plagas bosque nativo

Manual de Plagas yEnfermedades delBosque Nativo en Chile

© 2008

Inscripción NºSantiago de Chile

El presente libro no puede ser reproducido, transmitido oalmacenado, ni en todo ni en parte, sea por procesosmecánicos, ópticos, químicos, electrónicos, electroópticoso por fotocopia, sin permiso de los autores.

ISBN Nº

Primera Edición:1.000 ejemplares, Julio de 2008

Impresión:Editora e Imprenta Maval Ltda.San José 5862, San MiguelSantiago de Chile

Portada y Diseño:www.alfonsoquiroz.cl

Diagramación:Maritza Toledo

Impreso en Chile

Manual de Plagas yEnfermedadesdel Bosque Nativoen Chile

Asistencia para la Recuperación y Revitalización de los Bosques

Templados de Chile, con énfasis en los

Nothofagus Caducifolios

P R O Y E C T O D E C O O P E R A CI Ó N T É C N I C A T C P / C H I / 3 1 0 2 (A)

4 Manual de Plagas y Enfermedades del Bosque Nativo en ChilePágina

Agradecimientos xxIntroducción xx

Capítulo 1AGENTES DE DAÑO BIOTICOS 131.1. Insectos defoliadores 13

1.1.1. Brachysternus prasinus (Guérin, 1830) (Coleoptera: Scarabaeidae) 131.1.2. Cerospastus volupis (Konow, 1899) (Hymenoptera: Pergidae) 151.1.3. Coniungoptera nothofagi (Rentz y Gurney, 1985) (Orthoptera: Tettigonidae). 181.1.4. Euphitecia sp. (Lepidoptera: Geometridae) 211.1.5. Hylamorpha elegans (Burmeister, 1844) (Coleoptera: Scarabaeidae) 251.1.6. Oiketicus sp. (Lepidoptera: Psychidae) 281.1.7. Omaguacua longibursae (Parra y Beèche, 1986) (Lepidoptera: Geometridae). 321.1.8. Ormiscodes amphinome (Fabricius, 1775) (Lepidoptera: Saturniidae) 351.1.9. Ormiscodes cinnamomea (Feisthamel, 1839) (Lepidoptera: Saturniidae) 381.1.10. Ormiscodes lupino (Lepidoptera: Saturniidae) 431.1.11. Polythysana cinerascens (Philippi, 1859) (Lepidoptera: Saturniidae) 451.1.12. Subanguina chilensis (Vovlas, Troccoli y Morens, 2000) (Tylenchida: Anguinidae) 481.1.13. Warreniana sp. (Lepidoptera: Geometridae) 51

1.2. Insectos succionadores 531.2.1. Complejo Cinara cupressi (Buckton, 1881) (Hemiptera: Aphididae) 531.2.2. Saissetia coffeae (Walker, 1852) (Hemiptera: Coccidae) 591.2.3. MetAleurodicus pigeanus (Baker y Moles, 1923) (Hemiptera: Aleyrodidae) 611.2.4. Neuquenaphis spp. (Hemiptera: Aphididae) 63

1.3. Insectos taladradores de madera 651.3.1. Calydon submetallicum (Blanchard, 1851) (Coleoptera, Cerambycidae) 651.3.2. Cheloderus childreni (Gray, 1832) (Coleoptera: Cerambycidae) 681.3.3. Chilecomadia valdiviana (Philippi, 1859) (Lepidoptera: Cossidae) 741.3.4. Epistomentis pictus (Lap. y Gory, 1841) (Coleoptera: Buprestidae) 801.3.5. Gnathotrupes barbifer (Schedl, 1967) (Coleoptera: Curculionidae, Scolytinae) 821.3.6. Gnathotrupes caliculus (Schedl, 1975) (Coleoptera: Curculionidae, Scolytinae) 851.3.7. Gnathotrupes consobrinus (Eichhoff, 1878) (Coleoptera: Curculionidae, Scolytinae) 881.3.8. Gnathotrupes fimbriatus (Schedl, 1955) (Coleoptera: Curculionidae, Scolytinae) 911.3.9. Gnathotrupes herbertfranzi (Schedl, 1973) (Coleoptera: Curculionidae, Scolytinae) 951.3.10. Gnathotrupes impressus (Schedl, 1975) (Coleoptera: Curculionidae, Scolytinae) 971.3.11. Gnathotrupes longipennis (Blanchard, 1851) (Coleoptera: Curculionidae, Scolytinae) 1001.3.12. Gnathotrupes longiusculus (Schedl, 1951) (Coleoptera: Curculionidae, Scolytinae) 1031.3.13. Gnathotrupes nanus (Eichhoff, 1878) (Coleoptera: Curculionidae, Scolytinae) 1061.3.14. Gnathotrupes nothofagi (Schedl, 1975) (Coleoptera: Curculionidae, Scolytinae) 108

Indice de Contenidos

5Manual de Plagas y Enfermedades del Bosque Nativo en Chile Página

1.3.15. Gnathotrupes pustulatus (Schedl, 1975) (Coleoptera: Curculionidae, Scolytinae) 1101.3.16. Gnathotrupes vafer (Schedl, 1975) (Coleoptera: Curculionidae, Scolytinae) 1121.3.17. Gnathotrupes velatus (Schedl, 1975) (Coleoptera: Curculionidae, Scolytinae) 1161.3.18. Grammicosum flavofasciatum (Blanchard, 1843) (Coleoptera: Cerambycidae) 1191.3.19. Holopterus chilensis (Blanchard, 1851) (Coleoptera: Cerambycidae) 1201.3.20. Lautarus concinnus (Philippi, 1859) (Coleoptera: Cerambycidae) 1261.3.21. Sibylla livida (Germain, 1901) (Coleoptera: Cerambycidae) 1281.3.22. Strongylaspis limae (Guérin-Menèville) (Coleoptera: Cerambycidae) 130

1.4. Insectos taladradores de corteza 1321.4.1. Achenoderus octomaculatus (Fairmaire y Germain, 1861) (Coleoptera: Cerambycidae) 1321.4.2. Chenoderus testaceus (Blanchard, 1851) (Coleptera: Cerambycidae) 1331.4.3. Hylurgonotus antipodus (Eggers, 1942) (Coleoptera, Curculionidae, Scolytinae) 1351.4.4. Notiopostega atrata (Davis, 1987) (Lepidóptera: Opostegidae) 1371.4.5. Rhyephenes humeralis (Guérin, 1839) (Coleoptera: Curculionidae) 1401.4.6. Rhyephenes maillei (Gay y Solier, 1839) (Coleoptera: Curculionidae) 1431.4.7. Sinophloeus destructor (Eggers, 1942) (Coleoptera: Curculionidae, Scolytinae) 1461.4.8. Tettigades chilensis (Amyot y Serville, 1843) (Hemiptera: Cicadidae) 1491.4.9. Xylechinosomus bicolor (Philippi y Philippi, 1864) (Coleoptera: Curculionidae, Scolytinae) 153

1.5. Insectos dañadores de conos y semillas 1551.5.1. Amblycerus dispar (Sharp, 1885) (Coleoptera: Bruchidae) 1551.5.2. Perzelia arda (Clarke, 1978) (Lepidoptera: Oecophoridae) 157

1.6. Insectos dañadores de flores 1631.6.1. Frankliniella rodeos (Moulton, 1933) (Thysanoptera: Thripidae) 163

1.7. Insectos dañadores de raíces 1651.7.1. Sibylla integra (Fairm. et Germain, 1859) (Coleoptera: Cerambycidae). 165

1.8. Insectos dañadores de ramas, brotes y plantulas 1671.8.1. Callisphyris semicaligatus (Fairm. y Germ., 1859) (Coleoptera: Cerambycidae) 1671.8.2. Colobura alboplagiata (Blanchard, 1851) (Coleoptera: Cerambycidae) 1711.8.3. Hornius grandis (Philippi y Philippi, 1864) (Coleoptera: Chrysomelidae) 1731.8.4. Rhopalomyia nothofagi (Gagné, 1973) (Diptera: Cecidomyiidae) 176

1.9. Enfermedades 1801.9.1. Armillaria sp. (Agaricales: Marasmiaceae) 1801.9.2. Ceratocystis sp. (Microascales: Ceratocystidaceae) 1821.9.3. Cyttaria sp. (Cyttariales: Cyttariaceae) 1841.9.4. Mikronegeria alba (Oehrens y Peterson, 1978) (Uredinales: Mikronegeriaceae) 1871.9.5. Mikronegeria fagi (Dietel y Neger, 1899) (Uredinales: Mikronegeriaceae) 189



1.10. Animales 1921.10.1. Castor canadensis (Kuhl, 1820) (Rodentia: Castoridae) 1921.10.2. Cervus elaphus (Linnaeus, 1758) (Artiodactyla: Cervidae) 1961.10.3. Lama guanicoe (Müller, 1776) (Artiodactyla: Camelidae) 2001.10.4. Sus scrofa (Linnaeus, 1758) (Artiodactyla: Suidae) 2031.10.5. Lagomorfos 206

Capítulo 2AGENTES DE DAÑO ABIOTICOS 2112.1. Erupción volcánica 211

2.2. Granizo 212

2.3. Inundación 214

2.4. Nieve 216

2.5. Radiación 218

2.6. Viento 219

BIBLIOGRAFÍA 221



Indice de Figuras

Figura 1. Adulto de Brachysternus prasinus 13Figura 2. Adulto de Cerospastus volupis 15Figura 3. Adulto de Coniungoptera nothofagi 18Figura 4. Hojas de Roble afectadas por Euphitecia sp., Cerro El Roble 23Figura 5. Hojas de Roble afectadas por Euphitecia sp., Cerro El Roble 24Figura 6. Adulto de Hylamorpha elegans 25Figura 7. Prosospis chilenis afectado por Oiketicus sp., Copiapo 31Figura 8. Adulto de Omaguacuaa longibursae 32Figura 9. Adulto de Ormiscodes amphimone 35Figura 10. Larva de Ormiscodes amphimone 36Figura 11. Daño ocasinado por Ormiscodes amphimone 37Figura 12. Larva de Ormiscodes cinnamomea 38Figura 13. Rodales afectados por Ormiscodes cinnamomea 42Figura 14. Larva de Ormiscodes lupino 43Figura 15. Daño ocasionado por Ormiscodes lupino. 44Figura 16. Adulto macho de Polythysana cinerascens 45Figura 17. Adulto hembra de Polythysana cinerascens 45Figura 18. Hojas de N. obliqua afectadas por Subanguina chilensis 49Figura 19. Hojas de N. alpina afectadas por Subanguina chilensis 50Figura 20. Bosques de N. pumilio afectados por Warreniana sp. 51Figura 21. Bosques de N. pumilio afectados por Warreniana sp. 52Figura 22. Adultos de Cinara cupressi sobre Thuja sp. 53Figura 23. Bosques de Austrocedrus chilensis atacados por Cinara cupressi 57Figura 24. Adultos de Saissetia coffeae sobre rama de Schinus molle 59Figura 25. Adultos de MetAleurodicus pigeanus sobre hoja de Quillaja saponaria 61Figura 26. Hojas de Quillaja saponaria afectadas por MetAleurodicus pigeanus 61Figura 27. Adulto de Neuquenaphis spp. 63Figura 28. Adulto de Calydon submetallicum 65Figura 29. Adulto de Cheloderus childreni 68Figura 30. Galeria larval de Cheloderus childreni 73Figura 31. Restos de Cheloderus childreni sobre Nothofagus dombeyi 73Figura 32. Adulto de Chilecomadia valdiviana 74Figura 33. Larva de Chilecomadia valdiviana 75Figura 34. Daño ocasionado por Chilecomadia valdiviana 79Figura 35. Daño ocasionado por Chilecomadia valdiviana 79Figura 36. Adulto de Epistomentis pictus 80Figura 37. Declive de Gnathotrupes barbifer 83Figura 38. Declive de Gnathotrupes caliculus 86Figura 39. Adulto de Gnathotrupes consobrinus 88Figura 40. Adulto hembra de Gnathotrupes fimbriatus 91Figura 41. Gnathotrupes fimbriatus, cabeza de la hembra 92Figura 42. Dos sistemas de galerias de Gnathotrupes fimbriatus, en Pinus contorta 93Figura 43. Gnathotrupes fimbriatus, sistema de galerias en Nothofagus pumilio 94


Figura 44. Adulto de Gnathotrupes herbertfranzi 95Figura 45. Adulto de Gnathotrupes impressus 97Figura 46. Adulto de Gnathotrupes longipennis 100Figura 47. Sistema de galerias de G. longiusculus (arriba) y G. fimbriatus (abajo), ramas pequenãs de

Nothofagus, Río Rubens, Región de Aysén del General Carlos Ibáñez del Campo 105Figura 48. Lado de Gnathotrupes nanus 107Figura 49. Adulto de Gnathotrupes pustulatus 110Figura 50. Focos de Nothofagus muertos y muriendo por ataque de Gnathotrupes en El Manso,

RN Cerro Castillo 114Figura 51. Acumulación de aserrín en la base de Nothofagus atacados en El Manso,

RN Cerro Castillo 114Figura 52. Segmento vertical de corteza muerta de N. dombeyi, RN Coyhaique 115Figura 53. Ataque reciente de Gnathotrupes en fuste de Nothofagus, RN Coyhaique 115Figura 54. Lado de Gnathotrupes velatus 117Figura 55. Adulto de Grammicosum flavofasciatum 119Figura 56. Adulto de Holopterus chilensis 120Figura 57. Larva de Holopterus chilensis 121Figura 58. Galeria larvales de Holopterus chilensis 124Figura 59. Daño ocasionado por Holopterus chilensis 125Figura 60. Trozas de Nothofagus obliqua afectadas por Holopterus chilensis 125Figura 61. Adulto de Lautarus concinnus 126Figura 62. Adulto de Sibylla livida 128Figura 63. Adulto de Strongylaspis limae 130Figura 64. Adulto de Achenoderus octomaculatus 132Figura 65. Adulto de Chenoderus testaceus 133Figura 66. Adulto hembra de Hylurgonotus antipodus 135Figura 67. Galeria curvada de Hylurgonotus antipodus, en rama de Araucaria araucana,

Parque Nacional Conguillio 136Figura 68. Adulto de Notiopostega atrata 137Figura 69. Galerias de Notiopostega atrata 139Figura 70. Adulto de Rhyephenes humeralis 140Figura 71. Adulto de Rhyephenes maillei 143Figura 72. Adulto de Sinophloeus destructor 146Figura 73. Rama muerta (con S. destructor) de Araucaria araucana, R. N. Malalcahuello,

Región de La Araucania 147Figura 74. Rama muerta con orificios de entrada de S. destructor en Araucaria araucana,

R. N . Malalcahuello, Región de La Araucania 148Figura 75. Daño en hojas y corteza de una rama pequeña de Araucaria araucana, R. N. Malalhuello,

Región de La Araucania 148Figura 76. Rama con daño de Tettigades chilensis 151Figura 77. Rama con daño de Tettigades chilensis 151Figura 78. Adulto de Xylechinosomus valdivianus 153

Indice de Figuras


Figura 79. Galerias de X. valdivianus, en corteza de rama grande de Araucaria araucana,R. N. Malalhuello, Región de La Araucania 154

Figura 80. Galerias de X. valdivianus, en rama grande de Araucaria araucana,R. N. Malalhuello, Región de La Araucania 154

Figura 81. Adulto de Amblycerus dispar 155Figura 82. Semillas de Geoffroea decorticans afectadas por Amblycerus dispar 156Figura 83. Orificios de Amblycerus dispar 156Figura 84. Daño ocasionado por Perzelia arda 162Figura 85. Adulto de Frankliniella rodeos 163Figura 86. Adulto de Sibylla integra 165Figura 87. Adulto de Callisphyris semicaligatus. 167Figura 88. Daño ocasionado por Calliphyris semicaligatus 169Figura 89. Adulto de Colobura alboplagiata 171Figura 90. Adulto de Hornius grandis 173Figura 91. Adulto de Rhopalomyia nothofagi 176Figura 92. Cuerpos frutiferos de Armillaria sp. 181Figura 93. Hifas de Armillaria sp. 181Figura 94. Cyttaria sobre fuste de Nothofagus 185Figura 95. Rama de Nothofagus antarctica afectada con Cyttaria sp. 186Figura 96. Acículas de Araucaria araucana afectadas por Mikronegeria fagi 190Figura 97. Decoloración amarillo pálida de acículas de Araucaria araucana 191Figura 98. Dientes de Castor canadensis 193Figura 99. Bosque de Nothofagus pumilio afectados por la construcción de diques 195Figura 100. Castorera de Castor canadensis 195Figura 101. Bosques de Nothofagus pumilio afectados por inundaciones

ocasionadas por Castor canadensis 195Figura 102. Adulto de Cervus elaphus 196Figura 103. Bosques de Nothofagus pumilio afectados por ramoneo de Lama guanicoe 202Figura 104. Manada de Lama guanicoe dañando bosques de Nothofagus pumilio 202Figura 105. Adulto de Sus scrofa 203Figura 106. Daño ocasionado por conejo 210Figura 107. Daño por granizo 213Figura 108. Daño por inundación 215Figura 109. Daño por nieve 217Figura 110. Daño por nieve 217Figura 111. Bosques de Nothofagus pumilio afectados por daño de viento 220Figura 112. Bosques de Nothofagus pumilio afectados por daño de viento 220

Indice de Figuras


En el marco del Proyecto deCooperación Técnica TCP/CHI3102 A,“Asistencia para la recuperación yrevitalización de los bosques templadosde Chile, con énfasis en los Nothofaguscaducifolios” se han generado una seriede vínculos profesionales, situación queha hecho posible cumplir a cabalidad cadauno de los objetivos propuestos en laformulación inicial de esta iniciativa, es

así como se constituye de vitalimportancia agradecer la colaboración quehan brindado las siguientes personas:

Personal de Organización de lasNaciones Unidas para la Agricultura y laAlimentación (FAO), Sres (as) JoséAntonio Prado, Margarita Flores, MarcioPortos, Froylan Castañeda, Gillian Allard,Elisa Morgera, José Graziano da Silva,Carlos Marx Carneiro, Juan Anjari e IsabelLabbe.

Consultores nacionales einternacionales que han contribuido amaterializar cada una de las actividadespropuestas, Sres. José Bava, RubénPeñaloza, Dominique Hervé y WilliamCiesla.

Agradecimientos


Además, es necesario destacar elimportante apoyo que han brindadoprofesionales de la Corporación NacionalForestal en cada una de las etapas delproyecto, siendo fundamental agradecera la Sra. Catalina Bau, Directora Ejecutivade la Corporación, Sres. (as) EduardoGándara, Luis Duchens, Juan ClaudioRodríguez, Ricardo Yoma, FernandoBascuñan, Rolando Rodríguez, MarioAcuña, Luis Cárdenas, José Urrutia, JuanRomero, Felipe Venegas, Francisco Pozo,Jorge Quappe, Alvaro Rojas, JulioFigueroa, Thomas Menzel, Oscar Pontigo,Cristian Contador, Jaime Garrido, JuanGamin, Jorge Aichele, German Pando,Aliro Gascon, Manuel Henríquez, MarcosNarváez, Ramón Solis, Cesar León, JoséLarson, Pamela Duhalde, Hugo

Bahamondez, Juan Pablo Garcinuño,Michael Arcos, Cristian Ruiz, NelsonMoncada, José Miguel Torres, RafaelMedina, Sandra Farías, PatricioGonzález, Max Vergara y WilfredoGonzález.

Por su parte también se retribuye elaporte realizado por los (as) Sres. (as)Dolly Lanfranco, Cecilia Ruiz, Franciscadel Fierro, Ariel Camousseight, BárbaraSaavedra, Hans Grosse, Diego González,Gastón González, Alex Strodthoff yAlfonso Quiroz.


La gran riqueza natural de Chiledescansa en gran parte en su recursoforestal nativo, el que con más de 13millones de hectáreas, presenta unaimportante diversidad biológica en flora yfauna en su gran mayoría endémica. Unade las principales amenazas a lasustentabilidad del recurso forestal nativochileno es el efecto producido por plagasy enfermedades, estimándose que porejemplo, cerca de un 30% de los 5millones de hectáreas de bosquescaducifolios de Nothofagus se encuentraafectado en toda su distribucióngeográfica.

El problema además radica en eldesconocimiento general de los agentesde daño y su interacción, tanto positivacomo negativa, con árboles individuales,poblaciones y comunidades vegetales.Esto ha imposibilitado la toma de medidasconcretas que permitan mitigar y prevenirlos impactos ambientales, sociales y

económicos provocados por el deteriorosanitario de estos bosques.

Ante un escenario como el actual, enel que se pronostican grandes eimportantes cambios ecológicos globalesy locales, es seguro que las interaccionesagente – hospedero se verán alteradas,observándose por ejemplo modificacionesen las etapas de desarrollo y las tasas dereproducción de los agentes, los nivelesde resistencia de los hospederos ycambios fisiológicos propios de estasinteracciones. Además, condicionesclimáticas inéditas pueden constituirnuevos tipos de estrés abióticos para losárboles. En este contexto, y como puntode inicio, es básico describir, determinary jerarquizar las causas e interrelacionesentre los factores que desencadenan losprocesos de deterioro y declinación de losbosques naturales, a modo de facilitar latoma de decisiones de tipo político ytécnico.

En consideración a la relevancia delproblema, el Estado chileno, en conjuntocon la Organización de las NacionesUnidas para la Agricultura y laAlimentación (FAO), desarrollaron durante

Introducción


los años 2007 y 2008 el proyecto decooperación técnica (TCP) “Asistenciatécnica para la recuperación yrevitalización de los bosques templadosde Chile, con énfasis en los Nothofaguscaducifolios”, ejecutado por la CorporaciónNacional Forestal (CONAF).

El proyecto potenció el desarrollo deprofesionales chilenos para enfrentar elproblema sanitario de los bosquesintegralmente, desde el reconocimiento delos agentes y la sintomatología asociadaa ellos, hasta la aplicación de técnicasde manejo forestal para la prevención ymitigación de los daños.

Como resultado final, el proyectodesarrolló un Plan de Acción Nacional, conun nuevo paradigma de manejosustentable del bosque, integrando elconcepto de protección forestal en laspolíticas y estrategias de desarrollosostenible.

Lo anterior pretende crear nuevaslíneas de investigación en sanidad forestaly reforzar las ya existentes, enfatizandoen la capacitación y la transferenciatecnológica a todos los actores relevantes

del sector forestal chileno, con el objetivode contribuir a la recuperación de losecosistemas degradados, generartécnicas de manejo forestal sustentable,recuperar e incrementar el valoreconómico de los predios con bosquenativo, integrar a pequeños propietarios ala economía forestal y desarrollar unabase institucional capaz de impulsarestrategias y planes de mejoramiento delos recursos forestales de la nación.

El presente trabajo, pretende constituirun puente entre las ciencias básicas yaplicadas, reuniendo de manera sencillay concisa todos los antecedentesbibliográficos conocidos para 72 agentesde daño bióticos y abióticos,complementado con observaciones dedaño en terreno no publicadas realizadasa lo largo de los años por especialistasnacionales y extranjeros, sumado a unaserie de imágenes que grafican el daño yla sintomatología de los procesos dedegradación del bosque.

Insectosdefoliadores

Brachysternus prasinusCerospastus volupisConiungoptera nothofagiEuphitecia sp.Hylamorpha elegansOiketicus sp.Omaguacua longibursaeOrmiscodes amphinomeOrmiscodes cinnamomeaOrmiscodes lupinoPolythysana cinerascensSubanguina chilensisWarreniana sp.

16 Manual de Plagas y Enfermedades del Bosque Nativo en Chile

A G E N T E S D E D A Ñ O B I O T I C O SI n s e c t o s d e f o l i a d o r e s

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11111



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Hospederos:• Nothofagus dombeyi

(Mirb.) Oerst. (Coihue),

• Nothofagus antarctica(G. Forster) Oerst. (Ñirre),

• Nothofagus obliqua(Mirb.) Oerst (Roble),

• Nothofagus pumilio(Poepp. et Endl.)Krasser (Lenga)(Artigas, 1994).

Distribución:Se encuentra en Chile desde la Región de Valparaíso a la Región deMagallanes y La Antártica Chilena (Artigas, 1994).

Sinonimia:• Brachysternus fulvipes

Guérin,• B.viridis Lap.

Nombre común:• Pololo verde grande,• San Juan grande.

Figura 1.Adulto de Brachysternus prasinus(A. Alvarado).

(Guérin, 1830) (Coleoptera: Scarabaeidae)Brachysternus prasinus


A G E N T E S D E D A Ñ O B I O T I C O SI n s e c t o s d e f o l i a d o r e s 11111

DescripciónLarva:

Escarabeiforme, con una longitud totalentre 24 a 27 mm, curvada ventralmente,de color blanco; cabeza castaño oscuro,dura, con fuertes mandíbulas; el extremoposterior del abdomen es abultado yligeramente más oscuro; patas biendesarrolladas, terminadas en una uña(Artigas, 1994).

Adulto:Aspecto general de escarabeido, con

una longitud total entre 21 a 23 mm delargo por 12 a 13 mm de ancho, de colorverde oscuro brillante. Cabeza con elborde anterior y bordes laterales formandouna suave curva continua, quillada,suavemente curvada hacia arriba. Élitrosde color verde más claro que la cabeza yel pronoto, con puntuacionesnotablemente menos profundas que lasdel mesonoto. Parte ventral del cuerpo yde la cabeza densamente cubierta depelos blancos que ocultan el tegumento;las patas castaño claro con pelos ralosblancos, contrasta fuertemente con elfondo piloso (Artigas, 1994). Esta especiepuede confundirse con H. elegans, sinembargo esta última no presenta sucuerpo totalmente cubierto de pelos(Figura 1).

Aspectos biológicosArtigas (1994), afirma que este insecto

tiene ciclo de vida anual, similar aHylamorpha elegans (Burmeister),encontrándose los adultos desdenoviembre a febrero, las larvas desdeenero a noviembre y el estado pupaldesde septiembre hasta noviembre(Durán, 1952; Gara et al., 1980).

Su capacidad de dispersión es alta,debido a que, tanto las larvas como losadultos son de hábitos polífagos, nosiendo específicos de un hospedero enparticular, además del hecho, que lahembra posee una buena capacidadvoladora.

DañoEl adulto provoca la defoliación de los

árboles afectados principalmente en losmeses de noviembre y febrero (Durán,1963; Gentili y Gentili, 1988; Artigas,1994).

El síntoma más común es la reducciónde la masa foliar ocasionando una pérdidade crecimiento.

Los insectos actúan a lo largo de todala fase vegetativa del árbol, especialmentedurante la madurez.

Manejo IntegradoNo existen antecedentes de técnicas

de manejo integrado.



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Sinonimia:No tiene.

Nombre común:• Mosca Sierra del Raulí.

Hospederos:• Nothofagus alpina

(Poepp. et Endl.)Oerst. (Raulí).

• Nothofagus obliqua(Mirb.) Oerst. (Roble)(Puentes, 1979;Cerda et al., 1981;Artigas, 1994).

(Konow, 1899) (Hymenoptera: Pergidae)Cerospastus volupis

Figura 2.Adulto de Cerospastus volupis(A. Alvarado).

Distribución:Se encuentra en Chile desde la Región de La Araucania a la Región de LosLagos (Artigas, 1994). Puentes y Duhalde (1994), reporta que se ha detectadoen la provincia de Bío-Bío.



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DescripciónHuevo:

Recién puesto es ovalado, alargado,de un color verde muy intenso; mide 1,5a 1,8 mm de largo por 0,8 mm de ancho.

Los huevos maduros son esféricos,color amarillento, miden 1,86 a 1,37 mmde largo y ancho respectivamente(Puentes, 1979; Cerda et al., 1981;Artigas, 1994).

Larva:Alargada, mide hasta 24 mm de

longitud en su último estadio; de colorverde oscuro bril lante las másdesarrolladas y las más jóvenes de colorverde claro.

Cabeza hipognata, más ancha quelarga, globosa, presenta un par de ocelossimples rodeados de un círculo negro.Tegumento grueso, especialmente en elmesotórax y metatórax, con prominentesproyecciones laterales desde las cualesnacen tubérculos semejantes a láminascartilaginosas, de color blanco brillante.

Una línea amarilla dorso central quecontrasta fuertemente con el color verdedel resto del cuerpo, divide la larva en todasu longitud (Artigas, 1994).

Las patas son de color negro yterminan en una uña, poseen notoriassetas filamentosas de color blanco(Puentes, 1979; Gara et al., 1980; Cerdaet al., 1981; Artigas, 1994; Baldini et al.,1994; Puentes y Duhalde, 1994).

Adulto:La hembra de color amarillo brillante

dorado, de 12 a 14 mm de largo. Cabezacon el vértice oscuro, hundido, dividido porun surco medial; cara y vértice ligeramentearrugados; antenas alargadas,

engrosadas suavemente hacia el ápice,de 15 a 19 segmentos, de color ocreoscuro, negras hacia la base (Artigas,1994).

Protórax con dos franjas amarillas;pronoto y mesopleura cubiertos demicropubescencia blanquecina; mesonotomás bien liso; postescutelo grande,aplanado, triangular. Patas amarillas conel ápice de las tibias y tarsos oscuros.Alas amarillo verdosas con venas negras;estigma amarillo, más oscuro hacia lacosta. Abdomen castaño claro amarillentocon pequeñas manchas blancas en elprimer tergito; cercos grandes, contiguos.Ovipositor en forma de sable, agudo,serrado (Artigas, 1994).

El macho, similar a la hembra, difiereen su menor tamaño; color general negroexcepto los esternitos del abdomen, loscuales son de color amarillo doradobrillante. Las antenas son más cortaspero con más segmentos, en total 22 a23, disminuyendo el tamaño de éstoshacia el ápice (Puentes, 1979; Gara etal., 1980; Cerda et al., 1981; Artigas, 1994;Puentes y Duhalde, 1994) (Figura 2).

Aspectos biológicosLas hembras oviponen, en la Región

de los Lagos, entre fines de noviembre yfines de enero. Las larvas se encuentrandesde mediados de diciembre hastaprincipios de marzo; Puentes y Duhalde(1994), extienden este período hasta lasegunda semana de abril. Las pupas sepresentan desde la tercera semana deseptiembre a la última de diciembre.

Los adultos, desde la tercera semana



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de octubre hasta la tercera semana deenero. Esta especie tiene una solageneración al año (Puentes, 1979; Garaet al., 1980; Cerda et al., 1981; Artigas,1994; Puentes y Duhalde, 1994).

El adulto efectúa la oviposición en elenvés de las hojas; las hembras, posadasen el haz de la hoja, atraviesan con suovipositor serrado y pegan cada huevoindividualmente en el envés; esta operaciónes repetida varias veces, dejando 3 a 4huevos pegados por cada vez que perforala hoja; cada hembra pone entre 40 a 70huevos en una sola hoja (Artigas, 1994).

En un estudio realizado por Cerda etal. (1981), se determinó que la mayorparte de las posturas se realizan en elprimer tercio de la copa del árbol.Asimismo observó la posición de posturaen las ramas y encontró que la mayoríase ubica en la parte exterior de las ramas.

Las larvas originadas de una mismapostura viven en forma gregaria,consumiendo sólo el parénquima de lahoja; luego de pasar por 10 estadios,pupan, para lo cual se dejan caer al suelodonde construyen un capullo entre lahojarasca (Puentes, 1979; Artigas, 1994;).La emergencia, se lleva a cabo cuando eladulto corta con sus mandíbulas elcapullo, creándose una salida en formacircular (Puentes y Duhalde, 1994).

Las hembras no son buenas voladoras,por lo que se asume que su capacidad dedispersión es baja.

DañoLas larvas defolian el primer tercio de

la copa del hospedero, dejandosolamente la nervadura principal yalgunos nervios secundarios (Puentes,1979; Gara et al., 1980; Cerda et al., 1981;Artigas, 1994; Puentes y Duhalde, 1994).

El daño ocasionado por las larvas setraduce en una disminución en elcrecimiento del árbol por el daño que ésterealiza, debido a la reducción de lacapacidad fotosintética (Baldini et al.,1994; Puentes y Duhalde, 1994; Uribe,1996).

El daño puede identificarse a partir dediciembre al observar la esqueletizaciónde las hojas ubicadas en el extremo delas ramas, siendo en abril el follajeconsumido completamente (Baldini et al.,1994; Uribe, 1996).





(Rentz y Gurney, 1985) (Orthoptera: Tettigonidae).

Sinonimia:No tiene

Nombre común:Sin información.

Hospederos:• Nothofagus obliqua

(Mirb.) Oerst. (Roble),

• Nothofagus alpina(Poepp. et Endl.) Oerst.(Raulí),

• Pinus radiataD. Don (Pino insigne).

Distribución:Según Lewis (1996), se ha detectado este insecto en la Región del Bío-Bío,Chile, afectando plantaciones de Pinus radiata, por su parte Villa (1996) reportasu presencia en un renoval de N. obliqua y N. alpina ubicado en la Precordillerade Parra, Región del Maule, Chile.

Coniungoptera nothofagi

Figura 3.Adulto de Coniungoptera nothofagi(A. Alvarado).





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DescripciónLa información disponible proporciona

antecedentes referentes a tres estadíosde desarrollo, los que se detallan acontinuación:

Huevo:Plano, fusiforme, de color gris oscuro

y mide alrededor de 8 mm de longitud y 2mm de ancho (Lewis, 1996).

Ninfa:Recién eclosionada, mide alrededor de

10 mm de longitud y es de color oscuro(Lewis, 1996).

Adulto:Se caracteriza por su tamaño robusto

y por la presencia de apéndicesdivergentes y apuntados hacia abajo quese ubican en el tergito décimo de losmachos. Las hembras presentan unaplaca subgenital muy corta. La longitudcorporal oscila entre 25 a 30 mm (CPF,2005) (Figura 3).

Aspectos biológicosAntecedentes biológicos de la especie

son bastante escasos, sin embargo Villa(1996), señala que el ciclo de vida tieneuna duración de un año, según estudiosrealizados en plantaciones de P. radiata.

También refiriéndose a experienciasdel insecto en plantaciones de P. radiata,Lewis (1996) indica que la hembra adultaovipone bajo la corteza, principalmente enla zona rugosa o en las axilas de lasramas más altas. Los huevos son puestosen forma individual o en pequeños racimosde hasta 8 a 10 huevos, especialmenteen árboles con corteza blanda y a una

profundidad no superior a 1 cm,encontrándose hasta una altura de 21 mdel suelo. Se hace mención a la detecciónde huevos en los intersticios de la cortezade roble. La ninfa se ha observado concaracterísticas gregarias.

En relación a la familia Tettigonidae sepueden indicar ciertas generalidadestambién atribuibles a C. nothofagi. Engeneral son poco abundantes y seencuentran solitarias, producen un fuertesonido estridulatorio, el que logranfrotando con el “raspador” del ala derechala “lima” del ala izquierda. La mayoría delas especies son herbívoras, aunque sehan observado hábitos carnívoros, comoen todos los ortópteros (Artigas, 1994)

DañoCPF (2005), indica que los principales

síntomas de daño son:

• Defoliaciones intensas

• Pérdidas de crecimiento.

• Aumenta susceptibilidad al ataque

de otros agentes dañinos.

En relación a su ataque a plantacionesde P. radiata, se indica que la acción deeste insecto se puede detectar por lapérdida de área foliar y la presencia deuna gran cantidad de acículas en el suelo.El tamaño de las acículas que seencuentran en el suelo corresponde a 2/3del largo total (Lewis, 1996).

Este mismo autor reporta que el dañoocasionado en P. radiata se produce porninfas ubicadas en la base del brote, las



que muerden el tercio basal de la acícula,lo que causa que los dos terciosrestantes caigan al suelo, alimentándosedel resto. Además, se indica que el insectotiene una marcada preferencia por lasacículas del año anterior y cuando éstasson consumidas, comienza a alimentarsede acículas del año.

El daño es posible encontrarlo en lacasi totalidad de las especies del bosqueesclerófilo y del sotobosque. También seha detectado en Eucalyptus spp.

Manejo integradoLa información referente a medidas de

prevención y/o control que se puedandesarrollar para disminuir o evitar el ataquede este insecto es muy escasa,señalándose en algunos casos la carenciaabsoluta de antecedentes respecto aenemigos naturales o capacidad dedispersión natural del insecto.

Por su parte, la CPF (2005), indica queaves (principalmente pájaros carpinteros)y larvas de Derméstidos actúan comodepredadores de C. nothofagi,asociándose la alimentación de ésteúltimo a los huevos del insecto.

En este sentido debiesen desarrollarseiniciativas de investigación en torno a esteinsecto, comenzado con determinarfehacientemente sus hábitos de vida yasociación con eventuales parasitoidesespecíficos que ayuden a mantener sunivel poblacional a niveles tolerables.



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(Lepidoptera: Geometridae)

Sinonimia:Sin información

Nombre común:• Gusanos medidores.

Hospederos:• Nothofagus obliqua(Mirb.) Oerst (Roble),

• Nothofagus macrocarpa(A. DC.) Vazq. et Rodr.(Roble de Santiago),

• Gunnera tinctoria(Mol.) Mierbel (Nalca).

Distribución:Dado al escaso conocimiento a nivel de género es complejo indicar unadistribución específica, sin embargo en prospecciones realizadas porprofesionales de CONAF se ha detectado su ataque en individuos deNothofagus macrocarpa en la Región Metropolitana y en Nothofagus obliqua enla Región del Maule, Chile.Mundana (2004), reporta la presencia de Euphitecia horismoides Rindge,Euphitecia mallecoensis Rindge y Euphitecia sp. en la Isla Mocha, Región delBío-Bío, asociadas, al igual que muchos geométridos, a bosques esclerófilos.E. mallecoensis fue encontrada en formaciones que incluían Gunnera tinctoria.

Euphitecia sp.

Manual de Plagas y Enfermedades del Bosque Nativo en Chile


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Figura 4. Hoja de Roble afectadas porEuphitecia sp., Cerro El Roble(N. Parra).



DescripciónLa información específica del género

Eupithecia es bastante escasa,limitándose en la mayoría de los textos aantecedentes genéricos de la familiaGeometridae, sin embargo Wikipedia(2008), señala que existen cientos deespecies pertenecientes a este género,las que han sido encontradas en varioslugares del mundo y actualmente secontinúan identificando nuevos ejemplaresdesconocidos anteriormente para laciencia.

Huevo:El huevo normalmente es de aspecto

oblongo-elíptico, pudiendo presentarornamentación. La puesta de los huevospuede ser en grupos o en forma separada.

Larva:Las larvas generalmente son de color

verde suave, en su mayoría con sólo dospares de espuripedios desarrollados, loque les confiere la característica decaminar como midiendo el terreno en“cuartas”. De esto se desprende el nombrede larvas o gusanos medidores.

Pupa:Las pupas carecen de palpos

maxilares y mandíbulas expuestas. Losojos son bastante notorios. Losespiráculos abdominales a veceselevados. Cremáster usualmente biendesarrollado.

Adulto:En general son de colores poco

llamativos y la identificación específica esconsiderada dificultosa, considerándoseel ángulo que forman sus alas en la basecomo uno de los mejores indicadores paraestablecer, mediante taxonomía, que setrata de un individuo de Euphitecia.

Artigas (1994) señala, a nivel defamilia, que los adultos son de tamañopequeño a mediano, de aspecto frágil,hábitos nocturnos o crepusculares, seatraen por la luz. La gran mayoría de lasespecies son aladas, en unas pocasespecies las hembras son ápteras otienen alas reducidas. Destaca lapresencia de un órgano timpánico deposición ventral en el abdomen. Es comúnla presencia de diferencias de color entresexos (dicromismo sexual). Las alas sonanchas y a menudo están marcadas confinas líneas ondulantes.

Aspectos biológicosLas observaciones que se han

efectuado en terreno, principalmente enlos ataques a Nothofagus macrocarpa enla Región Metropolitana, hacen suponerque el ciclo de vida del género Euphiteciaes bastante similar a otros geométridos,ya que descripciones, únicamentevisuales, de algunos profesionales deCONAF se condicen fehacientemente conla información bibliográfica disponible deesta familia.

En este sentido, y según lo descritopor Artigas (1994) en relación al insectoOmaguacua longibursae (oruga cornudadel Roble) para la Región de Los Ríos, sepuede indicar lo siguiente:

Los huevos son depositados sobre lasramillas periféricas del roble, formadasdurante el último período de desarrollovegetativo. Los huevos son puestos engrupos, formando una masa con aspectode una banda que rodea completamentela ramilla, cada masa contiene entre 122a 205 huevos y se constituye con la



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postura total de una hembra. Las larvasrecién nacidas no presentan hábitosgregarios.

El estadío larvario dura en promedio35 días, cumpliendo 5 estadíos. Las larvasbajan al suelo para pupar, lo que hacenentre la hojarasca, formando un capullodébil de una hebra, en el interior del cualpupan.

La pupa dura 18 días, al término delos cuales emergen los adultos,correspondiendo en la Región de Los Ríosal mes de octubre. Los adultos vuelanhasta fines de enero. Tienen unageneración al año. Los huevospermanecen en las ramillas por cerca de10 meses, coincidiendo su eclosión conla aparición de las hojas de Roble.

DañoEl principal síntoma, y que puede ser

apreciado a distancia cuando se trata derodales, es la defoliación de individuos,los que tras repetidos ataques se venconsiderablemente debilitados ysusceptibles a ser afectados por plagassecundarias, principalmente barrenadoresde madera, terminando finalmente conmortalidad de ejemplares (Figura 4 y 5).

Por su parte la presencia de orugas ylos filamentos que éstas producen(hebras), merman la capacidadfotosintética de árbol, lo que contribuyeaún más en la pérdida de vitalidad delindividuo.

Figura 5. Hojas de Roble afectadas porEuphitecia sp., Cerro El Roble(N. Parra).



Manejo IntegradoAntecedentes respecto a

controladores biológicos o enemigosnaturales no han sido reportados a lafecha, encontrándose en algunasmuestras colectadas indicios deparasitismo por agentes aún sin identificar.

En este sentido, es de relevanciapromover investigación enfocada en elmanejo integrado del insecto,comenzando con identificar especies delgénero que aún no están determinadas,ciclo de vida específico para laslocalidades afectadas y presencia debiocontroladores naturales.

La única experiencia concreta que setiene en el control de este insecto esmediante la utilización de insecticidassistémicos, actividad desarrollada en elCerro el Roble, Región Metropolitana, losque fueron aplicados por inyección al fusteen dosis adecuadas según el diámetro yaltura de cada árbol, obteniéndose granmortalidad de Euphitecia sp., pero que dadosu elevado nivel poblacional no fue suficientepara mermar considerablemente el dañototal del rodal.



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(Burmeister, 1844) (Coleoptera: Scarabaeidae)

Sinonimia:• Aulacopalpus elegans

Burm.,• Callichloris perelegans

Curtis,• Hylamorpha rufimana

Arrow,• H. perelegans (Curtis),• H. subviolacea (Nonfr.),• Sulcipalpus elegans

(Burm.),• S.elegans var. australis

Phil.

Nombre común:• Pololo San Juan verde,• Pololo San Juan,• San Juan verde,• Pololo verde,• Pololo verde del sur,• Gusano blanco.

Distribución:En Chile se encuentra desde la Región del Maule a la Región de Los Lagos(Artigas, 1994).

Hylamorpha elegans

Figura 6.Adulto de Hylamorpha elegans(A. Alvarado).



