5. desarrollo vegetativo. 5.1. des-etiolación cuando una plántula crece en total oscuridad bajo la...
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5. Desarrollo vegetativo
5.1. Des-etiolación
Cuando una plántula crece en total oscuridad bajo la superficie del suelo su tallo se alarga rápidamente, los cotiledones permanecen plegados sobre sí mismos sin expandir y el aparato fotosintético permanece en estado rudimentario, sin
desarrollar. La plántula realiza escotomorfogénesis y está etiolada.
Al emerger, la parte aérea es expuesta a la luz (señal) y esta frena el rápido crecimiento del tallo, induce la expansión y apertura de los cotiledones, promueve la síntesis del aparato fotosintético y de pigmentos protectores contra el exceso
de luz. La plántula comienza a des-etiolarse y realiza fotomorfogénesis
Fotorreceptores Rango de acción
Cromóforo
Fitocromos (phy)
Rojo, rojo lejano (azul)
Tetrapirrol de cadena lineal
Criptocromos
(cry)
Azul, UV-A Pterina y flavina
Fototropinas Azul, UV-A Flavinas
La luz es percibida por fotorreceptores
Plantas de una misma especie tienen distintos fitocromos porque la apoproteína
es codificada por distintos genes
Arabidopsis thaliana: phyA, phyB, phyC, phyD, phyE
Arroz: phyA, phyB, phyC
También las plantas tienen más de un criptocromo y fototropina
El pasaje de la oscuridad completa a la luz percibida por distintos fotorreceptores inicia la des-etiolación
WT
WT
Luz blancaLuz blanca
WT
WT
phyA
phy
B
phyA
phy
B
cry
1 cr
y2
cry1
cry
2 ph
yA p
hyB
cry
1 cr
y2
phyA
phy
B c
ry1
cry2
Los mutantes de fotorreceptores tienen des-etiolación deficiente
Oscuridad
LUZ
PHOTORRECEPTORES
FOTOMORFOGÉNESIS
phyA phyB cry1 cry2Planta normal
Las plantas que carecen de los fotorreceptores más importantes muestran serias alteraciones del crecimiento y desarrollo a pesar de ser cultivadas a
la luz
Expresión de un promotor fusionado a GUS, cuya expresión responde a la luz (plantas cultivadas a la luz) en plantas normales (WT) y mutantes hy5
WT hy5
The Plant Journal (2002) 31(6), 741±753
Genes Dev. 2002 16: 1247-1259
El mutante hy5 tiene des-etiolación deficiente.HY5 es un factor de transcripción ubicado constitutivamente
en el nucleo
LUZ
PHOTORRECEPTOR
HY5
FOTOMORFOGÉNESIS
HY5 hace falta para la fotomorfogénesis y para la respuesta de diversos genes a la luz
El mutante cop1 es des-etiolado en oscuridad
LUZ
COP1
FOTOMORFOGÉNESIS
Genes Dev. (1991) 5, 1172-1182.
LUZ
FOTORRECEPTORES
COP1
FOTOMORFOGÉNESIS
La luz percibida por fotorreceptores induce la migración de COP1 del núcleo al citoplasma
LUZ
FOTORRECEPTORES
COP1
HY5
FOTOMORFOGÉNESIS
COP1 es una E3 ligasa que ubiqutiniza a HY5, causando su destrucción en el proteasoma
Mayor irradiancia
NATURE |VOL 405 | 25 MAY 2000 |
HY5
Más luz, más HY5
Modelo de acción por la vía COP1-HY5
En oscuridad, COP1 está en el núcleo y causa la destrucción de HY5 y otros factores de transcripción necesarios para la fotomorfogénesis.
Hay escotomorfogénesis.
La luz activa a los fotorreceptores que entonces causan la migración de COP1 al citoplasma. Ahora HY5 y otros factores de transcripción se acumulan.
Hay fotomorfogénesis.
