universidad católica del trópico seco · 2019. 8. 17. · i universidad católica del trópico...
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Universidad Católica del Trópico Seco
Pbro. Francisco Luis Espinoza Pineda
Informe final de investigación para optar al título profesional de
Medicina Veterinaria y Zootecnia.
Identificación de parásitos gastrointestinales en bovinos de 6 a 24 meses,
MunicipioLa Concordia, Jinotega. Diciembre2014 –Marzo 2015.
Autoras
Xiomara del Carmen Aráuz Díaz
Cristhie Melissa Benavides Lanuza
Tutores:
Lic. MV. Isaac David Pineda Sirias.
Lic. MV. José David Vallejos Rayo.
Asesor:
MsC. Allan Francisco Silva Benavides.
Estelí, Julio del 2015
1
ÍNDICE
Contenido Pág.
DEDICATORIA. ............................................................................................................................................... 3
DEDICATORIA. ............................................................................................................................................... 4
AGRADECIMIENTO. ....................................................................................................................................... 5
I. INTRODUCCIÓN .......................................................................................................................................... 8
II. OBJETIVOS ................................................................................................................................................. 9
III. MARCO TEÓRICO .................................................................................................................................... 10
5.1 Generalidades de los parásitos ......................................................................................................... 10
Clasificación taxonómica de los parásitos ............................................................................................... 10
5.2 Parásitos gastrointestinales .............................................................................................................. 11
5.2.1 Dinámica de los estadios parasitarios ........................................................................................ 22
5.2.2 Ciclo biológico en parásitos gastrointestinales .......................................................................... 22
5.2.3 Patogenia .................................................................................................................................... 23
5.2.4Factores que estimulan la aparición de parásitos en bovinos .................................................... 24
IV. MATERIALES Y MÉTODOS....................................................................................................................... 27
6.1 Ubicación geográfica ......................................................................................................................... 27
6.2 Universo y Población ......................................................................................................................... 28
6.3 Muestra ............................................................................................................................................. 28
6.4Operacionalización de las variables ................................................................................................... 29
6.5Instrumento ........................................................................................................................................ 30
6.6 Aplicación de la técnica para la recolección de datos ....................................................................... 32
6.7Análisis de resultados ......................................................................................................................... 32
VII. RECOMENDACIONES ............................................................................................................................. 49
VIII. ANEXOS ................................................................................................................................................ 50
IX. BIBLIOGRAFÍA ......................................................................................................................................... 57
2
INDICE DE FIGURA
Figura pág.
Figura 1. Géneros de parásitos encontrados ................................................................................... 33
Figura 2. Familia de parásitos encontrados en las muestras .......................................................... 34
Figura 3. Género de parasitos encontrados .................................................................................... 35
Figura 4. Diagnostico clínico ......................................................................................................... 36
Figura 5. Condición corporal ......................................................................................................... 37
Figura 6. Temperatura corporal ...................................................................................................... 39
Figura 7. Frecuencia cardiaca ......................................................................................................... 40
Figura 8. Frecuencia respiratoria .................................................................................................... 41
Figura 9. Pelaje y diagnostico ........................................................................................................ 42
Figura 10. Tipo de explotación y presencia de géneros de parásitos ............................................. 43
Figura 11. Tipo de explotacion y presencia de parasitosis ............................................................. 44
Figura 12. Frecuencia de Desparasitación ...................................................................................... 45
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DEDICATORIA.
A Dios nuestro Padre y creador por darme la vida y la fuerza para seguir adelante a pesar de las
muchas dificultades y permitirme avanzar siempre y alcanzar una meta más en mi vida como es
la culminación de mi carrera universitaria.
A mis abuelos Sr. Humberto Lanuza Montenegro (QEPD) y Sra. Hilda Pérez Pérez quienes con
mucho amor y cariño me acogieron en su hogar y me brindaron su apoyo.
A mis padres mi fuente de inspiración Sr. Amilcar Benavides Cárcamo y la Sra. Lía Isabel
Lanuza Pérez personas trabajadoras que me inculcaron valores y un sin número de conocimientos
y que con sus consejos han hecho de mí una mejor persona. Quienes con mucho esfuerzo y
mucho amor siempre me brindaron su apoyo incondicional en todo momento depositando su
confianza en mí, ayudándome a culminar mí meta.
A mis profesores por brindarme el pan del conocimiento y por su lucha incansable para hacer de
mí una mujer de éxito llena de valores éticos y morales.
Cristhie Melissa Benavides Lanuza.
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DEDICATORIA.
A Dios Padre dador de vida, por guiarme por el buen camino, darme fuerzas para seguir adelante
y no desmayar ante los problemas y haberme permitido alcanzar una más de las muchas metas
propuestas en mi vida.
Dedico especialmente este trabajo a dos seres maravillosos que hay en mi vida mi madrea Sra.
Socorro Díaz Montenegro y mi padre Sr. Francisco Arauz Arauz, porque con todo su amor han
cuidado de mi desde que nací, dos personas sabias llenas de valores inigualables, dueños de un
inmenso corazón rebosante de ternura y llenos de sabios consejos de los cuales pude ser parte.
Xiomara del Carmen Aráuz Díaz.
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AGRADECIMIENTO.
Primero a nuestro Dios.
Por su inagotable paciencia a nuestros tutores Lic. MV. Isaac David Pineda Sirias.
Lic. MV. José David Vallejos Rayo y nuestro Asesor MsC. Allan Francisco Silva Benavides.
A nuestros profesores por brindarnos sus conocimientos durante todos estos años de estudio y
formación profesional.
A los señores productores de cada finca que visitamos para poder realizar esta investigación.
A los estudiantes de tercer año de M.V.Z. y al estudiante Larry Mairena de M.V.Z. por colaborar
en el procesamiento de muestras en sus horas prácticas.
Y a todas aquellas personas que a lo largo de nuestra carrera nos han brindado su apoyo para
seguir adelante.
Cristhie Melissa Benavides Lanuza.
Xiomara del Carmen Aráuz Díaz.
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RESUMEN
Con el objetivo de identificar parásitos gastrointestinales en bovinos de 6 a 24 meses de edad se
realizó un experimento en las comunidades de El Ocote, Las Quebradas, Valerio, Mora abajo,
Mora arriba, El Wiscanal, La Rinconada y El Zapote del Municipio de La Concordia, Jinotega
ubicada entre las coordenadas 13º11’’ latitud Norte y 86º10’’ de longitud Oeste. La duración de
dicha evaluación fue de 2 meses, muestreando a 98 animales de las 8 fincas en estudio. Se
visitaron las fincas en las primeras horas de la mañana. Las muestras de heces se recolectaron
bajo condiciones naturales de campo, con la utilización de guantes desechables, evacuando las
heces directamente del recto de los animales, luego fueron depositadas en bolsas plásticas
debidamente identificadas con los datos de cada animal. En la etapa de laboratorio para el análisis
coprológico se utilizó la técnica de flotación utilizando la técnica de sheather. Para respaldar el
procedimiento utilizando 2 instrumentos que consisten en una ficha que precisa los datos en
campo y en laboratorio para el buen orden de estos. En dicha ficha se recolecto datos de la finca,
propietario y del animal. Simultáneamente se aplicó una encuesta cada productor a través de la
cual se recepcionó información sobre el manejo y situación epidemiológica en cada hato, esto con
el fin de asociar esta información con los datos exploratorios al momento de la toma de muestra
en el laboratorio. Los datos se procesaron mediante análisis cualitativos a variables y a síntomas
utilizando el programa de Excel de Microsoft office 2010, será una Estadística Descriptiva
(Grafica de barra) y Tablas de Frecuencia con el paquete estadístico de SPSS V22. Las variables
evaluadas estuvieron en función de la identificación del genero de parasito, su sintomatología
(temperatura, constantes fisiológicas, estado de salud del animal en una escala del 1 al 5), control
terapéutico parasitario (frecuencia de desparasitación, tipos de desparasitantes), tipo de
explotación (dieta básica, y manejo por categoría). Los resultados obtenidos con relación a las
variables evaluadas mostraron que si hay un incremento de parásitos gastrointestinales en
bovinos de 6 a 24 meses de edad en la zona. Se concluye que los géneros de parásitos con mayor
presencia en el municipio de La Concordia son: trichostrongylus spp con el 30.61%, cooperia
spp con el 17.35%, eimeria spp con el 17.35%. En cuanto la mayoría de los animales estudiados
no presentaron variantes significativas a sus constantes fisiológicas sin embargo, había una
discrepancia en su estado físico. Según lo encontrado respecto a variables tipo de explotación y
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control terapéutico parasitario se consideran factores predisponentes en la proliferación de
parásitos gastrointestinales de la zona.
