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Informe técnico final PROSPATATA 1

Informe final de proyecto

Prospección, caracterización y conservación de variedades locales

de patata (Solanum tuberosum L.) en peligro de extinción

Centro: NEIKER

Participantes:

J.I. Ruiz de Galarreta ([email protected])

Enrique Ritter, Domingo Ríos

Leire Barandilla, Pedro Mansito, Jaime Gil

Entidades participantes:

Consejería de Agricultura de Baleares

Instituto do Campo (INORDE), Diputación de Orense

Cabildo Insular de Tenerife

Instituto Canario de Investigaciones Agrarias

Año 2006


Prospección, caracterización y conservación de variedades locales de patata (Solanum tuberosum L.) en peligro de extinción

1.- Introducción La patata (Solaum tuberosum L.) es un cultivo de gran importancia a nivel estatal, con una superficie en torno a las 300.000 ha. El Instituto Vasco de Investigación y Desarrollo Agrario-NEIKER –anteriormente- Estación de Mejora de la Patata (EMP) y Centro de Investigación y Mejora Agraria (CIMA)- lleva a cabo desde hace varios años un programa de mejora genética de este cultivo que ha culminado hasta la fecha en la inscripción en el Registro de un total de más de 20 variedades de patata (Pascualena y Ritter, 1994, Ruiz de Galarreta et al., 2000), entre las cuales, cultivares como Zorba y Nagore están siendo producidos, actualmente, en países de la Unión Europea como Alemania. En estos últimos años y con proyectos anteriores (RF99-001) se ha establecido en NEIKER un Banco de Germoplasma de más de 300 cultivares y en torno a 70 especies del G. Solanum, (www.neiker.net/Patdb) mantenido por micropropagación y optimizando nuevas técnicas de conservación a largo plazo como la criopreservación (Barandalla et al., 2003) Los primeros trabajos en la EMP, fundada en 1933, partieron de las variedades nacionales que se cultivaban en aquellos años, pero la mala sanidad de los tubérculos y la pérdida durante la guerra civil de parte de los trabajos de selección iniciados, tuvo como consecuencia la importación ya en 1934 de 41 variedades extranjeras, las cuales pasaron a ser de 213 en 1950 (Ruiz de Gordoa, 1981). De esta forma se inició una reducción ya temprana de las variedades locales existentes. En la década de los años 50 los trabajos dirigidos por D. Alberto Zubeldia dan como resultado las primeras obtenciones varietales (Zubeldia y López, 1964) labor que ha sido continuada hasta la fecha por varios investigadores de este Instituto con algunos periodos de inactividad. Actualmente se dispone en el Banco de Germoplasma de NEIKER variedades de patata entre las que se encuentran cultivares primitivos como la ‘Roja Riñón’ ya existente a finales del s. XVIII o Pedro Muñoz; así como las primeras obtenciones realizadas en la EMP: Victor, Turia, Duquesa, Buesa, Olalla etc.. y las posteriores de NEIKER como Zarina, Nagore, Fenix, Maika, Zorba, Edurne, Nerea etc.. junto con variedades secundarias empleadas como genitores en programas de cruzamientos. Sin embargo, existen en la actualidad en diversas comunidades autónomas variedades locales de interés y en peligro de extinción que sería necesario prospectar, caracterizar y conservar en nuestro Banco de referencia. Dentro de éstas se encuentran cultivares como Ibizenca y Negra Oro (Baleares), Cazona (patata de riñón), Ganade o Fina de Carballo en las zonas productoras de Galicia de A Terra Cha, Bergantiños y A Limia o la variedad Bufet en la provincia de Lérida. Asimismo, en Canarias existe una gran diversidad de variedades, especulando incluso con la posibilidad de que las primeras introducciones de patata llegadas al continente europeo, procediesen de estas islas y no de Sudamerica (Hawkes y Francisco-Ortega, 1993). Zubeldia et al. (1955) ya citan 7 cultivares pertenecientes a la subespecie andigena y de un cultivar tripolide de Solanum x chaucha. Estudios posteriores (Chico,


1986) confirman la presencia en Tenerife de nuevos cultivares y Rodriguez et al.(2000) describen ya 14 tipos cultivados. De igual forma en la isla de La Palma se han descrito 12 variedades de patata de color y en El Hierro se cita la Papa Negrita, sólo existente en esta isla. La caracterización morfológica en patata se ha realizado inicialmente siguiendo los descriptores del IBPGR (Mackay et al., 1985). En algunos casos los caracteres son difíciles de evaluar debido a interpretaciones subjetivas, a la influencia ambiental o al estado fisiológico de la planta.Por ello y en los últimos años se está empleando el análisis mediante marcadores moleculares de ADN, que complementa al morfológico, mostrando independencia con el ambiente y una elevada resolución. Dentro de éstos, los basados en la técnica PCR y concretamente los microsatélites o SSR (simple sequence repeats) (Bruford y Wayne, 1993) son marcadores codominantes, polimórficos y bastante conservados. Este tipo de marcadores son los que se pretenden aplicar en el presente proyecto a partir de trabajos previos desarrollados (Provan et al., 1996; Milbourne et al., 1998). Con todo ello, el presente proyecto ha persiguido la prospección y recolección a nivel nacional de los cultivares de patata en peligro de extinción, su caracterización morfológica y molecular incluyendo las variedades locales existentes en nuestra colección así como las obtenidas por NEIKER contribuyendo a evitar la pérdida de variabilidad y posibilitando su posterior uso en futuros programas de mejora genética de este cultivo. El objetivo general de este proyecto consiste en la caracterización morfológica y molecular de un conjunto de variedades locales de patata en peligro de extinción. Los objetivos específicos que se persiguen en el presente proyecto son los siguientes: - Prospección y recuperaciones de variedades locales de patata en peligro de extinción, tanto peninsulares como insulares (Baleares y Canarias). - Caracterización morfológica de las variedades recolectadas. - Caracterización molecular mediante microsatélites (SSRs). - Incorporación al Banco de Germoplasma de NEIKER y mantenimiento mediante micropropagación y criopreservación. - Elaboración de una base de datos con los resultados de la caracterización e inclusión en la página web, www.neiker.net/Patdb. 2.- Material vegetal El material vegetal ha estado compuesto por un conjunto de variedades locales de patata recolectadas en los tres años de duración del proyecto tal y como se describe a continuación: (Tabla 1 a Tabla 3) 45 variedades antiguas, recolectadas y nuevas obtenciones existentes en el Banco de Germoplasma de NEIKER 71 entradas prospectadas en la isla de Tenerife 19 entradas prospectadas en la isla de La Palma


Tabla 1.- Variedades locales de patata caracterizadas en 2004.

Variedades antiguas (Banco NEIKER)

Variedades Galicia

Variedades Baleares

Alava Fina de Carvallo Ibicenca Alda Cazona

Arene Ganade Asun Ayala Belda Buesa Diba

Duquesa Edurne Fenix

Gauna Gorbea Goya Idoia Igor Iker Inca Isla

Iturrieta Jesus Lora

Maika Mikel

Montico Nagore Nerea Olalla Onda

Palogan PedroMuñoz Roja Riñon

Turia Victor

Zadorra Zarina Zela Zepa Zorba Zunta


Tabla 2.- Variedades de patata recolectadas y caracterizadas en 2005.

