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ATLAS DE PARASITOLOGIA

ATLAS DE PARASITOLOGIA

Asesores Especializados en Laboratorios S.A. de C.V.

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Examen coproparasitoscopico

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INDICE ALFABETICO

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Acanthamoeba sppAncylostoma brasilienseAncylostoma duodenaleAnisakis spp.Ascaris lumbricoidesAngiostrongylus cantonensisAngiostrongylus costaricensisBabesia spBalamuthia mandrillarisBalantidium coliBlastocystis spBrugia malayiCapillaria philipinensisClonorchis sinensis Chilomastix mesliniCryptosporidium parvumCyclospora cayetanensis Salir

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Dientamoeba fragilisDiphyllobotrium latumDipylidium caninumDracunculus medinensisEncephalitozoon sppEchinococcus granulosusEchinococcus multilocularis Endolimax nanaEntamoeba coliEntamoeba hartmanni Entamoeba histolyticaEnterobius vermicularisEnterocytozoon bieneusiEnteromonas hominis

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Fasciola hepaticaFasciolopsis buskiGiardia lambliaHeterophyes heterophyesHymenolepis diminutaHymenolepis nanaIodamoeba butschliiIsospora belliLeishmania braziliensisLeishmania majorLeishmania mexicana Leishmania donovaniLeishmania tropicaLoa loa

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Mansonella ozzardiMansonella perstansMansonella streptocercaMetagonimus yokogawaiNaegleria fowleriNanophyetus salmincolaNecator americanusOnchocerca volvulusOpistorchis viveriniPlasmodium falciparum Plasmodium malariaePlasmodium ovalePlasmodium vivaxParagonimus westermanii Pneumocystis carinii

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Retortamonas intestinalisSarcocystis spSeptata intestinalisSchistosoma haematobiumSchistosoma japonicumSchistosoma mekongiSchistosoma mansoniStrongyloides stercoralis

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Taenia saginata

Taenia solium

Toxocara canis

Toxoplasma gondii

Trichinella spiralis

Trichomonas hominis

Trichuris trichiura

Trichomonas vaginalis

Trichostrongylus spp

Trypanosoma brucei gambiense

Trypanosoma brucei rhodesiense

Trypanosoma cruzi

Wuchereria bancrofti SalirMenú

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CLASIFICACION TAXONOMICA DE LOS PARASITOS

Parásitos protozoos

Parásitos Metazoos

Sarcomastigophoros

Ciliophoros

Apicomplexa

Helmintos

Platelmintos

Nematodos

Cestodos

TrematodosSalir

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Entamoeba histolyticaEntamoeba coliEntamoeba hartmanniEndolimax nanaIodamoeba butschliiNaegleria fowleriAcanthamoeba sppBalamuthia mandrillaris

Entamoeba histolyticaEntamoeba coliEntamoeba hartmanniEndolimax nanaIodamoeba butschliiNaegleria fowleriAcanthamoeba sppBalamuthia mandrillaris

Giardia lambliaDientamoeba fragilisChilomastix mesliniRetortamonas intestinalisEnteromonas hominisTrichomonas hominisTrichomonas vaginalisLeishmania tropicaLeishmania majorLeishmania mexicanaLeishmania braziliensisLeishmania donovaniTrypanosoma brucei gambienseTrypanosoma brucei rhodesienseTrypanosoma cruzi

Giardia lambliaDientamoeba fragilisChilomastix mesliniRetortamonas intestinalisEnteromonas hominisTrichomonas hominisTrichomonas vaginalisLeishmania tropicaLeishmania majorLeishmania mexicanaLeishmania braziliensisLeishmania donovaniTrypanosoma brucei gambienseTrypanosoma brucei rhodesienseTrypanosoma cruzi

Phylum: Sarcomastigophora

Subphylum:: Sarcodina Subphylum: Mastigophora

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Balantidium coliBalantidium coli

Phylum: Ciliophora

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Plasmodium vivaxPlasmodium malariaePlasmodium falciparumPlasmodium ovaleCryptosporidium parvumCyclospora cayetanensisToxoplasma gondiiSarcocystis spBlastocystis spIsospora belliPneumocystis carinii