Palabras claves: parásitos gastrointestinales, técnica de sheather, género de parasito,
sintomatología, control terapéutico parasitario, tipo de explotación, trichostrongylus spp,
cooperia spp, eimeria spp.
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I. INTRODUCCIÓN
Nicaragua basa su economía, principalmente, en la producción agropecuaria y ganadera.La
ganadería ha venido experimentando un crecimiento sostenido y se estima que el inventario
actual de ganado bovino asciende a 5.5 millones de cabezas en comparación con el año 2011, que
según el Anuario Estadístico muestra que el tamaño del hato era de 4.4 millones(Castillo, 2012).
En condiciones tradicionales de manejo los productores enfrentan serios problemas con el
parasitismo, sobretodo en bovinos jóvenes, interrumpiendo su desarrollo íntegro y predispone a
numerosas enfermedades parasitarias. Nicaragua, al estar ubicada en el trópico, presenta factores
ambientales propicios para que parásitos puedan sobrevivir y atacar a los rumiantes; esto, sumado
a técnicas deficientes en producción y sanidad aplicadas por la mayoría de los productores,
genera pésimas condiciones de salud en los hatos y pérdidas económicas a los ganaderos.
Según Mottier y Lanusse, (2002) citado por Sánchez (2006) las infecciones con estos agentes
producen baja conversión alimenticia, pérdida del apetito y retraso en el crecimiento de los
bovinos. Estas deficiencias están asociadas a las acciones patógenas de los parásitos sobre el
hospedador, que provocan además de mala absorción de alimentos (acción expoliatriz), lesiones u
obstrucciones mecánicas a nivel de tejidos y órganos internos (acción mecánica y traumática),
entre otras. En los hatos ganaderos, las parasitosis gastrointestinales (GI) son parte de las
enfermedades más importantes, debido a su alta prevalencia y daños sanitarios y económicos que
ocasionan. Factores ambientales y manejo deficiente están asociados a la aparición de estas.
El presente estudio se pretende encontrar los géneros de parásitos gastrointestinales presentes en
bovinos de 6 a 24 meses de edad en fincas ubicadas en el municipio de La Concordia, Jinotega
dentro del período de Diciembre - Marzo, 2015.
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II. OBJETIVOS
Objetivo General
Identificarlos génerosde parásitos gastrointestinalespresentes en bovinos de 6 a 24 mesesde edad
en fincas ubicadas en el municipio de La Concordia, Jinotega en el período Diciembre - Marzo,
2015.
Objetivos específicos
Determinarlos géneros de parásitos gastrointestinales predominantes en las muestras
analizadas.
Describir los síntomas clínicos presentes en los terneros estudiados y su asociación con el
agente.
Asociar la presencia del parasitismo con las condiciones sanitarias y de manejo
encontradas en las fincas en estudio.
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III. MARCO TEÓRICO
5.1 Generalidades de los parásitos
Alos organismos que, en forma permanente o temporal, y de manera obligatoria, se nutre y vive a
expensas de otro organismo vivo llamado hospedero se le denomina parásito.Los parásitos son
capaces de que un animal sufra un sin número de afectaciones estos pueden causar una parasitosis
este término engloba todas las enfermedades que se presentan en los seres vivos por la acción de
uno o más parásitos.
También es causante de parasitismo que no es más que unaasociación entre dos organismo de
distintas especies en donde la dependencia del parasito respecto al hospedero es metabólica y
supone un mutuo intercambio de sustancias.
La invasión de estos se puede dividir en una infestación que es la presencia de agentes eternos
macroscópicos y en una infección que es la invasión y la multiplicación de los parásitos en el
organismo del hospedero. (Cordero, et., al. 1999).
Clasificación taxonómica de los parásitos
La ciencia de la taxonomía incluye la descripción, la clasificación y el nombramiento de los
organismos. La descripción de los parásitos es una especialidad que ahora involucra parámetros
morfológicos y biomédicos. La clasificación es el proceso de ordenar organismos relacionados y
se basa en clasificar las especies y los géneros y los añade hacia estructuras menos complejas
como son la familia, el orden, la clase y el phylum. Por su parte, la nomenclatura es el proceso de
nombrar a las especies. Aunque la clasificación y la nomenclatura son actividades distintas, están
muy relacionadas entre sí, ya que el nombre es una etiqueta no ambigua para un parásito y marca
su lugar en la clasificación (Sangster, 2001).
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En los principales taxones zoológicos se encuentran:
Reino
Phylum (Filum: tipo; fila: plural)
Rama
Clase
Orden
Familia
Tribu
Genero
Especie
5.2 Parásitos gastrointestinales
Las parasitosis gastrointestinales en bovinos criados en clima tropical son producidas
principalmente por protozoarios, nematodos y cestodos Domínguez,et., al.(1999), esto representa
una amenaza para el ganado bovino, ya que causan, entre otras alteraciones, anorexia, pérdida de
sangre y proteína plasmáticas en el tracto gastrointestinal, alteraciones en el metabolismo
proteico, reducción de minerales y diarrea (Rodríguez, et., al. 2001).
Los parásitos gastrointestinales generan múltiples trastornos digestivos y metabólicos en los
animales, provocando baja productividad y menor ganancia de peso en los terneros. En estudios
realizados por Entrocasso (1988), se describen pérdidas subclínicas en la ganancia de peso en
animales jóvenes de alrededor de un 20% (15 a 40 Kg.), por animal y por año de pastoreo.
Se ha identificado en algunos estudios, una serie de parásitos gastrointestinales tales como:
Eimeriaspp, Toxocaraspp, Strongyloidessp, Bunostomumspp, Oesophagostomumspp,
Mammomonogamusspp, Trichostrongylusspp, Ostertagiaspp, Cooperiaspp, Haemonchusspp,
Trichurisspp,Moniezieasspp. Entre las especies de Eimeriamás prevalentes se encuentran: E.
auburnensis, E. bovis y E. ellipsoidalis. Dentro de los nemátodos, sobresalen los del orden
Strongylida (Trichostrongylusspp, CooperiasppyHaemonchusspp). (Domínguez,et., al. 1999).
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La infección parasitaria gastrointestinal en los bovinos comienza con heces fecales contaminadas
y posteriormente la capacidad del parásito de ir hacia los pastos, para luego infectar al huésped.
En periodos cálidos algunas especies de parásitos pueden desarrollarse fácilmente, sin embargola
mayoría muere por la combinación de calor, sequedad y humedad relativa alta a las que se
enfrenta.
Durante el invierno, el desarrollo será retardado y podrá llevarle varias semanas llegar al estadio
de larva infectante, las mejores condiciones para su desarrollo se presentan en verano
dependiendo de las condiciones climáticas, las larvas pueden sobrevivir el invierno y en algunos
casos, viven 6 meses y hasta un año (Williams, 1986).
Las especies que se detallarán a continuación se consideran de importancia por la alta prevalencia
y el impacto económico que tienen en la producción ganadera.
Haemonchus
Las especies de este género son de regular tamaño, 22-25 mm. Se caracterizan por el contenido
rojo de su tubo digestivo al que se adosa en forma helicoidal el aparato genital, Por lo fácil de su
identificación en el contenido del cuajo es bien conocido por el hombre de campo.
La proliferación de Haemonchusspp es elevada, así que una hembra puede poner de 5.000 a
10,000 huevos por día, lo que le da un gran potencial biótico.
Efectos sobre el hospedero
Las especies son hematófagas esto significa que se alimentan de la sangre del bovino, por lo tanto
pueden producir anemia y en ello radica su patogenicidad (Vignauet. al., 2008).
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Prevalencia
Estas especies se localizan en zonas templadas y cálidas, tienen fuerte tendencia estacional
concentrándose a fines de verano.