Entradas Tenerife

Código

Tipo varietal

Lugar de recolecciónEntradas La Palma Tipo varietal

Lugar de recolección

c.v.1 BbO Bonita Blanca La Orotava PS-LP1 Marciala La Piedra, Garafia c.v.2 BnO Bonita Negra La Orotava PS-LP2 Marciala La Piedra, Garafia c.v.3 BcO Bonita Colorada La Orotava PS-LP3 Corralera Buena Vista, Breña Alta c.v.4 BpO Bonita Ojo de Perdiz La Orotava PS-LP4 Moruna La Piedra, Garafia c.v.5 CoO Colorada de baga La Orotava PS-LP5 Marciala La Piedra, Garafia c.v.7 AnT Azucena Negra Tacoronte PS-LP6 Corralera Buena Vista, Breña Alta c.v.8 AbT Azucena Blanca Tacoronte PS-LP7 Cecilia La Piedra, Garafia c.v.9 NbT Blanca Negra Tacoronte PS-LP8 Cecilia La Piedra, Garafia c.v.10 CoE Colorada de baga El Rosario PS-LP9 Conejera Buena Vista, Breña Alta c.v.11 T-E Terrenta El Rosario PS-LP10 Marciala Buena Vista, Breña Alta c.v.15 AnB Azucena Negra Buenavista PS-LP11 Malgara La Piedra, Garafia c.v.18 MIB Melonera Buenavista PS-LP12 Conejera Buena Vista, Breña Alta c.v.19 LbB Peluca Blanca Buenavista PS-LP13 Corralera Buena Vista, Breña Alta c.v.20 LnB Peluca Negra Buenavista PS-LP14 Negra La Piedra, Garafia c.v.21 BnR Bonita Negra Los Realejos PS-LP15 Corralera La Piedra, Garafia c.v.24 MbR Marrueca Blanca Los Realejos PS-LP16 Marciala La Piedra, Garafia c.v.25 LrM Peluca Rosada La Matanza PS-LP17 Marciala La Piedra, Garafia c.v.27 BnG Bonita Negra La Guancha PS-LP18 Colorada Buena Vista, Breña Alta c.v.30 BIG Bonita Llagada La Guancha PS-LP19 De año Buena Vista, Breña Alta c.v.31(pl1) BpG Bonita Ojo de Perdiz La Guancha c.v.31(pl2) BpG Bonita Ojo de Perdiz La Guancha c.v.31(pl3) BpG Bonita Ojo de Perdiz La Guancha c.v.32 MaG Marrueca La Guancha c.v.33 BoL Borralla La Laguna c.v.35 PcS Palmera Colorada Santa Cruz c.v.36 PIS Palmera Lagarteada Santa Cruz c.v.37 G-S Brasileña o Grasileña Santa Cruz


c.v.39 N-F Negra Fasnia c.v.41 VnF Venezolana Negra Fasnia c.v.44 BcR Bonita Colorada Los Realejos c.v.50 CoR De Baga Los Realejos c.v.51 AnG Azucena Negra La Guancha c.v.52 AbG Azucena Blanca La Guancha c.v.53 CoG Colorada de Baga La Guancha c.v.56 MoL Moras La Laguna c.v.57 PnF Palmera Negra Fasnia c.v.58 PcF Palmera Colorada Fasnia c.v.59 PbF Palmera Blanca Fasnia c.v.60 (b) LrO Peluca Rosada La Orotava c.v.60 (pl 4) LrO Peluca Rosada La Orotava c.v.60 LrO Peluca Rosada La Orotava c.v.61 T-T Terrenta Tacoronte c.v.62 LbO Peluca Blanca La Orotava c.v.62 (pl 5) LbO Peluca Blanca La Orotava c.v.62 (pl 6) LbO Peluca Blanca La Orotava c.v.63 N-T Negra Yema de Huevo Tacoronte c.v.64 NoT Negra Oro Tacoronte


Caracterización morfológica del material vegetal La caracterización morfológica de las variedades recolectadas se ha realizado siguiendo los descriptores del ‘EC Working Group for Potato’ e IBPGR (Mackay et al., 1985) con algunas modificaciones y la normativa del Instituto Nacional de Semillas y Plantas de Vivero (INSPV) y los descriptores de Huaman (2000). Los principales caracteres a evaluar han sido en planta, tubérculo, flor y brote : (Ver detalles en Tablas 7 a 14) La metodología a aplicar en la detección de enfermedades producidas por virus y bacterias se realizó mediante el test ELISA (Clark y Adams, 1977). 3.- Caracterización molecular del material vegetal mediante marcadores SSRs Extracción del DNA Para la extracción del DNA se ha utilizado el kit Dneasyplant de QUIAGEN. Tanto en material congelado a –80ºC como en material fresco se ha obtenido una cantidad aceptable del mismo, mejorando la calidad del DNA cuando la extracción se ha hecho a partir de material fresco. Una vez cuantificado el DNA se procedió con la caracterización mediante microsatélites SSRs. Análisis SSRs Para el análisis de microsatélites se han utilizado 19 marcadores SSR tal y como se refleja en la Tabla 4. El ADN fue extraído utilizando el kit DNAeasy Plant Mini kit de Quiagen (Valencia, USA). Los productos de amplificación se separaron en gel desnaturalizante al 6% (p/v). Los fragmentos se detectaron en un secuenciador LI-COR 4200-S1, siendo marcados los cebadores con fluorescencia IRD800 (LI-COR, Lincoln, Nebraska, USA) y leídos con sistema láser. Los análisis estadísticos se realizaron utilizando el programa NTSYS v 2.

Tabla 4.- Secuencias de los marcadores microsatélites utilizados.

Marcador SSR Secuencia STM 1049 F 5’-CTA CCA GTT TGT TGA TTG TGG TG-3’ STM 1049 R 5’-AGG GAC TTT AAT TTG TTG GAC G-3’

STM 0019 F 5’- AAT AGG TGT ACT GAC TCT CAA TG-3’

STM 0019 R 5’-TTG AAG TAA AAG TCC TAG TAT TGT-3’ STM 1017 F 5’-GAC ACG TTC ACC ATA AA-3’ STM 1017 R 5’-AGA AGA ATA GCA AAG CAA-3’ STM 0037 F 5’-AAT TTA ACT TAG AAG ATT AGT CTC-3’ STM 0037 R 5´-ATT TGG TTG GGT ATG ATA-3’ STM 1064 F 5’-GTT CTT TTG GTG GTT TTC CT-3’ STM 1064 R 5’-TTA TTT CTC TGT TGT TGC TG-3’


