0001 <.0001 <.0001 0.1259 0.0021


mcaa mcar mat mapa mar mfen minc msev

malt 0.25930 -0.51322 0.95093 0.94958 0.91616 0.95186 0.55480 0.56855 0.0001 <.0001 <.0001 <.0001 <.0001 <.0001 <.0001 <.0001

mpft 0.35368 -0.49923 0.99969 0.99846 0.96736 0.98354 0.58896 0.62160<.0001 <.0001 <.0001 <.0001 <.0001 <.0001 <.0001 <.0001


CORRELACION NO PARAMETRICA DE SPEARMAN PARA VARIABLES CONTINUAS 1881 00:00 Tuesday, July 1, 2008

Procedimiento CORR


mcaa mcar mat mapa mar mfen minc msev

mpfpa 0.36040 -0.50048 0.99884 0.99961 0.96237 0.98275 0.58707 0.61796<.0001 <.0001 <.0001 <.0001 <.0001 <.0001 <.0001 <.0001

mpfr 0.28881 -0.46645 0.97085 0.96486 0.99848 0.95918 0.62110 0.67362<.0001 <.0001 <.0001 <.0001 <.0001 <.0001 <.0001 <.0001

mmst 0.20301 -0.50631 0.97231 0.97090 0.95080 0.97453 0.59207 0.61281 0.0031 <.0001 <.0001 <.0001 <.0001 <.0001 <.0001 <.0001

mmspa 0.19402 -0.49290 0.96850 0.96737 0.94385 0.97194 0.59000 0.60826 0.0048 <.0001 <.0001 <.0001 <.0001 <.0001 <.0001 <.0001

mmsr 0.26625 -0.62722 0.96084 0.95684 0.96043 0.95337 0.59272 0.62708<.0001 <.0001 <.0001 <.0001 <.0001 <.0001 <.0001 <.0001

mpmspa -1.00000 0.08122 -0.36556 -0.37402 -0.28672 -0.30160 -0.05076 -0.10593<.0001 0.2412 <.0001 <.0001 <.0001 <.0001 0.4644 0.1259

mpmsr 0.08128 -1.00000 0.49548 0.49732 0.43425 0.50545 0.24617 0.21107 0.2409 <.0001 <.0001 <.0001 <.0001 <.0001 0.0003 0.0021

mcaa 1.00000 -0.08131 0.36553 0.37398 0.28666 0.30155 0.05078 0.10594 0.2407 <.0001 <.0001 <.0001 <.0001 0.4642 0.1259

mcar -0.08131 1.00000 -0.49548 -0.49732 -0.43425 -0.50546 -0.24617 -0.21099 0.2407 <.0001 <.0001 <.0001 <.0001 0.0003 0.0021

mat 0.36553 -0.49548 1.00000 0.99875 0.96660 0.98242 0.58881 0.62269<.0001 <.0001 <.0001 <.0001 <.0001 <.0001 <.0001

mapa 0.37398 -0.49732 0.99875 1.00000 0.96045 0.98140 0.58854 0.61959<.0001 <.0001 <.0001 <.0001 <.0001 <.0001 <.0001

mar 0.28666 -0.43425 0.96660 0.96045 1.00000 0.95420 0.62461 0.68028<.0001 <.0001 <.0001 <.0001 <.0001 <.0001 <.0001

mfen 0.30155 -0.50546 0.98242 0.98140 0.95420 1.00000 0.58412 0.60646<.0001 <.0001 <.0001 <.0001 <.0001 <.0001 <.0001

minc 0.05078 -0.24617 0.58881 0.58854 0.62461 0.58412 1.00000 0.94865 0.4642 0.0003 <.0001 <.0001 <.0001 <.0001 <.0001

msev 0.10594 -0.21099 0.62269 0.61959 0.68028 0.60646 0.94865 1.00000 0.1259 0.0021 <.0001 <.0001 <.0001 <.0001 <.0001


Marengo (CAM)

PRUEBA DE FRIEDMAN Y COMPARACION DE TRATAMIENTOS MEDIANTE TUKEY APLICADA A RANGOS CONTINUAS 1882 00:00 Tuesday, July 1, 2008

-------------------------------------------- tie=1 ---------------------------------------------

Procedimiento GLM

Información de nivel de clase

Clase Niveles Valores

blo 5 1 2 3 4 5

tra 6 0 1 2 3 4 5

Número de observaciones leídas 30 Número de observaciones usadas 30


-------------------------------------------- tie=1 ---------------------------------------------

Procedimiento GLM

Variable dependiente: kalt Rango para la variable malt

Suma de Cuadrado de Fuente DF cuadrados la media F-Valor Pr > F

Modelo 9 19.90000000 2.21111111 0.66 0.7311

Error 20 66.60000000 3.33000000

Total corregido 29 86.50000000

R-cuadrado Coef Var Raíz MSE kalt Media

0.230058 52.13796 1.824829 3.500000

Cuadrado de Fuente DF Tipo I SS la media F-Valor Pr > F

blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 19.90000000 3.98000000 1.20 0.3469

Cuadrado de Fuente DF Tipo III SS la media F-Valor Pr > F

blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 19.90000000 3.98000000 1.20 0.3469


PRUEBA DE FRIEDMAN Y COMPARACION DE TRATAMIENTOS MEDIANTE TUKEY APLICADA A RANGOS CONTINUAS 1884 00:00 Tuesday, July 1, 2008-------------------------------------------- tie=1 ---------------------------------------------

Procedimiento GLM

Variable dependiente: kpft Rango para la variable mpft


Modelo 9 30.50000000 3.38888889 1.37 0.2657

Error 20 49.50000000 2.47500000


R-cuadrado Coef Var Raíz MSE kpft Media

0.381250 44.94895 1.573213 3.500000


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 30.50000000 6.10000000 2.46 0.0679


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 30.50000000 6.10000000 2.46 0.0679


Procedimiento GLM

Variable dependiente: kpfpa Rango para la variable mpfpa


Modelo 9 26.20000000 2.91111111 1.02 0.4601

Error 20 57.30000000 2.86500000


R-cuadrado Coef Var Raíz MSE kpfpa Media

0.313772 48.36089 1.692631 3.500000


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 26.20000000 5.24000000 1.83 0.1528



Marengo (CAM)

blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 26.20000000 5.24000000 1.83 0.1528PRUEBA DE FRIEDMAN Y COMPARACION DE TRATAMIENTOS MEDIANTE TUKEY APLICADA A RANGOS CONTINUAS 1886 00:00 Tuesday, July 1, 2008-------------------------------------------- tie=1 ---------------------------------------------

Procedimiento GLM

Variable dependiente: kpfr Rango para la variable mpfr


Modelo 9 17.60000000 1.95555556 0.64 0.7529

Error 20 61.40000000 3.07000000


R-cuadrado Coef Var Raíz MSE kpfr Media

0.222785 50.06119 1.752142 3.500000


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 17.60000000 3.52000000 1.15 0.3690


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 17.60000000 3.52000000 1.15 0.3690


Procedimiento GLMVariable dependiente: kmst Rango para la variable mmst


Modelo 9 34.70000000 3.85555556 1.46 0.2291

Error 20 52.80000000 2.64000000


R-cuadrado Coef Var Raíz MSE kmst Media

0.396571 46.42308 1.624808 3.500000


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 34.70000000 6.94000000 2.63 0.0553




Procedimiento GLM

Variable dependiente: kmspa Rango para la variable mmspa


Modelo 9 8.30000000 0.92222222 0.23 0.9852

Error 20 79.20000000 3.96000000


R-cuadrado Coef Var Raíz MSE kmspa Media

0.094857 56.85642 1.989975 3.500000


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 8.30000000 1.66000000 0.42 0.8298


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 8.30000000 1.66000000 0.42 0.8298


-------------------------------------------- tie=1 ---------------------------------------------

Procedimiento GLM

Variable dependiente: kmsr Rango para la variable mmsr


Modelo 9 32.20000000 3.57777778 1.31 0.2942

Error 20 54.80000000 2.74000000


R-cuadrado Coef Var Raíz MSE kmsr Media

0.370115 47.29413 1.655295 3.500000


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 32.20000000 6.44000000 2.35 0.0783


Marengo (CAM)


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 32.20000000 6.44000000 2.35 0.0783PRUEBA DE FRIEDMAN Y COMPARACION DE TRATAMIENTOS MEDIANTE TUKEY APLICADA A RANGOS CONTINUAS 1890 00:00 Tuesday, July 1, 2008

-------------------------------------------- tie=1 ---------------------------------------------

Procedimiento GLM

Variable dependiente: kpmspa Rango para la variable mpmspa


Modelo 9 18.70000000 2.07777778 0.60 0.7792

Error 20 68.80000000 3.44000000


R-cuadrado Coef Var Raíz MSE kpmspa Media

0.213714 52.99211 1.854724 3.500000


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 18.70000000 3.74000000 1.09 0.3976


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 18.70000000 3.74000000 1.09 0.3976


Procedimiento GLM

Variable dependiente: kpmsr Rango para la variable mpmsr


Modelo 9 27.10000000 3.01111111 1.00 0.4731

Error 20 60.40000000 3.02000000


R-cuadrado Coef Var Raíz MSE kpmsr Media

0.309714 49.65185 1.737815 3.500000 Cuadrado de Fuente DF Tipo I SS la media F-Valor Pr > F


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 27.10000000 5.42000000 1.79 0.1598



Procedimiento GLM

Variable dependiente: kcaa Rango para la variable mcaa


Modelo 9 18.70000000 2.07777778 0.60 0.7792

Error 20 68.80000000 3.44000000


R-cuadrado Coef Var Raíz MSE kcaa Media

0.213714 52.99211 1.854724 3.500000


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 18.70000000 3.74000000 1.09 0.3976


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 18.70000000 3.74000000 1.09 0.3976


Procedimiento GLM

Variable dependiente: kcar Rango para la variable mcar


Modelo 9 27.10000000 3.01111111 1.00 0.4731

Error 20 60.40000000 3.02000000


R-cuadrado Coef Var Raíz MSE kcar Media

0.309714 49.65185 1.737815 3.500000

Cuadrado de


Marengo (CAM)

Fuente DF Tipo I SS la media F-Valor Pr > F

blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 27.10000000 5.42000000 1.79 0.1598



Procedimiento GLMVariable dependiente: kat Rango para la variable mat


Modelo 9 29.90000000 3.32222222 1.15 0.3738

Error 20 57.60000000 2.88000000


R-cuadrado Coef Var Raíz MSE kat Media

0.341714 48.48732 1.697056 3.500000


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 29.90000000 5.98000000 2.08 0.1110


