control biológico de plagas en cítricos
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J. Isabel López-Arroyo
Control Biológico de Plagas en Cítricos
Simposio Internacional de Producción en Cítricos
27-28 de Abril de 2017
Hermosillo, Sonora, México
Campo Experimental General Terán, N.L., Méx.
Control Biológico de Plagas en Cítricos
Contenido
Introducción
Control Biológico Clásico
Control Biológico por Aumento
Control Biológico por Conservación
Consideraciones en el Uso de Agentes de Control Biológico
Insectos y ácaros fitófagos reportados asociados al cultivo
de los cítricos en México
(López-Arroyo y Loera-Gallardo, 2009)
Insectos y ácaros fitófagos reportados asociados al cultivo
de los cítricos en México
(López-Arroyo y Loera-Gallardo, 2009)
Insectos y ácaros fitófagos reportados asociados al cultivo
de los cítricos en México
(López-Arroyo y Loera-Gallardo, 2009)
Insectos y ácaros fitófagos reportados asociados al cultivo
de los cítricos en México
(López-Arroyo y Loera-Gallardo, 2009)
Insectos y ácaros fitófagos reportados asociados al cultivo
de los cítricos en México
(López-Arroyo y Loera-Gallardo, 2009)
Plagas de los Cítricos en México
Mosca Mexicana de la Fruta
Psílido Asiático de los Cítricos
Problemas a resolver
Huanglongbing
Foto: Pedro Robles
Foto: Sóstenes Varela
“Uso de organismos (depredadores, parasitoides,
entomopatógenos) para reducir poblaciones plaga a un
nivel más bajo al que ocurrirían en ausencia de ellos”
P. DeBach
Control Biológico
Metodologías de Control Biológico
•Control Biológico Clásico
•Control Biológico por Aumento
•Control Biológico por Conservación
Rodolia cardinalis-Iceryia purchasi (1889)
Casos Exitosos de Control Biológico
Delphastus
Casos Exitosos de Control Biológico
Encarsia opulenta
Amitus hesperidum
Mosca prieta de los cítricos,
Aleurocanthus woglumi
Delphastus pusillus
Ninfas de la mosca blanca Dialeurodes citrifolii (Morgan).
Huevos de la mosca blanca Paraleyrodes perseae (Quaintance)
Huevos de la mosca blanca lanuda Aleurothrixus floccosus (Maskell).
Ataque de la mosca blanca lanuda,
Aleurothrixus floccosus (Maskell).
16
1413
1211
10
2
9 8765
43
1
15
1917
18 20 21
Respuesta de Ceraeochrysa cincta a infestaciones de mosca blanca
Control Biológico Olla v-nigrum
(Coleoptera: Coccinellidae)
2000-2001. 452,000 ladybugs.
1. Azya orbigera
2. Brachiacantha decora
3. Brachiacantha testudo
4. Coccinella septempunctata
5. Coleomegilla maculata
6. Curinus coeruleus
7. Cycloneda sanguinea
8. Chilocorus cacti
8. Exochomus childreni guexi
10. Harmonia axyridis
11. Hippodamia convergens
12. Mononeda marginata
13. Olla v-nigrum
14. Psyllobora renifer
15. Rodolia cardinalis
16. Scymnus bicolor
17. Scymnus loewii
Especies de Coccinellidae (Coleoptera) asociadas
a los cítricos de México
Especies diminutas de Coccinellidae (Coleóptera)
1. Chrysopa nigricornis
2. Chrysopa quadripunctata
3. Chrysoperla exotera
4. Chrysoperla externa
5. Chrysoperla comanche
6. Chrysoperla rufilabris
7. Chrysopodes collaris
8. Ceraeochrysa cubana
9. Ceraeochrysa claveri
10. Ceraeochrysa elegans
11. Ceraeochrysa smithi
12. Ceraeochrysa sp. nr. cincta
13. Ceraeochrysa valida
14. Eremochrysa punctinervis
15. Leucochrysa texana
Especies de Chrysopidae (Neuroptera) asociadas
a los cítricos de México
Abundancia de depredadores asociados
a los cítricos
Hemerobiidae (18)
Coccinellidae (96)
1. Chrysopa nigricornis
2. Chrysopa quadripunctata
3. Chrysoperla exotera
4. Chrysoperla externa
5. Chrysoperla comanche
6. Chrysoperla rufilabris
7. Chrysopodes collaris
8. Ceraeochrysa cubana
9. Ceraeochrysa claveri
10. Ceraeochrysa elegans
11. Ceraeochrysa smithi
12. Ceraeochrysa sp. nr. cincta
13. Ceraeochrysa valida
14. Eremochrysa punctinervis
15. Leucochrysa texana
Chrysopidae (3221)
Control biológico-Incremento
EspeciesLarva II %
D1
(NI-NII)
D2
(NIII-NIV)
D3
(NV)
C. rufilabris 88 ± 1.6 A 70 ± 2.2 AB 55 ± 2.2 AB
C. comanche 76± 2.8 B 49 ± 3.5 C 46 ± 3.1 B
C. externa 92± 1.0 A 78 ±1.8 A 60± 2.7 A
Ce. valida 91 ± 0.8 A 62 ±1.0B 51± 1.4AB
Ce. sp.nr. cincta 95± 1.6 A 59± 2.6 BC 52± 2.5 AB
Ce. claveri 91± 2.2 A 62± 2.4 B 60± 2.1A
EspeciesLarva III %
D1
(NI-NII)
D2
(NIII-NIV)
D3
(NV)
C. rufilabris 94 ± 0.9 BC 84 ± 1.8 ABC 82 ±2.2 A
C. comanche 95 ± 0.6 AB 86 ± 1.6 AB 78 ± 2.4 A
C. externa 99 ± 0.3 A 90 ± 1.7 A 84 ±1.4 A
Ce. valida 90± 1.4. C 75± 1.5C 43±2.7B
Ce. sp.nr. cincta 98± 3.11 AB 78± 4.0BC 82±2.3 A
Ce. claveri 98± 0.4 AB 87±1.6 AB 84± 1.6 A
Medias en forma vertical con la misma letra no son significativamente diferentes, (1 Media ± EE )
Depredación de ninfas de D. citri por especies de Chrysopidae (Neuroptera)
Veamos un
video
Carga-basura
0
20
40
60
80
100
120
Liberación Crisopa
% Prom Testigo.
