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UNIVERSIDAD DE ORIENTE
NÚCLEO DE NUEVA ESPARTA
ESCUELA DE CIENCIAS APLICADAS DEL MAR
EVALUACIÓN DE LAS CARACTERISTICAS FÍSICAS, QUÍMICAS YBIOLOGÍCAS DE UN ALIMENTO PELETIZADO ELABORADO CON LA PULPA
DE CARIBE COLORADO (Pigocentrus cariba) PARA SER UTILIZADO EN EL
CULTIVO DE ORGANISMOS ACUÁTICOS.
Por:
Sardys Ramírez
Trabajo presentado ante el Departamento de Acuacultura para optar al título de Licenciado en
Acuacultura de la Universidad de Oriente.
Boca del Río, de julio del 2011.
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Aprobada en nombre de la Universidad
Por el siguiente Jurado Examinador:
Nombre:
Nombre:
Nombre:
Categoría de la Evaluación: _____________________
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DEDICATORIA
Principalmente a Dios todo poderoso por darme la razón de vivir, sabiduría y valor
en todos los momentos, tanto buenos y malos, durante mi trayectoria universitaria.
A mis padres por apoyarme en todo lo que emprendo.
A mis hermanos que siempre me han ayudado, son parte de mi aprendizaje.
A mi esposo Cesar por apoyarme en todos los momentos de mi vida.
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AGRADECIMIENTOS
A Dios todopoderoso, por darme la sabiduría para realizar esta tesis, sin el nada
de esto fuera sido posible.
A mis padres, José Ramírez y Coromoto, que siempre me apoyaron, por
enseñarme a luchar hasta alcanzar las metas propuestas, todo lo que soy se lo
debo a ustedes.
A mi esposo Cesar, que nunca fue obstáculo en mi tesis, siendo un gran apoyo
y entusiasta para que la terminara rápido.
A mis hermanos, Zamanta, Sammy, Rafael y Elizama, por enseñarme el valor
de compartir y de ayudar sin esperar nada a cambio, por apoyarme y creer en
mí.
A los Profesores Julio Cesar Rodríguez y Sara Levy, por su dedicación y
paciencia en los momentos más fuertes y duros de la tesis.
Al Instituto el Cría de Cumana por permitirme realizar la parte experimental en
ese lugar y al Lic Amílcar Vallenilla por tener la disponibilidad de enseñarme
durante mi estadía en ese lugar.
A mis compañeros Alfredo y Mariana por su ayuda y colaboración en los
momentos difíciles y a mi compañero Efraín, que en momentos de mucha
tensión me hacía reír.
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A mis amigas Zumara, Ruth y Vanesa, que siempre me animaron diciendo que
si lo lograría, que era difícil pero que continuara.
A todas las personas que de una u otra manera son parte de este logro, gracias.
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ÍNDICE
CONTENIDO PÁGINA
DEDICATORIA………………………………………………………... iii
AGRADECIMIENTO.…………………………………………………. iv
LISTA DE TABLAS………………………………………………… ... viii
LISTA DE FIGURAS…………………………………………………. ix
RESUMEN…………………………………………………………….. x
INTRODUCCIÓN……………………………………………………... 1
MATERIALES Y MÉTODOS………………………………………… 10
Descripción del Área de Estudio…………………………………… 10
Actividades de Campo……………………………………………… 10
Actividades de Laboratorio………………………………………… 10
Análisis Estadísticos……………………………………………….. 22
RESULTADOS Y DISCUSIÓN………………………………………. 23
Elaboración del Alimento Peletizado……………………………….. 23
Caracterización Física……………………………………………….. 25
Fracturas……………………………………………………... 25
Aglomeración………………………………………………… 26
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Número de pellets/ gramo……………………………………. 26
Densidad del pellets…………………………………………... 28
Presencia de finos…………………………………………….. 29
Hidroestabilidad………………………………………………. 30
Capacidad de absorción de agua………………………………. 33
Textura………………………………………………………… 35
Caracterización Química…………………………………………….. 36
Humedad………………………………………………………... 39
Cenizas por calcinación…………………………………………. 39Extracto etéreo………………………………………………….. 39
Proteínas………………………………………………………... 39
Fibra bruta………………………………………………………. 39
Determinación de cloruros………………………………………. 39
Prueba de Atractabilidad y Palatabiidad …………………………… 39
Conclusiones…………………………………………………………. 43
Recomendaciones…………………………………………………… 45
Bibliografía………………………………………………………….. 46
vii
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LISTAS DE TABLAS
TABLA Pag
1. Proporción (%) de los ingredientes utilizados en la elaboración delalimento peletizado………………………….................................................
