¨campaña amp namuncurá banco burdwood: comprendiendo la

Informe de Campaña ¨AMP N-BB: BBC¨ – BOA NOV 2018

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¨Campaña AMP Namuncurá – Banco Burdwood:

Comprendiendo la bomba biológica de carbono¨

Ushuaia – Ushuaia

9-25 de noviembre 2018

BO Austral

Jefa Científica Natalia Dellabianca (CADIC-CONICET)

Coordinadora científica Irene R. Schloss (CADIC-CONICET)

Coordinador GT Banco Burdwood Gustavo A. Lovrich (CADIC-CONICET)


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Indice Resumen ................................................................................................................................................................... 3

1. Introducción ....................................................................................................................................................... 4

2. Objetivos .............................................................................................................................................................. 5

3. Estaciones y derrota realizadas ................................................................................................................. 7

4. Actividades realizadas ................................................................................................................................... 8

4.1. Oceanografía física .................................................................................................................................. 9

4.1.1. Perfilado de propiedades del agua de mar y correntometría ..................................... 9

4.1.2. Determinación de Carbono Orgánico Particulado en la columna de agua ............... 32

4.1.3. Fondeos de anclajes instrumentados autónomos .................................................... 36

4.1.4. Mediciones radiométricas in situ .............................................................................. 43

4.2. Comunidad microbiana ....................................................................................................................... 46

4.2.1. Tramas tróficas microbianas y sus implicancias para los flujos biogeoquímicos ...... 46

4.2.2. Estructura vertical y composición isotópica del plancton eucariota unicelular en

primavera ............................................................................................................................ 51

4.2.3. Muestreo e identificación de especies fitoplanctónicas nocivas .............................. 58

4.2.4. Determinación de la producción primaria ................................................................ 60

4.3. Comunidad Pelágica ............................................................................................................................. 62

4.3.1. Dinámica del zooplancton y larvas de sardina fueguina ........................................... 62

4.3.2. Variaciones espaciales y temporales en la densidad energética de larvas de peces 64

4.3.3. Análisis de agua para microquímica de otolitos de peces nototénidos .................... 65

4.3.4. Ecología espacial de aves y mamíferos marinos ....................................................... 66

4.4. Estudios integrales ................................................................................................................................ 73

4.4.1. Monitoreo de Microplásticos .................................................................................... 73

4.5. Registros fílmicos .................................................................................................................................. 75

4.5.1. Dropcam .................................................................................................................... 75

4.5.2. Registros audiovisuales ............................................................................................. 75

5. Bibliografía citada .......................................................................................................................................... 76

ANEXO I. Tripulación científica de la campaña ...................................................................................... 79

ANEXO II. Detalles de las actividades de muestreo .............................................................................. 80

ANEXO III. Agradecimientos........................................................................................................................ 100

*Fotos de portada: Alex Martínez


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Resumen

Entre los días 9 y 25 de noviembre de 2018 se desarrolló la campaña “AMP Namuncurá –

Banco Burdwood: Comprendiendo la bomba biológica de carbono” a bordo del BO ARA

Austral. El buque partió de la ciudad de Ushuaia el 9 de noviembre a las 20 h y amarró en el

puerto de la misma ciudad el día 25 de noviembre por la tarde. El objetivo principal de esta

campaña fue estudiar el funcionamiento de la bomba biológica de carbono en el AMP

Namuncurá con énfasis en los procesos de la columna de agua mediados por el plancton y en

el acoplamiento pelágico bentónico, a fin de determinar la productividad primaria del sistema

y generar indicadores biofísicos que sirvan para el monitoreo durante la gestión de la misma a

lo largo del tiempo.

En esta campaña, a diferencia de las anteriores, se planeó la realización de estaciones fijas de

24 h, en las que el buque permaneciera durante un ciclo completo de marea en el mismo sitio

para estudiar la variación temporal de las variables y procesos biológicos en esa escala de

tiempo. En total se realizaron 15 estaciones, de las cuales 10 fueron en el AMP y 5 en el Canal

Beagle. Se hicieron 5 de las 7 estaciones fijas planteadas y en 3 de ellas se completó un ciclo de

24 horas. En las otras dos, sin embargo, los muestreos fueron interrumpidos a las 12 horas por

mala meteorología. En todas las estaciones se hicieron perfiles de CTD y ADCP, toma de

muestras de agua a diferentes profundidades con roseta, lances con redes de plancton de

diferente tamaño de malla para colecta de fitoplancton y zooplancton, y relevamiento de aves

marinas.

Asimismo, se realizaron otras actividades en algunas de las estaciones muestreadas como el

fondeo y la posterior recuperación de un dispositivo dropcam del National Geographic

Exploration Lab en 6 sitios y 30 mediciones radiométricas en 8 estaciones de muestreo.

Durante las estaciones fijas y en los tramos de traslados, en el laboratorio a bordo también se

llevaron a cabo 8 experimentos de incubación de entre 24 y 30 horas para evaluar la

producción primaria y respiración de organismos microplanctónicos y 10 experimentos de lisis

vírica y pastoreo de bacterias por nanoflagelados.

El relevamiento por observación directa de mamíferos marinos se realizó durante las horas de

luz, a lo largo de toda la derrota del barco. De manera continua durante toda la navegación se

realizaron relevamientos hidroacústicos y batimétricos con las sondas monohaz y multihaz del

barco, respectivamente, y se registraron los datos del ADCP de casco. Finalmente, es muy

importante destacar que durante esta campaña se realizó exitosamente la recuperación, el

mantenimiento y el posterior re-fondeo de los dos anclajes instrumentados autónomos

fondeados durante la misión de agosto de 2018. Una vez recuperados, ambos fondeos fueron

chequeados externa e internamente para ver si habían sufrido alguna avería. Luego se

procedió a la descarga de los datos y al recambio de baterías. Ambos fondeos se encontraban

en perfecto estado y habían registrado los datos correctamente.

Los valores de clorofila registrados en el AMP fueron llamativamente bajos, con un rango entre

0.01 y 1.2 µg/L. Estos valores fueron muy inferiores a las concentraciones de clorofila

estimadas para el muestreo efectuado en noviembre de 2014 (10 µg/L). Estos datos sugieren

que el pico de biomasa fitoplanctónica primaveral probablemente fuera previo al desarrollo de

la campaña. Cabe señalar que los valores de fluorescencia registrados por el datalogger del

sensor fondeado en la estación F1 entre los días 22/08 al 20/10 (a pesar de que aún no están

calibrados) fueron también muy bajos, pero debe considerarse que el sensor estaba ubicado a

100 m de profundidad.


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A pesar de que no se pudieron realizar todas las estaciones, el desarrollo de la campaña fue

muy satisfactorio, cumpliéndose con el 71% de las 21 estaciones prioritarias que se

establecieron poco antes del zarpe conociendo el tiempo de campaña disponible. Esto se debe

al muy buen desempeño del grupo científico, a la gran predisposición del comandante, del jefe

de operaciones y de toda la tripulación del BO ARA Austral para que pudiéramos realizar la

mayor cantidad de actividades posibles y principalmente a que todas las actividades se

realizaron de manera conjunta, operando investigadores, técnicos y marinos como un gran

equipo.

1. Introducción

El Área Marina Protegida Namuncurá (AMP Namuncurá), primera área oceánica

protegida de la Argentina, ubicada en el área del Banco Burdwood a 150 km al este de Isla de

los Estados y al sur de Islas Malvinas, tiene el mandato por Ley 26.875 (Decreto 720/2014) de

¨Conservar una zona de alta sensibilidad ambiental y de importancia para la protección y

gestión sostenible de la biodiversidad de los fondos marinos¨.

La biodiversidad y la abundancia de los organismos de los fondos marinos dependen

para su mantenimiento de la disponibilidad de materia orgánica. En las aguas oceánicas, son

los productores primarios fotosintéticos de la red trófica microbiana, genéricamente

denominados fitoplancton, los principales responsables de la síntesis de compuestos y

estructuras orgánicos que abastecen la red trófica marina. Conocer su funcionamiento y el rol

que la red trófica microbiana desempeña en la dinámica del carbono son esenciales no sólo

para comprender el funcionamiento del sistema sino para estimar el rol del mismo en los

procesos climáticos: el fitoplancton, a través de la fotosíntesis, absorbe el CO2 atmosférico,

uno de los principales gases de efecto invernadero y responsable del cambio global del clima.

Para ello, es necesario comprender las tasas de producción de materia orgánica

fitoplanctónica, es decir, la producción primaria, así como identificar a los organismos

responsables de este proceso.

En altas latitudes el balance entre la radiación solar, la disponibilidad de nutrientes

inorgánicos y la estratificación de la columna de agua determinan el crecimiento del

fitoplancton. Típicamente, durante la primavera las condiciones adecuadas permiten la

proliferación del fitoplancton formando importantes agregaciones de células, comúnmente

denominadas floraciones. Estas floraciones suelen ser de corta duración, pero la cantidad de

materia orgánica que se produce es un pulso esencial para el desarrollo del resto de las

comunidades biológicas de la zona.

La cantidad de carbono orgánico disponible para los organismos depende asimismo de los

procesos de degradación que ocurran en la columna de agua. Las bacterias heterótrofas, no

solo remineralizan parte de la materia orgánica, también actúan como eslabón intermedio

entre el carbono orgánico disuelto (COD) proveniente de varias fuentes y los niveles tróficos

superiores a través del “bucle microbiano”, es decir mediante la depredación de protistas. Por

otro lado, la lisis vírica disminuye la eficiencia del bucle microbiano repercutiendo en tramas

tróficas más regenerativas. Conocer el rol de estos organismos es por lo tanto fundamental

para estimar el balance metabólico de las comunidades planctónicas y el contenido neto de

materia orgánica disponible para el sistema. Es asimismo importante conocer las tasas

(velocidades) a las cuales esta materia orgánica sedimenta. El conjunto de los procesos

descritos en los párrafos precedentes, desde la incorporación del CO2 de la atmósfera


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mediante la fotosíntesis, la actividad bacteriana y vírica, la ingesta y egestión por parte del

zooplancton y la sedimentación y secuestro del carbono orgánico en los sedimentos de

fondo marino es lo que se conoce como Bomba Biológica de Carbono.

Como se mencionó anteriormente, la estructura vertical de la columna de agua tiene

un rol esencial en el desarrollo de las floraciones fitoplanctónicas. Deben comprenderse por lo

tanto la circulación de las corrientes oceánicas en la zona, la mezcla vertical y las zonas

frontales, entre otras características ambientales. En este sentido, es fundamental conocer

detalladamente la batimetría de la zona de interés, no sólo para comprender los procesos

dinámicos que se observen sino para permitir su modelización tridimensional. Este tipo de

modelos se usan, entre otras aplicaciones, para el estudio del impacto del cambio climático

sobre las masas de agua, sus propiedades y los organismos que lo habitan.

Durante el estudio de los procesos señalados y de acuerdo con las metas y objetivos de

la Ley 26.875, se intentará establecer una lista de indicadores (o descriptores) referidos a la

funcionalidad del sistema a fin de detectar modificaciones que puedan afectar la estructura y

el funcionamiento del ecosistema protegido.

2. Objetivos

Durante el Taller de ¨Planificación científica y gestión de datos en el AMPN-BB¨

realizado en noviembre de 2017, se identificó como objetivo el “Conservar la biodiversidad,

funcionalidad y estructura de los ecosistemas marinos del AMPNBB, y manejar

sustentablemente sus recursos marinos de acuerdo con las zonificaciones establecidas por la

Ley”. En este sentido, en la presente campaña se estudiará el funcionamiento y los procesos

físicos, químicos y biológicos relacionados con la dinámica del carbono de la columna de agua.

Por ello, la presente campaña tuvo como objetivo: Estudiar el funcionamiento de la

bomba biológica de carbono en el AMP Namuncurá con énfasis en los procesos de la

columna de agua mediados por el plancton y en el acoplamiento pelágico bentónico, a fin de

establecer una línea de base de conocimiento y generar indicadores biofísicos que sirvan

para el monitoreo durante la gestión de la misma a lo largo del tiempo.

La confección adecuada de indicadores efectivos será una tarea a cumplir en distintas

campañas. Teniendo en cuenta que en la presente se hizo hincapié en los aspectos pelágicos

del AMP, las actividades estuvieron orientadas principalmente a generar información para

responder indicadores de la comunidad microbiana y del plancton en general.

Asimismo, se continuó con el estudio de la línea de base sobre las características físico-

químicas de la columna de agua a fin de caracterizar el ambiente de forma integral y responder

a indicadores biofísicos basados en datos oceanográficos y de las comunidades pelágicas

debido a la alta resolución temporal que estos requieren.

De acuerdo a esto, se propusieron los siguientes objetivos específicos:

Para el estudio de los factores abióticos:

● Mapeo de oportunidad por la derrota del buque de la batimetría de las diferentes

zonas (núcleo y periféricas) del AMP.


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● Estudio de las condiciones físicas de la columna de agua en distintas zonas (este y

oeste del AMP) y en función de la profundidad (cuenca abisal, talud, meseta central).

● Análisis de la concentración de nutrientes inorgánicos, concentración de COD y estudio

cualitativo de materia orgánica disuelta (CDOM).

Para el estudio de los factores bióticos: estructura de las comunidades

● Estudio cualitativo y cuantitativo de la comunidad bacteriana y vírica, fitoplanctónica y

micro- y mesozooplanctónica.

Para el estudio de los factores bióticos: funcionamiento de la comunidad pelágica:

● Determinación de la producción primaria y de la respiración de la comunidad

microbiana (incluyendo bacterias, fitoplancton y microzooplancton).

● Estudio de la variabilidad diaria en la estructura de la columna de agua y la

composición y fisiología del plancton.

● Estudio de las tasas de depredación de bacterias por nanoflagelados (bucle

microbiano) y de la lisis vírica

● Estudio de las tasas de sedimentación de materia orgánica e inorgánica.

● Asimismo, se dará continuidad al estudio de la distribución de aves y mamíferos, como

eslabón superior de la trama trófica bajo estudio.

Se establecieron estos objetivos específicos a fin de comenzar a responder los

siguientes indicadores:

1- Composición y estructura de la comunidad

2- Integridad de la trama trófica

3- Fisicoquímica del agua (temperatura, salinidad, nutrientes, oxígeno disuelto,

irradiancia, etc.)

4- Biomasa fitoplanctónica y producción primaria regional

Varios de estos indicadores podrán completarse en su totalidad en distintas campañas

oceanográficas, aprovechando las facilidades técnicas de cada buque puesto al trabajo

científico en el AMP Namuncurá.

Además, es necesario que los indicadores puedan revelar no solo las propiedades

ecológicas del sector bajo estudio sino también las de su entorno, dado que pueden

observarse cambios dentro del AMP que respondan a influencias externas. Por lo tanto, la

colección de datos debe ser realizada tanto en el sector objetivo como en zonas adyacentes.

De esta manera, poner en contexto regional al AMP Namuncurá permite evaluar las

conexiones ecológicas que presentan con otras áreas, mantener sitios con los cuales comparar

si hubiere algún cambio dentro del área objetivo y contar con el conocimiento necesario para

tomar medidas adecuadas para la gestión de la misma. De allí la importancia del contexto

regional en el diseño de muestreo.


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3. Estaciones y derrota realizadas

Inicialmente se habían planificado 36 estaciones de muestreo pero teniendo en cuenta los días

disponibles de campaña, la coordinadora científica junto a la jefa científica asignaron

diferentes órdenes de prioridades a las estaciones planteadas basándose en los datos

oceanográficos (físicos y biológicos) obtenidos en campañas previas y los modelos de

circulación de corrientes disponibles para la zona del área marina protegida (AMP). En la figura

1 se muestra el detalle de las 21 estaciones asignadas como prioritarias con un orden de

prioridad del 1 al 4. Las estaciones fijas del AMP quedaron como prioridad 1 (a excepción de la

E16 que pasó de ser fija a ser una estación con un solo muestreo completo).

Figura 1. Área de estudio en contexto regional. Estaciones de muestreo previstas y grilla de

muestreo en el AMP Namuncurá - Banco Burdwood. En orden decreciente en prioridad, en

amarillo se indican las estaciones de prioridad 1, en naranja las de prioridad 2, en verde las de

prioridad 3 y en azul las de prioridad 4.

El buque partió de la ciudad de Ushuaia el 9 de noviembre a las 20 h con rumbo directo a la

estación fija F2. Arribó a la zona de trabajo el 11 de noviembre y los muestreos comenzaron

ese mismo día por la mañana. Dadas las condiciones meteorológicas, el barco estuvo operativo

en la zona del AMP hasta el 15 de noviembre, momento en el cual se decidió ir a la zona de

Bahía Aguirre para realizar las estaciones de Península Mitre y la entrada del Canal Beagle

mientras se esperaba que las condiciones mejoraran para volver al AMP. Durante los días

martes 20 y jueves 22 la meteorología fue favorable y permitió volver al AMP a continuar con

los trabajos en la zona. La madrugada del 23 de noviembre se comenzó el regreso con la

intención de realizar las estaciones cercanas a la Isla de los Estados pero los fuertes vientos del

Oeste-Noroeste y el estado del mar impidieron el muestreo. Una situación similar ocurrió con

la estación 39 localizada en la plataforma continental en cercanía de la costa atlántica de Tierra

del Fuego. Por tal motivo, se decidió navegar con rumbo a Península Mitre para finalizar las

estaciones pendientes del Canal Beagle. La campaña finalizó el 25 de noviembre cuando el

barco amarró en el puerto de la ciudad de Ushuaia. En total se realizaron 15 estaciones, de las

cuales 10 fueron en el AMP y 5 en el Canal Beagle (figura 2).


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Figura 2. Detalle de las estaciones y la derrota realizadas durante la campaña “AMP

Namuncurá – Banco Burdwood: Comprendiendo la bomba biológica de carbono”.

4. Actividades realizadas

Se hicieron 5 de las 7 estaciones fijas planteadas y en 3 de ellas se completó un ciclo de 24 h.

En las otras dos, sin embargo, los muestreos fueron de 12 h dado que no se pudo seguir

operando en la zona por mal tiempo. En todas las estaciones se hicieron perfiles de CTD y

ADCP, toma de muestras de agua a diferentes profundidades, lances con redes de plancton de

diferente tamaño de malla para colecta de fitoplancton y zooplancton, y relevamiento de aves

marinas. Asimismo, se realizaron otras actividades en algunas de las estaciones muestreadas

como las mediciones radiométricas con un espectrorradiómetro y el fondeo y la posterior

recuperación de una cámara dropcam del National Geographic Exploration Lab.

Las maniobras en cubierta estuvieron complementadas con trabajos en laboratorio y en

gabinetes. Asimismo, durante las estaciones fijas y en los tramos de traslados, se llevaron a

cabo experimentos de incubación para evaluar producción primaria y respiración de

organismos microscópicos y experimentos de lisis vírica y predación de bacterias por

nanoflagelados.

El relevamiento por observación directa de mamíferos marinos se realizó durante las horas de

luz, a lo largo de toda la derrota del barco. De manera continua durante toda la navegación se

realizaron relevamientos hidroacústicos y batimétricos con las sondas monohaz y multihaz del

barco, respectivamente, y se registraron los datos del ADCP de casco. Finalmente, es muy

importante destacar que durante esta campaña se realizó exitosamente la recuperación, el

mantenimiento y el posterior re-fondeo de los dos anclajes instrumentados autónomos.


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4.1. Oceanografía física

4.1.1. Perfilado de propiedades del agua de mar y correntometría

Responsables embarcados: Jacobo Martin, Gonzalo Bravo

Responsable: Jacobo Martín

En el marco de la presente campaña, los objetivos del Laboratorio de Oceanografía fueron:

-Continuar con las medidas físico-químicas en el AMPN-BB, de manera a aumentar el

conocimiento de la variabilidad espacio-temporal de los principales parámetros de interés

(temperatura, salinidad, oxigeno, intensidad y dirección de corrientes) y, al mismo tiempo, dar

cobertura y contextualizar otros trabajos que se desarrollan en paralelo.

-Describir la evolución estacional de las condiciones físicas y los flujos de partículas en el AMP,

mediante series temporales pluri-mensuales obtenidas mediante anclajes instrumentos

autónomos (ver informe correspondiente).

-Determinar el carbono orgánico particulado en la columna de agua (ver sección 4.1.2).

Metodología

A lo largo de toda la campaña se utilizó una roseta modelo SBE-32, s/n 1248, equipada con 24

botellas de 12 L, accionadas remotamente. Se adosaron a la roseta los equipos detallados a

continuación.

CTD Sea-bird 9/11plus

Acoplado a la roseta, se perfiló la columna de agua con un CTD SBE-9plus instalado en su base.

Los sensores instalados en el CTD fueron los siguientes:

-Presión (s/n 09P60427)

-Conductividad: modelo SBE4, s/n 3748

-Temperatura: modelo SBE3 s/n 5313

Si bien el buque dispone de sensores auxiliares de oxígeno y fluorescencia, el cableado

adecuado no estaba disponible. Los datos del SBE-9 fueron adquiridos y visualizados en tiempo

real y las botellas disparadas remotamente, mediante una unidad de cubierta SBE 11plus, s/n

11-1134, utilizando el software Seasave ver 7.23.2 (Sea-bird Electronics Inc.) para la

adquisición y comunicación.

Los datos, obtenidos con el software Seasave fueron procesados mediante el paquete de

aplicaciones “SBE data processing”, corriendo las rutinas siguientes: conversión del dato

hexadecimal (datCNV), filtro de paso bajo, edición de inversiones de presión (loop edit),

cálculo de variables derivadas (salinidad, densidad, sigma, velocidad de ascenso/descenso,

porcentaje de saturación de oxígeno; entre otras), separación del perfil de subida y bajada y

promediado por incrementos de presión de 1 db.


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Figura 3. Sistema de perfilado y toma de muestras usado durante la campaña a bordo del ARA

Austral. (1) Roseta SBE-32 de botellas de 12 L; (2) CTD auto contenido Rinko anclado a la

roseta; (3) CTD Seabird SBE-9; (4) Perfilador de corrientes TRDI WHS 300 kHz.

Perfilador auto-contenido Rinko ASTD-102

En combinación con el SBE-9 presente en el buque, se utilizó un CTD auto-contenido Rinko

ASTD-102 s/n 189 (JFE ADVANTECH), propiedad de CADIC, el cual cuenta con sensores

integrados de conductividad, temperatura, presión, fluorescencia de clorofila-a, turbidez (OBS)

y concentración de oxígeno disuelto (Optode Rinko). El instrumento y sus sensores fueron

calibrados en fábrica en abril de 2017. Los datos fueron adquiridos con frecuencia 10 Hz y

posteriormente volcados a PC mediante el interfaz patentado de JFE Advantech. Los datos .raw

fueron convertidos a unidades ingenieriles usando las coeficientes de calibración

suministrados por el fabricante. Los perfiles fueron primero editados manualmente para

asegurar la correcta eliminación de los datos espurios durante la entrada/salida en el agua y

estabilización de la roseta. A continuación fueron tratados en manera similar a los datos del

SBE-9 (previa importación en SBE Data Processing mediante el comando “Ascii in”). Se creó un

fichero de configuración .xlcom acorde a las características técnicas del Rinko ASTD. Cada perfil

fue georreferenciado manualmente y la colección importada en Ocean Data View.

