los transgénicos en el perú - la papa transgénica
DESCRIPTION
Exposición del Ing. Nicolás Román Cabello, Director del Instituto de Biotecnología e Ingeniería Genética de la Universidad Nacional del Centro del Perú, respecto a los “Trabajos de Investigación del Instituto de Biotecnología e Ingeniería Genética de la Universidad Nacional del Centro del Perú sobre la papa transgénica resistente a la polilla”.TRANSCRIPT
UNIVERSIDAD NACIONAL DEL CENTRO DEL PERÚ
INSTITUTO DE BIOTECNOLOGÍA E INGENIERÍA GENÉTICA
FACULTAD DE AGRONOMÍA
LOS TRANSGENICOS EN EL PERÚ FORMACIÓN DE PLANTAS TRANSGÉNICAS DE PAPA
RESISTENTES A LAS POLILLAS CON GENES CRY 1A
(b) DE Bacillus thuringiensis UTILIZANDO CEPAS DE
Agrobacterium tumefasciens
NICOLÁS A. ROMÁN CABELLO
EMERSON C. LOZANO CARRASCO
ANTECEDENTES
*1996: SE CREA EL PROGRAMA DE BIOTECNOLOGÍA E INGENIERÍA
GENÉTICA DE LA FACULTAD DE AGRONOMÍA UNCP
1998: INICIO DE INVESTIGACIONES EN TRANSFORMACIÓN
BACTERIANA
* 2000: CREACIÓN DEL INSTITUTO DE BIOTECNOLOGÍA E
INGENIERÍA GENÉTICA (IBIG) DE LA UNCP-
* PRESENTACIÓN DE INVESTIGACIONES EN TRANSFORMACIÓN DE
E. COLI Y RHIZOBIUM: DE PISUM SATIVUM
IV CONGRESO PERUANO DE GENÉTICA: LIMA 2000
* PRESENTACIÓN DE INVESTIGACIÓN EN TRANSFORMACIÓN DE
AGROBACTERIM TUMEFASCIENS CON PLÁSMIDOS BACTERIANOS
PORTADORES DEL GEN CRY 1A (B) DE BACILLUS THURINGIENSIS: IV
CONGRESO INTERNACIONAL DE BIOTECNOLOGÍA. TACNA 2004
*TRANSFORMACIÓN DE EXPLANTES DE PAPA CON´ A. TUMEFASCIENS
CON PLÁSMIDOS TI PORTADORES DEL GEN CRY 1A (B) DE B.
THURINGIENSIS: PRODUCCIÓN DE PLANTAS TRANSGÉNICAS DE
PAPA. UNCP-FAC. AGRONOMÍA. TESIS. 2012
*
REFERENCIAS DEL INSTITUTO DE BIOTECNOLOGÍA
E INGENIERÍA GENÉTICA DE LA
UNIVERSIDAD NACIONAL DEL CENTRO DEL PERÚ
MISION: FORMAR UNA MASA CRITICA DE INVESTIGADORES CAPACES DE
DESARROLLAR NUEVOS CONOCIMIENTOS Y NUEVAS TEORÍAS Y DE RESOLVER
PROBLEMAS UTILIZANDO LOS CONOCIMIENTOS DE LA BIOLOGÍA MOLECULAR.
LINEAS DE INVESTIGACION
L1: INGENIERÍA GENÉTICA L2: MICROBIOLOGÍA
L3: CITOGENÉTICA L4: MARCADORES MOLECULARES (DNA)
L5: BIOINGENIERÍA L6: PROYECTOS ESPECIALES
ELECTROFORÉSIS
BANDAS DNA
PROCEDIMIENTO ESPECÍFICO
INTRODUCCION
El desarrollo de la agricultura ha promovido el uso de sustancias
químicas para combatir plagas y enfermedades, que disminuyen
grandemente el rendimiento de las cosechas, destacándose los
insecticidas que son los de mayor uso. Sin embargo la
aparición de resistencia, la alta residualidad y
toxicidad inespecífica, ha motivado la búsqueda de
estrategias en el manejo de plagas. Es así que se esta utilizando el gen que
produce la δ-endotoxina, proteína Cry, inclusión
proteica o cuerpo parasporal, del Bacillus
thuringiensis (Bt) el cual presenta actividad
insecticida como un factor de control para las
polillas de la papa (Symmetrischema tangolia y
Phthorimaea operculella), dicho gen ha sido
incorporado a plantas de papa mediante
técnicas de ingeniería genética.