Evaluación en campo de liberaciones de Chrysoperla comanche (Neuroptera: Chrysopidae) contra D. citri. Limón Persa. El Carrizo, Sinaloa.
Control biológico-Incremento
Aplicación de insecticidas
% d
e re
du
cció
n d
e p
obla
cion
es d
e D
. cit
ri
(30 huevos/árbol/2 semanas)
Talstar TalstarEngeo
Especímen 1
33 días
Especímen 2
33 días
Especímen 3
11 días
No.
de
ad
ulto
s co
nsum
ida
s
29.7
17.6
13.5
0
5
10
15
20
25
30
35
No.
de
ad
ulto
s co
nsum
ida
sConsumo de adultos de Diaphorina citri por especímenes
de la familia Mantispidae (Neuroptera)
Control biológico-Conservación
Dr. Atilano Contreras. UNAM
Veamos un
video
ENEMIGOS NATURALES DE Diaphorina citri EN MÉXICO
Veamos un
video
Geocoris pallensXXIII CURSO NACIONAL DE CONTROL BIOLÓGICO
Consumo de ninfas de Diaphorina citri por Geocoris pallens. N
o. d
e ni
nfas
con
sum
ida
s
Días
3000
15 301 3 5 7 9 1113151719212325272931333537394143454749515355575961636567697173757779818385878991939597
2000
1000
500
45 60 75 90
Predation of D. citri adults byZelus renardii and Geocoris punctipes.
0
5
10
15
20
25
30
0 100 200 300 400 500
Nu
m a
cu
m p
resas a
tacad
as p
or
dep
red
ad
or
Tiempo (min)
Geocoris sp. (N=10) Zelus renardii (N=10 durante 1 h, N=5 después
Z. renardii: 13.5 D. citri atacked in 85 min
G. punctipes: 1.9 D. citri atacked in 140 min
Nu
mb
erof
AC
P a
du
lts
ata
cked
by
the
pre
da
tors
CON POLEN SIN POLEN SOLO
POLEN
D. citri
DIETAS
EFECTO DE DIETAS EN LA REPRODUCCIÓN
DE Coleomegilla maculata
No. h
uevo
s/h
em
bra
/4
5 d
ía
s
Mononeda marginata (Linnaeus)
(Coleoptera: Coccinellidae)
0
300
600
900
4to Instar
(2 días)
1-3 Instar
(9 días)
669
265
Total= 934
Consumo de ninfas de Diaphorina citri por Mononeda marginata.
Phyllobaenus pubescens (Coleoptera: Cleridae)
0
50
100
150
200
250
300
350
400
450
500
31
-ju
l.-1
3
01
-ago
.-1
3
02
-ago
.-1
3
03
-ago
.-1
3
04
-ago
.-1
3
05
-ago
.-1
3
06
-ago
.-1
3
07
-ago
.-1
3
08
-ago
.-1
3
09
-ago
.-1
3
10
-ago
.-1
3
11
-ago
.-1
3
12
-ago
.-1
3
13
-ago
.-1
3
14
-ago
.-1
3
15
-ago
.-1
3
16
-ago
.-1
3
17
-ago
.-1
3
18
-ago
.-1
3
19
-ago
.-1
3
20
-ago
.-1
3
21
-ago
.-1
3
22
-ago
.-1
3
23
-ago
.-1
3
24
-ago
.-1
3
Parejas Hembras Machos
Pro
med
io d
e hu
evos
dep
red
ad
os
Bothrotes canaliculatus
(Coleoptera: Tenebrionidae)
0
300
600
900
1200
1500
1800
2100
Días
40No
. Nin
fas
de
pre
dad
as
20
¡El ataque del sorprendente Pinacate vs Diaphorina citri !