STM 1053 F 5’-TCT CCC CAT CTT AAT GTT TC-3’ STM 1053 R 5’-CAA CAC AGC AT(GC) CAG ATC ATC-3’ STM 3023 F 5’-AAG CTG TTA CTT GAT TGC TGC A-3’ STM 3023 R 5’-GTT CTG GCA TTT CCA TCT AGA GA-3’ STPoAc58 F 5’- TTG ATG AAA GGA ATG CAG CTT GTG-3’ STPoAc58 R 5’- ACG TTA AAG AAG TGA GAG TAC GAC-3’ STM 1104 F 5’- TGA TTC TCT TGC CTA CTG TAA TCG-3’ STM 1104 R 5’- CAA AGT GGT GTG AAG CTG TGA-3’ STM 3012 F 5’-CAA CTC AAA CCA GAA GGC AAA-3’ STM 3012 R 5’- GAG AAA TGG GCA CAA AAA ACA-3’ STM 1106 F 5’-TCC AGC TGA TTG GTT AGG TTG-3’ STM 1106 R 5’-ATG CGA ATC TAC TCG TCA TGG-3’ STM 0030 F 5’- AGA GAT CGA TGT AAA ACA CGT-3’ STM 0030 R 5’-GTG GCA TTT TGA TGG ATT-3’ STM 2022 F 5’-GCG TCA GCG ATT TCA GTA CTA-3’ STM 2022 R 5’-TTC AGT CAA CTC CTG TTG CG-3’ STM 1031 F 5’-TGT GTT TGT TTT TCT GTA T-3’ STM 1031 R 5’-AAT TCT ATC CTC ATC TCT A-3’ STM 1052 F 5’-CAA TTT CGT TTT TTC ATG TGA CAC-3’ STM 1052 R 5’-ATG GCG TAA TTT GAT TTA ATA-3’ STM 2013 F 5’-TTC GGA ATT ACC CTC TGC C-3’ STM 2013 R 5’-AAA AAA AGA ACG CGC ACG-3’ STGBSS F 5’-AAT CGG TGA TAA ATG TGA ATG C-3’ STGBSS R 5’- ATG CTT GCC ATG TGA TGT GT-3’ STM 2030 F 5’-TCT TCC CAA ATC TAG AAT ACA TGC-3’ STM 2030 R 5’-AAA GTT AGC ATG GAC AGC ATT TC-3’ STM 1058 F 5’-ACA ATT TAA TTC AAG AAG CTA GG-3’ STM 1058 R 5’-CCA AAT TTG TAT ACT TCA ATA TGA-3’

4.- Prospección y recuperación de variedades locales Durante 2004 y 2005 se realizó una prospección por parte del Cabildo de Tenerife y de La Palma (D. Rios y J. Gil) de las principales variedades de ‘papas’ de ambas islas. Así, se recolectaron un total de 44 entradas pertenecientes a Tenerife, las cuales aparecen con su código en la Tabla 2. La totalidad de estas entradas están caracterizadas morfológicamente por el Dr. Domingo Ríos en el trabajo titulado ‘Caracterización morfológica y ecofisiológica de un grupo de cultivares locales de papas de Tenerife’ que constituyó su Tesis Doctoral en la Universidad de Santiago de Compostela. En cuanto a la isla de La Palma, el Cabildo insular realizó la prospección de un conjunto de entradas de patatas cultivadas en esta isla. En la Tabla 1 aparecen las variedades prospectadas en la península además de los cultivares antiguos de los que se realizó la caracterización. En 2006 se incorporaron a la colección de variedades locales, un total de 24 nuevas entradas procedentes de Tenerife (Tabla 3) y la variedad Tramontana de Menorca. De esta forma se completó la prospección por parte del Cabildo de Tenerife y del Cabildo de La Palma de las principales variedades locales de patata de dichas islas. Así se dispuso de un total de 71 y 19 entradas pertenecientes a Tenerife y La Palma, respectivamente


5.- Caracterización morfológica Previa a la caracterización morfológica de las variedades, todas las entradas prospectadas en ambas islas se sometieron a la detección de las principales virosis, además de los análisis de detección de bacterias de cuarentena. Los resultados del test ELISA para la detección de virosis aparecen en las Tabla 5 y 6. Se han detectado las principales virosis comunes, encontrando cultivares infectados con más un virus. Es de destacar el potyvirus PVV en algunas de las entradas, el cual aparece en raras ocasiones en la península. Se realizó el tratamiento de termoterapia y posterior cultivo de meristemos para sanear todo el conjunto de las variedades y poder micropropagarlas y mantenerlas mediante cultivo in vitro. Se ha completado la caracterización morfológica durante esta campaña de las variedades antiguas y cultivares locales del Banco de Germoplasma de NEIKER. Un resumen con los datos de dicha caracterización se adjunta en las Tablas 7 a 14. Fruto de dicha caracterización es el Trabajo fin de Carrera a presentar en la Universidad de Zaragoza y que lleva por título ‘Caracterización morfológica de variedades locales de patata’ realizado por Maite IIarduya. Asimismo, a la redacción del presente informe se está elaborando el ‘Catálogo de variedades autóctonas de patata’ cuya publicación se prevé para el primer trimestre de 2007. Respecto al conjunto de entradas de Tenerife y La Palma, los datos morfológicos ya aparecieron publicados en la Tesis Doctoral de Domingo Rios, (ver referencia para su consulta) así como en uno de los artículos científicos que se adjunta. La información de las nuevas entradas caracterizadas este año en Tenerife constituyen un Trabajo Fin de Carrera que actualmente se está realizando en la Universidad de La Laguna y cuya fecha de finalización se prevé para Febrero de 2007. Toda la información actualizada se ha incorporado en la dirección de Internet www.neiker.net/patdb/db1.htm.

Tabla 5. Virus detectado mediante test ELISA en las variedades procedentes de Tenerife

Entrada Tipo varietal Virus detectado c.v.1 Bonita Blanca PVS,PVA,PVV c.v.2 Bonita Negra PVY,PVS,PVM,PVA c.v.3 Bonita Colorada PVS,PVM,PVA,PVV c.v.4 Bonita Ojo de Perdiz PVS,PVM,PVA,PVV c.v.5 Colorada de baga - c.v.7 Azucena Negra PVY,PVM c.v.8 Azucena Blanca PVY,PVS,PVM c.v.9 Blanca Negra PVY c.v.10 Colorada de baga - c.v.11 Terrenta PLRV,PVS c.v.15 Azucena Negra PVY,PVM c.v.18 Melonera PLRV,PVA,PVV c.v.19 Peluca Blanca PLRV,PVA c.v.20 Peluca Negra PVS c.v.21 Bonita Negra PVY,PVM c.v.24 Marrueca Blanca PVS,PVM,PVV c.v.25 Peluca Rosada PVY,PVS,PVM c.v.27 Bonita Negra - c.v.30 Bonita Llagada PVY,PVS,PVA


