propuesta de creaciÓn de un bioterio para el santuario
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PROPUESTA DE CREACIÓN DE UN BIOTERIO PARA EL SANTUARIO
ANIMAL WILDLIFE WAYSTATION, LOS ÁNGELES, CA.
ÁLVAREZ CRUZ LAURA TALINA
UNIVERSIDAD COOPERATIVA DE COLOMBIA
FACULTAD DE MEDICINA VETERINARIA Y ZOOTECNIA
BUCARAMANGA
2014
PROPUESTA DE CREACIÓN DE UN BIOTERIO PARA EL SANTUARIO
ANIMAL WILDLIFE WAYSTATION, LOS ÁNGELES, CA.
ÁLVAREZ CRUZ LAURA TALINA
Informe Final de Práctica Profesional Presentado como Requisito para
Optar el Título de Médico Veterinario Zootecnista
Director:
Dr. ASTRID C. S. PULLEY
D.V.M
UNIVERSIDAD COOPERATIVA DE COLOMBIA
FACULTAD DE MEDICINA VETERINARIA Y ZOOTECNIA
BUCARAMANGA
2014
Nota de aceptación
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_______________________________
Firma del director
________________________________
Firma del asesor
________________________________
Firma del jurado
Los Ángeles, California, USA. Mayo 2014
Dedico este proyecto a mis amados padres, hermanos y sobrino Esperanza, Juan
Paulo, Juan Manuel, Cesar Darío y Juan José, a mi compañero de aventuras
Christian Raúl, también a mis hermosos animales y por supuesto a cada una de
las personas que me han acompañado en las múltiples veces que he logrado salir
de mi zona de confort.
Merci à tous!
Sería difícil para mí segregar en un pequeño grupo el talento humano y animal que
ha contribuido en la formación de esta servidora, tanto a nivel profesional, como
personal. Así que me iré por el camino del sabio, agradeciendo a la vida en
general por poner cada situación, persona y animal, a la hora y el lugar indicado.
Permitiéndome generar historias y anécdotas, que no solo harán parte de
experiencias vividas, sino dejarán un pedacito de mi en cada ser que he conocido.
Agradezco infinitamente, el haber podido germinar la semilla del amor por los
animales, ya que con el abono de las experiencias vividas, el árbol dará frutos
magníficos, que alimentarán a cuanto ser lo requiera.
TABLA DE CONTENIDO
GLOSARIO. 1
RESUMEN. 4
ABSTRACT. 6
RÉSUMÉ. 8
INTRODUCCIÓN. 10
OBJETIVOS. 13
1. JUSTIFICACIÓN Y PLANTEAMIENTO DEL PROBLEMA. 14
2. ESTADO DEL ARTE. 18
3. NORMATIVIDAD QUE REGULA EL USO DE ANIMALES DE LABORATORIO. 21
3.1 NORMAS A NIVEL MUNDIAL. 21
3.1.1 CONSEJO PARA ORGANIZACIONES INTERNACIONALES DE CIENCIAS MÉDICAS (CIOMS). 21
3.1.2 GUÍA PARA EL CUIDADO Y USO DE ANIMALES DE LABORATORIO. 22
3.1.3 ORGANIZACIÓN DE LAS NACIONES UNIDAS PARA LA ALIMENTACIÓN Y LA AGRICULTURA (FAO). 23
3.2 NORMAS A NIVEL DE ESTADOS UNIDOS. 23
3.2.1 EL ACTA DE BIENESTAR ANIMAL (THE ANIMAL WELFARE ACT, AWA). 23
3.2.2 POLÍTICAS DEL SERVICIO DE SALUD PÚBLICA. 24
3.2.3 EL COMITÉ INSTITUCIONAL PARA EL CUIDADO Y USO DE LOS ANIMALES 25
3.3 NORMATIVAS QUE REGULAN EL SACRIFICIO DE ANIMALES DE LABORATORIO. 25
4. CARACTERÍSTICAS DE LAS ESPECIES. 27
4.1 CARACTERÍSTICAS DE LAS ESPECIES: (MUS MUSCULUS Y RATTUS NORVEGICUS). 27
4.2 PARÁMETROS PARA EL MANEJO DE BIOTERIOS DE PRODUCCIÓN. 29
4.3 CONSTRUCCIÓN DE LA PLANTA FÍSICA Y ALOJAMIENTO. 32
4.3.1 INSTALACIONES PARA LOS ANIMALES. 36
4.3.2 CORREDORES O PASILLOS. 37
4.3.3 PUERTAS DE SALAS. 37
4.3.4 VENTANAS EXTERNAS. 38
4.3.5 PISOS. 38
4.3.6 AGUA, DESAGÜES Y CAÑERÍAS. 38
4.3.7 PAREDES. 38
4.3.8 TECHOS. 39
4.4 MANIPULACIÓN, INMOVILIZACIÓN, IDENTIFICACIÓN Y SEXAJE. 39
4.4.1 TÉCNICAS DE MANIPULACIÓN: RATÓN. 40
4.4.2 TÉCNICAS DE MANIPULACIÓN: RATA. 41
4.4.3 TÉCNICAS DE SEXAJE. 42
4.4.4 MÉTODOS DE IDENTIFICACIÓN. 42
4.5 EUTANASIA. 46
4.5.1 MÉTODOS ACEPTADOS. 47
4.5.2 MÉTODOS ACEPTADOS CON CONDICIONES 48
4.6 ENFERMEDADES ZOONÓTICAS. 52
4.7 ASPECTOS ÉTICOS EN EL CUIDADO Y USO DE ANIMALES DE LABORATORIO. 55
5. MATERIALES Y METODOLOGÍA 58
5.1 UBICACIÓN. 58
5.2 DESCRIPCIÓN DE LA POBLACIÓN. ERROR! BOOKMARK NOT DEFINED.
5.3 MATERIALES. 59
5.4 METODOLOGÍA. 61
6. ESTRUCTURA DEL BIOTERIO. 62
6.1 ESPECIES A MANEJAR Y SUS CARACTERÍSTICAS PRODUCTIVAS. 62
6.1.1 CLASIFICACIÓN GENÉTICA DE ROEDORES DE LABORATORIO. 62
6.1.2 PROVENIENCIA DE LA COLONIA DE LOS ROEDORES DEL PROYECTO. 63
6.1.3 SISTEMA DE CRÍA Y ESQUEMAS REPRODUCTIVOS. 66
6.2 PARÁMETROS FÍSICOS Y MEDIOAMBIENTALES DEL BIOTERIO. 79
6.2.1 UBICACIÓN DE LAS INSTALACIONES. 79
6.2.2 PLANTA FÍSICA. 81
6.2.3 MODELO ESTRUCTURA FÍSICA DEL BIOTERIO. 92
6.2.4 ALOJAMIENTO DE LOS ANIMALES. 93
6.2.5 IDENTIFICACIÓN Y MARCAJE DE LOS ANIMALES. 99
6.2.6 REGISTROS GENERALES DE LA COLONIA. 103
6.2.7 REQUERIMIENTOS BÁSICOS DE LOS ANIMALES. 106
6.3 ASPECTOS ADMINISTRATIVOS. 119
6.3.1 ENTRENAMIENTO DEL PERSONAL DEL BIOTERIO. 119
6.3.2 UBICACIÓN DE CARTELES PROMOVIENDO LA PREVENCIÓN. 139
6.3.3 NORMATIVAS INTERNAS DEL BIOTERIO. 139
7. PRESUPUESTO PREDETERMINADO Y RETORNO DE LA INVERSIÓN (RSI). 143
8. DESGLOSE DE COSTOS 144
9. CONCLUSIONES. 147
10. RECOMENDACIONES. 148
11. BIBLIOGRAFIA. 149
ANEXOS 161
LISTA DE TABLAS
pág.
Tabla 1. Cálculo aproximado de ratones y ratas utilizadas
para la alimentación en la actualidad………………………………………………….16
Tabla 2. Inversión realizada entre el periodo de Octubre del
2012 y Octubre del 2013 para la compra de ratones y ratas………………………16
Tabla 3. Características de las especies……………………………………………...27
Tabla 4. Parámetros para el correcto manejo del bioterio …………….….………..30
Tabla 5. Procedimientos operativos del personal en el bioterio…………………...35
Tabla 6. Enfermedades más comunes transmitidas por roedores…………………54
Tabla 7. Materiales requeridos para la elaboración del proyecto…………………..60
Tabla 8. Esquema reproductivo del Ratón (Mus musculus)………………………..71
Tabla 9. Esquema reproductivo de la Rata (Rattus norvegicus)…………………...76
Tabla 10. Medidas del contenedor de carga………………………………………….84
Tabla 11. Cantidad de paneles requeridos de acuerdo al área
total de la estructura……………………………………………………………………..86
Tabla 12. Materiales necesarios para las instalaciones
eléctricas y sistemas de ventilación……………………………………………………88
Tabla 13. Materiales necesarios para la instalación
del agua y sistemas de drenaje………………………………………………………...91
Tabla 14. Cantidad de jaulas y estanterías requeridas para ratones……………...97
Tabla 15. Cantidad de jaulas y estanterías requeridas para ratas…………………99
Tabla 16. Técnica de marcado de orejas……………………………………………101
Tabla 17. Comparación de concentrados…………………………………………...108
Tabla 18. Cantidad aproximada de alimento consumido por año………………..109
Tabla 19. Cantidad de cama (Hemp) requerido anualmente……………………..113
Tabla 20. Artefactos de enriquecimiento ambiental………………………………..118
Tabla 21. Requisitos para obtener el título de ALAT……………………………….121
Tabla 22. Cronograma semanal de limpiezas ……………………………………...126
Tabla 23. Concentración del Tego 2000…………………………………………….133
Tabla 24. Cronograma de actividades……………………………………………….133
Tabla 25. Costos……………………………………………………………………….144
Tabla 26. Desglose de costos………………………………………………………...145
LISTA DE ILUSTRACIONES
pág.
Imagen 1. Modelo de bioterio de producción………………………………………...33
Imagen 2. Modelos de corredores……………………………………………………..34
Imagen 3. Medidas mínimas de animales por jaula…………………………………36
Imagen 4. Cómo retirar los ratones de la jaula………………………………………40
Imagen 5. Cómo sujetar los ratones e inmovilizarlos………………………………..40
Imagen 6. Cómo retirar las ratas de la jaula………………………………………….41
Imagen 7. Cómo sujetar e inmovilizar las ratas……………………………………41
Imagen 8. Técnicas de sexaje…………………………………………………………42
Imagen 9. Marcación con marcadores indelebles………………………………..43
Imagen 10. Marcado de orejas…………………………………………………...……44
Imagen 11. Caravanas plásticas o metálicas………………………………………44
Imagen 12. Método de tatuaje en roedores…………………………………………45
Imagen 13. Implante subcutáneo con microchip……………………………………45
Imagen 14. Ubicación del WWS. Vista satelital.…………………………………...58
Imagen 15. Ubicación del WWS. Mapa……………………………………………….59
Imagen 16. Ratón CD-1® IGS Mouse………………………………………………...65
Imagen 17. Rata CD® IGS Rat………………………………………………………...66
IImagen 18. Sistema rotacional Poiley………………………………………………..69
Imagen 19. Organización de la colonia de ratones………………………………….72
Imagen 20. Organización de la colonia de ratas…………………………………….77
Imagen 21. Back 40……………………………………………………………………..80
Imagen 22. Área 4………………………………………………………………………81
Imagen 23. Tubería para el agua presente en el Back 40………..........................81
Imágenes 24 y 25. Compartimento de carga para Tractomula……………………83
Imágenes 26 y 27. Estado de los pisos y paredes…………………………………85
Imagen 28. Modelo de panel de plástico y medidas por unidad…………………85
Imagen 29. Acceso actual al compartimento de carga……………………………...87
Imagen 30. Modelo de escaleras de aluminio………………………………………87
Imagen 31. Estructura física del bioterio……………………………………………...94
Imagen 32. Modelo de alojamiento para ratones ARS-1050……………………….95
Imagen 33. Detalles estructurales del modelo ARS-1050 y ARS-5032…………...96
Imagen 34. Modelo de alojamiento para ratas ARS-5032………………………….98
Imagen 35. Tarjetas de identificación para reproductores………………………...102
Imagen 36. Tarjetas de identificación para crías…………………………………...103
Imagen 37. Registros generales de la colonia de ratones………………………...105
Imagen 38. Registros generales de la colonia de ratas……………………………106
Imagen 39. Modelo de concentrado # 5001………………………………………...108
Imagen 40. Fibra de Cáñamo (Hemp)……………………………………………….113
Imagen 41. Alojamiento de roedores en grupos…………………………………...118
Imagen 42. Flujograma de procesos………………………………………………...123
Imagen 43. Sanitización de manos…………………………………………………..127
Imagen 44. Protocolo de sexaje……………………………………………………...128
Imagen 45. Protocolo de eutanasia de los animales………………………………129
Imagen 46. Protocolo para suministro de alimento y agua………………………..131
Imagen 47. Protocolo de actividades para la limpieza de las jaulas……………..134
Imagen 48. Protocolo de actividades para la limpieza de las estanterías……….136
Imagen 49. Protocolo de limpieza y desinfección de los pisos…………………...138
Imagen 50. Protocolo de eliminación de desechos………………………………...139
LISTAS DE ANEXOS
pág.
Anexo A. Fragmento del informe de gastos totales de
productos alimenticios según reportes financieros del
Wildlife Waystation del año 2013……………………………………………………..159
Anexo B. Gastos totales de compra de roedores en el
año 2013………………………………………………………………………………...160
Anexo C. Reportes de salud de cepas de ratones CD-1®
IGS Mouse………………………………………………………………………………161
Anexo D. Reportes de salud de cepas de ratas CD® IGS Rat …………………..163
Anexo E. Cómo diseñar un campo de infiltración para un tanque séptico.……..165
Anexo F. Descripción y composición del alimento
concentrado para roedores LabDiet 5001.……………………………………….....166
Anexo G. Comparación de la fibra de Cáñamo con otros
materiales ofrecidos en el mercado …………………………………………………167
1
GLOSARIO
AGENTE DISOCIATIVO: Medicamentos que distorsionan las percepciones
visuales y auditivas y producen sentimientos de aislamiento o disociación del
medio y del propio individuo.
ALELO: Cada una de las formas alternativas que puede tener un mismo gen que
se diferencian en su secuencia y que se puede manifestar en modificaciones
concretas de la función de ese gen.
BARBITÚRICOS: Fármacos derivados del ácido barbitúrico que actúan como
sedantes del sistema nervioso central y producen un amplio esquema de efectos,
desde sedación suave hasta anestesia total.
BIOTERIO: Lugar físico donde se crían, mantienen y utilizan animales de
laboratorio. Este lugar debe brindar un adecuado macroambiente y microambiente,
acorde a la especie animal que se esté alojando, adaptándose a los
requerimientos y necesidades de la especie alojada.
CONSANGUINIDAD: El apareamiento de animales más estrechamente
emparentados que el promedio de la población de la cual provienen.
EFECTO BRUCE: Ocurre principalmente en roedores. Consiste en la tendencia
de las hembras a abortar tras ser expuestas a la presencia de algún macho
desconocido.
EFECTO LEE BOOT: Ocurre principalmente en roedores. Es un fenómeno
caracterizado por la supresión o prolongación del ciclo estral (anestro) de hembras
adultas, causado por la falta de la machos en los grupos conformados.
2
EFECTO WHITTEN: Ocurre cuando hay sincronización del ciclo estral (múltiples
hembras se encuentran en estro al mismo tiempo) de un grupo de hembras, y es
causado debido a feromonas producidas por el macho. En este caso las hembras
se encuentran fértiles y receptivas al macho.
ENDOCRÍA: Se definen como el apareamiento de animales emparentados.
ENFERMEDADES ZOONÓTICAS: Aquellas enfermedades de los humanos que
tienen su origen o forma de transmisión en los animales.
EXOCRÍA: Apareamiento de animales pertenecientes a razas diferentes.
FERTILIDAD: Capacidad de un ser vivo de producir o sustentar una progenie
numerosa.
GENÉTICA: Campo de la biología que busca comprender la herencia biológica
que se transmite de generación en generación.
GLÁNDULAS HARDENIANAS: Asociada a los ojos. Glándula que secreta una
sustancia oleosa que llega hasta los orificios nasales. Los animales utilizan las
patas delanteras para esparcir dicha sustancia en su pelaje, creando una barrera
contra el frío y humedad.
HÍBRIDO: Apareamiento entre individuos pertenecientes a especies diferentes.
LOCI: Ubicación específica en donde se encuentra un gen en la secuencia del
ADN, o la posición en un cromosoma.
3
POLIESTRICAS CONTINUAS: Hace parte de uno de los tipos de periodicidad en
que hembras de algunas especies presentan su ciclo estral. En este caso, las
hembras caracterizadas por ser poliéstricas continuas, son aquellas quienes
presentan ciclos estrales durante todo el año, interrumpiéndose solo en la preñez.
PRUEBA ELISA “Enzyme -linked immunosorbent assay” (por sus siglas en
inglés): Es una prueba diagnóstica que usa enzimas ―solid-phase enzyme
immuno assay‖, EIA) para la detección de sustancias (usualmente antígenos) en
muestras líquidas o húmedas, usualmente por medio del cambio de color de
sustrato.
SEXAJE: Es un método para determinar el sexo de un animal. Puede realizarse
por análisis de ADN, por comportamiento o por caracteres morfológicos.
4
RESUMEN
El presente trabajo constituye la tesis de grado de la carrera de Medicina
Veterinaria y Zootecnia, gestado durante el periodo de pasantía llevado a cabo en
el Santuario Wildlife Waystation, ubicado en los territorios del Bosque Nacional de
Los Ángeles, California, en los Estados Unidos de América. Ésta es una
organización no gubernamental (ONG) que a través de los años ha funcionado en
su mayoría gracias a los aportes económicos de voluntarios o personas naturales.
Otro de sus ingresos importantes era la visita del público, pero debido a problemas
administrativos el Santuario cerró sus puertas a particulares, hace cerca de diez
años. El hecho de depender únicamente de las donaciones, hace que la situación
económica del Santuario sea inestable, generando un alto riesgo en su
sostenimiento.
Ante la problemática mencionada anteriormente, se aplicó la matriz DOFA y
gracias al aporte de los empleados, voluntarios y directivos de la institución, se
logró detectar la necesitad de la creación de un proyecto que pretende impulsar la
economía del Santuario, cuyo objetivo general es la creación de una propuesta de
un bioterio de producción de ratones y ratas para reducir los costos alimenticios.
Esta investigación cualitativa de tipo proyectiva, se basó en la identificación del
problema anteriormente mencionado y se desarrolló inicialmente al determinar los
gastos anuales de alimentación de las especies residentes. Posteriormente se
llevó a cabo un proceso de planeación que incluyó la selección de un contenedor
de Tractomula como planta física, su adecuación y correcta ubicación dentro de
las instalaciones del Santuario. A continuación se creó un modelo productivo de
ratas y ratones, en el cual se consideraron parámetros relacionados con la
genética, reproducción, cría, manejo y sacrificio de los animales. Finalmente
mediante el análisis del presupuesto predeterminado y retorno de la inversión
(RSI) del proyecto, se determinó la factibilidad de éste, teniendo en cuenta que el
tiempo de amortización se cumpliría a los 4.8 años y que al cabo de ese periodo
5
quedaría una utilidad neta anual de US$4,947.35, además de los beneficios que
traería para el Santuario el hecho de iniciar proyectos que impulsen su auto
sostenibilidad.
Palabras claves: Santuario, ―Wildlife Waystation‖, matriz DOFA, propuesta,
investigación proyectiva, bioterio, ratas, ratones.
6
ABSTRACT
This proposal corresponds a thesis from the career Veterinary Medicine and
Zootechnics, a work that follows up a prior internship project completed at the
animal Sanctuary Wildlife Waystation (WWS), a non-governmental organization
(NGO), located in the Los Angeles National Forest, California, United States of
America. Since its conception as a NGO the WWS has been maintained thanks to
the economical support of volunteers, external donors and visitors, situation that
changed during 2004 when the Sanctuary had to close its doors to the public,
making its economy unstable, depending only on people's goodwill.
Based on the need of becoming economically stable, it was crucial to detect the
weaknesses of the enterprise, reason why the SWOT analysis was used. (to
evaluate the Strengths, Weaknesses, Opportunities and Threats).Considering the
weak points previously identified, one of the principal conclusions was that there
was a big necessity of creating projects that could potentiate and improve the
economy of the place. A project idea emerged, based on the development of a
program to breed and produce rats and mice with the aim of reducing food costs.
The research was developed by using a qualitative research type called Projective
Technique. The first step was based on identifying the problem, followed by the
recognition of the amount of money destined yearly on buying the animals food.
Later a planning process was developed. This started with the selection and
adaptation of a recycled structure previously used for storage, no was the project's
building, and continued by creating a productive model to produce rats and mice,
including factors like genetics, breeding techniques, handling and euthanasia.
Finally, after measuring the Return Of Invested (ROI), Payback Period (4.8 years)
and monthly utilities (US$4,947.35) the feasibility and benefits of the project were
determined.
7
Key words: Sanctuary, Wildlife Waystation, SWOT analysis, proposal, projective
technique, production, rats, mice.
8
RÉSUMÉ
Ce document constitue la mémoire de thèse de la carrière de Médicine Vétérinaire
et Zootechnie. Le projet proposé a été conçu dans le cadre d‘un stage effectué au
sein du sanctuaire d‘animaux exotiques Wildlife Waystation (WWS). Le WWS est
située dans les domaines de Los Angeles National Forest, Californie, États-Unis
d‘Amérique. Il s‘agit d‘un Organisme Sans But Lucratif (OSBL) qu'à travers des
années à survécu grâce aux donations économiques. Autre revenu important était
les visites du public, mais à cause des problèmes administratifs, le sanctuaire a dû
fermer définitivement ses portes aux particuliers, il y a dix ans. Le fait de dépendre
uniquement des dons, crée une instabilité économique qui met en péril le
fonctionnement du sanctuaire.