Sintomatología
Se presenta anemia intensa en los animales, así como agotamiento, alteraciones metabólicas,
inapetencia, adelgazamiento, mucosas pálidas y en algunas ocasiones se presentan edemas en las
porciones declives del cuerpo sobretodo en la región subglociona. (Pardo, 2005)
Diagnóstico
Para diagnosticar la presencia del parasito se hace una investigación de las heces fecales del
animal, mediante los diferentes métodos de concentración por flotación.
En el caso del diagnóstico posmorten se emplean técnicas autopsia helmintológica considerando
la localización y morfología de los nematodos adultos hallados, en la mayoría de los casos se
observa edema con un hígado pálido, friable y graso, se aprecia además atrofia grasa por el
rápido agotamiento, la mucosa del abomaso se muestra hiperémica, contenido del cuajar escaso y
acuoso, ligeramente teñido de color parduzco salpicado de coágulos sanguíneos (Pardo, 2005).
Ostertagia
Son Trichostrongylidos de poco más de un centímetro de longitud. Se localizan en el cuajar y
producen lesiones en las glándulas tanto en estadios juveniles como adultos. Los huevos se
desarrollan a partir de los 7-8 ºC de temperatura, y las larvas de tercer estadio son más
susceptibles que las de otras especies a la desecación estival.
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Morfológicamente se caracterizan por presentar un color pardo cuando son recién colectados de
sus hospederos. El tamaño de los machos es de 8-9 mm mientras que las hembras alcanzan los 12
mm de longitud presentando la abertura vulvar en la mitad aproximadamente del tercio posterior
del cuerpo (Pardo, 2005).
Se estima que el período de maduración de estos nematodos es de unos 15 días, así que se pueden
observar huevos en las heces de sus hospederos aproximadamente a los 17 días post-invasión. Se
considera que la longevidad de estos nematodos es de aproximadamente unos nueve meses
(Pardo, 2005).
Efecto sobre el Hospedero
Produce formación de nódulos en la mucosa del cuajar, tanto las larvas como los adultos son
chupadores de sangre y las infestaciones severas provocan diarrea, adelgazamiento, anemia y
generalmente la muerte. La anemia se evidencia en el animal vivo por la palidez de la piel y la
mucosa.
Sintomatología
Según Pardo (2005), los animales afectados presentan diarrea de tipo acuosa y en algunos casos
llegan a fluir en forma amplia. Los estadios anémicos continúan afectando a los animales aún
después de haber sido eliminado la mayor parte o totalidad de la población de nematodos
presentes.
Histológicamente se observa una metaplasia e hiperplasia del epitelio glandular, que contribuye
al engrosamiento de la mucosa. Además al aumentar el pH a nivel de cuajar a 7 o más se observa
un aumento de la población de bacteria siendo este un factor para el mantenimiento de los estados
de anorexia y de la diarrea.
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Diagnóstico
El diagnóstico se basa en varios métodos entre los que se encuentran: Examen Coprológico
(técnica de flotación, técnica para el conteo de huevos y técnica para detectar larvas en las heces),
Cultivo (técnica de cultivo para colectar larvas e identificación en base a la morfología de las
larvas invasivas), Necropsia (autopsia helmintológicas, técnicas para colectar nematodos adultos
o larvas y clasificación de los nematodos presentes)
Trichostrongylus
Según Vignau, et., al. (2008) la más ampliamente difundida es T. axei, los adultos miden 5-6 mm
y se ubican en el cuajo de los rumiantes, generalmente se ubican más profundamente en el
epitelio, con la porción anterior introducida en la lámina propia.
Son de color pardo amarillento o rojizo, con una espina en su borde interno y con excrecencias en
la porción distal, el extremo posterior de la hembra se afina por detrás del ano, haciéndose cónico
o terminando en una corta punta (Sánchez, 2006).
Según Borchert (1981), citado por Sánchez (2006), El tamaño de las hembras oscila de 4-8 mm y
de 53-75 micras de ancho, Los huevos son ovales, alargados, y en uno de los polos parecen
ligeramente picudos o afilados miden de 35-63 micras de ancho por 70-112 de largo. Son
nematodos muy finos, y lo más pequeño del género. El período de prepatencia es de 17-30 días, y
la longevidad se plantea que es tres a cuatro meses.
Efecto sobre el Hospedero
Provoca engrosamiento de la mucosa del abomaso, delimitadas por una superficie finamente
verrugosa, abomasitis, disminución en el peso corporal y hemoconcentración. Regularmente
aumenta la concentración de la pepsina en el líquido del cuajar de tres a cuatro semanas después
del inicio de las invasiones.
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Sintomatología
Es de Curso de lento, se presenta diarrea de color gris oscuro y consistencia de pastosa, a veces
fluidas, que ensucian la parte posterior del animal. Se alteran la ingestión y digestión de
proteínas, por lo cual se manifiesta con un adelgazamiento, debilidad general, hidropesía en los
bovinos. Además en los animales más alimentados pueden desarrollarse estados caquécticos.
Diagnóstico
Para la valoración y diagnóstico se consideran las características de las heces, el hallazgo de gran
número de huevos en las mismas, a través de métodos de helmintovoscopía, así como el estado
general de los animales (Pardo, 2005).
Cooperia
Las especies de Cooperia se localizan en intestino delgado, específicamente en la mucosa
duodenal, en algunos casos pueden hallarse ejemplares de C. punctata en el cuajo Sánchez (2006)
Vignau, et. al., 2008). Son poco patógenas, producen lesiones superficiales en las criptas de
Lieberkühn donde se ubican.
Son relativamente pequeños, de color rojizo y en el extremo anterior tiene una vesícula cefálica,
muy característica, los machos miden de 4.6-6.8 mm x 75-80 micras y las hembras de 5.8-8.05
mm x 75-100 micras (Sánchez, 2006).
Estos parásitos se alimentan de secreciones y células descamadas del epitelio. Pueden hallarse en
cargas muy elevadas en animales menores de un año de zonas templadas y cálidas. Sus larvas
pueden entrar en hipobiosis en alguna época del año.
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Sintomatología
Se describe la pérdida del apetito y del peso corporal que puede llegar a un estado de emaciación,
laxitud, algunas veces se presenta edemas submaxilares, diarrea acuosa y anemia normocrómica;
estos signos sumados a los hallazgo de huevos en las heces indican la afectación de los rumiantes
por este parásito (Pardo, 2005).
Nematodirus.
El macho tiene una longitud de 8-16 mm y la hembra de 19-25 mm. En su extremo anterior
presentan un ensanchamiento de la cutícula que forma una vesícula cefálica pequeña. Las
hembras están claramente dilatadas hacia la tercera-cuarta parte a consecuencia del útero, las
espículas son finas y largas.
La vulva está situada en la mitad posterior del cuerpo, sus huevos son grandes y contienen menos
de 16 blastómeros (4-8) cuando se encuentran en heces recientes. La extremidad caudal de la
hembra está truncada y posee una prolongación en forma de bastoncito o espina (Sánchez, 2006).
Los huevos de Nematodirus se distinguen con facilidad porque son de grantamaño (Sánchez,
2006), el equivalente al doble de los de otras especies. Las infecciones son más tempranas que las
de otros trichostrongylidos en animales jóvenes y se limitan por inmunidad más tempranamente.
(Vignau, et., al. 2008).
Patogenia
Las especies de Nematodirus se ubican en el intestino delgado y su acción patógena es similar a
la de Cooperias spp, sólo en infecciones masivas se han descrito trastornos generales y en
animales jóvenes ya que las reinfecciones tienden a ser bien controladas tempranamente en
terneros y corderos (Vignau et. al.,2008).
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Trichuris
Los parásitos de esta especie son de ciclo directo, los huevos están sin segmentar en el momento
de la puesta y así son eliminados con la materia fecal del hospedador. En condiciones ideales, a
20ºC en 3 semanas desarrolla la larva 2 infectante. Los huevos infectantes pueden mantenerse
viables por varios días.
Luego de ingeridos, y una vez liberadas las larvas, parasitan la mucosa del intestino delgado
durante 2 a 10 días para luego migrar al ciego y colon, donde mudan a adultos hembras y
machos.
Las hembras ponen a partir de las 7-9 semanas post-infección, además poseen un estilete en la
boca con el que penetra la mucosa e introducen su extremidad anterior profundamente, lastiman
los vasos sanguíneos y originan pequeñas áreas hemorrágicas de las que se alimentan.
Efectos sobre el Hospedero
Producen anemia y generan una reacción inflamatoria local. En los rumiantes es frecuente
hallarla con otros nematodos.