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DescripciónLarva:

Escarabeiforme, curvada en forma de“C”, blanca, con pelos ralos castaños,cabeza castaño claro, aparato bucalcastaño oscuro; patas blancas con peloscastaños largos, uñas castañas; largototal máximo entre 25 a 27 mm; anchoaproximado a la altura del primer tergitoabdominal 8 a 11 mm (Artigas, 1994).

Adulto:Cabeza y pronoto verde intenso,

finamente puncturado, el borde anterior dela cabeza quillado, oscuro, curvado haciaarriba. Antenas lameladas de colorcastaño. Pronoto con un surco en la líneamedia longitudinal. Sobre los élitros haypequeños pelos blancos, cortos y gruesosque en parte se ordenan en filaslongitudinales. Patas verdes con reflejosdorados en parte, con pelos ralos blancosy cerdas cortas blancas y gruesas. Parteventral del tórax y la cabeza conabundantes pelos blancos largos; losesternitos abdominales y el último tergitoestán densamente cubiertos de peloscortos, planos, fusiformes, fuertementeadosados al tegumento, cubriéndolocompletamente. Largo total entre 15 a 18mm y ancho entre 6 a 8 mm (Artigas,1994) (Figura 6).

Aspectos biológicosEl ciclo de vida es anual,

distribuyéndose de la siguiente forma;huevo: diciembre a febrero; larva: febreroa octubre; pupa: octubre a diciembre;adulto: noviembre a enero (Artigas, 1994).

Los adultos recién formados,permanecen soterrados durante 5 ó 6 días,para abrirse después camino hacia lasuperficie del terreno a través de unagalería vertical, desde donde empiezan avolar, al amanecer y al atardecer. El vuelodel amanecer es de concentración,dirigiéndose los adultos a los árboles, endonde permanecen durante el día paraalimentarse y copular, después de lo cualla mayoría de los machos muere; el vuelodel atardecer es de dispersión, todosabandonan los árboles y vuelan al campo.Las hembras, colocan los huevos engrupos bajo el suelo a aproximadamente2 a 3 cm de profundidad. El tiempo frío olluvioso retiene a los adultos soterradosen sus guaridas, a la espera decondiciones favorables para volar (Durán,1952; Artigas, 1994).

La larva es subterránea; se ubica apoca profundidad, alimentándose deraicillas (rizófagas) en los viveros ypraderas (Baldini et al., 1994), causandograves daños, especialmente al cultivo deltrigo. A pesar de tener hábito alimentariobásicamente fitófago, se han encontradolarvas bajo madera en descomposición,demostrando un posible hábito saprófago(Artigas, 1994).

En los estadíos de mayor actividadalimentaria, las larvas varían deprofundidad, por la humedad del suelo ypor la disponibilidad de raíces paraalimento (Artigas, 1994). Coexisten con


(Mirb.) Oerst. (Coihue),

• Nothofagus alpina(Poepp. et Endl.) Oerst. (Raulí) y

• Nothofagus obliqua(Mirb.) Oerst. (Roble).



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larvas de otros escarabeidos tales comoPhytoloema herrmanni Germ., Sericoidesgermaini Dalla Torre y Schizochelusbreviventris Phil. (Durán, 1952).

Su capacidad de dispersión es alta,debido a que la hembra posee una buenacapacidad voladora y que tanto las larvascomo los adultos son de hábitos polífagos,no siendo específicos de un hospederoen particular.

DañoEl adulto es filófago (Giganti y Dapoto,

1990), consume follaje de vegetaciónnatural, en especial N.obliqua (Porter,1933; Durán, 1952; Gara et al., 1980;Artigas, 1994).

El daño consiste en hojasesqueletizadas, debido a que sólo sonconsumidos los tejidos más blandos delas hojas, dejando las nervadurasprincipales y en algunos casos tambiénlas secundarias (Fercovic y Lanfranco,1995; Cerda y Angulo, 2002).

El síntoma más característico es lapresencia de árboles defoliados e insectosadultos muertos a los pies de ellos (Cerday Angulo, 2002).

Los insectos actúan a lo largo de todala fase vegetativa del árbol, especialmentedurante la madurez (Cerda y Angulo,2002).





(Lepidoptera: Psychidae)

Distribución:En Chile se ha detectado su presencia sobre individuos de Prosopis chilensis(Mol.) Stunz. (Algarrobo), en la ciudad de Copiapó, Región de Atacama. Seconsidera un género bastante disperso, encontrándose presente prácticamenteen toda América.

Oiketicus sp.


Nombre común:• Bichos del cesto.

Hospederos:• Los insectos

pertenecientes a estegénero son consideradospolífagos, por lo quepueden encontrarse entodo tipo de hospederos.

Figura 7Saco y hembra adulta.(F. Avaria)





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DescripciónExiste varias especies de Oiketicus,

siendo la más nombrada O. kirbyi, la quesegún Artigas (1994), se encuentraampliamente distribuida en América,extendiéndose desde México, Puerto Ricoy Cuba hasta la Patagonia, no estandopresente en Chile. Esta situaciónaparentemente ha cambiado, dada lasrecientes detecciones de individuos y lacercanía de lugares de los antiguosreportes con el país.

La descripción morfológica del insecto,basándose en lo informado para O. kirbyisegún Mesón et al., 2003, es la siguiente:

Huevo:Es de forma cilíndrica con aristas

redondeadas (0,34 x 0,53 mm). Al inicioson de color crema, luego anaranjados ypróximos a la eclosión se tornan oscuros.

Larva:Recién nacida es de color amarillo y

en los últimos estados de desarrollo sonde color ceniza; las hembras son másoscuras que los machos, con manchasnegras y de tamaño irregular en el tórax yla cabeza. La cabeza es quitinosa, conmandíbulas fuertes; tórax con tres paresde patas fuertes; abdomen con 8segmentos, cuatro pares de propatas. Laparte anal es un segmento café oscuro,un poco quitinoso y también con un parde propatas.

Pupa:La pupa hembra tiene ambos

extremos redondeados, es de aparienciasegmentada y sin señales externas depatas, antenas y otras estructuras. Lapupa del macho tiene el extremo posteriorpuntiagudo y encorvado hacia la parte

ventral y exhibe las placas que le van adar origen a las estructuras externas. Enlas hembras es de coloración castañooscura y en los machos de coloracióngris.

Adulto:Las hembras son neoténicas, de

apariencia larviforme, con la cabezapequeña, sin antenas y con el aparatobucal atrofiado.

El macho es una polilla de color café,con zonas claras y oscuras; alaspequeñas de 42 mm de envergadura,cuerpo cubierto de escamas, tóraxgrueso, abdomen delgado y extensible,aparato bucal atrofiado y antenasbipectinadas.

Aspectos biológicosBasándose en lo indicado por Artigas

(1994), según O. kirbye, y considerándoseque la mayoría de estos insectospresentan un ciclo de vida similar, esposible indicar lo siguiente:

La invernación ocurre en estado dehuevo en el interior del capullo,encontrándose dentro de éste entre 1000a 1200 huevos, llegando en ocasiones a4000. Estos eclosionan en primavera,emergiendo las larvas, las queinmediatamente abandonan el capullo,descolgándose con un hilo hasta tocaruna ramilla, lugar donde finalmente sequedan. Durante este período, el vientofacilita la dispersión de la especie(dispersión eólica). Si caen al suelo o enun sustrato inadecuado, se trasladanprontamente a cualquier vegetal.



Desde el principio de su alimentacióninician la fabricación del capullo o cesto,a medida que crecen van agrandándolo yagregando trozos de ramillas que hacenal habitáculo seguro contra muchosdepredadores y parásitos. En el interiordel cesto hay una segunda capa o capullointerno de seda blanca y fina. Este tipode seda se observa en el exterior dealgunos cestos.

Las larvas siempre lo llevan a cuestasy se esconden en su interior cerrando laentrada cuando son molestadas.Consumen hojas para lo cual mantienenel cesto colgado a las ramillas y asomantoda la cabeza y el tórax, usandoactivamente las patas torácicas. Paradesplazarse cortan la amarra del cesto ala ramilla y, usando sólo las patastorácicas se trasladan con el cesto y loamarran en el nuevo emplazamiento.

Las larvas luego de 3 a 4 mudas ydespués de 75 a 90 días adquieren sumáximo desarrollo, dejan de alimentarse,fijan definitivamente el cesto, lo cierran yse deshacen de la última muda, las queen ocasiones devoran.

Las larvas de los machos, antes depupar, se invierten, quedando con lacabeza dirigida hacia el extremo inferiordel capullo por donde emergen, para ellola pupa rompe el extremo posterior y salehasta quedar expuesta la mitad anteriorde la pupa, la cual se rompe y emerge elmacho adulto. Los capullos que originaronmachos se distinguen por el pupario vacíocolgando a medio salir en la base delcesto, el período de pupa dura 26 a 28días para los machos y 30 a 35 días paralas hembras.

Las hembras permanecen en el interiordel capullo luego de emergidas comoadultos. Los machos vuelan en elcrepúsculo, buscando cestos dehembras. Cuando lo encuentran, se posansobre él, alargan su abdomen y lointroducen por la parte inferior del cestohasta acoplarlo a la hembra.

Las hembras oviponen en el interior delcesto, lo que puede tomar hasta 4 meses,usualmente demora 26 a 35 días, al finalde la postura la hembra muere, quedareducida a menos de un tercio de suvolumen original, el resto del espacio loocupan los huevos, en ocasiones lashembras abandonan el capullo y caenmuertas al suelo. Los huevos pasan elinvierno dentro del cesto. Tienen unageneración al año.

DañoEn general estos insectos se

alimentan inicialmente del parénquima delas hojas, para atacar finalmente losfrutos, que al ser roídos se deforman ypierden su valor, ya sea como alimentohumano o como elemento de continuidaddel árboles (semillas).

Además, de consumir hojas puedencortar tallos tiernos de su hospedero,registrándose en algunas situaciones,ante la carencia de follaje, alimentaciónen base a corteza y frutos (Figura 7).

Cuando los ataques son muyfrecuentes sobre un mismo hospedero, oel nivel poblacional es muy alto, seoriginan defoliaciones totales en losárboles, los que en oportunidades no son



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capaces de resistir y mueren. A esto debeadicionarse la disminución del vigor delindividuo, aumentando la susceptibilidadante agentes de daño secundarios,principalmente barrenadores del fuste.

Figura 7. Prosospis chilenis afectado porOiketicus sp., Copiapo(F. Avaria).

Manejo IntegradoExiste un enorme listado de

controladores biológicos y enemigosnaturales de este género, los que en sumayoría no han sido estudiados enprofundidad en cuanto a su capacidad deestablecimiento y nivel de parasitismo serefiere, siendo fundamental generallineamientos de investigación en estesentido.

En general el control químico no seconsidera eficiente, dada la protección quele brinda el capullo a los insectos,recomendándose su aplicación en etapastempranas del ataque y cuando las larvasestán recién eclosionadas.

Existen algunos informes que indicanque medidas silviculturales como la poda,o la eliminación manual de los capullospuede ayudar a disminuir el daño, dadala baja poblacional que se produce conestas actividades.



Distribución:Se encuentra en Chile en la Región de Los Lagos (Artigas, 1994).

(Parra y Beèche, 1986) (Lepidoptera: Geometridae).

Sinonimia:No tiene

Nombre común:• Oruga cornuda del Roble.

Hospederos:• Nothofagus obliqua (Mirb.)Oerst. (Roble) (Artigas,1994).

Omaguacua longibursae

Figura 8.Adulto de Omaguacua longibursae(M. Palavicino).





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DescripciónHuevo:

Mide 0,0067 mm de alto y 0,00464 mmen su ancho máximo, de forma ovalada,color castaño claro en sus bordeslaterales, el polo animal ceniciento; en elcentro se ubica la micropila, la cual estárodeada por la roseta. Entre la roseta y elborde externo de la superficie del poloanimal, se ubican las aeropilas tubularesde distribución irregular; el borde del poloanimal está adornado por aeropilastubulares dispuestas radialmente a laforma de rayos (Beèche et al., 1987).

Larva:La larva es de color castaño claro

amarillento, de hasta 33 mm de largo por4 mm de ancho; el tegumento tieneproyecciones romas entre las cuales seencuentran algunas espinas. Cabezahipognata, de 1,6 mm de ancho por 1,6mm de alto; antenas formadas por dossegmentos; mandíbula con una pequeñaapofisis de articulación. Tórax con trespares de patas bien desarrolladas,compuestas de segmentos subiguales enlongitud, el distal termina en dos uñas(Beèche et al., 1987; Artigas, 1994).

Pupa:Obtecta de 13 mm de largo y 4 mm en

su ancho máximo, de color castaño rojizoclaro; de aspecto subpiriforme. En vistadorsal el pronoto es subrectangular; elmesonoto es alargado y 3 veces más altoque el pronoto; el metanoto, más pequeño,presenta una invaginación central profundaen su borde superior (Beèche et al., 1987).

Adulto:En el macho la cabeza tiene la frente

hinchada, cubierta de escamas castaño

claras; los palpos están cubiertos porescamas castaño-oscuro y amarillentas;antenas simples, con segmentossubiguales en largo y ancho. Tórax concubierta ligeramente más oscura que lasalas posteriores; con una envergadura deentre 35 y 38 mm; patas con escamascastaño amarillentas, blanquizcas ycastaño-oscuras, tibia posterior con dospares de espolones (Beèche et al., 1987;Artigas, 1994).

Abdomen con escamas blanquecinasen el dorso, similar al tono dominante delala posterior; en la región ventral estasson castaño claras. Alas del macho entonos contrastantes castaño claro yoscuro, con bandas y líneas castañas; laregión más oscura del ala es subtriangular,limitada por la banda anterior y la bandaposterior; éstas, a su vez, estánmarginadas por una línea blanca; la bandasubterminal se arma por una hilera demanchas oscuras; la banda terminal escastaño clara, angosta y sigue lasondulaciones del borde externo (Beècheet al., 1987; Artigas, 1994).

La hembra, con un cuerpo similar almacho. Ala anterior, similar en el diseñode las áreas, pero en tono castañogrisáceo y gris amarillento; la región masoscura es la dispuesta entre las bandasposterior y subterminal; las regionesclaras, gris amarillentas, son dos y estánseparadas por la banda anterior grisoscura; una de las áreas, al igual que enel macho, es subtriangular y está limitadapor las bandas anterior y posterior; en eltercio superior se distingue una pequeñay débil mancha alargada gris. (Beèche etal., 1987; Artigas, 1994) (Figura 8).



Aspectos biológicosEl ciclo de vida tiene una generación

al año (Artigas, 1994). Beèche et al.(1987), aporta los siguientes datos: loshuevos se encuentran entre los meses deenero y agosto, en terreno, y sólo enagosto en laboratorio; el estado larvariose encuentra desde agosto hastadiciembre, en terreno y, entre agosto yseptiembre, en laboratorio; el estado depupa sólo presenta datos en laboratorio,encontrándose entre los meses deseptiembre y octubre; los adultos, enterreno, se encuentran entre los mesesde noviembre y enero, no así enlaboratorio, donde sólo se encuentran enel mes de octubre.

Los adultos depositan los huevos sobrelas ramillas periféricas del Roble, formadasdurante el último período de desarrollovegetativo. Los huevos son puestos engrupos, formando una masa con aspectode una banda que rodea completamentela ramilla; cada masa, que constituye lapostura total de una hembra, contiene 122a 205 huevos; estos eclosan en formasimultánea con la foliación del hospedero(Beèche et al., 1987).

Las larvas bajan al suelo para pupar,lo que hacen entre la hojarasca, formandoun capullo débil de una hebra, en el interiordel cual pupan. Los adultos tienen unperiodo de vuelo que se extiende desdeel mes de septiembre hasta fines de enero(Beèche et al., 1987; Artigas, 1994).

DañoLas larvas producen la defoliación

temprana de los árboles (Baldini et al.,

1994), cuya capacidad de defoliación enel roble es desconocida, pero por lacantidad de larvas que se observan y lotemprano del ataque, se estima que esun elemento importante en el conjunto deinsectos defoliadores del Roble en elbosque (Artigas, 1994).

El ataque retarda el crecimiento yaque la larva comienza su actividad al iniciode la aparición del follaje (Baldini et al.,1994), durante los meses de julio adiciembre (Artigas, 1994).





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(Fabricius, 1775) (Lepidoptera: Saturniidae)

Sinonimia:• Bombyx amphimone,

• Catocephala marginata,

• Catocephala amphimone,

• Dirphia amphimone,

• Ormiscodes latifasciata,

• Amydona humeralis,

• Saturnia hyadesi,

• Bombyx hyadesi.

Nombre común:• Ormiscodes,

• Cuncuna espinosa.

Distribución:En Chile se distribuye desde la Región de Valparaíso a la Región deMagallanes y La Antártica Chilena, reportándose los mayores ataques en laRegión de Aysén del General Carlos Ibáñez del Campo.

Ormiscodes amphimone

Figura 9.Adulto de Ormiscodes amphimone(A. Sartori).



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DescripciónLarva:

La larva alcanza los 100 mm de largopor 12 mm de ancho. Presenta 13segmentos negros aterciopelados. En eltorso, en las secciones donde no hayescolios, se presentan cortas líneasblancas en forma longitudinal ytransversal. A cada lado de estas mismassecciones se presenta una pequeñamancha de color rojizo (Artigas, 1994)(Figura 10).

Los escolios, que son una estructurade pelos urticantes, en la base son decolor amarillo y los siguientes son de colorblanco (Artigas, 1994).

Adulto:Los adultos corresponden a polillas de

gran tamaño, que presentan unaextensión alar de entre 45 a 80 mm losmachos y de entre 58 a 95 mm lashembras. Las alas son de color castañoclaro a rojizo. Los machos presentan enel ala anterior sobre la vena transversa unamancha alargada blanquecina. En formaparalela al borde del ala aparece una líneagruesa más oscura. Los pelos del tóraxson amarillos anaranjados, antenasfiliformes en las hembras y plumosas enlos machos. Los pseudopodos tambiénpresentan cerdas (Artigas, 1994) (Figura9).

Aspectos biológicosNo se tienen estudios específicos

sobre la especie, pero se estima, deacuerdo a observaciones personales, quesu ciclo de vida es muy similar aOrmiscodes cinammomea encontrándoselos adultos desde enero a mayo y laslarvas desde agosto a enero.

Figura 10. Larva de Ormiscodes amphimone(A. Baldini).

Hospederos: La especie de mayor importanciacorresponde a:• Nothofagus pumilio

(Poepp. et Endl.) Krasser (Lenga),pero en general se le encuentraasociada a numerosas especies demirtáceas y fagáceas. Entre otrasestán

• Peumus boldusMol. (Boldo),

• Nothofagus dombeyi(Mirb.) Oerst. (Coihue),

• Lithrea caustica(Mol.) H. et A. (Litre),

• Cryptocarya alba(Mol.) Looser (Peumo),

• Nothofagus obliqua(Mirb.) Oerst. (Roble),

• Schinus molle L.(Pimiento).



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Su capacidad de dispersión es alta,debido a que, tanto las larvas como losadultos son de hábitos polífagos, nosiendo específicos de un hospedero enparticular, además del hecho, que lahembra posee una buena capacidadvoladora.

DañoEl síntoma más relevante corresponde

a la pérdida total del follaje, dejando losárboles completamente desnudos ya quelas larvas son voraces masticadores.

Las larvas que son gregariascomienzan a consumir el follaje desde lasramillas al interior del árbol, llegando aeliminar la totalidad de las hojas. Agrandes distancias es factible reconocerdefoliaciones provocadas por este insectopor la magnitud que pueden alcanzar(Artigas, 1994).

También es necesario considerarcomo daño económico la sola presenciade las larvas en áreas pobladas o de altointerés turístico, debido a que éstas sonurticantes, razón por la cual los visitantesabandonan de inmediato las zonasafectadas (Artigas, 1994).

Los insectos pueden actúan a lo largode toda la vida del árbol, en la época deprimavera verano.

Se estima que las larvas seencuentran entre los meses de agosto aenero, pero dependen fuertemente de lascondiciones ambientales imperantes enla zona de ocurrencia.

El daño ocasiona pérdidas decrecimiento al reducirse el área foliar, lascuales no han sido cuantificadas, con unfuerte debilitamiento que permite el ataquede barrenadores de madera,especialmente de escarabajos deambrosía (Figura 11).


de manejo integrado, sólo ha sido posibleverificar su control biológico por parte deCoccigomimus fuscipes.

Figura 11.Daño ocasinado por Ormiscodesamphimone(A. Baldini).



(Feisthamel, 1839) (Lepidoptera: Saturniidae)

Sinonimia:• Bombyx cinnamomea

Feisthamel,• B.amphimone Fabricius,• B.crinita Blanchard,• B.hyadesi Mabille,• B.terpsichore Fuschs,• Amydona humeralis

Walker,• Catocephala amphimone

(Fabricius),• Dirphia amphimone

(Fabricius),• D. cinnamonea

(Feisthamel),• D. crinita (Blanchard),• Ormiscodes crinita

(Blanchard),• Saturnia hyadesi(Mabille).

Nombre común:• Cuncuna del Pino,• Cuncuna del Álamo,• Cuncuna espinuda.

Distribución:En Chile se distribuye desde la Región del Libertador General BernandoO’Higgins a la Región de Los Lagos (Artigas, 1994).

Ormiscodes cinnamomea

Figura 12.Larvas de Ormiscodescinnamomea (A. Sartori).





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DescripciónHuevo:

Mide 2 mm de largo por 1 mm deancho y 1 mm de alto; de forma ovalada,más estrecho en la parte basal, de colorblanco verdoso que luego se tornagrisáceo; en la cara externa (superior) sonhendidos (Villa y Ojeda, 1981; Artigas,1994).

Larva:Las larvas recién nacidas miden entre

3 y 4 mm y llegan a medir hasta 100 mmde largo por 12 mm de ancho. Sedistinguen en el cuerpo 13 segmentos, decolor negro aterciopelado, con líneaslongitudinales subdorsales y transversalesamarillas; las líneas longitudinales, enalgunas poblaciones, tienen pequeñostrozos teñidos de rojo ladrillo a carmín;en el área ventral, el color aterciopeladose torna pardo amarillento (Artigas, 1994).

La cabeza es hipognata; la coloraciónvaria desde café-amarillento hasta café-oscuro casi negro y presenta manchas

más oscuras formadas por pequeñospuntos; posee una sutura epicraneal decolor amarillo en la parte del tallo y café-oscuro en la bifurcación, deaproximadamente 5 mm de ancho, concerdas cortas dispersas; las antenasterminan en una cerda larga y una muycorta dispuesta en el ápice (Artigas,1994).

Las patas torácicas, de color castañorojizo, están compuestas de 3 segmentoscubiertos con cerdas claras, en el extremollevan una uña aguda curvada en el ápice(Naray, 1979; Artigas, 1994) (Figura 12).

Pupa:Es desnuda, de color negro pardusco,

oval, de 30 a 40 mm de largo por 9 a 12mm de diámetro máximo; en el dorso sedistinguen 10 segmentos abdominales yen el extremo posterior llevan 6 a 15filamentos terminales cortos (Artigas,1994).

Adulto:El macho mide entre 60 y 80 mm de

envergadura alar y un largo de 22 a 30mm. Tienen alas de color castaño claro ycastaño rojizo. En el ala anterior, sobrelas venas transversales hay una manchaalargada blanquecina, en ocasionesestrangulada en el centro; entre lamancha blanquecina y el borde del ala ydispuesta paralela a éste, hay una líneagruesa, ribeteada de blanco en el bordebasal de color más oscuro que el restodel ala; entre la mancha clara y el cuerpohay una línea ondulada, más oscura yribeteada de blanco en su margen distal(Artigas, 1994).

El tórax posee pelos amarillosanaranjados, variando la tonalidad hastanaranja rojizo en los costados del dorso;

Hospederos:• Peumus boldus Mol.

(Boldo),• Nothofagus dombeyi

(Mirb.) Oerst. (Coihue),• Lithrea caustica

(Mol.) H. et A. (Litre),• Schinus latifolius

(Gill. ex Lindl.) Engler (Molle),• Cryptocarya alba

(Mol.) Losser (Peumo)• Nothofagus obliqua

(Mirb.) Oerst. (Roble) (Artigas, 1994) y• Pinus radiata

D. Don (Pino insige).



los pelos que se disponen sobre la basede las alas son más oscuros, pudiendoser hasta negros; el abdomen estácubierto de pelos oscuros en el dorso, conpelos anaranjados en el primer tergito yen el extremo; en los costados el pelo essimilar al del esterno; en la parte ventraldel abdomen los pelos son castañoamarillento. Las antenas son plumosas(Naray, 1979; Artigas, 1994).

La hembra mide de 66 a 95 mm deenvergadura alar y 25 a 40 mm de largo.Tienen las alas de color castaño rojizo,con amplias áreas castaño blanquecino,y presenta líneas y manchas similares almacho, excepto la línea entre la manchaclara y el cuerpo, que está reemplazadapor una amplia área castaño rojiza, másgrande hacia el borde costal. El cuerpode la hembra es similar al del macho. Lasantenas son filiformes (Artigas, 1972;Naray, 1979; Artigas, 1994).


anual (Artigas, 1994). Gara et al. (1980),entrega los siguientes datos para la zonade Arauco (Región del Bío-Bío); huevo:desde fines de febrero hasta fines deagosto; larva: desde mediados de agostohasta fines de diciembre; pupa: desdeprincipios de noviembre hasta marzo;adulto desde mediados de febrero hastafines de mayo.

Las hembras colocan sus huevos enmasas como anillos alrededor de lasramillas, o formando pequeñas placas enlos tallos y en el fuste. Cada postura varíaentre 150 y 300 huevos, pudiendo llegar a500 o más. El período de incubación es

de 50 a 120 días, dependiendo de latemperatura (Artigas, 1994).

Las larvas recién nacidas miden entre3 y 4 mm; inician su alimentación 8 a 12horas después de nacidas. Laalimentación se produce en las horas dela tarde, el resto del tiempo permaneceninmóviles. Usualmente las larvas semantienen en colonias muy abundantesaceptando la proximidad de unas conotras sin molestarse (Artigas, 1994).

Después de aproximadamente 4mudas, terminan su período larvario,dirigiéndose al suelo, en masa, dondepupan a una profundidad de 3 a 6 cm o enla hojarasca del piso del bosque,rodeadas de un tejido muy ralo de hilosque sólo sirven para unir débilmente elsustrato alrededor de la pupa. Las pupasde los machos y las hembras se puedendistinguir por las estructuras ventrales delos segmentos octavo y noveno (Parra etal., 1985; Artigas, 1994). El período pupaldura entre 85 y 100 días, usualmente singrandes variaciones determinadas por latemperatura y humedad ambientes, yaque bajo la hojarasca del bosque éstastienden a ser constantes.

La proporción de sexos es de 80% demachos y 20% de hembras. Cada ciertotiempo se produce un fuerte aumento enlas poblaciones de larvas. Rara vez hayataque fuerte dos o tres años seguidos,debido a la acción de los controladoresnaturales, ya que al año siguiente de unfuerte ataque se produce una brusca caídade la población, a raíz del brusco aumentode los controladores. Las poblaciones vanprogresivamente en aumento cada añohasta alcanzar su máximo cada 8 a 12años (Artigas, 1994).



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DañoEl daño se ubica en el follaje, la

defoliación se presenta en formacaracterística desde los ápices o puntasde ramas hacia el fuste y desde arribahacia abajo (Villa y Ojeda, 1981).

El daño lo ocasionan las larvas, desdeagosto a diciembre. Defolian con bastanteseveridad a Roble (Naray, 1979). Artigas(1994), refiriéndose al ataque en P. radiata,anota que el daño se produce por elconsumo devastador del follaje en unperíodo relativamente corto, consumiendoel follaje desde el ápice y ramas laterales,para continuar hacia el interior del árbol(Artigas, 1994; Baldini et al., 1994); parala misma especie, afirma que el daño espoco significativo en árboles mayores de10 años. Villa y Ojeda (1981), tambiénrefiriéndose a P. radiata, anotan que aleclosar las larvas, caminan hacia losápices de las ramas para alimentarse delas acículas nuevas y van avanzando haciael fuste, consumiendo todas las acículasque encuentran a su paso.

En árboles menores a 10 años,defoliaciones intensas pueden matarárboles, especialmente si están bajoestrés hídrico. Artigas (1972), afirma queel daño está directamente relacionadocon la densidad de la población que debesoportar el árbol. En algunos casos, llegaa defoliar completamente al árbol, y si setrata de árboles pequeños, puedesecarlos. En árboles de buen tamaño,cuya masa foliar es generalmente mayorque la que el árbol necesita, unadefoliación de hasta un 25% no tienepeligro directo para el árbol (Figura 13).

Su capacidad de dispersión esalta, debido a que la hembra posee una

Figura 13.Rodales afectados por Ormiscodescinnamomea (A. Sartori).


de manejo integrado. Sin embargo seconocen sus enemigos naturales:Hymenoptera: Ulophidae; Horismenusancilla Brèthes, Syntomosphyrum sp. (enhuevos); Chalcididae: Dirphiphafus ancilla(Walker), Paridris chilensis Brèthes (enhuevos); Torymidae: Monodontemerus sp,Zagliptonotus sp; Braconidae: Apantelesdirphiae Silva, A. camachoi Silva, A.macromphaliae Silva (en larvas);Diapriidae: Trichopria sp. Díptera,Tachinidae: Phaesarcodexia edwarsiAldrich (en larvas), Poliops auratusCampos, Macropatelloa tanumeanaTownsend, Achaetoneura robusta Aldrich,Parasetigena porteri Brèthes, Lespesiarobusta Aldrich. Hemiptera,Pentatomidae: Podisus nigrolimbatus(Spinola). Hongos: Entomophthora aulicae(Reich), E. grylli Fresenius (Naray, 1979;Artigas, 1994).

buena capacidad voladora y, además, quelas larvas son de hábito alimenticiopolífago.



Distribución:En Chile se distribuye entre la Región de Atacama y la Región del Bío-Bío.

(Lepidoptera: Saturniidae)


Nombre común:• Cuncuna del Pino,• Cuncuna del Álamo,• Cuncuna Espinuda.

Hospederos:• Acacia caven

(Mol.) Mol. (Espino).

Ormiscodes lupino

Figura 14. Larva de Ormiscodes lupino(A. Baldini).





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DescripciónLarva:

Mide hasta 100 mm de largo por 12mm de ancho, de color negroaterciopelado, con líneas longitudinales ytransversales amarillas, con presencia depelos urticantes. La cabeza es de colorcastaño oscuro de aproximadamente 5mm de alto por 5 mm de ancho (Figura14).

Adulto:Los adultos son mariposas de gran

tamaño, donde la hembra es de mayordimensión que el macho, con antenasfiliformes y manchas en las alas, mientrasque las antenas de los machos sonplumosas (Artigas, 1994; Cogollor, 2002).


anual (Artigas, 1994; Gara et al., 1980),por otra parte Cogollor (1983) señala quebajo temperaturas favorables puede llegara tener dos generaciones.

Las hembras colocan sus huevos enmasas como anillos alrededor de lasramillas, o formando pequeñas placas enlos tallos y en el fuste. Cada postura varíaentre 150 y 300 huevos, pudiendo llegar a500 ó más. Usualmente las larvas semantienen en colonias muy abundantesaceptando la proximidad de unas conotras sin molestarse.

Después de aproximadamente 4mudas, terminan su período larvario,dirigiéndose al suelo, en masa, dondepupan a una profundidad de 3 a 6 cm o enla hojarasca del piso del bosque,rodeadas de un tejido muy ralo de hilos

que sólo sirven para unir débilmente elsustrato alrededor de la pupa (Parra et al.,1985; Artigas, 1994).

DañoEl daño lo ocasionan las larvas al

follaje, la defoliación se presenta en formacaracterística desde los ápices o puntasde ramas hacia el fuste y desde arribahacia abajo (Villa y Ojeda, 1981) (Figura15).


de manejo integrado. Sin embargo seconocen algunas familias de enemigosnaturales: Hymenoptera: Ulophidae,Chalcididae, Torymidae, Braconidae,Diapriidae, Tachinidae; Hemiptera:Pentatomidae (Artigas, 1994).

Figura 15.Daño ocasionado por Ormiscodes lupino(A. Baldini)



(Philippi, 1859) (Lepidoptera: Saturniidae)

Sinonimia:• Attacus cinerascens

(Philippi),

• Attacus andromeda(Philippi),

• P. edmondsii(Butler),

• P. cinerascens(F. Latchami).

Nombre común:• Mariposa de cuatro ojos,

• Gusano de seda gigante,

• Mariposa ojo de pavoreal.

Distribución:En Chile se encuentra desde la Región de Coquimbo a la Región de Los Lagos.Las localidades en que se ha efectuado registros son La Serena, Vicuña,Valparaíso, Santiago, Concepción, Angol, Curacautín, Valdivia y Llanquihue(Lemaire, 2002; citado por Angulo et al., 2004).

Polythysana cinerascens

Figura 16. Adulto macho de Polythysanacinerascens (A. Alvarado).





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DescripciónHuevo:

Los huevos son de forma subesférica,aplastado lateralmente. No presentacostas. Lateralmente castaño oscuro,atravesado meridionalmente por unabanda color blanco, región polar blancacon mancha castaño claro al centro.Ovipostura en hilera, juntos, adosados alsustrato por la región lateral mediante unasustancia cementante. Diámetro de 1,52mm y altura de 2,01 mm. Aeropilas enregión lateral del cuerpo. Área micropilarubicada en la región polar. Celdasprimarias de 14 a 15, secundarias 17 y20, cuando son 14 celdas primarias hay17 secundarias y cuando son 15 primariashay 20 secundarias, sin embargo esmucho más abundante la relación 14primarias 17 secundarias. Roseta primariadispuesta en el mismo plano que la

secundaria. Parte más gruesa de celdaprimaria terminada en punta. Celdassecundarias gruesas y cortas,generalmente de menor tamaño que lasceldas primarias. Siete micropilas en elcentro de área micropilar, dispuestas unasuperficie hundida bajo el plano de laroseta primaria (Benítez-Mora y Olivares,2006).

Larva:La larva es de color gris oscuro que

puede medir hasta 10 mm de grosor y 60mm de largo. Los escolios apicalesposteriores son gruesos en la base yprovistos de abundantes espinas y cerdasa modo de cercos. Es de movimientoslentos y permanece la mayor parte del díainmóvil, sujeta firmemente a las ramillasde los árboles, siendo muy activa en lanoche (Baldini y Pancel, 2002).

Adulto:El color principal es un gris aleonado,

las alas anteriores muestran una manchaocular una faja transversal de un morenonegruzco y la parte posterior de su basees del mismo color mientras la parteanterior de la base es blanquizca, cercadel borde exterior hay una faja oscurasinuada, la marcha ocular es circular ymuestra de afuera hacia el centro primeroun anillo negro, después otro leonado, elcentro es morado en la parte exterior,negro en la anterior y encierra una líneablanca en forma de hoz, alas posterioresmuestra en la parte anterior de su baseun lunar casi negro, la faja negruzca quecorre paralela al borde posterior muestraal exterior un limbo blanquizco, la manchaocular es mucho más grande que lasanteriores, con anillo negro, el centropurpuráceo y una pequeña línea blancaarqueada en forma de hoz, alas

Hospederos:• Maytenus boaria

Mol. (Maitén),• Beilschmiedia miersii

(Gay) Kostern (Belloto del norte),• Aristotelia chilensis

(Mol.) Stuntz. (Maqui),• Nothofagus obliqua

(Mirb.) Oerst. (Roble),• Nothofagus dombeyi

(Mirb.) Oerst. (Coihue),• Nothofagus alpina

(Poepp. et Endl.) Oerst. (Raulí),• Kageneckia oblonga

R. et P. (Bollén) (Angulo et al., 2004).

Entre las especies exóticas seencuentran Cupressus macrocarpa Gord(Ciprés) y Pinus radiata D Don (Pinoinsigne) (Angulo et al., 2004).



DañoEl daño es producido en el estadío de

larva y consiste en la defoliación de lashojas nuevas del árbol, lo que conlleva ala pérdida de la capacidad fotosintética.El ataque se produce entre los meses deseptiembre, octubre y noviembre. Dadoque las larvas se alimentan sólo del follajese presume que pueden afectar alhospedero durante toda la fase vegetativadel árbol (Baldini y Pancel, 2002).

La defoliación que producen es de bajaincidencia, ya que se encuentran ennúmero reducido de individuos, por lo quesu efecto es mínimo (Baldini et al., 1994).

El follaje se encuentra masticado ensu totalidad, incluyendo el limbo y lanervadura (Fercovic y Lanfranco, 1995).

Manejo IntegradoCuando el número de defoliadores

aumenta sobre los umbrales detolerancia, De Liñan (1998) recomienda eluso insecticidas piretroides, los quepueden ser eficaces por su acción dechoque y persistencia.

posteriores, en vez del ojo de la fazsuperior sólo una pequeña línea blancaatravesada bordeada de rojo en su parteposterior. La envergadura alar es de entre80 a 115 mm. En cuanto a tamaño, losmachos miden entre 55 a 70 mm (Figura16) mientras que las hembras van de 80a 99 mm (Figura 17). El período de vueloes entre enero a abril (Lemaire, 2002;citado por Angulo et al., 2004) 1994).

Como control cultural, para eliminarhuevos y larvas se sugiere la poda (ForestPests, 2004); Alverson et al. (1994) indicanque entre las opciones de control estánremover manualmente las estructurasafectadas por el patógeno, la podasanitaria y los insecticidas. A continuacióndel tratamiento, se recomienda promoverel vigor y la salud del árbol, para ayudar asu recuperación luego de la defoliación.



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Distribución:Los síntomas relacionados al nemátodo han sido observados desde la Regióndel Maule por el norte, específicamente en Bellotos del Melado y Los Ruíles,hasta la Región de Aysén del General Carlos Ibáñez del Campo por el sur.

(Vovlas, Troccoli y Morens, 2000) (Tylenchida: Anguinidae)


Nombre común:• Nemátodo foliar.

Hospederos:La primera identificaciónde S. chilensis se realizósobre.• Nothofagus obliqua

(Mirb.) Oerst. (Roble),siendo esta la especiemás atacada, sinembargo también se hadetectado sobre.

• Nothofagus alpina(Poepp. et Endl.) Oerst.(Raulí) y

• Nothofagus pumilio(Poepp. et Endl.)Krasser (Lenga).

Subanguina chilensis

Figura 18.Hojas de N. obliqua afectadas porSubanguina chilensis(A. Sartori).



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DescripciónSubanguina chilensis es un nemátodo

nativo fitopatógeno parasítico, que seencuentra en el suelo y que es capaz deatacar fuertemente el follaje de losNothofagus obliqua.

El ataque del nemátodo provocadefoliaciones masivas y recurrentes, quepueden ser parciales o totales en el árbol,cuyo efecto puede derivar en la muertede los árboles afectados en variastemporadas, producto del debilitamientocontinuo del individuo.

El tipo de daño producido por S.chilensis es el típico de los nematodosfitoparasitos: al alimentarse inyectan suestilete en los tejidos de sus hospederos,penetrando en las células. Aparentementesecretan una especie de saliva quecontiene algún tipo de enzima. Estassecreciones serían muy importantes enpatogenicidad del agente.

Al parecer la dispersión del nematodosería a través de vectores, en este casocoleópteros de la familia Scarabaeidae(Aguayo, 2004).

DañoSubanguina chilensis infecta

principalmente los bordes de hojas jóvenesproduciendo una hipertrofia (elongacióncelular anormal) e hiperplasia (divisióncelular sin control) de los tejidomesofílicos, lo que se traduce en laformación de agallas confluentes de 2 a 8mm, localizadas en zonas próximas a lasnervaduras centrales o venas secundariasde la hoja (Aguayo, 2004).

Sobre Roble los síntomas descritos

corresponden a una foliación tardía, quepuede llegar a ocurrir incluso a principiosdel verano; desarrollo de hojas durante laprimavera y el primer mes del verano, quealcanzan un tamaño una o dos vecesmenor a una hoja normal; copastraslúcidas por efecto de la falta de follaje;presencia de agallas en las hojasdesarrolladas antes de mediados deenero; clorosis de las hojas, comenzandocon las que presentan agallas, paradespués afectar a la totalidad del follaje;ocasionalmente presencia de manchasoscuras en la corteza de los árboles, porla secreción de savia producto del ataquede agentes secundarios, en particular deescarabajos barrenadores y la muerte delárbol (Aguayo, 2004) (Figura 18 y 19).



Figura 19.Hojas de N. alpina afectadas porSubanguina chilensis(A. Baldini).



Distribución:Se ha detectado en la Región de Aysén del General Carlos Ibáñez del Campo.

(Lepidoptera: Geometridae)


Nombre común:Sin información

Hospederos:

• Nothofagus pumilio(Poepp. et Endl.) Krasser(Lenga).

Warreniana sp.

Figura 19.





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DescripciónPolilla que aún no ha sido descrita.

DañoInsecto que se alimenta de las hojas

de Nothofagus pumilio y causa defoliación(Figura 20 y 21).

Figura 20. Bosques de N. pumilioafectados por Warreniana sp. (A.Baldini).

Figura 21. Bosques de N. pumilioafectados por Warreniana sp. (A.Baldini).



Insectossuccionadores

Complejo Cinara cupressiSaissetia coffeaeMetaleurodicus pigeanusNeuquenaphis spp.


A G E N T E S D E D A Ñ O B I O T I C O SI n s e c t o s s u c c i o n a d o r e s

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Distribución:Las especies del género Cinara están dispersas en prácticamente todo elmundo, siendo los continentes más afectados por su presencia Europa, Áfricay América. En Chile la primera detección data del año 2003, en la RegiónMetropolitana, encontrándose actualmente en la totalidad del territorio nacionalcontinental.

(Buckton, 1881) (Hemiptera: Aphididae)

Sinonimia:• Cinara sp.

Nombre común:• Pulgón gigante de las

cupresáceas.

Hospederos:• Callitris calcarata

R. Br. ex R.T. Baker yH.G. Sm. (Ciprés de Pinorojo),

• Cupressus sp. (Ciprés),• C. arizonica Greene

(Ciprés de Arizona),• C. goveniana Gordon

(Ciprés),• C. lusitanica Mill.

(Ciprés),• C. macrocarpa Hartw.

ex Gordon (Ciprés deMonterrey),

Complejo Cinara cupressi

Figura 22. Adultos de Cinara cupressisobre Thuja sp. (A. Sartori).



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A G E N T E S D E D A Ñ O B I O T I C O SI n s e c t o s s u c c i o n a d o r e s 11111

• C. sempervirens L. (Ciprés),• C. torulosa D. Don ex Lamb.(Ciprés

de Himalaya),• Juniperus sp. (Enebro),• C. sempervirens L. (Ciprés),• J. bermudiana L. (Cedro de las

Bermudas),• J. macrocarpa Sibth. y Sm. (Enebro

de fruto grande),• J. procera Hochst. ex Ende (Junipero

de África),• J. recurva Buch.-Ham. ex D. Don

(Enebro llorón),• J. scopurolum (Sarg.) Murray (Enebro

de las Montañas Rocosas),• J. virginiana L. (Cedro rojo de

Virginia),• Thuja occidentalis L. (Cedro blanco),• T. plicata Donn ex D. Don (Thuja

gigante),• Tetraclinis articulata (Vahl) Mast.

(Ciprés de Cartagena),• Widdringtonia dracomontana Stapf

(Ciprés),• W. nodiflora (L.) Powrie (Ciprés de

Montana) y• Chamaecyparis lawsoniana (Murray)

Parl. (Ciprés de Lawson).