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 29.90000000 5.98000000 2.08 0.1110

PRUEBA DE FRIEDMAN Y COMPARACION DE TRATAMIENTOS MEDIANTE TUKEY APLICADA A RANGOS CONTINUAS 1895 00:00 Tuesday, July 1, 2008-------------------------------------------- tie=1 --------------------------------------------- Procedimiento GLM

Variable dependiente: kapa Rango para la variable mapa


Modelo 9 21.80000000 2.42222222 0.74 0.6668

Error 20 65.20000000 3.26000000


R-cuadrado Coef Var Raíz MSE kapa Media

0.250575 51.58706 1.805547 3.500000



blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 21.80000000 4.36000000 1.34 0.2891


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 21.80000000 4.36000000 1.34 0.2891


Marengo (CAM)


Procedimiento GLM

Variable dependiente: kar Rango para la variable mar


Modelo 9 26.30000000 2.92222222 0.95 0.5028

Error 20 61.20000000 3.06000000


R-cuadrado Coef Var Raíz MSE kar Media

0.300571 49.97959 1.749286 3.500000 Cuadrado de Fuente DF Tipo I SS la media F-Valor Pr > F

blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 26.30000000 5.26000000 1.72 0.1763


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 26.30000000 5.26000000 1.72 0.1763


Procedimiento GLM

Variable dependiente: kfen Rango para la variable mfen


Modelo 9 19.50000000 2.16666667 0.67 0.7289

Error 20 65.00000000 3.25000000


R-cuadrado Coef Var Raíz MSE kfen Media

0.230769 51.50788 1.802776 3.500000


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 19.50000000 3.90000000 1.20 0.3448



blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 19.50000000 3.90000000 1.20 0.3448

100

Manejo de la hernia de la col (Plasmodiophora brassicae Woron) en el cultivo de repollo (Brassica oleracea L.) en el Centro Agropecuario

Marengo (CAM)


Procedimiento GLM

Variable dependiente: kinc Rango para la variable minc


Modelo 9 0 0 . .

Error 20 0 0

Total corregido 29 0

R-cuadrado Coef Var Raíz MSE kinc Media

0.000000 0 0 3.500000


blo 4 0 0 . . tra 5 0 0 . .


blo 4 0 0 . . tra 5 0 0 . .


Procedimiento GLM

Variable dependiente: ksev Rango para la variable msev


Modelo 9 0 0 . .

Error 20 0 0

Total corregido 29 0

R-cuadrado Coef Var Raíz MSE ksev Media

0.000000 0 0 3.500000


blo 4 0 0 . . tra 5 0 0 . .



blo 4 0 0 . . tra 5 0 0 . .PRUEBA DE FRIEDMAN Y COMPARACION DE TRATAMIENTOS MEDIANTE TUKEY APLICADA A RANGOS CONTINUAS 1900 00:00 Tuesday, July 1, 2008-------------------------------------------- tie=1 ---------------------------------------------

Procedimiento GLM

Prueba del rango estudentizado de Tukey (HSD) para kalt

NOTA: Este test controla el índice de error experimentwise de tipo I, pero normalmente tiene un índice de error de tipo II más elevado que REGWQ.

Alpha 0.05 Error Degrees of Freedom 20Error de cuadrado medio 3.33 Valor crítico del rango estudentizado 4.44524 Diferencia significativa mínima 3.6277

Medias con la misma letra no son significativamente diferentes.

Tukey Agrupamiento Media N tra

A 4.400 5 0 A A 4.400 5 4 A A 3.700 5 5 A A 3.500 5 1 A A 2.900 5 3 A A 2.100 5 2


Procedimiento GLM

Prueba del rango estudentizado de Tukey (HSD) para kpft





A 4.9000 5 0 A A 4.9000 5 1 A A 3.0000 5 5 A

102


Marengo (CAM)

A 2.9000 5 4 A A 2.9000 5 3 A A 2.4000 5 2PRUEBA DE FRIEDMAN Y COMPARACION DE TRATAMIENTOS MEDIANTE TUKEY APLICADA A RANGOS CONTINUAS 1902 00:00 Tuesday, July 1, 2008-------------------------------------------- tie=1 ---------------------------------------------

Procedimiento GLM

Prueba del rango estudentizado de Tukey (HSD) para kpfpa





A 5.000 5 0 A A 4.400 5 1 A A 3.500 5 5 A A 3.100 5 3 A A 2.600 5 2 A A 2.400 5 4


Procedimiento GLM

Prueba del rango estudentizado de Tukey (HSD) para kpfr





A 4.600 5 0 A A 4.100 5 1 A A 3.800 5 5


A A 3.400 5 4 A A 2.700 5 2 A A 2.400 5 3

104


Marengo (CAM)


Procedimiento GLM

Prueba del rango estudentizado de Tukey (HSD) para kmst





A 4.800 5 0 A A 4.600 5 5 A A 3.800 5 3 A A 3.200 5 1 A A 3.000 5 4 A A 1.600 5 2


Prueba del rango estudentizado de Tukey (HSD) para kmspa





A 4.200 5 5 A A 4.000 5 0 A A 3.600 5 1 A A 3.400 5 3 A


A 3.200 5 4 A A 2.600 5 2

106


Marengo (CAM)


Procedimiento GLM

Prueba del rango estudentizado de Tukey (HSD) para kmsr





A 5.300 5 0 A A 4.400 5 5 A A 3.400 5 3 A A 2.900 5 4 A A 2.600 5 1 A A 2.400 5 2


Procedimiento GLM

Prueba del rango estudentizado de Tukey (HSD) para kpmspa





A 5.000 5 3 A A 3.800 5 0 A A 3.600 5 4 A A 3.200 5 2 A A 2.800 5 5 A


A 2.600 5 1

108


Marengo (CAM)


Procedimiento GLM

Prueba del rango estudentizado de Tukey (HSD) para kpmsr





A 4.600 5 0 A A 4.600 5 3 A A 4.000 5 5 A A 3.000 5 2 A A 2.600 5 4 A A 2.200 5 1PRUEBA DE FRIEDMAN Y COMPARACION DE TRATAMIENTOS MEDIANTE TUKEY APLICADA A RANGOS CONTINUAS 1909 00:00 Tuesday, July 1, 2008

-------------------------------------------- tie=1 ---------------------------------------------

Procedimiento GLM

Prueba del rango estudentizado de Tukey (HSD) para kcaa





A 4.400 5 1 A A 4.200 5 5 A A 3.800 5 2 A A 3.400 5 4


A A 3.200 5 0 A A 2.000 5 3PRUEBA DE FRIEDMAN Y COMPARACION DE TRATAMIENTOS MEDIANTE TUKEY APLICADA A RANGOS CONTINUAS 1910 00:00 Tuesday, July 1, 2008-------------------------------------------- tie=1 ---------------------------------------------

Procedimiento GLM

Prueba del rango estudentizado de Tukey (HSD) para kcar





A 4.800 5 1 A A 4.400 5 4 A A 4.000 5 2 A A 3.000 5 5 A A 2.400 5 0 A A 2.400 5 3PRUEBA DE FRIEDMAN Y COMPARACION DE TRATAMIENTOS MEDIANTE TUKEY APLICADA A RANGOS CONTINUAS 1911 00:00 Tuesday, July 1, 2008-------------------------------------------- tie=1 ---------------------------------------------

Procedimiento GLM

Prueba del rango estudentizado de Tukey (HSD) para kat





A 5.000 5 1 A A 4.800 5 0 A A 3.000 5 5 A

110


Marengo (CAM)


Procedimiento GLM

Prueba del rango estudentizado de Tukey (HSD) para kapa





A 5.000 5 0 A A 4.200 5 1 A A 3.400 5 5 A A 3.000 5 2 A A 2.900 5 3 A A 2.500 5 4


Procedimiento GLM

Prueba del rango estudentizado de Tukey (HSD) para kar





A 4.600 5 1 A


A 4.400 5 0 A A 3.800 5 5 A A 3.400 5 4 A A 3.000 5 2 A A 1.800 5 3PRUEBA DE FRIEDMAN Y COMPARACION DE TRATAMIENTOS MEDIANTE TUKEY APLICADA A RANGOS CONTINUAS 1914 00:00 Tuesday, July 1, 2008-------------------------------------------- tie=1 --------------------------------------------- Procedimiento GLM

Prueba del rango estudentizado de Tukey (HSD) para kfen





A 5.000 5 0 A A 4.100 5 1 A A 3.300 5 3 A A 3.000 5 5 A A 2.900 5 2 A A 2.700 5 4


Procedimiento GLM

Prueba del rango estudentizado de Tukey (HSD) para kinc


Alpha 0.05 Error Degrees of Freedom 20Error de cuadrado medio 0 Valor crítico del rango estudentizado 4.44524 Diferencia significativa mínima 0



A 3.500 5 0 A

112


Marengo (CAM)

A 3.500 5 1 A A 3.500 5 2 A A 3.500 5 3 A A 3.500 5 4 A A 3.500 5 5



Procedimiento GLM

Prueba del rango estudentizado de Tukey (HSD) para ksev





A 3.500 5 0 A A 3.500 5 1 A A 3.500 5 2 A A 3.500 5 3 A A 3.500 5 4 A A 3.500 5 5



Clase Niveles Valores blo 5 1 2 3 4 5 tra 6 0 1 2 3 4 5



Procedimiento GLM

Variable dependiente: kalt Rango para la variable malt Suma de Cuadrado de Fuente DF cuadrados la media F-Valor Pr > F Modelo 9 13.90000000 1.54444444 0.43 0.9058 Error 20 72.60000000 3.63000000 Total corregido 29 86.50000000

114


Marengo (CAM)

R-cuadrado Coef Var Raíz MSE kalt Media 0.160694 54.43588 1.905256 3.500000


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 13.90000000 2.78000000 0.77 0.5851


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 13.90000000 2.78000000 0.77 0.5851

PRUEBA DE FRIEDMAN Y COMPARACION DE TRATAMIENTOS MEDIANTE TUKEY APLICADA A RANGOS CONTINUAS 1919 00:00 Tuesday, July 1, 2008-------------------------------------------- tie=2 --------------------------------------------- Procedimiento GLMVariable dependiente: kpft Rango para la variable mpft

Suma de Cuadrado de Fuente DF cuadrados la media F-Valor Pr > F Modelo 9 25.90000000 2.87777778 0.93 0.5177 Error 20 61.60000000 3.08000000 Total corregido 29 87.50000000

R-cuadrado Coef Var Raíz MSE kpft Media 0.296000 50.14265 1.754993 3.500000

Cuadrado de Fuente DF Tipo I SS la media F-Valor Pr > F blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 25.90000000 5.18000000 1.68 0.1850