Basée sur la problématique mentionnée avant, une matrice SWOT (par son nom
en anglais Strengths, Weaknesses, Opportunities et Threats) a été établie. On a
identifié la nécessite des actions qui permettent de stimuler l'économie du site
d‘une façon autonome. Suite à cela, on a proposé la création d'un vivarium de
production de souris et rats, avec le but de satisfaire les besoins alimentaires du
site, tout en diminuant les coûts.
Cette proposition de type qualitative, nommée « technique projective », a été
fondée sur l'identification du problème et complétée avec l‘historique des frais
annuels dépensés par le Sanctuaire en alimentation animal. Après cela, un
processus de planification a été mis en place et un des points importants a été le
choix d‘un conteneur comme infrastructure pour le vivarium. De la même manière,
le placement de ce conteneur a était analysé et établit. À continuation un model
productif de rats et souris a été développé, dont des différent paramètres ont été
considérés : la génétique, la reproduction, l'élevage, la manipulation et le sacrifice
des animaux. Finalement, une analyse économique du projet a été menée,
laquelle a permis de vérifier sa faisabilité. Le retour sur l‘investissement (RSI) a été
9
fixé à 4.8 ans, date après laquelle le Sanctuaire commencerait à avoir des profits
annuels de US$4,947.35, permettant d‘améliorer la situation économique du site,
ainsi que d‘avoir une autonomie en termes du processus d‘alimentation des
animaux.
Mots-clés: Sanctuaire, Wildlife Waystation, matrice SWOT, proposition, technique
projective, reproduction, élevage, rats, souris.
10
INTRODUCCIÓN
El Santuario Wildlife Waystation (SWW), está ubicado en los territorios del Bosque
Nacional de Los Ángeles, California, en los Estados Unidos de América. Se trata
de una organización sin ánimo de lucro (ONG) que alberga actualmente a más de
quinientas (500) especies animales, provenientes de diversos escenarios de
maltrato. Su papel como institución precursora y defensora de los derechos de los
animales y su protección se empezó a forjar desde su creación en el año 1979 por
la experta en fauna silvestre y exótica, de origen francés, Martine Colette1.
Desde la concepción del Santuario como ONG, a través de los años, su
manutención se había basado principalmente en donaciones económicas por
parte de voluntarios, personas particulares y finalmente recaudaciones de dinero a
partir de las visitas del público. Situación que cambió en el año 2004, cuando las
autoridades del condado de Los Ángeles, cerraron sus puertas a particulares, al
notar la carencia de algunos permisos relacionados a la infraestructura construida
para los animales. Condición que afectó directamente la estabilidad económica de
la organización, al depender únicamente de los ingresos variables, éstos
representados por las donaciones recibidas esporádicamente.
Con el fin de conocer la problemática real, basado en la aplicación de la matriz
DOFA, realizada durante el periodo de pasantía del autor (la cual evalúa las
debilidades, oportunidades, fortalezas y amenazas de una empresa), se logró
determinar que si bien a nivel administrativo el manejo es generalmente correcto,
a nivel económico existe una falencia importante, ya que no solo los gastos
superan en gran número los ingresos (situación demostrada según los reportes
1 WILDLIFE WAYSTATION. About Martine. (en línea) < http://wildlifewaystation.org/martine-
colette.htm> (citado el 2 de enero del 2014).
11
financieros del año 2013 del SWW2, en donde los gastos anuales de alimentación
alcanzaron la cifra total de US$207,513.79) (ver Anexo A), simultáneamente
también existe una carencia de actividades que contribuyan a la seguridad
alimenticia del Santuario. Para lo cual se concluyó acerca de la necesidad de
generar proyectos con éste fin, proponiéndose puntualmente la creación de un
bioterio de producción de ratas y ratones, para así suplir la demanda alimenticia
de algunos animales residentes del Santuario3.
Si bien Muñoz de Mérida define un bioterio como: "El lugar físico donde se alojan,
crían y utilizan animales de laboratorio que cuentan con una calidad genética y
microbiológica definida"4, es necesario destacar que existen tres clasificaciones:
los de mantenimiento, experimentación y producción o crianza. Los bioterios de
mantenimiento son destinados ya sea para adaptar especies animales al
cautiverio o mantener animales (sin algún valor genético especializado) con el fin
de usados en diversas prácticas biomédicas. Los bioterios de experimentación
comprenden los lugares donde se crían y mantienen animales de calidad genética
y microbiológica definida, siendo una característica importante, el control estricto
de las variables que puedan interferir directa o indirectamente en aquello que se
desea estudiar. Finalmente en cuanto a los bioterios de producción o crianza,
corresponden a aquellos en donde si bien se requieren controlar las variables del
medio que puedan afectar a los animales, su finalidad consiste ya sea en albergar
2 CARY BARNHILL, Barbara. Wildlife Waystation transaction report. En: Wildlife Waystation
financial statements for the year ended October 15, 2013 and independent auditor‘s report (base
de datos electrónica). (Oct. 2012 - Oct. 2013). (citado el 2 de enero del 2014).
3 ALVAREZ CRUZ, Laura. Informe de pasantía llevada a cabo en el Santuario Wildlife
Waystation. Los Ángeles, California, 2013, 70 h. Informe final de pasantía (Medicina Veterinaria
y Zootecnia). Universidad Cooperativa de Colombia. Facultad de Medicina Veterinaria y
Zootecnia.
4 MUÑOZ DE MÉRIDA, María. Bioterio. (en línea). <
http://es.scribd.com/doc/55492124/BIOTERIO> (citado el 24 de Julio del 2014).
12
los núcleos parentales requeridos para un experimento concreto, o cepas de
animales que se produzcan con el fin de ser comercializadas como mascotas o
alimento de otras especies5.
De acuerdo a lo mencionado anteriormente es importante destacar que el bioterio
desarrollado en la presente propuesta constituye a uno de producción, con la
aclaración que su objetivo sería de producir animales saludables para el
autoconsumo, beneficiando tanto la salud de sus consumidores, como la
estabilidad económica del Santuario, al aportar a su seguridad alimenticia.
La investigación que se llevó a cabo durante la realización de la propuesta fue de
tipo proyectiva, para su desarrollo se tuvieron en cuenta parámetros relacionados
con la selección, adecuación y locación de las instalaciones físicas, y la creación
de un modelo productivo, en el cual se consideraron factores como: la genética,
reproducción, cría, manejo y sacrificio de los animales. Asimismo, se complementó
con un componente económico, al analizar tanto el presupuesto predeterminado
como retorno de la inversión (RSI) del proyecto, demostrando la factibilidad del
proyecto, debido a su reducido tiempo de amortización (4.8 años), a las utilidades
producidas anualmente (US$4,947.35) y al gran beneficio que traería para el
Santuario el hecho de iniciar proyectos que impulsen su auto sostenibilidad.
5 PEREIRA CARDOZO, Celia. Animais de Laboratório: criação e experimentação: Classificação
de biotérios quanto à finalidade. En: SciELO Books (en línea). No. 4 (2002) <
http://books.scielo.org/id/sfwtj/pdf/andrade-9788575413869-06.pdf> (citado el 24 de julio del
2014).
13
OBJETIVOS
OBJETIVO GENERAL.
Diseñar un bioterio de producción de ratas y ratones con el fin de reducir costos de
alimentación en el Santuario Wildlife Waystation.
OBJETIVOS ESPECÍFICOS.
- Diseñar un modelo de bioterio de producción de ratas y ratones que se ajuste a
las condiciones medioambientales del Santuario Wildlife Waystation.
- Crear un proyecto piloto que impulse la seguridad alimenticia de los animales
del Santuario Wildlife Waystation.
- Determinar la factibilidad de la implementación del bioterio de producción de
ratas y ratones en el Santuario Wildlife Waystation.
14
1. JUSTIFICACIÓN Y PLANTEAMIENTO DEL PROBLEMA.
Dentro de los tres factores principales que componen la producción pecuaria, la
nutrición constituye el punto crítico más relevante, superando a la genética y la
reproducción. Esto debido, a que dicha área no sólo es la base de la supervivencia
de los organismos vivos, sino que representa en los costos de producción totales
de una empresa un porcentaje que varía entre el 60 y el 85%6. Por esto, con el fin
de reducir costos, existe la tendencia por parte de los productores a buscar
nuevas alternativas de alimentación, de manera que se aumente la eficiencia de
las empresas. Lo anterior, si bien es una representación de un modelo animal
productivo, es posible aplicarlo en cualquier caso puntual de empresas o
instituciones que alberguen animales (como es el caso de los zoológicos,
santuarios o albergues) así su objetivo principal no sea la reproducción genética o
producción de alimento para humanos.
Según reportes financieros del WWS del año 2013, los gastos totales incurridos en
la compra de alimento para los animales fueron aproximadamente de
US$207,513; siendo la carne el ítem que representa mayor costo (US$104,889),
seguido por los productos concentrados (US$50,539), las frutas y verduras
(US$15,600) y en cuarto lugar los roedores (US$14,076). Cifras que se esperan
aumenten con el tiempo, teniendo en cuenta el alto flujo de animales que ingresan
al Santuario7.
6 BRAUTIGAN IM. Nutrición Animal. 1 ed. Costa Rica: Universidad Estatal a Distancia; 2007.
7 CARY BARNHILL, Barbara. Wildlife Waystation inventory report. (base de datos electrónica).
(Oct. 2012 - Oct. 2013). (citado el 2 de enero del 2014).
15
Con el fin de dar una idea al lector acerca de la situación actual del Santuario, es
importante tener en cuenta que todo alimento ofrecido a los animales, es y ha sido
adquirido por medio de productores externos o donado por diferentes fuentes;
dependencia que no solo afecta a la organización a nivel económico, sino
funcional, puesto que no hay ninguna medida de respuesta inmediata que asegure
la alimentación de los animales en caso de escasez, sea producida por problemas
económicos internos, por el aumento de precios en el mercado o por el cambio de
insumos por parte de los productores.
Lo anterior, justificación principal del presente proyecto, corresponde a una de las
conclusiones obtenidas tras haber realizado el análisis del diagnóstico del WWS,
para el cual se aplicó la matriz DOFA. A continuación se listarán los resultados
obtenidos durante dicho proceso diagnóstico.
- Insuficiente número de personal especializado, lo cual dificulta y retrasa
procesos.
- Alimentación de los animales depende estrictamente de proveedores externos,
lo cual afecta la estabilidad económica del Santuario.
- Necesidad de formular proyectos de enriquecimiento ambiental que tengan en
cuenta limitaciones tales como: dimensión de las jaulas y materiales en que se
encuentran construídas. De manera que se potencialicen los materiales
dispuestos a éste fin.
- Falta de implementación de protocolos para el control de parásitos en los
animales. Afectando directamente la salud de los animales al no tener un
programa ordenado de recolección de muestras, valoración e implementación
de tratamientos.
- Falta de organización de algunos insumos encontrados en las áreas del
hospital, lo cual dificulta los procesos.
16
De acuerdo a registros actuales, las cifras mostradas a continuación representan
la cantidad aproximada de roedores que se utilizan mensual, semestral y
anualmente como alimento.
Fuente: Base de datos llevada por Dr. Silvio Santinelli
Fuente: Reportes Bárbara Brace Barnhill contadora del WW.
Tabla 1. Cálculo de ratones y ratas utilizadas para la alimentación en la actualidad.
Tabla 2. Inversión realizada entre el periodo de Octubre del 2012 y Octubre del 2013 para la compra de ratones y ratas.
17
Según la tabla anterior, entre el periodo de Octubre 15 del año 2012 y Octubre 15
del año 2013, los gastos totales en que incurrió el Santuario en la compra de
roedores con fines alimenticios fueron de US$14,076, lo cual representa el 6,78%
de la cifra total de la inversión de alimento anual por parte del Santuario. Es
importante denotar que la inversión total anual no solo depende del flujo de
animales que haya entrado o salido del Santuario, sino también de la fluctuación
de precios en el mercado. Si bien es cierto, que los roedores no son la fuente de
alimento en que se incurre el mayor gasto, debido a la dificultad de lograr producir
los demás alimentos, la alternativa de la creación de un bioterio con fines
productivos se plantea como solución para demostrar que es posible reducir
costos y problemáticas, cuando se refuerza la autonomía productiva, beneficiando
la economía del Santuario, al contribuir a su seguridad alimenticia.
18
2. ESTADO DEL ARTE
Si bien los bioterios constituyen aquellos lugares físicos en donde se alojan y crían
animales de laboratorio4 y su clasificación formal está compuesta por tres (3) tipos
diferentes5. Es necesario determinar que en el día a día y a través del paso de los
años dos modelos generales se han desarrollado, constituyendo a los modelos
empírico y formal.
Con respecto al modelo empírico es posible decir que se trata de aquel tipo de
producción de ratas y ratones llevado a cabo por personas naturales, quienes
poseen nula o poca experiencia en el tema, adquiriéndola usualmente gracias a
fuentes informativas como el internet o tras aplicar sistemas de prueba y error.
Dichas producciones se crean generalmente ya sea para su autoconsumo (tras
poseer mascotas que así lo necesiten), o para realizar ventas al minoreo de
roedores como mascotas o alimento (vivo o muerto). En este caso, la toma de
registros y bases de datos tienden a ser incompletas o totalmente inexistentes, lo
cual ocasiona que el pequeño productor generalmente se limite supliendo
únicamente sus necesidades momentáneas o de corto plazo. Si bien dichos
modelos pueden estar basados ya sea en técnicas previamente desarrolladas o
modelos innovadores, su posibilidad de ser repetidos o reproducidos es cercana a
nula, esto debido a la falta de producción de datos confiables y verídicos.
Por otro lado, el modelo formal se encuentra representado por dos tipos de
empresas: los laboratorios científicos y las compañías especializadas en la
producción, distribución y venta de roedores.
Con respecto a la contribución de los laboratorios científicos en este campo, es
posible determinar que ésta ha sido la más relevante ya que ha consistido no solo
en la producción tanto de cepas de roedores usadas generalmente como pies de
19
cría en proyectos productivos y/o bioterios de experimentación, como de infinidad
de información científica, permitiendo el nacimiento de un lenguaje científico de
tipo universal y el desarrollo de diversos proyectos de diferentes índoles8. Los
tipos de cepas producidos por los laboratorios son usualmente adquiridas por los
usuarios cuando la trazabilidad, el grado de parentesco y el rendimiento
reproductivo son considerados como prioridades, lo cual depende de la naturaleza
y los objetivos del proyecto. En este caso, dos compañías representativas de este
grupo son los laboratorios Jackson Laboratory9 y Charles River10, empresas
consideradas como líderes en la producción de cepas de roedores con
características y fines definidos, ya sea para su uso en el campo productivo o
científico (siendo mayormente utilizadas para diferentes tipos de investigaciones,
con respecto al comportamiento de algunas enfermedades o al descubrimiento de
medicamentos, esto con el fin de mejorar la salud del ser humano).
Con respecto a las compañías especializadas en la producción, es importante
puntualizar que son aquellas que se dedican a la venta de diferentes especies de
laboratorio con fines alimenticios. Es de destacar que entre las múltiples empresas
ofrecidas en el mercado, dedicadas al mismo fin, tres (3) fueron seleccionadas
para así ejemplarizar el modelo que la presente propuesta desea seguir, debido no
solo a su trayectoria sino su capacidad de producir datos con posibilidad de ser
reproducidos o repetidos. Es importante tener en cuenta que uno de los factores
primordiales que contribuyeron a dicha selección, consistió en que el WWS es
cliente activo, y por ende es testigo tanto de su servicio, como de la calidad de sus
productos. Dichas compañías corresponden a: RodentPro11, MiceDirect12 y Layne
8 BRAMANTI, Peggy. Charles River Laboratory International Genetic Standards. Volume 11 #1.
Wilmington, MA: Charles River Laboratory, 1999.
9 JACKSON LABORATORY (en línea) <http://www.jax.org> (citado el 10 de marzo del 2014).
10 CHARLES RIVER (en línea) <http://www.criver.com> (citado el 10 de marzo del 2014).
11 RODENTPRO (en línea) <http://www.rodentpro.com/?gclid=CLr5u_DczLwCFciCfgodakoA9Q>
(citado el 10 de marzo del 2014).
20
Laboratories13. Empresas Estadounidenses las cuales su misión en común,
consiste en: ser especialistas en la producción y distribución de pequeños
mamíferos y aves congeladas, usados como alimento para especies tales como:
reptiles, aves rapaces, especies acuáticas y carnívoras en general, y sus
objetivos, consisten en la venta de productos de alta calidad, ofreciendo al cliente,
directa atención por parte del productor, facilidad de entrega y disponibilidad a lo
largo del año.
12
MICEDIRECT (en línea) <https://micedirect.com/> (citado el 10 de marzo del 2014).
13 LAYNE LABORATORIES (en línea) <http://www.laynelabs.com/frozen-
mice?gclid=CJOarqvdzLwCFRSPfgodE14AUA> (citado el 10 de marzo del 2014).
21
3. NORMATIVIDAD QUE REGULA EL USO DE ANIMALES DE
LABORATORIO A NIVEL MUNDIAL Y EN LOS ESTADOS UNIDOS DE
AMÉRICA
Existen normas generales o marcos que regulan el uso de animales de laboratorio
a nivel mundial, otras específicas de algunos continentes (Asia y Europa) y
algunas otras de naciones (Australia y Nueva Zelanda, Canadá, India, Israel,
México y Sur África).
3.1 NORMAS A NIVEL MUNDIAL.
3.1.1 Consejo para Organizaciones Internacionales de Ciencias Médicas
(CIOMS).
Durante el mes de diciembre del año 2012, el Consejo Internacional de la Ciencia
de los Animales de Laboratorio (ICLAS, por sus siglas en inglés)14 junto con el
Consejo de Organizaciones Internacionales de las Ciencias Médicas (CIOMS, por
sus siglas en inglés)15 crearon la "Guía de Principios Internacionales para
Investigaciones Biomédicas que Envuelven Animales". Su objetivo principal se
basó en la creación de un marco, que sirviese como punto de referencia para
lograr la vigilancia y control de actividades relacionadas con investigaciones y
programas de enseñanza que incluyesen animales, llevadas a cabo en países
emergentes en cuanto a su desarrollo científico. Asimismo, que sirviese como pilar
14 INTERNATIONAL COUNCIL FOR LABORATORY ANIMAL SCIENCE, ICLAS. (en línea) <
http://iclas.org/> (citado el día 25 de julio del 2014).
15 THE COUNCIL FOR INTERNATIONAL ORGANIZATIONS OF MEDICAL SCIENCES, CIOMS.
(en línea) < http://www.cioms.ch/> (citado el día 25 de julio del 2014).
22
para los países desarrollados que posean programas de investigación ya
establecidos, en los cuales se incluyan animales.
3.1.2 Guía para el Cuidado y Uso de Animales de Laboratorio.
La octava edición de la Guía para el Cuidado y Uso de Animales de Laboratorio (la
Guía)15, publicada por el Consejo de Investigación Nacional, es reconocida en
muchos países como un marco regulador de estándares de calidad, relacionados
al uso y cuidado de animales de laboratorio. La Asociación Internacional para la
Evaluación y Acreditación del Cuidado de Animales de Laboratorio (AAALAC, por
sus siglas en inglés)16 utiliza tres estándares principales para evaluar el cuidado y
el uso de los animales en los diferentes programas. Entre éstos se encuentran la
Guía15: igualmente la "Guía para el Cuidado y Uso de Animales de Producción en
Investigaciones y Educación17 y la Convención Europea para la Protección de
Animales Vertebrados Usados para Experimentación y otros Propósitos
Científicos18. Es importante resaltar que el Consejo de la AAALAC también utiliza
diferentes tipos de referencias y recursos durante el proceso diagnóstico, los
cuales dependerían de la ubicación del programa y el tipo de investigación.
16
ASSOCIATION FOR ASSESSMENT AND ACCREDITATION OF LABORATORY ANIMAL
CARE, AAALAC. (en línea) < http://www.aaalac.org/about/index.cfm> (citado el 25 de julio del
2014). 17
GUIDE FOR THE CARE AND USE OF AGRICULTURAL ANIMALS IN RESEARCH AND
TEACHING, Third edition. Federation of Animal Science Societies, FASS. Champaign, IL:
Federation of Animal Science Societies, 2010.
18 CONSEIL OF EUROPE. European Convention for the Protection of Vertebrate Animals Used
for Experimental and other Scientific Purposes. Strasbourg: 1986 (ETS No. 170).
23
3.1.3 Organización de las Naciones Unidas para la Alimentación y la
Agricultura (FAO, por sus siglas en inglés).
Existe una división en la FAO llamada "Departamento de Agricultura y Protección
del Consumidor, Protección y Salud Animal"19, la cual se encarga de servir como
veedor en cualquier escenario en donde se incluyan animales sin importar su uso
o destino.
3.2 NORMAS A NIVEL DE ESTADOS UNIDOS.
3.2.1 El Acta de Bienestar Animal (The Animal Welfare Act, AWA).
En Acta de Bienestar Animal (AWA, por sus siglas en inglés)20 constituye la única
ley de tipo federal en los Estados Unidos de América que regula el cuidado y uso
de animales en diversas áreas, incluyendo la investigación. Desde su concepción,
en el año 1969, el acta ha sido modificada y actualizada siete veces, datando su
última versión del año 2008. Actualmente el acta cubre y protege todos los
animales de sangre caliente excepto las ratas, los ratones, las aves y los animales
de granja utilizados para investigaciones relacionadas con la alimentación. Es
importante resaltar que si bien existen otras leyes, políticas o guías que poseen
cobertura adicional en cuanto a otras especies o especificaciones con respecto a
19
FOOD AND AGRICULTURE ORGANIZATION OF THE UNITED STATIONS. Agriculture and
Consumer Protection Department Animal Production and Health Division (en línea) <
http://www.fao.org/ag/againfo/home/en/index.htm> (citado el día 25 de julio del 2014).
20 TADLOCK, C. The Animal Welfare Act: Background and Selected Legislation (PDF). The
Animal Welfare Act: Background and Selected Legislation. Congressional Research Service,
2012.
24
su cuidado y/o uso, todas éstas se basan en la AWA al referirse de los estándares
mínimos para el tratamiento y cuidado de los animales.
