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UNIVERSIDAD CATÓLICA DE SANTA MARÍA
FACULTAD DE ODONTOLOGÍA
“CONDICIÓN BACTERIOLÓGICA DEL AGUA EN LA FUENTE Y
EN LA RED DE DISTRIBUCIÓN DE LA CLINICA
ODONTOLÓGICA DE LA UCSM, AREQUIPA 2010”
Tesis presentada por la bachiller:
ERIKA LUCY DIAZ AMANCA.
Para obtener el Título Profesional de:
CIRUJANO DENTISTA
AREQUIPA – PERU
2010
DEDICATORIA
Principalmente a mis padres que me dieron la vida, una carrera y por creer en
mí pero especialmente a mi mamá para quien no tengo palabras de describir mi
profundo agradecimiento por su compañía en los buenos y malos momentos, su
apoyo constante, además de compartir mis anhelos y darme mucho amor.
A mi hermano Alex por su compañía y apoyo en todos los momentos de mi
vida.
A una persona muy especial en mi vida, por su amor, comprensión y apoyo
incondicional.
AGRADECIMIENTOS
A Dios por haberme guiardo en el camino recorrido.
A mi asesora, la Mgter Maria del Socorro Barriga Flores por haberme
ayudado en la realización de este trabajo de investigación.
A la Mgter Ruth Álvarez Monge por su colaboración en la parte
operacional de mi trabajo de investigación.
Al Ing. Javier Ilaquita por permitirme el acceso al reservorio de agua de la
universidad.
ÍNDICE GENERAL
Introducción ........................................................................................................... i
Resumen ............................................................................................................... ii
Summary .............................................................................................................. iii
Capitulo I
Planteamiento teórico
1 Problema de investigación
1.1Determinacion del problema ..................................................................... 1
1.2 Enunciado ................................................................................................ 1
1.3 Descripción del problema ........................................................................ 2
1.4 Justificación del problema ....................................................................... 3
2 Objetivos de la investigación ............................................................................. 3
3 Marco teórico
3.1 Agua
3.1.1 Concepto .................................................................................... 4
3.1.2 Agua subterránea ....................................................................... 4
3.1.3 Agua potable............................................................................... 5
3.1.4 Límites permisibles del agua según normas de la OMS y
las establecidas por MINSA y DIGESA en el Perú ................... 5
3.1.5 Usos del agua en odontología… ................................................ 7
3.1.6 Sistema de tratamiento de agua para las unidades
dentales ...................................................................................... 8
3.1.7 Recomendaciones de la ADA con respecto al agua ................ 10
3.2 Microbiología del agua
3.2.1 Microorganismos causantes de enfermedades hídricas .................. 11
3.2.2 Bacterias
1. Definición ...................................................................................... 13
2. Morfología……………………………………………………………13
3. Estructura ..................................................................................... 14
3.2.3 Bacterias indicadoras de contaminación
1. Coliformes ................................................................................... 19
2. Estreptococos fecales ................................................................. 20
3. Mesófilos totales ......................................................................... 20
4. Clostridia reductores de sulfito ................................................... 20
3.2.4 Procedimientos para comprobar la presencia de los
indicadores
1. Técnica de fermentación con tubos múltiples, por el
método de Wilson ................................................................... 21
2. Técnica de la membrana filtrante ........................................... 21
3.3 Medios de cultivo
3.3.1 Concepto .......................................................................................... 22
3.3.2 Composición ..................................................................................... 22
3.3.3 Condiciones ...................................................................................... 24
3.3.4 Controles .......................................................................................... 24
3.3.5 Clasificación ...................................................................................... 24
3.3.6 Medios de cultivos utilizados ............................................................ 25
3.4 Tratamiento del agua
3.4.1 Procesos en el tratamiento del agua
1. Desbaste o cribado ................................................................... 29
2. Coagulación .............................................................................. 29
3. Floculación ................................................................................ 30
4. Sedimentación .......................................................................... 30
5. Filtración ................................................................................... 30
6. Ablandamiento del agua .......................................................... 30
7. Desinfección ............................................................................. 30
4. Antecedentes investigativos ........................................................................... 31
5 Hipótesis .......................................................................................................... 33
Capitulo II
Planteamiento operacional
1 Técnicas, instrumentos y materiales de verificación
1. Técnica ................................................................................................ 34
2. Instrumentos ....................................................................................... 34
3. Materiales ............................................................................................ 35
2. Campo de verificación
2.1 Ámbito espacial ................................................................................... 36
2.2 Ubicación temporal .............................................................................. 36
2.3 Unidades de estudio ............................................................................ 36
2.4 Procedimientos
2.4.1 Preparación de los frascos utilizados para tomar las
muestras ................................................................................. 37
2.4.2 Recolección de las muestras ................................................. 38
2.4.3 Para ambos grupos se tendrá en consideración ................... 38
2.4.4 Características individuales para cada grupo ........................ 39
2.4.5 Procesamiento de las muestras ............................................. 40
3 Estrategia de recolección
3.1 Organización ........................................................................................ 42
3.2 Recurso humano ................................................................................. 42
3.3 Recursos económico ........................................................................... 42
3.4 Recursos institucionales ...................................................................... 42
1. Estrategia de manejo de datos
4.1 En el ámbito de sistematización .......................................................... 42
4.2 En el ámbito de estudio de los datos .................................................. 44
4.3 En el ámbito de conclusiones .............................................................. 44
4.4 En el ámbito de recomendaciones ...................................................... 44
5. Cronograma de trabajo .................................................................................. 45
Capitulo III
RESULTADOS
Resultados .......................................................................................................... 46
Discusión ............................................................................................................ 59
Conclusiones ...................................................................................................... 61
Recomendaciones .............................................................................................. 62
Bibliografía .......................................................................................................... 63
Informatografia ................................................................................................... 65
Glosario……………………………………………………………………………….66
Anexos
i
Introducción
El agua, puede ser considerado un elemento imprescindible en nuestro uso
diario, ya que el hombre lo utiliza para cubrir muchas de sus necesidades
personales y colectivas, devolviendo el sobrante al ciclo natural del agua pero
en la actualidad contaminada por tóxicos y por microorganismos que se han
multiplicado se convierte en un problema de salud.
Lo cual el odontólogo no debe pasar desapercibido, ya que en la práctica
odontológica la mayor parte del agua utilizada para las unidades dentales no
recibe un tratamiento especial, aún así se pone en contacto con la cavidad
bucal que en muchas ocasiones, sobre todo en niños no es expulsada,
favoreciendo la presencia de enfermedades hídricas, pues ellas no han
desaparecido por más que las condiciones en el tratamiento del agua hayan
mejorado.
Además debemos recordar lo que dijo Spellman acerca de que los patógenos
que se transmiten por el agua no tienen como hogar el agua, sino que residen
temporalmente en el agua, esperando su oportunidad para encontrar el
hospedador apropiado que será su hogar y su lugar de descanso final, por lo
que debemos de estar alerta al fenómeno de Mills –Reincke el cual determina
la calidad del agua como factor que disminuye la incidencia de todas las
enfermedades y la mortalidad.
De allí que surge la importancia de que el agua utilizada en la clínica
odontológica de la UCSM sea analizada.
ii
Resumen
El presente trabajo de investigación pretende dar a conocer la condición
bacteriológica del agua de la clínica de la UCSM y para ello es necesario
conocer las normas técnicas del agua en el Perú, las que establecen que no
debe contener bacterias del grupo coliforme total ni fecal en el medio.
Para ello se sacaron 24 muestras de la fuente y 42 muestras de la red de
distribución.
Se utilizo el método de fermentación de tubos múltiples con la técnica de
Wilson; por lo cual se sembraron primero en caldo Mac Conckey para la prueba
presuntiva y para la prueba confirmativa se utilizo el caldo Brila para los
coliformes totales y el caldo E.C para los coliformes fecales.
Y Como resultado se encontró que en la fuente de agua de la clínica; no había
presencia de coliformes totales, ni fecales.
Sin embargo en las muestras de la red de distribución que se tomaron, si se
encontró coliformes totales y ningún coliforme fecal.
Es importante señalar que la presencia de coliformes totales en la red de
distribución, se puede deber al recorrido a través de las tuberías, porque el
agua de la fuente dio negativo para coliformes.
iii
Summary
This research work aims to show the status of bacteriological UCSM clinic and it
is necessary to know the technical rules of water in Peru, stating that it should
not contain any reason bacterias of group total coliform or fecal coliform in the
middle.
These 24 samples were taken from the source and 42 samples from the
distribution network,
We used the method of multiple-tube fermentation technique with Wilson, for
which first planted in broth for testing Mac Conckey presumptive and
confirmatory testing was used Brila broth for total coliforms and EC broth for
fecal coliforms.
And as a result it was found that the water source at the clinic, there was no
presence of total coliform or fecal.
However, in samples from the distribution network were taken, if any found total
coliform and fecal coliform.
It is important to note that the presence of total coliforms in the distribution
network may be due to travel through the pipes, because water source tested
negative for coliforms.
Capítulo I PLANTEAMIENTO TEORICO
1
I PLANTEAMIENTO TEORICO
1 PROBLEMA DE INVESTIGACIÓN
1. Determinación del problema
El presente trabajo de investigación se realiza con el fin de determinar las
bacterias coliformes totales y fecales que pueden estar presentes en el
agua de la fuente y de la red de distribución que es empleada en las
unidades dentales.
En el agua de la fuente pues ella no recibe un tratamiento especial aunque
la ADA recomienda sistemas especiales para el uso odontológico.
En el agua de la red de distribución por la formación de biopelículas en las
paredes de las tuberías, por conexiones defectuosas, fracturas en las
tuberías.
Así mismo en la literatura se verifica la presencia de microbios en el agua
de la turbina y la jeringa triple .Y si a ello le agregamos la dudosa calidad
del agua potable utilizada para las unidades dentales se estaría
posibilitando la presencia de infecciones en pacientes que acuden a la
consulta odontológica.
Todo esto me motivo a investigar y evaluar la presencia de bacterias en el
agua de la fuente y red de distribución de la clínica odontológica de la
UCSM para que se tenga un mejor control de las mismas.