c.v.31(pl1) Bonita Ojo de Perdiz - c.v.31(pl2) Bonita Ojo de Perdiz PVS,PVM,PVV c.v.31(pl3) Bonita Ojo de Perdiz PVA,V,PVS c.v.32 Marrueca PVX,PVS,PVA,PVV c.v.33 Borralla PVA,PVV c.v.35 Palmera Colorada PVX,PVS,PVA c.v.36 Palmera Lagarteada PVX,PVS,PVA,PVV c.v.37 Brasileña o Grasileña PVX,PLRV,PVS,PVA c.v.39 Negra PVY c.v.41 Venezolana Negra PVY c.v.44 Bonita Colorada PVX, PLRV,PVS,PVA,PVV c.v.50 De Baga PVY,PLRV,PVS,PVA c.v.51 Azucena Negra PVY,PVS,PVM c.v.52 Azucena Blanca PVY,PVS c.v.53 Colorada de Baga PVS,PVA,PVV c.v.56 Moras PVX,PLRV,PVS c.v.57 Palmera Negra PLRV,PVX, PVS c.v.58 Palmera Colorada PVY,PVX,PLRV,PVS c.v.59 Palmera Blanca PVY, PLRV, PVX, PVS c.v.60 (b) Peluca Rosada PLRV,PVS,PVV c.v.60 (pl 4) Peluca Rosada - c.v.60 Peluca Rosada PVX,PLRV,PVS,PVA,PVV c.v.61 Terrenta PVY,PVS c.v.62 Peluca Blanca PVS,PVM c.v.62 (pl 5) Peluca Blanca PVY,E,PVS,PVM c.v.62 (pl 6) Peluca Blanca PVS,PVM c.v.63 Negra Yema de Huevo PVY c.v.64 Negra Oro PVA

PLRV: Virus del enrollado, PVV: Virus V PVY: Virus Y, PVS: Virus S, PVA: Virus A

PVX: Virus X, PVM: Virus M

*Todos los cultivares resultaron negativas a las bacteriosis Clavibacter michiganensis subsp. sepedonicus y Ralstonia solanacearum

Tabla 6. Análisis sanitario mediante test ELISA de las variedades procedentes de La Palma.

Entrada Tipo varietal Virus detectado PS-LP1 Marciala PLRV, PVV, PVS PS-LP2 Marciala PVS,PVA PS-LP3 Corralera - PS-LP4 Moruna PLRV PS-LP5 Marciala - PS-LP6 Corralera - PS-LP7 Cecilia PVX PS-LP8 Cecilia PVX PS-LP9 Conejera PLRV, PVS PS-LP10 Marciala PVX,PVA PS-LP11 Malgara - PS-LP12 Conejera PVY,PLRV,PVS,PVA,PVM PS-LP13 Corralera PVX


PS-LP14 Negra PVX PS-LP15 Corralera PVX PS-LP16 Marciala PVX,PVS,PVA PS-LP17 Marciala PVA PS-LP18 Colorada PVA, PVV, PVS PS-LP19 De año -

PLRV: Virus del enrollado, PVV: Virus V PVY: Virus Y, PVS: Virus S, PVA: Virus A

PVX: Virus X, PVM: Virus M

*Todos los cultivares resultaron negativas a las bacteriosis Clavibacter michiganensis subsp. sepedonicus y Ralstonia solanacearum


Tabla 7. Caracteres de tubérculo en variedades locales del Banco de Germoplasma de NEIKER.

VARIEDAD Forma Color piel

Color brotes

Color secundario

brote

Distribución del color

secundario

Color carne

Profundidad ojos

Textura piel

Nº ojos por

tubérculo ALAVA 4 2 5 0 0 4 1 1 5 ALDA 1 1 5 0 0 1 3 1 1 ARENE 7 4 5 1 3 3 1 1 5 ASUN 7 2 5 1 3 3 2 1 5 AYALA 3 2 5 0 0 2 2 1 5 BELDA 4 2 5 0 0 4 5 1 1 BUESA 1 3 5 1 3 3 3 2 5 CAZONA 2 1 5 0 0 2 4 1 5 DIBA 4 2 5 0 0 4 3 5 1 DUQUESA 4 2 5 0 0 3 2 1 5 EDURNE 4 2 5 0 0 2 5 3 3 FÉNIX 1 2 5 1 3 2 2 2 5 FINA DE CARBALLO

6 1 5 1 3 1 5 1 5

GANADE 5 2 5 0 0 4 5 1 5 GAUNA 4 2 5 0 0 3 4 2 5 GORBEA 2 2 5 1 1 2 2 1 1 GOYA 6 4 5 1 2 4 2 2 5 IBICENCA 2 5 5 0 0 5 7 1 3 IDOIA 3 2 5 0 0 1 2 3 3 IGOR 6 2 5 0 5 1 2 1 5 IKER 2 2 5 1 3 3 2 1 5 INCA 5 2 5 0 0 3 2 1 1 IRATI 5 2 7 1 5 2 1 1 5


ISLA 2 2 5 0 0 3 1 1 1 ITURRIETA 6 2 5 1 1 3 1 2 5 JESÚS 4 9 5 0 0 7 5 1 5 LEIRE 5 2 7 1 5 2 1 3 3 LORA 6 2 5 1 3 3 2 1 5 MAYCA 6 2 5 1 3 2 2 1 1 MIKEL 2 5 5 0 0 5 5 5 3 MONTICO 3 2 5 0 0 4 5 5 3 NAGORE 5 5 5 1 3 3 3 2 5 NEREA 4 7 5 1 3 3 2 1 5 OLALLA 6 2 5 0 0 3 2 1 1 ONDA 2 2 5 0 0 2 5 3 5 PALOGAN 2 2 5 0 0 5 3 1 3 PEDRO MUÑOZ

5 2 5 0 0 3 3 2 1

ROJA RIÑON 5 7 5 1 1 3 3 1 5 TRAMONTANA 2 8 9 9 5 5 5 3 7 TURIA 2 5 5 0 0 2 2 1 5 VICTOR 2 5 5 1 1 2 2 2 5 ZADORRA 2 2 5 1 1 3 2 1 5 ZARINA 2 4 5 0 0 3 5 3 1 ZELA 6 2 5 1 2 3 3 1 5 ZEPA 1 2 5 1 2 2 4 2 5 ZORBA 5 2 5 1 3 3 1 1 1 ZUNTA 4 2 5 1 3 3 1 1 1


Tabla 8. Relación de caracteres evaluados en tubérculo

Carácter Estado Codificación Color predominante de la piel del tubérculo Blanco crema 1 Amarillo 2 Naranja 3 Marrón 4 Rosado 5 Rojo 6 Morado rojizo 7 Morado 8 Morado oscuro 9 Textura de la piel del tubérculo Suave 1 Intermedia 3 Áspera 5 Reticulada 7 Muy reticulada 9 Color primario de la carne del tubérculo Blanco 1 Crema 2 Amarillo claro 3 Amarillo 4 Amarillo intenso 5 Rojo 6 Morado 7 Violeta 8


Forma del tubérculo Comprimido 1 Redondo 2 Ovoide 3 Obovado 4 Elíptico 5 Oblongo 6 Largo – oblongo 7 Alargado 8 Profundidad de los ojos Sobresaliente 1 Superficial (<2 mm) 3 Ligeramente profundo (2 – 4 mm) 5 Profundo (5-6 mm) 7 Muy profundo(>6 mm) 9 Nº de ojos Muy pocos (menos de 5) 1 Pocos (entre 5 y 7) 3 Intermedios (8 y 10) 5 Muchos (>10) 7

Carácter Estado Codificación Color predominante del brote del tubérculo Blanco (incluyendo las áreas

verdeadas) 1 Rosado 3 Rojo 5 Morado 7 Violeta 9


Color secundario del brote Ausente 0 Blanco (incluyendo las áreas

verdeadas) 1 Rosado 3 Rojo 5 Morado 7

Violeta 9 Distribución del color secundario del brote Ausente 0 En la base 1 En el ápice 2 Pocas manchas a lo largo 3 Muchas manchas a lo largo 4

En yemas 5


Tabla 9. Caracteres de planta en variedades locales del Banco de Germoplasma de NEIKER.