Al recibir luz, los fitocromos migran desde el citoplasma al núcleo en su forma Pfr y allí se pegan a PIF, fosforilándolos
Oscuridad Luz
Los fotorreceptores tienen otras vías de acción:
Los PIF (que habíamos introducido al hablar de giberelinas) también participan de la fotomorfogénesis. Son represores de la fotomorfogénesis en oscuridad. Los
fitocromos causan su fosforilación y destrucción
La señal verde corresponde a moléculas de fitocromo a las que se le adicionó por ingeniería genética una proteína fluorescente en verde (GFP). De ese modo se puede ver a dónde va el fitocromo
Los fitocromos interactúan físicamente con PIF y los fosforilan, causando su
destrucción
Los genes PIF integran las señales del ambiente luminoso con las señales endógenas provistas por las giberelinas
LUZ
FITOCROMOS
PIF
Genes necesarios para fotomorfogénesis
FOTOMORFOGÉNESIS
5.2. Fototropismo
El fototropismo es el crecimiento de un órgano hacia (fototropismo positivo) o en contra (fototropismo negativo) de la dirección de incidencia de la luz.
El gradiente de luz entre la cara iluminada y la cara sombreada causa un gradiente de activación de las fototropinas.
El gradiente de fototropinas causa un gradiente de auxinas (menor concentración en la cara iluminada).
El gradiente de auxinas causa un gradiente de crecimiento.
En el tallo (fototropismo positivo) crece más la cara sombreada y el tallo se curva hacia la luz.
En la raíz (fototropismo negativo) crece más la cara iluminada y la raíz se curva en contra de la dirección de incidencia de la luz
LUZ
La respuesta fototrópica está causada por un mayor crecimiento de la zona sombreada que la más expuesta a la luz. Darwin (1880) concluyó que un estímulo del crecimiento producido en el ápice del coleoptilo era transmitido a la zona de crecimiento porque la
respuesta fototrópica no se producía si el ápice era eliminado o cubierto.
Went (1926) mostró que la sustancia promotora del crecimiento difundía hacia un bloque de agar y su distribución asimétrica causaba la curvatura
Cur
vatu
ra
Número de ápices de coleoptilos
LUZ LUZ LUZ
Estos experimentos llevaron al descubrimiento de la auxina
ESTÍMULO UNILATERAL SIN ESTÍMULO UNILATERAL
Las auxinas participan de las respuestas fototrópicas. El gradiente de luz causa la redistribución de auxina hacia la zona no iluminada
No cambia la cantidad total de
auxina pero si cambia la
distribución
(se visualiza mediante el
promotor de un gen que responde a
auxina, fusionado a GUS)
LA DISTRIBUCION ASIMETRICA DE LAS AUXINAS PROVOCA CRECIMIENTO ASIMETRICO DE LOS ORGANOS Y ES LA BASE DE LOS TROPISMOS.
El estímulo gravitrópico hace que más auxina se ubique en la parte
inferior del coleoptilo
El trocito inferior tiene más auxina y promueve más el crecimiento del
lado en que es colocado
5.3. Gravitropismo
Gravitropismo positivo
Gravitropismo negativo
La raíz muestra gravitropismo positivo y el tallo gravitropismo negativo
botit.botany.wisc.edu/
Mutante pin
www.mpg.de/
Las auxinas son transportadas desde las células hacia el apoplasto por transportadores de membrana llamados PIN
Gravitropismo de la raíz:
La distribución de auxina está indicada en verde y la polaridad de los transportadores PIN está indicada por la dirección de las flechas.
La gravedad induce la relocalización de PIN3 y el flujo de auxina es redirigido hacia la parte inferior de la raíz, donde inhibe el crecimiento y causa la curvatura.
nature chemical biology volume 5 number 5 MAY 2009
El estímulo gravitrópico causa la redistribución de PIN3 y del flujo de auxinas
5.4. Dominancia apical
www.icmag.com
La dominancia apical es el proceso mediante el cuál el ápice inhibe el crecimiento de yemas laterales. Al removerse el ápice las yemas laterales se
liberan y comienzan a crecer. Con frecuencia, un nuevo ápice se transforma en dominante e inhibe a los demás
LAS AUXINAS PARTICIPAN EN LA DOMINANCIA APICAL
Al decapitar el tallo (eliminar el ápice), las yemas que estaban inhibidas comienzan a crecer.
En (A) había dominancia apical, que en (B) se ha roto.
Si en lugar del ápice se coloca auxina, las yemas axilares permanecen inhibidas (C).