2. Enunciado
“Condición bacteriológica del agua en la fuente y en la red de distribución
de la clínica odontológica de la UCSM Arequipa 2010”
2
1.3 Descripción del problema
1. Área del conocimiento
1. Área general: Ciencias de la salud
2. Área especifica: Odontología
3. Especialidad: Microbiología
4. Línea o tópico: Contaminación microbiológica.
1. Análisis u operacionalización de variables
VARIABLE GENERAL INDICADORES SUBINDICADORES
Condición
bacteriológica
Presencia
Coliformes totales NMP/100ml Coliformes fecales NMP/100ml
Ausencia Coliformes totales Coliformes fecales
1.3.3 Interrogantes Básicas
1. ¿Cuál es la condición bacteriológica del agua en la fuente de la
clínica odontológica de la UCSM?
B ¿Cuál es la condición bacteriológica del agua en la red de
distribución de la clínica odontológica de la UCSM?
C ¿Habrá semejanzas o diferencias en la condición bacteriológica
del agua en la fuente y en la red de distribución de la clínica
odontológica de la UCSM?
1.3.4 Tipo de investigación: De campo y de laboratorio
3
1. Nivel de investigación: Es una investigación descriptiva-
comparativa.
1.4 Justificación del problema:
Originalidad: Porque no se ha realizado hasta ahora un trabajo de
investigación con las mismas características en nuestro medio.
Relevancia: científica porque brinda conocimientos acerca de la condición
bacteriológica del agua utilizada para las unidades dentales, conociendo
las variaciones que pueden existir entre la fuente y la red de distribución.
Actualidad: Debido a que aún en estos tiempos no se tiene una
manipulación ideal del agua que se utiliza para las unidades dentales.
Viabilidad: Ya que las condiciones para ello son factibles.
Interés: Pues con dicho estudio se determinara la condición bacteriológica
del agua, con lo cual se podría tomar las precauciones para un
mejoramiento de la calidad de servicio brindado a los pacientes que
ingresan a la clínica odontológica, servirá para futuros trabajos de
investigación y me permitirá optar el grado de cirujano dentista.
2. OBJETIVOS DE LA INVESTIGACIÓN
1. Determinar la condición bacteriológica del agua en la fuente de la
clínica odontológica de la UCSM.
2. Determinar la condición bacteriológica del agua en la red de
distribución de la clínica odontológica de la UCSM.
4
3. Comparar la condición bacteriológica del agua en la fuente y en la
red de distribución de la clínica odontológica de la UCSM.
3. MARCO TEORICO
3.1Agua
3.1.1 Concepto: Es una sustancia cuyas moléculas están formadas por
la combinación de un átomo de oxigeno y dos de hidrogeno, líquida,
inodora, insípida e incolora. Es el componente más abundante de la
superficie terrestre y más o menos puro, forma la lluvia, las fuentes, los
ríos y los mares; es parte constituyente de todos los organismos vivos.1
3.1.2 Agua subterránea: Es el agua que se encuentra en la zona
saturada es decir la que se encuentra debajo del nivel freático.2
Es un recurso relativamente económico. Los costos de construcción de
pozos e instalación de equipos de bombeo generalmente son menores
que los costos de construcción de un almacenamiento superficial que
provea un caudal similar. Además como el agua subterránea
normalmente no requiere más tratamiento que una desinfección común,
los costos de operación y mantenimiento de una fuente de
abastecimiento de agua subterránea comúnmente son mucho menores
que los necesarios para un abasto de agua superficial equivalente, ya
que este normalmente requiere un proceso de tratamiento más
complicado para filtrar y clarificar el agua, constituyendo la mejor opción
cuando se tiene la cantidad y calidad requerida.
1 Real academia española. “Diccionario de la lengua española” Pág. 62 2 Michael Price. “Aguas subterráneas”. Pág.7
5
Por ello en muchos países europeos el agua subterránea constituye la
mayor parte en ocasiones prácticamente la totalidad del abasto de agua
potable.3
3.1.3 Agua potable: Aquella cuyos caracteres organolépticos, físico-
químicos y microbiológicos corresponden a los aceptados por la
reglamentación técnico- sanitaria para el abastecimiento y control de
calidad de aguas potables.4
3.1.4 Límites permisibles del agua según normas de la OMS y las
establecidas por MINSA y DIGESA en el Perú
Coliformes Fecales:
La cantidad de coliformes fecales recomendada por las Guías de la OMS
es de:
Fuente: calidad del agua potable p.41
3 Michael Price. Ob. Cit. Pág.209 4 Facultad de ciencias farmacéuticas, bioquímica y biotecnología. “Guía de microbiología I”
Toda agua destinada a ser bebida
E. coli o bacterias coliformes termotolerantes. No detectables en
ninguna muestra de 100 ml
Agua tratada que alimenta al sistema de distribución
E. coli o bacterias coliformes termotolerantes No detectables en
ninguna muestra de 100 ml
Agua tratada presente en el sistema de distribución
E. coli o bacterias coliformes termotolerantes No detectables en
ninguna muestra de 100 ml.
6
La mayoría de los países de América se ajustan a este estándar y lo
adoptan dentro de sus normas nacionales. Tal como lo indica en el Perú
el reglamento de la calidad del agua para consumo humano MINSA y
DIGESA del año 2005; los parámetros microbiológicos en el artículo 65:
Establecen que toda agua destinada para el consumo humano debe
estar exenta de bacterias coliformes termotolerantes y Escherichia coli a
la salida de las plantas de tratamiento pozos, reservorios y en el sistema
de distribución.5
Coliformes Totales:
Las guías de la OMS establecen un parámetro de 0 para las bacterias
coliformes totales, la cual es adoptada también por el Perú.6, en el
reglamento del agua de consumo humano dado por DIGESA y el
MINSA.
Ítem
Parámetro
Unidades
de medidas
Concentración
máxima
1 Coliformes totales
número/100 ml 0
2 Coliformes termotolerantes número/100 ml
0
3 Conteo de colonias heterotrófica número/ml 22 o 37ºC
500
Fuente: www.scribd.com/.../Normas-Oficiales-para-la-Calidad-del-Agua-en-el-Perú
5 www.jopesa.com.pe/.../Reglamento%20de%20la%20calidad%20del%20agua%20par 6 www.oas.org/dsd/.../Armoniz.EstandaresAguaPotable.pdf
7
3.1.5 Usos del agua en odontología
Para que la clínica pueda desenvolverse al máximo con sus servicios es
esencial que esta cuente con una fuente de agua confiable y así
mantener la limpieza que debe caracterizar a una institución de salud.
En la clínica odontológica de la UCSM, los procedimientos que se llevan
a diario incluyen al agua desde que el paciente entra a la consulta pues
el alumno debe lavarse las manos para dar inicio a la cita.
En un tratamiento de operatoria o prótesis al utilizar la pieza de mano, la
llave deberá dar paso al agua para así evitar un sobrecalentamiento y
daño pulpar al paciente.
Si se va hacer un tratamiento preventivo como profilaxis o colocación de
sellantes, el agua es necesaria para eliminar residuos de la pasta
profiláctica y para la eliminación del acido grabador respectivamente.
Al realizar un tratamiento periodontal, es necesario hacer lavados
constantes para eliminar el exceso de sangre en la cavidad oral y
mantener así la visibilidad del objetivo.
Al realizarse cirugías, debe haber un cuidado extremo del agua utilizada
para evitar el calentamiento óseo, ya que si se introducen agentes
patógenos en las heridas, existe un riesgo de que se deteriore o retrase
la cicatrización.
8
3.1.6 Sistema de tratamiento de agua para las unidades dentales:
Sistemas auto-contenedores de agua:
Estos sistemas hacen referencia a suministros o reservorios
independientes de líquido, aislados de la unidad, en los cuales se puede
proveer agua con soluciones químicas desinfectantes. Si dichas
soluciones no son empleadas u otros medios físicos para inactivar las
biopelículas, no es posible garantizar buena calidad de agua.
Algunos agentes químicos pueden prevenir o inactivar la biopelícula si
se utilizan en las líneas de agua, de manera intermitente o de forma
continua, a través de sistemas de liberación automática. La
compatibilidad de estos desinfectantes químicos con algunos materiales
dentales y los efectos que pueden producir en los tejidos orales han sido
temas recientes de investigación. Para garantizar la efectividad y
seguridad de los productos, la ADA ha iniciado un programa para
desarrollar una especificación respecto a los agentes antimicrobianos en
las líneas de agua.
El hipoclorito de sodio en varias diluciones ha sido el compuesto más
estudiado para el tratamiento intermitente de las líneas de agua; aunque
es una sustancia segura y efectiva, puede dañar metal y materiales
sintéticos empleados en la fabricación de las unidades. Han surgido
otras alternativas para este fin como el uso de soluciones a base de
peróxido de hidrógeno, gluconato de clorhexidina y yodóforos.
9
Microfiltros
Son membranas filtrantes usadas para capturar microorganismos
suspendidos en el agua. Para uso odontológico estos filtros se instalan
en las líneas de agua de la unidad cerca al punto de uso, ya sea de la
jeringa triple o las piezas de mano, como un dispositivo adaptable. La
microfiltración en condiciones normales se da entre 0.03 y 10 micrones.
Los filtros de las unidades tienen un rango de 20 a 90 micrones y no
funcionan como filtros microbiológicos.
Algunas de estas membranas tienen pequeñas cantidades de yodo, para
minimizar la formación de biopelículas; su duración es de uno a siete
días y deben ser reemplazadas según las indicaciones del fabricante.
Como los filtros de agua no tienen efecto sobre la biopelícula, las
recomendaciones de la ADA no hacen mayor referencia sobre este
aditamento; sin embargo, estos pueden ser útiles en combinación con
otros mecanismos para mantener la calidad del agua.
Sistemas de reparto de agua estéril
Utilizar mangueras estériles o esterilizables en autoclave, para reducir la
formación de biopelículas, se hace con algunos tipos de piezas de mano
y otros sistemas en cirugía oral o implantes.