Toxocaravitulorum
Es un ascaridida de 25 a 30 cm de longitud, parasita el intestino delgado de bovinos, ovinos y
caprinos, esta afección parasitaria es casi exclusivamente en lactantes que sufrieron infección
prenatal o lactogénica.
Los huevos son incubados en 15 díasen un ambiente en condiciones óptimasy la larva dentro del
huevo que es ingerida por un lactante penetra por la mucosa intestinal y realiza una migración
traqueal completando el ciclo (Vignauet. al., 2008).
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En las hembras, mediante hospedadores adultos las larvas se distribuyen en los tejidos
permaneciendo latente hasta la última fase de la gestación, se movilizan, atraviesan la placenta,
contaminan el líquido amniótico e infectan al feto por vía oral, luego se trasladan al intestino
delgado donde completan el ciclo en 4 semanas.
La producción de huevos es muy elevada, cada hembra es capaz de ovopositarhasta 8 millones de
huevos por día.Los adultos mueren rápido, 2 o 3 semanas después de la ovipostura.
Las larvas tisulares pueden alcanzar la ubre y pasar al recién nacido con el calostro, el ciclo
biológico se completa de la misma manera que en la infectación prenatal. Los signos de
obstrucción son similares a los de otras ascaridiosis (Vignauet. al., 2008).
Oesophagostomum
Esta especie a partir del tercer estadio pierde la vaina en el intestino delgado y las larvas penetran
en la pared del intestino enroscándose sobre la Muscularismucosae y produciendo quistes en
cualquier tramo del intestino, al 4º día mudan a L4, luego de 7 días regresan a la luz intestinal.
Según Sánchez (2006),se localizan fundamentalmente en el colon donde se produce la última
muda y evolución hasta adulto, el período prepatente es de unos 41 días para O. columbianum, 28
a 31 días para O. venulosum, y 32- 34 días para O. radiatum (especie que afecta a bovinos).
Patogenia
Se caracteriza por procesos de trastornos intestinales como diarrea incoercible, con la
consiguiente baja del estado general del animal y caquexia (Sánchez, 2006)
Los adultos producen una lesión profunda en la mucosa al alimentarse de material de la lámina
propia, las L4 y preadultos resultan los más patógenos. La lesión en esta etapa se caracteriza por
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la inflamación local con engrosamiento de la mucosa y anemia por hemorragias(Vignau, et., al.
2008)
Las infecciones con 200 a 300 adultos en los lanares son clínicamente significativas. Las
infecciones primarias no son graves, pero las larvas 3 y 4 en la lámina propia sensibilizan al
sistema inmune, e inducen reacciones de hipersensibilidad retardada en infecciones secundarias
en torno de las larvas histotróficas con gran infiltración de linfocitos, monocitos, macrófagos y
células gigantes, con la producción de abscesos en distintas porciones del intestino conocidos
como “grano”.
Strongyloidespp
Es el primer parásito en aparecer en el intestino de terneros, ovinos y equinos debido a su
capacidad de infectar a través de la piel y a su corto período prepatente. Los animales que sufren
reinfecciones desarrollan rápidamente una sólida respuesta inmune.
Bunostomum
Es un parasito que vive en el yeyuno e íleon de los rumiantes. La especie más importante del
ganado vacuno es Bunostomum phlemotomum. Son hematófagos, los machos miden de 12-17
mm de longitud mientras que las hembras alcanzan de 20-25 mm. (Sánchez, 2006).
Posee una gran cápsula bucal, tiene un diente dorsal muy desarrollado en forma de cono en el
interior de la cavidad oral y un par de lancetas subventrales. Se adhiere a la mucosa intestinal
dañándola y accediendo a la lámina propia de cuya sangre, líquidos y células se alimenta.
Patogenia
La parasitosis se caracteriza por anemia que es el signo más importante (Vignau, et., al. 2008), se
puede observar signos de hipoproteinemia, hipocolesterinemia y edemas, además de un cuadro
diarreico intermitente. Según Urquhart (2001) citado por Sánchez(2006).
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El parásito puede penetrar a través de la piel por ingestión o por vía permucosa. En caso de
infección cutánea o mucosa alcanza la circulación venosa, llega al pulmón donde muda por
tercera vez, a los 11 días post-infección se halla en el intestino delgado donde completa su
desarrollo hasta la postura de huevos en 30 a 56 días(Vignauet. al., 2008).
Mecistocirrus
Es un nematodo que afecta a bovinos, ovinos, caprinos, porcinos y raramente al hombre. El
órgano predilecto es el estómago rara vez se les encuentra en el intestino delgado. Son similares a
Haemonchusy alcanzan de 3 a 4 cm de longitud.
Coccidios
En la clasificación sistemática que hemos adoptado para los protozoarios, la antigua clase
Sporozoa recibe el nombre de Clase Sporozoasida, la que a su vez se encuentra constituida por la
Subclase Gregarinasina y la Subclase Coccidiasina. Todos los miembros de esta clase realizan
vida parasitaria y producen esporas. Durante el desarrollo del ciclo biológico de estos
protozoarios que pueden ser directo o indirecto la reproducción es tanto sexual como asexual
(Pardo y Buitrago, 2005).
La coccidiosis en bovinos es una enfermedad parasitaria generalmente aguda causada por la
presencia y la acción de los protozoarios del género Eimeria en las células intestinales, de las que
se conocen 13 especies diferentes, aunque las que se presentan con mayor frecuencia son: E.
bovis, E. zurnii, E. ellipsoidalis, E. auburnensis, catalogándose como más patógenas a las dos
primeras, que son las responsables de la mayoría de los casos clínicos. Esta parasitosis afecta de
forma aguda a los animales jóvenes y a los adultos de forma crónica (Drugueri y Modern, 2013).
Bernal, (2010); considera a la coccidiosis el “Enemigo Oculto de la Ganadería”, conceptuándola
como una enfermedad parasitaria altamente contagiosa cuyo signo clínico más frecuente y común
es la diarrea con sangre, síntoma del que se derivan las diferentes denominaciones con que se
22
conoce comúnmente la enfermedad: diarrea con sangre, diarrea roja, curso negro de los terneros y
diarrea prieta, entre otras. Y continúa explicando que la causa de la diarrea es la inflamación
grave del tejido intestinal con desprendimiento del epitelio, que ocasiona una severa interferencia
del proceso de absorción de nutrientes y el desarrollo de hemorragias que dan origen a los
síntomas externos como son heces líquidas con alguna frecuencia acompañada de sangre. En los
bovinos afectados en forma severa, se observa diarrea sanguinolenta siendo visibles en ocasiones
coágulos y partes de mucosa intestinal; de persistir este cuadro por una o dos semanas, el animal
presenta otros síntomas como anorexia, depresión, deshidratación, tenesmo y pérdida de peso. La
muerte puede sobrevenir durante los episodios agudos de la enfermedad o como resultado de
complicaciones secundarias frecuentes. Sin embargo, lo más grave es la creencia que esta
enfermedad solo afecta a los terneros o animales menores de un año, situación que ha facilitado la
colonización por parte del parásito de vastas zonas, ocasionando inmensas pérdidas económicas.
5.2.1 Dinámica de los estadios parasitarios
Factores como: tipo de explotación, manejo, categoría animal, mezcla de especies, condiciones
climáticas, el nivel de infectividad de las pasturas, pueden aumentar el efecto de las parasitosis en
los hatos.
Según Steffan y Fiel (1994), la susceptibilidad de los animales a los parásitos está relacionada
con el desarrollo de inmunidad, la cual depende del tiempo de exposición y de la carga de
parásitos.
Más aún, la inmunidad sobre los parásitos reduce la producción de huevos, su vida media e
impide el establecimiento de nuevos parásitos (Steffan y Fiel, 1994).
5.2.2 Ciclo biológico en parásitos gastrointestinales
Se define ciclo biológico o ciclo evolutivo como el conjunto de etapas y transformaciones que
experimenta un parásito durante su desarrollo, y que se puede clasificar en directo e indirecto.
23
El ciclo es directo cuando el paso de un hospedero definitivo a otro no requiere hospedero
intermediarios, los estadios no parásitos se encuentran en el suelo, la falta de hospederos
intermediarios se considera un progreso hacia la perfección parasitaria.