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 25.90000000 5.18000000 1.68 0.1850





0.282286 50.62870 1.772005 3.500000


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 24.70000000 4.94000000 1.57 0.2130




Procedimiento GLM



R-cuadrado Coef Var Raíz MSE kpfr Media

0.241143 52.05962 1.822087 3.500000


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 21.10000000 4.22000000 1.27 0.3149


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 21.10000000 4.22000000 1.27 0.3149


-------------------------------------------- tie=2 ---------------------------------------------

Procedimiento GLM

Variable dependiente: kmst Rango para la variable mmst


R-cuadrado Coef Var Raíz MSE kmst Media 0.328000 48.98979 1.714643 3.500000


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 28.70000000 5.74000000 1.95 0.1303


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000

116


Marengo (CAM)

tra 5 28.70000000 5.74000000 1.95 0.1303



Procedimiento GLMVariable dependiente: kmspa Rango para la variable mmspa



0.328000 48.98979 1.714643 3.500000


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 28.70000000 5.74000000 1.95 0.1303


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 28.70000000 5.74000000 1.95 0.1303


Procedimiento GLM




0.474286 43.33072 1.516575 3.500000


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 41.50000000 8.30000000 3.61 0.0173


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 41.50000000 8.30000000 3.61 0.0173

118


Marengo (CAM)


Procedimiento GLM



R-cuadrado Coef Var Raíz MSE kpmspa Media 0.213714 52.99211 1.854724 3.500000


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 18.70000000 3.74000000 1.09 0.3976


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 18.70000000 3.74000000 1.09 0.3976


Procedimiento GLM



R-cuadrado Coef Var Raíz MSE kpmsr Media 0.195429 53.60475 1.876166 3.500000


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 17.10000000 3.42000000 0.97 0.4587


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 17.10000000 3.42000000 0.97 0.4587



Procedimiento GLM



R-cuadrado Coef Var Raíz MSE kcaa Media 0.213714 52.99211 1.854724 3.500000


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 18.70000000 3.74000000 1.09 0.3976


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 18.70000000 3.74000000 1.09 0.3976


Procedimiento GLM



R-cuadrado Coef Var Raíz MSE kcar Media 0.195429 53.60475 1.876166 3.500000


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 17.10000000 3.42000000 0.97 0.4587


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 17.10000000 3.42000000 0.97 0.4587

120


Marengo (CAM)


Procedimiento GLM

Variable dependiente: kat Rango para la variable mat


R-cuadrado Coef Var Raíz MSE kat Media 0.309714 49.65185 1.737815 3.500000


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 27.10000000 5.42000000 1.79 0.1598


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 27.10000000 5.42000000 1.79 0.1598


Procedimiento GLM



R-cuadrado Coef Var Raíz MSE kapa Media 0.291429 50.30519 1.760682 3.500000


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 25.50000000 5.10000000 1.65 0.1940


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 25.50000000 5.10000000 1.65 0.1940



Procedimiento GLM



R-cuadrado Coef Var Raíz MSE kar Media 0.354023 47.89444 1.676305 3.500000


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 30.80000000 6.16000000 2.19 0.0958


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 30.80000000 6.16000000 2.19 0.0958


Procedimiento GLM



R-cuadrado Coef Var Raíz MSE kfen Media

0.180838 52.83783 1.849324 3.500000


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 15.10000000 3.02000000 0.88 0.5105


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 15.10000000 3.02000000 0.88 0.5105

122


Marengo (CAM)


-------------------------------------------- tie=2 ---------------------------------------------

Procedimiento GLM


Suma de Cuadrado de Fuente DF cuadrados la media F-Valor Pr > F Modelo 9 0 0 . . Error 20 0 0 Total corregido 29 0

R-cuadrado Coef Var Raíz MSE kinc Media 0.000000 0 0 3.500000


blo 4 0 0 . . tra 5 0 0 . .


blo 4 0 0 . . tra 5 0 0 . .


Procedimiento GLM


Suma de Cuadrado de Fuente DF cuadrados la media F-Valor Pr > F Modelo 9 0 0 . . Error 20 0 0 Total corregido 29 0

R-cuadrado Coef Var Raíz MSE ksev Media 0.000000 0 0 3.500000


blo 4 0 0 . . tra 5 0 0 . .


blo 4 0 0 . . tra 5 0 0 . .



Procedimiento GLM






A 4.600 5 3 A A 4.000 5 1 A A 3.800 5 2 A A 3.000 5 5 A A 2.800 5 0 A A 2.800 5 4


Procedimiento GLM






A 4.800 5 3 A A 4.200 5 5 A A 3.600 5 1 A A 3.400 5 2 A A 3.200 5 0 A

124


Marengo (CAM)

A 1.800 5 4PRUEBA DE FRIEDMAN Y COMPARACION DE TRATAMIENTOS MEDIANTE TUKEY APLICADA A RANGOS CONTINUAS 1937 00:00 Tuesday, July 1, 2008-------------------------------------------- tie=2 ---------------------------------------------

Procedimiento GLM Prueba del rango estudentizado de Tukey (HSD) para kpfpa





A 4.600 5 5 A A 4.600 5 3 A A 3.600 5 2 A A 3.400 5 1 A A 2.600 5 0 A A 2.200 5 4


Procedimiento GLM






A 4.800 5 3 A A 4.000 5 5 A A 3.800 5 1 A A 3.400 5 0 A A 2.800 5 2


A A 2.200 5 4

126


Marengo (CAM)


Procedimiento GLM






A 4.800 5 0 A A 4.400 5 3 A A 4.000 5 5 A A 3.200 5 2 A A 2.400 5 4 A A 2.200 5 1


Procedimiento GLM






A 5.200 5 0 A A 4.000 5 3 A A 3.800 5 5 A A 3.200 5 2 A A 2.400 5 4 A


A 2.400 5 1

128


Marengo (CAM)


Procedimiento GLM






A 5.6000 5 3 A

B A 4.6000 5 5 B A B A 2.8000 5 0 B A B A 2.8000 5 2 B A B A 2.8000 5 4 B B 2.4000 5 1


Procedimiento GLM Prueba del rango estudentizado de Tukey (HSD) para kpmspa





A 5.200 5 0 A A 3.600 5 5 A A 3.200 5 2 A A 3.000 5 3 A A 3.000 5 4 A A 3.000 5 1

130


Marengo (CAM)


Procedimiento GLM






A 4.600 5 5 A A 4.400 5 3 A A 3.400 5 2 A A 3.200 5 0 A A 2.800 5 4 A A 2.600 5 1


Procedimiento GLM






A 4.000 5 4 A A 4.000 5 1 A A 4.000 5 3 A A 3.800 5 2 A A 3.400 5 5


A A 1.800 5 0

132


Marengo (CAM)


Procedimiento GLM






A 4.400 5 1 A A 4.200 5 4 A A 3.800 5 0 A A 3.600 5 2 A A 2.600 5 3 A A 2.400 5 5


Procedimiento GLM Prueba del rango estudentizado de Tukey (HSD) para kat





A 4.800 5 3 A A 4.400 5 5 A A 3.800 5 1 A A 3.200 5 2 A A 2.800 5 0


A A 2.000 5 4

134


Marengo (CAM)


Procedimiento GLM






A 4.600 5 5 A A 4.600 5 3 A A 3.800 5 2 A A 3.200 5 1 A A 2.600 5 0 A A 2.200 5 4


Procedimiento GLM






A 4.800 5 3 A A 4.600 5 1 A A 3.800 5 5 A A 3.300 5 0 A


A 2.300 5 2 A A 2.200 5 4PRUEBA DE FRIEDMAN Y COMPARACION DE TRATAMIENTOS MEDIANTE TUKEY APLICADA A RANGOS CONTINUAS 1949 00:00 Tuesday, July 1, 2008-------------------------------------------- tie=2 ---------------------------------------------

Procedimiento GLM






A 5.000 5 5 A A 3.700 5 4 A A 3.100 5 2 A A 3.100 5 3 A A 3.100 5 0 A A 3.000 5 1


Procedimiento GLM






A 3.500 5 0 A A 3.500 5 1 A A 3.500 5 2 A A 3.500 5 3 A

136


Marengo (CAM)

A 3.500 5 4 A A 3.500 5 5


Procedimiento GLM






A 3.500 5 0 A A 3.500 5 1 A A 3.500 5 2 A A 3.500 5 3 A A 3.500 5 4 A A 3.500 5 5


Procedimiento GLM Información de nivel de clase


blo 5 1 2 3 4 5 tra 6 0 1 2 3 4 5



Procedimiento GLM




Modelo 9 10.40000000 1.15555556 0.30 0.9655 Error 20 76.60000000 3.83000000 Total corregido 29 87.00000000



blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 10.40000000 2.08000000 0.54 0.7415


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 10.40000000 2.08000000 0.54 0.7415

PRUEBA DE FRIEDMAN Y COMPARACION DE TRATAMIENTOS MEDIANTE TUKEY APLICADA A RANGOS CONTINUAS 1954 00:00 Tuesday, July 1, 2008-------------------------------------------- tie=3 --------------------------------------------- Procedimiento GLMVariable dependiente: kpft Rango para la variable mpft




blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 8.30000000 1.66000000 0.42 0.8298


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 8.30000000 1.66000000 0.42 0.8298





0.094857 56.85642 1.989975 3.500000

138


Marengo (CAM)


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 8.30000000 1.66000000 0.42 0.8298



Procedimiento GLMVariable dependiente: kpfr Rango para la variable mpfr


R-cuadrado Coef Var Raíz MSE kpfr Media 0.090286 56.99982 1.994994 3.500000


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 7.90000000 1.58000000 0.40 0.8451


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 7.90000000 1.58000000 0.40 0.8451


Procedimiento GLM





blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 16.70000000 3.34000000 0.94 0.4747



blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 16.70000000 3.34000000 0.94 0.4747

140


Marengo (CAM)


Procedimiento GLM



R-cuadrado Coef Var Raíz MSE kmspa Media 0.181714 54.05968 1.892089 3.500000


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 15.90000000 3.18000000 0.89 0.5073


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 15.90000000 3.18000000 0.89 0.5073


Procedimiento GLM



R-cuadrado Coef Var Raíz MSE kmsr Media 0.406977 45.62491 1.596872 3.500000


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 35.00000000 7.00000000 2.75 0.0479


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 35.00000000 7.00000000 2.75 0.0479



Procedimiento GLM





blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 23.90000000 4.78000000 1.50 0.2333