Maniobras

La maniobra de perfilado se llevó a cabo desde la banda de estribor, usando un guinche

dedicado con cable conductor. En cada cast, el sistema roseta/CTD se dejó estabilizar a 10

metros de profundidad durante varios minutos, después toda la roseta remonta hasta dejar los

sensores a la profundidad mínima que permita el oleaje y desde ese punto se comienza el

perfil hasta la profundidad máxima. El buque cuenta con dos altímetros y un dispositivo

“bottom contact” pero ninguno de ellos estaba operativo al momento de la campaña. Por esta

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razón, en todo momento se mantuvo una distancia de seguridad de seguridad de 5-10 m del

fondo, estimada a partir de la sonda de navegación y el sensor de presión del SBE-9 visualizado

en tiempo real.

Debido a que para cumplir con los objetivos de la campaña era necesario evaluar el perfil de

fluorescencia de clorofila-a para definir las profundidades de muestreo y que el SBE-9 no

disponía del sensor correspondiente, se utilizó el fluorómetro del Rinko ASTD-102 para tal fin

(pero en este caso los datos no se pueden ver en tiempo real). El protocolo seguido en cada

estación fue el siguiente:

1) Perfilado simultáneo con Rinko ASTD-102 y SBE-9.

2) Descarga de los datos del ASTD-102, transformación a unidades ingenieriles,

visualización del perfil de fluorescencia en el laboratorio húmedo.

3) Nuevo perfil vertical y toma de muestras de agua con las botellas de la roseta.

En los primeros días de campaña, el ASTD-102 fue utilizado a menudo independientemente de

la roseta, utilizando un guinche auxiliar y pasteca por estribor. Esto fue debido a que se

detectó que este instrumento, anclado en la base del frame de acero, afectaba negativamente

el compás magnético del ADCP también instalado en la vecindad. A partir de la estación 28, el

CTD Rinko fue alojado en el hueco dejado tras extraer las botellas 3, 4, 5 de la roseta. En esa

posición, la interferencia magnética con el ADCP resultó ser tolerable (test AX, software

BBTalk). Desde ese momento ambos CTDs perfilaron simultánea y sincronizadamente, a

excepción de aquellas oportunidades (E16, E18b) en que la profundidad era mayor al límite

operativo de 500 m del Rinko ASTD-102 y tanto este como el ADCP 300 kHz (mismo rango de

trabajo) fueron desensamblados transitoriamente para poder realizar un perfil vertical

completo con el SBE-9.

La velocidad de descenso fue mantenida en 0.5 m/s siempre que el ASTD-102 (frecuencia de

adquisición 10 Hz) bajó prendido, y 1 m/s cuando no.

Se realizaron perfiles CTD en todas las estaciones realizadas durante la campaña (ver figura 2 y

tabla 1). En las estaciones “fijas”, el plan era realizar un perfil sin toma de muestras cada 3 h y

toma de muestras cada 6 h. En la práctica, esos horarios tuvieron que flexibilizarse en función

de la climatología o la superposición de tareas. También la necesidad de reposicionar el barco

consumió tiempo e inevitablemente descuadró los cronogramas teóricos de muestreo.

En total, se obtuvieron 57 perfiles verticales con el ASTD-102 y 60 perfiles con el SBE9/11+.

Los perfiles verticales de temperatura, salinidad, anomalía de densidad potencial y

fluorescencia de clorofila-a obtenidos a partir del Rinko ASTD-102 se presentan al final de este

informe parcial (datos preliminares, no calibrados). Tanto en las estaciones “fijas” como en

aquellas en que por otra razón se realizó más de un perfil, se hace constar el tiempo en horas

transcurrido desde el primer perfil (nótese que en muchas ocasiones, ese desfase no coincidió

exactamente con el plan original de perfilar cada 3 h). La correspondencia de estos perfiles con

hora GMT, número de lance y otros detalles, se puede consultar en la Tabla 1.


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Validación de los datos

Durante la campaña se tomaron muestras de agua con la roseta a profundidades seleccionadas

para validar/calibrar los datos obtenidos con los sensores instalados. En otros casos se usarán

transformaciones previamente disponibles. En concreto:

-Clorofila: Análisis (espectrofotometría) de muestras de agua (ver sección 4.2.2)

-Salinidad: se tomaron asimismo muestras para análisis de salinidad, de la botella más

profunda cerrada en cada cast.

-Oxígeno: El Optode Rinko es ajustado periódicamente en CADIC mediante una calibración de

dos puntos siguiendo las recomendaciones de fábrica (100% en agua saturada por burbujeo;

0% en disolución de sulfito sódico). También los datos son ajustados mediante análisis Winkler

durante campañas en el Canal Beagle, si bien esto no fue posible durante la presente campaña

a falta de un titulador portátil.

-Turbidez: Por la alta demanda de copas y tiempos de filtración, no fue posible durante la

campaña; se dispone al menos de una transformación a mg/L gracias a muestras y análisis

gravimétricos (filtros de policarbonato 0.4 µm) realizados en meses anteriores a la campaña.

Respecto a la temperatura, los termómetros oceanográficos son generalmente el sensor más

estable de todo el set utilizado en perfilado, y sólo se calibran en fábrica. El sensor Rinko

(SEMITEC brand 100BT thermistor) fue calibrado en fábrica en abril 2017; el sensor Seabird

modelo SBE3 s/n 5313 fue calibrado en junio de 2012. La comparación entre los datos

obtenidos con el SBE-9 y Rinko ASTD-102 (porción más profunda del perfil y lejos de gradientes

verticales pronunciados), perfilando pareados y sincronizados, muestra una diferencia en

temperatura en el orden de las milésimas de grado, mientras que para la salinidad se ha

detecta una diferencia más sistemática en torno a 1 centésima.

L-ADCP

Se instaló en la base de la roseta (figura 3) un perfilador de corrientes por efecto Doppler

(ADCP por sus siglas en inglés) modelo Workhorse 300 kHz (TRDI), s/n 23410, el cual tiene

instalada la función “bottom Track” que permite al instrumento referenciar las velocidades

medidas a la velocidad del barco relativa al fondo. Si bien el equipo fue alimentado mediante

un pack de baterías interno. Antes y después de cada estación, se estableció comunicación con

el ADCP mediante el software BBTalk para transmitir el fichero de configuración, descargar

datos y encender/apagar el instrumento.

La configuración utilizada fue: 1 ping por ensamble tanto para water track como para

detección del fondo, 0.5 seg de intervalo entre pings y 1 seg de intervalo entre ensambles. El

tamaño de celda fue fijado en 8 m y la distancia de blanqueo en 1.7 m.

Uno de los puntos críticos en estas aplicaciones es la calibración del compás magnético

interno, el cual es utilizado para referenciar las velocidades en coordenadas geográficas

(teniendo también en cuenta la declinación magnética en la ubicación y fecha de la toma de

datos). Esta operación no es sencilla o siquiera recomendable en una embarcación como un

buque oceanográfico, donde abundan los materiales ferromagnéticos, pero en muchas

ocasiones no queda otro remedio que hacerlo a bordo. Se hace notar que la cubierta del

Austral esta forrada con tablones de madera, lo que puede ofrecer un relativo aislamiento. Se

realizaron varias comprobaciones del compás magnético (comando AX del software BBTalk)

con diferentes distribuciones de los instrumentos en la roseta, hallándose que la batería de

Ion-Litio del Rinko ASTD-102 constituía la principal perturbación del campo magnético local. El

Rinko fue finalmente montado (a partir de estación 28) en el hueco dejado tras desmontar 3


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botellas de la roseta. En esta configuración, la comprobación magnética del ADCP (giro de 360

elevado sobre cubierta) arrojó un error, tolerable, de sólo 3.1º .

Tabla 1. Metadatos de los perfiles de CTD obtenidos durante la campaña.

FechaHora GMT

(inicio)Estación Lance Latitud S Longitud O

Perfil SBE-9

AustralPerfil Rinko

Z sonda

(m)ADCP

11/11/2018 11:10 EF2 1 54.4720 58.5740 AUS_2018_F2_t0 149

11/11/2018 12:55 EF2 2 54.4712 58.5907 AUT_2_2 143 X

11/11/2018 16:07 EF2 13 54.4453 58.5409 AUS_2018_F2_t4.5 141

11/11/2018 18:23 EF2 15 54.4762 58.5790 AUT_2_6 AUS_2018_F2_t6.5 143 X

11/11/2018 21:16 EF2 16 54.4816 58.5929 AUT_2_9 AUS_2018_F2_t9.5 143 X

12/11/2018 00:37 EF2 17 54.4708 58.5797 AUS_2018_F2_t13 144 X

12/11/2018 01:31 EF2 18 54.4791 58.6032 AUT_2_10 AUS_2018_F2_t14 142

12/11/2018 05:11 EF2 20 54.4808 58.5821 AUT_2_14 AUS_2018_F2_t17.5 142 X

12/11/2018 10:54 EF2 23 54.4776 58.5936 AUT_2_17 AUS_2018_F2_t23 143 X

12/11/2018 11:26 EF2 24 54.4780 58.5717 AUT_2_18 AUS_2018_F2_t24 146

12/11/2018 14:38 EF2 28 54.4758 58.5896 AUT_2_19 AUS_2018_F2_t27 145 X

12/11/2018 23:20 E18b 29 55.0764 58.6504 AUT_3_1 AUS_2018_18b 2548 X

13/11/2018 00:37 E18b 30 55.0764 58.6101 AUT_3_2 2548

13/11/2018 11:07 E16 33 54.8793 59.6133 AUT_4_1 AUS_2018_16_t0 993

13/11/2018 11:54 E16 34 54.8792 59.5938 AUT_4_2 975

13/11/2018 13:52 E16 35 54.8777 59.6167 AUT_4_3 AUS_2018_16_t3 946

13/11/2018 19:37 E21 42 54.5144 59.4178 AUT_5_1 AUS_2018_21 134

13/11/2018 20:18 E21 43 54.5221 59.3906 AUT_5_2 131 X

14/11/2018 05:32 E24 49 54.3275 60.1859 AUS_2018_24_t0 101

14/11/2018 06:05 E24 50 54.3336 60.1889 AUT_6_2 102 X

14/11/2018 09:45 E24 56 54.3246 60.1538 AUS_2018_24_t4 100

14/11/2018 10:06 E24 57 54.3227 60.1440 AUT_6_4 99 X

14/11/2018 12:29 E24 58 54.3224 60.1614 AUS_2018_24_t7 102

14/11/2018 13:06 E24 59 54.3232 60.1653 AUT_6_5 102 X

14/11/2018 15:14 E24 63 54.3172 60.1672 AUS_2018_24_t10 102

14/11/2018 15:45 E24 64 54.3188 60.1607 AUT_6_10 102 X

14/11/2018 18:23 E24 65 54.3267 60.1701 AUS_2018_24_t13 100

14/11/2018 19:00 E24 66 54.3379 60.1564 AUT_6_12 99 X

14/11/2018 23:00 E24 79 54.3175 60.1557 AUS_2018_24_t17.5 100

14/11/2018 23:23 E24 80 54.3157 60.1425 AUT_6_15 100 X

14/11/2018 02:30 E24 81 54.3128 60.1588 AUS_2018_24_t21

15/11/2018 03:08 E24 82 54.3115 60.1575 AUT_6_17 X

15/11/2018 17:17 E28 83 54.4275 61.5370 AUS_2018_28_t0 143

15/11/2018 18:00 E28 84 54.4273 61.5186 AUT_7_2 136 X

15/11/2018 19:04 E28 85 54.4307 61.4924 AUT_7_3 135 X

15/11/2018 20:51 E28 92 54.4467 61.4445 AUT_7_5 AUS_2018_28_t3 168


14

Tabla 1 (continuación).

Figura 4 (páginas siguientes): Perfiles verticales de temperatura, salinidad, fluorescencia de

clorofila-a y anomalía de densidad potencial, obtenidos con el Rinko ASTD-102.

FechaHora GMT

(inicio)Estación Lance Latitud S Longitud O

Perfil SBE-9

AustralPerfil Rinko

Z sonda

(m)ADCP

15/11/2018 04:14 E12 93 54.3951 62.2334 AUT_8_1 AUS_2018_12_t0 298

15/11/2018 05:00 E12 94 54.3908 62.2288 AUT_8_2 AUS_2018_12_t1 300 X

17/11/2018 17:36 E5 101 55.0099 65.9173 AU7_9_2 AUS_2018_05_t0 431 X

17/11/2018 18:28 E5 102 55.0863 65.8993 AU7_9_3 AUS_2018_05_t1 331 X

17/11/2018 20:51 E5 103 55.0944 65.9358 AU7_9_4 AUS_2018_05_t3 337 X

18/11/2018 00:00 E5 112 55.1064 65.9347 AU7_9_6 AUS_2018_05_t6.5 590

18/11/2018 01:12 E5 113 55.0994 65.9252 AU7_9_7 AUS_2018_05_t7.5 510 X

18/11/2018 03:29 E5 115 55.1019 65.9186 AU7_9_9(error) AUS_2018_05_t10

18/11/2018 08:07 E5 118 55.1046 65.8922 AU7_9_11 AUS_2018_05_t14.5 480 X

18/11/2018 12:02 E5 119 55.1010 65.9160 AU7_9_12 AUS_2018_05_t18.5 480 X

18/11/2018 15:36 E5 120 55.1022 65.9018 AU7_9_13 AUS_2018_05_t21.5 541 X

18/11/2018 17:44 E5 121 55.1134 65.9464 AU7_9_14 AUS_2018_05_t23.5 712 X

18/11/2018 22:39 E4 125 55.0894 66.5629 AU7_9_15 AUS_2018_04_t0 71 X

18/11/2018 23:03 E4 126 55.0929 66.5500 AU7_9_16 AUS_2018_04_t0.5 74

19/11/2018 15:28 E3 134 54.9888 66.8208 AU7_11_1 AUS_2018_03 81 X

19/11/2018 15:55 E3 135 54.9947 66.8056 AU7_11_2 96

21/11/2018 03:44 E30 145 54.1498 61.7196 AU7_13_1 AUS_2018_30_t0 215

21/11/2018 04:24 E30 146 54.1544 61.6952 AU7_13_2 AUS_2018_30_t0.5 210 X

21/11/2018 14:47 F1 155 54.1475 61.2030 AU7_14_3 AUS_2018_F1_t0 139 X

21/11/2018 15:20 F1 156 54.1532 61.2014 AU7_14_4 AUS_2018_F1_t0.5 144 X

21/11/2018 18:52 F1 165 54.1495 61.2209 AU7_14_6 AUS_2018_F1_t4.5 144

21/11/2018 19:57 F1 166 54.1461 61.2171 AU7_14_7 AUS_2018_F1_t5.5 134 X

21/11/2018 23:35 F1 167 54.1428 61.2431 AU7_14_9 AUS_2018_F1_t9 143

22/11/2018 00:10 F1 168 54.1474 61.2478 AU7_14_10 AUS_2018_F1_t9.5 144 X

22/11/2018 03:12 F1 172 54.1488 61.2430 AU7_14_12 AUS_2018_F1_t12.5 140

22/11/2018 03:36 F1 173 54.1555 61.2322 AU7_14_13 140 X

22/11/2018 09:54 E34 177 53.7734 61.8353 AU7_15_02 AUS-2018_34_t0 340 X

22/11/2018 10:30 E34 178 53.7665 61.8394 AU7_15_03 AUS-2018_34_t0.5 350

22/11/2018 13:40 E34 184 53.7745 61.8368 AU7_15_05 AUS-2018_34_t3.5 400 X

22/11/2018 16:47 E34 185 53.7795 61.8269 AU7_15_06 AUS-2018_34_t6.5 420 X

22/11/2018 17:26 E34 53.7875 61.8260 AU7_15_07 AUS-2018_34_t7.5 400

22/11/2018 20:45 E34 194 53.7763 61.8351 AU7_15_09 AUS-2018_34_t10.5 394 X

22/11/2018 22:57 E34 195 53.7806 61.8375 AU7_15_10 AUS-2018_34_t12.5 444 X

22/11/2018 23:58 E34 199 53.7907 61.8302 AU7_15_12 AUS-2018_34_t13.5 435

24/11/2018 18:08 E01 204 54.8889 66.7871 AU7_18_1 AUS-2018_01 210 X

24/11/2018 21:50 E00 212 54.8482 68.0988 AU7_19_1 AUS-2018_00 147 X


15

Estación F1. t0 Estación F1. t + 0.5 h

Estación F1. t + 4.5 h Estación F1. t+5.5 h

140

120

100

80

60

40

20

0

5.2 5.6 6.0 6.4 6.8

32.0 32.5 33.0 33.5 34.0 34.5

26.3 26.4 26.5 26.6 26.7 26.8 26.9 27.0 27.1 27.2

0.0 0.4 0.8 1.2 1.6 2.0

Pre

ssu

re [d

b]

Temperatura, ITS-90

sigma-theta (kg/m3)

Salinidad, PSS-78

Fluorescencia

Temperatura, ITS-90 Salinidad, PSS-78

sigma-theta (kg/m3) Fluorescencia

140

120

100

80

60

40

20

0

5.2 5.6 6.0 6.4 6.8

32.0 32.5 33.0 33.5 34.0 34.5

26.3 26.4 26.5 26.6 26.7 26.8 26.9 27.0 27.1 27.2

0.0 0.4 0.8 1.2 1.6 2.0

Pre

ssu

re [d

b]

Temperatura, ITS-90

sigma-theta (kg/m3)

Salinidad, PSS-78

Fluorescencia



140

120

100

80

60

40

20

0

5.2 5.6 6.0 6.4 6.8

32.0 32.5 33.0 33.5 34.0 34.5

26.3 26.4 26.5 26.6 26.7 26.8 26.9 27.0 27.1 27.2

0.0 0.4 0.8 1.2 1.6 2.0

Pre

ssu

re [d

b]

Temperatura, ITS-90

sigma-theta (kg/m3)

Salinidad, PSS-78

Fluorescencia



140

120

100

80

60

40

20

0

5.2 5.6 6.0 6.4 6.8

32.0 32.5 33.0 33.5 34.0 34.5

26.3 26.4 26.5 26.6 26.7 26.8 26.9 27.0 27.1 27.2

0.0 0.4 0.8 1.2 1.6 2.0

Pre

ssu

re [d

b]

Temperatura, ITS-90

sigma-theta (kg/m3)

Salinidad, PSS-78

Fluorescencia




16

Estación F1. t + 9 h Estación F1. t + 9.5 h

Estación F1 t+12.5 h

140

120

100

80

60

40

20

0

5.2 5.6 6.0 6.4 6.8

32.0 32.5 33.0 33.5 34.0 34.5

26.3 26.4 26.5 26.6 26.7 26.8 26.9 27.0 27.1 27.2

0.0 0.4 0.8 1.2 1.6 2.0

Pre

ssu

re [d

b]

Temperatura, ITS-90

sigma-theta (kg/m3)

Salinidad, PSS-78

Fluorescencia



140

120

100

80

60

40

20

0

5.2 5.6 6.0 6.4 6.8

32.0 32.5 33.0 33.5 34.0 34.5

26.3 26.4 26.5 26.6 26.7 26.8 26.9 27.0 27.1 27.2

0.0 0.4 0.8 1.2 1.6 2.0

Pre

ssu

re [d

b]

Temperatura, ITS-90

sigma-theta (kg/m3)

Salinidad, PSS-78

Fluorescencia



140

120

100

80

60

40

20

0

5.2 5.6 6.0 6.4 6.8

32.0 32.5 33.0 33.5 34.0 34.5

26.3 26.4 26.5 26.6 26.7 26.8 26.9 27.0 27.1 27.2

0.0 0.4 0.8 1.2 1.6 2.0

Pre

ssu

re [d

b]

Temperatura, ITS-90

sigma-theta (kg/m3)

Salinidad, PSS-78

Fluorescencia




17

Estación F2. t0 Estación F2 t + 4.5 h

Estación F2. t + 6.5 h Estación F2. t + 9.5 h

140

120

100

80

60

40

20

0

5.2 5.6 6.0 6.4 6.8

32.0 32.5 33.0 33.5 34.0 34.5

26.3 26.4 26.5 26.6 26.7 26.8 26.9 27.0 27.1 27.2

0.0 0.4 0.8 1.2 1.6 2.0

Pre

ssu

re [d

b]

Temperatura, ITS-90

sigma-theta (kg/m3)

Salinidad, PSS-78

Fluorescencia



140

120

100

80

60

40

20

0

5.2 5.6 6.0 6.4 6.8

32.0 32.5 33.0 33.5 34.0 34.5

26.3 26.4 26.5 26.6 26.7 26.8 26.9 27.0 27.1 27.2

0.0 0.4 0.8 1.2 1.6 2.0

Pre

ssu

re [d

b]

Temperatura, ITS-90

sigma-theta (kg/m3)

Salinidad, PSS-78

Fluorescencia



140

120

100

80

60

40

20

0

5.2 5.6 6.0 6.4 6.8

32.0 32.5 33.0 33.5 34.0 34.5

26.3 26.4 26.5 26.6 26.7 26.8 26.9 27.0 27.1 27.2

0.0 0.4 0.8 1.2 1.6 2.0

Pre

ssu

re [d

b]

Temperatura, ITS-90

sigma-theta (kg/m3)

Salinidad, PSS-78

Fluorescencia



140

120

100

80

60

40

20

0

5.2 5.6 6.0 6.4 6.8

32.0 32.5 33.0 33.5 34.0 34.5

26.3 26.4 26.5 26.6 26.7 26.8 26.9 27.0 27.1 27.2

0.0 0.4 0.8 1.2 1.6 2.0

Pre

ssu

re [d

b]

Temperatura, ITS-90

sigma-theta (kg/m3)

Salinidad, PSS-78

Fluorescencia




18

Estación F2. t + 13 h Estación F2. t + 14 h


140

120

100

80

60

40

20

0

5.2 5.6 6.0 6.4 6.8

32.0 32.5 33.0 33.5 34.0 34.5

26.3 26.4 26.5 26.6 26.7 26.8 26.9 27.0 27.1 27.2

0.0 0.4 0.8 1.2 1.6 2.0

Pre

ssu

re [d

b]

Temperatura, ITS-90

sigma-theta (kg/m3)

Salinidad, PSS-78

Fluorescencia



140

120

100

80

60

40

20

0

5.2 5.6 6.0 6.4 6.8

32.0 32.5 33.0 33.5 34.0 34.5

26.3 26.4 26.5 26.6 26.7 26.8 26.9 27.0 27.1 27.2

0.0 0.4 0.8 1.2 1.6 2.0

Pre

ssu

re [d

b]

