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vi.cl

Áreas Naturales Protegidas

3

Importancia ecológica Zonas de conservación

Especies emblemáticas y endémicas

Evaluación de amenazas y riesgos

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Importancia del Área de estudio

• Frontera de dos eco-regiones

• Importancia ecológica (biodiversidad)

• Zona de reproducción y dispersión

• Ecosistemas marinos, terrestres únicos

• Especies endémicas

• Efecto de derrame a zonas pelágicas y costeras

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ANTES

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DESPUÉS

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MITIGAR EFECTOS DE PERDIDA DE LOS ECOSISTEMAS

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PROYECTOS INICIATIVA CLEOFAS

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Objetivo General: Implementar el programa de monitoreo ambiental marino en isla María Cleofas, para obtener información base con el fin de evaluar y proponer acciones de manejo del área. Objetivos específicos: 1. Determinar la estructura de la comunidad de corales. 2. Establecer la estructura de la comunidad de peces asociados a estos sistemas arrecifales. 3. Determinar la distribución, abundancia y riqueza de especies de equinodermos asociados 4. Conocer la capacidad de resiliencia de las comunidades coralinas de las zonas en estudio. 5. Monitorear el comportamiento de las variables ambientales. 6. Evaluar el impacto de los eventos naturales y antropogénicos sobre la estructura ecológica de estas

comunidades.

Responsables técnicos: Dr Amilcar Cupul-Magaña, Dra. Alma P. Rodríguez-Troncoso

MONITOREO AMBIENTAL MARINO EN LOS ARRECIFES Y COMUNIDADES DE CORAL DE LA ISLA MARÍA CLEOFAS (RESERVA DE LA BIOSFERA ISLAS MARÍAS)

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Resultados:

Sitios evaluados en el monitoreo de arrecifes coralinos de Isla Cleofas

Amenazas naturales y antrópicas: • Fenómenos meteorológicos extremos • Eventos ENSO • Cambio Climático • Pesca ilegal

Consecuencias: CCV 2001= 38.5%* CCV 2015= 6.8% CCV 2016= 3,2% CCV 2017= 7.0% *López.Pérez et al., 2016

Requiere Protección

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OBJETIVO GENERAL. Fortalecer las acciones de recuperación de los arrecifes coralinos presentes en Isla Cleofas Objetivos específicos. 1. Caracterización de zonas coralinas degradadas por actividades turísticas 2. Determinar el impacto de las actividades humanas sobre las zonas coralinas Implementar acciones de

restauración de corales en zonas degradadas, a través de la técnica de donación y siembra de fragmentos.

3. Dar seguimiento a las acciones de restauración de corales, implementadas en zonas degradadas. 4. Establecer criterios para la atención oportuna de áreas que puedan degradarse por actividades

turísticas. 5. Evaluar el éxito de las acciones de restauración que hasta ahora se han implementado en Isla Cleofas.

Responsables técnicos: Dra. Alma P. Rodríguez-Troncoso, Dr. Adolfo Tortolero-Langarica

RESTAURACIÓN DE ARRECIFES DE CORAL UTILIZANDO PROCESOS NATURALES DE RECUPERACIÓN

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EFECTO DE PECES HERBÍVOROS SOBRE LA COBERTURA DE BENTOS EN LA RESERVA DE LA BIÓSFERA ISLAS MARÍAS Responsables: Dr. Amilcar Leví Cupul Magaña, Biol. Mar. Diana Elizabeth Morales de Anda, Dra. Alma Paola Rodríguez Troncoso Adscripción: Centro Universitario de la Costa (CUC), Universidad de Guadalajara. Por lo tanto, el objetivo del presente estudio es comprender el efecto que tienen las especies de peces herbívoros en el mantenimiento de las comunidades coralinas en la Reserva de Biosfera Islas Marías Objetivos específicos. Evaluar a través del tiempo la composición y abundancia de los peces herbívoros y su variación espacio-temporal. Evaluar a través del tiempo la cobertura de los componentes bentónicos principales. Analizar el efecto de la herbivoría de peces y nutrimentos sobre las macroalgas. A continuación, se describen algunas de las metas que se cumplieron en la primera y segunda visita a la isla:: 1) Instalación del experimento en campo de herbivoría de peces de arrecife. 2) Estimación de abundancia y número de especies de peces mediante censos visuales (Se incluye anexo 1 lista de especies). 3) Estimación de cobertura de principales componentes bentónicos mediante videotransecto y marco cuadrado. 4) Obtención de videos para evaluar la actividad de herbivoría de los peces de arrecife.

a b c

Imágenes proporcionadas por: Dra. Lucy y Biol. Mar. Diana

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EVALUACIÓN DEL ÉXITO REPRODUCTIVO DE CORALES FORMADORES DE ARRECIFES EN ISLAS MARÍAS, NAYARIT, MÉXICO. Responsables: Dra. Alma Paola Rodríguez Troncoso y Biol. Mar. Jeimy Denisse Santiago Valentín. Adscripción: Centro Universitario de la Costa, Universidad de Guadalajara. Objetivo general Evaluar el éxito reproductivo de los principales géneros de coral utilizando producción y desarrollo de gametos, producción de larvas y reclutamiento como marcadores en Islas Marías, Nayarit, México. Objetivos particulares Caracterizar los patrones y temporadas reproductivas de especies de coral del genero Pocillopora, Pavona y Porites. Reportar la presencia de larvas en la columna de agua. Determinar la tasa de reclutamiento coralino en sustrato natural y artificial.

A

D C

B

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1. Reclutamiento exitoso en sustrato artificial. Evidencia de reclutas del género Porites y Pavona

2. Evidencia de 15 larvas en la columna de agua del gènero Porites (12) y Pavona (2)

A

D C

B

Resultados:

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OBJETIVO GENERAL Incrementar el conocimiento de la composición y abundancia de grupos de invertebrados como los anélidos poliquetos, equinodermos y moluscos en fondos intermareales y submareales someros de la Isla Cleofas objetivos particulares 1. Obtener ejemplares de invertebrados que habitan en fondos someros dentro y sobre los sedimentos y

entre las grietas de sustratos duros como rocas 2. Catalogar los ejemplares de invertebrados recolectados con información geográfica y taxonómica 3. Elaborar un catálogo fotográfico de las especies reconocidas

Responsables técnicos: Dra. Patricia Salazar-Silva

CARACTERIZACIÓN ECOLÓGICA DEL BENTOS E INTERMAREAL ROCOSO, EN LAS COSTAS DE ISLAS CLEOFAS

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Resultados: nuevo registros de Moluscos y Poliquetos

Figura. Moluscos: gasterópodos, bivalvos y quitones abundantes y diversos

Figura. Anelidos Poliquetos, representantes de las principales familias: Eunicidae, Cirratulidae, Terebellidae, Polynoidae, Nereididae. Sedimentívoros en su mayoría

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PATRONES EN LA TASAS DE CALCIFICACIÓN DE LOS PRINCIPALES CONSTRUCTORES DE ARRECIFES CORALINOS PAVONA Y POCILLOPORA SPP. EN LA RESERVA DE BIOSFERA ISLAS MARÍAS, MÉXICO Responsables: Dr. José de Jesús Adolfo Tortolero Langarica Participantes: Dr.a. Alma Paola Rodríguez Troncoso, Dr. Amílcar Leví Cupul Magaña Adscripción: Tecnológico Nacional de México, Tecnológico Bahía de Banderas, Universidad de Guadalajara OBJETIVO Determinar los parámetros de crecimiento en tasa anual de extensión, densidad esqueletal y tasa de calcificación en los principales géneros de coral constructores de arrecife Pavona clavus y Pocillopora spp. de la Reserva de Biosfera Islas Marías, y su relación con factores ambientales y fisiológicos. OBJETIVOS ESPECÍFICOS Evaluar la tasa anual de crecimiento y calcificación de especies ramificadas: Pocillopora verrucosa, Pocillopora damicornis, Pocillopora euidoxy y especies de coral masivo Pavona clavus. Identificar la relación de la tasa de crecimiento con de factores extrínsecos como la morfología y el sexo. incluyendo factores intrínsecos como la temperatura superficial del mar Describir la tendencia histórica y patrones en las tasas de crecimiento en la especie de coral Pavona clavus en las últimas décadas.

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INSTALACIÓN DE UNIDADES EXPERIMENTALES DE ACRECIÓN PARA MONITOREAR LAS TASAS DE CALCIFICACIÓN Y DIVERSIDAD DE ORGANISMOS INCRUSTANTES EN ÁREAS ARRECIFALES Responsable. Dr. José Luis Carballo Cenizo. Adscripción: Instituto de Ciencias del Mar y Limnología, Universidad nacional Autónoma de México

Tasas de Calcificación secundarias. Las tasas de calcificación son un indicador de salud del ecosistema y reflejan la cantidad de masa que se produce por unidad de tiempo. Las unidades de acreción se utilizan para cuantificar el CaCO3 producido por organismos biocalcificadores bajo distintas condiciones en un tiempo determinado (Prince et al. 2012; CREIOS Pacific RAMP). En la actualidad las comunidades incrustantes (algas calcáreas, bryozoos, poliquetos, etc.) pueden llegar a ser tan importantes como los propios corales en la producción de carbonato. Descripción de las unidades experimentales. Las unidades experimentales de acreción (UEA) consisten en dos cuadrados de PVC de 10 x 10 cm, los cuales se insertan en una varilla de acero que se ancla al sustrato (Fig. 1 (1)). Los dos cuadrados de PVC se disponen separados 1 cm entre sí (Fig. 1 (4.1)), de tal manera que conforma una unidad con cuatro ambientes diferentes, dos iluminados con diferente orientación (y dos menos iluminados también con diferente orientación) (Fig. 2 (A)).

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Figura 1. instalación y remoción de placas

Figura 2. Placa un año de proceso (derecha), Placa recién instalación (izquierda)

Resultados:

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SCUTELLASTRA MEXICANA (Broderip & Sowerby, 1829), ENDEMISMO MEXICANO EN PELIGRO INMINENTE DE EXTINCIÓN: PLAN DE CONTINGENCIA PARA SU RECUPERACIÓN Y ESTRATEGIAS DE CONSERVACIÓN DE SU HÁBITAT Responsable. Dr. José Luis Carballo Cenizo. Adscripción: Instituto de Ciencias del Mar y Limnología, Universidad nacional Autónoma de México Propuesta de investigación dirigida exclusivamente a la recuperación de una de las especies de invertebrados más emblemáticos de México, y actualmente prácticamente extinta. Se trata de la lapa gigante Scutellastra mexicana Broderip & Sowerby, 1829), la cual constituye la especie de mayor tamaño a nivel mundial, y que además tiene un valor ecológico clave en los ecosistemas donde habita. Es una especie impresionante, considerado el mayor patellido del mundo ya que puede alcanzar más de 350 mm Este molusco endémico del Pacífico mexicano está protegido por la NOM-035-ECOL-1994 y 2001 de la legislación mexicana (DOF, 1994, 2002) con la categoría de “sujeta a protección especial” ya que la especie se ha extinguido localmente en la mayor parte de la costa continental mexicana, y de no llevarse a cabo proyectos de conservación la especie se extinguirá en los próximos años. Actualmente solo quedan pequeñas poblaciones aisladas en algunos puntos de las islas Marías,

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Figura 1.Vista aérea de magnitud de lapa gigante Figura 2. medición parámetros de crecimiento

Figura 3. aplicación de anestésico para manipulación sin estrés

Resultados:

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OBJETIVO Establecer una línea base en la diversidad y abundancia de depredadores en Isla Cleofas, enfocado en especies de elasmobranquios. La primera fase es evaluar la viabilidad en examinar los patrones espacio temporales de movilidad y uso de habitad a largo plazo con los objetivos: 1. Evaluación de la abundancia relativa de elasmobranquios, utilizando un Sistema remoto abatible de video

(BRUVS) in Isla María Cleofas. 2. Análisis de la dinámica especial de la poblaciones de elasmobranquios utilizando transmisores acústicos y

satelitales en el archipiélago

DIVERSIDAD Y ABUNDANCIA DE DEPREDADORES MARINOS EN ISLAS MARÍAS

Dra. Jennifer Caselle, Dra. Eréndira Canales, Dr. James Ketchum- California University, Santa Barbara-Pelagios

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Resultados:

Figura 1. Mapa de sitios de estudio preliminar Figura 2. Instalación de BRUV y colecta de datos en campo

Figura 3. Recuperación de dispositivos BRUV

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Resultados:

Figura 2. Instalación de sistema de acercamiento de especímenes (arriba) y colocación de etiqueta acústica sobre espécimen de tiburón Dusky (Carcharhinus obscurus) (abajo).