PROBLEMA
Sí, se exponen explantes de papa con cepas de
Agrobacterium tumefasciens portadores de gen
Cry1Ab de Bacillus thuringiensis, entonces se
transforman las células expuestas de los
explantes de papa.
HIPÓTESIS
¿Si se exponen explantes de papa con cepas de
Agrobacterium tumefasciens portadores del gen
Cry1Ab de Bacillus thuringiensis estas se
transformarán, es decir se incorporara el gen en
el genoma de la planta?
OBJETIVOS
• Transformar tejidos de papa con cepas de
Agrobacterium tumefasciens portadores del
gen Cry1A(b) de Bacillus thuringiensis.
• Obtener plántulas que porten el gen
Cry1A(b) a través del cultivo in vitro de
explantes.
MATERIALES Y METODOS
1) Lugar de ejecución
Fase II transformación de explantes
con Agrobacterium portadores del
gen Cry1A(b).
Se llevo a cabo en el laboratorio de
Cultivos in vitro de la Facultad de
Agronomía de la UNCP.
Fase I transformación de
Agrobacterium con plásmidos
portadores del gen Cry1A(b).
Se llevo a cabo en el laboratorio del
Instituto de Biotecnología e Ingeniería
Genética (IBIG) de la UNCP.
Ingeniería Genética
¿CÓMO SE HACE
UNA PLANTA TRANSGÉNICA?
a) Variedades de papa.
Se utilizaron plántulas de papa de las variedades. Perricholi y Única, de cultivo in vitro de la Facultad de Agronomía. Para la transformación fue necesario contar con una elevada cantidad de plántulas, por lo que se realizó la multiplicación de 500 plántulas de cada variedad.
b) Gen de resistencia
Se utilizaron plásmidos pKTi-4 con el gen Cry1A(b) obtenido de Sigma-Aldrich en el año 1999, que contiene como componentes básicos: un gen promotor de expresión (CaMV), gen marcador de selección para resistencia al antibiótico Kanamicina, y el gen Cry1A(b) de Bacillus thuringiensis.
2) Materiales biológicos
Fase I
T0 = 0 mg de Km
T1 = 50 mg de Km
T2 = 100 mg de Km
T3 = 150 mg de Km
4) Variables evaluadas
Fase I:
•Número de colonias de A. tumefasciens, portadoras del gen Cry1A(b).
Fase II:
•Explantes de papa
•Explantes regenerados y enraizados.
3) Metodología
Para la transformación de explantes de papa, se utilizó el método indirecto
intermediado por A. tumefasciens, propuesto por Horsch en 1984.
Fase II
T0 = 0 mg de Km
T1 = 50 mg de Km
T2 = 100 mg de Km
T3 = 150 mg de Km
Tratamientos
1) Cultivo bacteriano.
a) Las cepas transformadas, se llevaron a diluciones 10, 10-1, 10-2, 10-3, 10-4, 10-5 y 10-6.
b) Se preparó el medio ELMARC de levadura, manitol y rojo de Congo.
c) Cuando el medio tuvo entre 40 a 45 ºC, se añadió el marcador de selección (antibiótico
Kanamicina), de acuerdo a los tratamientos.
d) Se dispenso 20 ml/placa del medio ELMARC.
e) Se procedió a sembrar las cepas de A. tumefasciens (dilución 10-6), transformadas con los
plásmidos pKTi-4 portadoras del gen Cry1A(b).
f) Finalmente se llevaron las placas a la incubadora a 28º C durante 48 horas.
2) Evaluación.
Se realizó el conteo aplicando la técnica de recuento en placa, de las unidades formadoras de
colonias (UFC), resistentes a las diferentes dosis de antibiótico Kanamicina, incorporadoi en el
plásmido pKTi-4 como gen marcador de selección.
3) Amplificación.
Las bacterias sobrevivientes se re cultivaron para amplificar el plásmido bacteriano y el gen
Cry1Ab.
4) Conservación.
