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UNIVERSIDAD NACIONAL AGRARIA DE LA SELVA
FACULTAD DE RECURSOS NATURALES RENOVABLES
ESCUELA PROFESIONAL DE INGENIERÍA AMBIENTAL
INFORME FINAL DE PRACTICA PRE PROFESIONAL
ESTIMACIÓN DE LA CALIDAD DEL AGUA MEDIANTE VARIABLES
FISICOQUIMICAS Y MACROINVERTEBRADOS EN LAS QUEBRADAS
NARANJAL y CÓRDOVA – TINGO MARIA.
Ejecutor : MINCHOLA SOTO, Greysy Katherine
Asesor : Blgo. M. Sc. GIL BACILIO, José Luis
Institución : Universidad Nacional Agraria de la Selva
Laboratorio de Entomología
Fecha de inicio : 01 de agosto del 2018
Fecha de culminación : 01 de enero del 2019
Tingo María – Perú
2019
1
DEDICATORIA
A Dios por darme la fuerza y
sabiduría para enfrentar los
obstáculos que se me presenten y
seguir adelante aun en los
momentos más difíciles.
A mis abuelos Isabel García de Soto
y Alejandro Soto Matías, quienes,
con mucho amor y sacrificio,
formaron en mis principios morales,
éticos y brindarme el apoyo
económico para lograr uno de mis
primeros objetivos propuestos.
A mi mamá Aly Soto García, a mis
tíos Gilder, Lety y Mariela Soto
García por haber confiado en mí y
brindarme el apoyo moral durante mi
transcurso profesional.
1
AGRADECIMIENTOS
A Dios por darme su bendición y ayudarme a cumplir mis metas de acuerdo a
su voluntad.
A mis abuelitos quienes siempre encomiendan sus oraciones y piden por mí
para que cada día sea mejor y logre mis objetivos.
A mi Alma Mater, Universidad Nacional Agraria de la Selva por la formación
académica.
Al Blgo. M. Sc. Jose Luis, Gil Bacilio, asesor de mis practicas preprofesionales,
por su abnegada colaboración, orientación, confianza depositada en mí que
me llevaron a la culminación de este trabajo.
A los miembros del jurado de la práctica pre profesional, Ing. José Luis Paredes
Salazar, Ing. Víctor Beteta Alvarado y Blgo. Cesar Gozme Sulca, por su
valiosa colaboración.
A mis hermanos Jhonatan Sandoval Soto y Luis Minchola Susano por
brindarme su apoyo cuando más los necesité.
A Enrique Salazar La Torre por apoyarme en toda esta etapa y motivarme a
seguir creciendo profesionalmente y como persona.
A mis amigos Maura Chuquiyauri Solano, Rossinaldo Salas Alagón y Brigith
Huamán Sierra por alentarme a seguir y nunca rendirme ante los obstáculos
que se me presenten.
1
ÍNDICE
I. INTRODUCCIÓN .................................................................................................. 1
II. REVISION DE LITERATURA .......................................................................... 3
2.1. Ecosistemas acuáticos ......................................................................... 3
2.1.1. Ecosistemas acuáticos loticos ...................................................... 3
2.2. Calidad del agua .................................................................................. 4
2.2.1. Alteración de la calidad del agua .................................................. 4
2.3. Monitoreo y evaluación de la calidad del agua ........................................ 5
2.3.1. Parámetros fisicoquímicos ........................................................... 5
2.3.2. Análisis biológicos ....................................................................... 9
2.4. Velocidad y medición del caudal ......................................................... 29
2.4.1. Medición del caudal ................................................................... 29
2.5. Índices de calidad del agua (ICA) ........................................................ 30
2.5.1. El enfoque de la diversidad ........................................................ 30
2.5.2. El enfoque biótico ...................................................................... 32
2.6. Estándares de calidad ambiental para el agua superficial (ECA- Agua) .. 36
III. MATERIALES Y MÉTODOS ......................................................................... 40
3.1. Lugar de ejecución ............................................................................ 40
3.1.1. Ubicación política ...................................................................... 40
3.1.2. Clima ....................................................................................... 41
3.1.3. Temperatura ............................................................................. 42
3.1.4. Precipitaciones ......................................................................... 42
3.1.5. Humedad relativa ...................................................................... 42
3.1.6. Fisiografía del BRUNAS ............................................................. 42
3.1.7. Zonas de vida del BRUNAS ....................................................... 43
3.1.8. Composición arbórea del BRUNAS ............................................. 43
2
3.1.9. Red hídrica del BRUNAS ........................................................... 44
3.2. Materiales y equipos. ......................................................................... 44
3.2.1. Materiales ................................................................................. 44
3.2.2. Equipos .................................................................................... 44
3.3. Metodología ...................................................................................... 45
3.3.1. Diseño del estudio ..................................................................... 46
3.3.2. Identificación de las zonas de muestreo ...................................... 46
3.3.3. Toma de muestras para la evaluación ......................................... 51
3.3.4. Identificación de macroinvertebrados acuáticos ........................... 51
3.3.5. Cálculos para determinar índice ecológico de la comunidad de
macroinvertebrados acuáticos .................................................... 52
3.3.6. Cálculo del índice (BMWP/Col). .................................................. 52
3.3.7. Cálculo del índice EPT ............................................................... 53
IV. RESULTADOS ............................................................................................ 54
4.1. Analizar las variables fisicoquímicas para la calidad de agua de la Quebrada
Naranjal y Córdova ............................................................................ 54
4.1.1. Caracterización fisicoquímica del agua de la quebrada naranjal .... 54
4.1.2. Caracterización fisicoquímica del agua de la quebrada Córdova .... 57
4.2. Identificación del orden y Familia de macroinvertebrados de la Quebrada
Naranjal y Córdova ............................................................................ 60
4.2.1. Identificación del orden y familia de la quebrada Naranjal ............. 60
4.2.2. Identificación del orden y familia de la quebrada Córdova ............. 64
4.3. Estimar la abundancia y riqueza de macroinvertebrados utilizando el índice
de Shannon- Weaver. ........................................................................ 67
4.3.1. Índice de Shannon-Weaver de macroinvertebrados acuáticos en la
quebrada Naranjal ..................................................................... 67
4.3.2. Índice de Shannon-Weaver de macroinvertebrados acuáticos en la
quebrada Córdova ..................................................................... 72
3
4.4. Determinar la calidad del agua de las quebradas Naranjal y Córdova según
los índices de BMWP y EPT ............................................................... 76
4.4.1. Índice BMWP (Biological Monitoring Working Party) ..................... 76
4.4.2. Índice EPT (Ephemeroptera, Plecoptera, Trichoptera). ................. 80
V. DISCUSIÓN ................................................................................................ 84
5.1. Analizar las variables fisicoquímicas para la calidad de agua de las
quebradas Naranjal y Córdova ............................................................ 84
5.2. Identificación del orden y familia de macroinvertebrados de las quebradas
Naranjal y Córdova ............................................................................ 86
5.3. Estimar la abundancia y riqueza de macroinvertebrados utilizando el índice
de Shannon – Weaver de la comunidad de macroinvertebrados acuáticos de
las quebradas Naranjal y Córdova. ...................................................... 86
5.4. Determinar la calidad del agua de las quebradas Naranjal y Córdova según
los índices de BMWP y EPT. .............................................................. 87
VI. CONCLUSIONES ........................................................................................ 89
VII. RECOMENDACIONES ................................................................................. 90
VIII. REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS ............................................................... 91
ANEXOS ........................................................................................................... 95
4
ÍNDICE DE CUADROS
1.Puntaje de las familias de macroinvertebrados acuáticos para el índice BMWP/Col.
....................................................................................................................................34
2.Clasificación de las aguas y su significado ecológico de acuerdo a BMWP/Col
....................................................................................................................................35
3.Clasificación de la calidad del agua según el EPT ....................................................36
4.Estándares de calidad ambiental para la conservación del recurso categoría 4. ......37
5.Coordenadas UTM de los puntos de muestreo de la quebrada Naranjal ..................40
6.Coordenadas UTM de los puntos de muestreo de la quebrada Córdova ..................40
7.Características físicas de la Quebrada Naranjal .......................................................46
8.Características físicas de la Quebrada Córdova .......................................................46
9.Valores de BMWP/Col., clase, calidad y Color en las estaciones de muestreo (17 de
agosto del 2018) .....................................................................................................76
10.Valores de BMWP/Col., clase, calidad y Color en las estaciones de muestreo (31 de
agosto del 2018) .....................................................................................................77
11.Valores de BMWP/Col., clase, calidad y Color en las estaciones de muestreo (14 de
setiembre del 2018) ................................................................................................77
12.Valores de BMWP/Col., clase, calidad y Color en las estaciones de muestreo (17 de
agosto del 2018) .....................................................................................................78
13.Valores de BMWP/Col., clase, calidad y color en las estaciones de muestreo (31 de
agosto del 2018) .....................................................................................................79
14.Valores de BMWP/Col., clase, calidad y color en las estaciones de muestreo (14 de
setiembre del 2018) ................................................................................................79
15.Valores del índice EPT y calidad del agua en las estaciones de muestreo (17 de
agosto del 2018) .....................................................................................................80
16.Valores del índice EPT y calidad del agua en las estaciones de muestreo (31 de
agosto del 2018) .....................................................................................................81
17.Valores del índice EPT y calidad del agua en las estaciones de muestreo (14 de
setiembre del 2018) ................................................................................................81
18.Valores del índice EPT y calidad del agua en las estaciones de muestreo (17 de
agosto del 2018) .....................................................................................................82
19.Valores del índice EPT y calidad del agua en las estaciones de muestreo (31 de
agosto del 2018) .....................................................................................................83
20.Valores del índice EPT y calidad del agua en las estaciones de muestreo (14 de
setiembre del 2018) ................................................................................................83
5
21.Macroinvertebrados acuáticos por fecha y estación de muestreo de la Quebrada
Naranjal ..................................................................................................................96
22.Macroinvertebrados acuáticos por fecha y estación de muestreo de la Quebrada
Córdova. .................................................................................................................97
23.Composición de macroinvertebrados acuáticos por día evaluado en la Quebrada
Naranjal ..................................................................................................................98
24.Composición de macroinvertebrados acuáticos por día evaluado en la Quebrada
Córdova. .................................................................................................................98
25.Índices ecológicos por estación de muestreo en la Quebrada Naranjal (17 de agosto)
....................................................................................................................................99
26.Índices ecológicos por estación de muestreo en la Quebrada Naranjal (31 de agosto)
....................................................................................................................................99
27.Índices ecológicos por estación de muestreo en la Quebrada Naranjal (14 de
setiembre)...............................................................................................................99
28.Índices ecológicos por estación de muestreo en la Quebrada Córdova (17 de agosto)
.................................................................................................................................. 100
29.Índices ecológicos por estación de muestreo en la Quebrada Córdova (31 de agosto)
.................................................................................................................................. 100
30.Índices ecológicos por estación de muestreo en la Quebrada Córdova (14 de
setiembre)............................................................................................................. 100
31.Valores del índice BMWP/Col., calidad, características y color cartográfico por
estación de muestreo y fecha de muestreo de la quebrada Naranjal. ................... 101
32.Valores promedios del índice BMWP/Col., de los 3 monitoreos. .......................... 101
33.Valores del índice BMWP/Col., calidad, características y color cartográfico por
estación y fecha de muestreo de la quebrada Córdova. ....................................... 102
34.Valores promedios del índice BMWP/Col., de los 3 monitoreos. .......................... 102
35.Valores del índice EPT, calidad, por estación y fecha de muestreo de la quebrada
Naranjal. ............................................................................................................... 103
36.Valores promedios para los tres muestreos de la quebrada Naranjal. .................. 103
37.Valores del índice EPT, calidad, por estación y fecha de muestreo de la quebrada
Córdova. ............................................................................................................... 104
38. Valores promedios para los tres muestreos de la quebrada Córdova. ................. 104
6
ÍNDICE DE FIGURAS
1. Algunas características estructurales de una larva de Ephemeroptera. a. Ninfa, vista
dorsal. b. Labro. c. Labio. d. Mandíbula izquierda. e. Maxila izquierda. f. Uña.
(ROLDÁN, 1996) ....................................................................................................17
2. Euthyplociidae: Euthyplocia sp. a. Vista dorsal. b. Tibia y tarso, primera pata, vista
lateral. c. Agalla, vista dorsal (ROLDÁN, 1996) ......................................................17
3. Familia Perlidae a. Ninfa. b. Tórax, vista ventral. c. Maxila. d. Mandíbula. e. Labium.
f. Pata (ROLDÁN, 1996) .........................................................................................19
4. Morfología y taxonomía de las larvas de tricópteros. a. Larva, vista lateral con
segmentos abdominales I a IX b. Cabeza y tórax, vista dorsal. c. Cabeza, vista
ventral. d. Pata metatoráxica. e. Patas anales (ROLDÁN, 1996) ............................20
5. Hidropsychidae: a.Larva, vista lateral. b.Primera pata mesial c. Agalla abdominal d.
Cabeza, vista dorsal. E.Protorax, vista ventral (ROLDÁN, 1996) ............................21
6. Odontoceriidae: a. Larva, vista lateral. b. Cabeza y tórax, vista dorsal. c. Casa,vista
lateral. d. Pata anal con uña (ROLDÁN, 1996) .......................................................21
7. Aspectos morfológicos de una larva de coleóptero. Posición dorsal y ventral.
(Tomado de Brown, 1976). citado por (ROLDÁN, 1996) .........................................24
8. Larva de la Familia Elmidae. (GONZALES et al., 2013) ..........................................25
9. Psephenidae: Psephenops sp Larva. a. Vista dorsal b. Vista ventral (ROLDÁN, 1996)
....................................................................................................................................25
10.Características estructurales de: a. Anisoptera. b. Zygoptera Tomado de Arango,
(1982), citado por ROLDÁN (1996) .........................................................................27
11.Libellulidae: a. Vista dorsal. b. Labio, vista dorsal. c. Abdomen, vista lateral. d. Palpo
labial derecho (ROLDÁÁ, 1996) ..............................................................................27
12.Coenagrionidae: a. Vista dorsal. b. Palpo labial derecho. c. Labio, vista dorsal. d.
Agalla media. e. Agalla lateral (ROLDÁN, 1996) .....................................................28
13.a. Vista dorsal. b. Agalla media. c. Palpo labial derecho. d. Abdomen, vista ventral e.
Labio, vista dorsal (ROLDÁN, 1996) .......................................................................28
14.Mapa de ubicación de los puntos de muestreo en las quebradas Naranjal y
Córdova ..................................................................................................................41
15.Datos climatológicos de Tingo María del 2018. ......................................................41
16.Modelo de fisiografía ..............................................................................................43
17.Estación de muestreo E1 de la quebrada Naranjal .................................................47
18.Estación de muestreo E2 de la quebrada Naranjal .................................................48
19.Estación de muestreo E3 de la quebrada Naranjal .................................................48
7
20.Estación de muestreo E3 de la quebrada Córdova .................................................49
21.Estación de muestreo E2 de la quebrada Córdova .................................................50
22.Estación de muestreo E3 de la quebrada Córdova .................................................50
23.pH por estación de muestreo y día evaluado ..........................................................55
24.OD por estación de muestreo y día evaluado .........................................................55
25.Temperatura por estación de muestreo y día evaluado ..........................................56
26.CE por estación de muestreo y día evaluado .........................................................57
27.pH por estación de muestreo y día evaluado ..........................................................58
28.OD por estación de muestreo y día evaluado .........................................................58
29.Temperatura por estación de muestreo y día evaluado ..........................................59
30.CE por estación de muestreo y día evaluado .........................................................60
31.Composición en porcentaje de macroinvertebrados acuáticos a nivel de familia y
estación de muestreo. ............................................................................................60
32.Composición en porcentaje de macroinvertebrados acuáticos a nivel de familia y
estación de muestreo. ............................................................................................62
33.Composición en porcentaje de macroinvertebrados acuáticos a nivel de familia y
estación de muestreo. ............................................................................................63
34.Composición en porcentaje de macroinvertebrados acuáticos a nivel de familia y
estación de muestreo. ............................................................................................64
35.Composición en porcentaje de macroinvertebrados acuáticos a nivel de familia y
estación de muestreo .............................................................................................65
36.Composición en porcentaje de macroinvertebrados acuáticos a nivel de familia y
estación de muestreo .............................................................................................66
37.Número de individuos a nivel de familia por estación de muestreo (17 de agosto del
2018) ......................................................................................................................68
38.Índice de Shannon por estación de muestreo .........................................................69
39.Número de individuos a nivel de familia por estación de muestreo (31 de agosto del
2018) ......................................................................................................................69
40.Índice de Shannon por estación de muestreo .........................................................70
41.Número de individuos a nivel de familia por estación de muestreo (14 de setiembre
del 2018) ................................................................................................................71
42.Índice de Shannon por estación de muestreo .........................................................71
43.Número de individuos a nivel de familia por estación de muestreo (17 de agosto del
2018) ......................................................................................................................72
44.Índice de Shannon por estación de muestreo .........................................................73
8
45.Número de individuos a nivel de familia por estación de muestreo (31 de agosto del
2018) ......................................................................................................................74
46.Índice de Shannon por estación de muestreo .........................................................74
47.Número de individuos a nivel de familia por estación de muestreo (14 de setiembre
del 2018) ................................................................................................................75
48.Índice de Shannon por estación de muestreo. ........................................................76
49.Tomando una muestra de agua de la quebrada Naranjal parte alta para la
caracterización fisicoquímica. ............................................................................... 105
50.Tomando una muestra de agua de la quebrada Córdova parte media para la
caracterización fisicoquímica. ............................................................................... 105
51.Muestreo de macroinvertebrados acuáticos con la red surber en la quebrada Naranjal
parte alta. ............................................................................................................. 106
52.Muestreo manual de macroinvertebrados acuáticos en la quebrada Naranjal parte
alta........................................................................................................................ 106
53.Recolección de macroinvertebrados acuáticos en la quebrada Naranjal parte
baja....................................................................................................................... 107
54.Muestreo manual de macroinvertebrados acuáticos en la quebrada Córdova parte
alta........................................................................................................................ 107
55.Recolección de macroinvertebrados en la quebrada Córdova parte alta. ............. 108
56.Recolección de macroinvertebrados en la quebrada Córdova parte media. ......... 108
57.Recolección de macroinvertebrados en la quebrada Córdova parte media .......... 109
58.Recolección de macroinvertebrados en la quebrada Córdova parte media .......... 109
59.Caracterización fisicoquímica del agua en el Laboratorio de microbiología de la
Universidad Nacional Agraria de la Selva ............................................................. 110
60.Separación de macroinvertebrados en el Laboratorio de entomología de la
Universidad Nacional Agraria de la Selva ............................................................. 110
61.Identificación de macroinvertebrados con el estereoscopio en el Laboratorio de
Entomología de la Universidad Nacional Agraria de la Selva ................................ 111
62.Identificación de macroinvertebrados con el estereoscopio en el Laboratorio de
Entomología de la Universidad Nacional Agraria de la Selva ................................ 111
63.Familia Euthyplociidae.......................................................................................... 112
64.Familia Leptophlebiidae ........................................................................................ 112
65.Familia Perlidae.................................................................................................... 113
66.Familia Hidropsychidae ........................................................................................ 113
67.Familia Odontoceriidae ......................................................................................... 114
9
68.Familia Polythoridae ............................................................................................. 114
69.Familia Libellulidae ............................................................................................... 115
70.Familia Coenagrionidae ........................................................................................ 115
71.Familia Elmidae .................................................................................................... 116
72.Familia Psephenidae ............................................................................................ 116
73.Familia Naucoridae .............................................................................................. 117
74.Familia Hyalellidae ............................................................................................... 117
75.Familia Planorbiidae ............................................................................................. 118
76.Familia Glossiphoniidae ....................................................................................... 118
77.Familia Tubificidae ............................................................................................... 119
78.Familia Planariidae ............................................................................................... 119
1
I. INTRODUCCIÓN
El uso de los macroinvertebrados acuáticos (y muy especialmente
los insectos) como indicadores de la calidad de las aguas de los ecosistemas
(ríos, lagos o humedales) está generalizándose en todo el mundo. Los beneficios
del uso de herramientas integradoras y no solo las características fisicoquímicas
del agua para la medida de su calidad han sido explicadas también en muchos
libros y manuales y forma parte de la legislación de muchos estados.