Encephalitozoon sppEnterocytozoon bieneusiSeptata intestinalis

Babesia sp

Phylum: Apicomplexa

Subclase: Piroplasma Subclase: Coccidia Subclase: Microspora

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Ascaris lumbricoidesEnterobius vermicularisStrongyloides stercoralisAncylostoma duodenaleNecator americanusTrichostrongylus sppAnisakis spp.Toxocara canisMansonella ozzardiMansonella perstansMansonella streptocercaWuchereria bancroftiLoa loaBrugia malayiOnchocerca volvulusDracunculus medinensisAngiostrongylus cantonensisAngiostrongylus costaricensis

Trichinella spiralisTrichuris trichiuraCapillaria philipinensis

Phylum: NematodaClase: AdenophoraClase: Secernentia

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Clonorchis sinensisFasciola hepaticaFasciolopsis buskiHeterophyes heterophyesMetagonimus yokogawaiNanophyetus salmincolaOpistorchis viveriniParagonimus westermaniiSchistosoma haematobiumSchistosoma japonicumSchistosoma mekongiSchistosoma mansoni

Clonorchis sinensisFasciola hepaticaFasciolopsis buskiHeterophyes heterophyesMetagonimus yokogawaiNanophyetus salmincolaOpistorchis viveriniParagonimus westermaniiSchistosoma haematobiumSchistosoma japonicumSchistosoma mekongiSchistosoma mansoni

Diphyllobotrium latumDipylidium caninumEchinococcus granulosusEchinococcus multilocularisHymenolepis nanaHymenolepis diminutaTaenia saginataTaenia solium

Diphyllobotrium latumDipylidium caninumEchinococcus granulosusEchinococcus multilocularisHymenolepis nanaHymenolepis diminutaTaenia saginataTaenia solium

Phylum: Platelmintos

Clase: Cestoidea Clase: Trematoda

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El examen coproprasitoscopico es uno de los análisis para la detecciónde parásitos más empleado en los laboratorios de análisis clínico, existen para ello varios procedimientos para su realización, sin embargo uno de los más empleados es el propuesto por la (NCCLS) Este procedimiento de flotación sedimentación permite la separación de quistes de protozoarios y huevos de helmintos de la materia fecal, mediante el empleo de un líquido de alta densidad.Los elementos parasitarios son recuperados en la película superficialy los desechos permanecen en el fondo del tubo. Esta técnica deja una preparación más limpia que los procedimientos de sedimentación; sinembargo, la mayor parte de los huevos de helmintos no flotan; por lo tanto no se observan por este método. Si se aumentará la densidad delSulfato de zinc pueden flotar, pero se distorsiona la morfología de losorganismos presentes y no se recomienda para el análisis de rutina, por lo tanto, para asegurarse de la detección de todos los parásitos, sedebe de examinar la película superficial y el sedimento.

El examen coproprasitoscopico es uno de los análisis para la detecciónde parásitos más empleado en los laboratorios de análisis clínico, existen para ello varios procedimientos para su realización, sin embargo uno de los más empleados es el propuesto por la (NCCLS) Este procedimiento de flotación sedimentación permite la separación de quistes de protozoarios y huevos de helmintos de la materia fecal, mediante el empleo de un líquido de alta densidad.Los elementos parasitarios son recuperados en la película superficialy los desechos permanecen en el fondo del tubo. Esta técnica deja una preparación más limpia que los procedimientos de sedimentación; sinembargo, la mayor parte de los huevos de helmintos no flotan; por lo tanto no se observan por este método. Si se aumentará la densidad delSulfato de zinc pueden flotar, pero se distorsiona la morfología de losorganismos presentes y no se recomienda para el análisis de rutina, por lo tanto, para asegurarse de la detección de todos los parásitos, sedebe de examinar la película superficial y el sedimento.