Las placas, con las bacterias se guardaron en la congeladora, a una temperatura de 4º C para evitar
su proliferación.
Fase I. Cultivo de las bacterias transformadas con plásmidos pKTi-4
5) Procedimiento
1) Co cultivo
a) Se cortaron discos de hoja y entrenudos para la var. Perricholi y entrenudo para la var. Única.
b) Se preparó el medio de cultivo propuesto por el PGS (Plant Genetics Systems), modificado de De Block, 1988.
c) En el medio PGS, se pusieron en contacto los explantes con las bacterias a una concentración de 3.85 x 106 cel/ml, para asegurar que la solución de bacterias entre en contacto con las heridas ocasionadas por el corte.
d) Las placas fueron selladas con parafilm y envueltas con papel aluminio para darles condiciones de baja intensidad de luz.
e) Así dispuestas, se mantuvieron en la incubadora a 23º C durante 24 horas.
2) Formación de callos
a) Después de las 24 horas se retiraron los explantes del co-cultivo.
b) Los explantes se colocaron sobre papel filtro estéril para quitar la presencia del medio líquido.
c) Luego se transfirieron a un medio de cultivo para la formación de callos (método Cardi et al., 1993).
d) Con la finalidad de eliminar la presencia del A. tumefasciens, se añadió el antibiótico Cefotaxima (Claforan) la dosis de 50 mg/l.
e) Los explantes fueron transferidos a medios frescos cada dos semanas, hasta obtener 4-5 cm de diámetro aproximadamente.
3) Regeneración
a) Cuando los callos tuvieron de 0,5 a 0,6 cm de diámetro aprox., fueron trasferidos a placas petri conteniendo el medio, propuesto por Cardi et al., 1993, para regeneración de brotes.
b) Los callos fueron transferidos a medios frescos cada dos semanas, hasta obtener brotes.
c) Los brotes se transfirieron a medios de cultivo para enraizamiento (Murashige & Skoog, 1962).
Los medios de cultivo para la regeneración contenían las diferentes dosis del antibiótico Kanamicina, con el objetivo de seleccionar aquellos brotes resistentes al antibiótico Kanamicina y por consiguiente el gen Cry1A(b).
Fase II. Transformación de los explantes de papa
RESULTADOS Y DISCUSION
TRANSFORMACIÓN
CEPAS DE Agrobacterium tumefasciens
Cuadro 1. Análisis de varianza del número de colonias por efecto de las diferentes
dosis del antibiótico Kanamicina, α = 0,01.
En el Cuadro 1 se observa que,
en la fuente de tratamientos
existe diferencia estadística
altamente significativa (Prob. >
0,01); de lo que se infiere que la
formación de colonias varia por
efecto de las diferentes dosis del
antibiótico Kanamicina.
Fase I: Cultivo de las cepas de A. tumefasciens, portadores del gen
Cry1A(b) a diferentes dosis del antibiótico Kanamicina.
F. de V. GL SC CM Fc Sig.
Tratamientos
Error
Total
3
12
15
52,4733
2,5621
55,0374
17,4918
0,2135
81,93 * *
S = 0,46 C.V. = 8,19% x¯ = 5,64
Cuadro 2: Prueba de significación de los promedios del número de colonias por
efecto de las diferentes dosis del antibiótico Kanamicina, α = 0,01.
En el Cuadro 2 se observa que, el tratamiento con 0 mg/l de Km presento
mayor numero de colonias, diferiendo significativamente de los demás
tratamientos. Esto indica que no todas las bacterias del tratamiento 1,
tienen el plásmido recombinante con el gen Cry1A(b), por lo cual no
sobrevivieron al efecto del antibiótico Kanamicina.
Entre los tratamientos 2, 3 y 4 las diferencias estadísticas no son
significativas debido a que estas si tienen el plásmido recombinante, en el
cual esta el gen de resistencia al antibiótico Kanamicina, que sintetiza una
enzima que neutraliza el principio activo del antibiótico y
consecuentemente indica que el gen Cry1A(b) ingreso a la bacteria.
O.M. Tratamientos Promedio Significación
1
2
3
4
0 mg/l Km
50 mg/l Km
150 mg/l Km
100 mg/l Km
8,76
4,79
4,70
4,31
a
b
b
b
ALS(D)0,01 = 0,99 1,05 1,08
Fase II: Transformación de explantes.