VARIEDAD Habito planta

Nº tallos principaes

Color del tallo

Altura de planta en floración

Grado de floración

Madurez follaje

ALAVA 1 2 2 3 5 3 ALDA 3 5 1 3 3 5 ARENE 2 2 2 3 3 4 ASUN 6 2 1 3 5 6 AYALA 5 2 1 3 5 5 BELDA 2 5 1 3 3 5 BUESA 6 5 1 3 5 5 CAZONA 5 5 1 3 3 6 DIBA 3 2 1 3 3 6 DUQUESA 1 5 1 5 5 7 EDURNE 2 3 1 3 3 5 FÉNIX 4 5 1 3 5 5 FINA DE CARBALLO 2 5 2 5 5 5 GANADE 5 2 1 3 3 6 GAUNA 2 2 1 3 3 7 GORBEA 1 1 1 5 5 7 GOYA 2 5 2 3 3 3 IBICENCA 2 7 7 3 3 5 IDOIA 2 2 1 3 3 7 IGOR 3 5 1 3 3 7 IKER 5 5 2 3 3 7 INCA 6 5 2 3 7 7 IRATI 2 5 1 3 3 7 ISLA 6 5 2 3 7 6 ITURRIETA 1 2 1 3 3 3 JESÚS 5 2 7 3 5 6 LEIRE 2 5 1 3 3 7 LORA 2 2 1 3 3 7 MAYCA 6 1 1 3 3 7 MIKEL 2 7 7 3 7 6 MONTICO 4 5 1 3 3 5 NAGORE 5 5 7 3 3 7 NEREA 4 2 7 3 5 7 OLALLA 3 5 1 3 3 5 ONDA 3 2 1 3 3 5 PALOGAN 1 5 1 3 5 4 PEDRO MUÑOZ 6 5 1 3 1 7 ROJA RIÑON 5 5 6 3 5 4

TRAMONTANA 1 3 1 3 3 6 TURIA 3 2 1 3 5 4 VICTOR 6 2 7 3 3 3 ZADORRA 3 5 1 3 3 6 ZARINA 2 7 1 3 3 6 ZELA 3 5 1 3 1 7 ZEPA 1 5 1 3 5 6 ZORBA 5 5 1 3 3 8 ZUNTA 4 5 1 3 3 7


Tabla 10. Relación de caracteres evaluados en planta

Carácter Estado Codificación Hábito de la planta Erecto 1 Semi - erecto 2 Decumbente 3 Postrado 4 Semi - arrosetado 5 Rosetado 6 Nº de tallos principales Uno 1 Pocos (1-3) 2 Medios (4-8) 5 Muchos 7 Color tallo Verde 1 Verde con pocas manchas 2 Verde con muchas manchas 3 Pigmentado con abundante verde 4 Pigmentado con poco verde 5 Rojizo 6 Morado 7 Altura de la planta en floración Corto (< 75 cm) 3 Mediano (75-100 cm) 5 Alto (>100 cm) 7 Grado de floración Ausente 0 Botones florales que se caen 1 Escaso 3 Moderado 5


Profuso 7 Madurez de follaje Muy precoz (<90 días desde la

siembra) 9 Precoz (90 a 119 días) 7 Intermedia (120 a 149 días) 5 Tardía (150 a 180 días) 3 Muy tardía (>180 días desde la Siembra) 1


Tabla 11. Caracteres de hoja en variedades locales del Banco de Germoplasma de NEIKER.

VARIEDAD Forma del foliolo terminal

Forma de la base del foliolo terminal

Forma del primer foliolo lateral

Ángulo de divergencia entre hoja y

tallo

ALAVA 1 9 1 6 ALDA 1 1 1 7 ARENE 1 1 1 7 ASUN 1 5 1 5 AYALA 1 5 1 6 BELDA 1 2 1 8 BUESA 1 2 1 6 CAZONA 1 5 1 6 DIBA 1 3 1 7 DUQUESA 5 5 5 5 EDURNE 5 3 4 4 FÉNIX 3 7 5 5 FINA DE CARBALLO 3 1 3 4 GANADE 1 3 1 4 GAUNA 1 5 1 6 GORBEA 1 3 1 8 GOYA 3 5 1 6 IBICENCA 3 1 1 4 IDOIA 1 5 1 6 IGOR 1 2 1 7 IKER 1 7 1 5 INCA 1 5 1 4 IRATI 1 5 1 6 ISLA 1 9 1 5 ITURRIETA 3 1 3 4 JESÚS 4 9 4 8 LEIRE 1 5 1 6 LORA 3 7 1 8 MAYCA 1 3 1 7 MIKEL 4 2 1 8 MONTICO 4 3 1 9 NAGORE 5 2 1 8 NEREA 5 5 5 7 OLALLA 1 7 1 6 ONDA 1 1 1 7 PALOGAN 1 9 1 8 PEDRO MUÑOZ 3 7 5 6 ROJA RIÑON 1 7 1 6 TRAMONTANA 5 7 5 8

TURIA 3 1 3 8 VICTOR 3 9 3 7 ZADORRA 3 1 3 6 ZARINA 5 3 4 6 ZELA 3 9 1 7 ZEPA 1 7 1 8 ZORBA 1 9 1 8 ZUNTA 1 9 1 6


Tabla 12. Relación de caracteres evaluados en hoja.

Carácter Estado Codificación Forma del foliolo terminal Anchamente elíptico 1 (donde tll es el largo, tw es el ancho y tla la (tla/tll cerca de 0,5 y tll/tw cerca de 1,5) longitud desde la parte más ancha hasta el ápice)Elíptico 2

(tla/tll cerca de 0,5 y tll/tw>=2) Lanceolado 3 (tla/tll cerca de 0,8 y tll/tw>=2) Ovado 4 (tla/tll cerca de 0,7 y tll/tw>=2) Oblanceolado 5 (tla/tll cerca de 0,2 y tll/tw>=2) Obovado 6 (tla/tll cerca de 0,3 y tll/tw>=2) Forma de la base del foliolo terminal Cuneado 1 Cuneado y decurrente 2 Truncado 3 Redondeado 5 Cordado 7 Desigual 9 Forma del primer foliolo lateral Anchamente elíptico 1 (donde lll es el largo, lw es el ancho y (lla/lll cerca de 0,5 y lll/tw cerca de 1,5) lla la longitud desde la parte más ancha Elíptico 2 hasta el ápice) (lla/lll cerca de 0,5y lll/tw>=2) Lanceolado 3 (lla/lll cerca de 0,8 y lll/tw>=2) Ovado 4


(lla/lll cerca de 0,7 y lll/tw>=2) Oblanceolado 5 (lla/lll cerca de 0,2 y lll/tw>=2) Obovado 6 (lla/lll cerca de 0,3 y lll/tw>=2) Ángulo de divergencia entre la hoja 10 1 y el tallo (grados) 20 2 30 3 40 4 50 5 60 6 70 7 80 8 90 9

Tabla 13. Caracteres de flor en variedades locales del Banco de Germoplasma de NEIKER.