EXAMEN COPROPARASITOSCOPICO EXAMEN COPROPARASITOSCOPICO

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TECNICA DEL NCCLS PARA EL EXAMEN COPROPARASITOSCOPICO

1. Tamizar aproximadamente 1 g de materia fecal con solución salina (0.85%)utilizando un frasco con malla y un agitador.

2. El material tamizado se recolecta en un tubo de 12 X 100 y se centrifuga durante 10 minutos a 500 g.

3. Decantar el líquido sobrenadante.4. Resuspender el sedimento con 1 o 2 mL de sulfato de Zinc.5. Llevar el volumen con el sulfato de Zinc hasta 2 cm por debajo de la boca

del tubo.6. Centrifugar 1 minuto a 500 g.7. Dejar reposar durante 2 a 3 minutos.8. Sin sacar los tubos de la centrifuga, tomar con una pipeta Pasteur una o dos

gotas de la película superficial o con un asa bacteriológica.9. Colocar la muestra sobre el portaobjeto y añadir una gota de MIF o lugol.10. Decantar el sobrenandante y con la misma pipeta Pasteur o con el asa, tomar

una muestra del sedimento y colocarla en un portaobjeto y añadir una gotade MIF o lugol.

11. Observar al microscopio ambas preparaciones.12. Informar lo observado en las preparaciones.

TECNICA DEL NCCLS PARA EL EXAMEN COPROPARASITOSCOPICO

1. Tamizar aproximadamente 1 g de materia fecal con solución salina (0.85%)utilizando un frasco con malla y un agitador.

2. El material tamizado se recolecta en un tubo de 12 X 100 y se centrifuga durante 10 minutos a 500 g.

3. Decantar el líquido sobrenadante.4. Resuspender el sedimento con 1 o 2 mL de sulfato de Zinc.5. Llevar el volumen con el sulfato de Zinc hasta 2 cm por debajo de la boca

del tubo.6. Centrifugar 1 minuto a 500 g.7. Dejar reposar durante 2 a 3 minutos.8. Sin sacar los tubos de la centrifuga, tomar con una pipeta Pasteur una o dos

gotas de la película superficial o con un asa bacteriológica.9. Colocar la muestra sobre el portaobjeto y añadir una gota de MIF o lugol.10. Decantar el sobrenandante y con la misma pipeta Pasteur o con el asa, tomar

una muestra del sedimento y colocarla en un portaobjeto y añadir una gotade MIF o lugol.

11. Observar al microscopio ambas preparaciones.12. Informar lo observado en las preparaciones.

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Reactivos:

Solución acuosa de sulfato de Zinc: disolver 330 g de sulfato de zinc en Aproximadamente 670 mL de agua destilada, ajustar la densidad a 1.2 cuando se trabaje con muestras fijadas en formol o 1.18 cuando se trabaje con muestras frescas.La densidad de la solución debe verificarse cuando menos una vez al mes.

Solución de lugol parasitológico: Solución madre: Yodo metaloide 5 g

Yoduro de potasio 10 gDisolver el yoduro de potasio en 20 mL de agua destilada, agregar el yodoy disolver totalmente, aforar a 100 mL con agua destilada.Solución de trabajo: solución madre: 1 volumen

agua destilada 3 volumenes

Solución yodoformolada de merthiolate (MIF): Agua destilada 250 mLTintura merthiolate No. 99 200 mLFormol 25 mLGlicerina 5 mL

Mezclar perfectamente todos los componentes, la solución se conserva porvarios meses en frasco ámbar a resguardo de la luz.Inmediatamente antes del empleo añadir 11.75 mL del reactivo más 0.75 mLde solución madre de lugol.

Reactivos:

Solución acuosa de sulfato de Zinc: disolver 330 g de sulfato de zinc en Aproximadamente 670 mL de agua destilada, ajustar la densidad a 1.2 cuando se trabaje con muestras fijadas en formol o 1.18 cuando se trabaje con muestras frescas.La densidad de la solución debe verificarse cuando menos una vez al mes.

Solución de lugol parasitológico: Solución madre: Yodo metaloide 5 g

Yoduro de potasio 10 gDisolver el yoduro de potasio en 20 mL de agua destilada, agregar el yodoy disolver totalmente, aforar a 100 mL con agua destilada.Solución de trabajo: solución madre: 1 volumen

agua destilada 3 volumenes

Solución yodoformolada de merthiolate (MIF): Agua destilada 250 mLTintura merthiolate No. 99 200 mLFormol 25 mLGlicerina 5 mL

Mezclar perfectamente todos los componentes, la solución se conserva porvarios meses en frasco ámbar a resguardo de la luz.Inmediatamente antes del empleo añadir 11.75 mL del reactivo más 0.75 mLde solución madre de lugol.

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Quistes de Entamoeba histolytica

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