2) Formación de callos
1) Co-cultivo.
Formación de callos de la variedad
Perricholi, sometidos a 100 mg/l de Km.
Formación de callos de la variedad
Única, sometidos a 75 mg/l de Km.
Co-cultivo de las variedades
Perricholi y Única.
La organogénesis comprendió el desarrollo de yemas o de
meristemas radicales a partir de los callos. En el proceso de
formación de callos, hubo variación en los requerimientos de los
reguladores de crecimiento para la organogénesis según el tipo de
tejido usado como explante (Litz et al., 1983), por lo cual la
concentración del AIA (Acido Indol Acetico) fue mayor con respecto
al BAP (Bencilaminopurina).
La variación en la respuesta del tipo de explante perteneciente a la
misma Variedad (Perricholi) fue considerable (Flick et al., 1983;
Murashige, 1974). El tamaño del explante afecto en la respuesta a
la organogénesis, los explantes grandes poseen un potencial
regenerador considerablemente mayor; la viabilidad y la capacidad
regenerativa de explantes muy pequeños tiende a ser baja, y a ser
dañados muy fácilmente. Asimismo el potencial organogenético del
tipo de explante fue inversamente proporcional a su edad fisiológica
(Alleweldt et al., 1962).
Cuadro 3. Análisis de varianza del número de explantes (entrenudo) de la var. Perricholi, por
efecto de las diferentes dosis del antibiótico Kanamicina, α = 0,01
Cuadro 4. Análisis de varianza del número de explantes (discos de hoja) de la var. Perricholi, por
efecto de las diferentes dosis del antibiótico Kanamicina, α = 0,01
Explantes sometidos a las diferentes dosis del antibiótico
Kanamicina
F. de V. GL SC CM Fc Sig.
Tratamientos
Error
Total
3
8
11
0,038
0,307
0,345
0,013
0,038
0,33 ns
S = 0,196 C.V. = 7,85% x¯ = 2,498
C.V. = 14,14% x¯ = 1,580 S = 0,2247
F. de V. GL SC CM Fc Sig.
Tratamientos
Error
Total
3
8
11
0,1978
0,4043
0,6021
0,0659
0,0505
1,30 ns
Cuadro 5. Análisis de varianza del número de explantes (entrenudo) de la var. Única, por
efecto de las diferentes dosis del antibiótico Kanamicina, α = 0,01
En el ANVA de las tres transformaciones sometidas a las diferentes dosis del
antibiótico Kanamicina, se observa que no existen diferencias estadísticas
significativas, sin embargo no todos los callos llegaron a generar brotes. Una de las
razones fue por la presencia del A. tumefasciens en el medio para la regeneración,
es decir que al momento de trasferir los explantes al medio para la formación de
callos, no se eliminaron las bacterias, lo cual afecto el desarrollo de algunos callos y
consecuentemente la regeneración de brotes. Se adiciono 50 mg/l del antibiótico
claforan para eliminar el exceso del A. tumefasciens, pero no se obtuvieron
resultados, posiblemente debido a que no era la dosis optima.
F. de V. GL SC CM Fc Sig.
Tratamientos
Error
Total
3
8
11
0,0294
0,3779
0,4073
0,0098
0,0472
0,21 ns
S = 0,217 C.V. = 11,67% x¯ = 1,86
Cuadro 6. Porcentaje de regeneración de explantes de las variedades Perricholi y Única.
COMO SE OBSERVA EN EL
CUADRO 6, EL EXPLANTE
ENTRENUDO PUEDE SER
REGENERADO CON MAYOR
FACILIDAD, CON RESPECTO AL
EXPLANTE DISCOS DE HOJA,
LUEGO DE LA TRANSFORMACIÓN.
3) Regeneración
Variedad Tipo de
explante
№ total
de
explantes
№ de
explantes
regenerados
% de
regeneración
Perricholi
Única
Entrenudo
Discos de hoja
Entrenudo
120
80
120
11
2
8
9,17
2,5
6,67
los resultados obtenidos, son corroborados por el trabajo de
investigación que se hizo en la universidad nacional agraria la
molina, donde se transformaron clones de papa con dos cepas de a.
tumefasciens portadoras del gen cry1ab, utilizando dos tipos de
explantes (entrenudo y discos de hoja), se obtuvieron 8 líneas
transgénicas del clon kw ptm29, 71 líneas del clon mi 4910 y 77
líneas transgénicas del cultivar desireé (cañedo, 2000).