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 23.90000000 4.78000000 1.50 0.2333


Procedimiento GLM





blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 13.50000000 2.70000000 0.73 0.6094


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 13.50000000 2.70000000 0.73 0.6094

142


Marengo (CAM)


Procedimiento GLM





blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 23.90000000 4.78000000 1.50 0.2333


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 23.90000000 4.78000000 1.50 0.2333


Procedimiento GLM





blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 13.50000000 2.70000000 0.73 0.6094


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 13.50000000 2.70000000 0.73 0.6094



Procedimiento GLM





blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 6.30000000 1.26000000 0.31 0.9009


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 6.30000000 1.26000000 0.31 0.9009


Procedimiento GLM



R-cuadrado Coef Var Raíz MSE kapa Media

0.049143 58.27451 2.039608 3.500000


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 4.30000000 0.86000000 0.21 0.9558


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 4.30000000 0.86000000 0.21 0.9558

144


Marengo (CAM)


Procedimiento GLM





blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 6.30000000 1.26000000 0.31 0.9009


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 6.30000000 1.26000000 0.31 0.9009


Procedimiento GLM



R-cuadrado Coef Var Raíz MSE kfen Media 0.200000 15.64922 0.547723 3.500000


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 1.50000000 0.30000000 1.00 0.4430


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 1.50000000 0.30000000 1.00 0.4430



Procedimiento GLM



R-cuadrado Coef Var Raíz MSE kinc Media 0.269863 46.64236 1.632483 3.500000


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 19.70000000 3.94000000 1.48 0.2409


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 19.70000000 3.94000000 1.48 0.2409


Procedimiento GLM



R-cuadrado Coef Var Raíz MSE ksev Media 0.356291 44.53845 1.558846 3.500000


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 26.90000000 5.38000000 2.21 0.0931


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 26.90000000 5.38000000 2.21 0.0931

146


Marengo (CAM)


Procedimiento GLM






A 4.700 5 4 A A 3.600 5 2 A A 3.400 5 5 A A 3.300 5 1 A A 3.200 5 0 A A 2.800 5 3


Procedimiento GLM






A 4.200 5 4 A A 4.000 5 3 A A 3.800 5 1 A A 3.200 5 0



Procedimiento GLM

Prueba del rango estudentizado de Tukey (HSD) para kpfpa





A 4.200 5 3 A A 4.000 5 4 A A 3.800 5 1 A A 3.200 5 2 A A 3.000 5 0 A A 2.800 5 5


Procedimiento GLM






A 4.200 5 0 A A 3.800 5 5 A A 3.800 5 4 A

148


Marengo (CAM)


Procedimiento GLM






A 4.800 5 4 A A 4.000 5 2 A A 3.400 5 3 A A 3.200 5 1 A A 3.200 5 0 A A 2.400 5 5


Procedimiento GLM






A 4.600 5 4 A A 4.200 5 2 A


A 3.400 5 1 A A 3.400 5 3 A A 3.000 5 0 A A 2.400 5 5

150


Marengo (CAM)


Procedimiento GLM






A 5.000 5 3 A A 4.800 5 4 A A 3.400 5 0 A A 3.100 5 5 A A 2.700 5 1 A A 2.000 5 2


Procedimiento GLM






A 4.800 5 4 A A 4.600 5 2 A A 3.200 5 5 A A 3.200 5 3 A


A 2.800 5 1 A A 2.400 5 0PRUEBA DE FRIEDMAN Y COMPARACION DE TRATAMIENTOS MEDIANTE TUKEY APLICADA A RANGOS CONTINUAS 1978 00:00 Tuesday, July 1, 2008------------------------------------------- tie=3 ---------------------------------------------

Procedimiento GLM






A 4.400 5 3 A A 3.800 5 4 A A 3.800 5 2 A A 3.800 5 5 A A 2.600 5 0 A A 2.600 5 1


Procedimiento GLM






A 4.600 5 0 A A 4.200 5 1 A A 3.800 5 3 A

152


Marengo (CAM)


Procedimiento GLM






A 4.400 5 0 A A 4.400 5 1 A A 3.200 5 2 A A 3.200 5 5 A A 3.200 5 4 A A 2.600 5 3







A 4.200 5 4 A A 3.800 5 1


A A 3.800 5 3 A A 3.200 5 0 A A 3.000 5 2 A A 3.000 5 5PRUEBA DE FRIEDMAN Y COMPARACION DE TRATAMIENTOS MEDIANTE TUKEY APLICADA A RANGOS CONTINUAS 1982 00:00 Tuesday, July 1, 2008-------------------------------------------- tie=3 ---------------------------------------------

Procedimiento GLM Prueba del rango estudentizado de Tukey (HSD) para kapa





A 4.000 5 3 A A 3.800 5 4 A A 3.800 5 1 A A 3.200 5 0 A A 3.200 5 5 A A 3.000 5 2


Procedimiento GLM






A 4.000 5 0 A A 3.800 5 5

154


Marengo (CAM)

A A 3.800 5 4 A A 3.400 5 3 A A 3.400 5 1 A A 2.600 5 2



Procedimiento GLM






A 3.6000 5 0 A A 3.6000 5 1 A A 3.6000 5 4 A A 3.6000 5 3 A A 3.6000 5 5 A A 3.0000 5 2


Procedimiento GLM Prueba del rango estudentizado de Tukey (HSD) para kinc





A 4.900 5 5 A A 4.300 5 0 A A 3.200 5 1 A A 3.000 5 3 A A 2.900 5 2 A A 2.700 5 4

156


Marengo (CAM)


Procedimiento GLM






A 4.9000 5 5 A A 4.7000 5 0 A A 3.1000 5 1 A A 3.0000 5 2 A A 2.9000 5 3 A A 2.4000 5 4






Procedimiento GLM






blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 11.60000000 2.32000000 0.62 0.6895


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 11.60000000 2.32000000 0.62 0.6895


Variable dependiente: kpft Rango para la variable mpft Suma de Cuadrado de Fuente DF cuadrados la media F-Valor Pr > F Modelo 9 3.40000000 0.37777778 0.09 0.9996 Error 20 83.60000000 4.18000000 Total corregido 29 87.00000000



blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 3.40000000 0.68000000 0.16 0.9734


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 3.40000000 0.68000000 0.16 0.9734




R-cuadrado Coef Var Raíz MSE kpfpa Media 0.071264 57.42786 2.009975 3.500000 Cuadrado de Fuente DF Tipo I SS la media F-Valor Pr > F

blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 6.20000000 1.24000000 0.31 0.9030

158


Marengo (CAM)



Procedimiento GLM





blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 8.80000000 1.76000000 0.45 0.8082


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 8.80000000 1.76000000 0.45 0.8082


Procedimiento GLM





blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 4.30000000 0.86000000 0.21 0.9558


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000


tra 5 4.30000000 0.86000000 0.21 0.9558


Procedimiento GLM




0.067429 57.71146 2.019901 3.500000


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 5.90000000 1.18000000 0.29 0.9134


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 5.90000000 1.18000000 0.29 0.9134


Procedimiento GLM




0.296000 50.14265 1.754993 3.500000


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 25.90000000 5.18000000 1.68 0.1850

160


Marengo (CAM)


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 25.90000000 5.18000000 1.68 0.1850



Procedimiento GLM





blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 23.50000000 4.70000000 1.47 0.2440


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 23.50000000 4.70000000 1.47 0.2440


Procedimiento GLM





blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 13.10000000 2.62000000 0.70 0.6269


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 13.10000000 2.62000000 0.70 0.6269

162


Marengo (CAM)


Procedimiento GLM





blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 23.50000000 4.70000000 1.47 0.2440


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 23.50000000 4.70000000 1.47 0.2440


Procedimiento GLM





blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 13.10000000 2.62000000 0.70 0.6269


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 13.10000000 2.62000000 0.70 0.6269





R-cuadrado Coef Var Raíz MSE kat Media 0.058286 57.99367 2.029778 3.500000 Cuadrado de Fuente DF Tipo I SS la media F-Valor Pr > F

blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 5.10000000 1.02000000 0.25 0.9361


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 5.10000000 1.02000000 0.25 0.9361


Procedimiento GLM

Variable dependiente: kapa Rango para la variable mapa Suma de Cuadrado de Fuente DF cuadrados la media F-Valor Pr > F Modelo 9 8.30000000 0.92222222 0.23 0.9852 Error 20 79.20000000 3.96000000 Total corregido 29 87.50000000

R-cuadrado Coef Var Raíz MSE kapa Media 0.094857 56.85642 1.989975 3.500000 Cuadrado de Fuente DF Tipo I SS la media F-Valor Pr > F

blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 8.30000000 1.66000000 0.42 0.8298


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 8.30000000 1.66000000 0.42 0.8298

PRUEBA DE FRIEDMAN Y COMPARACION DE TRATAMIENTOS MEDIANTE TUKEY APLICADA A RANGOS CONTINUAS 2001 00:00 Tuesday, July 1, 2008-------------------------------------------- tie=4 --------------------------------------------- Procedimiento GLMVariable dependiente: kar Rango para la variable mar


164


Marengo (CAM)

R-cuadrado Coef Var Raíz MSE kar Media 0.059770 57.78214 2.022375 3.500000 Cuadrado de Fuente DF Tipo I SS la media F-Valor Pr > F

blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 5.20000000 1.04000000 0.25 0.9326


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 5.20000000 1.04000000 0.25 0.9326






blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 10.00000000 2.00000000 0.56 0.7269


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 10.00000000 2.00000000 0.56 0.7269






blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 18.30000000 3.66000000 1.18 0.3551




Procedimiento GLM





blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 27.10000000 5.42000000 1.84 0.1506


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 27.10000000 5.42000000 1.84 0.1506


Procedimiento GLM Prueba del rango estudentizado de Tukey (HSD) para kalt





A 4.600 5 1 A A 4.100 5 5 A A 3.200 5 4 A

166


Marengo (CAM)

A 3.100 5 0 A A 3.000 5 2 A A 3.000 5 3



Procedimiento GLM Prueba del rango estudentizado de Tukey (HSD) para kpft





A 4.000 5 0 A A 3.700 5 1 A A 3.600 5 5 A A 3.400 5 4 A A 3.400 5 3 A A 2.900 5 2







A 4.000 5 5 A A 3.900 5 1 A A 3.800 5 0 A A 3.400 5 3 A A 3.200 5 4 A A 2.700 5 2

168


Marengo (CAM)