En general afecta a todas las especiesde la familia de las cupresáceas,radicando su mayor importancia en el paísal ataque reportado en bosques deAustrocedrus chilensis (D. Don)Pic.Serm. et Biz. (Ciprés de la Cordillera)e individuos aislados de Fitzroyacupressoides (Mol.) Johnst. (Alerce).

DescripciónLos áfidos gigantes de las coníferas

adultos poseen un rango de tamaño de 2a 5 mm de longitud. Por lo general son de

un color marrón oscuro y poseen pataslargas. En algunas oportunidades sucuerpo esta cubierto por una cera (ISSG,2005). El abdomen es pardo anaranjadoa pardo amarillento, presenta un pilosidadque le da un color grisáceo (Estay, 2004).

Las principales especies del géneroque se asocian al complejo Cinaracupressi son Cinara cupressivora y C.cupressi, siendo su diferenciaciónbastante difícil, ya que la morfología ypigmentación en ambas es muy similar.Poblaciones del insecto en Gran Bretaña,mostraron que existen diferencias entrelos adultos ápteros de ambas especiesen la presencia de escleritos pigmentadosen el segundo segmento abdominal. Parael caso de C. cupressivora, 85% de losindividuos poseen dos escleritos en estesegmento, mientras que en C. cupressisólo el 10% de los individuos posee algúnesclerito en la posición II del segmentoabdominal, y menos del 1% posee un parde escleritos en aquella posición. Estecarácter es fácil de observar conampliaciones microscópicas relativamentebajas. Además, individuos ápteros de C.cupressivora tienden a ser un poco máspequeños que los de C. cupressi. Debidoa las dificultades en la identificación, estadebe ser realizada por expertos en elgénero Cinara , muchas vecescomplementándola con análisis de ADNde los individuos (Watson et al., 1999).

Características comunes para ambasespecies son una longitud variable de 1,8a 3,9 mm, con ojos oscuros y patasamarillentas, terminaciones distales delas tibias y fémures, pardas oscuras onegras. El abdomen es pardo naranja opardo amarillento, y tiene en su dorso una



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La ISSG (2005), señala que el ciclode vida de las especies del género Cinaraes bastante complejo.

Los pulgones presentan variasgeneraciones al año, cada una con unaduración aproximada de 25 días en elmomento óptimo de la época decrecimiento. Su reproducción es tantosexual como asexual. Esta última formaocurre durante los meses de veranomediante partenogénesis, proceso por elcual la hembra da origen a insectos vivoso ninfas. En condiciones de menortemperatura la reproducción es del tiposexual, la que tiene como resultado lapostura de huevos en vez de ninfas vivas.La oviposición se lleva a cabo en zonasrugosas de ramas y follaje, lugar dondelos huevos pasan el invierno.

Los adultos y las fases inmaduras seconcentran en grupos de 20 hasta 80individuos en las ramas, por lo que sucomportamiento es gregario,encontrándose en algunas ocasionesindividuos solitarios. Su alimentaciónconsiste en la succión de la savia de losárboles. Dicho tipo de alimentaciónproduce la desecación de brotes, eincluso la muerte de los individuos. Eneste proceso, el pulgón inyectapreviamente una especie de saliva, la quele permite digerir la savia. Por lo general,el árbol se seca desde el interior de lacopa hacia fuera y desde abajo haciaarriba. Además, el pulgón produce unaabundante secreción, dulzona y pegajosa,que recubre las ramas y el follaje. Estasustancia posibilita el establecimiento deun hongo negruzco (fumagina) que seadhiere al follaje e interfiere con lafotosíntesis.

pilosidad fina microscópica (tomento) decolor gris pálido que forma bandastransversales, dando la apariencia asimple vista de que el insecto es de colorgris (ISSG, 2005) (Figura 22).

En consideración a la detección deCinara fresai y Cinara tujafilina en Chile,es importante indicar sus diferencias conC. cupressi, en este contexto se puedemencionar que C. fresai tiene sus patas(fémur y tibia) completamente oscuras,mientras que C. cupressi sólo presentauna coloración oscura en la parte distaldel fémur y principio de la tibia. Además,C. cupressi tiene entre 4 a 7 pelos en labase del sexto segmento de las antenas,mientras que C. fresai presenta entre 7 a12. Al observar el rostro (cuarto segmentodel aparato bucal), se pueden contabilizarlos pelos accesorios, presentado C.cupressi entre 2 a 4 y C. fresai desde 5 a7 (A. Torres com. pers.).

Las diferencias entre C. tujafilina y C.cupressi están dadas por caracteresmicroscópicos, como en la gran mayoríade las especies de este género. Entérminos generales C. tujafilina es decoloración pardo-rojiza, con un patróndorsal ceroso de tonalidad blanco-azulosoy dos bandas curvas, divergentes, pardooscuras, que corren desde la cabezahasta aproximadamente el nivel de lossifúnculos; posee fémures pálidos al igualque gran parte de sus tibias, salvo susápices; la base del sexto antenito poseeentre 8 a 14 pelos; el largo del cuerpo vadesde 1,7 a 3,5 mm. (S. Rothmann com.pers.).

Aspectos biológicos



En laboratorio, bajo condicionesreguladas con una temperatura promediode 23ºC, humedad relativa de 60 a 65% yun fotoperíodo de 14 horas de luz y 10 deoscuridad, se determinó que el ciclobiológico de Cinara es de 35 a 40 días.Además, basándose en la contabilizaciónde mudas, se estableció que el insectotiene entre 5 y 6 estadíos ninfales. Enrelación a la fecundidad del áfido seregistró un promedio de 52 individuos porpulgón (A. Torres com. pers).

DañoLos principales síntomas asociados al

ataque de la plaga son la desecación deramas basales, la muerte regresiva ypresencia de fumagina en ramas yramillas, la presencia de hormigas y lapresencia de colonias de áfidos, que seencuentran en ramas o ramillas bienprotegidas de la luz solar (Figura 23).

La presencia de hormigas, constituyeun buen elemento para determinar lapresencia de estos áfidos, ya que estoresponde a una relación de tipo simbiótica,característica común a varias especies depulgones. Estas se alimentan de lassustancias azucaradas presentes en lasexcretas de las ninfas y adultos,mantienen a la colonia libre de hongos,las protegen de depredadores e inclusolas cubren con tierra húmeda cuandollueve, evitando la mortalidad de losindividuos.

Manejo IntegradoEl manejo integrado de esta plaga en

el país se ha basado en la utilización dela microavispa Pausia juniperorum,parasitoide que ingresó accidentalmentea Chile junto con su hospedero, siendosu reproducción en laboratoriosumamente dificultosa lo que ha obligadoa limitar su dispersión mediante repiquesde terreno. Análisis respecto a lacapacidad de establecimiento y niveles deparasitismo están aún en proceso derealización.

Adicionado a lo anterior, se hanidentificado varios insectos que actúancomo depredadores de Cinara sp. EnChile principalmente destacan Eriopisconnexa, Hippodamia convergens, H.variegata, Adalia bipunctata (Coleoptera:Coccinellidae) y Vespula germanica(Hymenoptera: Vespidae).

En Tanzania se han observado variosenemigos naturales del pulgón, los queestán representados en 4 ordenes(Diptera, Coleoptera, Hymenoptera yNeuroptera). En Kenia se ha registrado la

Figura 23. Bosques de Austrocedrus chilensisatacados por Cinara cupressi (A. Sartori).



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acción de larvas de la familia Sirphidae(Diptera), alimentándose de colonias deC. cupressi.

Desde individuos del pulgóncolectados en el Santuario de laNaturaleza de Yerba Loca, RegiónMetropolitana, se registró la emergenciade dos insectos del orden Hymenopteraparasitando los estadíos ninfales delpulgón, el más abundante pertenece algénero Megaspilidae (Hymenoptera:Megaspilidae), los que se describen comoparasitoides de hemiptera (homoptera) ypuparios de moscas y en algunos casoscomo hiperparásitos de Aphididae. Enmenor cantidad se ha detectado unaavispa perteneciente a la familiaPteromalidae. Ambos insectos presentanbaja especificidad y se asocian a plagasagrícolas.

En Alemania se ha estudiado elcomportamiento del parasitoide Aphidussp. (Hymenoptera: Braconidae) el que seha obtenido desde colonias de C.cupressi, presentando un alto ataque dehiperparásitos.

En los países mediterráneos deEuropa, se detectó una avispa del géneroPauesiella, la que en ensayos delaboratorio demostró ser más eficiente queP. juniperorum, pero que aún no ha sidoprobada en condiciones de terreno (W.Ciesla com. pers.).

Otros métodos de control, y que amenudo resultan ser de mayor costo ymenor efectividad, son la aplicación dequímicos y tratamientos silviculturales,basándose el último de éstos en mantenerárboles bajo condiciones desfavorablespara el desarrollo del insecto, por ejemplola poda, raleos y limpias del sotobosque

ayudarían, en general, a mantener unamayor aeración y radicación dentro delrodal, e incluso en el mismo árbol, factoresque limitan el desenvolvimiento delinsecto.

La aplicación de químicos, la que pormotivos operativos sólo es recomendablepara superficies reducidas o árboles conalto valor patrimonial y paisajístico, sebasa en insecticidas sistémicos, ya seapor inyección al fuste o aspersión al follaje,obteniéndose buenos resultadosúnicamente cuando se ejecuta la actividaden etapas tempranas de la colonizaciónde la plaga.



Distribución:En Chile se encuentra desde la Región de Arica y Parinacota a la Región delMaule.

(Walker, 1852) (Hemiptera: Coccidae)

Sinonimia:• Lecanium coffeae Walter,• Coccus hemispherica

Targ.-Tozz.,• Lecanium aemisphaerica

Targ.-Tozz.,• Saissetia haemispherica

Targ.-Tozz.,• Saissetia hemisphaerica

Targ.-Tozz.

Nombre común:• Conchuela hemisférica y• escama hemisférica.

Hospederos:• Schinus molle L.

(Pimiento) y frutales.

Saissetia coffeae

Figura 24. Adultos de Saissetia coffeaesobre rama de Schinus molle (A. Baldini).





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DescripciónNinfa:

Los estados ninfales son de coloramarillo a castaño amarillento con unpliegue dorsal en forma de H, las desegundo y tercer estadío poseen cerdasmuy ramificadas en el ápice y casi planas.

Adulto:Conchuela hembra adulta presenta

caparazón semiesférico o ligeramenteovalado, usualmente liso y brillante, aveces con un pliegue menos brillante enforma de letra H. De color pardo rojizobrillante a pardo oscuro, rara vez casinegro (Artigas, 1994) (Figura 24).

Aspectos biológicosSe estima la postura entre 1.500 a

3.000 huevos por hembra, los que seprotegen bajo el cuerpo de la hembra.Presentan una generación al año, en laRegión de Atacama, Huasco y Vallenares bivoltina y cohabita con Saissetia oleae(Artigas, 1994).

DañoInsecto succionador de savia, produce

un gran debilitamiento de la planta,además pueden atraer hormigas graciasa sus secreciones. Dejan masasnegruzcas en los depósitos de azúcar ylas hojas afectadas se caenprematuramente. Los insectos madurosse pueden ver fácilmente como bultitosen el envés de la hoja o el tallo. Las hojascrecen anormalmente, además quedanpegajosas y deformadas (Wikipedia,2008).

Manejo IntegradoEl empleo de enemigos naturales ha

sido una de las medidas más recurridasy de las más clásicas, suelen dar buenosresultados, tales como: Coccophaguscaridei, Metaphycus flavus , M. helvolus ,M. stanleyi, Scutellista caerulea y S.cyanea .

El control químico es difícil por sushábitos no constantes de alimentación ypor su dorso céreo que dificulta lautilización de pesticidas, que por otro ladopueden acabar con los parasitoides quese suelen emplear para destruirlos. Sinembargo lo más utilizado es el aceitemineral al 1% con muy buen cubrimientocuando más de un 10% de las ramillasse encuentran infestadas con conchuelasvivas. Esta aplicación debe realizarsecuando ya no se encuentren ninfas vivasbajo el caparazón de las hembrasadultas. Si la infestación de ramillas esmayor al 50%, debe repetirse la aplicación(MIP, 2008).



(Baker y Moles, 1923) (Hemiptera: Aleyrodidae)

Sinonimia:• AustroAleurodicus

pigeanus Baker y Moles,

• Aleurodicus pigeanusBaker y Moles.

Nombre común:• Conchuela blanca del

quillay.

Hospederos:• Quillaja saponaria Mol.

(Quillay)

MetAleurodicus pigeanus

Figura 25. Adultos de MetAleurodicuspigeanus sobre hoja de Quillaja saponaria.

Distribución:En Chile se encuentra desde la Región de Valparaíso a la Región del Maule.





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DescripciónSin Información.

DañoLa sintomatología más característica

es la presencia de largos filamentosserosos y se observan además,abundantes insectos en el envés de lashojas y cubriendo la mayor parte de susuperficie (Figuras 25 y 26).



Figura 26. Hojas de Quillaja saponariaafectadas por MetAleurodicus pigeanus



(Hemiptera: Aphididae)

Sinonimia:Sin información.

Nombre común:• Pulgones o áfidos.

Hospederos:En Chile se ha reportado en:• Nothofagus glauca (Phil.)

Krasser (Hualo),• Nothofagus obliqua


(Mirb.) Oerst (Coihue),• Nothofagus nitida (Phil.)

Krasser (Coihue deChiloé),

• Gunnera magallenica(Mol.) Mierbel. (Nalca),

• Nothofagus pumilio(Poepp. et Endl.) Krasser(Lenga) y

• Nothofagus antartica (G.Forster) Oerst. (Ñirre).

Neuquenaphis spp.

Figura 27.Adulto de Neuquenaphis spp.(A. Quiroz).

Distribución:Su distribución es la misma que sus hospederos.





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DescripciónNeuquenaphis es un género endémico

sudamericano de áfidos, comprende lacomponente de mayor importancia, sehospeda casi exclusivamente sobreespecies de árboles del géneroNothofagus (Ramírez, 2002).

En Chile se han descrito 12 especiesdel género Neuquenaphis, cinco de lascuales son compartidas por Nothofagusglauca, Nothofagus obliqua y Nothofagusdombeyi. Las restantes siete especiesson principalmente monófagas sobreNothofagus (Fuentes-Contreras et al.,1997) (Figura 27).

Para la zona centro-sur de Chile, seha descrito un patrón de especializaciónde Neuquenaphis en Nothofagus, y se hasugerido que éste patrón de distribuciónpodría estar mediado por un mecanismode reconocimiento químico a nivel deselección del hospedero (Quiroz et al.,1999). En el Parque Nacional Laguna SanRafael se han reportado las siguientesespecies de Neuquenaphis sobreNothofagus: Neuquenaphis schilingeriHille Ris Lambers y Neuquenaphischilensis Essig en Nothofagus nitida.

DañoLos daños son el resultado directo de

su alimentación, provocan elamarillamiento, arrosetamiento,deformaciones y caída anticipada de lashojas, además de la disminución delcrecimiento y el ennegrecimiento de losórganos de las plantas debido aldesarrollo de hongos saprofíticos,conocidos como fumaginas, sobre elmelado excretado por los áfidos. Los

mencionados síntomas son unaconsecuencia de la abundante extracciónde savia y de una particular reacción dela planta hospedante a la inyección desaliva generalmente tóxica (Delfino yBinazzi, 2002). Además tambiéntransmiten virus fitopatógenos queprovocan disminución en los rendimientosy calidad de las semillas (Delfino et al.,2007).





Insectostaladradores de madera

Calydon submetallicumCheloderus childreniChilecomadia valdivianaEpistomentis pictusGnathotrupes barbiferGnathotrupes caliculusGnathotrupes consobrinusGnathotrupes fimbriatusGnathotrupes herbertfranziGnathotrupes impressusGnathotrupes longipennisGnathotrupes longiusculusGnathotrupes nanusGnathotrupes nothofagiGnathotrupes pustulatusGnathotrupes vaferGnathotrupes velatusGrammicosum flavofasciatumHolopterus chilensisLautarus concinnusSibylla lividaStrongylaspis limae


A G E N T E S D E D A Ñ O B I O T I C O SI n s e c t o s t a l a d r a d o r e s d e m a d e r a

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Distribución:En Chile se encuentra desde la Región de Coquimbo a la Región deMagallanes y La Antártica Chilena (Cerda, 1986). También se encuentra en laArgentina en Neuquén, Nahuel Huapi, San Martín de los Andes, Río Negro,Chubut, Santa Cruz, etc. (Bosq, 1951).

(Blanchard, 1851) (Coleoptera, Cerambycidae)

Sinonimia:• Callidium submetallicum

Blanch.,

• Calydon submetallicumThoms.,

• Mallosoma ubmetallicumChevr.,

• M. submetallicum(Blanch.).

Nombre común:• Taladro del ñirre.

Calydon submetallicum

Figura 28. Adulto de Calydonsubmetallicum (A. Sartori).



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A G E N T E S D E D A Ñ O B I O T I C O SI n s e c t o s t a l a d r a d o r e s d e m a d e r a 11111

DescripciónAdulto:

Mide de 12 a 17 mm de largo y de 4 a6 mm de ancho. La cabeza es fuerte ydensamente punteada. Las antenas sonnegras; un poco más largas que el cuerpoen los machos, siendo bastante máscortas en las hembras. El protórax esrugoso como la parte trasera de la cabeza,algo plano, el borde anterior formado poruna línea convexa ensanchada en los

bordes laterales anteriores y dirigidoshacia delante, siendo su color negro. Losélitros son de color negro profundo conaspecto aterciopelado, éstos llevan undibujo amarillo que rodea los dos terciossuperiores de los élitros, ensanchándoseen su extremo posterior. Las patas sonrobustas, de color azul metálico, losfémures están fuertemente terminados enporra, sobrepasando éstos los élitros enel caso de los machos. El abdomen esde color azul metálico (Bosq, 1951)(Figura 28).

Aspectos biológicosEl ciclo de vida se estima que sería de

dos años (Giganti y Dapoto, 1990),aunque Baldini et al. (1994) sugieren queel ciclo de vida es anual y no bianual comose ha mencionado.

La larva es de hábitos xilófagos, se laencuentra asociada, generalmente, conEpistomentis pictus y Rhyephenes maillei(Cameron y Peña, 1982; Giganti y Dapoto,1990). Se alimentan bajo la corteza deárboles recién caídos o muertos; susgalerías, rellenas de aserrín compactado,alcanzan de 7 a 9 mm de ancho; finalizansu período larval ingresando a la madera,para construir su cámara pupal, en elsentido de la fibra de la madera, a no másde 1,5 cm de profundidad.

El adulto es una de las especies máscomunes de la familia, siendo muy comúnen bosques de Nothofagus spp. Frecuentalos troncos recién caídos de especies defagáceas, donde oviposita (Peña, 1976).Los adultos, se ocultan en lasirregularidades de la corteza de los roblesy ponen sus huevos en la primavera

Hospederos:• Nothofagus dombeyi (Mirb.) Oerst.

(Coihue) (Monrós, 1943; Bosq, 1951;Cameron y Peña, 1982; Barriga et al.,1993);

• Nothofagus obliqua (Mirb.) Oerst.(Roble),

• Nothofagus pumilio (Poepp. et Endl.)Krasser (Lenga),

• Nothofagus antartica (G. Forster)Oerst. (Ñirre),

• Nothofagus betuloides (Mirb.) Oerst(Coihue de Magallanes),

• Nothofagus glauca (Phil.) Krasser(Roble maulino),

• Quillaja saponaria Mol. (Quillay)(Barriga et al., 1993);

• Drymis winteriJ. R. et G. Forster (Canelo) y

• Persea lingue (R. et P.) Nees ex Kopp(Lingue) (Porter, 1938).



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(Baldini et al., 1994). Vuelan entre losmeses de octubre a enero.

DañoEl daño es ocasionado por el estadío

larval, se presenta en madera muerta yconsiste en galerías sinuosas rellenas conuna mezcla granulada y apretada deaserrín, con deposiciones de las mismaslarvas (Cameron y Peña, 1982).

El daño se ubica bajo la corteza y enla parte superior del xilema, con galeríasen la madera que conducen a las cámaraspupales (Cameron y Peña, 1982).

En troncos apilados o caídos, esposible observar en los meses deprimavera y verano, el aserrín producto dela gran actividad larvaria en el interior delas galerías que ellas construyen (Baldiniet al., 1994).

La larva debería presentarse durantetodo el año, sin embargo, Baldini et al.(1994) mencionan que sólo se encuentrandesde el otoño hasta la primavera.

Baldini et al. (1994), sólo mencionanque el daño puede llegar a serconsiderable, no entregando mayorinformación sobre el efecto que estotendría. No obstante, al producirse laperforación de los troncos producto de laactividad larvaria, la calidad de la maderase ve afectada, tanto directa comoindirectamente, al facilitarse la entrada deagua y hongos al interior de la misma.


de manejo integrado. Sin embargo,Cameron y Peña (1982) encontraronnumerosas avispas parásitas queemergieron desde trozas que conteníanlarvas y pupas de C. submetallicum.Barriga (1990) identificó a Pristaulacus sp.(Hymenoptera: Aulacidae) comoparasitoide asociado a C. submetallicum.



Sinonimia:• Cheloderus childrenii Gray.

Nombre común:• Coleoptero de la luma.


(Mirb.) Oerst. (Coihue)(Monrós, 1943; Cerda,1972; Cameron y Real,1974; Gara et al., 1980;Gentili y Gentili, 1988;Artigas, 1994);

• Nothofagus obliqua Mirb.)Oerst (Roble) con menorfrecuencia (Cameron yReal, 1974; Peña, 1974).

Figura 29. Adulto de Cheloderuschildreni (A. Alvarado).

Distribución:En Chile se encuentra desde la Región del Maule a la Región de Aysén delGeneral Carlos Ibáñez del Campo (Kuschel, 1955; Cerda, 1972; Cameron yReal, 1974; Peña, 1976; Cerda, 1986; Billings et al., 1993; Artigas, 1994).También se encuentra en los bosques subantárticos del suroeste de Argentina,desde las montañas próximas a Neuquén (aproximadamente 40° latitud) hastael Parque Nacional Nahuel Huapi (41° latitud) (Santoro, 1966; Cerda, 1972;Cameron y Real, 1974; Billings et al., 1993; Artigas, 1994).

(Gray, 1832) (Coleoptera: Cerambycidae)Cheloderus childreni





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Descripción

Huevo:Es de color blanco amarillento,

semioval mirado de costado y redondo defrente; mide de 4,7 a 5,0 mm de largo yde 2,7 a 3,2 mm de ancho; posee unpedicelo originado en el extremo másangosto, que mide alrededor de 1,5 a 1,9mm de largo y 0,4 mm en la base; elcorión es duro y de superficie lisa(Cameron y Real, 1974).

Larva:Las larvas recién nacidas miden entre

5,6 y 7 mm de largo y 2,2 mm de anchomáximo de tórax y pueden llegan a mediraproximadamente 50 mm de largo con unancho máximo en el tórax de 11 mm, sonde color blanco y robusta con los ladosparalelos; la cabeza está fuertementeesclerotizada y negra alrededor de laspiezas bucales; las mandíbulas sonnegras y puntiagudas. El protórax es casidos veces más ancho que largo y poseemanchas cafés características. Los trespares de patas torácicas son cortas yterminan en una uña puntiaguda. Elabdomen tiene ampollas en los primerossiete segmentos, cada uno con dosdepresiones transversales. El dibujo en elprotórax es semejante en las larvaspequeñas y grandes (Cameron y Real,1974).

Pupa:Es blanca, tiene la forma general del

adulto y presenta un aspectotransparente. Las patas están encogidaspegadas al cuerpo con los tarsosopuestos juntos sobre el vientre. De unorigen dorsal, los élitros, pasanventralmente bajo los dos primeros pares

de patas y encima del tercer par casi sejuntan sobre el vientre. Las antenas sedeslizan lateralmente rodeando losprimeros dos pares de patas. A medidaque la pupa se desarrolla, se oscurecenalgunas estructuras como los ojos, lasmandíbulas y las uñas. La superficie delcuerpo de la pupa es lisa y glabra, conexcepción de algunas evaginacionespequeñas en los tergos abdominales. Lapupa madura es un poco brillante. El largo,de la cabeza hasta el ápice del abdomen,es aproximadamente 43 mm y el anchoal nivel del tórax es de 14 mm. El tamañovaría considerablemente debido en partea que las hembras son más grandes quelos machos (Cameron y Real, 1974).

Adulto:Tiene fama de ser el insecto más

hermoso de Chile, debido a sus coloresmetálicos brillantes y a su gran tamaño(Peña, 1986; Gara et al., 1980; Billings etal., 1993). El largo de las hembras, desdela cabeza hasta el extremo distal de losélitros, varía de 3,38 a 3,99 cm, y el ancho,a nivel de la base de los élitros, de 1,13 a1,42 cm. Los machos son más pequeñosmidiendo de 2,73 a 3,22 cm de largo y0,98 a 1,13 cm de ancho, siendo estasmedidas menores que las obtenidas porCerda (1972) (Cameron y Real, 1974).

La cabeza es hipognata, con unadepresión longitudinal entre los ojos y labase de las antenas. En la base, la antenaes morada cambiando a negro hacia elápice; las antenas de la hembra son deun largo aproximado a la mitad del cuerpoy las del macho son de un largo igual alos ¾ del cuerpo. El pronoto es de un colorverde dorado algo opaco, conexpansiones laterales del mismo color, aligual que el escutelo. Los élitros son



glabros y cribados, rojo oscuro en generalcon el margen látero-distal morado; elfondo de las cribas es verde metálicodando a los élitros coloraciones verdescuando la luz incide con ciertos ángulos,siendo los ejemplares de más al norte,según Peña (1974), de una coloración másrojiza, a diferencia de los que existen másal sur que son más verdosos. El vientredel tórax del macho es velloso, en cambiola hembra tiene muy poco vello. El margencaudal del último esternito del machotermina en cuatro proyeccionesespinosas, siendo las dos centrales lasmás notables. Las patas tienen el fémurverde con excepción de la articulación quees morada; las tibias y tarsos sonmorados metálicos (Cerda, 1972;Cameron y Real, 1974; Gara et al., 1980;Artigas, 1994) (Figura 29).

Aspectos biológicosEl ciclo de vida se estima en 5 a 6

años, con la siguiente distribución dentrodel año, huevo: noviembre a agosto; larva:todo el año; pupa: septiembre a febrero;adulto: noviembre a abril (Cameron y Real1974; Gara et al., 1980; Artigas, 1994).

La larva emerger del huevo, ésta abreun agujero al costado de él y así entradirectamente al interior del árbol,atravesando la corteza para empezar sugalería en la madera sin detenerse en laregión cambial (Cameron y Real, 1974).La larva horada una galería ovalada enforma de “J” la que alcanza los 40 cm delargo por 1,5 cm de ancho; al terminar sudesarrollo, forma un tapón apretado deviruta larga en la apertura de la galería yse encierra con otro tapón de viruta en elápice de la galería, dónde forma su

cámara pupal, de forma oval, forrándolacon astillas finas de madera (Cameron yReal, 1974).

El adulto cuando está recién formadoposee las regiones laterodorsales delabdomen blancas y poco esclerotizadas;permanece en la cámara pupal por unperíodo de maduración aproximado de unmes; para salir de la galería, el adultodesplaza hacia atrás los pedazos de virutaque forman los tapones que impiden lasalida (Cameron y Real, 1974).

Los machos son los únicos que puedenvolar realmente, éstos vuelan sólo duranteel día y en especial durante la mañanateniendo su mayor actividad alrededor delmedio día, siendo su vuelo rápido yruidoso. Las hembras, sin embargo,raramente vuelan y lo hacen en malaforma. Cuando la velocidad del viento essuperior a los 1,12 m/seg el despegue delos machos sólo es realizado en ladirección del viento y una vez en vuelo seacercan a la hembra volando en círculoscada vez más cerrados. El hecho de quese acerquen varios machos a una hembravirgen y luego de la cópula termine elinterés de éstos por ella, indica que lashembras usan feromonas para atraer alos machos (Cameron y Real, 1974; Garaet al., 1978).

La hembra, una vez fecundada, buscalugares de oviposición, para ello caminalentamente sobre la superficie del troncoraspándola con su ovipositor, el que estáequipado con un pequeño rastrillo con dosdientes largos centrales y dos lateralesmás cortos. Al caminar, el rastrillo acumulapedacitos del sustrato en la cavidad desu ovipositor ubicado bajo el rastrillo laque está rodeada por pelos gruesoscurvados. Al pasar por la cavidad, el huevo



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Figura 30. Galeria larval de Cheloderuschildreni.(A. Baldini)

Figura 31. Restos de Cheloderus childreni sobreNothofagus dombeyi.(A. Baldini)

se recubre en la superficie superior coneste material acumulado y se pegafirmemente al sustrato, quedandoperfectamente bien camuflado conpedazos de corteza, musgos y otrosmateriales, repitiéndose la operación parala postura del siguiente huevo, siendo lacantidad total de huevos puestos por unahembra de poco más de 30 (Cameron yReal, 1974). Las hembras ovipositanprincipalmente en la base de los árboleshasta una altura de 3 metros,encontrándose también algunas galeríashasta una altura cercana a los 14 m(Cameron y Real, 1974).

La capacidad de dispersión es baja,debido a que la hembra rara vez vuela, yen las ocasiones en que es capaz derealizar el acto de volar, éste es de malaforma y en trechos cortos, por lo que lareinfestación en el mismo árbol sería alta.

DañoEl daño consiste en galerías que son

ovales en el corte transversal teniendo laforma de una “J”. Estas se introducen en

el árbol en ángulo oblicuo hacia arriba porunos 10 a 15 cm antes de dirigirsedirectamente hacia la copa paralelo a lacorteza (Figura 30). Las galerías viejas yadesocupadas y las con pupas tienen de28 a 47 cm de largo, 1,5 a 2,5 cm deancho máximo en el corte transversal y1,0 a 1,8 cm en el ancho mínimo (Camerony Real, 1974).

Cuando el ataque está comenzandohay exudación de savia que sale por elagujero de entrada a la galería, causandouna mancha visible en la corteza. Bajo laabertura de la galería se acumulan fibraspequeñas de viruta expulsadas por la larvay a veces se encuentran adultos delucánidos y hormigas asociados a la saviafermentada (Cameron y Real, 1974).

Cuando el ataque ya es viejo y la larvaes más grande no hay presencia demanchas de savia, pero se aprecian



acumulaciones de viruta blancaamarillenta en el suelo o sobre la corteza.Esta viruta es característica de lasgalerías del “coleóptero de la luma” y varíaen largo según el tamaño de la larva,alcanzando un largo de 5 a 6 cm. Además,el cambium que se encuentra alrededorde las heridas causadas, cicatrizaformando abultamientos notables en lostroncos de Coihue (Cameron y Real,1974).

El daño se ubica en el fuste del árbol,principalmente entre la base y una alturade 3 m, encontrándose también hasta unaaltura cercana a los 14 m. En el interiordel árbol el daño se encuentra en el xilemaal penetrar la larva hacia el centro del árbol(Cameron y Real, 1974).

No está especificado a que edad odiámetro mínimo del árbol comenzaría lainfestación, sin embargo, lasobservaciones existentes se han realizadoen Coihues vivos de aproximadamente 25m de altura y 60 años de edad y tambiénen árboles de 8 a 10 cm de diámetro(Cameron y Real, 1974) (Figura 31).

El daño ocasionado por el insectoinutiliza la madera para fines industriales,especialmente chapas (Artigas, 1994),debido a que sus galerías son gruesas ypenetran hacia el interior de la madera, loque además facilitaría la entrada dehongos de pudrición de la madera.


de manejo.



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Sinonimia:• Cossus valdiviana Phil.,• Allocossus

discoclathratus Bryk.,• Hypopta valdiviana

(Phil.),• Langsdorfia valdiviana

(Phil.).

Nombre común:• Gusano valdiviano,• Gusano del tronco,• Gusano del tebo.

Figura 32. Adulto de Chilecomadiavaldiviana (A. Baldini).

Distribución:En Chile se encuentra en una gran variedad de ambientes (Gentili, 1988),encontrándose desde la Región de Atacama a la Región de Magallanes y LaAntártica Chilena (Artigas, 1994), desde el nivel del mar hasta los 1700 msnm.En Argentina se encuentra en Neuquén, Río Negro y Santa Cruz (Gentili, 1989).

(Philippi, 1859) (Lepidoptera: Cossidae)Chilecomadia valdiviana



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DescripciónHuevo:

Es de forma ovalada, mide 1,4 mm delargo por 0,9 mm en su ancho máximo(Petersen, 1988), esculturado con unretículo cuadriculado, de color verdeblanquizco al ser recién puesto,tornándose opaco cuando está próximo aeclosar.

Larva: Recién nacida mide unos 3 mm de

largo por 0,6 mm de ancho máximo ypueden llegar a medir 54 mm de largo por9 mm de ancho máximo (Petersen, 1988),es de color rosado brillante, existiendotambién algunas de color amarillento yblanquizco, siendo la cabeza de colorcastaño oscuro. El primer segmentotorácico presenta una placa quitinizada decolor castaño oscuro con una regióncentral más clara. Presenta espiráculosen el primer segmento torácico y en losprimeros ocho segmentos abdominales(Olivares y Angulo, 1992). Posee tres

pares de patas torácicas y cinco paresde espuripedios ubicados en lossegmentos abdominales 3, 4, 5, 6 y en elsegmento anal (Figura 33).

Pupa:Mide entre 15 a 39 mm de largo, con

un ancho máximo de 9,0 mm (Petersen,1988), su color es pardo-rojizo claro,tornándose muy oscuro cuando estápróxima a eclosar; llama la atención unproceso frontal negro de 0,75 mm deancho, ubicado en la línea medio-ventral.Presenta un capullo hecho con seda y controcitos de madera y aserrín delhospedero. Los espiráculos estánpresentes en los segmentos 2 al 6, todosestos segmentos además del 7° y 8°, ensu lado dorsal presentan dosproyecciones de bordes crenulados y/oespinosos muy notorios (Olivares yAngulo, 1992).

Adulto:En la hembra, la extensión alar varía

de 43,4 a 62 mm y la longitud corporal de18,2 a 25 mm (Petersen, 1988). Las alasanteriores son de color gris-ceniza claro

Figura 33. Larva de Chilecomadiavaldiviana (A. Baldini).


(Coihue) (Gentili y Gentili, 1988),• Weinmannia trichosperma Cav.

(Tineo),• Trevoa trinervis Miers (Tebo),• Nothofagus pumilio (Poepp. et Endl.)

Krasser (Lenga) (Petersen, 1988),• N. antarctica ??????

Krasser (Lenga) (Petersen, 1988),• Nothofagus alpina (Poepp. et Endl.)

Oerst. (Raulí) (Lewis y Peredo, 1993);• Maytenus boaria Mol. (Maitén) (Cerda,

1995; 1996).



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a gris-castaño, con manchas pequeñas,oscuras, la mayoría subtriangular,ordenadas en una franja paralela al bordedistal y en el tercio basal del ala; el áreabasal, entre la franja y el cuerpo, es grisplateado; en el centro del ala (celdadiscal) hay una mancha cenicienta (enindividuos secos) o blanca verdosa (enindividuos vivos), que contrasta con elcolor gris-castaño del resto. Segundo parde alas castaño oscuro con dos o trespequeñas manchas blancas bordeadas denegro ubicadas en la parte anal del bordedistal. El cuerpo, grueso, cubierto de pelosgris-plateados en el noto y en la líneamedio dorsal del abdomen; los costadosdel abdomen con pelos oscuros (Artigas,1994).

En el macho, la extensión alar varíade 37 a 38,9 mm y la longitud corporal de17,1 a 18,4 mm (Petersen, 1988). Siendolos machos definitivamente más oscurosque las hembras y más pequeños; lamaculación alar es similar aunque másdifusa. Las antenas en ambos sexos sonsimilares, subfiliformes en los dos terciosbasales y microserradas en el terciodistal, esto último ligeramente másacentuado en los machos. Los colores delas alas y pelos del cuerpo varían entonalidad, siendo en general más clarosen individuos vivos (Artigas, 1994) (Figura32).

Aspectos biológicosArtigas (1994) estima que el ciclo de

vida tiene una generación al año; Cerda(1995; 1996) estima que su ciclo vital seríade 2 a 3 años; observaciones másrecientes, en Eucalyptus nitens Maiden,

indican que su ciclo de vida se traslapa ypuede durar 1 o 2 años, en función de laépoca de inicio del período de emergenciay vuelo (Cerda, 1998).

Las diferentes fases de desarrollo sedistribuyen de la siguiente manera; huevo:desde mediados a fines de septiembre enla Región del Bío-Bío (Artigas, 1994); larva:todo el año (Cerda, 1996); pupa: enagosto (Artigas, 1994) y septiembre(Angulo y Olivares, 1991); adulto: desdela primera mitad de septiembre hasta finesde febrero, con ejemplares aislados enmarzo y abril (Gentili, 1989).

La larva es de hábitos xilófagos (Lewisy Peredo, 1993), dañando principalmenteel xilema y no el floema (Cerda, 1995);cavan una única galería que inicialmentees en sentido transversal hasta llegar alduramen, para luego dirigirse en sentidolongitudinal-ascendente. Las larvas alllegar a su último estadío tapan el agujerode emergencia y se dirigen al final de lagalería, donde construyen una cámarapupal, para así pasar a la fase de pupa, lacual, cuando está próxima a eclosar, sedirige a la entrada de la galería, rompiendoel tapón y asomando parte de su cuerpofuera del hospedero para así eclosar fuerade él.

En cuanto a las larvas, éstas sealimentan de hongos que cultivan en elinterior de las galerías. En ataques en E.nitens, sus galerías son muy cortas, nosuperando los 25 cm de longitud total yun diámetro promedio de 2,5 cm, que esbastante superior al diámetro de laslarvas, siendo estas medidas extrañaspara un insecto xilófago cuyo ciclo de vidadura hasta 2 años y que las galerías lasmantienen libres de aserrín, sellándolas



sólo en forma previa a la fase pupal (Cerda,1995)

El adulto es de hábitos crepuscularesnocturnos, en cuanto al vuelo, ladispersión, el apareamiento y la posturade los huevos, permaneciendo luegoinactivos durante las horas del día (Cerda,1995).

Una vez emergidos del interior de losárboles, los adultos están ya encondiciones de aparearse, y una vezocurrido el apareamiento, inician laoviposición dentro de las 24 horassiguientes. Esta la realizan depositandolos huevos en el fuste de los árboles,principalmente en los puntos de inserciónde ramas y/o en grietas de la corteza, enmasas o grupos de 30 a 50 unidades,hasta alcanzar un número cercano a los200 huevos (Cerda, 1995; 1996).

El hecho de que las hembras seanactivas voladoras (Gentili, 1989) y que laslarvas tengan hábitos polífagos,encontrándose en diferentes ambientes alo largo de Chile, hacen pensar que notendrían problemas en dispersarse. Sinembargo, Ch. valdiviana muestra una claratendencia a reinfestar los árboles yaatacados en la temporada anterior, con locual su capacidad de dispersión se veatenuada, siendo ésta más bien moderada(Cerda, 1995).

DañoCuando recién está comenzando a

actuar el insecto se puede observarexudación de savia por los orificios deentrada de las larvas; además hayexpulsión de aserrín fino y en poca

cantidad (Cerda, 1995), el cual apareceespecialmente en los nodos de separaciónde las ramas (Angulo y Olivares, 1991).Posteriormente, cuando el daño ya estáavanzado hay expulsión de aserrín enforma más abundante, siendo éste másgrueso y fibroso (Cerda, 1995). Losorificios presentan un diámetro entre 10 a12 mm y hay abundante cantidad deaserrín en la base de los troncos(Petersen, 1988). Además, en el caso deataques en E. nitens, las exudaciones delos orificios de expulsión de aserrínpermiten la formación de moho negro enel fuste, atrayendo avispas “chaquetaamarilla” (Vespula germanica Fabricius),lucánidos, nitidúlidos, hormigas y otrosinsectos, que acuden a libar lasexudaciones del árbol (Cerda, 1995). Porotra parte, cuando las larvas ya hancompletado su desarrollo y están próximasa pupar, taponan el orificio de salida con untapón globular y delgado, compuesto deaserrín fibroso y seda como materialcementante, sobresaliendo éste del fuste.Luego, cuando los adultos emergen delárbol, durante la primavera y verano, dejanlas exuvias pupales asomando de losorificios de salida en el árbol (Petersen,1988; Gentili, 1989). Además, los árbolesatacados expelen un olor vinagrosocaracterístico (Baldini et al., 1994).

No existen referencias específicaspara N. dombeyi, sin embargo, en el casoparticular de E. nitens, el daño consisteen galerías cortas y gruesas (no más de25 cm de largo por 1 cm de ancho) ensentido longitudinal en el fuste,encontrándose en forma masiva debido ala constante reinfestación del hospedante(Cerda, 1995).

El daño se presenta en árboles vivos



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en el interior de la madera del fuste y, aveces, en ramas gruesas (Cerda, 1995).

La larva es posible encontrarla a lolargo de todo el año, debido a que su ciclovital puede extenderse a dos años.

Un ataque intenso puede comprometergran parte del xilema en la secciónafectada, producto de las múltiplesgalerías realizadas por las larvas, lo queconlleva una disminución de la resistenciadel fuste, facilitando su eventual caída porefecto del viento, lo cual trae aparejadouna muerte indirecta del ejemplar (Baldiniet al., 1994). Por otra parte, el hecho deque las larvas de Ch. valdivianamantengan sus galerías limpias o libresde aserrín, posibilita y facilita el ingresode hongos, lo que se traduce enmanchado y/o pudrición central del fuste(Cerda, 1995) (Figura 34 y 35).

Figura 34. Daño ocasionado porChilecomadia valdiviana (A. Baldini).

Figura 35. Daño ocasionado porChilecomadia valdiviana (A. Baldini).


de manejo integrado. Sólo se conocenalgunos enemigos naturales como:Camponotus morosus (Smith)(Hymenoptera, Formicidae) actuaría comodepredador (Lewis y Peredo, 1993);Aldrichiopa coracella (Aldrich) y Callotrixedwardsi Aldrich (Diptera, Tachinidae)serían parasitoides (Artigas, 1994).



Sinonimia:• Epistomentis picta Gory,• E. vittata Phil.,• E. pictus Gory,• E. vittatus Phil.

Nombre común:• Hacheros,• relojes,• cantabrias.


(Mirb.) Oerst. (Coihue)(Monrós, 1943; Gara et al.,1980; Gentili y Gentili,1988; Barriga et al., 1993);



• Nothofagus pumilio(Poepp. et Endl.) Krasser(Lenga) (Barriga et al.,1993).

Figura 36. Adulto de Epistomentis pictus(A. Alvarado).

Distribución:En Chile se encuentra desde la Región del Maule a la Región de La Araucania(Barriga et al., 1993); también se encuentra en Argentina en la provincia deNeuquén (Giganti y Dapoto, 1990).

(Lap. y Gory, 1841) (Coleoptera: Buprestidae)Epistomentis pictus





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DescripciónLarva:

Tiene la forma típica de la familia,semejando un clavo de herradura (Garaet al., 1980).