Particularmente interesante es el proceso abierto en la Unión Europea donde la
indicación biológica es el núcleo de todo el sistema de monitoreo y evaluación
de la calidad del agua de sus 27 países, dando incluso a luz a un nuevo concepto,
el “Estado Ecológico”, y ello ha significado una revolución en la forma como los
gobiernos europeos deben contemplar los indicadores biológicos de calidad del
agua.
Los métodos de evaluación de la calidad de las aguas basados en
macroinvertebrados acuáticos ofrecen múltiples ventajas tales como: simplicidad
metodológica, rapidez en la obtención de los resultados y una alta confiabilidad,
lo que hace de estos métodos una herramienta idónea para la vigilancia rutinaria
de la calidad del agua en las cuencas y ríos en general.
Los ríos tropicales presentan condiciones fluctuantes, sin embargo,
las comunidades de macroinvertebrados se mantienen estables, con cambios
ambientales sutiles. Pero cuando se presentan variaciones ambientales
extremas se evidencian cambios en las comunidades, los cuales indican el grado
de afectación del recurso hídrico.
Esta práctica se desarrolló con el fin de determinar la calidad del
agua de las quebradas Naranjal y Córdova mediante variables físico químicas, y
las comunidades de macroinvertebrados como indicadores de la calidad del
2
agua, y con los resultados obtenidos poder valorar y conservar el cuerpo de agua
ya que estos albergan a organismos muy indispensables para estimar la calidad
y el grado de contaminación.
Por lo enunciado anteriormente, se realizó la presente práctica
preprofesional, cuyos objetivos son los siguientes:
1.1. Objetivos
1.1.1. Objetivo general
- Estimar el efecto de las variables fisicoquímicas (oxígeno disuelto, pH,
temperatura y conductividad eléctrica) y de los macroinvertebrados en
la calidad del agua de las quebradas Naranjal y Córdova, Tingo María.
1.1.2. Objetivos específicos
- Analizar las variables fisicoquímicas (pH, temperatura, oxígeno
disuelto y conductividad eléctrica) para estimar la calidad de agua de
las quebradas Naranjal y Córdova.
- Identificar los órdenes y familias de macroinvertebrados presentes en
las quebradas Naranjal y Córdova de la Universidad Nacional Agraria
de la Selva, Tingo María.
- Estimar la abundancia y riqueza de macroinvertebrados utilizando el
índice de Shannon- Weaver.
- Determinar la calidad del agua de las quebradas Naranjal y Córdova
según los índices de BMWP (Biological Monitoring Working Party) y
EPT (Ephemeroptera, Plecoptera, Trichoptera).
3
II. REVISION DE LITERATURA
2.1. Ecosistemas acuáticos
Se entiende por ecosistema a la unidad ecológica en la cual un grupo
de organismos interactúa entre sí y con el ambiente, en este sentido, de forma
general podría hablarse de dos tipos básicos de ecosistema: acuáticos y
terrestres. Desde siempre, los ecosistemas acuáticos han estado influenciados
por dos grandes grupos de factores: bióticos y abióticos. Los primeros se refieren
a todas las interacciones entre los diferentes organismos del ecosistema,
entradas, flujos de energía y zonas de ribera, mientras que los factores abióticos
hacen referencia a variables climáticas, físico químicos y biogeográficos que
influencian el medio en el cual se desenvuelven los organismos acuáticos. De
forma general, se puede decir que los principales sistemas de aguas
epicontinentales o dulces, son: lagos, lagunas, ríos, aguas subterráneas y
embalses, estos sistemas a su vez se encuentra clasificados en dos grandes
grupos a saber: sistemas lóticos y sistemas lenticos (ROLDÁN y RAMIREZ,
2008).
2.1.1. Ecosistemas acuáticos lóticos
Por definición, los sistemas lóticos son todas las masas de agua que
se mueven continuamente en una misma dirección. Los ríos tienen una enorme
importancia por la función que tienen de conectar las cuencas terrestres con la
atmósfera y con el mar. De esta forma, las aguas corrientes constituyen
entonces, un sistema de transporte de sales, sedimento y organismos a través
de un gradiente horizontal y ya no vertical. El carácter unidireccional de la
corriente implica que existe una relación asimétrica entre las comunidades de
tramos altos y las de tramos bajos, siendo las ultimas las receptoras de los
aportes de alimento y desechos que escapan a las primeras. Dentro de las
4
variables que pueden afectar la biodiversidad de las comunidades fluviales se
encuentran entre otras, factores climáticos, históricos y geológicos. Sin embargo,
es importante resaltar que la propia dinámica fluvial podría ser la mayor
responsable la biodiversidad de un lugar (ELOSEGI y SABATER, 2009).
2.2. Calidad del agua
Según Barrenechea (2004), citado por SIAS (2014) el término
calidad del agua es relativo y solo tiene importancia universal si está relacionado
con el uso del recurso. Esto quiere decir que una fuente de agua suficientemente
limpia que permita la vida de los peces puede no ser apta para la natación y un
agua útil para el consumo humano puede resultar inadecuada para la industria.
Para decidir sin un agua califica para un propósito particular, su calidad debe
especificarse en función del uso que se le va a dar. Baja estas consideraciones,
se dice que un agua está contaminada cuando sufre cambios que afectan su uso
real o potencia.
2.2.1. Alteración de la calidad del agua
Las características de agua son alteradas por la introducción de
materias o formas de energía que, de modo directo o indirecto perjudican su
calidad en relación con los usos posteriores o con su función ecológica. Dado
que el agua rara vez se encuentra en estado puro, la noción de contaminante del
agua comprende cualquier organismo vivo, mineral o compuesto químico cuya
concentración impida los usos benéficos del agua (Gallego (2000), citado por
TAMANI (2014)).
El agua tiene una gran capacidad de purificación. Pero esta misma
facilidad de regeneración y su aparente abundancia hace que sea el vertedero
habitual de residuos: pesticidas, desechos químicos, metales pesados, aguas
servidas, etc. Los efectos de la degradación del agua son muy diversos y
dependen del elemento contaminante. Pero entre los más visibles podemos
nombrar: disminución y/o desaparición de la vida acuática, incremento de
enfermedades hídricas (como: cólera, parasitosis, diarreas, hepatitis, fiebre
5
tifoidea) o aparición de nuevas, deterioro de la calidad de un curso de agua con
fines recreativos (natación, buceo, windsurf, pesca, navegación, etc.), ruptura del
equilibrio ecológico (al desaparecer especies que servían de alimento a otras),
costos elevados para potabilizar el agua (Owen (2005), citado por TAMANI
(2014)).
2.3. Monitoreo y evaluación de la calidad del agua
Según Chapman (1996), citado por ALVAREZ y PÉREZ (2007)
define el monitoreo de calidad de agua como la colección actual de información
en ubicaciones específicas con intervalos regulares para conseguir la
información necesaria para definir condiciones actuales y establecer tendencias,
entre otros. Por otro lado, la evaluación de calidad de agua está definida como
el proceso completo de la evaluación de la naturaleza física, química y biológica
del agua en relación a la calidad natural, efectos humanos y usos adecuados,
particularmente los usos que pueden afectar la salud humana y la salud del
sistema acuático.
2.3.1. Parámetros fisicoquímicos
Los métodos fisicoquímicos ayudan a conocer con precisión el tipo
de contaminante vertido en detalle. NEUMANN et al (2001), citado por ALVAREZ
y PÉREZ (2007) afirman que las principales desventajas de determinar la calidad
de agua mediante el uso de métodos fisicoquímicos radican en parte en el costo
elevado, al mismo tiempo que la información proporcionada por estos análisis es
puntual y transitoria.
Según ROLDÁN (2003), los parámetros a los cuales son más
sensibles los organismos son a menudo el pH, la conductividad eléctrica, el
oxígeno disuelto y la temperatura.
6
2.3.1.1. Potencial de hidrogenión (pH)
Es una medida de qué tan ácida o básica es el agua. Al tener un pH
de 7 se dice que el agua es neutra. Valores menores a 7 son ácidos y aquellos
mayores a 7 son básicos. Los ácidos orgánicos débiles bajan ligeramente el pH
del agua. El pH es afectado por el dióxido de carbono (CO2) el cual forma en el
agua un ácido orgánico débil llamado ácido carbónico. Los ácidos minerales
fuertes (Ej. Ac. sulfúrico, nítrico y clorhídrico) pueden bajar el pH a niveles letales
para la vida acuática (Gww (2005), citado por JAVIER (2010)).
Los cambios de pH en el agua son importantes para muchos
organismos, la mayoría de ellos se han adaptado a la vida en el agua con un
nivel de pH específico y pueden morir al experimentarse cambios en el pH.
Ácidos minerales, carbónicos y otros contribuyen a la acidez del agua,
provocando que metales pesados puedan liberarse en el agua (Mitchell et al.
(1991), citado por JAVIER (2010)).
Las guías canadienses han establecido el rango de pH 6,5 a 8,5 para
el agua potable. Los valores de pH compatibles con la vida de las especies
acuáticas están comprendidos entre 5 y 9, situándose los más favorables entre
6 y 7,2. El pH del agua natural depende de la concentración de anhídrido
carbónico, consecuencia de la mineralización de las sales presentes en el agua
(SENAMHI, 2019)
2.3.1.2. Conductividad eléctrica
La conductividad es una medida de la capacidad de una solución
acuosa para transportar una corriente eléctrica. Esta capacidad depende de la
presencia de iones disueltos, debido a la división de sales inorgánicas, ácidos y
bases, sus concentraciones absolutas y relativas, su movilidad, su valencia y de
la temperatura y la viscosidad de la solución. Este parámetro sirve para estimar
el contenido total de constituyentes iónicos. La conductividad es susceptible a la
variación de la actividad biológica presente en el agua. La presencia de materias
en suspensión de tamaño considerable y/o de aceites o grasas, puede causar
fallos en las medidas. La Conductividad en los cuerpos de agua dulce se
7
encuentra primariamente determinada por la geología del área a través de la cual
fluye el agua (cuenca). Por ejemplo, aguas que corren en sustrato graníticos
tienden a tener menor conductividad, ya que ese sustrato está compuesto por
materiales que no se ionizan. Descargas de aguas residuales suelen aumentar
la conductividad debido al aumento de la concentración de Cl- , NO3- y SO4 -2,
u otros iones. Debe tenerse en cuenta que derrames de hidrocarburos (aceites,
petróleo), compuestos orgánicos como aceites, fenol, alcohol, azúcar y otros
compuestos no ionizables (aunque contaminantes), no modifican mayormente la
Conductividad (Severiche et al. (2013), citado por TAMANI (2014)).
En las aguas continentales, los iones que son directamente
responsables de los valores de la conductividad son, entre otros, el calcio, el
magnesio, el potasio, el sodio, los carbonatos, los sulfatos y los cloratos
(Chamorro y Vegas (2003), citado por TAMANI (2014)).
2.3.1.3. Oxígeno disuelto
Su presencia es esencial en el agua; proviene principalmente del
aire. Niveles bajos o ausencia de oxígeno en el agua. Puede indicar
contaminación elevada, condiciones sépticas de materia orgánica o una
actividad bacteriana intensa; por ello se le puede considerar como un indicador
de contaminación. La presencia de oxígeno disuelto en el agua cruda depende
de la temperatura, la presión y la mineralización del agua. La ley de Henry y
Dalton dice: “La solubilidad de un gas en un líquido es directamente proporcional
a la presión parcial e inversamente proporcional a la temperatura” (Cepis (1987),
citado por TAMANI (2014)).
En un cuerpo de agua se produce y a la vez se consume oxígeno.
La producción está relacionada con la fotosíntesis, mientras que su consumo
dependerá de la respiración. Si es consumido más oxígeno que el que se
produce y capta, la concentración de O2 puede alcanzar niveles por debajo de
los necesarios para la vida acuática (Goneyola (2007), citado por TAMANI
(2014)).
8
El oxígeno disuelto (OD) debe medirse “in situ” ya que las
concentraciones pueden cambiar en un corto tiempo, para realizar mediciones
muy exactas, se debe considerar el método de electrodo de membrana. Un
adecuado nivel de oxígeno disuelto es necesario para una buena calidad del
agua. El oxígeno es un elemento necesario para todas las formas de vida. Los
torrentes naturales para los procesos de purificación requieren unos adecuados
niveles de oxígeno para proveer para las formas de vida aeróbicas. Como los
niveles de oxígeno disuelto en el agua bajen de 5.0 mg/l, la vida acuática es
puesta bajo presión. A menor concentración, mayor presión. Niveles de oxígeno
que continúan debajo de 1-2 mg/l por unas pocas horas pueden resultar en
grandes cantidades de peces muertos (Cepis (1987), citado por TAMANI (2014)).
2.3.1.4. Temperatura
Es un parámetro muy importante en el agua, pues influye en el
retardo o aceleración de la actividad biológica y la cantidad de oxígeno disuelto.
Afecta las propiedades físicas y químicas del agua y tiene gran influencia sobre
los organismos acuáticos, modificando sus hábitos alimenticios, reproductivos y
sus tasas metabólicas, así como también afecta la velocidad de reciclado de los
nutrientes en un sistema acuático (Gww (2005), citado por JAVIER (2010)).
Múltiples factores, principalmente ambientales, pueden hacer que la
temperatura del agua varíe continuamente. La temperatura es un parámetro
físico que afecta mediciones de otros como pH, alcalinidad o conductividad. Las
temperaturas elevadas resultantes de descargas de agua caliente, pueden tener
un impacto ecológico significativo por lo que la medición de la temperatura del
cuerpo receptor, resulta útil para evaluar los efectos sobre éste (Severiche et al
(2013), citado por TAMANI (2014)).
Según Brock (1994), citado por TAMANI (2014) la temperatura
ejerce una marcada influencia sobre la reproducción, crecimiento y el status
fisiológico de todas las entidades vivas. Los microorganismos como grupo
(particularmente el grupo de las bacterias) demuestran una capacidad
extraordinaria para vivir y reproducirse a lo largo de un amplio rango de
9
temperaturas (desde temperaturas bajo 0°C, hasta temperaturas que alcanzan
los 113°C). Los microorganismos se han agrupado en cuatro categorías, a base
de su rango de temperatura óptima para el crecimiento. Las categorías son:
psicrofílicos, mesofílicos, termofílicos e hipertermofílico.
2.3.2. Análisis biológicos
2.3.2.1. Bioindicación
Según ALVAREZ y PÉREZ (2007) el concepto de bioindicador
aplicado a la evaluación de calidad de agua, es definido como: especie que
posee requerimientos particulares con relación a uno ó un conjunto de variables
físicas o químicas, tal que los cambios de presencia/ausencia, número,
morfología o de conducta de esa especie en particular, indique que las variables
físicas ó químicas consideradas, se encuentran cerca de sus límites de
tolerancia. El uso de bioindicadores como herramienta para conocer la calidad
del agua simplifica en gran medida las actividades de campo y laboratorio, ya
que su aplicación sólo requiere de la identificación y cuantificación de los
organismos basándose en índices de diversidad ajustados a intervalos que
califican la calidad del agua.
Los daños y alteraciones que ha sufrido los ríos, lagos, lagunas,
arroyos, a lo largo del tiempo, pueden evidenciarse. “Los macroinvertebrados
tienen una especial importancia en los ecosistemas acuáticos al constituir el
componente de biomasa animal más importante en muchos tramos de ríos y
jugar un papel fundamental en la transferencia de energía” Ladrera, Rieradeval,
& Prat (2013), citado por ALVAREZ y PÉREZ (2007) La metodología de estudio
de las aguas por medio de macroinvertebrados como bioindicadores es
ampliamente usado, debido a la facilidad del muestreo, el bajo costo y detección
temprana de cualquier contaminación.
2.3.2.2. Los macroinvertebrados
Los macroinvertebrados acuáticos se definen como aquellos
organismos con tamaños superiores a 0.5 mm de longitud, es decir, todos
10
aquellos organismos que se pueden ver a simple vista; por lo tanto, la palabra
“macro” indica que esos organismos son retenidos por redes de tamaño entre
200–500 mm (ROSENBERG y RESH, 1993).
Los invertebrados se encuentran entre los organismos que mejor se
han adaptado a los ecosistemas fluviales, ya que viven en la mayoría de los
arroyos y ríos de todo el mundo, con excepción de aquellos más efímeros o muy
contaminados. Además, la densidad y diversidad de invertebrados suele ser muy
elevada, habiéndose encontrado hasta un millar de especies en arroyos
particularmente bien estudiados. Habitan en los sedimentos, tanto blandos como
rocosos, así como en plantas sumergidas (RODRÍGUEZ et al., 2009).
El uso de los macroinvertebrados acuáticos como indicadores de la
calidad del agua, tiene cada vez mayor aceptación y es uno de los métodos más
usados en la evaluación de los efectos ambientales causados por el desarrollo
de proyectos de diferente índole (represas, minas, carreteras, actividad petrolera
y otros), que de alguna forma repercuten en los ecosistemas acuáticos (ROLDÁN
y RAMIREZ, 2008).
Los métodos que consideran macroinvertebrados para determinar la
calidad de las aguas han sido empleados en Europa desde principios del siglo
XX. Muchos de ellos tienen su origen en los trabajos desarrollados por
KOLKWITZ y MARSSON (1908), quienes propusieron el Sistema Saprobiótico
Continental, base para el desarrollo de nuevos índices (o modificaciones), como:
Trent Biotic Index (TBI), Biological Monitoring Working Party (BMWP), Belgium
Biotic Index (BBI), the River Invertebrate Prediction and Clasification System
(RIVPACS) (ROLDÁN y RAMIREZ, 2008).
Diversos estudios realizados con estos métodos han determinado
que taxones como Plecoptera, Ephemeroptera, Trichoptera y Coleoptera son
altamente sensibles a la contaminación. A diferencia de estos, entre los taxones
que resisten diferentes grados de contaminación se encuentran Oligochaeta,
Hirudínea, Chironomidae (Díptera y Gastrópoda, los cuales pueden vivir en bajas
concentraciones de oxígeno (FIGUEROA et al., 2003).
11
En ríos de montaña de aguas frías, trasparentes, oligotróficas y bien
oxigenadas se espera encontrar poblaciones dominantes del orden
Ephemeroptera, Trichoptera y Plecoptera. Adicionalmente estarían presentes del
orden Odonata, Coleoptera, Hemiptera, Diptera, Neuroptera, Ácari, Crustacea y
otros grupos en bajas proporciones. En aguas intermedias, que comienzan a
mostrar síntomas de contaminación, o por el contrario, que comienzan a
recuperarse, en ríos y quebradas contaminados con materia orgánica, de aguas
turbias, con poco oxígeno y eutróficas, se espera encontrar poblaciones
dominantes de oligoquetos, quironómidos y ciertos moluscos (ROLDÁN, 2003).