24
2. Determinación de fracturas en los diferentes alimentos, el comercial y
el artesanal. ………………………………………………………………… 25
3. Determinación de aglomeración en los diferentes alimentos, comercial
y el artesanal………………………………………………………………... 26
4. Porcentaje de pérdida de proteína del alimento artesanal lixiviado en
un tiempo de 60 minutos…………………………………………………… 33
5. Valores obtenidos en el análisis proximal y cloruros del alimento
peletizado con Pigocentrus cariba como componente proteico……………. 39
6. Valores obtenidos en la determinación del grado de aceptación del
alimento elaborado mediante la prueba de atractabilidad, según la conducta
mostrada por los peces : 1-sin reacción, 2-orientación, 3-aproximación, 4-
captura-rechazo, 5-captura-ingestión……………………………………….. 40
7. Valores obtenidos en la determinación del grado de aceptación del
alimento elaborado mediante la prueba de Palatabilidad…………………... 42
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ÍNDICE DE FIGURAS
FIGURA Pag
1. Número de pellet por gramo de un alimento comercial (1)
y uno artesanal (2). Mediana (barra horizontal, central),
límite superior e inferior (barra vertical)………………….. 27
2. Densidad del pellet de un alimento comercial (1) y un
alimento artesanal (2). Mediana (barra horizontal, central),
límite superior e inferior (barra vertical)………………….. 29
3. Presencia de finos en alimento comercial (1) y alimento
artesanal (2). Mediana (barra horizontal, central), límite
superior e inferior (barra vertical)…………………………. 30
4. Porcentaje de hidroestabilidad de un alimento comercial y
uno artesanal por unidad de tiempo transcurrido de 15, 30
y 60 minutos. ……………………………………………... 32
5. Porcentaje de capacidad de absorción de un alimento
comercial y uno artesanal por unidad de tiempo
transcurrido de 15,30 y 60 minutos. ……………………… 34
6. Texturas de un alimento comercial (1) y uno artesanal (2).
Mediana (barra horizontal, central), límite superior e
inferior (barra vertical)……………………………………. 35
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RESUMEN
En el presente estudio se elaboró un alimento para peces y se evaluó las características
físicas, químicas y biológicas del alimento peletizado, hecho a base de caribe colorado(Pigocentrus cariba), para ser utilizado en el cultivo de organismos acuáticos,
comparándose los resultados obtenidos con los de un alimento comercial (Cachamarina). Se
determinaron las características físicas del alimento peletizado tales como: fracturas,
aglomeración, número de pellets/gramo, densidad del pellets, presencia de finos, estabilidad
en el agua, capacidad de absorción de agua y textura. Las fracturas en el alimento
comercial fue de 43,33% y el artesanal de 50% ; la aglomeración en el alimento artesanal
de 48% y el comercial de 50%; en cuanto al número de pellets/gramo el alimento artesanal
obtuvo mayor número de pellets por gramo que el alimento comercial, siendo la densidad
del pellets en el alimento artesanal de 1,73 g/cc; mientras que la del alimento comercial fue
de 1,83 g/cc. El alimento artesanal presentó 2,57% de presencia de finos; mientras que el
comercial 0,23%; La hidroestabilidad obtuvo valores promedios en un tiempo de 15
minutos de 8,45% para el alimento artesanal y 8,30% para el comercial, en un tiempo de 30
minutos 14,41% en el artesanal y 8,60% en el comercial y finalmente en 60 minutos con
9,50% para el artesanal y 12,56% en el comercial. Con respecto a la capacidad de absorción
obtuvo valores promedios en un tiempo de 15 minutos de 61,43% para el alimento artesanal
y 198,2% para el comercial, en un tiempo de 30 minutos 67,2% en el artesanal y 193,93%
en el comercial y finalmente en 60 minutos con 79,8% para el artesanal y 214,4% en el
comercial; mientras que la textura, en el alimento comercial fue de 172,88 Nw/g y la del
artesanal 20,73 Nw/g. En cuanto al análisis proximal del alimento artesanal, el extracto
etéreo fue de 24,63%, humedad 2,62%, ceniza 3,06%, proteína 29,82% fibra 0,86% y
cloruro 1, 11%. Se determinó el grado de aceptación a través de las pruebas de
atractabilidad y palatabilidad obteniendo resultados favorables para el alimento artesanal.
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INTRODUCCIÓN
El desarrollo de la acuicultura a nivel mundial se realiza a través de sistemas de
explotación semi-intensivos e intensivos, como se ha considerado de una manera general, y
requiere del suministro de cantidades considerables de fertilizantes y alimentos (Martínez et
al., 1989). Los primeros actúan de forma indirecta a través del incremento en la producción
de alimento vivo natural y los segundos de forma directa en forma de alimentos
“artificiales” exógenos (Tacon, 1989).
El alimento y los costos de alimentación generalmente constituyen la fracción más
significativa dentro de los costos de operación de las empresas dedicadas al cultivo en
ambos niveles de explotación (Tacon, 1989). De hecho, Saldaña (2009) resalta el rol de la
alimentación como importante y decisiva en la calidad final del producto, representando
entre un 50% y 70% de los costos, porcentajes que padecen una tendencia al alza debido a
la crisis energética y a la creciente demanda mundial de granos. Además, el empleo de
ciertas materias primas comunes a la industria de aves y cerdos, por ejemplo, ha llevado a
que el consumo llegue a niveles muy altos presentándose el problema de que no todas han
podido crecer al ritmo de la industria y han forzado sus precios al alza (Muñoz, 2004).
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En la actualidad se utilizan dos tipos de comprimidos: los densos o peletizados,
que se hunden en el agua y los extruídos, que por lo general flotan. Los comprimidos
extruídos son procesados a mayor humedad y temperatura que los comprimidos
densos, y después se hacen pasar a alta presión a través del extrusor. Como resultado
la mayor parte del almidón se gelatiniza y el comprimido sale del extrusor
parcialmente inflado. La formación de pelets extruídos en seco, involucra el uso de
distintas condiciones físicas para la compresión y que pueda resultar en muchosdiferentes productos. Ajustando la combinación de ingredientes y las condiciones de
cocción pueden ser producidos pelets flotantes o de hundimiento (Berman, 2007).
Por otra parte, el proceso de peletizado, que permite solo elaborar comprimidos
densos, en términos simples consiste en tomar materias primas finamente divididas,
algunas veces en polvo, impalpables y difíciles de manejar, que a través de la
aplicación de calor, humedad y presión mecánica se puedan transformar en partículas
más grandes y de naturaleza estable. Los pellets son usualmente formados
cilíndricamente y varían su diámetro desde 2,38 mm a 34,9 mm, a pesar que tamaños
más grandes que 22,2 mm resultan poco frecuentes. Normalmente el largo del pelet
es mayor que el diámetro, variando de 1,5 a 2,5 veces el diámetro (Muñoz, 2004).
Pero independientemente del proceso tecnológico empleado para la elaboración del
alimento, el control de calidad es muy importante para asegurar un buen consumo,
así como una baja tasa de conversión alimenticia, animales sanos y un incremento en
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los rendimientos de producción. Los aspectos a examinar en los alimentos se pueden
dividir en: físicos, químicos y biológicos (Cruz-Suárez et al., 2006).
Los aspectos físicos del alimento implican la evaluación de características como:
durabilidad, dureza, agrietamiento, fracturas, forma, longitud, finos, adhesión,
número de pelets/gramo, densidad, hidroestabilidad, capacidad de absorción de agua.
Las diferentes especies animales requieren propiedades físicas diferentes en sus
respectivos alimentos, lo que implica el uso de diferentes tecnologías de
procesamientos y diferentes estándares de calidad (Cruz-Suárez et al., 2006).
Los beneficios físicos y nutricionales que el alimento peletizado proporciona a los
animales acuáticos han sido señalados por varios investigadores, como: Cruz-
Suárez (1999) sobre la observación e importancia de las fracturas y aglomeración del
alimento en cultivo de camarón; los análisis cuantitativos y cualitativos de presenciade contaminantes o proporción de los compuestos presentes en el alimento, el tamaño
de la partícula y grado de mezclado con técnicas de observación al microscopio de
Bates (2006). En cuanto al número y tamaño del alimento, Wankowski (1979),
Tabachek (1988), Hechth y Peinar (1993), Ronald et al. (2003) realizaron estudios
sobre la sobrevivencia, crecimiento, canibalismo de peces carnívoros; en camarón los
estudios como el de Meyer y Eldin (1972). Muñoz (2004) analiza los factores que
afectan la flotabilidad en alimentos extruídos y peletizados. Obaldo (2002) reseña un
método de control de calidad de textura y producción de finos. En relación a la
estabilidad del alimento en el agua la mayoría de los trabajos se han efectuado en
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alimento de camarones como los de Aquacop (1978), Cruz-Suárez et al. (2001a),
Obaldo et al. (2002), Cruz- Suárez et al. (2006), entre otros.
En cuanto a la caracterización química del alimento consiste básicamente en la
evaluación de las proporciones de las principales macromoléculas en una forma
gruesa, como lo son: proteínas, carbohidratos solubles e insolubles, lípidos más la
cantidad de agua presente y de materia inorgánica, todos estos análisis se denominan
en su conjunto análisis proximal, grueso o de Weende (Abrams, 1965) que también se
realiza como control a las materias primas que entran en planta así como a las
excretas y tejidos en los ensayos de digestibilidad y depositación en cadáver, y es a
partir de estos datos y de las fracciones de vitaminas y minerales, que se consideran
los requerimientos nutricionales en la dieta de todas las especies acuáticas cultivadas
(Martínez et at ., 1989).
