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Manual de prácticas de Biología Celular e Histología Médica 2019-2020

2

DEPARTAMENTO DE

BIOLOGÍA CELULAR Y TISULAR Facultad de Medicina, UNAM

Manual de

prácticas

BIOLOGÍA CELULAR E

HISTOLOGÍA MÉDICA

2019-2020

I

A U T O R E S

Dra. María Isabel García Peláez

Dr. César Eduardo Montalvo Arenas

C O L A B O R A D O R E S

Dra. Sandra Acevedo Nava

Dr. Erick Rodrigo Hans Olguín

Dra. Adriana Elizabeth González Villalva

Dra. Martha Luz Ustarroz Cano

Dra. Leticia Parra Gamez

Dra. Sinaí Andrea Pineda Flores

Dra. Andrea López Salmerón

Dra. Aurea Escobar España

Dr. Juan Ángel Calixto Martínez

Dr. Rodrigo Castro Salinas

E D I C I Ó N Y D I S E Ñ O

Dr. Erick Rodrigo Hans Olguín

II

P R E F A C I O

La asignatura de Biología Celular e Histología Médica tiene como objetivos generales el examinar, analizar

e integrar la estructura microscópica y las funciones básicas de las células, tejidos, órganos y sistemas del

cuerpo humano. La asociación de este conocimiento con los de las otras asignaturas básicas es

fundamental para el entendimiento del cuerpo humano en su totalidad e imprescindible en la formación

del médico.

En el proceso del aprendizaje de esta asignatura se requiere de la lectura y comprensión de textos

especializados y la integración de este conocimiento teórico con la observación y análisis visual

microscópico de una serie de preparaciones histológicas que ofrecen, al estudiante de medicina, imágenes

de células, tejidos y órganos debidamente procesados a través de técnicas histológicas específicas; todo

ello con la finalidad que adquiera el aprendizaje significativo de la estructura microscópica de los

componentes morfológicos del cuerpo humano.

El presente manual de prácticas tiene como objetivo orientar en la observación microscópica de las

preparaciones histológicas mediante una breve descripción de los campos histológicos e indicaciones

precisas de las estructuras a identificar.

El manual está en formato digital en la página web del Departamento de Biología Celular y Tisular. Los

alumnos pueden trabajar el manual en el mismo formato digital o imprimirlo para tenerlo en un formato

físico. En el formato impreso pueden dibujar las observaciones a través del microscopio y en el formato

digital pueden pegar las imágenes capturadas por los alumnos a través de sus dispositivos. También los

alumnos pueden buscar imágenes en el Atlas Digital del Departamento o en los bancos de imágenes de

internet e incorporarlas en el manual físico o digital. Los profesores de acuerdo a su experiencia y estilo

de enseñanza pueden utilizar el manual en la forma que mejor consideren.

Este manual está a su consideración y todas las observaciones son bien recibidas. Su colaboración va a

permitir tener un manual que nos facilite a todos, profesores y alumnos, la realización de la actividad

práctica de la asignatura.

María Isabel García Peláez Jefa del Departamento de Biología Celular y Tisular

Todo lo que se desarrolla comienza por ser pequeño. Es al alimentarse gradualmente como, con constantes progresos, llega a hacerse grande.

Ruy Pérez Tamayo

III

Í N D I C E

PRIMER BLOQUE

Práctica 1 Conocimiento, manejo y uso del microscopio fotónico. . . . . . . . . . . . . . . 2

Práctica 2 Técnica histológica . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 5

Práctica 3 Biología celular I: Organelos celulares. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 6

Práctica 4 Biología celular II: Inclusiones citoplasmáticas. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 10

Práctica 5 Tejido epitelial I: Membranas mucosas. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 12

Práctica 6 Tejido epitelial II: Glándulas . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 16

Práctica 7 Tejido conjuntivo común . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 20

Práctica 8 Tejido adiposo. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 24

Práctica 9 Tejido cartilaginoso. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 25

Práctica 10 Tejido óseo . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 27

M a n u a l d e p r á c t i c a s d e

B i o l o g í a C e l u l a r e H i s t o l o g í a M é d i c a

Primer bloque

1


Departamento de Biología Celular y Tisular, Facultad de Medicina, UNAM 2

PRÁCTICA 1 CONOCIMIENTO, MANEJO Y USO DEL MICROSCOPIO FOTÓNICO

Objetivos

1. Conocer los 10 pasos para el buen uso del microscopio fotónico del aula-laboratorio:

□ 1. Preparar el espacio físico para el uso del microscopio.