En el ciclo indirecto es en el que intervienen uno o más hospederos intermediarios, se considera
filogenéticamente más primitivo que el directo. Los ciclos biológicos indirectos pueden ser:
Superpuestos a una cadena alimentaria: cuando los hospederos intermediarios son
eslabones de una cadena atrófica, como ocurre en los cestodos.
Superpuestos a una biocenosis: cuando los hospederos definitivos y hospederos
intermediarios comparten el mismo medio como los trematodos.(Cordero, et., al.1999)
Los huevos son eliminados al exterior a través de las heces fecales de los bovinos. Estos
continuarán su evolución; podría suceder por completo en el mismo medio ambiente hasta llegar
a una etapa infectante e inmediatamente ingresar en el hospedador definitivo, o llegar a él o los
hospedadores intermediarios, alimentarse y/o reproducirse y posteriormente ir acceder en el
hospedador intermediario.En este momento, sea ciclo directo o un ciclo indirecto, el parásito se
ha transformado en un estadio infectante y se encamina a ser adulto; será capaz de provocar
enfermedad y lesiones macroscópicas y microscópicas, todo producto de sus acciones patógenas.
5.2.3 Patogenia
Entre las acciones patógenas que los parásitos infieren en sus hospedadores se pueden citar:
Acción mecánica: Por compresión y obstrucción de órganos, vasos etc. Determinada por
el número y volumen de los parásitos.
Acción traumática: Relacionada con la penetración activa, las migraciones intraorgánicas
el tipo de alimentación.
Acción irritativa: Por la fijación y desplazamiento de los parásitos.
Acción expoliadora: Se refiere a alimentación del parásito de tejidos o células del
hospedador (hematofagia, histofagia, etc.)o a la competencia alimentaria, etc.
24
Acción tóxica: Por metabolitos y sustancias segregadas por los parásitos en detrimento del
hospedador.
Acción inoculadora: Al vehicular o facilitar la entrada de otros agentes patógenos.
Acción inductora de modificaciones en el tejido: Por producción de metaplasias,
hiperplasias e incluso neoplasias.
Síntomas clínicos
Los signos clínicos delas parasitosisgastrointestinalesguardan estrecha relación con alteraciones
como: edemasubmandibular, crecimiento retardado y poca ganancia de peso, pelaje áspero, y
diarrea(Villar, 2006).
La clínica de las enfermedades parasitarias depende de la intensidad de invasión y de las especies
que afectan al hospedero. Las parasitosis gastrointestinales son más frecuentes en animales
jóvenes, generalmente hasta los 2 años de edad. Sin embargo, los adultos pueden presentar
parasitosis severasya que especies como Haemonchussimilis, Haemonchusplacei y
Mecistocirrusdigiatatus son frecuentemente encontrados en animales adultos sacrificados
Morales et al. (1997); citado por Molina(2011).
5.2.4Factores que estimulan la aparición de parásitos en bovinos
Según Romero,J. y Boero, C. (2000), la aparición de los parásitos encierra factores externos e
internos y su interacción.
La relación hospedador – agente – medio ambiente es una referencia a tomar en cuenta en el
estudio de enfermedades parasitarias; no es responsable de la dispersión de parásitos, pero ayuda
a comprender la dinámica epidemiológica de dichas enfermedades.
25
Factores como falta de higiene, malas prácticas de desparasitación, ambientes altamente poblados
de parásitos patógenos, mezcla de animales infectados con sanos figuran como predisponentes o
favorecedores para la aparición de estados morbosos.
Para esto requiere que un animal infestado expulse los parásitos a través de las heces, dentro de
las bostas se generan nuevas larvas, la lluvia como factor ambiental trasladan las larvas hasta los
pastos y quedan disponibles para quenuevamente los animales las ingieran y cierren el ciclo
parasitario afectando de esta manera a los bovinos.De aquí surge la importancia de evitar la
contaminación de las pasturas a través de la introducción de animales infectados (Montico, et., al.
2013).
Según Steffan y Fiel (1994),en los sistemas de producción bovina las apariciones ocurren a fines
de invierno y principios deverano, destetándose los terneros al final del verano. En años con
condiciones climáticas normales, los terneros tienen un bajo riesgo de infección debido a que la
inmunidad de las madres reduce la contaminación de las pasturas a lo que se suma el efecto de
dilución de la infectividad ocasionado por el crecimiento del pasto en primavera y la importante
mortandad de las larvas que ocurre durante el verano.
De cierta manera el periparto influye en la infectación de parásitos gastrointestinales, ya que
durante esta etapa se produce unaumento en la eliminación de huevos originando larvas que
sobreviven en las heces hasta las primeras lluvias al finalizar el verano. Como consecuencia,
aumentarían de L3 en las pasturas, y así los terneros podrían infectarseSuárez, (1990); citado por
Molina(2011).
5.2.5Intervención de factores ambientales en parasitosis
La influencia de los factores ambientales sobre los parásitos es más clara cuando tienen fases de
vida libre, con independencia de que intervengan hospedadores intermediarios en el ciclo
biológico. Estos pueden ser:
a) Factores ambientales abióticos:
26
Clima: el clima, sobre todo por la temperatura y la humedad relativa, es regulador de la
distribución y la frecuencia de muchas parasitosis, al favorecer o impedir el desarrollo de
parásitos.
Factores físicos: radiaciones solares y gases atmosféricos.
Corrientes de agua: intervienen en la diseminación y sobrevivencia de parásitos y
hospedadores intermediarios. Ejemplo, moluscos.
Tipo de suelo: favorece la sobrevivencia o la muerte de parásitos, ya que les brinda cobijo,
oxígeno y humedad.
b) Factores ambientales bióticos:
En relación con los factores bióticos, las experiencias se han centrado sobre todo en los
helmintos y están relacionados con el efecto que algunas plantas o sus extractos tienen sobre
las fases larvarias de estos parásitos.
Se puede afirmar que la dosis infectante que adquiere un hospedero está directamente relacionada
con las circunstancias del medio. Además de las influencias estrictamente climáticas existen otros
factores que juegan un papel nada despreciable en la ecología parasitaria, como las radiaciones, y
los gases atmosféricos. También son importantes las corrientes de agua, especialmente para los
hospederos intermediarios (moluscos, insectos.) el tipo de suelo y la transparencia del agua y del
aire(Cordero et. al., 1999).
27
IV. MATERIALES Y MÉTODOS
6.1 Ubicación geográfica
La Concordia.
Pertenece al departamento de Jinotegaestá ubicado entre las coordenadas 13°11’ latitud Norte y
86°10’ de longitud Oeste, limitando al norte con San Sebastián de Yalí, al sur con Estelí, al este
con San Rafael del Norte y al oeste con Estelí. El clima se caracteriza por ser sabana tropical de
altura y temperatura media entre los 19 y 21°C.Su extensión territorial es de 122 km2 (INIDE
2010-2011).
Todas las parcelas del municipio poseen algún tipo de fuente de agua, entre los cuales se destacan
ríos, quebradas, manantiales de agua u ojos de agua, pozos de perforación manual o
artesanal(INIDE 2010-2011).
La vegetación es variable; poseen bosques de los cuales se pueden mencionar: bosque primario,
secundario y bosque sembrado/ plantación forestal. Se siembra principalmente frijoles y maíz,
además, y en menor escala, papa, repollo, cebolla, chiltoma y tomate (INIDE 2010-2011).
Por su parte, la producción ganadera está focalizada principalmenteen las comunidades El Ocote,
Las Quebradas, Valerio, Mora Abajo, Mora Arriba, El Wiscanal, La Rinconada y El Zapote;
lugares en los cuales se aplicará el estudio, tomando en cuenta la relevancia en cuanto a mayor
número de animales en el municipio (INIDE 2010-2011).
28
Tabla 1. Ubicación geográfica de las comunidades de estudio,
N° Comunidades Norte Oeste
1 El Ocote 587208 1456928
2 Las Quebradas 586864 1457588
3 Valerio 590938 1456967
4 Mora Abajo 591031 1459500
5 Mora Arriba 590694 1461590
6 El Wiscanal 588545 1459969
7 La Rinconada 583249 1457970
8 El zapote 586228 1455702
6.2 Universo y Población
El universo está constituido por el hato bovino de las ocho comunidades que son 720animales; la
población estará conformada por aquellos animales que tengan entre 6 y 24 meses de edad, los
cuales son 98en total.
