análisis del comportamiento de los parámetros
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Universidad de La Salle Universidad de La Salle
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Medicina Veterinaria Facultad de Ciencias Agropecuarias
2016
Análisis del comportamiento de los parámetros hematológicos en Análisis del comportamiento de los parámetros hematológicos en
caballos que compiten en carreras de enduro a 2640 M.S.N.M caballos que compiten en carreras de enduro a 2640 M.S.N.M
Marlly Carolina Mesa Rojas Universidad de La Salle, Bogotá
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Análisis Del Comportamiento De Los Parámetros Hematológicos En Caballos Que
Compiten En Carreras De Enduro A 2,640 M.S.N.M.
Trabajo de grado
Preparado por:
Marlly Carolina Mesa Rojas
Director:
Dr. Carlos Adolfo Salazar Latorre
UNIVERSIDAD DE LA SALLE
FACULTAD DE CIENCIAS AGROPECUARIAS
MEDICINA VETERINARIA
Bogotá, Marzo de 2016
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Análisis Del Comportamiento De Los Parámetros Hematológicos En Caballos Que
Compiten En Carreras De Enduro A 2640 M.S.N.M.
Trabajo de grado
Preparado por:
Marlly Carolina Mesa Rojas
Código: 14082069
Director:
Dr. Carlos Adolfo Salazar Latorre
UNIVERSIDAD DE LA SALLE
FACULTAD DE CIENCIAS AGROPECUARIAS
MEDICINA VETERINARIA
Bogotá, febrero de 2016
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APROBACIÓN
DIRECTOR
Dr. Carlos Adolfo Salazar Latorre
JURADO
Dr. Rafael Neira
JURADO
Dr. Ricardo Piñeros
4
DIRECTIVOS
RECTOR Hno. Carlos Gabriel Gómez Restrepo
VICERRECTOR ACADÉMICO Hno. Carlos Enrique Carvajal
VICERRECTOR ADMINISTRATIVO Dr. Eduardo Ángel Reyes
VICERRECTOR DE PROMOCIÓN Hno. Frank Leonardo Ramos
Y DESARROLLO HUMANO
VICERRECTOR DE INVESTIGACIÓN Luis F. Ramírez Hernández
Y TRANSFERENCIA
DECANA DE LA FACULTAD DE Dra. Claudia Aixa Mutis Barreto
CIENCIAS AGROPECUARIAS
DIRECTOR DE PROGRAMA DE Dr. Fernando Nassar Montoya
MEDICINA VETERINARIA
ASISTENTE ACADÉMICA Dra. Clara Stefany Romero Hurtado
5
COMPROMISO
El presente trabajo no contiene ideas que sean contrarias a la doctrina católica en asuntos de
dogma y moral.
Ni la Universidad, ni el director, ni el jurado calificador son responsables de las ideas expuestas
por la graduanda.
6
DEDICATORIA
A todos y cada uno de mis pacientes.
7
AGRADECIMIENTOS
A mi familia que día a día me muestra que el sol sale todas las mañanas y que es una nueva
oportunidad para ser feliz, a mis amigas la familia que uno escoge a Angie Orozco, Daniela
Bejarano y Adriana Pinilla gracias por todas y cada una de sus bellas palabras de apoyo y cariño
hacia mí.
Al doctor Carlos Salazar Latorre un agradecimiento muy especial por su constante apoyo y
amistad.
A la Universidad de La Salle por haberme dado las bases para ser una gran profesional, y
demostrarme que uno hace su vida profesional, finalmente gracias a todas y cada una de las
personas que hicieron parte de mi vida universitaria.
8
TABLA DE CONTENIDO
Página
Resumen 14
Abstract 15
Introducción 16
1. Planteamiento del problema 18
2. Objetivos 20
2.1 Objetivo General 20
2.2 Objetivos específicos 20
3. Hipótesis 21
4. Marco teórico 21
4.1. Enduro Ecuestre 21
4.1.1. Características del Enduro 22
4.1.2. Caballos De Enduro 23
4.2. Respuestas Y Adaptaciones Fisiológicas Al Ejercicio 24
4.2.2. Sistema Cardiovascular 24
4.2.3. Frecuencia cardiaca 25
4.2.3.1. Frecuencia cardíaca en reposo 25
4.2.3.2. Frecuencia cardíaca durante el ejercicio 25
4.2.3.3. Recuperación de la frecuencia cardíaca después del ejercicio 26
4.2.3.4. Cambios en la frecuencia cardíaca en respuesta al entrenamiento 27
4.2.3.5. Índice de recuperación cardíaca 27
4.2.4. Volumen sanguíneo 28
4.2.4.1. Composición sanguínea 28
4.2.4.1.1. Plasma 28
4.2.4.1.1.1. Volumen plasmático 29
4.2.4.1.1.2. Efecto del ejercicio sobre el volumen plasmático 29
4.2.4.1.1.3. Efecto del entrenamiento sobre el volumen plasmático 29
4.2.4.2. Proteínas plasmáticas 30
9
4.2.4.3. Glóbulos rojos 33
4.2.4.4. Eritropoyesis 34
4.2.4.4.1. Número de eritrocitos 35
4.2.4.4.2. Área superficial 36
4.2.4.4.3. Periodo de vida 36
4.2.4.4.4. Destino de los eritrocitos 37
4.2.4.4.5. Hemoglobina 39
4.2.4.4.5.1. Cantidad 40
4.2.4.4.5.1.1. Variaciones 40
4.2.4.4.6. Hematocrito 41
4.2.4.4.7. Hemograma en reposo 42
4.2.4.4.8. Cambios hematológicos asociados al ejercicio 42
4.2.4.4.8.1. Eritrocitos 42
4.2.4.4.8.2. Hemoglobina 43
4.2.4.4.8.3. Leucograma 46
4.3. Mecanismos fisiopatológicos implicados en el ejercicio de resistencia 48
4.3.1. Fisiopatología del desequilibrio hídrico 48
4.3.2. Respuestas Musculares al Ejercicio 49
4.3.2.1. Ejercicio Aeróbico. 49
4.3.2.2. Ejercicio Anaeróbico. 50
4.3.2.3. Respuesta Muscular al Entrenamiento 51
5.Materiales y métodos 52
5.1. Enfoque metodológico 52
5.2. Tipo de estudio 53
5.3. Población 53
5.4. Muestra 53
5.5. Criterios de admisión 54
5.5.1. Criterios de inclusión 54
5.5.2. Criterios de exclusión 54
5.6. Diseño muestral 54
5.7. Muestreo 54
10
5.8. Análisis estadístico 54
6. Resultados 55
7. Discusión de resultados 63
8 Conclusiones 65
9. Recomendaciones 66
Referencias 67
Anexos 80
11
LISTA DE TABLAS
Página
Tabla 1. Concentraciones de proteínas plasmáticas totales (g/dl) en caballos de enduro según
diferentes autores. 32
Tabla 2. HTOs encontrados por diversos autores en competiciones de raid sobre diferentes
distancias. 46
Tabla 3. Parámetros sanguíneos para tiempo 0 55
Tabla 4. Parámetros hematológicos en el T1 56
Tabla 5. Parámetros hematológicos en el tiempo 2 57
Tabla 6. Valores hematológicos en T0, T1 y T2 58
Tabla 7. Comparación de medias de HTO, PPT, HB en tiempo 0, 1 y 2 59
Tabla 8. Diferencia de medias entre tiempos 0,1 y 2 de RTO GB 60
Tabla 9. Comparación entre tiempos 0,1 y 2 de neutrófilos, linfocitos y eosinófilos 61
Tabla 10. Diferencia de medias entre tiempos 0,1 y 2 de fibrinógeno 62
12
LISTA DE FIGURAS
Página
Figura 1. Eritropoyesis 30
Figura 1. Principales causas de fatiga durante o después del ejercicio 51
13
Resumen
Esta investigación tuvo como objetivo estudiar la variación en el conteo de eritrocitos,
Hematocrito (Hto), hemoglobina (Hb), y el análisis del leucograma en este estudio se utilizaron
12 equinos de raza árabe que practican carreras de enduro a los cuales se les tomaron muestras
sanguíneas pre y pos- ejercicio en Bojacá, Cundinamarca. Como metodología se tomaron
muestras sanguíneas directamente de la vena yugular de los equinos, sometidos a la carrera de
enduro en 3 momentos específicos: antes de iniciar la carrera (T0), inmediatamente finalizado la
carrera (T1) y a la hora post-ejercicio (T2).
Los resultados obtenidos fueron depurados y analizados por medio del programa EXCEL y
SPSS®, haciéndose un análisis de estadística descriptiva, se realizó un Análisis de Varianza
(ANOVA) para establecer diferencias entre los diferentes tiempos. Para las variables con
diferencia estadísticamente significativas, se le realizo la prueba HSD de Tukey (Honest
Significance Difference), se utilizó un nivel de significancia de p<0.05; lo cual determinó
diferencias estadísticamente significativas entre el T1 con relación a al T0 y T2 para las variables
eritrocitos, hematocrito y hemoglobina. Para las variables de la línea leucocitaria se encontraron
variables estadísticamente significativas especialmente en los neutrofilos entre el tiempo t1y t2 y
los linfocitos encontramos relación entre tiempos, lo cual permitió decir que los caballos tienen
un buen rendimiento deportivo, pero terminaron la carrera exhaustos según lo evaluado en la
línea blanca y fibrinógeno.
Palabras clave: Enduro, equino, ejercicio, hematología
14
Abstract
The objective was to study the variation in erythrocyte count, hematocrit (HTO), hemoglobin
(Hb), white blood cell count in 12 Arab race horses racing enduro practice. Blood samples were
taken pre and post exercise in Bojacá, Cundinamarca. The methodology involved taking blood
samples directly from the jugular vein of horses undergoing enduro race in 3 specific times:
before starting the race (T0), immediately upon ending the race (T1) and post-exercise time (T2).
The results were released and analyzed through Excel and SPSS® programs, making an analysis
of descriptive statistics. Analysis of variance (ANOVA) was performed to differentiate between
different times. For variables with statistically significant difference, the Tukey HSD (Honest
Significance Difference) test, a significance level of p <0.05 was used; which determined
statistically significant differences between the T1 relative to T0 and T2 for the variables of
erythrocytes, hemoglobin and hematocrit. For variables line statistically significant variables
were found particularly in neutrophils between the time T1 and T2 and lymphocytes found no
relationship between the times, which led to the conclusion that the horses had a good athletic
performance, but finished the race exhausted as assessed on the white line and fibrinogen.
Keywords: Enduro, equine, exercise, hematology
15
INTRODUCCIÓN
Durante más de 50 años, la evaluación del hemograma y bioquímica sérica o plasmática
ha sido una piedra angular en la evaluación del caballo atlético. Inicialmente, las investigaciones
fueron centradas en el hemograma, que se evaluó de forma manual utilizando el hemocitómetro.
Actualmente, las técnicas automatizadas están disponibles tanto para los valores hematológicos
y bioquímicas sanguíneas, originando una amplia gama de mediciones disponibles, así como un
menor gasto por prueba. (McGowan & Hodgson, 2014).
La circulación de la sangre y sus componentes desde y hacia los órganos principales,
incluyendo la musculatura en el ejercicio, representa uno de los aspectos más críticos de la
fisiología del ejercicio. (McGowan & Hodgson, 2014). Desde la evaluación del hemograma y
suero o plasma, la bioquímica sanguínea pretende proporcionar conocimientos sobre el transporte
de oxígeno, la función de los órganos, electrolitos y el equilibrio ácido-base; por lo tanto no es
sorprendente que tales pruebas se clasifiquen actualmente entre las técnicas de diagnóstico de
mayor uso durante la investigación de rendimiento de los equinos atletas (McKenzie, 2012).
Aunque estos métodos proporcionan una amplia información sobre la evaluación de la posible
inflamación o disfunción de diversos sistemas; la formación y el ejercicio del equino pueden
influir en múltiples variables hematológicas y bioquímicas en caballos sanos.
Las pruebas de laboratorio son algunas de las herramientas más importantes que tenemos
en veterinaria. La interpretación de pruebas simples de laboratorio puede ayudar o dar un
diagnóstico, cuando la interpretación de los signos clínicos solamente no es suficiente. Muchos
veterinarios prefieren enviar muestras a los laboratorios de referencia; sin embargo, el
conocimiento de la recolección y manipulación adecuada de las muestras, así como la
comprensión y selección de los procedimientos adecuados, permitirá la óptima interpretación de
las pruebas. El objetivo principal del laboratorio en la medicina es generar resultados confiables
para ayudar en un diagnóstico y en el seguimiento de los casos clínicos (Ouellette, 2014).
16
A pesar de la amplia investigación que se ha realizado, hay poca evidencia para sugerir
que todos los ensayos clínico-patológicos de rutina en estado descanso pueden detectar la aptitud
atlética o potencial de rendimiento. (McKenzie, 2012). Sin embargo, el papel de la patología
clínica en la detección de alguna alteración subclínica y/o el sobre-entrenamiento puede tener un
gran impacto en el rendimiento y éste no debe ser subestimado. (McGowan & Hodgson, 2014)
Mas sin embargo las anormalidades que pueden encontrarse en la mayoría de los casos en
los que es difícil interpretar los hallazgos en la ausencia de un detallado examen físico, es
importante tener en cuenta que con un gran número de resultados, algunos parámetros pueden
estar fuera del rango normal, sin que esto tenga alguna relevancia clínica particular. Por lo tanto,
para ver anomalías menores relativamente significativas deben encontrarse en un "perfil" crítico,
ya que pueden no tener significación patológica. (McKenzie, 2012)
17
1. Planteamiento del problema
El enduro ecuestre es una disciplina que pone a prueba el estado físico del equino y la
habilidad del jinete en una competencia a campo abierto, en el cual va en contra del tiempo, el
clima y las condiciones topográficas del terreno, por lo cual en términos generales, es el
equivalente a una maratón (FEI, 2014)
Los cambios en el cuadro hemático en el ejercicio como los aumentos en el número de
glóbulos rojos circulantes en respuesta a la exposición a la altitud han sido bien estudiados en
seres humanos (Lenfant & Sullivan, 1971), pero los informes en equinos son contradictorias con
algunos estudios que indican un aumento en el número de células rojas (Dealuja, Gross,
Mccosker, & Svendsen, 1968) y otros que sugieren ningún aumento (Collins, Farrelly, & Byrne,
1969). Una de las limitaciones a estos estudios fue una falta de control de la contracción esplénica
ya que los caballos pueden almacenar hasta 50% de sus volúmenes de glóbulos rojos (RCV) en
el bazo (Persson, 1967) y la liberación de todas estas células requiere un esfuerzo sustancial
(como el ejercicio de alta intensidad). La falta de control de los animales y el ejercicio también
limita la cantidad de datos hematológicos que se puede obtener a partir de estudios de mulas en
grandes altitudes (Riar, Saxena, Sen Gupta, & Malhotra, 1976).
La investigación y la producción de conocimiento en torno a los equinos de este deporte
ha sido poco explorada en Colombia, razón por la cual no hay información científica suficiente
relacionada con las respuestas y adaptaciones fisiológicas que suceden en los caballos de enduro
en condiciones especiales como las de la Sabana de Bogotá.