□ 2. Preparar el material de trabajo para la realización de la práctica.

□ 3. Revisar que el microscopio esté en condiciones aptas para el trabajo.*

□ 4. Solicitar la preparación histológica al responsable de sección.

□ 5. Realizar la práctica indicada.

□ 6. Regresar la preparación histológica al responsable de sección.**

□ 7. Revisar que el microscopio se deje en condiciones aptas para que pueda ser utilizado por

otros compañeros.***

□ 8. Limpiar el área donde se realizó la práctica.

□ 9. Entregar la práctica en el tiempo y forma que el profesor le indique.

□ 10. Guardar la práctica siguiendo las instrucciones del profesor.

*Si el microscopio no está en condiciones aptas para su uso (limpieza y funcionalidad) se deberá reportar inmediatamente a los profesores responsables de la práctica en el aula-laboratorio.

**Los pasos 4, 5 y 6 se realizarán el número de veces que sea necesario hasta cumplir los objetivos de la práctica y con la observación del total de preparaciones histológicas asignadas en cada una de ellas.

***Si el microscopio no está en condiciones aptas para su uso posterior, se deberá reportar inmediatamente a los profesores responsables de la práctica en el aula-laboratorio.



2. Identificar los componentes del microscopio fotónico de campo claro. Tomar una fotografía o hacer un dibujo del microscopio e indicar sus componentes.



3. Analizar las características de la imagen observada a través del microscopio fotónico de campo claro.

Preparación histológica: Letras

Observe la preparación histológica de letras al microscopio utilizando los objetivos de 4x, 10x y

40x. Las letras se ven invertidas. En el mismo campo identifique cómo el área observada se va

reduciendo a medida que aumenta la imagen y ofrece una mejor resolución.

Objetivo de 4x

Objetivo de 10x

Objetivo de 40x



PRÁCTICA 2 TÉCNICA HISTOLÓGICA

Objetivo: Reconocer la importancia de la fijación e identificar la tinción.

Preparación histológica: Riñón fijado y no fijado. Observar las diferencias en coloración y estructura morfológica entre las dos muestras de riñón.

Tinción: Riñón fijado

Objetivo de 10x Objetivo de 40x

Riñón no fijado Objetivo de 10x Objetivo de 40x



1. Membrana celular o plasmalema con microscopía electrónica de transmisión.

Espacio extracelular

Glucocálix

Lámina electrondensa externa

Lámina electronlúcida central

Lámina electrondensa interna

Espacio citoplasmático 2. Esquema de la membrana celular mostrando sus componentes

moleculares.

Proteínas integrales

Moléculas de carbohidratos

Cabezas de fosfolípidos

Moléculas de colesterol

Colas de fosfolípidos

Proteínas periféricas

PRÁCTICA 3 BIOLOGÍA CELULAR I: ORGANELOS CELULARES.

Objetivo: Identificar la ultraestructura de cada organelo celular.

Actividad sin preparación histológica. Tomar una fotografía o hacer un dibujo de los organelos celulares que se mencionan en los siguientes recuadros.



3. Retículo endoplásmico rugoso (RER) con microscopía electrónica de transmisión.

Citoplasma

Ribosomas

Cisternas membranales

Espacios de las cisternas

4. Retículo endoplásmico liso (REL) con microscopía electrónica de transmisión

Citoplasma

Túbulos anastomosados

Luz de túbulos anastomosados



5. Aparato de Golgi con microscopía electrónica de transmisión.

Gránulos de secreción

Red trans de Golgi

Cisternas trans

Cisternas mediales

Cisternas cis

Red cis Golgi

Vesículas de transferencia

6. Mitocondria con microscopía electrónica de transmisión.

Membrana mitocondrial externa

Espacio interrmembranal

Membrana mitocondrial interna

Crestas mitocondriales

Matriz mitocondrial

Cuerpos densos



7. Lisosomas y cuerpos residuales con microscopía electrónica de transmisión.

Lisosoma: - Membrana lisosomal

- Contenido lisosomal

Cuerpo residual: - Contenido del cuerpo residual

8. Peroxisomas con microscopía electrónica de transmisión.

Membrana del peroxisoma

Contenido del peroxisoma

Cristales de urato-oxidasa



Tinción:

Hepatocitos

Presencia de núcleos y posición en

las células

Presencia de partículas de glucógeno

Objetivo de 40x

Tinción:

Macrófagos con partículas de carbón

Objetivo de 40x

PRÁCTICA 4 BIOLOGÍA CELULAR II: INCLUSIONES CITOPLASMÁTICAS

Objetivo: Identificar los diferentes tipos de inclusiones citoplasmáticas.