Adulto: el largo desde la cabeza hasta el

extremo élitral varía de 20 a 25 mm, y elancho a nivel de la base de los élitros esde aproximadamente 6 mm. El cuerpo esalargado, semejante a una elipse. Lacabeza es hipognata, poseen ojosgrandes y un par de antenas negras queapenas tocan la base de los élitros. Elpronoto está muy apegado a los élitros,es de color negro, con tres franjaslongitudinales de color amarillo, una en elcentro y las otras dos a los costados. Losélitros son de color café-amarillento, conlos bordes externos de color amarillo ylos internos negros, teniendo dos rayasnegras al final de ellos, su forma es casirecta hasta poco después de la mitad deellos, luego se desvían con un ciertoángulo hacia el interior para terminar en“V”, cada élitro posee dos espinasapicales agudas. Su abdomen y tóraxinferior son de color negro con unapubescencia muy corta de color negrogris. Las patas son algo cortas y de colornegro (Figura 36).

Aspectos biológicosEl adulto es quizás el bupréstido más

común del bosque nativo chileno (Gara etal., 1980); es de hábitos filófagos (Gigantiy Dapoto, 1990), observándosele volar alas horas de mayor calor posándose sobretroncos caídos de Coihue (Germain, 1907;Peña, 1976), llegando grandes cantidades

de ellos en las faenas de cosecha,inmediatamente después de que el árboles derribado.

La larva es de hábitos xilófagos(Monrós, 1943; Gara et al., 1980; Elguetay Arriagada, 1989; Giganti y Dapoto,1990).

Son insectos de vuelo relativamenterápido, llegando en grandes cantidades alos árboles recién cortados, por lo que sucapacidad de dispersión sería demoderada a alta.

DañoEl daño consiste en galerías muy

juntas, planas y llenas de aserrín muy fino(Gara et al., 1980).

El daño se ubica preferentemente enla región cortical y subcortical de lostroncos penetrando muy poco en elinterior de la madera (Gara et al., 1980).Sin embargo, Monrós (1943) mencionaque realizan profundas galerías en elinterior de la madera.

El ataque se presenta en árbolesrecién cortados o moribundos.

No existe información acerca delefecto del daño, sin embargo los agujerosde emergencia de los adultos facilitaríanla entrada de agua y hongos al interior dela madera, desvalorizándola y limitandosu utilización para fines industriales.





Gnathotrupes spp.

El género Gnathotrupes se conocenpor 29 especies, las cuales se hanencontrado en México, América Central,y Sudamérica (W ood, 2007). De éstas,15 especies se conocen afectando aNothofagus y solamente 9 se teníanidentificadas para Chile. Nuevasprospecciones realizadas por Kirkendallen el año 2007, adiciona a las 9 yaconocidas otras 5 especies, donde 4 yaestaban descritas para Argentina y unanueva especie, actualmente en procesode descripción por el mismo autor.

Las especies de Gnathotrupes de Chiley Argentina se conocen en gran parte delos resultados de un estudio intensivorealizado en 1971 y 1972 por Naumann-Et ienne (Naumann-Etienne, 1978).Naumann-Etienne estudio la fauna delinsecto en Isla Victoria, Parque Nacionalde Nahuel Huapi.

El género Gnathotrupes correspondea los llamados escarabajos de ambrosia,vectores de un hongo que mancha y pudrela madera, pero no cambia suspropiedades estructurales (Kirkendallcom. pers.). Sin embargo podría provocarla muerte del árbol, por obstrucción del

sistema vascular (Guajardo, 2006). Elhongo simbiótico crece en galeriasbarrenadas en la madera por las hembrasy brinda el alimento al insecto (Gara etal., 1980; citado por Alvarado, 2006). Losmachos de Gnathotrupes vigilan la entraday expelen el aserrín (Kirkendall com.pers.). Actualmente se desconoce lataxonomía del hongo de ambrosía.

Dado el desconocimiento que se tienesobre estos insectos, resulta muy difícilasociar un determinado tipo de daño. Sóloes posible mencionar los principalessíntomas y signos ocasionados por elgénero tales como: galerías maternas ylarvales con diversos patronesdireccionales, muerte de ramas enteraso segmentos verticales de corteza, ramasy ramillas caídas, muerte de árbolescompletos y orificios de entrada, enramillas, ramas y fustes de Nothofagus.



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Sinonimia:• Gnathotrichus barbifer

Schedl,• Gnathotrupes similis

Schedl.

Nombre común:• Escarabajo de ambrosia,• Gorgojo de ambrosia.


(Mirb.) Oerst. (Coihue) y• Nothofagus pumilio

(Poepp. et Endl.) Krasser(Lenga).

Detecciones:En Chile se ha detectado en Chiloé, Región de Los Lagos; El Manso, Región deAysén del General Carlos Ibáñez del Campo y en Argentina en el ParqueNacional Nahuel Huapi.

(Schedl, 1967) (Coleoptera: Curculionidae, Scolytinae)Gnathotrupes barbifer



Figura 37.Declive de Gnathotrupes barbifer(A. Baldini)



DescripciónAdulto:

La hembra mide de 3,3 a 3,7 mm, 2,8veces más largo que el ancho; colormarrón rojizo. Frente moderadamenteconvexa, parte media más o menosbrillante, sin punteaduras, tercios lateraleslevemente impresos y parecidos a unaseta abundante y moderadamente largade casi el mismo largo, aparentementedesde el epistoma hasta el vértice,contorno periférico de arribaaparentemente más largo.

Pronoto 1,08 veces más largo que elancho; más grueso cercano a la base,lados en la zona basal débilmentearqueados, que convergen suavementehacia un margen anterior fuertementeredondeado; margen anterior provisto decerca de 20 pequeños dientes; cimaindefinida, cercana al medio del largo delpronoto; asperezas pequeñas, numerosas,confusas; áreas posteriores reticuladas,punteaduras muy pequeñas, distintas,muy cercanas entre ellas; vestiduraconfinada a los lados y al área aspera,con pelos finos y moderadamente largos.Élitros 1,7 veces más largos que el ancho,1,6 veces más largos que el pronoto; discoque ocupa 80% del largo del élitro; discoliso, brillante, un poco reticulado en lazona cercana a la sutura en la base deldeclive, punteaduras pequeñas,numerosas, confusas.

Declive muy pronunciado, ancho,moderadamente surcado, ancho del surcomayor que la mitad del ancho del élitro;sutura interestrial un poco elevada,provista de una densa fila de tubérculosredondos y diminutos, cara del declive conpunteaduras pequeñas, abundantes y

cercanas entre ellas, márgenes lateralesaltos, cresta escasamente redondeada,provista de 4 a 6 dentículosmoderadamente ásperos (Figura 37).Vestidura sobre el disco y los ladosdiminuta a obsoleta, en el declive ymárgenes pelo más bien abundante, finoy largo (Wood, 2007).

El macho es similar a la hembraexcepto por tener un frente muy convexodesde el epistoma hasta una pocomarcada impresión transversal en la partebaja del área por sobre el nivel superiorde los ojos; superficie diminutamentereticulada, punteaduras pequeñas,superficiales y oscuras, vestidura de peloscortos, escasos e inconspicuos; ángulosanterolaterales del pronoto parecidos auna mecha de pelo (Wood, 2007).

Se distingue de Gnathotrupes velatusSchedl por tener solamente 4 tubérculosen el margen lateral del declive; por unfrente débilmente convexo en la hembra,con una vestidura diferente; y por tenerun margen anterior del pronotoligeramente curvado en la hembra (Wood,2007).

Aspectos biológicosEl ciclo de vida se desconoce.

DañoSe desconoce.





Sinonimia:• Gnathocortus caliculus

Schedl.



(Mirb.) Oerst. (Coihue)

Detecciones:En Chile se ha detectado en El Manso, Región de Aysén del General CarlosIbáñez del Campo y en Argentina en el Parque Nacional Nahuel Huapi.

(Schedl, 1975) (Coleoptera: Curculionidae, Scolytinae)Gnathotrupes caliculus



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Figura 38. Declive de Gnathotrupes caliculus(A. Baldini).



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DescripciónAdulto:

El macho mide de 4,1 a 4,5 mm, 3,7veces más largo que el ancho; colormarrón rojizo oscuro. Frente convexodesde el epistoma hasta bien por arribadel nivel superior de los ojos, subcarinado,callo transversal en el nivel más alto delos ojos sobre más de la zona media, áreaimpresa del vértice inmediatamente abajoel flequillo del pelo corto; suturasmoderadamente curvadas, septadas.Pronoto 1,4 veces más largo que elancho; costados casi rectos y paralelosa la mitad basal, un poco redondeadosen el frente; cima indefinida, un tercio dellargo del pronoto desde el margen anterior;pendiente anterior más bien gradual,asperezas pequeñas, cercanas, confusas;áreas posteriores ret iculadas,punteaduras muy pequeñas, más biencercanas unas a otras; vestidura muyescasa, en la zona anterior del margenlateral o cerca de esta. Élitro 2,3 vecesmás largo que el ancho, 1,8 veces máslargo que el pronoto; disco ocupando un66% del largo basal del élitro; discomayoritariamente liso, brillante, con undébil reticulado cerca de la sutura,punteaduras pequeñas, superficiales,confusas. Declive más bien gradual,ancho, profundamente cóncavo;explanado y divaricado por detrás; cuartobasal del declive superficialmente y entérminos generales surcado, cresta lateralabrupta, aguda, fuertemente elevada en1/4 del largo del declive desde la base;parte terminal de la base elevada a unapunta un poco aguda; cara del decliveprofunda y generalmente cóncavo, liso,brillante y diminutamente puntureado enla zona media, poniéndose finamente

granulado en la parte lateral hacia el ápice;profundamente divicariado en el ápice dela sutura (Wood, 2007) (Figura 38).

Se distingue de Gnathotrupesnaumanni (Schedl) por un frente superiorconvexo; una impresión transversal sobreel área convexa en casi todo el ancho delvértice; por el margen anterior de pronotoredondeado y estrecho; sutura declivitalprovista de un par de tubérculos en elápice; parte dorsal terminal del costadolateral en el declive provisto de un dienteagudo (Wood, 2007).


DañoSe desconoce.





Sinonimia:• Gnathotrichus

consobrinus Eichhoff,• Gnathotrichus obnixus

Schedl,• Gnathotrichus

corthyloides Schedl,• Gnathotrichus

sextuberculatus Schedl y• Gnathotrichus

quadrituberculatusSchedl.



(Mirb.) Oerst. (Coihue)Figura 39. Adulto de Gnathotrupesconsobrinus (A. Quiroz).

Detecciones:En Chile se ha detectado en las localidades de Valparaíso, Región deValparaíso; Cherquenco, Región de La Araucania; Los Muermos, Región de LosLagos; El Manso, Región de Aysén del General Carlos Ibáñez del Campo y enel Parque Nacional Fray Jorge, Región de Coquimbo.

(Eichhoff, 1878) (Coleoptera: Curculionidae, Scolytinae)Gnathotrupes consobrinus



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La hembra es similar al machoexcepto a que en la zona media del frenteel nivel más alto de los ojos esfuertemente protuberante, sin punta;vestidura en la periferia superior sobre losojos parece un denso flequillo de una setamuy larga, área central y lateral bajas conpelo más bien escaso y corto; decliveret iculado, como en la hembra defimbriatus (Wood, 2007) (Figura 39).

Se distingue de Gnathotrupesfimbriatus Schedl por el disco elitral lisoy brillante en la superficie; frente delmacho convexo y ornamentado en lostercios laterales por un cepillo de pelosmoderadamente largos, frente de lahembra en la mitad inferior con unaprotuberancia conspicua, mediana, mitadsuperior plana a superficialmente cóncava,flequillo periférico de la seta denso, muylargo (Wood, 2007).

Aspectos biológicosEl ciclo de vida se desconoce..

DañoSe desconoce.



DescripciónAdulto:

El macho mide de 2,9 a 3,5 mm, 2,9veces más largo que el ancho; color rojizomarrón. Frente convexo arriba,transversalmente impreso en la mitadinferior del área bajo el nivel superior delos ojos; tercio medio liso, brillante, sinpunteaduras, glabro desde el epistoma alvértice, tercios laterales finamentepuntureados y densamente pubescentesdesde el epistoma hasta los ojos. Pronoto1,1 veces más largo que el ancho; másancho en la mitad basal, costadosdébilmente arqueados, más bienredondeados en el frente, margen anteriorprovisto de cerca de 20 dientes; cimaanterior a la mitad del largo del pronoto;asperezas gruesas, cercanas, confusas;áreas posteriores ret iculadas,punteaduras pequeñas, más biencercanas entre ellas; glabras a excepciónde las escasas existentes en losmárgenes anterior y lateral. Élitro 1,7veces más largo que el ancho, 1,4 vecesmás largos que pronoto; disco ocupandoun 85% del largo de la zona basal delélitro; superficie lisa, bril lante,punteaduras pequeñas, diferentes unas aotras, que por lo general se confundenentre sí. Declive muy pronunciado, másbien fuertemente surcado en la mitadmedia; superficie lisa, brillante, con unaspocas punteaduras presentes, crestaslaterales moderadamente altas, un tantoredondeadas, cresta provista de 2 paresde tubérculos moderadamente largos ypuntiagudos. Vestidura de pelo escaso,fino, largo sobre los márgenes del declivey sobre los costados de la base (Wood,2007).



Sinonimia:• Gnathotrichus fimbriatus

Schedl,• Gnathotrichus frontalis

Schedl.

Nombre común:• Escabajo de ambrosia,• Gorgojo de ambrosia.

Figura 40. Adulto hembra deGnathotrupes fimbriatus (L. Kirkendall).

Detecciones:En Chile se ha encontrado desde la Región del Maule a la Región deMagallanes y La Antártica Chilena (Wood, 2007; Kirkendall, datos nopublicados).

(Schedl, 1955) (Coleoptera: Curculionidae, Scolytinae)Gnathotrupes fimbriatus



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DescripciónLarva:

Escarabeiforme, cilíndrico, de colorblanco, con un largo aproximado de 4 mm,curvada ventralmente, sin patas; cabezacafé, con fuertes mandíbulas.

Adulto:Cilíndricos, de 3 mm de largo y

aproximadamente de 1 mm de ancho;rostro muy corto, vertical; antenas cortas,acodadas, con clavas. La cabeza de lahembra tiene un frente concavo, anilladode pelos amarillos largos, y con dosmechones de pelos curvado hacia arriba(Figura 41), mientras que el machopresenta la cabeza suavemente convexa,sin pelos largos (Figura 40).

Figura 41. Gnathotrupes fimbriatus, cabeza de lahembra (L. Kirkendall).

Pronoto castaño oscuro, élitros másclaros, casi amarillos; con puntuacionesfinas muy poco profundas, desordenadas,donde no es posible evidenciar claramentelas filas. El declive es pronunciado, opaco,con 2 parejas de dentículos notorios yotros muy pequeños (Wood, 2007).

Aspectos biológicosEl ciclo de vida se desconoce, pero

se estima que tiene un ciclo anual, similara los Gnathotrupes del Parque NacionalNahuel Huapi en Argentina (Naumann-Et ienne, 1978). En Chile se hanencontrado adultos desde noviembrehasta abril (Wood, 2007; Kirkendall, datosno publicados).

Los huevos son depositados engalerias larvales verticales, especiesasociadas hacen galerias horizontales.

Tiene una alta capacidad de dispersión

como todos los Scolytinae, ambos sexosson buenos voladores.

DañoGnathotrupes fimbriatus pertenece a

un complejo de especies de Gnathotrupesque atacan Nothofagus vivos, estasespecies parecen tener la mismaecología.

Los síntomas característicos del dañoson ramas muriendo (con hojasamarillentas), muertas y caídas.

En la Provincia de Aysén se handetectado focos de árboles muertos,principalmente de N. pumilio, N. dombeyiy N. betuloides. Los árboles atacadospresentan orificios pequeños (entradas delos túneles o galerias de Gnathotrupes),y una acumulación de aserrín fino y blancoal interior.

La presencia de Gnathotrupes esasociado con muerte de ramas enteras osegmentos verticales de corteza (en



Figura 42. Dos sistemas de galerias deGnathotrupes fimbriatus, en Pinus contorta (J.Aguayo).X FOTO 37

Figura 43. Gnathotrupes fimbriatus, sistema degalerias en Nothofagus pumilio (L. Kirkendall).X FOTO 38

ramas grandes y troncos) y muerte deárboles completos. Se desconoce si estamortalidad es por efecto del hongo deambrosia o de un patógeno vectorado porlos gorgojos.

Los túneles de G. fimbriatus son muydistintos a otras especies deGnathotrupes. Después de una cortaentrada se bifurca en 2 ó 3 túneles largos(Figura 42 y 43).

De lo poco que se conoce de estaespecie, G. fimbriatus es la especie másampliamente distribuida y polífaga. El dañose puede ubicar en cualquier parte de árbol(ramillas, ramas o fuste), barrenan maderade todos los diámetros. Probablementemucho del daño (de la mortalidad) aramas, en el sur es causado por G.fimbriatus.

El daño ocasiona pérdidas decrecimiento, mortalidad de árbolescompletos (Región de Aysén del GeneralCarlos Ibáñez del Campo), sin embargoestas no han sido cuantificadas.





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Sinonimia:• Gnathotrichus

herbertfranzi Schedl.





Figura 44. Adulto de Gnathotrupesherbertfranzi (A. Quiroz).

Detecciones:En Chile se ha detectado en Malalcahuello, Región de La Araucania; Antillanca,Región de Los Lagos; El Manso, Región de Aysén del General Carlos Ibáñezdel Campo y Montealto, Región de Magallanes y La Antártica Chilena.

(Schedl, 1973) (Coleoptera: Curculionidae, Scolytinae)Gnathotrupes herbertfranzi



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DescripciónAdulto:

El macho mide de 3 a 3,4 mm, 3,0veces más largo que el ancho, el colordel pronoto y la mayor parte de los élitroses marrón oscuro, parte basal del discodesde más o menos las estría 6 hasta lasutura de color amarilloso castaño. Frentemuy convexo, transversal y débilmenteimpreso en el tercio inferior, epistomadébilmente elevado; superficie débilmenteret iculada, punteaduras más bienescasas, relativamente gruesas; vestidurade pelos largos, finos y escasos sobre ycerca del epistoma. El pronoto es 1,14veces más largo que ancho; ampliándoseaún más en la parte basal, costadosdébilmente arqueados en la base, muyredondeados en el frente; margen anteriorprovisto de 16 dientes gruesos; cima enel medio, áreas posteriores reticuladas,punteaduras muy pequeñas, bastantecercanas, vestidura limitada a los lados yal margen anterior. Élitro 1,8 veces máslargo que el ancho y 1,7 más largo que elpronoto, disco ocupando un 73 por cientode la zona basal del largo del élitro; estríano indicada, punteaduras pequeñas ynumerosos puntos impresos, confusos,superficie diminutamente reticulada;sutura en la mitad posterior claramenteelevada, área de la interestría 2superficialmente surcada. Declivepronunciado, moderadamente bisurcadoen la zona media del ancho del declive;forma de los surcos similar al discoposterior, margen lateral cercano al mediodel largo del declive provisto de una espinaun poco globular, larga, despuntada,basalmente más estrecha; áreaventrolateral redondeada. Vestidura depelos cortos, escasos en áreas laterales

sobre y cerca del declive (Wood, 2007)(Figura 44).


DañoSe desconoce.





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Sinonimia:• Gnathoglochinus

impressus Schedl,• Gnathotrupes

pauciconcavus Schedl.


Hospederos:• Nothofagus antartica (G.

Forster) Oerst. (Ñirre) y• Nothofagus dombeyi

(Mirb.) Oerst. (Coihue).

Figura 45.Adulto de Gnathotrupes impressus(A. Quiroz).

Detecciones:En Chile se ha detectado en El Manso, Región de Aysén del General CarlosIbáñez del Campo y en Argentina en el Parque Nacional Nahuel Huapi.

(Schedl, 1975) (Coleoptera: Curculionidae, Scolytinae)Gnathotrupes impressus



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DescripciónAdulto:

La hembra mide de 3,1 a 3,9 mm, 3veces más largo que el ancho; colormarrón oscuro. El frente posee una crestatransversal bituberculada, aguda, elevadainmediatamente por sobre el epistoma,posee un área cóncava ancha, circular,superficial de un ojo al otro desde la crestaal vértice, área cóncava con punteadurasfinas, densas, uniformes yhomogéneamente ornamentada por pelosabundantes, finos y moderadamentelargos, setas más abundantes y sólo unpoco más largas en el margen dorsal.Pronoto 1,12 veces más largo que elancho, de forma un poco cuadrada en elcontorno; margen anterior provisto de 18dientes no muy marcados; cima anteriora la mitad del largo del pronoto; asperezaspequeñas, numerosas, confundidas; áreasposteriores reticuladas, punteaduraspequeñas, cercanas, diferentes. Élitros1,9 veces más largo que el ancho, 1,7veces más largos que el pronoto; discoocupando 72% del largo del élitro;superficie mayoritariamente lisa, brillante,reticulada cerca de la sutura; punteaduraspequeñas, diferentes, confusas. Declivemás bien pronunciado, con una impresiónancha, cresta lateral moderadamenteelevada desde la interestría 3 a la mitaddel largo del declive, luego declina haciael margen apical; cresta lateral provistaen la mitad basal de una fila de cerca de6 pequeños tubérculos puntiagudos; áreaimpresa desde la base al ápicefuertemente reticulada, varios gránulosdiminutos en el cuarto inferior; sin unacarina ramificada dorsalmente desde elmargen costal. Varias setas parecidas apelos en el cuarto inferior de la cara del

declive, y muchas setas sobre loscostados y la base del élitro (Wood, 2007).

El macho es similar a la hembraexcepto a que el frente es débilmenteconvexo, liso, brillante, con punteadurasmás bien pequeñas, moderadamentecercanas unas a otras; superficie glabra,con unas pocas setas en los tercioslaterales del epistoma; surco declivitalmucho más impreso en el tercio basal,más fuertemente impreso en la mitadinferior; convexidades laterales sobre eltercio basal más altas, provistas deaproximadamente seis pequeños dientesde un tamaño similar (Wood, 2007)(Figura 45).

Se distingue de Gnathotrupeskirkendalli Wood por tener una forma decuerpo más larga y menos robusta; poseeáreas reticuladas en el disco elitral; porun frente distinto en la hembra (Wood,2007).


DañoSe desconoce.





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DescripciónAdulto:

El macho mide de 3,2 a3,4 mm, 3,1 veces máslargo que el ancho; color

Sinonimia:• Gnathotrichus castaneus

Schedl,• Gnathotrichus

corthyliformis Schedl,• Gnathotrichus

constrictus Schedl.




Figura 46.Adulto de Gnathotrupes longipennis(A. Quiroz).

Detecciones:En Chile se ha detectado en Valparaíso y Zapallar, Región de Valparaíso;Valdivia, Región de Los Ríos; Curacautin, Región de La Araucania; El Manso,Región de Aysén del General Carlos Ibáñez del Campo y en Argentina en elParque Nacional Nahuel Huapi.

(Blanchard, 1851) (Coleoptera: Curculionidae, Scolytinae)Gnathotrupes longipennis



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adyacentes con unas pocas setas(Wood, 2007).

La hembra es similar al macho exceptopor que posee un frente plano a débilmentecóncavo desde el vértice al nivel superior delos ojos, que luego continúa sobre loscostados hasta el epistoma; área triangularsobre la parte media hasta el nivel superiorde los ojos fuertemente convexa, con unasuperficie lisa, brillante y sin punteaduras;vestidura de pelos dorados moderadamenteabundantes en zonas planas de loscostados y sobre esta, margen periféricosobre los ojos denso, muy largo, punta delas setas más largas capables de llegarhasta el epistoma. Pronoto más largo, 1,4veces más largo que el ancho, margenanterior en términos generales másredondeado (Wood, 2007) (Figura 46).

Se confunde con G. consobrinus(Eichhoff), con el cual no tiene ningunarelación. Se distingue de este último por undeclive elitral menos impreso, con margenlateral provisto de cinco o más pequeñosdientecillos; en el macho el epistoma poseeuna carina pequeña en la zona media; y enla hembra el frente posee setasesculturadas y ornamentadas (Wood,2007).


DañoSe desconoce.



castaño rojizo. Frente moderadamente ytransversalmente impreso desde elepistoma al nivel superior de los ojos,superficie reticulada en área impresa,convexa y brillante por encima, pequeñaspunteaduras en el área impresa,ligeramente más grandes por encima; unacarina media algo aguda, brillante, elevadadesde el margen epistomal hasta la mitadde la distancia del nivel más alto de losojos, vestidura de escaso pelo diminutomás largo sobre el epistoma. Pronoto 1,2veces más largo que el ancho; más gruesocerca de la base, lados en la mitad basallevemente arqueados, los que convergenligeramente hacia un margen anterior unpoco redondeado; margen anterior queconsta de 8 dientes, con el par del medioun poco más largos; levantados en elmedio; asperezas pequeñas, cercanas,confusas; área posterior reticulada oligeramente reticulada, punteaduraspequeñas, superficiales, no muydefinidas; glabras, unas pocas setassobre o cercanas a los márgenes lateraly anterior. Élitros 1,8 veces más largo queel ancho, 1,3 veces más largos que elpronoto; disco ocupando un 80 por cientode la base del largo del elitro; superficielisa, brillante, pequeñas punteaduras,cercanas, muy confundidas. Declive muypronunciado, reticulado, moderadamentesurcado en una pequeña parte de la zonamedia, margen lateral del área impresaque consta de aproximadamente cinco(raramente entre tres a seis) pequeñostubérculos puntudos de un tamañosimilar, interestría 1 con uno a trescercanos al ápice, áreas laterales más alládel 3 con cerca de tres a seis gránulosconfusos. Vestidura sobre el disco ycostados diminuta a no presente, áreaslaterales del declive y de los costados



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Sinonimia:• Gnathotrupes ciliatus

Schedl.


Hospederos:• Se ha reportado en

Nothofagus dombeyi(Mirb.) Oerst. (Coihue) y


Sin embargo es posibleque ataque otrosNothofagus (Naumann-Etienne, 1978; Kirkendall,datos no publicados).

Detecciones:En Chile se encuentra desde la Región del Maule a la Región de Magallanes yLa Antártica Chilena. En Argentina se ha colectado en el Parque NacionalNahuel Huapi y Tierra del Fuego.

(Schedl, 1951) (Coleoptera: Curculionidae, Scolytinae)Gnathotrupes longiusculus



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Figura 46.Adulto de Gnathotrupes longiusculus(L. Kirkendall).



DescripciónLarva:

Escarabeiforme, cilíndrico, de colorblanco, con un longitud deaproximadamente 3 mm, curvadaventralmente, sin patas; café, con fuertesmandíbulas.

Adulto:Cilíndricos, mide 3 mm de largo y

aproximadamente 1 mm de ancho; rostromuy corto, vertical; antenas cortas,acodadas, con clavas. La cabeza de lahembra tiene un frente concavo, anilladode pelos amarillos largos, los polos máslargos curvado de arriba hacia abajo;mientras que el macho es suavementeconvexo, sin pelos largos.

Pronoto y élitros de color café rojizooscuro; con punteaduras finas en filas biendefinidas y poco profundas. El declive espronunciado, opaco, con dos parejas dedenticulos notorios y otros muy pequeños(Wood, 2007).


se estima que tiene un ciclo anual, similara los Gnathotrupes del Parque NacionalNahuel Huapi en Argentina (Naumann-Etienne, 1978).

Los huevos son depositos en galeriaslarvales horizontales y tranversales a laprincipal.

Tiene una alta capacidad de dispersióncomo todos los Scolytinae, ambos sexosson buenos voladores..

DañoEl síntoma más característico son las

ramas o fustes de poco diámetromuriendo (con hojas amarillandas), ramasmuertas y caídas y orificios pequeños(entradas a las galerias de Gnathotrupes).

En ramillas y ramas pequeñas, lasgalerias las debilitan estructuralmente,pero aún se desconoce si la mortalidadde éstas se efectúa físicamente por elbarrenado, el hongo de ambrosia o de unpatógeno vectorado por los gorgojos.

Gnathotrupes longiusculus perteneceun complejo de especies de Gnathotrupesque atacan ramas y ramillas deNothofagus vivos. De acuerdo a estudiosrealizados por Naumann-Etienne (1978)en el Parque Nacional Nahuel Huapi seconoce que también G. cerratus Schedl,G. impressus (Schedl) y G. pustulatusSchedl son específicos de ramas, másuna especie no descrita, encontrado enel Cerro El Roble.

La galerias de G. longiusculus sondistintas a las de G. fimbriatus (Figura 47).El primero fabrica una entrada cortada,luego se bifurca en uno ó dos galeriassiguiendo los anillos de crecimiento.

Los daños ocasionan pérdidas decrecimiento, mortalidad de árbolespequeños, sin embargo estas no han sidocuantificadas.

Al parecer la mortalidad de ramas enla Región de Magallanes y La AntárticaChilena es producto de G. longiusculus yG. fimbriatus.



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Figura 47. Sistema de galerias de G. longiusculusG. fimbriatus, ramas pequenãs de Nothofagus,Río Rubens, Región de Aysén del GeneralCarlos Ibáñez del Campo (L. Kirkendall).





Sinonimia:• Gnathotrichus nanus

Eichhoff,• Gnathotrichus nanus

Eichhoff,





Detecciones:En Chile se ha reportado en Concepción, Región del Bío-Bío; El Manso, Regiónde Aysén del General Carlos Ibáñez del Campo y en Argentina en el ParqueNacional Nahuel Huapi.

(Eichhoff, 1878) (Coleoptera: Curculionidae, Scolytinae)Gnathotrupes nanus



Figura 48.Lado de Gnathotrupes nanus(A.Baldini).



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DescripciónAdulto:

La hembra mide de 2 a 2,3 mm, 3,0veces más largo que el ancho; colormarrón rojizo. Frente débilmente convexodesde el epistoma hasta bien por sobrelos ojos; tercio medio sin punteaduras,muy brillante desde el epistoma hasta porsobre los ojos; tercios laterales un pmáso menos bril lantes, cercanos,densamente puntureadas, ornamentadascon un cepillo de abundante pelo desdeel epistoma al vértice, setamoderadamente larga, de más o menosel mismo largo; epistoma sin un callo enla zona media. Pronoto 1,14 veces máslargo que el ancho; costados débilmentearqueados en la parte basal, generalmenteredondeados en el frente; margen anteriordébilmente serrado; con aproximadamente20 pequeños dientes; cima indefinida,anterior a la mitad; asperezas pequeñas,cercanas unas a otras, cerradas,confusas; áreas posteriores reticuladas,con punteaduras muy pequeñas, más biencercanas. Élitros 1,6 veces más largosque el ancho, 1,7 veces más largo que elpronoto; disco ocupando un 80 por cientodel largo del élitro; disco liso, brillante,con punteaduras pequeñas, confusas,débilmente reticuladas cerca del decliveen algunas áreas, muchas débilmenteimpresas, con líneas irregulares. Declivepronunciado, superficialmente surcado,más estrecho en la parte superior, másancho en la parte inferior; superficieobscuramente reticulada a un tantogranulada en algunas zonas, conmicropunteaduras numerosas y obscuras,impresión moderada, cresta usualmenteprovista de dos tubérculos pequeños amoderados, 1 un cuarto del largo del

declive desde la base, 2 en el medio (unoo dos de los cuatro tubérculos a vecesmuy reducido o ausente). Vestidura consetas muy escasas, finas y cortas en eldeclive inferior (Wood, 2007).

El macho es similar a la hembraexcepto por tener un frente generalmenteconvexo, un callo mediano sobre elepistoma, vestidura pequeña a ausentesobre el cuerpo, tubérculo declivital unpoco más largos (Wood, 2007).

Se distingue de G. consobrinus(Eichhoff) por ser de menor tamaño, porel frente, el pronoto y el elitro reticulado;y por un área media estrecha y glabra enel frente de la hembra (Wood, 2007)(Figura 42).


DañoSe desconoce.





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Descripción

Adulto:El macho mide de 3,5 a 4,5 mm, 3,9

veces más largo que el ancho; color rojizomarrón muy oscuro. El frente esprofundamente y transversalmente

Sinonimia:• Gnathomimus nothofagi

Schedl.



(Mirb.) Oerst. (Coihue)

Detecciones:En Chile se ha reportado en El Manso, Región de Aysén del General CarlosIbáñez del Campo y en Argentina en el Parque Nacional Nahuel Huapi.

(Schedl, 1975) (Coleoptera: Curculionidae, Scolytinae)Gnathotrupes nothofagi



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impreso desde el epistoma hasta un pocomás arriba del nivel superior de los ojos,convexo por arriba; superficie reticulada,diminutamente, oscuramente puntureado,casi glabro. Pronoto 1,5 veces más largoque el ancho; costados sobre casi los dostercios basales rectos a débilmenteestrechos, también estrechos en el tercioanterior; margen anterior truncado (recto)en la mitad del largo del pronoto, margendébilmente dentado, extremos lateralesdel área truncada no provistos de untubérculo ventral; pendiente anteriorrestringida al sexto anterior del largo delpronoto, asperezas pequeñas, cercanas,confusas, áreas posteriores reticuladas,numerosas punteaduras, diminutas,vestidura de pelos escasos, diminutos,cortos en casi todas las superficies. Élitro2,6 veces más largo que el ancho, 1,7veces más largo que el pronoto; discoocupando 62% basal del largo del elitro;



disco liso, bril lante, diminutaspunteaduras estriadas dispuestas casi enfilas, numerosas micropunteaduras.Declive gradual, ápice de la sutura noprovista de un par de tubérculos; crestaslaterales emergen abruptamente, un pocomás arriba de la mitad del declive, liso.Setas diminutas abundantes sobre eldisco, los costados, y las partes basalesy laterales del declive (Wood, 2007).

La hembra es similar al macho,excepto por el frente plano desde un ojoal otro desde el epistoma al vértice,ligeramente cóncavo en el tercio inferior,parte inferior del área cóncava esret iculada, más bien finamentepuntureada, margen superior del vérticeparecido a un flequillo de pelo largo yamarillo, puntas de la seta más larga casillegando al epistoma. Pronoto con laemarginación anterior un poco más ancha,más profunda, ángulos del costado ventralprovistos de un par de tubérculos largos.Declive similar al macho excepto por elextremo de la anterior de la cresta lateralproyectada en una espina despuntada,cresta no tan alta (Wood, 2007).

Se distingue de Gnathotrupesnaumanni (Shedl) por ser un poco menoren tamaño; por la ausencia de un par detubérculos en el ápice de la suturadeclivital; por una fila de largas setas enel margen dorsal periférico del frente dela hembra; y por un declive muy diferente(Wood, 2007).


DañoSe desconoce.





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Sinonimia:No tiene.



(Mirb.) Oerst. (Coihue) y

• Nothofagus pumilio(Poepp. et Endl.) Krasser(Lenga).

Figura 49.Adulto de Gnathotrupes pustulatus(A. Quiroz).

Detecciones:En Chile se ha reportado en Puerto Varas, Región de Los Lagos; El Manso,Región de Aysén del General Carlos Ibáñez del Campo y en Argentina en elParque Nacional Nahuel Huapi.

(Schedl, 1975) (Coleoptera: Curculionidae, Scolytinae)Gnathotrupes pustulatus



Hacer dibujo



DescripciónAdulto:

El macho mide 3,3 mm, 3,1 veces máslargo que el ancho; color del pronotomarrón rojizo, elitros de color castaño. Elfrente es convexo en la parte superior,impreso moderadamente ytransversalmente desde el epistoma hastael limite superior de los ojos; superficiefuertemente reticulada, área finamenteconvexa, con punteaduras cercanas unasa otras; área impresa muy finamentepuntureada, vestidura de pelos cortos,finos, más largos sobre el epistoma.Pronoto, 1,2 veces más largo que elancho, más ancho en la base, costadosde la zona basal casi rectos y paralelos,más bien redondeados en el frente, provistode 14 dientes gruesos, cima levantadaligeramente en la parte de atrás de la zonamedia del largo del pronoto; asperezaspequeñas, cercanas, confusas; áreaposterior ret iculada, punteaduraspequeñas, cercanas unas a otras; glabras,excepto las setas que son escasas sobrelos lados y los márgenes anteriores.Élitros 1,9 veces más largos que el ancho,1,6 veces más largo que el pronoto; discoocupando 74 por ciento del largo del elitro;estrías no presentes; superficie marcadapor muchas líneas impresas de manerairregular, punteaduras que se confundenunas a otras, las que son pequeñas,cercanas, poco profundas. Declivepronunciado, muy convexo, débilmentesurcado en el medio de la tercera partede la zona basal; espinas un pocoglobulares en el margen lateral. Vestidurade diminutos pelos sobre el disco y elcostado un poco más largos sobre eldeclive, incluyendo la superficie de laespina mayor.

La hembra es similar al machoexcepto por el frente que es fuertementecóncavo de un ojo al otro desde elepistoma al vértice, área cóncava lisa,brillante, con pelo fino escaso, margendorsal sobre los ojos ornamentado con ungrupo de pelos parecido a un cepillo sobreel tercio lateral, más cortos y menosdensos en el tercio medio; espina mayorsuperior presente en el declive,pobremente formada (Wood, 2007) (Figura49).

Se distingue por un disco elitralnormal, con punteaduras gruesas; por unaprofunda impresión transversal en la partebaja del frente en el macho, y por ladiferente escultura elitral (Wood, 2007).


DañoSe desconoce





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Sinonimia:• Gnathotrichus vafer Schedl.


Hospederos:• Se ha detectado en

Nothofagus antartica (G.Forster) Oerst. (Ñirre),

• Nothofagus dombeyi(Mirb.) Oerst. (Coihue) y

• Nothofagus pumilio(Poepp. et Endl.)Krasser (Lenga), sinembargo se encontraríaen todas las especies deNothofagus (Wood, 2007;Kirkendall, datos nopublicados).

Detecciones:En Chile se ha encontrado en El Manso, Región de Aysén del General CarlosIbáñez del Campo y el Parque Nacional Nahuel Huapi, Argentina (Naumann-Etienne, 1978; Kirkendall, datos no publicados). Sin embargo probablemente sedistribuye más ampliamente.

(Schedl, 1975) (Coleoptera: Curculionidae, Scolytinae)Gnathotrupes vafer



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Figura xx.Adulto de Gnathotrupes vafer(L. Kirkendall).



DescripciónLarva:

Escarabeiforme, cilíndrico, de colorblanco, con una longitud aproximada de3 mm, curvada ventralmente, sin patas;cabeza café, con fuertes mandíbulas.

Adulto:Cilíndricos, de aproximadamente 3 mm

de largo y 1 mm de ancho; rostro muycorto, vertical; antenas cortas, acodadas,con clavas. La cabeza de ambos sexostiene un frente convexo, con pocos pelosno muy largos.

Pronoto y élitros de color café rojizooscuro, con punteaduras desordenadas yprofundas. El macho presenta en el ánguloanterolateral del pronoto mechones depelos dorados. El declive es pronuciado,brillante, con dos parejas de denticulosnotorios.

Vestidura escasa, sobre los costadosy el disco posterior cerca del declive(Wood, 2007).

Aspectos biológicosLos adultos vuelan en invierno, en

Argentina esta especie prefiere atacar laparte inferior de fustes caídos, mientrasque en focos de árboles atacados enAysén se encuentra en fustes de árbolesvivos.

La construcción de túneles o galeriasdemora aproximadamente dos meses.

Los huevos son depositados enbolsillos larvales verticales(longitudinales), muy cerca uno de otro(Naumann-Etienne, 1978). Los adultosjóvenes (imagos) hibernan debajo de

escamas de corteza (Naumann-Etienne,1978).

Tiene una alta capacidad de dispersióncomo todos los Scolytinae, ambos sexosson buenos voladores.

DañoGnathotrupes vafer pertenece a un

complejo de especies de Gnathotrupesque atacan fustes de Nothofagus vivos.Gnathotrupes barbifer Schedl, G. nanus(Eichhoff), G. velatus Schedl, y especieno descrita (colectado en Aysén) parecentener la misma ecología (Naumann-Etienne, 1978; Kirkendall, datos nopublicados).

Los síntomas característicos del dañoson ramas muriendo (con hojasamarillentas), muertas y caídas. En laProvincia de Aysén se han detectadofocos de árboles muertos principalmentede Nothofagus pumilio, Nothofagusdombeyi y Nothofagus betuloides (Figura50). Los árboles atacados presentanorificios pequeños (entradas de los túneleso galerias de Gnathotrupes), yacumulación de aserrín fino y blanco enel interior (Figura 51).

La presencia de Gnathotrupes esasociado con la muerte de ramas enteraso segmentos verticales de corteza (enramas grandes y fustes) (Figura 52), asícomo también a la muerte de árbolescompletos. Se desconoce si estamortalidad es ocasionada por el hongo deambrosia o de un patógeno vectorado delos gorgojos.

Las galerias de G. vafer son muydistintas. La entrada es perpendicular,



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Figura 50. Focos de Nothofagus muertosy muriendo por ataque de Gnathotrupesen El Manso, RN Cerro Castillo (L.Kirkendall).

Figura 51. Acumulación de aserrín en labase de Nothofagus atacados en ElManso, RN Cerro Castillo (L.Kirkendall).

Figura 52. Segmento vertical de cortezamuerta de N. dombeyi, RN Coyhaique (J.Aguayo).

luego se bifurcan siguiendo los anillos decrecimiento.

El daño se ubica en fustes de más de20 cm de diámetro (Naumann-Etienne,1978; Kirkendall, datos no publicados)(Figura 53).

El daño ocasiona pérdidas decrecimiento, mortalidad de árbolescompletos (Región de Aysén del GeneralCarlos Ibáñez del Campo), sin embargoestas no han sido cuantificadas.





Sinonimia:• Gnathotrupes solidus

Schedl.




Detecciones:En Chile se ha reportado en la Reserva Nacional Cerro Castillo, Región deAysén del General Carlos Ibáñez del Campo y en el Parque Nacional NahuelHuapi, Argentina.

(Schedl, 1975) (Coleoptera: Curculionidae, Scolytinae)Gnathotrupes velatus



Figura 54.Adulto de Gnathotrupes velatus(A. Baldini).



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DescripciónAdulto:

La hembra mide de 3,7 a 4 mm, 3veces más largo que el ancho; colormarrón rojizo muy oscuro. Frentefuertemente cóncavo desde un ojo al otrodesde el epistoma hasta el vértice, conuna cresta mediana y obtusa en la partede más abajo; superficie áspera conpunteaduras, brillante, vestidura de pelosfinos, cortos, escasos en la zona inferiordel área cóncava, una pequeña porciónde la cresta periférica sobre los ojosparecida a un mechón de largas setas,recordando a una cresta sencilla. Pronoto1,2 veces más largo que el ancho; contornocuadrado, con el tercio medio del margenanterior conspicuamente emarginado;lados casi rectos, que no convergen alcéfalo; área anterior sin declive, tercioanterior finamente áspero, los dos terciosposteriores lisos, ret iculados, conpunteaduras diminutas y numerosas; convarias setas en la parte lateral del áreaáspera. Élitros 1,7 veces más largos queel ancho, 1,5 veces más largos que elpronoto; disco ocupando un 78 por cientode la longitud del elitro; discomayoritariamente liso, con pequeñaszonas ret iculadas, con pequeñaspunteaduras, confundidas, indistintas.Declive muy pronunciado, surcosuperficial con un tamaño menor a la mitaddel ancho del elitro; con crestas lateralesfuertemente redondeadas,moderadamente elevadas, con la crestaprovista de cinco a ocho pequeñostubérculos puntiagudos en los dos terciossuperiores del declive, surco en gran parteret iculado, con muchas pequeñaspunteaduras que se confunden. Vestiduraescasa en los costados cerca del declive,

con setas diminutas a veces presentesen el disco y en todos los lados (Wood,2007).