En la actualidad no es posible usar sistemas de agua estéril en las
unidades, ya que se requieren mecanismos muy complejos.
10
Purificadores de agua
El mecanismo de acción de estos purificadores utiliza radiaciones
ultravioleta, filtración o ambos para remover o inactivar los
microorganismos. Debido a que la fuente de agua circula por los tubos
ya colonizados en la unidad dental, esto mejora muy poco la calidad del
líquido.
Las estrategias que combinen distintas modalidades como filtración,
tratamiento químico y control de la fuente de agua representan la mejor
alternativa para optimizar su calidad en las unidades.7
3.1.7 Recomendaciones de la ADA con respecto al agua
Actitud agresiva y ambiciosa para fomentar que la industria y la
comunidad investigadora mejoren el diseño del equipamiento dental.
Evitar el uso de agua de las unidades dentales para irrigación en
operaciones de cirugía que impliquen exposición ósea. Implicando el uso
de sistemas de aporte de agua estéril.
Las piezas de mano deben de ser purgadas cada mañana y entre
pacientes.
El uso de barreras como el dique de goma sirve al paciente para reducir
el contacto directo con el agua y al profesional el uso de gafas,
mascarillas y escudos faciales.
7 www.medilegis.com/.../Odontologica-v1n4-ejercicio.asp
11
Mejorar la calidad del agua mediante sistemas de tratamiento especial
para unidades dentales las cuales deben ser autorizadas por la FDA.
Estos Sistemas de tratamiento de agua para las unidades dentales
pueden ser:
Sistemas como el que añade al agua entrante un bajo nivel de solución
antimicrobiana (formada por H2O2 y plata) para desinfectar el agua al
pasar por los conductos de la unidad.
Sistema combinado de filtración y tratamiento químico por yodación del
agua antes de que entre en la unidad dental. 8
3.2 Microbiología del agua
3.2.1 Microorganismos causantes de enfermedades hídricas
La Organización Mundial de la Salud estimo en 1984 que las
enfermedades de transmisión hídrica causaban la muerte de cinco
millones de personas anualmente;9 en el 2005 la O.M.S. estima que
cada año se presentan 500 millones de casos en niños menores de 5
años en Asia, África y América Latina. Entre 15 y 20 millones terminan
con la muerte, para lo cual las mejoras en el saneamiento básico pueden
bajar la morbilidad por estas enfermedades hasta un 50 %. No debemos
olvidar, sin embargo, que en otras partes del mundo los organismos que
causan estas enfermedades forman parte del medio ambiente y
8 Chris M. Miller, Charles John Palenek. . “Control de la infección y manejo de materiales peligrosos para el equipo de profesionales de salud dental” Pág.200 9 Frank Spellman- Joanne Drinan.”Manual del agua potable”.Pág. 78
12
Microorganismo Enfermedad
Bacterias Salmonella typhi Fiebre tifoidea Salmonella sp. Salmonelosis shigella sp. Shigelosis Campylobacter jejuni Enteritis por campilobacter Yersinia enterocolitica Yersiniosis Escherichia coli Gastroenteritis
Parásitos intestinales Entamoeba histolytica Disentería amebiana Giardia lamblia Giardiasis Cryptosporidium Criptosporidiosis
Virus Enterovirus Polio
Meningitis aséptica herpangina Hepatitis A Hepatitis infecciosa Adenovirus Enfermedades respiratorias
Conjuntivitis
especialmente en la parte del medio ambiente que es el agua; sería
insensato y mortal echarlo en el olvido.10
Fuente: Manual del agua potable p. 78
10 www.elsantafesino.com › Vida
13
3.2.2 Bacterias
1. Definición
Son microorganismos unicelulares, procariotas que presentan
generalmente un tamaño entre 0,5 y 5 μm, tienen una estructura
menos compleja que la de las células de los organismos
superiores (su núcleo está formado por un único cromosoma y
carecen de membrana nuclear)
Se suelen reproducir por fisión binaria.11
2. Morfología
Depende de la pared celular que le proporciona elasticidad y al
mismo tiempo rigidez. Estos microorganismos se presentan
habitualmente como:
1. Cocos: Su forma habitual es redondeada pero a veces hay
excepciones y aparecen ligeramente ovoides, con un lado
aplanado (reniformes) o con un extremo afilado (lanceolados).
En cuanto a las agrupaciones pueden ser de dos en dos
(diplococos), de cuatro (tetradas), en cadenas (estreptococos),
en racimos (estafilococos) o en forma de cubos (sarcinas).
2. Bacilos: Son alargados, aunque en algunas ocasiones son más
cortos y se les denomina cocobacilos. Sus extremos pueden
ser variables lo que contribuye también a su identificación. Así
tenemos en ángulo recto, redondeado, afilado, engrosado, en
11 es.wikipedia.org/wiki/Bacteria
14
forma de maza lo cual puede deberse a la propia forma de la
bacteria o a la presencia de inclusiones o esporas.
Al contrario de los cocos, es raro que se agrupen aunque
pueden aparecer como diplobacilos, estreptobacilos o en
grupos irregulares.
3. Formas incurvadas: son elementos generalmente aislados
con una o varias curvaturas.
Si presentan una sola, pueden adoptar forma de coma
(vibrios) a veces son varias en un solo plano, rígidas y se
desplazan por flagelos (espirilos), en ocasiones se sitúan en
planos distintos, son flexibles y se mueven por filamentos
axiales (espiroquetas).
Estas formas pueden variar debido a distintas circunstancias
exógenas como la antigüedad del cultivo, factores nutricionales,
tratamiento con antibióticos.
A las bacterias que modifican de forma se les denomina
pleomorfas y al fenómeno, pleomorfismo. Además, debido al
proceso de división celular, puede que tras dividirse no
permanezcan aisladas sino unidas entre sí formando
agrupaciones, que al ser en algunos casos muy típicos ayudan a
su identificación.12
4. Estructura:
Membrana citoplasmática: La membrana plasmática. Se trata de
una estructura obligada, situada por debajo de la pared celular, 12 José Liébana Ureña. “Microbiología oral”. Pág. 17
15
delimitada hacia fuera por el periplasma en las bacterias Gram
negativas y por un espacio casi inexistente en las Gram positivas.
Está constituida por una bicapa lipídica que representa en torno al
40% del total y por proteínas, que suponen alrededor de 60%.
La membrana mantiene constante el medio interno. El transporte
de sustancias a su través tiene hasta cierto punto un carácter
selectivo, ya que permite el paso de unas e impide el de otras.
Participa en procesos vitales como los bioenérgeticos,
biosintéticos y biodegradativos.
Además de ser el lugar donde se anclan los apéndices
bacterianos.
Pared celular: Es un elemento obligado de la estructura de las
bacterias, aunque no existe en micoplasmas. Constituye la
envoltura inmediatamente más externa a la membrana plasmática
y representa entre el 10 al 50% del peso celular seco.
Está compuesta de polisacáridos, proteínas y lípidos. En la pared
celular de las Gram positivas, se observa una banda ancha opaca
a los electrones, integrada principalmente por un polímero
denominado mureína o peptidoglucano, junto con ácidos teicoicos
y ácidos lipoteicocicos. Por el contrario la pared celular de las
bacterias Gram negativas es multiestratificada y destaca una
membrana externa y un periplasma; en el interior de este último
aparece una banda estrecha opaca a los electrones que
constituye el peptidoglucano.
16
Glicocáliz: Con este nombre se denomina a todo polímero
extracelular situado inmediatamente por fuera de la pared celular.
Comprende dos estructuras facultativas de las bacterias: la
cápsula y la capa mucosa (también llamada capa mucilaginosa,
limo o slime), aunque algunos autores prefieren denominar
glicocáliz sólo a esta última.
Cápsula: Se trata de una cubierta bien definida, firmemente
adherida a la pared célular e impermeable a ciertos colorantes
como la tinta china. Su naturaleza es por lo general polisacarídica,
si bien existen capsulas polipeptídicas. Aunque confiere ciertas
ventajas, la capsula no es vital para las bacterias.
Capa mucosa: Es una cubierta flexible, mal definida, de
márgenes difusos, no uniforme en densidad y grosor, débilmente
unida a la membrana externa o a la mureína, por lo que elimina
fácilmente.
Es permeable a la tinta china y su composición es
fundamentalmente polisacárida y de forma habitual
homopolisacárida.
Citoplasma: Es un elemento obligado de las bacterias.
Comprende todo lo que hay por dentro de la membrana
citoplasmática a excepción de las regiones en las que se
encuentra el ADN cromosómico. Se trata de un hidrogel que
contiene alrededor de un 85% de agua y un conjunto de
macromoléculas y estructuras, que son las siguientes: 13
13 José Liébana Ureña. Ob. Cit. Pág. 25
17
Mesosoma: Se demuestran más fácilmente en las bacterias
grampositivas que en las gramnegativas. Generalmente se
observan como sacos citoplásmicos y se asocian con tabiques de
septación.
La fijación de los mesosomas, tanto a la cromatina de ADN como
a la membrana, ha sido demostrada por microscopia electrónica
de cortes delgados. Se ha informado que los mesosomas son
artificios de fijación, pero es difícil explicar que los túbulos
vesiculares mesosomales resultan artificios.14
Ribosomas: Los ribosomas son cuerpos diminutos y
redondeados compuestos por aproximadamente 30% de
proteínas y de acido ribonucleico en un 70%. Se estima que
constituyen el 40% del peso seco de la bacteria. Una sola célula
puede tener tanto como 10000 ribosomas. En los ribosomas tiene
lugar la síntesis de las proteínas durante la cual se asocian en
cadenas (polirribosomas) y son parte del proceso de traducción,
se les puede llamar el centro de energía de la célula.15
Cuerpo nuclear: La de una célula procariota es primitiva y
contrasta significativamente con la de una célula eucariota. A la
primera le falta un núcleo diferenciado y la función del núcleo lo
realiza un simple ADN, largo y de doble hebra eficientemente
empaquetado para encajar en el nucleoide.