Con respecto al aspecto químico del alimento, se pueden mencionar algunas
investigaciones en las que se ha aplicado la metodología para determinar el análisis
proximal de dietas experimentales proporcionadas a organismos acuáticos, entre las
que se destacan: evaluación de dietas nutricionalmente densas en la curvina Scianus
ocellatus (Allen et al., 1999), crecimiento de juveniles de bagre de canal Ictalurus
punctatus alimentado con desechos del procesado de calamar (Martínez, 1999),
relaciones proteína/energía y proteína vegetal/animal óptimas en alimentos de
engorda para Litopenaeus vannamei y L. stylirostris (Cruz-Suaréz et al., 2000), dietas
con requerimientos proteicos de Litopenaeus vannamei (Velasco et al., 2000),
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utilización de probióticos como promotores de crecimiento en tilapia nilótica
Oreochromis niloticus (Lara et al., 2002), avances en la nutrición de Cherax
quadricarinatu, (Villarreal, 2002), tasa de ingestión y conducta alimenticia dereproductores de Litopenaeus vannamei (Álvarez et al., 2003), producción de
ensilado de pescado en baja escala para uso de emprendimientos artesanales (Copes
et al., 2006) y evaluación de diferentes proporciones de proteína animal en la dieta de
Clarias gariepinus (Llanes et al. 2008).
Dentro de la caracterización biológica existen pruebas como la determinación de
la atractabilidad (Álvarez, 2003) y de la palatabilidad (Martínez, 1999) que implican
la observación del comportamiento del organismo frente a la introducción del
alimento. Además de estas, autores como Steffens (1987), Tacon (1989), Hepher
(1993) resaltan los cálculos de tasa de crecimiento específica, factor de conversión de
alimento, eficiencia alimenticia, tasa de eficiencia proteínica, utilización proteínicaneta aparente como métodos para determinar la valoración biológica, y cuyo uso está
más extendido en la investigación en acuacultura y de hecho constituyen los índices
empleados por las empresas dedicadas al cultivo.
En el aspecto de atractabilidad del alimento, los trabajos que se han realizados en el
cultivo de peces son: Takaoka et al (1995) en el tambulero Takifugu rubripes, Harada
et al. (1996a) utilizaron juveniles del atún aleta amarilla Seriola quinqueradiata y de
alocha oriental Misgurnus anguillicaudatus, Bórquez y Cerqueira (1998) con
juveniles de róbalo Centropomus undecimalis. Asimismo se han realizado estudios
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del comportamiento alimenticio en crustáceos utilizando diversas fuentes atractantes,
entre ellos se puede señalar: Heinen (1980) quien realizó un estudio de los factores
químicos de comportamiento alimenticio en diferentes crustáceos, Takii et al. (1986,citado por Álvarez, 2003) evaluaron a la anguila japonesa, Hartati y Briggs (1993)
midieron la atracción en experimentos con Penaeus monodon, Mendoza et al. (1998)
emplearon Macrobrachium rosenbergii y Alvarez (2003) midió el tiempo de
atracción de reproductores de Litopenaeus vannamei, entre otros.
En cuanto a las pruebas de palatabilidad, se ha medido la ingestión de los diversos
alimentos ofrecidos en: anguila japonesa (Takii et al., 1986, citado por Álvarez,
2003), Penaeus vannamei (Costero y Meyer, 1993), P. monodon (Hartati y Briggs,
1993), Macrobrachium rosenbergii (Mendoza et al., 1998), juveniles de róbalo
(Borquez y Cerqueira, 1998), Ictalurus punctatus (Martinez, 1999), Perca
americana (Papatryphon y Soares Jr, 2000), P. vannamei (Holland y Borski, 1993),entre otros.
Existen otras pruebas mucho más específicas como lo son el perfil de
aminoácidos, ácidos grasos y la determinación de los factores tóxicos, que pueden
ser: antinutritivos, por contaminación natural, por tóxicos de origen antropogénico y
de metales pesados (Espinoza y Labarta, 1987).
En la elaboración de los alimentos o comprimidos para ser usados en el cultivo de
organismos acuáticos, la harina de pescado ha sido la fuente proteica fundamental
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incorporada en las dietas artificiales por su alto contenido en proteína (con
aminoácidos como la lisina, metionina y cistina), ácidos grasos polinsaturados ω3,
abundante en vitaminas principalmente del complejo B y vitamina D y mineralescomo calcio, fósforo entre otros (Álvarez et al., 2003).
En Venezuela se encuentran varios rubros pesqueros de poco valor comercial, pero
que revisten interés debido a su abundancia y facilidad de captura. Entre éstas se
encuentran los caribes, agrupados en cuatro géneros, Pygopristis, Pygocentrus,
Pristobrycon y Serrasalmus. El caribe colorado Pygocentrus cariba , es una especie
endémica venezolana de fácil captura, perteneciente al Superorden Ostariophysi,
Orden Characiformes, Familia Characidae; su carne es de excelente sabor y posee un
contenido proteico de 17,9%. Sin embargo, al igual que los demás caribes, ésta
especie presenta una estructura ósea altamente espinosa que lo hace poco atractivo
para la comercialización, situación que limita su aprovechamiento como recursoalimentario (Belén et al., 2007). Se encuentra ampliamente distribuido en los
canales principales y afluentes de ríos, esteros, caños y áreas inundadas, en donde es
frecuente encontrarlo formando cardúmenes, especialmente durante el período seco
(Machado y Fink , 1996). Actualmente, según las estadísticas de pesca continental del
INSOPESCA (2010) los porcentajes de producción son relativamente bajos.
En vista de la importancia que tiene para la actividad acuícola el tener alimentos
de buena calidad, en términos físicos, químicos y biológicos, por ser un factor
económico limitante en la acuacultura, y que ésta debe corroborarse con la aplicación
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de pruebas, cabe destacar que los acuacultores no solo se encargan de cultivos sino
que también de realizar estas diversas pruebas en el laboratorio, siendo difícil el
grado de aceptación por parte de la especie a cultivar antes de adquirir grandes lotesde alimento peletizado, en este sentido se propusieron los siguientes objetivos:
General:
Determinar las características físicas, químicas y biológicas de un alimento
peletizado elaborado a base de pulpa de caribe colorado (Pigocentrus cariba).
Específicos:
Elaborar un alimento peletizado utilizando la pulpa de caribe colorado
(Pigocentrus cariba) como componente proteico en el alimento.
Determinar las características físicas del alimento peletizadoelaborado a base de pulpa de caribe colorado como fuente proteica
en el alimento, tales como fracturas, aglomeración, número de
pellets/gramos, densidad del pellets, presencia de finos, estabilidad en
el agua, capacidad de absorción de agua y textura.
Determinar la composición proximal y cloruros del alimento
peletizado con Pigocentrus cariba como componente de aporte
proteico.
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Determinar el grado de aceptación del alimento elaborado mediante
una prueba de atractabilidad-palatabilidad.
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MATERIALES Y MÉTODOS
Trabajo de Campo:
Un total de 12 kg aproximadamente, de ejemplares de caribe colorado
(Pigocentrus cariba), fueron capturados en las lagunas de inundación del Orinoco
medio, conocidas como La Piedra y La Dormida, situadas al sureste de la población
de Caicara del Orinoco, Edo. Bolívar. Las muestras fueron trasladadas dentro de
cavas con capacidad de 43 litros con hielo hasta el Laboratorio de Tecnología de
Alimentos del Centro de Investigaciones Agropecuarias (Instituto Nacional de
Investigaciones Agropecuarias, INIA) del Edo. Sucre.