El organismo federal responsable de regular el AWA es constituido por el
Departamento de Agricultura de los Estados Unidos (USDA, por sus siglas en
inglés)21, mediante su división correspondiente al Servicio de Inspección de la
Salud de los Animales y Plantas (APHIS, por sus siglas en inglés)22. El APHIS
mantiene un grupo de investigadores encargados de inspeccionar los centros de
investigaciones que posean animales mínimo una vez al año, teniendo en cuenta
que aquellos que no cumpliesen con las regulaciones establecidas por el AWA,
serían reportados al USDA y sus licencias serían revocadas.
3.2.2 Políticas del Servicio de Salud Pública.
El Servicio de Salud Pública de los Estados Unidos (PHS, por sus siglas en inglés)
por medio de sus "Políticas de Cuidado Humano y Uso de Animales de
Laboratorio" sirve como ente regulador al controlar que las instituciones (ya sea
que trabajen para el PHS o únicamente reciban su apoyo)23 establezcan y
mantengan medidas que aseguren el cuidado y uso de cualquier especie animal
utilizado en investigaciones, formación en investigaciones o experimentos
biológicos.
21
UNITED STATES DEPARTMENT OF AGRICULTURE, USDA. (en línea) <
http://www.usda.gov/wps/portal/usda/usdahome> (citado el día 25 de julio del 2014).
22 ANIMAL AND PLANT HEALTH INSPECTION SERVICE, APHIS. (en línea) <
http://www.aphis.usda.gov/wps/portal/aphis/home/> (citado el 25 de julio del 2014).
23 PUBLIC HEALTH SERVICE POLICY ON HUMANE CARE AND USE OF LABORATORY
ANIMALS, PHS. (en línea) <
http://grants.nih.gov/grants/olaw/references/phspolicylabanimals.pdf> (citado el 25 de julio del
2014).
25
Es importante tener en cuenta que el PHS por medio de sus políticas respalda
"Los Principios del Gobierno de los Estados Unidos para el Uso y Cuidado de
Animales Vertebrados Usados en Experimentación, Investigación y
Entrenamiento" desarrollados por el Comité Interinstitucional de Investigación
Animal (IRAC, por sus siglas en inglés)23, los cuales se encargan de controlar el
uso y manejo general de animales vertebrados usados para la investigación.
3.2.3 El Comité Institucional para el Cuidado y Uso de los Animales
Según el Acta de Bienestar Animal (AWA) todas las instituciones encontradas en
el territorio de los Estados Unidos de América que manejen animales en
programas de investigación deben acogerse y por ende encontrarse respaldadas
por el "Comité Institucional para el Cuidado y Uso de Animales (IACUC, por sus
siglas en inglés)24, el cual se encargará de proveer los marcos necesarios para
que éstas cumplan con las políticas federales, guías y principios relacionados con
el uso de animales de experimentación, con el fin de asegurarse la correcta
aplicación de protocolos y procedimientos
3.3 NORMATIVAS QUE REGULAN EL SACRIFICIO DE ANIMALES DE
LABORATORIO.
Existen dos normas a nivel internacional, las cuales regulan los procesos de
eutanasia y por ende los clasifican entre métodos aceptados y no aceptados. Los
documentos que rigen dicha actividad son: a nivel de los Estados Unidos de
América, las ―Directrices para el uso de eutanasia, emitidas por la Asociación
24 INSTITUTIONAL ANIMAL CARE AND USE COMMITTEE, IACUC. (en línea) <
http://iacuc.utk.edu/> (citado el 25 de julio del 2014).
26
Americana de Médicos Veterinarios‖25 y a nivel de la Comisión Europea,
―Recomendaciones para eutanasia en animales de experimentación‖26 27.
Es importante tener en cuenta que un punto crítico en el proceso investigativo y
productivo corresponde al sacrificio digno de los animales, ya que su correcta o
incorrecta ejecución no solo afectará su bienestar, sino en la integridad de los
resultados esperados. Para esto, es necesario que se tengan en cuenta los
siguientes factores: que el método de elección evite o disminuya el dolor y estrés
previo y durante el procedimiento, causando rápida inconsciencia, paro cardiaco
y/o respiratorio y pérdida de la función cerebral, que reduzca al mínimo la
perturbación emocional, incomodidad y/o sufrimiento experimentado por la
persona que lleve a cabo el procedimiento, y por último, que contribuya
positivamente a los resultados esperados por los investigadores o productores28.
25
LEARY, Steven. UNDERWOOD, Wendy. ANTHONY, Raymond. CARTNER, Samuel. et al.
AVMA Guidelines for the Euthanasia of Animals. Edición 2013. Schaumburg, Illinois (60173),
2013. American Veterinary Medical Association. 26
CLOSE, Bryony. BANISTER, Keith. BAUMANS, Vera. BERNOTH, Eva-María. et al.
Recommendations for euthanasia of experimental animals: Part 2. En: Working party report.
Segunda parte, sección 3.
27 HERRERO, Emiliana. MOURELLE, Ana C. RICCA, Micaela. Procedimientos experimentales 1:
Eutanasia - parte 1, 2 y 3. Argentina, 2008. (en línea). <http://www.CampusBioterios/com.ar>
(citado el 5 de Febrero del 2014).
28 Manual del Bioterio UAMI. Lineamientos del Bioterio de la UAM-I de la División de CB,
Eutanasia. Universidad Autónoma Metropolitana – Itzapalapa (UAM). México.
27
4. CARACTERÍSTICAS DE LAS ESPECIES.
4.1 CARACTERÍSTICAS DE LAS ESPECIES: (MUS MUSCULUS Y RATTUS
NORVEGICUS).
Tabla 3. Características de las especies. 29 30
PARÁMETROS
Ratón de laboratorio, (Mus
musculus)
Imagen: http://www.boston.com
Rata de laboratorio, (Rattus
norvegicus)
Imagen: http://www.npr.org/
Peso gr (adulto)
18 – 25,99
275 – 374
Longitud cm
6,35 – 7,62
22,86 – 27,94
Hábito
Nocturno
Nocturno
Tipo de
alimentación
Omnívora
Omnívora
Número de
mamas
5 pares (3 torácicas 2
inguinales).
6 pares (3 torácicas,1 abdominal, 2
inguinales)
Tipo de
periodicidad del
ciclo estral
Poliéstricas continuas, ciclo
estral cada 4 a 5 días con
duración del estro de 12-14 hs.
Poliéstricas continuas. Ciclo estral
cada 4 a 5 días, con duración del
estro de aprox. 12hs. Ciclo estral
responde y se beneficia de acuerdo
a largos periodos de luz.
29
FUENTES, Flor. MENDOZA, Rosa. FERNANDEZ, Arturo. CISNEROS, Rosario. Guía de
manejo y cuidado de animales de laboratorio: Ratón. Lima: Gráfica técnica S.R.L, 2008. 1-52.
ISBN 978-9972-857-69-0.
30 RODRÍGUEZ, Jesús M. Animales de Laboratorio: Biología de las Especies más Usadas en
Experimentación. Bucaramanga: Universidad Industrial de Santander.
28
Características
reproductivas
- Presencia de efecto Lee Boot,
efecto Whitten y efecto Bruce.
- Después del acoplamiento,
tapón vaginal (duración 24 hs).
- Gestación de 19 a 21 días y
lactancia 21 días.
- Presencia de estro pos-parto,
fértil (14 a 24 hs posteriores al
parto). Al lograrse, puede
retrasar la implantación y
prolongar la gestación de 3 a 5
días.
- Mortalidad aproximada al
primer parto 1%.
- Porcentaje aproximado de
fertilidad 98%.
- 5-6 camadas antes de
reemplazar a los
reproductores.
- Número de crías por parto 9 a
11.
- Sincronización puede hacerse por
la administración de
medicamentos.
- Después del acoplamiento tapón
vaginal (duración 12 a 24 hs).
- Presencia de estro posparto fértil,
igual comportamiento que en los
ratones.
- Gestación de 21 a 23 días y
lactancia 21 días.
- Número de crías por parto 8 a 12
(promedio 9).
- Mortalidad aproximada al primer
parto 1%.
- Porcentaje aproximado de
fertilidad 98%.
- 5 camadas antes de reemplazar a
los reproductores.
Sexado
Sexo de los animales se
determina por la distancia ano-
genital, es mayor en machos que
en hembras.
Sexo de los animales se determina
por la distancia ano-genital, es
mayor en machos que en hembras.
Temperamento
Generalmente puede ser
agresivo.
Manso.
Cantidad de
alimento (gr) y
agua (ml) que
consume diario
- 3 – 5 gr.
- 5 ml (ofrecida ad libitum).
- 10 – 20 gr.
- 25 ml (ofrecida ad libitum).
Sintomatología
producida por
estrés
Excesiva producción de
porfirinas (sustancia color
marrón) por parte de las
Glándulas Harderianas ubicadas
en la zona peri ocular.
Excesiva producción de porfirinas
(sustancia color marrón) por parte
de las Glándulas Harderianas
ubicadas en la zona peri ocular.
29
4.2 PARÁMETROS PARA EL MANEJO DE BIOTERIOS DE PRODUCCIÓN.
Es esencial tener en cuenta que para tener éxito en cualquier proyecto que
involucre animales de laboratorio, ya sea, con fines científicos, académicos o
productivos, el correcto diseño de las instalaciones (basándose en las normativas)
debe ir de la mano junto con la estandarización genética y sanitaria, la
estabulación y el manejo apropiado de los animales, y la capacitación del personal
encargado. Dichos elementos se fusionan perfectamente con el fin de contribuir al
bienestar físico, fisiológico y comportamental de los animales, permitiendo así el
desarrollo y por ende el cumplimiento de los objetivos del proyecto31.
A continuación se listarán las directrices que se deben cumplir con el fin de lograr
el manejo correcto del medio ambiente de los animales en el bioterio. Dichos
parámetros pueden ser adecuados a cualquier tipo de bioterio, sin llegar a afectar
el bienestar de los animales.
31
GUIDE LABORATORY FOR THE CARE AND USE OF ANIMALS, Eighth Edition. Committee
on Care and Use of Laboratory Animals of the Institute of Laboratory Animals Resources
Commission on Life Sciencies. National Research Council U.S. Department of Health and
Human Services. Washington D.C: The National Academies Press, 1985.
30
Tabla 4. Parámetros para el correcto manejo del bioterio. 32 33 34 35
PARÁMETROS
Temperatura y
ambiente
- 18 – 23°C (65 – 75°F) (evitar grandes fluctuaciones).
- Ofrecimiento de recursos para termorregulación (material para nidos)
evitando así estrés por frío.
Humedad relativa
- 50 – 60%.
Ventilación
- Depende del tipo de jaula en donde se alojen los animales.
- El sistema de inyección y extracción debe operar las 24 horas del día y
los 365 días del año.
- Aproximadamente de 10 a 15 cambios de aire fresco por hora.
- Se debe tener en cuenta: el volumen del aire, características físicas y
patrón de difusión.
- Evitar exposición a corrientes directas de aire.
- Se recomienda el uso de sistemas de calefacción, ventilación y
acondicionamiento de aire (HVAC).
- Se recomienda el uso de jaulas de ventilación individual (IVCs) pues
evitan el constante manejo de la ventilación de la habitación,
necesitando lo suficiente para limpiar el macroambiente.
- Evitar el uso de aire reciclado.
32
MASCHI, Fabricio. Bioterios: Diseño y Construcción. Cátedra de Animales de Laboratorio y
Bioterio. Facultad de Ciencias Veterinarias Universidad Nacional de La Plata.
33 FAWCETT, Anne. Guideline 22: Guidelines for the Housing of Mice in Scientific Institutions. En:
Animal Research Review Panel 2. Sidney: 2012. p. 23 - 113.
34 SHERWIN, Chris M. Comfortable Quarters for Mice in Research Institutions. Centre for
Behavioral Biology. Department of Clinical Veterinary Science Langford House. University of
Bristol. Bristol, United Kingdom. BS40 5DU.
35 FOX, James. DAVISSON, Muriel. QUIMBY, Fred. BARTHOLD, Stephen. et al. The Mouse in
Biomedical Research, 2nd Edition: Normative Biology, Husbandry and Models. Elsevier, 2007.
ISBN: 978-0-12-369454-6. p. 254 - 258.
31
Iluminación
- Debido a que los roedores usualmente se aparean en la noche, el
rendimiento reproductivo es mejor cuando el ciclo de luz y oscuridad es
consistente y no se interrumpe. Se recomienda usar un sistema de 12
horas luz y 12 horas de oscuridad.
- Buena difusión en el área, permitiendo el confort de los animales y el
desarrollo de actividades por parte del personal.
- Debe permitir su regulación, para así ajustar el fotoperiodo.
- El tipo de luz debe ser fría (5.500 y 6.500 grados Kelvin), fluorescente o
con diodos.
- De acuerdo a la intensidad de luz, se recomienda mantener una
relación de 400 lux para un cuarto con medidas de 1m (3,3ft) del piso al
techo.
- Evitar el uso de jaulas transparentes si el control de luminosidad se
dificulta.
- Proveer a los animales alternativas para protegerse de la luz.
Filtración del agua
- Se debe considerar para la prevención de enfermedades.
- Alargamiento de la vida útil de equipos que necesitan agua para
funcionar.
- Útil en el caso de emplear bebederos automáticos.
- Generalmente se emplean en tren (filtro de malla, filtro de carbón, es
posible adicionar sistema con luz U.V).
Ruidos y
vibraciones
- Exposición mayor de 85db puede ocasionar problemas auditivos y
fisiológicos en los animales (Ej. Eosinopénia, reduce su fertilidad).
- Alta susceptibilidad a ultrasonidos.
- Evitar sonidos innecesarios (radios, alarmas, etc.).
- Uso de técnicas para aislar el área de animales de vibraciones de alta
intensidad, frecuencia y duración.
Enriquecimiento
ambiental
- Proveer adecuado sustrato para cama y estructuras para descanso, lo
cual estimula al comportamiento normal del animal.
- Proveer materiales de madera o fibrosos para masticar.
- Proveer objetos para refugiarse en momentos de estrés o descanso.
En cuanto a las
jaulas
- Proveer un ambiente seguro para los animales.
- Fabricadas con materiales no tóxicos y resistentes a la corrosión.
- Se requieren superficies lisas, impermeables, con mínimos ángulos,
facilitando la limpieza. Se deben evitar superficies superpuestas que
faciliten el acumulo de residuos.
32
Manejo social y de
los animales
- Es importante tener en cuenta que la creación de grupos sociales de la
misma especie tiende a estimular el comportamiento normal de los
animales. Por lo tanto, al existir la necesidad de segregación de
individuos se debe permitir un mínimo contacto visual, auditivo y
olfatorio, evitando posible presencia de estrés.
- Los animales responden mejor a un manejo calmado y consistente.
- Hembras preñadas, a punto de dar a luz y con camada se deben
manipular lo menos posible.
Nutrición
- Los siguientes son los nutrientes requeridos para el correcto desarrollo
de los animales (son relativamente iguales entre las dos especies), los
cuales están basados en una dieta de 100gr/día. El primer valor de
cada parámetro equivale a la etapa de crecimiento, gestación y
lactancia y el segundo a la de mantenimiento.
Energía (kcal): 377 - 360.
Grasa (g): 7 – 4.
Proteínas (g) (N * 6,25): 17,9 – 12,6.
Cenizas (g): 4,2 – 3,9.
Humedad (g): 6,6 – 6,8.
Calcio (g): 0,50
Fosforo (g): 0,30.
Cloruro (g): 0,16.
Magnesio (g): 0,051.
Potasio (g): 0,36.
Sodio (g): 102.
4.3 CONSTRUCCIÓN DE LA PLANTA FÍSICA Y ALOJAMIENTO.
Al llegar a éste punto del proceso de planeación de un bioterio, diversos factores
se debieron haber evaluado y aplicado, entre los que se encuentran: la
determinación de los objetivos o finalidad del proyecto, el tipo de animales a
utilizar, la cantidad de animales requerida para dar inicio a la producción, la
ubicación de las instalaciones, el acceso a servicios básicos, la facilidad para el
desecho de los residuos, entre otros.
33
Con respecto al tipo de instalaciones necesarias para los bioterios de producción
es importante resaltar que existen dos alternativas. La primera, consta del
reciclaje de edificios, y la segunda, de la construcción de obras nuevas. Asimismo,
es necesario tener en cuenta que sin importar el tipo de instalación utilizada, éstas
siempre deben poseer las siguientes características: flexibilidad, sencillez en el
mantenimiento, posibilidades de expansión, satisfacción de los investigadores, los
técnicos encargados y los animales36.
La Imagen 1 muestra una referencia de un bioterio de producción, la cual puede
ser tenida como modelo en el momento de construir el propio.
Fuente: Maschi F, Cátedra de animales de laboratorio y bioterio, Facultad de Ciencias Veterinarias,
Universidad de la Plata, Argentina, 2010.
36
MASCHI, Fabricio. Bioterios: Diseño y Construcción. Cátedra de Animales de Laboratorio y
Bioterio. Facultad de Ciencias Veterinarias Universidad Nacional de La Plata.
Imagen 1. Modelo de bioterio de producción.
34
Es importante asimismo que la planeación de la planta física vaya de la mano con
las normas vigentes de bioseguridad descritas para bioterios, éstas encontradas
en la Guía para el cuidado y uso de animales de laboratorio, propuestas por el
Departamento de la Salud y Servicios Humanos de los Estados Unidos de
América31. Uno de los aspectos más relevantes tratados en la Guía se refiere la
instalación de barreras sanitarias, las cuales son definidas como: ―sistemas que
combinan aspectos constructivos, equipamientos y procedimientos de trabajo que
buscan estabilizar las condiciones ambientales de las áreas restrictas,
minimizando la probabilidad de que organismos patógenos u otros organismos
indeseables se pongan en contacto con la población animal del área limpia‖37. Un
ejemplo del empleo de dichas barreras, consiste en la ubicación de corredores que
se dirija de las zonas limpias a las zonas sucias.
Fuente: MASCHI. F, Cátedra de animales de laboratorio y bioterio, Facultad de Ciencias
Veterinarias, Universidad de la Plata, Argentina, 2010.
37
ILAR. Laboratory Animal Medicine: Guidelines for Education and Training (Committee on
Education, Institute of Laboratory Animal Resources, Division of Biological Sciences). 1979.
Vol. XXII, No. 2.
Imagen 2. Modelos de corredores.
35
Con el fin de lograr una mayor efectividad en el uso de las barreras de corredores,
en la Tabla 5. se hará una descripción paso a paso de los procedimientos que
deben llevar a cabo los empleados del bioterio desde el momento de su entrada.
Tabla 5. Procedimientos operativos del personal en el bioterio.29 31 36 37
PROCEDIMIENTOS OPERATIVOS EN EL BIOTERIO
1. Cambio de calzado y ropa del personal.
2. Ducha previa al ingreso a las áreas limpias.
3. Puesta de ropa estéril.
4. Flujo de insumos unidireccionales, separando siempre las
actividades limpias y sucias, evitando contaminaciones cruzadas.
5. Procedimientos previos de desinfección de superficies de botas y
guantes antes del ingreso a cada sala.
6. Uso de prácticas correctas de manipulación, contención y
movilización de animales (serán expuestas posteriormente).
7. Procedimientos de limpieza y desinfección general.
8. Protocolos de trabajo con los animales.
9. Protocolos de trabajo para la preparación de insumos.
10. Validación de protocolos y procedimientos a través de controles.
36
4.3.1 Instalaciones para los animales.
- Dimensión de las jaulas apropiadas de acuerdo con el volumen de
animales por cm2 (ver Imagen 3).
Fuente: Guía para el cuidado y uso de animales de laboratorio,1985. 31
- No debe poseer ventanas.
- Techos y paredes impermeables, con uniones suaves (forma redondeada)
permitiendo la correcta desinfección.
- Ingreso de aire forzado desde la parte superior.
- Conductor de extracción en la parte inferior.
Imagen 3. Medidas mínimas de animales por jaula.
37
- Acceso a servicios básicos (ej. Agua, luz y teléfono) de manera fácil y en lo
posible ubicados en el exterior.
- Acondicionamiento térmico independiente en cada sala.
- Caída de los pisos hacia los desagües y hacia zonas sucias.
- Apertura de puertas hacia el interior o exterior, dependiendo de la función de
cada sala.
- Pisos con rejillas enterizas cerradas o móviles.
4.3.2 Corredores o pasillos.
- Deben estar ubicados estratégicamente para conectar las dependencias y
facilitar el flujo operativo de los distintos procedimientos.
- Los flujos operativos deben realizarse desde el sector limpio al sucio.
- Preferiblemente pasillos dobles.
- Diseñados con el fin de facilitar la limpieza y desinfección.
- Deben ser anchos para facilitar el movimiento de los insumos y equipos.
4.3.3 Puertas de salas.
- Impermeables, que permitan y resistan procesos de limpieza, desinfección y
presiones constantes.
- Deben ser anchas (1m -1,2m).
- Con marcos y bisagras reforzadas con aluminio.
- Con cerraduras resistentes.
- Equipadas con abre puertas.
38
4.3.4 Ventanas externas.
- Generalmente no es aconsejable debido a la posibilidad de ingreso de
animales del exterior y salida de los animales del laboratorio en caso de
escape, así mismo dificulta el control del fotoperiodo.
- Es posible que sean ubicadas en corredores externos y depósitos, sin embargo
deben estar siempre selladas y protegidas.
4.3.5 Pisos.
- La base de los pisos debe ser de concreto.
- Las juntas de expansión deben localizarse debajo de las paredes.
- Resistente a desinfectantes químicos.
- Juntas con paredes redondeadas.
- Pueden tener una lámina vinílica en la superficie (corredores).
4.3.6 Agua, desagües y cañerías.
- El agua debe ser potable para consumo humano y animal.
- Es necesario agua fría y caliente para facilitar la limpieza y desinfección.
- Evitar la ubicación de cañerías en áreas restringidas o limpias.
- Los drenajes deben poder cerrarse al no utilizarse e igualmente poseer un
sistema de sifón.
- El nivel de caída debe ser hacia el sector sucio.
4.3.7 Paredes.
- Cubiertas con pinturas resistentes al agua, a procesos de limpieza y de
desinfección.
39
- Idealmente de concreto y con terminación de cemento y yeso.
- No se aconsejan los azulejos o revestimientos en cerámica.