14 Joklin Wolfgang K., Zinsser. “Microbiología l”.Pág. 51 15 Frank Spellman- Joanne Drinan. Ob. Cit.Pág. 52
18
El nucleoide está unido a la membrana plasmática. Una célula
puede tener más de un nucleoide cuando la división celular ocurre
después de la duplicación del material genético.16
Inclusiones de reserva: Constituyen almacenamiento de
nutrientes, las hay de dos tipos:
5. Orgánicas: Como las de glucógeno y almidón (reservas de
hidratos de carbono) y las de ácido poli-β-hidroxibutírico
(reservas de lípidos).
6. Inorgánicas: Como las de polifosfatos, polímeros lineales de
ortofosfatos, que son reservas de fósforo. Se les conoce como
granulaciones metacromáticas, ya que se tiñen de rojo con
colorantes azules.17
Apéndices bacterianos:
Flagelos: Son elementos facultativos responsables de la movilidad
bacteriana. Aparecen como estructuras finas, largas, onduladas o
sinuosas, no ramificadas y muy frágiles. Las bacterias que carecen
de flagelos se denominan átricas, cuando sí los poseen pueden
tener diferente localización: monótricos (un flagelo polar), lofótricos
(un penacho en un extremo), anfìtricos (uno o varios flagelos en
ambos polos), peritrícos (cuando rodean la bacteria).
Entre sus funciones sobresalen: La Movilidad, el factor de
patogenicidad, Antigenicidad y Quimiotaxis.
16 Frank Spellman- Joanne Drinan. Ob. Cit.Pág. 87 17 José Liébana Ureña. Ob. Cit . Pág. 39
19
Fimbrias: Se pueden encontrar a centenares sobre la superficie de
la bacteria. Participan en fenómenos de adhesión, agregación,
coagregación y en la formación de velos en los cultivos.
Pili: Más largos y anchos que los anteriores, son huecos y terminan
en una especie de botón. Su número es significativamente menor.
Filamentos axiales: No son apéndices pero sí órganos de movilidad
que emplean las espiroquetas para desplazarse.18
1. Bacterias indicadoras de contaminación
1. Coliformes: Son bacilos Gram negativos, anaerobios facultativos, con
requerimientos nutricionales sencillos.
2. Totales: Se encuentra en el intestino del hombre y los
animales, pero también en otros ambientes como suelo,
plantas, etc., por lo que como indicadores de
contaminación fecal no presentan buena especificidad.
Sin embargo su frecuencia en las heces su fácil
detección y la posibilidad de que junto a ellos existan
microorganismos patógenos nos hacen que se empleen
como principales microorganismos indicadores de
contaminación fecal.
3. Fecales: Son microorganismos que están más
estrechamente ligados con la contaminación fecal del
agua, ya que cada gramo de heces humanas contiene
hasta 108 microorganismos E. coli.
18 José Liébana Ureña. Ob. Cit. Pág. 48
20
4. Estreptococos fecales: Son cocos Gram positivos, aerobios, catalasa
negativos, que fermentan la glucosa con producción de ácido y gas a
37ºC. Los estreptococos fecales pertenecen al grupo D de Lancefield.
Son gérmenes cuyo hábitat normal es en el tubo digestivo del hombre y
los animales de sangre caliente, por lo que se utilizan como indicadores
de contaminación fecal.
5. Mesófilos totales: Son un grupo de bacterias que se multiplican en
aerobiosis a temperatura entre 25 y 40 ºC, siendo su temperatura óptima
a 31ºc. , en este grupo se incluyen bacterias patógenas y no patógenas
(alterantes, saprofitos, etc.), por lo cual unas tasas altas de Mesófilos
pueden indicar que el agua no es apropiada para el consumo humano.19
6. Clostridia reductores de sulfito: Se caracteriza por ser un grupo de
bacterias anaerobias, Gram positivas, formadoras de esporas que
sobreviven por mucho tiempo, incluso más que las bacterias coliformes.
Habitan normalmente en las heces, aunque en número
mucho menos reducido que E. coli. el aislamiento en el
laboratorio debe ser cuidadoso, debido a los requerimientos
de anaerobiosis. Las pruebas bioquímicas para su
confirmación implican hasta 14 días.20
3.2.4 Procedimientos para comprobar la presencia de los
indicadores
I. Fermentación con tubos múltiples: Para utilizarlo en
muestras de agua, la técnica requiere casi siempre el uso de 19 Ramón Diaz- Carlos Gamazo, Ignacio Lopez. “Manual practico de microbiología”. Pág. 156 20 C.H.Collins, Patricia M. Lyne. 1989.”Métodos microbiológicos” Pág.429
21
test presuntivos y de test confirmativos. Es reconocido como un
método útil en el caso de muestras controvertidas.
SÍ se usa esta técnica los resultados del examen de tubos
repetidos y diluciones se expresan como el número más
probable de organismos presentes. El número, basado en
fórmulas de probabilidad, es una estimación de la densidad
media de coliformes en la muestra. La densidad de
coliformes proporciona una valoración adecuada de la
eficacia de los tratamientos y de la calidad sanitaria de un
agua no tratada.
Las muestras diluidas se incuban primero en caldo Mac
Conkey durante 24-48 horas (pruebas presuntivas). Las
muestras positivas se transfieren a caldo Brila para
coliformes totales y a E.c para coliformes fecales, las cuales
se incuban 24 horas más (pruebas confirmativas). Las
muestras positivas de esta segunda incubación se utilizan
para determinar estadísticamente el número más probable
según la tabla de referencia apropiada.21
II. Membrana filtrante: Se utiliza para aquellos casos en los
que la concentración de bacterias es baja y el volumen de la
muestra, grande. Para ello se hace pasar un gran volumen de
muestra por un filtro cuyo diámetro de poro retenga las
bacterias. Después este último se transfiere a un medio de
21 Frank Spellman- Joanne Drinan. Ob. Cit. Pág. 92
22
cultivo donde crecerán tantas colonias como bacterias hayan
quedado adheridas al filtro.
Las limitaciones son en aguas de gran turbidez.22
3.3 Medios de cultivo
3.3.1 Concepto: Son preparados que intentan reproducir
artificialmente las condiciones del hábitat natural de los
agentes bacterianos. Sus componentes deben cubrir todas
las necesidades nutricionales de las bacterias que se van a
estudiar y deben incorporarse en una mezcla justa y
equilibrada.23
3.3.2 Composición:
Peptonas: Son mezclas complejas de compuestos
orgánicos nitrogenados y sales minerales que se obtienen
por digestión enzimática o química de proteínas animales o
vegetales. Las peptonas son muy ricas en péptidos y
aminoácidos pero pueden ser deficientes en determinadas
vitaminas y sales.
Extractos: Para su preparación, ciertos órganos o tejidos
animales o vegetales los cuales son extraídos con agua y
posteriormente concentrados hasta la forma final de pasta o
polvo.
22 José Liébana Ureña. Ob. Cit. Pág81 23 Ibid. Pág.83
23
Fluidos corporales: Estos contribuyen no solamente con
factores de crecimiento, sino también con sustancias que
neutralizan inhibidores del crecimiento de algunas bacterias.
Indicadores de pH: Indicadores ácido- base se añaden a
menudo a los medios de cultivo con objeto de detectar
variaciones del pH.
Sistemas amortiguadores: Algunos componentes son
incorporados al medio de cultivo de cultivo para mantener el
pH dentro del rango óptimo de crecimiento bacteriano. Los
microorganismos más comunes son neutrófilos (el pH óptimo
para su crecimiento está próximo a la neutralidad), y sales
como fosfatos bisódicos o bipotásicos, o sustancias como
las peptonas, previenen una desviación del pH.
Agentes reductores: Para crear condiciones que permitan
el desarrollo de los gérmenes microaerófilos o anaerobios.
Agentes selectivos: La adición de determinadas sustancias
puede convertirlo en selectivo.24
Agua: Componente básico y universal para la vida.
Hidratos de carbono: El utilizado universalmente es la
glucosa, pero en algunos medios se agregan también otros
monosocáridos como fructosa, disacáridos como maltosa o
sacarosa o polisacáridos como almidón.
24 Ramón Diaz- Carlos Gamazo, Ignacio Lopez. Ob. Cit. Pág.9
24
Constituyen, tras la degradación enzimática por el
microorganismo, una fuente de energía y de carbono.
Agentes soldificantes: se incorporan para obtener medios
de cultivo sólidos o semisólidos. El más utilizado es el agar
que es un polímero obtenido de algas rojas como gelidium
corneum, pero también existen el silicagel y la gelatina.
3.3.3 Condiciones: Debe tenerse en cuenta la temperatura, la
atmósfera, presión osmótica, humedad y el pH adecuados.
3.3.4 Controles: Se establecerán tres tipos de controles antes de
considerarlos aptos para su uso.
Los cuales son: control de esterilidad, control de calidad y
control de caducidad.25
3.3.5 Clasificación: Según su utilización en el laboratorio:
Medios generales: Permiten el desarrollo de una gran
variedad de microorganismos.
Medios de enriquecimiento: Favorecen el crecimiento de
un determinado tipo de microorganismo, sin llegar a inhibir
totalmente el crecimiento del resto.
Medios selectivos: Permiten el crecimiento de un tipo de
microorganismo determinado, inhibiendo el desarrollo de los
demás.
25 José Liébana Ureña. Ob. Cit. Pág.84
25
Medios diferenciales: Son aquellos en los que se ponen de
relieve propiedades que un determinado tipo de
microorganismo posee.26
3.3.6 Medios de cultivo utilizados
Mac Conkey Caldo.
Es una modificación del Agar Mac conkey por el mismo autor
en 1901.
El caldo Mac Conkey puede emplearse como medio de
prueba probable de la presencia de organismos coliformes
en el agua y otros materiales de importancia sanitaria, La
formación de gas y acido constituye la prueba de coliformes,
como lo demuestra el cambio de color del purpura de
bromocresol, al amarillo.