El macho es similar a la hembraexcepto por tener un frente ligeramenteconvexo, una superficie áspera conpunteaduras, tercio medio del epistomaformando un callo bien definido; un frenteglabro; y por un margen anterior delpronoto levemente curvado y dentado(Wood, 2007).

Se distingue de G. longipennis(Blanchard) por ser más grande; por lapresencia de un callo en el tercio mediodel epistoma del macho (no carina); porel frente fuertemente impreso de lahembra; y por el margen anteriorprofundamente emarginado del pronoto dela hembra (Wood, 2007) (Figura 54).


DañoSe desconoce





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Hospederos:• Se ha reportado en

Nothofagus dombeyi(Mirb.) Oerst. (Coihue) y


Figura 55.Adulto de Grammicosum flavofasciatum(A. Baldini).

Distribución:En Chile se distribuye entre la Región del Maule y la Región de Aysén delGeneral Carlos Ibáñez del Campo.

(Blanchard, 1843) (Coleoptera: Cerambycidae)Grammicosum flavofasciatum



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DescripciónLarva:

Las larvas son cilíndricas y largas, conpatas ausentes o reducidas, de cabezaesférica (Artigas, 1994).

Adulto:Tiene el cuerpo alargado y cilíndrico,

con antenas largas. Patas con cincotarsitos y fémures algo dilatados (Artigas,1994) (Figura 55).

DañoLas hembras ponen sus huevos sobre

la corteza del árbol desde la que penetranlas larvas que ocasionan el daño,barrenando la madera. Se ha observado alos machos volando a horas de máximatemperatura en verano (Vidal, 2008).

La mayoría de los cerambycidosprefieren árboles debilitados ymoribundos, además son muyimportantes en el proceso de circulaciónde los minerales hacia el suelo, ya quesus galerias propician las condicionespara la invasión de hongos quedescomponen la madera (Coulson yWitter, 1990).





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Sinonimia:No tiene.

Nombre común:• Taladrador del roble,

• Gusanera del roble.

Figura 56.Adulto de Holopterus chilensis(L. Kirkendall).

Distribución:En Chile se encuentra, principalmente, en la Región de La Araucania a laRegión de Los Lagos, encontrándose entre los 65 a 500 msnm, abarcandotanto la cordillera de los andes como la de la costa y el llano central, siendo laprovincia de Valdivia donde se encuentra la mayor población de éstos (Kruuse,1981). También se ha reportado su presencia en la Región del Maule (Barriga etal., 1993) y en la Región de Valparaíso (Peña, 1974).

(Blanchard, 1851) (Coleoptera: Cerambycidae)Holopterus chilensis



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DescripciónHuevo:

Es de forma ovoide y mide comopromedio 6,22 mm de largo por 3,01 mmde ancho. Recién ovipositado es de coloramarillento claro, de corión blando, quese adapta al sitio de postura paraendurecerse una vez seco y tornarse decolor amarillo opaco (Kruuse, 1981).

Larva:Es delgada, cerambiciforme y de color

blanco amarillento con manchascaracterísticas de color café en la cabezay protórax (Kruuse, 1981; Artigas, 1994).La cabeza es pequeña en relación al tóraxy abdomen, con fuertes mandíbulas, nopuntiagudas, de color negro con el filo decorte recto. Las patas son cortas yterminan en una uña cilíndrica ypuntiaguda. El abdomen es de colorblanco y posee ampollas ventrales en lossiete primeros segmentos, que semejanhuellas dactilares con depresionestransversales (Kruuse, 1981). Reciénemergida, la larva mide alrededor de 6,5mm de largo (Kruuse, 1981) llegando amedir hasta 60 mm de largo y 12 mm de

ancho en su último estadío (Artigas, 1994)(Figura 57).

Pupa:Es de color blanco cremoso y tiene el

aspecto del adulto. Las patas seencuentran en posición pseudofetal,pegadas al cuerpo. Los élitros nacendorsalmente y se ubican en el vientre,pasando bajo los primeros dos pares depatas y sobre el tercer par. Las antenasse ubican sobre el dorso primeramente ysobre el vientre en sus últimos segmentos(Kruuse, 1981).

Adulto:Tiene el cuerpo alargado, de color

castaño amarillento, similar en todas suspartes; su longitud varía entre 20 y 50 mm;los machos son más pequeños, el ancho,a la altura de la base de los élitros, varíaentre 5 y 12 mm. Cabeza prognata,pequeña, algo alargada, cubierta por unadelgada capa pilosa; los ojos songrandes, sobresaliendo notoriamente.Antenas filiformes, formadas por nueve

Figura 57.Larva de Holopterus chilensis(A. Baldini).

Hospederos:• Nothofagus obliqua (Mirb.) Oerst.

(Roble) (Kruuse, 1981; Cameron yPeña, 1982),

• Nothofagus dombeyi (Mirb.) Oerst.(Coihue) (Peña, 1976; Gara et al.,1980; Cameron y Peña, 1982; Gentiliy Gentili, 1988; Artigas, 1994) y

• Nothofagus alpina (Poepp. et Endl.)Oerst. (Raulí) (Artigas, 1994).



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segmentos, largas, en los machos,sobrepasando el largo de su cuerpo,siendo más cortas en la hembra, dondesólo alcanzan a dos tercios del largo desu cuerpo. Protórax más angosto en sumitad anterior, la parte posterior casi dela mitad del ancho de la base élitral, en eldorso lleva dos pequeños tubérculoscónicos, en los costados se insinúan dosmás pequeños; el protórax lleva finos pelosamarillos en toda su superficie. Pataslargas y delgadas, ligeramente másoscuras que los élitros, con tonalidadrojiza. Élitros estriados y densamentepunteados, los puntos ordenados en filaspareadas a lo largo de todo el élitro; laforma de los élitros es atenuada hacia elápice, pero algo más angostos en elcentro, en el ápice forman una espinaaguda en el ángulo interior de manera queal estar juntos los élitros, éstos formanuna espina única terminal; el color de losélitros es más oscuro y algo rojizo en laquinta parte basal (Kruuse, 1981; Artigas,1994) (Figura 56).

Aspectos biológicosSe desconoce la duración de su ciclo

de vida, estimando que es superior a 3años, encontrándose sus diferentes fasesen las siguientes épocas, Huevo: primerasemana de diciembre hasta fines defebrero, los que eclosan en promedio alos 28 días después de haber sidoovipositados; Larva: todo el año; Pupa: juliohasta fines de diciembre; Adulto:noviembre a febrero, emergiendopreferentemente entre fines de diciembrey comienzos de enero (Kruuse, 1981).

El adulto es de hábitos nocturnos,

volando preferentemente entre las 20:00y las 22:00 horas, realizándose elapareamiento durante la noche; éstecomienza después de haber realizado unfrotamiento de antenas entre el macho yla hembra. El macho muestra interés sólopor hembras vírgenes, lo que indicaría lapresencia de feromonas (Gara et al.,1978; Kruuse, 1981). Las hembras unavez fecundadas, están en condiciones deiniciar la oviposición inmediatamente, loshuevos son puestos preferentemente enforma aislada, colocando como promediounos 35 huevos, los cuales cerca de lamitad son puestos el primer día,oviponiendo el resto durante varios díassucesivos, prefiriendo los árboles decorteza rugosa y cerca de la base comolugares de postura (Kruuse, 1981).

La larva es de hábitos xilófagos enárboles vivos y sanos (Kruuse, 1981).

Su capacidad de dispersión se veríalimitada debido a que las hembras volaríanpreferentemente al atardecer en un períodode tiempo muy reducido (Gara et al.,1978). Por otro lado Kruuse (1981)menciona nunca haber observado volar alas hembras. Por último, el hecho de quesean específicos de un número muyreducido de especies arbóreas, hace quesu capacidad de dispersión sea baja.

DañoEl daño se ubica en los fustes de

árboles vivos, se presenta en forma degalerías limpias de aserrín, verticalesdentro y a lo largo del fuste (Figura 58).Diferenciándose dos tipos de galerías: enárboles de menos de 50 cm de diámetroes de forma sinuosa, descendente en su



Figura 58.Galeria larvales de Holopterus chilensis(A. Baldini). Figura 59.

Daño ocasionado por Holopterus chilensis(A. Baldini).

Figura 60.Trozas de Nothofagus obliqua afectadaspor Holopterus chilensis(A. Baldini).

primera etapa llegando hasta las raíces,dirigiéndose posteriormente hacia la copadel árbol por la parte central del fuste; yen árboles de más de 50 cm las galeríastoman una posición periférica respecto aleje longitudinal del fuste, en forma rectay ascendente a partir del orificio deentrada (Kruuse, 1981; Fercovic yLanfranco, 1995).

En su etapa inicial se presentan losorificios de entrada al árbol, los que midencomo promedio 2,95 mm de diámetromayor y 2 mm de diámetro menor, éstosse encuentran en la parte inferior del fuste,diferenciándose dos tipos de entrada deacuerdo al diámetro. En árboles dediámetro a la altura del pecho (DAP) entre10 a 50 cm, la entrada la realizan desdeel nivel del suelo hasta aproximadamente1 m de altura, y sobre los 90 cm, enárboles con DAP superiores a 50 cm(Kruuse, 1981).

En su etapa intermedia se presentanorificios de más o menos 4 a 5 mm dediámetro medio, situados generalmente,en la base del árbol, a través de los cualesescurre savia exudada por el árbol junto

con el aserrín granular expulsado por lalarva, el cual se acumula en la base delárbol (Kruuse, 1981; Fercovic y Lanfranco,1995).

En su etapa final se presentan losorificios de emergencia de los adultos, losque miden como promedio 21 mm dediámetro mayor y 11,1 mm de diámetromenor, situados a diferentes alturas,encontrándose desde los 60 cm hasta los



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4 metros aproximadamente. Esta granvariabilidad es proporcional al DAP,apreciándose la tendencia de aumentarla altura de emergencia en árboles deDAP mayores (Kruuse, 1981).

Por último, cuando los adultos ya hanemergido, el árbol reacciona formando uncallo de forma arriñonada en los orificiosde salida, que con el transcurso deltiempo termina por obstruir totalmente lasalida. La identificación de este orificio esposible hasta un año después deconstruido, en que se encuentraparcialmente tapado, dificultándose apartir del segundo año de antiguedad, enque se tapa totalmente y que esfácilmente confundido con la cicatriz deramas muertas (Kruuse, 1981) (Figura 59).

No está especificado a que edad odiámetro mínimo del árbol comenzaría lainfestación. Sin embargo, lasobservaciones existentes realizadas enroble por Kruuse (1981) van desdediámetros de 10 cm hasta diámetrossuperiores a 50 cm. Además, Kruuse(1981) menciona que las hembrasoviponen sólo sobre árboles de cortezarugosa, por lo que árboles muy pequeñosde corteza lisa no serían aún afectados.

Debido a que su ciclo de vida essuperior a tres años, las larvas se puedenencontrar a lo largo de todo el año.

El ataque no ocasiona la muerte delárbol, sin embargo se localiza desde labase hasta una altura de 4 metros enárboles de diámetros superiores (Kruuse,1981; Puentes, 1993; Baldini et al., 1994),perdiendo la primera troza del árbol, dondese concentra entre el 40 y el 50% delvolumen total del árbol, queda inutilizable

para la producción de maderadebobinable, chapa o aserrada, pudiendoutilizarse sólo como astillas o combustible(Puentes, 1993) (Figura 60).



Sinonimia:• Calichroma concinna

Phil.,• C. laevigata Phil.,• Sibylla dancoi Lameere,• Lautarus concinnus

Germain.

Nombre común:• Taladro del hualle.


(Mirb.) Oerst. (Coihue)(Cameron y Peña, 1982;Gentili y Gentili, 1988),

• Nothofagus antartica (G.Forster) Oerst. (Ñirre)(Cerda, 1973) y

• Nothofagus pumilio(Poepp. et Endl.) Krasser(Lenga) (Giganti, 1986).

Figura 61.Adulto de Lautarus concinnus(A. Sartori).

Distribución:En Chile se ha encontrado en las provincias de Ñuble, Malleco, Valdivia,Llanquihue y Magallanes, Región del Bío-Bío a la Región de Magallanes y LaAntártica Chilena (Cerda, 1986). En Argentina desde Neuquén hasta Santa Cruz(Giganti, 1986).

(Philippi, 1859) (Coleoptera: Cerambycidae)Lautarus concinnus





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DescripciónAdulto:

El macho es de color general negrosaliente y levantado en la parte media,bordes laterales con un tubérculopuntiagudo, de color negro, levementeopaco. Escutelo pequeño con su ápicepuntiagudo y bordes laterales levantadosen ribete, puntuado y pubescente, de coloroliváceo negruzco. Cabeza con un surcolongitudinal profundo y recto, algunospuntos irregulares y abundantes peloserguidos. Antenas filiformes, gruesas,tocando el ápice de los élitros con elantenito noveno, glabros los tres primerosy el resto con una pilosidad erguida, densay muy corta. Élitros glabros, lisos,brillantes y cuneiformes más anchos queel pronoto, ápice redondeado con ángulosutural agudo armado de un pequeñodiente no constante, de color verdeoliváceo bril lante, con una bandalongitudinal ancha testáceo leonado, quepuede llegar a cubrir casi todo el élitro.Patas delgadas negro oliváceo y alasahumadas (Cerda, 1973). La longitud totalvaría de 21 a 26 mm y el ancho de 6 a 8mm (Cerda, 1973).

La hembra, es mucho mayor que elmacho, con cuerpo aplanado y alargado,pubescencia menos abundante. Antenascon 11 antenitos, más delgadas yligeramente más cortas que el cuerpo,con los cuatro primeros antenitos negrosy parte del quinto. Escutelo glabro, liso,con los costados levantados. Élitros consus costados paralelos casi en las 4/5partes de su longitud, ápicesredondeados separadamente, quedandoborrado el ángulo sutural, superficie opacacubierta de densas rugosidades

vermiformes con la mancha testácea quelos cubre totalmente dejando sólo un ribeteverde oliváceo claro. Abdomen confrecuencia blando. La longitud total varíade 33 a 38 mm y el ancho de 9 a 11 mm(Cerda, 1973) (Figura 61).

Aspectos biológicosEl adulto macho en zonas andinas se

puede observar volando al atardecer y lahembra posada en las ramas de losárboles (Peña, 1976).

La larva es de hábitos xilófagos enmadera viva o verde (Giganti y Dapoto,1990).

DañoGiganti (1986) menciona algunas

características del daño, pero en lenga yñirre, donde las galerías son grandes (1 a3 cm de diámetro), encontrándose varíasde ellas en la madera de un mismo árbol.

El daño se ubica en el fuste de árbolesvivos (Cameron y Peña, 1982; Giganti,1986), en el caso del Ñirre, el ataque esen árboles de 20 a 40 cm de grosor(Giganti, 1986).

Efecto del daño: Inutilizan la maderapara fines industriales; además facilitanla infección por hongos que aceleran ladesintegración de la madera y acortan lavida del árbol (Giganti, 1986).





Sinonimia:• Sibyla livida Germ.



(Mirb.) Oerst. (Coihue)(Peña, 1974; Cameron yPeña, 1982; Gentili yGentili, 1988).

Figura 62.Adulto de Sibylla livida(A.Alvarado).

Distribución:Se ha encontrado en Chile en las provincias de Talca y Valdivia, Región delMaule a la Región de Los Lagos (Cerda, 1986).

(Germain, 1901) (Coleoptera: Cerambycidae)Sibylla livida





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DescripciónAdulto:

En la hembra los élitros son brillantesde color testáceo leonado algo lívido,oscurecidos en la base, borde sutural ylateral de la mitad basal, son muy lisos,ligeramente deshiscentes, tocando susápices la base del quinto segmentoabdominal. El ápice es angosto yredondeado. Cabeza levemente opaca conel surco longitudinal medio reducido a unaestría fina y superficial, puntuación de laparte posterior bastante gruesa, la de lafrente muy fina. Pronoto con los tubérculoslaterales algo menores, disco brillante conpuntuación gruesa, presenta tubérculosachatados y colocados transversalmenteen la parte basilar, siendo el del mediopequeño y ovalado, los otros sonalargados y más prominentes en la partebasal. Escutelo liso y triangular. Lalongitud total varía de 25 a 31 mm y elancho de 7 a 8 mm (Cerda, 1973).

El macho es de color general negrocon pubescencia abundante de tonalidadcenicienta, especialmente en la fazinferior. Cabeza con similares caracteresque en la hembra, aunque más pequeña;antenas más gruesas y más largas queen la hembra, tocando el ápice de losélitros con el décimo antenito; los cuatroprimeros antenitos brillantes y lisos, elresto opaco, rugoso y discretamenteaserrado en su borde externo. Pronoto deiguales características que en la hembra,aunque más pequeño. Escutelo liso,brillante y triangular. Élitros cubriendototalmente el abdomen, deshiscentes enlos 2/3 posteriores, brillantes, lisos yteniendo algunos escasos puntoshundidos en la base, ápice con el ángulo

externo prolongado en un fuerte dientepuntiagudo. La longitud total varía de 17 a19 mm y el ancho de 5 a 6 mm (Cerda,1973) (Figura 62).

Aspectos biológicosEl ciclo de vida se desconoce; según

Peña (1976) permanecería cuatro años enestado de larva.

Los adultos se han observado volar yaentrado el día (10 a.m.) en las ramas altascerca de la copa de determinados N.dombeyi, llegando a encontrarse grandescantidades de ellos al medio día. Lashembras suben por los troncos para sercopuladas, oviponiendo grandes masas dehuevos envueltos en una masa gelatinosaen las ramas gruesas (Peña, 1974).

La larva es de hábitos xilófagos (Peña,1974).

DañoEl daño es ocasionado por la larva y

se ubica en el fuste y ramas gruesas(Peña, 1974). Peña (1974) menciona quelos árboles afectados presentan grandesdimensiones y que los ataques sonfuertes, debilitando al árbol, lo que provocauna desvalorización de la maderainutilizándola para fines industriales,especialmente chapas.





Sinonimia:• Mallodon limae Guérin-

Menèville,• Macrotoma melitae-eques

Blanchard,• Mallodon gracilicorne

Buquet,• Strongylaspis

(Chiasmetes) limae(Guérin-Menèville),

• Strongylaspisgracilicornis (Buquet),

• Strongylaspis melitae-eques (Blanchard)(Artigas, 1994).

Nombre común:• Cruz de malta,• Caballero de Malta.

Figura 63. Adulto de Strongylaspis limae (A.Alvarado).X FIG 54

Distribución:En Chile se encuentra desde la Región de Atacama a la Región del Bío-Bío.

(Guérin-Menèville) (Coleoptera: Cerambycidae)Strongylaspis limae





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DescripciónLarva:

La larva es subcilindrica, robusta y algodeprimida. La cabeza es castaño claracon el margen frontal oscuro, sin un parde procesos tuberculiformes cónicos enla parte superior del borde anterior de lafrente. Protórax inclinado oblicuamente enel dorso, con el doble de ancho que largo,de color lechoso con cerdas cortas en laparte anterior. Patas más cortas que lospalpos, de color castaño, alcanza hastalos 60 mm de largo (Artigas, 1994).

Adulto:Miden entre 23 a 40 mm, de color

castaño brillante. La cabeza es ancha, envista dorsal subcircular, de color castañooscuro, finamente granulada, antes delborde anterior tiene un surco profundo yancho; las antenas son cortas, alcanzanhasta el tercio basal de los élitros. Elpronoto es aplanado, finamentegranulado; en el centro hay una figura enrelieve que semeja una cuz de malta,brillante y de superficie lisa con algunaspunteaciones. Las patas tienen losfémures y tibias aplastados, de colorcastaño brillante y vellosidad clara. Losélitros son largos, cubren todo el abdomeno lo sobrepasan, en la base hay unpequeño espacio con granulaciones, el

resto es liso y brillante, se alcanzan adistinguir en cada uno tres quillas muybajas, que recorren longitudinalmente elélitro (Artigas, 1994) (Figura 63).

Aspectos biológicosSe desconoce su ciclo de vida. Sólo

se sabe que los adultos estarían activosentre noviembre y mayo (Artigas, 1994).

DañoEl daño es ocasionado por la larva yproduce galerías en la madera (Artigas,1994).



Hospederos:• Nothofagus pumilio (Poepp. et Endl.)

Krasser (Lenga),

• Quillaja saponaria Mol. (Quillay) y

• otros árboles nativos chilenos(Artigas, 1994).



Insectostaladradores de corteza

Achenoderus octomaculatusChenoderus testaceusHylurgonotus antipodusNotiopostega atrataRhyephenes humeralisRhyephenes mailleiSinophloeus destructorTettigades chilensisXylechinosomus bicolor


A G E N T E S D E D A Ñ O B I O T I C O SI n s e c t o s t a l a d r a d o r e s d e c o r t e z a

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Sinonimia:• Chenoderus

octomaculatus Fairmairey Germain.

Nombre común:• Taladro manchado.

Hospederos:

• Asociado a Nothofagus,principalmenteNothofagus dombeyi(Mirb.) Oerst. (Coihue).

Figura 64.Adulto de Achenoderus octomaculatus(A. Sartori).

Distribución:En Chile se distribuye desde la Región del Maule a la Región de Aysén delGeneral Carlos Ibáñez del Campo.

(Fairmaire y Germain, 1861) (Coleoptera: Cerambycidae)Achenoderus octomaculatus



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A G E N T E S D E D A Ñ O B I O T I C O SI n s e c t o s t a l a d r a d o r e s d e c o r t e z a 11111

DescripciónAdulto:

Tienen el cuerpo alargado, antenasmás largas que el cuerpo. Pronotoredondeado, ligeramente más grueso enel centro. Cabeza dirigida hacia adelanteaproximadamente del mismo ancho queel pronoto. Fémures engrosados en lamitad apical (Artigas, 1994) (Figura 64).

DañoProduce galerias en madera seca o

decadente de Nothofagus dombeyi.





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Sinonimia:• Achenoderus testaceus

(Blanchard),• Cycnoderus testaceus

Blanchard.

Nombre común:• Taladro testáceo.

Hospederos:


• Nothofagus dombeyi(Mirb.) Oerst. (Coihue) y

• Eucalyptus spp(Eucalipto).

Figura 65.Adulto de Chenoderus testaceus(A. Alvarado).

Distribución:En Chile se distribuye entre la Región del Maule y la Región de Los Lagos, enla Cordillera de los Andes, sobre 1.000 m de altura.

(Blanchard, 1851) (Coleptera: Cerambycidae)Chenoderus testaceus



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DescripciónLarva:

La larva es tipo cerambiciforme, decolor blanco amarillento; las larvas jóvenesmiden hasta 6 mm, tienen el tóraxnotablemente más ancho que el resto delcuerpo. Mientras que las larvas másdesarrolladas miden hasta 16 mm de largopor hasta 4,8 mm del ancho del tórax y3,2 a 4,1 mm ancho del abdomen y tienenel tórax ligeramente más grueso (Artigas,1994).

Adulto: Tienen el cuerpo alargado,deprimido, bordes de los élitros paralelosy miden entre 8 y 20 mm de largo, singrandes diferencias entre los sexos.Pronoto redondeado, ligeramente másgrueso en el centro. Cabeza dirigida haciaadelante aproximadamente del mismoancho que el pronoto; antenas más largasque el cuerpo, sobrepasan el término delos élitros por una distanciaaproximadamente equivalente a lalongitud de la tibia mediana. Fémuresengrosados en la mitad apical, formandouna clava bruscamente atenuada hacia elápice. Todo el cuerpo es de color castañorojizo, pronoto, cabeza, antenas y patasson de igual color y tonalidad, más bienopacos; los élitros son más claros,tendiendo a amarillento hacia el ápice ybrillantes, cubren todo el abdomen(Artigas, 1994; Lanfranco et al., 2002)(Figura 65).

Aspectos biológicosEn la zona sur, los adultos emergen a

partir de mediados de julio desde lostroncos y ramillas secas, efectuandoorificios de salida de 3 a 4 mm dediámetro. Los adultos copulaninmediatamente y las hembras ponen sushuevos en las grietas de la corteza. Lashembras y los machos son activosvoladores, lo que les permite ampliadispersión. Son atraidos por la luz. Laslarvas efectuan galerias profundizadas ycámaras bajo la corteza. Las pupas seforman a fines de mayo se ubican enceldas pupales de 3 a 5 mm de diámetropor 23 a 27 mm de largo, cerradas contapón de aserrín y excremento de 2,5 a 3mm de largo (Artigas, 1994).

DañoLa madera es dañada en su calidad.

Las galerias efectuadas bajo la cortezason cámaras amplias, rellenas de aserríny excremento, divididas por tabiquesdelgados de 1,5 mm de alto; confrecuencia las cámaras subcorticalescomprometen toda la superficie de lamadera (Artigas, 1994; Lanfranco et al.,2002).





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Sinonimia:• Blastophagus antipodus,• Sinophloeus antipodus.

Nombre común:No tiene.

Hospederos:• Araucaria araucana

(Mol.) Koch. (Araucaria)(Rühm, 1976; Kuschel,2000; Morrone, 1997;Wood, 2007).

Figura 66.Adulto hembra de Hylurgonotus antipodus(L. Kirkendall).

Distribución:En todos los bosques de Araucaria araucana de Chile y probablemente deArgentina (Wood, 2007).

(Eggers, 1942) (Coleoptera, Curculionidae, Scolytinae)Hylurgonotus antipodus



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DescripciónLarva:

Escarabeiforme, cilíndrico, de colorblanco, con un longitud aproximada de 4mm, curvada ventralmente, sin patas;cabeza café, con fuertes mandíbulas.

Adulto: Cilíndricos, de aproximadamente4 mm de largo y 2 mm de ancho; rostromuy corto, vertical; antenas cortas,acodadas, con clavas aplanadas. Cabezade frente cóncava en el macho y convexoen la hembra.

Pronoto y élitros de color café muyoscuro. Élitros con filas de tuberculos biendefinidos. El declive es pronunciado,convexo, con tuberculos grandes (Wood,2007) (Figura 66).

Existen otras tres especies de estegénero que atacan Araucaria en Chile,con una biología similar (Wood, 2007).


se estima que tendría uno anual, similara otros Scolytinae templados.

Su capacidad de dispersión es altacomo la de todos los Scolytinae, ambossexos son voladores buenos.

DañoEl síntoma más característico son las

ramas con hojas cloróticas.

Hylurgonotus antipodus ataca ramas,al igual que Xylechinosomus valdivianusy Sinophloeous destructor (del grosor deun brazo). Sin embargo H. antipodusprefiere ramas de diámetros intermedios.

Las galerias de esta especie son de formacurvada y estan grabadas profundamenteen la corteza (floema) (Figura 67) (Rühm,1976; Kuschel, 2000; Wood, 2007;Kirkendall, datos no publicados).



Figura 67.Galeria curvada de Hylurgonotusantipodus, en rama de Araucariaaraucana, Parque Nacional Conguillio(L. Kirkendall).



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Nombre común:• Mancha roja del Coihue.

Hospederos:• Este insecto tiene como

único hospedante alNothofagus dombeyi(Mirb.) Oerst. (Coihue),aún cuando existen otrosinsectos que causan unasintomatología muysimilar, especialmenteen el Nothofagusantartica (G. Forster)Oerst. (Ñirre) yNothofagus pumilio(Poepp. et Endl.)Krasser (Lenga).

Figura 68.Adulto de Notiopostega atrata.(M. Palavicino)

Distribución:Recién el año 2004 se tiene antecedentes de su presencia desde la Región delBío-Bío a la Región de Los Lagos.

(Davis, 1987) (Lepidóptera: Opostegidae)Notiopostega atrata



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DescripciónEsta especie corresponde a un

microlepidóptero, de color blanquisco contonos cafés bronceados en el primer parde alas. Estas son en forma lanceolada,que alcanzan un largo de 5 a 8 mm.Cabeza es gris con antena filiforme. Lasalas posteriores también son lanceoladas,y de color gris más claro. Ambos paresde alas con pelos largos en sus bordes.Tienen un largo promedio del cuerpo de4,8 y 3,8 mm la hembra y el machorespectivamente (Artigas, 1994) (Figura 68).

El huevo es de forma oval alargada,blanquecino, muy difícil de observar, yaque sus dimensiones alcanzan a 0,5 a1,1 mm de ancho y largo, respectivamente(Gara et al., 1980).

Larva:La larva, también de muy pequeño

tamaño, es delgada, cilíndrica y ápoda.Alcanza un tamaño de 20 mm de largopor 1,1 mm de ancho (Artigas, 1994).Cabeza deprimida, blanca, en el tóraxpresenta el pronoto con dos barrasalargadas esclerotizadas, el abdomen esde cutícula lisa, presentando sólo cerdasprimarias y pequeñas espínulas.

La pupa es de color café clarotransparente, con una longitud de 5,5 mmy un ancho máximo de 2,5 mm (Artigas,1994).

Aspectos biológicosPupa en el suelo bajo la hojarasca

durante todo el invierno, desde dondeemerge para volar a la copa de losárboles. Una vez apareadas, las hembrasoviponen en las hojas entre 20 y 40 huevos(Artigas, 1994).

Emergidas las larvas se introducen enlas hojas, continuando hasta alcanzar lazona cambial del fuste, donde construyengalerías descendentes en forma de zigzag.Entre fines de noviembre y diciembre laslarvas interrumpen la confección degalerías descendentes, giran en 180° ycomienzan a taladrar en forma ascendentedurante algún tiempo para luego excavaruna cámara de estivación dondepermanecen inactivas (quiescencia) hastamarzo o comienzos de abril, cuandovuelven a perforar a lo largo de la galeríaprincipal por cerca de 35 cm, luegoperforan hacia el exterior y se dejan caeral suelo (Gara et al., 1980; Artigas, 1994).

DañoEl daño es ocasionado por la larva, la

cual se encuentra durante todo el períodode primavera verano, aproximadamentedesde octubre hasta la última semana deabril (Gara et al., 1980).

Es muy difícil encontrar síntomas deldaño, sin embargo es posible apreciardelgadas galerías larvales en la zonacambial, líneas en zigzag en árboles decorteza muy lisa.

El ataque se presenta normalmente enárboles jóvenes, pero también seencuentra en árboles de mayor edad.

El daño corresponde a la tinción de lamadera, producto de las fecas, en galeríasque alcanzan un largo de hasta 10 metros(Figura 69). El ancho de las galerías vadesde los 0,10 mm aumentando sutamaño con el crecimiento de la larva,hasta un máximo de aproximadamente 2,0mm en el último estadío de la fase larval(Artigas, 1994).



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Figura 69.Galerias de Notiopostega atrata(L. Cerda).

Manejo IntegradoLa mancha roja del N. dombeyi influye

en la estética de la madera, sin alterar suresistencia mecánica. Es de especialimportancia en la elaboración de mueblesfinos, los que pueden ser rechazados demercados internacionales, sin embargo setienen antecedentes que en mercadonacional resulta bastante atractivo en lamadera aserrada.



Sinonimia:• Tylodes humeralis

Guérin,

• Cryptorhynchusarachnodes Erich.,

• C. humeralis (Guérin),

• Physothorus boyeri Gayy Solier,

• Rhyephenes aequalisPhil., R. arachnodes(Erich.),

• R. axillaris Dejean,

• R. boyeri (Gay y Solier),

• R. incas Gyll.Figura 70.Adulto de Rhyephenes humeralis.

Distribución:En Chile se encuentra desde la Región de Coquimbo a la Región de Los Lagos.También se ha determinado para Argentina (Neuquén, Chubut, Santa Cruz)(Artigas, 1994).

(Guérin, 1839) (Coleoptera: Curculionidae)Rhyephenes humeralis





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DescripciónLarva:

Es arqueada, con el centro más alto,de color blanco amarillenta, ápoda,redondeada y robusta (Gara et al., 1980;Artigas, 1994; Baldini et al., 1994), de 13a 15 mm de largo. La cabeza es de colorcastaño claro cubierta en su mitad basalpor el pronoto. Tórax y abdomen sin pelos,la parte posterior del protórax estáendurecida; abdomen con nuevesegmentos (Artigas, 1994).

Adulto:El cuerpo es duro, de 7 a 15 mm de

largo. Los élitros están soldados y tantoéstos como el protórax estánprofusamente cubiertos de pequeños

tubérculos, los cuales se ordenan enlíneas longitudinales en los élitros. Cabezapequeña, inserta en el pronoto, tiene elrostro en forma de trompa y se extiendehasta la base del tórax. Las patasanteriores son más largas que lasrestantes y todas ellas más largas que ellargo del cuerpo. Los fémures del primerpar de patas están cubiertos de tubérculosligeramente menores que los élitros, elresto de las patas presenta una superficiemenos tuberculada. El color del insectoes negro intenso en cuerpo y patas,excepto por dos manchas pequeñasalargadas de color blanco cremoso quese ubican en la base de cada élitro. Lashembras son de tamaño superior a losmachos, llegando a tener éstos la mitaddel tamaño de ellas; las hembras poseenel rostro liso y los machos rugoso(Artigas, 1994) (Figura 70).

Aspectos biológicosEl ciclo de vida no está totalmente

definido pues se hallan larvas y adultosen todas las épocas del año. Se estimaque demora un año en completar unageneración, pero con dos generacionessobrepuestas, de modo que aparecentodas las fases durante todo el año (Garaet al, 1980).

Los adultos son de hábitos fitófagos,consumen hojas y brotes tiernos. Lahembra ovipone en la madera,introduciendo los huevos levemente en lasgrietas de la corteza. Mientras que la larvaes de hábitos xilófagos subcorticales(Artigas, 1994).

Nombre común:• Burrito,

• Caballito,

• Cabrito,

• Gorgojo,

• Marinerito.


(Mirb.) Oerst. (Coihue), (Barriga et al.,1993)

• Cryptocarya alba (Mol.) Looser(Peumo) y

• Quillaja saponaria Mol. (Quillay)(Artigas, 1994).



Su capacidad de dispersión esmoderada, debido a que no pueden volary sólo pueden movilizarse caminando. Sinembargo, son capaces de adaptarse atoda clase de hospedantes debilitados,desde árboles a plantas secundarias.

DañoEl daño consiste en galerías bajo la

corteza de ramas y fuste que llegan atener un diámetro de hasta 6 mm (Artigas,1994).

Un signo característico que presentanlos árboles afectados es la presencia deperforaciones en la corteza producto dela emergencia de los adultos. Dichosagujeros son circulares (Baldini et al.,1994) teniendo un diámetro que varía entre4,5 y 6,5 mm (Artigas, 1994).

El ataque se presenta en árbolesdebilitados (Artigas, 1994; Baldini et al.,1994) y en madera muerta (Barriga et al.,1993), al ser perforados permiten laintroducción de agua y hongos al interiorde las galerías, acelerando su decadencia(Artigas, 1994). Sin embargo, no se hadeterminado su daño económico (Baldiniet al., 1994).





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Sinonimia:• Tylodes humeralis

(Guérin),• Cryptorhynchus

arachnodes (Erich.),• C. humeralis (Guérin) y• Physothorus boyeri (Gay

y Solier).

Nombre común:• Gorgojo,• Caballito,• Burrito,• Cabrito,• Marinerito.

Figura 71.Adulto de Rhyephenes maillei(A. Baldini).

Distribución:En Chile se encuentra desde la Región de Coquimbo a la Región de Los Lagos(Artigas, 1994).

(Gay y Solier, 1839) (Coleoptera: Curculionidae)Rhyephenes maillei



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DescripciónLarva:

Las larvas son de color blanco, ápodas,robustas y de forma arqueada (Gara etal., 1980). Tienen la cabeza de colorcastaño claro y cubierta en su mitad basalpor el pronoto. La parte posterior delprotórax está endurecida; el abdomentiene nueve segmentos. Su largo varía de13,0 a 15,0 mm (Baldini y Pancel, 2002)

Adulto:El adulto tiene los élitros soldados y tanto

éstos como el protórax están cubiertos depequeños tubérculos, los cuales se ordenanlongitudinalmente en los élitros. La cabezapequeña tiene el rostro en forma de trompaque se extiende hasta la base del tórax. Laspatas anteriores son más largas que lasdemás; todas son más largas que el cuerpo,que es de color negro intenso, excepto pordos manchas blancas cremosas ubicadas enla base de cada élitro. Las hembras son másgrandes que los machos y tienen el rostro liso,mientras que los machos lo tienen rugoso.Su tamaño varía entre los 7,0 a 15,0 mm delargo (Artigas, 1994) (Figura 71).

Aspectos biológicosSu ciclo biológico ha sido difícil dedefinir, pues se han encontrado larvas yadultos en todas las épocas del año. Sesupone que en un año completa unageneración, pero con generacionessobrepuestas, de manera que durante elaño aparecen todos los estadíos (Garaet al., 1980).Un signo característico que presentanlos árboles afectados es la presencia deperforaciones en la corteza, de ramas yfustes, y de aserrín en la parte basalproducto de la emergencia de adultos.Dichos agujeros son circulares, de 4,5 a6,5 mm de diámetro, el ataque sepresenta en árboles debilitados y enmadera muerta, especialmente enramas y fuste, durante todo el año.

DañoEste insecto nativo infesta toda clasede árboles debilitados, exóticos ynativos (Gara et al., 1980); así comotambién madera muerta (desechosforestales) (Barriga et al., 1993). El dañoconsiste en galerías, de hasta 6 mm dediámetro, bajo la corteza que deja elestado larvario, (Artigas, 1994). Elefecto del daño es el biodeterioroacelerado del hospedero.

Los árboles débiles al ser perforadospermiten la introducción de agua yhongos al interior de las galerías,acelerando su decadencia, su dañoeconómico sin embargo no se hadeterminado (Baldini et al., 1994).


(Coihue) (Barriga et al., 1993),

• Cryptocarya alba (Mol.) Looser(Peumo),

• Quillaja saponaria Mol. (Quillay)(Artigas, 1994) y

• Pinus radiata D. Don (Pino insigne).



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de manejo integrado, sin embargo paraque los árboles no sean afectados por losinsectos que afectan la corteza y lamadera, las plantas se deben mantenervigorosas, con una fertilización apropiada,riego oportuno y buen drenaje (Alversonet al., 1994).

En términos de labores silvícolas, unapoda extensa no es recomendable puesexpone a la luz partes internas de la plantaque al recibir la luz directa del sol puedensufrir úlceras en el tronco que los hacenvulnerables a insectos (Paine et al., 2004).

Durante el invierno es convenienteeliminar los árboles muertos y menosvigorosos (De Liñán, 1998), y si se iniciala infestación se pueden cortar los árbolescolonizados, así como también destruirlos desechos que pueden servir de lugarde reproducción del insecto (De Ferari yRamírez, 1998).



Sinonimia:• En la literatura,

confundido conSinophloeus porteriBrethes, especie quebarrena Lomatia hirsuta(Lam.) Diels. ex Macbr.(Radal) (Wood, 2007).

• Solamente S. destructorbarrena Araucaria.Conocido también comoBlastophagus destructory Blastophagus porteri.

Nombre común:No tiene

Hospederos:• Araucaria araucana

(Mol.) Koch. (Araucaria)(Rühm, 1976; Kuschel,2000; Wood, 2007).

Figura 72.Adulto de Sinophloeus destructor(L. Kirkendall).

Distribución:En todos los bosques de Araucaria araucana de Chile y Argentina (Wood,2007).

(Eggers, 1942) (Coleoptera: Curculionidae, Scolytinae)Sinophloeus destructor





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DescripciónLarva:


Adulto:Cilíndricos, 3 mm de larga y

aproximadamente 1 mm de ancha; rostromuy corto, vertical; antenas cortas,acodadas, con clavas muy elongadas. Lacabeza de ambos sexos es concava, conuna carina mediana, más larga en elmacho.

Pronoto y élitros anteriores muyoscuros, resto de élitros de color caférojizo oscuro con punteaduras en filas.Pronoto sin tuberculos. En el ánguloanterolateral del pronoto tiene pelososcuros largos a cado lado. El declive esgradual, suavemente convexo, contuberculos pequeños (Morrone, 1997;Kuschel, 2000; Wood, 2007) (Figura 72).


se estima que tiene uno anual, similar aotros Scolytinae templados. Se hancolectado adultos todo el año (Wood,2007). Se presume que vuela en invierno.Se han detectado huevos, larvas y adultosjuntos en R.N. Malalcahuelo en noviembre(Kirkendall, datos no publicados).


DañoSinophloeous destructor ataca ramas

de poco diámetro (Figura 73). Las galeriasde esta especie estan en la corteza(floema), tanto larvas como adultoscomen en la corteza y bases de hojas(Rühm, 1976; Morrone, 1997; Kirkendall,datos no publicados) (Figura 74).

Un síntoma muy característico es lapresencia de ramas con hojas rojas(Figura 75).



Figura 75.Daño en hojas y corteza de una rama pequeñade Araucaria araucana, R. N. Malalhuello,Región de La Araucania(L. Kirkendall).

Figura 73.Rama muerta (con S. destructor) de Araucariaaraucana, R. N. Malalcahuello, Región de LaAraucania(L. Kirkendall).

Figura 74.Rama muerta con orificios de entrada de S.destructor en Araucaria araucana, R. N.Malalcahuello, Región de La Araucania(L. Kirkendall)



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Sinonimia:• Cicada eremophila

Philippi,• Cicada rubrolineata

Spinola,• Fidicina crassivena

Walker,• Syncharina argentina

(Berg).

Nombre común:• Chicharra grande común,• Chicharra, Cigarra,• Cicada.

Hospederos:• Ataca a casi la totalidadde especies nativas,incluyendo coníferas comolatifoliadas. También se leencuentra en plantacionesforestales y huertosfrutales.

Distribución:En Chile se encuentra desde la Región de Atacama a la Región de Los Lagos.

(Amyot y Serville, 1843) (Hemiptera: Cicadidae)Tettigades chilensis



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Figura 76.Rama con daño de Tettigades chilensis(A. Baldini).



DescripciónHuevo:

Los huevos son de color amarillo reciénpuestos, alargados de 1,8 mm y 0,4 mmde ancho. A medida que maduran setornan rojizo oscuro.

Se les encuentra exclusivamente enagrupaciones, inserto en el leño de lasramillas y troncos de los árboles nomayores de 2,5 cm de diámetro (Artigas,1994).

Ninfas:La ninfas semejan larvas, curvadas

ventralmente, con patas y cabeza muydesarrolladas, de color amarillo claro y elprimer par de patas está adaptado paracavar, la boca destaca por formar unaparato picador largo y fácilmenteobservable.

Adulto:Los adultos miden entre 27 a 30 mm

de largo presentan cabeza negra con unamancha ocre frente al ocelo central ymanchas rojizas detrás de los ojos, tóraxnegro con bordes posteriores rojizos, alasmembranosas transparentes, ligeramentebrillantes, abdomen oscuro cubierto depilosidad gris oscura, similar a la que seobserva en la parte ventral de la cabeza(Artigas, 1994; Parra y González, 1998).

Aspectos biológicosLos adultos copulan al poco tiempo de

emergidos del suelo, entre noviembre ymarzo en la zona central y centro sur deChile. Una vez ocurrido el apareamiento,los machos mueren y la hembra comienzala postura de huevos en los tallos juvenilesde los árboles, terminada la ovipostura

estas también mueren. La hembraintroduce su ovipositor agudo y delgadoen el leño hasta el xilema, ahí depositagrupos de 10 a 20 huevos en sucesivasoviposturas en línea, entre 5 a 12,alcanzando un total de 50 a 200 huevos,quedando una herida en la ramilla similara la que haría una lezna introducida variasveces en una línea (Artigas, 1994).