Los caballos de enduro son entrenados con protocolos de entrenamiento aprendidos en
otros países o adaptados de la literatura extranjera. Los jinetes, los entrenadores e incluso, algunos
médicos veterinarios, suponen que los parámetros fisiológicos se comportan de igual manera en
la Sabana de Bogotá que en otras partes del mundo; sin embargo, extrapolar el conocimiento,
siendo las condiciones medioambientales tan diferentes, puede no ser adecuado. (Valderrama,
18
2014). Aunque existe alguna variación entre los recuentos de glóbulos rojos en un estado de
descanso y en las muestras recogidas después del ejercicio rápido o administración de epinefrina,
muestran poca variación en el muestreo repetido (Hanson, Kline, Foreman, Frey & Cooper
2010). Durante el ejercicio, bajo la influencia de catecolaminas, la contracción del bazo y la
liberación de eritrocitos, puede aumentar el volumen de células sanguíneas tanto como 20 % a 25
% (McGowan & Hodgson, 2014); debido a las variaciones del volumen celular, el hematocrito
puede ser un indicador fiable del verdadero volumen de glóbulos rojos en los caballos (Hanson,
Kline, Foreman, Frey & Cooper 2010). Sin embargo, puede haber hasta una variación individual
del 10% en el volumen plasmático (Persson, 1983a). Estas variaciones en el volumen plasmático
pueden afectar significativamente hematocrito y su capacidad de representar volumen de
eritrocitos en los equinos.
La investigación planteada permitirá observar los posibles cambios en los cuadros
hemáticos de equinos que han sido sometidos a condiciones de estrés y bajo esta altura y de
acuerdo a esto relacionar con en el desempeño deportivo; así mismo ayudará a identificar qué
medidas preventivas a tomar para disminuir el número de caballos que fallan en calificar a la
siguiente etapa como también de aquellos que enferman o mueren después de la carrera.
Los datos obtenidos en este trabajo de grado permitirán ser un punto de partida y de comparación
para futuras investigación en la medicina deportiva de equinos de igual manera las alteraciones
que se puedan encontrar puedan ser de utilidad para mejorar los protocolos de entrenamiento que
reciben estos caballos en la actualidad.
19
2. Objetivos
2.1. Objetivo General
Determinar los valores hematológicos: hematocrito, proteínas plasmáticas
totales, hemoglobina, recuento de glóbulos blancos, neutrófilos, linfocitos, eosinófilos,
monocitos, basófilos y fibrinógeno, en reposo y sus variaciones en caballos que han
sido sometidos a una prueba de enduro de 80 km en una altitud de 2,640 m.s.n.m. en
Bojacá, Cundinamarca.
2.2. Objetivos específicos
Determinar los valores hematológicos en reposo y su variación después del ejercicio y a
la hora de haber finalizado, en caballos que han sido sometidos a una prueba de enduro
de 80 km en una altitud de 2640 msnm..
Establecer si existen diferencias significativas en los valores entré los diferentes tiempos
de toma de muestras sanguíneas.
Comparar los valores hematológicos de estos equinos con otros resultados en estudios
similares en caballos de enduro en pruebas de 80 km en otras altitudes.
20
3. Hipótesis
Ho: El comportamiento de los valores hematológicos en caballos de enduro ecuestre que
compiten en pruebas de 80 km no es alterado por la altitud.
4. Marco teórico:
4.1. Enduro Ecuestre
El enduro ecuestre es un deporte relativamente joven, sin embargo su popularidad
ha ido creciendo rápidamente. El número de eventos internacionales regidos por la
Federación Ecuestre Internacional, se incrementó de 16 en 1994 a 276 en 2011, y con
este crecimiento aumentó también el número de competidores. En los últimos años, el
enduro ha sido la disciplina ecuestre de más rápido crecimiento a nivel mundial, basado
el número de jinetes inscritos, y es la segunda disciplina más popular después del salto
ecuestre de obstáculos en Colombia (Nagy A, 2013).
El enduro ecuestre es una competencia en la cual se prueba la habilidad del jinete para
manejar con seguridad la fortaleza y el estado atlético del caballo a través de una ruta a
campo traviesa, en una competencia en contra de las condiciones del suelo, la distancia,
el clima, el terreno y el reloj (Fédération Equestre Internationale, 2014). En términos
generales, el enduro es el equivalente a una maratón en humanos (Kenneth, 2008)
La competencia de Endurance se encuentra organizada en un número de fases. Al
final de cada fase (en principio cada 40 Km.) hay una inspección veterinaria organizada
como una puerta veterinaria con un tiempo de retención (la retención comienza cuando
21
el pulso del caballo se encuentra en los 64 o menos, hasta este momento el tiempo de la
carrera continúa). (FEDECUESTRE, 2014)
Las fases pueden estar repartidas en uno o dos días, según la distancia de la prueba.
El recorrido no debería contener más de un 10% de caminos de superficie dura. La parte
más demandante no debería estar cerca de la meta. (FEDECUESTRE, 2014)
Para competencias de más de un día, la distancia promedio mínima en un concurso
internacional normal es de 80 Km y en un concurso oficial es de 100 Km. Para un
Campeonato de un día de competencia, la distancia es generalmente de 120 ó 160 Km. y
el tiempo de carrera ganador es de aproximadamente 10 a 12 horas de carrera.
(FEDECUESTRE, 2014)
No hay límite de edad para los jinetes, ni limitación de razas equinas para practicar
este deporte, cualquier caballo en condiciones normales de salud y con un adecuado
entrenamiento puede practicar Endurance. La consigna de este deporte es priorizar la
salud y el bienestar del equino, el cual es retirado por el servicio veterinario de la carrera
ante cualquier problema sanitario. (Fédération Equestre Internationale, 2014)
4.1. Características del Enduro
Distancia: Las distancias en este tipo de pruebas difieren del resto de las actividades
hípicas ya que son grandes extensiones a recorrer, yendo desde los 40 Km. en pruebas
promocionales hasta los 160 Km. en competencias internacionales.
Terreno / Clima: No hay otro deporte donde encontremos tanta variedad de climas y
terrenos como el Endurance, pasando por llanuras, montañas y desiertos, con
temperaturas que van desde los 0º a los 38º C, lo que hace de esta actividad un desafío
para el equino y su jinete, sin dejar de lado el contacto íntimo con la naturaleza, que no
lo ofrece el resto de las actividades hípicas, convirtiéndolo en una verdadera aventura
ecuestre.
22
Simbiosis: Quién sino el Endurance lograría la simbiosis perfecta entre el binomio
equino/jinete, donde ambos deben interactuar para poder sortear la gran cantidad de retos
que esta disciplina ofrece. Podemos decir que no todos los equinos se desempeñan de
igual forma con un jinete, ni todos los jinetes lo hacen con un mismo equino, de aquí la
importancia de lograr esta simbiosis de la que hablamos.
Tipo de Ejercicio: Esta es una de las pocas, sino la única, actividad en la que los equinos
están sometidos a un ejercicio predominantemente de tipo aeróbico, entendiendo por tal
aquel ejercicio de larga duración e intensidad mediana que posibilita la máxima
utilización de los sustratos energéticos (hidratos de carbono y grasas) siempre y cuando
exista una adecuada ventilación, correcto transporte de oxígeno hemático y adaptación
muscular para una eficiente extracción. (Fédération Equestre Internationale, 2014)
4.1.2. Caballos De Enduro
Como norma de la Federación Ecuestre Internacional (FEI), cualquier animal
perteneciente al género Equus puede participar en una competencia de enduro
(Fédération Equestre Internationale, 2014), esto quiere decir que pueden correr caballos,
asnales, mulares o cebras.
Sin embargo, las razas más comúnmente utilizadas son la árabe y sus cruces, debido a
que poseen predominantemente fibras musculares de tipo I y por lo tanto, es una raza
apta para desempeñarse en deportes de resistencia como lo es esta disciplina. Entre los
cruces con esta raza se encuentran el Shagya árabe y el Angloárabe, los cuales también
son aptos para este tipo de deporte. (FEDECUESTRE, 2014). Lo que se debe recalcar
no es la importancia de la raza sino las condiciones anatomo-fisiológicas necesarias de
un equino para competir en Enduro.
-Animales despegados del suelo, esto implica equinos de miembros largos, favoreciendo
una mayor longitud del paso, lo que significa menor número de brazadas por distancia
recorrida.
23
-Tórax amplio, lo que indicaría mayor capacidad cardiopulmonar, indispensablemente
para realizar un ejercicio aeróbico.
-Animales delgados con masas musculares finas y fuertes con mayor predominio de
fibras aeróbicas (tipo I), esto implicaría menor peso a trasladar, menor producción de
energía calórica, y mayores reservas de agua corporal.
Con esto no se descarta la posibilidad de que cualquier equino entrenado pueda realizar
este tipo de deporte, y más aún llegar a un nivel óptimo de competencia, ya que otra
virtud que destaca el Endurance es la de no establecer una raza específica para su
realización, como sí lo requieren otras disciplinas hípicas.
4.2. Respuestas y adaptaciones fisiológicas al ejercicio
4.2.2. Sistema cardiovascular
El entrenamiento de resistencia produce cambios adaptativos en el sistema
cardiovascular con el fin de mejorar la entrega de oxígeno y, básicamente, cubrir las
necesidades del mismo durante la actividad física de larga duración. Se han descrito
cambios morfológicos y funcionales del corazón y también del sistema hemodinámico
con el fin de hacer más eficiente la perfusión y la oxigenación tisular (Kenneth, 2008).
4.2.3. Frecuencia cardiaca
4.2.3.1. Frecuencia cardíaca en reposo
La frecuencia cardíaca en el caballo de reposo depende principalmente del grado
de relajación del caballo individual. En los caballos relajados, frecuencia cardíaca en
24
reposo es generalmente en el rango de 25 a 40 latidos por minuto (latidos / min). Por
la noche, cuando los caballos están relajados, la frecuencia cardíaca suele estar en el
extremo inferior de este rango. Emoción súbita, el miedo, o la anticipación de ejercicio
pueden elevar la frecuencia cardíaca rápidamente a más de 100 latidos / min. Cambios
de la frecuencia cardíaca rápida en el rango de 20 a 110 latidos / min en los caballos
que descansan pueden explicarse enteramente por alteraciones en la actividad del
nervio parasimpático (Hodgson, McKeever, & McGowan, 2012).
Se ha sugerido que la frecuencia cardíaca en reposo es más baja en los caballos
atletas que en caballos no atletas. Sin embargo, frecuencia cardiaca en reposo en el
caballo generalmente no disminuye después de la formación, como en los atletas
humanos. (Hodgson, McKeever, & McGowan, 2012).
4.2.3.2. Frecuencia cardíaca durante el ejercicio
La frecuencia cardíaca incrementa en forma lineal con respecto a la velocidad
hasta llegar a un valor máximo (FC máx). Este aumento está asociado con la liberación
de catecolaminas asociada al ejercicio. La frecuencia máxima se mantiene estable aun
cuando la velocidad aumente (Nagy A, 2013) (Hodgson, McKeever, & McGowan,
2012).
La frecuencia cardíaca varía entonces dependiendo de la cadencia o el aire que
esté ejecutando el caballo en un momento determinado, de esta manera, al paso se
registran valores de frecuencia cardíaca entre 60 y 80 lpm, al trote entre 80 y 100 lpm,
al galope de trabajo entre 100 y 180 lpm y al galope tendido entre 180 y 220 lpm
(Hodgson, McKeever, & McGowan, 2012).
La frecuencia cardíaca promedio para un caballo de enduro en una carrera
completa se encuentra entre 120 y 140 lpm (McKenzie, 2012).
4.2.3.3. Recuperación de la frecuencia cardíaca después del ejercicio
25
Recuperación de la frecuencia cardíaca suele ser muy rápida en el primer minuto
después de paradas de ejercicio (Evans, 2007); luego se reduce más gradualmente
hacia los valores normales de descanso. Por lo tanto no es posible determinar el ritmo
cardíaco durante el ejercicio mediante la evaluación de la frecuencia cardiaca después
del ejercicio en los caballos.
La frecuencia cardíaca de recuperación se utiliza para evaluar la aptitud de los caballos
que compiten en pruebas de resistencia. Los equinos corredores de pruebas de
resistencia deben, estar a otros ambientes para que al momento de revisar su
frecuencia cardiaca no se encuentre alterada por factores adversos. El rendimiento
inadecuado de los caballos de resistencia se ve reflejado en mayores tasas de ritmo
cardíaco después del ejercicio en comparación con respecto a caballos con frecuencia
cardíaca inferior a 60 lat/min, 30 minutos después del ejercicio se encontraron para
mostrar menos evidencia de deshidratación y miopatía. Los equinos con frecuencias
cardíacas mayores de 65 a 70 lat/min en el tiempo de recuperación de 30 minutos en
el punto medio de un paseo en la resistencia a menudo desarrollan una severa
deshidratación y agotamiento si se les permite continuar. Estos resultados se han
adaptado a las carreras de resistencia moderna con la recuperación de la frecuencia
cardíaca estrictamente necesaria para los caballos que llevan a cabo eventos
sancionados.
Se ha sugerido que la frecuencia cardíaca de recuperación es un índice adecuado para
medir la recuperación entre ejercicios, cuando se utiliza el entrenamiento de intervalo.
Por ejemplo, se ha propuesto que una frecuencia cardíaca de recuperación de 120
latidos/min indica que un caballo se ha recuperado suficientemente para llevar a cabo
otras series. Sin embargo, no hay evidencia para apoyar esta afirmación y no se puede
suponer que un caballo está listo para su posterior ejercicio sobre la base de la
frecuencia cardíaca de recuperación. Sin embargo, anormalmente retrasado frecuencia
cardíaca de recuperación en el caballo individual en comparación con los normales
deben alertar a los entrenadores la posibilidad de enfermedad o la cojera. (Hodgson,
McKeever, & McGowan, 2012)
Dentro del reglamento FEI para el Enduro Ecuestre, se estipula que todos los
caballos deben presentar una frecuencia cardiaca por debajo de 64 lpm en los
26
siguientes 20 minutos después de finalizar cada una de las etapas, excepto para la
última, en la cual se aumenta el tiempo de recuperación a 30 minutos teniendo en
cuenta la sumatoria del trabajo que han realizado los caballos hacia el final de la
competencia (Fédération Equestre Internationale, 2014).
4.2.3.4.Cambios en la frecuencia cardíaca en respuesta al entrenamiento
En respuesta al entrenamiento de resistencia, un caballo debería alcanzar una
frecuencia cardíaca promedio menor que la de uno no entrenado cuando los dos
trabajen a la misma velocidad. De la misma manera, un caballo entrenado alcanzará
una menor frecuencia cardíaca máxima a una menor intensidad de ejercicio (Hodgson,
McKeever, & McGowan, 2012).
Adicionalmente, el tiempo de recuperación de la frecuencia cardíaca a valores previos
al ejercicio es menor en caballos entrenados que en los que no lo están (Hodgson,
McKeever, & McGowan, 2012)
4.2.3.5. Índice de recuperación cardíaca
El índice de recuperación cardíaca (CRI), también conocido como Test de
Ridgeway, es una herramienta que permite evaluar tanto el nivel de recuperación como
el nivel de acondicionamiento de un caballo y permite determinar si, en una carrera de
enduro, el caballo puede continuar a la siguiente etapa o no (Hodgson, McKeever, &
McGowan, 2012).
Este índice se basa en la premisa de que un caballo que fue precalentado
adecuadamente y se encuentra en condiciones apropiadas para continuar corriendo,
tendrá una frecuencia cardíaca que, después de que el caballo trote una distancia de 80
mt, vuelve a su medición inicial (antes del trote) dentro de los siguientes 30 segundos
después de haber terminado el trote o al completarse un minuto de haberse iniciado el
mismo (Evans, 2007)
Un caballo bien entrenado, debería pasar el test de Ridgeway a los 10 minutos
posteriores a la terminación del ejercicio, es decir, su frecuencia cardíaca al minuto de
haber empezado el trote (FR2), debe ser igual o menor que la tomada previamente al
27
mismo (FR1). Si la FR2 muestra un incremento de 4 lpm frente a la FR1, se puede
concluir que el caballo no se ha recuperado. Si el incremento es de 8 lpm, puede
sospecharse que el caballo ha sido sometido a mucho ejercicio y por ende, estrés (Nagy
A, 2013).