2.3.2.3. Importancia de los macroinvertebrados como
bioindicadores de la calidad del agua
Los macroinvertebrados presentes en las aguas dulces juegan
papeles importantes dentro de todos los procesos ecológicos de los sistemas
acuáticos. Energéticamente, las cadenas alimentarias acuáticas se basan en
material autóctono producido por las algas o bien material alóctono que entra al
sistema acuático desde afuera. Los macroinvertebrados son un enlace
importante para poder mover esta energía a diversos niveles tróficos de las
cadenas alimentarias acuáticas. Los macroinvertebrados controlan la
productividad primaria de los ecosistemas acuáticos. Estos consumen gran
cantidad de algas y otros microorganismos asociados con el perifiton en ríos o
bien con el plancton en lagos. Muchas veces, este consumo aumenta la
productividad primaria, ya que se elimina tejido poco productivo y se mineralizan
los nutrientes (ROLDÁN y RAMIREZ, 2008).
En sistemas basados en material alóctono como la hojarasca, los
macroinvertebrados fragmentadores son vitales para mover esta energía a otros
niveles tróficos. Los fragmentadores utilizan partículas de gran tamaño, como las
hojas de árboles que caen al río y las degradan. En el proceso, generan
fragmentos pequeños de materia orgánica que son accesibles a otros
organismos, como los recolectores y filtradores. Al mismo tiempo,
los macroinvertebrados filtradores, como las larvas de Simuliidae, remueven
partículas finas (seston) del agua y las convierten en partículas fecales más
12
densas que se hunden y proveen alimento para otros invertebrados acuáticos.
Estos procesos garantizan que los nutrientes presentes en las partículas no sean
exportados del ecosistema y llevados por la corriente al mar (ROLDÁN y
RAMÍREZ, 2008).
Los macroinvertebrados habitan todas las aguas, para lo cual se
posibilitan los estudios comparativos en cualquier lugar, estos poseen una
elevada diversidad, con diferentes grados de tolerancia a la contaminación,
permite que la ausencia de las familias más sensibles a la contaminación alerte
si hay algún tipo de contaminación (ALVAREZ y PÉREZ, 2007).
La reducida movilidad de la mayoría de las especies de
macroinvertebrados permite detectar cualquier alteración de una fuente hídrica,
la presencia de estos en el agua facilita la realización de muestreos cuantitativos,
pues existen métodos que han sido validos en diferentes ríos del mundo
(ROLDÁN y RAMÍREZ, 2008).
2.3.2.4. Ventajas de los macroinvertebrados
ROLDÁN (2003), afirma que los macroinvertebrados son los mejores
indicadores de la calidad del agua debido a: son fáciles de identificar y de
recolectar, son sensibles a los cambios que se presenten en el medio y en
referencia al tiempo de respuesta, se pueden apreciar a simple vista, varían poco
genéticamente, se pueden realizar monitorear en campo y en laboratorio, tienen
una amplia distribución (geográfica y en diferentes tipos de ambientes).
2.3.2.5. Niveles de perturbaciones en los ríos con comunidades
de macroinvertebrados
Según ROLDÁN (2003), las fuentes más importantes de
perturbación y contaminación de los ecosistemas acuáticos y originados por las
actividades humanas son la deforestación y los residuos sólidos y líquidos de
origen doméstico, industrial, agrícola y minero. Estas perturbaciones se pueden
resumir de la siguiente manera.
13
A. Directo al lecho del río:
- Regulación del flujo y desviación.
- Destrucción del hábitat: degrado, revestimiento, canalización,
presas.
- Alteración de la temperatura, del pH, de la salinidad, y similares.
- Vertimiento de agua de origen doméstico.
- Vertimiento de tóxicos (metales pesados, pesticidas).
- Elementos radiactivos.
- Manipulación de la cadena alimenticia (introducción de especies
exóticas).
B. Indirecto:
B1. En el área de captación
- Deforestación (erosión, arrastre de sedimentos)
- Quemas
- Construcción de vías
- Sustracción de agua y canales de desvío
- Contaminación del aire (lluvia acida)
- Prácticas agrícolas
B2. En la zona riparia (vegetación de ribera)
- Insolación (efectos en la productividad primaria)
- Alteración de la temperatura del agua
- Alteración de la dinámica de nutrientes
- Aportes alóctonos
- Dinámica de los sedimentos
- Morfología del cauce
Los anteriores efectos pueden medirse y cuantificarse mediante el
uso de los bioindicadores, cuyo valor y peso han sido previamente definidos.
PRAT y WARD (1994) plantean los diferentes grados de
perturbación causados en los ecosistemas acuáticos y las comunidades
correspondientes a cada uno de ellos. Se establece la forma cómo cambian las
14
comunidades de macroinvertebrados en la riqueza de especies, en la diversidad
y en la productividad. Así, las comunidades naturales se caracterizan por ser
diversas y heterogéneas. Cuando se presenta una perturbación moderada,
comienzan a aparecer especies tolerantes y a disminuir las intolerantes; puede
presentarse, además, un aumento de depredación. Con perturbaciones altas,
desaparecen las especies intolerantes y las tramas alimenticias se hacen cada
vez más lineales. Cuando la perturbación es demasiado alta, solo están
presentes unas pocas especies, representadas por abundantes organismos. En
situaciones extremas, únicamente se encuentran microorganismos como
bacterias, algas y ciliados.
2.3.2.6. Distribución en el espacio y tiempo
La distribución espacial de los insectos acuáticos parece obedecer a
cuatro categorías de influencia ambiental: la velocidad de la corriente,
parámetros fisicoquímicos (temperatura, oxígeno disuelto, etc.), tamaño de la
partícula del sustrato y la disponibilidad de sustancias alimenticias. Asimismo, se
señala que la velocidad de la corriente de agua y los parámetros fisicoquímicos,
estarían influenciando la macrodistribución de los insectos, en cuanto que, el
tamaño de partícula del sustrato y la disponibilidad del alimento, probablemente
ejercen influencia primaria en la microdistribución (Cummins & Lauff, (1969),
citado por ORTIZ (2012)).
La distribución de la comunidad bentónica cambia en relación a
condiciones hidrológicas y geomorfológicas en diferentes escalas espaciales;
drenaje, tramo, hábitat (Hildrew, (1996); Statzner et al., (1997) citado por ORTIZ
(2012)). La información acerca de los ensamblajes de los organismos bentónicos
con hábitats particulares es esencial para determinar los cambios ambientales y
entender la segregación ecológica dentro de las comunidades multiespecies
(Bisson et al., (1982) citado por ORTIZ (2012)).
Algunos autores reportan los más bajos valores de riqueza y
diversidad en hábitats caracterizados por sustrato fino, mientras que los más
altos valores fueron encontrados en los ambientes más heterogéneos o
15
complejos (e.g. Beisel et al., (2000); Príncipe & Corigliano, (2006) citado por
ORTIZ (2012)). Los ambientes heterogéneos ofrecen potencialmente un gran
número de nichos para los invertebrados. Estas unidades de hábitats son
preferidas por muchas especies ya que ofrecen refugio ante aumentos
repentinos de caudal y condiciones adecuadas para la alimentación, como la
retención de detritus en los espacios intersticiales, además de una disminución
de la probabilidad de depredación (Minshall,1984) citado por ORTIZ (2012)).
De otro lado, en los hábitats con sustratos más finos, la inestabilidad
del sustrato y la baja disponibilidad de materia orgánica llevan a una baja riqueza,
siendo más susceptibles al barrido por efecto de la descarga (Príncipe, (2008)
citado por ORTIZ (2012)).
La estacionalidad es un factor abiótico muy importante, ya que tiene
una gran influencia en los cambios que se puedan dar en la comunidad de
macroinvertebrados bentónicos, esta estacionalidad o variación temporal está
relacionada a la llamada disturbancia, definida como un desplazamiento discreto,
evento infrecuente e irregular, destrucción puntualizada o daño de uno o más
individuos (o colonias) que directa o indirectamente crea una oportunidad para
nuevos individuos. Así se tiene que la intensidad, frecuencia y área de la
disturbancia podría determinar la abundancia y riqueza de especies (McCabe &
Gotelli, (2000) citado por ORTIZ (2012)).
La precipitación, es decir la estación húmeda, juega un papel
importante en los cambios y estructura de la comunidad de macroinvertebrados
bentónicos; al parecer ante estos cambios estacionales, los organismos
evolucionaron en diversas estrategias de vida para poder afrontarlos de la mejor
manera (Silveira et al., (2006) citado por ORTIZ (2012)).
16
2.3.2.7. Descripción de los principales macroinvertebrados
acuáticos
A. Ephemeroptera
ROLDÁN (1996), describe a los Ephemeroptera de la siguiente
manera:
- Biología: Los efemerópteros reciben este nombre debido a su vida corta o
"efímera" que llevan como adultos. Algunos pueden vivir en este estado
sólo cinco minutos, pero la mayoría vive de a tres o cuatro días; durante
este tiempo alcanzan la madurez sexual y se reproducen. Los huevos los
depositan generalmente en la superficie del agua y poseen estructuras que
les permite fijarse al sustrato. La respiración la realizan a través de agallas,
generalmente abdominales, las cuales varían en forma y número de
acuerdo con la especie.
- Ecología: los efemerópteros viven por lo regular en agua corrientes, limpias
y bien oxigenadas; solo algunas especies parecen resistir cierto grado de
contaminación. En general, se consideran indicadores de buena calidad del
agua. Sus ninfas se encuentran normalmente adheridas a rocas, troncos,
hojas, o vegetación sumergida; algunas pocas especies se encuentran
enterradas en los fondos lodosos o arenosos. Las ninfas son prácticamente
herbívoras y se alimentan de algas y tejidos de plantas acuáticas. A su vez,
las ninfas de los Efemerópteros constituyen una parte importante en la dieta
alimenticia de los peces, especialmente la trucha y la sabaleta (Brycon).
- Distribución geográfica: los efemerópteros son prácticamente
cosmopolitas, estando ausentes sólo en Nueva Zelanda y algunas
pequeñas islas. Sólo la familia Euthyplociidae es típicamente neotropical.
- Taxonomía: la conformación del aparato bucal, el número, la forma y
disposición de las agallas y de los filamentos caudales, son, entre otras,
características útiles en la clasificación de las ninfas de los efemerópteros.
17
Figura 1. Algunas características estructurales de una larva de Ephemeroptera. a. Ninfa, vista
dorsal. b. Labro. c. Labio. d. Mandíbula izquierda. e. Maxila izquierda. f. Uña.
(ROLDÁN, 1996)
Figura 2. Euthyplociidae: Euthyplocia sp. a. Vista dorsal. b. Tibia y tarso, primera pata, vista
lateral. c. Agalla, vista dorsal (ROLDÁN, 1996)
18
B. Plecoptera
ROLDÁN (1996), describe a los Plecoptera de la siguiente manera:
- Biología: las ninfas de los plecópteros se caracterizan por tener dos cerci,
largas antenas, agallas toráxicas en posición ventral, y a veces agallas
anales. Su tamaño vario entre los 10 y 30 mm y su coloración puede ser
amarillo pálido, parduzco hasta café oscuro o negro. La respiración la
realiza por medio de las agallas y a través de la superficie corporal. Los
huevos los ponen sobre el agua durante el vuelo. La eclosión de los huevos
y de la emergencia de las ninfas de los trópicos no se conoce, es posible
que se haga a lo largo del año, alternando los períodos de lluvia y sequía.
- Ecología: las ninfas de los plecópteros viven en aguas rápidas, bien
oxigenadas, debajo de piedras, troncos, ramas y hojas. En Antioquia se ha
observado que son especialmente abundantes en riachuelos con fondo
pedregoso, de corrientes rápidas y muy limpias situadas alrededor de los
2.000m de altura. Son, por lo tanto, indicadores de aguas muy limpias y
oligotróficas.
- Distribución geográfica: los plecópteros son prácticamente cosmopolitas.
En el trópico norte la familia predominante es Perlidae. Sobre este grupo
aún no existen estudios para Colombia.
- Taxonomía: para su clasificación se tiene en cuenta la distribución y la
forma de las agallas, la presencia de almohadillas halares y la posición de
los ojos compuestos. Debido a lo poco que se conoce este grupo en el
trópico, sólo se incluirá para la presente guía la familia Perlidae, subfamilia
Acroneuriinae. Esta subfamilia se caracteriza por poseer traqueo branquias
torácicas y parece ser la única presente en nuestro medio
19
Figura 3. Familia Perlidae a. Ninfa. b. Tórax, vista ventral. c. Maxila. d. Mandíbula. e. Labium.
f. Pata (ROLDÁN, 1996)
C. Trichoptera
ROLDÁN (1996), describe a los Trichoptera de la siguiente manera:
- Biología: Los tricópteros son insectos holometábolos cuyas larvas viven en
todo tipo de hábitat. La mayoría de los Trichópteros requieren uno o dos
años para su desarrollo, a través de los cuales pasan por cinco a siete
estadios. La etapa pupal dura de dos a tres semanas, al cabo de las cuales
sale el adulto. Los adultos son muy activos en las primeras horas de la
noche. Las hembras depositan el huevo en el agua y los encierra por lo
regular en una masa gelatinosa. Una de las características más llamativas
de los Trichópteros es su capacidad de construir casas o refugios, de
formas variadas, a menudo, propios de cada especie. Los refugios fijos al
sustrato les sirven por lo regular de protección y captura de alimento. Las
casas portables le sirven de protección y de movimiento en busca de
oxígeno y alimento. Las larvas se alimentan de material vegetal y algas que
encuentran sobre las rocas. Algunas larvas son depredadoras.
20
- Ecología: la mayoría de los tricópteros viven en aguas corrientes, limpias
y oxigenadas debajo de piedras, troncos y material vegetal, algunas
especies viven en aguas quietas y remansos de ríos y quebradas. En
general, son buenos indicadores de aguas oligotróficas.
- Distribución geográfica: los tricópteros son cosmopolitas, pero para el
neotrópico se han descrito familias, géneros y especies propias de la
región.
- Taxonomía: en la clasificación de los tricópteros se tiene en cuenta la
presencia o no de placas esclerotizadas en los segmentos torácicos; la
presencia o ausencia de agallas branquiales en el abdomen; si el labrum
es membranoso o no y el número de setas a lo largo de la parte central, y
longitud de la antena, entre otros. También la forma y el tipo de material de
las casas o refugios es una característica de valor taxonómico a nivel de
familia principalmente.
Figura 4. Morfología y taxonomía de las larvas de tricópteros. a. Larva, vista lateral con
segmentos abdominales I a IX b. Cabeza y tórax, vista dorsal. c. Cabeza, vista ventral.
d. Pata metatoráxica. e. Patas anales (ROLDÁN, 1996)
21
Figura 5. Hidropsychidae: a.Larva, vista lateral. b.Primera pata mesial c. Agalla abdominal
d.Cabeza, vista dorsal. E.Protorax, vista ventral (ROLDÁN, 1996)
Figura 6. Odontoceriidae: a. Larva, vista lateral. b. Cabeza y tórax, vista dorsal. c. Casa,vista
lateral. d. Pata anal con uña (ROLDÁN, 1996)
22
D. Coleoptera
ROLDÁN (1996), describe a los Coleoptera de la siguiente manera:
- Biología: Los coleópteros acuáticos adultos se caracterizan por poseer un
cuerpo compacto. Las partes bucales se pueden observar fácilmente y
según la forma de las mandíbulas se puede determinar su nicho ecológico.
Las antenas son visibles y, por lo general, varían en forma y número de
segmentos. En la clasificación a nivel de familia, la fórmula tarsal juega un
papel importante. Las alas están por lo general modificadas en élitros, los
cuales cubren dorsalmente el tórax y el abdomen en la mayoría de los
coleópteros. En cuanto a las larvas, presentan formas muy diversas. Las
partes bucales son visibles y presentan una cápsula esclerotizada en la
cabeza. El abdomen presenta agallas laterales o ventrales, de forma
variada. El abdomen está dividido en esternitos y, por lo general, el último
esternito abdominal presenta un opérculo. Los coleópteros presentan una
metamorfosis completa, pero son muy diferentes morfológicamente el
adulto y la larva. Su ciclo de vida presenta un período que puede variar de
meses a años, dependiendo de la especie. A nivel del trópico los procesos
de reproducción no son muy bien conocidos. Presentan como etapas de su
ciclo de vida huevo-larva-pupa y adulto. Los huevos son depositados en el
agua sobre la vegetación acuática, troncos en descomposición, en rocas o
grava. Para muchas especies los huevos eclosionan cerca de ocho días
después de ser puestos, las larvas pueden permanecer, como en el caso
de los élmidos, hasta 60 días (a nivel de laboratorio) para luego
transformarse en pupas y luego en adultos; durante este período los adultos
pasan por un período corto de vuelo. Bajo condiciones naturales el ciclo de
vida puede durar de 1 a 2 años.
- Ecología: La mayoría de los coleópteros acuáticos viven en aguas
continentales lóticas y lénticas, representados en ríos, quebradas,
riachuelos, charcas, lagunas, aguas temporales, embalses y represas.
También se les ha encontrado en zonas ribereñas tanto de ecosistemas
lóticos como lénticos. En las zonas lóticas los sustratos más
23
representativos son troncos y hojas en descomposición, grava, piedras,
arena y la vegetación sumergente y emergente. Las zonas más ricas son
las aguas someras en donde la velocidad de la corriente no es fuerte, aguas
limpias, con concentraciones de oxígeno alto y temperaturas medias. En
los ecosistemas lénticos, se encuentran principalmente en las zonas
ribereñas, ya sea nadando libremente en la superficie o sobre la
vegetación. En charcas temporales viven libremente o sobre la vegetación
sumergente. En estos ecosistemas la temperatura puede ser media, baja o
muy alta, como, por ejemplo, en las charcas temporales de zonas de baja
altitud o de alta altitud, en donde dadas las condiciones muy pocas familias
se pueden adaptar, como la familia Hidrophilidae y Dytiscidae. Algunos
coleópteros acuáticos pueden abandonar temporalmente su hábitat
acuático para pasar al terrestre, dependiendo de las condiciones y horas
del día. Así, por ejemplo, algunos de la familia Elmidae en estado adulto se
les puede encontrar en las horas de la mañana y en días calurosos, sobre
rocas o troncos que se encuentran en los ríos. Las familias Dytiscidae,
Hidrophilidae, Halipidae y Gyrinidae, entre otras, es común encontrarlas en
zonas lénticas temporales, con valores de temperatura, conductividad y el
dióxido de carbono por encima de lo normal. Estos organismos, por lo
general, presentan, además, ajustes y mecanismos evolutivos que les
permite tomar el oxígeno del aire. En cuanto a sus relaciones bióticas, los
coleópteros presentan niveles tróficos diferentes, que van desde el
segundo nivel trófico hasta el quinto nivel en las redes alimenticias
acuáticas. Algunos de ellos se les puede encontrar en varios niveles. Por
lo tanto, pueden ser herbívoros, carnívoros o detritívoros.
- Distribución geográfica: La mayoría de las familias de los coleópteros
acuáticos son cosmopolitas. Algunos se encuentran tanto en zonas
templadas como en zonas tropicales. Sin embargo, algunas familias y
especies son propias de las zonas templadas. Algunos géneros y especies
se encuentran principalmente en regiones tropicales como, por ejemplo, los
géneros de la familia Noteridae: Hydrocanthus, Suphis, Notomicrus,
Protiotterus, entre otros (Spangler,1981). Los géneros de la familia
24
Gyrinidae, Gytinus y Gyretes presentan su mayor abundancia en las zonas
tropicales.
- Taxonomía: Los coleópteros acuáticos están comprendidos dentro de
cerca de 30 familias, de las cuales sólo se incluyen en la presente guía. El
conocimiento de los coleópteros en Antioquia apenas se encuentra en
proceso de desarrollo, por lo que la información que aquí se da se debe
considerar como en avance de dicho estudio. Sólo se incluyen esquemas
para aquellas familias que hasta ahora se han confirmado.