La ninfas nacen a medidos de marzoy fines de abril, pudiendo prolongarse elperíodo de emergencia en 30 días másen épocas con clima cálido prolongado.Posteriormente se dejan caer al sueloenterrándose y fijándose en las raícespequeñas, de las cuales succionan savia(Artigas, 1994; Parra y González, 1998).

Las ninfas al final de su desarrollocavan una galería de salida por la cualavanzan hasta el borde, donde se detienena esperar que se rasgue la exuvia y emerjael adulto (Artigas, 1994).

DañoEl daño lo provoca la hembra al

efectuar la postura de huevos a través dela inserción sucesiva del aparato ovipositoren sentido vertical al tallo, generandolesiones en forma de líneas (Figura 76).Las heridas ocasionadas en la corteza yel xilema originan graves deformacionescuando estos crecen, afectando su valorcomercial. En los árboles de menortamaño el daño se acentúa y puedeprovocar el anillamiento y muerte de laplanta (Artigas, 1994; Parra y González,1998) (Figura 77).

Asimismo las heridas debilitan lostejidos de sostén del árbol, este daño se



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intensifica por la acción de factoresclimáticos.

Las ninfas al permanecersubterráneamente debilitan las plantas alsuccionar las raíces.

El daño se localiza en el tercio inferiordel eje principal, entre el cuello de laplanta y el primer o segundo verticilo(Artigas, 1994; Parra y González, 1998).

Manejo IntegradoPara evitar la ovipostura en árboles

jóvenes se recomienda cubrir el talloprincipal con una malla fina durante elperiodo de vuelo del insecto. También sepueden usar bandas adhesivas coninsecticida incorporado (Artigas, 1994;Parra y González, 1998).

El arado o rastra favorece laeliminación mecánica de la ninfas en elsuelo al exponer las a condicionesambientales adversas de habitad y apredatores (Artigas, 1994).

Es recomendable el empleo deinsecticidas carbamicos y piretroidessintéticos aplicados al momento deemergencia de los adultos (Artigas, 1994;Parra y González, 1998).

Algunas medidas preventivas silvícolasson seleccionar adecuadamente laespecie, procedencia, progenie, sitio debuena calidad, preparación de suelo,fertilizantes y desmalezar periódicamente.Además se debe evitar el retraso en laépoca de plantación, de manera de lograrárboles vigorosos con tallos principaleslignificados en el momento que seproduzca la emergencia de los adultos y

Figura 77.Rama con daño de Tettigades chilensis(A. Sartori).

la postura de huevos. Realizar podas deformación en árboles dañados de manerade recuperar el eje principal (Artigas,1994; Parra y González, 1998).



Sinonimia:

• Xylechinus valdivianus,• Xylechinosoma

valdivianus y• Pteleobius valdivianus.


Hospederos:

• Araucaria araucana (Mol.)Koch. (Araucaria) (Rühm,1981; Wood, 2007).

Figura 78.Adulto de Xylechinosomus valdivianus(L. Kirkendall)

Distribución:En todos los bosques de Araucaria araucana de Chile y Argentina (Wood,2007).

(Philippi y Philippi, 1864) (Coleoptera: Curculionidae, Scolytinae)

Xylechinosomus bicolor





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DescripciónLarva:


Adulto:Cilíndricos, de aproximadamente 3 mm

de largo y 1 mm de ancho; rostro muycorto, vertical; antenas cortas, acodadas,con clavas elongadas (largo cerca 1,5xancho). La cabeza es concava en ambossexos, con una carina mediana. Únicoescolitido de Araucaria que es cubierto deescamas.

Pronoto y élitros oscuros, con unamezcla de escamas oscuras y pálidas.El declive es pronunciado, suavementeconvexo, con tuberculos pequeños(Morrone, 1997; Kuschel, 2000; Wood,2007) (Figura 78).


se estima tiene uno anual, similar a otrosScolytinae templados. Se presume quevuela en invierno.


DañoSu síntoma más relevante son ramas

con hojas cloróticas. Xylechinosomusbicolor prefiere ramas grandes. La galeriasde esta especie se ubica en la corteza(floema) (Morrone, 1997; Kirkendall, datosno publicados) (Figura 79 y 80).

Figura 79.Galerias de X. valdivianus, en corteza de ramagrande de Araucaria araucana, R. N.Malalhuello, Región de La Araucania(J. Aguayo).

Figura 80.Galerias de X. valdivianus, en rama grande deAraucaria araucana, R. N. Malalhuello, Regiónde La Araucania(L. Kirkendall).





Insectosdañadores de conos y semillas

Amblycerus disparPerzelia arda


A G E N T E S D E D A Ñ O B I O T I C O SI n s e c t o s d a ñ a d o r e s d e c o n o s y s e m i l l a s

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Sinonimia:• Spermophagus thomasi

Nombre común:• Bruco del Chañar,• Gorgojo del Chañar.

Hospederos:• Geoffroea decorticans

Burk. (Chañar)

Figura 81.Adulto de Amblycerus dispar(L. Kirkendall).

Distribución:En Chile se ha reportado en la localidad de Copiapó, Región de Atacama.

(Sharp, 1885) (Coleoptera: Bruchidae)Amblycerus dispar



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A G E N T E S D E D A Ñ O B I O T I C O SI n s e c t o s d a ñ a d o r e s d e c o n o s y s e m i l l a s 11111

DescripciónLarva:

Escarabeiforme, cilíndrico, de colorblanco, con un longitud aproximada de 8mm y curvada ventralmente.

Adulto:De forma oval, cabeza con un rostro

corto y achatado; élitros más cortos queel abdomen; antenas largas, por encimade los ojos, con segmentos largos yasimétricos. Mide aproximadamente 8mm, ningún otro Bruco en Chile alcanzamás de 5 mm (Figura 81).

Aspectos biológicosEl ciclo de vida es anual. Las hembras

ponen huevos al exterior de los frutos endesarrollo, mientras que las larvasbarrenan al interior y entran a las semillas.Pupan en las semillas. El adulto emergedel fruto.

Su capacidad de dispersión es alto,los adultos son buenos voladores.

DañoLa larva come casi la totalidad de la

semilla (Figura 82). Además es posibleobservar en los frutos orificios de salida(Figura 83).

El daño ocasiona una reducción en laregeneración de la especie.

Figura 82.Semillas de Geoffroea decorticans afectadas porAmblycerus dispar(L. Kirkendall).

Figura 83.Orificios de Amblycerus dispar(L. Kirkendall)





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Nombre común:• Perforador de la semilla

de Raulí

Hospederos:• Nothofagus alpina

(Poepp. et Endl.) Oerst.(Raulí).

dibujar

Distribución:Corresponde a la misma de su hospedero.

(Clarke, 1978) (Lepidoptera: Oecophoridae)Perzelia arda



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DescripciónHuevo:

Recién ovipositados son transparentesy presentan una coloración blancoamarillenta; su forma es casi esférica yla superficie se observa prácticamentelisa. A medida que avanzan en sudesarrollo son un poco más ovalados ysu coloración se torna un tanto másoscura. En la superficie se empieza anotar, cada vez con mayor claridad, untipo de venación, la que se caracteriza porexhibir líneas longitudinales, las queconfluyen en un mismo punto en ambosextremos de su diámetro mayor y líneastransversales mucho más cortas yperpendiculares cada dos líneaslongitudinales.

En el huevo la larva se encuentradoblada dorsoventralmente, casi tocandoel extremo posterior del abdomen con lacabeza.

Presentan, en su diámetro mayor, untamaño que fluctúa entre 0,29 a 0,33 mmy, en su diámetro menor, las dimensionesvarían entre 0,12 a 0,24 mm (Cerda et al.,1982).

Larva: Su longitud promedio fluctúa entre

0,74 a 11,88 mm, que corresponden alprimer y ultimo estadío respectivamente.

En una larva de último estadío, el anchopromedio de la cápsula cefálica es 1,54 mm;su mayor envergadura transversal, que esde 2,07 mm en promedio, la alcanza en elmesotórax y segundo segmento abdominal,estrechándose gradualmente hacia elextremo posterior donde mide 1,0 mm enel ultimo segmento. Es más ancha que alta,subcilíndrica, con la superficie ventralaplanada.

En conjunto es de color verdoso, lassetas de la cápsula cefálica son de colorcafé claro, finas y delgadas. La cabezaes más ancha que larga y mide 1,36 y1,07 mm respectivamente; hipognata,globosa, con dos suturas adfrontales ydos suturas epicraneales que parten deltronco epicraneal, seis ocelos a cada ladoy un segmento antenal basal sobre ellos.Color café claro, excepto en el clípeo,labro, labios y palpos que son de colormás claro y remarcados sus contornoscon café oscuro. Los palpos maxilarespresentan cuatro segmentos; lasmandíbulas son simétricas. Al observarlode frente, el labro es más ancho que altoy doblemente redondeado. El clípeo, vistoen forma perpendicular al cuerpo de lalarva, es más ancho que el labro y suancho corresponde a aproximadamentetres veces el largo. El protórax presentaun par de espiráculos de color café claroy de forma circular, con un diámetro de0,11 mm. Las patas son de color caféoscuro con uñas rojizas; pseudópodos deforma cilíndrica, presenta cinco pares entotal, los cuatro primeros, que son delmismo tamaño (0,25 mm en promedio),se ubican en el 3°, 4°, 5° y 6° segmentoabdominal, los crochetes son de tipouniserial biordinal circular. El último par,que es el más reducido en tamaño (0,21mm en promedio), se ubica en el últimosegmento y tiene crochetes de tipouniserial biordinal lateral penellipse. Lassetas del cuerpo son primarias, seencuentran sobre bases de color caféclaro con una dimensión promedio de 0,93mm (Cerda et al., 1982).

Pupa:al inicio de este estado son de un color

verde transparente en su parte anterior,



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presentando los apéndices una coloraciónmás oscura. La parte posterior presentauna coloración amarillenta. A medida quese va desarrollando, su coloración generalse torna café claro con los apéndices másoscuros. Al término del estado el color delas pupas es café oscuro. El aparatobucal, venación alar, antenas y ojos sedistinguen con claridad.

Presentan en su ancho y largodimensiones que varían entre 1,58 a 2,71mm y 5,14 a 7,71 mm, respectivamente.Las antenas se encuentran dobladasdorsiventralmente; entre estas se observanlos cuernos y aparato bucal. Las alas seencuentran plegadas a ambos lados ycubriendo con sus extremos la parteventral de la pupa. En el extremo posteriordel abdomen poseen tres cremaster, loscuales los utiliza para fijarse en el capulloque forman las larvas en las hojas (Cerdaet al., 1982).

Adulto:La hembra, en conjunto, es de color

platinado bril lante. Posee ojoscompuestos y no presenta ocelos. Lasantenas tienen un largo promedio de 5,7mm, son del tipo filiforme y estáncompuestas de 90 artejos. Entre estaspresentan dos apéndices semejantes acuernos, de una longitud aproximada de2,30 mm en promedio. El ancho promediodel tórax es de 1,30 mm. Las alaspresentan en sus márgenes cerdas quetienen un largo no mayor de 1,72 mm.Ambos pares están cubiertos denumerosas escamas. Su extensión alaralcanza a 21,1 mm. Las patas presentangran cantidad de pelos. El abdomen ytórax con abundantes escamas.

El tamaño del macho es más reducido

que el de la hembra. Presenta unacoloración gris oscura con sectoresplatinados. Posee ojos compuestos y aligual que la hembra no presenta ocelos.Las antenas son del tipo filiforme,compuestas de 60 artejos; su longitudpromedio es de 2,72 mm. Entre lasantenas se encuentran los cuernos, deuna longitud promedio de 1,70 mm. Elancho promedio del tórax es de 1,12 mm.Las alas están cubiertas de gran cantidadde escamas. Su extensión alar alcanza a10,63 mm. El abdomen y tórax conabundantes escamas (Cerda et al., 1982).

Aspectos biológicosEl ciclo de vida tiene una duración de

un año. La distribución que presenta cadafase durante el año es la siguiente; huevo:estos se encuentran desde los primerosdías de noviembre, fecha que coincide conla aparición de las primeras floresfemeninas en los árboles. A partir de estafecha, la oviposición muestra unatendencia ascendente, la cual alcanza sumáximo alrededor de la segunda semanadel mismo mes. La postura de huevosempieza a declinar marcadamente haciafines de mes. El estado de huevo puedeser encontrado hasta los primeros díasde diciembre; larva: esta etapa se iniciaalrededor de la segunda a tercera semanade noviembre, culminando la primerasemana de febrero aproximadamente. Sumayor abundancia se encuentra a finesde diciembre; prepupa: este estado duracomo máximo dos días. Su ubicación enel tiempo se encuentra a fines del mesde enero y primera semana de febrero;pupa: a partir de la última semana deenero se inicia la aparición de pupas. Esta



etapa finaliza los últimos días deseptiembre. La mayor abundancia deejemplares en este estado, se encuentradurante la primera semana de marzo;adulto: comienzan a emergeraproximadamente en la segunda semanade septiembre. Desde esta fecha laaparición de adultos es marcadamenteascendente, alcanzando su máximo lasegunda semana de octubre. Seencuentran hasta fines del mes denoviembre (Cerda et al., 1982).

El adulto oviposita sólo en las floresfemeninas, depositando un huevo en cadacúpula; excepcionalmente deposita doshuevos. En condiciones de laboratorio,pone un total de 120 huevos.Preferentemente oviposita en las floresque originan las nueces trialadas de lacúpula.

Al emerger, las larvas se movilizanhacia la base de las nueces o semillaspor el interior de la cúpula. Inicialmenteperforan las semillas alimentándose desus tejidos internos. Posteriormente,cuando alcanzan un tamaño determinado,el cual corresponde al penúltimo y ultimoestadío larval, comienzan a alimentarsede las hojas de las hojas más cercanas ala cúpula, efectuando en el haz o envésde estas una notoria esqueletización.

Durante sus primeros estadíoslarvales, el insecto construye su moradaen las cúpulas que contienen las semillas.Para confeccionar esta, junta y pega,mediante un fino hilo de seda, restos desu excremento y los va depositando enlos lugares desprotegidos de las cúpulas,los cuales se producen al abrirse lasmismas en la medida en que avanzan ensu proceso de maduración. Sin embargo,

las larvas dejan una pequeña abertura enla base de las cúpulas, la cual les sirvepara salir y entrar a ellas. Las salidas queefectúan, las realizan cuando se les haterminado el alimento en el interior de sunido o refugio. Cuando esto sucede,buscan alimento en las cúpulas que seencuentran más cercanas. En algunoscasos, cuando la distancia entre su fuentede alimento y su refugio le esdesfavorable, cambia de moradainstalándose en una nueva cúpula que leproporcione alimento. En los últimosestadíos larvales, cuando varían surégimen alimenticio y comienzan aalimentarse de las hojas, su refugio loconfeccionan en una de estas. Para lograresto doblan la hoja, generalmente enforma longitudinal. La unión la efectúancon un fino hilo de seda. Las aberturas,que eventualmente quedan en el doblezde ésta, las cubren con restos deexcremento (Cerda et al., 1982).

Luego de cumplir su último estadío,las larvas se dejan caer al suelo(hojarasca) mediante un fino hilo de seda.Una vez que se encuentran en elcomienzan a pupar. Las pupas seencuentran hasta una profundidad máximade 2 cm aproximadamente, envueltas enun capullo formado por las larvas, antesde iniciar el estado pupal. Para laconstrucción del capullo, que consiste endoblar las hojas, emplean hilos de seda,los cuales los utilizan para sujetar ambosextremos de la hoja. Los tres cremaster,que posee la pupa en el extremo delabdomen, los utiliza para fijarse al capullo.En algunas oportunidades emplean, parala confección de éste, restos deexcremento (Cerda et al., 1982).



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DañoEl daño se presenta en árboles vivos,

desde que estos inician la producción desemillas y se ubica en las semillas y enlas hojas cercanas a las cúpulas onueces.

El principal daño consiste en laperforación de las semillas. Las larvas semovilizan al interior de estas, efectuandouna perforación circular cuyo diámetrocoincide con el ancho de la cápsulacefálica. Este tipo de daño se caracterizapor presentar modalidades diferentes deataque, que hace necesario separarlo en2 clases:

Daño total: lo producen las larvas alalimentarse de la totalidad del embrión,dejando sólo la testa de la semilla, Sereconoce con facilidad ya que presentan2 perforaciones de diferente tamaño, unade entrada y otra de salida de la larva,evidenciando la ocurrencia de a lo menosuna muda o ecdisis, en el interior de lasemilla.

Daño parcial: lo producen las larvas alalimentarse en forma incompleta delembrión, quedando la mayor parte de esteen la semilla. En este caso las larvashacen una sola perforación, la cual lessirve para entrar y salir.

El daño secundario o defoliación:consiste en la esqueletización de lashojas más cercanas a la cúpula. Las hojasson afectadas por el haz, el envez o porambos lados de la lámina. Las másalejadas, por lo general permaneceninalteradas. Las larvas no realizan laesqueletización de las hojas en formatotal, sólo lo hacen en los sectores deellas más cercanos a las cúpulas. Poresta razón, aproximadamente la mitad de

la hoja permanece sin sufrir daño (Cerdaet al., 1982) (Figura 84).

El daño ocasionado por P. arda, setraduce en una baja en la viabilidad de lassemillas, motivada por la perforación queocasionan en ellas las larvas, para efectosde alimentarse, pudiendo en algunoscasos llegar a dañar más del 90% del totalde semillas producidas por el árbol (Cerdaet al., 1982).


de manejo integrado. Sin embargo seconocen algunas familias de susenemigos naturales tales como:Hymenoptera: Braconidae, Eulophidae;Hongo: Deuteromycetes, Moniliales,Moniliaceae.

Figura 84.Daño ocasionado por Perzelia arda.

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Insectosdañadores de flores

Frankliniella rodeos


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Nombre común:• Trips.

Hospederos:• Frutales y Nothofagus

macrocarpa (A. DC.)Vazq. et Rodr. (Roble deSantiago).

Figura 85.Adulto de Frankliniella rodeos(A. Quiroz).

Distribución:En Chile se ha reportado afectando individuos de Nothofagus macrocarpa en elCerro El Roble, Región de Valparaíso.

(Moulton, 1933) (Thysanoptera: Thripidae)Frankliniella rodeos


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DescripciónAdulto:

Son pequeños insectos polífagos quemiden menos de 6 mm de longitud conuna coloración que varía del marrón oscuroal amarillo claro. Tienen 3 pares de patasy 2 pares de alas. Una característica quelos distingue son una serie de flecos quepresentan en el contorno de las alas(Artigas, 1994) (Figura 85).

Aspectos biológicosPresentan metamorfosis incompleta.

Se estima que su ciclo de vida dura entre15 a 40 días, dependiendo de latemperatura y tienen varias generacionespor año (Coulson, 1990).

DañoTanto las larvas como los adultos

producen daño a flores debido a sushábitos alimenticios. El daño se producepor el raspado de tejidos y succión desavia. Además, pueden ser vectores deenfermedades que afecten a sushospedantes (Artigas, 1994 ; Coulson,1990).


de manejo integrado para especiesforestales, sin embargo en frutales serecomienda Glacoxan 50 m insectidaacaricida que actúa por contacto eingestión y Glacoxan d-sist insecticidasistemico.


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Insectosdañadores de raíces

Sibylla integra


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Sinonimia:• Sybylla integra Fairm. et

Germain.

Nombre común:Sin Información

Hospederos:• Renovales de Nothofagus

dombeyi (Mirb.) Oerst.(Coihue).

Figura 86.Adulto de Sybylla integra(A. Alvarado).

Distribución:Se ha encontrado en Chile en las provincias de Ñuble y Malleco, entre lasregiones del Bío-Bío a la de la Araucania (Cerda, 1973).

(Fairm. et Germain, 1859) (Coleoptera: Cerambycidae).Sibylla integra




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DescripciónAdulto:

El aspecto general de la hembra escomo Sybilla coemeterii (Thomson) siendode color enteramente negro brillante. Sediferencia de S. coemeterii (Thomson) yde c (Cerda) por los siguientes caracteresmorfológicos. Coloración negra sinvariación. Antenas más largas tocandocon su ápice el extremo distal del fémurposterior. Pronoto más grande y másancho teniendo en la línea media y antesde la base una impresión transversalancha y profunda; tubérculos lateralesmás pequeños. Escudo triangular liso, conel ángulo posterior hendido. Élitros conlos ápices truncados o débilmentesinuados. La longitud varía desde 23 a 26mm y el ancho de 8 a 9 mm. (Cerda,1973).

El macho es casi completamente decolor negro brillante. Cabeza como lahembra, aunque más pequeña; antenasfiliformes tocando el ápice de los élitroscon la mitad del 9º antenito, escapodelgado como el 2º y 3º juntos, 2º nudoso,3º como el 4º, 5° más largo que cada unode los cuatro primeros y que los restantesque son subiguales, los 4 primerosbrillantes y discretamente puntuados, elresto opaco con pilosidad cenicienta cortay tendida, rugosos y débilmente aserradosen su borde externo. Pronoto como en lahembra, aunque más pequeño. Escudotriangular liso brillante y con ánguloposterior hendido. Elitros lisos brillantescon algunos pelos cenicientos erguidosen la base, débilmente cuneiformesteniendo sus ápices netamente truncadosy ángulos lisos; abdomen con 5esternites, orlado de pelos hirsutos blanco

amarillento. El largo varía de 17 a 18 mmy el ancho de 6 a 7 mm. (Cerda, 1973)(Figura 86).

DañoSólo se sabe que afecta las raíces de

sus hospederos.





Insectosdañadores de ramas, brotes y plantulas

Callisphyris semicaligatusColobura alboplagiataHornius grandisRhopalomyia nothofagi


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Sinonimia:• Callisphyris leptopus

Phil.,

• C. schytei Phil.

Nombre común:• Sierra,

• Sierra del Coigüe.

Figura 87.Adulto de Callisphyris semicaligatus.

Distribución:En Chile se encuentra desde la Región del Maule a la Región de Magallanes yLa Antártica Chilena (Cerda, 1986; Barriga et al., 1993; Barriga y Peña, 1994).También se encuentra en los bosques subantárticos del suroeste de Argentina(Santoro, 1966; Giganti y Dapoto, 1990).

(Fairm. y Germ., 1859) (Coleoptera: Cerambycidae)Callisphyris semicaligatus



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DescripciónLarva:

La larva es de color amarillo pálido.

Pupa:La pupa es blanca y tiene la misma

forma del adulto con las patas encogidasen el vientre.

Adulto:El adulto es de apariencia similar a

una avispa (Peña, 1986). El largo de lashembras, desde la cabeza hasta elextremo abdominal, es de 36 mm, y elancho, al nivel de la base de los élitros,es de 8,5 mm. Los machos son máspequeños midiendo 26 mm de largo y 6mm de ancho.

El cuerpo es alargado, vespiforme,negro, con pilosidad de un color castañooscuro a negro. El pronoto presenta unasprotuberancias que a simple vista semejanun collar. Las antenas son largas, amarilloanaranjadas en los tres primeros antenitosy parte del cuarto, siendo el resto de color

negro. Las patas son de color amarilloanaranjadas excepto la uña que esoscura, siendo las patas posterioresconsiderablemente más largas que elresto de las otras patas y que el largo delcuerpo, éstas a su vez no soncompletamente glabras, como los dospares de patas anteriores, sino quepresentan un anillo grueso de pelos largosy negros en cada fémur y otro más anchoen el extremo de cada tibia. Los élitrosson pequeños (atrofiados) de 11 a 14,5mm de largo en las hembras, y de 8 mmen el caso de los machos, son anchos ensu base, agudizándose hacia atrás hastacasi parecer un hilo para luegoensancharse levemente en su extremoposterior, siendo de un color rojo oscuroen su base para luego ir pasando a unamarillo sucio y terminando con un colornegro en el extremo ensanchado del élitro(Figura 87).

Aspectos biológicosSegún Billings et al. (1993) menciona

que su ciclo vital sería de unos cuatroaños, emergiendo los adultos enprimavera, por lo que los huevos seríanpuestos en primavera-verano,encontrándose las larvas durante todo elaño y las pupas a finales de invierno.

La larva es de hábitos xilófagos,principalmente en el interior de ramas.

La capacidad de dispersión es alta,debido a que los adultos son buenosvoladores, pudiendo viajar largasdistancias (Billings et al., 1993).

Además, el hecho de ser insectospolífagos les permite ir avanzando en su


(Coihue) (Monrós, 1943; Gentili yGentili, 1988; Barriga et al., 1993;Artigas, 1994);

• Nothofagus alpina (Poepp. et Endl.)Oerst. (Raulí);

• Nothofagus pumilio (Poepp. et Endl.)Krasser (Lenga);

• Nothofagus antartica (G. Forster)Oerst. (Ñirre) (Cameron y Peña, 1982;Barriga et al., 1993; Billings et al.,1993; Artigas, 1994).



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proceso de infestación alojándose enotras especies tanto nativas comoexóticas.

DañoUn síntoma que se puede observar a

distancia es la aparición de ramas dediferentes dimensiones que comienzan asecarse por completo las que de cercapresentan orificios por los cuales esexpulsado un aserrín fino, las que tambiénse observan a nivel del fuste; sin embargo,cuando preparan la cámara pupal taponanel agujero de emergencia con viruta largay angosta.

La larva provoca galerías ovaladas quealcanzan un máximo cercano a 8 por 12mm, en la sección transversal y un largode 1 a 2 m; las galerías tienen, además,orificios laterales por los cuales la larvaexpulsa aserrín y desechos. Antes depupar, la larva corta la rama en la queterminará su desarrollo, para luegoemerger como adulto (Cameron y Peña,1982; Giganti y Dapoto, 1990).

Las galerías se ubican principalmentea lo largo de ramas a través del eje medularde éstas, encontrándose también en elfuste cuando las ramas atacadas sondelgadas y cortas (Figura 88).

El ataque se presenta en árboles vivosy sanos (Monrós, 1943), no existiendoinformación en la literatura sobre edad odiámetro mínimo en los cualescomenzaría la infestación. Sin embargo,es posible encontrar árboles jóvenes deno más de tres metros de altura atacados.Cameron y Peña (1982) mencionan habercomprobado el daño en un raulí vivo de23,5 cm de diámetro, 22 m de altura y de

Figura 88.Daño ocasionado por Calliphyris semicaligatus(A. Baldini).

40 años de edad.

Callisphyris semicaligatus ha sidoregistrado como el taladrador más dañinoen ejemplares vivos y sanos de N.dombeyi, ya que puede mutilar ramas yllegar a matar al árbol (Monrós, 1943;Cameron y Peña, 1982; Giganti y Dapoto,1990). Las galerías realizadas en el fusteinutilizan la madera para fines industriales,especialmente chapas, al mismo tiempoque facilitarían la entrada de hongos depudrición de la madera al interior del árbol.





Sinonimia:No tiene.

Nombre común:• Taladro de las ramas del

Coihue,

• Taladro del Pino.


(Mirb.) Oerst. (Coihue) y

• Pinus radiata D. Don(Pino insigne).

Figura 89.Adulto de Colobura alboplagiata(A. Alvarado).

Distribución:Se distribuye entre la Región de Maule y la Región de Los Lagos.

(Blanchard, 1851) (Coleoptera: Cerambycidae)Colobura alboplagiata





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DescripciónLarva:

La larva es del tipo cerambiciforme ypueden llegar a medir 25 mm de largo.

Adulto:Cuerpo alargado, mide entre 12 a 23

mm de largo, de color gris-castaño clarocon visos verdosos. Cabeza castaña,levemente deprimida entre las antenas,convexa en el vértice, con dos pequeñaslíneas longitudinales negro aterciopeladas.Antenas ampliamente separadas ydelgadas, en las hembras alcanzan elápice de los élitros, en los machos sonmás largos, de color castaño pardusco.Prótorax de igual ancho que la cabeza,aproximadamente dos tercios del anchode los élitros en la base, con dostubérculos en el dorso y uno pequeño encada costado. Los élitros son de color grisoscuro, ligeramente verdosos y másclaros hacia el ápice, en el tercio posteriorhay una mancha grande triangular queocupa el ancho del élitro, de color blancoamarillo, en el ápice hay otra manchasimilar, ambas separadas por una bandamarrón. Las patas son castaño claras conbandas levemente más oscuras, losfémures son engrosados, casi tres vecesmás gruesos que las tibias (Artigas, 1994;Lanfranco et al., 2002) (Figura 89).

Aspectos biológicosSu ciclo de vida es desconocido, sin

embargo se han recolectado adultos enmayo y septiembre en la zona de Valdivia(Artigas, 1994).

DañoEs un barrenador de corteza, su larva

ocasiona galerias cilíndricas en ramas ytroncos delgados (Artigas, 1994).


de manejo integrado



Sinonimia:• Orsodacna grandis Phil. y• Phil..

Nombre común:• Crisomélido del Roble.


(Mirb.) Oerst. (Roble),


• Nothofagus dombeyi(Mirb.) Oerst. (Coihue)(Artigas, 1994).

Figura 90.Adulto de Hornius grandis(S. Hillerbrandt).

Distribución:Se encuentra en Chile desde la Región del Bío-Bío a la Región de Los Lagos(Artigas, 1994).

(Philippi y Philippi, 1864) (Coleoptera: Chrysomelidae)Hornius grandis





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DescripciónHuevo:

Forma ovalada; corión liso y brillante,semitransparente y de color amarillento,con una longitud promedio de 1,54 mm(Jerez y Ibarra, 1992)

Larva:Cuerpo alargado, glabro, color verde

intenso; cabeza y pigópodo muyesclerosados. Cabeza amarilla, con 4ocelos laterales y un ocelo subgenal,todos de color castaño oscuro. Placatorácica esclerosada; patas cortas,amarillentas, tarsúngulo terminado engancho. Abdomen con espiráculos de unsolo orificio con el peritrema amarillo.

El último segmento abdominaltransformado en un pigópodo adhesivo,que presenta en la región dorsal una placafuertemente esclerosada provista decerdas largas (Artigas, 1994).

Pupa:Con una longitud promedio de 7,92

mm. Cabeza fuertemente doblada haciaabajo y no visible desde la región dorsal.Epicranio con 3 pares de setas rígidas y1 seta supraocular; frente con 2 pares desetas pequeñas laterales. Labro ovalado.Mandíbulas bien esclerotizadas con undiente aguzado. Ojos reniformes. Palposmaxilares y labiales visibles. Pronotosubromboidal; 3 pares de setas pequeñasanteriores y marginales, 1 par de setaslaterales, 3 pares de setasposteroapicales y 3 pares de setasposteromarginales.

Espiráculo protorácico uníforo,contiguo a la unión de la pteroteca con elpronoto. Escutelo de forma triangular, con5 pares de setas. Pterotecas alcanzan el

7º segmento abdominal. Podotecas novisibles en vista dorsal. Metanotosubcircular con 5 pares de setas (Artigas,1994).

Las patas llevan tarsos con uñassimples, quitinizadas; articulaciónfemorotibial, con 4 pares de setas rígidas.Abdomen, con 9 segmentos visibles envista dorsal y región notal de lossegmentos con setas pequeñas pocoevidentes. Espiráculos uníforos, del colorgeneral del cuerpo. Los segmentos envista dorsal se van angostando hacia laparte posterior. Segmento VII más anchoy largo que el VIII; el segmento IX terminaen un par de proyecciones espiniformes(Jerez y Ibarra, 1992)

Adulto:La hembra mide entre 8 a 9 mm de

largo, color castaño claro uniforme.Cabeza alargada, frente no separada delclípeo; ojos reniformes; antenas filiformes,el primer segmento grueso y ovalado, elsegundo pequeño y globoso; superficiedel tegumento de la cabeza opaca, conpuncturaciones grandes y dispersas;sutura epicraniana notoria.

Pronoto más ancho que largo,subcilíndrico y de márgenes carinados;ángulos posteriores provistos de unpequeño tubérculo con un pelo fino ylargo; superficie lisa y bril lante;puncturaciones pequeñas y dispersas;pilosidad corta. Élitros más anchos queel pronoto, superficie reticulada y opaca,con puncturación densa y profunda (Jerezy Cerda, 1988; Artigas, 1994).

Machos miden entre 7 a 8 mm delargo; cabeza lisa y bril lante, conpuncturaciones muy dispersas; lasantenas más largas y escapo antenal más



globoso, gruesas y pilosas. Pronotosubcuadrado, casi tan ancho como largo;puncturaciones de los élitros grandes ydispersas (Monrós, 1952; Artigas, 1994)(Figura 90).

Aspectos biológicosEl ciclo de vida de los adultos se

encuentra en otoño e invierno y las larvasen primavera, eclosando a inicios deseptiembre para la Región de Los Lagos,coincidiendo con el brote de las yemasfoliares. Esta especie es monovoltina(Jerez y Cerda, 1988; Artigas, 1994).

La hembra deposita los huevos,adheridos a la base de las yemas foliares,en grupos de 7 a 9, recubiertos conexcrementos, el conjunto semeja unaescama castaño oscura, que permaneceadherida a la ramilla (Artigas, 1994).

El desarrollo pasa por 3 estadios,similares en forma, que difieren, ademásdel tamaño, por el distinto grado deesclerosamiento de la cápsula cefálica,la placa torácica y el pigópodo. Las larvasrecién nacidas se introducen de inmediatoen la base de la yema, alimentándose delas hojas en formación (Artigas, 1994).

Las larvas se alimentan del follaje hastafines de octubre; después de alcanzar eltercer estadio se entierran en el suelohasta cerca de 15 cm (Artigas, 1994).

DañoLos síntomas y/o signos del daño son

anillamiento de ramas y ramillas en lazona inferior de las yemas. Además, sepresenta una especie de escama color

café oscuro, difícil de notar a simple vista,adherida a la base de las yemas foliares.Estos daños se producen principalmenteen árboles de orillas de camino y enplantas de vivero de 1 y 2 años (Baldini etal., 1994).

Los adultos consumen corteza deramas y ramillas, anillándolas en la zonainferior a los brotes y yemas. Las larvasse encuentran al interior de las yemasfoliares, las que son consumidas, con sushojas en formación, por éstas. (Jerez yCerda, 1988; Jerez y Ibarra, 1992; Artigas,1994; Baldini et al., 1994; Uribe, 1996).

Debido a que las larvas se alimentande las yemas y los adultos de la cortezade ramas y ramillas, su accionar estaríapresente en cualquier edad del árbol.

El daño ocasiona defoliaciónprematura por muerte de yemas y ramillas(Baldini et al., 1994), lo que provocaríaperdidas de crecimiento en los árbolesafectados.


de manejo integrado



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Sinonimia:No tiene


Hospederos:

• Nothofagus obliqua(Mirb.) Oerst. (Roble).

Figura 91.Adulto de Rhopalomyia nothofagi(M. Palavicino).

Distribución:Se desconoce, pero se estima que debería corresponder a la misma de suhospedero.

(Gagné, 1973) (Diptera: Cecidomyiidae)Rhopalomyia nothofagi



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DescripciónHuevo:

Son pequeños, de aproximadamente0,5 mm de largo por 0,16 mm de ancho yde color rojo brillante (Madrid, 1974).

Larva:Son de cuerpo vermiforme,

segmentado y aguzado en su extremoanterior; neonatas son de vida libre yposeen en la parte posterior abundantesespinas, en ese momento su longitudfluctúa entre 0,6 a 0,7 mm y al término desu desarrollo alcanza entre 3,5 a 3,7 mm(Madrid, 1974).

Pupa:Es exarata, de color negro en la región

cefálica y roja en el abdomen; mide 3,6mm de largo por 1,8 mm en su parte másancha (Madrid, 1974).

Adulto:El tamaño de los machos y de las

hembras no sobrepasa los 4,5 mm delongitud por 1,6 mm en su parte másancha (mesotórax) (Madrid, 1974) (Figura91).

Aspectos biológicosEl ciclo de vida es anual y se inicia

con la postura de los huevos a mediadosde julio, los que incuban durante 20 a 25días, para que luego, durante la primera ysegunda semana de agosto se produzcala emergencia de las larvas, las quecompletarán su desarrollo a mediados demayo del año siguiente.

La fase de pupa ocurre desde mayohasta fines de julio.

Los adultos emergen entre la segunda

quincena de julio y la primera semana deagosto, aunque es posible encontrarloshasta la tercera semana. Viven de 4 a 6horas, durante las cuales no se alimentan(Madrid, 1974).

Una gran cantidad de la poblaciónemerge simultáneamente cuando eltiempo es cálido, formando una especiede “nube” en torno a las ramillas de losárboles, especialmente en las terminales.Cuando baja la temperatura o llueve, seinterrumpe la emergencia de adultos hastaque nuevamente las condiciones sonfavorables. La cópula es breve y se efectúaen las ramillas (Madrid, 1974).

Las hembras oviponen en los brotesde las ramillas del año. Cada postura varíade 1 a 50 huevos, los que son adheridosa la periferia de los brotes o de lasramillas. Luego de un período deincubación de 20 a 25 días, emergen laslarvas, las que invaden activamente losbrotes por entre las brácteas cuandoestas se abren, ubicándoseposteriormente en las yemasembrionales, tanto en las apicales comoen las laterales, desde donde inducen laformación de cecidias histoides.

En las yemas embrionales de losbrotes atacados, que han sido invadidospor las larvas, el brote tiene un desarrollonormal y en ellas se originan ramillas que,a su vez, poseen brotes queposteriormente constituyen lugares deinfestación para las larvas de la siguientegeneración.

La pupa se ubica en el interior de lacámara larval, con su extremo cefálicohacia el ápice, cubierta por las hojas dela zoocecidia. Previo a la emergencia deladulto, la pupa se desplaza hacia arriba



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por movimientos abdominales, hasta quela mitad del cuerpo queda expuesta.Luego de un período aproximado de 4horas, se inicia la ruptura del pupario enel vértex y queda posteriormente retenidopor las hojas.

DañoEl signo característico del ataque y

daño es la formación de zoocecidias enlas yemas germinales, las cualespresentan el aspecto de roseta. Además,en el lugar donde se forman laszoocecidias, se aprecia un acortamientode las ramillas, ocasionado por elcrecimiento anormal de las estructuras delvástago y florales, así como la ausenciade órganos florales (Madrid, 1974).

Induce la formación de zoocecidias enlas yemas germinales, las cualespresentan el aspecto de roseta. Laszoocecidias se originan a partir de losbrotes atacados por larvas de R.nothofagi, las cuales penetranactivamente en estos, ubicándose en lasyemas embrionales. Como consecuenciadel ataque, se induce la formación dececidias histoides las que se caracterizanpor ser abiertas (y circundantes), másanchas en la base, con aspecto de rosetay de color verde en la temporada deprimavera y verano. En otoño e inviernolas zoocecidias pierden las hojas,adquieren coloración castaña oscura ytoman forma cónica más compacta. Enesta época es fácil identificar laszoocecidias, por el tamaño exagerado quepresentan (4,2 mm de largo por 6,8 mmde grosor basal) en relación con los brotesnormales (1,5 mm). En su fase incipiente

muestran crecimiento foliar anormal, queconsiste en una distribución helicoidal delas hojas en torno a la zoocecidia, la cualadquiere aspecto de roseta.

En el análisis interno de la zoocecidiase observa la formación de 1 a 12 cámaraslarvales (con mayor frecuencia entre 1 a5) (Madrid, 1974).

De preferencia las zoocecidias seencuentran en las ramillas terminales(Madrid, 1974).

Todas las etapas de desarrollo delhospedero son susceptibles al ataque ydaño por R. nothofagi (Madrid, 1974).

La fase larval se encuentra presentedesde la primera y segunda semana deagosto, hasta mediados de mayo del añosiguiente, en que completan su desarrollo(Madrid, 1974).

Altera las estructuras vegetativas yreproductivas del árbol, constituyendodesmedro para su crecimiento yregeneración. En el lugar donde se formanlas zoocecidias, se aprecia unacortamiento de las ramillas, ocasionadopor el crecimiento anormal de lasestructuras del vástago y florales, asícomo la ausencia de órganos florales yen consecuencia disminución en laproducción de semillas (Madrid, 1974).


de manejo integrado



enfermedadesArmillaria sp.Ceratocystis sp.Cyttaria sp.Mikronegeria albaMikronegeria fagi


A G E N T E S D E D A Ñ O B I O T I C O SE n f e r m e d a d e s

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DescripciónHongo ampliamente

distribuido en el mundoque provoca pudriciones anivel de las raíces pudiendoafectar el sistema vasculary la madera de las raíces.Las especies parásitas deArmillaria poseen una fase

Figura 92.Cuerpos frutiferos de Armillaria sp.(A. Baldini).


Nombre común:• Pudrición de la raiz.



(Mirb.) Oerst. (Coihue),• Eucryphia cordifolia Cav.

(Ulmo),• Laurelia philippiana

Looser (Tepa) y• Weinmannia

trichosperma Cav.(Tineo).

(Agaricales: Marasmiaceae)Armillaria sp.

saprofítica sobre ramas yotros restos vegetales quese inicia con la formaciónde esporas producidas enlas setas (basidios). Desdeestos restos colonizados,el hongo producerizomorfos que seexpanden por el suelo,

Distribución:No se tienenantecedentes de ladistribución del agente enChile.



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A G E N T E S D E D A Ñ O B I O T I C O SE n f e r m e d a d e s 11111

último caso, el primer síntoma observadoes de clorosis y marchitamiento, luego ladecoloración se acentúa para terminar conla muerte dos o tres semanas después(González y Opazo, 2002).

Figura 93.Hifas de Armillaria sp.(A. Baldini).


de manejo integrado

donde pueden alcanzar raíces sanas deplantas a las que penetran directamentey colonizan. El hongo avanza hacia elcuello de la planta, ocasionando sumuerte al impedir el ascenso del agua porel sistema vascular. La fase parasítica sedesarrolla cuando los árboles seencuentran debilitados por factoresambientales adversos. En ese contextoArmillaria podría contribuir a la dinámicade los bosques eliminando a losindividuos más débiles, siendo, por logeneral, considerado como un agente dedaño secundario (Butin y Peredo, 1986;González y Opazo, 2002; FAO, 2006).

DañoUna vez producida la infección se

observa la fructificación del hongo en formade setas y la presencia de micelio enforma de abanico bajo la corteza y sobrela madera (Figura 92). El hongo es decolor amarillento café y crece en grupos.Una vez que los basidiocarpos seencuentran maduros, la zona adyacentea estos se encuentra cubierta por unamasa de esporas de color blanco,semejando estar enharinada (González yOpazo, 2002; FAO, 2006) (Figura 93).

Los rizomorfos son de color negrolustroso, de 1 a 2 mm de grosor, por logeneral no ramificados y de varios metrosde longitud, encontrándose en el suelo oentre la corteza y la madera del árbolinfectado. Antes de su aparición, seobserva entre la corteza y la madera unmicelio laminar blanco (Butin y Peredo,1986).

Los ataques pueden ocurrir de dosformas: crónicos y agudos. Para este



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DescripciónLos hongos del género Ceratocystis

son ascomicetes que producen elmanchado de la madera del hospedante,reconociéndose por lo general dos tiposde ataque: uno superficial o moho-manchay el manchado azul. Estos hongos puedencolonizar la madera después de cortadoel árbol o también atacar individuos en pie(Butin y Peredo, 1986; González y Opazo,2002).

Sinonimia:• Ophiostoma.

Nombre común:• Hongo del manchado

azul,

• Mancha azul.