6.3 Muestra
Para el estudio se decidió tomar como muestra al 100% de la población estadística. Será una
muestra por convenienciay estará conformada por los 98 terneros entre los 6 y 24 meses de edad.
29
Tabla 2. Distribución de la muestra por comunidad
Comunidad Población
Muestra de 6
a 24 meses
El Ocote 105 22
Las Quebradas 332 44
Valerio 33 6
Mora Abajo 24 3
Mora Arriba 20 3
El Wiscanal 163 14
La Rinconada 20 2
El Zapote 23 4
Total 720 98
6.4 Operacionalización de las variables
Variable Definición
conceptual Indicadores
Medidas de
Expresión Fuente Instrumento
Géneros de
parásitos
Determinar la
presencia de
géneros de
parásitos en
cada muestra
Géneros de parásitos
encontrados al aplicar
la técnica
Observación Expediente
Sintomatología
Conjunto de
síntomas
característicos
de una
enfermedad
Temperatura,
Frecuencia Cardiaca,
Frecuencia
Respiratoria, Estado de
salud del animal y
Aspecto físico de las
heces
Celsius,
Latidos por
minutos,
Respiraciones
por minutos
Observación Expediente
Control
terapéutico
parasitario
Conjunto de
medidas cuya
finalidad es
proporcionar
al animal
condiciones
ideales para la
salud y pueda
desarrollar su
máxima
productividad
Frecuencia de
desparasitación
Tipos de
desparasitante
Meses,
Clasificación
del principio
activo
Encuesta Cuestionario
30
Variable Definición
conceptual Indicadores
Medidas de
Expresión Fuente Instrumento
Tipo de
explotación
Técnicas
encaminadas
a alcanzar el
mayor
rendimiento
de los
animales
Dieta básica, manejo
por categorías
Categoría de
alimento,
edades
Encuesta Cuestionario
6.5 Instrumento
Consiste en una ficha que precisa datos en campo y en laboratorio para el buen orden de estos.
En dicha ficha se determinará ubicación geográfica de comunidad y finca, datos del propietario y
datos del animal, dentro de los cuales estarán aquellos datos propios del animal como especie,
raza, peso y los datos obtenido de ese mismo animal en el laboratorio.
Simultáneamente se aplicara una encuesta a cada productor a través de la cual se recepción
información sobre el manejo y situación epidemiológica en cada hato; esto con el fin de asociar
esta información con que los datos exploratorios al momento de la toma de muestra en el
laboratorio (Anexo 3 y 4).
Técnica de laboratorio
Técnica de Sheather
La técnica se basa en el principio de que los huevos de los parásitos son menos densos que el
medio utilizado para la concentración, esto hace que floten y se adhieran al portaobjetos.
Materiales
1. Beaker de 150 ml
2. Tamiz
3. Espátula
4. PlatoPetri
31
5. Cámara de Borrel de 50-70 ml de capacidad
6. Portaobjetos grande
7. Solución hipersaturada de azúcar refinada
8. Microscopio
9. Guantes de polietileno
10. Gabacha
11. Heces
12. Agitador magnético
13. Agua destilada
14. Hoja de campo
15. Lápiz
16. Agua
17. Alcohol
18. Jabón
19. Termo con hielo
Procedimientos
En un beaker se colocan un aproximado de cuatro gramos de heces, se mezcla con 2ml de la
solución hipersaturada de azúcar y se macera con la espátula hasta homogenizar, luego se agrega
50 ml de la solución para llenar la cámara de Borrel o un tubo de ensayo y se tamiza al otro
beaker.
Luego de tamizar se llena la cámara de Borrel o el tubo de ensayo, hasta que se forma una
convexidad, se coloca encima un cubre objeto evitando formar burbujas y se deja en reposo 20
minutos; posteriormente se voltea el cubre objeto y se coloca encima de un portaobjeto
procurando no derramar lo adherido a él y se observa en el microscopio con aumento 10X y 40X
para identificar géneros de parásitos.
32
6.6 Aplicación de la técnica para la recolección de datos
Se visitó las fincas en las primeras horas de la mañana, para la optimización de tiempo y evitar
estrés en los animales.
Las muestras de heces se recolectaron bajo condiciones naturales de campo, con la utilización de
guantes desechables, evacuando las heces directamente del recto de los animales; luego fueron
depositadas en bolsas plásticas debidamente identificadas con el nombre del animal, nombre de la
comunidad y de la finca, y almacenadas en termo con hielo hasta su entrega al laboratorio de
parasitología. Apoyándonos a la vez en nuestra hoja de campo se llenará la ficha de cada animal
para la recolección de datos por cada muestra fecal.
En la etapa de laboratorio para el análisis coprológico se le realizo la técnica de flotación,
utilizando la técnica de Sheather colocando posteriormente el nombre del parásito (s) encontrado
(s) en la ficha de recolección por cada animal.
6.7 Análisis de resultados
Se realizó por medios de Análisis Cualitativos a variables y a síntomas utilizando el programa de
Excel de Microsoft office será una Estadística Descriptiva (Graficas de barra) y Tablas de
Frecuencia con el paquete estadístico de SPSS V 22.
33
V. ANALISIS DE RESULTADOS Y DISCUSION
El muestreo se llevó a cabo en ocho comunidades del municipio de la Concordia, Jinotega,
ubicado entre las coordenadas 13º 11' latitud norte y 86º 10' longitud oeste. Los terneros o
unidades de análisis se encontraban entre las edades de 6 a 24 meses, de los cruces Bostaurus y
Bosindicus, de los cuales 65% fueron hembras y 35% machos.
Figura 1. Phylum de parásitos encontrados
Los análisis de laboratorios revelaron la presencia de parásitos en un 67% de las muestras, de las
cuales el phylumapicomplexa representó 17% y nematoda 50%, mientras que el restante 33% de
la muestras fueron resultados negativos.
34
Figura 2. Familia de parásitos encontrados en las muestras
Dentro de las apicomplexasse encontraron parásitos de las familias eimeriidaespp presentando el
17% de las muestras, dentro de las nematodas se hallaron trichotrongylidaespprepresentando un
48%, y en menor porcentaje se presentó la toxocaridaespp con 2%.
35
Figura 3. Género de parasitos encontrados
Dentro de la familia eimeriidae se presentaron géneros de parasito como eimeria spp con 17% de
presencia dentro de las muestras infestadas y en menor medida toxocara con un 2.04
% para cada una de ellas, dentro de los trichotrongylidae se encontraron trichotrongylu sspp en
31% y cooperia con 17%, dentro del total de la muestra y el 33% que corresponden a los
resultados negativos.
De acuerdo a González y Herrera (2000) el género trichostrongylus encierra una gran cantidad de
especies parasitas lo cual provoca que más de alguna infeste en mayor cantidad a los bovinos de
la VI región de Nicaragua, sin embargo, en La Concordia, Jinotega no fueron encontrados
parásitos pertenecientes a este género en los años de (1985-1997).
36
Molina en 2011, identificó en sus muestras el suborden strongylata en un 80%, siendo superior al
64% de coccidios y 2% de strogyloide también encontrados. En las investigaciones de Villar
(1997), Benavides y Romero (2010) se describen los géneros más importantes en los rumiantes
concluyendo que: Haemonchus, Cooperia, Ostertagia, Trichostrongylus y Oesophagostomum
son considerados como los más relevantes desde el punto de vista patológico y epidemiológico,
estos parásitos se encuentran en el suborden que más se identificó en este trabajo.
Figura 4. Diagnóstico clínico
Los exámenes clínicos de laboratorio realizados con la técnica de sheater, mostraron 67% de los
resultados positivos, con un recuento de 43% hembras y 24% machos; el 33% fueron resultados
negativos, encontrándose un recuento de 21% de hembras y 12% machos dentro de la muestra.
37
Al respecto González y Herrera (2000) para los municipios del departamento de Jinotega los
valores bajos por infestación de parásitos gastrointestinales son La Concordia con un 25%.