- Se aconseja la protección de las paredes de los corredores contra golpes,
haciendo uso de separadores o barandas.
4.3.8 Techos.
- Deben ser resistentes a lavados y desinfecciones periódicas.
- Deben ser de superficie lisa, cubiertos con pintura resistente, epoxi o sintética.
- Si son de tipo suspendido (cielorraso) deben ser reforzados.
- Las uniones no deben ser en ángulos agudos.
4.4 MANIPULACIÓN, INMOVILIZACIÓN, IDENTIFICACIÓN Y SEXAJE.
Con el fin de evitar afectar negativamente el bienestar de los animales debido a
prácticas de manejo incorrectas, es importante que el personal del bioterio sea
tanto advertido, como capacitado en los siguientes aspectos: biología de la
especie con que se está trabajando, prácticas de manejo y capacitación y
actualización en relación a prácticas de bioseguridad. Asimismo, actividades como
la interacción positiva con los animales y la ejecución de movimientos predecibles,
lentos y suaves con el fin de no alterar la rutina de los animales, constituyen
puntos importantes a tener en cuenta.38
38
RODRÍGUEZ, Jesús M. Animales de laboratorio: Manipulación, inmovilización, identificación y
sexado. Departamento de Ciencias Básicas, Facultad de Salud, Universidad Industrial de
Santander. Bucaramanga, 2011.
40
4.4.1 Técnicas de manipulación comúnmente utilizadas en el ratón, Mus
musculus. 38 39
4.4.1.1 Para retirarlos de la jaula.
Imagen 4. Cómo retirar los ratones de la jaula.
Fuente: Rodríguez 2011.
4.4.1.2 Para sujetarlos e inmovilizarlos.
Fuente: Rodríguez 2011.
39
BUERGE, Thomas. WEISS, Tilla. Chapter 31: Handling and Restraint. Basel, Switzerland:
Elsevier, 2004. ISBN 0-1233-6425-6.
Imagen 5. Cómo sujetar los ratones e inmovilizarlos.
41
4.4.2 Técnicas de manipulación comúnmente utilizadas en la rata, Rattus
norvegicus.38 39
4.4.2.1 Para retirarla de la jaula.
Fuente: Rodríguez 2011.
4.4.2.2 Para sujetarla e inmovilizarla.
Fuente: Rodríguez 2011.
Imagen 6. Cómo retirar las ratas de la jaula.
Imagen 7. Cómo sujetar e inmovilizar las ratas.
42
4.4.3 Técnicas de sexaje.
- Distancia ano-genital (Aprox. el doble en el macho que en la hembra)
- Bolsa escrotal en los machos.
- Presencia del canal inguinal en los machos (dificulta la observación de los
testículos).
- Presencia de las líneas mamarias en las hembras.
- Presencia de una fina línea depilada en la hembra.
Fuente: Rodríguez 2011.
4.4.4 Métodos de identificación.
A continuación se mostrarán los diferentes métodos permitidos para la
identificación y marcación de los animales. En este caso es importante elegir el
método que más le convenga al investigador o productor, sin que éste afecte de
forma significativa el bienestar de los animales.
Imagen 8. Técnicas de sexaje.
43
4.4.4.1 Métodos temporales. Este tipo de marcaje se utiliza cuando se requiere
dar una identificación temporal a los animales, asimismo pueden ser usados en
animales que no poseen un alto valor genético y son usualmente destinados al
sacrificio. Las siguientes imágenes demuestran los lugares en donde usualmente
los animales son marcados cuando se usan dichos materiales.
4.4.4.1.1 Marcadores indelebles o con ácido pícrico.
Imagen 94. Marcación con marcadores indelebles.
Fuente: Rodríguez 2011.
4.4.4.2 Métodos permanentes. Este tipo de marcaje es utilizado cuando los
animales ya sea poseen una valiosa carga genética, hacen parte de procesos
investigativos o simplemente se necesiten identificar las cepas con el fin de no
hacer cruzamientos entre una misma línea.
44
4.4.4.2.1 Marcación en las orejas.
Fuente: Rodríguez 2011.
4.4.4.2.2 Colocación de caravanas plásticas o metálicas.
Fuente: Rodríguez 2011.
Imagen 10. Marcado de orejas.
Imagen 11. Caravanas plásticas o metálicas.
45
4.4.4.2.3 Tatuado.
Fuente: Rodríguez 2011.
4.4.4.2.4 Implante subcutáneo con microchips (para ratones y ratas de más
de 21 días de edad).
Fuente: Rodríguez 2011.
Imagen 13. Implante subcutáneo con microchip.
Imagen 12. Método de tatuaje en roedores.
46
4.5 EUTANASIA.
La palabra Eutanasia se deriva de los términos griegos eu que significa ―bueno‖ y
thanatos que significa ―muerte‖. Según el documento publicado por la Asociación
Americana de Médicos Veterinarios (AVMA por sus siglas en inglés) ―Guidelines
for the Euthanasia of Animals‖31, la eutanasia es definida como ―el acto de finalizar
con la vida de un individuo animal, dando uso a métodos que reduzcan o eliminen
el estrés y el dolor. Teniendo en cuenta que una buena muerte es equivalente a la
terminación de manera humana de la vida de un animal‖.
A pesar que legalmente el Médico Veterinario es el único profesional capacitado y
autorizado para ejecutar una eutanasia, en el caso de los animales de producción,
éste procedimiento puede ser llevado a cabo por operarios previamente
capacitados y con experiencia, proceso realizado bajo la estricta supervisión del
Veterinario.40 Existen ciertos factores que el Veterinario o el operario deben
considerar antes de llevar a cabo aquel procedimiento, entre los cuales se
encuentran: la determinación de la necesidad y por ende el beneficio que trae
dicho sacrificio, posesión y disposición de los materiales necesarios para ejecutar
el procedimiento y la puesta en práctica de técnicas que induzcan la muerte de
manera rápida, indolora y pertinente, con el fin de no causar daño innecesario.41
Con respecto a la eutanasia de animales de laboratorio, existen consideraciones a
tener en cuenta a fin de escoger la técnica adecuada. Dichas consideraciones
40
TAYLOR, Gale. ANDERSON, Lynn. BLAKE, David. DAHM, Lynn. et al. Education and Training
in the Care and Use of Laboratory Animals: A Guide for Developing Institutional Programs.
Washington D.C: National Academy Press, 1991. ISBN: 0-309-57463-3, 152 pages, 8.5 x 11.
41 CARDOZO, Carmen A. OSORIO, Afife M. Aspectos técnicos y éticos en el cuidado y uso de
modelos animales en investigación. (en línea). <
https://umshare.miami.edu/web/wda/ethics/PABI_Agendas/colombia/Modules/Module14487.pdf
> (citado el 10 de febrero de 2014).
47
radican principalmente en la finalidad por la cual el animal será sacrificado, ya que
si el método escogido no es el indicado, es posible afectar negativamente las
características metabólicas e histológicas del animal, y por lo tanto el fin al que se
tenga destinado.42
A continuación se describirán los métodos aceptados y aceptados con condiciones
usados para el sacrifico de los animales de laboratorio.43 Es importante recalcar
que no todos los métodos presentes en la siguiente descripción son los adecuados
para el sacrificio de animales criados para consumo, por lo tanto a pesar de que
se hace necesario su conocimiento general, en el capítulo 5. Diseño de la
estructura del Bioterio, se hablará acerca de la técnica de elección que se tendría
en cuenta en la presente propuesta.
4.5.1 Métodos aceptados.
4.5.1.1 Agentes no inhalables.
4.5.1.1.1 Barbitúricos y derivados del ácido barbitúrico: Los barbitúricos
inyectables actúan rápido y suavemente en el momento de llevar el animal a la
inconsciencia. Se recomienda altamente el uso del método intravenoso, siendo el
42
CORNELL UNIVERSITY, INSTITUTIONAL ANIMAL CARE AND USE COMMITTE. ACUP
513.02 Rodent Husbandry and Breeding. (en línea)
<http://www.research.cornell.edu/care/documents/ACUPs/ACUP513.pdf> (citado el 30 de abril
del 2014).
43 ASOCIACIÓN AMERICANA DE MÉDICOS VETERINARIOS (AVMA por sus siglas en inglés)
―Guidelines for the Euthanasia of Animals: 2013 Edition (8).
48
método intraperitoneal el más práctico, sin embargo el más asociado con dolor44
(aunque actualmente no sea posible medirlo). La dosis para la eutanasia
corresponde tres veces más la dosis anestésica. El pentobarbital es el de mayor
uso debido a su larga vida y rapidez de acción.
4.5.1.1.2 Combinación de barbitúricos inyectables: Los barbitúricos inyectables
son usualmente usados en combinación con anestésicos locales y anticonvulsivos.
Sin embargo, una adecuada dosis del barbitúrico es lo más importante en dichas
combinaciones.
4.5.1.1.3 Combinación de agentes disociativos: Dosis letales de agentes
disociativos como Ketamina, son comúnmente utilizados en el laboratorio. En
algunas especies la Ketamina sola puede inducir la estimulación, más que la
sedación y pérdida de conciencia. En roedores consientes, la Ketamina y cualquier
agente disociativo debe ser utilizado con un agonista de receptores alfa
adrenérgicos como la Xilacina o benzodiacepinas como el Diazepam45.
4.5.2 Métodos aceptados con condiciones
4.5.2.1 Agentes inhalables.
44
SVENDSEN O, KOK L, LAURITZEN B. Nociception after intraperitoneal injection of a sodium
pentobarbitone formulation with and without lidocaine in rats quantified by expression of
neuronal c-fos in the spinal cord— a preliminary study. Lab Anim2007; 41:197–203.
45 Vaupel DB, McCoun D, Cone EJ. Phencyclidine analogs and precursors: rotarod and lethal
dose studies in the mouse. J PharmacolExpTher 1984; 230:20–27.
49
4.5.2.1.1 Anestésicos inhalados: Isoflurano, sevoflurano o desflurano con o sin
óxido nítrico (óxido nítrico no debe ser utilizado solo) son aceptados bajo
condiciones para la eutanasia de roedores de laboratorio. Éstos agentes pueden
ser útiles cuando la contención física del animal sea difícil o no sea práctica. En el
caso en que se utilicen como único agente, los animales deben ser expuestos por
tiempos prolongados con el fin de asegurar su muerte, y los agentes deben ser
suministrados con uso de vaporizador o en una cámara de anestesia (open-drop
technique).46 Así mismo se recomienda que el procedimiento sea ejecutado en
grupos pequeños de animales compatibles. La muerte del animal debe ser
confirmada por medio de un examen físico completo.47
4.5.2.1.2 Dióxido de carbono (CO2): El dióxido de carbono con o sin pre
medicación de anestésicos inhalables es aceptado bajo condiciones para la
eutanasia de pequeños roedores. CO2 comprimido en cilindros es la fuente que se
recomienda con el fin de regular el flujo de gas. Un caudal de flujo óptimo debe
desplazarse en un 10% a 30% por volumen de la cámara/minuto.48 Es inaceptable
el pre llenado de las cámaras. Si la eutanasia no se puede llevar a cabo en la jaula
original del animal, las cámaras que se tengan para este fin deben ser limpiadas
antes y después de cada uso. La muerte del animal debe ser confirmada por un
examen clínico exhaustivo. Si el animal no se encuentra muerto, se debe adicionar
inmediatamente otro método de eutanasia. No debe ser combinado el O2 con CO2
46
Brunson DB. Pharmacology of inhalation anesthetics. In: Kohn DF, Wixson SK, White WJ, et al,
eds. Anesthesia and analgesia in laboratory animals. San Diego: Academic Press, 1997; 32–
33.
47 Garnett N. PHS policy on humane care and use of laboratory animals clarification regarding use
of carbon dioxide for euthanasia of small laboratory animals. Release date: July 17, 2002.
Available at: grants.nih.gov/grants/guide/notice-files/NOTOD- 02-062.html. Accessed Dec 14,
2010.
48 Hornett TD, Haynes AP. Comparison of carbon dioxide/air mixture and nitrogen/air mixture for
the euthanasia of rodents: design of a system for inhalation euthanasia. AnimTechnol
1984;35:93–99.
50
al momento de la eutanasia pues puede dificultar la determinación de un estado
de inconsciencia y muerte del animal.49
4.5.2.1.3 Monóxido de carbono: A pesar de que su uso no es común, es posible
su administración cuando las condiciones de uso y efectividad son cumplidas.
4.5.2.2 Agentes no inhalables.
4.5.2.2.1 Tribomoetanol: A pesar de su inviable uso debido al bajo grado
comercial y farmacéutico50. Es un anestésico comúnmente utilizado en roedores.
Sin embargo su uso es controversial debido a la producción de efectos
secundarios (peritonitis y muerte). Tribomoetanol es aceptable bajo condiciones
como método de eutanasia cuando se ha preparado, almacenado y administrado
con las dosis correctas.
4.5.2.2.2 Etanol: Se ha sugerido que la inyección intraperitoneal de etanol al 70%
puede ser un método de eutanasia apropiado cuando métodos físicos no son
deseados u otros métodos no se encuentran disponibles.51 Ratones inyectados
con 0.5 ml de etanol al 70% demuestran una pérdida gradual del control de la
musculatura, coma y muerte en 2 a 4 minutos.52 A pesar de que el etanol es
utilizado bajo condiciones en la producción de anticuerpos en ratones, se
recomienda el uso de otros métodos.
49
HEWETT TA, KOVACS MS, ARTWOHL JE, et al. A comparison of euthanasia methods in rats,
using carbon dioxide in prefilled and fixed flow-rate filled chambers.Lab AnimSci 1993; 43:579–
582.
50 UNITED STATES PHARMACOPEIA. (en línea) < http://www.usp.org/> (citado el día 25 de julio
del 2014).
51 LORD R. Humane killing. Nature 1991; 350:456.
52 LORD R. Use of ethanol for euthanasia of mice. Aust Vet J 1989; 66:268.
51
4.5.2.3 Métodos físicos.
4.5.2.3.1 Dislocación cervical: Método comúnmente utilizado en el laboratorio.
Se requiere tanto equipo especializado, como el transporte del animal al lugar en
donde se efectuará el sacrificio. Su alto uso se debe a que produce animales no
contaminados con agentes químicos. La pérdida de la función cortical por medio
de la dislocación cervical es rápida y ocurre entre 5 a 10 segundos.53 Es una
técnica aceptada bajo condiciones para ratones y ratas con pesos menores de 200
gr. El personal debe ser previamente entrenado utilizando animales muertos o
anestesiados.
4.5.2.3.2 Decapitación: Su uso se debe a que produce ratones y ratas no
contaminadas con agentes químicos. La pérdida de la función cortical ocurre entre
5 a 30 segundos. Guillotinas especializadas para roedores están disponibles en el
mercado. Éstas deben mantenerse limpias y las hojas de metal debidamente
afiladas. El personal debe ser previamente entrenado en animales anestesiados o
muertos.
4.5.2.3.3 Haz enfocado, irradiación de microondas: Se debe utilizar una
máquina especializada en eutanasia de animales. Es el método de elección
cuando la fijación inmediata de metabolitos en el cerebro es requerida para fines
de estudios.
53
CARTNER SC, BARLOW SC, NESS TJ. Loss of cortical function in mice after decapitation,
cervical dislocation, potassium chloride injection, and CO2 inhalation. Comp Med 2007;
57:570–573.
52
4.6 ENFERMEDADES ZOONÓTICAS.
El término zoonosis, fue creado por Virchow en el siglo XIX a partir de dos
palabras griegas zoon: animal y nosos: enfermedad, si bien etimológicamente se
traduciría como "enfermedad de los animales" se consideraban a las zoonosis
como aquellas enfermedades que sufre el hombre debidas al contacto con los
animales. Así, la Organización Mundial de la Salud (OMS) desde 1959 definió
dicho término como "Enfermedades e infecciones que se transmiten naturalmente
de los animales vertebrados al hombre y viceversa".54 En esta definición oficial
habría que añadir el término de infestación, puesto que las zoonosis se basan
fundamentalmente en el estudio de agentes infecciosos y también parasitarios.55
Un número importante de enfermedades infecciosas se clasifican como zoonosis,
debido a que los animales constituyen su reservorio natural, éstas pueden llegar a
tener altas tasas de incidencia causando una importante morbilidad y mortalidad.
Existen dos grupos de zoonosis, en el primero, los animales juegan un papel
fundamental en el mantenimiento de la infección en la naturaleza y la transmiten al
hombre, quien es un huésped accidental y en el segundo, el hombre y los
animales generalmente se infectan de la misma fuente: suelo, agua, animales
invertebrados y plantas. En este caso, si bien los animales no desempeñan un
papel esencial en el ciclo vital del microorganismo, pueden contribuir a la
distribución y transmisión de las infecciones.56
54
ORGANIZACIÓN MUNDIAL DE LA SALUD, OMS. (en línea) <
http://www.paho.org/panaftosa/index.php?option=com_content&view=article&id=137&Itemid=2
33 > (citado el 25 de julio del 2014). 55
BENCOMO, Laura M. ALCALDE, José C. ÁLVAREZ, Ernesto. FONTE, Nohary. RAMÍREZ,
Taimara. Manual de zoonosis de animales de laboratorios. En: Veterinaria.org La web de los
veterinarios < http://www.veterinaria.org> (citado el 15 de abril del 2014).
56 NATIONAL ACADEMY OF SCIENCES. Companion guide to infectious diseases of mice and
rats. Committee on Infectious Diseases of Mice and Rats, Institute of Laboratory Animal
53
La aparición de nuevas enfermedades zoonóticas está íntimamente ligada a los
avances logrados en las investigaciones biomédicas; de este modo, enfermedades
que hasta hace poco eran desconocidas hoy representan un serio problema para
la Salud Pública: un ejemplo de ello es el Síndrome Pulmonar por Hantavirus
(SPH).57 58 La emergencia de estas nuevas enfermedades humanas alertan sobre
la probable introducción de agentes infecciosos, a través de sus reservorios,
desde el ámbito natural a sitios de mayor presencia humana, y está asociada con
factores demográficos y cambios en el comportamiento humano (migraciones
poblacionales, déficit de infraestructura básica y cambios en la estructura
demográfica de las poblaciones).
En el caso de los animales de laboratorio es primordial tener en cuenta que el
contacto directo con animales infectados y el manejo de sus utensilios (jaulas,
viruta, etc.) representa un peligro y facilita la transmisión de dichas enfermedades,
por lo tanto correctas prácticas de manejo, mediante la implementación de
parámetros de bioseguridad son necesarias.31
A continuación la Tabla 6. mostrará las enfermedades zoonóticas más comunes
transmitidas por roedores.
Resources, Commission on Life Sciences, National Research Council. Washington D.C:
National academy press, 1991. ISBN: 0-309-58270-9, 108 pages, 6 x 9. 57
BAKER, David G. Natural Pathogens of Laboratory Mice, Rats, and Rabbits and Their Effects
on Research. En: Clinical microbiology reviews. p. 231±266 Vol. 11, No. 2 , 1998.
58 ENFERMEDADES EN ANIMALES DE LABORATORIO. (en línea) < box.jisko.net/d/237c0918 >
(citado el 10 de abril del 2014).
54
Tabla 6. Enfermedades más comunes transmitidas por roedores.
Fuente: CALDERÓN, G. Zoonosis transmitidas por roedores. (en línea) <
http://www.fumigacionycontrol.com.ar/plagas/plagas09.pdf) (consultada el día 25 de julio del 2014).
55
4.7 ASPECTOS ÉTICOS EN EL CUIDADO Y USO DE ANIMALES DE
LABORATORIO.
Si bien existen diferentes marcos que legislan y por ende sirven como referentes
para mejorar el uso y cuidado de los animales sometidos a experimentaciones,
existen también principios que regulan los aspectos éticos de tales prácticas
(considerados como de ejecución obligatoria), y asimismo, conceptos que evalúan
el bienestar de los animales cuando se encuentran en cualquier tipo de
confinamiento. Con respecto a los marcos legisladores se habla de los Principios
Éticos del Consejo Internacional de Organizaciones Médicas (CIOMS) para
Investigación Biomédica en Animales y los Principios de Reemplazo, Reducción y
Refinamiento (más conocidos como las 3R's). De acuerdo a los conceptos
evaluadores del bienestar de animales se habla de "Las cinco libertades"59, el
"Concepto del deber de cuidado"60 y "El concepto de la vida que vale la pena
vivir"61.
En cuanto al CIOMS es importante tener en cuenta que si bien afirma que para
promover el avance del conocimiento, la protección de la salud y/o bienestar de
los hombres y los animales, se requieren experimentaciones con animales,
promulga once principios que se basan en las siguientes premisas: provisión de
justificación de uso de los animales debidamente argumentada y puesta en
59
FARM ANIMAL WELFARE COUNCIL. Five Freedoms. (en línea) <
http://www.fawc.org.uk/freedoms.htm> (consultado el día 27 de julio del 2014).
60 MULDOON. J, WILLIAMS. J, LAWRENCE. A, LAKESTANI. N, CURRIE. C. Promoting a ‗duty
of care‘ towards animals among children and young people. (en línea) <
http://www.cahru.org/content/04-publications/04-reports/defra-yr-1-report-sept-09.pdf> (citado el
27 de julio del 2014).
61 WATHES. C. Lives worth living?. (en línea) < http://www.fawc.co.uk/pdf/vetrecord-100410.pdf>
(citado el 27 de julio del 2014).
56
práctica tanto de controles estrictos de los experimentos, como de protocolos con
altos niveles de excelencia garantizando el bienestar de los animales.62
De acuerdo a las 3 R's, es importante destacar que si bien datan del año 1959
cuando Russell y Burch63 las desarrollaron en su libro "'The Principles of Humane
Experimental Techniques"64, hoy en día siguen en vigencia, no solo porque sirven
como complemento a los principios propuestos por CIOMS, en cuanto a reforzar y
mejorar el cuidado general y uso de los animales durante las experimentaciones,
también porque son un punto clave al servir como marco para alcanzar el objetivo
de desarrollar estrategias que permitan la experimentación con humanos. El
concepto de las 3 R's promueve el hecho de Reemplazar en lo posible el uso de
animales por el uso de técnicas alternativas, Reducir al mínimo el número de
animales utilizados en un experimento (obteniendo la información necesaria del
mismo número de animales) y por último, Refinar las técnicas y protocolos
llevados a cabo en los experimentos, asimismo, el manejo para con los animales,
asegurando que su bienestar sea afectado en lo más mínimo.65
62
BANKOWSKI. Z, HOWARD-JONES. N. International Guiding Principles for Biomedical
Research Involving Animals. CIOMS, 1985. 28p. ISBN 9290360194.