Temperatura, ITS-90

sigma-theta (kg/m3)

Salinidad, PSS-78

Fluorescencia



140

120

100

80

60

40

20

0

5.2 5.6 6.0 6.4 6.8

32.0 32.5 33.0 33.5 34.0 34.5

26.3 26.4 26.5 26.6 26.7 26.8 26.9 27.0 27.1 27.2

0.0 0.4 0.8 1.2 1.6 2.0

Pre

ssu

re [d

b]

Temperatura, ITS-90

sigma-theta (kg/m3)

Salinidad, PSS-78

Fluorescencia



140

120

100

80

60

40

20

0

5.2 5.6 6.0 6.4 6.8

32.0 32.5 33.0 33.5 34.0 34.5

26.3 26.4 26.5 26.6 26.7 26.8 26.9 27.0 27.1 27.2

0.0 0.4 0.8 1.2 1.6 2.0

Pre

ssu

re [d

b]

Temperatura, ITS-90

sigma-theta (kg/m3)

Salinidad, PSS-78

Fluorescencia




19


140

120

100

80

60

40

20

0

5.2 5.6 6.0 6.4 6.8

32.0 32.5 33.0 33.5 34.0 34.5

26.3 26.4 26.5 26.6 26.7 26.8 26.9 27.0 27.1 27.2

0.0 0.4 0.8 1.2 1.6 2.0

Pre

ssu

re [d

b]

Temperatura, ITS-90

sigma-theta (kg/m3)

Salinidad, PSS-78

Fluorescencia



140

120

100

80

60

40

20

0

5.2 5.6 6.0 6.4 6.8

32.0 32.5 33.0 33.5 34.0 34.5

26.3 26.4 26.5 26.6 26.7 26.8 26.9 27.0 27.1 27.2

0.0 0.4 0.8 1.2 1.6 2.0

Pre

ssu

re [d

b]

Temperatura, ITS-90

sigma-theta (kg/m3)

Salinidad, PSS-78

Fluorescencia




20

Estación 34. t0 Estación 34. t + 0.5 h

Estación 34. t + 3.5 h Estación 34. t + 6.5 h

450

400

350

300

250

200

150

100

50

0

4.8 5.2 5.6 6.0 6.4

32.0 32.5 33.0 33.5 34.0 34.5

26.3 26.4 26.5 26.6 26.7 26.8 26.9 27.0 27.1 27.2

0.0 0.4 0.8 1.2 1.6 2.0

Pre

ssu

re [d

b]

Temperatura, ITS-90

sigma-theta (kg/m3)

Salinidad, PSS-78

Fluorescencia



450

400

350

300

250

200

150

100

50

0

4.8 5.2 5.6 6.0 6.4

32.0 32.5 33.0 33.5 34.0 34.5

26.3 26.4 26.5 26.6 26.7 26.8 26.9 27.0 27.1 27.2

0.0 0.4 0.8 1.2 1.6 2.0

Pre

ssu

re [d

b]

Temperatura, ITS-90

sigma-theta (kg/m3)

Salinidad, PSS-78

Fluorescencia



450

400

350

300

250

200

150

100

50

0

4.8 5.2 5.6 6.0 6.4

32.0 32.5 33.0 33.5 34.0 34.5

26.3 26.4 26.5 26.6 26.7 26.8 26.9 27.0 27.1 27.2

0.0 0.4 0.8 1.2 1.6 2.0

Pre

ssu

re [d

b]

Temperatura, ITS-90

sigma-theta (kg/m3)

Salinidad, PSS-78

Fluorescencia



450

400

350

300

250

200

150

100

50

0

4.8 5.2 5.6 6.0 6.4

32.0 32.5 33.0 33.5 34.0 34.5

26.3 26.4 26.5 26.6 26.7 26.8 26.9 27.0 27.1 27.2

0.0 0.4 0.8 1.2 1.6 2.0

Pre

ssu

re [d

b]

Temperatura, ITS-90

sigma-theta (kg/m3)

Salinidad, PSS-78

Fluorescencia




21



450

400

350

300

250

200

150

100

50

0

4.8 5.2 5.6 6.0 6.4

32.0 32.5 33.0 33.5 34.0 34.5

26.3 26.4 26.5 26.6 26.7 26.8 26.9 27.0 27.1 27.2

0.0 0.4 0.8 1.2 1.6 2.0

Pre

ssu

re [d

b]

Temperatura, ITS-90

sigma-theta (kg/m3)

Salinidad, PSS-78

Fluorescencia



450

400

350

300

250

200

150

100

50

0

4.8 5.2 5.6 6.0 6.4

32.0 32.5 33.0 33.5 34.0 34.5

26.3 26.4 26.5 26.6 26.7 26.8 26.9 27.0 27.1 27.2

0.0 0.4 0.8 1.2 1.6 2.0

Pre

ssu

re [d

b]

Temperatura, ITS-90

sigma-theta (kg/m3)

Salinidad, PSS-78

Fluorescencia



450

400

350

300

250

200

150

100

50

0

4.8 5.2 5.6 6.0 6.4

32.0 32.5 33.0 33.5 34.0 34.5

26.3 26.4 26.5 26.6 26.7 26.8 26.9 27.0 27.1 27.2

0.0 0.4 0.8 1.2 1.6 2.0

Pre

ssu

re [d

b]

Temperatura, ITS-90

sigma-theta (kg/m3)

Salinidad, PSS-78

Fluorescencia



450

400

350

300

250

200

150

100

50

0

4.8 5.2 5.6 6.0 6.4

32.0 32.5 33.0 33.5 34.0 34.5

26.3 26.4 26.5 26.6 26.7 26.8 26.9 27.0 27.1 27.2

0.0 0.4 0.8 1.2 1.6 2.0

Pre

ssu

re [d

b]

Temperatura, ITS-90

sigma-theta (kg/m3)

Salinidad, PSS-78

Fluorescencia




22

Estación 30. t0 Estación 30. t + 0.5 h

Estación 28. t0 Estación 28. t + 3 h

200

180

160

140

120

100

80

60

40

20

0

4.8 5.2 5.6 6.0 6.4

32.0 32.5 33.0 33.5 34.0 34.5

26.3 26.4 26.5 26.6 26.7 26.8 26.9 27.0 27.1 27.2

0.0 0.4 0.8 1.2 1.6 2.0

Pre

ssu

re [d

b]

Temperatura, ITS-90

sigma-theta (kg/m3)

Salinidad, PSS-78

Fluorescencia



200

180

160

140

120

100

80

60

40

20

4.8 5.2 5.6 6.0 6.4

32.0 32.5 33.0 33.5 34.0 34.5

26.3 26.4 26.5 26.6 26.7 26.8 26.9 27.0 27.1 27.2

0.0 0.4 0.8 1.2 1.6 2.0

Pre

ssu

re [d

b]

Temperatura, ITS-90

sigma-theta (kg/m3)

Salinidad, PSS-78

Fluorescencia



140

120

100

80

60

40

20

0

4.8 5.2 5.6 6.0 6.4

32.0 32.5 33.0 33.5 34.0 34.5

26.3 26.4 26.5 26.6 26.7 26.8 26.9 27.0 27.1 27.2

0.0 0.4 0.8 1.2 1.6 2.0

Pre

ssu

re [d

b]

Temperatura, ITS-90

sigma-theta (kg/m3)

Salinidad, PSS-78

Fluorescencia



140

120

100

80

60

40

20

0

4.8 5.2 5.6 6.0 6.4

32.0 32.5 33.0 33.5 34.0 34.5

26.3 26.4 26.5 26.6 26.7 26.8 26.9 27.0 27.1 27.2

0.0 0.4 0.8 1.2 1.6 2.0

Pre

ssu

re [d

b]

Temperatura, ITS-90

sigma-theta (kg/m3)

Salinidad, PSS-78

Fluorescencia




23

Estación 24. t0 Estación 24. t +4 h

Estación 24. t + 7 h Estación 24. t + 10 h

100

90

80

70

60

50

40

30

20

10

0

4.8 5.2 5.6 6.0 6.4

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26.3 26.4 26.5 26.6 26.7 26.8 26.9 27.0 27.1 27.2

0.0 0.4 0.8 1.2 1.6 2.0

Pre

ssu

re [d

b]

Temperatura, ITS-90

sigma-theta (kg/m3)

Salinidad, PSS-78

Fluorescencia



100

90

80

70

60

50

40

30

20

10

0

4.8 5.2 5.6 6.0 6.4

32.0 32.5 33.0 33.5 34.0 34.5

26.3 26.4 26.5 26.6 26.7 26.8 26.9 27.0 27.1 27.2

0.0 0.4 0.8 1.2 1.6 2.0

Pre

ssu

re [d

b]

Temperatura, ITS-90

sigma-theta (kg/m3)

Salinidad, PSS-78

Fluorescencia



100

90

80

70

60

50

40

30

20

10

0

4.8 5.2 5.6 6.0 6.4

32.0 32.5 33.0 33.5 34.0 34.5

26.3 26.4 26.5 26.6 26.7 26.8 26.9 27.0 27.1 27.2

0.0 0.4 0.8 1.2 1.6 2.0

Pre

ssu

re [d

b]

Temperatura, ITS-90

sigma-theta (kg/m3)

Salinidad, PSS-78

Fluorescencia



100

90

80

70

60

50

40

30

20

10

0

4.8 5.2 5.6 6.0 6.4

32.0 32.5 33.0 33.5 34.0 34.5

26.3 26.4 26.5 26.6 26.7 26.8 26.9 27.0 27.1 27.2

0.0 0.4 0.8 1.2 1.6 2.0

Pre

ssu

re [d

b]

Temperatura, ITS-90

sigma-theta (kg/m3)

Salinidad, PSS-78

Fluorescencia




24


Estación 24. t + 21h

100

90

80

70

60

50

40

30

20

10

0

4.8 5.2 5.6 6.0 6.4

32.0 32.5 33.0 33.5 34.0 34.5

26.3 26.4 26.5 26.6 26.7 26.8 26.9 27.0 27.1 27.2

0.0 0.4 0.8 1.2 1.6 2.0

Pre

ssu

re [d

b]

Temperatura, ITS-90

sigma-theta (kg/m3)

Salinidad, PSS-78

Fluorescencia



100

90

80

70

60

50

40

30

20

10

0

4.8 5.2 5.6 6.0 6.4

32.0 32.5 33.0 33.5 34.0 34.5

26.3 26.4 26.5 26.6 26.7 26.8 26.9 27.0 27.1 27.2

0.0 0.4 0.8 1.2 1.6 2.0

Pre

ssu

re [d

b]

Temperatura, ITS-90

sigma-theta (kg/m3)

Salinidad, PSS-78

Fluorescencia



100

90

80

70

60

50

40

30

20

10

0

4.8 5.2 5.6 6.0 6.4

32.0 32.5 33.0 33.5 34.0 34.5

26.3 26.4 26.5 26.6 26.7 26.8 26.9 27.0 27.1 27.2

0.0 0.4 0.8 1.2 1.6 2.0

Pre

ssu

re [d

b]

Temperatura, ITS-90

sigma-theta (kg/m3)

Salinidad, PSS-78

Fluorescencia




25



500

450

400

350

300

250

200

150

100

50

0

4.8 5.2 5.6 6.0 6.4

32.0 32.5 33.0 33.5 34.0 34.5

26.3 26.4 26.5 26.6 26.7 26.8 26.9 27.0 27.1 27.2

0.0 0.4 0.8 1.2 1.6 2.0

Pre

ssu

re [d

b]

Temperatura, ITS-90

sigma-theta (kg/m3)

Salinidad, PSS-78

Fluorescencia



500

450

400

350

300

250

200

150

100

50

0

4.8 5.2 5.6 6.0 6.4

32.0 32.5 33.0 33.5 34.0 34.5

26.3 26.4 26.5 26.6 26.7 26.8 26.9 27.0 27.1 27.2

0.0 0.4 0.8 1.2 1.6 2.0

Pre

ssu

re [d

b]

Temperatura, ITS-90

sigma-theta (kg/m3)

Salinidad, PSS-78

Fluorescencia



250

200

150

100

50

0

4.8 5.2 5.6 6.0 6.4

32.0 32.5 33.0 33.5 34.0 34.5

26.3 26.4 26.5 26.6 26.7 26.8 26.9 27.0 27.1 27.2

0.0 0.4 0.8 1.2 1.6 2.0

Pre

ssu

re [d

b]

Temperatura, ITS-90

sigma-theta (kg/m3)

Salinidad, PSS-78

Fluorescencia



250

200

150

100

50

0

4.8 5.2 5.6 6.0 6.4

32.0 32.5 33.0 33.5 34.0 34.5

26.3 26.4 26.5 26.6 26.7 26.8 26.9 27.0 27.1 27.2

0.0 0.4 0.8 1.2 1.6 2.0

Pre

ssu

re [d

b]

Temperatura, ITS-90

sigma-theta (kg/m3)

Salinidad, PSS-78

Fluorescencia




26

Estación 21

Estación 18b

100

90

80

70

60

50

40

30

20

10

0

4.8 5.2 5.6 6.0 6.4

32.0 32.5 33.0 33.5 34.0 34.5

26.3 26.4 26.5 26.6 26.7 26.8 26.9 27.0 27.1 27.2

0.0 0.4 0.8 1.2 1.6 2.0

Pre

ssu

re [d

b]

Temperatura, ITS-90

sigma-theta (kg/m3)

Salinidad, PSS-78

Fluorescencia



300

250

200

150

100

50

4.8 5.2 5.6 6.0 6.4

32.0 32.5 33.0 33.5 34.0 34.5

26.3 26.4 26.5 26.6 26.7 26.8 26.9 27.0 27.1 27.2

0.0 0.4 0.8 1.2 1.6 2.0

Pre

ssu

re [d

b]

Temperatura, ITS-90

sigma-theta (kg/m3)

Salinidad, PSS-78

Fluorescencia




27

Estación 05. t0 Estación 05. t+1h

Estación 05 t+3 h Estación 05. t +6.5 h

250

200

150

100

50

0

4.8 5.2 5.6 6.0 6.4

32.0 32.5 33.0 33.5 34.0 34.5

26.3 26.4 26.5 26.6 26.7 26.8 26.9 27.0 27.1 27.2

0.0 0.4 0.8 1.2 1.6 2.0

Pre

ssu

re [d

b]

Temperatura, ITS-90

sigma-theta (kg/m3)

Salinidad, PSS-78

Fluorescencia



450

400

350

300

250

200

150

100

50

0

4.9 5.6 6.3 7.0 7.7

32.0 32.5 33.0 33.5 34.0 34.5

25.4 25.6 25.8 26.0 26.2 26.4 26.6 26.8 27.0 27.2

0.0 0.4 0.8 1.2 1.6 2.0P

ress

ure

[db

]

Temperatura, ITS-90

sigma-theta (kg/m3)

Salinidad, PSS-78

Fluorescencia



450

400

350

300

250

200

150

100

50

0

4.9 5.6 6.3 7.0 7.7

32.0 32.5 33.0 33.5 34.0 34.5

25.4 25.6 25.8 26.0 26.2 26.4 26.6 26.8 27.0 27.2

0.0 0.4 0.8 1.2 1.6 2.0

Pre

ssu

re [d

b]

Temperatura, ITS-90

sigma-theta (kg/m3)

Salinidad, PSS-78

Fluorescencia



450

400

350

300

250

200

150

100

50

0

4.9 5.6 6.3 7.0 7.7

32.0 32.5 33.0 33.5 34.0 34.5

25.4 25.6 25.8 26.0 26.2 26.4 26.6 26.8 27.0 27.2

0.0 0.4 0.8 1.2 1.6 2.0

Pre

ssu

re [d

b]

Temperatura, ITS-90

sigma-theta (kg/m3)

Salinidad, PSS-78

Fluorescencia




28

Estación 05. t+7.5 Estación 05. t+10h

Estación 05 t+14.5 h Estación 05. t +18.5 h

450

400

350

300

250

200

150

100

50

0

4.9 5.6 6.3 7.0 7.7

32.0 32.5 33.0 33.5 34.0 34.5

25.4 25.6 25.8 26.0 26.2 26.4 26.6 26.8 27.0 27.2

0.0 0.4 0.8 1.2 1.6 2.0P

ress

ure

[db

]

Temperatura, ITS-90

sigma-theta (kg/m3)

Salinidad, PSS-78

Fluorescencia



450

400

350

300

250

200

150

100

50

0

4.9 5.6 6.3 7.0 7.7

32.0 32.5 33.0 33.5 34.0 34.5

25.4 25.6 25.8 26.0 26.2 26.4 26.6 26.8 27.0 27.2

0.0 0.4 0.8 1.2 1.6 2.0

Pre

ssu

re [d

b]

Temperatura, ITS-90

sigma-theta (kg/m3)

Salinidad, PSS-78

Fluorescencia



450

400

350

300

250

200

150

100

50

0

4.9 5.6 6.3 7.0 7.7

32.0 32.5 33.0 33.5 34.0 34.5

25.4 25.6 25.8 26.0 26.2 26.4 26.6 26.8 27.0 27.2

0.0 0.4 0.8 1.2 1.6 2.0

Pre

ssu

re [d

b]

Temperatura, ITS-90

sigma-theta (kg/m3)

Salinidad, PSS-78

Fluorescencia



450

400

350

300

250

200

150

100

50

0

4.9 5.6 6.3 7.0 7.7

32.0 32.5 33.0 33.5 34.0 34.5

25.4 25.6 25.8 26.0 26.2 26.4 26.6 26.8 27.0 27.2

0.0 0.4 0.8 1.2 1.6 2.0

Pre

ssu

re [d

b]

Temperatura, ITS-90

sigma-theta (kg/m3)

Salinidad, PSS-78

Fluorescencia




29

Estación 05. t+21.5 Estación 05. t+23.5h

450

400

350

300

250

200

150

100

50

0

4.9 5.6 6.3 7.0 7.7

32.0 32.5 33.0 33.5 34.0 34.5

25.4 25.6 25.8 26.0 26.2 26.4 26.6 26.8 27.0 27.2

0.0 0.4 0.8 1.2 1.6 2.0

Pre

ssu

re [d

b]

Temperatura, ITS-90

sigma-theta (kg/m3)

Salinidad, PSS-78

Fluorescencia



450

400

350

300

250

200

150

100

50

0

4.9 5.6 6.3 7.0 7.7

32.0 32.5 33.0 33.5 34.0 34.5

25.4 25.6 25.8 26.0 26.2 26.4 26.6 26.8 27.0 27.2

0.0 0.4 0.8 1.2 1.6 2.0

Pre

ssu

re [d

b]

Temperatura, ITS-90

sigma-theta (kg/m3)

Salinidad, PSS-78

Fluorescencia




30

Estación 00 Estación 01

Estación 03 Estación 04

200

180

160

140

120

100

80

60

40

20

0

6.0 6.4 6.8 7.2 7.6 8.0

30.0 30.5 31.0 31.5 32.0 32.5

24.0 24.2 24.4 24.6 24.8 25.0 25.2 25.4 25.6 25.8 26.0

0 1 2 3 4 5P

ress

ure

[db

]

Temperatura, ITS-90

sigma-theta (kg/m3)

Salinidad, PSS-78

Fluorescencia



200

180

160

140

120

100

80

60

40

20

0

6.0 6.4 6.8 7.2 7.6 8.0

30.0 30.5 31.0 31.5 32.0 32.5

24.0 24.2 24.4 24.6 24.8 25.0 25.2 25.4 25.6 25.8 26.0

0 1 2 3 4 5

Pre

ssu

re [d

b]

Temperatura, ITS-90

sigma-theta (kg/m3)

Salinidad, PSS-78

Fluorescencia



200

180

160

140

120

100

80

60

40

20

0

6.0 6.4 6.8 7.2 7.6 8.0

30.0 30.5 31.0 31.5 32.0 32.5

24.0 24.2 24.4 24.6 24.8 25.0 25.2 25.4 25.6 25.8 26.0

0 1 2 3 4 5

Pre

ssu

re [d

b]

Temperatura, ITS-90

sigma-theta (kg/m3)

Salinidad, PSS-78

Fluorescencia



200

180

160

140

120

100

80

60

40

20

0

6.0 6.4 6.8 7.2 7.6 8.0

30.0 30.5 31.0 31.5 32.0 32.5

24.0 24.2 24.4 24.6 24.8 25.0 25.2 25.4 25.6 25.8 26.0

0 1 2 3 4 5

Pre

ssu

re [d

b]

Temperatura, ITS-90

sigma-theta (kg/m3)

Salinidad, PSS-78

Fluorescencia




31

ADCP de casco OS38kHz

El buque Austral está equipado con un perfilador de corrientes TRDI Ocean Surveyor 38 kHz, el

cual está instalado en permanencia en el casco del buque a 6.8 m de profundidad y perfila las

corrientes hasta una profundidad aproximada de 1200 m con una resolución típica de 24 m en

la vertical. Las velocidades netas de la corriente son obtenidas descontando la velocidad del

barco, la cual se obtiene de dos fuentes independientes: el sistema de GPS diferencial de

posicionamiento del barco, y la función de detección del fondo (“Bottom Track”) del propio

ADCP, la cual tiene un alcance limitado a 2000 m aproximadamente. Dicho ADCP (“Acoustic

Doppler Current Profiler”) ya formaba parte del instrumental del buque al ser adquirido a

Alemania.

La adquisición se realiza desde el gabinete de hidroacústica del BO ARA Austral, mediante el

software VmDas (TRDI). La configuración para la adquisición fue tomada de Baques (2018), con

ligeros cambios durante la campaña. El ancho de celda fue recortado a 16 m durante gran

parte de la misión para aumentar el número de celdas válidas teniendo en cuenta la limitada

profundidad (menor a 200 m) durante gran parte de la navegación.

Los datos de actitud (cabeceo, rolido) son provistos por un sensor inercial Seatex MRU5

(Kongsberg) s/n 21462, instalado en el centro de gravedad del barco. El Software Seapath

recoge estos datos junto con el heading calculado por el GPS del barco y los reenvía a VmDAS.

Al principio de la campaña, el software vmDAS reportaba problemas para captar los datos de

actitud a través de puerto de serie, lo cual fue solucionado por el Jefe de Operaciones,

haciendo pasar los datos del MRU directamente por una conexión UMP.

El OS32 estuvo prendido durante casi toda la campaña y su performance fue muy irregular,

ofreciendo datos de mala calidad en buena parte de la navegación. Se estima que la causa es

suma de varios factores, incluyendo la interferencia con otros equipos acústicos, junto otros

problemas reportados en el pasado, como la excesiva longitud del cable que conecta la unidad

de cubierta al transductor. El BO Austral cuenta con un número elevado de sondas acústicas,

algunas de las cuales mostraron claros signos de interferencia con el ADCP en pruebas

anteriores (Valla & Fenco 2017). Recientemente, una sonda EK80 de 38 KHz ha venido a

sumarse al parque instrumental del buque, lo que agrava los problemas de interferencia

acústica con el OS38, el cual trabaja a la misma frecuencia. En la Figura 5 se muestra un

ejemplo de la interferencia de la sonda biológica con el OS32 kHz.