Atomosia melanopogon Atomosia puella
(Fotos: S. Díaz-Martínez, 2016)(Diptera: Asilidae)
Depredadores de D. citri
CONTROL BIOLÓGICO DE INSECTOS PLAGA EN EL SURESTE DE MÉXICO
Coptera haywardi Loiácono (Hymenoptera: Diapriidae)
Diachasmimorpha longicaudata Ashmead
(Hymenoptera: Braconidae)
SAGARPA: Tapachula, Chis.
Cap. De Producción= 50,000,000/semana
Evaluación de Diachasmimorpha longicaudata en
áreas silvestres de N. L.
0
300
600
900
1200
HualahuisesLinares
Montemorelos
(Testigo)
Parasitismo= 7.1%
Parasitismo= 0.7%
Parasitismo= 10.4%
Presencia de A. obliqua más acentuado en los árboles de
jobos (Spondias spp.) presentes en la zona periférica.
El incremento en densidad generó directamente
un aumento significativo en el parasitismo.
Liberaciones
2009-2010: 1-2 millones/semana
2011-2016: 4- 5 millones/semana
3 d, 12.5%
4 d, 13%
4 d, 4.4%
1 d, 4-10%
Evaluación de Coptera haywardi en huertos de cítricos y
áreas silvestres de N. L.
3 d, 2.1%
4 d, 6.2%
1.5 M
25 M
50 M
10 M
Especies introducidas
• Fopius arisanus
• Parasitoide de huevos
• Originario de Asia Tropical
• Dominante en poblaciones de Bactrocera spp.
• Se tiene una colonia adaptada a Anastrepha.
• La propuesta realizar un control biológico con el
establecimiento de esta especie.
Haplotipos de Tamarixia radiata en México
2007
2007
2010
2010
2008
2008
2010
20102010
2010
2006, 2007,
2011, 2013
2006, 2007,
2010, 2011,
2013
Florida
H1: 2004, 2006,
2007, 2008
H2: 2006, 2008
Control biológico-Clásico
Haplotipo H3
Haplotipo H4
Haplotipo H5
Haplotipo H2
Haplotipo H1
20092009
2009
2009
Veamos un
video
Massive Lab Production of Tamarixia radiata in Mexico
SAGARPA, SENASICA, CNRCB, Tecomán, Colima, Mexico
0
25
50
75
100
Mo
rtalid
ad
(%
)
Beauveria
bassiana
Paecylomyces
fumosoroseus
AMBAS 1
TestigoPaecylomyces
fumosoroseus
PfAPH
P = 0.0001; Tukey, α = 0.05
EVALUACIÓN EN CAMPO DE HONGOS ENTOMOPATÓGENOS
PARA EL CONTROL DE Toxopera citricida.
3 DÍAS DESPUÉS DE LA ASPERSIÓN.
a
b
bb
13.4
5.0
23.6
7.522.1
16.1
69.4
46.1
65.6
28.9
58.5
48.8
8.7
-20
0
20
40
60
80
100
120
Effect of entomopathogenic fungi on
Hippodamia convergens adults
129 126 Is45 128 TESTIGOTESTIGO
ABSOLUTO 127 12.13 122 121 123 TESTIGOTESTIGO
ABSOLUTO
Isaria fumosoroeus Metarhizium anisopliae
STRAINS
Hirsutella citriformis Speare
Tamaulipas
S.L.P.
Hidalgo
Tabasco
Veracruz
Campeche
Yucatán
Chiapas
Colima Q. Roo
Testigo A-Tabasco A-SLP
Check
Control biológico-Conservación
0
2
4
6
8
10
Evaluación de aspersiones de suplementos alimenticios para atraer insectos
benéficos contra escama blanca del mango
Agua
+azúcar
Agua Agua
+ leche
Agua
+
levadura
Testigo Agua
+azúcar
+ leche
Agua
+azúcar
+
levadura
Tukey (α=0.05)
b
bc
a
a
ab
bcd
d
(Inf. Dr.L.M. Hernández.-INIFAP)
0
5
10
15
20
A
BB
Relación Maleza- Depredadores en CítricosN
o.
de i
nsecto
s/1
2 á
rbo
les
P= 0.0001
Testigo
(sin maleza)
Maleza en las
hileras de
árboles
T R A T A M I E N T O S
Maleza entre
las hileras de
árboles
Actividad de manejo
NED
UE
Toma de decisiones en el manejo integrado de plagas
Chemical treatment of whiteflies is not effective; temporary
suppression may be achieved only to be followed by a
resurgence of the pest. This is especially true if broad-
spectrum insecticides, such as methomyl or malathion,
are used.
Chemical Control
University of California
IPM Guidelines