63 REPLACEMENT, REDUCTION AND REFINEMENT, GOOD ANIMAL PRACTICE IN
SCIENCE. Three Rs Microsite: About the Three Rs. (en línea) <
http://3rs.ccac.ca/en/about/three-rs.html> (citado el 27 de julio del 2014).
64 RUSSELL. W.M.S, BURCH. R.L. The Principles of Humane Experimental Technique.(en línea)
< http://altweb.jhsph.edu/pubs/books/humane_exp/het-toc> (citado el día 27 de julio del 2014). 65
UNDERSTANDING ANIMAL RESEARCH. Animal Welfare and the three Rs: Replacement,
Refinement and Reduction. (en línea) <
http://www.understandinganimalresearch.org.uk/assets/document/AC139C41-B7DD-B46C-
8D05FE15E5C4B61D/05%20The%20Three%20R's%20for%20web1.pdf> (citado el día 27 de
julio del 2014).
57
Con respecto a los conceptos evaluadores del bienestar de animales en
confinamiento, es importante destacar que "Las cinco libertades"66 y el "Concepto
del deber de cuidado"67 serían los mas pertinentes a ser utilizados en este caso,
puesto que el tercero "El concepto de la vida que vale la pena vivir"68, no se podría
aplicar al tratarse de animales dedicados únicamente al sacrificio.
El concepto de las cinco libertades creado por el "Farm Animal Welfare Counsil"
en los años setenta, fue desarrollado con el fin de definir más que estándares,
estados ideales en que los animales deberían estar. 66 En este caso las libertades
de: tener hambre y sed, dolor y enfermedad, miedo, malestar y estrés, y la libertad
a poder expresar un comportamiento natural, si bien han servido como marco de
referencia para el análisis del bienestar de los animales y por ende el
mejoramiento de sus condiciones, fue considerado limitante al no poder ser
aplicado en todos los escenarios. Para lo cual se creó el " Concepto del deber de
cuidado"69, que obliga a proveer cuidado y responsabilidad legal a la persona o
entidad que lo posea, sin importar el porqué se tiene el animal, si se es o no
dueño, el propósito de éste o el tiempo que se posee.
66
FARM ANIMAL WELFARE COUNCIL. Five Freedoms. (en línea) <
http://www.fawc.org.uk/freedoms.htm> (consultado el día 27 de julio del 2014).
67 MULDOON. J, WILLIAMS. J, LAWRENCE. A, LAKESTANI. N, CURRIE. C. Promoting a ‗duty
of care‘ towards animals among children and young people. (en línea) <
http://www.cahru.org/content/04-publications/04-reports/defra-yr-1-report-sept-09.pdf> (citado el
27 de julio del 2014).
68 WATHES. C. Lives worth living?. (en línea) < http://www.fawc.co.uk/pdf/vetrecord-100410.pdf>
(citado el 27 de julio del 2014).
69 MULDOON. J, WILLIAMS. J, LAWRENCE. A, LAKESTANI. N, CURRIE. C. Promoting a ‗duty
of care‘ towards animals among children and young people. (en línea) <
http://www.cahru.org/content/04-publications/04-reports/defra-yr-1-report-sept-09.pdf> (citado el
27 de julio del 2014).
58
5. MATERIALES Y METODOLOGÍA
5.1 UBICACIÓN.
La propuesta del proyecto se desarrolló con el fin de ser llevada a cabo en el
santuario de animales exóticos Wildlife Waystation (WWS), ubicado en los
territorios del Bosque Nacional de Los Ángeles, California, en los Estados Unidos
de América, en la dirección 14831 Little Tujunga Canyon Road, Lake View
Terrace, California, 91342.
Imagen 14: Ubicación del WWS. Vista satelital.
Fuente: Google maps. (en línea) < https://maps.google.com/> (consultado el 27 de julio del 2014).
59
Imagen 15: Ubicación del WWS. Mapa.
Fuente: Google maps. (en línea) < https://maps.google.com/> (consultado el 27 de julio del 2014).
5.2 MATERIALES.
A continuación, se enlistan los materiales que fueron empleados durante la
ejecución del presente trabajo (Ver Tabla 7).
Tabla 7: Materiales requeridos para la elaboración del proyecto.
ETAPA DEL PROYECTO
MATERIALES
USOS
Etapa diagnóstica.
- Matriz DOFA.
Realizar el diagnóstico de
la empresa.
60
- Bases de datos
financieras del WWS.
Conocer los gastos en que
incurre la empresa para
alimentación de los
animales.
- Recurso humano.
Indagar punto de vista de
directivas con respecto al
proyecto.
- Computador e
internet.
Almacenar datos
recogidos.
Iniciar búsqueda sobre
proyectos similares.
Etapa de elaboración de la
propuesta.
- Libros e internet.
Consecución de
información referente a
normatividad, gestión y
administración de bioterios
y manejo de los animales.
- Recurso humano
Expertos en diferentes
áreas de conocimiento en
cuanto al manejo de
bioterios.
- Cámara.
Identificación de la
locación del bioterio.
- Empresa Home
Depot.
Cotización de materiales.
Etapa de evaluación de la
factibilidad del proyecto.
- Excel.
Elaboración de tablas de
costos.
- Recurso humano.
Asesoría en elaboración
de costos e interpretación
de resultados.
.
Fuente: Álvarez 2014.
61
5.3 METODOLOGÍA.
El proyecto se basó en una investigación cualitativa de tipo proyectiva, la cual se
fundamenta en la identificación de una necesidad por medio de un proceso
diagnóstico, posteriormente proponiendo una solución, para así lograr el
cubrimiento de dicha necesidad.70
El proceso diagnóstico se llevó a cabo haciendo uso de la matriz DOFA, el cual,
mediante la medición de las Debilidades, Oportunidades, Fortalezas y Amenazas
del Santuario arrojó resultados necesarios para la formulación de la idea del
proyecto. Posteriormente, con el fin de determinar la viabilidad del proyecto se
realizó un proceso indagatorio, en el que se justificó mediante el uso de datos
provistos por las directivas del Santuario, la necesidad de la creación de la
propuesta. A continuación se llevó a cabo el proceso de elaboración, en donde se
estructuró todo lo relacionado con la organización, manejo y gestión del bioterio.
Por último se evaluó y determinó la factibilidad, comparando los costos
predeterminados del proyecto, con los gastos anuales de compra de roedores por
parte del Santuario y evaluando las utilidades.
70
BARRERA, JH. La investigación proyectiva. Blog sobre metodología de la investigación, la
epistemología y la didáctica desde una comprensión holística de la ciencia. Powered by
Blogger.Copyright © 2014.
62
6. ESTRUCTURA DEL BIOTERIO.
6.1 ESPECIES A MANEJAR Y SUS CARACTERÍSTICAS PRODUCTIVAS.
6.1.1 Clasificación genética de roedores de laboratorio.
Existen tres categorías genéticas que clasifican los grupos más importantes de
roedores de laboratorio empleados para la investigación, las cuales son: los
consanguíneos (endocriados), caracterizados por presentar uniformidad genética
que sobrepasa el 98% de los alelos en condición homocigota (siendo el resultado
de 20 generaciones de apareamientos consecutivos entre hermanos con
hermanas), los F1 híbridos, caracterizados por ser el producto entre dos líneas
consanguíneas los cuales adquieren heterocigosidad en sus loci y características
de uniformidad (a pesar de no ser homocigotos como sus progenitores) 71 72 y por
último, los no consanguíneos (exocriados), caracterizados por poseer un limitado
coeficiente de consanguinidad <1% por generación y un alto grado de variabilidad
genética, al provenir de apareamientos entre individuos de diferentes grupos
genéticos.73
71 RODRIGUEZ - RAMIREZ. N. Monitoreo Genético y Fenotípico en Ratas no Consanguíneas
Sprague-Dawley Producidas en el Bioterio de la Universidad de Los Andes. Mérida, 2008, 84h.
Trabajo de grado (Licenciada en Biología). Universidad de los Andes. Facultad de Ciencias.
Departamento de Biología.
72 CHARLES RIVER. (en línea) <http://www.criver.com/find-a-model?animal_type=Mice>
(consultado el día 27 de julio del 2014).
73 KRINK, Georg J. The Laboratory Rat: Physiology of Reproduction, Reproduction and Breeding.
Stein, Switzerland: Academic Press, 2000. ISBN: 978-0-12-426400-7. p. 148 - 149.
63
Con respecto a la última categoría, es importante recalcar que debido a poseer
una alta variabilidad genética (si bien la completa heterocigosidad jamás sería
alcanzada debido a la imposición de una selección de parejas de tipo
inconsciente74), se generan animales con importantes características de tipo
reproductivas, a diferencia de las dos primeras categorías. Razón por la cual el
modelo de animales exocriados será tenido en cuenta en la elaboración del
presente proyecto.
6.1.2 Proveniencia de la colonia de los roedores del proyecto.
Es de vital importancia que en el momento de escoger el proveedor de la colonia
de animales se tengan en cuenta aquellos criadores que ofrezcan no solo altos
niveles de heterogeneidad en los reproductores, sino también: trazabilidad,
animales saludables (demostrado por medio de reportes de exámenes realizados)
y calidad en cuanto a la atención al cliente se refiere.75
Para el presente proyecto se propone como proveedor principal el Laboratorio
Charles River, empresa de tipo mundial, pionera en el desarrollo de técnicas para
la crianza de animales de laboratorio enfocados a ser utilizados en los diferentes
campos de la investigación y la producción76. Con respecto a los animales
requeridos, se recomiendan específicamente las colonias de ratones y ratas
clasificadas como multipropósito: CD-1® IGS Mouse y CD® IGS Rat
respectivamente.
74 WHITE. WJ, LEE CS. The development and maintenance of the CRL:CD®(SD)IGS BR Rat
Breeding System. En: Matsuzawa T, Inoue H, editors. Biological Reference Data on CD(SD)IGS
Rats. Yokohama, Japan: CD(SD)IGS Study Group; 1998. pp. 8–14.
75 THE UNIVERSITY OF TOLEDO. Rodent Breeding Colony Guidelines. (en línea) <
https://www.utoledo.edu/depts/dlar/manualsandguidelines.html> (citado el 30 de abril del 2014).
64
6.1.2.1 Ratón (Mus musculus) Colonia CD-1® IGS.
Fuente: CHARLES RIVER. (en línea) <http://www.criver.com/products-services/basic-research/find-
a-model/cd-1-mouse> (consultado el 29 de julio del 2014).
Colonia proveniente de un grupo original de ratones importados de Suiza a los
Estados Unidos en el año 1926 por la Dra. Clara Lynch del Instituto Rockefeller. El
grupo de progenitores se encontraba conformado por dos (2) machos y siete (7)
hembras albino, derivadas de una cepa exógena en el laboratorio del Dr. De
Coulon, ubicado en el ―Centre Anticancéreux Romand‖ en la ciudad de Lausanne,
Suiza.
Utilizada como modelo multipropósito, en casos de pruebas de seguridad y
eficacia, envejecimiento, seudoembarazos, modelo quirúrgico, entre otros.
Para reportes de salud: Ver Anexo C.
Imagen 16. Ratón CD-1® IGS Mouse.
65
6.1.2.2 Rata (Rattus norvegicus) Colonia CD® IGS.
Fuente: CHARLES RIVER. (en línea) <http://www.criver.com/products-services/basic-research/find-
a-model/cd-igs-rat> (consultado el día 29 de julio del 2014).
Colonia proveniente de una pareja de híbridos de la raza Wistar desarrollada por
Robert W. Dawley en el año 1925. Fue adquirida por los Laboratorios Charles
River en el año 1950. En 1991, ocho (8) colonias de esta raza fueron
seleccionadas para hacer parte de la formación de colonias para el programa IGS
(International Genetic Standardization Program, IGS por sus siglas en inglés). Es
considerada como una raza de animales IGS, producidas bajo los estándares del
Sistema Internacional de Estandarización de Genética desarrollados por los
laboratorios Charles River.
Utilizada como modelo multipropósito, en caso de pruebas de seguridad y eficacia,
envejecimiento, nutrición, obesidad inducida por dieta, oncología y constituye un
modelo para cirugías.
Para reportes de salud: Ver Anexo D.
Imagen 17. Rata CD® IGS Rat.
66
6.1.3 Sistema de cría y esquemas reproductivos.
6.1.3.1 Criterios para la producción y mantenimiento de colonias no
consanguíneas.
Debido a la falta de homogeneidad genética de los animales exocriados, éstos
dejan de llamarse "cepas" o "líneas" (como en el caso de los animales
endocriados) para ser llamados "grupos" o "colonias". 77 Para la producción de
dichos animales, puesto que no están definidos genéticamente, en aras de que no
pasen el 1% de endocría por generación, se establecieron los siguientes
requisitos: que se cuente con variadas parejas reproductoras, que todos los
animales aptos para la reproducción tengan igual oportunidad de participar en el
programa de cría, y por último, que no exista un programa de cría estructurado o
algún criterio de selección que pueda inhibir el proceso azaroso del sistema.
Teniendo en cuenta y con el fin de cumplir los requisitos mencionados
anteriormente, existen varios sistemas de cría para animales exocriados, los
cuales se utilizan dependiendo de la preferencia del productor y de la magnitud de
su colonia. Entre éstos se encuentran: el sistema IGS, desarrollado por los
laboratorios Charles River basado en apareamientos de tipo aleatorio entre
colonias ubicadas en diferentes sedes a nivel mundial, exclusivo para ser usado
en grandes colonias; el sistema Poiley, el cual por medio de cruces en rotación
intenta copiar los apareamientos al azar que se generan en las poblaciones
naturales, ajustado para colonias medianas a grandes; y el sistema Han, en el que
77
JIMÉNEZ. R. Estandarización genética. En: Estandarización genética, transgenización y
clonación. Departamento de Genética. Facultad de Ciencias. Universidad de Granada. p. 2-24.
67
se intercalan una o dos veces las generaciones de apareamientos, apropiado para
colonias pequeñas.78
Debido a que la colonia desarrollada en el presente proyecto se espera tenga una
magnitud mediana, el sistema de cría que se llevará a cabo será el desarrollado
por Poiley.79
6.1.3.2 Sistema de cría Poiley.
El sistema se basa en que cada macho reproductor contribuye con un macho y
cada hembra con una hembra para la formación de la próxima generación. Se
pasan los machos de una unidad y las hembras de otra distinta a una tercera de
forma rotatoria (ver Imagen 18), con el fin de reemplazar la colonia matriz por su
progenies. Dicho ejercicio se debe repetir sistemáticamente.
Es importante tener en cuenta que en este caso individuos con antepasados
procedentes de una misma unidad no llegarán a cruzarse hasta varias
generaciones después80 (pudiendo en algunos casos llegar a pasar hasta
veinticinco años antes de que esto ocurra81).
78
BENAVIDES. F, GUENET. JL. Manual de Genética de Roedores de Laboratorio: Principios
Básicos y Aplicaciones. Madrid: Universidad de Alcalá de Henares, Servicio de Publicaciones,
2003. 312 p.
79 POILEY. S.M. A systematic method of breeder rotation for non-inbreed laboratory animals
colonies. Proceedings of the Animal Care Panel 10: 159-166, 1960.
80 JIMÉNEZ. R. Estandarización genética. En: Estandarización genética, transgenización y
clonación. Departamento de Genética. Facultad de Ciencias. Universidad de Granada. p. 2-24.
81 FUENTES M y F. RAMÍREZ. 1997. Correlación entre el peso corporal y el peso de los órganos
en ratones NMRI/UCLA de 3 a 9 semanas de edad. Acta Científica Venezolana. XLVII.
Valencia. Venezuela. 48 (1): 208.
68
Imagen 18. Sistema rotacional Poiley.
Fuente: Rodríguez 2014.
6.1.3.3 Esquemas reproductivos.
6.1.3.3.1 Cantidad de animales requeridos para el proyecto.
Con el fin de determinar la cantidad de grupos parentales de ratas y ratones que
se requieren para formar la colonia de roedores del bioterio, es importante basarse
en los requerimientos alimenticios semanales de los animales habitantes del
Santuario. Dichos si bien se encuentran expuestos en la Tabla 1. Cálculo de
ratones y ratas utilizados para alimentación en la actualidad, serán brevemente
descritos a continuación.
Cantidad de ratas requeridas a la semana.
- Ratas Medianas: 33 ratas (6 semanas de edad, aprox. 85 - 174.99 gr).
- Ratas Grandes: 27 ratas (8 semanas de edad, aprox. 175 - 274.99 gr).
- Ratas Extra Grande: 15 ratas (10 semanas de edad, aprox. 275 - 374.99 gr).
69
Cantidad de ratones requeridos a la semana.
- Ratones Destetos: 2 ratones (4 semanas de edad, aprox. 13 - 17.99 gr).
- Ratones Adultos: 100 ratones (6 semanas de edad, aprox. 18 - 24.99 gr).
6.1.3.3.2 Esquema reproductivo: Ratón (Mus musculus) CD-1® IGS.
Teniendo en cuenta los parámetros reproductivos de los ratones de laboratorio
mencionados en la Tabla 3. Características de las especies, la siguiente tabla fue
propuesta con el fin dar un mejor entendimiento al esquema reproductivo que se
llevaría a cabo en el presente proyecto.
70
Tabla 8. Esquema reproductivo del Ratón (Mus musculus).
Fuente: Álvarez 2014.
71
Inicialmente, con el fin de calcular la cantidad de animales necesaria con la cual se
suplirían las demandas alimenticias del Santuario y determinar los esquemas
productivos del bioterio, se tuvieron en cuenta parámetros como: porcentaje de
fertilidad de las hembras, promedio de crías producido por parto, porcentaje de
mortalidad de los ratones a la primera semana 82 (ver Tabla 8), asimismo,
requerimiento semanal de ratones (ver Tabla 1).
La presente propuesta productiva de ratones proyecta contar con una colonia
formada por un total de ochenta y cuatro (84) hembras y veinticuatro (24) machos.
Las hembras, estarían divididas en siete (7) grupos (de a doce (12) hembras por
grupo), cada uno compuesto por seis (6) subgrupos (de a dos (2) hembras por
subgrupo). Asimismo, los machos, estarían divididos en cuatro (4) grupos de a
seis (6) animales en cada uno, teniendo en cuenta que dos de éstos
corresponderían a los reproductores principales, y los dos restantes a los de
reserva. (ver Imagen 19).
Imagen 19. Organización de la colonia de ratones.
Fuente: Álvarez 2014.
82
ENTREVISTA con Emily Giroux, Technical Services, Sr. Supervisor, Marketing Call Center,
Charles River Laboratories. Los Ángeles, California. 24 de Marzo del 2014.
72
Con respecto al flujo de producción, es esencial tener en cuenta que con el fin de
lograr una producción de animales constante, éste daría inicio en la semana No 1
con el primer grupo de hembras (grupo azul, ver Tabla 8), el cual sería cubierto
durante una semana (con el fin de lograr un control de nacimientos, detectando
problemas reproductivos) por el grupo No 1 de machos reproductores principales
(ver Imagen 19), teniendo en cuenta una relación hembra/macho de 2:1. Al cabo
de cumplida dicha semana, las hembras cubiertas pasarían a periodo de gestación
y lactancia, mientras los machos continuarían el cubrimiento de los grupos de
hembras restantes. En este caso cabe resaltar que los primeros tres (3) grupos de
hembras serían cubiertos por el grupo No 1 de machos (grupo gris, ver Tabla 8) y
los cuatro (4) restantes por el No 2 (grupo verde, ver Tabla 8) (de manera que
exista mayor variedad genética y se permita un respectivo descanso a los
machos), teniendo cada grupo un subgrupo de machos de reemplazo en caso de
ser necesitado. Ciclo que se cumpliría al cabo de siete (7) semanas (con el fin de
proporcionar un adecuado descanso a las hembras), momento en el cual el grupo
de hembras No 1 reiniciaría labores.
Es importante recalcar que el alojamiento de hembras en parejas se realiza con el
fin tanto de ahorrar espacio, como de potencializar la supervivencia de las
camadas, al permitir la crianza y cuidado de las crías en grupo. 82 83 Al término de
la lactancia, aproximadamente 21 días después del parto, sería necesaria la
separación de la progenie en jaulas diferentes, con el fin de evitar la
sobrepoblación y los problemas que ésta genera, teniendo en cuenta aspectos
como la diferenciación de sexo y la capacidad de alojamiento de animales en la
nueva jaula84.
83
ENTREVISTA con Jesús Rodríguez. Bioterio Experimental (Departamento de Ciencias Básicas
- Escuela de Medicina), Asesor interno Comité de Ética (Facultad de Salud, Universidad
Industrial de Santander). Bucaramanga, Colombia. 24 de Mayo del 2014.
84 DAVIS, Karen. DAVISSON, Muriel. FANCHER, Karen. GREENE, Michael. Breeding Strategies
for Maintaining Colonies of Laboratory Mice. Jackson Laboratory, 2009.
73
En general, cada grupo parental de ratones produciría un total de seis (6)
generaciones de progenie (si bien éstos pueden llegar a tener una vida sexual
activa hasta los catorce meses de edad, es importante tener en cuenta que en
condiciones de cautiverio y de producción constante, el número seis (6)
constituiría el límite recomendado de camadas producidas85, esto con el fin de
evitar su desgaste, respetando así su bienestar 86), para después ser sacrificados
y reemplazados por las crías provenientes de la segunda generación (ver Tabla
8). Proceso que transcurriría durante un periodo aproximado de 42 semanas
(aprox 10.5 meses). Al cabo de dicho periodo, teniendo en cuenta los nuevos
reproductores (los cuales provienen de la segunda generación producida por los
primeros parentales) se llevaría a cabo el Sistema rotacional de cría Poiley
(descrito en el subcapítulo 6.1.3.2 Sistema de cría Poiley). Dicho procedimiento
sería repetido ininterrumpidamente.