VARIEDAD Color

pedicelo Color cáliz

Forma corola

Color de

flor

Color secundario

flor

Distribución color

secundario flor

Tamaño flor

Pigmentación anteras

Excerción estigma

ALAVA 1 2 3 1 8 4 1 7 1 ALDA 1 2 3 1 0 0 2 7 1 ARENE 1 3 1 1 8 6 1 7 0 ASUN 1 1 5 1 8 4 3 7 1 AYALA 1 1 3 1 8 4 2 7 1 BELDA 1 2 3 1 0 0 2 7 1


BUESA 1 3 5 6 1 6 1 7 1 CAZONA 1 1 5 1 0 0 2 7 1 DIBA 1 2 1 1 0 0 1 7 3 DUQUESA 3 1 5 6 1 4 3 7 1 EDURNE 2 2 3 1 6 6 1 7 1 FÉNIX 1 2 3 1 8 4 1 7 3 FINA DE CARBALLO

1 1 1 1 8 4 2 7 1

GANADE 1 1 1 6 1 6 2 1 3 GAUNA 1 2 3 1 0 0 2 7 1 GORBEA 1 1 3 1 8 4 4 7 0 GOYA 4 2 5 1 8 4 3 7 1 IBICENCA 2 2 3 6 1 3 2 7 1 IDOIA 1 1 3 7 1 3 2 7 1 IGOR 1 1 3 6 1 6 2 7 0 IKER 1 1 3 1 8 4 1 7 1 INCA 1 1 5 1 0 0 2 7 1 IRATI 1 1 3 1 0 0 2 7 1 ISLA 1 1 1 1 0 0 2 7 1 ITURRIETA 1 1 3 1 8 4 3 7 3 JESÚS 1 1 7 1 8 6 4 7 3 LEIRE 1 1 3 1 0 0 2 7 1 LORA 7 5 3 7 1 3 1 7 3 MAYCA 1 1 1 1 8 4 2 7 3 MIKEL 1 3 5 6 8 5 2 7 1 MONTICO 1 2 3 6 8 5 2 7 1 NAGORE 1 1 5 1 8 4 1 7 0 NEREA 1 2 5 7 1 3 1 7 3 OLALLA 1 2 3 1 0 0 2 7 1 ONDA 1 2 3 1 0 0 2 7 1


PALOGAN 1 2 3 1 0 0 2 7 1 PEDRO MUÑOZ

1 1 1 6 1 6 1 5 3

ROJA RIÑON 1 1 1 6 1 6 2 7 1 TRAMONTANA 1 1 3 1 0 0 2 7 1 TURIA 1 2 5 6 1 3 1 7 0 VICTOR 1 1 3 6 1 6 2 7 1 ZADORRA 1 1 3 1 8 3 2 7 3 ZARINA 1 1 3 6 1 6 1 7 3 ZELA 1 1 3 1 8 3 1 7 1 ZEPA 1 1 5 1 8 4 4 7 3 ZORBA 1 1 5 1 8 4 1 7 3 ZUNTA 1 2 5 6 1 6 1 7 3

Tabla 14. Relación de caracteres evaluados en flor.

Carácter Estado Codificación Color del pedicelo Verde 1 Verde con articulación pigmentada 2 Ligeramente pigmentado a lo largo 3 Ligeramente pigmentado a lo largo y en articulación 4 Pigmentado solamente encima de la Articulación 5 Pigmentado solamente debajo de la articulación 6 Predominantemente pigmentado con articulación verde 7


Totalmente pigmentado 8 Color del cáliz Verde 1 Predominantemente verde 2 Verde con muchas manchas pigmentadas 3 Pigmentado con muchas manchas Verdes 4 Predominantemente pigmentado 5 Rojizo 6 Morado 7 Forma de la corola Estrellada (Cl/Cw>=1,2) 1 (Cl : longitud del lóbulo del pétalo y Semi – estrellada Cw: su anchura) (Cw entre 0,9 y 1,1) 3 Pentagonal (Cl/Cw entre 0,5 y 0,8) 5 Rotacea (Cl/Cw entre 0,3 y 0,4) 7 Muy rotacea (Cl/Cw<=0,2) 9 Color predominante de la flor Blanco 1 Rojo rosado 2 Rojo morado 3 Celeste 4 Azul morado 5 Lila 6 Morado 7 Violeta 8 Color secundario de la flor Ausente 0 Blanco 1 Rojo rosado 2


Rojo morado 3 Celeste 4 Azul morado 5 Lila 6 Morado 7 Amarillo 8

Tabla 14. (Continuación)

Carácter Estado Codificación Distribución del color secundario Ausente 0 Acumen blanco en el haz 1 Acumen blanco en el envés 2 Acumen blanco en ambas caras 3 En la estrella 4 Bandas en el haz 5 Bandas en ambas caras 6 Manchas salpicadas 7 En muy pocos puntos 8 Tamaño de la flor (diámetro de la flor No florece 0 recientemente abierta en mm) Pequeña 1 Intermedio 2 Grande 3 Muy grande 4 Pigmentación de las anteras Sin antocianinas 0 Rayas pigmentadas 1 Mancha pigmentada en el ápice de las anteras 2


Rayas pigmentadas 3 Rayas y manchas pigmentadas 5 Anteras predominantemente o Totalmente pigmentado 7 Exerción del estigma Inserto (el estigma esta por debajo del ápice de las anteras) 0 Ligeramente exerto (<2 mm sobre el ápice de las anteras) 1 Moderadamente exerto (2 – 5 mm) 3 Fuertemente exerto (>5 mm) 5


6.- Caracterización molecular Durante el primer año de proyecto se realizó la caracterización molecular mediante microsatélites de un total de 45 variedades peninsulares (Tabla 1) , sin incluir las entradas de Tenerife, por no disponer aún de ellas. Se utilizaron 19 marcadores SSR tal y como se refleja en la Tabla 4. Las Figuras 1 y 2 muestran los polimorfismos encontrados con los marcadores STM0037 y STM1049. Asimismo, la Figura 3 muestra el dendrograma realizado a partir de los 19 SSR utilizados. Se observa como aparecen variedades como Ibizenka, procedente de Baleares o Gauna que se separan claramente del resto, constituyendo dos grupos diferenciados. Por otra parte se pueden apreciar un tercer grupo formado por las variedades Roja Riñón, Palogán y Victor, todas ellas muy antiguas. El siguiente compuesto por dos variedades Jesús e Igor. Un quinto grupo estaría formado por 7 variedades, entre las cuales Zorba y Asun tienen gran similitud. El sexto grupo estaría compuesto por otras 7 variedades de las cuales hay cultivares muy antiguos como Buesa, Alda o Iturrieta. El séptimo grupo lo formarían Zepa, Arene, Inca e Isla, siendo estas dos últimas variedades de gran similitud. El grupo 8 es más heterogéneo, incluyendo una variedad de Galicia, la Ganade, alguna antigua como la Onda o la Belda y variedades más recientes como Zarina o Zunta. Las variedades Mikel y Belda, mostraron una alto grado de similitud. El grupo 9 está constituido por una única variedad, Nerea. La décima agrupación engloba a tres variedades muy antiguas como Pedro Muñoz, Lora y Montico, junto con otras tres más recientes. La variedad Turia forma el grupo 11. El último grupo, el 12, comprende a dos variedades gallegas, Fina de Carvalloo y Cazona junto con Olalla, variedad muy antigua y que coincide totalmente en el dendrograma con la variedad Cazona.