Preparación histológica: Hígado con glucógeno Observar el glucógeno en el citoplasma de los hepatocitos.

Preparación histológica: Ganglio linfático intertraqueobronquial Observar pigmento exógeno fagocitado (carbón) en el interior de macrófagos.



Tinción:

Neuromelanina en el citoplasma de las neuronas

Objetivo de 40x

Tinción:

Miocardiocitos en sección longitudinal

Núcleos

Pigmentos de lipofucsina

Objetivo de 40x

Preparación histológica: Mesencéfalo Observar el pigmento endógeno de neuromelanina (partículas de color negro) en el citoplasma de las neuronas situadas en la sustancia nigra.

Preparación histológica: Miocardio Observar el pigmento de lipofucsina o pigmento de desgaste, de color pardo amarillento o rojo magenta, en las células musculares (miocardiocitos) del corazón. Se sitúa preferentemente en los espacios relacionados con los polos de los núcleos.



Tinción:

Pliegues tisulares de la vejiga vacía

Epitelio de transición o urotelio

Tejido conjuntivo subepitelial

Objetivo de 10x

Capa superficial de células

globosas

Célula superficial binucleada

Membrana basal


Objetivo de 40x

PRÁCTICA 5 TEJIDO EPITELIAL DE REVESTIMIENTO

Objetivo: Identificar las características histológicas de cada epitelio: número de estratos, formas celulares, forma y posición del núcleo, así como las especializaciones de membrana.

Preparación histológica: Vejiga urinaria Observar el epitelio de transición o transicional, mixto, polimorfo, globoso o urotelio. Las células superficiales son de mayor tamaño, algunas de ellas poseen dos núcleos y muestran un contorno superficial ligeramente convexo. Debajo de la superficie apical celular se distingue una pequeña zona más coloreada que corresponde a la presencia de las placas membranales.



Tinción: Epitelio plano estratificado

con estrato córneo


Objetivo de 10x

Tinción:

Epitelio plano estratificado sin

estrato córneo

Membrana basal


Objetivo de 40x

Preparación histológica: Piel gruesa Observar el epitelio plano estratificado con estrato córneo. Está formado por numerosas capas de células de diferentes formas. En el estrato más superficial se observan células planas que carecen de núcleos.

Preparación histológica: Esófago o vagina Observar el epitelio plano estratificado sin estrato córneo. Las células epiteliales más superficiales aún conservan los núcleos ya que carece de estrato córneo.



Tinción:

Microvellosidades en la superficie apical

Células cilíndricas

Células caliciformes

Membrana basal


Objetivo de 40x

Tinción: Cilios en la superficie apical

Posición media o basal de los núcleos

Células epiteliales

Células caliciformes

Membrana basal


Objetivo de 40x

Preparación histológica: Tráquea Observar el epitelio pseudoestratificado cilíndrico ciliado con células caliciformes. Todas las células se apoyan sobre la membrana basal pero no todas ellas llegan a la superficie apical por lo que los núcleos se disponen en diversos niveles dando el aspecto de un epitelio estratificado. En la superficie del epitelio se observan los cilios.

Preparación histológica: Intestino delgado Observar epitelio cilíndrico simple con microvellosidades y células caliciformes. La altura de las células predominan sobre el ancho y grosor de las mismas. El núcleo es ovalado y ocupa una posición media o basal. En el borde apical se observan microvellosidades. Las células caliciformes son redondeadas con citoplasma claro y núcleo basal.



Tinción:

Epitelio cúbico simple:

-Núcleos Capilares:

-Epitelio plano simple con núcleos alargados

-Eritrocitos Tejido conjuntivo laxo

Objetivo de 40x

Tinción:

Epitelio plano estratificado sin estrato

córneo

Zona de transición de epitelios

Epitelio cilíndrico simple secretor

Membrana basal


Objetivo de 40x

Preparación histológica:Plexos coroides Observar el epitelio cúbico simple en la superficie de las vellosidades coroideas. Dicho epitelio está formado por células cúbicas con un núcleo esférico de posición central o ligeramente basal. En el interior de la vellosidad se observan capilares y vénulas revestidos de epitelio plano simple, rodeados de tejido conjuntivo. Las células de este epitelio son delgadas con núcleos alargados y ovalados que sobresalen del grosor de las células.