Procedimiento GLM






A 4.400 5 0 A A 4.000 5 5 A A 3.400 5 4 A A 3.300 5 1 A A 3.100 5 2 A A 2.800 5 3


Procedimiento GLM






A 4.200 5 1 A A 3.800 5 5 A A 3.400 5 0 A A 3.200 5 2 A A 3.200 5 4

170


Marengo (CAM)

A A 3.200 5 3PRUEBA DE FRIEDMAN Y COMPARACION DE TRATAMIENTOS MEDIANTE TUKEY APLICADA A RANGOS CONTINUAS 2010 00:00 Tuesday, July 1, 2008-------------------------------------------- tie=4 ---------------------------------------------

Procedimiento GLM






A 4.400 5 1 A A 3.600 5 5 A A 3.400 5 4 A A 3.400 5 3 A A 3.200 5 0 A A 3.000 5 2


Procedimiento GLM Prueba del rango estudentizado de Tukey (HSD) para kmsr





A 5.400 5 0 A A 3.800 5 1 A A 3.400 5 4 A A 2.800 5 3 A A 2.800 5 2


A A 2.800 5 5

172


Marengo (CAM)







A 5.200 5 2 A A 4.000 5 1 A A 3.400 5 0 A A 3.000 5 3 A A 2.800 5 4 A A 2.600 5 5


Procedimiento GLM






A 4.200 5 0 A A 4.000 5 1 A A 3.800 5 2 A A 3.800 5 4 A



Procedimiento GLM Prueba del rango estudentizado de Tukey (HSD) para kcaa





A 4.400 5 5 A A 4.200 5 4 A A 4.000 5 3 A A 3.600 5 0 A A 3.000 5 1 A A 1.800 5 2


Procedimiento GLM Prueba del rango estudentizado de Tukey (HSD) para kcar





A 4.600 5 5 A A 4.200 5 3 A A 3.200 5 4 A A 3.200 5 2

174


Marengo (CAM)


Procedimiento GLM






A 4.200 5 0 A A 3.800 5 1 A A 3.600 5 5 A A 3.200 5 4 A A 3.200 5 3 A A 3.000 5 2







A 4.000 5 5 A A 3.800 5 0 A A 3.800 5 1


A A 3.600 5 4 A A 3.400 5 3 A A 2.400 5 2

176


Marengo (CAM)


Procedimiento GLM Prueba del rango estudentizado de Tukey (HSD) para kar





A 4.200 5 0 A A 3.800 5 5 A A 3.600 5 1 A A 3.300 5 4 A A 3.100 5 2 A A 3.000 5 3


Procedimiento GLM Prueba del rango estudentizado de Tukey (HSD) para kfen





A 4.600 5 3 A A 3.600 5 0 A A 3.600 5 1 A A 3.300 5 2 A



Procedimiento GLM Prueba del rango estudentizado de Tukey (HSD) para kinc





A 4.700 5 5 A A 4.100 5 3 A A 3.700 5 0 A A 3.400 5 1 A A 2.600 5 4 A A 2.500 5 2


Procedimiento GLM






A 5.300 5 5 A A 3.900 5 3 A A 3.700 5 0 A A 2.900 5 4

178


Marengo (CAM)

A A 2.600 5 2 A A 2.600 5 1



Procedimiento GLM

Información de nivel de clase Clase Niveles Valores blo 5 1 2 3 4 5 tra 6 0 1 2 3 4 5



Procedimiento GLMVariable dependiente: kalt Rango para la variable malt


R-cuadrado Coef Var Raíz MSE kalt Media 0.183908 53.83270 1.884144 3.500000 Cuadrado de Fuente DF Tipo I SS la media F-Valor Pr > F

blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 16.00000000 3.20000000 0.90 0.4994 Cuadrado de Fuente DF Tipo III SS la media F-Valor Pr > F

blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 16.00000000 3.20000000 0.90 0.4994


Procedimiento GLMVariable dependiente: kpft Rango para la variable mpft


R-cuadrado Coef Var Raíz MSE kpft Media 0.163429 54.66036 1.913113 3.500000 Cuadrado de Fuente DF Tipo I SS la media F-Valor Pr > F

blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 14.30000000 2.86000000 0.78 0.5748


180


Marengo (CAM)


Procedimiento GLMVariable dependiente: kpfpa Rango para la variable mpfpa


R-cuadrado Coef Var Raíz MSE kpfpa Media 0.177143 54.21047 1.897367 3.500000


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 15.50000000 3.10000000 0.86 0.5239


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 15.50000000 3.10000000 0.86 0.5239


Procedimiento GLMVariable dependiente: kpfr Rango para la variable mpfr




blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 25.90000000 5.18000000 1.68 0.1850


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 25.90000000 5.18000000 1.68 0.1850


Procedimiento GLM




R-cuadrado Coef Var Raíz MSE kmst Media 0.232000 52.37229 1.833030 3.500000 Cuadrado de Fuente DF Tipo I SS la media F-Valor Pr > F


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 20.30000000 4.06000000 1.21 0.3412


Procedimiento GLMVariable dependiente: kmspa Rango para la variable mmspa


R-cuadrado Coef Var Raíz MSE kmspa Media 0.341714 48.48732 1.697056 3.500000 Cuadrado de Fuente DF Tipo I SS la media F-Valor Pr > F

blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 29.90000000 5.98000000 2.08 0.1110


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 29.90000000 5.98000000 2.08 0.1110


Procedimiento GLMVariable dependiente: kmsr Rango para la variable mmsr




182


Marengo (CAM)


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 21.10000000 4.22000000 1.27 0.3149PRUEBA DE FRIEDMAN Y COMPARACION DE TRATAMIENTOS MEDIANTE TUKEY APLICADA A RANGOS CONTINUAS 2030 00:00 Tuesday, July 1, 2008-------------------------------------------- tie=5 --------------------------------------------- Procedimiento GLM

Variable dependiente: kpmspa Rango para la variable mpmspa Suma de Cuadrado de Fuente DF cuadrados la media F-Valor Pr > F Modelo 9 22.70000000 2.52222222 0.78 0.6381 Error 20 64.80000000 3.24000000 Total corregido 29 87.50000000



blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 22.70000000 4.54000000 1.40 0.2663


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 22.70000000 4.54000000 1.40 0.2663


Procedimiento GLMVariable dependiente: kpmsr Rango para la variable mpmsr




blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 18.70000000 3.74000000 1.09 0.3976


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 18.70000000 3.74000000 1.09 0.3976



Procedimiento GLMVariable dependiente: kcaa Rango para la variable mcaa

Suma de Cuadrado de Fuente DF cuadrados la media F-Valor Pr > F Modelo 9 22.70000000 2.52222222 0.78 0.6381 Error 20 64.80000000 3.24000000 Total corregido 29 87.50000000 R-cuadrado Coef Var Raíz MSE kcaa Media 0.259429 51.42857 1.800000 3.500000 Cuadrado de Fuente DF Tipo I SS la media F-Valor Pr > F

blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 22.70000000 4.54000000 1.40 0.2663


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 22.70000000 4.54000000 1.40 0.2663






blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 18.70000000 3.74000000 1.09 0.3976


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 18.70000000 3.74000000 1.09 0.3976

PRUEBA DE FRIEDMAN Y COMPARACION DE TRATAMIENTOS MEDIANTE TUKEY APLICADA A RANGOS CONTINUAS 2034 00:00 Tuesday, July 1, 2008-------------------------------------------- tie=5 --------------------------------------------- Procedimiento GLMVariable dependiente: kat Rango para la variable mat


184


Marengo (CAM)

R-cuadrado Coef Var Raíz MSE kat Media 0.113143 56.27919 1.969772 3.500000 Cuadrado de Fuente DF Tipo I SS la media F-Valor Pr > F

blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 9.90000000 1.98000000 0.51 0.7652


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 9.90000000 1.98000000 0.51 0.7652



Procedimiento GLMVariable dependiente: kapa Rango para la variable mapa




blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 10.70000000 2.14000000 0.56 0.7313


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 10.70000000 2.14000000 0.56 0.7313

PRUEBA DE FRIEDMAN Y COMPARACION DE TRATAMIENTOS MEDIANTE TUKEY APLICADA A RANGOS CONTINUAS 2036 00:00 Tuesday, July 1, 2008------------------------------------------- tie=5 ---------------------------------------------

Procedimiento GLM



R-cuadrado Coef Var Raíz MSE kar Media

0.296000 50.14265 1.754993 3.500000


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 25.90000000 5.18000000 1.68 0.1850


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 25.90000000 5.18000000 1.68 0.1850

186


Marengo (CAM)


Procedimiento GLMVariable dependiente: kfen Rango para la variable mfen




blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 18.30000000 3.66000000 1.10 0.3925


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 18.30000000 3.66000000 1.10 0.3925


Procedimiento GLM





blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 37.20000000 7.44000000 3.60 0.0174


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 37.20000000 7.44000000 3.60 0.0174



Procedimiento GLM





blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 34.00000000 6.80000000 2.57 0.0598


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 34.00000000 6.80000000 2.57 0.0598







A 4.300 5 3 A A 4.000 5 2 A A 4.000 5 1 A A 3.600 5 0 A A 2.900 5 4 A A 2.200 5 5

188


Marengo (CAM)


Procedimiento GLM






A 4.600 5 1 A A 3.800 5 0 A A 3.800 5 3 A A 3.400 5 5 A A 3.000 5 4 A A 2.400 5 2







A 4.600 5 1 A A 3.800 5 0 A A 3.800 5 3 A A 3.600 5 5 A A 2.800 5 4 A A 2.400 5 2

190


Marengo (CAM)


Procedimiento GLM Prueba del rango estudentizado de Tukey (HSD) para kpfr





A 5.400 5 5 A A 3.600 5 3 A A 3.600 5 1 A A 3.000 5 2 A A 2.800 5 4 A A 2.600 5 0


Procedimiento GLM






A 4.600 5 1 A A 4.400 5 0 A A 3.600 5 3 A A 3.200 5 5 A A 3.000 5 4 A A 2.200 5 2

192


Marengo (CAM)


Procedimiento GLM






A 4.800 5 0 A A 4.800 5 1 A A 3.400 5 3 A A 3.200 5 5 A A 2.600 5 4 A A 2.200 5 2


Procedimiento GLM






A 4.800 5 3 A A 4.200 5 5 A A 3.600 5 1 A A 3.200 5 0 A A 3.000 5 4 A


A 2.200 5 2

194


Marengo (CAM)







A 5.200 5 0 A A 3.800 5 1 A A 3.400 5 4 A A 3.200 5 3 A A 3.000 5 5 A A 2.400 5 2


Procedimiento GLM






A 4.400 5 0 A A 4.400 5 3 A A 3.800 5 2 A A 3.200 5 4 A A 3.000 5 1 A A 2.200 5 5

196


Marengo (CAM)