Trabajo de Laboratorio:
Primero, se procedió al descabezado y eviscerado manual de los peces de caribe
colorado, y posteriormente al deshuesado para la obtención de la pulpa, utilizando
una despulpadora mecánica marca Brader 694 (Rodríguez et al., 2001). Luego, se
colocó el pescado desmenuzado en bandejas de aluminio, y fueron llevados a la
estufa a una temperatura de 60°C durante 24 horas hasta peso constante. Una vez
seca la pulpa se trituró manualmente, hasta convertirse en harina. Esta se tamizó
para eliminar cualquier grumo.
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Elaboración del alimento peletizado
La harina de la pulpa del caribe colorado obtenida se mezcló con los demás
ingredientes: harina de trigo, harina de coroba, espinaca, agua, aceite vegetal y
vitaminas, con la ayuda de una mezcladora durante 4 minutos, hasta obtener una
mezcla homogénea. Posteriormente, en un molino con un disco adaptado para
producir pellets. El alimento peletizado, se colocó en bandejas de aluminio y se
extendieron para llevarlo a la estufa a 60 °C por 24 horas, para empacar y
almacenarlo.
Caracterización física
Además de realizar la caracterización física en el alimento artesanal, también seefectuó en el alimento comercial (cachamarina), según las siguientes pruebas de
Cruz-Suárez et at . (2006).
Fracturas. Mediante el empleo de una lupa estereoscópica Motic modelo SFC-11
con aumento de 1.5X y 2.5X para observar las posibles grietas que presentan el
alimento. El análisis se realizó por triplicado, al realizar la observación se tomaron 50
muestras de pellets de diversos tamaños al azar para observar las grietas que poseía
cada pellets.
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Aglomeración. Con el uso del mismo equipo de lupa se observó la adhesión de
pellets entre ellos, el tamaño de la partícula de los ingredientes (grado de molienda) y
la diferencia de color por la presencia de ingredientes mal dispersados (eficiencia demezclado). El análisis se realizó por triplicado, al realizar la observación se tomaron
50 muestras de pellets de diversos tamaños al azar, para observar la aglomeración se
partió el pellets para exponer al exterior su estructura interna.
Número de pellets/gramo. Para cuantificar el número de pellets por gramo de
muestra se pesó exactamente un gramo de muestra de alimento y por triplicado se
contabilizó el número de partículas presentes.
.
Análisis de la densidad del pellets (prueba de flotabilidad). Para ello se empleó el
método reportado por Wenger Manufacturing, Inc (2000), el cual consiste en medir
30 ml de agua en una probeta de 100 ml, se registró su volumen exacto, se pesaron100 g de muestra con una precisión de 0,01g en base seca. Luego por triplicado se
depositó las muestras de alimento en las probetas con agua, se hizo vibrar las probetas
manualmente unas 10 veces por segundo hasta eliminar las burbujas formadas. La
flotabilidad se calculó como el empuje del peso seco del pellets, por la cantidad de
agua desplazada por el mismo. se calculó la densidad del pellets con la siguiente
fórmula:
P = ms/(v2-v1) (1)
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P = densidad
ms = materia seca
V2 = volumen después de introducir el alimentoV1 = volumen antes de introducir el alimento (30 ml)
Presencia de finos. Se define como el porcentaje de partículas menores al tamaño
específico del alimento. Por triplicado se pesaron 100 g de alimento sobre un tamiz
Nº 18, previamente tarado, se tamizó hasta pesar completamente las partículas
inferiores a un mm. Finalmente se registró el peso del contenedor (pf) y calculó el
porcentaje de finos como:
% finos = pf - tara (2)
pf = peso del contenedor
Estabilidad en el agua (hidroestabilidad). Una muestra de alimento de 20 g por
triplicado se pesó en un tamiz, y al final del periodo de inmersión (15, 30 y 60
minutos), el tamiz con la muestra lixiviada se secó hasta peso constante; se expresó
en términos de porcentaje de pérdida de materia seca o de nutrientes o también suele
definirse como el tiempo de durabilidad (integridad) del alimento en el agua. La
pérdida de materia seca (PMS) se expresó de la manera siguiente:
% PMS= [(PAL - PDL)/ PAL] * 100 (3)
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% PMS = pérdida de materia seca
PAL= peso de alimento en base seca antes de lixiviarPDL= peso del alimento en base seca después de lixiviar
También se analizó la pérdida de proteína (%PP) en el alimento lixiviado a los 60
minutos, con la siguiente fórmula de Cruz-Suárez et al. (2009):
% PP= [(%P * 100) - (% PL) * (100 - %PMS)] / % P (4)
%PP = pérdida de proteína
%P = proteína en el alimento
%PL = proteína en el alimento lixiviado
%PMS = perdida de materia seca en el alimento
Capacidad de absorción de agua. Utilizando la metodología descrita por Cruz-
Suárez et al. (2006) la cual consistió en sumergir dentro de un recipiente 5 g de
pellets en agua destilada por triplicado, durante 15, 30 y 60 minutos, se eliminó el
exceso de agua por filtración a través de una malla tarada número 200 en un matraz
kitasato usando una trampa de vacío hasta que dejó de gotear y se reportó el peso
húmedo final con respecto al peso seco inicial de la muestra, en cada uno de los tres
tiempos de inmersión. La fórmula empleada para los cálculos fue:
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15
%Abs = 100 x (peso final – peso inicial)/peso inicial (5)
%Abs = Absorción del agua
Determinación de la textura. Con un texturómetro marca TA.XT2 equipado con
una celda Kremer. Se llevó a cabo el comprimido de cada pellet de forma individual
en 10 pruebas replicadas con la celda y determinó la fuerza de corte del alimento.
.
Caracterización química
En la determinación de la composición química del alimento elaborado, realizaron
las siguientes pruebas:
Humedad. Se define como el contenido de agua en cada uno de los ingredientes.
Se basa en el secado de una muestra en un horno y su determinación por diferencia de
peso entre el material seco y húmedo. Se pesó 5 g de la muestra previamente
macerado, se colocó en un horno a 105°C por un mínimo de 12 h y se dejó enfriar en
un desecador (AOAC, 1984). El porcentaje de humedad se obtuvo de la siguiente
manera:
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16
Cálculos:
Contenido de humedad (%) = 100[((B-A) - (C-A))/(B-A)] (6)
A = peso del contenedor seco y limpio (g)
B = peso del contenedor + muestra húmeda (g)
C = peso del contenedor + muestra seca (g)
Cenizas por calcinación. En un crisol de porcelana que previamente se calcinó y
se llevó a peso constante, se colocó de 2,5 a 10 g de muestra seca. Se colocó el crisol
en una mufla y se calcinó a 550°C por 12 horas, se dejó enfriar y pasó a un desecador
(AOAC, 1984).
Cálculos:
Contenido de ceniza (%)= 100*((C2 – C0)/(C1 – C0)) (7)
C1 = peso del crisol con muestra (g)
C2 = peso del crisol con ceniza (g)
C0 = peso del crisol a peso constante (g)
Extracto etéreo. Se realizó de acuerdo al método de Blight y Dyer (1959), el cual
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se describe a continuación:
Los matraces de extracción se sacaron del horno sin tocarlos con los dedos,enfriándose en un desecador y se pesaron con aproximación de miligramos,
pasaron en un dedal de extracción manejado con pinzas, de 5 g de la muestra seca con
aproximación de miligramos colocados en la unidad de extracción. Luego se
conectó al extractor el matraz con acetona a una proporción de 10 ml por g de
muestra. Al realizar la ebullición y se ajustó el calentamiento por hora.