Las auxinas producidas en el ápice mantienen la dominancia apical.
LAS CITOQUININAS SON REGULADORES POSITIVOS DE LA RAMIFICACIÓN
Control
+ Citoquinina
+ Citoquinina y Giberelina
(a) Distribución de auxinas por el floema (de fuentes a destinos)(b) Transporte polar de célula a célula (modelo quimiostático): En el apoplasto (pH 5.5) el ácido
indol acético (IAA) está protonado y puede entrar al simplasto atravesando la membrana por difusión o por transportadores. En el citosol (pH 7.0) se disocia dando la forma no protonada que no puede salir por difusión. La forma no protonada sólo puede salir por transportadores (PGP o PIN). La localización de estos transportadores da origen al transporte polar.
(c) Estructura de IAAH (no hace falta conocerla).
La auxina viaja desde el ápice hacia abajo por el tallo por transporte polar
nature chemical biology volume 5 number 5 MAY 2009
Plantas de arveja de genotipo salvaje (izq.) y mutante deficiente en strigolactona (der.)
http://www.sciencecentric.com
Plantas de arroz de genotipo salvaje (izq.) y mutante deficiente en strigolactona (der.)
www.riken.go.jp/
La estrigolactona es una hormona que inhibe la ramificación
La yema axilar se activa dependiendo de su capacidad de exportar auxina y de su contenido de citoquininas.
La estrigolactona (sintetizada en raíz y tallo) se mueven hacia arriba (presumiblemente en el flujo transpiratorio) y regulan negativamente la salida de auxina de la yema.
La auxina (sintetizada en hojas jóvenes del ápice) se mueve hacia abajo por transporte polar, regula negativamente la síntesis de citoquininas y positivamente la síntesis de strigolactona. Las yemas contribuyen con auxinas, afectando el estado de otras yemas.
La citoquinina (sintetizada en raíz y tallo) se mueve hacia arriba en el flujo transpiratorio.
Modelo que integra la acción de distintas hormonas sobre la ramificación
Strigolactona
Auxina
Citoquinina
Promueve
Inhibe
Plant, Cell and Environment, 32, 694–703
a | Teosinte, Zea mays ssp. Mexicanab | Maíz de genotipo salvaje (línea A158). Nótese la fuerte dominancia apical.c | Maíz mutante del gen teosinte branched 1 (tb1).
Además de las señales hormonales a nivel de planta entera, hay controles de la ramificación a nivel de yema individual.
El gen TEOSINTE BRANCHED actúa en las yemas axilares inhibiendo la ramificación en maíz
5.5. Desarrollo radical
Nutrientes suficientes
Alto N general
Baja ramificación
Alto N localizado
Alta ramificación localizada
Bajo P
Poco crecimiento de la raíz primaria, alta ramificación
Bajo S
Alto crecimiento de la raíz primaria y alta ramificación
Bajo K
Bajo alargamiento de las raíces laterales
New Phytologist (2008) 179: 595–614
La arquitectura de la raíz depende de la disponibilidad de nutrientes
LAS AUXINAS PARTICIPAN EN LA FORMACION DE SECUNDARIAS Y RAICES ADVENTICIAS
NPA es un inhibidor del transporte de auxinas
www.wfu.edu/biology/faculty/muday/lateral.htm
KIBA es una auxina
www.cals.ncsu.edu/
Altos niveles generalizados de Nitrógeno reducen la ramificación de las raíces.
Esto podría deberse a un aumento en los niveles de auxinas, porque al pasar plantas de un nivel mayor de Nitrógeno en el medio a uno menor, los niveles de auxina en la raíz aumentan.
Annals of Botany 97: 875–881, 2006
ALTO P BAJO P
Los niveles bajos de P reducen los niveles de auxinas en el ápice de la raíz y la actividad mitótica en esa región. Este es un efecto de auxina sobre el
crecimiento de la raíz principal ligado a la división celular.
LAS AUXINAS INDUCEN LA FORMACIÓN DE RAÍCES, MIENTRAS QUE LAS CITOQUININAS INDUCEN LA FORMACIÓN DE HOJAS Y TALLOS A PARTIR
DE CALLOS
Auxina
Cito
quin
ina