Aunque el CRI no es por si solo un parámetro que obligue a retirar un caballo de
la carrera, si se observa un incremento por encima de 4 lpm, debe hacerse una
evaluación más profunda del estado metabólico del mismo en busca de anormalidades
que puedan estar ocasionando la mala recuperación.
4.2.4. Volumen sanguíneo
Se calcula que entre el 8% y el 9% del peso corporal es sangre (8); sin embargo,
el volumen sanguíneo puede variar enormemente durante el ejercicio debido a la
contracción esplénica la cual aumenta el hematocrito (McKenzie, 2012).
La sangre funciona como medio de transporte. Lleva nutrientes del tracto digestivo a los
tejidos, los productos finales del metabolismo de las células a los órganos de excreción,
oxígeno de los pulmones a los tejidos, bióxido de carbono de los tejidos a los pulmones.
La sangre también ayuda a regular la temperatura, a mantener una concentración de agua
y electrolitos constantes en las células (Swenson, 1999).
4.2.4.1. Composición sanguínea
4.2.4.1.1. Plasma
Es un fluido traslúcido y amarillento, que representa la matriz extracelular líquida
en la que están suspendidos los elementos formes. Está compuesto por agua en su mayoría
(90%) y disuelta en ella, hay múltiples sustancias, entre las más abundantes las proteínas.
Constituye el 55% del volumen sanguíneo total (el 20% del líquido extracelular) y es una
de las reservas líquidas corporales (Marlin & Nankervis, 2002)
4.2.4.1.1.1.Volumen plasmático
El plasma constituye la fracción líquida de la sangre. Contiene gran cantidad de
iones, moléculas inorgánicas y moléculas orgánicas que cumplen funciones
28
específicas en el organismo (McGowan & Hodgson, 2014). El volumen plasmático
de un caballo en reposo varía entre 38 a 64 ml/kg de peso corporal, y al igual que el
volumen sanguíneo, se modifica durante el ejercicio (McKenzie, 2012).
4.2.4.1.1.2. Efecto del ejercicio sobre el volumen plasmático
Durante el ejercicio disminuye el volumen plasmático (Evans, 2007) (Hodgson,
McKeever, & McGowan, 2012) (Nagy A, 2013); esto se debe al movimiento de agua
desde el espacio intravascular hacia el extravascular (McGowan & Hodgson, 2014),
en respuesta a la pérdida de agua a través del sudor (McGowan & Hodgson, 2014).
La disminución del volumen plasmático se acompaña de un aumento en las proteínas
plasmáticas totales por hemoconcentración (Hodgson, McKeever, & McGowan,
2012).
El volumen plasmático disminuye en caballos de enduro durante la competencia
debido a la pérdida de agua y de sodio (Na+) en el sudor, y por ende, a una
redistribución de los fluidos corporales (Kenneth, 2008). Si el caballo toma agua, la
termorregulación será más fácil y por lo tanto la recuperación del caballo será mejor
(Kenneth, 2008).
4.2.4.1.1.3.Efecto del entrenamiento sobre el volumen
plasmático
El volumen plasmático del caballo en reposo aumenta en la medida en que el
aumenta su entrenamiento. Esto genera adaptaciones a nivel cardíaco como aumento
de la presión de la aurícula derecha y el volumen de eyección debido a un aumento en
el llenado ventricular. La expansión del volumen plasmático también mejora la
capacidad de termorregulación durante el ejercicio favoreciendo la llegada de sangre
hacia la piel (Nagy A, 2013).
4.2.4.2.Proteínas plasmáticas
29
Las proteínas plasmáticas son la albúmina, las globulinas y el fibrinógeno
(McGowan & Hodgson, 2014). Dentro de sus principales funciones se encuentran:
participar en algunos mecanismos inmunológicos, mantener la presión oncótica
(principalmente albúmina), amortiguar los procesos de desequilibrio ácido-base, es
decir, actuar como buffer, participar en el proceso de coagulación, transportar
hormonas y, particularmente la albúmina, es un transportador de metales, iones,
ácidos grasos, aminoácidos, bilirrubina, enzimas y medicamentos (McKenzie, 2012)
La proteinemia en reposo y durante el ejercicio es el resultado de la interacción de
numerosos factores, como grado de filtración entre los espacios intra y extravascular,
demandas metabólicas, control neuroendocrino, estado nutricional y equilibrio hídrico
(Messer, 1995; McGowan, 2008). Los rangos fisiológicos para la concentración de
proteínas plasmáticas (PP), albúmina, globulinas y fibrinógeno son de 5,5-7,5 g/dl,
2,6-3,8 g/dl, 2,0-3,5 g/dl y menos de 0,4-0,4 mg/dl de modo respectivo (Rose y
Hodgson, 1994; Muñoz et al., 2006).
La hiperproteinemia se asocia a deshidratación, observándose en este caso una
panhiperproteinemia, esto es, un aumento de las diversas fracciones que integran las
PP (Ecker et al., 1998; Sloet van Oldruitenborgh-Oosterbaan, 1999). Por este motivo,
la medición de las PP es importante en caballos de deporte como indicador de estado
hídrico. Por otro lado, la hipoproteinemia puede derivar de dos grandes grupos de
causas: pérdida de proteínas (hemorragias, enteropatías, nefropatías) y reducción en
su síntesis (hepatopatías, mala digestión mal absorción, estados de caquexia y
neoplasias) (Parraga et al., 1995; Sloet van Oldruitenborgh-Oosterbaan, 1999;
Kemper et al., 2000; Pusterla et al., 2005; Schott, 2007). Finalmente, hay que tener en
cuenta que el fibrinógeno es una proteína de fase aguda, considerada como un
indicador inespecífico de inflamación (Pollock et al., 2005; Borges et al., 2007). Por
este motivo, su determinación es útil en el diagnóstico de pérdida de funcionalidad en
caballos de deporte (Rose y Hodgson, 1994; Sloet Von Oldruitenborgh-Oosterbaan,
1999; McGowan, 2008). Las variaciones en la proteinemia en el curso de una prueba
de resistencia son variables y dependen de las condiciones ambientales, dureza del
30
recorrido y grado de aporte hídrico. Según los datos aportados por Hoffman et al.
(2002), las PP se correlacionan de forma directa con la velocidad. Aunque
investigaciones previas habían considerado que el incremento de la proteinemia o la
reducción del volumen plasmático son perjudiciales durante un ejercicio prolongado,
esta idea ha sido debatida (Kronfeld, 2001). Una elevación moderada tendría una
acción positiva, ya que mejoraría el transporte de oxígeno hacia los tejidos. Sin
embargo, un aumento marcado representa una deshidratación intensa e
hiperviscosidad sanguínea (Hoffman et al., 2002).
La tabla 1 muestra las concentraciones de PP en equinos que participaron en
competiciones de resistencia de diferente duración según varios autores. El
incremento en las concentraciones de PP y albúmina es un hallazgo común durante
las pruebas de resistencia (Carlson y Mansmann, 1974; Lindinger y Ecker, 1995;
Schott et al., 1997; 2006; Barton et al., 2003; Muñoz et al., 2006; 2010). Se considera
que estos parámetros son unos indicadores más exactos del grado de deshidratación
que el HTO, debido a que éste último puede verse afectado por la contracción
esplénica durante el ejercicio (Persson, 1983). Se ha documentado que aunque ambos
parámetros (HTO y PP) suelen mostrar una evolución paralela, dicha tendencia no se
observa en las primeras etapas, debido a la influencia del estrés con una
esplenocontracción intensa (Muñoz et al., 2006; 2010). La deshidratación incrementa
la retención de calor, debido al descenso del fluido extracelular disponible para
eliminación de calor por la superficie corporal y para la producción de sudor. De
hecho, la deshidratación puede ser tan severa como para inducir shock circulatorio e
hipovolémico, resultando en una cascada de eventos que puede ser irreversible e
incluso puede conducir a la muerte si no se procede a un tratamiento médico de
urgencia (Flaminio y Rush, 1998; Foreman, 1998).
Tabla 1. Concentraciones de proteínas plasmáticas totales (g/dl) en caballos de enduro según
diferentes autores
Autores Distancia
(km)
Reposo Tras ejercicio
31
Rose et al., 1980 40-50 6,50±0,70 7,60±0,70
Rose et al., 1980 80-100 6,50±0,70 8,90±0,70
Snow et al., 1982 40-50 6,70±0,90 8,40±0,10
Snow et al., 1982 80-100 6,70±0,90 8,20±0,30
Lindinger y Ecker, 1995 40-50 6,40±0,10 6,80±0,20
Lindinger y Ecker, 1995 80-100 6,40±0,10 6,80±0,20
Schott et al., 1997 80 6,85±0,11 7,36±0,16
Schott et al., 1997 160 6,96±0,16 6,67±0,19
Martínez et al., 2000 42 6,24±0,45 8,74±0,99
Barton et al., 2003 48 6,20±0,40 6,70±0,70
Barton et al., 2003 83 6,30±0,50 6,70±0,50
Barton et al., 2003 159 6,10±0,20 6,00±0,50
Hess et al., 2006 80 6,60±0,07 7,20±0,12
Muñoz et al., 2010 30 7,07±0,51 7,72±0,84
Muñoz et al., 2010 53,6 7,07±0,51 7,38±0,70
Muñoz et al., 2010 76,2 7,07±0,51 7,54±0,1,08
Fuente: (Trigo, 2010)
Finalmente, hay que tener en cuenta que la hemoconcentración, valorada a partir
de los valores de PP, parece ser más intensa en la primera mitad de una competición
prolongada (Schott et al., 2006). El descenso de PP en la segunda mitad del raid se ha
asociado a una reducción en la intensidad de ejercicio (menor velocidad), pérdida de
proteínas desde el espacio vascular y/o adición de agua hacia el espacio extracelular con
hemodilución (Schott et al., 2006).
4.2.4.3.Glóbulos rojos
Son células anucleadas que normalmente circulan en la sangre. Su propósito
principal es llevar a la hemoglobina, las funciones de eritrocitos incluyen el transporte de
oxígeno a los tejidos, el transporte de dióxido de carbono a los pulmones, y buffer de
iones de hidrógeno, todos los cuales son interrelacionan (Kingston, 2008). La vida media
32
del eritrocito es de 140-155 días, los eritrocitos del caballo tienen de pequeña magnitud,
se demuestra con forma discoide bicóncava, El diámetro de los eritrocitos en el equino
tiene un tamaño promedio de 5.8 micras y un rango entre 4,0 – 8,0 micras. De forma
fisiológica res automáticos que producen eritrogramas se observa la presencia de rouleaux
o “pilas donde se muestra la distribución del tamaño de moneda”, hileras de eritrocitos
super- de los eritrocitos. (Olver, Andrews, Smith, & Kaneko, 2010). Los glóbulos rojos
no poseen núcleos ni mitocondrias, estos obtienen ATP exclusivamente por glucolisis
anaeróbica de la glucosa plasmática y producen ácido láctico que se difunde nuevamente
en el plasma. El cálculo de la concentración de glóbulos rojos en sangre se conoce como
hematocrito. Al interpretar el hemograma completo, hay que tener en cuenta un número
de factores que podrían influir en las propiedades normales de los eritrocitos, incluyendo
la edad, raza, tono simpático, condición física, nutrición y variables individuales. (Boffi,
2007)
4.2.4.4.Eritropoyesis
La eritropoyesis ocurre continuamente en la medula ósea en el adulto y las células
salen al torrente sanguíneo con una rapidez que compensa la destrucción de eritrocitos.
Por consiguiente, el número total en la sangre no fluctúa mucho. (Gordon, 1970) Es un
proceso continuo. Muchos nutrientes son necesarios para este proceso. La vitamina B12
(cianocobalamina) contiene un átomo de cobalto en cada molécula. Participa en la
maduración de los eritrocitos. Se necesita para la síntesis de DNA de todas la células del
cuerpo, incluidos los eritrocitos. Estas vitaminas participan en diferentes vías metabólicas
en el glóbulo rojo para la síntesis de DNA. Durante la maduración el ácido fólico también
es necesario para la síntesis de RNA en los glóbulos rojos. Las dos vitaminas funcionan
como coenzimas en la síntesis de ácidos nucleídos o sus componentes, las bases púricas
y pirimídicas. (Bernard, 2000) Además de vitaminas, los nutrimentos como los minerales
y los aminoácidos, así como el agua y la energía, se necesitan para las síntesis de las
proteínas sanguíneas. Los minerales que se requieren más frecuentemente son hierro,
cobre y cobalto. El hierro se incorpora a la molécula de hemoglobina y el cobre es esencial
como coenzima o catalizador en la síntesis de hemoglobina. El cobre es componente de
33
la enzima ferroxidasa, la cual es necesaria para la oxidación de hierro ferroso a la forma
férrica y a la incorporación de hierro a la hemoglobina.
Figura 2. Eritropoyesis
Fuente:
http://www.probiomed.com.mx/files/cache/d664ec7f41a490b6ac05d9bc659882e7.jpg
4.2.4.4.1. Número de eritrocitos
El número de glóbulos rojos varía considerablemente entre las especies. El número
varía también dentro de las especies y entre los individuos de una especie (debido a que
las células no se distribuyen uniformemente en el sistema vascular sanguíneo). Las
cuentas celulares varían también entre muestras de sangre arterial y venosa, ya que el
plasma se desplaza constantemente a través de las paredes capilares. Las siguientes
cantidades indican el intervalo de eritrocitos que hay en la sangre de animales domésticos
y seres humanos.
Los factores afectan no sólo al número de eritrocitos, también a la concentración de
hemoglobina de otros componentes de la sangre principalmente la edad, el sexo, el
ejercicio, el estado nutricional, la lactación, la gestación, la excitación (liberación de
epinefrina), el volumen sanguíneo (hemodilución o hemoconcentración), la etapa del ciclo
estral, la raza, la hora del día, la temperatura ambiental, la altitud y otros factores
climáticos. (Swenson, 1999)
La sangre de caballos de tiro ligero, como los pura sangre, frecuentemente tienen
más glóbulos rojos por unidad de volumen que la sangre de caballos de tiro. Este hallazgo
34
explica parcialmente con base en la excitación que provoca una liberación de epinefrina,
la cual hace que el bazo se contraiga y aumente el número de eritrocitos en la sangre
circulante. Además los eritrocitos de los equinos pura sangre tienen menor tamaño. Por
consiguiente el área superficial de los eritrocitos es mayor, lo que facilita el transporte de
oxigeno de los pulmones a los tejidos. La cuenta de eritrocitos por unidad de volumen es
prácticamente la misma para mulas que para caballos de tiro. (Irvine 1960)
4.2.4.4.2. Área superficial
El área superficial eritrocítica total se puede calcular cuando se conoce el volumen
sanguíneo, la cuenta, el diámetro y el grosor de los eritrocitos. Las áreas superficiales son
sorprendentemente grandes. (Todd y col, 1951) El área superficial eritrocítica tiene gran
importancia en la función respiratoria o de transporte de gases de la sangre. Se mantiene
una relación relativamente constante entre el área superficial eritrocítica y el peso
corporal. Para los mamíferos varia de 57 a 67 m 2 /kg. El área superficial media por
eritrocitos se calculó primero a partir de las dimensiones obtenidas de frotis secos. Este
valor se aumentó en un 20 por ciento para alcanzar la superficie estimada del eritrocito
húmedo. El grosor promedio se calculó como de 2µm. Estas mediciones proporcionan
algunos valores comparativos para ayudar a comprender los mecanismos del transporte
de gases, a pesar de que se pueden introducir errores considerables en éste y otros valores.