Figura 1. Mapa de distribución de receptores acústicos instalados en el Archipiélago de Islas Marías.

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OBJETIVO GENERAL El Objetivo de esta parte del Proyecto es la instalación de una estación sísmica en la Isla María Cleofas que permita mejorar la calidad de la locación de los sismos que ocurren al sur de esta Isla.. Con los datos que proporcione esta estación se espera conocer mejor los mecanismos que generan los sismos en esta área, esta información es vital para poder evaluar el peligro sísmico y tsunamigénico. Responsables técnicos: Dr.. Francisco Javier Núñez Cornú, Dr. Víctor Hugo Márquez Ramírez

Caracterización del peligro sísmico y tsunamigénico asociado a la estructura cortical del contacto Placa de Rivera-Bloque de Jalisco.

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Análisis de actividad sísmica

Se recuperaron los datos sísmicos registrados la estación instalada el 31 de mayo de 2016 en la Isla María Cleofas. Se le le dio mantenimiento y se instaló un segundo panel solar. Registro de sissmo magnitud superior a 5.0 el 26 de abril del 2017 a las 12:45 utc y algunas reprlicas el 28 de abril

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Diversidad y estructura de la vegetación leñosa de la selva seca de la Isla María Cleofas.

OBJETIVO GENERAL Contribuir al conocimiento de la diversidad y estructura de la vegetación leñosa de la selva seca de la Isla María Cleofas. Objetivos Particulares 1. Estimar diversos índices de diversidad alfa, como son la riqueza de especies, alfa de Fisher, Chao 1 y

dominancia. 2. Determinar la estructura vertical de la vegetación, basados en la altura, área basal, áreas y coberturas

de copa de los individuos leñosos. 3. Determinar si la diversidad alfa y la estructura vertical de la selva seca se ha visto modificada por los

eventos naturales o el ramoneo de las cabras. 4. Analizar las similitudes florísticas de la vegetación leñosa de la Isla María Cleofas con algunas otras

islas del Pacifico y con selvas secas de Nayarit y Jalisco.

Responsables técnicos: Dra. Sandra Quijas Fonseca, Dr. Francisco Mora Ardila

DIVERSIDAD Y ESTRUCTURA DE LA VEGETACIÓN LEÑOSA DE LA SELVA SECA DE LA ISLA MARÍA CLEOFAS.

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Albizia occidentalis Bahuinia herrerae Bursera arborea

Capparis indica Casearia corimbosa Coccoloba barbadensis

Cordia insularis Cordia sp. Crataeva tapia

Erythrina lanata Erythroxylon mexicanum Guaiacum coulteri

Guettarda elliptica Hamelia versicolor Karwinskia humboldtiana

Leucaena leucocephala Morisonia americana Ouratea mexicana

Pachycereus pecten-aboriginum

Piranhea mexicana Platymiscium lasiocarpum

Psidium sartorianum Randia thurberi Rupechtia sp.

Tabernaemontana

crysocarpa Thouinia paucidentata

Trichilia hirta

Caracterización de la diversidad de vegetación leñosa

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HISTORIAS DE VIDA DE ANFIBIOS Y REPTILES DE ISLA CLEOFAS Responsable. Dr. Armando H. Escobedo Galván Adscripción:Centro Universitario de la Costa (CUC), Universidad de Guadalajara. Análisis morfológico A partir de los ejemplares capturados se realizó una comparación morfológica mediante métodos estadísticos con las especies Anolis nebulosus del continente y con Anolis sagrei, especie introducida en el Caribe mexicano y que presenta características parecidas a Anolis nebulosus. muestra como a partir de las mediciones tomadas en los ejemplares capturados en la Isla María Cleofas (color azul) se puede ver una clara separación de sus congéneres del continente (color gris). Esto puede estar indicando la posibilidad que la especie de Anolis presente en la Isla María Cleofas sea una nueva especie para la isla y una nueva especie endémica para México. Conclusiones Los resultados de la primera visita a la Isla María Cleofas arrojaron información de gran importancia para el conocimiento de la diversidad de reptiles, no solo de las Islas, sino en general para el país.

-6 -4 -2 0 2 4

Anolis sagrei

Anolis

Anolis nebulosus

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Resultados:

Figuras. Colecta de datos en campo e identificación en laboratorio

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COMPOSICIÓN DE LOS MILPIÉS Y CIEMPIÉS (MYRIAPODA: DIPLOPODA Y CHILOPODA) DE LA ISLA MARÍA CLEOFAS.

3. Objetivo general Conocer la riqueza de especies de miriápodos, ciempiés y milpiés (Myriapoda: Chilopoda y Diplopoda), de la Isla María Cleofas. 4. Métodos Se realizan recolectas manuales a partir de búsquedas visuales sobre el terreno, bajo piedras y troncos, así como entre la hojarasca. Los ejemplares recolectados se fijarán con alcohol al 70%. Se revisarán con la ayuda de un microscopio estereoscópico para su identificación. Los organismos se determinarán hasta nivel de especie o género y se depositarán para su resguardo en la Colección Entomológica del Centro de Estudios en Zoología del Centro Universitario de Ciencias Biológicas de la Universidad de Guadalajara en Zapopan, Jalisco (CZUG).

Responsable. Dr. Fabio German Cupul-Magaña Biol. Ismael Eduardo Huerta de la Barrera Adscripción:Centro Universitario de la Costa (CUC), Universidad de Guadalajara.

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Resultados y Productos Generales:

Lista nominal de especies de ciempiés para Isla María Cleofas que se han registraron (entre paréntesis se indica el número de ejemplares recolectados):

Chilopoda

Scolopendromorpha

Scolopendridae

Scolopendra morsitans (4)

Scolopendra polymorpha (2)

Scolopendra viridis (2)

Geophilomorpha

Oryidae

Orphnaeus brevilabiatus (1)

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Segunda etapa (segundo año)

Mar

2018

Abr

2018

May

2018

Jun

2018

Jul

2018

Ago

2018

Sep

2018

Oct

2018

1 Limpieza de playas X X X X X X X X

2 Lapa Gigante recuperación X X X

3 Programa de voluntariado X X X X X X X X

4 Caracterización del Plancton y

productividad primaria. X X X

5 Florecimientos algales nocivos X X X

6 Restauración de arrecifes y

áreas de coral y X X X

7 Monitoreo de arrecifes (corales,

peces y equinodermos). X X X

8 Monitoreo de esponjas. X X X

9 Monitoreo del bentos e

intermareal rocoso. X X X X

10 Proyecto Manta X

11 Monitoreo de elasmobranquios X X

12 Monitoreo de tortugas marinas X X

13 Monitoreo de Mamíferos

marinos (Ballenas, delfines) X

14 Inventario de anfibios, reptiles,

aves y mamíferos terrestres. X X X X

15 Monitoreo de calidad de agua X X X

16 Caracterización de la

vegetación de isla Cleofas. X X X

17 Caracterización del peligro

sísmico y tsunamigénico X X X

18 Informe de actividades

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Agradecimientos

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ANEXOS

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MARINE RECORD Open Access

Distribution and species richness ofcaprellids (Crustacea: Amphipoda)from the Mexican PacificLucy Coral Alarcón-Ortega†, Amílcar Leví Cupul-Magaña*, Alma Paola Rodríguez-Troncoso†

and Fabio Germán Cupul-Magaña

Abstract

Background: The caprellid fauna from different localities along the Mexican Pacific coast: Sinaloa (3), Nayarit (15),Jalisco (9) and Colima (1) are presented herein.

Methods: A total of 1,093 specimens associated with diverse substrates (octocorals, hydroids, algae, coral rubbleand sponge) were recorded.

Results: Eight species in four genera were identified: Aciconula acanthosoma Chess 1989; Caprella mendax Mayer1903; Caprella pitu Sánchez-Moyano, García-Ascencio and Guerra-García 2014; Caprella suprapiscis Galván-Villa andAyón-Parente 2015; Paracaprella carballoi Sánchez-Moyano, García-Ascencio and Guerra-García 2014; Paracaprellaisabelae Sánchez-Moyano, García-Ascencio and Guerra-García 2014; Paracaprella pusilla Mayer 1890; and Liropusisabelensis Sánchez-Moyano, García-Ascencio and Guerra-García 2014.

Conclusions: The new records increase the known species richness in the region at local level, including extensions ofthe known ranges for all the species. These results highlight the need for a large scale survey along the Mexican Pacificcoast, along with a more thorough sampling on a large number of substrata, in order to increase the knowledge ofcaprellid diversity in the area.

Keywords: Richness, Range extension, Distribution, Eastern Tropical Pacific, Skeleton shrimp

IntroductionCaprellids are small crustaceans commonly known as“skeleton shrimps”, which are abundant and importantmembers of the marine benthos, inhabiting a wide varietyof substrates (e.g., bryozoans, macroalgae and sponge) asepibionts, with a high preference for hydroids and gorgo-nians in tropical regions (McCain, 1968; Guerra-García,2006; Scinto et al., 2008; Alarcón-Ortega et al., 2012;Sánchez-Moyano et al., 2014; Soler-Hurtado andGuerra-García, 2016). They are also part of foulingcommunities (Thiel et al., 2003; Ros and Guerra-García,2012; Alarcón-Ortega et al., 2015), and their distribution var-ies from intertidal to abyssal zones (Laubitz and Mills, 1972;

Woods, 2009). They are fundamental in marine ecosystemsas recyclers of organic matter and as an energy source at dif-ferent trophic levels (Caine, 1989; Woods, 2009).The caprellids from the Eastern Tropical Pacific (ETP)

have been little studied. To date in this region a total of16 species has been recorded: Aciconula acanthosomaChess, 1989 from Mexico and Ecuador; Abbysicaprellagalatheae McCain, 1966 from Costa Rica and Peru;Caprella ungulina Mayer, 1903 from Ecuador; C. califor-nica Stimpson, 1856 from Mexico; C. equilibra Lamark,1881 from Mexico, Panama and Ecuador; C. scauraTempleton, 1836 from Mexico and Costa Rica; C. men-dax Mayer, 1903 from Mexico; Paracaprella banardiMcCain, 1967 from Panama and P. pusilla Mayer, 1890from Mexico and Panama (Mayer, 1903; Shoemaker,1942; McCain, 1966; McCain, 1967; McCain and Steinberg,1970; Laubitz, 1970; Alarcón-Ortega et al., 2012; Ros et al.,2014; Sánchez-Moyano et al., 2014; Soler-Hurtado and

* Correspondence: [email protected]†Equal contributorsLaboratorio de Ecología Marina del Centro de Investigaciones Costeras,Centro Universitario de la Costa, Universidad de Guadalajara, Av. Universidadde Guadalajara 203, C.P. 48280 Puerto Vallarta, Jalisco, Mexico

© The Author(s). 2017 Open Access This article is distributed under the terms of the Creative Commons Attribution 4.0International License (http://creativecommons.org/licenses/by/4.0/), which permits unrestricted use, distribution, andreproduction in any medium, provided you give appropriate credit to the original author(s) and the source, provide a link tothe Creative Commons license, and indicate if changes were made. The Creative Commons Public Domain Dedication waiver(http://creativecommons.org/publicdomain/zero/1.0/) applies to the data made available in this article, unless otherwise stated.