En la actualidad se está trabajando en una depuración de los datos, aislando periodos válidos

de otros irrecuperables. A pesar de los problemas reportados, en algunos tramos de la

campaña en que el ADCP de casco pudo ser cotejado con otras medidas independientes de

corriente (correntómetros fondeados y L-ADCP), la coherencia entre ellos fue notable.

Recomendaciones:

-Instalación de un sincronizador para limitar la interferencia entre equipos acústicos.

-Siguiendo las recomendaciones formuladas en informes anteriores (ver bibliografía) y

reiteradas por el fabricante (TRDI) en comunicaciones recientes, sería conveniente aprovechar

la próxima entrada del BO Austral en dique seco para acortar el cable del transductor y aislarlo

forrándolo con cobre.


32

Figura 5. Amplitud de eco (archivo AUS7_93.ENS) del ADCP de casco OS38, probando

diferentes sondas del barco. Se observan claramente patrones de interferencia en el periodo

en que la sonda biológica EK80 está prendida.

4.1.2. Determinación de Carbono Orgánico Particulado en la columna de agua

Responsables embarcados: Ximena Flores Melo, Ariadna Celina Nocera, Jacobo Martin

Investigadores Responsables: Ximena Flores Melo, Jacobo Martin

La producción, transformación y transporte de la materia orgánica en ambientes marinos es

clave para comprender los complejos ciclos biogeoquímicos y su impacto en el cambio

climático, considerando el rol de la bomba biológica.

El carbono en el océano puede encontrarse en diversas formas: 1) como carbono inorgánico

(CI), proveniente de escorrentías, deposición de materiales transportados por los vientos o por

la resuspensión de sedimentos del fondo marino. 2) Como carbono orgánico disuelto (COD),

también conocido como COD cromofórico (o COD coloreado), que tiene su origen en los

aportes de materia orgánica terrígena en forma de ácidos húmicos y fúlvicos disueltos. 3) El

carbono orgánico particulado (COP), de variados orígenes: alóctono, material orgánico

Sonda EM122 prendida

Sonda EK80 (38 kHz)prendida

Sonda navegación 50 kHz(EK80 apagada)


33

terrígeno (transportado por escorrentías o por aguas de origen antropogénico) o autóctono,

materia orgánica producida localmente por la comunidad fitoplanctónica mediante el proceso

de fotosíntesis y los aportes de detritus y pellets fecales contribuidos por los niveles

heterotróficos (Martin 2014).

Teniendo en cuenta el objetivo general de la campaña: Estudiar el funcionamiento de la

bomba biológica de carbono en el AMP Namuncurá con énfasis en los procesos de la columna

de agua mediados por el plancton y en el acoplamiento pelágico bentónico, a fin de establecer

una línea de base de conocimiento y generar indicadores biofísicos que sirvan para el

monitoreo durante la gestión de la misma a lo largo del tiempo, nuestro objetivo general fue

caracterizar la concentración de COP a profundidades discretas de la columna de agua,

considerando su relación con las condiciones físicas de la misma. Y como objetivo particular

proponemos la validación de productos satelitales de COP y fluorescencia con datos in situ,

para disponer de herramientas satelitales calibradas para el monitoreo del AMPN-BB.

Metodología

En cada estación se tomaron muestras con botellas Niskin de 12 L, una para cada una de las

siguientes profundidades: superficie, 20 m y profundidad máxima. En las estaciones fijas se

realizó una réplica a 20 m durante el primer lance. Para estudiar el efecto de las mareas en la

distribución vertical del COP, se realizaron estaciones fijas, muestreadas cada 6 h

aproximadamente.

Filtración

La muestra de agua, recuperada con botellas Niskin de 12 L, se filtró por un filtro GFF de 0.7

μm y 47 mm de diámetro para la determinación de Carbono Orgánico Particulado (COP; Sharp

1974). Dicha filtración se realizó con una rampa de filtración de 4 copas, asociada a una bomba

de vacío y dos kitasatos, uno de 1 L y otro de 2 L. Al finalizar la filtración, cada filtro se enjuagó

con agua milli-Q con el objetivo de retirar la sal que más tarde podría modificar el peso de la

masa seca obtenida en dicho filtro.

Secado en estufa y almacenamiento

Una vez enjuagados los filtros, fueron retirados de las copas de la rampa de filtración y

colocados dentro de un slide plástico para ser trasladados a una estufa, donde permanecieron

a una temperatura entre 35°C (0.1°C de variabilidad) por dos o tres días o hasta su completa

disecación. Finalmente los filtros con la muestra seca se guardaron en una caja plástica

hermética conteniendo sales de sílice para evitar la humedad.

Resultados

Dado que el contenido de carbono en las muestras de masa seca no ha sido aún realizado,

nuestros resultados se limitan a la observación y cuantificación de la Materia Total Suspendida

(MTS) obtenida en los filtros. Los filtros correspondientes a estaciones con una evidente

estratificación presentaron una acumulación mayor de masa en la capa superficial de mezcla.

Las muestras más profundas dieron como resultado filtros de poca coloración y poca carga de

masa, acentuándose este efecto en las estaciones más profundas (ejemplo figuras 6 y 7).

Nótese que la coloración del filtro 40 m (Figura 6) y el filtro 20 m (Figura 7) presentan una

mayor coloración en comparación a los filtros de otras profundidades de la misma estación. Sin

embargo, no coinciden con el filtro de mayor concentración de MTS. En la tabla 2 se

encuentran las concentraciones de masa seca de cada filtro, y se observa que la mayor MTS de


34

la estación 34 la presenta el filtro correspondiente a 20 m. En la figura 7, la máxima MTS

corresponde con el filtro de superficie. En ambos casos el filtro de fondo (440m y 1027m)

presenta una menor coloración relativa y una menor MTS (tabla 2). Se realizaron un total de

87 determinaciones de MTS en un total de 16 estaciones (tabla 3).

Figura 6. Estación 34, Lance 186 a 4 profundidades diferentes: 1m (superficie), 20m, 70m y

440m.

Figura 7. Estación 16, lance 34 a 4 profundidades diferentes: 1m (superficie), 20m, 40m,

1027m.

Tabla 2. Masa total de materia particulada en suspensión. Datos correspondientes a las

estaciones 34 y 16.

Estación Lance P++++

rofundidad (m) Masa total (mg)

Volumen

filtrado (L)

Concentración

(mg/L)

34 186 1 7.02 8.1 0.87

20 11.21 8.1 1.38

70 8.27 8.1 1.02

440 7.42 10.8 0.69

16 34 1 12.9 5.4 2.39

20 8.67 6.3 1.38

40 6.08 5.13 1.18

1027 8.38 8.1 1.04


35

Tabla 3. Materia total suspendida.


36

4.1.3. Fondeos de anclajes instrumentados autónomos

Responsables embarcados: Jacobo Martín, Gonzalo Bravo, Ximena Flores Melo

Investigador Responsable: Jacobo Martín

En la presente campaña se recuperaron del fondo marino 2 anclajes instrumentados que

fueran fondeados en agosto 2018 a bordo del BO ARA Puerto Deseado, a una profundidad de

140 m, en el AMPN-BB. El cometido de estos anclajes autónomos es obtener series temporales

de parámetros físicos y biogeoquímicos de interés, que aporten a la caracterización integral del

AMP, en combinación con las campañas oceanográficas que se realizan periódicamente.

La ubicación de los anclajes se muestra en la tabla 4 y figura 8. Estos anclajes disponen en su

base de un disparador (o liberador) acústico remoto, que al enviar una señal desde la

embarcación desconectan el lastre del resto del fondeo. De esta manera, el lastre queda en el

fondo marino y el anclaje con sus instrumentos y boyas que le confieren flotabilidad positiva

emergen a la superficie, donde es recuperado. Tras descargar los datos, reponer muestras y

realizar un mantenimiento de todos los dispositivos, se volvieron a fondear los anclajes en la

misma ubicación aproximada. Un esquema general de los anclajes se ofrece en las figuras 9 y

10. Otros detalles pueden encontrarse en el informe de la campaña previa “Ingenieros

Ecosistémicos”.

Tabla 4. Coordenadas y fechas de los fondeos.

Anclaje Fecha fondeo Latitud (S) Longitud (O) Recuperación

y fondeo Latitud (S) Longitud (O)

F1 22/08/18 54.14180 61.21081 21/11/2018 54.1425 61.2216

F2 26/08/18 54.47087 58.54095 11/11/2018 54.4899 58.5563

Figura 8. Situación geográfica de los fondeos. Se muestra la isobata de 200 m.


37

Figura 9. Esquema del anclaje instrumentado “F1”.


38

Figura 10. Esquema del anclaje instrumentado “F2”.


39

Maniobras de recuperación

Al llegar al punto teórico de ubicación del anclaje (tabla 4) se interrogó, a barco parado, el

liberador acústico mediante una unidad de cubierta TT801. En el caso del anclaje F2, fue

imposible al principio, descubriéndose después que la causa era interferencia con la sonda

multihaz de 12 kHz, que seguía encendida (ambos equipos trabajan en la misma frecuencia).

Incluso con todas las sondas acústicas desconectadas, fue necesario en ambos casos sumergir

el hidrófono 5-10 m por debajo del casco para conseguir establecer comunicación con el

liberador. El buque no contaba con una embarcación auxiliar preparada para aguas abiertas,

que hubiera ayudado en la recuperación (no hay una gaza pre-existente en la parte superior

del anclaje porque podría interferir con las mediciones), por lo que fue necesario agarrar el

anclaje con un grampín desde la banda de estribor, llevando después el cabo a popa. Usando

las pastecas del pórtico, los elementos del anclaje fueron izados y puestos en cubierta. Si bien

la maniobra tenía algunos riesgos, el Jefe de Operaciones y personal de cubierta reaccionaron

con gran profesionalidad y los instrumentos y boyas fueron embarcados sin daños dignos de

mención.

El anclaje F2 fue recuperado el día 11 de noviembre, siendo fondeado al día siguiente a

mediodía.

Anclaje F1: se recuperó el 21 de noviembre y fue fondeado el mismo día a las 20 h (hora local).

Mantenimiento de los instrumentos tras la recuperación, previo al fondeo

El detalle de las tareas fue el siguiente:

-Elementos estructurales. Chequeo de corrosión u otros desperfectos en grilletes, cabos,

cadenas, boyas y otros elementos. El deterioro de los elementos (grilletes, cabos, cadena,

giratorios) fue leve y solo requirió de cambios menores.

-ADCP TRDI: Desensamblado del ADCP de boya EB-46 y carcasa de acero. Traslado del ADCP a

laboratorio seco para apertura, chequeo, descarga de datos y cambio de pack de baterías.

Reensamblado el ADCP en la carcasa de acero inoxidable junto a baliza Iridium, se hizo rotar la

unidad sobre una estructura giratoria para verificar el compás magnético. Esta operación se

realiza en la cubierta de madera del Austral (tablones de 7 cm de espesor que ofrecen un

relativo aislamiento) y ligeramente elevado sobre ella. Tras el cambio del pack de baterías

interno, la comprobación (rutina AX del software BBTalk, TRDI) arrojó un error del compás de

23 grados, lo cual es inaceptable. Por ello, fue necesaria una calibración completa (rutina AF;

“Hard and Soft Iron”). La unidad se hizo girar 360º en 3 inclinaciones diferentes, lográndose

llegar a un error final de 2º (por debajo del umbral de 5º sugerido por el fabricante). El ADCP

fue configurado de idéntica manera al primer fondeo: ensambles de 10 min con 35 pings por

ensamble, ancho de celda de 4 m y blanqueo de 2 m; corrección por declinación magnética

acorde a fecha y ubicación, que resultó ser de 7º Este.

-Balizas Iridium: Chequeo y descarga de datos mediante conexión bluetooth. Recambio de

baterías y test en cubierta. Reensamblado en soportes de Grilon.

-Trampas de sedimento Technicap PPS 3/3: Se extrajeron los 12 colectores del carrusel

giratorio y se almacenaron en heladera hasta el desembarco. Otras 12 botellas fueron

rellenadas con una solución de formaldehído al 5% en agua de mar filtrada y tamponada con

tetraborato sódico. El motor de la trampa se programó en el laboratorio seco para girar a

intervalos de 8 días.


40

-Correntómetros Aquadopp: Tras liberarlo de la aleta Aquafin, fue trasladado a local seco para

apertura de la unidad, recambio pack de baterías, chequeo general y descarga de datos. A

continuación se realizó en cubierta, y en el punto menos expuesto a materiales

ferromagnéticos posible, una calibración del compás magnético, la comprobación del

inclinómetro, el ajuste del offset de presión y finalmente la programación de la unidad para el

fondeo. Se usó una densidad de pingueo, o “mearurement load” en la terminología Nortek, del

4%.

-Microcats SBE-37-ODO: En el interior (local seco y limpio) se procedió a abrir la unidad,

reemplazar baterías y descargar datos. Se realizaron lecturas en aire para verificar el buen

estado de la celda de conductividad. El circuito interno se lavó siguiendo las indicaciones para

el sensor más delicado (sensor óptico SBE-63), consistiendo en lavados sucesivos del circuito

de bombeo con tritón 1%, lavandina diluida y agua destilada a 30 °C.

-Liberadores acústicos OCEANO 2500. Apertura y cambio de baterías, chequeo de

estanqueidad. Chequeo del mecanismo de liberación en cubierta.

-Logger de clorofila Cyclops/PME. Reparación del recubrimiento de cobre (anti-fouling).

Apertura del instrumento, descarga de datos, reprogramación y cambio baterías. Fijación a

línea con adaptadores de Grilon.

La colonización biológica (incrustaciones, bio-films) fue leve sobre los instrumentos y se limpió

cuidadosamente, particularmente en las superficies de los transductores acústicos (Aquadopp,

Workhorse).

Los relojes internos de todos los instrumentos fondeados fueron sincronizados entre sí y con

los demás equipos utilizados durante la campaña, usando como referencia la hora (GMT) de la

red del BO ARA Austral. El intervalo de muestreo para todos los instrumentos fue fijado en 10

minutos y las trampas de sedimento muestrearán a intervalos de 8 días.

Maniobra de fondeo

Para ambos anclajes el procedimiento fue el mismo. Una vez todo el material listo, el barco se

ubicó en el punto teórico de fondeo (tabla 4) y con mínima propulsión de motores, el anclaje

se puso en el agua elemento a elemento desde popa, comenzando por la flotación superior y

ayudando la maniobra desde el pórtico de popa para elevar y acompañar los elementos del

anclaje. Finalmente el anclaje quedó bien estirado a remolque, momento en el cual el lastre se

sacó con ayuda de las pastecas del pórtico rebatible y fue liberado mediante un gancho

disparador.

Se utilizó como lastre tres muertos de hormigón reforzado con hierro. Un lastre de 300 kg se

dedicó al anclaje F2 y para el anclaje F1 se utilizaron dos lastres encadenados entre sí que

sumaban un peso de 1400 kg en el aire y aproximadamente 900 kg en inmersión. La porción

terminal del anclaje constaba de cadena 19 mm y cabo dentro de un tubo Aquasystem (cuya

finalidad es aumentar la rigidez del tramo terminal y así limitar el riesgo de que se forme una

gaza al golpear el anclaje el fondo marino).

Resultados/valoración

Se puede afirmar que el primer ciclo (agosto-noviembre 2018) de fondeo y recuperación de

anclajes en el AMP Namuncurá se ha concluido con éxito. Ningún instrumento o elemento del

anclaje sufrió avería, pérdida de estanqueidad o desperfecto alguno. Con la salvedad del


41

Logger de clorofila sito en el anclaje F1, cuyas baterías se agotaron un poco antes de lo

previsto (registraron datos hasta 20 de octubre), la totalidad de los instrumentos funcionaron

sin contratiempos y registraron las series temporales de datos y muestras previstas, sin

interrupciones. Igualmente los liberadores acústicos funcionaron con normalidad y los

elementos estructurales del anclaje mostraron buen estado, siendo solo necesarios algunos

pocos reemplazos de grilletes y ánodos de sacrifico.

Los datos y muestras colectadas están actualmente siendo procesados. Se ofrecen únicamente

algunos detalles sobre el desempeño de los instrumentos.

ADCP Workhorse 300 kHz

El perfilador instalado en el anclaje F1 registró ensambles de datos cada 10 minutos. El ADCP

quedó sumergido a una profundidad de 90 m y perfiló los 80 m superiores con un ancho de

celda (resolución vertical) de 4 m y distancia de blanqueo de 1.76 m. La porción del perfil de

velocidades más cercana a la superficie (aproximadamente 10 m) no ofrece datos aceptables

debido a las reflexiones de los haces acústicos con la interfaz agua-aire. A pesar de las fuertes

corrientes registradas (hasta 1.5 m/s), el ADCP permaneció verticalmente estable gracias a la

boya (EB-46, Mooring Systems) elíptica de muy bajo coeficiente de arrastre en que estaba

ensamblado. La desviación de la vertical fue de 1.2º en promedio y 5º como máximo. Se

muestran en la figura 11 algunas previsualizaciones obtenidas con el software winADCP. A

pesar de un retorno acústico relativamente bajo, la atenuación con la distancia es coherente y

en general los datos muestran una calidad aceptable, salvo muy cerca de la superficie, como

indicado anteriormente.

Son destacables las oscilaciones mareales de gran intensidad y la ciclicidad diaria en la

intensidad del eco acústico, probablemente ligada a migraciones verticales del zooplancton.

Figura 11. Previsualización de 8 días de datos (resolución 10 min) del ADCP TRDI WHS s/n

23416, fondeado en modo “upward looking” a 90 m de profundidad. Arriba, retorno acústico,

abajo módulo de la velocidad en mm/s, donde los últimos metros contiguos a la superficie del

mar han sido filtrados.


42

Aquadopp 3000 La inclinación respecto a la vertical, principal parámetro a tener en cuenta para la performance de estos equipos, se mantuvo por debajo de 10º casi todo el tiempo en los correntómetros Aquadopp de ambas estaciones, superándose solo en algunos registros el umbral máximo de 20º. Las series están completas y actualmente en procesamiento. Las corrientes medidas son notablemente más intensas en F1, superando a menudo 1 m/s, mientras que en F2 se mantienen por debajo de 40 cm/s. Microcat SBE37-ODO. Los rangos de temperatura, presión y oxígeno medidos fueron coherentes con lo esperado en la zona de estudio y están siendo cotejadas con medidas simultáneas con el CTD del barco en las estaciones fijas F1 y F2. Logger de clorofila Cyclops-PME. Este equipo, sito a 93 m de profundidad, registró series continuas desde el 20 de agosto hasta el 20 de octubre. Durante la realización de la estación de perfilado repetido (estación F1, contigua al anclaje del mismo nombre) y mientras se realizaba el mantenimiento del instrumental del anclaje, se ancló el Logger a la roseta, haciendo paradas de 10 minutos (con frecuencia de adquisición de 1 min) a varias profundidades, a fin de intercalibrarlo con el fluorómetro del Rinko ASTD-102 (el cual a su vez será calibrado mediante espectrofotometría, ver sección correspondiente).

Figura 12. Anclaje F1. Series temporales de fluorescencia de clorofila (no calibrado) a 93 m.

Trampas de sedimento En las figuras 13 y 14 se muestra fotografías que ilustran preliminarmente la “serie temporal” de muestras obtenidas en orden de recolección, cubriendo el periodo de mitad de agosto a la primera semana de noviembre. En el anclaje F2 el flujo de partículas colectado es más discreto y de aspecto muy biogénico. Por el contrario en la estación F1, (donde la intensidad de la corriente es muy superior), las muestras fueron mucho más cuantiosas, lo que hace sospechar aportes de material resuspendido desde el fondo (la trampa estaba ubicada a 25 m del fondo). La serie mostrada en las figuras integra 5 días las primeras 3 botellas y 9 días de ahí en adelante.


43

Figura 13. Serie de muestras de la trampa “F1”

Figura 14. Serie de muestras de la trampa “F2”

4.1.4. Mediciones radiométricas in situ

Responsable embarcado: Guillermo Ibañez

Responsable no embarcado: Sandra Torrusio

En el marco de la presente campaña, la Comisión Nacional del Espacio (CONAE) participó para realizar mediciones radiométricas in situ para caracterizar las aguas costeras y oceánicas en el contexto de la Misión satelital en desarrollo “SABIA-Mar” que estimará color del mar. Además son datos necesarios y de utilidad para correlacionar con los productos satelitales de otras misiones actualmente en órbita. En este contexto, nuestro objetivo fue realizar la caracterización radiométrica de la superficie del agua y su relación con parámetros tales como la concentración de clorofila-a y la turbidez con el fin de validar datos satelitales actuales y utilizarla para la estimación y validación de algoritmos para el proyecto SABIA-Mar.


44

Metodología

En cada estación programada que estuviera hecha en horario diurno se hicieron por protocolo para cada medida 4 series de mediciones de radiancia (W/m2/nm/sr) de agua, cielo y panel de referencia (28 por estación) con un Espectroradiómetro ASD Modelo Field Spec Pro 4 cuyo rango de medición es entre 350-2500 nm y un campo de visión (FOV) de 8º. El horario recomendado de medición para esta latitud y época del año es desde las 09:30 hasta las 18:30 h. El ángulo de elevación solar mínimo es 30º. También se tomaron datos complementarios como fotos, nubosidad, oleaje, velocidad y dirección de viento, entre otras variables de importancia. Como apoyo se pudo contar con las imágenes de clorofila y temperatura superficial de agua para tener un dato comparativo. En laboratorio se calculó la reflectancia del agua en cada estación. Resultados

En total se tomaron 20 medidas en el Banco Burdwood y 9 en el Canal de Beagle y estrecho Le Maire (tabla 5). En la figuras 15 y 16 se muestra un gráfico de radiancia de agua, cielo y blanco de referencia en el AMP N-BB y uno de radiancia en dos estaciones de muestreo en el Canal Beagle, respectivamente. Una vez procesados, los datos obtenidos estarán disponibles en la biblioteca de firmas espectrales de CONAE con acceso libre. Tabla 5. Mediciones radiométricas por estación.

Fecha Estación Punto Rad Hora local

11/11/2018 EF2 BBW1 10:05

11/11/2018 EF2 BBW2 13:00

11/11/2018 EF2 BBW3 15:50

11/11/2018 EF2 BBW4 17:10

12/11/2018 EF2 BBW5 12:15

13/11/2018 E16 BBW6 9:45

13/11/2018 E21 BBW7 16:25

14/11/2018 EF24 BBW8 11:00

14/11/2018 EF24 BBW9 12:40

14/11/2018 EF24 BBW10 15:15

14/11/2018 EF24 BBW11 18:00

15/11/2018 E28 BBW12 14:20

17/11/2018 EF5 USH1 14:45

17/11/2018 EF5 USH2 16:45

17/11/2018 EF5 USH3 18:15

18/11/2018 EF5 USH4 11:45

18/11/2018 EF5 USH5 14:10

18/11/2018 EF5 USH6 16:10

19/11/2018 E3 USH7 12:40

19/11/2018 E3 USH8 13:50

21/11/2018 EF1 BBW13 12:00


45

Tabla 5 (continuación).