Figura 7. Aspectos morfológicos de una larva de coleóptero. Posición dorsal y ventral. (Tomado
de Brown, 1976). citado por (ROLDÁN, 1996)
25
Figura 8. Larva de la Familia Elmidae. (GONZALES et al., 2013)
Figura 9. Psephenidae: Psephenops sp Larva. a. Vista dorsal b. Vista ventral (ROLDÁN, 1996)
26
E. Odonata
ROLDÁN (1996), describe a los Odonata de la siguiente manera:
- Biología: los odonatos han sobrevivido unos 200 millones de años sin
ningún cambio apreciable. La mayoría de los odonatos ponen sus huevos
sobre la vegetación flotante o emergente. La eclosión de los huevos se
realiza entre los 5 y 40 días después de la postura. Las larvas son
generalmente depredadoras, para lo cual juega un papel muy importante
su aguda visión. El intercambio gaseoso se realiza a través de la piel y
agallas anales. Los odonatos, llamados también libélulas o caballitos del
diablo, son insectos hemimetábolos, cuyo periodo larval es acuático,
empleando desde dos meses hasta tres años en su desarrollo hasta adulto,
de acuerdo con el tipo de especie y el clima. En su estado adulto, viven
desde pocos días hasta tres meses.
- Ecología: los odonatos viven en pozos, pantanos, márgenes de lagos y
corrientes lentas y poco profundas; por lo regular, rodeados de abundante
vegetación acuática sumergida o emergente. Viven en aguas limpias o
ligeramente eutrofizadas. Un gran número de especies de este orden
presenta larvas 3000m de altura y sobre el nivel del mar.
- Taxonomía: están los subórdenes Zygoptera y Anisoptera. La familia
Libellulidae es la más ampliamente representada. Los géneros más
comunes son: Erypthemis, Erytodiplax, Brechmorhoga, Sympetrum,
Orthemis, Pantala, y Tramea.
27
Figura 10. Características estructurales de: a. Anisoptera. b. Zygoptera Tomado de Arango,
(1982), citado por ROLDÁN (1996)
Figura 11. Libellulidae: a. Vista dorsal. b. Labio, vista dorsal. c. Abdomen, vista lateral. d. Palpo
labial derecho (ROLDÁÁ, 1996)
28
Figura 12. Coenagrionidae: a. Vista dorsal. b. Palpo labial derecho. c. Labio, vista dorsal. d.
Agalla media. e. Agalla lateral (ROLDÁN, 1996)
Figura 13. a. Vista dorsal. b. Agalla media. c. Palpo labial derecho. d. Abdomen, vista ventral
e. Labio, vista dorsal (ROLDÁN, 1996)
29
2.4. Velocidad y medición del caudal
El caudal de agua es el volumen, por ejemplo, la cantidad de litros,
que pasa por una sección específica de la quebrada, río o arroyo en un tiempo
determinado, por ejemplo, segundos (GONZALES, 2014).
2.4.1. Medición del caudal
La medición del caudal, a lo que también llamamos aforo, se puede
desarrollar de diferentes formas y su elección depende del objetivo del
monitoreo, la facilidad de acceso o tiempo con que se cuente y, por supuesto, de
las características de la fuente superficial que se pretenda medir, sus formas y
movimientos. Las características del sitio y las condiciones ambientales al
momento de su realización, también son fundamentales para definir cómo se
hará la medición del caudal en ese momento específico (GONZÁLES, 2014).
2.4.1.1. Método volumétrico.
MINAGRI (2015) La aplicación de este método es para determinar
caudales de manantiales, es decir caudales muy pequeños, que en proyectos de
riego se utiliza para poder determinar la capacidad de un reservorio nocturno a
ser almacenado con agua de manantiales. Este método se basa en medir el
tiempo que demora en llenarse un balde de un volumen conocido. Al dividir la
capacidad del balde (litros) por el tiempo empleado (segundos) se obtiene el
caudal en l/s, como se indica en la siguiente fórmula:
𝐶𝑎𝑢𝑑𝑎𝑙(𝑙 𝑠⁄ )𝑄 =𝑉𝑜𝑙𝑢𝑚𝑒𝑛 𝑑𝑒𝑙 𝑏𝑎𝑙𝑑𝑒 (𝑙𝑖𝑡𝑟𝑜𝑠)
𝑇𝑖𝑒𝑚𝑝𝑜 𝑞𝑢𝑒 𝑑𝑒𝑚𝑜𝑟𝑎 𝑒𝑛 𝑙𝑙𝑒𝑛𝑎𝑟𝑠𝑒 (𝑠)
Como toda el agua se debe recibir en un balde u otro recipiente,
este método sirve para medir caudales no muy grandes, como el caudal de
manantiales, reservorios, sifones, caja de distribución, caudal en un surco, la
descarga de algunos aspersores, salidas de sistemas californianos (MINAGRI,
2015).
30
2.5. Índices de calidad del agua (ICA)
El término indicador ambiental se define de diferentes maneras. Se
puede describir como “medidas físicas, químicas, biológicas o socioeconómicas
que mejor representan los elementos clave de un ecosistema o de un tema
ambiental”. Otra definición de indicador sería “una medida directa o indirecta de
la calidad ambiental que se puede usar para evaluar el estado y las tendencias
en la capacidad del medio ambiente para apoyar la salud humana y ecológica”.
Los indicadores ofrecen una visión de las condiciones y presiones ambientales
y respuestas de la sociedad o gobierno, son sencillos, fáciles de interpretar y
capaces de mostrar las tendencias temporales, responden a cambios en el
ambiente y las actividades humanas relacionadas, proporcionan una base para
las comparaciones internacionales y son aplicables a escala nacional o regional.
Todas estas características haces que sean útiles para monitorear las
condiciones en las que se encuentran los ecosistemas acuáticos. (LONÉ, 2018).
2.5.1. El enfoque de la diversidad
El concepto de diversidad hace referencia a la variedad de especies
que se presentan en una dimensión espacio-temporal definida, resultante de
conjuntos de interacción entre especies que se integran en un proceso de
selección, adaptación mutua y evolución, dentro de un marco histórico de
variaciones medioambientales locales (MARRUGAN, 2004).
Los índices de diversidad son expresiones matemáticas que usan
tres componentes de la estructura de la comunidad: riqueza (número de especies
presentes), equitatividad (uniformidad de la distribución de los individuos entre
las especies) y abundancia (número total de organismos presentes) para
describir la respuesta de una comunidad a la calidad de su ambiente. Una
comunidad natural se caracteriza por presentar una gran diversidad de especies
y un bajo número de individuos por especie; o un bajo número de especies y
muchos individuos de éstas. Una comunidad bajo la presión de la contaminación
se caracteriza por poseer un bajo número de especies con un gran número de
individuos por especie. Esta situación también se observa en la naturaleza en
31
lugares como en las grandes profundidades de los lagos y el mar, grandes
alturas en las montañas y en temperaturas extremas. Con base en lo anterior, la
diversidad de la comunidad se considera una medida de la calidad del agua
(ARCE, 2006).
2.5.1.1. Índice de Shannon-Wiener
Basado en la teoría de la información, este índice considera la
riqueza y abundancia, empleando una escala logarítmica; cero (0) es cuando hay
una sola especie y el máximo es lg2S (S es riqueza de especies), toma el máximo
valor cuando todas las especies están representadas por el mismo número de
individuos. Asimismo, mide la incertidumbre de predecir a que especie puede
pertenecer un individuo escogido al azar y asume que todos los individuos son
seleccionados aleatoriamente y que todas están representadas en la muestra
Magurran (1988), citado por ORELLANA (2009).
Se calcula de la siguiente manera:
𝐻′ = − ∑ 𝑝𝑖𝑙𝑜𝑔2𝑝𝑖
𝑆
𝑖=1
Donde:
S= Número de especies (la riqueza de especies)
pi= Proporción de individuos de la especie i respecto al total de individuos (es
decir la abundancia relativa de la especie): 𝑛𝑖𝑁⁄
ni = Número de individuos de la especie i
N = Número total de individuos de todas las especies.
Entre las desventajas más importantes del índice de Shannon se
puede mencionar las siguientes: (1) se puede obtener el mismo valor del índice
para una comunidad con baja riqueza y alta equidad como para una comunidad
con baja equidad y alta riqueza (Moya 2006), (2) subestima la diversidad si la
muestra es pequeña (Warwick y Clarke 1995), (3) no distingue entre especies o
familias tolerantes como quironómidos de las poco tolerantes como los Perlidae
32
(France 1990; citado por Moya 2006), (4) finalmente, se puede obtener valores
falsos negativos al evaluar el incremento en abundancia sin exclusión de
especies tolerantes ante una polución (ORELLANA, 2009).
ÑIQUE (2010), menciona que es la medida del grado de
incertidumbre que existe para predecir la especie a la cual pertenece un individuo
extraído aleatoriamente de la comunidad. Para un número dado de especies e
individuos, la función tendrá un valor mínimo cuando todos los individuos
pertenecen a una misma especie y un valor máximo cuando todas las especies
tengan la misma cantidad de individuos. Una característica de Shannon –
Weaver es su sensibilidad a los cambios en la abundancia de las especies raras;
por ello es aplicable en los estudios de conservación de la naturaleza.
2.5.2. El enfoque biótico
Suelen ser específicos para un tipo de contaminación y/o región
geográfica, y se basan en el concepto de los organismos indicadores. Permiten
la valoración del estado ecológico de un ecosistema acuático afectado por un
proceso de contaminación. Para ello se les asigna un valor numérico a los grupos
de invertebrados de una muestra en función de su tolerancia a un tipo de
contaminación. Los más tolerantes reciben un valor numérico menor y los más
sensibles un valor numérico mayor, la suma de todos estos valores indica la
calidad de ese ecosistema (Baddi et al. (2005), citado por GIL (2014)).
2.5.2.1. El índice Biological Monitoring Working Party
(BMWP/Col)
El Biological Monitoring Working Party (BMWP) fue establecido en
Inglaterra 1970, como método sencillo y rápido para evaluar calidad del agua
usando macroinvertebrados como bioindicadores. Este método sólo requiere
llegar hasta familia y los datos son cualitativos (presencia o ausencia). El puntaje
va de 1 a 10 de acuerdo con la tolerancia de los diferentes grupos a la
contaminación orgánica. Las familias más sensibles, Perlidae y Oligoneuriidae,
reciben puntaje de 10; en cambio, las más tolerantes a la contaminación, por
33
ejemplo, Tubificidae, reciben puntuación de 1. La suma de todos los puntajes de
las familias proporciona el puntaje total BMWP. El puntaje promedio por taxón
conocido como ASPT (Average Store per Taxón), es el puntaje total para la
evaluación del sitio; se calcula dividiendo el puntaje total BMWP por el número
de taxones calificados en la muestra, lo cual expresa el promedio de indicación
de calidad del agua que tienen las familias de macroinvertebrados encontradas
en un sitio determinado. Los valores ASPT van de 0 a 10; un valor bajo de ASPT
asociado a un puntaje bajo de BMWP indicará condiciones graves de
contaminación. Los valores de puntaje para las familias individuales reflejan su
tolerancia a la contaminación con base en el conocimiento de la distribución y
abundancia (ROLDÁN, 2003).
Teóricamente, una medida ideal de la calidad del agua estaría dada
por la determinación del grado de composición al cual una comunidad difiere de
la que fue considerada típica para un determinado ecosistema acuático. Usando
un modelo computarizado llamado RIPACS (River Invertebrate Prediction y
Classification System) desarrollado en Inglaterra, es posible comparar la
comunidad de invertebrados encontrada en un sitio determinado con la prevista
en un lugar no contaminado (ROLDÁN, 2003).
La bioindicación en Colombia se remonta a los años setenta con los
trabajos de Roldán, cuando por primera vez se realizó un estudio de la fauna de
macroinvertebrados como indicadores del grado de contaminación del río
Medellín. Roldán en 1988 publicó la primera guía para la identificación de los
macroinvertebrados acuáticos en el departamento de Antioquia, y luego se
comprobó su aplicación para la mayoría de los países neotropicales. También
en 1992 publicó el libro Fundamentos de Limnología Neotropical y
posteriormente adaptó el sistema del BMWP para evaluar la calidad del agua en
Colombia mediante el uso de macroinvertebrados acuáticos y finalmente Zamora
en el 2005 realizó una adaptación del índice BMWP para la evaluación de la
calidad de las aguas epicontinentales en Colombia (GIL, 2014).
34
Cuadro 1. Puntaje de las familias de macroinvertebrados acuáticos para el
índice BMWP/Col.
Familias Puntajes
Anomalopsychidae, Atriplectididae, Blepharoceridae,
Calamoceratidae, Ptilodactylidae, Chordodidae, Gomphidae,
Hydridae, Lampyridae, Lymnessiidae, Odontoceriidae,
Oligoneuriidae, Perlidae, Polythoridae, Psephenidae.
10
Ampullariidae, Dytiscidae, Ephemeridae, Euthyplociidae,
Gyrinidae, Hydraenidae, Hydrobiosidae, Leptophlebiidae,
Philopotamidae, Polycentropodidae, Polymitarcydae,
Xiphocentronidae.
9
Gerridae, Hebridae, Helicopsychidae, Hydrobiidae, Leptoceridae,
Lestidae, Palaemonidae, Pleidae, Pseudothelpusidae, Saldidae,
Simuliidae, Veliidae.
8
Baetidae, Caenidae, Calopterygidae, Coenagrionidae, Corixidae,
Dixidae, Dryopidae, Glossossomatidae, Hyalellidae, Hydroptilidae,
Hydropsychidae, Leptohyphidae, Naucoridae, Notonectidae,
Planariidae, Psychodidae, Scirtidae.
7
Aeshnidae, Ancylidae, Corydalidae, Elmidae, Libellulidae,
Limnichidae, Lutrochidae, Megapodagrionidae, Sialidae,
Staphylinidae.
6
Belostomatidae, Gelastocoridae, Mesoveiidae, Nepidae,
Planorbiidae, Pyralodae, Tabanidae, Thiaridae 5
Chysomelidae, Stratiomyidae, Haliplidae, Empididae, Sphaeridae,
Lymnaeidae, Hydrometridae, Noteridae, Dolichopodidae
4
Ceratopogonidae, Glossiphoniidae, Cyclobdellidae,
Hydrophilidae, Physidae, Tipulidae. 3
Culicidae, Chironomidae, Muscidae, Sciomyzidae, Syrphidae. 2
Tubificidae 1 Fuente: ROLDÁN (2003).
35
Cuadro 2. Clasificación de las aguas y su significado ecológico de acuerdo a
BMWP/Col
Clase Calidad
Valor
del
BMWP
Significado Color
I Buena
> 150 Aguas muy limpias
101-
120 Aguas no contaminadas
II Aceptable 61-100 Aguas ligeramente contaminadas; se
evidencian efectos de contaminación.
III Dudosa 36-60 Aguas moderadamente contaminadas
IV Crítica 16-35 Aguas muy contaminadas
V Muy
Crítica <15
Aguas fuertemente contaminadas, situación
crítica
Fuente: ROLDÁN (2003).
2.5.2.2. Índice - EPT (Ephemeroptera, Plecoptera y Trichoptera)
Este índice califica la calidad del agua por medio de los órdenes
Ephemeroptera, Plecoptera y Trichoptera, estos tres órdenes de insectos son
muy vulnerables a las alteraciones del ecosistema acuático especialmente a la
degradación de la calidad del agua Alonso y Camargo (2005), citado por
MONTOYA (2016).
La metodología a seguir para hallar este índice es: primero ordenar
por columnas, en la primera columna de debe colocar el total de organismos
clasificados, en la segunda se coloca la abundancia de estos y en la tercera
columna la abundancia de los EPT, y finalmente el total de individuos
pertenecientes a los órdenes EPT se divide entre el total de individuos de la zona
evaluada y se multiplica por 100 (Endara 2012). Los resultados se deben de
comparar con la tabla de clasificaciones que se presenta en el Cuadro 3 de
Carrera y Fierro (2001), citado por MONTOYA (2016).
36
Cuadro 3. Clasificación de la calidad del agua según el EPT
Rangos Calidad de agua
75%-100% Muy buena
50%-74% Buena
25%-49% Regular
0%- 24% Mala
Fuente: Carrera & Fierro (2001), citados por (MONTOYA, 2016)
2.6. Estándares de calidad ambiental para el agua superficial (ECA- Agua)
Los Estándares Nacionales de Calidad Ambiental (ECA) para Agua
son de cumplimiento obligatorio en la determinación de los usos de los cuerpos
de agua, atendiendo a sus condiciones naturales o niveles de fondo, y en el
diseño de normas legales y políticas públicas, de conformidad con lo dispuesto
en la Ley N° 28611, Ley General del Ambiente (MINAM, 2017).
Los estándares se establecen de acuerdo a cuatro categorías: (1)
Poblacional y Recreacional con tres sub categorías, cuando las aguas son
destinadas para la producción de agua potable y dos sub categorías cuando las
aguas son destinadas para la recreación (Contacto primario y secundario); (2)
Aguas para actividades marino costeras con tres sub categorías; (3) Aguas para
riego de vegetales y bebida de animales y (4) Aguas para la conservación del
ambiente acuático que tiene las sub categorías de lagunas y lagos, ríos de costa
y sierra, ríos de selva, estuarios y ecosistemas marinos (MINAM, 2017).
La Categoría Nº 4 Conservación del ambiente acuático, la cual es
interés del presente trabajo, tuvo como criterios; la recopilación de información
de la calidad del agua superficial en el país, la revisión de las Normas técnicas
Ambientales de los países de Chile, Venezuela, Honduras, Paraguay, y Guías
Internacionales, que tuvo como referencia base la Ley General de Aguas,
actualmente modificada a la Ley de los Recursos Hídricos (MINAM, 2017).
37
Cuadro 4. Estándares de calidad ambiental para la conservación del recurso
categoría 4.
Parámetro Unidad E2: Ríos
Selva
Físicos –Químicos
Aceites y grasa mg/L 5.0000000
Cianuro total mg/L 0.0052000
Color Color
verdadero escala Pt/Co 20 (a)
Clorofila A mg/L|
Conductividad us/cm 1000.0000
Demanda bioquímica de
oxigeno mg/L 10.000000
Fenoles mg/L 2.5600000
Fosforo total mg/L 0.0500000
Nitratos mg/L 13.000000
Amoniaco mg/L 1.0000000
Nitrógeno total mg/L --
Oxígeno disuelto (valor
mínimo) mg/L ≥5
Potencial de hidrógeno Unidad de pH 6.5 a 9.0
Solidos suspendidos
totales mg/L ≤400
Sulfuros mg/L 0.0020000
Temperatura °C Δ 3
INORGANICOS
Antimonio mg/L 0.6400000
Arsénico mg/L 0.1500000
Bario mg/L 1.0000000
Cadmio mg/L 0.0002500
Cobre mg/L 0.1000000
38
Cromo VI mg/L 0.0110000
Mercurio mg/L 0.0001000
Níquel mg/L 0.0520000
Plomo mg/L 0.0025000
Selenio mg/L 0.0050000
Talio mg/L 0.0008000
Zinc mg/L 0.1200000
ORGANICOS
I. Compuestos orgánicos volátiles
Hidrocarburos totales de
petróleo disuelto HTTP mg/L 0.5000000
Hexaclorobutanodieno mg/L 0.0006000
BTEX
Benceno mg/L 0.0500000
Hidrocarburos aromáticos
Benzo(a)pireno mg/L 0.0001000
Antraceno mg/L 0.0004000
Fluoranteno mg/L 0.0010000
PLAGUICIDAS
Organofosforados
Malatión mg/L 0.0001000
Parathion mg/L 0.0000130
ORGANOCLORADOS
Aldrin mg/L 0.0000040
Clordano mg/L 0.0000043
DDT (Suma de 4,4' -
DDD y 4,4 -DDE mg/L 0.0000010
Dieldrin mg/L 0.0000560
Endosulfan mg/L 0.0000560
Endrin mg/L 0.0000360
Heptacloro mg/L 0.0000038
39
Heptacloro epóxido mg/L 0.0000038
Lindano mg/L 0.0009500
Pentaclorofenol (PCP) mg/L 0.0010000
CARBAMATO
Aldicarb mg/L 0.0010000
MICROBIOLOGICO
Coliformes
termotolerantes (44,5°C) NPM/100 mL 2000.0000
Fuente: MINAM (2017)
40
III. MATERIALES Y MÉTODOS
3.1. Lugar de ejecución
3.1.1. Ubicación política
El presente trabajo de investigación se llevó a cabo en las quebradas
Naranjal y Córdova, situada en el área del Bosque Reservado de la Universidad
Nacional Agraria de la Selva (BRUNAS), ciudad de Tingo María, provincia de
Leoncio Prado, departamento de Huánuco; cuyas coordenadas geográficas UTM
dentro se muestran en los Cuadros 5 y 6.