Alarcón-Ortega et al. Marine Biodiversity Records (2017) 10:9 DOI 10.1186/s41200-017-0112-3

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Guerra-García, 2016), plus recent descriptions, all fromMexico: C. calderoni Hendrickx and Ayón-Parente,2014; C. mercedesae Hendrickx and Ayón-Parente,2014; C.pitu Sánchez-Moyano et al., 2014; C. suprapis-cis Galván-Villa and Ayón-Parente, 2015; Liropus isabe-lensis Sánchez-Moyano et al., 2014; P. carballoiSánchez-Moyano et al., 2014 and P. isabelae Sánchez-Moyano et al., 2014 (Hendrickx and Ayón-Parente,2014; Sánchez-Moyano et al., 2014; Galván-Villa andAyón-Parente, 2015).Despite the relevance of the distribution and richness

of caprellid amphipods from the Mexican Pacific (MP)in particular Central Mexican Pacific (CMP) is almostunstudied and more information is required to fill theinformation gap. However, there are a few studies relat-ing with the caprellid biota: Alarcón-Ortega et al. (2012)report for the first time a total of four species at six sta-tions during 2011-2012 (A. acanthosoma, C. equilibra,C. aff. penantis and Paracaprella sp.) and describe thefeeding habitats of caprellids in this area; Sánchez-Moyano et al. (2014) report three new records and fournew species (A. acanthosoma, C. equilibra, C. mendax,C. pitu, P. carballoi, P. isabelae, L. isabelensis) from 10stations during two expedition in 2002 and 2008; Alarcón-Ortega et al. (2015) report the presence of one non-indigenous species from four stations between 2013-2014;Galván-Villa and Ayón-Parente (2015) describe a new spe-cies, C. suprapiscis, associated with scorpionfish. At thispoint, the caprellid studies have only been focused at thesmall-scale level during short and sporadic surveys, gener-ating a little information about caprellid species andtheir distribution. Therefore the aim of the presentstudy was to update the information on the biodiver-sity of caprellids in the MP, performing a large latitu-dinal survey from 19°06′17″ N to 25°26′09″ N alongthe Central Mexican coast (843 km) and surroundingislands (20.68 km-2), including range extensions andecological data of four genera and eight caprellid spe-cies in order to broaden the records of the distribu-tion of these amphipods in the ETP. These findingsare important in documenting the extensions of theknown ranges of the species, but also increase know-ledge of the biodiversity of the entire region.

Material and methodsThe Central Mexican Pacific is considered as a transitionaloceanographic area, and is seasonally influenced by threeimportant current systems: the California Current carry-ing cold (~18 °C), low-salinity and high-nutrient water(Kessler, 2006; Pennington et al., 2006; Pantoja et al.,2012); the Gulf of California Current carrying warm wa-ters with high salinity; and the Mexican Coastal Currentcarrying warm (~30 °C), clear and low-nutrient water(Wyrtki, 1965; da Silva et al., 1994; Palacios-Hernández

et al., 2010; Pantoja et al., 2012). These oceanographicconditions drive an inter-annual variability of environ-mental conditions, which may allow the presence of differ-ent species within the area.The specimens reviewed were collected from 28 sta-

tions (St.) along Sinaloa (3), Nayarit (15), Jalisco (9) andColima (1) coasts (Table 1, Fig. 1) from September 2012to June 2016. Samples were obtained by SCUBA diving,by scraping diverse substrates (e.g. algae, hydroids,hydrocorals, sand, sponge, coral rubble, turf and artificialmaterial) from depths between 1 to 25 m into plasticbags. In the laboratory caprellids were separated using aCarl Zeiss Stemi DV4 stereoscopic microscope, exam-ined under an Olympus optical microscope and pre-served in 70% ethanol. The organisms were identifiedusing specialized literature (Mayer, 1903; McCain, 1968;Chess, 1989; Laubitz, 1970; Sánchez-Moyano et al., 2014;Galván-Villa and Ayón-Parente, 2015). The classificationsystem was based on that proposed by Myers and Lowry(2003) considering the Superfamily Caprelloidea, FamilyCaprellidae and Subfamily Caprellinae. Token specimenswere deposited in the Laboratorio de Ecología Marinadel Centro de Investigaciones Costeras, Centro Univer-sitario de la Costa, Universidad de Guadalajara, Méxicoand Regional Collection of Marine Invertebrates,(ICML-EMU) at the Instituto de Ciencias del Mar yLimnología, UNAM, in Mazatlán, México. Abbrevia-tions used for the collectors were: ATL; Adolfo Torto-lero Langarica; KR, Karla Ríos; LCAO, Lucy CoralAlarcón Ortega and RSC, Rosa Sotelo Casas.

ResultsA total of eight species of caprellids were documented.Systematic accountFamily Caprellidae Leach, 1814Subfamily Caprellinae Leach, 1814Genus Aciconula Mayer, 1903Aciconula acanthosoma Chess, 1989Aciconula acanthosoma Chess, 1989: 662–665, figs. 1–

2. Sánchez-Moyano et al., 2014: 82, fig. 2. Soler-Hurtadoand Guerra-García, 2016: 1–17, figs. 3–5.Type locality: Santa Catalina Island, CaliforniaDistribution: USA: Santa Catalina Island, California

(Chess, 1989). Mexico: Isla de los Pájaros and IslaVenado, Mazatlán, Sinaloa; Bahía Tiburón, Cerro Pelónand las Monas, Isla Isabel, Nayarit (Alarcón-Ortegaet al., 2012; Sánchez-Moyano et al., 2014). Ecuador:Machalilla National Park, Manabí (Soler-Hurtado andGuerra-García, 2016).Material examined: St. CB: 17 November 2015, on

hydroids, 5 m depth, coll. LCAO, 1♀, 1♂ and 2 juve-niles. St. RE: 17 November 2015, on hydroids, 7 mdepth, coll. LCAO, 6♀, 3♂ and 8 juveniles. St. CLI: 15September 2015, on green algae, at 7 m depth, coll.

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ATL, 1 juvenile. St. BV: 25 March 2013, on turf, at 9 m,coll. LCAO, 1♀, 1♂ and 2 juveniles. St. CM: 14 January2014, on turf, 6 m depth, coll. LCAO, 1♂ and 2 juve-niles. St. ZR: 07 May 2013, collected from algae Hali-meda discoidea, at 2 m coll. LCAO, 1♀. St. ZRS: 7November 2013, on coral rubble, at 6 m depth, coll.LCAO, 1♀; 14 January 2014, on sponge, at 7 m depth,coll. LCAO, 1♀. St. PP: 22 January 2013, on turf, at 11m depth, coll. LCAO, 1 ♀; 5 November 2013, on turf at6 m depth, coll. LCAO, 1♀, 1♀; 22 February 2014, onencrusting coral Porites panamensis with epiphytic hy-droids, at 6–12 m depth, coll. ATL, 2♀, 4♂, and 3 juve-niles, (ICML-EMU 11786). St. TA: 28 January 2013, onturf, at 13 m depth, 1♀, 1♂; 15 January 2014, on sponge,at 7 m depth, coll. LCAO, 1♀, 2♂ and 2 juveniles. St.PA: 25 January 2013, on turf, at 6 m depth, coll. LCAO,1♀, 2 juveniles; 15 January 2014, on turf, at 5.7 m depth,coll. LCAO, 1♀, 1♂. St. AR: 30 March 2014, on

hydroids, 24 m depth, coll. LCAO, 1♀ and 2 juvenile; 30March 2014, on algae Padina sp., 9 m depth, 8♀, 9♂and 14 juveniles. St. MI: 20 September 2012, on hy-droids, 6.40 m depth, coll. LCAO, 5♀, 5♂ and 5 juve-niles (Fig. 2).Diagnosis: Body length range 2.73–6.42 mm for

males, and 2.6–4.86 mm for females. Body dorsally cov-ered with acute spines. Head provided with four curvedspines. Basis of gnathopod 2 provided with acute lateralprojection. Gnathopod 2, palmar surface of propodus fit-ted with two distal triangular projections and mid exca-vation bordered proximally by strong spine, proximalsurface with row of fine blunt serrations and singlegrasping spine. Pereopods 3 and 4 reduced with two ar-ticles. Pereopod 5 lacking grasping structures (typical ofgenus) (Chess, 1989).Ecology: Aciconula acanthosoma was present on coral

rubble, hydroids, macroalgae, gorgonians and sponge

Table 1 Locality and geographic coordinates of the sampling sites in the Mexican Pacific

Key station Station (St.) Area State Coordinates

CL Cueva del Lobo El Farallón Sinaloa 25°26′07.70″ N; 109°22′39.95″ W

RE Los Relices El Farallón 25°26′09.51″ N; 109°22′29.88″ W

MM Muelle Mazatlán Mazatlán 23°10′51.76″ N; 106°25′14.52″ W

CLI Cleofas I Islas Marías Nayarit 21°18′1.78″ N; 106°13′36.39″ W

CLII Cleofas II Islas Marías 21°18′1.93″ N; 106°13′37.16″ W

JG Japanese garden Islas Marías 21°17′54.1″ N; 106°13′27.4″ W

PO Pocitas Isla Isabel 21°50′ 32.27″ N; 105°53′02.95″ W

MS Muelle San Blas San Blas 21°32′38.72″ N; 105°17′32.70″ W

CO Corbeteña Norte Corbeteña 20°44′54.7″ N; 105°51′26.1″ W

CM Cueva del Muerto Islas Marietas 20°41′50.6″ N; 105° 34′58.1″ W

ZRS Zona de Restauración Sur Islas Marietas 20° 41′54.1″ N; 105° 34′58.1″ W

ZR Zona de Restauración Islas Marietas 20° 41′ 57.0″ N; 105° 34′55.6″ W

TA Túnel Amarradero Islas Marietas 20° 41′58.1″ N; 105° 33′57.1″ W

PP Plataforma Pavonas Islas Marietas 20° 42′ 50.2″ N; 105° 33′54.0″ W

PA Playa del Amor Islas Marietas 20° 42′ 14.1″ N; 105° 33′50.1″ W

PM Punta de Mita Punta de Mita 20°46′12.33″ N; 105°32′28.60″ W

BV Bajo de las Viudas La Cruz de Huanacaxtle 20°43′58.38″ N; 105°23′32.64″ W

NV Nuevo Vallarta Nuevo Vallarta 20°41′31.83″ N; 105°17′36.07″ W

AR Los Arcos Puerto Vallarta Jalisco 20°32′39.10″ N; 105°17′33.71″ W

MI Mismaloya Puerto Vallarta 20°31′56.04″ N; 105°17′37.68″ W

COL Colomitos Puerto Vallarta 20°30′44.37″ N; 105°19′33.61″W

CH Chimo Cabo Corrientes 20°26′15.28″ N; 105°39′15.28″ W

AS Arroyo Seco La Huerta 19°18′35.92″ N; 104°57′19.41″ W

CU Cuastecomatitos Melaque 19°13′12.90″ N; 104°43′28.02″ W

LAB Laboratorio 1 Melaque 19°13′52.50″ N; 104°45′21.34″ W

CUA Cuastecomates Melaque 19°13′45.33″ N; 104°43′59.18″ W

ME Melaque Melaque 19°13′04.61″ N;104°42′43.92″W

BO La Boquita Manzanillo Colima 19°06′17.56″ N; 104°23′53.58″ W

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being more abundant in turf, whilst Sánchez-Moyanoet al. (2014) reported specimens were more abundant insessile organisms (hydroids, gorgonians and bryozoans).The body is generally brown and covered with detritusmainly pereonite 5, and animals were observed feedingon this detritus with their first gnathopods. The princi-pal dietary component of A. acanthosoma from thestudy area is mainly detritus, crustaceans and hydroids

(Alarcón-Ortega et al., 2012). A. acanthosoma also is adietary component of many fish species from the fam-ilies Cottidae, Embiotocidae, Pomacentridae, Labridae,Labrisomidae, and Gobiidae (Chess, 1989). The species’abundance underwent seasonal variations, with highernumbers observed during the winter season, a similarpattern as reported by Chess (1989) and Soler-Hurtadoand Guerra-García (2016).