Hospederos:En Chile, la mancha azul ha sidodescrita en• Araucaria araucana (Mol.) Koch

(Araucaria),

• Aextoxicon punctatum Ruiz y Pav.(Olivilllo),

• Laurelia philippiana Looser (Tepa),

• Laurelia sempervirens (Ruiz y Pav.)

Distribución:El manchado en Araucaria se presenta en toda la distribución de la especie.Para el caso de las otras especies nativas afectadas, no existen datos sobre ladistribución real de la mancha azul.

(Microascales: Ceratocystidaceae)Ceratocystis sp.

Tul. (Laurel),

• Fitzroya cupressoides (Mol.) Johnst.(Alerce),

• Nothofagus dombeyi (Mirb.) Oerst.(Coihue) y

• Nothofagus pumilio (Poepp. et Endl.)Krasser (Lenga).



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En Chile, el manchado de la Araucariaaraucana es causado por Ceratocystisaraucariae y Ceratocystis moniliforme.Además, se han descrito Ceratocystispiceae sobre Fitzroya cupressoides yCeratocystis nothofagi y Ophiosthomavaldiviana sobre Nothofagus dombeyi(González y Opazo, 2002).

Los principales problemas surgidos acausa de esta enfermedad se producenen la comercialización de la madera, ymuchos países importadores de estamateria prima, exigen un tratamientocontra la mancha azul (Butin y Peredo,1986).

DañoEn Araucaria araucana se distinguen

hifas de color café que habitan en lamadera, causando con el paso del tiempouna coloración azul-grisácea a gris oscurao negra en troncos almacenados, secadoslentamente, lo que ocasiona unadepreciación de la madera. El hongopuede también desarrollarse sobre tablasrecién aserradas. No se conocen cambiosen las propiedades de la madera a causadel ataque de este hongo, por lo que lamancha azul sólo produce un cambioestético en esta (Butin y Peredo, 1986).

Ceratocystis piceae causa, de acuerdoa la madera atacada, una coloración azulpálida a gris-negruzco que puede penetrarprofundamente. No se ha demostrado unainfluencia notoria sobre las característicasfísico-mecánicas de la madera (Butin yPeredo, 1986).


de manejo integrado



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Distribución:En términos generales, la distribución de Cyttaria sigue la distribución naturalde sus hospedantes.


Nombre común:• Dihueñe,

• Pinatra

• Curacucha.

(Cyttariales: Cyttariaceae)Cyttaria sp.



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Figura 94.Cyttaria sobre fuste de Nothofagus(J. Aguayo).



Hospederos:Todas los Nothofagus nativos sonhospedantes de una o más especies deCyttaria:

• Sobre Nothofagus antartica (G.Forster) Oerst. (Ñirre) se ha descritoCyttaria darwini Berk, C. harioti Fish yC. hookeri Berk;

• Sobre Nothofagus alpina (Poepp. etEndl.) Oerst. (Raulí) se ha reportadoC. espinosae Lloyd y C. berteroiBerk.;

• Sobre Nothofagus betuloides (Mirb.)Oerst. (Coihue de Magallanes) se haobservado C. darwini Berk, C. hariotiFish, C. hookeri Berk, C. skottbergiiPalm y C. johowii Esp.;

• Sobre Nothofagus dombeyi (Mirb.)Oerst. (Coihue) han sido descritasC. harioti Fish, C. hookeri Berk yC. johowii Esp.;

• Sobre Nothofagus glauca (Phil.)Krasser. (Hualo) se ha reportado C.berteroi Berk y C. espinosae Lloyd;

• Sobre Nothofagus nitida (Phil.)Krasser. (Coihue de Chiloé) se hareportado C. hariotii Fish;

• Sobre Nothofagus obliqua (Mirb.)Oerst (Roble), C. berteroi Berk,C. espinosae Lloyd, C. hookeri Berk,C. reichei Henn;

• Sobre Nothofagus macrocarpa (A.DC.) Vazq. et Rodr. (Roble deSantiago), C. berteroi Berk y C.espinosae Lloyd y

• Sobre Nothofagus pumilio (Poepp. etEndl.) Krasser (Lenga), C. darwiniBerk y C. intermedia Palm.

• No se tienen reportes de Cyttaria sp.sobre Nothofagus alessandri Esp.(Ruil) y Nothofagus leoni Esp.(Huala).

DescripciónLos hongos ascomicetos del género

Cyttaria producen agallas o tumores(hipertrofias) en ramas de fagáceas nativasy ocasionalmente en tallos de individuosjóvenes (Figura 94). Poco se sabe de laepidemiología de estas especies, pero seconoce que el micelio es perenne, y queel hongo, probablemente por auxinas,induce la formación de tumores enramillas, ramas o fustes jóvenes, sobrelos cuales fructifica el patógeno. Elprincipal daño puede producirse por laquebradura de ramas o fustes por efectodel viento en zonas con malformaciones.No obstante, las pérdidas económicasson de poca importancia. Varias especiesde Cyttaria son util izadas en lagastronomía local, siendo colectadas yvendidas, constituyendo una fuente deingreso para pequeños propietariosforestales de las regiones del sur del país(González y Opazo, 2002).

DañoLas especies de Cyttaria son parásitos

obligados y aparecen sobre los tumoreso agallas que se forman principalmentesobre ramas (Figura 95). Se desarrollandesde fines del invierno hasta fines deprimavera o comienzos del verano, según



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Figura 95.Rama de Nothofagus antarctica afectada conCyttaria sp.(A. Alvarado).

la especie y su distribución,correspondiendo a un estroma carnosocon numerosos apotecios que se exponenen la madurez por rotura del peridio. Lasascosporas son liberadas por cambios enla humedad relativa y diseminadas por elviento. El síntoma principal es la presenciade los ascomata, que en zonas fríaspueden persistir durante todo el año(González y Opazo, 2002).


de manejo integrado




Nombre común:• Roya blanca,• La roya blanca del Roble.


(Mirb.) Oerst (Roble),


• Nothofagus glauca (Phil.)Krasser. (Hualo) y

• Austrocedrus chilensis(D. Don) Pic.Serm. etBiz. (Ciprés de laCordillera).

Distribución:Se encuentra naturalmente desde Ñuble a Cautín, pudiendo observarse fuera deesta distribución en parques urbanos, como por ejemplo en la Región de losLagos.

(Oehrens y Peterson, 1978) (Uredinales: Mikronegeriaceae)Mikronegeria alba



DescripciónMikronegeria alba es un parásito

obligado de tipo foliar, que puede provocardefoliaciones prematuras en Nothofagusobliqua y Nothofagus alpina, y algunareducción del área foliar en los hospederosperennifolios, pudiendo causar la muertede ciertos individuos. Su ciclo de vidaincluye cinco estados diferentes (royamacrocíclica), cada uno con producciónde estructuras de propagación distintas.Corresponde a una roya heteroica, dadoque a lo largo de su ciclo alternan ocambian necesariamente de hospedante(Butin y Peredo, 1986; González y Opazo,2002).

En su estado celular haploide, sedesarrolla sobre Austrocedrus chilensisbajo el nombre de Caeoma espinosae,pudiendo reconocerse dos tipos deesporas. En primer lugar se forman lospicnidios, etapa en la cual el hospedero



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no presenta síntomas visibles de laenfermedad. Posteriormente se forman losecidios, receptáculo presente sólo en lasroyas que dan a lugar a las ecidiosporas,las que poseen un llamativo color blanco.Las ecidiosporas darán a origen a unmicelio dicarionte (Butin y Peredo, 1986).

En el estado celular haploide, la royablanca del roble se desarrolla sobreespecies del género Nothofagus. En estaetapa se pueden reconocer losuredosoros, estructuras de color blancoy de forma postular que se forman en elenvés de las hojas. Estos contienen grancantidad de uredosporas, las que puedeninfectar otras hojas en el mismohospedante. En otoño se formanteleutosporas ovoides, que luego setransforman en basidios tetracelulares. Enel extremo de cada esterigma se formanlas basidiosporas. El ciclo vital del hongotermina una vez que las basidiosporasinfectan nuevamente a Austrocedruschilensis (Butin y Peredo, 1986).

DañoEn Austrocedrus chilensis la

sintomatología difiere según lalocalización del ataque. Si el ataque seinicia en una escama foliar, el síntomacaracterístico es el aparecimiento deecidios blancos. Luego las escamastoman un color café-amarillento, parafinalmente secarse completamente. Parael caso del ataque a un brote, se originauna escoba de bruja que puede alcanzarunos 25 cm de diámetro que permitereconocer la presencia del hongo desdedistancia (Butin y Peredo, 1986).

Sobre Nothofagus obliqua oNothofagus alpina, las royas se reconocenfácilmente por la presencia de uredosorosy teleutosoros en el envés de las hojas ymanchas necróticas color marrón en elhaz. En el caso de Mikronegeria alba, losuredosoros son de color blanco (Gonzálezy Opazo, 2002).


de manejo integrado




Nombre común:• Roya anaranjada,• La roya anaranjada del

Roble.


(Mirb.) Oerst (Roble),


• Araucaria araucana (Mol.)Koch. (Araucaria).

Distribución:La distribución de la roya anaranjada del roble se restringe a áreas dondeconviven especies de Nothofagus y Araucaria, como la Cordillera de Nahuelbuta,volcanes Lonquimay y Llaima y lagunas Galletúe y Quillehue. No obstante,debido a la introducción artificial de la Araucaria al valle longitudinal, la roya seencuentra distribuida desde Talca a Llanquihue.

(Dietel y Neger, 1899)Mikronegeria fagi



Figura 97.Decoloración amarillo pálida de hojas deAraucaria araucana(A. Baldini).



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DescripciónMikronegeria fagi es una roya o

polvillo, asociada a asociaciones de lasespecies forestales Araucaria-Nothofagus. Es un parásito obligado detipo foliar que puede causar defoliacionese incluso la muerte de los individuosatacados. Posee un ciclo de vida concinco diferentes estados, cada uno conestructuras de reproducción diferentes.Además, es un hongo de tipo heteroico,es decir que a lo largo de su ciclo de vidaalterna o cambia necesariamente dehospedante (Butin y Peredo, 1986;González y Opazo, 2002).

La roya anaranjada del roble producelos cinco estados de los uredinales. Enotoño, sobre Nothofagus obliqua oNothofagus alpina comienza el ciclo através de la producción de basidiosporasque sólo infectan a Araucaria. Luego deun período asintomático deaproximadamente tres meses, sobre lashojas de Araucaria se generan picnidios,las cuales en primavera produciránpequeñas picniosporas, las queposteriormente formarán un miceliodicarionte. Una vez producida ladicariotización, siempre sobre las hojasde Araucaria, al inicio de la primavera delsegundo año se forma una estructuraalargada denominada ecidio que almadurar se parten dejando en exposiciónuna masa de ecidiosporas anaranjada.Estas son transportadas por el vientopudiendo infectar sólo las hojas de robleo raulí. Esta infección resulta en laformación uredosoros como pústulas decolor anaranjado en el envés de las hojas,que exponen las uredosporas. A iniciosdel otoño comienzan a formarse losteleutosoros en el envés de las hojas,

produciendo las teleutosporas, quegerminan produciendo basidias ybasidiosporas. El ciclo de completa conla infección a Araucaria (Butin y Peredo,1986; González y Opazo, 2002).

DañoLos picnidios se encuentran tanto en

el haz como en el envés de las acículasde Araucaria, reconociéndose por lapresencia de pequeñas manchas verde-amarillentas de pocos milímetros detamaño, las que contrastan claramentecon el verde oscuro de los tejidos sanos(Figura 96). Posteriormente, en los sitiosde infección se observan hipertrofias. Lospicnidios maduros se abren, pudiendo serreconocidos como pequeños puntos rojossobre la superficie de la acícula. Estosúltimos liberarán a pequeñas estructurascon forma de gota y de color amarillo-orodenominadas picniosporas (Butin yPeredo, 1986).

Figura 96.Hojas de Araucaria araucana afectadas porMikronegeria fagi(A. Baldini).



Cuando el hongo se encuentra enestado ecidial, los primeros síntomas semanifiestan como una decoloraciónamarillo pálida bajo la epidermis de laacícula de la conífera, indicando el iniciode la formación de los ecidios (Figura 97).Estos, al madurar, producen unrompimiento de la epidermis por unahendidura longitudinal de hasta 1 mm deancho, liberándose una masa de esporasen forma de polvillo de color amarillo-dorado (Butin y Peredo, 1986).

El estado urédico de M. fagi esexclusivo para el género Nothofagus. Enestos hospedantes se reconoce laformación de pústulas de color naranja enel envés de las hojas, que representan alos esporocarpos.

Manchas de color café-amarillento sobreel haz de las hojas permiten reconocer elataque. Al madurar los uredosoros, laepidermis de desgarra quedando estosexpuestos. Las uredosporas se originanaisladas sobre largos pedicelos, siendoesféricas a ampliamente elípticas,verrucosas y de un color amarillo-naranjacuando están recién formadas. Las esporasviejas son hialinas (Butin y Peredo, 1986).

Los teleutosoros son esporocarpos quese encuentran en el envés de las hojas.Son de un color rojo a naranjo oscuro,pulvinulados y de una consistenciacerosa. Se forman de igual manera quelos uredosoros bajo la epidermis. Lasteleutosporas son lisas, unicelulares,elípticas a ovoides o claviformes, y conun contenido oleaginoso de coloranaranjado-rojizo (Butin y Peredo, 1986).


de manejo integrado


A G E N T E S D E D A Ñ O B I O T I C O SA n i m a l e s

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hacer portadilla

animalesCastor canadensisCervus elaphusLama guanicoeSus scrofaLagomorfos


A G E N T E S D E D A Ñ O B I O T I C O SA n i m a l e s 11111


Nombre común:• Castor,

• Castor americano.

(Kuhl, 1820) (Rodentia: Castoridae)Castor canadensis

Distribución:El castor se encuentra en la Región de Magallanes y La Antártica Chilena. Lasmayores poblaciones se encuentran en las islas de Tierra del Fuego y Navarino.También se ha detectado su presencia en la zona continental de esta Región,en la Reserva Nacional de Laguna Parrillar (Ramirez, 2006).Al no tener un control natural en Tierra del Fuego, se estima que su poblacióncrece a una tasa de 40% anual, alcanzando un número que fluctúa entre los200.000 y los 250.000 ejemplares (Ramirez, 2006).



Figura 98.Dientes de Castor canadensis(A. Baldini).



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DescripciónRoedor originario de Norteamérica. El

ejemplar adulto mide entre 90 a 117 cmincluyendo la cola y pesa entre 13 y 45kg, dependiendo del sexo. Su cuerpo esde color marrón.

Es un organismo adaptado a la vidasemiacuática. Para esto posee ojospequeños capaces de ver bien tanto dentrocomo fuera del agua, orejas y ventanasnasales pequeñas que se cierran al estarsumergido, una cola multifuncional enforma de paleta que le permite maniobraren el agua y servir de sostén cuando talaárboles. Esta también es un reservorio degrasas que utiliza en épocas de frío comoregulador de su temperatura corporal.Posee fuertes dientes incisivos de coloramarillento que crecen durante toda lavida, los que son afilados por el animalmientras roe y mastica los árboles (Figura98). Estos le permiten cortar árbolesmaduros para su alimentación yconstrucción de diques para refugio. Supelaje es de color marrón, y consta dedos tipos de pelos: una cubierta de peloslargos y duros, y por debajo de ellos pelosmás cortos y sedosos, denominadosfelpa, que cumplen el rol de proteger alanimal frente a condicionesmetereológicas adversas (Iriarte, 2002;Ramirez, 2006; Salas y Valenzuela,2006).

Especies afectadas:En Chile,• Nothofagus pumilio (Poepp.

et Endl.) Krasser (Lenga) sería laespecie arbórea preferida por elcastor, siendo también atacadas

• Nothofagus betuloides (Mirb.) Oerst.(Coihue de Magallanes) y

• Nothofagus antartica (G. Forster)Oerst. (Ñirre).

En la zona norte de Tierra del Fuego, seha observado que el castor tambiénutiliza especies herbáceas como• Taraxacum officinale Weber ex Wigg.

(Diente de león),

• Sphagnum sp. (Musgos de turbera),

• Acaena magellanica (Lam.) Vahl(Cadillo),

• Festuca sp. (Festuca),

• Stipa sp. (Coirón), Carex sp.(Cortadera), y especies arbustivascomo

• Chiliotrichium diffusum (Romerillo),

• Empetrum rubrum Vahl ex Willd.(Murtilla),

• Verbena tridens Lag. (Mata negra),

• Holcus lanatus L. (Heno blanco),

• Brassica rapa L. (Nabo),

• Bromus sp. (Bromo),

• Carex sp. (Carex),

• Berberis sp. (Calafate) y

• Ribes magellanicum Poir (Zarzaparrilla).



La roya anaranjada del roble producelos cinco estados de los uredinales. Enotoño, sobre Nothofagus obliqua oNothofagus alpina comienza el ciclo através de la producción de basidiosporasque sólo infectan a Araucaria. Luego deun período asintomático deaproximadamente tres meses, sobre lashojas de Araucaria se generan picnidios,las cuales en primavera produciránpequeñas picniosporas, las queposteriormente formarán un miceliodicarionte. Una vez producida ladicariotización, siempre sobre las hojasde Araucaria, al inicio de la primavera delsegundo año se forma una estructuraalargada denominada ecidio que almadurar se parten dejando en exposiciónuna masa de ecidiosporas anaranjada.Estas son transportadas por el vientopudiendo infectar sólo las hojas de robleo raulí.

Esta infección resulta en la formaciónuredosoros como pústulas de coloranaranjado en el envés de las hojas, queexponen las uredosporas. A inicios delotoño comienzan a formarse losteleutosoros en el envés de las hojas,produciendo las teleutosporas, quegerminan produciendo basidias ybasidiosporas. El ciclo de completa conla infección a Araucaria (Butin y Peredo,1986; González y Opazo, 2002).

Aspectos biológicosEl castor habita en casi cualquier lugar

alrededor de fuentes de agua como ríos,lagos, áreas inundadas, pantanos,acequias y canales, no pudiendo vivir enaguas contaminadas o estancadas depoca profundidad y tampoco en zonas

donde el flujo de la corriente sea muyrápido. Pueden, sin embargo, habitarzonas donde la cantidad de alimento seabaja, reduciendo notablemente la tasa denacimientos (Ramirez, 2006; Salas yValenzuela, 2006).

Los castores se establecen en un áreaformando colonias que en promedio tienenun número de cuatro miembros. Estosposeen un comportamiento territorial,marcando el área ocupada con ramas ytroncos que a su vez son cubiertos conuna sustancia de color amarillo-anarajanda secretada por sus glándulas.Además suelen atacar a otros individuosque invadan este territorio (Iriarte, 2002;Ramirez, 2006; Salas y Valenzuela,2006).

DañoLa construcción de diques conlleva a

una importante modificación del territorioque los castores ocupan, debido a lainundación de muchas hectáreas debosque y la desviación de ríos y arroyos(Figura 99). Esto produce serios cambiosen la forma, estructura, composición ysanidad de estos bosques, implicandouna pérdida del patrimonio en términosambientales, económicos y sociales.Además se aprecian algunos efectossecundarios de su actividad tales comolos cambios de temperatura del agua,nutrientes y flujos, los que afectanprincipalmente a especies nativas depeces (Iriarte, 2002; Ramirez, 2006; Salasy Valenzuela, 2006).

En Magallanes, el castor ha provocadoun constante cambio en el cauce de lascuencas hidrográficas, produciendo un



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Figura 99.Bosque de Nothofagus pumilio afectados por laconstrucción de diques(A. Baldini).

Figura 100.Castorera de Castor canadensis(A. Baldini).

Figura 101.Bosques de Nothofagus pumilio afectados porinundaciones ocasionadas por Castorcanadensis (A. Baldini).

grave daño en la vegetación arbustiva deestepa, en la ecología de los tiposforestales presentes en la Región, en lacalidad del agua y en las propiedades delsuelo. En zonas de pendientes fuertes yquebradas, los daños son aún másgraves, dado que cuando lastemperaturas aumentan, se producendeshielos que provocan el colapso decatoreras y diques (Figura 100),generándose inundaciones,deslizamientos masivos de suelo,sedimentación y obstrucción de cauces(Ramirez, 2006) (Figura 101).




Nombre común:• Ciervo rojo,• Ciervo colorado,• Ciervo común,

Especiesafectadas:• Nothofagus spp,

• Pinus radiata D. Don(Pino Insigne) y

• Pseudotsuga menziesii(Mirb.) Franco (PinoOregón).

Figura 102.Adulto de Cervus elaphus

Distribución:Se encuentra entre la Región de La Araucania a la Región de Aysén del GeneralCarlos Ibañez del Campo. También se localiza hoy en día en Tierra del Fuego,Región de Magallanes y La Antártica Chilena, donde fue introducido paracrianza en el marco de un proyecto del centro INIA Kampenaike, desarrolladoentre los años 1999 a 2002, con financiamiento del Fondo de Innovación AgrariaFIA (CONAMA, 2005).

(Linnaeus, 1758) (Artiodactyla: Cervidae)Cervus elaphus





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DescripciónEsta especie de venado posee

extremidades largas y esbeltas. Tienenastas grandes cubiertas de piel suavedurante el verano, que finalmente sedescubren y pierden cada año. Carecendel primer dedo, el tercero y cuarto estánbien desarrollados y el segundo y quintoson pequeños. Las hembras poseen dospares de mamas. Poseen un estómagotetracavitario rumiante y glándulas en laparte frontal de los ojos (Álvarez-Romeroy Medellín, 2005).

Caracterizados por un patrón decoloración no manchado en los adultos,melena de cabellos más largos en cuelloy garganta y cola pequeña. El patrón decoloración más común es café en laspartes superiores y claro ventralmente,con un manchón amarillento claro en lasancas (Nowak, 1991). De acuerdo conKingdon (1997), las manchas claraspueden observarse en el pelaje de verano,en comparación con el de invierno queademás es café oscuro y más grueso ylargo (Figura 102).

El ciervo común es un ciervo de grantamaño (sólo superado por el alce dentrodel conjunto de los cérvidos vivos), conun tamaño ordinario de 160 a 250 cm delongitud y de 75 a 150 cm de altura y unpeso de 100 a 150 kilos las hembras y150 a 225 kilos los machos (Hall, 1981;Nowak, 1991; Kingdon, 1997).

Aspectos biológicosHabita varios tipos de hábitat, como

especie nativa y como especieintroducida, desde bosques densos deconíferas, hasta pastizales y chaparrales,

permaneciendo la mayor parte del día enáreas arboladas. Son animalesmigratorios y altamente gregarios, formangrupos en función de su edad y sexo. Lashembras viven en manadas de decenasde ejemplares con sus retoños másjóvenes, mientras que los machos semueven de forma solitaria o en gruposmucho más reducidos, de menos de 5individuos. El apareamiento se realizaprincipalmente a principios del otoño,dando a luz usualmente 1 cría, despuésde un período de gestación de 235 días.La lactancia dura de 4 a 7 meses y lashembras alcanzan la madurez sexualaproximadamente a los 2 años y 4 meses.La longevidad promedio en vida libre esde 15 años (Álvarez-Romero y Medellín,2005), aunque la esperanza de vida mediapara los machos de esta especie, comoconsecuencia de sus hábitos durante laépoca de reproducción en la cual muchasveces no se alimentan, es de apenas 5 ó6 años.

Su dieta es variada, aunque sealimentan principalmente de pastos,ramas y hojas, y con más peso de lashojas sobre las hierbas. Es activogeneralmente temprano por las mañanasy avanzada la tarde. Esta especiepermanece la mayor parte del día dentrodel bosque, saliendo a zonas abiertas sólopor las noches.

DañoDe manera general, la introducción de

fauna exótica puede traer comoconsecuencia la modificación de loshábitats en que se encuentre, ya queestos evolucionaron sin su presencia(Mellink, 1991). Al igual que otras



especies de venado, esta especie podríatener efectos negativos sobre los árbolesen zonas boscosas, su composición yregeneración (Jaksic, 1998; Staines yWelch, 1989) dado que su dieta esvariable y puede incluir pastos y brotesde ramas y hojas y varía estacionalmente,siendo predominantemente de los brotesde pasto en la primavera, plantas leñosasy hierbas en verano y ramoneo dearbustos y coníferas en el invierno (Nowak,1991). De acuerdo con Kingdon (1997)esta especie se alimenta de brotes,ramas y corteza de árboles y arbustos,aunque también puede comer algunospastos, hierbas, hongos y cultivoshumanos.

Baldini y Pancel (2002) señalan quela presencia de esta especie ha afectadonegativamente al bosque nativo,principalmente a las especies del géneroNothofagus, con mayor notoriedad en lasislas o penínsulas de lagos. Ha causadomucho daño al bosque nativo, porqueconsume la vegetación y no la dejaregenerarse (CASEB, 2006).

Además se considera que laspoblaciones de ciervo rojo podrían llegara desplazar a algunas de las especies devenados nativos, como el Pudu pudu(Pudú) y el Hippocamelus bisulcus(Huemul), por competencia (Mellink,1991). En Alaska esta especie manifiestasobrelapamiento en su dieta con unaespecie de venado nativa (O.h. sitkensis),lo que corrobora el potencial competidorde la misma (Kirchhoff, 1998). Al mismotiempo representa una amenaza para laspoblaciones de los mismos y de otrasespecies de mamíferos nativos por serportador y transmisor de enfermedades yparásitos. Recientemente se describe un

caso de ataxia enzoótica en ciervos rojosen cautiverio ocurrido en Argentina (Solery Cseh, 2007)

Indirectamente, la presencia de estaespecie podría ejercer un impactonegativo sobre su depredador potencial(pumas), ya que puede promovercampañas para el control de éstos.


de manejo integrado. Sólo se conoce queel único depredador natural que podríantener en el país, de acuerdo a lo expuestopor Álvarez-Romero y Medellín (2005), esel puma.

Por otra parte el principal control de laespecie está dado por la caza. En laactualidad la casi totalidad de los cotosde caza inscritos en el SAG se concentraen las Regiones de la Araucanía, de LosLagos y de Aysén del General CarlosIbañez del Campo, de los que, la inmensamayoría funcionan para la caza de ciervosintroducidos (ciervo rojo y ciervo dama)(SAG, 2007).



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Nombre común:• Guanaco,• Chamaca,• Amara.

Especiesafectadas:• Nothofagus pumilio

(Poepp. et Endl.)Krasser (Lenga).

Distribución:Actualmente las mayores poblaciones se encuentra en las Regiones deTarapacá, Arica y Parinacota, Aysén del General Carlos Ibañez del Campo yMagallanes y La Antártica Chilena. Mientras que las menores poblaciones seencuentran en las Regiones de Antofagasta, Atacama, Coquimbo, Valparaíso yLa Araucania (Cunazza, 1992).

(Müller, 1776) (Artiodactyla: Camelidae)Lama guanicoe elaphus



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Figura xxx.xxx(xxxx)



DescripciónEs un herbívoro rumiante nativo, mide

entre 120 a 185 cm, el peso promedio deladulto es de 119,7 kg; no existiendodiferencias significativas entre los sexos.El pelaje es lanoso, espeso y no muylargo, de color predominantemente café,con excepción del pecho y vientre que sonblancos y con un pelo más largo y grueso.La cabeza es pequeña; tienen orejaslargas, estrechas, puntiagudas y móviles;hocico fino; ojos grandes y pestañaslargas (Iriarte, 2002).

El perímetro toráxico de 56,9 cm paraambos sexos, mientras que la longitudpromedio de la pata trasera es de 51,2cm para los machos y 50 cm para lashembras. Por último, la alzada de la cruzes de 110 cm. El peso y tamaño de losguanacos de la zona norte y central delpaís son menores, aunque no hayestudios disponibles al respecto.

Aspectos biológicosDe acuerdo con una serie de autores

(Raedeke, 1979; Wilson y Franklin, 1985),la unidad social básica del Guanaco esel grupo familiar. Se encuentran además,grupos de machos y machos solitarios. Aveces es posible observar grupos dehembras, principalmente juveniles, en laspoblaciones sedentarias y gruposmezclados en poblaciones migratorias ydurante el invierno.

El grupo familiar es dirigido por unmacho adulto y está constituido porhembras y sus crías menores de 15meses de edad. Su tamaño es variable yestá influenciado fuertemente por el

período de pariciones, por la expulsión delas crías de aproximadamente 1 año deedad y por la salida temporal de algunashembras adultas y sus crías, al comienzode otoño y su regreso en la primavera.Los grupos sedentarios de Tierra delFuego, tienen un tamaño promedio de 7ejemplares, variando estacionalmente dela siguiente forma: 2,9 en invierno, 9,5 enotoño, 9,2 en primavera y 12,8 en verano(Wilson y Franklin, 1985).

Entran en celo a fines de la primavera;su gestación dura 11 meses y el peso dela cría al nacer es de 8 a 15 Kg. Lalactancia se extiende unos 3 meses. Lahembra alcanza la madurez sexual a los2 años y el macho a los 3 años.

Posee una alimentación variada,debido al amplio rango de distribucióngeográfica. Incluye una gran cantidad deespecies vegetales desde plantasherbáceas a hojas y ramas de árboles,pasando por arbustos, helechos, hongos,líquenes e incluso cactáceas. En Tierradel Fuego, Raedeke (1979) estudió elcomportamiento alimentario de la especiellegando a determinar que el alimentoprincipal del Guanaco durante todo el añolo constituyen los pastos de la pampa, lamayoría de ellos del tipo coirón (Festucagracillima y Festuca magellanica) (Iriarte,2002).

DañoLos efectos más significativos que

produce el ramoneo de los Guanacossobre la regeneración son, por un lado ladisminución del crecimiento anual de lasplantas, y por otro, la deformación queexperimentan al reiniciar el proceso de



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Figura 103.Bosques de Nothofagus pumilio afectados porramoneo de Lama guanicoe(A. Baldini).

desarrollo (Figura 103). Esta disminucióndel crecimiento de las plantas semanifiesta a través de la pérdida física decrecimiento debido a que el guanaco secomo parte de éste.

Esta pérdida de crecimiento setraduce en una menor altura en relacióncon plantas que crecen en condicionesnormales. El g uanaco poda los sectoresde regeneración en forma recurrente,manteniéndolos a alturas constantes(Iriarte, 2002) (Figura 104).

Manejo IntegradoSus principales predadores son el

hombre y el puma. Además se haninstalado cercos de más de 2 m de alturae intentado disminuir la población de laespecie a tráves de la caza.

Figura 104.Manada de Lama guanicoe dañando bosques deNothofagus pumilio(A. Baldini).




Nombre común:• Jabalí,• Jabalí europeo.

Especiesafectadas:• Bosques húmedos del

sur de Chile.

Figura 105. Adulto de Sus scrofa.

Distribución:Se encuentra principalmente asociado a sectores precordilleranos de la Regiónde La Araucania y la Región de Los Lagos (SAG, 2007), además registraantecedentes de existencia en la zona continental de la Región de Magallanes yLa Antártica Chilena (CASEB, 2006), así como en un número más reducido enlas Regiones del Bío-Bío y Aysén del General Carlos Ibañez del Campo.También se le encuentra hoy en día en Tierra del Fuego, Región de Magallanesy La Antártica Chilena, donde fue introducido para crianza en el marco de unproyecto del centro INIA Kampenaike, desarrollado entre los años 1999 a 2002,con financiamiento del Fondo de Innovación Agraria FIA (CONAMA, 2005).

(Linnaeus, 1758) (Artiodactyla: Suidae)Sus scrofa





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DescripciónPertenece a la misma especie que el

cerdo doméstico, al cual dio origen. Eljabalí es un mamífero de tamaño medianoprovisto de una cabeza grande y alargada,en la que destacan unos ojos muypequeños. El cuello es grueso y las patasson muy cortas, lo que acentúa aún mássu rechoncho cuerpo, en el que es mayorla altura de los cuartos delanteros que lostraseros. La longitud del cuerpo varía entrelos 110 a 156 cm, alzada a la cruz de 65cm, su cola es delgada de 15 a 20 cm,con un peso 50 a 190 kg para los machosy de 35 a 160 kg para las hembras.

Sus pelos son gruesos y negrosmidiendo entre 10 y 13 cm en la cruz yunos 16 cm en la punta de la cola. El colorde la capa o pelo es muy variable y vadesde colores grisáceos a negro oscuro,pasando por colores rojizos y marrones.Las patas y el contorno del hocico sonmás negras que el resto del cuerpo. Lacrin que recorre el lomo a partir de la frente,se eriza en caso de cólera. El cambio depelo tiene lugar hacia mayo o junio,aunque la hembra con crías (jabatos)muda más tarde. En verano las cerdasson más cortas (Figura 105).

Aspectos biológicosEl hábitat preferido del jabalí son las

regiones húmedas cubiertas de matorralesy de bosques, esta es la razón por la cualencontró en los bosques húmedos del surde Chile un hábitat ideal, propiciando suasilvestramiento.

Presenta un celo de cuatro a seissemanas y las hembras tienen un partoal año. La preñez dura hasta 115 días y la

camada suele ser de entre cuatro y docecrías. A los 20 meses ya ha alcanzadosu madurez reproductora, y solo a loscinco años completa su desarrollo total.Puede alcanzar a vivir entre 15 y 20 años.

El jabalí compensa su mala vista conun importante desarrollo del olfato, que lepermite detectar alimento, como trufas ovegetales y animales bajo tierra, o inclusoenemigos a más de 100 metros dedistancia. El oído está también muydesarrollado y puede captar sonidosimperceptibles para el ser humano.

Viven en asociaciones familiares,aunque el macho adulto es solitario,mientras la hembra se agrupa en piarascompuestas por crías hembras y machosjóvenes. Evitan terreno abierto y sincobertura y las grandes altitudes en lamontaña

Es una especie que gusta del agua ycharcas, incluso nada bastante bien.

Este mamífero es omnívoro y en laespesura busca hongos silvestres,tubérculos, larvas, insectos, gusanos ylombrices. Come cualquier fruto, legumbree inclusive carroña y pequeños mamíferos.Puede llegar a incluir en su dieta hasta aotros ejemplares de su misma especie,que están moribundos o muertos. Cuandoel alimento escasea es capaz de realizargrandes migraciones, lo que debe sertomado en cuenta para entender supotencial expansión en un territorio.

DañoEn los países americanos, como

Argentina y México, esta especie fue



introducida de forma incontrolada para lapráctica de la caza mayor al estiloeuropeo.

Desgraciadamente esto causó unenorme impacto en los ecosistemasautóctonos, acabando con especies nopreparadas para competir con el jabalí yprovocándose una superpoblación alcarecer de depredadores naturales. Enalgunos lugares se mezcló con cerdosdomésticos asilvestrados creando unjabalí carnívoro más violento.

Causa mucho daño al bosque nativo,porque consume la vegetación y no la dejaregenerarse, ya que erosiona el suelo porsu hábito de comer raíces (CASEB, 2006).

Su presencia se detecta por el efectoque producen en el suelo al escarbar yhozar en busca de raíces, frutos,lombrices, hongos, costumbre queocasiona daño a la flora silvestre (Iriarte,2002).

Manejo IntegradoNo presenta depredadores naturales,

por lo que sólo la caza aparece como unmecanismo de control. Esta se realizacon perros para el seguimiento ylocalización, y debe usarse armamentode gran calibre para darle muerte. Enalgunos cotos de caza se utilizan tambiénflechas. Está considerado un animaldañino y por lo tanto se puede cazardurante todo el año sin restricción encuanto al número de ejemplares porsalida.



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LagomorfosCorresponden a los mamíferos que

tienen en la mandíbula superior un par dedientes incisivos grandes y detrás de ellosotro par pequeño. En la mandíbula inferiortienen sólo un par de incisivos (Campos,1996).

De a cuerdo con el Artículo 6° delReglamento de la Ley de Caza, seconsiderarán como especies de faunasilvestre perjudiciales o dañinas, al conejoy la liebre, las cuales podrán ser cazadaso capturadas en cualquier época del año,en todo el territorio nacional y sinlimitación de número de piezas oejemplares, según corresponda (SAG,2007).



Sinonimia:• Lepus capense,• Lepus europaeus.

Nombre común:• Liebre,• Liebre europea.

Especiesafectadas:• Nothofagus spp, Pinus

spp y Eucalyptus spp.

SIN FOTO

Distribución:En Chile habita desde la Región de Arica y Parinacota hasta el Estrecho deMagallanes, pudiendo alcanzar hasta los 3.500 msnm (SAG, 2007).

1758 (Lagomorpha: Leporidae)Lepus capensis Linnaeus





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DescripciónIntroducida en el sur de Argentina en

1880, desde donde inicia su expansión,registrándose (o introduciéndose) en UltimaEsperanza (Chile) entre 1886 y 1907. En lazona central de Chile la liebre habría sidointroducida desde Argentina en la décadade 1920. De aspecto similar al conejo,aunque de mayor tamaño, con orejas yextremidades posteriores más largas. Bajala cola cuando corre, por lo que no se ve lacaracterística cola blanca del conejo.Además, no vive en cuevas como su parientey las crías al nacer ya están cubiertas depelos (SAG, 2007). Es un animal de tamañomediano, de 70 a 75 cm de longitud. Orejaslargas, cola corta, pies traseros grandes yhabilidad para saltar. Su color es amarillentoy tiene una mancha rojiza en el cuello(Campos, 1996).

Aspectos biológicosSu hábitat lo constituyen llanuras

fértiles y algo boscosas. Además, en todotipo de sembrados del ser humano. Evitalos campos abiertos. En el invierno cavamadrigueras superficiales. Es vegetariana.Duerme de día, pero despierta al mínimoruido, se queda quieto y luego corre a granvelocidad. La liebre es solitaria y sólo enépocas de reproducción se junta con dos,tres y hasta cinco ejemplares.

DañoPara el caso del bosque nativo, Iriarte

(2002) indica que en el Parque NacionalTorres del Paine (Región de Magallanesy La Antártica Chilena) las áreas conmayor presencia de liebres muestran unaescasa o nula actividad regenerativa de

las especies nativas, siendo más drásticoeste efecto en zonas afectadas porincendios.

En el caso de las plantaciones deexóticas, las liebres roen la corteza delas plantas recién establecidas (Pinus oEucalyptus) o bien cortar el tallo a unaaltura cercana a los 50 cm para plantasde mayor edad (Rodríguez, 1991).

Su presencia se detecta enplantaciones recién establecidas por lamuerte o debilitamiento de las plantasproducto del corte de tallos a una alturade aproximadamente 50 cm o por lacorteza roída de las plantas máspequeñas. El corte generado es en formade bisel (Rodríguez, 1991).

Manejo IntegradoEn forma natural, la liebre constituye una

importante fuente de alimento para algunospredadores de mediano y gran tamaño comoaves rapaces, diurnas y nocturnas, yalgunos mamíferos carnívoros (Iriarte et al.,1991; Jaksic, 1997).

En el caso de plantaciones, Rodríguez(1991) señala que el control conrepelentes es exitoso, pero por cortotiempo, ya que deben repetirse lasaplicaciones después de las lluvias. Losanticoagulantes de segunda generación,como Brodifacoum o Bromadiolone,aparecen como las alternativas máseficaces para el control dirigido. Enparticular el uso de minibloques deBrodifacoum más la incorporación de unaditivo astringente como Bitrex (queprovoca el rechazo de otras especies demamíferos) aparece como una alternativaeficiente y más segura.



Sinonimia:• Lepus capense,• Lepus europaeus.

Nombre común:• Conejo,• Conejo silvestre,• Conejo español.

Especiesafectadas:• Nothofagus spp, Pinus

spp y• Eucalyptus spp.

Distribución:Se encuentra entre la Región de Atacama y la Región de Los Lagos, así comotambién en Magallanes y en el Archipiélago de Juan Fernández (SAG, 2007).

(Linnaeus, 1758) (Lagomorpha: Leporidae)Oryctolagus cuniculus



Figura 106.Daño ocasionado por conejo(A. Baldini).



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DescripciónHabría sido introducido por primera vez

en Chile en 1884 en la Región delLibertador General Bernardo O’Higginsdonde habría iniciado una lentaexpansión, siendo ya considerado ungrave problema para la agricultura en1940. También fue introducido en 1936 enTierra del Fuego (con animales traídosdesde las Islas Malvinas) con elbeneplácito de autoridades y ganaderos(interés comercial por carne). Los conejosaumentaron de forma tan desmesuradaque ya a los cuatro años (1940) se lescomenzó a atribuir pérdidas por daño apraderas y sistemas ganaderos. En 1980habrían sido introducidos al sectorcontinental (cerca de Puerto Natales). Deallí se ha expandido y ya en 1989 se leatribuyeron daños cuantiosos (SAG,2007).

Son más pequeños que las liebres, conorejas y patas posteriores más cortas.Color generalmente plomizo o gris. Colaoscura por arriba y blanca por abajo(Campos, 1996).

Los conejos se distinguen de lasliebres en que son altriciales, siendociegos y sin pelo en el momento de nacer,muchos de ellos viven en cuevassubterráneas. Los conejos viven entre 4 y10 años.

Aspectos biológicosSon excelentes cavadores de cuevas,

de hasta 60 cm de profundidad en declivey 12 m de largo en terrenos blandos. Enesos túneles tiene cámaras para suscrías. Es muy sociable y puede vivir engrandes colonias de muchas parejas. En

el día duerme en su madriguera y alponerse el sol sale cautelosamente. Esmuy prolífero: la hembra puede teneralrededor de 40 crías al año. Los conejosson vegetarianos y cuando la comidaescasea emigran de noche a otro lugar.

Su hábitat son suelos arenosos yblandos; también cerca de bosques,donde puede encontrar vegetación tiernapara alimentarse.

DañoPara la flora nativa el principal daño

está en que restringe su establecimientoy permanencia (CASEB, 2006). En elarchipiélago de Juan Fernández es unproblema de enorme gravedad, afectandoa numerosas especies de plantas nativasseriamente amenazadas (SAG, 2007).

En el caso del matorral esclerófilo dela zona central se ha podido constatar que,cuando las hierbas escasean odesaparecen, los conejos ramoneanarbustos y consumen sus plántulas(Simonetti y Fuentes, 1983) siendo suefecto más intenso, rápido y extendidoespacialmente que el de losmicromamíferos nativos que viven en estemismo hábitat (Jaksic, 1997).

En el caso de las plantaciones deexóticas, los conejos pueden cortar elápice de las plantas recién establecidas(Pinus o Eucalyptus) o bien cortar el tallocerca de la base, pudiendo afectar en elcaso más extremo registrado del ordendel 70% de una plantación, retrasandocon ello en un año la producción si sehace necesario el replante.Adicionalmente, en épocas de sequía son



capaces de descortezar individuos demás de tres años de plantación(Rodríguez, 1991).

De todas las especies de mamíferosy aves introducidos, el conejo español hademostrado con creces ser la especiealóctona más perjudicial hasta el día dehoy, en términos de pérdidas económicasy alteraciones al ecosistema natural(Cattan y Valderas, 1987).

Su presencia se detecta enplantaciones recién establecidas por lamuerte o debilitamiento de las plantasproducto del corte de tallos a la altura delos ápices (25 a 30 cm) o por la cortezaroída de las plantas más pequeñas. Elcorte generado es en forma de bisel(Rodríguez, 1991) (Figura 106).