(Voigt, 2003)
4.2.4.4.3. Periodo de vida
El periodo de vida de los eritrocitos cambia con las especies y los valores
registrados varían con el método usado en su medición. Los eritrocitos se marcan con
isótopos de hierro, cromo, fósforo y carbono (59 Fe, 55 Fe, 51 Cr, 32 P y 14 C); después
se mide su vida media y se calcula el tiempo de vida. En el perro, el tiempo de vida varía
de 100 a 130 días con un promedio de 118. Los valores registrados para el gato son de 70
a 80 días y para los caballos, de 140 a 150 días (Schalm´s, 2000) En los rumiantes adultos
35
(vacas, ovejas y cabras), el tiempo de vida de los eritrocitos varía de 125 a 150 días. En
los corderos y los becerros el tiempo de vida es más corto, entre 50 y 100 días.
Generalmente se encuentran reticulocitos en la sangre de los animales cuando el tiempo
de vida de los eritrocitos es menor de 100 días. El perro es una excepción. Las vacas y
especialmente los caballos, en los que los tiempos de vida son mayores, no tienen
reticulocitos en la sangre circulante.
4.2.4.4.4. Destino de los eritrocitos
Los eritrocitos tienen la sorprendente habilidad de cambiar su forma cuando
circulan por los capilares. Los glóbulos rojos con un diámetro de 7 a 10 µm circulan a lo
largo de capilares con un diámetro de 3 a 5 µm. estas células se deforman menos conforme
alcanzan el final de su tiempo de vida. En este momento, aproximadamente el 10 por
ciento de los glóbulos rojos más viejos pueden sufrir lisis cuando atraviesan lechos
capilares, como consecuencia de cambios en la permeabilidad de la membrana y turgencia
osmótica. Cuando esto sucede, la hemoglobina se libera, se combina con la haptoglobina
(una proteína plasmática) y posteriormente las células del sistema mononuclear fagocítico
(SMF) la fagocitan. Este modo de destrucción se conoce hemólisis intravascular. Las
células del SMF pueden fagocitar directamente a los fragmentos celulares y a la mayoría
(90 por ciento) de los glóbulos rojos viejos. Esta forma de destrucción de glóbulos rojos
se conoce como hemólisis extravascular. Las células del SMF se derivan de los monocitos
e incluyen a las células estrelladas o de Kupffer, que se encuentran en las paredes de los
senos sanguíneos del hígado, células similares en el bazo y algunas células de la medula
ósea y los ganglios linfáticos.
En condiciones patológicas, el hierro se almacena en todos los tejidos del cuerpo.
Los dos compuestos de almacenamiento (ferritina y hemosiderina) se pueden utilizar en
la síntesis de hemoglobina conforme se requiere. El componente pigmentado de la
hemoglobina (el grupo heme) se convierte en el hígado en pigmentos biliares, como la
bilirrubina, la cual se secreta en la bilis como un producto de excreción. Las células de
SMF de diferentes órganos son importantes para la destrucción de eritrocitos. La médula
36
ósea roja es el principal sitio de destrucción de eritrocitos en la mayoría de los animales
domésticos. El bazo es probablemente muy importante en los seres humanos; lo es menos
en el conejo y el cobayo; el hígado es el sitio principal de las aves. También el hígado es
un sitio importante en algunas especies de animales. El componente proteico (globina) de
la molécula de hemoglobina se puede descomponer en aminoácidos y usarse en la síntesis
de hemoglobina nueva u otras proteínas. (Swenson, 1999)
4.2.4.4.5. Hemoglobina
La hemoglobina, el pigmento de los eritrocitos, es una proteína conjugada
compleja, que tiene hierro y se compone de un pigmento y una proteína simple. La
proteína es la globina, una histona. El color rojo de la hemoglobina se debe al heme, un
compuesto metálico que contiene un átomo de hierro. La hemoglobina tiene cuatro
cadenas polipeptídicas alfa, beta, gamma y delta. Cada una de las cuatro cadenas se une a
un grupo heme, lo que resulta en la molécula de hemoglobina. (Bernard, 2000) La
biosíntesis de hemoglobina empieza en el rubricito y continúa en las siguientes etapas del
desarrollo celular. La formación de hemoglobina puede continuar mientras haya material
nuclear en la célula, ya sea que las células estén en la médula ósea o en la sangre
circulante. Los reticulocitos, que contienen RNA y una parte del núcleo, tienen la
capacidad de sintetizar hemoglobina en la síntesis de hemoglobina, el aminoácido glicina,
que proviene de la reserva de aminoácidos y la succinil coenzima A del ciclo del ácido
cítrico, forman el ácido aminolevulínico (ALA), con la ayuda de la ALA sintetasa. Con
la presencia de ALA deshidrasa, se forma entonces porfobilinógeno. Cuatro
porfobilinógenos se unen para formar uroporfirinógeno. Las enzimas, uroporfirinógeno
III consintetasa y uroporfirinógeno I sintetasa, forman el isómero tipo III, necesario para
la síntesis de heme. La protoporfirina IX más hierro, en presencia de cobre y
ferroquelatasa, produce la estructura heme. Entonces cuatro moléculas heme se unen con
cuatro polipéptidos para formar la molécula de hemoglobina. (Arthur C, 2001) Se registra
que los pesos moleculares de la hemoglobina de la mayoría de las especies varia de 66000
a 69000 Da. Ya que el contenido de hierro de la hemoglobina es de 0.334 por ciento y el
peso atómico del hierro es 55.84, se deduce que el peso molecular mínimo de un grupo
37
heme y un polipéptido tiene un valor de 16718 Da. Como la 15 15 hemoglobina consta de
cuatro de estas unidades, el peso molecular (16718 x 4 = 66872) este· en el intervalo
mencionado antes. Las diferencias en las moléculas de globina entre las especies explican
probablemente las ligeras diferencias en sus pesos moleculares. (Schalm´s, 2000) Cuando
los eritrocitos se hemolizan en la circulación por la acción de protozoarios, toxinas o
compuestos químicos, la hemoglobina se libera al plasma, por lo cual se puede producir
hemoglobinuria. Los poros o fenestras en el endotelio capilar de los glomérulos del riñón,
ponen el plasma sanguíneo en contacto directo con la membrana basal subyacente, la cual
permite el paso de proteínas pequeñas, como la hemoglobina.
4.2.4.4.5.1. Cantidad
La cantidad de hemoglobina en la sangre se expresa en gramos por decilitros de
sangre. La cantidad puede variar dentro de ciertos límites normales. Como regla los
valores normales de hemoglobina sanguínea están entre 13 y 15 g/dl en la mayoría de los
mamíferos. Los valores de hemoglobina en los caballos de sangre fría son generalmente
menores de 12 a 13 g/dl. Es común encontrar valores mayores de 15g/dl en algunos
animales. La excitación aumenta no solo la concentración de hemoglobina, también el
VCE y el número de eritrocitos por unidad de volumen. Los cambios se deben a la
liberación de catecolaminas (epinefrina y norepinefrina) que provocan un aumento de
presión sanguínea y la contracción del bazo, lo cual moviliza eritrocitos hacia el sistema
circulatorio. En condiciones que disminuyen el PO2 en la sangre (por ejemplo:
disminución de la presión barométrica en una altitud mayor), hay un aumento en el
número de eritrocitos y en la producción de hemoglobina para ayudar a contrarrestar la
deficiencia de oxígeno que se destina a los tejidos. La cuenta de eritrocitos puede
aumentar (policitemia) tanto como 40 a 50 por ciento en altitudes elevadas de 4270 a 4880
m. (Schalm’s, 2000)
4.2.4.4.5.1.1. Variaciones
Sexuales
38
Las hembras pura sangre de carrera (SPC) y Quarter Horse tienen valores medios
de recuento eritrocitario, concentración de hemoglobina y hematocrito algo mayores que
los machos. Por ejemplo los valores medios de recuento de glóbulos rojos RGR para
hembras y machos fueron 9,64 y 9,35 millones/mm3, respectivamente, para los SPC, 9,10
y 8,26 millones para los Quarter Horse. Los machos de ambas razas tienen más
hemoglobina intraeritrocitaria con respecto a las hembras, como lo demuestran los valores
de la HCM y la CHCM. (Schalm´s, 2000)
Edad
Los valores para eritrocitos, concentración de hemoglobina y hematocrito más altos, se
alcanzan a los dos años de edad y disminuyen a medida que avanza la edad. Los valores
de VCM, HCM, y CHCM aumentaron consecuentemente al avance de la edad. Es obvio
que la interpretación de los hemogramas del caballo debe tomarse en consideración la
edad. Los datos presentados por cualquier investigador estarán significativamente
influidos por el promedio de edad y la relación entre los sexos del grupo de animales de
donde provengan los datos (Schalm, 2000)
Raciales
El número de eritrocitos en millones/mm3 de sangre (mezclando los sexos e incluyendo
los animales en que no se registró el sexo) fue de 9,41 + 1,03 para 75 SPC, 8,65 + 1,11
para 12 appaloosas, 8,41 + 1,21 para 6 árabes y 8,35 + 0,93 para 26 standardbred. De los
datos surge que el SPC presenta más eritrocitos por unidad de volumen; este dato se
relaciona con un mayor de contenido de hemoglobina (15 g contra 13,3 a 13,8 g% del
resto) y un mayor hematocrito (42,5% contra 38,4 – 39,3 %) que las otras razas.
(Schalm´s, 2000)
El sexo y los estados de no gestación, preñez y lactación Los padrillos Árabes SPC poseen
valores algo mayores de recuentos eritrocitarios y hemoglobina que las hembras, sin
considerar si están vacías, preñadas o lactando. Las hembras preñadas y vacías difieren
muy poco en sus parámetros eritrocitarios. Sin embargo, las hembras en lactación tienen
valores hematológicos más bajos que aquellas no lactantes (Hansen y col., 1950d; Trum,
39
1952). Las hembras SPC tienen un promedio de eritrocitos de 10,75 millones/mm3
mientras que las vacías, 8,8 millones/ mm3 (MacLeod y col., 1947). Estudios han revelado
que algunos caballos SPC ingleses castrados poseen valores de eritrocitos, hemoglobina
y hematocrito mayores que las hembras, pero que estas tienen eritrocitos más grandes y
con más hemoglobina en su interior, ya se la considera en peso (HCM) o en volumen
(CHCM). Los métodos utilizados por los investigadores para determinar los valores
sanguíneos variaron tanto, que la comparación de esos datos puede derivar en deducciones
falsas y sin valor (Trum, 1952). Un ejemplo sobre la disparidad de los resultados
obtenidos por los distintos autores puede observarse en las comunicaciones sobre los
valores medios del tamaño eritrocitario de los caballos árabes. (Knill y col., 1969), en un
estudio sobre 50 árabes puros que incluía hembras (28), padrillos (11) y caballos castrados
(11) obtuvo un valor de VCM de 36,84 + 9,76 fL. (Hansen y Todd, 1951) dan una
variación de 38 a 43 sobre 16 caballos árabes que comprendía hembras vacías (5), en
gestación (4) y padrillos (7). En nuestras limitadas observaciones sobre la raza árabe,
realizadas sobre 3 machos y 3 hembras, el valor medio del VCM fue de 46,9 + 1,9 fL.
4.2.4.4.6. Hematocrito
Durante el ejercicio, en respuesta a un estímulo simpático, el bazo se contrae y
libera al torrente sanguíneo glóbulos rojos, esta contracción puede llevar a un aumento
del hematocrito en reposo de 35%-45%, a 50%- 70% después del ejercicio (Kenneth,
2008).
El entrenamiento produce un incremento del hematocrito mejorando la
movilización de oxigeno necesario para llevar a cabo los procesos metabólicos de
producción de energía aerobia (McGowan & Hodgson, 2014) (Hodgson, McKeever,
& McGowan, 2012)
4.2.4.4.7. Hemograma en reposo
40
En la práctica clínica el hemograma es ampliamente usado para detectar
anormalidades que muchas veces no son evidentes con el examen físico (Meyer &
Harvey, 2008).
El hemograma, que hace referencia al perfil de células sanguíneas incluye
parámetros como: recuento de glóbulos rojos o eritrocítico, hematocrito,
hemoglobina, volumen corpuscular medio, hemoglobina corpuscular media,
concentración media de hemoglobina corpuscular y, recuento total y diferencial de
glóbulos blancos o leucograma (McKenzie, 2012).
Los Leucocitos de sangre periférica (células blancas de la sangre) son un grupo de
estrechamente relacionados células, incluyendo neutrófilos, monocitos, eosinófilos,
basófilos, y linfocitos. Estas células se mueven continuamente a través del cuerpo por
medio de la corriente de sangre, vasos linfáticos, y su capacidad para migrar a través
de los tejidos (Carrick & Begg, 2008).
Los leucocitos trabajan juntos por medio de un sistema complejo de proteínas,
lípidos, y moléculas de carbohidrato (mediadores de la inflamación y sus receptores)
para localizar y matar a los patógenos invasores e identificar y eliminar muertos y
senescentes células, material extraño, y las células anormales (Carrick & Begg, 2008).
4.2.4.4.8. Cambios hematológicos asociados al ejercicio
4.2.4.4.8.1. Eritrocitos
El volumen de glóbulos rojos aumenta durante el ejercicio por la contracción
esplénica y, aunque en menor proporción, gracias a la pérdida de fluidos por medio
del sudor (Hodgson, McKeever, & McGowan, 2012).
Existe una relación lineal positiva entre el aumento en el hematocrito y el incremento
en la intensidad del ejercicio (McKenzie, 2012).
41
La capacidad de liberar grandes cantidades de glóbulos rojos almacenados en el
bazo para aumentar la capacidad de transporte de oxígeno es uno de los factores que
hace que el caballo tenga un alto potencial aeróbico (McKenzie, 2012).
La mayoría de los glóbulos rojos liberados vuelve a ser almacenada por el bazo
dentro de los 30 minutos posteriores a la finalización del ejercicio y el hematocrito
vuelve a su valor basal pre-ejercicio después de 1 o 2 horas (McGowan & Hodgson,
2014).
4.2.4.4.8.2. Hemoglobina
El incremento en la reserva de eritrocitos como resultado del entrenamiento, está
asociado a un incremento en la concentración de hemoglobina. Esto no solo mejora la
capacidad de transporte de oxígeno, sino que también permite al caballo una mejor
tolerancia a las altas cargas de hidrogeniones producidas durante el metabolismo
energético debido a la capacidad buffer de la hemoglobina (McGowan & Hodgson,
2014).
En respuesta al entrenamiento también ocurren cambios dentro del eritrocito
incrementándose tanto la hemoglobina corpuscular media como la concentración de
hemoglobina corpuscular media. Los eritrocitos también se vuelven más resistentes al
estrés osmótico sin que se afecten ni la capacidad de deformación ni la forma de la
célula (McKenzie, 2012).