Fecha Estación Punto Rad Hora local

21/11/2018 EF1 BBW14 12:45

21/11/2018 EF1 BBW15 15:30

21/11/2018 EF1 BBW16 18:05

22/11/2018 EF34 BBW17 10:05

22/11/2018 EF34 BBW18 13:10

22/11/2018 EF34 BBW19 16:05

22/11/2018 EF34 BBW20 18:05

24/11/2018 E2 USH9 14:35

Figura 15. Ejemplo de radiancia obtenido a partir del espectroradiómetro. Curva color azul:

Agua. Curva color celeste: Cielo. Curva color rojo: Blanco de referencia.

Figura 16. Ejemplo de reflectancia obtenida en cada estación. Curva color rojo: Reflectancia

estación EF5 Color negro: Reflectancia para la estación E3


46

Conclusiones

Se pudieron tomar medidas radiométricas en las condiciones climáticas óptimas y adversas

que servirán para compararlas con otras campañas hechas en condiciones similares. En base a

los resultados de laboratorio se podrá establecer si hay correlación o no entre los datos de

clorofila y sedimentos en ambos métodos de medición.

Recomendaciones

Establecer más estaciones fijas para optimizar el periodo de campaña.

4.2. Comunidad microbiana

4.2.1. Tramas tróficas microbianas y sus implicancias para los flujos biogeoquímicos

Responsables embarcados: Andrea Malits, Ximena Flores Melo, Maité Latorre, Ariadna C.

Nocera.

Investigador Responsable: Andrea Malits

Las tramas tróficas microbianas, constituidas por el picoplancton autótrofo, protistas,

procariotas heterótrofos y el virioplancton, son componentes clave en las transferencias de

carbono y la regeneración de micro- y macronutrientes en ecosistemas marinos (Azam 1998).

Las aguas asociadas al AMP N-BB representan un ambiente netamente oceánico y no

particularmente productivo en términos de la biomasa fitoplanctónica según imágenes del

satélite AQUA MODIS (2002 hasta la fecha) y observaciones de campañas oceanográficas

realizadas desde 2014 hasta la fecha, con excepción de la primavera de 2014 y del verano de

2015. En regiones o épocas de escasa producción primaria autóctona la red trófica microbiana

mantiene las tramas tróficas marinas en aguas subantárcticas en general (Manganelli et al.

2009) y sobre el AMP N-BB en particular, como se ha observado en abril y diciembre 2016. El

picoplancton autótrofo (fitoplancton menor a 2µm) contribuye significativamente a la

producción primaria, mientras que los procariotas heterótrofos actúan como eslabón

intermedio entre el carbono orgánico disuelto (COD) proveniente de varias fuentes y los

niveles tróficos superiores mediante el bucle microbiano, es decir, la depredación de

procariotas por protistas (Azam et al. 1983). Por otro lado, la lisis vírica al destruir la célula

infectada y liberar el contenido del citoplasma al medio, implica una transferencia del pool de

materia orgánica particulada al de materia orgánica disuelta, retrasando así el flujo de carbono

orgánico hacía los niveles tróficos superiores (Wilhelm & Suttle 1999) y repercutiendo en

tramas tróficas más regenerativas (Bonilla-Findji et al. 2008, Malits & Weinbauer 2009). El

conjunto de las actividades microbianas, además, produce materia orgánica refractaria, es

decir indisponible para la utilización microbiana y, por lo tanto, representa mecanismos de

secuestro de carbono en el mar definidos por el concepto de la bomba de carbono microbiana

(MCP, Jiao et al. 2010). Tanto la disponibilidad de nutrientes inorgánicos y materia orgánica

(“bottom up”) como los agentes de mortalidad (“top down”) son factores que determinan la

diversidad taxonómica y funcional de la comunidad procariota y, en última instancia, los flujos

biogeoquímicos en el AMP N-BB.


47

El objetivo general es, por lo tanto, estudiar los mecanismos que afecten la producción y

diversidad de microorganismos y su interacción con los parámetros fisicoquímicos con el fin de

modelar el flujo del carbono orgánico entre los componentes de la red trófica planctónica y

elucidar los mecanismos que mantienen la diversidad y producción del AMP N-BB.

Objetivos específicos:

1. Determinar las concentraciones de nutrientes inorgánicos disueltos y de COD 2. Determinar la calidad de la materia orgánica disuelta mediante el análisis de sus propiedades ópticas y fluorescentes (CDOM, FDOM) 3. Determinar las variaciones espaciales de las abundancias de microorganismos (pico/nanoplancton autótrofo, nanoflagelados heterótrofos, procariotas heterótrofas y virus) y relacionarlas con los parámetros físico-químicos y la biomasa autótrofa. 4. Determinar las tasas de depredación de bacterias por nanoflagelados (bucle microbiano) y de la lisis vírica 5. Determinar la respiración procariota junto a los ensayos de depredación y lisis vírica y modelar el flujo de carbono 6. Explorar la diversidad taxonómica y funcional de las procariotas a partir de herramientas de secuenciación masiva y Citometría de flujo Metodología

Durante la campaña oceanográfica a bordo del BO Austral se realizaron 28 estaciones

oceanográficas en 15 puntos geográficos, de los cuales 5 eran estaciones fijas con un muestreo

cada 6-9 h (tabla 6). En cada estación se tomaron muestras de agua a 2-6 profundidades

mediante botellas Niskin montadas en una roseta con CTD con el fin de aproximarse a una

resolución vertical de datos biológicos y químicos que se detallen en la tabla 6. Las muestras

para estimar la mortalidad, diversidad y actividad procariota se tomaron a la profundidad del

máximo de clorofila (indicado por el sensor de fluorescencia del perfilador multiparamétrico

Rinko (JFE) ASTD-102 calibrado para aguas oceánicas y costeras con datos analíticos).

1. Nutrientes inorgánicos, carbono orgánico disuelto, CDOM/FDOM y clorofila

Para la determinación de la concentración de los nutrientes inorgánicos disueltos y de carbono

orgánico disuelto y para el análisis de CDOM/FDOM se filtraron 2 L de agua sobre filtros

Whatman GF/F previamente calcinados 4 h a 450°C. Dos submuestras de 250 mL se guardaron

a -20°C para los análisis de la concentración de nutrientes inorgánicos disueltos (amonio,

nitrito, nitrato, fosfatos y silicatos) en el Laboratorio de Química Ambiental y Ecotoxicología

(CENPAT, Puerto Madryn), una submuestra de 100mL se guardó acidificada (pH<2) a 4°C para

el análisis de COD en el Instituto Nacional de Agua (Ezeiza).

Las propiedades ópticas y fluorescentes (CDOM, FDOM) serán analizadas en el CADIC con el

espectrofluorometro HORIBA Aqualog midiendo espectros de absorbancias y matrices de

excitación (Ex) y de emisión (Em) según Coble (1996). Los filtros se guardaron a -20°C para los

análisis de clorofila-a que servirán para una intercalibración de mediciónes de clorofila-a

colectado sobre filtros calcinados y no calcinados. Los pigmentos fotosintéticos se extraerán en

acetona 90% durante 24 h y se determinarán con un espectrofotómetro según Strickland &

Parsons (1972).


48

2. Abundancias de microorganismos

Submuestras para la determinación de la abundancia, biomasa y composición (grandes grupos

taxonómicos y funcionales) de pico-/nanoplancton autótrofo, nanoflagelados heterótrofos (5

mL, respectivamente), procariotas y virus (1 mL, respectivamente) fueron fijadas con

glutaraldehido, previamente filtrado por 0.2 µm, a una concentración final de 0.5% (excepto

para el pico/nanoplancton fototrófico, cual era 0.1%), incubadas 20-30 min a 4°C, a

continuación congeladas en nitrógeno líquido y almacenadas a –80°C para su posterior análisis

por citometría de flujo. Detalles prácticos se encuentran en Brussaard (2004) para virus, en

Gasol & del Giorgio (2000) para procariotas y en Marie et al. (2001) para pico-/nanoplancton

autótrofo. La abundancia de nanoflagelados heterótrofos será determinada con un protocolo

optimizado (Christaki et al. 2011).

3. La mortalidad procariota por lisis vírica.

La producción vírica lítica y lisogénica (VP) y la fracción de células infectadas (FIC) y de células

lisogénicas (FLC) se estimaron mediante una técnica de dilución que se basa en el principio de

reducir la abundancia de virus para impedir una nueva infección. Así, los virus nuevos

producidos provienen de células ya infectadas (Weinbauer et al. 2010). En las estaciones fijas

las muestras de agua obtenidas del máximo de clorofila (tabla 6) mediante botellas Niskin y

prefiltradas por una malla de 115 µm se fraccionaron mediante un sistema de flujo tangencial

equipado con cartuchos de 0.2 µm y de 30 kDalton para obtener un concentrado de

procariotas y agua libre de virus, respectivamente.

Los procariotas fueron incubados en agua libre de virus durante 9 h a la temperatura in situ y

se tomaron muestras para las abundancias vírica y procariota a tiempo 0 y cada 3 h que se

preservaron para su posterior análisis por citometría de flujo. Para estimar la infección

lisogénica (Paul & Weinbauer, 2010) se añadió mitomicina C (SigmaChemical Co, No. M-0503,

concentración final de 1 µg mL–1) para inducir el ciclo lítico en procariotas lisógenos. Las

muestras sin tratamiento servían como control. Los datos de producción vírica en combinación

con la biomasa y la tasa de crecimiento procariota permiten calcular la mortalidad procariota

debido a virus. Detalles se encuentran en Malits et al. (2014).

4. Tasa de mortalidad por nanoflagelados y crecimiento de procariotas.

Junto a los ensayos para determinar la infección vírica se determinó la depredación de

procariotas por nanoflagelados mediante la técnica de desaparición de trazadores

fluorescentes (FLB's) (Sherr et al. 1987). Los FLBs se prepararon a partir de cultivos de

Pseudomonas diminuta teñidas con 5-([4,6-dichlorotriazin-2-yl]amino) fluorescein (DTAF).

Para cada experimento de depredación se hicieron incubaciones de 1L de agua del mar

(prefiltrado por 25µm para incluir solo femto-, pico- y nanoplancton) por duplicado y un

control (prefiltrado por 0.8 µm) en botellas de policarbonato añadiendo FLBs a

aproximadamente 20-30% de la concentración procariota in situ a la temperatura in situ y en

oscuridad durante 48 h. Se tomaron muestras a t0, t12, t24, t48 para el recuento de bacterias y

trazadores con citometría de flujo (Bratvold et al. 2000, Gasol & Del Giorgio 2000) y para el

recuento con microscopía. Las tasas de depredación se calcularán según Salat & Marrasé

(1994). La mortalidad debido a protistas se determinará como porcentaje de la biomasa

procariota in situ. Estas incubaciones serán utilizadas para calcular la tasa de crecimiento

procariota.

5. Respiración procariota

Las tasas de respiración procariota se determinaron junto a los ensayos para determinar

balances metabólicos de la comunidad planctónica (ver sección 4.2.4) a partir de la evolución


49

de la concentración de oxígeno en incubaciones in vitro de agua de mar prefiltrado por 3 µm

para incluir procariotas asociadas a partículas y libres a temperatura in situ controlada y en

oscuridad para evitar procesos fototróficos. Las concentraciones de oxígeno se medirán con

microsensores ópticos no invasivos (PreSens GmbH, Alemania), que permiten mediciones

continuas o repetidas (Marchand et al. 2009).

6. Diversidad taxonómica y funcional de procariotas

El análisis de la composición de la comunidad procariota se realizará extrayendo el ADN de

muestras de 5-10 L agua filtrada a través de filtros de policarbonato de 3 µm de poro y de

Sterivex-GV de 0.2 μm (Millipore) para colectar bacterias asociadas a partículas y libres,

respectivamente. El ADN se extraerá usando MoBio PowerWater DNA Isolation Kit (MioBio

Laboratories, Inc., CA, USA) siguiendo las instrucciones del proveedor. Se amplificarán

fragmentos hipervariables del gen para la subunidad pequeña del ARN ribosomal de

procariotas con plataforma Illumina. Las secuencias obtenidas serán analizadas según (Guibert

et al. 2012), en colaboración con la Dra. Mariana Lozada del CENPAT.

Resultados

Durante el muestreo de un total de 28 estaciones se obtuvieron 725 muestras para su

posterior análisis con citometría de flujo, 70 muestras para la determinación de clorofila, 73

muestras para el análisis de nutrientes inorgánicos, 43 muestras para análisis de CDOM/FDOM,

15 muestras para la extracción de ADN procariota, acompañado con 6 ensayos para

determinar la respiración procariota. Dichas muestras y datos servirán para determinar las

variaciones espaciales de las abundancias microbianas (virus, procariotas, pico- y

nanofitoplancton y nanoflagelados) y de las tasas de mortalidad de procariotas por lisis vírica y

depredación y para estudiar la diversidad y respiración procariota en relación de los factores

bottom up y top down. Estos datos revelarán, en última instancia, los mecanismos que regulan

la biomasa y diversidad de los microorganismos y sus repercusiones en los flujos de carbono

orgánico en el AMP N-BB.

Tabla 6. Estaciones y lances realizados para la toma de muestras que se detallen en la tabla.

Estación Lance Nº Profundidad Clorofila Nutrientes inorgánicos

CDOM, FDOM,

DOC

Citometria de flujo

ADN Lisis

vírica y Grazing

Respiración bacteriana

F2 2 1 x x x

t=0 2 10 x x x x

2 20 x x x x x x x

2 136 x x x x

F2 15 10 x x x x

t= 6hs 15 40 x x x x

15 125 x x x x

F2 18 10

x

t= 12hs 18 136 x

F2 24 1 x x x x

t= 18hs 24 10 x x x x

24 135 x x x x

18b 30 10 x x x x

30 50 x x x x x

30 120 x x x x

30 500

x

30 1200

x


50


CDOM, FDOM,

DOC

Citometria de flujo

ADN Lisis

vírica y Grazing


30 2450 x x x

16 34 1

x

34 10 x x x x

34 40 x x x x x

34 120 x x

x

34 500

x

x

34 820

x

x

34 860

x

34 1017 x x x

21 43 10 x x x x

43 50 x x x x

43 120 x x x x

24 50 10 x x x x x x x

t=0 50 90 x x x x

24 59 1

t=6hs 59 10 x x x x

59 90 x x x

24 66 10 x x x x

t=12hs 66 30

x

66 80 x x x x

24 t=18hs

82 90 x x

28 84 10 x x x x

84 40 x x x x x

x

85 120 x x x x x

12 94 10 x x

x x

94 60 x x

x

94 150 x x

x

94 285 x x x

5 102 10 x x

x

t=0 102 50 x x x x x x x

102 75

x

102 260 x x

x

5 113 10 x x x

t=6hs 113 150

x

113 300 x x

x

113 400

x

112 500 x x

x

5 118 10 x x x

t=15hs 118 170 x x

x

118 330 x x

x

5 119 10 x x x

t=18hs 119 170 x x

x

119 390 x x

x

5 121 10 x x x

t=24hs 121 50

x

121 170 x x

x

121 452 x x x

4 126 10 x x x x x

126 20

x

126 65 x x x

3 135 10 x x x x x

x

135 75 x x x


51


CDOM, FDOM,

DOC

Citometria de flujo

ADN Lisis

vírica y Grazing


30 146 10 x x x x x

146 50

x

146 200 x x x

F1 156 10 x x

x

t=0hs 156 50

x

156 130 x x x

F1 168 10 x x x x x x x

t=9hs 168 40 x x

x

168 130 x x x

34 178 10 x x

x

t=0hs 178 50

x

178 150 x x

178 360 x x

34 186 10 x x

x

t= 6hs 186 40

x

186 70 x

x x x x

186 200

x

186 440 x x x

34 199 10

x

t=12hs 199 20 x x

199 100 x x

x

199 200

x

x

199 420 x x

1 204 1 x

x

204 10 x x x x x

204 20

x

204 60

x

204 105

x

204 200 x x x x

0 212 1 x

x

212 10 x

x x x

212 60 x

4.2.2. Estructura vertical y composición isotópica del plancton eucariota unicelular en

primavera

Responsable embarcado: Guido Bértola

Responsables no embarcados: Viviana Alder, Luciana Riccialdelli, Héctor Olguín Salinas

La estructura de la comunidad fitoplanctónica de ambientes templado-fríos exhibe marcadas variaciones estacionales. Durante la primavera, el incremento en la intensidad de luz y nutrientes en combinación con la intensa turbulencia favorecen el incremento de fitoplancton, principalmente diatomeas (Glibert 2016). Además de los cambios estacionales, el fitoplancton fluctúa diariamente en respuesta a procesos físicos (mezcla vertical, acción de las mareas, distribución de la luz y nutrientes), fisiológicos o bien debido a interacciones intra- o interespecíficas (pastoreo), condicionando de este modo los flujos de materia y energía de la trama trófica (Flynn & Fasham 2002). Estudios previos realizados en aguas del AMPN-BB durante la primavera 2014, han revelado valores de clorofila de hasta 10 µgL-1 con máximos próximos al fondo y atribuidos a la abundancia de una única especie, Rhizosolenia crassa (Bértola et al. 2018a, b). Este incremento en estratos profundos podría explicarse por


52

fenómenos de migración vertical que se han descripto para especies del mismo género (Villareal et al. 1996). Por otra parte, las variaciones espaciales y temporales en las condiciones químicas (e.g. ingresos de carbono y nitrógeno), físicas (ej. temperatura) y biológicas (e.g. composición de la comunidad) que se suceden a nivel local y regional, influyen en la composición isotópica de los productores primarios (Fogel et al. 1992, Petterson 1999, Kurle & McWorter 2017, Oczkowski et al. 2018). Las variaciones registradas en la composición de isótopos estables de carbono y nitrógeno del fitoplancton repercutirán en toda la estructura trófica del AMPN-BB (Riccialdelli et al. 2018a, b). Mediante marcadores bioquímicos es posible generar nuevas perspectivas sobre las interacciones entre los organismos y su ambiente. Al mismo tiempo, la determinación de metales en cada uno de los niveles tróficos implicados permite detectar las principales vías de transferencia de estos contaminantes dentro de las redes tróficas (Borga et al. 2004, Arribére et al. 2010).

En este contexto, los resultados de los estudios realizados en el Banco Burdwood-AMP Namuncurá y adyacencias durante la primavera 2018 permitirán comparar las tendencias en la distribución espacial de las comunidades de fitoplancton y protozooplancton con la primavera del 2014 y analizar las fluctuaciones verticales diarias de las comunidades y/o de sus especies dominantes. Estos estudios, en conjunto con los análisis de composición isotópica y de metales, constituyen importantes herramientas a ser utilizadas para generar conocimiento sobre la ecología de las especies, el funcionamiento de las tramas tróficas del área y el grado de vulnerabilidad del ecosistema ante la presión antrópica.

El objetivo general es, por tanto, analizar la distribución espacial del plancton eucariota unicelular del AMPN-BB y adyacencias en primavera, enfatizando en su estructura vertical y sus variaciones diarias, y en su relación con los niveles de clorofila y la composición isotópica y de metales de la comunidad.

Objetivos específicos 1. Analizar la distribución espacial de la densidad, biomasa y estructura del plancton

eucariota unicelular, tanto en el eje horizontal como vertical. 2. Analizar la distribución espacial de la concentración de clorofila. 3. Analizar la distribución espacial de la composición de isótopos estables y de metales del

plancton eucariota unicelular en aguas subsuperficiales. 4. Ensayar cultivos de diatomeas presentes en el AMPN-BB. Metodología

Durante la campaña desarrollada entre los días 10 y 24 de noviembre se relevaron 15 estaciones oceanográficas abarcando el Banco Burdwood, el talud circundante y el Canal Beagle. A su vez, se definieron 5 estaciones fijas en las que se realizaron muestreos en la columna de agua, con el fin de analizar las fluctuaciones diarias en la distribución de las comunidades biológicas. Las muestras recolectadas se detallan en la tabla 7. A continuación se detallan aspectos metodológicos de los muestreos realizados.

Objetivos 1 y 4. Distribución espacial de la densidad, biomasa y estructura del plancton eucariota unicelular y ensayos de cultivos Muestras cualitativas: En todas las estaciones se tomaron muestras por arrastre vertical de red cónica doble de 25 µm de poro (figura 17A) desde 20 m a superficie que fueron preservadas con formol neutralizado con CaCO3 a una concentración final del 4%. Sobre estas muestras se realizarán análisis bajo microscopio, para determinar a las especies dominantes de diatomeas, dinoflagelados, ciliados, flagelados y foraminíferos, bajo microscopio. Total: 15 muestras

Parte del material recolectado en 7 estaciones mediante la red de fitoplancton (figura 17A) fue colocado en agua de mar filtrada con agregado de medio Guillard F/2 (Marine Water


53

Enrichment Solution) a fin de preservar in vivo a las diatomeas y otros micropláncteres con el fin de realizar ensayos de cultivos. Muestras cuantitativas: En cada una de las 15 estaciones se hicieron muestreos verticales con botellas Niskin (figura 17B) a distintas profundidades. Además, en 5 de esas estaciones (estaciones fijas) se efectuaron muestreos con roseta cada 6 h (durante un intervalo de entre 9 y 24 h) con el fin de registrar las fluctuaciones diarias en la distribución vertical de las comunidades de fitoplancton y protozooplancton. Las muestras fueron preservadas con formol neutralizado con CaCO3 a una concentración final del 1% y serán utilizadas para la estimación de densidad y biomasa de los grupos que conforman el fitoplancton y protozooplancton mediante el método de Utermöhl. Total: 84 muestras

Las muestras de plancton unicelular eucariota (red y botellas) serán analizadas por el Lic. Guido Bértola, el Dr. Héctor Olguín y la Dra. V. Alder en el marco del proyecto UBACYT que se desarrolla en el Laboratorio de Ecología Marina Microbiana (Departamento de Ecología, Genética y Evolución, FCEN, UBA).

Figura 17. Equipos empleados en la toma de muestras. A) Red de fitoplancton de malla de 25 µm de poro; B) Roseta con 24 botellas Niskin

Objetivo 2. Distribución espacial de la concentración de clorofila

En cada una de las estaciones, profundidades y horas incluidas en la tabla 7, se filtraron 3 L de agua de mar por filtros GF/F (figura 18) que fueron recolectados con botella Niskin. Los filtros fueron preservados en freezer (-20°C) y empleados para estimar la concentración de clorofila total (a, b y c) por el método de Jeffrey & Humphrey (1975) y la de clorofila a sin feopigmentos por el método de Strickland & Parsons (1972). Total: 99 muestras.