Posteriormente evaporó la acetona por destilación. Colocando el matraz, se sacó el
extracto y se puso un envase de colección hasta que el solvente se evaporó y solo
quedó la grasa. Finalmente enfriaron los matraces en un desecador y se pesó con
aproximación de miligramos.
Cálculos:
Contenido de extracto etéreo (%) = 100((B - A)/C) (8)
A = peso del matraz limpio y seco (g)
B = peso del matraz con grasa (g)
C = peso de la muestra (g)
Proteínas. De acuerdo el método Kjeldahl según AOAC (1984).
Consistió en pesar con precisión 1g de muestra y colocar en el matraz
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Kjeldahl; se agregó 10 g de sulfato de potasio, 0.7 g de óxido de mercurio y 20 ml de
ácido sulfúrico concentrado. El matraz se colocó en el digestor en un ángulo
inclinado, y calentó a ebullición hasta que la solución se vio clara, se continúocalentando por media hora más. Seguidamente se dejó enfriar, durante el enfriamiento
se adicionó poco a poco alrededor de 90 ml de agua destilada y des-ionizada. Ya frío
se agregó 25 ml de solución de sulfato de sodio y se mezcló. Agregándose una perla
de ebullición y 80 ml de la solución de hidróxido de sodio al 40% manteniendo
inclinado el matraz. Formándose dos capas. Conectándose rápidamente el matraz a
la unidad de destilación, se colocó 50 ml del destilado conteniendo el amonio en 50
ml de solución indicadora. Al terminar de destilar, se removió el matraz receptor,
enjuagó la punta del condensador y se tituló con la solución estándar de ácido
clorhídrico.
Cálculos:
Nitrógeno en la muestra (%) = 100[((A × B)/C) × 0.014] (9)
Proteína cruda (%) = Nitrógeno en la muestra * 6.25 (10)
A = ácido clorhídrico usado en la titulación (ml)
B = normalidad del ácido estándar
C = peso de la muestra (g)
Fibra bruta. Se pesó con aproximación de miligramos de 2 gramos de la muestra
desengrasada y seca, colocada en un matraz el cual se adicionó 100 ml de la solución
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de ácido sulfúrico en ebullición, hirvió por 120 min, manteniendo constante el
volumen con agua destilada, moviendo periódicamente el matraz para remover las
partículas adheridas a las paredes. Se instaló un embudo Buchner con el papel filtrofiltrándolo por succión. Se lavó el papel filtro con agua hirviendo y fue transfirido el
residuo al matraz con ayuda de una pizeta conteniendo 200 ml de solución de NaOH,
lo cual hirvió por 60 min. Se filtró y lavó el residuo nuevamente con agua hirviendo,
con la solución de HCI y nuevamente con agua hirviendo, para terminar con tres
lavados con éter de petróleo, para posteriormente colocar el crisol en el horno a
105°C por 12 horas y enfrió en un desecador. Se pesó el crisol con el residuo y se
colocó en una mufla a 550°C por 3 horas; se dejó enfriar en un desecador y se pesó
nuevamente según AOAC (1984).
Cálculos:
Contenido de fibra cruda (%)= 100((A - B)/C) (11)
A = Peso del crisol con el residuo seco (g)
B = Peso del crisol con la ceniza (g)
C = Peso de la muestra (g)
Determinación de extracto libre de nitrógeno (ELN). Consistió en la
determinación de la fracción soluble de los carbohidratos y se determinó por
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diferencia entre 100% y las otras pruebas químicas que conforman el análisis
proximal (Abrams, 1965; Tacon, 1989).
Determinación de cloruros. A través del tratamiento de las muestra con dicromato
de potasio de acuerdo al método de COVENIN 1317-79 (1979b).
La extracción de los cloruros en agua caliente, fue por filtración, acidificación y
por adición al filtrado de un exceso de nitrito de plata. Se pesaron 10 g de la muestra
homogenizada en un beaker y le agregaron 100 ml de agua destilada, se dejó hervir
de 5 a 20 min, se pasó cuantitativamente a un balón volumétrico de 250 ml, fue
aforado con agua destilada (lavando el beaker y adiciono las aguas del lavado al
contenido del balón). Se filtró para neutralizar el filtrado con bicarbonato de sodio, se
tomó 25 ml del filtrado neutralizado según el contenido de sal, se agregó 1 ml de
dicromato de potasio, fue mezclado y titulado con la solución de nitrato de plata hastala aparición de un color rojo ladrillo.
Cálculos:
NCl = ml AgN03 x 0.00585 x 250 x 100 (12)
B x C
NCl = concentración de cloruros
ml AgN03 = volumen de nitrato de plata usado en la titulación
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0.00585 = gramos de sal equivalente a 1 ml de nitrato de plata
250 = volumen del balón
B = alícuota tomada para titularC = peso de la muestra
Prueba de Atractabilidad y Palatabilidad
Según Álvarez (2003) esta prueba consiste en la determinación del tiempo de
atracción de uno y tres organismos con el nombre de Molly dorado Poecilia latipina,
en acuarios separados; estos fueron escogidos de manera aleatoria, se trasladaron a
peceras limpias 24 horas antes de la prueba y se mantuvieron sin alimento durante
este período. El tiempo de atracción fue medido desde la introducción del alimento
hasta el primer arribo del animal hacia el mismo. Además se tomo en cuenta la
conducta mostrada por el organismo tal como lo señala Bórquez y Cerqueira (1998):1. Sin reacción: pez sin movimiento, 2. orientación: movimiento rápido dirigiendo
cabeza del pez al pellet, 3. aproximación: movimiento rápido hacia el pellet, 4.
captura-rechazo: pez toma el pellet en la boca pero lo escupe, 5. captura-ingestión:
pez consume el pellet.
Para determinar la prueba de palatabilidad se realizó una modificación al ensayo
de Costero y Meyers (1993, citado por Martínez, 1999), en cuanto al número de
organismos a emplear. Los organismos experimentales (1 y 2) fueron medidos y
pesados para ajustar la ración de alimentación correspondiente al 10% de su peso
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corporal. Al término de los 20 minutos, el alimento remanente se sifoneó para
verificar la cantidad ingerida en relación al peso inicial al mismo suministrado al
inicio del ensayo. Dicho alimento se colectó y se recibió en un tamiz de 2 mm dediámetro para enjuagarlo y eliminar las posibles heces en caso de que los organismos
hubieran evacuado. Posteriormente se secó el alimento en una estufa, marca Mermet
a 60°C durante 48 horas.
Métodos y Análisis Estadísticos
Los datos obtenidos fueron representados en tablas e histogramas de distribución
de frecuencias utilizando el programa Stargraphic plus versión 6,0.