Figura 1. Polimorfismos encontrados con el marcador microsatélite STM0037


Figura 2. Polimorfismos encontrados con el marcador microsatélite STM1049

Durante 2005 se realizó la caracterización molecular mediante microsatélites de las variedades insulares procedentes de Tenerife y La Palma que se muestran en la Tabla 2. Las Figuras 4 y 5 muestran los polimorfismos encontrados con los marcadores STM0037 y STM3023 en variedades de Tenerife y La Palma, respectivamente. La Figura 6 muestra el dendrograma realizado a partir de los 19 SSR utilizados y un total de 41 entradas que se clasificaron una vez eliminadas duplicidades. Se observa que las variedades Moras de la Laguna (Mol) y la Brasileña o Grasileña (G-S) se separan claramente del resto y constituyen el primer grupo. El segundo estaría formado por un subgrupo (II.I) con los cultivares Colorada de Baga (CoG, CoO y CoE) junto con la Bonita Colorada (BcR) que aparecen como el mismo cultivar, recolectados en diferentes localidades, además de la Bonita Ojo Perdiz (BpG) y el cv. De Baga (CoR), todas ellas pertenecientes a la sbsp. andigena. El subgrupo II.II lo formaría el cv. Venezolana Negra (VnF) y el II.III los cvs. Melonera (MIB) y Borralla (BoL), las cuales son aparentemente similares. El tercer grupo lo constituyen los cvs. denominados Negra Yema de Huevo (N-T), Blanca Negra (Nb) y Negra (N-F), los tres similares, junto con la Negra Oro (NoT) que se separa algo más, todas ellas icluidas en la especie S. chaucha. El grupo cuatro engloba a un gran número de cultivares y es el más heterogéneo, en el que se pueden apreciar tres subgrupos. El IV.I formado por dos cvs. iguales de diferentes procedencias, Terrentas (T-E y T-T), el subgrupo IV.II que engloba a los cvs. Azucenas (AbT, AnB, AnG, AbG, AnT) siendo todos ellos similares de diferentes procedencias. El trecer subgrupo IV.III y más numeroso lo formarían los cvs. Bonitas siendo similares las entradas BnG, BnO, MbR, BnR, BpO, BbO, BcO, separándose un poco el cv. Bonita Llagada (BiG) y Marrueca (MaG). Todas tienen en común pertenecer ala sbsp. andigena. El quinto grupo lo constituyen el cv. denominado Palmera Lagarteada (PIS),


y dos Palmeras Coloradas (PcS, PcF), los tres similares, además de el cv. Palmera Blanca (Pb) y Palmera Negra (PnF) algo más separadas del resto. Los cvs. Peluca, LbO, LbB, LnB y LrM, similares, junto con el cv. LrO que se separa del resto formarían el sexto y último grupo. Los cvs. de estos dos últimos grupos pertenecen a la subsp. tuberosum.

Coeficiente de similitud0.65 0.73 0.82 0.91 1.00

Iturrieta

Fina Cazona Olalla Turia Pedro Lora Nagore Zela Montico Nerea Ganade Mikel Belda Onda Diba Duquesa Zunta Ayala Zadorra Zarina Zepa Arene Inca Isla Buesa Edurne Alava Fenix Iturrieta Iker Alda Zorba Asun Idoia Goya Maika Kennebec Gorbea Jesús Igor Victor Roja Palogan Ibizenka Gauna

Figura 3. Dendrograma de 45 variedades locales de patata del Banco de Germoplasma de NEIKER a

partir de 19 marcadores SSR

El dendrograma de la Figura 7muestra la agrupación obtenida con las entradas de patatas de La Palma. Se observan seis grupos diferenciados, apareciendo el grupo I y II con un cultivar cada uno, PS-LP14, denominada Negra y PS-LP7 dentro de las conocidas como Cecilias, respectivamente. El grupo III está compuesto de dos subgrupos, englobando el III.I, cuatro entradas (PS-LP19 o ‘De año’, PS-LP13 y PS-LP15 ambas Corraleras y PS-LP9 o Conejera). El grupo III.II incluye dos cvs., PS-LP6 y PS-LP3, ambas muy similares y pertenecientes a las denominadas Corraleras. El grupo IV se compone de tres cultivares, siendo el PS-LP12, del tipo Conejeras, el que se separa más claramente de los otros dos, es decir, PS-LP11 o Malgara y PS-LP8 del tipo Cecilias. Dentro del grupo V, se pueden considerar dos subgrupos, el V.I formado por una única entrada PS-LP4 o Moruna, y el V.II


constituido por cinco cultivares, entre los cuales PS-LP2, PS-LP5 y PS-LP16 son muy similares, junto con los cvs. PS-LP10 y PS-LP17, todos ellos dentro de las denominadas Marcialas. El último grupo VI, está formado por dos entradas , PS-LP1 dentro de las Marcialas y PS-LP18 o colorada, ambas distanciadas entre sí.

Figura 4. Polimorfismos encontrados con el marcador microsatélite STM0037 en variedades de Tenerife

Figura 5. Polimorfismos encontrados con el marcador microsatélite STM1049 en variedades de La Palma



PS-LP10

PS-LP1

PS-LP18

PS-LP2

PS-LP5

PS-LP16

PS-LP17

PS-LP10

PS-LP4

PS-LP8

PS-LP11

PS-LP12

PS-LP3

PS-LP6

PS-LP9

PS-LP15

PS-LP13

PS-LP19

PS-LP7

PS-LP14

Figura 7. Dendrograma de las variedades locales de patata de La Palma a partir de 19 marcadores SSR