Los caballos de enduro suelen tener HTOs bajos en reposo, probablemente
causados por un mecanismo similar al de la pseudoanemia del deportista humano de
maratón (Pate, 1983; Dang, 2001). Esta pseudoanemia deriva de una expansión del
volumen plasmático por un mecanismo renal parcialmente dependiente de la
aldosterona y con retención de Na. Se trata, por tanto, de un proceso de
hemodilución, que cursa sin sintomatología clínica y sin deterioro del rendimiento
deportivo y que incluso podría tener una acción positiva durante el ejercicio físico
al limitar el aumento de la viscosidad sanguínea tras la pérdida de fluidos (Muñoz et
42
al., 1997; 1998; McKeever et al., 2002). Se ha demostrado que los caballos de
carreras, tanto Pura Sangre Inglés como trotones Standardbred, experimentan
hemólisis durante el esfuerzo, como confirma el descenso de las concentraciones
plasmáticas de haptoglobina (Chiradia et al., 1998; Pellegrini-Masini et al., 2003;
Inoue et al., 2005). En conocimiento de los autores, hasta la actualidad, este tema no
ha sido investigado en el caballo de enduro. Por otro lado, diversos factores
endógenos modifican significativamente el HTO en reposo. Entre ellos se
encuentran temperamento, raza, sexo, edad y estado general del animal. De este
modo, se sabe que la aproximación de personas desconocidas para el caballo y el
procedimiento de la venopunción alteran significativamente el hemograma basal
(Revington, 1983), con valores hematológicos inferiores en los animales más
tranquilos. Estas modificaciones se instauran con mucha rapidez, de modo que una
duración de venopunción superior a 30 seg modifica el eritrograma y el leucograma,
debido a la actuación del sistema nervioso simpático (Persson, 1967). En segundo
lugar, la existencia de enfermedades subclínicas que cursan con reducción del
rendimiento deportivo puede conducir a disminuciones transitorias o permanentes
de los valores hematológicos en reposo (McGowan, 2008). La raza es otro factor a
tener en cuenta, ya que los caballos de sangre caliente poseen un volumen sanguíneo
total expresado en función del peso corporal superior a las razas pesadas (Marcilese
et al., 1964). Además, los valores hematológicos basales son ligeramente superiores
en machos enteros, debido al efecto de las concentraciones superiores de andrógenos
(Satué et al., 2008). Sin embargo, ni la castración ni el sexo afectan el rendimiento
deportivo, debido a que las hembras y los machos castrados establecen una relación
hipocinética en comparación con los sementales. Esto indica una utilización
periférica de oxígeno más eficiente y por tanto, una diferencia arteriovenosa de
oxígeno mayor en hembras y machos castrados (Persson y Ullberg, 1974). Como
último factor endógeno, hay que considerar la edad. Se ha documentado un
incremento en la capacidad dimensional cardiovascular en las hembras hasta los 4
años y en los machos hasta los 5 años (Persson y Ullberg, 1974). La capacidad de
reserva esplénica también se modifica con la edad (Persson, 1967). El HTO se está
influido por la intensidad y por la duración del ejercicio que el caballo lleva a cabo.
43
Durante una carga única de esfuerzo, el HTO se eleva con rapidez al inicio, debido
a la adición del volumen sanguíneo rico en hematíes proveniente de la
esplenocontracción (Persson, 1967; Pöso et al., 1983; McKeever et al., 1993; Muñoz
et al., 2006). La magnitud de esta respuesta es muy variable y parece venir
parcialmente determinada por factores individuales, como edad, sexo, intensidad
relativa de esfuerzo y grado de entrenamiento (Persson, 1967; Muñoz et al., 1998).
Las competiciones de resistencia desencadenan una elevación del HTO
proporcional al grado de deshidratación del caballo. El enduro es un ejercicio de
intensidad submáxima, de modo que no requiere una esplenocontracción total, con
liberación intensa de hematíes hacia la circulación periférica (Muñoz et al., 2006).
Así, Snow et al. (1982) señalaron que el aumento de HTO al inicio de una prueba de
raid se debe a la salida de eritrocitos desde el bazo, mientras que las elevaciones
siguientes son proporcionales a la pérdida del volumen plasmático. Según estas
ideas, el HTO mostraría una evolución inversa al volumen plasmático (Persson,
1967; Cohen et al., 1993; Andrews et al., 1995). Los incrementos más evidentes
aparecen durante los 40-60 km iniciales, hasta que el animal inicia el consumo
voluntario de agua. Este parámetro hematológico muestra una correlación positiva
con la velocidad, de manera que se aprecian valores más elevados en los caballos
más rápidos (Hoffman et al., 2002). No obstante, los HTOs máximos se encuentran
en caballos con deshidratación marcada y extenuación. Según los datos presentados
por Carlson (1979), el HTO medio en caballos de resistencia que concluyeron de
forma adecuada la competición fue de 44%, frente al 56% de los caballos con
síntomas de extenuación y deshidratación marcada. Por el contrario, Fielding et al.
(2009) no hallaron diferencias significativas en HTO entre los caballos que
necesitaron tratamiento médico tras la competición (HTO 41,2±4,4%) y caballos con
éxito deportivo (45,2±5,3, 43,6±3,9 y 43,2±4,1% a los 58, 111 y 160 km). Se ha
documentado que no existen diferencias en HTO entre caballos que compiten en
diversas distancias. Barton et al. (2003) observaron que, aunque el HTO aumentó
durante la competición en comparación con los valores pre-ejercicio, no se
apreciaron diferencias significativas entre competiciones sobre 48, 53 y 159km,
llevadas a cabo en las mismas condiciones meteorológicas y de terreno.
44
TABLA 2. HTOs encontrados por diversos autores en competiciones de raid sobre diferentes
distancias.
Autores Distancia(km) Reposo Tras ejercicio
Schott et al., 1997 80 38,3±0,60 42,6±1,10
Schott et al., 1997 160 40,6±1,40 39,9±0,70
Martínez et al., 2000 42 37,0±3,21 54,3±6,90
Barton et al., 2003 48 35,4±5,10 40,6±4,50
Barton et al., 2003 83 36,0±4,00 40,2±5,60
Barton et al., 2003 159 36,4±5,50 40,2±3,50
Schott et al., 2006 160 37,4±4,60 46,6±3,70
Hess et al., 2006 80 39,0±0,50 50,0±1,00
Muñoz et al., 2010 30 36,2±1,79 41,6±4,34
Muñoz et al., 2010 53,6 36,2±1,79 41,4±1,34
Muñoz et al., 2010 76,2 36,2±1,79 45,2±4,03
Fuente: (Trigo, 2010)
4.2.4.4.8.3. Leucograma
El leucograma también se monitorea con frecuencia en los caballos de carreras, en
recuentos totales y recuento celular diferencial de leucocitos (Carrick & Begg, 2008).
Aunque el leucograma no se ha relacionado con el rendimiento o capacidad, sus
cambios pueden indicar la enfermedad subclínica o estrés. La detección de estos
permite detectar potenciales problemas expresados en el rendimiento limitante siendo
claramente de interés para el entrenador de caballos de carreras. Sin embargo, el
recuento de leucocitos de descanso solo representa la piscina circulante de leucocitos.
45
(Carrick & Begg, 2008) Aproximadamente el 50% de los neutrófilos totales están
secuestrados en los lechos capilares del bazo y se conocen como la piscina marginada
o marginal. Neutrófilos marginados pueden movilizarse bajo ciertas condiciones,
incluyendo la emoción, el ejercicio, el estrés, el transporte, y corticosteroides
exógenos o administración de catecolaminas, causando variaciones en el leucograma
(McKenzie, 2012)
El Ejercicio de alta intensidad prolongada provoca la supresión de la inmunidad
innata sistema durante varios días por una reducción de neutrófilos circulantes y
monocitos y la reducción de su capacidad oxidativa revientan. El ejercicio agotador
por parte de los caballos entrenados y no entrenados no tuvo ningún efecto sobre la
expresión basal de IL-12, IL-4, o IFNg en monocitos de sangre periférica, sin
embargo. Por el contrario, el ejercicio moderado tiene efectos mínimos sobre los
neutrófilos, fagocitosis, y el metabolismo oxidativo en los equinos entrenados o no
entrenados (Carrick & Begg, 2008).
Los ejercicios de resistencia induce un aumento en el número de granulocitos
periféricos y en la concentración de la mieloperoxidasa (MPO) en la sangre, lo que
indica desgranulación de neutrófilos (Carrick & Begg, 2008). Hubo regulación
positiva significativa de la expresión génica de leucocitos en los caballos que ha
completado con éxito una resistencia evento. Los linfocitos de caballos después del
ejercicio submáximo han reducido respuestas proliferativas, los cuales está asociado
con un alto nivel de homocisteína en la sangre (Carrick & Begg, 2008).
El entrenamiento aumenta la expresión de IL-1b y TNFa por los leucocitos
equinos, pero no tiene efecto sobre la IL-2, IL-4, IL-6, IL-10 o expresión, y potros
jóvenes someterse a un programa de capacitación han mejorado la capacidad de los
neutrófilos para digerir partículas extrañas; sin embargo, otros parámetros, como la
adherencia y quimiotaxis, no se modifiquen (Carrick & Begg, 2008).
4.3. Mecanismos fisiopatológicos implicados en el ejercicio de resistencia
4.3.1. Fisiopatología del desequilibrio hídrico
46
Para recorrer distancias prolongadas, el equino debe realizar un sinnúmero de
contracciones musculares mediante un proceso de transformación de energía química
en energía mecánica dentro de la célula muscular. El aumento tan marcado del
metabolismo por un lapso tan elevado de tiempo induce un consumo energético
intenso, que puede dar lugar a depleciones graves de substratos metabólicos,
desencadenando fatiga central y periférica (Essén-Gustavsson et al., 1999; Bergero et
al., 2005). Por otro lado, la eficiencia de esta transformación energética es sólo del
25%, liberándose el 75% restante bajo la forma de energía calórica. La cantidad de
calor producida en un equino de enduro de 160km es enorme dado el tiempo tan
elevado que el caballo está en carrera, y se estima que es suficiente para elevar la
temperatura del animal entre 15 y 20º (Marlin et al, 1999). En estas circunstancias
resulta vital poner en marcha diversos mecanismos fisiológicos para su disipación. La
sudoración en el equino es el mecanismo más importante de disipación de calor,
aunque la ventilación pulmonar supondría un 15%. Gracias a ellos, un caballo puede
disipar el calor producido en carrera y mantener el equilibrio térmico (Marlin et al,
1999). Sin embargo, esto tiene un alto coste. El caballo no tiene tanta superficie
específica como el humano, pero en contrapartida, puede sudar 3 y 4 veces más. De
hecho pueden sudar más que cualquier otro animal que se haya estudiado (Jenkinson,
1973). Además, la sudoración equina se ve favorecida porque incluye una sustancia
proteica surfactante denominada laterina, que facilita su distribución uniforme sobre
la piel, optimizando el mecanismo de termólisis por evaporación cutánea. Las
pérdidas de sudor de un caballo en ejercicio en condiciones adversas pueden ascender
a 10 – 15 litros por hora (McCutcheon et al., 2000). Más impresionantes aún son las
pérdidas de electrolitos, debido a la hipertonicidad del sudor. Afortunadamente, estos
animales son capaces de reponer fácilmente la mitad de los fluidos perdidos durante
la carrera administrándole agua y electrolitos durante la prueba (Marlin et al, 1999).
La pérdida hídrica disminuye la volemia, restringiendo la disponibilidad sanguínea
para alcanzar a todos los órganos (ilustración 2). Por consiguiente: a) Se reduce el
volumen de sangre que llega a la piel, afectando la dispersión del calor corporal
(Marlin et al, 1999; Hess et al., 2005). b) Disminuye el flujo sanguíneo que llega a
47
los músculos: Interrumpiendo el suministro de energía y obligando a las células
musculares a hacer uso exclusivo de las reservas energéticas intracelulares (Foreman
1998). Interrumpiendo el suministro de O2 y restringiendo la utilización de vías
energéticas oxígenodependientes (Castejón et al., 2006). c) Se reduce la eliminación
de calor y de otras sustancias tóxicas dentro de la célula muscular (Foreman 1998). d)
Desciende la perfusión del tracto gastrointestinal: Disminuyendo la capacidad de
absorción de agua, electrolitos y energía, lo que reduce las posibilidades de
recuperación (Flaminio y Rush, 1998) En combinación con trastornos de la
conducción nerviosa, se altera la motilidad y tránsito en las distintas partes del tracto
gastrointestinal, predisponiendo a cólicos y diarrea (Nieto et al, 2004).
e) La hipoperfusión a nivel laminar coriónico llega a producir isquemia regional,
induciendo la laminitis o infosura. Además ésta se ve facilitada por las múltiples
concusiones en suelo duro (Fowler 1980b). f) En un grado importante de
deshidratación pueden verse complicados los flujos renal y/o hepático, dando lugar a
disfunción de estos órganos, que en caso de ser prolongada, puede conllevar a la
muerte del caballo (Fowler 1980a).
4.3.2. Respuestas Musculares al Ejercicio
Cuando el metabolismo aeróbico puede satisfacer las demandas de energía
(durante el ejercicio submáximo), el consumo de oxígeno se correlaciona con un
incremento en la velocidad. Sin embargo, la pendiente de la relación linear puede
variar de acuerdo al terreno, inclinación, superficie de la pista y temperatura
ambiente. A cierto punto de demanda de energía sobrepasa el consumo de oxígeno
y el déficit se satisface por el metabolismo anaeróbico (Rivero & Piercy, 2008). La
fatiga muscular puede ocurrir durante el ejercicio aeróbico o anaeróbico (Hodgson,
McKeever, & McGowan, 2012)
4.3.2.1. Ejercicio Aeróbico.
48
La glicogenólisis del músculo y del hígado comienza a ocurrir tan pronto como
comienza el ejercicio aeróbico. La glucosa derivada del hígado es subsecuentemente
transportada dentro de las miofibras para unirse a la cascada glicolítica vía formación
de glucosa-6-fosfato. Sin embargo, aunque las concentraciones elevadas de glucosa-
6-fosfato se han detectado luego de ejercicios submáximos en caballos (Rivero &
Piercy, 2008), la epinefrina (adrenalina) circulante liberada durante el ejercicio
estimula la liberación de AGL del tejido adiposo y/o de las reservas hepáticas, lo cual
inhibe parcialmente la utilización de glucosa durante el ejercicio de moderada
intensidad. No obstante, durante ejercicio submáximo prolongado la glucosa
sanguínea puede aún permanecer por encima del 25% del total de los requerimientos
de energía. Esta dependencia sobre la glucosa derivada principalmente del hígado
resulta en un ahorro del glicógeno muscular. Conforme aumentan las demandas de
energía, mayores tasas de oxidación de piruvato tienden a causar un cambio hacia la
β oxidación de AGL. El efecto general es que la glicogenólisis muscular declina sobre
el tiempo durante el ejercicio aeróbico, mientras que la oxidación de AGL aumenta.
Aunque los lípidos son el combustible predominante utilizado durante el ejercicio
submáximo prolongado, la fatiga ocurre mucho antes de completarse el metabolismo
total de los depósitos de lípidos. A trabajos submáximos, la fatiga se ha asociado con
una depleción del glicógeno intramuscular (Rivero & Piercy, 2008) debido a que la
oxidación de AGL no puede producir suficiente ATP sin el recurso del piruvato.
49
Durante actividad prolongada, los modelos de depleción de glicógeno ocurren en paralelo
con el reclutamiento progresivo de los tipos de fibras, por ejemplo, inicialmente en fibras tipo
I, luego en IIA y finalmente en fibras glicolíticas IIX. (Por lo tanto la fatiga muscular no
ocurre al mismo tiempo en todas las fibras pero si de manera progresiva que resulta en el
compromiso gradual del desempeño. Luego del ejercicio la repleción del glicógeno ocurre
en el orden contrario (IIX, IA, I) y pude llegar a tomar 72 horas, o más rápido con la
administración de dextrosa o nandrolona.
Aunque la depleción de glicógeno parece jugar un rol más importante al inicio de la fatiga
durante el ejercicio aeróbico, una variedad de otros factores están también implicados
incluyendo, desaminación de AMP, hipertermia, deshidratación, depleción de electrolitos y
falta de motivación (Rivero & Piercy, 2008).
4.3.2.2. Ejercicio Anaeróbico.
Los efectos del ejercicio de alta intensidad en el músculo esquelético del caballo y el
desarrollo de fatiga han sido comprensivamente revisados por dos autores principalmente:
Figura: 3 Principales causas de fatiga durante o después del ejercicio
50
Snow y Valberg. En años recientes, la información obtenida ha confirmado muchas
observaciones previas proveyó muchas comprensiones sobre los mecanismos relacionados al
inicio de fatiga. Las demandas funcionales impuestas por el ejercicio de alta intensidad
requieren el reclutamiento de más unidades motoras dentro de un músculo dado: a este
tiempo, el glicógeno intramuscular y la glucosa sanguínea actúan como los combustibles
predominantes para reponer ATP durante la glicólisis anaerobia. Adicionalmente, algo de
ATP es derivado de la desaminación de adenosín nucleótidos. En contraste al metabolismo
aeróbico, hay una relativa y pequeña dependencia de la oxidación (Rivero & Piercy, 2008).