Fig. 1 Map of the study area with sampling localities (black circles) where caprellid species were collected. For localities see Table 1

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Caprella mendax Mayer, 1903Caprella mendax Mayer, 1903, 114, pl. 5, fig. 9, 10, 11,

pl. 8, 22. Laubitz, 1970: 59, fig. 18; Sánchez-Moyano etal., 2014: 89–93, figs. 6–8.Examined material: St. CO: 13 October 2013, on gor-

gonians Leptogorgia rigida, 8 m depth, coll. LCAO, 13♀,9♂, and 6 juveniles. St. PM: October 2013, on algaeCaulerpa sp., 2 m depth, coll. LCAO, 1♂. St. PP: 19March 2013, on hydroids Lytocarpus nuttingui, at 5 mdepth, coll. LCAO, 7♀, 14♂ and 7 juveniles (IMCL-EMU 11787 B). St. BV: 06 February 2014, on L. nuttin-gui, at 9 m depth, coll. LCAO, 12♀, 15♂ and 6 juveniles(ICML-EMU 11787 A). St. AR: 30 March 2014, on hy-droids, 24 m depth, coll. LCAO, 6♀, 10♂ and 5 juve-niles; 20 September 2012, on hydroids, 6 m depth, coll.LCAO, 4♀, 4♂ and 3 juveniles. St. MI: 20 September2012, on hydroids, 6 m depth, coll. LCAO, 4♀, 4♂ and 3juveniles. St. COL: 09 June 2014, on hydroids, 11 mdepth, coll. ATL, 2♀, 2♂. St. CH: 16 August 2014, onhydroids, 14 m depth, coll. LCAO, 11♀, 7♂ and 19

juveniles. St. AS: 28 April 2015, on hydroids and L.rigida, 6 m depth, coll. ATL, 14♀, 6♂ and 37 juveniles. St.BO: 10 December 2013, on hydroids, 2 m depth, coll.LCAO, 2♀, 2♂ and 2 juveniles (Fig. 3).Type locality: California (the type locality was not

specified, but the species was collected in Pacific Grove,Santa Barbara and San Diego).Distribution: Canada: Vancouver Island and Strait of

Hécate, British Columbia; San Juan Island, Washington(Laubitz, 1970; Caine, 1977), Humboldt Bay (Martin,1977). USA: Dillon Beach, Moss Beach and Pacific Grove-Monterrey Bay, California (Dougherty and Steinberg,1953); Santa Barbara, San Diego, California (Laubitz, 1970).Mexico: Isla de los Pájaros, Isla Venado and Estero deUrías in Mazatlán, Sinaloa (Sánchez-Moyano et al., 2014).Diagnosis: Body length range 5.40–18.82 mm for

males, 2.72–11.62 mm for females. Head without projec-tions, body smooth with a small projection at the baseof the second gnathopods. Antenna 1 longer than thepereonite 1, 2 and 3 combined with 16 articles in

Fig. 2 Map of Aciconula acanthosoma distribution records along the Mexican Pacific coast. Localities: CL, Cueva del Lobo; RE, Los Relices; IP,Isla de los Pájaros; IV, Isla Venados; II, Isla Isabel; CP, Cerro Pelón; LM, Las Monas; BT, Bahía Tiburón; CLI, Cleofas I; BB, Bahía de Banderas; MA,Islas Marietas; CM, Cueva del Muerto; ZRS, Zona de Restauración Sur; ZR, Zona de Restauración, TA, Túnel Amarradero; PP, Plataforma Pavonas;PA, Playa del Amor; AR, Los Arcos; MI, Mismaloya. Filled star = type locality; gray circles = previous records from the Mexican Pacific; filledcircle = new record

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flagellum. Antenna 2 with abundant swimming setae.Ventral spine between the bases of Gnathopod 2 absent.Gnathopod 2, propodus with a proximal grasping spinewith a small accessory spine and triangular projection dis-tally. Basis of gnathopod 2 with an anterior denticulatecarina. Gills present on pereonite 3 and 4, elliptical. Pereo-pods 5, 6 and 7 increasing in length, with propodus withproximal grasping spines and concave palm (Laubitz,1970; Sánchez-Moyano et al., 2014).Ecology: Caprella mendax has been collected from

many substrates such as kelp forest, sand, boulders andhydroids from the intertidal zone to 80 m deep (Caine,1977; Martin, 1977; Hammer and Zimmerman, 1979). C.mendax was the most abundant species collected in thestudy area, presenting high densities (7,297 ind.m-2) onthe hydroid L. nuttingi in the cold season, moreover, thisspecies has been observed on seaweeds with epiphytic hy-droids and on gorgonians (Sánchez-Moyano et al., 2014).Caprella pitu Sánchez-Moyano et al., 2014Caprella pitu Sánchez-Moyano et al., 2014: 17–26,

figs. 9–14.Material examined: St. PO: 16 August 2013, on gor-

gonian L. rigida, 2 m depth, coll. LCAO, 2♀ and 18juveniles. St. JP: 26 April 2016, on L. rigida, 24 m depth,coll. LCAO, 1♂. St. CLII: 02 June 2016, on Leptogorgiasp., at 9 m depth, coll. ATL, 4♀. St. CO: 13 October

2013, on gorgonians L. rigida, 8 m depth, coll. LCAO,5♀, 6 juveniles. St. CM: 07 November 2013, on L.rigida, at 4.87 m depth, coll. LCAO, 2♀, 1♂ and 8 juve-niles. St. ZR: 07 November 2013, on L. rigida, at 2 mdepth, coll. LCAO, 4♀, 2♂. St. ZRS: 7 November 2013,on L. rigida, at 5 m depth, coll. LCAO, 1♀ and 2 juve-niles. St. PP: 22 January 2013, on L. rigida at 9 m, coll.LCAO, 1♀. St. TA: 08 May 2013, on L. rigida at 6 mdepth, coll. LCAO, 10♀, 6♂. St. PA: 25 January 2013, onL. rigida, at 7 m depth, coll. LCAO, 1♀. St. BV: 28,May2013, on gorgonian L. cuspidata, at 7 m depth, coll.LCAO, 11♀, 11♂ and 9 juveniles (ICML-EMU 11788A); 12 November 2013, on L. rigida, at 5.5 m depth, coll.LCAO, 3♀, 2♂ and 3 juveniles. St. AR: 30 March 2014,on L. rigida, 24 m depth, coll. LCAO, 12♀, 4♂ and 46juveniles. St. MI: 30 March 2014, on gorgonians L.rigida, 2 m depth, coll. LCAO, 12♀, 2♂ and 45 juveniles(ICML-EMU 11788B). St. CH: 16 August 2014, on L.rigida, 14 m depth, coll. ATL, 2♀ and 13 juveniles. St.AS: 28 April 2015, on L. rigida, 6 m depth, coll. ATL,23♀, 7♂ and 126 juveniles. St. CUA: 11 December 2013,on Leptogorgia sp., 3 m depth, coll. LCAO, 10♀, 2♂ and 10juveniles. St. LAB: 12 December 2013, on L. cuspidata, 3m depth, coll. LCAO, 27 ♀, 22♂ and 19 juveniles (Fig. 4).Type locality: Isla de los Pájaros, Mazatlán, Mexico

(Fig. 4).

Fig. 3 Map of Caprella mendax distribution records along the Mexican Pacific coast. Localities: MZ, Mazatlán; IP, Isla de los Pajáros; IV, Isla Venado;EU, Estero Urías; CO, Corbeteña; PM, Punta de Mita; PP, Plataforma Pavonas; BV, Bajo Viudas; AR, Los Arcos; MI, Mismaloya; CH, Chimo; AS, ArroyoSeco; BO, La Boquita. Gray star = Syntype; gray circles = previous records from the Mexican Pacific; filled circle = new record

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Distribution: Mexico: Isla de los Pájaros and IslaVenado, Mazatlán, Sinaloa; Las Monas in Isla Isabel andIslas Marietas, Nayarit; Los Arcos, Jalisco (Sánchez-Moyano et al., 2014).

Diagnosis: Body length range 3.07–5.52 mm for malesand 2.03–3.978 mm for females. Head provided with ashort, triangular projection. Body stout and wide withtiny tubercles; in dorsal view, body wide, with lateral and

Fig. 4 Map of Caprella pitu distribution records along the Mexican Pacific coast. Localities: IV, Isla Venado; II, Isla Isabel; CP, Cerro Pelón; LM, LasMonas; PO, Pocitas; MA, Islas Marias; BB, Bahía de Banderas; CO, Corbeteña; MA, Islas Marietas; CM, Cueva del Muerto; ZRS, Zona de RestauraciónSur; ZR, Zona de Restauración; TA, Túnel Amarradero; PP, Plataforma Pavonas; PA, Playa del Amor; BV, Bajo Viudas; AR, Los Arcos; MI, Mismaloya;CH, Chimo; AS, Arroyo Seco; CU, Cuastecomatitos; LAB, Laboratorio 1. Filled star = type locality; gray circles = previous records from the MexicanPacific; filled circle = new record

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flat expansion mainly in pereonites 3 and 4. Peduncle ofantenna 1 scarcely setose. Gnathopod 2 basis short withan anterior carina; palm of propodus with an acute pro-jection medially and a rounded distal one. Pereiopods 3and 4 absent. Gills rounded. Pereiopods 5–7 robust andincreasing in length; carpus elongate and palm of propo-dus without grasping spines; dactylus short and robust(Sánchez-Moyano et al., 2014).Ecology: Caprella pitu has been found on different

species of gorgonians (Leptogorgia sp., L. rigida, L. per-uviana, L. alba, Pacifigorgia sp. and P. cf. agassizzi), andwas abundant in L. rigida between 2–25 m depth incoral reef areas (Sánchez-Moyano et al., 2014, presentstudy). Moreover, C. pitu, shared its habitat with numer-ous brittle stars [Ophiactis simplex, Ophiothela mir-abilis, Ophiothrix (Ophiothrix) spiculata, O. (Ophiothrix)rudis], mainly in BV. This species shows body pigmenta-tion related to the coloration of the substrate they are shel-tering in (clear with pink spots, purple or dark brown withyellow spots), possibly to avoid detection by predators.Caprella suprapiscis Galván-Villa and Ayón-Parente,

2015Caprella suprapiscis Galván-Villa and Ayón-Parente,

2015: 572–576, figs. 2–6.Examined Material: St. BV: 25 March 2013, collected

from gorgonian Leptogorgia alba, at 7 m depth, 4♀, 6♂ and3 juveniles. 06 January 2014, from L. alba, at 8 m depth, 8♀,9♂ and 10 juveniles, (ICML-EMU 11789) (Fig. 5).