Cuello uterino o cérvix Observar en la superficie una transición de epitelios, de plano estratificado sin estrato córneo (exocérvix) a un epitelio cilíndrico simple secretor (endocérvix).



Tinción:

Acinos pancreáticos

- Acidofilia apical (secreción serosa)

- Basofilia basal

- Núcleos

Objetivo de 40x

Islotes pancreáticos de

Langerhans - Células secretoras - Capilares con eritrocitos

Objetivo de 40x

PRÁCTICA 6 TEJIDO EPITELIAL SECRETOR O GLANDULAR

Objetivo: Reconocer las unidades epiteliales secretoras o glandulares que identifican las diversas modalidades morfológicas y funcionales del tejido epitelial secretor.

Preparación histológica: Páncreas Observar las unidades secretoras serosas en las cuales las células que las integran muestran una forma piramidal, con un núcleo esférico situado en el tercio basal. Distinguir la basofilia basal rodeando al núcleo y la presencia de gránulos de secreción acidófila en la porción apical. Observar los islotes pancreáticos cuya conformación es en conglomerado relacionada con abundantes vasos sanguíneos capilares.



Tinción: Glándulas sudoríparas apocrinas

- Secciones del conducto

de secreción - Secciones transversales y oblicuas de la porción secretora - Superficie apical con secreción apocrina - Células mioepiteliales

Objetivo de 40x

Tinción: Glándulas sudoríparas ecrinas o merocrinas

- Secciones del conducto de secreción

- Secciones transversales y oblicuas de la porción secretora

- Célu las mioepiteliales

Objetivo de 40x

Preparación histológica: Piel de axila Observar las glándulas sudoríparas tubulares simples glomerulares ecrinas o merocrinas y sus conductos de secreción con epitelio cúbico estratificado. La luz de la porción secretora es pequeña. Los núcleos son esféricos y de posición central.

Observar las glándulas sudoríparas tubulares glomerulares apocrinas y/o sus conductos de secreción con epitelio cúbico estratificado. La luz de la porción secretora es amplia. Las células con secreción apocrina se distinguen porque el borde apical muestra una serie de evaginaciones esféricas u ovaladas. Los núcleos son esféricos y de posición en el tercio medio.



Tinción:

Adenómeros mucosos - Contenido mucoso citoplasmático

- Forma y posición de los núcleos

Objetivo de 40x

Tinción:

Glándulas sebáceas

- Conducto de la glándula sacular

holocrina

- Porción secretora del sáculo

- Células productoras de sebo (en

picnosis, cariorrexis y cariolisis)

- Epitelio basal o germinativo

Objetivo de 40x

Observar las glándulas saculares holocrinas. Muestran un límite basal formado por células germinativas con algunas figuras de mitosis; el sáculo está ocupado por células poliédricas cuyo citoplasma presenta una serie de vesículas ocupadas por lípidos y núcleos en diversas etapas de picnosis, cariorrexis y cariolisis.

Preparación histológica: Esófago o glándula sublingual Observar las unidades (adenómeros) mucosas formadas por células piramidales truncas, con los núcleos aplanados rechazados a la base de la célula y el resto del citoplasma ocupado por la secreción mucosa de aspecto espumoso.



Tinción:

Cordones hepáticos - Células secretoras en cordones

- Capilares intercalados

Objetivo de 40x

Tinción:

Folículos tiroideos - Células foliculares

- Coloide

Objetivo de 40x

Preparación histológica: Hígado Observar el arreglo de las células secretoras en cordones más o menos regulares, algunos de los cuales se pueden bifurcar.

Preparación histológica: Tiroides Observar el arreglo folicular localizando las células epiteliales de forma cuboidal que limitan cada folículo (células foliculares) y el contenido acidófilo central de cada folículo al que rodean dichas células (coloide).