Otros Cambios Musculares: otros factores que se piensa no necesariamente contribuyen
de manera directa a la fatiga, incluyen las concentraciones intracelulares de potasio, una
modificación histoquiométrca de las proporciones de carnitina y acetil carnitina libres,
formación incrementada de alanina a partir de piruvato y cambios significativos en el pool de
amino ácidos intracelulares. Factores adicionales que están implicados incluyen una
reducción en el consumo de Ca del RSE por disminución de la actividad del Ca ATPasa y
una elevación en la temperatura del músculo que ocurre durante el ejercicio de alta intensidad.
4.3.2.3. Respuesta Muscular al Entrenamiento
El músculo esquelético equino tiene un potencial considerable para adaptarse durante el
entrenamiento ampliamente mediado por la plasticidad funcional y estructural de las
miofibras. Estas adaptaciones a largo plazo ocurren independientemente de las respuestas
fisiológicas inmediatas a corto plazo al ejerció aeróbico y anaeróbico y están asociadas con
ritmos alterados de la transcripción de genes específicos y consecuentemente un cambio en
la cantidad de isoformas de proteínas expresadas dentro de las fibras musculares.
Dependiendo de la naturaleza (tipo, frecuencia, intensidad y duración) del estímulo
(entrenamiento), la respuesta adaptativa puede tomar la forma de (1) hipertrofia, cuando las
miofibras incrementan en tamaño pero por otro lado conservan su estructura basal y sus
propiedades bioquímicas y fisiológicas; (2) remodelación sin hipertrofia, donde las miofibras
no se alargan pero adquieren características estructurales y enzimáticas marcadamente
diferentes, con frecuencia acompañadas por cambios en la microvasculatura; o (3) una
respuesta mixta de remodelación con hipertrofia
51
5. Materiales y métodos:
Este trabajo se realizó a partir de la base de datos generada en el trabajo de Maestría de la
doctora Claudia Valderrama quien es codirectora de este trabajo.
El trabajo fue: “Determinación del comportamiento de parámetros de rendimiento
deportivo y del estado ácido-base en caballos que compiten en carreras de enduro a 2640
m.s.n.m.” y trato del establecimiento de algunos parámetros para los electrolitos y análisis de
resultados observados en equinos que compitieron una carrera de enduro de 80 km, se tomaron
muestras sanguíneas en tres tiempos siento T0:15 minutos antes de la carrera, T1: apenas finalizo
la carrera y T2: una hora después de la carrera, para un total de 42 muestras en total. A estas
muestras se les midieron pH, pCO2, pO2, Na+, K+, Cl, Mg, Calcio total mg/dl, Calcio ionizado
mg/dl, Glucosa, ácido Láctico, BUN, Creatinina, CK, AST, Albumina y cuadro hemático;
dejando una brecha para una línea de investigación que es el análisis del cuadro hemático del
equino atleta bajo las condiciones de trópico alto.
De los valores medidos se tomaron los datos correspondientes a los valores
hematológicos y se compararon los valores antes del ejercicio apenas finaliza y después de una
hora de ejercicio y se establecieron las diferencias entre las muestras.
5.1. Enfoque metodológico
El enfoque metodológico del proyecto fue cuantitativo, bajo el paradigma positivista ya
que se basará en la recolección de datos numéricos como frecuencia cardíaca y valores
hematológicos, en una población de caballos de enduro, que luego serán analizados
estadísticamente para llegar a determinar los valores que presentan los animales a investigar
en las condiciones medioambientales en las que se encuentran.
5.2. Tipo de estudio
Descriptivo y observacional. Se determinará el estado de la población de estudio en un
momento determinado, sin intervenir directamente sobre ella.
52
5.3. Población
La población corresponde a los caballos que compiten en pruebas de enduro en las
categorías de 80 km mayores y 80 km juveniles en Colombia. El total de esta población fue
16 caballos.
5.4. Muestra
Está conformada por 12 caballos elegidos al azar, entre los animales que compitan en una
competencia de enduro en la categoría de 80 km.
5.5. Criterios de admisión
5.5.2. Criterios de inclusión
Caballos que compitan en las categorías 80 km mayores u 80 km juveniles.
5.5.3. Criterios de exclusión
Caballos que sean descalificados previamente a la competencia en el examen pre-
competencia o que sean eliminados en alguna de las etapas sin importar la causa de la
eliminación.
5.6. Diseño muestral
Las varianzas de las variables a medir descritas en otros estudios son muy bajas, por lo
tanto, los coeficientes de variación son igualmente muy bajos. Al calcular el tamaño muestral
con esta información, el resultado es un valor insignificante, razón por la cual se tomó un
valor de 0,15 para el coeficiente de variación, y con éste se calculó el n.
N = 16
Z = 1,96
e (error) = 0,05
Coeficiente de variación = 0,15
53
𝑛 =N x Z2 x (0,15)2
α2 x (N − 1) + z2 x (0,15)2
𝑛 =16 x (1,96)2 x (0,15)2
(0,05)2 x (15) + (1,96)2 x (0,15)2
Se obtuvo un n de 11.15, por lo tanto el tamaño de la muestra se aproximó a 12 animales
5.7. Muestreo
Se realizó la selección de los animales de manera aleatoria. En la carrera de enduro se
seleccionaron los animales entre todos los equinos que compitan en las categorías 80 km
mayores y 80 km juveniles, mediante balotas enumeradas del 1 al 12, y a cada caballo se le
asignó un número, estas balotas se introdujeron a una bolsa negra y se procedió a la selección
de los animales hasta completar 12.
5.8. Análisis estadístico
Los datos obtenidos de las fuentes primarias, variables cualitativas y cuantitativas; El análisis
estadístico se realizó en el software SPSS®.
Se realiza un análisis univariado para cada una de las variables, y se determinó la normalidad
de los datos. Para las variables cuantitativas se utilizaron las medidas de tendencia central y
de dispersión (media y DS) de acuerdo con las pruebas de normalidad realizadas previamente.
El nivel de significancia para el estudio será de p<0.05.
Luego se procede a realizar un Análisis de Varianza (ANOVA) para establecer diferencias en
el tiempo de cada individuo consigo mismo.
Para las variables con diferencia estadísticamente significativas, se le realizará la prueba HSD
de Tukey (Honest Significance Difference), que es una prueba de rangos múltiples.
54
6. Resultados
Se obtuvieron resultados del comportamiento de los valores hematológicos que se
obtuvieron de 12 equinos, que participaron en una carrera de enduro en el municipio de Bojacá,
Cundinamarca donde participaron 16 equinos en total.
Previo a la carrera estos 12 equinos presentaron un examen clínico normal, al momento
de pasar por los puestos de control veterinario estos equinos aprobaron la revisión veterinaria,
según los parámetros evaluados para dicha competencia, cada uno se recuperó como se esperaba
según el Test de Ridgeway (Hodgson, McKeever, & McGowan, 2012); siendo este el tiempo 0
(T0) y al momento de evaluar los resultados del cuadro hemático (tabla 3) se observó que todos
los parámetros estuvieron dentro de los límites normales según lo reportado por Schalm
veterinary hematology 4th edición (anexo 1) en los caballos de sangre caliente.
Tabla 3 Parámetros sanguíneos para tiempo 0
Parámetro Mínimo Máximo Media
HTO (%) 34 47 39
PPT (g/dL) 6,0 7,8 6,917
HB (g/dL) 12,1 16,5 13,900
RTO GB (cel/ul) 7700,0 16400,0 11058,333
NEUTROFILOS (%) 49,0 79,0 70,250
LINFOCITOS (%) 13,0 41,0 25,250
EOSINOFILOS (%) ,0 7,0 1,917
MONOCITOS (%) ,0 5,0 2,167
BASOFILOS (%) ,0 2,0 ,417
FIBRINOGENO (mg/dL) 100,0 400,0 250,0
55
En la tabla 3 se pueden observar el valor mínimo y máximo para cada parámetro y de
igual manera su respectiva media, según su análisis estadístico descriptivo, se observa
completa normalidad para cada parámetro, en T0.
Los resultados obtenidos en reposo (T0) para cada uno de los parámetros analizados
fueron comparados con los valores de referencia del libro hematología veterinaria Schalm´s 4TH
Edición, de esta manera se puede determinar si los rangos habitualmente utilizados son aplicables
a las condiciones geográficas y de altitud a la que fueron expuestos los equinos.
Al momento de finalizar la carrera se vuelve a hacer el respectivo control veterinario y se
toma la muestra sanguínea este corresponde al tiempo 1 (T1) y en los resultados de los cuadros
hemáticos se empiezan a observar algunas alteraciones con respecto al tiempo 0 (T0) ya que se
puede apreciar un aumento en el hematocrito, proteínas plasmáticas, hemoglobina, en el recuento
de glóbulos blancos y neutrófilos, también se puede apreciar una disminución en los linfocitos,
eosinófilos, monocitos y fibrinógeno, mas sin embargo los parámetros están dentro de los valores
de referencia a excepción del recuento de glóbulos blancos que está más aumentado que los
valores de referencia (tabla 4).
Tabla 4 Parámetros hematológicos en el T1
Parámetro Mínimo Máximo Media
HTO (%) 40 51 47
PPT (g/dL) 7,0 8,8 7,508
HB (g/dL) 13,6 17,4 16,067
RTO GB (cel/ul) 12300,0 23400,0 16425,0
NEUTROFILOS (%) 77,0 93,0 84,417
LINFOCITOS (%) 5,0 19,0 13,000
EOSINOFILOS (%) ,0 1,0 ,250
MONOCITOS (%) ,0 4,0 2,0
BASOFILOS (%) ,0 2,0 ,167
56
FIBRINOGENO (mg/dL) 100,0 400,0 116,7748
En la tabla 4 se pueden observar el valor mínimo y máximo para cada parámetro y de
igual manera su respectiva media, según su análisis estadístico descriptivo, se observa
completa normalidad para cada parámetro, para T1.
A la hora de haber finalizado la carrera se hizo una última toma de sangre siendo este el
Tiempo 2 (T2); que al compararlo con T1 se puede ver una disminución en el hematocrito y el
conteo de basófilos, también se observa un aumento en el valor del fibrinógeno y en el recuento
linfocitos, mientras que las proteínas plasmáticas totales, el recuento de glóbulos blancos y
neutrófilos se mantienen iguales, mientras que si se compara con T0 se puede ver que los valores
de HTO, PPT, RTO GB, los neutrófilos y fibrinógeno están aumentados mientras que los
linfocitos, eosinófilos y basófilos disminuyeron y los monocitos se comportan de manera similar
a T0. (Tabla 5) y al compararlo con los valores de referencia estuvieron dentro de los rangos
menos el recuento de glóbulos blancos que se encuentro aumentado.
Tabla 5 Parámetros hematológicos en el tiempo 2
Parámetro Mínimo Máximo Media
HTO (%) 39 50 45,167
PPT (g/dL) 6,8 9,0 7,458
HB (g/dL) 13,7 17,8 16,233
RTO GB (cel/ul) 12400,0 21900,0 16275,0
NEUTROFILOS (%) 78,0 92,0 85,083
LINFOCITOS (%) 5,0 80,0 17,417
EOSINOFILOS (%) ,0 5,0 1,0
MONOCITOS (%) ,0 9,0 2,333
BASOFILOS (%) ,0 1,0 ,083
FIBRINOGENO (g/dL) 100,0 500,0 308,333
57
En la tabla 5 se pueden observar el valor mínimo y máximo para cada parámetro y de
igual manera su respectiva media, según su análisis estadístico descriptivo, se observa
completa normalidad para cada parámetro, para T2.
Tras la obtención de los resultados de los cuadros hemáticos, los valores cuantitativos
fueron organizados en tablas para así proceder a la aplicación de las técnicas estadísticas
mediante el uso del programa estadístico SPSS®.
Se realizó un análisis univariado para cada una de las variables, y un Análisis de Varianza
(ANOVA) para establecer diferencias en el tiempo.
Las pruebas estadísticas aplicadas a esta investigación establecieron las diferencias
significativas entre tiempos.
Tabla 6 Valores hematológicos en T0, T1 y T2
Parámetro Tiempo 0 Tiempo 1 Tiempo 2
HTO (%) 39,000 47,000 45,167
PPT (g/dL) 6,917 7,508 7,458
HB (g/dL) 13,900 16,067 16,233
RTO GB (cel/ul) 11058,333 16425,000 16275,000
NEUTROFILOS (%) 70,250 84,417 85,083
LINFOCITOS (%) 25,250 13,000 17,417
EOSINOFILOS (%) 1,917 ,250 1,000
MONOCITOS (%) 2,167 2,000 2,333
BASOFILOS (%) ,417 ,167 ,083
FIBRINOGENO (g/dL) 250,000 116,7748 308,333
58
En la tabla 6 se pueden observar los valores de media para cada uno de los parámetros
con su respectivo tiempo.
El análisis de varianzas del hematocrito no arrojó un resultado significativo entre
grupos. Al aplicar la prueba de tukey se pudo observar que entre los tiempos 0 y 2 había
una similitud de medias de 0,441 mientras que los demás tiempos se comportaron de
manera independiente entre sí. En cuanto a las proteínas plasmáticas totales no existe una
igualdad de varianzas entre grupos, al realizar el análisis a través de tukey se encontró
una similitud entre T0 y T1 de 0,83; entre T1 y T2 de 0,73 y entre T2 y T0 de 0,055.
Respecto a la hemoglobina, se encontró que el comportamiento entre tiempos, para las
varianzas, no es significativo, al aplicar tukey solo mostró cierto grado de significancia
entre T1 y T2 siendo de 0,947.(tabla 7)
Tabla 7 comparación de medias de HTO, PPT, HB en tiempo 0, 1 y 2
En la tabla 7 podemos apreciar la comparación de medias para los diferentes
tiempos mostrando para un HTO un aumento marcado para el tiempo 1 y una ligera
disminución para el tiempo 2, las proteínas plasmáticas se comportan de manera muy
pareja sin grandes cambios entre sí, mientras que la HB muestra su menor rango en el T0.
En el recuento de glóbulos blancos encontramos una igualdad entre media de
0,962 entre T1 y T2 (tabla 8)
39
6,917
13,9
47
7,508
16,067
45,167
7,458
16,233
0
5
10
15
20
25
30
35
40
45
50
HTO (%) PPT (g/dL) HB (g/dL)
Tiempo 0 Tiempo 1 Tiempo 2
59
Tabla 8 diferencia de medias entre tiempos 0,1 y 2 de RTO GB
En la tabla 8 se muestra la comparación de medias para los diferentes tiempos
mostrando en el recuento de glóbulos blancos un aumento marcado para el tiempo 1 y
manteniéndose para el tiempo 2. En el conteo de los neutrófilos entre tiempos no presentaron igualdad de varianzas; sin
embargo, con tukey se encontró una equivalencia de medias de 0,962 entre los tiempos 1 y 2. Los
linfocitos y eosinófilos mostraron un nivel de significancia entre grupos de 0,068 y 0,82
respectivamente, lo que se considera igualdad de varianzas. Al realizarles la prueba de tukey se
observó para los linfocitos que en T0 y T1, T1 y T2, y T2 y T0 hay igualdad de medias con un
resultado estadístico de 0,58; 0,668 y 0,292 respectivamente. De manera similar en los valores
de los eosinófilos presentaron similitud entre promedios de T0 y T1, T1 y T2, y T2 y T0 de 0,082;
0,581 y 0.448.
11058,333
16425 16275
0
2000
4000
6000
8000
10000
12000
14000
16000
18000
RTO GB (cel/ul)
Tiempo 0 Tiempo 1 Tiempo 2
60
Tabla 9 diferencia de medias entre tiempos 0,1 y 2 de neutrófilos, linfocitos y eosinófilos
En la tabla 9 se evidencia la comparación de medias para los diferentes tiempos de
neutrófilos, linfocitos y eosinófilos.