Se han agrupado todas las entradas procedentes de Tenerife y La Palma en una única clasificación, para ver las posibles concordancias entre unos cultivares y otros de diferentes procedencias. La Figura 8 muestra el dendrograma obtenido en el que se puede destacar los siguientes aspectos. Aparecen un total de once grupos con las siguientes características: el grupo I comprende dos entradas y coicide con el grupo I de la clasificación de los cvs. de Tenerife. Los grupos II y III incluyen una entrada cada uno y coiciden con los grupos respectivos de la clasificación de papas de La Palma, separándose claramente del resto de entradas. El grupo IV es el grupo II en la clasificación de Tenerife. El grupo V se separa del resto y lo comprenden las entradas de La Palma PS-LP8 y PS-LP11. El grupo VI lo integran el grupo III de la clasificación de Tenerife, es decir las papas Negras, junto con la entrada PS-LP12 o Negra denominada en La Palma. El grupo VII se separa del resto y lo componen dos entradas, (grupo III.II de La Palma), PS-PL3 y PSPL6, ambas Corraleras. Aparece el grupo VIII como uno de los más numerosos, el cual incluye las Azucenas, Bonitas y Terrentas (grupo IV de Tenerife de la sbsp. andigena) y que se puede subdividir en 4 subgrupos: el VIII.I comprende dos cvs. de La Palma (PS-LP9 del grupo de las Conejeras y PS-LP15 de las Corraleras), el subgrupo VIII.II que incluye por un lado a las Terrentas de Tenerife, junto con el cv. de La Palma, PS-LP19 o De año. El subgrupo VIII.III lo compone la entrada PS-LP13 de las Corraleras y el VIII.IV el grupo de las Bonitas, que coicide con el IV.III de las clasificación de Tenerife. El grupo IX incluye un único cultivar de La Palma, el PS-LP4 o Moruna. El siguiente grupo X, engloba al grupo V de Tenerife pertenecientes al tipo Palmeras, al cual se unen los cinco cultivares de denominación Marcialas que conforman el grupo V.II de la clasificación de La Palma. El último grupo, XI incluye al cv. LrO de Tenerife (Peluca Rosada) al que se le une una entrada de La Palma PS-LP18 o Colorada y otra un poco más separada, PS-LP1, perteneciente al grupo de las Marcialas. El resto de cvs. lo conforman los incluidos en el grupo VI de la clasificación de Tenerife, es decir, el resto de las Pelucas. En 2006 se realizó la caracterización molecular de 24 nuevas entradas procedentes de Tenerife (Tabla 3) integrándolas en el dendrograma conjunto de las entradas Canarias con un total de 90 variedades. De esta forma el grupo I ahora comprende un conjunto de entradas de Tenerife como son CV83 o Morada, CV116, CV104, CV106 (las tres Rafaelas), CV81 o Liria, CV79 (de María) y CV85 o Matanzera, éste último separado más claramente del resto de variedades. El siguiente grupo II estaría formado por el CV112 (Del riñón) de Tenerife al igual que el grupo III compuesto de la entrada CV95 o Borrega, caracterizada este año. El siguiente grupo IV engloba 3 entradas de Tenerife caracterizadas en 2006, CV113 o Del Clavo , CV84 (Colombiana) y CV115 o De María. El grupo V incluye un solo cultivar CV109 o Negra Mora. El grupo VI engloba dos cultivares de la Isla de la Palma, PS-LP14 (Morada) y PS-PL7 (Cecilia), aunque ambos se unen a un coeficiente de similitud inferior a 0,80. Las entradas PS-LP11 (Malgara) y PS-LP8 (Siciliana) se encuadran en el grupo VII junto con la variedad Kennebec, utilizada como control de S. tuberosum subsp. tuberosum. El grupo IX corresponde a las variedades de Tenerife Moras de la Laguna (Mol) y la Brasileña o Grasileña (G-S). Tres nuevos cultivares caracterizados este año CV117 (De Maria, Tacoronte), CV114 o Siete Cueros y CV94 (Del Riñón, Realejos) constituyen el


grupo X. Un gran grupo, el XI engloba a un número amplio de cultivares y es el más heterogéneo, en el que se pueden apreciar tres subgrupos. El XI.I formado por dos cvs. de La Palma, PS-PL3 y PSPL6, ambas Corraleras (Colorada y Tijarafera, respectivamente). El XI.II compuesto por la entrada PS-LP9 o Conejera Blanca. El subgrupo XI.III, amplio y que encuadra una entrada PS-LP-13 (Corralera Legítima) que se separa del resto, junto con un grupo de las Terrentas de Tenerife, junto con el cv. de La Palma, PS-LP19 o De año. También aparecen las Azucenas (AbT, AnB, AnG, AbG, AnT), todas ellas similares y la Corralera Blanca de La Palma (PS-PL15). Para cerrar el grupo aparecen los cvs. Bonitas de Tenerife, siendo similares las entradas BpO, BiG, BnO, BnG, MbR, BnR, BbO y BcO junto con la Marrueca (MaG). Todas tienen en común pertenecer a la subsp. andigena.



PS-LP10

LbB LnB LbO LrM LrO PS-LP18 PS-LP1 PIS PcS PcF PS-LP17 PbF PnF PS-LP2 PS-LP5 PS-LP16 PS-LP10 PS-LP4 BcO BbO BpO BnR MbR BnG BnO BIG MaG PS-LP13 AnT AnG AnB AbG AbT T-E T-T PS-LP19 PS-LP9 PS-LP15 PS-LP3 PS-LP6 N-F NbT N-T PS-LP12 NoT PS-LP8 PS-LP11 MIB BoL VnF CoE BcR CoO CoG BpG CoR PS-LP7 PS-LP14 MoL G-S

Figura 8. Dendrograma de las variedades locales de patata de Tenerife y La Palma a partir de 19 marcadores SSR.


El siguiente grupo XII está formado por 3 subgrupos. El primero XII.I lo componen, por una parte los CV96 o Londrera y el CV69 (Colorada Blanca) caracterizados este año. Por otra parte se incluye un conjunto de cultivares Coloradas de Baga de Tenerife (CoG, CoO y CoE) junto con la Bonita Colorada (BcR), Bonita Ojo Perdiz (BpG) y los cvs. CV73 (Venezolana Blanca) y CV86 o de 2006 que aparecen todas como el mismo cultivar. También se incluye el cv. De Baga (CoR). Todas ellas pertenecientes a la subsp. andigena. El segundo subgrupo XII.II lo formaría el cv. Venezolana Negra (VnF) y el XII.III los cvs. Melonera (MIB) y Borralla (BoL), las cuales son aparentemente similares. 7.- Aplicaciones al sector y posible difusión de resultados

Con el presente proyecto se pretende llevar a cabo la recuperación de todas aquellas variedades de patata que se encuentran en peligro de extinción. La prospección se ha centrado principalmente en las Islas Canarias, por ser un centro de diversidad fundamental, no sólo para esta cultivo sino, como bien es sabido para un gran número de especies.

La recuperación y conservación del material autóctono de patata se considera

de gran importancia, ya que tanto desde el punto de vista productivo como desde el de resistencia o tolerancia a estreses bióticos o abióticos se trata de un patrimonio genético que es necesario mantener.

Por otra parte el uso de los microsatélites en la caracterización viene avalada por trabajos previos realizados por varios de los investigadores de centros de referencia para este cultivo como el CIP (Centro Internacional de la Papa) . La existencia de una amplia base de datos de microsatélites, hace posible la comparación de los resultados que se vayan obteniendo, con vistas a detectar sinonimias y posibles duplicaciones en las colecciones existentes.

Respecto a la difusión de resultados se realizaron las siguientes acciones: • Transferencia de las variedades canarias al Banco de Germoplasma de NEIKER, y

de esta forma mantener una amplia colección de referencia de variedades autóctonas de este cultivo.

• Publicaciones en revistas y contribuciones a congresos • La creación de una página web con los resultados del proyecto que asegura una

amplia difusión de los mismos.

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