ASIMISMO, EN 1992 EL CENTRO INTERNACIONAL DE LA PAPA (CIP),
Y LA EMPRESA PRIVADA BELGA “PLANT GENETIC SYSTEMS”
(PGS), INICIARON UN PROYECTO EN COLABORACIÓN PARA
DESARROLLAR VARIEDADES TRANSGÉNICAS DE PAPA CON
RESISTENCIA A LA POLILLA EN EL CAMPO Y ALMACÉN. ESTA
ESTRATEGIA CONSISTIÓ EN INTRODUCIR EL GEN DE B.
THURINGIENSIS POR EL MÉTODO AGROBACTERIUM, SE
OBTUVIERON DIEZ VARIEDADES DE PAPA, LAS LÍNEAS
TRANSGÉNICAS MOSTRARON ALTA RESISTENCIA CONTRA EL
ATAQUE DE LAS LARVAS DE LA POLILLA EN HOJAS Y
TUBÉRCULOS, EN COMPARACIÓN CON PLANTAS DE LA MISMA
VARIEDAD NO TRANSFORMADAS (CIP, 1998).
CONCLUSIONES
SE TRANSFORMARON EXPLANTES DE PAPA, DE LAS VARIEDADES
PERRICHOLI Y ÚNICA, CON CEPAS DE A. tumefasciens PORTADORES
DEL GEN CRY1A(B) DE B. thuringiensis.
SE OBTUVIERON ONCE REGENERANTES (PLÁNTULAS) DE LA
VARIEDAD PERRICHOLI Y OCHO DE LA VARIEDAD ÚNICA, A PARTIR DE
LOS CALLOS TRANSFORMADOS CON CEPAS DE A. TUMEFASCIENS, ES
DECIR PORTADORES DEL GEN CRY1A(B) PARA RESISTENCIA A LA
POLILLA.
EN LAS CONDICIONES DEL EXPERIMENTO, EL EXPLANTE
ENTRENUDO, DE AMBAS VARIEDADES TUVO MAYOR HABILIDAD PARA
REGENERAR NUEVAS PLÁNTULAS.
SE AVANZÓ HACIA LA OBTENCIÓN DE UN SISTEMA DE
TRANSFORMACIÓN DE TEJIDOS DE PAPA PARA LAS VARIEDADES
PERRICHOLI Y ÚNICA.
RECOMENDACIONES
Realizar la caracterización molecular de las variedades
transformadas con el gen Cry1A(b), utilizando marcadores
moleculares de DNA.
Para evitar la contaminación microbiológica en el
laboratorio, aplicar estrictamente las normas de
bioseguridad y el uso de las Buenas Practicas de
Laboratorio (BPL).
Continuar la investigación con pruebas en invernadero y
campo.
ANEXOS
Fase I. Cultivo de cepas de A. tumefasciens.
A. tumefasciens observadas al microscopio
Antibióticos Cefotaxima y Kanamicina
Placas petri con A. tumefasciens, a
diferentes dosis del antibiótico Kanamicina
Siembra de cepas de A. tumefasciens
en la cámara de flujo laminar
Fase II. Transformación de los explantes de papa de la
variedad Perricholi.
Regeneración de brote a
partir del callo transformado
Cortes para el co-cultivo Formación de callos
sometidos a 100mg/l de Km
Regeneración de brote a
partir del callo transformado Plántulas de papa transformadas con el
gen Cry1A(b) de B. thuringiensis.
Plántulas de papa transformadas con el gen
Cry1A(b) de B. thuringiensis.
Fase II. Transformación de explantes de papa de la variedad
Única.
Callos con inicio de
formación de brotes
Formación de brotes
Formación de callos
TRANSGÉNICOS LA
OPORTUNIDAD PERDIDA
Crecimiento mundial de la población
CULTIVOS TRANSGÉNICOS EN EL MUNDO
En el año 2011, según el reporte del Servicio Internacional para la Adquisición de Aplicaciones
Agrobiotecnológicas (ISAAA, por su sigla en inglés) los cultivos transgénicos sumaron 160 millones de
hectáreas en 29 países, lo que evidencia un crecimiento sostenido en la adopción de esta tecnología.