La igualdad de varianzas entre tiempos del conteo de monocitos fue significativa, siendo
el estadístico de 0,916. Tukey mostró para T0 y T1 y T1 y T2 una igualdad entre medias con
resultados de 0,976 y 0,976. Los resultados de los basófilos tuvieron un comportamiento similar
ya que al utilizar ANOVA evidenció un nivel de 0,298; Tukey arrojó igualdad entre las medias
de los tiempos T0 y T1, T1 y T2, y T2 y T0 con resultados estadísticos de 0,496; 0.924 0,924.
El valor del fibrinógeno mostró un comportamiento similar para las varianzas entre grupos
con un nivel de 0,345, por consiguiente Tukey mostró que el nivel de igualdad entre medias era
explicado por resultados de 1,00 para T0 y T1, 0.414 para T1 y T2 y de 0,414 para T2 y T0.
70
,25
25
,25
1,9
17
84
,41
7
13
0,2
5
85
,08
3
17
,41
7
1
N E U T R O F I L O S ( % ) L I N F O C I T O S ( % ) E O S I N O F I L O S ( % )
Tiempo 0 Tiempo 1 Tiempo 2
61
Tabla 10 diferencia de medias entre tiempos 0,1 y 2 de fibrinógeno
En la tabla 10 podemos apreciar la comparación de medias para los diferentes tiempos
mostrando para el resultado de fibrinógeno una disminución marcada para el tiempo 1 y un
aumento para el tiempo 2.
250
116,7748
308,333
0
50
100
150
200
250
300
350
FIBRINOGENO (mg/d/L)
Tiempo 0 Tiempo 1 Tiempo 2
62
7. Discusión de resultados
Al comparar los resultados a los diferentes tiempos se puede relacionar el aumento
del volumen de glóbulos rojos con el ejercicio realizado, ya que el aumento fue notable
en el tiempo 1 lo cual es compatible con lo reportado en la literatura que indica que este
aumento es debido a la contracción esplénica y, aunque en menor proporción, gracias a la
pérdida de fluidos por medio del sudor (Hodgson, McKeever, & McGowan, 2012).
La capacidad de liberar grandes cantidades de glóbulos rojos almacenados en el
bazo para aumentar la capacidad de transporte de oxígeno es uno de los factores que hace
que el caballo tenga un alto potencial aeróbico (McKenzie, 2012). La mayoría de los
glóbulos rojos luego de ser liberados vuelven a ser almacenados por el bazo dentro de los
30 minutos posteriores a la finalización del ejercicio y el hematocrito vuelve a su valor
basal pre-ejercicio después de 1 o 2 horas (McGowan & Hodgson, 2014) y lo cual se
observó en el tiempo 2 y 0 y mostro un nivel de significancia de 0,441 indicando que hubo
una reducción de los eritrocitos circulantes entre el tiempo 1 y 2 casi volviendo al
parámetro inicial mostrando una igualdad de medias entre sí.
La respuesta al entrenamiento en los equinos ocurre con los cambios dentro del
eritrocito incrementándose tanto la hemoglobina corpuscular media como la
concentración de hemoglobina corpuscular media lo que hace que los eritrocitos también
se vuelven más resistentes al estrés osmótico sin que se afecten ni la capacidad de
deformación ni la forma de la célula (McKenzie, 2012) es posible decir que aunque no
hubo un nivel de significancia entre los diferentes grupos al revisar los resultados de la
hemoglobina, si hay una relación entre T1 y T2 de 0,947, de igual manera cabe indicar
que aunque hubo un incremento marcado entre T0 y T1 y este incremento prácticamente
se mantuvo para T1 y T2, y si se relacionan estos hallazgos con las proteínas plasmáticas
totales muestra que es debido a una contracción esplénica, ya que las proteínas
plasmáticas mantuvieron un nivel de significancia entre los diferentes tiempos y su
diferencia de medias no fue marcada y estos resultados al compararlos con la literatura
(Jain, 1986) permite apreciar que los equinos nunca entraron en deshidratación.
63
En cuanto la línea leucocitaria no expuso ningún nivel de significancia entre
grupos, pero al observar la estadística descriptiva podemos apreciar un incremento entre
tiempo 0 y 1, atribuido a la contracción esplénica causada por estrés por ejercicio el cual
se mantiene al tiempo 2 y por esta razón encontramos medias equivalentes a 0,992 entre
estos últimos tiempos, y aunque la línea blanca es poco evaluada en los equinos atletas ya
que no mide el rendimiento de los equinos, es indicativo de estrés, enfermedad subclínica
o sobre entrenamiento (Hodgson, McKeever, & McGowan, 2012) al revisar el recuento
de glóbulos blancos se encontró un aumento de T0 a T1 y un ligero aumento T1 a T2 y
este es debido al aumento tan marcado de los neutrófilos que se dio como respuesta a una
estrés por el ejercicio (Carrick & Begg, 2008), mientras que los linfocitos señalan una
disminución con respecto al tiempo 0 y un ligero aumento para el tiempo 2 mostrando un
nivel de significancia entre grupos de 0,068,de igual manera y teniendo en cuenta que el
enduro es una carrera de resistencia es importante resaltar que estos hallazgos son más
comunes pues se maneja una carga de estrés mayor y es más fácil que el equino quede
completamente exhausto que una carrera de velocidad, de igual manera los eosinófilos
pueden ser indicativo de sobreentrenamiento, pues los caballos que son sobre entrenados
tienden a mostrar eosinopenia (Hodgson, McKeever, & McGowan, 2012) tal como ocurre
en estos equinos.
Mientras que en el valor del fibrinógeno se puede observar un marcado aumento
en T2 como respuesta al ejercicio que han sido expuestos los equinos mostrando un alto
grado de inflamación según lo reportado por la literatura (Kenneth, 2008)
64
8. Conclusiones
Se determinaron los valores hematológicos en reposo y su variación después del ejercicio
y a la hora de haber finalizado, en caballos que fueron sometidos a una prueba de enduro
de 80 km en una altitud de 2640 msnm; se pudo observar los incrementos y disminuciones
para cada uno de los parámetros y su respectivo tiempo.
Al comparar los valores hematológicos de estos equinos con otros resultados en estudios
similares en caballos de enduro en pruebas de 80 km en otras altitudes, se pudo observar
que no hubo diferencias significativas, por lo tanto se puede decir que esta altura no afecta
los resultados de los cuadros hemáticos.
Se deben reevaluar los protocolos de entrenamiento de estos equinos ya que al revisar la
línea leucocitaria se determinó que los equinos que participaron de esta carrera de enduro
terminaron la carrera exhaustos según la literatura consultada.
Este trabajo sirve como base para futuras investigaciones en equinos que practican enduro
en Colombia.
65
Recomendaciones
Al replicar un estudio de esta corriente se recomendaría además de evaluar la línea
leucocitaria, también evaluar el comportamiento del cortisol para examinar si hay un sobre
entrenamiento o un pobre entrenamiento en los equinos.
Al evaluar los equinos atletas no solo es importante observar el rendimiento del ejemplar
también es bueno y necesario evaluar los indicadores de estrés ya que estos afectan
directamente el rendimiento del equino, es decir no solo se debe evaluar la línea roja del
cuadro hemático como se hace en la mayoría de estudios, y se recomienda una especial
observación a los neutrófilos y linfocitos.
Para los propietarios y personas que tienen equinos que hacen parte de la caballada que
practica enduro, se deben reevaluar los protocolos de entrenamiento y estos protocolos
deben estar recomendados por médicos veterinarios que puedan determinar cuál sería un
protocolo adecuado para los equinos y este protocolo debe ser basado en la medicina basada
en la evidencia, es decir, que hallan factores que permitan decir que protocolo es el más
adecuado para cada equino, para que al finalizar la carrera el equino no quede
completamente exhausto
66
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Publicaciones de la Universidad de Córdoba.
69
ANEXOS
Anexo 1
Valores de referencia hematológicos en equinos de sangre caliente tomado del libro
hematología veterinaria shaml´s
Parámetro Mínimo Máximo
HTO (%) 32 53
PPT (g/dL) 5.8 8.7
HB (g/dL) 11.0 19.0
RTO GB (cel/ul) 5.400 14.300
NEUTROFILOS (%) 0 1000
LINFOCITOS (%) 15 77
EOSINOFILOS (%) ,0 1000
MONOCITOS (%) ,0 1000
BASOFILOS (%) ,0 1000
FIBRINOGENO (mg/dL) 100,0 400,0
Anexo 2
HEMATOCRITOS HTO
Análisis estadístico Descriptivo
Tiempo N Media
Desviació
n estándar
Error
estándar
95% del intervalo de
confianza para la
media
Límite
inferior
Límite
superior
,0 12 39,000 4,2853 1,2371 36,277 41,723
1,0 12 47,000 2,9848 ,8616 45,104 48,896
2,0 12 45,167 3,5119 1,0138 42,935 47,398
Total 36 43,722 4,9489 ,8248 42,048 45,397
70
- Si Sig>0.05 se debe se aceptar igualdad de medias
ANOVA
Suma de
cuadrados gl
Media
cuadrática F Sig.
Entre grupos 421,556 2 210,778 15,966 ,000
Dentro de
grupos 435,667 33 13,202
Total 857,222 35
(I) TIEMPO (J) TIEMPO
Diferencia de
medias (I-J) Error estándar Sig.
Intervalo de
confianza al
95%
Límite inferior
,0 1,0 -8,0000* 1,4834 ,000 -11,640
2,0 -6,1667* 1,4834 ,001 -9,807
1,0 ,0 8,0000* 1,4834 ,000 4,360
2,0 1,8333 1,4834 ,441 -1,807
2,0 ,0 6,1667* 1,4834 ,001 2,527
1,0 -1,8333 1,4834 ,441 -5,473
Entre los tiempos 0 y 1 no hubo nivel de significancia ya que hubo un incremento marcado, lo
cual se explica por el ejercicio realizado por el equino y cierto grado de deshidratación que se
empieza a presentar
39
47
45
,16
7
HTO (%)
t0 t1 t2
71
Comparaciones múltiples
HSD Tukey
(I) TIEMPO (J) TIEMPO
Intervalo de confianza al 95%
Límite superior
,0 1,0 -4,360
2,0 -2,527
1,0 ,0 11,640
2,0 5,473
2,0 ,0 9,807
1,0 1,807
*. La diferencia de medias es significativa en el nivel 0.05.
Hematocrito
HSD Tukeya
TIEMP
O N
Subconjunto para alfa =
0.05
1 2
,0 12 39,000
2,0 12 45,167
1,0 12 47,000
Sig. 1,000 ,441
Se visualizan las medias para los grupos en los
subconjuntos homogéneos.
a. Utiliza el tamaño de la muestra de la media
armónica = 12,000.
ANALISIS ESTADÍSTICO DE LAS PROTEÍNAS PLASMATICAS TOTALES
Descriptivos
72
PPT
N Media
Desviación
estándar
Error
estándar
95% del intervalo de
confianza para la media
Mínimo
Máxim
o
Límite
inferior
Límite
superior
0 12 6,917 ,5219 ,1507 6,585 7,248 6,0 7,8
1 12 7,508 ,5485 ,1583 7,160 7,857 7,0 8,8
2 12 7,458 ,5775 ,1667 7,091 7,825 6,8 9,0
Tota
l 36 7,294 ,5990 ,0998 7,092 7,497 6,0 9,0
ANOVA PPT
Suma de
cuadrados Gl
Media
cuadrática F Sig.
Entre grupos 2,584 2 1,292 4,274 ,022
Dentro de grupos 9,975 33 ,302
Total 12,559 35
Pruebas robustas de igualdad de medias
PPT
Estadísticoa gl1 gl2 Sig.
Welch 4,385 2 21,963 ,025
a. F distribuida de forma asintótica
Pruebas post hoc
Comparaciones múltiples
Variable dependiente: PPT
HSD Tukey
73
(I)
EXAMEN
(J)
EXAMEN
Diferencia de
medias (I-J) Error estándar Sig.
Intervalo de confianza al 95%
Límite
inferior
Límite
superior
0 1 -,5917* ,2245 ,033 -1,142 -,041
2 -,5417 ,2245 ,055 -1,092 ,009
1 0 ,5917* ,2245 ,033 ,041 1,142
2 ,0500 ,2245 ,973 -,501 ,601
2 0 ,5417 ,2245 ,055 -,009 1,092
1 -,0500 ,2245 ,973 -,601 ,501
*. La diferencia de medias es significativa en el nivel 0.05.
PPT
HSD Tukeya
6,6
6,7
6,8
6,9
7
7,1
7,2
7,3
7,4
7,5
7,6
PPT (g/dL)
Tiempo 0 Tiempo 1 Tiempo 2
74
EXAMEN N
Subconjunto para alfa = 0.05
1 2
0 12 6,917
2 12 7,458 7,458
1 12 7,508
Sig. ,055 ,973
Se visualizan las medias para los grupos en los subconjuntos homogéneos.
a. Utiliza el tamaño de la muestra de la media armónica = 12,000.
ANALISIS ESTADÍSTICO DE LOS HEMATOCRITOS HB
Descriptivos
HB
N Media
Desviación
estándar
Error
estándar
95% del intervalo de
confianza para la media
Mínimo
Máxim
o
Límite
inferior
Límite
superior
0 12 13,900 1,4604 ,4216 12,972 14,828 12,1 16,5
1 12 16,067 1,1641 ,3360 15,327 16,806 13,6 17,4
2 12 16,233 1,2324 ,3558 15,450 17,016 13,7 17,8
Total 36 15,400 1,6539 ,2757 14,840 15,960 12,1 17,8
ANOVA
HB
Suma de
cuadrados gl
Media
cuadrática F Sig.
Entre grupos 40,667 2 20,333 12,184 ,000
Dentro de grupos 55,073 33 1,669
75
Total 95,740 35
Pruebas robustas de igualdad de medias
HB
Estadísticoa gl1 gl2 Sig.
Welch 10,359 2 21,820 ,001
a. F distribuida de forma asintótica
Pruebas post hoc
Comparaciones múltiples
Variable dependiente: HB
HSD Tukey
(I)
EXAMEN
(J)
EXAMEN
Diferencia de
medias (I-J) Error estándar Sig.
Intervalo de confianza al 95%
Límite
inferior
Límite
superior
0 1 -2,1667* ,5274 ,001 -3,461 -,873
2 -2,3333* ,5274 ,000 -3,627 -1,039
1 0 2,1667* ,5274 ,001 ,873 3,461
2 -,1667 ,5274 ,947 -1,461 1,127
2 0 2,3333* ,5274 ,000 1,039 3,627
1 ,1667 ,5274 ,947 -1,127 1,461
*. La diferencia de medias es significativa en el nivel 0.05.
76
Subconjuntos homogéneos
HB
HSD Tukeya
EXAMEN N
Subconjunto para alfa = 0.05
1 2
0 12 13,900
1 12 16,067
2 12 16,233
Sig. 1,000 ,947
Se visualizan las medias para los grupos en los subconjuntos
homogéneos.
a. Utiliza el tamaño de la muestra de la media armónica = 12,000.
77
ANALISIS ESTADÍSTICO DE LOS HEMATOCRITOS RTO_GB
Unidireccional
Descriptivos
RTO_GB
N Media
Desviación
estándar
Error
estándar
95% del intervalo de
confianza para la media
Mínimo
Máxim
o
Límite
inferior
Límite
superior
0 12
11058,33
3 2749,0356 793,5782 9311,679 12804,987 7700,0 16400,0
1 12
16425,00
0 3073,0870 887,1238 14472,454 18377,546 12300,0 23400,0
2 12
16275,00
0 3256,3574 940,0294 14206,009 18343,991 12400,0 21900,0
12,5
13
13,5
14
14,5
15
15,5
16
16,5
HB (g/dL)
Tiempo 0 Tiempo 1 Tiempo 2
78
Total 36
14586,11
1 3883,3088 647,2181 13272,188 15900,034 7700,0 23400,0
ANOVA
RTO_GB
Suma de
cuadrados gl
Media
cuadrática F Sig.