La colecta de muestras y el filtrado respectivo fueron realizados por el Lic. Guido Bértola (IEGEBA, UBA-CONICET), el Lic. Alejandro Martínez (IBBEA, UBA-CONICET), la Lic. Ariadna Nocera (CESIMAR, CENPAT-CONICET) y la Lic. Ximena Flores Melo (CADIC, CONICET). Las mediciones fueron realizadas en CADIC por Ariadna Nocera, Maité Latorre y Guido Bértola.


54

Figura 18. Tren de filtración de clorofila

Objetivo 3. Análisis de isótopos estables y metales sobre la comunidad de fitoplancton y protozooplancton

En cada una de las 15 estaciones se efectuaron dos arrastres verticales de red cónica doble de 25 µm de poro (figura 17A) desde 20 m a superficie. La muestra recolectada en ambos lances fue preservada en freezer a -20°C para el análisis de isótopos y metales presentes en los organismos que conforman la comunidad de fitoplancton y protozooplancton. Una vez descongeladas, las muestras serán prefiltradas con un filtro de 115 µm de malla, a fin de evitar organismos de tamaños mayores a 115 µm. Posteriormente se filtrará utilizando filtros tipo GF/F de 0.7 µm de poro, previamente muflados a 400°C por 4 h. Luego del filtrado, se secarán en estufa por 48 h. La muestra será raspada de la superficie del filtro y homogeneizada. De cada muestra se pesará una alícuota final de 3 mg en cápsulas de estaño y se analizará la composición de isótopos estables de carbono y nitrógeno mediante un espectrómetro de masa de relaciones isotópicas, ThermoScientific DELTA V Advantage, acoplado vía un interface ConFlo IV a un Analizador Elemental Flash 2000. Para el análisis de metales, una segunda alícuota de cada muestra será encapsulada en ampollas de cuarzo Suprasil AN®, las que serán selladas y se irradiarán en reactor nuclear. Total: 30 muestras Las muestras de isótopos y metales serán procesadas en el marco del proyecto dirigido por la

Dra. Luciana Riccialdelli del Laboratorio de Ecología, Fisiología y Evolución de Organismos

Acuáticos (CADIC-CONICET). La composición de isótopos estables de carbono y nitrógeno será

analizada en el Laboratorio de Isótopos Estables en Ciencias Ambientales (LIECA, IANIGLA-

CONICET) en Mendoza, por personal técnico. Las muestras para análisis de los metales se

irradiarán en el reactor nuclear de investigación RA-6 del Centro Atómico Bariloche-CNEA. El

procesamiento, encapsulado y análisis posterior de los datos será realizado por el grupo de

trabajo encargado de estos estudios (Dra. Luciana Riccialdelli/Lic. Nicolás Fioramonti/Lic.

Yamila Becker).

Resultados

La estimación de la concentración de clorofila total para cada punto muestreado en el estrato sub-superficial (10 m) se muestra en la figura 19. Los valores registrados en noviembre fueron llamativamente bajos, registrándose los máximos en aguas del Canal Beagle. Los valores de concentración de clorofila, al igual que los de la concentración de nutrientes, estarán disponibles para todos aquellos integrantes del proyecto AMPN-BB que los requieran.


55

Figura 19. Concentración de clorofila total en subsuperficie (10 m)

Tabla 7. Estaciones y lances (L) realizados para análisis cualitativos (F cuali) y cuantitativos (F cuanti) de fitoplancton y protozoos, determinación de su composición isotópica (Isótopos) y de la concentración de clorofila total (Chl) y para iniciar cultivos de diatomeas (Cultivos). F1 y F2=Fondeos. En rojo se indican las estaciones fijas.

Estación

Red fito (25µm poro) Roseta

Lance F cuali Isótopos Cultivos Lance Prof

Muestreo (m)

Hora Muestreo

(GTM) F cuanti Chl

0 213 X X 212 10 21:56 X X

214 X 212 60 21:56 X X

212 130 21:56 X X

1 205 X X 204 10 18:16 X X

206 X 204 60 18:16 X X

204 200 18:16 X

3 136 X X 135 10 16:00 X X

137 X 135 75 16:00 X X

4 127 X X 126 10 23:09 X X

128 X 126 65 23:09 X X

5 104 X X 102 10 18:40 X X

105 X 102 50 18:40 X X

102 75 18:40 X

102 260 18:40 X X

112 500 0:17 X X

113 10 1:20 X X

113 150 1:20 X X

113 300 1:20 X X

118 10 8:07 X

118 175 8:07 X

118 330 8:07 X X

119 10 12:09 X X

119 170 12:09 X X


56

Estación



Muestreo (m)

Hora Muestreo

(GTM) F cuanti Chl

5 119 390 12:09 X X

121 10 17:44 X X

121 50 17:44 X X

121 170 17:44 X X

121 452 17:44 X X

12 95 X X 94 10 5:10 X X

96 X 94 60 5:10 X X

94 150 5:10 X X

94 285 5:10 X X

16 37 X X 34 10 12:26 X X

38 X 34 20 12:26 X

34 40 12:26 X X

34 120 12:26 X

34 500 12:26 X X

34 1017 12:26 X

21 44 X X 43 10 20:28 X X

45 X X 43 20 20:28 X

43 50 20:28 X X

43 70 20:28 X

43 120 20:28 X X

24 51 X X 50 10 6:05 X X

52 X X 50 90 6:05 X

59 1 13:06 X

59 10 13:06 X X

59 30 13:06 X

59 90 13:06 X X

66 1 19:05 X

66 10 19:05 X X

66 30 19:05 X X

66 90 19:05 X X

82 90 3:08 X X

28 86 X X 84 10 18:00 X X

87 X X 84 40 18:00 X X

84 111 18:00 X X

85 120 19:04 X X

30 148 X X 146 10 4:30 X X

149 X X 146 20 4:30 X

146 40 4:30 X

146 50 4:30 X X

146 200 4:30 X X

34 179 X X 178 10 10:30 X X

180 X 178 50 10:30 X X


57

Estación



Muestreo (m)

Hora Muestreo

(GTM) F cuanti Chl

178 150 10:30 X X

178 360 10:30 X X

186 10 18:04 X X

186 40 18:04 X

186 70 18:04 X X

186 200 18:04 X X

186 440 18:04 X X

199 10 0:16 X X

199 100 0:16 X X

199 200 0:16 X X

199 420 0:16 X X

18b 31 X X 30 10 1:20 X X

32 X X 30 20 1:20 X

30 50 1:20 X

30 120 1:20 X X

30 1200 1:20 X

30 2450 1:20 X

F1

157 158

X X X

X

156 156 156 168 168 168

10 50

130 10 40

130

15:26 15:26 15:26 0:15 0:15 0:15

X X X X X X

X X X X X X

F2 4 5

X

X X

X

2 2 2 2 2

15 15 15 15 15 18 18 24 24 24 24

1 10 20 25

136 1

10 20 40

132 10

136 1

10 20

135

13:00 13:00 13:00 13:00 13:00 18:20 18:20 18:20 18:20 18:20 1:40 1:40

11:29 11:29 11:29 11:29

X X

X

X

X X X X X X X X

X X X X

X X X X X X X X X X X


58

4.2.3. Muestreo e identificación de especies fitoplanctónicas nocivas

Responsables embarcados: Magalí Bobinac, Jessica Chiarandini Fiore

Investigador Responsable: Magalí Bobinac

Las surgencias y el ascenso de nutrientes generados por las corrientes que rodean al Banco

Burdwood producen un incremento local de la productividad primaria respecto a las aguas

circundantes, en especial durante la primavera y el verano. Las microalgas pigmentadas del

fitoplancton suelen constituir la base de las redes tróficas marinas. Las floraciones, o

crecimiento explosivo del fitoplancton son un fenómeno natural que contribuye a sostener la

producción de bivalvos y de pequeños peces pelágicos. Sin embargo, no todas estas

floraciones son beneficiosas. Las Floraciones Algales Nocivas (FAN) son proliferaciones de

microalgas percibida como un daño por su impacto negativo en la salud pública, la acuicultura,

el medio ambiente y las actividades recreativas.

Por ello, el estudio de las especies fitoplanctónicas nocivas es de relevancia a nivel mundial

debido a la presencia de estas especies con el consiguiente desarrollo de toxinas que son

asimiladas por moluscos bivalvos y quedan disponibles para ser consumidas por el ser humano

a través de la ingesta de estos moluscos. A través del estudio de estos microorganismos se

lograría obtener una línea de conocimiento básico de lo que ocurre en esta área, minimizando

un posible riesgo para la población, conociendo la magnitud y evolución de este fenómeno

mediante el análisis periódico de los microorganismos con el fin de detectar e identificar

toxinas y su influencia en la preservación de flora y fauna autóctona.

En este contexto, el objetivo general es la identificación de las especies nocivas y la confección de un mapa de sensibilidad ambiental vinculado a especies fitoplanctónicas nocivas/tóxicas en el Área Marina Protegida Namuncurá-Banco Burdwood y áreas circundantes.

Objetivos específicos

1. Determinación de especies nocivas, utilizando los métodos adecuados para la sistemática de diatomeas y dinoflagelados.

2. Realizar relevamientos de los parámetros físico-químicas y biológicos de los puntos de muestreo.

Metodología

Para cada estación de muestreo se procedió a tomar muestras de agua de las botellas Niskin dela roseta oceanográfica, a 3 profundidades, para la medición de fitoplancton cuantitativo, materia orgánica coloreada disuelta, nutrientes (fosfato, nitrato, nitrito, amonio, silicato, cloruro, sulfato, carbonato, alcalinidad, hierro total), clorofila a y parámetros físico- químicos in situ (temperatura, pH, conductividad, salinidad, oxígeno disuelto, y sólidos totales disueltos). Para el muestreo y posterior identificación de las especies nocivas, las muestras fueron

tomadas mediante una red de fitoplancton de 25 m de apertura de malla, con arrastre vertical u oblicuo y se colocaron en frascos de plástico de 500 ml de capacidad, previamente enjuagadas con el agua de muestreo y correctamente rotuladas. Finalizado cada muestreo, se realizó el filtrado para conservar clorofila y análisis de nutrientes y compuestos químicos a bordo del buque. Para el análisis cualitativo de fitoplancton, las muestras obtenidas mediante la red fueron fijadas con solución de formol al 4%.


59

Resultados y conclusiones

Se llevaron a cabo un total de 14 estaciones de muestreo comprendiendo el Canal Beagle y el AMPN-BB. Una vez en el área, se realizaron un total de 9 estaciones de muestreo, tratando de cubrir las zonas Este, Oeste y el centro del AMPN-BB. Se realizaron, también, 5 estaciones de muestreo a lo largo del Canal Beagle y Bahía Ushuaia (figura 20). Se realizaron estaciones fijas de muestreo durante un lapso entre 24-30 horas para observar efecto de mareas y estaciones simples donde se muestreo a tres profundidades: superficial (5 m), a la máxima concentración de clorofila y el fondo.

Figura 20. Mapa detallado de las estaciones de muestreo en el Canal Beagle y AMPN-BB. Las

estaciones remarcadas fueron las realizadas. Las estaciones E05, E34, F1, E24, E16 y F1 fueron

estaciones fijas de 24-30 horas de muestreo. El resto, estaciones simples a 3 profundidades.

En referencia a los resultados obtenidos (variables físico-químicas y nutrientes) se puede

observar que la mayoría de las variables medidas están en los valores normales para agua

oceánica. Los valores de OD son normales en relación a la temperatura encontrada,

comportándose, como todo gas disuelto en agua, de manera inversamente proporcional a los

resultados encontrados de temperatura. No se encontraron diferencias en las

concentraciones de nutrientes entre el área Norte y Sur y Este y Oeste del BB; si existen

diferencias en los nutrientes estudiados en las estaciones fijas dependiendo de la condiciones

de marea. Estos datos aún faltan ser estudiados con detenimiento. El estudio del material

recolectado fijado con lugol (estudios cualitativos) y formol (estudios cuantitativos), se

realizará en el contenedor laboratorio perteneciente a la Dirección de Protección Ambiental

(DPAM) en el transcurso de los próximos 3 a 4 meses.


60

4.2.4. Determinación de la producción primaria

Responsables embarcados: Maité Latorre, Clara Iachetti

Responsable no embarcado: Irene R. Schloss

Los recursos marinos dependen de la presencia de una red trófica planctónica funcional,

basada en la disponibilidad de nutrientes y condiciones físicas adecuadas para su desarrollo. El

fitoplancton, mediante la fotosíntesis, incorpora el carbono inorgánico atmosférico que será

consumido por los siguientes niveles tróficos y exportado hacia los fondos marinos, jugando un

rol clave en los procesos de retroalimentación negativa del calentamiento climático (Hays et al.

2005).

Por otro lado, se ha observado un aumento en la temperatura superficial del agua en el mar y se espera que esta tendencia continúe durante el próximo siglo (Collins et al. 2013). Es sabido que la temperatura tiene efectos diversos sobre el metabolismo del plancton (Li et al. 1984), pero que estos no son uniformes. Si bien se han observado algunos casos en que las comunidades fitoplanctónicas pueden adaptarse al incremento de temperatura predicha, se desconoce la extensión de este fenómeno, por lo que no puede considerarse que globalmente el fitoplancton logrará adaptarse (Irwin et al. 2015).

En el marco del objetivo general de la campaña, este trabajo pretende determinar la producción primaria en términos de oxígeno, en el AMP Namuncurá, aportando información valiosa para la comprensión de la productividad que sostiene el ecosistema de dicha región.


1. Determinación de la producción primaria mediante el balance entre la producción y el consumo (por respiración) de oxígeno de la comunidad fitoplanctónica.

2. Determinar las respuestas del aumento de temperatura sobre la producción primaria de la comunidad fitoplanctónica.

Metodología

Operaciones en cubierta

Se tomaron muestras de agua de superficie y/o máximo de clorofila en siete estaciones

utilizando botellas Niskin. Dichas estaciones correspondieron a 4 fijas preestablecidas en el

plan de campaña, sumado a tres estaciones adicionales distribuidas en el AMP Namuncurá y el

Canal Beagle (figura 21).

Figura 21: Sitio de muestreo. Estaciones (en rojo) donde se realizaron experiencias de

incubación.


61

Actividades en laboratorio

Incubaciones a temperatura ambiente

Las muestras de agua fueron inicialmente filtradas por una malla de 200 µm para eliminar

predadores. Posteriormente cada fue dividida en tres submuestras utilizando botellas de 100

ml conteniendo un sensor de oxígeno en su interior (optode) y se las incubó por 24 h

simulando las condiciones de luz: oscuridad ambiental. Las incubaciones se realizaron bajo

condiciones de temperatura controladas en un baño termostático en la cámara fría del barco,

simulando la temperatura del agua registrada, mediante CTD, en la estación. La concentración

de oxígeno fue medida utilizando el sensor de oxígeno PSt3 (PreSens) siendo en continuo en

una de las botellas, semicontinuo en la segunda y de manera discreta en la tercer botella.

Incubación a temperatura ambiente + 3ºC

En la estación E03, situada en el Canal Beagle, se realizó una incubación simulando las

condiciones de calentamiento global aumentando la temperatura del baño a 3ºC superior a la

ambiental. La metodología del experimento fue la misma que la detallada en el punto anterior

con la salvedad de que se midió la tasa producción: respiración de toda la comunidad.

Muestras de agua para descripción de la comunidad fitoplanctónica

Para la determinación de la comunidad fitoplanctónica se tomaron 100 ml de muestra al

principio y fin de la experiencia y se conservaron en botellas color caramelo con Lugol 5%

concentración final.

Resultados parciales y discusión

Como resultado de las experiencias se cuenta con más de 2000 datos de concentración de

oxígeno medidos por muestra y por estación. Debido a variaciones en la temperatura de la

cámara donde se llevaron a cabo las experiencias y la alta sensibilidad de los sensores a la

misma, en tierra se realizará el procesamiento y la corrección de datos correspondiente. Los

resultados de producción obtenidos formarán parte de la tesis de Doctorado de la Mg. Maité

Latorre, bajo la dirección de la Dra. Irene Schloss y la Dra. Mónica Gil. El análisis de la

comunidad complementará estos resultados y será llevado a cabo en el marco del Doctorado

del Lic. Guido Bértola, bajo la dirección de la Dra. Viviana Alder.

Resultados preliminares tomados a bordo mostraron un bajo incremento en la producción de

oxígeno, pero una gran disminución de este en los ensayos de respiración. Estos resultados

podrían estar asociados a los bajos niveles de concentraciones de clorofila observados durante

la campaña. El posterior análisis del total de datos, sumado a la información de la composición

de la comunidad y concentración de nutrientes, servirán para comprender los procesos

subyacentes de la comunidad planctónica durante la primavera tardía en el AMP Namuncurá.

Consideraciones finales

Las condiciones climáticas durante el desarrollo de la campaña llevaron a reducir el número de

estaciones fijas previstas para la realización de las incubaciones. Sin embargo, se pudo

conseguir la cobertura espacial del área bajo estudio realizando incubaciones con muestras

colectadas en estaciones que se sumaron al diseño de muestreo original. Se presentaron

algunas dificultades para regular la temperatura en la experiencia inicial, pero se pudo superar

el inconveniente gracias a la buena predisposición de la tripulación y de la Jefa Científica al

permitirnos trasladarnos a la cámara fría del barco.


62

4.3. Comunidad Pelágica

4.3.1. Dinámica del zooplancton y larvas de sardina fueguina

Responsable embarcado: Alejandro I. Martínez

Responsable no embarcado: Fabiana Capitanio

El objetivo general de esta propuesta fue caracterizar la dinámica del zooplancton y de las larvas de sardina fueguina (Sprattus fuegensis).


1. Estudiar la composición, abundancia y distribución espacial del zooplancton en el AMPN-BB y zonas aledañas.

2. Evaluar el rol del zooplancton, y sus fracciones de tamaño, en la dieta de las larvas de S. fuegensis en el AMPN-BB y zonas aledañas.

3. Estudiar la migración vertical diaria de los distintos grupos del zooplancton. 4. Analizar las relaciones tróficas a través del uso de biomarcadores (ácidos grasos).

Metodología

Entre el 11 y el 24 de noviembre se realizaron 11 estaciones en total, abarcando el Banco Burdwood y sus alrededores, y el Canal Beagle (figura 22 y tabla 8). En las 11 estaciones se realizaron muestreos con una red MiniBongo. Esta red cuenta con dos aberturas de 20 cm de ancho de boca y en cada una se colocó un paño con distinto ancho de poro (una de 67 μm y otra de 200 μm), permitiendo obtener muestras de zooplancton de diferentes tamaños. En la boca de cada abertura se colocó un flujómetro para calcular el volumen de agua filtrada durante el arrastre. Además se tomó el tiempo de subida de todas las redes para calcular de forma más precisa el caudal de agua filtrado. En las estaciones fijas (F1, F2, 5, 24 y 34) se realizaron muestreos semidiurnos, en lo posible cada 12 h. En dichas estaciones se realizaron 2 lances verticales: uno desde la cercanía del fondo hasta la superficie en aquellas estaciones donde la profundidad era menor a 100 m o a una profundidad máxima de 100 m, y otro lance a 20 m de profundidad o a la profundidad del pico de DCM (Deep Chlorophyl Maximum) si existía. Una vez que la red llegaba a la profundidad de muestreo se recuperaba inmediatamente hasta la superficie. Este arrastre se realizó a una velocidad máxima de 0,3 m/s. Las muestras obtenidas con ambos colectores de la red MiniBongo fueron fijadas en formol (formaldehido 5%). Además se realizó 1 lance vertical adicional en todas las estaciones fijas durante el día. La muestra de la red de 67 μm se descartaba mientras que la muestra de la red de 200 μm se procesaba de la siguiente manera. Primero se filtraba por un pre-filtro de 500 μm. El sobrenadante se pasaba por un filtro de 200 μm. El sobrenadante de este se pasaba por un filtro de 25 μm y se descartaba el líquido sobrante. El material retenido en cada filtro se rotuló y se conservó en crioviales, que se conservaron a -20°C. En las estaciones 28 y 30 también se realizaron lances verticales, con la diferencia que cuando la red llegaba al fondo se la dejaba 2 minutos antes de recuperarla. Ambos colectores de la red se fijaron en formol.


63

Figura 22. Área de estudio en contexto regional. Estaciones de muestreo realizadas durante la

campaña a bordo del BO ARA Austral. En rojo se indican las posiciones de las estaciones fijas

(24 h de muestreo en el mismo punto), en negro, estaciones simples en el AMPN y en azul,

aquellas simples correspondientes al Canal Beagle.

Tabla 8. Estaciones, lances y muestras obtenidas con la red MiniBongo

FechaEstación

GeneralLance Cable Angulo

Tiempo

fondoMalla (µm) Muestra final

Método de

conservación

11/11/2018 F2 10 20 0 - 67 y 200 Zooplancton Formol 5%


11/11/2018 F2 12 150 50 - 200 Acidos grasos Freezer -20



14/11/2018 24 54 20 0 - 67 y 200 Zooplancton Formol 5%





15/11/2018 28 91 115 30 02:00 67 y 200 Zooplancton Formol 5%



17/11/2018 5 111 100 0 - 200 Acidos grasos Freezer -20


18/11/2018 5 117 100 35-40 - 67 y 200 Zooplancton Formol 5%





21/11/2018 30 153 100 0 02:00 67 y 200 Zooplancton Formol 5%

21/11/2018 F1 162 55 5 - 10 - 67 y 200 Zooplancton Formol 5%

21/11/2018 F1 163 115 25 - 30 - 67 y 200 Zooplancton Formol 5%

21/11/2018 F1 164 115 25 - 30 - 200 Acidos grasos Freezer -20





22/11/2018 34 193 140 45 - 200 Acidos grasos Freezer -20



24/11/2018 1 210 100 10 - 20 - 67 y 200 Zooplancton Formol 5%





64

4.3.2. Variaciones espaciales y temporales en la densidad energética de larvas de

peces

Responsables embarcados: Guido Bértola

Responsables no embarcado: Daniel O. Bruno, Claudia C. Boy

Los estudios orientados a cuantificar la densidad energética de los peces y su variación temporal son importantes desde perspectivas básicas y aplicadas (Johnson et al. 2017). El almacenamiento de energía es una estrategia importante para los peces dado que la disponibilidad de alimentos no siempre es regular (Armstrong & Schindler 2013), sumado a que existen cambios estacionales y ontogenéticos en los requerimientos de energía relacionados con la supervivencia, la migración y la reproducción. Por ejemplo, los niveles de reserva de energía pueden ser determinísticos para resistir periodos de inanición (de por sí muy breves durante la etapa larval, Houde 2002) o sobrevivir a los inviernos principalmente en ambientes templados (Post & Evans 1989, Post & Parkinson 2001). La densidad de energía es un indicador importante del estado nutricional, el estado fisiológico y la aptitud de los peces. El conocimiento de la densidad de energía también es útil para estudios de depredación debido a su relación con la calidad de presa y porque la energía es la moneda común utilizada para convertir biomasa de presas consumida en biomasa de crecimiento del consumidor en modelos bioenergéticos (Jobling 1994, Hanson et al. 1997, Johnson et al. 2017).