Type locality: Isla Cocinas, Bahía Chamela, Jalisco,Mexico (Fig. 5).Distribution: Mexico: Isla Cocinas, Isla Pajarera, Isla

Colorada, and San Agustín in Bahía de Chamela, Jalisco(Galván-Villa and Ayón-Parente, 2015).Diagnosis: Body length between 4.04–9.95 mm for

males, 4.08–6.65 mm for females. Body slender andsmooth except for the dorsal cephalic projection. An-tenna 1 about half of the body length, peduncle scarcelysetose. Propodus of gnathopod 2 elongate, length about3 times width, dorsal surface slightly convex, dorsal andventral margins finely setose, with one proximal projec-tion provided with a robust seta 2/5 from proximal endof ventral margin palm; another projection in themiddle, followed by “U” notch distally; dactylus fal-cate, setose on dorsal and lateral margins. Pereopods3 and 4 absent, 5–7 increasing in length, scarcely setose(Galván-Villa and Ayón-Parente, 2015).Ecology: Caprella suprapiscis has been reported living

on the body of the fish Scorpaena mystes, associatedwith coral and rocky reefs between 5–7 m depth (Gal-ván-Villa and Ayón-Parente, 2015). In the study area C.suprapiscis was found only on the octocoral Leptogorgiaalba, sharing habitat with numerous brittle stars such asO. (Ophiothrix) spiculata, O. simplex, O. (Ophiothrix)rudis and O. mirabilis and also others caprellids (C.mendax, A. acanthosoma and P. isabelae), isopods andgastropods at 4.5–11 m depth. The body color differs

Fig. 5 Map of Caprella suprapiscis distribution records along the Mexican Pacific coast, and previous records in the area. PAJ, La Pajarera;COL, Colorado; SA, San Agustín; BV, Bajo de las Viudas. Filled star = type locality; gray circles = previous records from the Mexican Pacific;filled circle = new record

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according to the substrate (Galván-Villa and Ayón-Parente,2015); in the area, C. suprapiscis body pigmentation wasclear with pink spots.Genus Liropus Mayer, 1890Liropus isabelensis Sánchez-Moyano et al., 2014Sánchez-Moyano et al., 2014: 26–32, figs. 15–18.Material Examined: CM: 14 January 2014, on turf, at

7 m depth, coll. LCAO, 3♀, 3♂, (ICML-EMU 11790).ZR: 07 May 2013, on coral rubble, at 3.90 m depth, coll.LCAO, 3♀, 5♂; 03 September 2013, on algae Halimedadiscoidea at 1.8, depth, coll. LCAO, 2♀, 5♂. ZRS: 10 July2013, on coral rubble at 4.6 m depth, coll. LCAO, 5♀, 3♂,6 juveniles. PP: 08 May 2013, on coral rubble at 9 mdepth, coll. LCAO, 1♀, 2♂. TA: 08 May 2013, on coralrubble, at 12 m depth, coll. LCAO, 4♀, 4♂. PA: 19 March2013, on turf, at 3 m depth, coll. LCAO, 1♀, 5♂ and 2juveniles (Fig. 6).Type locality: Cerro Pelón, Isla Isabel, Nayarit, Mexico

(Fig. 6).Distribution: Mexico: Isla de los Pajáros, Mazatlán,

Sinaloa; Bahía Tiburón, Isla Isabel, Nayarit.Diagnosis: Body length range 1.94–2.27 mm for

males, and 1.48–1.98 mm for females. Head rounded

without projections; eyes present. Body dorsally smooth.Anterolateral acute and downward-directed projections onpereonite 2 and mediolateral projections on pereonite 3 inmales. Flagellum of antenna 1 five-articulate. Gnathopod 2basis slightly longer than pereonite 2; ischium and propoduselongate. Pereopods 3, 4 and 5 one-articulate. Abdomenwithout appendages in males (Sánchez-Moyano et al., 2014).Ecology: Liropus isabelensis has been found on hy-

droids, gorgonians, bryozoans and seaweed with epiphytichydroids (Sánchez-Moyano et al., 2014). This species wasabundant mainly on coral rubble Pocillopora spp. and cal-careous macroalgae H. discoidea but was also collected inturf and sponge, mainly associated with shallow water incoral reef ecosystems.Genus Paracaprella Mayer, 1890Paracaprella carballoi Sánchez-Moyano et al., 2014Sánchez-Moyano et al., 2014: 32–39, figs. 19–22.Material examined: St. PM: 06 July 2015, on algae

Padina sp. with epiphyte hydroids, 3 m depth, coll.LCAO, 4♀, 5♂ and 3 juveniles, (ICML-EMU 11791). St.ZRS: 7 May 2013, on algae H. discoidea, at 3.9 m depth,coll. LCAO, 1♀, 3♂. St. ZR: 07 May 2013, on algae H.discoidea, 4.9 m depth, 1♀, 2♂ (Fig. 7).

Fig. 6 Map of Liropus isabelensis distribution records along the Mexican Pacific coast, and the previous records in the area. IP, Isla de los Pájaros; II,Isla Isabel; BT, Bahía Tiburón; MA, Islas Marietas; BT, Bahía Tiburón; CM, Cueva del Muerto; ZRS, Zona de Restauración Sur; ZR, Zona de Restauración; TA,Túnel Amarradero; PP, Plataforma Pavonas; PA, Playa del Amor. Filled star = type locality; gray circles = previous records from the Mexican Pacific; filledcircle = new record

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Type locality: Isla de los Pájaros, Mazatlán, Mexico(Fig. 7).Distribution: Only known from type locality.Diagnosis: Body length range 2.53–4.31 mm for

males, and 2.24–3.19 mm for females. Head rounded.Body dorsally smooth, except pereonite 2 with arounded and narrow anterolateral projection (only inmales). Flagellum of antenna 1 nine-articulate; pedunclescarcely setose. Antenna 2 a little shorter than the ped-uncle of antenna 1, swimming setae absent. Basis ofgnathopod 2 with two distal short processes on lateralmargin. Propodus of gnathopod 2 palm with rectangularprojection proximally, carrying two proximal graspingspines and a distal robust tooth. Pereopods 3 and 4two-articulate. Pereopods 5–7 without grasping spines.Abdomen with a pair of setose uni-articulate append-ages (Sánchez-Moyano et al., 2014).Ecology: A few specimens of P. carballoi were col-

lected on algae Padina sp. and H. discoidea associatedwith coral reef ecosystems in two stations (ZR and ZRS)of this study. Moreover, the species has been found onoctocorals Leptogorgia rigida and on seaweed Zoonariacf. farlowii with small hydroids (Sánchez-Moyanoet al., 2014).Paracaprella isabelae Sánchez-Moyano et al., 2014Sánchez-Moyano et al., 2014: 39–48, figs. 23–26.

Examined material: St. CLII: 02 June 2016, on hy-droid, at 9 m depth, coll. ATL, 1♂. St. CM: 25 January2013, on hydroids, 4 m depth, coll. LCAO, 1♀, 1♂; 14January 2014, on algae H. discoidea, 4 m depth, coll.LCAO, 1♀, 1♂. St. ZR: 14 March 2013, on H. discoidea,at 2.13 m depth, coll. LCAO, 1♂. St. ZRS: 14 March2013, on hydroid, at 4.5 m depth, coll. LCAO, 1♂. St.PP: 15 January 2014, on hydroids L. nuttingi, at 8 mdepth, coll. LCAO, 1♀, 2♂. St. TA: 15 January 2014, onsponge Aplysina gerarodegreeni, at 5 m depth, coll. LCAO,2 ♂. St. PA: 19 March 2013, on turf, at 8 m depth, coll.LCAO, 1♀, 2♂. St. BV: 28 May 2013, on sponge, at 7 mdepth, coll. LCAO, 6♀, 6♂, (ICML-EMU 11792). St. CH:16 August 2014, on hydroids, 14 m depth, coll. LCAO, 5♀,2♂ and 7 juveniles. St. AS: 28 April 2015, on hydroids andL. rigida, 6 m depth, coll. ATL, 3♀, 1♂ and 1 juvenile. St.CU: 11 December 2013, on hydroids, 3 m depth, coll.LCAO, 1♂. St. LAB: 10 December 2013, on hydroids, 2 mdepth, coll. LCAO, 1♂. St. BO10 December 2013, on hy-droids, 2 m depth, coll. LCAO, 3♀, 4♂ (Fig. 8).Type locality: Las Monas, Isla Isabel, Nayarit, Mexico

(Fig. 8).Distribution: Mexico: Cerro Pelón and Bahía Tiburón,

Isla Isabel, Nayarit.Diagnosis: Body length range 3.08–7.86 mm for males,

and 2.31–5.15 mm for females. Head rounded and dorsally

Fig. 7 Map of Paracaprella carballoi distribution records along the Mexican Pacific coast. Localities: PM, Punta de Mita; IM, Islas Marietas; ZRS, Zonade Restauración Sur; ZR, Zona de Restauración. Filled star = type locality; gray circles = previous records from the Mexican Pacific; filledcircle = new record

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humped. Large bifid sharp-pointed anterolateral projectionon anterior margin of pereonite 2 in males, simple androunded in females. Pereonite 3 with a rounded anterolat-eral projection in males. Short ventral forward-directedprojection between the gnathopods 2. Propodus palm ofgnathopod 2 with rectangular projection proximally, bear-ing one proximal grasping spine and a distal long robusttooth in males. Pereopods 3 and 4 two-articulate. Pereo-pods 5–7 without grasping spines. Abdomen with a pairof setose uni-aticulate appendages in male (Sánchez-Moyano et al., 2014).Ecology: Paracaprella isabelae does not present specific

substrate preferences because the species was collectedfrom different substrates such as hydroids, bryozoans

(Bugula sp.), sponge, fishing net, turf, algae (H. discoideaand Padina sp.), gorgonians (Leptogorgia spp. and M.austera) and coral rubble (Pocillopora spp.), distributedon a depth range of 2–25 m depth, a similar pattern tothat reported by Sánchez-Moyano et al. (2014). Thefeeding behavior of this genus is mainly scraping andpredation, eating detritus and crustaceans, graspinginorganic materials from the substrata (Caine, 1974;Alarcón-Ortega et al., 2012).Paracaprella pusilla Mayer, 1890Paracaprella pusilla Mayer, 1903: 41, pl. 1, figs. 28–30;

pl. 2 36, 37; figs. pl. 3, figs. 45–47; pl. 5; figs. 48,49; pl. 6,fig. 10; 1903: 67; pl. 7, fig. 52. Edmonson and Mansfield1948: 208–2010, fig. 4. Steinberg and Dougherty, 1957:

Fig. 8 Map of Paracaprella isabelae distribution records along the Mexican Pacific coast. Localities: II, Isla Isabel; CP, Cerro Pelón; BT, Bahía Tiburón;MA; Islas Marietas; CM, Cueva del Muerto; ZRS, Zona de Restauración Sur; ZR, Zona de Restauración; TA, Túnel Amarradero; PP, Plataforma Pavonas; PA,Playa del Amor; CSJ, Costa Sur de Jalisco; AS, Arroyo Seco; CU, Cuastecomates; LAB, Laboratorio 1; BO, La Boquita. Filled star = type locality;gray circles = previous records from the Mexican Pacific; filled circle = new record

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283–284, figs. 16, 19, 24, 30. McCain, 1968: 82–86, figs.41–42. Serejo, 1998: 381, fig. 7j, l. Ortiz et al. 2002: fig.37. Foster 2004: 165, fig. 5a–f. Díaz et al., 2005: 3, 6–7,fig. 13. Guerra-García et al. 2006: 175–178, figs. 17–19.Krapp-Schickel et al. 2006: 175–178, figs 17–19.Escobar-Briones et al. 2007: 30, 47, 49, fig. 16. Bhave andDeshmukh, 2009: 112, figs. 1–2. Guerra-García et al.2010: 304–305, fig. 8. Ros et al. 2013: 71, fig. 2. Alarcón-Ortega et al., 2015: 213, fig. 2.Caprella nigra Reid 1951: 283–284, 289, fig. 58.Examined material: St. MM: 04 December 2013, on

red algae, >1 m depth, coll ATL, 1♀, 1♂. St. MS: 16 Oc-tober 2013, on hydroid, at >1 m depth, coll. ATL, 4♀,5♂ (ICML-EMU 11039 A); 21 November 2013, onsponge, at >1 m depth, coll. LCAO, 4♀, 4♂ (ICML-EMU 11039 B). St. NV: 03 June 2013, on hydroid, at >1m, coll. LCAO, 1♀, 1♂ (ICML-EMU 11040 B); 21 July2013, on bryozoans, >1 m depth, coll. LCAO, 1♀, 1♂.St. ME: 26 March 2014, associated with oyster farm on

macroalge Enteromorpha sp., >1 m depth coll. KR, 2♀,3♂ (ICML-EMU 11040 A) (Fig. 9).Type locality: Rio de Janeiro, Brazil (Fig. 9).Distribution: Mexico: Sinaloa, Nayarit and Jalisco

(Alarcón-Ortega et al., 2015). Panama: Panama Canal(Ros et al., 2014). See Ros and Guerra-García (2012);Ros et al. (2014).Diagnosis: Head without projections; smooth body

with a large anterolateral projection on pereonite 2;presence of a small dorsal tubercle on pereonite 2. Ped-uncle of antenna 1 setose and usually longer than an-tenna 2. Antenna 2 without swimming setae but denselysetose. Propodus of gnathopod 1 with one proximalgrasping spine; basis of gnathopod 2 with a proximalknob and propodus with trapezoidal projection on theinner margin.Ecology: Paracaprella pusilla has been collected from

mangrove roots, seagrasses, hydroids, ascidians, bryo-zoans, sponge, gravel bottoms, ropes, mussels and oysters

Fig. 9 Map of Paracaprella pusilla distribution records along the Mexican Pacific coast. Localities: MM, Marina Mazatlan; SB, San Blas; NV, NuevoVallarta; ME, Melaque. Filled star = type locality; gray circles = previous records from the Mexican Pacific; filled circle = new record

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mainly associated with fouling communities such asdocks, floating pontoon, ballast water (McCain, 1968;Caine, 1978; Díaz et al., 2005; Bhave and Deshmukh, 2009;Ros et al., 2014; Alarcón-Ortega et al., 2015). The feedingstrategy of P. pusilla is a carnivorous one, and its diet con-sists mainly of crustaceans, detritus and hydroids; more-over, its feeding strategies may change between naturaland artificial habitats (Ros et al., 2014).

ConclusionThe present study includes new distribution records ofeight caprellid species, mainly associated with coral reefecosystems in different localities along 840 km of theMexican Pacific coastal region (Figs. 2, 3, 4, 5, 6, 7, 8and 9; Table 2). These reports increase the species rich-ness in the region: three species were added for Nayarit(C. suprapiscis, C. mendax, and P. carballoi), three fromJalisco (P. isabelae, A. acanthosoma, and C. mendax)and one from Colima (P. isabelae).At the species level, we highlight the invasive species

Paracaprella pusilla which presents a notably isjunctdistribution in the northern tropical east Pacific (Fig. 9;Table 2). The vector of introduction of this species inthe area is still unknown (Ros et al., 2014). Documentingthe extent of invasive non-native species is importantbecause they may constitute threats to the local nativefauna. We also highlight the substantial southward ex-tension of C. mendax, which has been previously re-ported in Mexico only from Mazatlán, Sinaloa. Otherimportant records relate to A. acanthosoma, whichseems to have wide distribution throughout the South-ern California to the Tropical East Pacific (Chess 1987;Alarcón-Ortega et al., 2012; Sánchez-Moyano et al.,2014; Soler-Hurtado and Guerra-García, 2016). C.

suprapiscis (Isla Cocinas, Jalisco) and P. carballoi (Islade los Pájaros, Sinaloa) were previously only recordedfrom their type localities associated with coral communi-ties; the records presented here expand their known dis-tributions northward and southward, respectively(Figs. 5 and 7; Table 2). It is possible that these speciespresent strong affinities to coral communities. The re-sults of this study highlight the importance of reef eco-systems for caprellid diversity, potentially due to theprovision of numerous microhabitats (including hy-droids, algae, octocorals and coral rubble) which maypromote species diversity (Guerra-García, 2006; Krameret al., 2014). At this point, the caprellid biota is com-monly distributed along the Mexican coast and probablythe distributions of the species recorded may extendbeyond this area. Therefore, an intensive sampling ef-fort in a wide variety of substrates and habitats alongthe entire ETP is recommended in order to determinespecies richness, diversity and potential caprellid com-munity distribution zones over the Pacific Ocean.

AbbreviationsAR: Los Arcos; AS: Arroyo Seco; ATL: Adolfo Tortolero Langarica; BO: La Boquita;BV: Bajo de las Viudas; CH: Chimo; CL: Cueva del Lobo; CLI: Cleofas I;CLII: Cleofas II; CM: Cueva del Muerto; CMP: Central Mexican Pacific;CO: Corbeteña Norte; COL: Colomitos; CU: Cuastecomatitos;CUA: Cuastecomates; ETP: Eastern Tropical Pacific; JG: Japanesegarden;Km: Kilometers; KR: Karla Ríos; LAB: Laboratorio 1; LCAO: Lucy CoralAlarcón Ortega; m: meters; ME: Melaque; MI: Mismaloya; mm: millimeters;MM: Muelle Mazatlán; MP: Mexican Pacific; MS: Muelle San Blas; N: North;NV: Nuevo Vallarta; PA: Playa del Amor; PM: Punta de Mita; PO: Pocitas;PP: Plataforma Pavonas; RE: Los Relices; RSC: Rosa Sotelo Casas; S: South;TA: Túnel Amarradero; ZR: Zona de Restauración; ZRS: Zona deRestauración Sur

AcknowledgementsLCAO work was supported by the doctoral fellowship CONACYT N°. 323997.The authors thank the authorities from the Islas Marietas National Park andIsla Isabel (CONANP) for assistance and use of facilities during the samplingperiods. Also we would like to give thanks to Dr. Alan Zavala Norzagarayfrom the Instituto Politécnico Nacional-CIIDIR Sinaloa, Mexico, and also toProtección y Restauración de Islas y Zonas Naturales (PROZONA A.C.).

FundingThe present work was supported by the Project P/PIFI-2010-14MSU0010Z-10to ALCM and the Project PROMEP 220265 to APRT.

Availability of data and materialsAll data associated with these publications are contained herein; thespecimens were deposited in the Laboratorio de Ecología Marina delCentro de Investigaciones Costeras, Centro Universitario de la Costa,Universidad de Guadalajara, Mexico and Regional Collection of MarineInvertebrates (ICML-EMU) at the Instituto de Ciencias del Mar yLimnología, UNAM, in Mazatlán, México.

Authors’ contributionsAll authors read and approved the final manuscript.

Competing interestsThe authors declare that they have no competing of interest.

Consent for publicationThe authors freely consent to the publication of this paper.

Table 2 Extension of known ranges (Km) of caprellid speciesfrom the Mexican Pacific

Species Range extension Distance (Km) Seefigure

Aciconulaacanthosoma

Isla de los Pájaros to ElFarallón

~384.02 Km N 2

Isla Isabel to Mismaloya ~158.16Km S

Caprella mendax Esteró Urías to La Boquita ~500.30 Km S 3

Caprella pitu Los Arcos to Laboratorio1

~156.56 Km S 4

Caprella suprapiscis Isla Cocinas to Bajo delas Viudas

~92.47 Km N 5

Liropus isabelensis Isla Isabel to Islas Marietas ~131.10 Km S 6

Paracaprella carballoi Isla de los Pájaros to IslasMarietas

~298.78 Km S 7

Paracaprella isabelae Isla Isabel to La Boquita ~341.80 Km S 8

Paracaprella pusilla The Panama Canal toMazatlán

~3272.77 Km N 9

N North, S South

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Ethics approval and consent to participateNot applicable.

Publisher’s NoteSpringer Nature remains neutral with regard to jurisdictional claims in publishedmaps and institutional affiliations.

Received: 31 December 2016 Accepted: 11 March 2017

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e ISSN 2448-8445

Scolopendra polymorpha Wood, 1861 es una de las 13 es-pecies de ciempiés escolopendromorfos (Scolopendridae) que habitan en México (Shelley, 2006; Cupul-Magaña, 2013). Se distribuye al oeste del río Missouri y en la re-gión suroeste de los Estados Unidos de América (Shelley, 2002), así como en los estados mexicanos de Baja Cali-fornia, Baja California Sur, Chihuahua, Coahuila, Ciudad de México, Durango, Guerrero, Hidalgo, Jalisco, Mi-choacán, Morelos, Nayarit (Islas Marías), Nuevo León, Oaxaca, Puebla, Querétaro, Sinaloa, Sonora, Tamaulipas

y Zacatecas (Pocock, 1895-1910; Shelley, 2002; Cupul-Magaña, 2013; Fig. 1). También, se ha introducido en las islas Hawái, posiblemente se encuentre en Belice (She-lley, 2006) y con un registro reciente en Iraq (Ahmed & Hussen, 2016).

Su talla máxima registrada es de 135 mm (Chamberlin, 1915); antenas con 21 a 31 segmentos, donde los primeros tres a 16 basales con escasas setas; coxoesternito forcipu-lar sin sutura transversal; terguito 1 con sutura transversal y dos suturas paramedianas; terguitos 8 a 12 con márge-

Flores-Guerrero, U. S., Huerta de la Barrea, I. E. y Cupul Maga-ña, F. G. (2018) Registro del ciempiés Scolopendra polymorpha Wood, 1861 (Chilopoda: Scolopendromorpha: Scolopendridae) en la Isla María Cleofas, Océano Pacifico de México. Acta Zooló-gica Mexicana (n.s.), 34(1): 118-121.

RESUMEN. Durante una visita a la Isla María Cleofas, en el archi-piélago de las Islas Marías, ubicado en la desembocadura del Golfo de California, México, se recolectaron tres especímenes del ciempiés tigre Scolopendra polymorpha Wood, 1861 (ejemplares de longitud: 73 mm, 91 mm y 125 mm). Hasta donde sabemos, estos ejemplares representan el primer registro confirmado de la especie para la Isla María Cleofas. Probablemente, el ciempiés tigre y la fauna de ciempiés en general de la Isla María Cleofas provienen de áreas continentales adyacentes.