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23
RESULTADOS Y DISCUSIÓN
Elaboración del alimento peletizado
Los ingredientes seleccionados para elaborar el alimento fueron: harina de Caribe
como principal fuente de proteína (18,50% de inclusión), según Camacho et al.(2006)
proporciona proteína (52,78%) y grasas (22,47%) los cuales son importante como
fuente de nutrientes de potencial utilidad como materia prima en alimentación animal,
harina de trigo empleada como fuente de carbohidratos (22,21% de inclusión), y
harina de coroba (22,21% de inclusión), que también suministra carbohidratos
(53,07%) y grasas (31,9%), (2,15%) de proteína y (3,35%) de fibra cruda de acuerdo
a Alemán et al. (2002). Además se agregó aceite vegetal en un 9,87% (Tabla 1). La
espinaca conformó un 11,10 % de la dieta. Según Suárez (2010), la espinaca es uno
de los vegetales con mayor cantidad de proteínas y fibra, el mayor potencial de las
espinacas son los minerales y vitaminas C y E que se encuentran presentes en ella,
mientras que también podremos encontrar provitamina A, todas de gran poder
antioxidante. Así mismo, proveedora de vitaminas del grupo B como B2, B6 o en
menor cantidad B3 y B1; ricas en hierro, calcio, magnesio, potasio, fósforo, yodo y
sodio. Todos estos minerales de gran ayuda para la absorción de los alimentos.
También posee ácido ferúlico, glutation, ácido beta-cumárico, ácido cafeico, y
carotenoides. Por esas razones se considera a la espinaca como uno de los vegetales
de mayor importancia nutritiva.
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Las vitaminas y minerales se suplementaron adicionando una pastilla de
Supradyn ® por cada kg de alimento elaborado, incorporándose 0,08 % en el
alimento elaborado (Tabla 1). El cual contiene vitaminas A, B1, B2, B6, B12, C, D3,E,H, acido fólico, nicotinamida, calcio, magnesio, hierro, cobre, zinc y molibdeno.
Tabla 1. Proporción (%) de los ingredientes utilizados en la elaboración del
alimento peletizado.
INGREDIENTES PORCENTAJE (%)
Harina de pescado 18,50
Harina de trigo 22,21
Harina de coroba 22,21
Espinaca 11,1
Aceite vegetal 9,87
Vitaminas 0,08
Subtotal 83,97
Agua 16,03
Total 100
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Caracterización física
Fracturas.
En las fracturas se obtuvo los siguientes valores promedios, para el alimento
comercial 43,33% y 50% para el artesanal, los cuales resultaron ser independiente del
tipo de alimento ( λ= 1,000; P > 0,05), por lo que ambos alimentos poseen gran
cantidad de fracturas (Tabla 2). Según Cruz-Suárez (1999), un alimento bien
procesado carece de fracturas y debe ser de apariencia uniforme en superficie. Las
fracturas se generan por defectos durante el proceso de elaboración, tamaño de
partícula de los ingredientes inadecuados, enfriamiento rápido de los pellets. Estas
fracturas pueden permitir que el agua penetre en el pellet y reduzca la estabilidad en
agua.
Tabla 2. Determinación de fracturas en los diferentes alimentos, el comercial y el
artesanal.
Alimento
comercial
Alimento artesanal
SI 130 150
NO 20 0
Prueba Chi-
cuadrado ( λ2)
p-valor = 1,0000
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Aglomeración.
La aglomeración obtuvo los siguientes valores promedios, para el alimento
comercial fue de un 50%; mientras que para el artesanal fue de 48%. Este factor
físico resultó ser independiente del tipo del alimento ( λ= 1,000; P ˃ 0,05, Tabla 3).
Según Akiyama y Chiang (1989) citado por Cruz-Suárez et al. (2009) y Cruz-Suárez
(1999), la aglomeración del alimento, o adhesión de pellet entre ellos, indica un
insuficiente secado antes de empacar, o que los alimentos se mojaron. El valornutricional de un alimento húmedo se puede deteriorar rápidamente. La apreciación
de adhesión del alimento puede realizarse a simple vista o mediante el empleo de un
microscopio estereoscópico.
Tabla 3. Determinación de aglomeración n en los diferentes alimentos, comercial
y el artesanal.
Alimento
comercial
Alimento artesanal
SI 150 144
NO 0 6
Prueba Chi-
cuadrada
P-valor =1,0000
N° de pellets por gramo.
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En el número de pellets por gramo el alimento comercial presentó menor
cantidad de pellets por gramo (4 unidades) que el alimento artesanal el cual obtuvo
mayor cantidad de pellets por gramo (9 unidades). Mostró diferenciasestadísticamente significativas entre las medianas de los tipos de alimentos (k= 0,049;
P ˂ 0,05). Según Akiyama y Chwang (1998) citado por Cruz-Suarez et al. (2006), el
hecho de suministrar una mayor cantidad de pellets por gramo da como resultado un
menor gasto de energía en la búsqueda de alimento y un crecimiento uniforme en
todos los animales ya que se asegura que el alimento esté disponible para todos los
animales. Parte de las diferencias entre los dos alimentos se debe a su forma ya que el
alimento artesanal es alargado y el comercial ovoide.
1 2
Alimentos
2,8
4,8
6,8
8,8
10,8
N°pellet_g
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Figura 1. Número de pellet por gramo de un alimento comercial (1) y uno artesanal
(2). Mediana (barra horizontal, central), límite superior e inferior (barra vertical).
Densidad de pellets.
La densidad de pellets obtuvo los siguientes valores: 1,73 g/cc para el alimento
artesanal y 1,83 g/cc para el alimento comercial. No se encontraron diferencias
significativas entre las medianas del pellet de los diferentes tipos de alimentos (k=
0,657; P > 0,05). Según Muñoz (2004) existen factores que afectan la flotabilidad del
pellet tal como la tensión superficial interface entre el alimento peletizado y el agua,
volumen, temperatura, salinidad, tipo de proceso de elaboración del alimento, etc. A
pesar que hubo diferencias entre el volumen de los tipos de alimentos y el tipo de
proceso de elaboración, éstas no fueron estadísticamente significativas. Las
densidades promedio de un alimento de camarón son de 1,15, 1,26, 1,36 g/cc (Cruz-
Suarez et al.,2006); cabe destacar que el alimento de camarones necesita tener estas
densidades para hundirse rápido.
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29
Figura 2. Densidad del pellet de un alimento comercial (1) y un alimento artesanal
(2). Mediana (barra horizontal, central), límite superior e inferior (barra vertical).
Presencia de finos.
La presencia de finos obtuvo valores para el alimento comercial de (0,23%)
observándose menor presencia de finos que en el alimento artesanal (2,57%). Existen
diferencias estadísticamente significativas entre las medianas de los diferentes tipos
de alimentos (k= 0,049; P ˂ 0,05). Según Obaldo (2002), la presencia de finos se
define como el porcentaje de partículas menores al tamaño especificado del alimento.
La producción de finos se empieza con un mal proceso de elaboración del alimento y
continúa a través del proceso de manejo de los alimentos hasta antes de que este sea
1 2
Alimentos
0
0,5
1
1,5
2
2,5
DensidadPellet
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30
1 2
Alimentos
0
1
2
3
4
%
Finos
consumido por los animales. Además aumenta la contaminación del medio, ya que
este alimento no será ingerido por los animales Cruz-Suárez (1999).
Figura 3. Presencia de finos en alimento comercial (1) y alimento artesanal (2).
Mediana (barra horizontal, central), límite superior e inferior (barra vertical).
Hidroestabilidad.