Tinción:

Fibroblastos y fibrocitos (núcleos)

Fibras de colágena formando haces

Células adiposas (adipocitos)

Células gigantes de reacción a cuerpo extraño

Objetivo de 40x

PRÁCTICA 7 TEJIDO CONJUNTIVO

Objetivo: Identificar las características histológicas básicas del tejido conjuntivo, así como reconocer las diversas células fijas y migrantes o móviles integrantes del mismo.

Preparación histológica: Piel con granuloma Observar fibroblastos y fibrocitos que son células alargadas fusiformes con núcleos alargados. Fibras de colágena aisladas o formando haces. Células adiposas uniloculares aisladas o integrando lobulillos. Células gigantes de reacción a cuerpo extraño: son células multinucleadas, formadas por la fusión de pocos o numerosos macrófagos con diámetros de 30 a 50 micrómetros de diámetro.



Tinción:

Célula plasmática

- Citoplasma basófilo

- Imagen negativa del aparato de Golgi

- Núcleo excéntrico con cromatina

radiada

Objetivo de 40x o 100x

Tinción:

Haces de fibras de colágena

Fibroblastos y fibrocitos

Células cebadas o mastocitos

Objetivo de 40x o 100x

Preparación histológica: Tumor cutáneo con células plasmáticas Observar células plasmáticas o plasmocitos. Son células redondeadas u ovaladas, con núcleo excéntrico y grumos cromatínicos dispuestos radialmente y citoplasma basófilo. En un polo del núcleo se visualiza la imagen negativa del aparato de Golgi.

Preparación histológica: Cordón espermático Observar haces de fibras de colágena, fibroblastos y células cebadas o mastocitos, que se identifican por su citoplasma granular.



Tinción:

Fibras elásticas en corte longitudinal

Fibras elásticas en corte transversal

Objetivo de 40x

Tinción:

Fibras reticulares (forman redes)

Objetivo de 40x

Preparación histológica: Aorta Observar las fibras elásticas en secciones longitudinales y/o transversales. Distinguir su recorrido sinuoso u ondulante (secciones longitudinales), de color negro o morado y como pequeños puntitos de color negro o morado (secciones transversales) dependiendo de la tinción.

Preparación histológica: Hígado o ganglio linfático Observar las fibras reticulares (colágena tipo III) de grosor muy delgado, dispuestas en todas las direcciones del espacio e integrando redes sumamente finas (estroma fino) que sirven de soporte a las células parenquimatosas.



Tinción:

Tejido conjuntivo laxo

Células conjuntivas

Tejido conjuntivo denso irregular

Objetivo de 40x

Tinción:

Haces de fibras longitudinales

Núcleos de los fibrocitos o tenocitos

Objetivo de 40x

Preparación histológica: Piel delgada Observar los diversos componentes tisulares del tejido conjuntivo laxo y denso irregular que integran la dermis de la piel. Diferenciar la presencia y cantidad de las células conjuntivas (fibroblastos y fibrocitos), de la matriz amorfa y la matriz fibrilar, principalmente haces de fibras de colágena.

Preparación histológica: Tendón Observar la disposición longitudinal y paralela de los haces de fibras de colágena cuya presencia es notoriamente mayor que las células (fibrocitos o tenocitos) y de la sustancia amorfa, casi inexistente, del tejido conjuntivo denso regular, modelado o tendinoso.



Tinción:

Adipocitos de grasa blanca o uniloculares:

- Espacio en el citoplasma que ocupaba la gota de grasa

- Núcleo periférico

Objetivo de 40x

Adipocitos de grasa parda o multiloculares:

- Espacios en el citoplasma que ocupaban las gotas de grasa

- Núcleo central

Objetivo de 40x

PRÁCTICA 8 TEJIDO ADIPOSO

Objetivo: Identificar las diferencias morfológicas entre grasa parda y grasa blanca.

Preparación histológica: Grasa parda Observar en la grasa perirrenal los dos tipos de tejido adiposo: unilocular o grasa blanca y multilocular o grasa parda. Los adipocitos uniloculares se distinguen por ser células voluminosas,

de 50 a 100m, esféricas y totalmente vacías con un núcleo dispuesto en la periferia. Los adipocitos de grasa parda se reconocen por exhibir formas poliédricas, de menor tamaño, de 30 a

40 m, con un núcleo esférico y central. El citoplasma es acidófilo debido a la presencia de numerosas mitocondrias, con pequeños espacios redondeados vacíos.