Inhibe a gran parte de la flora Gram positiva.27
Fórmula en gramos por litro de agua destilada
Bilis de buey…………………………………….. 5.0
Peptona………………………………………….. 20.0
Lactosa…………………………………………… 10.0
Púrpura de bromocresol ……………………….. 0.01
Preparación: Suspender 35 g del medio por litro de agua
destilada y mezclar hasta obtener uniformidad. Calentar y
disolver completamente el medio. Luego distribuir 10 ml por
26 Ramón Diaz- Carlos Gamazo, Ignacio Lopez. Ob. Cit. Pág.9 27 Baltimore biological laboratory, INC. Ob. Cit. Pág. 78
26
tubo con campanita de Durham. Esterilizar en autoclave a
121°C durante 15 minutos.
pH final: 7.3 ± 0.2
Caldo con verde brillante y bilis al 2%
Este caldo se emplea para la investigación de los
organismos coliformes; .la bilis y el verde brillante inhibe la
mayor parte de las otras bacterias.
Se recomienda para confirmar la presencia de
microorganismos coliformes en el examen de aguas.
La aparición de gas dentro de 45 a 51 horas de incubación
se considera prueba positiva de la fermentación por los
bacilos coliformes.28
Fórmula en gramos por litro de agua destilada
Bilis de buey deshidratada……………………..20
Lactosa…………………………………….. …….10
Peptona……………………………………….......10
Verde brillante……………………………………..0.013
Preparación: Suspender 40 g del medio por litro de agua
destilada y mezclar hasta obtener uniformidad. Calentar y
disolver completamente el medio. Luego distribuir 10 ml por
tubo con campanita de Durham. Esterilizar en autoclave a
121°C durante 15 minutos.
Ph final 7.2 ±0.2
Medio E.C. 28Baltimore biological laboratory, INC. Ob. Cit. Pág. 164
27
El medio E c fue ideado por Hajna y Perry para la
investigación de bacterias coliformes, incubando a 37º C y
para Escherichia coli, a 44ºC.
El medio E.c se emplea para el análisis de agua, leche,
mariscos u otros materiales que se sospechan de
contaminación fecal. Cuando el caldo se inocula el cultivo a
37ºC durante 48 horas, la formación de gases es una prueba
probable de la presencia de organismos coliformes. El
crecimiento y formación de gases incubando a 44ºC durante
24 horas, se considera como evidencia de Escherichia coli.
Las sales biliares del medio inhiben el crecimiento de los
bacilos y estreptococos biliares. 29
Fórmula en gramos por litro de agua destilada
Peptona ................................................................ 20.0 g
Lactosa ................................................................... 5.0 g
Mezcla de sales biliares ......................................... 1.5 g
Fosfato dipotásico .................................................. 4.0 g
Fosfato monopotásico ............................................ 1.5 g
Cloruro de sodio ..................................................... 5.0 g
Preparación: Suspender 37 g del medio por litro de agua
destilada y mezclar hasta obtener uniformidad. Calentar y
disolver completamente el medio. Luego distribuir 10 ml por
tubo con campanita de Durham. Esterilizar en autoclave a
121°C durante 15 minutos.
PH final 6.9 ± 0.2 29 Baltimore biological laboratory, INC. Ob. Cit. Pág.34
28
Medio EMB
Es una modificación de la formula de Holt-Harris y Teague
para el aislamiento y diferenciación de los bacilos entéricos
Gram negativos. El colorante inhibe el crecimiento de otros
organismos.
Sirven para diferenciar las colonias de bacilos entéricos
patógenos de los organismos capaces de fermentar
rápidamente la lactosa, la sacarosa o ambas. Las colonias
de salmonellas shigellas se diferencian fácilmente de las de
escherichia coli por ser color ambar, transparente e incoloras
a veces, en tanto que las colonias típicas de los bacilos del
colón son azul oscuro con brillo metálico cuando se
observan con luz reflejada. Otros organismos coliformes y
enterobacter forman colonias mucoides de color rosa.
Inhibe fuertemente a los Gram positivos.30
Fórmula en gramos por litro de agua destilada
Peptona (gelysate B-B-L) ..................................... 10.0 g
Lactosa ................................................................... 5.0 g
Sacarosa ................................................................ 5.0 g
Fosfato dipotásico .................................................. 2.0 g
Agar ...................................................................... 13.5 g
Eosina .................................................................... 0.4 g
Azul de metileno ................................................. 0.065 g
30 Baltimore biological laboratory, INC. Ob. Cit. Pág. 40
29
Preparación: Se suspenden 36g. de polvo en 1 litro de agua
destilada y mezclar hasta obtener uniformidad. Se calienta
agitando frecuentemente y se hierve durante 1 minuto o
hasta disolución. Se esteriliza a no más de 121ºC durante 15
minutos. Enfríese a 45ºC y distribúyase el medio agitando
suavemente hasta usarlo.
Ph final 7.2 ± 0.2
3.4 Tratamiento del agua
3.4.1 Procesos en el tratamiento del agua
1. Desbaste o cribado: Es el primer paso importante en el
agua que contiene sólidos gruesos.
Se define como el proceso por el cual los sólidos en
suspensión de tamaño grande, se eliminan del agua antes
de entrar en la factoría.
2. Coagulación: Consiste en la sedimentación de los sólidos
en suspensión formadas por material muy pequeño, en
lagunas o balsas de sedimentación (también conocidas
como clarificadores o depósitos de asentamiento.
Como coagulantes se pueden utilizar diferentes productos
químicos. Los más utilizados son los basados en aluminio.
3. Floculación: Se realiza para acelerar el proceso de
sedimentación. Es la agrupación de las partículas
coaguladas en el proceso de coagulación.
30
Es un mecanismo principal en la eliminación de la turbidez
del agua.
4. Sedimentación: También conocida como la clarificación, es
la eliminación de las partículas en suspensión, los flóculos
químicos, los precipitados y otros sólidos sedimentables por
efecto de la gravedad. De forma simple se puede decir que
separa el líquido de los sólidos.
5. Filtración: Algunas veces llamado proceso de pulido porque
implica la eliminación de partículas en suspensión, haciendo
pasar el agua por una capa de material poroso o granular,
arena por ejemplo. A medida que el agua fluye a través del
filtro se atrapan las partículas en suspensión.
6. Ablandamiento del agua: Los métodos más frecuentes
para reducir la dureza del agua son la descarbonatación en
las depuradoras grandes y el intercambio iónico en las
depuradoras pequeñas.
7. Desinfección: Proceso que inactiva los organismos
patógenos en el agua mediante químicos o agentes
equivalentes.
No supone eliminación de formas de resistencia.
Puede ser:
1. Primaria: Con la cual se matan los quistes de Giardia,
las bacterias y los virus.
31
2. Secundaria: Es el mantenimiento del desinfectante residual, que
evita vuelvan a crecer microorganismos en las tuberías de
distribución entre la planta depuradora y el consumidor.31
4. ANTECEDENTES INVESTIGATIVOS
LOYAGA RONDON, Paola Geovana.”Estudio microbiológico de la
contaminación de algunas superficies del consultorio odontológico del centro
de salud Pedro P. Diaz, Arequipa 2000”
Se analizaron 6 superficies del consultorio odontológico las cuales se hallan
más expuestas a la contaminación. Se determino que el 100% de las
muestras analizadas estuvieron contaminadas, el microorganismo
predominante fue estafilococos epidermis en un 66,7% así como
estreptococos no hemolíticos con 66.7% además se hallaron Micrococus
bacilos Subtilis, Estreptococos Viridans, también encontramos la presencia
de Enterobacter Aerógeno y Cándida albicans.
RONDÓN, José Luis. “Presencia microbiológica en portaimpresiones en
consultorios odontológicos del cercado de Arequipa, 2003.
31 Frank Spellman- Joanne Drinan. Ob. Cit. Pág. 218
32
En el presente trabajo de investigación la cantidad de portaimpresiones
contaminados por gérmenes se aprecio en gran número. Esto se debe
principalmente a que el odontólogo promedio no reflexiona o más bien no
cree que las portaimpresiones actúen como vehículo y reservorio de
gérmenes. Este hecho pone en evidencia que no se la ha concientizado
desde las aulas y laboratorios de la universidad sobre estos temas. En
cuanto al hecho se refiere cabe destacar que muchos otros odontólogos
esterilizan sus portaimpresiones pero los almacenan casi inmediatamente
después de que estos son esterilizados.
CORONADO DE LA LUZ, Adriana. “Contaminación del agua en el
consultorio” dental.
En la NOM-013-SSA2 se da la normatividad de la prevención integral para
la práctica odontológica social y privada, es por eso que el objetivo del
presente estudio es conocer el manejo y prevención que los odontólogos
utilizan para brindar agua de calidad a sus pacientes. Para ellos se
seleccionaron 9 consultorios, ubicados dentro de la delegación Gustavo A.
Madero. El criterio de inclusión utilizado fue: odontólogos que tengan en
servicio su consultorio dental dentro de la Delegación Gustavo A Madero. En
los 9 consultorios se aplicaron dos encuestas, una con la finalidad de
conocer el tipo de suministro que utiliza el odontólogo para la unidad dental y
la segunda para conocer el tipo de manejo que le dan al suministro. Así
mismo se tomaron tres tipos de muestras por consultorio, las cuales incluían:
400 ml de agua del medio de que se abastece cada unidad dental, 400ml de
la jeringa triple y 400ml del llena vasos, las cuales se colocaron en bolsas
estériles y se enviaron a analizar con un QFB. Los resultados muestran que
33
un 89% del agua utilizada en la unidad dental está contaminada y solo un
11% se encuentra libre de bacterias. Cabe mencionar que en la encuesta
aplicada a los 9 odontólogos solo el 20% tiene mantenimiento y precaución
en el manejo del agua. Se ha confirmado que el inadecuado manejo y
prevención de la contaminación en el suministro del agua ya sea de sistema
flush y tinaco provoca que haya crecimiento de bacterias.
5. HIPÓTESIS
Dado que en el Perú según el reglamento de calidad del agua para consumo
humano, establece la ausencia completa tanto de coliformes totales como
fecales en el agua y sabiendo que el agua utilizada en la clínica es de origen
subterránea, el cual sólo recibe desinfección por cloro y según la bibliografía
se indica de los factores favorables para la formación de películas
bacterianas en la red de distribución.