La hidroestabilidad obtuvo valores promedios en un tiempo de 15 minutos de
8,45% para el alimento artesanal y 8,30% para el comercial, en un tiempo de 30
minutos 14,41% en el artesanal y 8,60% en el comercial y finalmente en 60 minutos
con 9,50% para el artesanal y 12,56% en el comercial. El porcentaje de
hidroestabilidad resultó ser independiente del tipo de alimento ( λ= 0,0556; P ˂ 0,05)
al no encontrarse diferencias estadísticamente significativas, entre el alimento
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comercial y el artesanal. Esto quiere decir, que presentaron hidroestabilidad similar al
conservar su integridad en el agua. Según Cruz-Suarez et al. (2006) la
hidroestabilidad es una medida cuantitativa de la conservación de la integridad físicay química (nutrientes) del alimento en el agua. También suele definirse de manera
subjetiva, como el tiempo de durabilidad (integridad) del alimento en el agua. Una
buena estabilidad de pellet en el agua se define como la retención de la integridad
física del pellet con la mínima disgregación y lixiviación en el agua hasta ser
consumido por el animal, según Obaldo et al. (2002).
Hay factores que afectan la estabilidad de los pellets en el agua: 1) ingredientes: el
alimento refleja la calidad y propiedades funcionales de los ingredientes usados en la
formulación. El uso de ingredientes que tienen propiedades aglutinantes (harina de
trigo, harinas de algas) es importante para mejorar la calidad física del pellet y su
estabilidad en el agua Lim y Cuzon (1994), Cruz-Suárez et al. (2000); 2)
procesamiento (molienda, acondicionamiento, diámetro del pellet y enfriado) el grado
de molienda y la homogeneidad en el tamaño de partículas de los ingredientes
favorece un alto grado de gelatinización de los almidones lo que a su vez produce una
mejor estabilidad en el agua Obaldo et al. (2002); 3) aglutinantes: se ha demostrado
que los aglutinantes pueden afectar la digestibilidad, la capacidad de absorber o
retener agua y el valor nutritivo del alimento (Cruz et al., 2001b).
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Figura 4. Porcentaje de hidroestabilidad de un alimento comercial y uno artesanal
por unidad de tiempo transcurrido (T) de 15,30 y 60 minutos .
% Pérdida de proteínas.
El porcentaje en pérdida de proteína fue 12,60%, menos de la mitad de la cantidad
encontrada originalmente en el alimento, esto indica que a pesar de estar sumergido
durante una hora, conserva aun parte de su composición proteíca (Tabla 4).
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Tabla 4. Porcentaje de pérdida de proteína del alimento artesanal lixiviado en un
tiempo de 60 minutos.
% Proteína alimento % Pérdida de Proteína
29,82 12,60
Capacidad de absorción.
La capacidad de absorción obtuvo valores promedios en un tiempo de 15 minutos
de 61,43% para el alimento artesanal y 198,2% para el comercial, en un tiempo de 30
minutos 67,2% en el artesanal y 193,93% en el comercial y finalmente en 60 minutos
con 79,8% para el artesanal y 214,4% en el comercial. El porcentaje de capacidad de
absorción resultó ser dependiente del tipo de alimento, al encontrarse diferencias
estadísticamente significativas ( λ= 0,000; P ˂ 0,05). El alimento comercial presentó
mayor capacidad de absorción que el alimento artesanal (Figura 5), probablemente
porque el alimento comercial fue extruido. La absorción es la penetración y retención
de un líquido en un sólido. La propiedad de capacidad de absorción influye en los
polímeros para formar geles y producir suspensiones viscosas; la mayoría de las
proteínas globulares sin desnaturalizarse retienen de 20 a 50 g de agua por 100 g,
mientras las no globulares hasta 95 veces su peso en agua a 4°C (Badui, 1988). El
agua afecta la textura de los alimentos extruidos a base de cereales, plastificando y
aplanando la matriz almidón-proteínas, alterando la fuerza mecánica del producto
(Katz y Labuza, 1981). Los comprimidos extruídos (que por lo general flotan) son
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procesados a mayor humedad y temperatura que los comprimidos densos (que se
hunden en el agua), y después se hacen pasar a alta presión a través del extrusor.
Como resultado la mayor parte del almidón se gelatiniza y el comprimido saledel extrusor parcialmente inflado (Hepher, 1988).
Figura 5. Porcentaje de capacidad de absorción de un alimento comercial y uno
artesanal por unidad de tiempo transcurrido de 15, 30 y 60 minutos.
0
50
100
150
200
250
T 15 T 30 T 60
% a
l b c
Tiempo
Alimento comercial Alimento artesanal
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Textura.
El alimento comercial presentó mejor textura (172,88 Nw/g) que el alimento
artesanal (20,73 Nw/g) (Figura 6). La textura mostró diferencias estadísticamente
significativas entre las medianas de los tipos de alimentos (k= 0,000; P ˂ 0,05).
Según Cruz-Suarez et al. (2006), a mayor dureza, mayor resistencia a la presión
mecánica (menor fracturabilidad), mayor distancia recorrida hasta el primer punto de
quiebre (elasticidad), esto quiere decir, que mientras el alimento sea más duro el
alimento será más estable en el agua, hay menos desperdicios y la calidad del agua va
a durar más tiempo.
Figura 6. Texturas de un alimento comercial (1) y uno artesanal (2). Mediana
(barra horizontal, central), límite superior e inferior (barra vertical).
1 2
Alimento
0
40
80
120
160
200
T e x
t u r a s
Texturas(Nw/g)
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36
Análisis proximal
En la Tabla 5, se observa que el alimento artesanal presentó valores de 29,82%
proteína, 39,01% carbohidratos y 24,63% de extracto etéreo y 3,06% minerales. Al
comparar estos resultados con los obtenidos por Guevara (2003), se puede señalar
que los valores encontrados en proteínas en el presente trabajo son menores a los
determinados por este autor (52,59%) en alimentos comerciales para peces,
elaborados con harina de pescado. También, los valores encontrados en cuanto a
ceniza fueron mayores con un valor de 10,55 %. En cuanto a las grasas, los valores
obtenidos por Guevara (2003) fueron menores a los reportados en esta investigación
(21,7 %). En cuanto al valor obtenido en cloruro fue de 1,11%, siendo mayor el valor
de Garrido (1994) con un 50% de cloruro de colina utilizado para alimentos de peces.
Considerando el porcentaje de extracto etéreo (lípidos) se podría decir que el valor
dado en el alimento artesanal es mayor. Si se compara con el análisis proximal de
alimentos elaborados por empresas como Purina, está más cercano a los porcentajes
de lípidos de los alimentos iniciadores como nutripec 4418 C con 44% de proteína y
18% de grasas y nutripec 4418 L con 44% de proteína y 18% de grasa, mientras que
puritilapia 40 en etapa de inicio posee una humedad de 14%, ceniza de 10%, lípidos
de 8%, proteína de 40% y fibra de 5%, siendo sus valores superiores al alimento
elaborado con excepción de los lípidos que fue menor, pero la purigamitana 28 en
etapa de inicios posee una proteína de 28% siendo esta menor que la proteína
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37
obtenida en el alimento elaborado, lípidos 5%, fibra 6%, humedad 14% y ceniza 10%,
aproximándose la proteína a los valores del alimento artesanal más que los otros
alimentos elaborados comercialmente, siendo estos alimentos para alevines y crías depeces de clima cálido como la tilapia, la carpa, paco, pacotana y gamitana (Purina,
2008).