De acuerdo a los parámetros productivos de la colonia de ratones, teniendo en
cuenta lo descrito en la Tabla 8 y los requerimientos alimenticios del Santuario, se
esperaría que cada grupo de hembras tenga una producción semanal de 105
ratones, de los cuales se sacrificarían dos (2) al cumplir las cuatro (4) semanas de
edad (aprox. 13 - 17.99 gr de peso vivo) y cien (100) al cumplir las seis (6)
semanas de edad (aprox. 18 - 24.99 gr de peso vivo), teniendo un sobrante
aproximado de tres (3) animales por semana (lo cual podría variar de acuerdo al
aumento de crías por parto).
Es esencial tener en cuenta, con respecto al manejo de los animales, que tras
haber expuesto la hembra al macho predeterminado, se debe evitar
85
BENAVIDES, Fernando. GUÉNET, Jean-Louis. Manual de Genética de Roedores de
Laboratorio, Principios y Aplicaciones: Biología y manejo reproductivo del ratón. Capítulo II.
Smithville: Universidad de Alcalá de Henares y la SECAL, 2003. p. 59 - 81.
86 Guide for the Care and Use of Laboratory Animals, Eighth edition. National research council.
Printed in the United States of America by the National Academies Press.2002.
74
completamente la exposición de ésta a machos ajenos o sus secreciones, esto
por lo menos por los primeros cinco (5) días de la gestación, ya que debido a la
presencia del efecto Bruce, existe la posibilidad de que la preñez sea interrumpida
prematuramente.
6.1.3.3.3 Esquema reproductivo: Rata (Rattus norvegicus) CD® IGS.
Teniendo en cuenta los parámetros reproductivos de los ratones de laboratorio
mencionados en la Tabla 3. Características de las especies, la siguiente tabla fue
propuesta con el fin dar un mejor entendimiento al esquema reproductivo que se
llevaría a cabo en el presente proyecto.
75
Tabla 9. Esquema reproductivo de la Rata (Rattus norvegicus).
Fuente: Álvarez 2014.
76
Inicialmente, con el fin de calcular la cantidad de animales necesaria con la cual se
suplirían las demandas alimenticias del Santuario y determinar los esquemas
productivos del bioterio, se tuvieron en cuenta parámetros como: porcentaje de
fertilidad de las hembras, promedio de crías producido por parto, porcentaje de
mortalidad de las ratas a la primera semana 87 (ver Tabla 9), asimismo,
requerimiento semanal de ratas (ver Tabla 1).
La presente propuesta productiva de ratas proyecta contar con una colonia
formada por un total de sesenta y tres (63) hembras y veinte (20) machos. Las
hembras, estarían divididas en siete (7) grupos (de a nueve (9) hembras por
grupo), cada uno compuesto por cinco (5) subgrupos (de a dos (2) y a una (1)
hembra por subgrupo). Asimismo, los machos, estarían divididos en cuatro (4)
grupos de a cinco (5) animales en cada uno, teniendo en cuenta que dos de éstos
corresponderían a los reproductores principales, y los dos restantes a los de
reserva. (ver Imagen 20).
Imagen 20. Organización de la colonia de ratas.
Fuente: Álvarez 2014.
87
ENTREVISTA con Emily Giroux, Technical Services, Sr. Supervisor, Marketing Call Center,
Charles River Laboratories. Los Ángeles, California. 24 de Marzo del 2014.
77
Con respecto al flujo de producción, si bien éste sería el mismo que el que se
llevaría a cabo con los ratones (ver subcapítulo 6.1.3.3.2 Esquema reproductivo:
Ratón (Mus musculus) CD-1® IGS), existiría un cambio en cuanto al manejo
reproductivo de los animales, el cual consistiría en ubicar previamente el macho
en la jaula predestinada durante dos (2) días previos a la llegada de la hembra,
con el fin de favorecer el acoplamiento e interés sexual entre las parejas.83
Es importante recalcar que el alojamiento de hembras se realizaría en parejas,
esto con el fin tanto de ahorrar espacio, como de potencializar la supervivencia de
las camadas, al permitir la crianza y cuidado de las crías en grupo. 82 88 Asimismo,
al término de la lactancia, aproximadamente 21 días después del parto, sería
necesaria la separación de la progenie en jaulas diferentes, con el fin de evitar la
sobrepoblación y los problemas que ésta genera, teniendo en cuenta aspectos
como la diferenciación de sexo y la capacidad de alojamiento de animales en la
nueva jaula89.
En general, cada grupo parental de ratas produciría un total de seis (6)
generaciones de progenie (si bien éstos pueden llegar a tener una vida sexual
activa hasta los catorce meses de edad, es importante tener en cuenta que en
condiciones de cautiverio y de producción constante, el número seis (6)
constituiría el límite recomendado de camadas producidas90, esto con el fin de
88
ENTREVISTA con Jesús Rodríguez. Bioterio Experimental (Departamento de Ciencias Básicas
- Escuela de Medicina), Asesor interno Comité de Ética (Facultad de Salud, Universidad
Industrial de Santander). Bucaramanga, Colombia. 24 de Mayo del 2014.
89 DAVIS, Karen. DAVISSON, Muriel. FANCHER, Karen. GREENE, Michael. Breeding Strategies
for Maintaining Colonies of Laboratory Mice. Jackson Laboratory, 2009. 90
BENAVIDES, Fernando. GUÉNET, Jean-Louis. Manual de Genética de Roedores de
Laboratorio, Principios y Aplicaciones: Biología y manejo reproductivo del ratón. Capítulo II.
Smithville: Universidad de Alcalá de Henares y la SECAL, 2003. p. 59 - 81.
78
evitar su desgaste, respetando así su bienestar 91), para después ser sacrificados
y reemplazados por las crías provenientes de la segunda generación (ver Tabla
9). Proceso que transcurriría durante un periodo aproximado de 42 semanas
(aprox 10.5 meses). Al cabo de dicho periodo, teniendo en cuenta los nuevos
reproductores (los cuales provienen de la segunda generación producida por los
primeros parentales) se llevaría a cabo el Sistema rotacional de cría Poiley
(descrito en el subcapítulo 6.1.3.2 Sistema de cría Poiley). Dicho procedimiento
sería repetido ininterrumpidamente.
De acuerdo a los parámetros productivos de la colonia de ratas, teniendo en
cuenta lo descrito en la Tabla 9 y los requerimientos alimenticios del Santuario, se
esperaría que cada grupo de hembras tenga una producción semanal de 79 ratas,
de los cuales se sacrificarían treinta y tres (33) al cumplir las seis (6) semanas de
edad (aprox. 85 - 174.99 gr de peso vivo), veintisiete (27) al cumplir las ocho (8)
semanas de edad (aprox. 175 - 274.99 gr de peso vivo) y quince (15) al cumplir
las diez (10) semanas de edad (aprox. 275 - 374.99 gr de peso vivo) teniendo un
sobrante aproximado de cuatro (4) animales por semana (lo cual podría variar de
acuerdo al aumento de crías por parto).
91
Guide for the Care and Use of Laboratory Animals, Eighth edition. National research council.
Printed in the United States of America by the National Academies Press.2002.
79
6.2 PARÁMETROS FÍSICOS Y MEDIOAMBIENTALES DEL BIOTERIO.
6.2.1 Ubicación de las instalaciones.
Teniendo en cuenta que el Santuario se encuentra ubicado en un cañón dentro de
los dominios del Bosque Nacional de Los Ángeles y que por ende no posee
acceso al agua (se compra diariamente) y la electricidad es limitada, se hizo
necesario identificar la zona adecuada en los predios del Wildlife Waystation, que
cumpla con dichos requisitos básicos.
Fuente: Álvarez 2014.
La Imagen 21 corresponde a la entrada del Back 40, sección ubicada dentro del
área cuatro. Se propone ésta zona para albergar el bioterio, no solo porque cuenta
con los servicios mencionados anteriormente (agua y electricidad, ver Imagen 23),
sino también porque su localización en este lugar facilitaría el acceso al personal
encargado del bioterio, asimismo, posee las dimensiones necesarias para alojar la
infraestructura requerida y se encuentra en un ambiente en donde los sonidos de
alta frecuencia son escasos y por ende la ruptura de la armonía del entorno no se
vería muy afectada.
Imagen 21. Back 40.
80
Fuente: Parasite control chart Wildlife Waystation.
Fuente: Álvarez 2014.
Imagen 22. Area 4.
Imagen 23. Tubería para el agua presente en el Back 40.
81
6.2.2 Planta física.
6.2.2.1 Reciclaje de edificios.
Con el fin de lograr la reducción de costos de construcción del bioterio es
importante que el proceso de planeación sea eficiente, de manera que se
maximice el aprovechamiento de los recursos que se tienen y los que se
obtendrán. Para esto, Mashi (2010) propone entre sus lineamientos para la
construcción de bioterios, que el reciclaje de instalaciones e infraestructura
constituye un punto crucial cuando de disminuir gastos se trata. Sin embargo,
señala también que dichas instalaciones deben igualmente poseer las siguientes
características: flexibilidad, sencillez en el mantenimiento, posibilidades de
expansión, satisfacción de los investigadores, los técnicos encargados y los
animales.
Siguiendo lo estipulado anteriormente, se realizó una inspección general de las
estructuras que el Santuario posee, con el fin de evaluar el mejor sitio en que se
podría ubicar el bioterio. De esta revisión se concluyó que la mayoría de éstas no
tienen un uso definido en la actualidad, por lo tanto la idea de potencializar su uso,
se considera como pertinente. Entre algunas de las estructuras que se evaluaron y
por ende se consideraban mas pertinentes, se encuentran los diversos
compartimentos de carga para tractomulas (actualmente usados como bodegas)
ubicados en la zona denominada ―third plateau‖ como edificación para el bioterio.
A continuación se expondrán evidencias de la estructura.
82
Fuente: Álvarez 2014.
En este caso se tuvo en cuenta la inclusión de la presente edificación a la
propuesta ya que por su naturaleza sencilla como contenedor de carga, no solo
permite realizar diferentes modificaciones que se acomoden a su nuevo uso, sino
también posee suficiente espacio para alojar tanto los animales como los insumos
necesarios, asimismo, tiene la posibilidad de ser movilizado y adecuado al lugar
en donde se desee ubicar. Por otro lado, al no poseer ventanas y tener acceso a
servicios básicos debido a la zona en donde se encontraría (agua y luz) cumple
con algunos de los lineamientos básicos para la construcción de bioterios de
producción, ―Construcción de la planta física y alojamiento de los animales‖. En la
Tabla 10 se podrán evidenciar las medidas reales de la infraestructura propuesta.
Imágenes 24 y 25. Compartimento de carga para Tractomula.
83
Tabla 10. Medidas del contenedor de carga.
Fuente: Álvarez 2014.
6.2.2.2 Adecuaciones de las instalaciones.
Si bien es cierto que el contenedor de carga propuesto anteriormente como
edificación para el bioterio cumple con algunos de los requerimientos básicos, con
el fin de hacerlo ciento por ciento útil para el presente proyecto, será necesario
tener en cuenta la realización de ciertas adecuaciones. Dichas modificaciones
serán expuestas en las siguientes secciones.
6.2.2.2.1 Pisos y paredes.
En cuanto al estado actual de los pisos y paredes de la estructura, se encontraron
diversos problemas de humedad y vencimiento de las maderas que los conforman,
debido a su antigüedad y los variados usos a los que han sido sometidos, éste fue
el común denominador en la mayoría de contenedores de carga pertenecientes al
Santuario. Ver Imágenes 26 y 27.
MEDIDAS
www.frontrangecontainers.com
Alto: 2.80 m (9 ft 2‖).
Ancho: 2.38 m (7 ft 8‖).
Largo: 13.53 m (44 ft 4‖)
84
Fuente: Álvarez 2014.
Teniendo en cuenta los parámetros mínimos requeridos para la construcción de la
infraestructura de bioterios de producción, los cuales recalcan la necesidad de
contar con pisos y paredes que permitan la limpieza y desinfección constante, se
hizo necesaria la planeación de una propuesta con el fin de llegar a modificar
dichas falencias presentadas.
Al haber evaluado los diferentes materiales disponibles en el mercado para
cumplir la función que se requeriría, se llegó a la conclusión que los paneles de
plástico podrían ser utilizados en este fin, debido a su capacidad de repeler el
agua. Más específicamente, se propone el modelo número # 63003 de paneles de
plástico, ofrecidos por la empresa Home Depot.
Fuente: HOME DEPOT. (en línea) <http://www.homedepot.com/s/plastic%2520panels?NCNI-5>
(consultado el día 10 de abril del 2014).
Imágenes 26 y 27. Estado de los pisos y paredes.
Imagen 28. Modelo de panel de plástico y medidas por unidad.
85
A continuación se evidenciará la cantidad total de paneles que se requerirían, de
acuerdo al espacio total a cubrir.
Tabla 11. Cantidad de paneles requeridos de acuerdo al área total de la estructura.
Fuente: Álvarez 2014.
6.2.2.2.2 Acceso al bioterio.
Un punto muy importante que se debe considerar en el momento de realizar la
planeación y construcción de las instalaciones, comprende a la facilidad y eficacia
de la accesibilidad del sitio. Esto debido a que no solo aporta positivamente al
buen desarrollo de las operaciones diarias llevadas a cabo, sino en situaciones de
emergencia, para la entrada y salida del personal tanto técnico como de socorro.
La ilustración presentada a continuación, representa el modelo del compartimento
de carga que se tomó como ejemplo para el desarrollo de la propuesta, en donde
se permite evidenciar la falta de un correcto sistema de acceso al sitio. A pesar de
que no todos los compartimentos carezcan de dicho acceso, se propone su
mejoramiento con el fin de obtener los resultados esperados del proyecto.
Estructuras (área total)
Cantidad de paneles
- Paredes (960.48 ft2) # 30.
- Pisos (346.32 ft2) # 11.
- Techos (346.32 ft2) # 11.
TOTAL # 52.
86
Fuente: Álvarez 2014.
Con el fin de mejorar la situación de la accesibilidad al sitio se propone la
adquisición de un modelo de escaleras portátiles que contengan pasamanos, de
manera que sea posible su traslado en caso que necesite y brinde estabilidad a
las personas que ingresen al bioterio, evitando accidentes indeseables.
El modelo de escaleras presentado a continuación fabricado por la empresa de
escaleras ―STARR‖, se encuentra elaborado en aluminio lo cual hace el producto
más resistente y duradero, asimismo presenta las siguientes características:
contiene materiales antideslizantes, pasamanos suaves y resistentes, no es
necesario su mantenimiento, al igual contiene materiales no corrosivos ni
combustibles.
Fuente: GREAT LAKE. (en línea) <http://greatlakesentry.com/aluminum-stairs> (consultado el día
10 de abril del 2014).
Imagen 29. Acceso actual al compartimento de carga.
Imagen 30. Modelo de escaleras de aluminio.
87
6.2.2.2.3 Electricidad y sistemas de ventilación.
De acuerdo a este tema es importante resaltar que el compartimento de carga no
cuenta con un sistema básico de electricidad o de ventilación, por lo tanto se
requiere la instalación de los materiales necesarios para proveer los servicios.
Tabla 12. Materiales necesarios para las instalaciones eléctricas y sistemas
de ventilación.
MATERIALES REQUERIDOS PARA LA INSTALACIÓN DE LA ELECTRICIDAD Y
SISTEMAS DE VENTILACIÓN
Lámparas fluorescentes B40 # 5 de
75w, 2.50m (8ft) de largo.
Con el fin de brindar luz a la estructura se
planea ubicar las cinco (5) lámparas de
forma lineal, en la parte media del techo
del compartimento de carga.
Estructuras # 5.
Bombillos # 10.
Fuente: http://www.homedepot.com/
Cable eléctrico 12-2 Romex # 30.48m
(100ft).
Fuente: http://www.homedepot.com/
88
Panel para interruptores 50 amp # 1.
Fuente: http://www.homedepot.com/
Interruptores automáticos 20 amp # 2.
Fuente: http://www.homedepot.com/
Interruptor # 1.
Fuente: http://www.homedepot.com/
Cajas de metal para interruptores # 5.
Fuente: http:// www.homedepot.com/
Tomacorrientes de metal # 4.
Fuente: http://www.homedepot.com/
Sistema de ventilación y extracción de
aire # 1.***
Heavy Duty Type Exhaust Fan Efficient
Industrial Ventilation.
- Blade material: Stainless steel.
Fuente: http://www.alibaba.com/
89
- Model number: JLF(c)-1530(56").
- Air volume: 55800m3/hr.
- Voltage: 380V.
- Speed: 325rpm.
- Diameter blades: 1400mm.
- Size: 1530*1530*400mm.
Sistema de aire acondicionado y
calefacción # 1.
Se recomiendausar el modelo ―GE 12,000
BTU Window Air Conditioner with Heat‖.
Fuente: http:// www.homedepot.com/
Fuente: Álvarez 2014.
***
90
6.2.2.2.4 Instalaciones para el agua y sistemas de drenaje.
Al igual que en el tema de la electricidad, a pesar de que el sitio en donde el
compartimento de carga se encontraría posea el servicio del agua, éste no cuenta
con la infraestructura necesaria para obtener su acceso.
La siguiente tabla muestra los materiales que se requerirían para lograr la
instalación del servicio del agua en el bioterio.
Tabla 13. Materiales necesarios para la instalación del agua y sistemas de
drenaje.
MATERIALES REQUERIDOS PARA LA INSTALACIÓN DEL AGUA Y SISTEMAS DE
DRENAJE.
Lavamanos de acero inoxidable # 1.
Fuente: http:// www.homedepot.com
Tubo de PVC de 1.27cm (1/2”) de
diámetro, 3.04m (10ft) de longitud # 4.
Fuente: http:// www.homedepot.com
Guarniciones de PVC 1.27cm (1/2”) de
diámetro # 10.
Fuente: http:// www.homedepot.com
91
Fuente: Álvarez 2014.
*** Es importante tener en cuenta que antes de dar inicio a la obra del sistema de
drenaje (en inglés, "Onsite Wastewater Treatment System" OWTS) se debe
Grifo de acero inoxidable # 1.
Fuente: http:// www.homedepot.com
Tubo para el drenaje del lavamanos
# 6.09mt (20ft).
Fuente: http:// www.homedepot,com
Tubo PVC para drenaje 5.08cm (2”) de
diámetro # @ 9.14mt (30ft).
Fuente: http:// www.homedepot.com
Campo de infiltración para tanque
séptico # 1 (ver Anexo E)***
- Caja de distribución #1.
- Pala #1.
- Tubo PVC perforado de 10.16 cm de
diámetro (4‖) # @ 18.28 mt (60 ft).
- Guarniciones para tubo PVC.
- Grava o gravilla.
- Paja.
- Tierra (topsoil).
Fuente: http://www.centraljerseyseptic.com/
92
obtener previamente un permiso de construcción por parte del Departamento de
Salud Pública del Condado de Los Ángeles. Para la consecución de éste, basarse
en la guía ―Application Procedures for Approval of an Onsite Wastewater
Treatment System (OWTS)‖, desarrollada en el mes de enero del año 2000, la
cual provee los procedimientos a seguir para la obtención del permiso, basándose
en los requerimientos expuestos en los capítulos 11 y 28 del Código del Condado
de Los Ángeles.
6.2.3 Modelo estructura física del bioterio.
La Imagen 31 muestra un boceto diseñado para ejemplarizar la organización de la
estructura física del bioterio. Si bien se cuenta con un espacio abierto, pero
relativamente angosto, se manejarán tres zonas: mantenimiento, ratones y ratas.
Las zonas estarán divididas por medio de puertas deslizantes, esto con el fin de
poner en funcionamiento las barreras sanitarias; favoreciendo la protección de los
animales (en cuanto a ruidos y posible presencia indeseada), la separación de
espacios de acuerdo a las especies y el manejo de actividades con movimientos
unidireccionales.
93
Imagen 31: Estructura física del bioterio.
Fuente: Álvarez 2014.
6.2.4 Alojamiento de los animales.
6.2.4.1 Cantidad y tipo de jaulas requeridas.
Con el fin de calcular la cantidad de jaulas que se utilizarían por colonia de ratones
y ratas, se tuvieron en cuenta los parámetros expuestos en la Imagen 3. Medidas
mínimas de animales por jaula, propuestos por la Guía para el cuidado y uso de
animales de laboratorio (Committee on Care and Use of Laboratory Animals of the
Institute of Laboratory Animals Resources). Asimismo, para tener una idea acerca
del tipo de modelo de jaulas que se podría usar para alojar a los roedores, se
evaluaron parámetros como: facilidad de manejo, capacidad de manejo de altas
94
densidades de animales y simplicidad en la fabricación y mantenimiento.92 A
continuación en los siguientes subcapítulos se presentarán los modelos de jaulas
que reúnen las especificaciones expuestas anteriormente y la cantidad de éstas
que se necesitarían.
6.2.4.1.1 Ratón (Mus musculus) Cepa CD-1® IGS.
- Modelo de alojamiento para ratones recomendado.
El siguiente sistema de alojamiento para ratones corresponde al modelo ARS-
1050 ofrecido por la compañía ARS Caging. Es importante recalcar que a pesar de
que en la presente propuesta se recomiende su uso, dicho modelo de estanterías
podría variar si se encontrase algún otro con mejores características; precio,
estructura y función.
Fuente: ARS CAGING (en línea) <http://www.arscaging.com/ars1050.html> (citado el 20 de abril
del 2014).
92
CORNELL UNIVERSITY, INSTITUTIONAL ANIMAL CARE AND USE COMMITTE. ACUP
513.02 Rodent Husbandry and Breeding. (en línea)
<http://www.research.cornell.edu/care/documents/ACUPs/ACUP513.pdf> (citado el 30 de abril
del 2014).
Imagen 32. Modelo de alojamiento para ratones ARS-1050.
95
El presente sistema de alojamiento ARS-1050 fue teniendo en cuenta debido a
que posee las siguientes características (ver Imagen 32):
- Medidas de las estanterías: Altura 1.27m (50‖), anchura 1.95m (77‖) y
profundidad 54.61cm (21.50‖).
- Medidas de las jaulas: Altura 8.89cm (3.5‖), anchura 24.13cm (9.5‖) y
profundidad 54.61cm (21.50‖).