Es probable que el agua utilizada en la clínica no cumpla con lo establecido
en el reglamento de calidad del agua para consumo humano.
Capítulo II PLANTEAMIENTO
OPERACIONAL
34
II PLANTEAMIENTO OPERACIONAL
1. TÉCNICAS, INSTRUMENTOS Y MATERIALES DE VERIFICACIÓN
1. Técnica:
Consistirá en aplicar la técnica de observación directa y sistemática.
VARIABLES INDICADORES SUBINDICADORES TÉCNICA INSTRUMENTO
Condición
bacteriológica
Presencia
Coliformes totales NMP/100ml Coliformes fecales NMP/100ml
Observación directa y sistemática
Ficha de registro laboratorial
Ausencia
Coliformes totales Coliformes fecales
2. Instrumentos
1. Instrumento Documental
Como instrumento documental se aplicará:
2. La ficha de registro laboratorial
1. Equipo:
Como equipo se utilizará:
3. Incubadora
4. Baño termostático
5. Campana de flujo laminar
6. Refrigeradora
7. Autoclave
8. Estufa de esterilización
9. Balanza
35
1. Instrumental de Laboratorio
10. Frascos de vidrio de 250ml y 100 ml
11. Tubos de ensayo
12. Campanas de Durham
13. Placas petri
14. Varilla de vidrio
15. Mechero de bunsen
16. Propipetas
17. Pipetas
18. Micropipetas
19. Gradillas para tubos de ensayo
20. Probeta
21. Balón
22. Trípode
23. Ansas de inoculación
24. Pinzas estériles
1. Materiales
25. Agua de la fuente y de la red de distribución
26. Campos
27. Papel craft
28. Papel platino
29. Algodón
30. Guantes estériles
31. Etiquetas
32. Medio de cultivo
36
33. CAMPO DE VERIFICACIÓN
1. Ámbito Espacial
La investigación se realizo en el ámbito general de la clínica
odontológica y la zona del pozo de la Universidad Católica de Santa
María.
2. Ubicación Temporal
La investigación se realizo durante los meses de diciembre –mayo, por
tanto se tratara de una investigación transversal o seccional
3. Unidades de estudio
1. Unidades de análisis:
1. Agua de la fuente
2. Agua de la red de distribución
1. Opción: grupos
2. Manejo de los grupos
1. Identificación de los grupos:
Grupo A: Muestras de agua de la fuente
Grupo B: Muestras de agua de la red de distribución
2. Criterios de discriminación
1. Criterios de inclusión para el grupo A:
Muestra tomadas a 1m, 2m, y a 3m.
2. Criterios de inclusión para el grupo B:
Caños que sean utilizados normalmente por los alumnos.
Caños que no presenten fugas entre el tambor y el cuello.
37
3. Criterios de exclusión para el grupo A:
Muestra de la capa superficial o del fondo, donde puede haber
sedimento.
4. Criterios de exclusión para el grupo B:
Caños que no sean utilizados normalmente por los alumnos.
Caños que presenten fugas entre el tambor y el cuello.
3. Tamaño de los grupos
Datos:
Grupo A: Muestras de agua de la fuente
Se tomaron 24 muestras.
Grupo B: Muestras de agua de la red de distribución
El universo que son 42 caños.
1. Procedimientos:
La metodología empleada fue de acuerdo a lo propuesto en el Perú por
el reglamento de la calidad del agua de consumo humano:
1. Preparación de los frascos utilizados para tomar las
muestras:
Los Frascos para muestras de agua serán los de vidrio con
capacidad de 100 y 250 ml, neutro e incoloro de boca ancha.
En el cuello de los frascos se envolvió papel aluminio, ya sujeto
se sometió a esterilización en autoclave durante 45 minutos a 15
libras de presión (121º C).
38
2. Recolección de las muestras:
Para el presente trabajo se recolectaron:
Grupo A: 24 Muestras de agua de la fuente:
Las cuales fueron tomadas durante 8 días, con una frecuencia
de 3 veces por semana.
Grupo B: 42 Muestras de agua de la red de distribución
Las cuales fueron tomadas durante 14 días, es decir 3 caños por
día aleatoriamente escogidos.
3. Características generales para ambos grupos:
Lavarse manos y antebrazos con agua y jabón
Colocarse guantes y barbijo.
Proceder a tomar la muestra sin pérdida de tiempo y sin
enjuagar el frasco.
Se quitará la tapa y el protector de papel simultáneamente,
manejándolos como unidad, evitando que se contaminen para lo
cual será necesario sostener esta unidad hacia abajo.
Se debe dejar el espacio libre requerido para la agitación de la
muestra previa al análisis.
Efectuada la toma de muestra, debe colocarse la tapa con el
papel de protección e identificar las muestras para lo cual deben
etiquetarse los frascos y envases con la siguiente información:
Número de control para identificar la muestra
Fecha de muestreo.
Lugar de la extracción de la muestra.
39
Por último colocarse en hielera con bolsas refrigerantes o bolsas
de hielo cerradas para su transporte al laboratorio, a una
temperatura entre 4 y 10ºC, cuidando de no congelar las
muestras.
El periodo máximo que debe transcurrir entre la toma de
muestra y el inicio del análisis microbiológico en óptimas
condiciones de preservación y transporte es de hasta 6 horas.
4. Características individuales para cada grupo:
Grupo A: La recolección de muestras se llevo a cabo de la
siguiente manera:
Se sumergió el frasco en el tanque con un corcho previamente
esterilizado para evitar que entre agua de la superficie hasta una
profundidad de 1 m para la 1ra muestra, 2m para la 2da muestra
y 3m para la última muestra. Para lo cual una vez llegada a la
profundidad deseada se retira el corcho jalando el hilo que lo
sujeta y una vez cargado se retira de forma ágil y se cierra
inmediatamente.
Grupo B La recolección de muestras se llevo a cabo de la
siguiente manera:
Limpiándose el orificio de salida con una gasa estéril o torunda
de algodón impregnada de alcohol. Adicionalmente se calentara
a flama directa en los caños que no tengan dispositivos que
eviten el salpicado. Debe dejarse correr el agua
aproximadamente 3 min. hasta asegurarse que el agua que
40
contenían las tuberías ha sido renovada o que la temperatura
del agua sea estabilizada antes de tomar la muestra.
Por último se reducirá el volumen de flujo para permitir el llenado
del frasco sin salpicaduras.
5. Procesamiento de las muestras:
Técnica de tubos múltiples de Wilson para bacterias coliformes:
Colimetría
Para la prueba presuntiva de coliformes se utilizará el caldo Mac
conkey para lo cual la siembra se realizará de la siguiente
manera:
Número de tubos
Volumen de la
muestra
Volumen de
medio
Concentración del medio
3 10 ml 10 ml Doble
3 1 ml 10 ml Simple
3 0.1 ml 10 ml Simple
Incubación a 37 °C durante 24 a 48 horas.
Para la prueba confirmatoria los tubos que salgan positivos en el
medio Mac Conkey, se colocaran en medio Brila para coliformes
totales y en medio E.c. para coliformes fecales.
En medio Brila, la siembra será en tubos con 10ml, 6 asadas del
tubo positivo, y se incubará a 37ºc durante 24 a 48 horas.
En medio E.c., la siembra será en tubos con 10ml, 6 asadas del
tubo positivo, y se incubará a 44°C durante 24 horas.
41
Para hacer el cálculo del número más probable de coliformes en
100 ml se requiere de una tabla con respecto a las diluciones
hechas en este caso la tabla utilizada fue la siguiente:
Volumen de muestra ml NMP/100ml10 1.0 0.1
0 0 0 0 0 0 1 2 0 1 0 2 0 2 0 4 1 0 0 2 1 0 1 4 1 1 0 4 1 1 1 6 1 2 0 6 2 0 0 5 2 0 1 7 2 1 0 7 2 1 1 9 2 2 0 9 2 3 0 12 3 0 0 8 3 0 1 11 3 1 0 11 3 1 1 14 3 2 0 14 3 2 1 17 4 0 0 13 4 0 1 17 4 1 0 17 4 1 1 21 4 1 2 26
42
4. ESTRATEGIAS DE RECOLECCIÓN
1. Organización
Antes de la aplicación del instrumento se coordinará ciertas acciones
previas:
Obtención de la autorización del encargado del mantenimiento del
reservorio de agua.
Obtención de la autorización del director de clínica.
2. Recursos
1. Recursos humanos
Bachiller: Erika Lucy Diaz Amanca
Asesor: Mg. María del Socorro Barriga Flores.
2. Recursos físicos
Representado por las disponibilidades ambientales e
infraestructurales de: la clínica odontológica, el reservorio de
agua y el laboratorio de microbiología de la UCSM.
3. Recursos económicos
El presupuesto para la recolección de los datos y otras acciones
investigativas fueron plenamente autofinanciados.
4. Recursos institucionales
Clínica Odontológica de la UCSM.
Laboratorio de microbiología de la UCSM
43
5. ESTRATEGIA PARA MANEJAR LOS RESULTADOS
1. En el ámbito de sistematización
El procesamiento se realizó en cuadros estadísticos y computarizados,
de acuerdo a las siguientes operaciones:
1. Clasificación
Una vez obtenida la muestra así como la ficha de laboratorio, los
datos fueron ordenados en una matriz de sistematización.
2. Análisis de datos
Se empleo un análisis cualitativo, cuyo tratamiento se sintetiza
en el siguiente cuadro:
1. Plan de tabulación
Se utilizó cuadros de distribución de frecuencias con una
variable; frecuencias absolutas y porcentuales.
4.1.4 Graficación
Se emplearon gráficos de barras.
Variable
general Indicador
Carácter
estadístico
Escala de
medición Estadística descriptiva
Prueba
estadística
Condición
bacteriológica
Presencia
Cualitativo
Ordinal
Frecuencia absoluta
Frecuencia porcentual
1. Mediana
2. Media
3. Moda
4. Desviación estándar
5. Valor máximo y
mínimo
Chi cuadrado
Ausencia
44
2. En el ámbito de estudio de los datos
1. Metodología de la interpretación:
La jerarquización de los datos
Comparación de los datos entre sí.