Por otra parte Macedo (1979) y Carneiro (1981) encontraron que el contenido
óptimo de proteína de una dieta para gamitana es de alrededor del 23%, mientras
Bautista et al. (2005) obtuvieron 26% de proteína de alimento para alevines de
hibrido de cachamay, Ortiz et al. (2007) obtuvieron 28% de proteína en alimento para
Colossoma macropomum y Acuña et al. (2002) evaluaron dos dietas comerciales
para alimentar híbrido de cachama y morocoto los cuales poseían una dieta de 24% y
la otra 28% de proteína, teniendo en cuenta que los valores proteicos dados, son
menores o similares al descrito en la tabla 5, teniendo este alimento un buen valor
proteico para alimentos de peces.
La elaboración de alimentos para peces debe cumplir diferentes requisitos que
aseguren su calidad, entre ellos los ingredientes utilizados, la formulación de las
dietas y los métodos de procesamiento empleados. Guevara (2003), señala que el
tipo de ingrediente y su nivel influyen fuertemente sobre la composición
nutricional del alimento, la formulación debe estar acorde con los
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requerimientos nutricionales de las especies a alimentar. Finalmente, el
procesamiento empleado podría afectar las características físicas y químicas del
alimento, entre ellos estabilidad en el agua, forma y tamaño, atractabilidad,palatabilidad y disponibilidad de nutrimentos.
Guevara (2003) señala que cada especie animal sujeta a cultivo/crianza tiene
diferentes requerimientos de nutrientes desde el punto de vista cuantitativo y
cualitativo (proteínas, carbohidratos, grasa, fibras, vitaminas como minerales), las
cuales varían de acuerdo a la edad, tamaño, estado fisiológico, temperatura del agua,
calidad del agua, etc. El conocimiento exacto del requerimiento para cada nutriente
permite eliminar esos excesos que pueden implicar un alto costo y un detrimento en
la rentabilidad, de igual manera, una dieta mal balanceada puede provocar retrasos en
el crecimiento de los animales en cultivo lo que también implica problemas en la
rentabilidad.
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Tabla 5. Valores obtenidos en el análisis proximal y cloruros del alimento
peletizado con Pigocentrus cariba como componente proteico.
Pruebas Porcentajes
Extracto etéreo 24,63
Humedad 2,62
Ceniza 3,06
Proteína 29,82
Fibra cruda 0,86
Extracto libre de nitrógeno 39,01
Cloruro 1,11
Atractabilidad
En lo que respecta a la atractabilidad, en la tabla 6 se puede observar que el pez 1
obtuvo la conducta 2 y 4 que fue la orientación dirigiendo su cabeza al pellet y la
captura-rechazo , el pez toma el pellet en la boca pero lo devuelve, la conducta 2 fue
a los 7 segundos y la conducta 4 a los 25 segundos; el pez 2 obtuvo la conducta 1 que
es sin reacción el pez no tuvo movimiento, durante 30 minutos; el pez 3 obtuvo la
conducta 5 captura- ingestión , el pez consumió el pellet a los 30 segundos; el pez 4
obtuvo la conducta 1 sin reacción el pez no tuvo movimiento durante 30 minutos y el
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pez 5 obtuvo la conducta 5 captura – ingestión, el pez consumió el pellet en dos
oportunidades a los 5 minutos con 50 segundos y a los 10 minutos con 47 segundos.
Según Álvarez (2003), esta metodología es práctica para observar el comportamientoalimenticio de un pez no cultivado previamente, sin embargo para peces comerciales,
el uso de dietas prácticas (purificadas o no purificadas) brinda datos más precisos de
producción como crecimiento, tasa de ingestión, eficiencia de asimilación y/o factor
de conversión alimenticia.
Tabla 6. Valores obtenidos en la determinación del grado de aceptación del
alimento elaborado mediante la prueba de atractabilidad, según la conducta mostrada
por los peces: 1-sin reacción, 2-orientación, 3-aproximación, 4-captura-rechazo, 5-
captura-ingestión.
PECES Conducta Tiempo
1 2-4 7-25 seg
2 1 30 min
3 5 30 seg
4 1 30 min
5 5 5 min 50 seg y 10
min 47seg
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Palatabilidad
La palatabilidad de los peces resultó ser independiente del tipo de alimentosuministrado, al no encontrarse diferencias estadísticamente significativas ( λ =
0,2512; P ˃ 0,05) antes y después de la ingesta.
Según Salcedo et al. (2008) los alimentos formulados, mejoran la palatabilidad, la
textura y estabilidad de los mismos; además, son importantes como fuente de ácidos
grasos esenciales, para un crecimiento normal y una buena sobrevivencia de los
peces.
A pesar de no haber diferencias estadísticamente significativas, se observa que el
residuo de alimento colectado y secado en la estufa tiene un peso superior al alimento
suministrado al principio de la prueba, esto probablemente debido a que al momento
de sifonear los residuos del alimento se recolectaron también residuos provenientes
del mismo acuario y de heces de los peces, a pesar de haber pasado por el tamiz y por
un enjuague.
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Tabla 7. Valores obtenidos en la determinación del grado de aceptación del
alimento elaborado mediante la prueba de Palatabilidad.
Pez (gr) 1 Pez (gr) 2
Cantidad de alimento
suministrado antes de
la ingesta (gr)
0,087 0,087
Cantidad de alimento
seco después de la
ingesta (gr)
0,65 0,65
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CONCLUSIONES
El alimento elaborado a base de pulpa de caribe colorado (Pigocentrus
cariba) obtuvo un nivel proteico de 29,82%.
Las fracturas en el alimento artesanal fue de 50% y el comercial de 43,33%.
La aglomeración en el alimento artesanal de 48% y el comercial de 50%.
El número de pellets/ gramos del alimento artesanal fue de 9 unidades y el
alimento comercial 4 unidades.
La densidad del alimento artesanal fue de 1,73 g/cc y la del alimento
comercial fue de 1,83 g/cc, estadísticamente fueron similares, a pesar que
estos poseen volumen y procesos de elaboración diferentes.
El alimento artesanal presento 2,57% de presencia de finos y el alimento
comercial 0,23%.
La hidroestabilidad obtuvo valores promedios en un tiempo de 15 minutos de
8,45% para el alimento artesanal y 8,30% para el comercial, en un tiempo de
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30 minutos 14,41% en el artesanal y 8,60% en el comercial y finalmente en 60
minutos con 9,50% para el artesanal y 12,56% en el comercial.
La capacidad de absorción obtuvo valores
promedios en un tiempo de 15 minutos de 61,43% para el alimento artesanal y
198,2% para el comercial, en un tiempo de 30 minutos 67,2% en el artesanal y
193,93% en el comercial y finalmente en 60 minutos con 79,8% para el
artesanal y 214,4% en el comercial.
La textura en el alimento artesanal fue de 20,73
Nw/g y el alimento comercial
172,88 Nw/g.
El alimento artesanal obtuvo buena aceptación
por los peces.
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RECOMENDACIONES
Ajustar el método de preparación de manera que
sea posible mejorar las condiciones de textura y disminuir la presencia de
finos.
Realizar pruebas de aceptación y evaluación del
crecimiento en peces que sean cultivados para el consumo humano.
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