Cuadro 5. Coordenadas UTM de los puntos de muestreo de la quebrada Naranjal
Estación de
muestreo
Distancia (m)
Altitud (m.s.n.m)
Coordenadas UTM (WGS84) Zona
Este (m) Norte (m)
E1 E1-E2 339 667 390198 8970489 Presión antrópica alta
E2 E2-E3 300 646 390414 8970765 Presión antrópica moderada
E3 E1-E3 604 686 390708 8970727 Presión antrópica nula
Cuadro 6. Coordenadas UTM de los puntos de muestreo de la quebrada Córdova
Estación de
muestreo
Distancia (m)
Altitud (m.s.n.m)
Coordenadas UTM (WGS84)
Zona
Este (m) Norte (m)
E1 E1-E2 200 671 390793 8969665 Presión antrópica alta
E2 E2-E3 150 707 390854 8969801 Presión antrópica moderada
E3 E1-E3 400 688 390886 8969915 Presión antrópica nula
41
Figura 14. Mapa de ubicación de los puntos de muestreo en las quebradas Naranjal y Córdova
3.1.2. Clima
Según SENAMHI (2019) la provincia de Leoncio Prado presenta un
clima tropical, cálido y húmedo, con características diferenciadas por la variación
de temperatura y volumen de precipitación pluvial.
Figura 15. Datos climatológicos de Tingo María del 2018.
42
3.1.3. Temperatura
En el distrito de Rupa Rupa, la variación térmica es elevada y puede
alcanzar 20°C de diferencia con mínimos de 18 °C y máximos de 38 °C lo que
se traduce en ciclos climáticos más acentuados (SIAS, 2014).
3.1.4. Precipitaciones
El territorio pertenece a la región natural Rupa Rupa o Selva Alta,
con una zona de vida de bosque muy húmedo montano tropical (bmh-mt) que
propicia el crecimiento de abundante vegetación arbórea y arbustiva, y un clima
cálido húmedo lluvioso con abundantes precipitaciones pluviales durante 5
meses del año, estimándose una precipitación media anual de 2,905.7mm.
(SIAS, 2014).
3.1.5. Humedad relativa
El clima del alto Huallaga se clasifica como sub- húmedo, la
combinación de calor y lluvias extremas dan como resultados índices de
humedad relativa altas. La humedad relativa media fluctúa entre 80 y 90% y el
ritmo de variación corresponde al ciclo de lluvias; durante la estación seca, se
registran los más bajos promedios. Por tanto, la humedad relativa mensual
promedio es de 85.67% y su ritmo de variación está de acuerdo al ciclo de lluvias,
es así que durante la estación de lluvias se registra una mayor humedad (SIAS,
2014).
3.1.6. Fisiografía del BRUNAS
Altitudinalmente el área se encuentra ubicada desde los 667 hasta
los 1 092 msnm determinándose tres unidades fisiográficas bien definidas:
Colina Baja con una extensión de 22,91 ha, seguida de colina alta con 150,74
ha, que representa la geoforma con mayor superficie y finalmente la zona
montañosa con 43,57 ha, esta unidad lleva el nombre de Cerro Cachimbo por
encontrarse en su mayor parte desprovista de vegetación arbórea. Respecto a
la pendiente; El 70,74 % del área total del BRUNAS presenta una pendiente
43
cuyos valores superan al 25%, lo que indica que pertenece a una zona
eminentemente de protección (SIAS, 2014).
Figura 16. Modelo de Fisiografía
3.1.7. Zonas de vida del BRUNAS
Ecológicamente de acuerdo a la clasificación de zonas de vida o
formaciones vegetales del mundo y el diagrama bioclimático de Holdridge
(1982), citado por SIAS (2014) el BRUNAS se encuentra en la formación vegetal
bosque muy húmedo Pre-montano Sub Tropical bmhPST, y de acuerdo a las
regiones naturales del Perú corresponde a Rupa Rupa o Selva Alta.
3.1.8. Composición arbórea del BRUNAS
Alberga en su interior especies arbóreas como: huangana caspi
(Senefeldera inclinata), shiringa (Hevea brasiliensis), cicotria (Psychotria
caerulea), huamansamana (Jacaranda copaia) caimito (Pouteria caimito), cetico
(Cecropia sciadophylla), cumala (Virola pavonis), apuleya (Apuleia leiocarpa),
moena (Nectandra magnoliifolia), quina (Cinchona officinalis), paliperro (Vitex
pseudolea), machimango (Couratori macrosperma), carahuasca (Guatteria
modesta), cumala (Iryanthera tricornis), moena (Persea grandis), tornillo
(Cedrelinga cateniformis), papaya caspi (Jacaratia digitata), entre otras
Rodriguez (2000), citado por SIAS (2014).
44
3.1.9. Red hídrica del BRUNAS
Cuenta con seis quebradas: Córdova, Cocheros, Naranjal, Asunción
Saldaña, Del Águila y Zoocriadero que se inician en la parte montañosa y
desembocan en el río Huallaga. En sus recorridos de este a oeste proveen de
agua a la UNAS, así como los asentamientos humanos ubicados adyacentes a
esta área como Buenos Aires, Asunción Saldaña, Stiven Ericsson, Mercedes
Alta, Quebrada del Águila y San Martín (SIAS, 2014).
3.2. Materiales y equipos.
3.2.1. Materiales
- Alcohol
- 6 frascos de vidrio
- 200 frascos pequeños
- Guantes
- Pinza metálica de punta fina
- Botas
- Cámara fotográfica.
- 1 cuaderno de campo
- 1 machete
- 1 wincha de 50 metros
- Guías de identificación de macroinvertebrados
- Red Súber
3.2.2. Equipos
- Multiparámetro
- Oxímetro
- Laptop
- Estereoscopio
- GPS GARMIN
45
3.3. Metodología
La presente metodología se encuentra desarrollado en base a los
criterios establecidos en la guía del MINAM “Métodos de colecta, identificación y
análisis de comunidades biológicas: plancton, perifton, bentos
(macroinvertebrados) y necton (peces) en aguas continentales del Perú” y, el
“Manual de monitoreo: Los macroinvertebrados acuáticos como indicadores de
la calidad del agua.”
Para el estudio se determinaron 3 zonas de muestreo de macro
invertebrados en las quebradas Naranjal y Córdova; la zona alta ubicada dentro
de un sistema natural no alterado por el hombre, zona media ubicada dentro de
un bosque secundario límite entre área natural no alterado y área alterado por el
hombre (ecotono), zona baja área afectada por los residuos de las actividades
del hombre, además se tuvo en cuenta que sea uniforme, para que la colecta de
macroinvertebrados no sea tan complicada.
En cada zona de muestreo se delimitó 20 metros de largo, y esta
área señalada se volvió a dividir en tres secciones para facilitar el muestreo, la
colecta se llevó a cabo durante media hora en cada sección dividida dentro de
la zona de muestreo, haciendo un total de 1:30 horas por cada zona, para
después de esto ser trasladado al laboratorio de entomología.
Asimismo, se recolectó la muestra de agua en cada zona de
muestreo, siguiendo con la metodología del (ANA, 2016) que después fue
trasladado al laboratorio de microbiología para hacer las mediciones de los
parámetros fisicoquímicos correspondientes.
En este estudio, los muestreos fisicoquímicos y biológicos se
realizaron los meses de agosto (seca) y setiembre (lluviosa) del 2018 periodo en
los cuales se esperaba encontrar una comunidad más estable y mayor
abundancia de organismos bentónicos en la época lluviosa y poder comparar
con la época seca. Las fechas de estos muestreos fueron establecidos con base
en los registros históricos de la estación climatológica de Tingo María.
46
3.3.1. Diseño del estudio
Se aplicó un diseño descriptivo correlacional para tres (03)
estaciones de muestreo distribuidas en la quebrada Naranjal y Córdova para
identificar si hay cambios en el cauce, y se realizó tres evaluaciones; la primera,
correspondiente al 17 de agosto del 2018, la segunda el 31 de agosto del 2018
y la ultima el 14 de setiembre del 2018 con un intervalo de dos semanas en cada
estación de muestreo, para determinar si hay cambios en la calidad del agua
respecto al tiempo y clima.
3.3.2. Identificación de las zonas de muestreo
Se identificaron los hábitats existentes en el tramo de estudio,
definiéndolos en base a diferentes combinaciones de profundidad, velocidad del
agua, naturaleza del sustrato y a la presencia de vegetación, georreferenciado
posteriormente con un GPS marca Garmin.
Se estandarizó los sitios de muestreo en cuanto a sus características
físicas se consideró el caudal, teniendo en cuenta para ello velocidades
moderadas y una baja profundidad; se utilizó el método volumétrico.
Cuadro 7. Características físicas de la Quebrada Naranjal
Estaciones Caudal (l/s)
E1 (Parte baja) 7.8
E2 (Parte media) 8.6
E3 (Parte alta) 8.9
Cuadro 8. Características físicas de la Quebrada Córdova
Estaciones Caudal (l/s)
E1 (Parte baja) 8.7
E2 (Parte media) 9.2
E3 (Parte alta) 9.5
47
Se definieron 03 zonas de muestreo de acuerdo a la actividad
antrópica ejercida en el cuerpo de agua, cada zona con su respectiva estación
de muestreo ubicado a lo largo de las quebradas Naranjal y Córdova.
3.3.2.1. Zonas de muestreo de la quebrada Naranjal
La Estación 1 (E1) parte baja, ubicada dentro del internado Elefante
Blanco de la Universidad Nacional Agraria de la Selva, considerada alterada por
la alta presión antrópica debido a que la quebrada Naranjal antes de llegar a esa
estación de muestreo se junta con el desagüe de las viviendas de la UNAS,
además de que los residuos sólidos son arrojados a esta fuente de agua por
parte de los que viven en los internados aledaños también se observa que es
una zona con menos vegetación y existencia de pasto.
Figura 17. Estación de muestreo E1 de la quebrada Naranjal
La Estación 2 (E2) parte media, ubicada al frente del internado de
mujeres de la UNAS y al costado de la carpintería de la especialidad de
Ingeniería Forestal, por la alta concurrencia de personas se considera actividad
antrópica moderada.
48
Figura 18. Estación de muestreo E2 de la quebrada Naranjal
La Estación 3 (E3) parte alta, ubicada en el Bosque Reservado de la
Universidad Nacional Agraria de la Selva antes del reservorio de la quebrada
Naranjal donde la vegetación en el margen derecho e izquierdo es bosque y la
concurrencia de personas es baja, por eso es considerado zona con actividad
antrópica nula.
Figura 19. Estación de muestreo E3 de la quebrada Naranjal
49
3.3.2.2. Zonas de muestreo de la quebrada Córdova
La Estación 1 (E1) parte baja, ubicada dentro de la facultad de
Agronomía de la Universidad Nacional Agraria de la Selva, considerada alterada
por la alta presión antrópica debido a que a que hay viviendas al costado de la
quebrada y arrojan sus residuos al agua, haciendo de este un lugar poco
habitable para algunas especies y habitables para otros.
Figura 20. Estación de muestreo E3 de la quebrada Córdova
La Estación 2 (E2) parte media, ubicada al costado de las casas de
ATE dentro del campus de la UNAS se considera actividad antrópica moderada
por la concurrencia de personas y también por que depositan sus residuos al
agua.
50
Figura 21. Estación de muestreo E2 de la quebrada Córdova
La Estación 3 (E3) parte alta, ubicada en el Bosque reservado de la
Universidad Nacional Agraria de la Selva donde la vegetación en el margen
derecho e izquierdo de la quebrada Córdova es bosque, donde la concurrencia
de personas es baja y por eso es considerado zona con actividad antrópica nula.
Figura 22. Estación de muestreo E3 de la quebrada Córdova
51
3.3.3. Toma de muestras para la evaluación
3.3.3.1. Colecta de macroinvertebrados acuáticos
Los macroinvertebrados fueron colectados haciendo uso de dos
métodos: la recolección manual que consistió en levantar rocas, ramas y troncos
en cuya superficie se encuentran numerosos organismos adheridos. Los
organismos son colectados con pinzas de punta fina y puestos en frascos
pequeños con alcohol al 90%; la red surber, el cual este método consistió en
colocar en la parte baja el marco metálico de 30x30 (triangulo) contra la corriente
para retener los organismos arrastrados por la corriente y por último los
organismos fueron colectados en los frascos que contenían alcohol.
Luego de la colecta en cada zona de muestreo fueron trasladados al
laboratorio de entomología, para su posterior identificación con la ayuda del
estereoscopio.
3.3.3.2. Caracterización fisicoquímica del agua
La toma de muestras se realizó en tres etapas de muestreo, en
cuatro (03) estaciones de muestreo; considerando el Protocolo del (ANA, 2016),
se utilizó frascos de vidrio de 500 ml debidamente esterilizados y rotulados. Una
vez ubicados los puntos de muestreo, se destapó el frasco y sumergió
rápidamente a 20 cm. de profundidad en forma horizontal. Las muestras
recolectadas se conservaron en una caja térmica (Cooler) hasta su traslado al
laboratorio de microbiología de Universidad Nacional Agraria de la Selva.
3.3.4. Identificación de macroinvertebrados acuáticos
La identificación se realizó en el Laboratorio de Entomología de la
Universidad Nacional Agraria de la Selva a cargo del Blgo. M.Sc. José Luis Gil
Bacilio; y el informe de especies identificadas (Anexo G); procediendo a la
extracción de los organismos con la ayuda de pinzas entomológicas de punta
fina teniendo cuidado de no maltratarlos, utilizando un estereoscopio con 10X de
52
aumento y la literatura correspondiente para este fin, así como “Guía para el
estudio de los macroinvertebrados acuáticos del Departamento de Antioquia,
Colombia” (ROLDÁN, 1996) y la “Guía de laboratorio de Limnología de
macroinvertebrados bentónicos”(GONZALES et al, 2013).
3.3.5. Cálculos para determinar índice ecológico de la comunidad de
macroinvertebrados acuáticos
Para determinar el índice ecológico de Shannon-Weaver de la
comunidad de macroinvertebrados acuáticos por estación de muestreo de la
quebrada Naranjal y Córdova, se hizo uso del paquete estadístico PAST 3.14,
usando la fórmula.
H′ = − ∑(pi × lnpi)
S
i=1
Donde:
H’: Índice de Shannon-Weaver (bits/ind)
pi: abundancia relativa
ln: logaritmo natural
3.3.6. Cálculo del índice (BMWP/Col).
Con los datos obtenidos de la identificación de los
macroinvertebrados acuáticos que se muestran, se desarrolló el cálculo del
índice BMWP/Col.
A las familias identificadas se les otorgó el puntaje respectivo de
tolerancia de acuerdo al cuadro 1. Posteriormente se sumaron los puntajes
correspondientes a cada una de las familias existentes, obteniendo como
resultado final el valor del índice BMWP/Col. La interpretación de la calidad
biológica del agua se realizó de acuerdo al cuadro 2, el cual detalla la clase,
calidad, significado y color del valor obtenido del índice como lo indica (ROLDÁN,
2003).
53
3.3.7. Cálculo del índice EPT
Según CARRERA y FIERRO (2001), este análisis se hace mediante
el uso de tres grupos de macroinvertebrados que son indicadores de la calidad
del agua porque son más sensibles a los contaminantes. Estos grupos son:
Ephemeroptera o moscas de mayo, Plecoptera o moscas de piedra y
Trichoptera. Con los datos obtenidos de la identificación de los
macroinvertebrados acuáticos que se muestran, se desarrolló el cálculo del
índice EPT.
Una vez que haya identificado los grupos presentes en cada estación
de muestreo se procedió a colocar el número de individuos de la familia EPT en
otra columna que dice EPT presentes. Se procede a sumar los números de la
columna EPT Presentes y anotar el resultado en el cuadro de Total.
Para calcular el valor del índice EPT se realiza con la siguiente
formula.
𝐸𝑃𝑇 = (𝑁𝑢𝑚𝑒𝑟𝑜 𝑑𝑒 𝑖𝑛𝑑𝑖𝑣𝑖𝑑𝑢𝑜𝑠 𝑑𝑒 𝐸𝑃𝑇 𝑝𝑟𝑒𝑠𝑒𝑛𝑡𝑒𝑠
𝑁𝑢𝑚𝑒𝑟𝑜 𝑡𝑜𝑡𝑎𝑙 𝑑𝑒 𝑖𝑛𝑑𝑖𝑣𝑖𝑑𝑢𝑜𝑠) ∗ 100
54
IV. RESULTADOS
4.1. Analizar las variables fisicoquímicas para la calidad de agua de las
quebradas Naranjal y Córdova
4.1.1. Caracterización fisicoquímica del agua de la quebrada naranjal
Los valores de los parámetros fisicoquímicos determinados
muestran variaciones de acuerdo a las etapas muestreadas, reflejándose en las
tres estaciones evaluadas.
• Potencial de hidrogenión - pH
En la figura 23, el valor del pH del agua varía por estación de
muestreo y día evaluado; el 17 de agosto el valor más alto de pH corresponde a
la parte baja con 8.1 y un mínimo en la parte alta con 7.2; el 31 de agosto, se
registra el valor en la parte baja 7.9 y un mínimo correspondiente a la parte alta
con 7.1; el 14 de setiembre se registró en la parte baja 7.7 y un valor mínimo en
la parte alta 6.8. Las tres zonas de muestreo cumplen con los estándares de
calidad ambiental para la conservación ya que no sobrepasa 9 de pH.
55
Figura 23. pH por estación de muestreo y día evaluado
• Oxígeno disuelto – OD
En la figura 24, el valor del OD del agua varía por estación de
muestreo y día evaluado; el 17 de agosto el valor más alto de OD corresponde
a la parte alta con 7.47 y un mínimo en la parte baja con 4.41; el 31 de agosto,
se registra el valor en la parte alta 7.2 y un mínimo correspondiente a la parte
baja con 4.3; el 14 de setiembre se registró en la parte alta 6.32 y un valor mínimo
en la parte baja de 4.26. La parte baja no cumple con los ECAS para la
conservacion ya que esta debajo del valor establecido, mientras que la parte
media y alta estan dentro de lo establecido.
Figura 24. OD por estación de muestreo y día evaluado
56
• Temperatura - t
En la figura 25, el valor de la t del agua varía por estación de
muestreo y día evaluado; el 17 de agosto el valor más alto de t corresponde a la
parte alta con 25.7 y un mínimo en la parte baja con 26.9; el 31 de agosto, se
registra el valor en la parte media y alta 27.9 y un mínimo correspondiente a la
parte baja con 27.7; el 14 de setiembre se registró en la parte alta 29.3 y un valor
mínimo en la parte media 28.1. Las tres zonas de muestreo cumplen con lo
establecido en los ECAS agua para la conservación.