Top 10 de los países con cultivos biotecnológicos
Fuente: Clive James, 2013
DISMINUCIÓN DEL PROGRESO EN INCREMENTAR LOS RENDIMIENTOS DE NUEVAS VARIEDADES POR MEJORAMIENTO GENÉTICO CONVENCIONAL
ORGANIZACIONES INTERNACIONALES QUE SE
PRONUNCIARON FAVORABLEMENTE A LA
SEGURIDAD DE LOS TRANSGÉNICOS
• ORGANIZACIÓN MUNDIAL DE LA SALUD
• FOOD AND DRUG ADMINISTRATION EE.UU.
• ROYAL SOCIETY, UNITED KINGDOM
• ASOCIACIÓN DE ACADEMIAS DE CIENCIAS DE ALEMANIA
• ACADEMIA DE CIENCIAS DE CHINA
• NATIONAL ACADEMY OF SCIENCES-NATIONAL RESEARCH
COUNCIL EE.UU.
• ACADEMIAS NACIONALES DE CIENCIAS DE INDIA, BRASIL,
MÉXICO
• ACADEMIA DE MEDICINA DE FRANCIA
• ASOCIACIÓN DE MÉDICOS BRITÁNICOS
• ASOCIACIÓN AMERICANA DE TOXICOLOGÍA
• FAO
• EL VATICANO
Evaluación de inocuidad de los OGM
o La evaluación de inocuidad del alimento sigue un método estructurado e
integrado que se aplica “caso por caso”, con anterioridad a su salida al
mercado.
o Los datos e informaciones deben estar basados en sólidos principios
científicos, obtenidos usando métodos apropiados y analizados mediante
adecuadas técnicas estadísticas, debiendo ser de calidad y cantidad
suficientes que permitan realizar una evaluación científica.
HASTA EL DÍA DE HOY NO SE HA ENCONTRADO UN SOLO CASO
COMPROBADO CIENTÍFICAMENTE DE DAÑO A LA SALUD EN
HUMANOS O ANIMALES DOMÉSTICOS POR EL USO DE OGMS.
Productos derivados de OGMs para alimento humano que no difieran significativamente de sus pares convencionales, pasarán a ser considerados “equivalentes sustanciales” (CODEX Alimentarius) y a ser no regulados.
NECESITAMOS CON URGENCIA UTILIZAR LAS
HERRAMIENTAS CIENTÍFICAS Y
TECNOLÓGICA QUE YA ESTAN A NUESTRO
ALCANCE
´¿DE QUE NOS SIRVE LA BIODIVERSIDAD
SIN BIOTECNOLOGÍA?
¿SEGUIREMOS GUARDANDO
Y PRESERVANDO NUESTROS CULTIVOS
PARA LA CODICIA DE LOS EXTRANJEROS?
¿NO HEMOS APRENDIDO LA LECCIÓN DEL YACóN, OCA,
MASHUA OLLUCO, PAPA, ARRACACHA, CHICURO,
QUINUA, KIWICHA, UÑA DE GATO ETC.?
Oportunidades que ofrece la Biotecnología en el Perú
MEJORAMIENTO GENÉTICO DE CULTIVOS (MAIZ, ALGODÓN, SORGO,
HORTALIZAS) FRUTALES TRANSGÉNICOS DE MADURACIÓN
RETARDADA (MANGO, CHIRIMOYA) CONTROL DE LA ROYA DEL CAFÉ,
“RANCHA” DE LA PAPA ETC.
INDUCCIÓN DE RESISTENCIA AL STRESS ABIÓTICO: SEQUÍA
(ALGARROBO, ESPÁRRAGO), HELADAS (HORTALIZAS), SALINIDAD
(VID)
MEJORAMIENTO GENÉTICO DE ALPACAS (RESISTENCIA, CALIDAD DE
FIBRA)
MEJORAMIENTO GENÉTICO DE ESPECIES ACUÍCOLAS (CAMARÓN, C.