Flores-Guerrero, U.S., Huerta de la Barrea, I. E., & Cupul Maga-ña, F. G. (2018) Record of centipede Scolopendra polymorpha Wood, 1861 (Chilopoda: Scolopendromorpha: Scolopendridae) in Maria Cleofas Island, Pacific Ocean, Mexico. Acta Zoológica Mexicana (n.s.), 34(1): 118-121.

ABSTRACT. During a visit to María Cleofas Island, in the Marías Islands archipelago, located in the mouth of the Gulf of California, Mexico, three specimens of the tiger centipede Scolopendra polymor-pha Wood, 1861 were collected (exemplars length: 73 mm, 91 mm, and 125 mm). To our knowledge, these specimens represent the first confirmed record of the species from María Cleofas Island. Probably, the tiger centipede, and centipede fauna in general from María Cleofas Island, comes from continental adjacent areas.

Nota Científica(Short Communication)

REGISTRO DEL CIEMPIÉS SCOLOPENDRA POLYMORPHA WOOD, 1861 (CHILOPODA: SCOLOPENDROMORPHA: SCOLOPENDRIDAE)

EN LA ISLA MARÍA CLEOFAS, OCÉANO PACÍFICO DE MÉXICO

RECORD OF CENTIPEDE SCOLOPENDRA POLYMORPHA WOOD, 1861 (CHILOPODA: SCOLOPENDROMORPHA: SCOLOPENDRIDAE)

IN MARIA CLEOFAS ISLAND, PACIFIC OCEAN, MEXICO

Ubaldo Sebastián FLORES-GUERRERO, Ismael Eduardo HUERTA DE LA BARRERA y Fabio Germán CUPUL-MAGAÑA*

Centro Universitario de la Costa, Universidad de Guadalajara. Av. Universidad 203, Delegación Ixtapa, C.P. 48280, Puerto Vallarta, Jalisco, México < [email protected] >, <[email protected]>,

<[email protected]>*Autor para correspondencia: <[email protected]>

Recibido: 31/10/2017; aceptado: 01/12/2017Editor responsable: Pedro Reyes Castillo

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nes laterales, poco frecuentes hasta los terguitos 16 a 17; terguito 21 con sutura mediodorsal; prefémures de las patas terminales con ocho a diez espinas ventrolaterales, ventromediales, mediales y siete a trece dorsomediales; procesos espinosos de los prefémures con cuatro espinas, aunque puede existir mucha variación, desde cero hasta doce espinas (Kraepelin, 1903; Chamberlin, 1912; Atte-ms, 1930; Shelley, 2002).

Estudios específicos en las islas de México sobre la presencia de especies de ciempiés escolopendromorfos, y de miriápodos en general, son escasos. El primer trabajo fue el de Pocock (1895-1910), quien cita a S. polymorpha en las Islas Marías, pero sin especificar en cuál de ellas se descubrió. Chamberlin (1923), recolectó siete especies de quilópodos, con S. polymorpha como la más abundante, y cuatro de diplópodos para 19 islas del Golfo de California. En algunas otras islas del mismo Golfo, Cupul-Magaña y Bueno-Villegas (2007) encontraron al ciempiés Rhysida

longipes en la Isabel; mientras que Cupul-Magaña (2010) registró a S. polymorpha en Partida Norte y San Lorenzo, así como a S. viridis en Ángel de la Guarda, San Marcos y Socorro. En las Marías, Cupul-Magaña (2015) documen-tó una especie de ciempiés en la María Madre y cuatro en la María Cleofas; en esta última, encontró dos especies de ciempiés del género Scolopendra: Scolopendra morsitans Linnaeus, 1758 y S. viridis Say, 1821.

En esta nota se registra por primera vez la presencia de S. polymorpha en la Isla María Cleofas, una de las cuatro islas que conforman la Reserva de la Biosfera del archipiélago de las Islas Marías en el Pacífico de Méxi-co y que territorialmente pertenece al estado de Nayarit (CONABIO 2007). En María Cleofas (coordenada me-dia 21º 18’ 53.45” N y 106º 14’ 59.86” O; superficie de 1,882.973493 ha; 132 km desde San Blas, Nayarit), la ve-getación representativa es el bosque tropical subcaducifo-lio (CONABIO, 2007).

Figura 1. A) Registros conocidos de Scolopendra polymorpha en México (puntos negros = registros previos; estrella negra = primer registro en la Isla María Cleofas). B) Vista dorsal de ejemplar preservado de 125 mm de S. polymorpha de la Isla María Cleofas. Marca de escala 1 cm.

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Flores-Guerrero et al: Registro de ciempiés en la Isla María Cleofas

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Los ejemplares se recolectaron a partir de búsquedas visuales diurnas y nocturnas entre el 22 y 25 de agosto de 2017. Su identificación se realizó con la consulta del trabajo de Shelley (2002) y su sexo no fue determinado. Posteriormente, fueron sacrificados y colocados en fras-cos con alcohol etílico al 70% para su depósito en la Co-lección Entomológica del Centro de Estudios en Zoología de la Universidad de Guadalajara (CZUG) en Zapopan, Jalisco. Para elaborar el mapa de localidades de registro de S. polymorpha en México, se utilizó el Sistema de In-formación Biótica© y la base de datos (no publicada) del Catálogo de Autoridades Taxonómicas (CAT) de Myria-poda en México.Material examinado: México, Golfo de California, Isla María Cleofas; 22.VIII.2017; colector I. Huerta; talla 91 mm; ancho del décimo terguito (adt) 6 mm; antena derecha con 24 segmentos e izquierda con 25, con los seis basales con escasas setas; terguitos 12 al 21 marginados; procesos coxopleurales de la coxopleura con siete espinas apicales y una lateral; prefémures de las patas terminales con 25 espi-nas, los procesos prefemorales apicales con dos espinas el derecho y tres el izquierdo. México, Golfo de California, Isla María Cleofas; 23.VIII.2017; colector I. Huerta; talla 73 mm; adt de 5 mm; antenas con 27 segmentos, con los cinco basales con escasas setas; terguitos 14 al 21 margi-nados; procesos coxopleurales de la coxopleura con siete espinas apicales y una lateral; prefémures de las patas ter-minales con 46 espinas el derecho y 38 espinas el izquier-do, los procesos prefemorales con tres espinas. México, Golfo de California, Isla María Cleofas; 25.VIII.2017; colector I. Huerta; talla 125 mm; adt de 11 mm; antena de-recha con 23 segmentos e izquierda con 21, con los cinco basales con escasas setas; terguitos 12 al 21 marginados; procesos coxopleurales del coxopleurón derecho con una espina apical e izquierdo con siete apicales y una lateral; prefémures de las patas terminales con 23 espinas el de-recho y 21 espinas el izquierdo, los procesos prefemora- les con cuatro espinas en el derecho y tres en el izquierdo.

En la mayoría de los estados mexicanos que bordean al Golfo de California (Fig. 1), se ha registrado a S. poly-morpha; por lo que es posible establecer que los indivi-duos que colonizan actualmente la isla tengan un origen continental. Lo anterior se apoya en el hecho de que, geo-lógicamente, el archipiélago es de origen continental y al separase durante la apertura de la boca del Golfo de California en el Plioceno, hace aproximadamente cinco millones de años (Carreño & Helenes, 2002), tal vez fa-voreció el aislamiento insular de los ciempiés. Evidencias sobre las áreas continentales adyacentes como fuente de

diversidad biológica de las islas del Golfo, en especial de artrópodos, se han observado para la fauna de hormigas y de coleópteros tenebriónidos (Boulton & Ward, 2002; Sánchez-Piñero & Aalbu, 2002). También, existe la posi-bilidad de que en el pasado un ciempiés se dispersara des-de el continente hacia la isla al viajar, por ejemplo, dentro de la grieta de un coco que se revuelca en una playa, y sobrevivir la travesía oceánica (Thornton, 2007).

En el archipiélago se han registrado especies endé-micas de plantas y artrópodos, así como subespecies de aves, mamíferos y reptiles (Martínez et al., 2010); por lo que cabría la posibilidad de encontrar esto mismo para S. polymorpha u otras especies de ciempiés dado su aisla-miento. Sin embargo, aunque se observó variabilidad en algunos caracteres morfológicos de los ejemplares de las Isla María Cleofas, como marginación de los terguitos, es-pinas del coxopleurón o de los prefémures del último par de patas; se requerirá de la revisión de un mayor número de especímenes insulares, su comparación con ejemplares continentales (tanto de la península como del continente) y estudios moleculares para llegar a alguna conclusión al respecto.

La recolecta de un gran ejemplar de 125 mm de lon-gitud, supera el registro previo conocido para las Islas Marías de 85 mm (Pocock, 1895-1910). Además, esta medición se aproxima a la talla máxima observada para S. polymorpha de 135 mm. Por otra parte, es probable que la especie colonizara la Isla María Cleofas porque en ella dispone de los recursos alimenticios y de condiciones am-bientales favorables (o esté aclimatada), como humedad, temperatura y vegetación de calidad (Voigtländer, 2011), para desarrollarse y sobrevivir. Asimismo, con el hallazgo del ciempiés tigre, se eleva a seis el número de especies conocidas de quilopodofauna para esta área insular.

AGRADECIMIENTOS. A la Comisión Nacional de Seguridad (CNS), Secretaria de Medio Ambiente y Recursos Naturales (SE-MARNAT), Secretaria de Marina (SEMAR), Complejo penitenciario federal Islas Marías y a la Asociación Civil Protección y Restauración de Islas y Zonas Naturales (PROZONA, AC.), por su apoyo para la realización de este trabajo. A la Comisión Nacional para el Conoci-miento y Uso de la Biodiversidad (CONABIO) por permitirnos el uso de la base de datos del catálogo CAT de Myriapoda en México. A los revisores anónimos por sus comentarios.

LITERATURA CITADA

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Nuevos registros de anfibios y reptiles en la Isla María Cleofas, Nayarit

Jose Rafael Nolasco Luna1, Marco A. López Luna2, Fabio G. Cupul Magaña1 & Armando H. Escobedo Galván*1

Resumen

Se documenta por primera vez la ocurren-cia de dos anfibios en la Isla María Cleofas (Smilisca baudinii y Eleutherodactylus pallidus); además, es la primera vez que se reporta Rhadinaea hesperia como parte de la herpetofauna insular de Nayarit. Con los

nuevos registros, la diversidad de la Isla María

Cleofas está compuesta por 11 especies de reptiles

y dos especies de anfibios; lo que representa el 46% de la herpetofauna reportada hasta la fecha para la

Reserva de la Biosfera Islas Marías.

Palabras clave: Distribución geográfica, diversidad, Islas Marías, Pacífico Central Mexicano.

Abstract

We reported the occurrence of two amphibians (Smilisca baudinii and Eleutherodactylus pallidus), and one snake (Rhadinaea hesperia), during diurnal and nocturnal surveys at María Cleofas Island. To our knowledge, this is the first time that these amphibians were recorded for the island; in addi-tion, the record of R. hesperia is a new record to

insular reptile diversity of the state of Nayarit.

Based on these records, the herpetofauna diversity

of María Cleofas Island are composite by 11 repti-les and two amphibians, which represent the 46% of amphibians and reptiles reported at Islas Marías Biosphere Reserve.