Figura 25. Temperatura por estación de muestreo y día evaluado
• Conductividad eléctrica - CE
En la figura 26, el valor de la CE del agua varía por estación de
muestreo y día evaluado; el 17 de agosto el valor más alto de CE corresponde a
la parte baja con 1200 y un mínimo en la parte alta con 156; el 31 de agosto, se
registra el valor en la parte baja 1225 y un mínimo correspondiente a la parte alta
con 104; el 14 de setiembre se registró en la parte baja 1140 y un valor mínimo
en la parte alta 94.La parte baja no cumple con los ECAS agua para la
conservación ya que sobrepasa lo establecido que es 1000 us/cm en cuanto a
las otras zonas de muestreo están dentro del rango establecido.
57
Figura 26. CE por estación de muestreo y día evaluado
4.1.2. Caracterización fisicoquímica del agua de la quebrada Córdova
Los valores de los parámetros fisicoquímicos determinados
muestran variaciones de acuerdo a las etapas muestreadas, reflejándose en las
tres estaciones evaluadas.
• Potencial de hidrogenión - pH
En la figura 27, el valor del pH del agua varía por estación de
muestreo y día evaluado; el 17 de agosto el valor más alto de pH corresponde a
la parte baja con 8.22 y un mínimo en la parte alta con 6.9; el 31 de agosto, se
registra el valor en la parte baja 8.14 y un mínimo correspondiente a la parte alta
con 7.1; el 14 de setiembre se registró en la parte baja 7.8 y un valor mínimo en
la parte alta 7.1. Las tres zonas de muestreo cumplen con los estándares de
calidad ambiental para la conservación ya que no sobrepasa 9 de pH.
58
Figura 27. pH por estación de muestreo y día evaluado
• Oxígeno disuelto – OD
En la figura 28, el valor del OD del agua varía por estación de
muestreo y día evaluado; el 17 de agosto el valor más alto de OD corresponde
a la parte alta con 7.22 y un mínimo en la parte baja con 6.92; el 31 de agosto,
se registra el valor en la parte alta 7.45 y un mínimo correspondiente a la parte
baja con 7.34; el 14 de setiembre se registró en la parte alta 6.57 y un valor
mínimo en la parte baja 6.21. Las tres zonas de muestreo cumplen con los
estándares de calidad ambiental para la conservación ya que no está debajo de
5 de OD.
Figura 28. OD por estación de muestreo y día evaluado
59
• Temperatura - t
En la figura 29, el valor de la t del agua varía por estación de
muestreo y día evaluado; el 17 de agosto el valor más alto de t corresponde a la
parte alta con 25.7 y un mínimo en la parte baja con 26.9; el 31 de agosto, se
registra el valor en la parte media y alta 27.9 y un mínimo correspondiente a la
estación de muestreo parte baja con 27.7; el 14 de setiembre se registró en la
parte alta 29.3 y un valor mínimo en la parte media 28.1 Las tres zonas de
muestreo cumplen con lo establecido en los ECAS agua para la conservación.
Figura 29. Temperatura por estación de muestreo y día evaluado
• Conductividad eléctrica - CE
En la figura 30, el valor de la CE del agua varía por estación de
muestreo y día evaluado; el 17 de agosto el valor más alto de CE corresponde a
la parte baja con 490 y un mínimo en la parte alta con 135; el 31 de agosto, se
registra el valor en la parte baja 460 y un mínimo correspondiente a la parte alta
con 117; el 14 de setiembre se registró en la parte baja 467 y un valor mínimo
en la parte alta 113. Las tres zonas de muestreo cumplen con lo establecido en
los ECAS agua para la conservación ya que la conductividad no sobrepasa los
1000 us/cm.
60
Figura 30. CE por estación de muestreo y día evaluado
4.2. Identificación del orden y familia de macroinvertebrados de la
quebrada Naranjal y Córdova
4.2.1. Identificación del orden y familia de la quebrada Naranjal
La figura 31, muestra la composición en porcentaje de
macroinvertebrados acuáticos de la E1, E2, E3 del día 17 de agosto del 2018.
Figura 31. Composición en porcentaje de macroinvertebrados acuáticos a nivel de familia y
estación de muestreo.
61
La estación de muestreo E1 (Parte baja) estuvo compuesto
principalmente por la familia Glossiphoniidae 71 % del orden Hirudínea, y
también por la familia Tubificidae con un 29 % del orden Oligochaeta.
La estación de muestreo E2 (Parte media) estuvo compuesta en
gran parte por el orden Ephemeroptera representado por la familia
Leptophlebiidae en un 23 % y los órdenes Trichoptera, Ephemeroptera,
Plecoptera con un 18 % cada uno, también se encontró a la familia Planariidae
con el 14 %, y presentando en menor proporción a las familias Libellulidae y
Elmidae.
La estación de muestreo E3 (Parte alta) estuvo compuesto
generalmente por el orden Plecoptera con la familia Perlidae, también se
encontró a los órdenes Trichoptera con la familia Hidropsychidae, Tricladida con
la familia Planariidae en un 14 % cada una, presentando en menor composición
a las familias Odontoceriidae, Planorbidae, Euthyplociidae, Libellulidae.
La comunidad de macroinvertebrados acuáticos estuvo
representada principalmente por la clase Insecta 72 %. A nivel de órdenes, los
más representativos fueron Plecoptera y Trichoptera, Planariidae que conforman
el 41 % del total de taxa colectados (Cuadro 21)
La figura 32, muestra la composición en porcentaje de
macroinvertebrados acuáticos de las 3 estaciones de muestreo del día 31 de
agosto del 2018.
62
Figura 32. Composición en porcentaje de macroinvertebrados acuáticos a nivel de familia y
estación de muestreo.
La estación de muestreo E1 (Parte baja) estuvo compuesto
principalmente por la familia Glossiphoniidae 40 % del orden Hirudínea, y
también por la familia Tubificidae con un 60 % del orden Oligochaeta.
La estación de muestreo E2 (Parte media) estuvo compuesta en
gran parte por el orden Plecoptera representado por la familia Perlidae en un
41 % y el orden Coleoptera de la familia Elmidae 36 % y presentando en menor
proporción a las familias Planariidae, Coenagrionidae, Hidropsychidae.
La estación de muestreo E3 (Parte alta) estuvo compuesto
generalmente por el orden Plecoptera con la familia Perlidae 23 %, también se
encontró a los órdenes Trichoptera con la familia Hidropsychidae 21 %,
presentando en menor composición a las familias Leptophlebiidae,
Odontoceriidae, Elmidae, Euthyplociidae, Libellulidae.
La comunidad de macroinvertebrados acuáticos estuvo
representada principalmente por la clase Insecta 84 %. A nivel de órdenes, los
más representativos fueron Plecoptera y Trichoptera y Coleoptera que
conforman el 52 % del total de taxa colectados (Cuadro 21).
63
La figura 33, muestra la composición en porcentaje de
macroinvertebrados acuáticos de las 3 estaciones de muestreo del día 14 de
setiembre del 2018.
Figura 33. Composición en porcentaje de macroinvertebrados acuáticos a nivel de familia y
estación de muestreo.
La estación de muestreo E1 (Parte baja) estuvo compuesto
principalmente por la familia Glossiphoniidae 50 % del orden Hirudínea, y
también por la familia Tubificidae con un 50 % del orden Oligochaeta.
La estación de muestreo E2(Parte media) estuvo compuesta en gran
parte por el orden Plecoptera representado por la familia Perlidae en un 22 % y
los órdenes Trichoptera, Tricladida con un 16 % cada uno, también se encontró
a la familia Elmidae con el 13 %, y presentando en menor proporción a las
familias Libellulidae y Euthyplociidae, Polythoridae.
La estación de muestreo E3 (Parte alta) estuvo compuesto
generalmente por el orden Plecoptera con la familia Perlidae, también se
encontró a los órdenes Trichoptera con la familia Hidropsychidae, presentando
en menor composición a las familias Odontoceriidae, Elmidae, Euthyplociidae,
Libellulidae.
64
La comunidad de macroinvertebrados acuáticos estuvo
representada principalmente por la clase Insecta 83 %. A nivel de órdenes, los
más representativos fueron Plecoptera y Trichoptera y Coleoptera que
conforman el 47 % del total de taxa colectados (Cuadro 21).
4.2.2. Identificación del orden y familia de la quebrada Córdova
La figura 34, muestra la composición en porcentaje de
macroinvertebrados acuáticos de las 3 estaciones de muestreo del día 17 de
agosto del 2018.
Figura 34. Composición en porcentaje de macroinvertebrados acuáticos a nivel de familia y
estación de muestreo.
La estación de muestreo E1 (Parte baja) estuvo compuesto
principalmente por la familia Hyalellidae 28 % del orden Amphipoda, y también
por la familia Perlidae 22 % y en menor proporción por las familias de Trichoptera
y Coleoptera.
La estación de muestreo E2(Parte media) estuvo compuesta en gran
parte por las familias Perlidae 27 % del orden Plecoptera, Libellulidae, Elmidae
y Planariidae en 14 % cada una y en menor proporción por las familias
Euthyplociidae, Hidropsychidae, Coenagrionidae, Psephenidae, Libellulidae.
65
La estación de muestreo E3 (Parte alta) estuvo compuesto
generalmente por el orden Trichoptera con la familia Hidropsychidae en un
27 %, también se encontró a las familias Perlidae 15 % del orden Plecoptera y
en menor proporción a las familias Planariidae, Coenagrionidae, Euthyplociidae,
Libellulidae.
La comunidad de macroinvertebrados acuáticos estuvo
representada principalmente por la clase Insecta 81 %. A nivel de órdenes, los
más representativos fueron Trichoptera y Plecoptera que conforman el 40 % del
total de taxa colectados (Cuadro 22).
La figura 35, muestra la composición en porcentaje de
macroinvertebrados acuáticos de las 3 estaciones de muestreo del día 31 de
agosto del 2018.
Figura 35. Composición en porcentaje de macroinvertebrados acuáticos a nivel de familia y
estación de muestreo
La estación de muestreo E1 (Parte baja) estuvo compuesto
principalmente por las familias Hyalellidae 41 %, Perlidae 26 %, Coenagrionidae
19 % y en menor proporción por las familias Hidropsychidae, Libellulidae y
Euthyplociidae.
66
La estación de muestreo E2 (Parte media) estuvo compuesta en
gran parte por la familia Perlidae 50 %, también por la familia Leptophlebiidae
16 % y en menor proporción por las familias Hidropsychidae, Euthyplociidae,
Libellulidae, Odontoceriidae, Elmidae
La estación de muestreo E3 (Parte alta) estuvo compuesto
generalmente por el orden Trichoptera con la familia Hidropsychidae en un 26 %
y Plecoptera con la familia Perlidae 19 %, también se encontró a la familia
Euthyplociidae 11 % y en menor proporción a las familias Coenagrionidae,
Libellulidae, Planariidae.
La comunidad de macroinvertebrados acuáticos estuvo
representada principalmente por la clase Insecta 88 %. A nivel de órdenes, los
más representativos fueron Trichoptera y Plecoptera que conforman el 48 % del
total de taxa colectados (Cuadro 22)
La figura 36, muestra la composición en porcentaje de
macroinvertebrados acuáticos de las 3 estaciones de muestreo del día 14 de
setiembre del 2018.
Figura 36. Composición en porcentaje de macroinvertebrados acuáticos a nivel de familia y
estación de muestreo
67
La estación de muestreo E1 (Parte baja) estuvo compuesto
principalmente por las familias Hyalellidae, Perlidae, Euthyplociidae,
Coenagrionidae, Glossiphoniidae con 17 % cada una y en menor proporción por
las familias Hidropsychidae y Elmidae.
La estación de muestreo E2 (Parte media) estuvo compuesta en
gran parte por la familia Hidropsychidae 43 %, también por las familias Perlidae
y Coenagrionidae con 16 % cada una y en menor proporción por las familias
Euthyplociidae, Libellulidae, Odontoceriidae, Elmidae.
La estación de muestreo E3 (Parte alta) estuvo compuesto
generalmente por el orden Trichoptera con la familia Hidropsychidae en un 22 %
y Ephemeroptera con la familia Euthyplociidae 17 %, también se encontró a la
familia Elmidae 13 % y en menor proporción a las familias Perlidae,
Psephenidae, Coenagrionidae y, Libellulidae.
La comunidad de macroinvertebrados acuáticos estuvo
representada principalmente por la clase Insecta 93 %. A nivel de órdenes, los
más representativos fueron Trichoptera, Plecoptera, Ephemeroptera y Odonata
que conforman el 56 % del total de taxa colectados (Cuadro 22).
4.3. Estimar la abundancia y riqueza de macroinvertebrados utilizando el
índice de Shannon- Weaver.
4.3.1. Índice de Shannon-Weaver de macroinvertebrados acuáticos en
la quebrada Naranjal
En el muestreo realizado se colectaron un total de 160 individuos a
nivel de familia en las tres etapas evaluadas (17 de agosto, 31 de agosto, 14 de
setiembre) y tres estaciones de muestreo a lo largo del cuerpo de agua;
pertenecientes a 5 clases y 10 a nivel de orden y 15 a nivel de familia (Cuadros
25, 26 y 27 del Anexo B, del Apéndice 1). El índice de Shannon-Weaver en la
primera etapa es de 1.608, en la segunda etapa es de 1.414 y en la tercera etapa
es 1.671, indicando que tiene una diversidad baja a moderada.
68
• Primer muestreo
En la figura 37, se observa una menor riqueza biológica en la parte
baja con 7 números de individuos, en el cual se encuentran las familias
Glossiphoniidae y Tubificidae, así mismo se observa un mayor número de
individuos en la parte alta, conformado por los individuos de la familia Perlidae
del orden Plecoptera y la familia Hidropsychidae del orden Trichoptera, quienes
también se encuentran presentes en la parte media, los cuales son
representantes de aguas frías y bien oxigenadas.
Figura 37. Número de individuos a nivel de familia por estación de muestreo (17 de agosto del
2018)
La figura 38, muestra que los mayores valores de diversidad lo
presentan la parte alta teniendo una adecuada relación con el número de taxones
y su abundancia; seguido de la parte media, así mismo la parte baja presenta un
número de familias menor en comparación con las otras estaciones de muestreo,
esto nos indica que la diversidad es baja debido a la cantidad de individuos y
familias que encontramos en esa estación.
69
Figura 38. Índice de Shannon por estación de muestreo
• Segundo muestreo
En la figura 39, se observa una menor riqueza biológica en la parte
baja con 5 números de individuos, en el cual se encuentran las familias
Glossiphoniidae y Tubificidae, así mismo se observa un mayor número de
individuos en la parte alta, conformado por los individuos de la familia Perlidae
del orden Plecoptera y la familia Hidropsychidae del orden Trichoptera.
Figura 39. Número de individuos a nivel de familia por estación de muestreo (31 de agosto del
2018)
70
La figura 40, muestra que los mayores valores de diversidad lo
presentan la parte alta teniendo una adecuada relación con el número de taxones
y su abundancia; seguido de la parte media, así mismo la parte baja presenta un
número de familias menor en comparación con las otras estaciones de muestreo,
esto nos indica que la diversidad es baja debido a la cantidad de individuos y
familias que encontramos en esa estación.
Figura 40. Índice de Shannon por estación de muestreo
• Tercer muestreo
En la figura 41, se observa una menor riqueza biológica en la parte
baja con 7 números de individuos, en el cual se encuentran las familias
Glossiphoniidae y Tubificidae, así mismo se observa un mayor número de
individuos en la parte alta, conformado por los individuos de la familia Perlidae
del orden Plecoptera y la familia Hidropsychidae del orden Trichoptera, quienes
también se encuentran presentes en la parte media.
71
Figura 41. Número de individuos a nivel de familia por estación de muestreo (14 de setiembre
del 2018)
La figura 42, muestra que los mayores valores de diversidad lo
presentan la parte alta teniendo una adecuada relación con el número de taxones
y su abundancia; seguido de la parte media que muestra valores similares, así
mismo la parte baja presenta un número de familias menor en comparación con
la parte alta, esto nos indica que la diversidad es baja debido a la cantidad de
individuos y familias que encontramos en esa estación.
Figura 42. Índice de Shannon por estación de muestreo
72
4.3.2. Índice de Shannon-Weaver de macroinvertebrados acuáticos en
la quebrada Córdova.
En el muestreo realizado se colectaron un total de 277 individuos a
nivel de familia en las tres etapas evaluadas (17 de agosto, 31 de agosto, 14 de
setiembre) y tres estaciones de muestreo a lo largo del cuerpo de agua;
pertenecientes a 6 clases, 11 a nivel de orden y 16 a nivel de familia (Cuadros
28,29 y 30 del Anexo B, del Apéndice 1). El índice de Shannon-Weaver en la
primera etapa es de 2.023, en la segunda etapa es de 1.748 y en la tercera etapa
es 1.971, indicando que tiene una diversidad de moderada a alta.
• Primer muestreo
En la figura 43, se observa una menor riqueza biológica en la parte
baja con 18 números de individuos, en el cual se encuentran las familias
Hyalellidae, Perlidae así mismo se observa el mayor número de individuos en la
parte alta, conformado por los individuos de la familia Perlidae del orden
Plecoptera y la familia Hidropsychidae del orden Trichoptera, los cuales son
representantes de aguas frías y bien oxigenadas.
Figura 43. Número de individuos a nivel de familia por estación de muestreo (17 de agosto del
2018)
73
La figura 44, muestra que los mayores valores de diversidad lo
presentan la parte alta teniendo una adecuada relación con el número de taxones
y su abundancia; seguido de la parte media, así mismo la parte baja presenta un
número de familias menor en comparación con la parte alta, esto nos indica que
la diversidad es baja debido a la cantidad de individuos y familias que
encontramos en esa estación.
Figura 44. Índice de Shannon por estación de muestreo
• Segundo muestreo
En la figura 45, se observa una menor riqueza biológica en la parte
baja con 27 números de individuos, en el cual se encuentran la familia
Hyaellidae, Perlidae, así mismo se observa un mayor número de individuos en
la parte baja, conformado por los individuos de la familia Perlidae y
Leptophlebiidae, quienes también se encuentran presentes en la parte alta.
74
Figura 45. Número de individuos a nivel de familia por estación de muestreo (31 de agosto del
2018)
La figura 46, muestra que los mayores valores de diversidad lo
presentan la parte alta teniendo una adecuada relación con el número de taxones
y su abundancia; seguido de la parte media, así mismo la parte baja presenta un
número de familias menor en comparación con la parte alta, esto nos indica que
la diversidad es baja debido a la cantidad de individuos y familias que
encontramos en esa estación.
Figura 46. Índice de Shannon por estación de muestreo
75
• Tercer muestreo
En la figura 47, se observa una menor riqueza biológica en la parte
baja con 12 números de individuos, en el cual se encuentran las familias
Coenagrionidae, Perlidae, Euthyplociidae así mismo se observa un mayor
número de individuos en la parte alta, conformado por los individuos de las
familias Euthyplociidae e Hidropsychidae, los cuales son representantes de
aguas frías y bien oxigenadas.
Figura 47. Número de individuos a nivel de familia por estación de muestreo (14 de setiembre
del 2018)
La figura 48, muestra que los mayores valores de diversidad lo
presentan la parte alta teniendo una adecuada relación con el número de taxones
y su abundancia; seguido de la parte baja, así mismo la parte media presenta un
número de familias menor en comparación con la parte alta, esto nos indica que
la diversidad es baja debido a la cantidad de individuos y familias que
encontramos en esa estación.
76
Figura 48. Índice de Shannon por estación de muestreo.
4.4. Determinar la calidad del agua de las quebradas Naranjal y Córdova
según los índices de BMWP y EPT.
4.4.1. Índice BMWP (Biological Monitoring Working Party)
4.4.1.1. Índice BMWP de la quebrada Naranjal
Con los datos obtenidos de la identificación de los
macroinvertebrados acuáticos que se muestran, se desarrolló el cálculo del
índice BMWP/Col.