Una apreciación crítica.
2. Modalidades interpretativas
Se optó por una interpretación subsiguiente a cada cuadro y una
discusión global de los datos.
3. Operaciones para la interpretación de cuadros
Se optó por la comparación.
4. Niveles de interpretación
Descripción con una variable.
3. En el ámbito de conclusiones
Las conclusiones fueron formuladas por indicadores respondiendo a las
interrogantes, objetivos e hipótesis del plan de investigación.
4. En el ámbito de recomendaciones
A nivel del ejercicio profesional.
A nivel de la aplicación práctica.
A nivel investigativo.
45
5. CRONOGRAMA DE ACTIVIDADES
ACTIVIDADES
NOVIEMBRE
DICIEMBRE
ABRIL
MAYO
1 2 3 4 1 2 3 4 1 2 3 4 1 2 3 4
Revisión bibliográfica
X
X
X
X
Presentación del proyecto de investigación
X
Recolección de datos
X
X
X
X
X
Procesamiento
X
X
Análisis
X
Capítulo III Resultados
46
CUADRO Nº 1
CONDICIÓN BACTERIOLÓGICA DE COLIFORMES TOTALES DEL AGUA EN LA FUENTE
Coliformes Totales N° de muestras
% de muestras
Presentes 0 0.0
Ausentes 24 100.0
Total 24 100.0
Fuente: Matriz de Datos
INTERPRETACIÓN:
El cuadro N°1 nos muestra los resultados del análisis efectuado respecto de la
condición bacteriológica del agua en la fuente que abastece a la clínica
odontológica de la UCSM, como se puede observar, se demostró la ausencia
de coliformes totales en todas las muestras examinadas para tal fin (las que
ascendieron a 24).
47
GRÁFICO Nº 1
CONDICIÓN BACTERIOLÓGICA DE COLIFORMES TOTALES DEL AGUA EN LA FUENTE
Fuente: Matriz de Datos
48
CUADRO Nº 2
CONDICIÓN BACTERIOLÓGICA DE COLIFORMES FECALES DEL AGUA EN LA FUENTE
Coliformes Fecales N° de muestras
% de muestras
Presentes 0 0.0
Ausentes 24 100.0
Total 24 100.0
Fuente: Matriz de Datos
INTERPRETACIÓN:
El cuadro N°2 nos muestra los resultados del análisis efectuado respecto de la
condición bacteriológica del agua en la fuente que abastece a la clínica
odontológica de la UCSM, como se puede observar, se demostró la ausencia
de coliformes fecales en todas las muestras examinadas para tal fin (las que
ascendieron a 24).
49
GRÁFICO Nº 2
CONDICIÓN BACTERIOLÓGICA DE COLIFORMES FECALES DEL AGUA EN LA FUENTE
Fuente: Matriz de Datos
50
CUADRO Nº 3
CONDICIÓN BACTERIOLÓGICA DE COLIFORMES TOTALES DEL AGUA EN LA RED DE DISTRIBUCIÓN
Coliformes Totales N° de muestras
% de muestras
Presentes 5 11.9
Ausentes 37 88.1
Total 42 100.0
Fuente: Matriz de Datos
INTERPRETACIÓN:
El cuadro N° 3 nos muestra los resultados del análisis efectuado respecto de la
condición bacteriológica del agua en la red de distribución de la Clínica
Odontológica de la UCSM; como se puede observar, se demostró la presencia
de coliformes totales en 5 puntos, lo que representa al 11.9% de contaminación
con coliformes totales respecto a las 42 muestras examinadas, en tanto que la
gran mayoría de los casos estuvo exenta de coliformes totales.
51
GRÁFICO Nº 3
CONDICIÓN BACTERIOLÓGICA DE COLIFORMES TOTALES DEL AGUA EN LA RED DE DISTRIBUCIÓN
Fuente: Matriz de Datos
52
CUADRO Nº 4
CONDICIÓN BACTERIOLÓGICA DE COLIFORMES TOTALES DEL AGUA EN LA RED DE DISTRIBUCIÓN SEGÚN NMP/100 ML
Coliformes Totales NMP/100 ml
Media (Promedio) 0.2381
Mediana 0.0
Moda 0.0
Desviación Estándar 0.65554
Valor Mínimo 0
Valor Máximo 2
Número de Unidades de Estudio 42
Fuente: Matriz de Datos
INTERPRETACIÓN:
El cuadro N° 4 nos muestra el número de coliformes totales, expresado en el
número más probable (NMP) de coliformes totales encontrados por 100 ml. de
muestra, pudiendo observar que el promedio fue de 0.2381 NMP/100 ml.
habiéndose encontrado un valor mínimo de 0 y uno máximo de 2 NMP/100 ml.
53
CUADRO Nº 5
CONDICIÓN BACTERIOLÓGICA DE COLIFORMES FECALES DEL AGUA EN LA RED DE DISTRIBUCIÓN
Coliformes Fecales N° de muestras
% de muestras
Presentes 0 0.0
Ausentes 42 100.0
Total 42 100.0
Fuente: Matriz de Datos
INTERPRETACIÓN:
El cuadro N° 5 nos muestra los resultados del análisis efectuado respecto de la
condición bacteriológica del agua en la red de distribución que abastece a la
Clínica Odontológica de la UCSM, como se puede observar, se demostró la
ausencia de coliformes fecales en todas las muestras examinadas para tal fin
(las que ascendieron a 42).
54
GRÁFICO Nº 4
CONDICIÓN BACTERIOLÓGICA DE COLIFORMES FECALES DEL AGUA EN LA RED DE DISTRIBUCIÓN
Fuente: Matriz de Datos
42
55
CUADRO Nº 6
COMPARACIÓN DE LA CONDICIÓN BACTERIOLÓGICA DE COLIFORMES TOTALES ENTRE EL AGUA DE LA FUENTE Y LA RED DE DISTRIBUCIÓN
COLIFORMES TOTALES
DISTRIBUCIÓN DE AGUA TOTAL
FUENTE RED
N° de muestras
% de muestras
N° de muestras
% de muestras
N° de muestras
% de muestras
Presentes 0 0.0 5 11.9 5 7.6
Ausentes 24 100.0 37 88.1 61 92.4
Total 24 100.0 42 100.0 66 100.0
Fuente: Matriz de Datos p = 0.150 (p ≥ 0.05) N.S.
INTERPRETACIÓN:
El cuadro N° 6 nos muestra la comparación de la condición bacteriológica entre
el agua en la fuente y en la red de distribución de la clínica odontológica de la
UCSM, pudiendo comprobarse la ausencia de coliformes totales en la fuente,
en tanto, en el 11.9% de la red de distribución se encontraron coliformes
totales. Sin embargo, a pesar de las diferencias, éstas no son estadísticamente
significativas, es decir, podemos afirmar que no hay contaminación de
coliformes totales en ambos puntos de muestreo.
56
GRÁFICO Nº 5
COMPARACIÓN DE LA CONDICIÓN BACTERIOLÓGICA DE COLIFORMES TOTALES ENTRE EL AGUA DE LA FUENTE Y LA RED DE DISTRIBUCIÓN
Fuente: Matriz de Datos
# de muestras
2437
5
57
CUADRO Nº 7
COMPARACIÓN DE LA CONDICIÓN BACTERIOLÓGICA DE COLIFORMES FECALES ENTRE EL AGUA EN LA FUENTE Y LA RED DE DISTRIBUCIÓN
COLIFORMES FECALES
DISTRIBUCIÓN DE AGUA TOTAL
FUENTE RED
N° de muestras
% de las muestras
N° de muestras
% de las muestras
N° de muestras
% de las muestras
Presentes 0 0.0 0 0.0 0 0.0
Ausentes 24 100.0 42 100.0 66 100.0
Total 24 100.0 42 100.0 66 100.0
Fuente: Matriz de Datos p = 1.000 (p ≥ 0.05) N.S.
INTERPRETACIÓN:
El cuadro N° 7 nos muestra la comparación del análisis de la condición
bacteriológica entre el agua en la fuente y en la red de distribución de la clínica
odontológica de la UCSM, pudiendo observarse la ausencia de coliformes
fecales tanto para la fuente como para la red, en el total de muestras que se
examinaron para ambos; es decir, podemos afirmar que no hay contaminación
de coliformes fecales en ambos puntos de muestreo.
58
GRÁFICO Nº 6
COMPARACIÓN ENTRE LA CONDICIÓN BACTERIOLÓGICA DE COLIFORMES FECALES ENTRE EL AGUA EN LA FUENTE Y LA RED DE
DISTRIBUCIÓN
Fuente: Matriz de Datos
# de muestras
59
DISCUSIÓN DE RESULTADOS
A partir del análisis microbiológico según la técnica de fermentación de tubos
múltiples de Wilson para la fuente; se obtuvieron resultados que indicaron
ausencia tanto de coliformes totales como fecales. Estas muestras fueron
tomadas a través del tiempo (diferentes fechas), lo cual le puede dar mayor
significancia).
Para la red de distribución, se examinaron a la totalidad de puntos ya que cada
uno de ellos presentaba un recorrido diferente, luego del respectivo análisis se
encontró presencia de coliformes totales en 5 de los 42 caños, con valores de 2
NMP/100 ml en todos los casos, valores que no se encuentran dentro de los
límites permisibles en el Perú, que se rige por la OMS.
Respecto a coliformes fecales, luego del análisis correspondiente, no se
encontraron en ninguno de los puntos que conforman la red de distribución de
agua en la Clínica Odontológica de la Universidad Católica de Santa María.
La no presencia de coliformes fecales, se considera como lo esperado en un
análisis de agua, tal como lo indica el Reglamento de la Calidad del Agua para
Consumo Humano emitido por Ministerio de Salud y la Dirección General de
Salud, lo cual está refrendado por la Organización Mundial de la Salud; el cual
es quizá el estándar más importante del agua y se usa universalmente pues es
base para la legislación de varias normas que se aplican en diferentes países.