A 4.600 5 2 A A 4.000 5 5 A A 3.800 5 3 A A 3.600 5 4 A A 3.200 5 1 A A 1.800 5 0


Procedimiento GLM Prueba del rango estudentizado de Tukey (HSD) para kcar





A 4.800 5 5 A A 4.000 5 1 A A 3.800 5 4 A A 3.200 5 2 A A 2.600 5 0 A A 2.600 5 3








A 4.200 5 1 A A 3.800 5 3 A A 3.800 5 5 A A 3.600 5 0 A A 3.200 5 4 A A 2.400 5 2


Procedimiento GLM






A 4.400 5 1 A A 3.800 5 3 A A 3.600 5 0 A A 3.400 5 4 A A 3.400 5 5 A A 2.400 5 2

198


Marengo (CAM)


Procedimiento GLM






A 5.400 5 5 A A 3.600 5 3 A A 3.600 5 1 A A 3.000 5 2 A A 2.800 5 4 A A 2.600 5 0


Procedimiento GLM






A 5.100 5 1 A A 3.700 5 4 A A 3.400 5 2 A A 3.100 5 3 A



Procedimiento GLM






A 4.9000 5 5 A A 4.4000 5 0 A B A 3.8000 5 4 B A B A 3.4000 5 1 B A B A 3.1000 5 2 B B 1.4000 5 3


Procedimiento GLM






A 5.400 5 5A B A 3.700 5 0 B A B A 3.600 5 1 B A B A 3.500 5 4

200


Marengo (CAM)

B A B A 3.000 5 2 B B 1.800 5 3



Procedimiento GLM





Procedimiento GLMVariable dependiente: kalt Rango para la variable malt

Suma de Cuadrado de Fuente DF cuadrados la media F-Valor Pr > F Modelo 9 15.50000000 1.72222222 0.48 0.8721 Error 20 72.00000000 3.60000000




blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 15.50000000 3.10000000 0.86 0.5239


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 15.50000000 3.10000000 0.86 0.5239


Procedimiento GLM

Variable dependiente: kpft Rango para la variable mpft




blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000

202


Marengo (CAM)

tra 5 17.90000000 3.58000000 1.03 0.4276


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 17.90000000 3.58000000 1.03 0.4276


Procedimiento GLM





blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 17.90000000 3.58000000 1.03 0.4276


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 17.90000000 3.58000000 1.03 0.4276


Procedimiento GLM





blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 21.90000000 4.38000000 1.34 0.2899



blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 21.90000000 4.38000000 1.34 0.2899

204


Marengo (CAM)


Procedimiento GLM





blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 15.10000000 3.02000000 0.83 0.5407


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 15.10000000 3.02000000 0.83 0.5407


Procedimiento GLM





blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 15.10000000 3.02000000 0.83 0.5407


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 15.10000000 3.02000000 0.83 0.5407



Procedimiento GLM





blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 23.50000000 4.70000000 1.47 0.2440


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 23.50000000 4.70000000 1.47 0.2440


Procedimiento GLM





blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 16.70000000 3.34000000 0.94 0.4747


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 16.70000000 3.34000000 0.94 0.4747

206


Marengo (CAM)


Procedimiento GLM





blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 48.30000000 9.66000000 4.93 0.0042


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 48.30000000 9.66000000 4.93 0.0042


Procedimiento GLM





blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 16.70000000 3.34000000 0.94 0.4747


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 16.70000000 3.34000000 0.94 0.4747



Procedimiento GLM





blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 48.30000000 9.66000000 4.93 0.0042


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 48.30000000 9.66000000 4.93 0.0042


Procedimiento GLM





blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 17.90000000 3.58000000 1.03 0.4276


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 17.90000000 3.58000000 1.03 0.4276

208


Marengo (CAM)


Procedimiento GLMVariable dependiente: kapa Rango para la variable mapa




blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 20.30000000 4.06000000 1.21 0.3412


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 20.30000000 4.06000000 1.21 0.3412


Procedimiento GLM





blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 21.10000000 4.22000000 1.27 0.3149


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 21.10000000 4.22000000 1.27 0.3149



Procedimiento GLM





blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 14.20000000 2.84000000 0.78 0.5756


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 14.20000000 2.84000000 0.78 0.5756


Procedimiento GLM





blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 29.10000000 5.82000000 2.48 0.0664


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 29.10000000 5.82000000 2.48 0.0664

210


Marengo (CAM)


Procedimiento GLMVariable dependiente: ksev Rango para la variable msev




blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 24.00000000 4.80000000 1.57 0.2129


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 24.00000000 4.80000000 1.57 0.2129


Procedimiento GLM






A 4.400 5 4 A A 4.000 5 3 A A 3.800 5 5 A A 3.600 5 0 A A 3.000 5 1 A A 2.200 5 2



Procedimiento GLM






A 5.000 5 3 A A 3.800 5 0 A A 3.600 5 2 A A 3.000 5 1 A A 2.800 5 4 A A 2.800 5 5







A 5.000 5 3 A A 3.800 5 0 A A 3.600 5 2 A A 3.000 5 1 A A 2.800 5 4 A

212


Marengo (CAM)

A 2.800 5 5



Procedimiento GLM






A 4.600 5 3 A A 4.000 5 1 A A 3.600 5 2 A A 3.600 5 5 A A 3.400 5 0 A A 1.800 5 4


Procedimiento GLM






A 4.600 5 1 A A 3.800 5 0 A A 3.800 5 3 A A 3.600 5 5 A A 2.600 5 2 A

214


Marengo (CAM)


Procedimiento GLM Prueba del rango estudentizado de Tukey (HSD) para kmspa





A 4.600 5 1 A A 3.800 5 0 A A 3.800 5 3 A A 3.600 5 5 A A 2.600 5 2 A A 2.600 5 4


Procedimiento GLM






A 4.400 5 0 A A 4.400 5 2 A A 3.800 5 1 A A 3.800 5 3 A


A 2.400 5 4 A A 2.200 5 5

216


Marengo (CAM)


Procedimiento GLM






A 4.800 5 1 A A 4.000 5 0 A A 3.600 5 5 A A 3.200 5 3 A A 2.800 5 4 A A 2.600 5 2


Procedimiento GLM






A 5.6000 5 0 A A 4.2000 5 4 A B A 3.6000 5 3 B A B A 3.2000 5 1 B A B A 3.0000 5 2


B B 1.4000 5 5

218


Marengo (CAM)


Procedimiento GLM






A 4.400 5 2 A A 4.200 5 4 A A 3.800 5 3 A A 3.400 5 5 A A 3.000 5 0 A A 2.200 5 1


Procedimiento GLM



Alpha 0.05 Error Degrees of Freedom 20 Error de cuadrado medio 1.96 Valor crítico del rango estudentizado 4.44524 Diferencia significativa mínima 2.7832



A 5.6000 5 5 A B A 4.0000 5 2 B A B A 3.8000 5 1 B A B A 3.4000 5 3 B B 2.8000 5 4


B B 1.4000 5 0

220


Marengo (CAM)


Procedimiento GLM






A 5.000 5 3 A A 3.600 5 0 A A 3.600 5 2 A A 3.400 5 1 A A 2.800 5 4 A A 2.600 5 5







A 5.000 5 3 A A 3.800 5 0 A A 3.600 5 2 A A 3.400 5 1 A



Procedimiento GLM






A 4.200 5 1 A A 4.200 5 3 A A 4.000 5 5 A A 3.600 5 2 A A 3.200 5 0 A A 1.800 5 4


Procedimiento GLM






A 4.400 5 1 A A 4.200 5 3 A A 3.800 5 2 A A 3.200 5 5 A

222


Marengo (CAM)

A 2.900 5 4 A A 2.500 5 0



Procedimiento GLM






A 4.5000 5 2 A A 4.2000 5 5 A A 4.1000 5 1 A A 3.8000 5 0 A A 2.7000 5 4 A A 1.7000 5 3







A 4.700 5 2 A A 4.100 5 5 A A 4.000 5 0 A A 3.400 5 1 A A 2.800 5 4 A

224


Marengo (CAM)


Procedimiento GLM



blo 5 1 2 3 4 5 tra 6 0 1 2 3 4 5



Procedimiento GLM





blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 3.60000000 0.72000000 0.17 0.9693


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 3.60000000 0.72000000 0.17 0.9693


Procedimiento GLMVariable dependiente: kpft Rango para la variable mpft





blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 11.50000000 2.30000000 0.61 0.6967


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 11.50000000 2.30000000 0.61 0.6967


-------------------------------------------- tie=7 ---------------------------------------------

Procedimiento GLM





blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 10.70000000 2.14000000 0.56 0.7313


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 10.70000000 2.14000000 0.56 0.7313


Procedimiento GLM





blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000

226


Marengo (CAM)

tra 5 29.10000000 5.82000000 1.99 0.1236



Variable dependiente: kmst Rango para la variable mmst Suma de Cuadrado de Fuente DF cuadrados la media F-Valor Pr > F Modelo 9 35.90000000 3.98888889 1.55 0.1992 Error 20 51.60000000 2.58000000 Total corregido 29 87.50000000

R-cuadrado Coef Var Raíz MSE kmst Media 0.410286 45.89251 1.606238 3.500000 Cuadrado de Fuente DF Tipo I SS la media F-Valor Pr > F

blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 35.90000000 7.18000000 2.78 0.0458


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 35.90000000 7.18000000 2.78 0.0458


Procedimiento GLM





blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 39.50000000 7.90000000 3.29 0.0249


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 39.50000000 7.90000000 3.29 0.0249

PRUEBA DE FRIEDMAN Y COMPARACION DE TRATAMIENTOS MEDIANTE TUKEY APLICADA A RANGOS CONTINUAS 2099


00:00 Tuesday, July 1, 2008-------------------------------------------- tie=7 --------------------------------------------- Procedimiento GLM



R-cuadrado Coef Var Raíz MSE kmsr Media 0.154286 54.95824 1.923538 3.500000 Cuadrado de Fuente DF Tipo I SS la media F-Valor Pr > F

blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 13.50000000 2.70000000 0.73 0.6094


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 13.50000000 2.70000000 0.73 0.6094

PRUEBA DE FRIEDMAN Y COMPARACION DE TRATAMIENTOS MEDIANTE TUKEY APLICADA A RANGOS CONTINUAS 2100 00:00 Tuesday, July 1, 2008-------------------------------------------- tie=7 --------------------------------------------- Procedimiento GLMVariable dependiente: kpmspa Rango para la variable mpmspa