• Primer muestreo
Cuadro 9 . Valores de BMWP/Col., clase, calidad y Color en las estaciones de
muestreo (17 de agosto del 2018)
Estación de muestreo BMWP/Col Clase Calidad Características Color
E1 (Parte baja) 4 V MUY CRITICA Aguas
fuertemente contaminadas
E2 (Parte media) 54 III DUDOSA Aguas
moderadamente contaminadas
E3 (Parte alta) 103 I BUENA Aguas muy
limpias
77
En el cuadro 12, la parte alta presenta el mayor valor del índice
BWMP/Col calculado (103) perteneciendo a aguas de clase I cuya calidad del
agua es BUENA; los menores valores pertenecen a la parte media siendo aguas
de clase III (calidad DUDOSA) y la parte baja correspondiente a aguas de clase
V (calidad MUY CRITICA).
• Segundo muestreo
Cuadro 10. Valores de BMWP/Col., clase, calidad y Color en las estaciones de
muestreo (31 de agosto del 2018)
Estación de muestreo BMWP/Col Clase Calidad Características Color
E1 (Parte baja) 4 V MUY CRITICA Aguas
fuertemente contaminadas
E2 (Parte media) 38 III DUDOSA Aguas
moderadamente contaminadas
E3 (Parte alta) 103 I BUENA Aguas muy
limpias
En el cuadro 10, la parte alta presenta el mayor valor del índice
BWMP/Col calculado (103) perteneciendo a aguas de clase I cuya calidad del
agua es BUENA; los menores valores pertenecen a la parte media cuyas aguas
son de clase III (calidad DUDOSA) y a la parte baja le corresponde aguas de
clase V (calidad MUY CRITICA).
• Tercer muestreo
Cuadro 11. Valores de BMWP/Col., clase, calidad y Color en las estaciones de
muestreo (14 de setiembre del 2018)
Estación de muestreo BMWP/Col Clase Calidad Características Color
E1 (Parte baja) 4 V MUY CRITICA Aguas
fuertemente contaminadas
E2 (Parte media) 73 II ACEPTABLE Aguas
ligeramente contaminadas
E3 (Parte alta) 103 I BUENA Aguas muy
limpias
78
En el cuadro 11, la parte alta presenta el mayor valor del índice
BWMP/Col calculado (103) perteneciendo a aguas de clase I cuya calidad del
agua es BUENA; los menores valores pertenecen a la parte media cuyas aguas
son de clase II (calidad ACEPTABLE) y en la parte baja le corresponde aguas
de clase V (calidad MUY CRITICA).
Comparando las estaciones de muestreo por día evaluado respecto
a la calidad del agua, estos varían, tal es el caso de la parte media cuya
clasificación de calidad es perteneciente a aguas de clase III determinado
DUDOSA en la primera y segunda etapa de muestreo lo cual varía en la tercera
etapa con una calidad de agua ACEPTABLE lo que indica que en dicha estación
de muestreo el agua pasa de limpias a aguas ligeramente contaminadas;
respecto a la parte baja durante el primer, segundo y tercer muestreo presentó
aguas muy contaminadas cuya calidad es MUY CRITICA y de clase V, además
la parte alta presento aguas muy limpias durante los tres muestreos cuya calidad
es BUENA debido a que en esa estación no hay alteración antrópica.
4.4.1.2. Índice BMWP de la quebrada Córdova.
Con los datos obtenidos de la identificación de los
macroinvertebrados acuáticos que se muestran, se desarrolló el cálculo del
índice BMWP/Col.
• Primer muestreo
Cuadro 12. Valores de BMWP/Col., clase, calidad y Color en las estaciones de
muestreo (17 de agosto del 2018)
Estación de muestreo BMWP/Col Clase Calidad Características Color
E1 (Parte baja) 41 III DUDOSA Aguas
moderadamente contaminadas
E2 (Parte media) 71 II ACEPTABLE Aguas
ligeramente contaminadas
E3 (Parte alta) 103 I BUENA Aguas muy
limpias
79
En el cuadro 12, la parte alta presenta el mayor valor del índice
BWMP/Col calculado (103) perteneciendo a aguas de clase I cuya calidad del
agua es BUENA; los menores valores pertenecen a la parte media cuyas aguas
son de clase II (calidad ACEPTABLE) y a la parte baja le corresponde aguas de
clase III (calidad DUDOSA).
• Segundo muestreo
Cuadro 13. Valores de BMWP/Col., clase, calidad y color en las estaciones de
muestreo (31 de agosto del 2018)
Estación de muestreo BMWP/Col Clase Calidad Características Color
E1 (Parte baja) 46 III DUDOSA Aguas
moderadamente contaminadas
E2 (Parte media) 64 II ACEPTABLE Aguas
ligeramente contaminadas
E3 (Parte alta) 103 I BUENA Aguas muy
limpias
En el cuadro 13, la parte alta presenta el mayor valor del índice
BWMP/Col calculado (103) perteneciendo a aguas de clase I cuya calidad del
agua es BUENA; los menores valores pertenecen a la parte media cuyas aguas
son de clase II (calidad ACEPTABLE) y a la parte baja le corresponde aguas de
clase III (calidad DUDOSA).
• Tercer muestreo
Cuadro 14. Valores de BMWP/Col., clase, calidad y color en las estaciones de
muestreo (14 de setiembre del 2018)
Estación de muestreo BMWP/Col Clase Calidad Características Color
E1 (Parte baja) 80 II ACEPTABLE Aguas ligeramente
contaminadas
E2 (Parte media) 74 II ACEPTABLE
E3 (Parte alta) 113 I BUENA Aguas muy
limpias
80
En el cuadro 14, la parte alta presenta el mayor valor del índice
BWMP/Col calculado (113) perteneciendo a aguas de clase I cuya calidad del
agua es BUENA; los menores valores corresponden a la parte media y baja
perteneciente a aguas de clase II (calidad ACEPTABLE)
Comparando las estaciones de muestreo por día evaluado respecto
a la calidad del agua, estos varían, tal es el caso de la parte baja cuya
clasificación de calidad de agua es de clase III determinado DUDOSA en la
primera y segunda etapa mientras que en la tercera etapa da lugar a un agua de
calidad ACEPTABLE lo que indica que en dicha estación de muestreo el agua
pasa de limpias a aguas ligeramente contaminadas; respecto a la parte media
durante el primer, segundo y tercer muestreo presentó aguas de cuya calidad es
ACEPTABLE y de clase II, además la parte alta presento aguas muy limpias
durante los tres muestreos cuya calidad es BUENA debido a que en esa estación
no hay alteración antrópica.
4.4.2. Índice EPT (Ephemeroptera, Plecoptera, Trichoptera).
4.4.2.1. Índice EPT en la quebrada Naranjal
Con los datos obtenidos de la identificación de los
macroinvertebrados acuáticos que se muestran, se desarrolló el cálculo del
índice EPT.
• Primer muestreo
Cuadro 15. Valores del índice EPT y calidad del agua en las estaciones de
muestreo (17 de agosto del 2018)
Estación de muestreo EPT Calidad
E1 (Parte baja) 0 MALA
E2 (Parte media) 51.2 BUENA
E3 (Parte alta) 58.6 BUENA
81
En el cuadro 15, la parte media presenta un valor de 51.2 %
perteneciendo a aguas de calidad BUENA; además la parte alta presenta un
valor de 58.6 % indicando la calidad del agua BUENA y los menores valores
pertenecen a la parte baja siendo aguas de calidad MALA debido a que no se
encontró a estos macroinvertebrados evaluados
• Segundo muestreo
Cuadro 16. Valores del índice EPT y calidad del agua en las estaciones de
muestreo (31 de agosto del 2018)
Estación de muestreo EPT Calidad
E1 (Parte baja) 0 MALA
E2 (Parte media) 50 BUENA
E3 (Parte alta) 58.7 BUENA
En el cuadro 16, la parte alta presenta el mayor valor del índice EPT
58.7 % perteneciendo a aguas de calidad BUENA; además la parte media
presenta un valor de 50 % indicando la calidad del agua BUENA y los menores
valores pertenecen a la parte baja correspondiendo a aguas de calidad MALA
debido a que no se encontró a estos macroinvertebrados evaluados.
• Tercer muestreo
Cuadro 17. Valores del índice EPT y calidad del agua en las estaciones de
muestreo (14 de setiembre del 2018)
Estación de muestreo EPT Calidad
E1 (Parte baja) 0 MALA
E2 (Parte media) 53.4 BUENA
E3 (Parte alta) 71.93 BUENA
En el cuadro 17, la parte alta presenta el mayor valor del índice EPT
72 % perteneciendo a aguas de calidad BUENA; además la parte media presenta
un valor de 53.4 % indicando la calidad del agua BUENA y los menores valores
82
pertenecen a la parte baja correspondiendo a aguas de calidad MALA debido a
que no se encontró a estos macroinvertebrados evaluados.
Comparando las estaciones de muestreo por día evaluado respecto
a la calidad del agua, estos no varían, tal es el caso de la parte media y alta
presentan aguas cuya clasificación de calidad es BUENA en las tres fechas de
muestreo, además la parte baja presento aguas muy contaminadas durante los
tres muestreos cuya calidad es MALA debido a que en esa estación la alteración
antrópica es alta.
4.4.2.2. Índice EPT en la quebrada Córdova.
Con los datos obtenidos de la identificación de los
macroinvertebrados acuáticos que se muestran se desarrolló el cálculo del índice
EPT.
• Primer muestreo
Cuadro 18. Valores del índice EPT y calidad del agua en las estaciones de
muestreo (17 de agosto del 2018)
Estación de muestreo EPT Calidad
E1 (Parte baja) 38.89 REGULAR
E2 (Parte media) 50.4 BUENA
E3 (Parte alta) 60 BUENA
En el cuadro 18, la parte alta presenta el mayor valor del índice EPT
60 % perteneciendo a aguas de calidad BUENA; además la parte media presenta
un valor de 50.4 % indicando la calidad del agua BUENA y la parte baja presenta
aguas de calidad REGULAR.
83
• Segundo muestreo
Cuadro 19. Valores del índice EPT y calidad del agua en las estaciones de
muestreo (31 de agosto del 2018)
Estación de muestreo EPT Calidad
E1 (Parte baja) 41.67 REGULAR
E2 (Parte media) 51.4 BUENA
E3 (Parte alta) 56.67 BUENA
En el cuadro 19, la parte media presenta un valor de 51.4 %
perteneciendo a aguas de calidad BUENA; además la parte alta presenta un
valor de 56.67 % indicando la calidad del agua BUENA y los menores valores
pertenecen a la parte baja correspondiendo a aguas de calidad REGULAR.
• Tercer muestreo
Cuadro 20. Valores del índice EPT y calidad del agua en las estaciones de
muestreo (14 de setiembre del 2018)
Estación de muestreo EPT Calidad
E1 (Parte baja) 45.6 REGULAR
E2 (Parte media) 54.5 BUENA
E3 (Parte alta) 61.29 BUENA
En el cuadro 20, la estación de muestreo E3 presenta el mayor valor
del índice EPT 61.29 % perteneciendo a aguas de calidad BUENA; además la
E2 presenta un valor de 54.5 % indicando la calidad del agua BUENA y los
menores valores pertenecen a la estación de muestreo E1 perteneciente a aguas
de calidad REGULAR.
Comparando las estaciones de muestreo por día evaluado respecto
a la calidad del agua, estos no varían, tal es el caso de la parte media y alta
presentan aguas cuya clasificación de calidad es BUENA en las tres fechas de
muestreo, además la parte baja presento aguas de calidad REGULAR.
84
V. DISCUSIÓN
5.1. Analizar las variables fisicoquímicas para la calidad de agua de las
quebradas Naranjal y Córdova
En la figura 23 se puede observar que el pH de la quebrada Naranjal
en la parte baja presenta los valores más altos mientras que en la parte alta
mantiene un pH de 7.2 indicando que es un pH favorable para los organismos
de vida acuática (SENAMHI, 2019), además la mayoría de organismos se han
adaptado a la vida en el agua con un nivel de pH específico y pueden morir al
experimentarse cambios en el pH (Mitchell et al. (1991), citado por JAVIER
(2010) y esto podemos apreciar en la parte baja debido a la ausencia de ciertos
organismos y presencia de otros que son resistentes a la contaminación.
En la figura 27 se puede observar que el pH de la quebrada Córdova
en la parte baja presenta los valores más altos mientras que en la parte alta
mantiene un pH de 7.1 indicando que es un pH favorable para los organismos
de vida acuática (SENAMHI, 2019), además la mayoría de organismos se han
adaptado a la vida en el agua con un nivel de pH específico y pueden morir al
experimentarse cambios en el pH. (Mitchell et al. (1991), citado por JAVIER
(2010) y esto podemos apreciar en la parte baja debido a la ausencia de ciertos
organismos.
En la figura 24 se puede observar que el oxígeno disuelto en la
quebrada Naranjal en la parte alta es mayor debido a la buena oxigenación de
este cuerpo de agua mientras que en la parte baja los niveles de oxígeno disuelto
son muy bajos debido a que hay un alto contenido de materia orgánica y este
impide su oxigenación y este puede indicar contaminación elevada tal como lo
dice Cepis (1987) citado por TAMANI (2014).
85
En la quebrada Córdova los niveles de oxígeno disuelto como lo
muestra la figura 28 en la parte alta es mayor debido a la buena oxigenación de
este cuerpo de agua mientras que en la parte baja los niveles de oxígeno disuelto
son muy bajos debido a que hay una cierta cantidad de residuos sólidos
descomponiéndose y este impide que se oxigene más rápido. tal como lo indica
Cepis (1987) citado por TAMANI (2014).
La figura 25 nos muestra la temperatura del agua de la quebrada
Naranjal y este nos indica que no hubo variaciones significativas por estación de
muestreo, pero si por fecha de muestreo ya que las condiciones climáticas hacen
que la temperatura del agua varíe, y este es un factor muy importante para los
macroinvertebrados ya que algunas familias son más sensibles a estas
variaciones (ROLDÁN, 2003).
En la figura 29 se aprecia la temperatura del agua de la quebrada
Córdova y este nos muestra que no hubo variaciones significativas por estación
de muestreo, pero si por fecha de muestreo ya que las condiciones climáticas
hacen que la temperatura del agua varié, y este es un factor muy importante para
los macroinvertebrados ya que algunas familias son más sensibles a estas
variaciones (ROLDÁN, 2003).
La figura 26 nos muestra que la conductividad en la parte baja de
quebrada Naranjal fue mayor debido a las descargas de aguas residuales y a los
desperdicios que son arrojados a la fuente de agua ya que estos suelen
aumentar la conductividad debido al aumento de la concentración de Cl-, NO3-
y SO4 -2, u otros iones (Severiche et al. (2013), citado por TAMANI (2014)).
La figura 30 nos muestra que la conductividad en la parte baja de
quebrada Córdova fue mayor debido a las descargas de aguas residuales y a los
desperdicios que son arrojados de los que viven cerca a la fuente de agua ya
que estos suelen aumentar la conductividad debido al aumento de la
concentración de Cl- , NO3- y SO4 -2, u otros iones (Severiche et al. (2013),
citado por TAMANI (2014)).
86
5.2. Identificación del orden y familia de macroinvertebrados de las
quebradas Naranjal y Córdova
En las figuras 31,32 y 33 se puede apreciar que en la parte baja de
la quebrada Naranjal solo se encontraron en mayor cantidad a las familias
Tubificidae y Glossiphoniidae, ya que estos resisten diferentes grados de
contaminación y bajas concentraciones de oxígeno debido a la alteración
antrópica que existe en el lugar ya que los residuos sólidos son arrojados a la
fuente de agua por parte de los que viven en los internados aledaños tal como
lo indica RODRÍGUEZ et al.(2009), ROLDAN (2003), así como también podemos
verificar que en la parte media y alta fueron muy abundantes las familias Perlidae
del orden Plecoptera e Hidropsychidae del orden Trichoptera, puesto a que estos
organismos son reconocidos como sensibles a la contaminación, además estos
habitan en cuerpos de agua de buena calidad ya que les permitan cumplir con
sus funciones vitales (FIGUEROA et al., 2003).
Las figuras 34,35 y 36 nos muestran que en la parte alta, media y
baja de la quebrada Córdova se encontraron a las familias Perlidae e
Hidropsychidae, con esto se comprueba que los macroinvertebrados habitan
todas las aguas, estos poseen una elevada diversidad, con diferentes grados de
tolerancia a la contaminación (ALVAREZ y PÉREZ, 2007) mientras que en la
parte media y alta se encontraron a la mayor cantidad de familias de Plecoptera,
Ephemeroptera, Trichoptera y Coleoptera, indicando mayor abundancia y
riqueza de especies, además de que los cuerpos de agua son muy oxigenados
y esto es un factor muy importante para que se puedan reproducir, diversos
estudios realizados con estos métodos han determinado que son altamente
sensibles a la contaminación (FIGUEROA et al., 2003).
5.3. Estimar la abundancia y riqueza de macroinvertebrados utilizando el
índice de Shannon – Weaver de la comunidad de macroinvertebrados
acuáticos de las quebradas Naranjal y Córdova.
En la quebrada Naranjal como lo indican los cuadros 25, 26 y 27, se
obtuvo en la parte alta para las tres fechas muestreadas el mayor índice de
87
Shannon- Weaver debido a la diversidad de familias, riqueza y abundancia de
especies que se encontraron en ese cuerpo de agua ya que esta estación
presenta características físicas, climáticas y geomorfológicas que hacen que los
organismos puedan desarrollarse y reproducirse con normalidad (FIGUEROA et
al., 2003), además de que un factor importante es el clima ya que cuando nos
encontramos en época lluviosa, aumenta el caudal y los espacios para que
puedan habitar estos organismos y eso se verifica en la última fecha de muestreo
ya que se encontraron una mayor diversidad con respecto a los dos muestreos
anteriores, también se aprecia una diferencia en la composición de
macroinvertebrados en la parte baja provocados principalmente por el impacto
de las actividades humanas que se desarrollan en la quebrada y este hace que
el índice sea menor en esas estaciones (ALVAREZ y PEREZ, 2007).
Los cuadros 28, 29 y 30, nos muestran el índice de Shannon-
Weaver de la quebrada Córdova, donde se aprecia que en la parte alta tiene el
mayor índice debido a que presenta aguas frías, trasparentes, oligotróficas y bien
oxigenadas y por esa razón habrá una mayor diversidad de familias, alta riqueza
y abundancia de especies (FIGUEROA et al., 2003), además se aprecia que en
la parte baja el índice es menor debido a que la ausencia de algunas familias nos
indica que la reducida movilidad de la mayoría de las especies de
macroinvertebrados permite detectar cualquier alteración de una fuente hídrica
(ROLDÁN y RAMIREZ, 2008).
5.4. Determinar la calidad del agua de las quebradas Naranjal y Córdova
según los índices de BMWP y EPT.
El cuadro 32 del anexo C nos da a conocer el índice BMWP/Col
para la quebrada Naranjal, estas presentan aguas de calidad MUY CRITICA en
la parte baja indicando aguas fuertemente contaminadas con una situación muy
crítica, DUDOSA en la parte media indicando aguas moderadamente
contaminadas y BUENA en la parte alta indicando aguas muy limpias a limpias
es por eso que se evidencia que las comunidades de macroinvertebrados
presentan limitaciones para su establecimiento según el grado de afectación y
perturbación originados por las actividades humanas, además se aprecia que el
88
índice BMWP/Col, los individuos y número de familia disminuyen según la zona
de muestreo evaluada tal como nos dice ROLDÁN (2003).