Tinción:

Pericondrio

Condroblastos

Condrocitos

Matriz territorial Grupos isógenos Matriz interterritorial

Objetivo de 10x

Condrocito

Laguna Cápsula periceluar

Matriz territorial

Matriz interterritorial Objetivo de 40x

PRÁCTICA 9 TEJIDO CARTILAGINOSO

Objetivo: Identificar las diferencias entre el cartílago hialino, elástico y fibroso con base en a los diferentes componentes de la matriz extracelular.

Preparación histológica: Tráquea Observar los diversos componentes tisulares y celulares del cartílago hialino: pericondrio, condroblastos, condrocitos y grupos isógenos. En la matriz amorfa, distinguir la matriz territorial e interterritorial.



Tinción:

Pericondrio con fibras elásticas

Matriz amorfa con abundantes fibras elásticas

Condrocitos

Grupos isógenos

Objetivo de 10x

Tinción:

Núcleo pulposo

Cartílago fibroso:

- Haces paralelos de colágena

tipo I

- Núcleos de los condrocitos

- Escasa presencia de matriz

amorfa Cartílago hialino Objetivo de 10x

Preparación histológica: Epiglotis Observar en el cartílago elástico el pericondrio que contiene fibras elásticas. Los condroblastos, condrocitos y grupos isógenos son más abundantes, por unidad de superficie, que en el cartílago hialino. La matriz fibrilar posee abundantes haces de fibras elásticas.

Preparación histológica: Columna vertebral Observar el cartílago fibroso uniendo a dos cuerpos vertebrales. Identificar el núcleo pulposo rodeado de cartílago fibroso que se observa formado por haces paralelos de fibras de colágena tipo I y entre ellas la presencia de condrocitos alargados, situados unos detrás de otros.



Tinción:

Osteonas o sistemas de Havers:

- Laminillas de las osteonas

- Lagunas óseas

- Canalículos óseos

- Conducto de Havers

Conductos de Volkmann o perforantes Objetivo de 40x

PRÁCTICA 10 TEJIDO ÓSEO

Objetivo: Identificar los componentes histológicos del hueso compacto y del hueso esponjoso, así como las diferencias histológicas entre osificación intramembranosa y endocondral.

Preparación histológica: Hueso lijado (hueso compacto).

Observar secciones transversales y longitudinales de las osteonas o sistemas de Havers constituidos por laminillas concéntricas de matriz ósea y entre ellas espacios de forma estrellada o “lagunas óseas” que alojan a los osteocitos. En la parte central de la osteona se distinguen los conductos de Havers. Entre dos conductos de Havers se disponen los conductos de Volkmann o perforantes que comunican osteonas de manera perpendicular.



Tinción:

Tejido mesenquimatoso

Células osteógenas

Vasos sanguíneos

Trabécula:

- Osteoide

- Osteoblastos

- Osteocitos

Objetivo de 40x

Tinción:

Centro de osificación

Pericondrio

Molde de cartílago

Vasos sanguíneos

Zona de cartílago hipertrófico

Objetivo de 40x

Preparación histológica: Cara, fosas nasales o calota de feto Observar las características de la osificación intramembranosa y su contenido: tejido mesenquimatoso, células osteógenas y matriz amorfa y fibrilar (osteoide); además osteoblastos localizados en los bordes del osteoide. En el interior trabéculas óseas en formación, en donde se observan los osteocitos en su laguna rodeados de matriz orgánica. El tejido circundante alberga abundantes vasos sanguíneos.

Preparación histológica: Pie o mano de feto Observar secciones longitudinales de los moldes cartilaginosos de los huesos carpales (mano) o tarsales (pie) para distinguir los procesos iniciales de osificación cartilaginosa o endocondral. Se visualiza el endostio atravesado por vasos sanguíneos y el punto de osificación endocondral en la parte media del molde cartilaginoso.



Tinción:

Tejido epifisiario

Placa o disco epifisiario

Tejido óseo diafisiario

Objetivo de 10x

Zona de reserva

Zona de proliferación

Zona de hipertrofia

Zona de calcificación

Zona de osificación o resorción

Objetivo de 40x

Preparación histológica: Tibia de feto Observar la placa o disco epifisiario de un hueso largo. Diferenciar las cinco zonas de la osificación endocondral: zona de reserva o reposo, zona de cartílago de proliferación, zona de maduración o hipertrofia, zona de calcificación y zona de osificación o resorción.

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