R-cuadrado Coef Var Raíz MSE kpmspa Media 0.401143 46.24690 1.618641 3.500000 Cuadrado de Fuente DF Tipo I SS la media F-Valor Pr > F

blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 35.10000000 7.02000000 2.68 0.0520


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 35.10000000 7.02000000 2.68 0.0520

PRUEBA DE FRIEDMAN Y COMPARACION DE TRATAMIENTOS MEDIANTE TUKEY APLICADA A RANGOS CONTINUAS 2101 00:00 Tuesday, July 1, 2008-------------------------------------------- tie=7 --------------------------------------------- Procedimiento GLMVariable dependiente: kpmsr Rango para la variable mpmsr



228


Marengo (CAM)


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 20.70000000 4.14000000 1.24 0.3279







blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 35.10000000 7.02000000 2.68 0.0520


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 35.10000000 7.02000000 2.68 0.0520


Procedimiento GLMVariable dependiente: kcar Rango para la variable mcar




blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 20.70000000 4.14000000 1.24 0.3279

Cuadrado de


Fuente DF Tipo III SS la media F-Valor Pr > F

blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 20.70000000 4.14000000 1.24 0.3279


Procedimiento GLMVariable dependiente: kat Rango para la variable mat Suma de Cuadrado de Fuente DF cuadrados la media F-Valor Pr > F Modelo 9 11.50000000 1.27777778 0.34 0.9519 Error 20 76.00000000 3.80000000 Total corregido 29 87.50000000



blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 11.50000000 2.30000000 0.61 0.6967


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 11.50000000 2.30000000 0.61 0.6967


Procedimiento GLM





blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 11.50000000 2.30000000 0.61 0.6967


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 11.50000000 2.30000000 0.61 0.6967

PRUEBA DE FRIEDMAN Y COMPARACION DE TRATAMIENTOS MEDIANTE TUKEY APLICADA A RANGOS CONTINUAS 2106

230


Marengo (CAM)

00:00 Tuesday, July 1, 2008-------------------------------------------- tie=7 ---------------------------------------------

Procedimiento GLM





blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 28.70000000 5.74000000 1.95 0.1303


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 28.70000000 5.74000000 1.95 0.1303


Procedimiento GLM





blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 23.70000000 4.74000000 1.53 0.2242


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 23.70000000 4.74000000 1.53 0.2242



Procedimiento GLMVariable dependiente: kinc Rango para la variable minc Suma de Cuadrado de Fuente DF cuadrados la media F-Valor Pr > F Modelo 9 35.90000000 3.98888889 2.09 0.0810 Error 20 38.10000000 1.90500000 Total corregido 29 74.00000000



blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 35.90000000 7.18000000 3.77 0.0144


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 35.90000000 7.18000000 3.77 0.0144


Procedimiento GLMVariable dependiente: ksev Rango para la variable msev




blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 49.10000000 9.82000000 5.25 0.0031


blo 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 tra 5 49.10000000 9.82000000 5.25 0.0031




Alpha 0.05 Error Degrees of Freedom 20

232


Marengo (CAM)

Error de cuadrado medio 4.145 Valor crítico del rango estudentizado 4.44524 Diferencia significativa mínima 4.0474



A 4.200 5 3 A A 3.600 5 0 A A 3.500 5 1 A A 3.300 5 4 A A 3.200 5 2 A A 3.200 5 5



Procedimiento GLM






A 4.400 5 3 A A 4.200 5 4 A A 3.400 5 2 A A 3.200 5 1 A A 3.200 5 5 A A 2.600 5 0







A 4.400 5 3 A A 4.200 5 4 A A 3.400 5 2 A A 3.200 5 1 A A 3.000 5 5 A A 2.800 5 0

234


Marengo (CAM)


Procedimiento GLM






A 4.600 5 3 A A 4.400 5 5 A A 3.800 5 0 A A 3.400 5 4 A A 3.200 5 1 A A 1.600 5 2


Procedimiento GLM






A 5.600 5 3 A B A 4.000 5 1 B A B A 3.600 5 2 B A B A 2.800 5 0 B A


B A 2.600 5 4 B B 2.400 5 5PRUEBA DE FRIEDMAN Y COMPARACION DE TRATAMIENTOS MEDIANTE TUKEY APLICADA A RANGOS CONTINUAS 2115 00:00 Tuesday, July 1, 2008-------------------------------------------- tie=7 ---------------------------------------------

Procedimiento GLM






A 5.8000 5 3 A B A 3.8000 5 1 B A B A 3.6000 5 2 B A B A 2.8000 5 0 B B 2.6000 5 4 B B 2.4000 5 5







A 4.400 5 0 A A 4.200 5 3 A A 3.600 5 5 A A 3.200 5 4 A

236


Marengo (CAM)

A 3.200 5 1 A A 2.400 5 2



Procedimiento GLM






A 5.600 5 3 A A 3.800 5 1 A A 3.600 5 5 A A 3.200 5 2 A A 2.400 5 0 A A 2.400 5 4







A 4.800 5 3 A A 4.000 5 0 A A 3.600 5 2 A A 3.600 5 1 A A 2.800 5 4 A A 2.200 5 5

238


Marengo (CAM)







A 4.600 5 0 A A 4.600 5 4 A A 3.800 5 2 A A 3.400 5 5 A A 3.200 5 1 A A 1.400 5 3


Procedimiento GLM






A 4.800 5 5 A A 4.200 5 4 A A 3.400 5 2 A A 3.400 5 1 A A 3.000 5 0 A


A 2.200 5 3

240


Marengo (CAM)


Procedimiento GLM






A 4.400 5 3 A A 4.200 5 4 A A 3.400 5 2 A A 3.200 5 1 A A 3.200 5 5 A A 2.600 5 0


Procedimiento GLM






A 4.400 5 3 A A 4.200 5 4 A A 3.400 5 2 A A 3.200 5 1 A


A 3.200 5 5 A A 2.600 5 0PRUEBA DE FRIEDMAN Y COMPARACION DE TRATAMIENTOS MEDIANTE TUKEY APLICADA A RANGOS CONTINUAS 2123 00:00 Tuesday, July 1, 2008

-------------------------------------------- tie=7 ---------------------------------------------

Procedimiento GLM






A 4.600 5 3 A A 4.400 5 5 A A 3.600 5 0 A A 3.600 5 1 A A 3.200 5 4 A A 1.600 5 2


Procedimiento GLM






A 4.600 5 3 A A 4.100 5 2 A A 4.000 5 4 A A 3.700 5 1 A

242


Marengo (CAM)

A 2.300 5 0 A A 2.300 5 5



Procedimiento GLM








Procedimiento GLM







244


Marengo (CAM)

PRUEBA DE FRIEDMAN Y COMPARACION DE TRATAMIENTOS MEDIANTE TUKEY APLICADA A RANGOS PH 2127 00:00 Tuesday, July 1, 2008-------------------------------------------- TIE=1 ---------------------------------------------



BLO 5 1 2 3 4 5 TRA 6 0 1 2 3 4 5


PRUEBA DE FRIEDMAN Y COMPARACION DE TRATAMIENTOS MEDIANTE TUKEY APLICADA A RANGOS PH 2128 00:00 Tuesday, July 1, 2008------------------------------------------- TIE=1 ---------------------------------------------

Procedimiento GLM

Variable dependiente: KPH Rango para la variable PH


R-cuadrado Coef Var Raíz MSE KPH Media 0.570286 39.17517 1.371131 3.500000


BLO 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 TRA 5 49.90000000 9.98000000 5.31 0.0029


BLO 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 TRA 5 49.90000000 9.98000000 5.31 0.0029


Procedimiento GLM

Prueba del rango estudentizado de Tukey (HSD) para KPH


Alpha 0.05 Error Degrees of Freedom 20 Error de cuadrado medio 1.88


Valor crítico del rango estudentizado 4.44524 Diferencia significativa mínima 2.7258


Tukey Agrupamiento Media N TRA



Procedimiento GLM Información de nivel de clase Clase Niveles Valores

BLO 5 1 2 3 4 5 TRA 6 0 1 2 3 4 5



Procedimiento GLM





BLO 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 TRA 5 23.20000000 4.64000000 1.47 0.2448


246


Marengo (CAM)

BLO 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 TRA 5 23.20000000 4.64000000 1.47 0.2448



Procedimiento GLM Prueba del rango estudentizado de Tukey (HSD) para KPH





A 4.600 5 5 A A 4.500 5 0 A A 3.800 5 4 A A 3.200 5 1 A A 2.600 5 3 A A 2.300 5 2


Procedimiento GLM


Clase Niveles Valores BLO 5 1 2 3 4 5 TRA 6 0 1 2 3 4 5



Procedimiento GLMVariable dependiente: KPH Rango para la variable PH




248


Marengo (CAM)

BLO 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 TRA 5 35.50000000 7.10000000 2.81 0.0442 Cuadrado de Fuente DF Tipo III SS la media F-Valor Pr > F

BLO 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 TRA 5 35.50000000 7.10000000 2.81 0.0442

PRUEBA DE FRIEDMAN Y COMPARACION DE TRATAMIENTOS MEDIANTE TUKEY APLICADA A RANGOS PH 2135 00:00 Tuesday, July 1, 2008-------------------------------------------- TIE=3 --------------------------------------------- Procedimiento GLM






A 5.600 5 5 A B A 4.000 5 2 B A B A 3.500 5 1 B A B A 2.900 5 3 B A B A 2.700 5 4 B B 2.300 5 0

PRUEBA DE FRIEDMAN Y COMPARACION DE TRATAMIENTOS MEDIANTE TUKEY APLICADA A RANGOS PH 2136 00:00 Tuesday, July 1, 2008-------------------------------------------- TIE=4 --------------------------------------------- Procedimiento GLM Información de nivel de clase



PRUEBA DE FRIEDMAN Y COMPARACION DE TRATAMIENTOS MEDIANTE TUKEY APLICADA A RANGOS PH 2137 00:00 Tuesday, July 1, 2008-------------------------------------------- TIE=4 --------------------------------------------- Procedimiento GLMVariable dependiente: KPH Rango para la variable PH






BLO 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 TRA 5 21.90000000 4.38000000 1.36 0.2823


BLO 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 TRA 5 21.90000000 4.38000000 1.36 0.2823


Procedimiento GLM






A 4.600 5 5 A A 4.300 5 2 A A 3.800 5 1 A A 3.500 5 0 A A 2.500 5 4 A A 2.300 5 3


Procedimiento GLM



Número de observaciones leídas 30

250


Marengo (CAM)