La zona del Banco Burdwood y la plataforma continental Argentina al oeste de las Islas Malvinas ha sido mencionada como un área importante de concentración de larvas de peces de las especies Sprattus fuegensis, Micromesistius australis, Eleginops maclovinus, (e.g. Ehrlich et al. 1999, García-Alonso et al. 2018) y también de algunos integrantes de las Familias Nototheniidae y Myctophidae (Ehrlich et al. 1999), mientras que la zona comprendida entre la desembocadura del Canal Beagle e Isla de los Estados ha sido propuesta como potencial área de cría de la merluza de cola (Macruronus magellanicus) (Machinandearena & Ehrlich 1999). En el contexto de que el Banco Burdwood parece proporcionar características favorables para funcionar como área de cría de peces y que los estudios de densidad energética proporcionan información de suma importancia en relación al estado nutricional de estadios tempranos de peces, se propone como objetivo general de investigación comprender el funcionamiento de una zona de confluencia de 3 océanos (Atlántico, Pacífico y Austral) como área de cría de larvas de peces a partir de estudios de densidad de energía de dichas larvas y de los grupos planctónicos potenciales a funcionar como presas para poder determinar los flujos de energía en la columna de agua de la zona hasta los estadios de vida tempranos de los peces.

La colecta de muestras de fitoplancton durante esta campaña de investigación se complementará con muestras colectadas de zooplancton e ictioplancton durante el mismo periodo y en la misma zona a bordo del BIP Angelescu y permitirá poder realizar un estudio integrado comprendiendo las variaciones temporales y espaciales en la diversidad de peces en estadio larval en relación a los flujos de energía en la columna de agua. Muchas de las especies de peces que habitan el Banco Burdwood están asociadas al fondo y por ende la integración de los resultados de ambos estudios podrá dar una visión más acabada sobre la interacción del flujo de energía entre el ambiente pelágico y bentónico. Metodología

Se realizaron 15 lances verticales con una red doble bongo de 25 cm de diámetro y mallero de 25 µm (tabla 9). La profundidad a la que llegó el arte de pesca fue de 20 m en todas las estaciones de muestreo. Las muestras colectadas se congelaron a bordo a -20°C y actualmente se encuentran almacenadas a la misma temperatura en instalaciones de CADIC. Para la determinación de su contenido energético, las muestras se descongelarán, se filtrarán utilizando filtros tipo Whatman GF/F de 0,7 μm de poro previamente muflados a 500°C y se


65

secarán en estufa a 60°C hasta peso seco. Previamente el peso húmedo también será registrado. Una vez alcanzado el peso seco, las muestras se molerán en mortero para conformar un pellet y el contenido de energía de al menos dos repeticiones de muestra se medirá siguiendo el procedimiento establecido por Boy et al. (2009) y Fernández et al. (2009) utilizando un calorímetro de micro-bomba marca Parr 1425. Los valores obtenidos se corregirán por contenido de cenizas y ácido y se expresarán como densidad de energía, peso seco sin cenizas (DE, kJ / g AFDW). Tabla 9. Detalle de la fecha, hora, posición de cada lance correspondiente a la toma de fitoplancton con red doble bongo de 25 µm en cada estación de muestreo a una profundidad de arrastre estándar de 20 m.

Fecha Estación Lance Hora Latitud Longitud Prof. Estación

(m)

11 11 2018 EF2 4 13:45 54° 27.56' 58° 34.51' 141.3

13 11 2018 E18b 31 00:57 55° 4.649' 58° 35.903' 2548

13 11 2018 E16 37 14:43 54° 52.332' 59° 35.143' 980

13 11 2018 E21 44 21:24 54° 31.972' 59° 20.72' 132.7

14 11 2018 E24 67 19:44 54° 21.108' 60° 8.229' 99

15 11 2018 E28 86 19:41 54° 26.036' 61° 28.68' 133

15 11 2018 E12 95 05:58 54° 23.357' 62° 13.733' 298

17 11 2018 E5 104 21:02 55° 5.559' 65° 55.912' 300

18 11 2018 E4 127 23:27 55° 5.931' 66° 31.9' 70

19 11 2018 E3 136 16:15 55° 0.157' 66° 47.777' 90

21 11 2018 E30 147 04:58 54° 9.306' 61° 40.578' 201

21 11 2018 F1 157 15:44 54° 9.432' 61° 11.657' 142

22 11 2018 E34 179 11:19 53° 45.358' 61° 50.394' 568

24 11 2018 E01 205 18:40 54° 53.459' 67° 46.297' 175

24 11 2018 E00 213 22:15 54° 51.027' 68° 5.461' 150

4.3.3. Análisis de agua para microquímica de otolitos de peces nototénidos

Responsable embarcado: Clara Iachetti

Responsable no embarcado: Facundo Llompart

El estudio de la microquímica de los otolitos es una innovación que se ha desarrollado en los últimos años en nuestro país y es utilizado para proveer información sobre asociaciones geográficas, áreas de nacimiento y cría, historias de dispersión y migración, así como pueden reflejar cambios en los ecosistemas acuáticos. Estas inferencias pueden realizarse porque algunos elementos presentes en el otolito (proporción Ca) están directamente relacionados con el ambiente físico-químico. Por ejemplo, existe una asociación positiva entre la concentración de Sr en los otolitos y la salinidad del agua. La concentración de Sr es negativa a <10°C y por encima de este valor es positiva para algunas especies, aunque varía inter-específicamente. Además, la concentración de Zn en el otolito estaría más asociada a la dieta que a la calidad del agua, por lo que este elemento podría ser utilizado como potencial marcador de hábitat.


66

Por otro lado, la relación Mg:Ca se ha utilizado en conjunto con las relaciones Sr:Ca y Ba:Ca para la identificación de stocks pesqueros. En ese contexto y con muestras de esta campaña, se analizarán las relaciones entre elementos

traza (Sr, Mg, Zn)/Ca en los otolitos de peces nototénidos y su asociación con la composición

de los mismos elementos en el agua de mar para hacer inferencias a nivel ecosistémico

(discriminación de ensambles) y poblacional (lugar de nacimiento, cría, dispersión, etc.). Esta

información es útil para entender cómo las comunidades están segregadas y cuál es el grado

de interconexión entre poblaciones vecinas. Esta herramienta representa un enfoque

novedoso para responder aspectos ecológicos relevantes en nototénidos

Metodología

Se obtuvieron 7 muestras de agua marina que abarcaron un gradiente latitudinal y de profundidad que se presenta en la tabla 10. El agua colectada en cada estación fue filtrada mediante una bomba de acción manual con una membrana de 0.45 µm e inmediatamente acidificada con ácido nítrico al 10%. La misma fue luego preservada en heladera en envases plásticos de 125 ml. Las muestras de agua serán enviadas para su análisis químico al Centro de Estudios Transdisciplinarios del Agua, Facultad de Ciencias Veterinarias, Universidad de Buenos Aires. Al mismo tiempo se enviarán muestras de otolitos de peces nototénidos obtenidos en la campaña realizada al AMPN-BB durante el mes de noviembre a bordo del BIP Angelescu. Se espera obtener comparaciones de valores de referencia de elementos traza en agua de mar y en otolitos para la segunda mitad del año 2019.

Tabla 10. Sitios de colecta de agua para el análisis químico del agua de mar.

4.3.4. Ecología espacial de aves y mamíferos marinos

Responsables embarcados: Mónica Torres, Constanza Ordoñez, Natalia A. Dellabianca

Responsables no embarcados: Andrea Raya Rey, Mariano Diez

Los predadores tope, al igual que el resto de los organismos, se distribuyen por la combinación de varios factores (demográficos, evolutivos, ecológicos, ambientales y antrópicos) (Forcada 2002). Así, la selección de hábitats por parte de las especies se encuentra generalmente definida por características físicas, químicas y biológicas del ambiente marino, generando un uso diferencial de las áreas dentro del rango de sus distribuciones (Ballance 2002, Learmonth et al. 2006).

El conocimiento detallado de las áreas preferidas por las especies a diferentes escalas es clave para la conservación de las mismas, dado que eventuales cambios en esas áreas tendrían mayor influencia sobre sus distribuciones y abundancias (Harwood 2001). Este conocimiento

Estacion Latitud SurLongitud

OesteProfundidad

E05 t=15 -55,11714 -65,87693 330

E24 t=0 -54,32080 -60,17142 92

E24 t=6 -54,32080 -60,17142 92

EF2 t=0 -54,47390 -58,58650 140

E30 -54,15297 -61,70318 197

E18b -54,96731 -58,30164 2630

E12 -54,39617 -62,23145 150


67

nos permite, además, predecir cuál será la reacción de las especies y sus poblaciones frente a un escenario de cambio climático (Macleod 2009). El objetivo particular de la propuesta es evaluar los patrones de distribución espacio-temporal de las aves y mamíferos marinos en el sector del AMPN-BB y zonas adyacentes en función de variables oceanográficas, ambientales, antrópicas y biológicas, a fin de incrementar el conocimiento de la ecología de estas especies y su relación con el ecosistema. Metodología

Relevamiento de aves y mamíferos marinos

Para el relevamiento de aves se utilizó el método de banda transecta (Tasker 1984; Raya Rey &

Schiavini 2000) y el de distancia en transectas de línea para los mamíferos marinos (Buckland

et al. 2001). Se registraron, desde los alerones del puente, todas las aves marinas que pasaban

a 300 m o menos, por una de las bandas y todos los mamíferos marinos que pasaban por

ambas bandas. Las observaciones se realizaron a ojo desnudo y mediante binoculares de 7 x 50

con compás y retícula incorporados. En el relevamiento de mamíferos marinos, ambos

elementos son utilizados para tomar el ángulo de declinación entre el horizonte y el individuo

o grupo de individuos y el ángulo entre el grupo o el individuo avistado y el rumbo del barco.

Estos datos adicionales son necesarios para inferir, a posteriori, la distancia del avistaje a la

derrota del barco.

Los registros fueron volcados en una tableta con sistema de geoposicionamiento global (GPS)

incorporado. De esa manera los datos sobre posición (latitud y longitud), fecha y hora del día

quedaron registrados automáticamente para cada avistaje.

Para cada observación se determinó la especie (o el menor nivel taxonómico posible), el

tamaño y la composición del grupo y la actividad principal de los animales al momento de ser

avistados. Asimismo, se registraron datos adicionales como el estado del mar (en escala

Beaufort), la velocidad y dirección del viento, la temperatura atmosférica, la cobertura de

nubes y la velocidad del barco a fin de evaluar la contribución de estas covariables asociadas a

la observación en la detección de las especies.

Las observaciones se realizaron durante las horas de luz (7:00 a 20:30 h) mientras el barco se

encontraba navegando. Los mamíferos marinos fueron contabilizados de manera continua a lo

largo de toda la derrota, mientras que las aves se contabilizaron únicamente dentro de los

límites del AMPN-BB.

Agrupaciones de aves en estaciones de muestreo

Se registraron las aves presentes durante las estaciones diurnas a lo largo de toda la derrota

del barco (o durante las horas de luz si las estaciones empezaban o terminaban de noche)

identificando las especies (o el menor nivel taxonómico posible) y el número de individuos

presentes. Datos de posición, fecha y hora del día y otras variables climáticas se registraron

únicamente al momento de inicio de cada estación.

Muestreo hidroacústico

Se grabaron los registros acústicos a lo largo de toda la derrota con la ecosonda EK 80 propia

del buque a fin de estudiar la distribución y abundancia de los organismos en la columna de

agua.


68

Resultados

Los datos presentados en este informe son los resultados preliminares del trabajo. El

relevamiento se realizó a lo largo de 16 días (384 h) de esfuerzo de muestreo durante la

campaña al AMPN-BB entre el 9 y el 25 de noviembre de 2018.

Mamíferos marinos

Se registraron un total de 33 avistajes y 187 individuos pertenecientes a 13 taxa (10 de ellas

identificadas a nivel de especie) (tabla 11). En la figura 23 se muestra la ubicación geográfica

de los avistajes.

Los odontocetos incluyeron 4 especies de delfines y el cachalote Physeter macrocephalus.

Dentro de los delfines el género Lagenorhynchus estuvo representado por 3 especies: el delfín

oscuro L. obscurus, el delfín austral L. australis y el delfín cruzado L. cruciger. La cuarta especie

estuvo representada por el delfín piloto Globicephala melas.

El delfín piloto fue la especie más abundante, registrándose un total de 56 ejemplares en 3

avistajes, todos ellos en aguas profundas entre Isla de los Estados y el AMPN-BB. Contribuye a

la mayor abundancia el avistaje de un grupo integrado por 40 individuos. Estos datos coinciden

con lo observado en diciembre 2009 (Raya Rey et al. 2009) y marzo-abril 2016 (Torres 2016).

Asociado al grupo de delfines piloto también se observaron 2 individuos de delfín cruzado. El

delfín oscuro fue el segundo en abundancia, con 55 individuos, todos ellos en aguas del Canal

Beagle.

El delfín austral fue el único cetáceo avistado en las 3 áreas: Península Mitre, este de Isla de los

Estados y AMPN-BB contabilizando un total de 14 individuos. Esta especie ya había sido

registrada en esas zonas en campañas anteriores. Cabe mencionar que la especie ha sido

registrada en el AMPN-BB tanto en primavera-verano (noviembre-febrero) como en invierno,

pero no fue avistada en otoño, sugiriendo que pueden existir movimientos estacionales dentro

y fuera de dicha área. Es necesario continuar con muestreos sistemáticos a la zona en

diferentes épocas para responder a este y otros interrogantes. Como se mencionó

previamente, la otra especie de odontoceto identificado fue el cachalote al oeste del AMPN-BB

en aguas donde las profundidades superaban los 1000 m (1800 a 4300 m).

Se identificaron 3 especies de misticetos. La más abundante fue la ballena fin Balaenoptera

physalus con 13 individuos identificados en el AMPN-BB, cabe destacar que en la misma área

se observaron numerosos soplidos de ballenas que debido a la distancia no pudieron ser

determinadas. Esta especie ya había sido registrada en la zona en diciembre 2016 (Dellabianca

& Torres 2016) en grupos de 1 a 3 individuos. En el AMPN-BB también se identificó la presencia

de un grupo de 6 ballenas sei B. borealis, siendo el primer registro de esta especie para el área,

al menos en lo que respecta a nuestros relevamientos.

Durante la presente campaña y a diferencia de las anteriores, los grupos de ballenas fueron

avistados durante varios días en el AMPN-BB y en asociación con grandes bandadas de aves

marinas (figura 24). Los resultados de los registros hidroacústicos permitirán confirmar si

estaban alimentándose en la zona.

La otra especie de ballena avistada fue la ballena jorobada Megaptera novaeangliae, que

estuvo representada por el registro de un individuo solitario en la boca oriental del Canal

Beagle.


69

En relación a los pinnípedos, sólo se observaron otáridos, el lobo marino de un pelo Otaria

flavescens y el lobo marino de dos pelos Arctocephalus australis con un total de 8 y 9

individuos, respectivamente. Todos los registros corresponden a zonas cercanas a la costa

tanto de Tierra del Fuego como de Isla de los Estados. En el AMPN-BB solo se registró un

individuo pero no pudo ser determinado a nivel de especie.

Aves marinas

Relevamiento de aves

Se registraron un total de 2062 individuos pertenecientes a 15 taxa diferentes mientras el

buque se encontraba navegando en aguas dentro del AMPN-BB (figura 25). Los priones

Pachyptila sp fueron el taxón más abundante con un 83% del total de los individuos

observados. Los mismos fueron registrados de manera casi continua a lo largo del recorrido y

también agrupados en bandadas muy numerosas de hasta 1000 individuos. Seguidos en

abundancia se encontraron los albatros de ceja negra Thalassarche melanophrys (6%). El grupo

más diverso fue el de los petreles con 7 taxa diferenciados, siendo el petrel damero Daption

capense el más representado. En menor proporción se encontraron los petreles gigantes del

genero Macronectes, el fulmar austral Fulmarus glacialoides y los petreles de las tormentas

Oceanites sp. El petrel barba blanca Procellaria aequinoctialis fue observado solo en una

ocasión en el área. Dentro de los albatros, el de ceja negra fue el más abundante seguido en

igual número por los grandes albatros del género Diomedea y el albatros cabeza gris

Thalassarche chrysostoma. Dentro de las pardelas, se encontró únicamente la pardela oscura

Puffinus griseus coincidiendo con lo registrado en la campaña de otoño 2016 (Torres 2016). Las

aves costeras estuvieron representadas por un único ejemplar de skua Stercorarius sp.

Agrupaciones de aves en estaciones de muestreo

Se relevaron aves marinas en 11 de las 15 estaciones realizadas y se contabilizó un total de 799

individuos de 15 taxa diferentes (tabla 12). Las especies presentes fueron similares a las

encontradas en otras estaciones en esas zonas durante estudios anteriores del proyecto

(Dellabianca 2014; Dellabianca & Torres 2015, 2016; Torres 2016).

La estación 16 en el AMPN-BB fue la de mayor riqueza específica, con 8 especies diferentes. No

obstante, hubo varias estaciones en las que se registraron entre 7 y 6 especies de aves

marinas. La estación F2 ubicada el AMPN-BB fue la más abundante con 319 individuos

aportando a la alta abundancia una bandada de 304 priones. Seguida en abundancia la

estación 5 (E5) en Península Mitre con 210 individuos debió su alta densidad en este caso a la

presencia de 180 pardelas oscuras. Los albatros ceja negra y los petreles gigantes estuvieron

presentes en el 95 % de las estaciones relevadas pero su abundancia únicamente fue relevante

en la estación 34 (E34) del AMNP-BB.

Es importante destacar la presencia en la estación 21 (E21) del AMNP-BB de un albatros manto

claro Phoebetria palpebrata, que nunca había sido registrada en el área en las campañas

anteriores.

Potenciales presas

Los registros hidroacústicos grabados de manera continua durante los 16 días de campaña

serán procesados por el Dr. Mariano Diez del CADIC para obtener datos de distribución y

abundancia de las potenciales presas como macrozooplancton y peces


70

Conclusiones

Cabe destacar que la presente fue la quinta campaña del proyecto realizada en primavera

(noviembre-diciembre) y a partir de los datos obtenidos se pudo reconfirmar la presencia de

especies ya observadas en el AMPN-BB en campañas previas.

Aunque muy preliminares, estos resultados y su comparación con los obtenidos en campañas

previas en la misma zona de estudio indican variaciones tanto en la ocurrencia como en la

abundancia de las especies. Esto remarca la importancia de realizar investigaciones

sistemáticas durante diferentes estaciones del año para comprender los factores que causan la

variabilidad espacio-temporal en la distribución de los predadores tope.

Tabla 11. Cantidad total de individuos de cada especie de mamíferos marinos registrados

durante toda la campaña.

Especie Avistajes Individuos

MISTICETOS

Ballena fin Balaenoptera physalus 5 13

Ballena sei B. borealis 1 6

Ballena jorobaba Megaptera novaeangliae 1 1

Ballena no id 5 6

Total 12 27

ODONTOCETOS

Delfín austral Lagenorhynchus australis 3 14

Delfín oscuro L. obscurus 4 55

Delfín cruzado L. cruciger 1 2

Delfín piloto Globicephala melas 3 56

Delfín no id 3 7

Cachalote Physeter macrocephalus 1 1

Total 15 135

PINNIPEDOS

Lobo marino de un pelo Otaria flavescens 3 8

Lobo marino de dos pelos Arctocephalus australis 6 9

Lobo no id 7 8

Total 16 25


71

Figura 23. Distribución de las observaciones de mamíferos marinos registradas a lo largo de

toda la derrota del barco.

Figura 24. Distribución de las observaciones y el número de individuos de aves y mamíferos

marinos registrados en la zona del Área Marina Protegida Namuncurá-Banco Burdwood


72

Figura 25. Distribución de las observaciones de A) albatros, B) petreles y C) pardelas, priones y

otras aves registradas en la zona del Área Marina Protegida Namuncurá-Banco Burdwood.


73

Tabla 12. Especies registradas en cada estación, número de individuos de cada especie en las

diferentes estaciones y número total de individuos por especie y por estación. CB= Canal

Beagle, BB= AMPN-BB y PM= Península Mitre.

4.4. Estudios integrales

4.4.1. Monitoreo de Microplásticos

Responsables embarcados: Clara Iachetti, Natalia Dellabianca

Responsables no embarcados: Rosana Di Mauro, Mariel Ojeda, Analía Pérez, Ignacio Chiesa

Los ecosistemas marinos en todo el mundo están siendo afectados por grandes cantidades de

residuos plásticos, tanto de macro como de microplásticos (Lozano & Mouat 2009). Debido a

su tamaño pequeño (˂5 mm), los microplásticos se encuentran disponibles para ser ingeridos

por una amplia gama de organismos a lo largo de la red trófica (Teuten et al. 2009),

posiblemente amenazando los ecosistemas e incluso la salud humana (Thompson et al. 2009).

La gran proporción superficie/volumen de los microplásticos, en comparación con los

macroplásticos, sugiere que pueden concentrar contaminantes orgánicos persistentes y a su

vez absorber metales (Brennecke et al. 2016). Por lo tanto, la ingesta de microplásticos podría

introducir toxinas en la base de la cadena alimentaria, donde existe un potencial de

bioacumulación (Teuten et al. 2009). La presente propuesta procura evaluar la presencia de

microplásticos en la columna de agua del AMPN-BB.

Metodología y resultados

Se tomaron muestras en 11 estaciones (tabla 13). El agua fue recolectada mediante botellas

Niskin montadas en la roseta del CTD. En la mayoría de las estaciones se tomó un litro de agua

en tres profundidades: superficie (10 m), media agua, y fondo. En algunas estaciones se

recolectó solo el agua de fondo. Cabe mencionar que estudios preliminares desarrollados en la

campaña al AMP de agosto/septiembre de 2018, permitió corroborar que un 1 L de agua es

volumen suficiente para determinar presencia de microplásticos en la zona de estudio.