- Posee diez (10) niveles.
- Ofrece 50 jaulas para los animales por estantería.
- Marco inferior posee cuatro (4) ruedas.
- Incluye sistema de comederos y bebederos automáticos.
Imagen 33. Detalles estructurales del modelo ARS-1050 y ARS-5032.
Fuente: ARS CAGING (en línea) <http://www.arscaging.com/ars1050.html> (citado el 20 de abril
del 2014).
96
- Cantidad de jaulas y estanterías (racks) requeridas.
De acuerdo al espacio de cada jaula ofrecido por el modelo de estanterías para
ratones ARS-1050, que consta con un área total de 1317.73 cm2 (0.1317 m2), y
teniendo en cuenta las medidas mínimas de espacio por animal (77.4 cm2 para
animales de hasta 25g) provistas por la Guía para el cuidado y uso de animales de
laboratorio, se requeriría un total de sesenta y tres (63) jaulas, de las cuales
cuarenta y dos (42) alojarían los machos, hembras gestantes y crías lactantes, y
las veintiuno (21) restantes las crías destetadas (ver Tabla 14). Se calcula que
cada una alojaría aproximadamente quince (15) ratones (en el caso de las crías),
y/o una familia compuesta por dos hembras y sus crías en el caso de los
reproductores.
Tabla 14. Cantidad de jaulas y estanterías requeridas para ratones.
Fuente: Álvarez 2014.
97
6.2.4.1.2 Rata (Rattus norvegicus) Cepa CD® IGS.
- Modelo de alojamiento para ratas recomendado.
El sistema de alojamiento para ratas descrito a continuación corresponde al
modelo ARS-5032 de la compañía ARS Caging. Es importante recalcar que a
pesar de que en la presente propuesta se recomiende su uso, dicho modelo de
estanterías podría variar si se encontrase algún otro con mejores características,
ya sea basadas en su precio, su estructura y función.
Fuente: ARS CAGING (en línea) <http://www.arscaging.com/ars1050.html> (citado el 20 de abril
del 2014).
El presente sistema de alojamiento ARS-5032 fue teniendo en cuenta debido a
que posee las siguientes características (ver Imagen 33 e Imagen 34):
- Medidas de las estanterías: Altura 2 m (78.75‖), anchura 1.41 m (55.75‖) y
profundidad 0.71 m (28‖).
- Medidas de las jaulas: Altura 13.97 cm (5.5‖), anchura 33.02 cm (13‖) y
profundidad 68.58cm (27‖).
- Posee ocho (8) niveles.
Imagen 34. Modelo de alojamiento para ratas ARS-5032.
98
- Ofrece 32 jaulas para los animales por estantería.
- Marco inferior posee cuatro (4) ruedas.
- Incluye sistema de comederos y bebederos automáticos.
- Cantidad de jaulas y estanterías (racks) requeridas.
De acuerdo al espacio de cada jaula ofrecido por el modelo de estanterías para
ratas ARS-5032, que consta con un área total de 2,264.51 cm2 (0.2264 m2), y
teniendo en cuenta las medidas mínimas de espacio por animal (387 cm2 para
animales de hasta 400 g) provistas por la Guía para el cuidado y uso de animales
de laboratorio, se requeriría un total de noventa y dos (92) jaulas, de las cuales
treinta y dos (32) alojarían los machos, hembras gestantes y crías lactantes, y
sesenta y uno (61) restantes las crías destetadas (ver Tabla 15). Se calcula que
cada jaula alojaría aproximadamente seis (6) ratas adultas en el caso de las crías,
y/o una familia compuesta por una hembra, un macho y sus crías en el caso de los
reproductores.
Fuente: Álvarez 2014.
Tabla 15.Cantidad de jaulas y estanterías requeridas para ratas.
99
6.2.5 Identificación y marcaje de los animales.
6.2.5.1 Identificación de los animales.
Uno de los factores críticos que influye en el mantenimiento de las colonias
exógenas de roedores en bioterios destinados a la producción, consiste en la
eficacia del método de identificación de los animales. En la actualidad, la literatura
ofrece variadas técnicas las cuales son utilizadas de acuerdo a las preferencias
del productor, entre éstas se encuentran: el marcaje con métodos temporales
(marcadores indelebles o con ácido pícrico) y/o con métodos permanentes
(marcación por muescas en las orejas, colocación de caravanas plásticas o
metálicas, tatuado y/o implante subcutáneo con microchip) (Ver Capítulo 3.
Métodos de identificación).93
Teniendo en cuenta los requerimientos del presente proyecto y la necesidad que
la identificación de los animales sea tanto eficaz, como precisa, se propone que se
haga uso de un método permanente de marcaje, en este caso el marcaje por
muescas en las orejas, complementándolo con la toma y registro de datos, por
medio de la creación de tarjetas de identificación.
Con respecto al marcaje por muescas, éste fue el elegido ya al ser el método más
identificación más conocido y usado en ratones, si bien se caracteriza por ser un
método permanente que no tiene un mayor impacto en el bienestar de los
animales; no requiere el uso de agentes anestésicos, no necesita de
93
EXPOSICIÓN INFORMATIVA elaborada por Jesús M. Rodríguez H. Animales de laboratorio:
Manipulación, inmovilización, identificación y sexado. Departamento de Ciencias Básicas,
Facultad de Salud, Universidad Industrial de Santander. Bucaramanga, 2011.
100
equipamiento sofisticado 94 y no pone en riesgo la salud de los animales
consumidores. A continuación en la Tabla 16 se hará una breve y concisa
descripción de la técnica.
Tabla 16. Técnica de marcado de orejas.
Fuente: Álvarez 2014.
94 MEMORIAS DE CURSO titulado Animal de experimentación como reactivo biológico en
investigación, diagnóstico y control de fármacos. Aspectos Generales de roedor de laboratorio
(especies, cepas, líneas): Sistemas de producción para mantenimiento de condición genética.
Ofrecido por Lic. Mariela Santos. Unidad de Reactivos y Biomodelos de Experimentación.
Facultad de Medicina. (en línea) <
http://www.urbe.fmed.edu.uy/cursos/animales_experimentacion/Roedores%20de%20laboratorio
.pdf> (citado el 11 de agosto del 2014).
101
Por otro lado, con respecto a la toma y registro de datos, por medio de las tarjetas
de identificación, éstas que estarían adheridas a cada jaula, contendrían los datos
principales que permitirían al operador no solo identificar a los animales que se
alojan en ellas, sino el estado actualizado de los ciclos de rotación de los
reproductores. Asegurándose de esta manera que todos los animales que
componen la colonia sean tenidos en cuenta en el programa reproductivo.
6.2.5.1.1 Tarjetas de identificación.
Con respecto a las fichas de identificación, se propone que se manejen dos tipos.
El primero exclusivamente para los reproductores y el segundo para las crías. En
las imágenes a continuación se mostrarán los modelos desarrollados.
Fuente: Álvarez 2014.
Imagen 35. Tarjetas de identificación para reproductores.
102
Fuente: Álvarez 2014.
De acuerdo al modo de uso, es esencial tener en cuenta las siguientes
recomendaciones:
- La cantidad de fichas a utilizar estaría directamente relacionado con el número
de jaulas que componen el bioterio. Éstas solo se renovarían en caso de
declararse inservibles.
- El tipo de ficha a utilizar dependerá del tipo de animal que se encuentre en
cada jaula, ya sea en el caso de los reproductores o las crías.
- Con el fin de economizar recursos, una vez impresa cada ficha, ésta se debe
plastificar, con el fin de prolongar su vida de uso.
Imagen 36. Tarjetas de identificación para crías.
103
- Para la escritura sobre las fichas de identificación, se recomienda el uso de
marcadores permanentes. De manera que permita que la información sea
legible y no se borre fácilmente. Asimismo, en el momento del cambio de jaula
de los animales, la información necesaria debe permanecer y solo borrar la que
no lo es.
- Dichas fichas constituirían el único documento que debe adherirse a las jaulas.
En el caso de que haga falta información precisa, se recomienda la
actualización del modelo actual.
6.2.6 Registros generales de la colonia.
Como bien se dio a conocer en el subcapítulo anterior la importancia y necesidad
del uso de registros individuales por jaula. A continuación se propondrá el manejo
de un registro complementario, el cual si bien sería llevado exclusivamente por los
veterinarios encargados y les servirá para llevar un control general de actividades,
igualmente permitirá al personal del bioterio (actual y futuro) informarse acerca de
aspectos importantes que caracterizan la colonia, entre los cuales se encuentran:
la proveniencia de los animales, su edad y la frecuencia en que se llevarían a cabo
algunos procesos, entre otros.
A continuación las Imágenes 37 y 38 expondrán los modelos de registros de la
colonia.
104
Fuente: Álvarez 2014.
Imagen 37. Registros generales de la colonia de ratones.
105
Fuente: Álvarez 2014.
Imagen 38. Registros generales de la colonia de ratas.
106
6.2.7 Requerimientos básicos de los animales.
6.2.7.1 Alimentación.
Para identificar el alimento más apropiado que contribuya al correcto desarrollo de
los roedores y la sostenibilidad de la producción, se tuvieron en cuenta dos
alternativas: la primera, basada en concentrados secos producidos especialmente
para ratas y ratones, la segunda, en concentrados para caninos bajos en proteínas
y grasas95.
Si bien en el caso de los bioterios de producción e investigación, con el fin de
reducir costos, se tienen en cuenta en ocasiones alternativas nutricionales
basadas en alimento para otras especies (ej. concentrado de caninos, enriquecido
con alimento de pollo de engorde83), que cuenten con composiciones de
ingredientes similares a los requerimientos dietarios de los roedores. En el
presente proyecto, se tendrán en cuenta las dietas fabricadas específicamente
para roedores, ya que no solo se componen por ingredientes de alta calidad,
supliendo las necesidades alimenticias de los animales en cualquier etapa de su
vida, sino, a nivel económico, su precio llega a ser similar y en ocasiones menor al
de la mayoría de marcas de concentrado para caninos posiblemente utilizadas
para éste fin ofrecidas en el mercado estadounidense. Esto, debido a que al ser
Estados Unidos el país productor de la mayoría de dichas dietas especializadas,
éstas tienden a ser más accesibles, cuando se comparan con el mismo producto
en algún otro país. (ver Tabla 17).
95
RATTITUDE. (en línea) < http://rattitude.com/articles/information/heathy-rat-diet/> (citado el 10
de Agosto del 2014).
107
Tabla 17. Comparación de concentrados.
Fuente: Álvarez 2014.
Teniendo en cuenta lo anterior se llega a la conclusión que el modelo de
concentrado para roedores de nombre LabDiet ® (serial # 5001) producido por la
marca Purina® es el más apropiado en este preciso caso. (ver Anexo F).
Fuente: LabDiet (en línea) <www.labdiet.com> (citado el día 10 de enero del 2014).
Imagen 39. Modelo de concentrado # 5001
108
6.2.7.1.1 Cantidad y manejo de la alimentación.
Los animales deberán recibir alimento en cantidad y calidad suficiente para cubrir
sus necesidades y así conservar la salud. El acceso a éste deberá ser libre y
suficiente (de acuerdo al número de animales que conformen cada jaula). Su
suministro deberá ser diario y renovación deberá ser diario. A continuación en la
Tabla 18 se dará un estimado de la cantidad total de alimento consumida
anualmente por los roedores del bioterio.
Fuente: Álvarez 2014.
De acuerdo al manejo, se debe tener en cuenta que cada ingreso de alimento a
las instalaciones deberá ser registrado, asegurándose de evitar el despilfarro
(priorizando el uso de los más antiguos). Los sacos en uso deberán ser
almacenados en contenedores de plástico cerrados y ubicados en plataformas que
Tabla 18. Cantidad aproximada de alimento consumido por año.
109
permitan el aislamiento del piso. El cuarto en donde estarían los contenedores
deberá ser de un material que permita su limpieza y desinfección, igualmente éste
deberá ser ventilado y encontrarse a una temperatura promedio de 25 C (77°F)
con humedades relativas mayores a 60%. Por último, los contenedores no
deberán movilizarse a diferentes salas y deberán lavarse y sanearse
regularmente.
6.2.7.2 Agua.
Debido a que en la actualidad existe un protocolo establecido para el manejo y
tratamiento de las aguas ofrecidas a los mamíferos, reptiles y aves resistentes del
Santuario, no será necesario instaurar nuevos sistemas de procesamiento para el
agua de consumo de los roedores del bioterio.
6.2.7.3 Materiales para lecho o cama.
El ofrecimiento de materiales de cama de calidad a los roedores en estado de
confinamiento y/o cautiverio se considera necesario no solo por cuestiones
higiénicas (pues facilita la limpieza de los excrementos), sino también porque
contribuye al desarrollo normal del comportamiento propio de las especies, ya que
110
permite que actividades naturales como la excavación se lleven a cabo y
comportamientos indeseables como la agresión se disminuyan.
De acuerdo a la cantidad de material de cama requerido, se debe tener en cuenta
que éste debe ser suficiente para cubrir la superficie entera del suelo de la jaula y
a su vez ocupe mínimo dos (2) centímetros de altura96. El monto total utilizado
mensualmente dependerá de factores tales como: la calidad y el tipo de sustrato
usado, el número de animales albergados por jaula y la frecuencia en que se
realicen labores de limpieza. Por otro lado, con respecto a su elección, es
importante saber que éste debe contar con las siguientes características: no ser
tóxico, libre de polvo, microbios, parásitos o contaminantes químicos, que se
encuentre conformado por grandes partículas (evitando la irritación de las
mucosas y vías aéreas de los animales), que sea altamente absorbente y permita
la reducción de los niveles de amoniaco, y por último, que sea económico, de fácil
consecución, almacenamiento, uso y desecho94.
Si bien es conocido que los materiales para cama provenientes de la madera han
sido usados extensamente a través de los años en los bioterios que albergan
roedores, e igualmente que son los sustratos de elección por parte de los
animales97, estudios recientes han demostrado que debido a componentes
naturales que algunas contienen; taninos, alcaloides, ligninos y resinas, su
acumulación puede producir afección en diferentes órganos de los roedores,
96
REINHARDT. V, REINHARDT. A. Variables, refinement and environmental enrichment for
Rodents and Rabbits kept in research institutions. 2005.
97 SHERWIN C. M. Observations on the prevalence of nest-building in non-breeding TO strain mice
and their use of two nesting materials. Division of Animal Health and Husbandry, Department of
Clinical Veterinary Science, University of Bristol, Langford House, Langford, Bristol BS187DU,
UK. 1997.
111
provocando en ocasiones su muerte98. Por lo cual se recomienda el uso de
sustratos que reduzcan las posibilidades de que se presente dicho riesgo.
El presente proyecto pretende dar uso a un material, el cual, si bien fue
inicialmente desarrollado para servir como cama para caballos, debido a sus
excelentes resultados, su manejo fue adoptado para el mismo fin en los pequeños
mamíferos. Se trata del Hemp (fibra de cáñamo por su traducción al español), el
cual posee características que favorecen tanto el bienestar de los animales, como
la economía de la producción; ya que está compuesto de grandes partículas, es
libre de polvo, suave, tiene bajo nivel de palatabilidad, posee un alto porcentaje de
absorción (400% más comparado con viruta de madera y paja, 250% y 225%
respectivamente), alto control de olores, alto nivel de desintegración, requiere
menos espacio de almacenamiento y menos mano de obra, es económico cuando
se compara con los demás y además debido a su composición presenta un muy
bajo costo al desecharse99, pues al desintegrarse fácilmente podría ser arrojado
en la pila de compostaje del Santuario. Cualidades que se ven reflejadas no solo
en la necesidad de su uso en pequeñas cantidades, sino en el aumento en el
lapso de tiempo entre limpiezas y reemplazo total de las camas. (ver Anexo G).
98
BLOM H. J. VANTINTELEN G. VAN VORSTENBOSCH C. J. Preferences of mice and rats for
types of bedding material. Department of Laboratory Animal Science and Department of
Functional Morphology, Faculty of Veterinary Medicine, Utrecht University and Laboratory
Animals Centre, Agricultural University, Wageningen, The Netherlands. 1995.
99 HEMP TECHNOLOGIES GLOBAL HempBed Consumption Comparison Trial. (en línea) <
http://www.hemp-technologies.com/page27/styled-12/page20.html> (citado el día 10 de agosto
del 2014).
112
Fuente: HEMP TECHNOLOGIES GLOBAL (en línea) < http://www.hemp-
technologies.com/page27/styled-12/page20.html> (citado el día 10 de agosto del 2014).
Fuente: Álvarez 2014.
Imagen 40. Fibra de Cáñamo (Hemp).
Tabla 19. Cantidad de cama (Hemp) requerido anualmente.
113
Teniendo en cuenta un cambio semanal de camas, es posible deducir que
anualmente para los ratones se requerirían 8.09 pacas de material, y para las
ratas 20.32 (ver Tabla 19), teniendo un gasto total anual de USD $568.22. Es
importante denotar que a medida que se iría utilizando el sustrato, se evaluará su
eficiencia y por lo tanto los protocolos de uso podrían verse sujetos a
modificaciones.
6.2.7.4 Enriquecimiento ambiental.
Es importante tener en cuenta que en el momento en que un animal es extraído
y/o criado fuera de su ambiente natural y mantenido en condiciones en donde se
exponga a situaciones adversas provocadas por el ser humano, la presentación
del estrés se incrementa, produciendo así consecuencias negativas en su
bienestar general.100
El concepto de estrés fue inicialmente desarrollado por el fisiólogo Cannon en el
año 1929, refiriéndose a éste como ―una serie de cambios fisiológicos
relacionados con la actividad del sistema simpático y la glándula adrenal, los
cuales se producen en situaciones que requieren una respuesta de acción rápida
por parte del organismo‖. Posteriormente establecido por Selye (1960) al
describirlo como ―un conjunto de cambios fisiológicos y neurofisiológicos ocurridos
por diferentes estímulos externos o internos llamados estresores‖, aquellos
cambios que se producirían de una manera secuencial y con distintas
repercusiones sobre el organismo, en un proceso que Selye denominó "Síndrome
General de Adaptación, SGAD", el cual comprende los diferentes estados
fisiológicos por los que un organismo pasa, desde el primer momento en que se
100
BAUMANS, V. BRAIN, P.F. BRUGERE, H. CLAUSING, P. et al. Pain and Distress in
Laboratory Rodents and Lagomorphs. Londres: Royal Society Press of London, 1992.
114
expone a agentes estresores, creando en primera estancia una reacción inmediata
de emergencia, pasando por el estado de resistencia, hasta llegar a la fase o
estado de agotamiento, en donde los mecanismos reguladores comienzan a fallar
ocasionando cambios degenerativos en los distintos órganos corporales.101
A raíz de lo anterior, se hace necesaria la evaluación del estado de bienestar
general de los animales que se encuentren en cautiverio, para lo cual, Calduch, en
su Curso de Formación de Personal Investigador Usuario de Animales de
Experimentación ofrecido a los estudiantes de la Universidad de Barcelona,
expresa que dicha evaluación se debe realizar teniendo en cuenta el
conocimiento de las necesidades fisiológicas y etológicas de los animales,
denotando la ausencia de indicadores de malestar, sufrimiento o precursores de
enfermedad.102
Uno de los principales factores que afectan el bienestar de un animal, consiste en
la imposibilidad de manifestación de pautas normales de conducta debido al hecho
de encontrarse en un ambiente diferente o inapropiado, lo cual finalmente se ha
demostrado que puede ser parcial o totalmente resuelto mediante el ofrecimiento
de las denominadas Técnicas de Enriquecimiento Ambiental.103 104
Enriquecer significa hacer que las cosas tengan sentido, The Shape of Enrichment
101
BAUMANS, V. BRAIN, P.F. BRUGERE, H. CLAUSING, P. et al. Pain and Distress in
Laboratory Rodents and Lagomorphs. Londres: Royal Society Press of London, 1992.
102 CALDUCH, Teresa R. Comportamiento y bienestar animal: homeostasis y estrés. Curso de
formación de personal investigador usuario de animales de experimentación. Universidad de
Barcelona.
103 REINHARDT, Viktor. REINHARDT, Annie. Variables, refinement and enviromental enrichment
for rodents and rabbits kept in research institutions. Washington D.C: Animal Welfare Institute,
2007. ISBN 0-938414-99-2.
104 CRUZ.J, GUTIÉRREZ. G. Avances en ciencias del comportamiento. Vol. 1. Laboratorios de
Psicología. Primera edición digital. Bogotá: septiembre 2005.
115
(La forma del enriquecimiento), es una organización no gubernamental
especialmente dedicada a crear alternativas para mejorar ambientes de animales
cautivos. Éstos, describen el enriquecimiento ambiental (o comportamental) como
―la mejora de la calidad de vida de los animales en cautiverio, alterando su
ambiente o creando oportunidades de comportamiento‖. Se puede decir que el
enriquecimiento ambiental es lo que usted hace al ambiente y el enriquecimiento
comportamental es la respuesta animal o los resultados del cambio. El
enriquecimiento es una herramienta que se puede usar para dar oportunidad y
alternativas a los animales en cautiverio, la cual los motiva a mostrar los
comportamientos específicos de la especie y a que hagan uso de sus
adaptaciones para sobrevivir105, por lo tanto se busca que éste sea dinámico y
limitado solo por nuestra propia imaginación.
Cuando el enriquecimiento es efectivo se espera que provoque en el animal los
siguientes tipos de respuesta: aumento de la actividad general, incremento de la
actividad reproductiva, reducción del comportamiento estereotipado, reducción del
estrés, reducción de la agresión y la automutilación, y por último el desarrollo de
un comportamiento más normal de acuerdo a la especie.100
Teniendo en cuenta que en la presente propuesta se trabajaría con animales
confinados en un sistema de producción intensiva, el enriquecimiento de su
ambiente se haría más que necesario, en donde se buscaría tanto el incremento
del bienestar de los animales, como resultados productivos que beneficie el
proyecto. A continuación se describen algunas técnicas de enriquecimiento que
pueden ser utilizados.
105
CALDUCH, T. Comportamiento y bienestar animal: homeostasis y estrés. Curso de Formación
de Personal Investigador Usuario de Animales de Experimentación. Universitat de Barcelona.