Manejo IntegradoEl gaseado, uso de barreras, cacería,

uso de trampas y caza, por el hombre odepredadores naturales (zorro gris, zorroculpeo), han sido usados para el controlde poblaciones de conejos, aun así laforma más efectiva ha sido la muerte pormixomatosis y calicivirus. La mixomatosises una enfermedad viral, la que luego deuna larga agonía provoca la muerte deestos animales. En la actualidad, a travésde este último medio, se mantienencontroladas las poblaciones de conejosen toda la Región, ya que actúa a ciertosniveles de aumento de población de losmismos (CONAMA, 2005).

En el caso de plantaciones, Rodríguez(1991) señala que el control conrepelentes es exitoso pero por cortotiempo ya que deben repetirse lasaplicaciones después de las lluvias. Los

anticoagulantes de segunda generación,como Brodifacoum o Bromadiolone,aparecen como las alternativas máseficaces para el control dirigido. Enparticular el uso de minibloques deBrodifacoum más la incorporación de unaditivo astringente como Bitrex (queprovoca el rechazo de otras especies demamíferos) aparece como una alternativaeficiente y más segura.


A G E N T E S D E D A Ñ O A B I O T I C O S

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22222 E r u p c i ó n v o l c á n i c a

hacer portadilla

Agentes de daño AbioticosErupción volcánicaGranizoInundaciónNieveRadiaciónViento


A G E N T E S D E D A Ñ O A B I O T I C O S 22222

Erupción volcánica

En Chile un país volcánico los eventosde erupción volcánica son recurrente yparte de la dinámica vegetacional demúltiples bosques, algunas especiesposeen adaptaciones como es el caso deAraucaria araucana (Molina) Koch quepresenta una corteza gruesa.

Un evento de erupción volcánica poseeuna gama de daños sobre la vegetación,sin embargo este dependerá de lamagnitud, la cercanía y las característicasde la erupción (Donoso, 2008).

Si el evento no posee característicascatastróficas este puede generar sóloheridas por el material piroplástico emitidopor el volcán, estos daños pueden estarpresentes en todas las parte físicasexpuestas de los individuos arbóreos.

El desprendimiento de cenizasvolcánicas afecta directamente lacapacidad fotosintética del follaje.

De manera directa los daños puedenser vías de ingresos de plagas yenfermedades. Y de manera indirectaestos daños afectan la vitalidad los

individuos creando las condiciones depropicias para el ataque de plagas yenfermedades.

Las medidas para evitar daños debenser preventivas, evitando seleccionar laszonas de influencia directa de un volcán.

E r u p c i ó n v o l c á n i c a

Figura xxx.Daño por erupción volcánica.



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El granizo puede provocar daño a laspartes epígeas tiernas de los árboles(Donoso, 2008). Estos dañan el follaje endiferentes medidas dependiendo de laintensidad de la precipitación y el tamañodel granizo. En ejemplares pequeños losdaños pueden ser más graves y consisteen defoliación, rotura de ramas pequeñas,y lesiones en ramas y troncos. En árbolesadultos, el daño va estar presente en laspartes más expuestas al golpeteo de laspartículas de granizo. Lo primero en serafectado es el follaje y dependiendo de lacantidad de hojas y la resistencia deestas, los siguientes órganos en serafectados van a ser las ramillas, las ramasy el fuste. Ahora si el evento ocurre congran intensidad y las partículas de granizocon un tamaño adecuado esta puedegenerar heridas profundas afectando lacorteza, el cambium y en algunos casosel xilema.

La evidencia más clara del efecto delgranizo se puede ver en las hojas, ya queesta poseerán orificios y otras por el efectodel impacto estarán en el suelo.

En el árbol, el mayor daño se produceen los tejidos juveniles en formadescendente, siendo afectadobásicamente el follaje, pero se puedeapreciar lesiones circulares en la corteza,producto del impacto de los granizos(FAO, 2006).

El daño ocasiona pérdidas decrecimiento producto de la defoliación yquebradura de ápices. Las lesiones se

ubican en la parte superior de las ramas,y en los fustes en el lado orientado haciael viento (FAO, 2006) (Figura 107).

Las medidas para evitar daños debenser eminentemente preventivasseleccionando áreas con baja o nulaprobabilidad de ocurrencia. Ahora si en lazona ocurren eventos de granizadas y seproducen daños en la copa, creandodeformaciones, estas se pueden corregircon podas.

De manera directa las lesiones puedenser vías de ingresos de plagas yenfermedades. Y de manera indirectaestos daños afectan la vitalidad losindividuos creando las condiciones deataque para las plagas y enfermedades.

Granizo

Figura 107.Daño por granizo.

Te la mando que la tenga

G r a n i z o



Inundación

Figura 108.Daño por inundación.

Una buena planta debe tener un buensistema radical para posibilitar una buenacapacidad exploratoria y de sostén (FAO,2006), es en este aspecto donde másafecta una inundación.

Los daños a nivel de la vegetación quepuede causar una inundación van adepender también de otros factoresabióticos que acompañan a este tipo deeventos. Este tipo de daño afecta a losórganos expuestos, que en general sonde la parte baja de los individuos, estosvan desde daño de las raicillas hastadesarraigamiento y posterior muerte de losindividuos. El daño se puede verincrementado debido a la edad ydesarrollo del o los individuosprincipalmente si el sistema radicular seencuentra asentado de manera no acordea la presión que pueden y van a ejercerlas inundaciones y los otros factoresabióticos que a esta acompañan.

En Chile las principales causas de unainundación suelen ser las producidas porlluvias intensas, daño de Castor y lascrecidas fluviales, que dependiendo de laregión se producen bajo diversos factoresmeteorológicos (Figuras 108).

Las herramientas para controlar estetipo de daño son del tipo preventivas ypaliativas. Las medidas preventivas pasanpor la selección de sitios con una bajaprobabilidad de inundación y la selecciónde especies con un buen sistema radical,especies con raíces profundas y en buenacondición. Cuando ya se posee un bosque

que puede ser afectado por inundacionesla realización de obras civiles decontención de cursos de aguas y lautilización de especies bajas para darmayor estabilidad al suelo.

El impacto económico va a estarestrechamente ligado a tiempo que el suelo se encuentre inundado y a los otrosfactores metereológicos quefrecuentemente acompañan a lasinundaciones, vientos y escorrentías, perotambién el impacto depende de la edad,estado fenológico y cobertura del sitio. Siel suelo esta sólo un corto tiempoinundado se puede dañar levemente lasraíces lo que por consecuencia se puedetener perdida de crecimiento. Si en el casoque el suelo este mayor tiempo inundadoy esto agregado los factores de viento yescorrentía de las aguas las pérdidaspueden ser de sitios completos.

I n u n d a c i ó n



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La nieve puede producir daños a losárboles debido al peso, que producequebraduras y desgajes de ramas. Losárboles jóvenes del tipo latizal puedeninclinarse por el peso de la nieve, hastael punto de quebrarse o de sufrirdeformación. Sin embargo, los árbolesque crecen naturalmente en la cordilleraestán adaptados a este tipo deprecipitación, de modo que los daños enellos son menores, salvo casosespeciales, como fuertes nevazonesseguidas por tormentas de viento(Donoso, 2008).

Los daños más serios se experimentanen nevazones esporádicas y densas, quecaen en áreas donde la nieve es pocofrecuente y donde los árboles que crecenen ellas no están adaptados a la nieve.

En lugares propicios para laacumulación de nieve, esta persiste en elsuelo durante gran parte de la estaciónde crecimiento, como es el caso de zonasprotegidas por el sol y del viento en laspartes altas de las montañas y en latitudesaltas, no permitiendo el desarrollo deciertas especies.

La nieve sirve como aislante,protegiendo los órganos de muchasplantas de los fríos excesivos de lasalturas y altas latitudes.

También la nieve puede producirdeformaciones en los árboles jóvenes, osimplemente denudar los terrenos cuandose acumula en fuertes pendientes quefacilitan su desplazamiento cuesta abajo.

En general el efecto de la nieve sobrelos árboles se traduce en un daño sobrelos brotes y guías terminales de lasramas, produciendo la consiguientedeformación de los árboles.

Algunos de los daños ocasionados porla nieve son el desganche, quebradura deramas, árboles inclinados, perdiendotemporalmente la simetría de crecimientoy en algunos casos la quebradura delfuste (Figuras 109 y 110).

Dentro de las medidas preventivas yde control se puede mencionar laselección de especies y/o procedenciasresistentes.

Nieve

Figura 109.Daño por nieve(A. Baldini).

Figura 110.Daño por nieve(A. Baldini).

N i e v e



Radiación

El bosque puede absorber desde un60% a un 90% de la energía solar querecibe, lo que depende de su densidad,del tipo y desarrollo de su follaje, de suexposición y latitud geográfica. En rodalesabiertos el porcentaje de radiaciónabsorbido puede ser un 60% en tanto queen bosques densos puede llegar al 90%(Donoso, 2008).

La radiación absorbida por el bosquees convertida en calor, el que a su vez esdistribuido una fracción es rerradiadacomo onda larga desde el dosel de losárboles, perdida de calor que esespecialmente grande en nochesdespejadas de verano, una fracción de laradiación es destinada a calentar el airepróximo, un tercera parte es gastada através de la evapotranspiración, finalmenteun acierta cantidad de energía puede seralmacenada calentando al suelo a losárboles y plantas en general yempleándose en la fotosíntesis (Donoso,2008).

La radiación es un factor abiótico quevaría en la naturaleza de varias maneras.Casi todas las variaciones sonpotencialmente importantes para lasplantas. Esta afecta los procesosfisiológicos pudiendo llegar a alteracionesa nivel del gran proceso de las plantas, lafotosíntesis.

Existen múltiples procesosfisiológicos que se pueden verseafectados por la radiación como lagerminación de semillas, brotes en

plantas de especies caducifoliasadelantado o retrasado, alargamientos detallo, la dominancia apical, la latencia, lareproducción y el almacenamiento en losórganos puede generan plantas demejores características o como tambiénuna alteración total del individuo y delecosistema (Donoso, 2008).

R a d i a c i ó n



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Los vientos intensos pueden llegar aprovocar corte de ramas, así comotambién derribar árboles completos. Estoúltimo se produce principalmente por unadeficiente formación de raíces, árbolesdelgados o con mucha copa (Donoso,2008).

Los signos más comunes de daño porviento son: rajadura de la lámina foliar,desganche y quebradura de ramas,inclinación del árbol, quebradura del fuste,desarraigamiento y efecto windrock; esdecir daño producido a nivel de cuello porroce del balanceo de la planta (FAO, 2006)(Figura 111).

Otros efectos que no son visibles asimple vista son las modificacionesmorfológicas y fisiológicas en los árboles,las cuales afectan las propiedades de lamadera, que pueden llegar a alterar su usomaderable así como pulpable.

El daño se produce principalmente enel follaje, ramas, fuste o cuello de la planta,lo que ocasiona importantes pérdidas decrecimiento (Figura 112).

El desarraigamiento produce un efectoirrecuperable, ya que afecta fuertementeel sistema radicular. Además en viverospuede provocar un severo desecamientode plántulas.

El mayor daño se produce en la épocade invierno, además se suma la acciónde la lluvia y la saturación del suelo,favoreciendo a la inestabilidad de laplantación.

Figura 111.Bosques de Nothofagus pumilio afectados pordaño de viento.

Figura 112.Bosques de Nothofagus pumilio afectados pordaño de viento.

Viento

Especial cuidado se debe tener alrealizar raleos sanitarios, donde enmuchas oportunidades se formaraberturas en el bosque, que aceleran lavelocidad del viento provocando el quiebrede copas o caída de árboles (FAO, 2006).

El viento puede provocar alteracionesmorfologicas y fisiologicas en los árbolesafectados, como tambien mod ificacionesanatómicas en la madera.

V i e n t o


AGUAYO, J. 2004. Bases para el estudio de Subanguinachilensis sp.n (Tylenchida: Anguinidae), Nematodopatógeno de Nothofagus obliqua: Antecedentespreliminares. Proyecto de Título Ingeniería Forestal.Facultad de Agronomía e Ingeniería Forestal, PontificiaUniversidad Católica de Chile. Santiago, Chile. 83 pp.

ALVARADO, A. 2006. Determinación del estado sanitariode los bosques de Ñirre (Nothofagus antarctica (G. Forster)Oersted) en la XI Región. Proyecto de Título IngenieríaForestal. Facultad de Agronomía e Ingeniería Forestal,Pontificia Universidad Católica de Chile. Santiago, Chile.137 pp.

ÁLVAREZ-ROMERO, J. Y MEDELLÍN, R. 2005. Cervuselaphus. Vertebrados superiores exóticos en México:Diversidad, distribución y efectos potenciales. Institutode Ecología, Universidad Nacional Autónoma de México.Bases de datos SNIBCONABIO. Proyecto U020.México, D.F.

ALVERSON, D., BRAMAN, S., HALE, F., HUDRON,W., MIZELL, R., SPARKS, B. Y WILLIAMS, X. 1994.Update on management of the top seven landscape pestsin South Carolina, Georgia, Tennessee, Florida, andAlabama. Disponible en http://www.sna.org/research/94proceedings/94resprocsec0-4.pdf. Fecha de consulta20 de noviembre del 2007.

ANGULO, A. Y OLIVARES, T. 1991. Chilecomadiavaldiviana (Philippi) (Lepidoptera: Cossidae) asociadosa Ulmus glabra (Hand.) Rehder ("olmo pendula") en laVIII Región (Concepción, Chile). Bosque 12(1):67-68 pp.

ANGULO, A., LEMAIRE, C. Y OLIVARES, T. 2004.Catálogo crítico e ilustrado de las especies de la familiaSaturniidae en Chile (Lepidóptera: Saturniidae). Gayana68(1): 20-42 pp.

Bibliografía

ARTIGAS, J. 1972. Ritmos poblacionales en lepidopterosde interés agrícola para Chile. Boletín de la Sociedad deBiología de Concepción 45: 5-94 pp.

ARTIGAS, J. 1994. Entomología Económica: Insectosde interés agrícola, forestal, médico y veterinario (nativos,introducidos y susceptibles de ser introducidos). EdicionesUniversidad de Concepción. 2 volúmenes. 1-1126 pp.

ANTUAN, J. 1997. Diagnóstico de la situación actual deproblemas entomológicos asociados a Coihue,Nothofagus dombeyi (Mirb.) Oerst. una revisión deliteratura. Tesis. Ingeniería Forestal. Facultad deCiencias Forestales, Departamento de Silvicultura,Universidad de Concepción. Concepción, Chile.128 pp.

BALDINI, A. Y PANCEL, L. 2002. Agentes de Daño enel Bosque Nativo. Editorial Universitaria. Santiago, Chile.409 pp.

BALDINI, A., LE-QUESNE, C., PUENTES, O. YOJEDA, P. 1994. Daños bióticos en roble, raulí y coihue:Guía de reconocimiento. Corporación Nacional Forestal.58 pp.

BARRIGA, J. 1990. Parásitos y depredadores de larvasde Cerambycidae y Buprestidae (Coleoptera) de Chile.Revista Chilena Entomológica 18: 57-59 pp.

BARRIGA, J., CURKOVIC, T., FICHET, T.,HENRIQUEZ, J. Y MACAYA, J. 1993. Nuevosantecedentes de coleopteros xilófagos y plantashospederas en Chile, con una recopilación de citas previas.Revista Chilena Entomológica 20: 65-91 pp.

BARRIGA, J. Y PEÑA, L. 1994. Nuevas especies decerambycidae (Coleoptera) de Chile y algunas sinonimias.Gayana Zool. 58 (1): 91-98 pp.

BEÈCHE, M., PARRA, L. Y CERDA, L. 1987.


Descripción de estados preimaginales y desarrollobiológico de Omaguacua longibursae Parra y Béeche,1986 (Lepidoptera: Geometridae). Bol. Soc. Biol. deConcepción. 58: 19-29 pp.

BENÍTEZ-MORA, A. Y OLIVARES, T. 2006.Ultraestructura de los huevos de dos mariposas nocturnasde Chile: Ormiscodes socialis y Polythysana cinerascens(Lepidoptera: Saturniidae). Revista de Biología Tropical54 (4): 1085-1091 pp.

BILLING, R., CAMERON, S., EGLITIS, A.,BURDSALL, H., KLIEJUNAS, J. Y MELLINGER, M.1993. Pest risk assessment of the importation of Pinusradiata, Nothofagus dombeyi and Laurelia philippiana logsfrom Chile. Forest Service. Miscellaneous PublicationNº 1517. 249 pp.

BOSQ, J. 1951. Revisión del género Calydon Thoms.(Coleoptera: Cerambycidae). Anales de la SociedadCientífica Argentina 152: 50-63 pp.

BUTIN, H. Y PEREDO, H. 1986. Hongos parásitos enconíferas de América del Sur con especial referencia aChile. Bibliotheca mycologica, J. Cramer, Berlín.100 pp.

CAMERON, S. Y PEÑA, L. 1982. Cerambycidaeassociated with the host genus Nothofagus in Chile andArgentina. Turrialba 32(4): 481-487 pp.

CAMERON, S. Y REAL, P. 1974. Contribución a labiología del coleóptero de la luma, Cheloderus childreniGray (Coleoptera: Cerambycidae). Revista ChilenaEntomológica 8: 123-132 pp.

CAMPOS, H. 1996. Mamíferos Terrestres de Chile, guíade reconocimiento. Marisa Cuneo Ediciones, SegundaEdición. Colección Naturaleza de Chile, Volumen 5,Mamíferos terrestres de Chile. Valdivia, Chile. 222 pp.

Bibliografía

CASEB, 2006. Especies introducidas en Chile alteran labiodiversidad y los ecosistemas: Una cohabitaciónincómoda para la flora y fauna nativas. Centro de EstudiosAvanzados en Ecología y Biodiversidad,Pontificia Universidad Católica de Chile. Disponible en:www.bio.puc.cl/caseb. Fecha de consulta 15 de julio del2007. 5 pp.

CATTAN, P. Y VALDERAS, J. 1987. El conejo silvestre:¿Plaga en Chile?. Facultad de Ciencias Veterinarias yPecuarias, Universidad de Chile. Monografías deMedicina Veterinaria 9 (1): 11 pp.

CERDA, M. 1972. Revisión de la subfamilia Oxypeltinae(Coleoptera: Cerambycidae). Museo Nacional de HistoriaNatural. Publicación Ocacional Nº13: 2-9 pp.

CERDA, M. 1973. Nueva tribu de Cerambycidae(Coleoptera: Cerambycidae). Revista ChilenaEntomológica 7: 115-122 pp.

CERDA, L., PUENTES, O. Y DONOSO, M. 1981.Biología de la moscasierra (Hymenoptera: Tenthredinoidea)defoliador de Nothofagus alpina (Poepp. et Endl.) Oersty Nothofagus obliqua (Mirb.) Oerst. Prospección NacionalSanitaria Forestal. Conaf. UACH. Facultad de IngenieríaForestal, Universidad Austral de Chile. Valdivia, Chile.Serie técnica41: 60 pp.

CERDA, L., CRUZ, C. Y DONOSO, M. 1982. Ciclobiológico del microlepidóptero defoliador de semilla deRaulí (Nothofagus alpina (Poepp. et Endl) Oerst.)Prospección Nacional Sanitaria Forestal, CONAF-UACH. Facultad de Ingeniería Forestal, UniversidadAustral de Chile. Valdivia, Chile. Serie técnica60: 70 pp.

CERDA, M. 1986. Lista sistemática de los cerambícidoschilenos (Coleoptera: Cerambicidae). Revista ChilenaEntomológica 14: 29-39 pp.


CERDA, L. 1995. Estudio y seguimiento del taladradorde la madera Chilecomadia valdiviana (Lepidoptera:Cossidae) en plantaciones de Eucalyptus nitens en elpatrimonio de FORMIN S. A. Informe de avance detemporada 1994-1995. 15 pp

CERDA, L. 1996. Chilecomadia valdiviana (Philippi)(Lepidoptera: Cossidae). Insecto taladrador de la maderaasociado al cultivo del Eucalyptus spp. en Chile. Notatécnica. Prospección Nacional Sanitaria Forestal. Año 16Nº 32. 7 pp.

CERDA, L. 1998. Estudio biológico del taladrador de lamadera Chilecomadia valdiviana (Lepidoptera, Cossidae)en plantaciones de Eucalyptus spp. Informe Final PrimeraEtapa. Convenio CONAF/CPF/, Universidad deConcepción. Comité Nacional de Sanidad Forestal. 36pp.

CERDA, L Y ANGULO, A. 2002. Insectos asociados abosques del centro-sur de Chile. En: BALDINI, A. YPANCEL, L. (eds.). Agentes de daño en el bosque nativo.Editorial Universitaria. Santiago, Chile.

CLARKE, J. 1978. Neotropical Microlepidoptera, XXI:New genera and species of Oeocophoridae from Chile.Smithsonian Contributions to Zoology 273: 80 pp.

COGOLLOR, G. Y POBLETE, M. 1983. Estudio delciclo biológico y control de Ormiscodes spp. sobreplantaciones de Pinus radiata D. Don en la VIII Región.Informe Nº 1, Facultad de Ciencias Agronómicas yForestales, Universidad de Chile - Empresas Forestales.62 pp.

COGOLLOR, G. 2002. Dinámica poblacional de agentesde daño asociados a bosque nativo. En: BALDINI, A. YPANCEL, L. (eds.). Agentes de daño en el bosque nativo.Editorial Universitaria. Santiago, Chile.

COMISIÓN NACIONAL DEL MEDIO AMBIENTE(CONAMA). 2005. Sistema Nacional de CertificaciónAmbiental de Establecimientos Educacionales (SCNAE).Duodécima Región de Magallanes y Antártica Chilena.

CONTROLADORA DE PLAGAS FORESTALES(CPF). 2005. Langostas defoliadoras. Disponible en:http://www.cpf.cl/index.php?option=com_content&task=view&id=45&Itemid=36. Fecha de consulta 27 deMarzo del 2008.

COULSON, R. y WITTER, J. 1990. EntomologíaForestal, ecología y control. Editorial Limusa S.A.México. 751 pp.

CUNAZZA, C. 1992. Situación del guanaco en Chile.Situación actual y perspectivas futurasdel manejo. En:Estrategias para el manejo y aprovechamiento racionaldel guanaco (Lama guanicoe), B. Marchetti, J.Oltremari y H. Peters (Eds.). Anexo 11:113-130 pp.

DE FERARI, F. Y RAMÍREZ, G. 1998. Manual dedetección y control de plagas y enfermedades presentesy potenciales en plantaciones de pino y eucalipto.Ediciones Oscar Lermanda. Concepción, Chile. 114 pp.

DE LIÑÁN, V. 1998. Entomología Agroforestal. EdicionesAerotécnicas. Madrid, España. 1309 pp.

DELFINO, M Y BINAZZI, A. 2002. Afidos de Coníferasen la Argentina (Hemiptera: Aphididae). Revista SociedadEntomológica Argentina. 61 (3-4): 27-36 pp.

DELFINO, M.; MONELOS, H.; PERI, P. Y BUFFA,L. 2007. Áfidos (Hemiptera: Aphididae) de interéseconómico en la provincia de Santa Cruz. INTA,Argentina. 36 (1): 147-154 pp.

DONOSO, C. 2008. Ecologia Forestal. El bosque y sumedio ambiente. Editorial Universitaria. Sexta Edición.Chile. 369 pp.

Bibliografía


DURAN, L. 1952. Aspectos ecológicos de la biología delSan Juan verde, Hylamorpha elegans (Burm.) ymención de las demás especies de escarabeidosperjudiciales en Cautín. Agricultura Técnica 12(1):24-36 pp.

DURAN, L. 1963. Insectos de importancia económicapara la zona austral. Ministerio de Agricultura. Direcciónde Agricultura y Pesca. 3-71 pp.

ELGUETA, M. Y ARRIAGADA, G. 1989. Estado actualdel conocimiento de los coleopteros de Chile (Insecta:Coleoptera). Revista Chilena Entomológica 17: 5-60 pp.

ESTAY, S. 2004. Insectos del arbolado urbano. ServicioAgrícola y Ganadero. Chile. 75 pp.

FAO. 2006. Manual de campo: Plagas y enfermedadesde eucaliptos y pinos en el Uruguay. Proyecto PCT/URU/3002 “Apoyo a la defensa y protección de lasplantaciones forestales en el Uruguay”. Representaciónde FAO en Uruguay.158 pp.

FERCOVIC, F. Y LANFRANCO, D. 1995. Guía detrabajos prácticos de entomología forestal. Instituto deSilvicultura, Facultad de Ciencias Forestales, UniversidadAustral de Chile. 117 pp.

FERRIERE, G., CERDA, J. Y ROACH, R. 1983. Elconejo silvestre en Chile. CONAF. Boletín Técnico8. 35 pp.

FOREST PESTS. 2004. Insects and diseases of trees inthe South. Disponible en http://www.forestpests.org/southern/. Fecha de consulta 15 de agosto del 2007.

FUENTES-CONTRERAS, E., MUÑOZ, R. YNIEMEYER, H. 1997. Diversidad de áfidos (Hemiptera:Aphidoidea) en Chile. Revista Chilena de Historia Natural70: 531-542 pp.

GARA, R., CERDA, L. Y DONOSO, M. 1980. Manualde Entomología Forestal. Departamento de Silvicultura,Universidad Austral de Chile. 61 pp.

GARA, R., CERDA, L. Y KRAHMER, E. 1978. Sobrela emergencia y vuelo de dos Cerambícidos Chilenos:Holopterus chilensis y Cheloderus childreni. Turrialba 28(2): 117-121 pp.

GENTILI, M. Y GENTILI, P. 1988. Lista comentada delos insectos asociados a las especies Sudamericanasdel género Nothofagus. Monografías de la AcademiaNacional de Ciencias Exactas, Físicas y NaturalesBuenos Aires, Argentina 4: 85-106 pp.

GENTILI, P. 1988. Análisis de la distribución geográficade Cossidae (Lepidoptera: Ditrysia) de la Patagoniaandina. Revista Chilena de Historia Natural 61: 191-198pp.

GENTILI, P. 1989. Revisión sistemática de los Cossidae(Lepidoptera) de la Patagonia Andina. Revista de laSociedad Entomológica de Argentina 45 (1-4): 3-75 pp.

GERMAIN, P. 1907. Los Buprestidos de Chile. ApuntesEntomológicos. Anales de la Universidad de Chile. 3-31pp.

GIGANTI, H. 1986. Daños causados por insectos enfustes de especies maderables en los bosques deMoquehue. Turrialba 36 (1): 111-116 pp.

GIGANTI, H. Y DAPOTO, G. 1990. Coleopteros de losbosques nativos del Departamento Aluminé (Neuquén-Argentina). Bosque 11 (2): 37-44 pp.

GONZÁLEZ, G. Y OPAZO, A. 2002. Enfermedadesfungosas y otras. En: BALDINI, A. Y PANCEL, L. (eds.).Agentes de daño en el bosque nativo. EditorialUniversitaria. Santiago, Chile.

Bibliografía


GRANDON, F. 1996. Análisis fitosanitario de losNothofagus de Chile, desde el punto de vistaentomológico. Tesis Ingeniería Forestal. Facultad deCiencias Forestales, Universidad Austral de Chile.123 pp.

GREER, J. 1965. Mammals of Malleco Province, Chile.Publ. Mus. Michigan State Univ. Biol. Ser.3: 51-151 pp.

GUAJARDO, F. 2006. Determinación del estado sanitariode los bosques de Nothofagus pumilio (Poepp. et Endl.)Krasser, en la XI Región de Aysén del General CarlosIbáñez del Campo. Proyecto de Título Ingeniería Forestal.Facultad de Agronomía e Ingeniería Forestal, PontificiaUniversidad Católica de Chile. Santiago, Chile. 108 pp.

HALL, R. 1981. The mammals of North America, Vol. II.John Wiley y Sons. II. Nueva York. INE ySEMARNAP 2000. Base de datos electrónica del Sistemade Unidades de Manejo, Conservación yAprovechamiento de la Vida Silvestre SUMA. Reporteinterno de la Dirección General de Vida Silvestre,SEMARNAT. México, D.F.

HOUSSE, P. 1953. Animales salvajes de Chile.Ediciones Universidad de Chile. Santiago, Chile.

IRIARTE, A. 2002. Impacto de la fauna silvestre sobre laflora nativa de Chile. En: BALDINI, A. Y PANCEL,L. (eds.). Agentes de daño en el bosque nativo. EditorialUniversitaria. Santiago, Chile.

IRIARTE, J., JONSON, W. Y FRANKLIN, W. 1991.Feeding ecology of de Patagonia puma in southernmostChile. Revista Chilena de Historia Natural64: 145-156 pp.

ISSG. 2005. Global Invasive species Database. Cinaracupressi. Disponible en: http://ssg.org.database/species/management_info.asp?si=121&fr=1&sts=sss. Fecha deconsulta 28 de marzo del 2008.

JAKSIC, F. 1997. Ecología de los vertebrados de Chile.Facultad de Ciencias Biológicas, Ediciones UniversidadCatólica de Chile. Santiago, Chile.262 pp.

JAKSIC, F. 1998. Vertebrate invaders and their ecologicalimpacts in Chile. Biodiversity and Conservation. 7 pp.

JEREZ, V. Y CERDA, L. 1988. Antecedentesmorfológicos y biológicos de Hornius grandis (Phil. yPhil., 1864) (Crysomelidae-Eumolpinae). Bosque: 9(2):83-86.

JEREZ, V. Y IBARRA, H. 1992. Morfología y bionomíade Hornius grandis (Phil. y Phil. 1864) (Chrysomelidae,Eumolpinae). Boletín de la Sociedad de Biología deConcepción 63: 93-100 pp.

KINGDON, J. 1997. The Kingdon field guide to Africanmammals. Academic Press. Londres, Inglaterra.

KIRCHHOFF, M. 1988. Dietary overlap between nativesitka black-tailed deer and introduced elk in SoutheastAlaska. Journal of Wildlife Management.62 pp.

KRUUSE, M. 1981. Algunos factores bióticos y abióticosque inciden en el nivel de ataque de Holopterus chilensis(Blanch.) (Col: Cerambycidae) en Nothofagus obliqua(Mirb.) Oerst. Instituto de Silvicultura. Facultad de CienciasForestales, Universidad Austral de Chile. 69 pp.

KUSCHEL, G. 1955. Una nueva especie de Cheloderuscastelnau (Coleoptera, Cerambycidae). Revista Chilenade Entomológica 4: 251-254 pp.

KUSCHEL, G. 2000. La fauna curculiónica (Coleoptera:Curculionidae) de la Araucaria araucana. Revista Chilenade Entomología 27: 41-51 pp.

Bibliografía


LANFRANCO, D., IDE, S., RUIZ, C., PEREDO, H.,Y VIVES, I. 2002. Agentes entomopatógenos asociadosa productos forestales primarios de exportación. Edicionesel Kultrún. Valdivia, Chile.87 pp.

LEWIS, P. 1996. Primer registro de la actividad defoliadorade dos especies de insectos nativos sobre Pinus radiataD. Don. en Chile. Bosque 17 (1): 101-103 pp.

LEWIS, P. Y PEREDO, A. 1993. Evaluación fitosanitariade bosque nativo en Hacienda Jauja. IX Región de Chile.Resumenes XV Congreso Nacional de Entomología.Valdivia, Chile. 11-13 pp.

LUDWIG, R. 1986. Evaluación de la acción del CiervoRojo (Cervus elaphus) en rodales de Pino Insigne (Pinusradiata) y Pino Oregón (Pseudotsuga menziesii) en SectorPedernal, Provincia de Llanquihue. Tesis de Grado.Escuela de Ingeniería Forestal. Facultad de CienciasForestales, Universidad Austral de Chile. Valdivia, Chile.89 pp.

MADRID, F. 1974. Rhopalomyia nothofagi Gagne,biología y daño en Roble (Diptera: Cecidomyiidae). Boletínde la Sociedad de Biología de Concepción 48: 395-402pp.

MELLINK, E. 1991. Exotic herbivores for the utilizationof arid and semiarid rangelands of Mexico. Wildlifeproduction, conservation and sustainable development.

MESÓN, R., CHINCHILLA, C. Y RODRÍGUEZ R.2003. El gusano canasta, Oiketicus kirbye Lands Guilding(Lepidoptera: Psychidae), plaga de la palma aceitera.Disponible en: http://www.asd-cr.com/ASD-Pub/Bol25/Cap2-esp.htm. Fecha de consulta 28 de marzo del 2008.

MANEJO INTEGRADO DE PLAGAS EN CÍTRICOS(MIP). 2008. Conchuela Hemisférica, Saissetia coffeae(Walker). Centro Experimental de Entomología del Institutode Investigaciones Agropecuarias (INIA), Chile.Disponible en http://www.mipcitricos.cl/conch2.htm.Fecha de consulta 10 de abril del 2008.

MONRÓS, F. 1943. Algunos Coleopteros de interésforestal observados en la Isla Victoria (Gobernación deNeuquén). Revista de la Facultad de Agronomía yVeterinaria. Buenos Aires, Argentina. 10 (3):536-543 pp.

MONRÓS, F. 1952. Notas sobre algunas Eumolpinaeneotropicales (Coleoptera: Chrysomelidae). RevistaChilena de Entomología 2: 187-196 pp.

MORRONE, J. 1997. Weevils (Coleoptera:Curculionoidea) that feed on Araucaria araucana(Araucariaceae) in southern Chile and Argentina, with anannotated checklist. Folia Entomologica Mexicana 100:1-14 pp.

MUNDACA, E. Y PARRA, L. 2004. Geometridos(Lepidoptera) presentes en formaciones vegetales de laReserva Nacional Isla Mocha (VIII Región Chile).Facultad de Ciencias Naturales y Oceonográficas,Universidad de Concepción. 8 pp.

NARAY, J. 1979. Algunos satúrnidos (Lepidoptera:Saturniidae) defoliadores de especies forestales.Prospección Nacional Sanitaria Forestal. CONAF-UACH. Facultad de Ingeniería Forestal, UniversidadAustral de Chile. Valdivia, Chile. Serie técnica17: 20 pp.

NAUMANN-ETIENNE K. 1978. Morphological,zoogeographical and biological aspects of the Scolytidaefrom Nothofagus dombeyi in Argentina. Studies onNeotropical Fauna and Environment 13: 51–62 pp.

Bibliografía


NOWAK, R. 1991. Walker's mammals of the world. TheJohns Hopins University Press. Baltimore, Maryland,EUA.

OLIVARES, T. Y ANGULO, A. 1992. Chilecomadiavaldiviana (Philippi): Descripción de larva y pupa(Lepidoptera: Cossidae). Gayana Zool. 56(3-4): 181-184pp.

PAINE, T., MILLAR, J. Y DREISTADT, S. 2004.Eucalyptus longhorned borers. Disponible enhttp://www.ipm.ucdavis.edu/PMG/PESTNOTES/pn7425.html. Fecha de consulta 19 de octubre del 2007.

PARRA, L. 1985. Omaguacua longibursae n.sp degeométrido para Chile: estados preimaginales y adulto(Lepidoptera: Geometridae). VII Reunión Nacional deEntomología. Concepción, Chile.

PARRA, L., ANGULO, A. Y JANA-SÁENZ, C. 1985.Complejo hipofaringeo y área ocular larval deChilecomadia moorei (Silva) (Lepidóptera: Cossidae).Boletín de la Sociedad de Biología de Concepción56: 51-54 pp.

PARRA, P. Y GONZÁLEZ, M. 1998. La Chicharra.Informativo sanitario Forestal N°1. Instituto Forestal.Santiago, Chile. 12 pp.

PEFAUR, J. 1969. Consideraciones sobre el problemade la conservación de los mamíferos silvestres chilenos.Boletín de la Universidad de Chile 93/ 94: 4-10 pp.

PEÑA, L. 1959. Dos lucanidos muy raros en lascolecciones (Coleoptera). Pignosiphorus magnificus Beny P. brevicollis Ben. Museo de Historia Natural Nº 35Año 3: 1 pp.

PEÑA, L. 1960. Algunas observaciones sobre especiespoco conocidas de Cerambycidae (Insecta-Coleoptera)de Chile. Revista Universitaria Catolica de Chile 44-45:57-61 pp.

PEÑA, L. 1974. Algunas observaciones sobre especiesconocidas de cerambycidae (Coleoptera) II. Boletín de laSociedad de Biología de Concepción 47: 3-30 pp.

PEÑA, L. 1976. Guía para reconocer los coleopteros deChile continental. Expedición a Chile. Editora nacionalGabriela Mistral. 26-29: 151 pp.

PEÑA, L. 1986. Introducción a los insectos de Chile.Editorial Universitaria. 225 pp.

PETERSEN, J. 1988. Chilecomadia valdiviana (Philippi)(Lepidoptera: Cossidae) asociado a Nothofagus pumilio(Poepp. et Endl) Krasser (Lenga) en la Región deMagallanes. Ans. Inst. Pat. Ser. Cs. Nats. Punta Arenas,Chile.

PORTER, C. 1921. Notas breves sobre longicornidoschilenos. Revista Chilena de Historia Natural 25: 495-501 pp.

PORTER, C. 1933. Los Prioninae de Chile. RevistaChilena de Historia Natural 37: 200-209 pp.

PORTER, C. 1938. Introducción al estudio de loscerambícidos chilenos. Revista Chilena de Historia Natural42: 221-231 pp.

PUENTES, O. 1979. Biología de una mosca sierra(Hymenoptera, Tenthredionidae), defoliador de Nothofagusalpina (Poepp. et Endl.) Oerst y Nothofagus obliqua.Tesis mimeografiada Ingenieria Forestal. UniversidadAustral de Chile. Valdivia, Chile.

PUENTES, O. 1984. Defolación del roble, Nothofagusobliqua, en la IX y X Región. Programa Control de plagasy enfermedades forestales. Informativo 1. Gerenciatécnica. 8 pp.

PUENTES, O. 1993. Holopterus chilensis: Un dañoque busca detenerse. Chile Forestal 203: 34-35 pp.

Bibliografía


PUENTES, O. Y DUHALDE, R. 1994. Cerospastusvolupis Konow "Mosca Sierra". Nota Técnica CONAF.Prospección Nacional Sanitaria Forestal. Año 14 Nº 23.7 pp.

RAEDEKE, K. 1979. Population dynamics andsocioecology of the guanaco (Lama guanicoe) ofMagallanes, Chile. Ph.D. dissert. University ofWashington, Seattle, USA. 409 pp.

RAMÍREZ, C. 2002. Registro de algunas especies deáfidos (Hemiptera: Aphididae) en el Parque NacionalLaguna San Rafael. Departamento de CienciasEcológicas, Facultad de Ciencias, Universidad de Chile.Santiago, Chile. 10 pp.

RAMÍREZ, M. 2006. Cuantificación de la biomasa leñosaremovida por Castor canadensis Kuhl en bosques nativosde Tierra del Fuego (XII Región de Magallanes, Chile).Proyecto de Título Ingeniería Forestal. Facultad deAgronomía e Ingeniería Forestal, Pontificia UniversidadCatólica de Chile. 152 pp.

RODRÍGUEZ, J. 1991. Control de roedores y lagomorfosen plantaciones de Eucalyptus spp. En: Actas I Jornadasde Sanidad Forestal. Antecedentes fitosanitarios deEucalyptus y bosque nativo. Valdivia, Chile. 41-45 pp.

RÜHM, W. 1976. Blastophagus antipodus Egg. undBlastophagus porteri Breth. (Scolytidae, Col.) an derAraukarie (Araucaria araucana (Mol.) Koch) in Chile.Zeitschrift für Pflanzenkrankheiten und Pflanzenschutz.83: 137-145 pp.

RÜHM, W. 1981. Zur Biologie und Ökologie vonPteleobius (Xylechinus) valdivianus (Eggers, 1942) (Col.,Scolytidae), einer vorwiegend an unterständigenAraukarien, Araucaria araucana (Mol.) Koch, brütendenBorkenkäferart. Entomologische Mitteilungen aus demZoologischen Museum Hamburg. 7: 13-20 pp.

RÜHM, W. 1986. Zwei im Xylem der Araukarie, Araucariaaraucana (Mol.) Koch brütende xylomycetophage undkoprophage Borkenkäferarten (Coleoptera: Scolytidae).Entomologische Mitteilungen aus dem ZoologischenMuseum Hamburg 8:265-280 pp.

SAG, 2007. Cartilla para cazadores. División de Protecciónde los Recursos Naturales Renovables. Servicio Agrícolay Ganadero. Ministerio de Agricultura. Sexta Edición.Santiago, Chile. 104 pp.

SALAS, R. Y VALENZUELA, C. 2006. Evaluación ycondición actual de superficies boscosas atacadas porCastor canadensis Kuhl (Mammalia, Rodentia), al noroestedel Lago Fagnano, XII Región, Chile. Proyecto de TítuloIngeniería Forestal. Facultad de Agronomía e IngenieríaForestal, Pontificia Universidad Católica de Chile. 119pp.

SALISBURY, F. Y ROSS, C. 2000. Fisiología de lasPlantas. Tomo 1, 2 y 3. Thomson Editores Spain ParaninfoS.A. España. 988 pp.

SANTORO, F. 1966. Panorama entomológico relacionadocon la silvicultura y la tecnología forestal en la RepúblicaArgentina. Revista Forestal Argentina 10(2): 53-59.

SIMONETTI, J. Y FUENTES, E. 1983. Shrubpreferences of native and introduced Chilean matorralherbivores. Oecol. Appl. 4: 269-272 pp.

SOLER, J. Y CSEH, S. 2007. Ataxia enzoótica enciervo rojo (Cervus elaphus) en Argentina. Comunicaciónen Arch. Med. Vet. 39 (1): 73-76 pp.

STAINES, B. Y WELCH, D. 1989. Impact of red androe deer on Scottish woodlands. En: Mammals as pestsChapman y Hall. Nueva York, EUA.

Bibliografía


URIBE, C. 1996. Silvicultura del roble (Nothofagusobliqua (Mirb.) Oerst) y raulí (Nothofagus alpina (Poepp.et Endl.) Oerst): una revisión bibliográfica con énfasis enlos renovales formados por estas especies. Tesismimeografiada. Facultad de Ingeniería Forestal,Universidad de Concepción. Concepción, Chile.

VIDAL, P. 2008. Entomología. Disponible en http://www.entomologia.cl/ordenes.html. Fecha de consulta 10de abril del 2008.

VILLA, A. 1996. Coniungoptera nothofagi. Otro enemigodel pino radiata. Chile Forestal, 236: 18 pp.

VILLA, A. Y OJEDA, P. 1981. La cuncuna espinuda, uninsecto nativo defoliador de Pino insigne. (Ormiscodessp. Lepidoptera: Saturniidae). Folleto de divulgación.Prospección Nacional Sanitaria Forestal. Año 2 Nº 5. 3pp.

WATSON, G., VOEGTLIN, D., MURPHY, S. YFOOTTIT, R. 1999. Biogeography of the Cinara cupressicomplex (Hemiptera: Aphididae) on Cupressaceae, withdescription of a pest species introduced into Africa. Bulletinof Entomological Research (89). 271-283 pp.

WIKIPEDIA. 2008. Euphitecia. Disponible en http://en.wikipedia.org/wiki/Eupithecia. Fecha de consulta 27de marzo del 2008.

WILSON, P. y FRANKLIN, W. 1985. Male groupdynamics and intermale aggression of guanacos insouthern Chile. Zeitschrift fur Tierpsychologie 69: 305-328 pp.

WOOD, S. 2007. Bark and Ambrosia Beetles of SouthAmerica (Coleoptera: Scolytidae). Monte L. Bean LifeScience Museum, Brigham Young University. Provo,Utah USA. 900 pp.

Bibliografía


Bibliografía

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