Así mismo, para la quebrada Córdova el índice BMWP/Col como nos
muestra el cuadro 34, se infiere que presentan aguas de calidad DUDOSA en la
parte baja indicando aguas moderadamente contaminadas, ACEPTABLE en la
parte media indicando aguas ligeramente contaminadas y BUENA en la parte
alta indicando aguas muy limpias a limpias es por eso que se evidencia que las
comunidades de macroinvertebrados presentan limitaciones para su
establecimiento según el grado de afectación y perturbación originados por las
actividades humanas tal como lo indica ROLDÁN (2003).
Además, durante el estudio, se registró en mayor cantidad familias
como Hidropsychidae del orden Trichoptera y Perlidae del orden Plecoptera, los
cuales según ROLDÁN (2003) están catalogadas como indicadores de aguas de
buena calidad, presentando puntajes de 7 y 10 respectivamente; encontrando
dichas familias en la parte media y alta en la quebrada Naranjal y en la parte
media y alta en la quebrada Córdova.
De acuerdo con los resultados obtenidos en el cálculo del índice EPT
para la quebrada Naranjal el cuadro 36 del anexo D, nos indica que presentan
aguas de calidad MALA en la parte baja, BUENA en la parte media y alta, como
sabemos este índice nos hace referencia a la presencia y ausencia de las
especies de los órdenes ya mencionados ya que estos son muy sensibles a la
contaminación y/o cualquier alteración que hay en un cuerpo de agua,
coincidiendo con lo que nos dice ROLDÁN (2003).
Así mismo para la quebrada Córdova el cálculo del índice EPT,
mostrados en el cuadro 38 del anexo D, nos indica que presentan aguas de
calidad REGULAR en la parte baja, BUENA en la parte media y alta, por esa
razón en donde encontramos mayor cantidad de individuos de esos ordenes nos
indica que el agua es de mayor calidad mientras que si no encontramos familias
de esos ordenes se estima que el agua es de menor calidad, concordando con
lo citado por ROLDÁN (2003).
89
VI. CONCLUSIONES
1. El oxígeno disuelto, pH, temperatura y conductividad eléctrica se
constituyen en variables fisicoquímicas importantes para evaluar la calidad
de agua en las quebradas Naranjal y Córdova.
2. En la quebrada Córdova se identificaron mayor cantidad de clases, órdenes
y familias de macroinvertebrados con respecto a la quebrada Naranjal.
3. El índice de diversidad Shannon – Weaver fue mayor en la parte alta en las
quebradas Naranjal y Córdova, mientras que en la parte media y baja se
obtuvo menor índice en las dos quebradas evaluadas.
4. El índice BMWP/Col para la parte alta de las quebradas Naranjal y Córdova
nos indica que la calidad del agua es BUENA, mientras que en la parte
media y baja varia de ACEPTABLE a MUY CRITICA.
5. El índice EPT nos indica que en las partes alta y media de las quebradas
Naranjal y Córdova la calidad del agua es BUENA mientras que en la parte
baja varia de REGULAR a MALA.
90
VII. RECOMENDACIONES
1. Realizar un estudio integrado que incluya factores físicos, químicos y
bacteriológicos, a fin de determinar fehacientemente la calidad de agua
del ecosistema acuático evaluado.
2. Desarrollar estudios similares considerando el tipo de organismos, sus
niveles de tolerancia, sensibilidad y su capacidad de adaptarse a
cambios en el medio ambiente; ya que su uso en estudios de calidad
del agua, se va restringiendo paulatinamente al emplear sólo la riqueza
y abundancia de especies.
3. Establecer un programa de monitoreo para el seguimiento del estado
de conservación de las quebradas Naranjal y Córdova y comprobar si
cumplen con los estándares de calidad ambiental del agua.
91
VIII. REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS
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94
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Padre Abad, Aguaytía. Universidad Nacional Agraria de la Selva. Tingo
María, Perú. 12 - 28 p.
95
ANEXOS
96
Apéndice 1. Cuadros de composición e índices ecológicos de la comunidad de macroinvertebrados acuáticos
Anexo A. Composición taxonómica de macroinvertebrados acuáticos
Cuadro 21. Macroinvertebrados acuáticos por fecha y estación de muestreo de la quebrada Naranjal
Phyllum Clase Orden/familia
17 DE AGOSTO 31 DE AGOSTO 14 DE SETIEMBRE
E1 (PARTE BAJA)
E2 (PARTE MEDIA)
E3 (PARTE ALTA)
E1 (PARTE BAJA)
E2 (PARTE MEDIA)
E3 (PARTE ALTA)
E1 (PARTE BAJA)
E2 (PARTE MEDIA)
E3 (PARTE ALTA)
Artrópoda Insecta
Ephemeroptera
Euthyplociidae 0 4 4 0 0 6 0 1 2
Leptophlebiidae 0 5 3 0 0 7 0 0 3
Plecoptera
Perlidae 0 4 6 0 9 13 0 7 15
Trichoptera
Hidropsychidae 0 4 5 0 1 12 0 5 10
Odontoceriidae 0 0 3 0 0 5 0 3 6
Odonata
Coenagrionidae 0 0 2 0 1 2 0 2 3
Libellulidae 0 1 2 0 0 2 0 1 4
Polythoridae 0 0 1 0 0 1 0 1 2
Coleoptera
Elmidae 0 1 2 0 8 1 4 6
Psephenidae 0 0 4 0 0 1 0 0 5
Hemíptera
Naucoridae 0 0 1 0 0 1 0 0 1
Molusca Gastropoda Mesogastropoda
Planorbidae 0 0 3 0 0 2 0 0 2
Annelida Hirudinea Arhynchobdellidae
Glossiphoniidae 5 0 0 2 0 0 2 0 0
Annelida Oligochaeta Haplotaxida
Tubificidae 2 0 0 3 1 0 2 3 0
Platyhelminthes Turbelaria Tricladida
Planariidae 0 3 5 0 2 4 0 5 3
N° de individuos 7 22 41 5 22 57 4 32 62 N° de familias 2 7 12 2 6 13 2 10 13
Total 252
97
Cuadro 22. Macroinvertebrados acuáticos por fecha y estación de muestreo de la quebrada Córdova.
Phyllum Clase Orden/familia
17 DE AGOSTO 31 DE AGOSTO 14 DE SETIEMBRE
E1 (PARTE BAJA)
E2 (PARTE MEDIA)
E3 (PARTE ALTA)
E1 (PARTE BAJA)
E2 (PARTE MEDIA)
E3 (PARTE ALTA)
E1 (PARTE BAJA)
E2 (PARTE MEDIA)
E3 (PARTE ALTA)
Artrópoda
Insecta
Ephemeroptera
Euthyplociidae 0 1 6 2 4 10 2 4 7
Leptophlebiidae 0 1 1 0 3 5 0 10 2
Plecoptera
Perlidae 4 6 8 2 11 5 7 31 12
Trichoptera
Hidropsychidae 3 2 15 1 29 13 1 6 16
Odontoceriidae 0 0 3 0 4 1 0 0 1
Odonata
Coenagrionidae 1 1 4 2 11 2 5 3 6
Libellulidae 0 3 1 0 2 1 1 2 1
Polythoridae 0 0 2 0 2 3 0 0 3
Coleoptera
Elmidae 2 3 3 1 1 8 0 4 2
Psephenidae 0 2 3 0 0 3 0 2 3
Hemíptera
Naucoridae 0 0 1 0 0 2 0 0 1
Malacostraca Amphipoda
Hyalellidae 5 0 0 2 0 0 11 0 0
Molusca Gastrópoda Mesogastropoda
Planorbidae 0 0 2 0 0 4 0 0 2
Anélida Hirudínea Arhynchobdellidae
Glossiphoniidae 1 0 0 2 0 0 0 0 0
Anélida Oligochaeta Haplotaxida
Tubificidae 2 0 0 0 0 0 0 0 0
Platyhelminthes Turbelaria Tricladida
Planariidae 0 3 6 0 0 3 0 0 6
N° de individuos 18 22 55 12 67 60 27 62 62 N° de familias 7 10 13 7 9 13 7 8 13
Total 385
98
Cuadro 23. Composición de macroinvertebrados acuáticos por día evaluado en
la quebrada Naranjal.
Phyllum Clase/Orden
17 de agosto 31 de agosto 14 de setiembre
N° (%)
N° (%)
N° (%)
Familias Familias Familias
Artrópoda
Insecta
Ephemeroptera 2 13 2 13 2 13
Plecoptera 1 7 1 7 1 7
Trichoptera 2 13 2 13 2 13
Odonata 3 20 3 20 3 20
Coleoptera 2 13 2 13 2 13
Hemíptera 1 7 1 7 1 7
Molusca Gastrópoda
Mesogastropoda 1 7 1 7 1 7
Anélida
Hirudinea
Arhynchobdellidae 1 7 1 7 1 7
Haplotaxida
Tubificidae 1 7 1 7 1 7
Platyhelminthes Turbelaria
Tricladida 1 7 1 7 1 7
Total 15 100 15 100 15 100
Cuadro 24. Composición de macroinvertebrados acuáticos por día evaluado en
la quebrada Córdova.
Phyllum Clase/Orden
17 de agosto 31 de agosto 14 de Setiembre
N° (%)
N° (%)
N° (%)
Familias Familias Familias
Artrópoda
Insecta 11 11 11 Ephemeroptera 2 13% 2 14% 2 13%
Plecoptera 1 6% 1 7% 1 7%
Trichoptera 2 13% 2 14% 2 13%
Odonata 3 19% 3 21% 3 20%
Coleoptera 2 13% 2 14% 2 13%
Hemíptera 1 6% 1 7% 1 7%
Malacostraca
Amphipoda 1 6% 1 7% 1 7%
Molusca Gastropoda
Mesogastropoda 1 6% 1 7% 1 7%
Anélida
Hirudinea
Arhynchobdellidae 1 6% 0 0% 1 7%
Haplotaxida
Tubificidae 1 6% 0 0% 0 0%
Platyhelminthes Turbelaria
Tricladida 1 6% 1 7% 1 7%
Total 16 100% 14 100% 15 100%
99
Anexo B. Índices ecologicos de la comunidad de macroinvertebrados
acuáticos
Cuadro 25. Índices ecológicos por estación de muestreo en la quebrada
Naranjal (17 de agosto)
E1 (Parte baja) E2 (Parte media) E3 (Parte alta)
Taxa (N° de Familias)
2 7 12
Individuos 7 22 37
Shannon-Weaver (bits/ind)
0.598 1.819 2.407
Promedio 1.608
Cuadro 26. Índices ecológicos por estación de muestreo en la quebrada
Naranjal (31 de agosto)
E1 (Parte baja) E2 (Parte media) E3 (Parte alta)
Taxa (N° de Familias)
2 6 13
Individuos 5 22 57
Shannon-Weaver (bits/ind)
0.673 1.373 2.196
Promedio 1.414
Cuadro 27. Índices ecológicos por estación de muestreo en la quebrada
Naranjal (14 de setiembre)
E1 (Parte baja) E2 (Parte media) E3 (Parte alta)
Taxa (N° de Familias)
2 10 13
Individuos 4 32 62
Shannon-Weaver (bits/ind)
0.693 2.115 2.204
Promedio 1.671
100
Cuadro 28. Índices ecológicos por estación de muestreo en la quebrada
Córdova (17 de agosto)
E1 (Parte baja) E2 (Parte media) E3 (Parte alta)
Taxa (N° de Familias)
7 10 13
Individuos 18 22 55
Shannon-Weaver (bits/ind)
1.798 2.027 2.244
Promedio 2.023
Cuadro 29. Índices ecológicos por estación de muestreo en la quebrada Córdova
(31 de agosto)
E1 (Parte baja) E2 (Parte media) E3 (Parte alta)
Taxa (N° de Familias)
7 8 12
Individuos 27 62 60
Shannon-Weaver (bits/ind)
1.465 1.589 2.191
Promedio 1.748
Cuadro 30. Índices ecológicos por estación de muestreo en la quebrada
Córdova (14 de setiembre)
E1 (Parte baja) E2 (Parte media) E3 (Parte alta)
Taxa (N° de Familias)
7 9 13
Individuos 12 67 60
Shannon-Weaver (bits/ind)
1.907 1.704 2.303
Promedio 1.971
101
Apéndice 2. Índice BMWP/Col
Anexo C. Cálculo del índice BMWP/Col
Cuadro 31. Valores del índice BMWP/Col., calidad, características y color
cartográfico por estación de muestreo y fecha de muestreo de la
quebrada Naranjal.
Fecha Estación de muestreo BMWP/Col Clase Calidad Caracteristicas Color
17 de agosto
E1 (Parte baja) 4 V MUY CRITICA Aguas
fuertementes contaminadas
E2 (Parte media) 54 III DUDOSA Aguas
moderadamente contaminadas
E3 (Parte alta) 103 I BUENA Aguas muy
limpias
31 de agosto
E1 (Parte baja) 4 V MUY CRITICA Aguas
fuertementes contaminadas
E2 (Parte media) 38 III DUDOSA Aguas
moderadamente contaminadas
E3 (Parte alta) 103 I BUENA Aguas muy
limpias
14 de setiembre
E1 (Parte baja) 4 V MUY CRITICA Aguas
fuertementes contaminadas
E2 (Parte media) 73 II ACEPTABLE Aguas
ligeramente contaminadas
E3 (Parte alta) 103 I BUENA Aguas muy
limpias
Cuadro 32. Valores promedios del índice BMWP/Col., de los 3 monitoreos.
Estación de muestreo BMWP/Col Clase Calidad Características Color
E1 (Parte baja) 4 V MUY CRITICA Aguas
fuertemente contaminadas
E2 (Parte media) 55 III DUDOSA Aguas
moderadamente contaminadas
E3 (Parte alta) 103 I BUENA Aguas muy
limpias
102
Cuadro 33. Valores del índice BMWP/Col., calidad, características y color
cartográfico por estación y fecha de muestreo de la quebrada
Córdova.
Fecha Estación de muestreo BMWP/Col Clase Calidad Características Color
17 de agosto
E1 (Parte baja) 41 III DUDOSA Aguas
moderadamente contaminadas
E2 (Parte media) 71 II ACEPTABLE Aguas
ligeramente contaminadas
E3 (Parte alta) 103 I BUENA Aguas muy
limpias
31 de agosto
E1 (Parte baja) 46 III DUDOSA Aguas
moderadamente contaminadas
E2 (Parte media) 64 II ACEPTABLE Aguas
ligeramente contaminadas
E3 (Parte alta) 103 I BUENA Aguas muy
limpias
14 de setiembre
E1 (Parte baja) 80 II ACEPTABLE Aguas
ligeramente contaminadas
E2 (Parte media) 74 II ACEPTABLE Aguas
ligeramente contaminadas
E3 (Parte alta) 113 I BUENA Aguas muy
limpias
Cuadro 34. Valores promedios del índice BMWP/Col., de los 3 monitoreos.
Estación de muestreo BMWP/Col Clase Calidad Características Color
E1 (Parte baja) 56 III DUDOSA Aguas
moderadamente contaminadas
E2 (Parte media) 70 II ACEPTABLE Aguas
ligeramente contaminadas
E3 (Parte alta) 106 I BUENA Aguas muy
limpias
103
Apéndice 3. Índice EPT
Anexo D. Cálculo del índice EPT
Cuadro 35. Valores del índice EPT, calidad, por estación y fecha de muestreo
de la quebrada Naranjal.
Fecha Estación de muestreo EPT Calidad
17 de agosto
E1 (Parte baja) 0 MALA
E2 (Parte media) 51.2 BUENA
E3 (Parte alta) 58.6 BUENA
14 de setiembre
E1 (Parte baja) 0 MALA
E2 (Parte media) 50 BUENA
E3 (Parte alta) 58.7 BUENA
31 de agosto
E1 (Parte baja) 0 MALA
E2 (Parte media) 53.4 BUENA
E3 (Parte alta) 71.93 BUENA
Cuadro 36. Valores promedios para los tres muestreos de la quebrada Naranjal.
Estación de muestreo EPT Calidad
E1 (Parte baja) 0 MALA
E2 (Parte media) 51.5 BUENA
E3 (Parte alta) 63.08 BUENA
104
Cuadro 37. Valores del índice EPT, calidad, por estación y fecha de muestreo
de la quebrada Córdova.
Fecha Estación de muestreo EPT Calidad
17 de agosto
E1 (Parte baja) 38.89 REGULAR
E2 (Parte media) 50.40 BUENA
E3 (Parte alta) 60,00 BUENA
31 de agosto
E1 (Parte baja) 41.67 REGULAR
E2 (Parte media) 51.40 BUENA
E3 (Parte alta) 56.67 BUENA
14 de setiembre
E1 (Parte baja) 45.60 REGULAR
E2 (Parte media) 54.50 BUENA
E3 (Parte alta) 61.29 BUENA
Cuadro 38. Valores promedios para los tres muestreos de la quebrada Córdova.
Estación de muestreo EPT Calidad
E1 (Parte baja) 42.1 REGULAR
E2 (Parte media) 52.1 BUENA
E3 (Parte alta) 59.32 BUENA
105
Apéndice 4. Actividades realizadas en campo y en laboratorio
Anexo E. Actividades en campo
Figura 49. Tomando una muestra de agua de la quebrada Naranjal parte alta para la
caracterización fisicoquímica.
Figura 50. Tomando una muestra de agua de la quebrada Córdova parte media para la
caracterización fisicoquímica.
106
Figura 51. Muestreo de macroinvertebrados acuáticos con la red surber en la quebrada
Naranjal parte alta.
Figura 52. Muestreo manual de macroinvertebrados acuáticos en la quebrada Naranjal parte
alta.
107
Figura 53. Recolección de macroinvertebrados acuáticos en la quebrada Naranjal parte baja.
Figura 54. Muestreo manual de macroinvertebrados acuáticos en la quebrada Córdova parte
alta.
108
Figura 55. Recolección de macroinvertebrados en la quebrada Córdova parte alta.
Figura 56. Recolección de macroinvertebrados en la quebrada Córdova parte media.
109
Figura 57. Recolección de macroinvertebrados en la quebrada Córdova parte media
Figura 58. Recolección de macroinvertebrados en la quebrada Córdova parte media
110
Anexo F. Actividades en laboratorio
Figura 59. Caracterización fisicoquímica del agua en el Laboratorio de microbiología de la
Universidad Nacional Agraria de la Selva
Figura 60. Separación de macroinvertebrados en el Laboratorio de entomología de la
Universidad Nacional Agraria de la Selva
111
Figura 61. Identificación de macroinvertebrados con el estereoscopio en el Laboratorio de
Entomología de la Universidad Nacional Agraria de la Selva
Figura 62. Identificación de macroinvertebrados con el estereoscopio en el Laboratorio de
Entomología de la Universidad Nacional Agraria de la Selva
112
Apéndice 5. Catálogo de macroinvertebrados acuáticos
Anexo G. Orden y familia de macroinvertebrados identificados en las
estaciones de muestreo.
Orden Ephemeroptera
Figura 63. Familia Euthyplociidae
Figura 64. Familia Leptophlebiidae
113
Orden Plecoptera
Figura 65. Familia Perlidae
Orden Trichoptera
Figura 66. Familia Hidropsychidae
114
Figura 67. Familia Odontoceriidae
Orden Odonata
Figura 68. Familia Polythoridae
115
Figura 69. Familia Libellulidae
Figura 70. Familia Coenagrionidae
116
Orden Coleoptera
Figura 71. Familia Elmidae
Figura 72. Familia Psephenidae
117
Orden Hemíptera
Figura 73. Familia Naucoridae
Orden Malacostraca
Figura 74. Familia Hyalellidae
118
Orden Gastrópoda
Figura 75. Familia Planorbiidae
Orden Hirudínea
Figura 76. Familia Glossiphoniidae
119
Orden Oligochaeta
Figura 77. Familia Tubificidae
Orden Tricladida
Figura 78. Familia Planariidae