116
- Manejo de los animales:
Según Hirsjärvi y Junnila (1988) y Hirsjärvi y Valiaho (1995) en sus estudios con
ratas Wistar, demostraron que el contacto directo y constante manejo de los
animales por parte de los investigadores (cuando éste se realizaba
correctamente), ayudó a incrementar su bienestar general, viéndose reflejado en
su cambio positivo de conducta y reducción de estrés, esto evaluado por medio de
la disminución en la pérdida de excrementos y agresión al momento de la
manipulación, durante el desarrollo de actividades ligadas a procesos
investigativos, permitiendo así su correcto desarrollo.
A raíz de lo anterior, capacitaciones promoviendo el correcto manejo y
manipulación de los animales por parte del personal del bioterio se instaurarían,
de manera que se reduzcan tanto los accidentes que afecten al personal, como el
estrés de los animales.
- Alojamiento de roedores en grupos:
Teniendo en cuenta que tanto las ratas y ratones se caracterizan por ser animales
sociables, la autora propone su alojamiento en sistemas de grupos, de manera
que se permita la expresión de su comportamiento natural como ser social.106
106
TÁMARA, C. & GUTIÉRREZ, G. Problemas de Comportamiento en Animales de Laboratorio.
En: Problemas de comportamiento en animales de laboratorio. Vol. 1. Laboratorios de
Psicología. Primera edición digital. Bogotá: septiembre 2005.
117
Fuente: En línea. <http://www.ucla.edu.ve/dveterin/bioterio/NMRI.jpg> (citado el 10 de enero del
2014).
- Artefactos ofrecidos:
A pesar de haber incluido en la presente propuesta jaulas con dimensiones
suficientes para albergar altas densidades de animales, la necesidad de contar
con artefactos artificiales que ofrezcan tanto protección como entretenimiento es
más que urgente. A continuación en la Tabla 20 se describirán algunos artefactos
que podrían ser utilizados para proveer dicha protección a los animales.
Tabla 20. Artefactos de enriquecimiento ambiental.
DESCRIPCIÓN
Pedazo de madera colgado en el techo de
la jaula usando un gancho de acero para
papeles.
Imagen 41. Alojamiento de roedores en grupos.
118
Con el fin de aumentar el espacio en la
jaula, amarrar un tapabocas quirúrgico al
techo.
Ofrecimiento de implementos de cartón
para ser utilizados como escondederos.
Tiras de papel ofrecidas a las madres para
construir sus nidos.
Materiales de madera provistos para
promover el mordisqueo y que puedan ser
útiles como nidos.
Ofrecimiento de tubos de PVC
promoviendo la naturaleza curiosa de los
animales.
Ofrecimiento de ruedas para promover la
actividad física en los ratones.
119
Imágenes: Reinhardt. V, Reinhardt. A. Variables, refinement and environmental enrichment for
Rodents and Rabbits kept in research institutions. 2005
6.3 ASPECTOS ADMINISTRATIVOS.
6.3.1 Entrenamiento del personal del bioterio.
Con el fin de lograr que los procesos y procedimientos llevados a cabo en el
bioterio se ejecuten de la manera más precisa y por ende se reduzca la presencia
de situaciones inesperadas, se propone que las siguientes recomendaciones
sean tenidas en cuenta en el momento de planear las actividades de
entrenamiento del personal operativo del bioterio.
6.3.1.1 Introducción al trabajo de Bioterista.
Inicialmente se debería realizar una capacitación introductoria por parte de los
Médicos Veterinarios encargados, dirigida al personal (fijo o temporal) responsable
del mantenimiento del bioterio. Allí se aclararían conceptos teóricos y prácticos
acerca de los bioterios de producción, asimismo, el propósito del funcionamiento
del presente bioterio, las funciones a desempeñar (de manera teórica y práctica) y
los riesgos potenciales a los que se exponen al llevarlas a cabo.
Una vez se tenga el personal necesario y se logre que cumpla alguno de los
requisitos necesarios (ver Tabla 21), se recomienda asimismo propender para que
éste adquiera la certificación de "Asistente Técnico de Laboratorio Animal (ALAT,
120
por sus siglas en inglés)" ofrecida por "The American Association for Laboratory
Animal Science, AALAS". 107
Tabla 21: Requisitos para obtener el título de ALAT.
Fuente: The American Association for Laboratory Animal Science, AALAS. (en línea) <
https://www.aalas.org/certification/technician-certification#.U-jrYvldVFZ> (citado el 11 de agosto del
2014).
6.3.1.2 Implementación de Procedimientos Operativos Estandarizados
(P.O.E).
Con el fin de que los conocimientos adquiridos por parte del personal se
mantengan actualizados y se logre llevar a cabo procesos de una manera
eficiente, se recomienda el uso de los P.O.E´s, que consisten en documentos que
facilitan la ejecución de procesos, mediante la descripción (a través de un conjunto
de instrucciones o pasos) cronológica y secuencial de cada una de las
operaciones de rutina que se llevan a cabo, ya sean desarrolladas de manera
individual o grupal, con una frecuencia diaria, semanal, quincenal o mensual, etc.
108. La puesta en práctica promueve que dichas actividades se realicen dentro de
107
The American Association for Laboratory Animal Science, AALAS. (en línea) <
https://www.aalas.org/certification/technician-certification#.U-jrYvldVFZ> (citado el 11 de
agosto del 2014).
108 DAVID, J. ¿Cómo hacer un POE?. Artículo publicado el 21/04/13 en la página web:
http://www.bioterios.com/2013/post.php?s=2013-04-21-cmo-hacer-un-poe.
121
un ámbito predeterminado de aplicación, en forma segura para los operadores y
los animales, evitando generar un impacto negativo en el ambiente.
6.3.1.2.1 Flujograma de procesos.
Con el fin de favorecer la comprensión de las actividades llevadas a cabo por el
personal del bioterio de una forma concreta y simple, y asimismo facilitar la
detección de posibles falencias presentadas en los procesos, se propone la
creación de un Flujograma de procesos, el cual consiste en una representación
gráfica de una secuencia de acciones realizadas de manera rutinaria, que por
medio del empleo de símbolos que representan las etapas o pasos en el proceso,
permite el entendimiento de la secuencia lógica en que las acciones son
realizadas, y asimismo la interacción coordinada entre los encargados de llevarlas
a cabo 109.
109
Ministerio de planificación nacional y política económica, Mideplan. Guía para la Elaboración
de Diagramas de Flujo. Costa Rica. Julio, 2009.
122
Imagen 42. Flujograma de procesos.
123
124
Fuente: Álvarez 2014.
6.3.1.2.2 Cronograma de actividades.
Con el fin de facilitar y regular las labores diarias del personal del bioterio, a
continuación se presentará un calendario de actividades, el cual compila de
manera cronológica todos los procesos que se llevarían a cabo por parte de los
operadores.
125
Fuente: Álvarez 2014.
6.3.1.2.3 Formulación e implementación de protocolos.
6.3.1.2.3.1 Sanitización de manos.
Es primordial tener en cuenta que con el fin de reducir la presencia de posibles
enfermedades transmitidas de los animales a los operarios y/o viceversa, la
correcta higiene debe ser una prioridad, por lo que el siguiente protocolo debe ser
puesto en práctica a todo momento en las instalaciones del bioterio.
Tabla 22. Cronograma de actividades.
126
Imagen 43. Sanitización de manos.
Fuente: RODRÍGUEZ. J. Manual de protocolos y procedimientos del bioterio UIS. Universidad
Industrial de Santander. Facultad de Salud. Departamento de Ciencias Básicas. Bioterio Central
127
6.3.1.2.3.2 Sexado de los animales.
Con el fin de evitar el perjuicio a la salud del operario, de los animales y asegurar
el correcto desarrollo de la actividad, a continuación se describe protocolo que
deberá ser llevado a cabo por los operadores durante el proceso de sexaje (ver
Imagen 44).
Fuente: Álvarez 2014.
Imagen 44. Protocolo de sexaje.
128
6.3.1.2.3.3 Eutanasia.
Si bien la técnica usada para el sacrificio de los animales del bioterio será la del
Dióxido de carbono, a continuación se describirá el protocolo a seguir antes,
durante y después del sacrificio de los roedores (ver Imagen 45).
Imagen 45. Protocolo de eutanasia de los animales.
129
Fuente: Álvarez 2014.
6.3.1.2.3.4 Protocolo para suministro de alimento y agua.
130
Imagen 46. Protocolo para suministro de alimento y agua.
Fuente: RODRÍGUEZ. J. Manual de protocolos y procedimientos del bioterio UIS. Universidad
Industrial de Santander. Facultad de Salud. Departamento de Ciencias Básicas. Bioterio Central
131
6.3.1.2.3.5 Limpieza y desinfección de las jaulas y estanterías.
Es considerado que para los roedores de laboratorio, los procesos de limpieza y
desinfección de las jaulas son actividades que generan estrés, esto debido a la
manipulación necesaria de los animales (en ocasiones viéndose reflejado en la
reducción de la ganancia de peso, incremento de agresión entre animales,
reducción en la productividad y cambios fisiológicos, entre otros)110, por lo cual se
hace importante el uso de las correctas prácticas de manejo y la instauración de
protocolos que expliquen al personal el orden y descripción de los procedimientos
adecuados durante las labores de limpieza del bioterio.
Con respecto al producto a utilizar para las labores de desinfección, basados en la
información provista por la "Guía de manejo y cuidado de animales de laboratorio:
Ratón", desarrollada por el Instituto Nacional de Salud Peruano, se recomienda el
uso de Tego 2000 al 1% en conjunto con agua (ver Tabla 22) a una relación de 50
ml de desinfectante por 5 L de agua. El Tego 2000 es un agente antimicrobiano
versátil y efectivo basado en tensioactivos anfotéricos, adecuado para la limpieza
de superficies en empresas dedicadas al procesamiento de alimentos, bebidas,
farmacéuticas, cosméticas y laboratorios111.
110
Baumans V, Brain P, Brugere H, Clausing P, Jeneskog T, Perretta G. Pain and distress in
laboratory rodents and lagomorphs. Laboratory Animals. 1994;28:97-112.
111 JOHNSON DIVERSEY TEGO 2000. (en línea) <http://www.dbm-
ltd.co.uk/hygiene/products/johnsondiversey/che0.
micals/open_plant_cleaning/disinfectants/tego_2000_PIS.pdf> (citado el 11 de agosto del
2014.
132
Tabla 23. Concentración del Tego 2000.
Fuente: Guía de manejo y cuidado de animales de laboratorio: ratón. Instituto Nacional de Salud
Peruano. Lima, 2008.
A continuación se presentará el calendario semanal de actividades y los
protocolos de actividades para la limpieza de las jaulas y estanterías (ver Tabla
24, Imagen 47 e Imagen 48).
Fuente: Álvarez 2014.
Tego 2000 ……………… 1ml
Fuente: http://www.iab-reinraumprodukte.de/
Agua c.s.p ……………… 100 ml
Tabla 24. Cronograma semanal de limpiezas.
133
Imagen 47. Protocolo de actividades para la limpieza de las jaulas.
134
Fuente: RODRÍGUEZ. J. Manual de protocolos y procedimientos del bioterio UIS. Universidad
Industrial de Santander. Facultad de Salud. Departamento de Ciencias Básicas. Bioterio Central.
135
Imagen 48. Protocolo de actividades para la limpieza de las estanterías.
Fuente: RODRÍGUEZ. J. Manual de protocolos y procedimientos del bioterio UIS. Universidad
Industrial de Santander. Facultad de Salud. Departamento de Ciencias Básicas. Bioterio Central.
136
6.3.1.2.3.6 Limpieza y desinfección de los pisos.
Los materiales y utensilios de limpieza deberán ser exclusivos del bioterio y
mantenerse en buenas condiciones de uso para así evitar que actúen como
vectores de microorganismos. Estos materiales corresponden a: baldes,
trapeadores, escobas, esponjas, bolsas plásticas, canecas de basura, detergentes
y desinfectantes, entre otros.
Se recomienda que para la desinfección de pisos se haga uso del protocolo ya
establecido por el Santuario para la limpieza de jaulas y utensilios de los animales,
que consiste en el uso del producto Simple Green al 10%. Dicha recomendación
se basa en el hecho de que éste constituye un producto no tóxico para los
animales y es biodegradable, además, posee propiedades limpiadoras y
desengrasantes112.
112 SIMPLE GREEN (en línea) < http://gsa.simplegreen.com/gsa_products_all_purpose.php>
(citado el 11 de agosto del 2014).
137
Imagen 49. Protocolo de limpieza y desinfección de los pisos.
Fuente: RODRÍGUEZ. J. Manual de protocolos y procedimientos del bioterio UIS. Universidad
Industrial de Santander. Facultad de Salud. Departamento de Ciencias Básicas. Bioterio Central.
138
6.3.1.2.3.7 Control de desechos.
Con respecto al control de desechos, es importante tener en cuenta que para
reducir la cantidad de residuos a eliminar de manera no sostenible, se haría
necesaria la separación de las basuras, clasificándolas en de origen orgánico e
inorgánico.
Imagen 50. Protocolo de eliminación de desechos.
Fuente: Álvarez 2014.
139
6.3.2 Ubicación de carteles promoviendo la prevención.
Es importante tener en cuenta que uno de los puntos críticos del manejo de
bioterios y por ende de animales, consiste en los posibles eventos adversos que
se pudiesen presentar ocasionados por la falta de prevención. Por lo anterior, se
propone que una manera de recordar al personal acerca de la importancia de ésta,
sería ubicar carteles en el idioma inglés y español (teniendo en cuenta a los
empleados hispanohablantes) en sitios visibles, los cuales ofrezcan información
acerca de cómo realizar correctamente procesos de higiene, manejo de animales,
desecho de residuos, manejo de sustancias químicas, prevención de accidentes,
entre otros.
6.3.3 Normativas internas del bioterio. 113
A continuación se darán a conocer los lineamientos que regirán el funcionamiento
general del bioterio. Dichas normas deberán ser cumplidas tanto por el personal
de planta, como por cualquier individuo externo que con previa autorización
ingrese a las instalaciones.
6.3.3.1 Normas de conducta dentro del bioterio.
Queda absolutamente prohibido:
- Introducir animales de otras instituciones y/o silvestres dentro las instalaciones
del bioterio sin autorización previa por parte de los Médicos Veterinarios.
113 Manual del Bioterio UAMI. (en línea) <
http://cbs.izt.uam.mx/informacion/consejo_divisional/lineamientos/MANUALBIOTERIO.pdf> (citado el
15 de abril del 2014).
140
- Permitir el ingreso de personas no autorizadas.
- Consumir bebidas o alimentos en el interior de las instalaciones. Asimismo,
fumar, o usar sustancias de tipo recreativo.
- Utilizar radios, grabadoras, televisores o cualquier otra fuente de ruido para los
animales. Con respecto al uso del radio comunicador éste debe permanecer a
bajo volumen y las conversaciones se deben limitar a ser breves y concisas.
- Hacer ruido excesivo, jugar o correr en los pasillos. Asimismo, utilizar a los
animales como objeto de diversión o experimentos.
- Dejar desechos de cualquier tipo en las estanterías de los animales o cualquier
otra superficie que no se encuentre indicada para ese fin.
6.3.3.2 Normativas de carácter general para el personal del bioterio.
- Es obligatorio usar dentro de las instalaciones ropa de protección (se
recomienda el uso de una bata) guantes y tapabocas apropiados (utensilios
que estarán dispuestos a la entrada del bioterio).
- El personal debe abstenerse de realizar cambios, mejoras o desarrollar nuevos
proyectos (ya sean relacionados directamente con los animales o la
infraestructura) que no hayan sido avalados por los Médicos Veterinarios.
- El personal debe tener en cuenta que los implementos de aseo ubicados en el
bioterio deben ser únicamente utilizados allí mismo. En caso de que sea
141
necesario su reemplazo, se debe dirigir a un supervisor para que éste provea
nuevos materiales.
- El acceso debe ser restringido a solo el personal necesario para llevar a cabo
las labores
- En caso de vacaciones, inasistencia o enfermedad, el personal debe
comunicar previamente a los supervisores (3 semanas, 4 días y 1 día
respectivamente) acerca del tiempo en que estará ausente, quedando su
aprobación a menester de ellos (dependiendo del caso).
- Es imperativo que exista una excelente comunicación entre el personal
encargado del mantenimiento del bioterio (fijo o temporal) de manera que los
procesos se lleven a cabo correctamente, evitando su interrupción.
- Las labores de limpieza y alimentación deberán ser las primeras actividades
que el personal realizará, de manera que se evite el posible estrés generado
por el hambre y/o suciedad.
- El personal deberá cerciorarse que siempre haya disponibilidad de insumos
que abastezcan las necesidades del bioterio (alimenticios, limpieza, entre
otros).
6.3.3.3 Del cuidado de los animales por parte del personal del bioterio.
Para lograr proporcionar bienestar a los animales del bioterio, el personal debe
comprometerse a realizar las siguientes actividades de manera correcta:
- Alimentación, mantenimiento sanitario, y la puesta en práctica de métodos
adecuados de eutanasia.
142
- Una vez los roedores se hayan sacrificado, se debe asegurar que se lleven a
cabo ciclos de refrigeración o congelación correctos, esto con el fin de que se
garantice el ofrecimiento de alimento de calidad a los animales residentes del
Santuario.
- Con respecto al manejo de los animales, éste debe ser adecuado y limitado,
manipulándolos únicamente lo necesario, siempre realizando movimientos
predecibles y suaves.
- Estricta vigilancia del estado sanitario de los animales, de manera que se
hagan reportes inmediatos a los Médicos Veterinarios ante la presencia de
anomalías.
- Llevar el control de los parámetros reproductivos del bioterio (fechas de
nacimiento de las camadas, número de recién nacidos, fechas de destete, etc.)
de manera que se logre cumplir con los objetivos por los cuales fue creado.
- Higiene de las jaulas e instalaciones del bioterio. Asimismo, coordinación de
las actividades de mantenimiento del local y de los equipos.
- Evitar el hacinamiento y maltrato de los animales.
- Control del fotoperiodo y temperatura del bioterio.
143
7. PRESUPUESTO PREDETERMINADO Y RETORNO DE LA
INVERSIÓN (RSI).
Fuente: Álvarez 2014.
Según la Tabla No 25, es posible concluir que los costos totales en que incurriría
el Santuario en caso de llevar a cabo el proyecto del bioterio, corresponderían a la
suma de US$14,019.22. Cifra la cual sería completamente amortizada en un
periodo total de 4.8 años, permitiendo al cabo de dicho periodo tener una utilidad
neta de US$4,947.35. Situación que demuestra la factibilidad del proyecto.
Tabla 25. Costos.
144
8. DESGLOSE DE COSTOS
A continuación en la Tabla 25 se hará una explicación detallada de los costos en
que incurriría el Santuario en caso de implementar el proyecto del bioterio. Dicha
tabla también permitirá al lector un mejor entendimiento de la Tabla 24.
denominada Costos.
Tabla 26. Desglose de costos.
145
146
Fuente: Álvarez 2014.
147
9. CONCLUSIONES.
Teniendo en cuenta que el tiempo de amortización del proyecto se cumpliría a
los 4.8 años y que al cabo de ese periodo quedaría una utilidad neta anual de
US$4,947.35, además de los beneficios que traería para el Santuario el hecho
de iniciar proyectos que impulsen su auto sostenibilidad, es posible concluir
que el proyecto es factible.
Se desarrolla un modelo productivo de ratas y ratones que tuvo en cuenta los
factores ambientales del Santuario. Permitiendo el reciclaje y la adecuación de
instalaciones ya existentes.
Se incluyen elementos y procedimientos que favorecen el bienestar general de
los roedores del bioterio.
Teniendo en cuenta los altos costos de alimentación en que el Santuario
incurre anualmente, se logró comprobar la necesidad de creación de
alternativas de producción de alimento, que sirvan como soporte en la
economía de la institución.
Se determina que el área del Back 40 sería el lugar más adecuado para la
ubicación de la planta física del bioterio.
148
10. RECOMENDACIONES.
- Ejecutar el presente proyecto, el cual servirá de modelo para impulsar el
planteamiento y formulación de políticas de crecimiento que incluyan la
seguridad alimenticia de los animales del Santuario.
- En caso de ejecución del proyecto se hace indispensable evitar la
sobrepoblación de ratas y ratones, siempre llevando a cabo los protocolos de
eutanasia propuestos, sin importar la reducción de la población de animales
consumidora.
- En caso de finalización del bioterio, se recomienda realizar un sacrificio masivo
y congelamiento de los animales, evitando que su procreación deliberada
afecte el ecosistema silvestre.
149
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161
ANEXOS
ANEXO A.
Fragmento del informe de gastos totales de productos alimenticios según
reportes financieros del Wildlife Waystation del año 2013.
Fuente: Barnhill 2013.
162
ANEXO B.
Gastos totales de compra de roedores en el año 2013.
Fuente: Barnhill 2013.
163
ANEXO C.
Reportes de salud de cepas de ratones CD-1® IGS Mouse.
164
Reportes de salud de cepas de ratones CD-1® IGS Mouse.
Fuente: CHARLES RIVER. (en línea) <http://www.criver.com/HealthData/na/H02P100M.pdf>
(citado el 10 de enero del 2014).
165
ANEXO D.
Reportes de salud de cepas de ratas CD® IGS Rat.
166
Reportes de salud de cepas de ratas CD® IGS Rat.
Fuente: CHARLES RIVER. (en línea) <http://www.criver.com/HealthData/na/H02P100M.pdf>
(citado el 10 de enero del 2014).
167
ANEXO E.
Cómo diseñar un campo de infiltración para un tanque séptico.
Fuente: (en línea) <http://www.ehow.com/how_5232985_design-leach-field-septic-system.html>
(citado el 10 de enero del 2014).
168
ANEXO F.
Descripción y composición del alimento concentrado para roedores
LabDiet 5001.
Fuente: LabDiet. (en línea) <http://www.labdiet.com/Products/StandardDiets/index.html> (citado el
10 de enero del 2014).
169
ANEXO G.
Comparación de la fibra de Cáñamo con otros materiales ofrecidos en el
mercado.
Fuente: Hemp Technologies (en línea) < > (citado el 10 de enero del 2014).
170