Por tanto, la calidad de nuestra agua está dentro de los mejores estándares de
calidad, según las normas vigentes, en lo que respecta a coliformes fecales.
Sin embargo, la presencia de bacterias coliformes totales en la red de
distribución, no habiéndose encontrado en la fuente, se debería al recorrido
60
que hace el agua, a través de las tuberías, probablemente por la presencia de
averías, películas o limos de crecimiento en sus paredes, lo cual haría que
sean más resistentes a la cloración residual.
Además hay que tener en cuenta que el cloro tiene un tiempo de vida limitado,
el cual se ve afectado por la evaporación de sus gases o porque puede
consumirse debido a que reacciona con otros componentes minerales que se
encuentran habitualmente en el agua, por lo que al disminuirse su cantidad, las
bacterias quedan libres para realizar su actividad.
61
CONCLUSIONES
Primera: La condición bacteriológica del agua en la fuente cumple con lo
establecido en el Perú, según el reglamento de la calidad del agua para
consumo humano por MINSA y DIGESA.
Segunda: La condición bacteriológica del agua en la red de distribución cumple
con lo establecido en el Perú, según el reglamento de la calidad del agua para
consumo humano por MINSA y DIGESA; en lo que se refiere a coliformes
fecales, pero con respecto a los coliformes totales encontramos un valor fuera
de lo permitido el cual fue de 2NMP/100ml que es estadísticamente no
significativo pero para efectos de normatividad si se considera significativo.
Tercera: Existe semejanza estadística de la condición bacteriológica entre la
fuente y la red de distribución al no ser estadísticamente significativo lo
encontrado en la red de distribución. Pero resultarían diferentes los resultados
encontrados en ambos si nos basamos en normatividad.
62
RECOMENDACIONES
Para asegurarnos que la calidad bacteriológica del agua sea la ideal tenemos
que tener en cuenta los siguientes criterios:
1. Análisis periódico del agua para tener la seguridad de que el agua que
se recibe en la clínica está debidamente tratada.
2. Mantenimiento de la red de distribución.
3. Aumento de la presión del agua para contrarrestar la contaminación en
las tuberías.
4. Existe la opción de comprar botellas de agua ozonizada o destilada para
el caso de intervenciones de cirugía en los cuales se utilice la pieza de
mano con agua para evitar calentamiento del hueso durante la
osteotomía.
5. Siempre inspeccionar antes de utilizar el caño; para llenar la botella de la
unidad, que esté limpio al igual que el dispositivo que evita el salpicado.
6. Al llenar los depósitos de la unidad, debe abrirse la llave y dejar que
fluya el agua durante 1 minuto lo cual evitará que las bacterias que han
llegado a depositarse en la desembocadura de los caños a través del
aire sean lavadas.
63
BIBLIOGRAFIA
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interamericana. Madrid, España.
Chris M. Miller, Charles John Palenek. 2000. “Control de la infección y
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salud dental”, segunda edición. Editorial Harcourt .Madrid España.
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España
Joklin Wolfgang K., Zinsser. 1995. “Microbiología l”. Editorial
Panamericana. Madrid, España.
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Editorial Acribia. Zaragoza- España
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Real academia española. 2001 “Diccionario de la lengua española”.
Vigésima segunda edición. Editorial Espasa Calpe. Madrid España.
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Acribia. Zaragoza- España
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Stuart. T. Walker .1999. “Microbiología” Editorial Mc Graw- Hill
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3. odontologia.iztacala.unam.mx/...y.../oral_5w.htm
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5. britanialab.com.ar/esp/productos/b02/maconkeycaldo.htm
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8. www.jopesa.com.pe/.../Reglamento%20de%20la%20calidad%20del%20
agua%20para%20consum...
9. www.oas.org/dsd/.../Armoniz.EstandaresAguaPotable.pdf
66
GLOSARIO
ADA: Asociación dental americana
DIGESA: Dirección general de salud.
FDA: Federación dental americana.
MINSA: Ministerio de salud.
NMP: Número más probable
OMS: Organización mundial de la salud.
ANEXOS
FICHA BACTERIOLÓGICA SOBRE EL AGUA EN LA FUENTE DE LA CLÍNICA ODONTOLÓGICA
# Lugar Punto Fecha Prueba presuntiva
de coliformes
Prueba confirmatoria
Coliformes totales NMP/100 ml
Coliformes fecales NMP/100 ml
10ml 1ml 0.1ml 10ml 1ml 0.1ml 10ml 1ml 0.1ml 1 pozo 1m 13/04 - - - - - - - - -
2 pozo 2m 13/04 - - - - - - - - -
3 pozo 3m 13/04 - - - - - - - - -
4 pozo 1m 17/04 - - - - - - - - -
5 pozo 2m 17/04 - - - - - - - - -
6 pozo 3m 17/04 - - - - - - - - -
7 pozo 1m 20/04 - - - - - - - - -
8 pozo 2m 20/04 - - - - - - - - -
9 pozo 3m 20/04 - - - - - - - - -
10 pozo 1m 22/04 - - - - - - - - -
11 pozo 2m 22/04 - - - - - - - - -
12 pozo 3m 22/04 - - - - - - - - -
13 pozo 1m 24/04 - - - - - - - - -
14 pozo 2m 24/04 - - - - - - - - -
15 pozo 3m 24/04 - - - - - - - - -
16 pozo 1m 27/04 - - - - - - - - -
17 pozo 2m 27/04 - - - - - - - - -
18 pozo 3m 27/04 - - - - - - - - -
19 pozo 1m 29/04 - - - - - - - - -
20 pozo 2m 29/04 - - - - - - - - -
21 pozo 3m 29/04 - - - - - - - - -
22 pozo 1m 04/05 - - - - - - - - -
23 pozo 2m 04/05 - - - - - - - - -
24 pozo 3m 04/05 - - - - - - - - -
FICHA BACTERIOLÓGICA SOBRE EL AGUA EN LA RED DE DISTRIBUCIÓN DE LA CLÍNICA ODONTOLÓGICA
# Lugar
Prueba presuntiva de coliformes
Prueba confirmatoria Coliformes totales
NMP/100 ml Coliformes fecales
NMP/100 ml
10ml 1ml 0.1ml 10ml 1ml 0.1ml 10ml 1ml 0.1ml
1 caño - - - - - - - - - 0 NMP/100 ml 0 NMP/100 ml
2 caño - - - - - - - - - 0 NMP/100 ml 0 NMP/100 ml
3 caño - - - - - - - - - 0 NMP/100 ml 0 NMP/100 ml
4 caño - 1 - - 1 - - - - 2 NMP/100 ml 0 NMP/100 ml
5 caño - - - - - - - - - 0 NMP/100 ml 0 NMP/100 ml
6 caño - - - - - - - - - 0 NMP/100 ml 0 NMP/100 ml
7 caño - - - - - - - - - 0 NMP/100 ml 0 NMP/100 ml
8 caño - - - - - - - - - 0 NMP/100 ml 0 NMP/100 ml
9 caño - - - - - - - - - 0 NMP/100 ml 0 NMP/100 ml
10 caño - - 2 - - 1 - - - 2 NMP/100 ml 0 NMP/100 ml
11 caño - 1 - - 1 - - - - 2 NMP/100 ml 0 NMP/100 ml
12 caño - - - - - - - - - 0 NMP/100 ml 0 NMP/100 ml
13 caño - - - - - - - - - 0 NMP/100 ml 0 NMP/100 ml
14 caño - - - - - - - - - 0 NMP/100 ml 0 NMP/100 ml
15 caño - - - - - - - - - 0 NMP/100 ml 0 NMP/100 ml
16 caño - - - - - - - - - 0 NMP/100 ml 0 NMP/100 ml
17 caño - - - - - - - - - 0 NMP/100 ml 0 NMP/100 ml
18 caño - - - - - - - - - 0 NMP/100 ml 0 NMP/100 ml
19 caño - - - - - - - - - 0 NMP/100 ml 0 NMP/100 ml
20 caño - - - - - - - - - 0 NMP/100 ml 0 NMP/100 ml
21 caño - - - - - - - - - 0 NMP/100 ml 0 NMP/100 ml
22 caño - - - - - - - - - 0 NMP/100 ml 0 NMP/100 ml
23 caño - - - - - - - - - 0 NMP/100 ml 0 NMP/100 ml
24 caño - - - - - - - - -
0 NMP/100 ml 0 NMP/100 ml
25 caño - - - - - - - - - 0 NMP/100 ml 0 NMP/100 ml
26 caño - - - - - - - - - 0 NMP/100 ml 0 NMP/100 ml
27 caño - - - - - - - - - 0 NMP/100 ml 0 NMP/100 ml
28 caño - - - - - - - - - 0 NMP/100 ml 0 NMP/100 ml
29 caño - - - - - - - - - 0 NMP/100 ml 0 NMP/100 ml
30 caño - - - - - - - - - 0 NMP/100 ml 0 NMP/100 ml
31 caño - - - - - - - - - 0 NMP/100 ml 0 NMP/100 ml
32 caño - 1 - - 1 - - - - 2 NMP/100 ml 0 NMP/100 ml
33 caño - - - - - - - - - 0 NMP/100 ml 0 NMP/100 ml
34 caño - - - - - - - - - 0 NMP/100 ml 0 NMP/100 ml
35 caño - - 2 - - 1 - - - 2 NMP/100 ml 0 NMP/100 ml
36 caño - - - - - - - - - 0 NMP/100 ml 0 NMP/100 ml
37 caño - - - - - - - - - 0 NMP/100 ml 0 NMP/100 ml
38 caño - - - - - - - - - 0 NMP/100 ml 0 NMP/100 ml
39 caño - - - - - - - - - 0 NMP/100 ml 0 NMP/100 ml
40 caño - - - - - - - - - 0 NMP/100 ml 0 NMP/100 ml
41 caño - - - - - - - - - 0 NMP/100 ml 0 NMP/100 ml
42 caño - - - - - - - - - 0 NMP/100 ml 0 NMP/100 ml