Key words: Geographic distribution, diver-sity, Marías Islands, Mexican Central Pacific.

1 Centro Universitario de la Costa, Universidad de Guadalajara, Av. Universidad 203, 48280 Puerto Vallarta, Jalisco, México.2 División Académica de Ciencias Biológicas, Universidad Juárez Autónoma de Tabasco, Carr. Villahermosa-Cárdenas km.0.5 s/n, Entrq.

Bosques de Saloya, 86039 Villahermosa, Tabasco, México.* Autor de correspondencia: [email protected]

Los ecosistemas insulares de Nayarit han sido de interés para naturalistas y explorado-res por más de un siglo. Desde mediados del siglo XIX hasta mediados del XX se realiza-ron diferentes expediciones al Pacífico norte para obtener ejemplares de anfibios y repti-les, además de otros vertebrados (Grayson 1871, Emerson 1958). Aun cuando el estado de Nayarit cuenta con nueve islas, son la Isla Isabel y las Islas Marías las más visitadas, porque presentan una gran biodiversidad a pesar de ser las más alejadas de la costa. En el caso particular de la fauna de las Islas Marías,

esta fue considerada como endémica, lo cual estimuló un gran interés por su estudio dentro de la evolución en islas (Zweifel 1960). El com-plejo insular Islas Marías está conformado por cuatro islas de diferentes tamaños: 1) La Isla María Madre es la mayor con un área total de 144 km², 2) la Isla María Magdalena cuenta con una extensión de 84 km², 3) la Isla María Cleofas con 25 km² y 4) el Islote San Juanito, la más pequeña, con 8 km² (Emerson 1958, Casas-Andreu 1992). Este archipiélago se localiza a 132 km de San Blas, Nayarit y a 176 km de Mazatlán, Sinaloa (CONANP 2007). El

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27 de noviembre del 2000 fue declarado, por decreto presidencial publicado en el Diario Oficial de la Federación (DOF), como Reserva de la Biosfera (CONANP 2007).

La diversidad de anfibios y reptiles en las Islas Marías ha sido reportada por Boulenger (1885, 1896), Stejneger (1899), Zweifel (1959a, 1959b, 1960), Duellman & Zweifel (1962) y McDiarmid et al. (1976). Casas-Andreu (1992) realizó un análisis biogeográfico de la herpe-tofauna en las islas adyacentes de Nayarit, en dicho trabajo mencionó que la diversidad her-petofaunística está relacionada con el tamaño de la isla y, además, que el archipiélago es el más diverso de Nayarit; sin embargo, algunas exploraciones en los últimos años han permi-tido aumentar el número de especies de su lista, la cual se compone de cuatro especies de anfibios y 24 de reptiles (Casas-Andreu 1992, De la Torre et al. 2010).

En el caso específico de la Isla María Cleofas, el último escrutinio taxonómico solo incluyó diez especies de reptiles (Casas-Andreu 1992), de las cuales seis correspondieron a serpientes (Boa sigma, Drymarchon melanurus, Imantodes

gemmistratus, Mastigodryas melanolomus,

Oxybelis aeneus y Tantilla bocourti) y cuatro a lagartos (Anolis nebulosus, Aspidoscelis com-

munis, Ctenosaura pectinata y Phyllodactylus tuberculosus). Hasta la fecha no se han regis-trado especies de anfibios en la isla, de aquí la importancia de la presente nota, además de contribuir al incremento del número de especies de reptiles encontrados en Isla María Cleofas. En el caso de la serpiente, es la pri-mera vez que se incluye como parte de la her-petofauna insular de Nayarit.

En los meses de mayo y agosto de 2017, se realizaron dos expediciones a la Isla María Cleofas, cada visita tuvo una duración de cinco días. La isla presenta una vegetación azonal que comprende dunas costeras con dominio de especies herbáceas perenes, bosque seco caducifolio y un pequeño parche aislado de manglar (Emerson 1958). Los recorridos se rea-lizaron ad libitum de las 09:00 a 17:00 horas en dos secciones de esta isla. Durante la segunda visita se realizó un recorrido nocturno de las 19:00 a 06:00 horas. Se capturaron anfibios

y reptiles de forma manual o con la ayuda de ganchos herpetológicos. La georreferencia, en la mayoría de los casos, fue en el punto de captura con un GPS marca Garmin®. Los organismos capturados, una vez identificados y fotografia-dos, fueron liberados en el mismo sitio de cap-tura. La manipulación de los anfibios se realizó con base en las recomendaciones de higiene pro-puestas por Phillott et al. (2010).

Durante los recorridos se observaron e identificaron algunas especies previamente reportadas en la isla: Drymarchon melanurus,

Mastigodryas melanolomus, Oxybelis aeneus, Anolis nebulosus, Aspidoscelis communis, Ctenosaura pectinata y Phyllodactylus tuber-

culosus. Además, se capturó un ejemplar de Smilisca baudinii, uno de Eleutherodactylus pallidus y dos de Rhadinaea hesperia; los cuales se describen a continuación y se comentan detalles sobre su distribución en islas y zonas aledañas. La identificación de los nuevos registros se realizó mediante las claves pro-porcionadas por Zweifel (1960) y Duellman (1958) para el caso de los anfibios y, para la serpiente, se utilizó la clave de Myers (1974).

Smilisca baudinii (Duméril y Bibron, 1841). México: Nayarit: Islas Tres Marías, Isla María Cleofas (21°18'57.5" N, 106°13'58.2" O; WGS 84); elev. < 15 m. El 22 de agosto de 2017 se observó y fotografió un ejemplar durante un recorrido nocturno sobre el cauce de un ria-chuelo seco en la cara sur de la isla. Este es el primer reporte de S. baudinii para la Isla María Cleofas (Fig. 1a). La especie había sido repor-tada solo en la Isla María Madre, la cual se encuentra a 37.25 km de María Cleofas (medi-ción en línea recta con Google maps). La foto-grafía de S. baudinii (Fig. 1a) se depositó en la Colección Nacional de Anfibios y Reptiles (CNAR) de la Universidad Nacional Autónoma de México (IBH-RF 457). Smilisca baudinii se encuentra catalogada en la Lista Roja de la Unión Internacional para la Conservación de la Naturaleza (IUCN) como de preocupación menor (Santos-Barrera et al. 2010) y, a nivel nacional, no se encuentra bajo algún nivel de protección de acuerdo con la Norma Oficial Mexicana 059-SEMARNAT-2010 (Chávez-Avila et al. 2015).

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Eleutherodactylus pallidus (Duellman, 1958). México: Nayarit: Islas Tres Marías, Isla María Cleofas (21°18'59.4" N, 106°13'48.7" O; WGS 84); elev. < 15 m. Se capturó y fotografió en el mismo transecto en el que fue observada S. baudinii, lo que representó el primer reporte para la Isla María Cleofas (Fig. 1b). La fotografía de E. palli-dus (Fig. 1b) se depositó en la Colección CNAR (IBH-RF 458). Eleutherodactylus pallidus fue descrita por Duellman (1958) como Syrrophus modestus pallidus, a partir de ejemplares colecta-dos en San Blas, Nayarit. Zweifel (1960) colectó ejemplares en las islas María Magdalena y María Madre, los cuales depositó en el Museo Americano de Historia Natural (AMNH). Es una especie endémica de México que se encuen-tra sujeta a protección especial dentro de la Norma Oficial Mexicana 059-SEMARNAT-2010 (Chávez-Avila et al. 2015).

Rhadinaea hesperia Bailey, 1940. México: Nayarit: Islas Tres Marías, Isla María Cleofas (21°18'58.8" N, 106°14'07.7" O; WGS 84); elev. < 30 m. El 22 de agosto de 2017 se colectó al primer individuo sobre hojarasca durante un recorrido a un costado del cauce de un riachuelo seco en la cara sur de la isla (Fig. 1c). Un segundo indi-viduo se capturó el 25 de agosto de 2017 al lado de una roca que se encontraba en la falda de una pequeña caída de agua de la cara noroeste de la isla (21°19'52.6" N, 106°14'51.0" O). Una fotografía de R. hesperia (Fig. 1c) se depositó en la Colección CNAR (IBH-RF 459). La locali-dad de registro más cercana a este hallazgo, se encuentra a 135 km al noroeste. Con este regis-tro se extiende el área de distribución de la espe-cie a cuatro municipios del estado de Nayarit. El género Rhadinaea en México está compuesto por 10 especies (Myers 1974), donde R. hesperia es considerada endémica de México. Su distri-bución incluye el occidente del país, desde el sur de Sinaloa hasta Guerrero y, al este, hasta Morelos y Guanajuato. En Nayarit, solo existen tres registros: en el norte de la localidad de Mesa del Nayar, municipio de El Nayar; 35.59 km al sureste de Tepic, a lo largo de la carretera fede-ral no. 15; en el municipio de Xalisco, Rancho La Noria, ubicado en la Sierra de San Juan (Luja & Grünwald 2015). En la Norma Oficial Mexicana 059-SEMARNAT-2010 se encuentra en la cate-goría de protección especial y, en la lista roja

de la IUCN, como de menor preocupación (Canseco-Márquez & Mendoza-Quijano 2007). Actualmente existe escasa información sobre su biología, por lo que es importante continuar con su estudio en la zona.

Con base en los tres nuevos registros, la diversidad herpetofaunística de la Isla María Cleofas contempla al menos 11 especies de rep-tiles y dos especies de anfibios; sin embargo,

Figura 1. (a) Smilisca baudinii, (b) Eleutherodactylus palli-dus y (c) Rhadinaea hesperia capturados en la Isla María Cleofas.

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es posible que la diversidad aumente al incre-mentarse el número de visitas de muestreo. Miramontes et al. (2016) mencionaron la posi-ble ocurrencia de un nuevo registro de ser-piente para la Isla María Cleofas. En el caso general del archipiélago, el registro de R. hes-

peria aumenta su riqueza herpetofaunística a 25, si solo se toman en cuenta los reptiles, o a 29 especies si se incluye también a las cuatro especies de anfibios. Se recomienda realizar un mayor número de visitas a las Islas Marías de forma sistemática y en diferentes épocas del año, para registrar un mayor número de espe-cies, con la finalidad de conocer la diversidad real y lograr cuantificar los servicios ecosisté-micos que las especies de herpetos proveen al ecosistema insular en general.

Agradecimientos

A la Comisión Nacional de Seguridad (CNS), la Secretaria de Medio Ambiente y Recursos Naturales (SEMARNAT), la Secretaria de Marina (SEMAR), al Complejo Penitenciario Federal Islas Marías, a La Punta Outdoors S.A. De C.V. y finalmente a la Asociación Civil Protección y Restauración de islas y Zonas Naturales (PROZONA AC), por el apoyo para realizar el trabajo de campo en la Isla María Cleofas. La captura de los animales fue realizada bajo el permiso de colecta SGPA/DGVS/01208/17. Este trabajo también contó con el apoyo del programa de Desarrollo Profesional Docente para el Tipo Superior, Universidad de Guadalajara (Proyecto: 239170) otorgado a AHE-G. A Jesús Loc Barragán por ayudar a corroborar la identi-ficación de las especies. A Adriana González Hernández por las facilidades para depositar el material fotográfico en la colección de fotos de la CNAR-IBUNAM. Finalmente, agrade-cemos las sugerencias y las observaciones de los evaluadores anónimos para mejorar el manuscrito.

Referencias

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Recibido: 05 de febrero de 2018

Aceptado: 28 de febrero de 2018