Siendo significativo el incremento desde el año de este estudio a la actualidad con un porcentaje
del 67%
Figura 5. Condición corporal
Las variables diagnóstico y estado físico se encuentran estadísticamente relacionada (p<0.05)
donde p es la probabilidad en el sentido de especificación estadística por lo cual la probabilidad
de error es baja, estos midiéndose en una escala de 1-5 considerando 1 como el peor estado del
animal y 5 como excelente. Los resultados de los diagnósticos fueron positivos en un 16%. De
38
estos casos la condición corporal que presentaban estos animales es mala, un 48% es regular, el
1% es buena y l% es excelente. Mientras que los casos negativos el 21% de los animales
muestreados presentaron una condición corporal buena y el 11% es excelente.
Molina en el 2011, observo un efecto similar en los animales afectados por una parasitosis según
la condición corporal, de la cual se encontraron solo dos categorías de las cinco que otorga el
método (condición corporal 1 y 2) señalando que son los más bajos por lo que las consecuencias
negativas sobre el organismo animal también son evidentes en nuestras condiciones.
Los efectos de las parasitosis sobre el desarrollo general de los animales, ha sido valorado por
Entrocasso (1988) quien argumenta que en Argentina los parásitos gastrointestinales generan
múltiples trastornos digestivos y metabólicos en los animales que resultan en una baja
productividad; principalmente una menor ganancia de peso en los terneros.
La mayor susceptibilidad del Bostaurus a las infestaciones parasitarias es ampliamente conocida
(Urquhart et al., 1999). En el presente estudio, la pobre condición corporal, asociada en parte a
sus problemas de adaptación al medio (OKelly, 1980), y su mayor susceptibilidad al parasitismo
gastrointestinal determinaron que la mayor parte de los animales estuvieran asociados a la
categoría de sensibles.
Para Valle (2008a), al relacionar el índice de la condición corporal con la productividad, la
alimentación, la salud, el bienestar y el manejo de los animales, se dota a los profesionales,
técnicos y ganaderos de una herramienta sencilla pero de gran utilidad para una gestión eficiente
de la unidad productiva. Esto es acorde con resultados del presente estudio, ya que permite
realizar una selección rápida y eficiente de animales que al interior del rebaño requieren de
tratamiento antihelmíntico, o para ser sometidos a un diagnóstico diferencial con respecto al
parasitismo gastrointestinal y determinar si su baja condición corporal es una expresión de una
alta infestación parasitaria, sin tener que realizar exámenes de laboratorio a todo el rebaño
(Morales y Pino, 2009).
39
Figura 6. Temperatura corporal
Las variables diagnóstico y temperatura corporal se encuentran estadísticamente relacionada
(p<0.05), presentando los diagnósticos positivos 66 bovinos de los cuales 32 presentan
temperatura corporal baja (<38.5°C) y 34 presentan temperatura corporal media (39° - 39.5°C);
para los diagnosticados negativos se hallaron únicamente 32bovinos que presentaban
temperaturas bajas.
En relación a la medición de temperatura, podemos mencionar que se ha demostrado que este
parámetro es un buen indicador clínico del curso y de la severidad de cuadros de parasitismo en
bovinos (Grönlund y col 2003; Milne y Col 2003).
El aumento de la temperatura corporal se considera un criterio cuantitativo útil para valorar el
grado de estrés agudo. Pese a que la temperatura corporal está producida por las contracciones
musculares, la asimilación de los alimentos y los procesos metabólicos (Lusk, 1989 citado por
40
Herrera, 2011) en ciertas situaciones estresantes existe otro componente denominado hipertermia
inducida por estrés.
Figura 7. Frecuencia cardiaca
Las variables diagnóstico y frecuencia cardiaca se encuentran estadísticamente relacionada
(p<0.05), presentando diagnósticos positivos 66 animales de los cuales 32 bovinos que presentan
frecuencia cardiaca baja (80), 32 presentan frecuencia media (95) y solamente 2 presentaron
frecuencias cardiacas altas (110 ); para los diagnosticados negativos se hallaron únicamente 32 de
los animales que presentaban frecuencias cardiacas baja.
41
Figura 8. Frecuencia respiratoria
Las variables diagnóstico y frecuencia respiratoria se encuentran estadísticamente relacionada
(p<0.05), presentando los diagnósticos positivos 66 bovinos presentan frecuencia cardiaca
respiratoria media (30), 14 de frecuencias alta (40); para los diagnosticados negativos se
encontraron 24 bovinos que presentaban frecuencias respiratorias baja (15) y 9 animales con
frecuencias cardiacas medias (30).
Los valores de la frecuencia respiratoria pueden variar por causas fisiológicas (edad, estado
gestacional en las hembras, temperatura ambiental, ruidos externos, etc.) o patológicas (UBA,
2013).
42
Figura 9. Pelaje y diagnostico
Las variables diagnóstico y aspecto del pelaje se encuentran estadísticamente relacionada
(p<0.05), donde los diagnosticados positivos se encuentran 66 animales que presentan una clara
tendencia a poseer pelaje hirsuto y para los diagnosticados negativos 32 bovinos presentan pelaje
brillante.
Los mecanismos patógenos que generan los parásitos gastrointestinales y que producen
alteraciones en los hospedadores, generan alteraciones que se traducen en la aparición de signos y
síntomas que permiten sospechar de la presencia de este tipo de parasito y dependiendo de la
carga parasitaria y de la respuesta del hospedador pueden generar en cursos agudos o crónicos la
sintomatología que se describe a continuación: pérdida de peso, diarrea, deshidratación, pelo
hirsuto (largo, seco y quebradizo), aumento de la frecuencia cardiaca y respiratoria y su
43
temperatura corporal se ve aumentada, estos signos no son específicos ni atribuibles a un
determinado parasito, la perdida de la condición corporal en los adultos. Angulo Cubillan (2005).
Figura 10. Tipo de explotación y presencia de géneros de parásitos
En las fincas de las comunidades en estudio se manejan dos tipos de explotación la extensiva y la
semi-intensiva. En los resultados de los estudios clínicos de los animales muestreados de las
fincas que emplean la explotación extensiva revelaron positivo para la presencia de parásitos de
cooperia con el 4.08%, eimeria con el 2.04% y trichostrongylus con el 6.12%; mientras que los
que emplean la explotación semi-intensiva revelaron positivo para la presencia de parásitos de
cooperiacon un 13.27%, eimeria con un 15.31%, casos negativos con ninguna presencia de
parásitos con un 32.65%, toxocara con el 1.02%, toxocara y coccidia con el 1.02% y
trichostrongylus con el 24.49%.
4.08% 2.04%
6.12%
13.27% 15.31%
32.65%
1.02% 1.02%
24.49%
0%
5%
10%
15%
20%
25%
30%
35%
coo
pe
ria
eim
eri
a
tric
ho
stro
ngy
lus
coo
pe
ria
eim
eri
a
Nin
gun
o
toxo
cara
toxo
cara
y c
occ
idia
tric
ho
stro
ngy
lus
extensiva semi- intensiva
44
Figura 11. Tipo de explotacion y presencia de parasitosis
Como se muestra en la figura 11,de los animales muestreados con diagnostico positivo con
presencia de parásitos 12 bovinos pertenecen al tipo de explotación extensiva y 54 de estos
mismos casos positivos pertenecen al tipo de explotaciónsemi-intensiva; mientras que 32 bovinos
de los casos negativos pertenecen a la explotación semi-intensiva.
De acuerdo con Hernández y Pérez (2000) los animales que están bajo un sistema de manejo
semi-intensivo son proclives a la presencia de parásitos gastrointestinales.
El impacto económico está asociado a la disminución en el consumo de alimento, baja conversión
alimenticia, baja ganancia de peso y en casos severos produce la muerte de los animales
45
afectados. Los vacunos criados intensivamente están más expuestos a sufrir esta parasitosis
debido al estrés y al hacinamiento (Rodríguez et. al., 2011).
En los bovinos que son mantenidos a pastoreo es común observar infecciones producidas por
distintos tipos de parásitos Nematodos de la súper familia Trichostrongylidea que afectan el
tracto gastrointestinal. A este grupo pertenecen principalmente Ostertagiaostertagi, Cooperias pp.
Y Trichostrongylusaxei (Holtenius y col, 1983; Anderson, 1988; Suárez, 1994).