Número de observaciones usadas 30


Procedimiento GLM





BLO 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 TRA 5 33.50000000 6.70000000 2.48 0.0664


BLO 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 TRA 5 33.50000000 6.70000000 2.48 0.0664

PRUEBA DE FRIEDMAN Y COMPARACION DE TRATAMIENTOS MEDIANTE TUKEY APLICADA A RANGOS PH 2141 00:00 Tuesday, July 1, 2008------------------------------------------- TIE=5 ---------------------------------------------

Procedimiento GLM Prueba del rango estudentizado de Tukey (HSD) para KPH





A 4.800 5 5 A A 4.600 5 1 A A 4.200 5 2 A A 2.600 5 4 A A 2.600 5 3 A A 2.200 5 0

252


Marengo (CAM)


Suma de Cuadrado de Fuente DF cuadrados la media F-Valor Pr > F Modelo 9 46.60000000 5.17777778 2.56 0.0382 Error 20 40.40000000 2.02000000 Total corregido 29 87.00000000 R-cuadrado Coef Var Raíz MSE KPH Media 0.535632 40.60763 1.421267 3.500000 Cuadrado de Fuente DF Tipo I SS la media F-Valor Pr > F

BLO 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 TRA 5 46.60000000 9.32000000 4.61 0.0058


BLO 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 TRA 5 46.60000000 9.32000000 4.61 0.0058

PRUEBA DE FRIEDMAN Y COMPARACION DE TRATAMIENTOS MEDIANTE TUKEY APLICADA A RANGOS PH 2144 00:00 Tuesday, July 1, 2008-------------------------------------------- TIE=6 --------------------------------------------- Procedimiento GLM Prueba del rango estudentizado de Tukey (HSD) para KPHNOTA: Este test controla el índice de error experimentwise de tipo I, pero normalmente tiene un índice de error de tipo II más elevado que REGWQ.





PRUEBA DE FRIEDMAN Y COMPARACION DE TRATAMIENTOS MEDIANTE TUKEY APLICADA A RANGOS PH 2145 00:00 Tuesday, July 1, 2008-------------------------------------------- TIE=7 --------------------------------------------- Procedimiento GLM




BLO 5 1 2 3 4 5 TRA 6 0 1 2 3 4 5

Número de observaciones leídas 30 Número de observaciones usadas 30 PRUEBA DE FRIEDMAN Y COMPARACION DE TRATAMIENTOS MEDIANTE TUKEY APLICADA A RANGOS PH 2146 00:00 Tuesday, July 1, 2008-------------------------------------------- TIE=7 ---------------------------------------------

Procedimiento GLM





BLO 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 TRA 5 27.20000000 5.44000000 1.88 0.1426


BLO 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 TRA 5 27.20000000 5.44000000 1.88 0.1426


Procedimiento GLM






A 4.900 5 5 A A 4.400 5 1 A A 3.600 5 3 A A 3.100 5 4 A A 3.000 5 2

254


Marengo (CAM)

A A 2.000 5 0

PRUEBA DE FRIEDMAN Y COMPARACION DE TRATAMIENTOS MEDIANTE TUKEY APLICADA A RANGOS PH 2148 00:00 Tuesday, July 1, 2008-------------------------------------------- TIE=8 --------------------------------------------- Procedimiento GLM Información de nivel de clase







BLO 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 TRA 5 36.60000000 7.32000000 2.90 0.0395


BLO 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 TRA 5 36.60000000 7.32000000 2.90 0.0395

PRUEBA DE FRIEDMAN Y COMPARACION DE TRATAMIENTOS MEDIANTE TUKEY APLICADA A RANGOS PH 2150 00:00 Tuesday, July 1, 2008-------------------------------------------- TIE=8 --------------------------------------------- Procedimiento GLM Prueba del rango estudentizado de Tukey (HSD) para KPH






A 5.000 5 5 A A 4.400 5 2 A A 4.300 5 1 A A 2.800 5 3 A A 2.300 5 0 A A 2.200 5 4 PRUEBA DE FRIEDMAN Y COMPARACION DE TRATAMIENTOS MEDIANTE TUKEY APLICADA A RANGOS PH 2151 00:00 Tuesday, July 1, 2008-------------------------------------------- TIE=9 --------------------------------------------- Procedimiento GLM Información de nivel de clase Clase Niveles Valores BLO 5 1 2 3 4 5 TRA 6 0 1 2 3 4 5






BLO 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 TRA 5 35.10000000 7.02000000 2.73 0.0487


BLO 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 TRA 5 35.10000000 7.02000000 2.73 0.0487

PRUEBA DE FRIEDMAN Y COMPARACION DE TRATAMIENTOS MEDIANTE TUKEY APLICADA A RANGOS PH 2153 00:00 Tuesday, July 1, 2008-------------------------------------------- TIE=9 --------------------------------------------- Procedimiento GLM Prueba del rango estudentizado de Tukey (HSD) para KPHNOTA: Este test controla el índice de error experimentwise de tipo I, pero normalmente tiene un índice de error de tipo II más elevado que REGWQ. Alpha 0.05 Error Degrees of Freedom 20 Error de cuadrado medio 2.57 Valor crítico del rango estudentizado 4.44524 Diferencia significativa mínima 3.187


256


Marengo (CAM)


A 5.400 5 5 A B A 4.300 5 1 B A B A 3.400 5 3 B A B A 3.100 5 2 B A B A 2.700 5 4 B B 2.100 5 0 PRUEBA DE FRIEDMAN Y COMPARACION DE TRATAMIENTOS MEDIANTE TUKEY APLICADA A RANGOS PH 2154 00:00 Tuesday, July 1, 2008-------------------------------------------- TIE=10 -------------------------------------------- Procedimiento GLM Información de nivel de clase



PRUEBA DE FRIEDMAN Y COMPARACION DE TRATAMIENTOS MEDIANTE TUKEY APLICADA A RANGOS PH 2155 00:00 Tuesday, July 1, 2008-------------------------------------------- TIE=10 -------------------------------------------- Procedimiento GLMVariable dependiente: KPH Rango para la variable PH





BLO 4 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 TRA 5 35.80000000 7.16000000 2.80 0.0450

PRUEBA DE FRIEDMAN Y COMPARACION DE TRATAMIENTOS MEDIANTE TUKEY APLICADA A RANGOS PH 2156 00:00 Tuesday, July 1, 2008-------------------------------------------- TIE=10 -------------------------------------------- Procedimiento GLM Prueba del rango estudentizado de Tukey (HSD) para KPHNOTA: Este test controla el índice de error experimentwise de tipo I, pero normalmente tiene un índice de error de tipo II más elevado que REGWQ.

Alpha 0.05 Error Degrees of Freedom 20 Error de cuadrado medio 2.56


Valor crítico del rango estudentizado 4.44524 Diferencia significativa mínima 3.1808



A 5.000 5 5 A B A 4.200 5 1 B A B A 3.900 5 2 B A B A 3.600 5 4 B A B A 2.700 5 3 B B 1.600 5 0 PRUEBA DE FRIEDMAN Y COMPARACION DE TRATAMIENTOS MEDIANTE TUKEY APLICADA A RANGOS TRICHODE 2157 00:00 Tuesday, July 1, 2008


Clase Niveles Valores BLO 3 1 2 3 TRA 6 0 1 2 3 4 5


PRUEBA DE FRIEDMAN Y COMPARACION DE TRATAMIENTOS MEDIANTE TUKEY APLICADA A RANGOS TRICHODE 2158 00:00 Tuesday, July 1, 2008

Procedimiento GLMVariable dependiente: KUFCS2 Rango para la variable UFCS2


R-cuadrado Coef Var Raíz MSE KUFCS2 Media 0.419476 45.92215 1.607275 3.500000



BLO 2 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 TRA 5 18.66666667 3.73333333 1.45 0.2895

PRUEBA DE FRIEDMAN Y COMPARACION DE TRATAMIENTOS MEDIANTE TUKEY APLICADA A RANGOS TRICHODE 2159 00:00 Tuesday, July 1, 2008 Procedimiento GLM

Variable dependiente: KUFCML Rango para la variable UFCML


258


Marengo (CAM)


R-cuadrado Coef Var Raíz MSE KUFCML Media 0.419476 45.92215 1.607275 3.500000


BLO 2 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 TRA 5 18.66666667 3.73333333 1.45 0.2895


BLO 2 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 TRA 5 18.66666667 3.73333333 1.45 0.2895


PRUEBA DE FRIEDMAN Y COMPARACION DE TRATAMIENTOS MEDIANTE TUKEY APLICADA A RANGOS TRICHODE 2160 00:00 Tuesday, July 1, 2008 Procedimiento GLM

Variable dependiente: KNC Rango para la variable NC


R-cuadrado Coef Var Raíz MSE KNC Media 0.428030 45.32573 1.586401 3.500000


BLO 2 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 TRA 5 18.83333333 3.76666667 1.50 0.2742


BLO 2 0.00000000 0.00000000 0.00 1.0000 TRA 5 18.83333333 3.76666667 1.50 0.2742

PRUEBA DE FRIEDMAN Y COMPARACION DE TRATAMIENTOS MEDIANTE TUKEY APLICADA A RANGOS TRICHODE 2161 00:00 Tuesday, July 1, 2008 Procedimiento GLM Prueba del rango estudentizado de Tukey (HSD) para KUFCS2





A 5.667 3 3 A A 3.500 3 4 A A 3.333 3 2 A A 3.167 3 5 A A 2.667 3 0 A A 2.667 3 1

260


Marengo (CAM)

PRUEBA DE FRIEDMAN Y COMPARACION DE TRATAMIENTOS MEDIANTE TUKEY APLICADA A RANGOS TRICHODE 2162 00:00 Tuesday, July 1, 2008 Procedimiento GLM Prueba del rango estudentizado de Tukey (HSD) para KUFCMLNOTA: Este test controla el índice de error experimentwise de tipo I, pero normalmente tiene un índice de error de tipo II más elevado que REGWQ.




A 5.667 3 3 A A 3.500 3 4 A A 3.333 3 2 A A 3.167 3 5 A A 2.667 3 0 A A 2.667 3 1

PRUEBA DE FRIEDMAN Y COMPARACION DE TRATAMIENTOS MEDIANTE TUKEY APLICADA A RANGOS TRICHODE 2163 00:00 Tuesday, July 1, 2008 Procedimiento GLM Prueba del rango estudentizado de Tukey (HSD) para KNC





A 5.667 3 3 A A 3.500 3 4 A A 3.500 3 5 A A 2.833 3 2 A A 2.833 3 1 A A 2.667 3 0

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