Entre grupos 224148888,88
9 2
112074444,44
4 12,180 ,000
Dentro de grupos 303654166,66
7 33 9201641,414
Total 527803055,55
6 35
Pruebas robustas de igualdad de medias
RTO_GB
Estadísticoa gl1 gl2 Sig.
Welch 13,017 2 21,887 ,000
a. F distribuida de forma asintótica
Pruebas post hoc
Comparaciones múltiples
Variable dependiente: RTO_GB
79
HSD Tukey
(I)
EXAMEN
(J)
EXAMEN
Diferencia de
medias (I-J) Error estándar Sig.
Intervalo de confianza al 95%
Límite
inferior
Límite
superior
0 1 -5366,6667* 1238,3888 ,000 -8405,418 -2327,915
2 -5216,6667* 1238,3888 ,001 -8255,418 -2177,915
1 0 5366,6667* 1238,3888 ,000 2327,915 8405,418
2 150,0000 1238,3888 ,992 -2888,752 3188,752
2 0 5216,6667* 1238,3888 ,001 2177,915 8255,418
1 -150,0000 1238,3888 ,992 -3188,752 2888,752
*. La diferencia de medias es significativa en el nivel 0.05.
Subconjuntos homogéneos
RTO_GB
HSD Tukeya
EXAME
N N
Subconjunto para alfa =
0.05
1 2
0 12 11058,333
2 12 16275,000
1 12 16425,000
Sig. 1,000 ,992
Se visualizan las medias para los grupos en los
subconjuntos homogéneos.
80
a. Utiliza el tamaño de la muestra de la media
armónica = 12,000.
ANALISIS ESTADÍSTICO DE LOS HEMATOCRITOS NEUTROFILOS
Unidireccional
Descriptivos
NEUTROFILOS
N Media
Desviación
estándar
Error
estándar
95% del intervalo de
confianza para la media
Mínim
o
Máxim
o
Límite
inferior
Límite
superior
0 12 70,250 8,6982 2,5110 64,723 75,777 49,0 79,0
1 12 84,417 4,5619 1,3169 81,518 87,315 77,0 93,0
2 12 85,083 4,1001 1,1836 82,478 87,688 78,0 92,0
Tota
l 36 79,917 9,1507 1,5251 76,821 83,013 49,0 93,0
ANOVA
NEUTROFILOS
Suma de
cuadrados gl
Media
cuadrática F Sig.
Entre grupos 1684,667 2 842,333 22,307 ,000
Dentro de grupos 1246,083 33 37,760
Total 2930,750 35
Pruebas robustas de igualdad de medias
81
NEUTROFILOS
Estadísticoa gl1 gl2 Sig.
Welch 14,526 2 20,760 ,000
a. F distribuida de forma asintótica
Pruebas post hoc
Comparaciones múltiples
Variable dependiente: NEUTROFILOS
HSD Tukey
(I)
EXAMEN
(J)
EXAMEN
Diferencia de
medias (I-J) Error estándar Sig.
Intervalo de confianza al 95%
Límite
inferior
Límite
superior
0 1 -14,1667* 2,5087 ,000 -20,322 -8,011
2 -14,8333* 2,5087 ,000 -20,989 -8,678
1 0 14,1667* 2,5087 ,000 8,011 20,322
2 -,6667 2,5087 ,962 -6,822 5,489
2 0 14,8333* 2,5087 ,000 8,678 20,989
1 ,6667 2,5087 ,962 -5,489 6,822
*. La diferencia de medias es significativa en el nivel 0.05.
82
Subconjuntos homogéneos
NEUTROFILOS
HSD Tukeya
EXAME
N N
Subconjunto para alfa =
0.05
1 2
0 12 70,250
1 12 84,417
2 12 85,083
Sig. 1,000 ,962
Se visualizan las medias para los grupos en los
subconjuntos homogéneos.
a. Utiliza el tamaño de la muestra de la media
armónica = 12,000.
11
05
8,3
33
16
42
5
16
27
5
R T O G B ( C E L / U L )
Tiempo 0 Tiempo 1 Serie 3
83
ANALISIS ESTADÍSTICO DE LOS HEMATOCRITOS LINFOCITOS
Unidireccional
Descriptivos
LINFOCITOS
N Media
Desviación
estándar
Error
estándar
95% del intervalo de
confianza para la media
Mínimo
Máxim
o
Límite
inferior
Límite
superior
0 12 25,250 7,5333 2,1747 20,464 30,036 13,0 41,0
1 12 13,000 3,6181 1,0445 10,701 15,299 5,0 19,0
2 12 17,417 20,0928 5,8003 4,650 30,183 5,0 80,0
70,25
84,417 85,083
0
10
20
30
40
50
60
70
80
90
NEUTROFILOS (%)
Tiempo 0 Tiempo 1 iempo 2
84
Tota
l 36 18,556 13,2373 2,2062 14,077 23,034 5,0 80,0
ANOVA
LINFOCITOS
Suma de
cuadrados gl
Media
cuadrática F Sig.
Entre grupos 923,722 2 461,861 2,926 ,068
Dentro de grupos 5209,167 33 157,854
Total 6132,889 35
Pruebas robustas de igualdad de medias
LINFOCITOS
Estadísticoa gl1 gl2 Sig.
Welch 12,486 2 17,662 ,000
a. F distribuida de forma asintótica
Pruebas post hoc
Comparaciones múltiples
Variable dependiente: LINFOCITOS
HSD Tukey
Error estándar Sig. Intervalo de confianza al 95%
85
(I)
EXAMEN
(J)
EXAMEN
Diferencia de
medias (I-J)
Límite
inferior
Límite
superior
0 1 12,2500 5,1292 ,058 -,336 24,836
2 7,8333 5,1292 ,292 -4,753 20,419
1 0 -12,2500 5,1292 ,058 -24,836 ,336
2 -4,4167 5,1292 ,668 -17,003 8,169
2 0 -7,8333 5,1292 ,292 -20,419 4,753
1 4,4167 5,1292 ,668 -8,169 17,003
Subconjuntos homogéneos
LINFOCITOS
HSD Tukeya
EXAME
N N
Subconjunto
para alfa =
0.05
1
1 12 13,000
2 12 17,417
0 12 25,250
Sig. ,058
Se visualizan las medias para los
grupos en los subconjuntos
homogéneos.
a. Utiliza el tamaño de la muestra de
la media armónica = 12,000.
86
ANALISIS ESTADÍSTICO DE LOS HEMATOCRITOS EOSINOFILOS
Unidireccional
Descriptivos
EOSINOFILOS
N Media
Desviación
estándar
Error
estándar
95% del intervalo de
confianza para la media
Mínimo
Máxim
o
Límite
inferior
Límite
superior
0 12 1,917 2,7122 ,7829 ,193 3,640 ,0 7,0
1 12 ,250 ,4523 ,1306 -,037 ,537 ,0 1,0
2 12 1,000 1,5954 ,4606 -,014 2,014 ,0 5,0
Tota
l 36 1,056 1,9115 ,3186 ,409 1,702 ,0 7,0
25
,25
13
17
,41
7
L I N F O C I T O S ( % )
Tiempo 0 Tiempo 1 Serie 3
87
ANOVA
EOSINOFILOS
Suma de
cuadrados gl
Media
cuadrática F Sig.
Entre grupos 16,722 2 8,361 2,482 ,099
Dentro de grupos 111,167 33 3,369
Total 127,889 35
Pruebas robustas de igualdad de medias
EOSINOFILOS
Estadísticoa gl1 gl2 Sig.
Welch 3,160 2 16,115 ,070
a. F distribuida de forma asintótica
Pruebas post hoc
Comparaciones múltiples
Variable dependiente: EOSINOFILOS
HSD Tukey
(I)
EXAMEN
(J)
EXAMEN
Diferencia de
medias (I-J) Error estándar Sig.
Intervalo de confianza al 95%
Límite
inferior
Límite
superior
0 1 1,6667 ,7493 ,082 -,172 3,505
2 ,9167 ,7493 ,448 -,922 2,755
88
1 0 -1,6667 ,7493 ,082 -3,505 ,172
2 -,7500 ,7493 ,581 -2,589 1,089
2 0 -,9167 ,7493 ,448 -2,755 ,922
1 ,7500 ,7493 ,581 -1,089 2,589
Subconjuntos homogéneos
EOSINOFILOS
HSD Tukeya
EXAME
N N
Subconjunto
para alfa =
0.05
1
1 12 ,250
2 12 1,000
0 12 1,917
Sig. ,082
Se visualizan las medias para los
grupos en los subconjuntos
homogéneos.
a. Utiliza el tamaño de la muestra de
la media armónica = 12,000.
89
ANALISIS ESTADÍSTICO DE LOS HEMATOCRITOS MONOCITOS
Unidireccional
Descriptivos
MONOCITOS
N Media
Desviación
estándar
Error
estándar
95% del intervalo de
confianza para la media
Mínimo
Máxim
o
Límite
inferior
Límite
superior
0 12 2,167 1,8007 ,5198 1,023 3,311 ,0 5,0
1 12 2,000 1,3484 ,3892 1,143 2,857 ,0 4,0
2 12 2,333 2,4985 ,7213 ,746 3,921 ,0 9,0
Total 36 2,167 1,8898 ,3150 1,527 2,806 ,0 9,0
ANOVA
MONOCITOS
1,9
17
0,2
5
1
E O S I N O F I L O S ( % )
Tiempo 0 Tiempo 1 Tiempo 2
90
Suma de
cuadrados gl
Media
cuadrática F Sig.
Entre grupos ,667 2 ,333 ,088 ,916
Dentro de grupos 124,333 33 3,768
Total 125,000 35
Pruebas robustas de igualdad de medias
MONOCITOS
Estadísticoa gl1 gl2 Sig.
Welch ,091 2 20,834 ,914
a. F distribuida de forma asintótica
Pruebas post hoc
Comparaciones múltiples
Variable dependiente: MONOCITOS
HSD Tukey
(I)
EXAMEN
(J)
EXAMEN
Diferencia de
medias (I-J) Error estándar Sig.
Intervalo de confianza al 95%
Límite
inferior
Límite
superior
0 1 ,1667 ,7924 ,976 -1,778 2,111
2 -,1667 ,7924 ,976 -2,111 1,778
1 0 -,1667 ,7924 ,976 -2,111 1,778
2 -,3333 ,7924 ,907 -2,278 1,611
2 0 ,1667 ,7924 ,976 -1,778 2,111
91
1 ,3333 ,7924 ,907 -1,611 2,278
Subconjuntos homogéneos
MONOCITOS
HSD Tukeya
EXAME
N N
Subconjunto
para alfa =
0.05
1
1 12 2,000
0 12 2,167
2 12 2,333
Sig. ,907
Se visualizan las medias para los
grupos en los subconjuntos
homogéneos.
a. Utiliza el tamaño de la muestra de
la media armónica = 12,000.
ANALISIS ESTADÍSTICO DE LOS HEMATOCRITOS BASOFILOS
Unidireccional
92
Descriptivos
BASOFILOS
N Media
Desviación
estándar
Error
estándar
95% del intervalo de
confianza para la media
Mínimo
Máxim
o
Límite
inferior
Límite
superior
0 12 ,417 ,6686 ,1930 -,008 ,841 ,0 2,0
1 12 ,167 ,5774 ,1667 -,200 ,533 ,0 2,0
2 12 ,083 ,2887 ,0833 -,100 ,267 ,0 1,0
Tota
l 36 ,222 ,5404 ,0901 ,039 ,405 ,0 2,0
ANOVA
BASOFILOS
Suma de
cuadrados gl
Media
cuadrática F Sig.
Entre grupos ,722 2 ,361 1,254 ,298
Dentro de grupos 9,500 33 ,288
Total 10,222 35
Pruebas robustas de igualdad de medias
BASOFILOS
Estadísticoa gl1 gl2 Sig.
Welch 1,229 2 19,150 ,315
a. F distribuida de forma asintótica
93
Pruebas post hoc
Comparaciones múltiples
Variable dependiente: BASOFILOS
HSD Tukey
(I)
EXAMEN
(J)
EXAMEN
Diferencia de
medias (I-J) Error estándar Sig.
Intervalo de confianza al 95%
Límite
inferior
Límite
superior
0 1 ,2500 ,2190 ,496 -,287 ,787
2 ,3333 ,2190 ,294 -,204 ,871
1 0 -,2500 ,2190 ,496 -,787 ,287
2 ,0833 ,2190 ,924 -,454 ,621
2 0 -,3333 ,2190 ,294 -,871 ,204
1 -,0833 ,2190 ,924 -,621 ,454
Subconjuntos homogéneos
BASOFILOS
HSD Tukeya
EXAME
N N
Subconjunto
para alfa =
0.05
1
2 12 ,083
94
1 12 ,167
0 12 ,417
Sig. ,294
Se visualizan las medias para los
grupos en los subconjuntos
homogéneos.
a. Utiliza el tamaño de la muestra de
la media armónica = 12,000.
1,8
1,9
2
2,1
2,2
2,3
2,4
MONOCITOS (%)
Tiempo 0 Tiempo 1 Tiempo 2
95
ANALISIS ESTADÍSTICO DE LOS HEMATOCRITOS FIBRINOGENO
Unidireccional
Descriptivos
FIBRINOGENO
N Media
Desviación
estándar
Error
estándar
95% del intervalo de
confianza para la media
Mínimo
Máxim
o
Límite
inferior
Límite
superior
0 12 250,000 90,4534 26,1116 192,529 307,471 100,0 400,0
1 12 250,000 116,7748 33,7100 175,805 324,195 100,0 400,0
2 12 308,333 124,0112 35,7990 229,540 387,126 100,0 500,0
Total 36 269,444 111,6613 18,6102 231,664 307,225 100,0 500,0
0
0,05
0,1
0,15
0,2
0,25
0,3
0,35
0,4
0,45
BASOFILOS (%)
Tiempo 0 Tiempo 1 Tiempo 2
96
ANOVA
FIBRINOGENO
Suma de
cuadrados gl
Media
cuadrática F Sig.
Entre grupos 27222,222 2 13611,111 1,098 ,345
Dentro de grupos 409166,667 33 12398,990
Total 436388,889 35
Pruebas robustas de igualdad de medias
FIBRINOGENO
Estadísticoa gl1 gl2 Sig.
Welch ,966 2 21,545 ,396
a. F distribuida de forma asintótica
Pruebas post hoc
Comparaciones múltiples
Variable dependiente: FIBRINOGENO
HSD Tukey
(I)
EXAMEN
(J)
EXAMEN
Diferencia de
medias (I-J) Error estándar Sig.
Intervalo de confianza al 95%
Límite
inferior
Límite
superior
0 1 ,0000 45,4588 1,000 -111,546 111,546
2 -58,3333 45,4588 ,414 -169,880 53,213
97
1 0 ,0000 45,4588 1,000 -111,546 111,546
2 -58,3333 45,4588 ,414 -169,880 53,213
2 0 58,3333 45,4588 ,414 -53,213 169,880
1 58,3333 45,4588 ,414 -53,213 169,880
Subconjuntos homogéneos
FIBRINOGENO
HSD Tukeya
EXAME
N N
Subconjunto
para alfa =
0.05
1
0 12 250,000
1 12 250,000
2 12 308,333
Sig. ,414
Se visualizan las medias para los
grupos en los subconjuntos
homogéneos.
a. Utiliza el tamaño de la muestra de
la media armónica = 12,000.
98
0
50
100
150
200
250
300
350
FIBRINOGENO (mg/d/L)
Tiempo 0 Tiempo 1 Tiempo 2