Figura 12. Frecuencia de Desparasitación
La frecuencia con que desparasitamos al ganado es de vital importancia ya que de esto depende
que los animales no presenten cuadros de parasitismo. En la figura XII se muestra que de los
casos positivos con presencia de parásitos gastrointestinales 12 de los animales son
desparasitados cada doce meses y 54 bovinos son desparasitados cada seis meses; mientras que
46
de los casos negativos 32 bovinos son desparasitados cada seis meses.Podemos añadir que
existen una serie de causas que inducen la aparición de resistencia antihelmíntica, sin lugar a
dudas las principales se centran en la alta frecuencia de desparasitaciones, el uso indiscriminado
de antiparasitarios y la falta de rotación de principios activos.
Angulo Cubillan (2005), asegura que la falta de calendario de desparasitación sistemática o
estratégica explica la frecuencia de casos positivos observados en el estudio sin olvidar el hecho
de que pueden presentarse errores en la medicación de los animales (subdosificaciones que
pueden llegar a crear resistencia a los desparasitantes por parte de los parásitos) o bien la
selección inadecuada del producto.
Los indicadores tales como dieta básica, tipo de explotación, manejo y categoría y tipo de
desparasitante no se relacionan estadísticamente con la presencia de parásitos; sin embargo, en
otros estudios consideran que una buena nutrición es importante ya que a mejor alimentación,
mejor respuesta inmunitaria y compensación de pérdidas de nutrientes, de igual manera el autor
considera que los antihelmínticos deben ser seleccionados por su eficacia, seguridad, espectro de
actividad y las diferentes parasitosis presentes en el rebaño. Angulo Cubillan (2005).
Para Eddi (1996), el empleo mínimo y eficiente de los antiparasitarios al realizar desparasitaciones
estratégico/racionales constituyen una buena alternativa de control. El control parasitario basado en
estrategias que se oponen al tratamiento en masa de los rebaños está sustentado en estudios que han
demostrado los efectos nocivos del uso inadecuado de los antihelmínticos, tales como la presencia de
residuos tóxicos en los tejidos como consecuencia del uso de principios activos de larga persistencia
(Vercruysse y Dorny, 1999), el efecto sobre el medio ambiente por actuar negativamente sobre la fauna
edáfica, lo cual se encuentra bien documentado para el caso de las ivermectinas (Fiel et al., 2001).
Asimismo, la utilización indiscriminada y prolongada, así como la elevada frecuencia de tratamientos
empleando el mismo principio activo constituye la principal causa de aparición de cepas de parásitos
quimioresistentes (Fiel et. al., 2001), ocasionando la reducción del arsenal terapéutico disponible para la
lucha contra los helmintos gastrointestinales que afectan a los rumiantes (Strong, 1993; Morales et al.,
1998; FAO, 2003; Romero, 2005).
Según Fiel (2005), El intervalo entre los tratamientos se establece sobre la base del poder residual
del producto utilizado, 2-3 días para benzimidazoles y 21-28 días para los endectocidas, sumado
47
a los 21 días que tardan los parásitos hembras en iniciar la eliminación de huevos en materia fecal
(cada 3-4 semanas con levamisol y benzimidazoles, y 5-8 semanas con endectocidas).
Indica el mismo autor que si bien este régimen reduce drásticamente la infectividad de las
pasturas, ya en el primer año de implementación, debe necesariamente ser supervisado por un
profesional que efectúe los ajustes precisos para cumplir con el doble propósito de optimizar los
resultados con el menor número de desparasitaciones evitando la presentación de resistencia.
48
VI. CONCLUSIONES
Los géneros de parasito con mayor presencia en el municipio de la Concordia son;
trichostrongylusspp con el 30.61%, cooperiasppcon el 17.35%,eimeriaspp con el 17.35%,
toxocaraspp con el 2.04%.
En cuanto la mayoría de los animales estudiados no presentan variantes significativas a sus
constantes fisiológicas sin embargo había una discrepancia en su estado físico, tomando en
cuenta la época del año con relación a las variantes climáticas (sequia), que trae consigo poca
disposición de pastos y alimentos de baja calidad que afecta el estado nutricional de los animales,
suprimiendo la inmunidad de estos.
El manejozootécnico y sanitario encontrado en las fincas es propicio para la proliferación de
parásitos sin descartar las condiciones que brinda el trópico para el desarrollo de los mismos, por
lo que al contar con tipos de explotaciones extensivas y semi-intensivas, estos no consideraban
separar los animales enfermos dentro del hato y no contar con un calendario de desparasitación
periódica para el control de parásitos gastrointestinales y ectoparásitos de bovinos por categorías,
lo que favorece la presencia de clases de parásitos tales como Nematoda y Conoidasida.
49
VII. RECOMENDACIONES
Tomando en cuenta los resultados del trabajo se brindan las siguientes recomendaciones:
Zonificar cada comunidad con el género de parasito con mayor frecuencia, para saber qué
medida de control utilizar y disminuir el grado de infestación por parásitos
gastrointestinales.
Continuar la línea de investigación de este estudio, con un análisis de los niveles de
infestación parasitaria por categorías.
Que se hagan estudios coprológicos por parte de los propietarios e instituciones
encargadas para determinar el tratamiento específico para cada género de parasito en cada
programa de control de estos.
50
VIII. ANEXOS
Anexo 1. Parásitos gastrointestinales más comunes en el sistema digestivo de los bovinos
Fuente: Molina, 2011
51
Anexo 2. Mapas de la zona de estudio
52
53
Anexo 3. Ficha de Recolección de Datos
Nombre de la finca:
Propietario:
Fecha:
Código:
Datos Geográficos
Departamento: Municipio:
Coordenadas:
Temperatura:
Datos sobre el paciente
Nombre:
Sexo:
Edad/meses:
Características Especiales
Color:____________ Pelaje:_____________ Condición corporal (0-5)*: __
Fin Zootécnico:_____ Temperatura: _______ Frecuencia cardiaca: _______
Frecuencia Respiratoria: ____
* Donde 5 es buena y 0 mala
Resultados de las pruebas Parasitológicas
Familia:
Género:
Anamnesis actual- remota y del medio:
______________________________________________________________________________
______________________________________________________________________________
______________________________________________________________________________
______________________________________________________________________________
______________________________________________________________________________
54
Anexo 4. Encuesta de campo
Productor: ______________________________________
Comunidad: _____________________________________
Periodo: _________________________________________
Sistema de explotación
SE1 ¿Qué tipo de explotación utiliza en su finca?
1. Extensivo: __
2. Intensivo: __
3. Semi intensivo: __
SE2 ¿Comparte su potrero?
1. Si: __
2. No : __
SE3 ¿Realiza tratamientos a sus potreros que producto utiliza y cada cuanto lo hace?
SE4 Separa a los animales por edades
1. Si: __
2. No: __
Manejo zootécnico
MZ1Considera Ud. Que alimenta bien a su ganado
1. Si: __
2. No: __
MZ2 Con que los alimenta
1. Pasto: __
2. Concentrado: __
3. Alterno: __
55
MZ3 Si su respuesta incluye concentrado, que porcentaje de proteína contiene y si es pasto que
tipo es el que utiliza
Manejo sanitario
MS1 Cuenta con un botiquín veterinario en su finca
1. Si: __
2. No: __
MS2. Cada cuanto desparasita su ganado
1. 3 meses: __
2. 6 meses: __
3. 12 meses: __
4. Raras veces: __
5. Nunca: __
MS3. ¿Qué productos utiliza y cómo los alterna?
MS4. ¿Dosifica Adecuadamente el producto?
1. Si: __
2. No: __
3. Algunas veces: __
MS5 ¿Qué signos o síntomas Usted toma en cuenta para determinar que un animal está enfermo?
MS6 ¿Ha notado cambios en el estado físico y de salud de sus animales?
1. Si: __
2. No: __
3. Cuales: __
MS7 Ha notado cambios en las heces de sus animales
1. Color: __
56
2. Olor: __
3. Textura: __
4. Otros: __
MS8 Ha notado gusanos en las heces de sus animales ¿Cuándo?
1. Hace mucho: __
2. Hace poco: __
3. Nunca: __
MS9 ¿Ha realizado algún diagnostico parasitológico hace cuánto?
1. 2 años: __
2. 1 año: __
3. 6 meses: __
4. Nunca: __
MS10 ¿Con que frecuencia realiza limpieza y desinfección de las instalaciones y equipos
utilizados en la ganadería?
1. Diario: __
2. Semanal: __
3. Mensual: __
4. Irregularmente: __
MS11 Se separan a los animales enfermos de los sanos
1. Si: __
2. No: __
57
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