ABANICO, ERIZO, PAICHE, PACO, TRUCHA)
SALUD ANIMAL Y ACUÍCOLA: DIAGNÓSTICOS Y VACUNAS
CLONACIÓN DE ESPECIES AMAZÓNICAS DE ALTO VALOR (CAOBA
, CEDRO, PALMAS, ORQUÍDEAS)
PRODUCCIÓN DE BIOCIDAS Y FERTILIZANTES MEJORADOS
BIOTRATAMIENTO Y BIORREMEDIACIÓN DE RESIDUOS
BIOLIXIVIACIÓN DE MINERALES CON BACTERIAS MG y NMG
(MINERALES DE Cu, As. Cr. Etc)
DESARROLLO DE VACUNAS PARA ENFERMEDADES
TROPICALES ENDÉMICAS (LEISHMANIASIS, MALARIA ETC)
DIAGNÓSTICOS MOLECULARES CON ANTÍGENOS LOCALES
PARA CÁNCER.
VALORIZACIÓN DE RECUSOS GENÉTICOS
CARACTERIZACIÓN MOLECULAR DE GENES CON
PROPIEDADES MEDICINALES, INDUSTRIALES Y PRODUCCIÓN
BIOTECNOLÓGICA DE PRODUCTOS ACTIVOS
ALEGATOS EN CONTRA
Daños a la salud humana
No ha habido un solo caso reportado en 16 años de uso de
alimentos transgénicos de daño a la salud humana.
Los sistemas de análisis y manejo de riesgo se aplican y se
aplicarán caso por caso con la mayor prolijidad y usando de la
experiencia extranjera, como se hace para los medicamentos.
Alergias
El 8% de la población mundial sufre algún tipo de alergias
(O.M.S.)
Alergia, antibióticos, vacunas edulcolorantes, analgésicos, polen,
polvo, dentífricos (pasta dental), analgésicos.
Alergia a plantas cultivadas tratadas con fungicidas,
fitohormonas y agroquímicos en general.
Daños a la biodiversidad
Para los cultivos no nativos del Perú no hay problema: no hay a quien afectar:
ARROZ, CAÑA DE AZÚCAR, CAFÉ, CÍTRICOS, ESPÁRRAGOS, MANGO,
PALTO, FRUTALES DE CLIMA TEMPLADO, VID, OLIVO, HORTALIZAS,
MAÍZ AMARILLO DURO, ALGODÓN, TRIGO, CEBADA, ALFALFA,
FORRAJERAS, SORGO, HABAS, FRIJOL CASTILLA, PAPRIKA.
Para los cultivos nativos del Perú se aplicarán las normas de bioseguridad
más avanzadas por los Organismos Sectoriales Competentes.
Dependencia del extranjero
La dependencia del extranjero existe actualmente en alimentos; se trata de
disminuirla produciendo más en el Perú.
Los agricultores que no compran semillas a semilleristas son los mas
atrasados. No se puede mantener a la agricultura del Perú en estado
permanente de subdesarrollo. Hoy se compra semilla de maíz híbrido, arroz
certificado, hortalizas, etc. de fuentes locales o extranjeras; el espárrago es el
mejor ejemplo.
¿Acaso no somos dependientes en telefonía, informática, software,
automóviles, TV?
CASI SIEMPRE LOS ECOFUNDAMENTALISTAS:
DESCONOCEN LAS TÉCNICAS DE LA INGENIERÍA GENÉTICA.
SON PERSONAS NO INVOLUCRADAS EN LAS TECNOLOGÍAS DEL
DNA RECOMBINANTE.
CREEN QUE LOS ORGANISMOS TRANSGÉNICOS SON
“ARTIFICIALES” (NO NATURALES) Ó SINTÉTICOS.
SON FATALISTAS NO COMPRENDEN EL IR Y DEVENIR DE LA CIENCIA
A LO LARGO DE LA HISTORIA, SOBRE TODO DE LA T- DNAR.
MUCHOS DE ELLOS NO QUIEREN PERDER SU POSICIONAMIENTO EN
EMPRESAS, MINISTERIOS, UNIVERSIDADES, ETC. Y SE SIENTEN
SUPERADOS POR EL CAMBIO QUE NO ENTIENDEN.