F2 18b 16 21 24 28 5 4 3 F1 34

Diomedea sp - - 2 1 - 3 - - - 1 - 7

Thalassarche melanophryx 5 3 2 4 2 - 2 1 1 6 54 80

Thalassarche chrysostoma - - 2 - - - - - - - - 2

Phoebetria palpebrata - - - 1 - - - - - - - 1

Macronectes giganteus 2 4 - - - 3 - 1 - - 28 38

Macronectes sp - 4 5 2 1 - 27 - - 34 - 73

Procellaria aequinoctialis - - - - - - - - - - 2 2

Daption capense 5 3 20 5 - 10 1 - - 5 26 75

Fulmarus glacialoides 1 - 1 3 - 1 - - - 5 - 11

Puffinus griseus 1 - 1 - - 1 180 - - - - 183

Oceanites oceanicus - - - - - - - - - - 1 1

Oceanitidae sp - - 3 - - - - - - - - 3

Pachyptila sp 304 - - 6 1 - - - - - 2 313

Phalacrocorax atriceps 1 - - - - 1 - 2 - - - 4

Sterna sp - - - - - - - - 3 - - 3

Eudyptes chrysocome - - - 1 - 2 - - - - - 3

N° indiv. por estacion 319 14 36 23 4 21 210 4 4 51 113 799

Zona PM

EspeciesEstaciones censadas N°

individuos

BB CB BB


74

A cada botella se le agregó 20 ml de formol previamente filtrado con malla de 20 µm. El agua

recolectada será filtrada en el laboratorio con malla de 0,45 µm y el filtro será analizado bajo

microscopio. Los microplásticos serán contabilizados y clasificados.

Tabla 13. Muestras de agua recolectadas con botellas Niskin para análisis de microplásticos.

Estación

Profundidad

Muestreada

(m)

E05 10

170

330

E16 10

40

1017

E24 10

90

EF1 10

50

130

EF2 10

40

125

E21 10

50

120

E28 5

40

111

E30 10

50

200

E18b 10

50

2450

E03 10

75

E04 10

65

A lo largo de 2018 se tomaron muestras de agua para análisis de microplásticos en tres

diferentes campañas: BO Puerto Deseado, BIP Angelescu y las recolectadas a bordo del BO

Austral en esta campaña. El presente muestreo completa un total de 41 estaciones en el

AMPN-BB y zonas aledañas, que permitirá generar un detallado análisis del estado de la

contaminación por microplásticos en el área de estudio.


75

4.5. Registros fílmicos

Como parte de un convenio entre la Administración de Parques Nacionales de Argentina y la

National Geographic Society Pristine Seas, se realizaron registros fílmicos submarinos del AMP

Namuncurá y de zonas adyacentes mediante el uso de una dropcam perteneciente a la NGPS.

Asimismo y para realizar un spot publicitario para apoyar la creación de Burdwood II, se

realizaron filmaciones de las diferentes actividades científicas realizadas a bordo durante la

campaña mediante cámaras fotográficas y drones. Dado que los responsables embarcados

eran angloparlantes, sus respectivos informes están escritos en inglés.

4.5.1. Dropcam

Responsable embarcado: Christopher Thompson

Responsable no embarcado: Brad Henning

On this expedition our goal was to deploy the deep ocean dropcam on the Burdwood Bank, at as many sites as possible, collecting images of the sea floor and the animals present there. Activities

We deployed the Dropcam at 6 locations, 3 on Burdwood Bank and 3 closer to the mainland, off Peninsula Mitre. The cameras were deployed from the CTD bay on the starboard side of the BO ARA Austral, with the help of her crew. The cameras sink to the bottom of the ocean and film the seafloor for the programmed period of time before releasing their anchor and rising to the surface. Upon resurfacing the camera was located with the aid of a VHF transmitter and receiver before recovery via grapple from the bow of the research vessel. The crew was very helpful in both the deployment and recovery procedures. Results

Although we had some bad weather and a tight schedule we succeeded in our goal of collecting footage of the sea floor at the Burdwood Bank and some of the animals present there. At sites F2 and F1 we noted a sandy substrate, some large yellow sponges, some crabs and fish (with Patagonicus ramsayi the most abundant species). The community at the slightly deeper site on the western slope of the bank was markedly different, with a much more diverse community of sessile benthic organisms, as well as rays, hagfish, rattails, flatfish and crustaceans.

4.5.2. Registros audiovisuales

Responsable embarcado: John Thomas Kirby

Responsable no embarcado: Brad Henning I joined Science Cruise to Burdwood Bank – Namuncura to document and film science deployments aboard the BO ARA Austral. I Filmed and edited a video to advocate for the expansion of Burdwood Bank – Namuncura Marine Protected Area. Daily activities included filming deployments, editing video, assisting with Dropcam deployments, and aerial cinematography with a drone.


76

5. Bibliografía citada

Armstrong JB, Schindler DE (2013) Excess digestive capacity in predators reflects a life of feast and famine. Nature 476: 84-88

Arribére MA, Campbell LM, Rizzo AP, Arcagni M, Revenga J, Ribeiro Guevara S (2010) Trace elements in plankton, benthic organisms, and forage fish of Lake Moreno, Northern Patagonia, Argentina. Water, Air, & Soil Pollution 212 (1–4): 167-182

Azam F (1998) Microbial Control of Oceanic Carbon Flux: The Plot Thickens. Science 280: 694-696 Azam F, Fenchel T, Field JG, Gray JS, Meyer-Reil LA, Thingstad F (1983) The Ecological Role of Water-Column

Microbes in the Sea. Marine Ecology Progress Series 10: 257-263 Ballance LT (2002) Cetacean Ecology, pp 208-214. En: Perrin WF, Würsig B, Thewissen JGM (eds) Encyclopedia of

Marine Mammals. Academic Press, San Diego Baqués M (2018) Curso intensivo sobre principios de operación, puesta en marcha, configuración y adquisición de

datos con el ADCP de 38 kHz instalado en el casco del buque ARA Austral. Informe técnico AS 04/18 Bértola G, Olguín Salinas H, Alder VA (2018) Distribución espacial de Rhizosolenia crassa, ¿especie clave del Banco

Burdwood?. X Jornadas Nacionales de Ciencias del Mar, Ciudad Autónoma de Buenos Aires, p 74 Bértola G, Olguín Salinas H, Iachetti CM, Lovrich GA, Alder VA (2018) Estructura del plancton unicelular eucariota del

AMP Namuncurá-Banco Burdwood en primavera: conexiones con las adyacencias. X Jornadas Nacionales de Ciencias del Mar, Ciudad Autónoma de Buenos Aires, p 73

Bonilla-Findji O, Malits A, Lefevre D, Rochelle-Newall E, Lemee R, Weinbauer MG, Gattuso, JP (2008) Viral effects on bacterial respiration, production and growth efficiency: Consistent trends in the Southern Ocean and the Mediterranean Sea. Deep Sea Research Part II 55: 790-800

Borga K, Gabrielsen GW, Skaare JU (2001) Biomagnification of organochlorines along a Barents Sea food chain. Environmental Pollution 113(2): 187-198

Boy CC, Pérez AF, Fernández DA, Calvo J, Morriconi ER (2009) Energy allocation in relation to spawning and overwintering of a diadromous Puyen (Galaxias maculatus) population in the southernmost limit of the species distribution. Polar Biology 32: 9-14

Bratvold D, Srienc F, Taub SR (2000) Analysis of the distribution of ingested bacteria in nanoflagellates and estimation of grazing rates with flow cytometry. Aquatic Microbial Ecology 21: 1-12

Brennecke D, Duarte B, Paiva F, Caçador I, Canning-Clode J (2016) Microplastics as vector for heavy metal contamination from the marine environment. Estuarine, Coastal and Shelf Science 178: 189-195

Brussaard CPD (2004) Optimization of Procedures for Counting Viruses by Flow Cytometry. Applied and Environmental Microbiology 70: 1506-1513

Buckland ST, Anderson DR, Burnham KP, Laake JL, Borchers DL, Thomas L (2001) Introduction to distance sampling: estimating abundance of biological populations. Oxford UniversityPress, Oxford. 432pp

Christaki U, Lefévre D, Georges C et al. (2014) Microbial food web dynamics during spring phytoplankton blooms in the naturally iron-fertilized kerguelen area (southern ocean). Biogeosciences 11: 6739-6753

Coble PG (1996) Characterization of marine and terrestrial DOM in seawater using excitation emission matrix spectroscopy. Marine Chemistry 51: 325-346

Collins M, Knutti R, Arblaster J, Dufresne JL, Fichefet T, Friedlingstein P, Gao X, Gutowski WJ, Johns T, Krinner G, Shongwe M, Tebaldi C, Weaver AJ, Wehner M (2013) Long-term climate change: Projections, commitments and irreversibility. Climate Change 2013: The Physical Science Basis. IPCC Working Group I Contribution to AR5. Cambridge University Press, Cambridge.

Dellabianca NA (2014) Ecología y Conservación de Aves y Mamíferos Marinos, pp 88-97. En: Fernández DA (ed) Campaña “Área Protegida Namuncurá - Banco Burdwood”. Informe de Campaña. BO Puerto Deseado 2014

Dellabianca NA, Torres M (2015) Ecología y Conservación de Aves y Mamíferos Marinos, pp 31-38. En: Dellabianca NA (ed) Campaña “Tierra del Fuego-Banco Burdwood”. Informe de campaña SB-15 Tango 2015

Dellabianca NA, Torres MA (2016) Ecología espacial de Aves y Mamíferos marinos del AMP Namuncurá-Banco Burdwood, pp 34-43. En: Martin J, Kreps G (eds) Campaña “AMP Namuncurá - Banco Burdwood: Primavera 2016”. Informe de campaña BO Puerto Deseado 2016

Ehrlich MD, Sánchez RP, de Ciechomski JD, Machinandiarena L, Pájaro M (1999) Ichthyoplankton composition, distribution and abundance on the Southern Patagonian Shelf and adjacent waters. INIDEP Documento Científico 5: 37-65

Fernández DA, Lattuca ME, Boy CC, Pérez AF, Ceballos SG, Vanella FA, Morriconi ER, Malanga GF, Aureliano DR, Rimbau S, Calvo J (2009) Energy density of sub-Antarctic fishes from the Beagle Channel. Fish Physiology and Biochemistry35: 181-188

Flynn KJ, Fasham MJ (2002) A modelling exploration of vertical migration by phytoplankton. Journal of Theoretical Biology 218(4): 471-484

Fogel ML, Cifuentes LA, Velinsky DJ, Sharp JH (1992) Relationship of carbon availability in estuarine phytoplankton to isotopic composition. Marine Ecology Progress Series 82: 291-300

Forcada J (2002) Distribution, pp 327-333. En: Perrin WF, Würsig B, Thewissen JGM (eds) Encyclopedia of Marine Mammals. Academic Press, San Diego

Fry B (2006) Stable isotope ecology. Springer Science and Business Media, New York, USA


77

García-Alonso VA, Brown D, Martín J, Pájaro M, Capitanio FL (2018) Seasonal patterns of Patagonian sprat Sprattus fuegensis early life stages in an open sea Sub-Antarctic Marine Protected Area. Polar Biology 41: 2167–2179

Gasol MJ, del Giorgio PA (2000) Using flow cytometry for counting natural planktonic bacteria and understanding the structure of planktonic bacterial communities. Scientia Marina 64: 197-224

Glibert PM (2016) Margalef revisited: a new phytoplankton mandala incorporating twelve dimensions, including nutritional physiology. Harmful algae 55: 25-30

Guibert LM, Loviso CL, Marcos MS, Commendatore MG, Dionisi HM, Lozada M (2012) Alkane Biodegradation Genes from Chronically Polluted Subantarctic Coastal Sediments and Their Shifts in Response to Oil Exposure. Microbial Ecology 64: 605-616

Hanson PC, Johnson TB, Schindler DE, Kitchell JF (1997) Fish bioenergetics 3.0. University of Wisconsin Sea Grant Institute, Publication WISCU-T-97-001, Madison.

Harwood J (2001) Marine mammals and their environment in the twenty-first century. Journal of Mammalogy 82:630-640

Hays G, Richardson A, Robinson C (2005) Climate change and marine plankton. Trends in ecology & evolution 20: 337-344

Houde ED (2002) Chapter 3: Mortality, pp 1-32. En: Fuiman LA, Werner RG (eds) Fishery Science: The Unique Contributions of Early Life Stages. Blackwell Science, Oxford

Irwin AJ, Finkel ZV, Müller-Karger FE, Troccoli Ghinaglia L (2015) Phytoplankton adapt to changing ocean

environments. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America 1‑5.

doi:10.1073/pnas.1414752112 Jeffrey SW, Humphrey GF (1975) New spectrophotometric equations for determining chlorophylls a, b, c1 and c2 in

higher plants, algae, and natural phytoplankton. Biochemie und Physiologie der Pflanzen 167: 191-19 Jiao N, Herndl GJ, Hansell DA, Benner R, Kattner G, Wilhelm SW, et al (2010) Microbial production of recalcitrant

dissolved organic matter: long-term carbon storage in the global ocean. Nature Reviews Microbiology 8: 593 Jobling M (1994) Fish bioenergetics. Chapman and Hall, London Johnson BM, Pate WM, Hansen AC (2017) Energy density and dry matter content in fish: New observations and an

evaluation of some empirical models. Transactions of the American Fisheries Society 146: 1262-1278 Jonsson B, Jonsson N (1993) Partial migration: niche shifts versus sexual maturation in fishes. Reviews in Fish

Biology and Fisheries 3: 348-365 Kurle CM, McWorter JK (2017) Spatial and temporal variability within marine isoscapes: implications for interpreting

stable isotope data from marine systems. Marine Ecology Progress Series 568: 31-45 Learmonth JA, Macleod CD, Santos MB, Pierce GJ, Crick HQP, Robinson RA (2006) Potential effects of climate change

on marine mammals. Oceanography and Marine Biology Annual Review 44: 431-464. Li W, Smith J, Platt T (1984) Temperature response of photosynthetic capacity and carboxylase activity in Arctic

marine phytoplankton. Ecology 17: 237‑243 Lozano RL, Mouat J (2009) Marine Litter in the North-East Atlantic Region: Assessment and Priorities for Response.

KIMO International pp 136 Machinandiarena L, Ehrlich MD (1999) Detección de un área de cría de la merluza de cola (Macruronus

magellanicus) en el Mar Argentino. Revista de Investigación y Desarrollo Pesquero 12: 45-50 Macleod CD (2009) Global climate change, range changes and potential implications for the conservation of marine

cetaceans: a review and synthesis. Endangered Species Research 7: 125-136 Malits A, Christaki U, Obernosterer I, Weinbauer MG (2014) Enhanced viral production and virus-mediated mortality

of bacterioplankton in a natural iron-fertilized bloom event above the Kerguelen Plateau. Biogeosciences 11: 6841-6853

Malits A, Weinbauer MG (2009) Effect of turbulence and viruses on prokaryotic cell size, production and diversity. Aquatic Microbial Ecology 54: 243-254

Manganelli M, Malfatti F, Samo TJ, Mitchell BG, Wang H, Azam F (2009) Major role of microbes in carbon fluxes during austral winter in the southern Drake Passage. PLoS ONE 4: e6941

Marchand D, Prairie YT, Del Giorgio PA (2009) Linking forest fires to lake metabolism and carbon dioxide emissions in the boreal region of Northern Québec. Global Change Biology 15: 2861-2873

Marie D, Partensky F, Vaulot D, Brussaard C (2001) Enumeration of phytoplankton, bacteria, and viruses in marine samples. Current protocols in cytometry, chapter 11

Martin S (2014) An introduction to ocean remote sensing. Cambridge University Press. Oczkowski A, Taplin B, Pruell R, Pimenta A, Johnson R, Grear J (2018) Carbon stable isotope values in plankton and

mussels reflect changes in carbonate chemistry associated with nutrientenhanced net production. Frontiers in Marine Science 5:43

Paul JH, Weinbauer MG (2010) Detection of lysogeny in marine environments, pp 30-33. En: Suttle C, Wilhelm SW, Weinbauer MG (eds) Manual of Aquatic Viral Ecology. ASLO

Peterson BJ (1999) Stable isotopes as tracers of organic matter input and transfer in benthic food webs: a review. Acta Oecologica 20:479-487

Post JR, Evans DO (1989) Size-dependent overwinter mortality of young-of-the-year Yellow Perch (Perca flavescens): laboratory, in situ enclosure, and field experiments. Canadian Journal of Fisheries and Aquatic Sciences 46: 1958-1968


78

Post JR, Parkinson EA (2001) Energy allocation strategy in young fish: allometry and survival. Ecology 82:1040-1051 Raya Rey A, Schiavini A (2000) Distribution, abundance and associations of seabirds in the Beagle Channel, Tierra del

Fuego, Argentina. Polar Biology 23:338-345 Raya Rey A, Scioscia G, Dellabianca NA, Torres M (2009) Censo de Aves y Mamíferos Marinos en la Plataforma

Patagónica Austral, pp 8-29. En: Lovrich GA (ed) Estudios biológicos en la plataforma patagónica austral. Informe de campaña CONCACEN II BO Puerto Deseado 2009

Riccialdelli L, Becker YA, Torres MA, Bruno DO, Raya Rey A, Fernández DA (2018b). Estructura trófica del Área Marina Protegida Namuncurá-Banco Burdwood y zonas lindantes de talud, comparaciones isotópicas en contexto regional. X Jornadas Nacionales de Ciencias del Mar, Ciudad Autónoma de Buenos Aires

Riccialdelli L, Iachetti C, Becker YA, Torres MA, Bruno DO, Alder V, Fernández DA, Raya Rey A (2018a) Variabilidad isotópica en ecosistemas marinos subantárticos, conexión desde el Canal Beagle al Área Marina Protegida Namuncurá - Banco Burdwood: su implicancia en estudios tróficos. X Jornadas Nacionales de Ciencias del Mar, Ciudad Autónoma de Buenos Aires

Sharp JH (1974) Improved analysis for “particulate” organic carbon and nitrogen from seawater 1. Limnology and Oceanography 19(6): 984-989

Sherr BF, Sherr EB, Fallon RD (1987) Use of monodispersed, fluorescently labeled bacteria to estimate in situ protozoan bacterivory. Applied and Environmental Microbiology 53: 958-65

Strickland JDH, Parsons TR (1972) A practical manual of seawater analysis. Bulletin Fisheries Research Board of Canada 167

Tasker ML, Hope Jones P, Dixon T, Blake BF (1984) Counting seabirds at sea from ships: a review of methods employed and a suggestion for a standardized approach. Auk 101: 567-577

Teuten EL, Saquing JM, Knappe DR, et al (2009) Transport and release of chemicals from plastics to the environment and to wildlife. Philosophical Transactions of the Royal Society B 364: 2027-2045

Thompson RC, Moore CJ, vom Saal FS, Swan SH (2009) Plastics, the environment and human health: current consensus and future trends. Philosophical Transactions of the Royal Society B 364: 2153-2166

Torres M (2015) Ecología y Conservación de Aves y Mamíferos Marinos, pp 31-38. En: Martin J (ed) Campaña “Tierra del Fuego-Banco Burdwood”. Informe de campaña GC-189 Prefecto García 2015

Torres M (2016) Ecología y Conservación de Aves y Mamíferos Marinos, pp 136-144. En: Roccatagliata D. Campaña “Tierra del Fuego-Banco Burdwood”. Informe de campaña BO Puerto Deseado 2016

Utermöhl H (1958) Zur vervolkommung der quantitativen phytoplankton-methodik. Mitteilung Internationale Vereinigung fuer Theoretische unde Amgewandte Limnologie 9: 1-38

Valla D, Fenco H (2017) Campaña de pruebas de ADCP de casco en el Buque Oceanográfico “Austral” durante el 4 al 6 de Julio de 2017. Informe Técnico N° 02/17, Servicio de Hidrografía Naval, Ministerio de Defensa

Villareal T A, Woods S, Moore J K, CulverRymsza K (1996) Vertical migration of Rhizosolenia mats and their significance to NO3− fluxes in the central North Pacific gyre. Journal of Plankton Research 18(7): 1103-1121

Weinbauer MG, Rowe JM, Wilhelm SW (2010) Determining rates of virus production in aquatic systems by the virus reduction approach, pp 1-8. En: Suttle C, Wilhelm SW, Weinbauer MG (eds) Manual of Aquatic Viral Ecology. ASLO

Wilhelm SW, Suttle CA (1999) Virus and Nutrient Cycles in the Sea. BioScience 49: 781-787


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ANEXO I. Tripulación científica de la campaña

Equipo de científicos a bordo de la campaña. De izquierda a derecha: fila superior: Jack Kirby, Guillermo Ibañez, Jacobo Martín, Gonzalo Bravo, Clara Iachetti, Chris Thompson. Fila del medio: Andrea Malits, Ariadna Nocera, Natalia Dellabianca, Jessica Chiarandini, Alex Martinez, Guido Bértola. Fila inferior: Mónica Torres, Magalí Bobinac, Ximena Flores Melo, Maité Latorre, Constanza Ordoñez

Apellido y Nombre Filiación Funcion principal a bordo

Bertola, Guido IEGEBA-CONICET Fitoplancton

Bobinac, Magali Prefectura Naval Argentina Algas tóxicas

Bravo, Gonzalo IBIOMAR-CENPAT-CONICET Oceanografia

Chiarandini Fiore, Jessica Prefectura Naval Argentina Algas tóxicas

Dellabianca, Natalia CADIC-CONICET Jefa Científica

Flores Melo, Ximena CADIC-CONICET Oceanografia

Iachetti, Clara CADIC-CONICET Productividad primaria/ Segunda JC

Ibañez, Guillermo CONAE Radiometria

Kirby, John Thomas National Geographic Society (NGS) Registros audiovisuales

Latorre, Maité CENPAT-CONICET Productividad primaria

Malits, Andrea CADIC-CONICET Ecologia microbiana

Martin de Nascimiento, Jacobo CADIC-CONICET Oceanografia

Martinez, Alejandro IBBEA CONICET UBA Zooplancton

Nocera, Ariadna CESIMAR-CENPAT-CONICET Oceanografia

Ordoñez, Constanza FCEyN-UBA Avistajes

Thompson, Christopher University of Western Australia, NGS Dropcam

Torres, Mónica CADIC-CONICET Avistajes


80

ANEXO II. Detalles de las actividades de muestreo

Resumen de las operaciones de muestreos con diferentes Equipos de muestreo por estación y lance realizadas durante la campaña “AMP Namuncurá – Banco Burdwood: Comprendiendo la bomba biológica de carbono”. Cada una de las tomas de muestras se considera un “lance”. Fecha y Hora en GMT; Prof. es la profundidad de muestreo. Ángulo del cable en grados. Detalle de equipos utilizados: RINKO= CTD auto contenido Rinko con fluorómetro incorporado. SBE= CTD Seabird SBE-9. ADCP= Perfilador de Corriente. ROSETA=roseta de 24 botellas de 12 L. Aclaración: si bien la roseta fue utilizada en cada lance de CTD y/o ADCP, en la tabla su mención hace referencia a que en ese lance se realizó la toma de agua a distintas profundidades.

Fecha Estación Lance Hora

(GMT)

Latitud Sur Longitud Oeste

Prof. (m) Cable filado

(m) Án

gulo

Equipo Observaciones Grados Minutos Grados Minutos

11/11/2018 EF2 1 11:10 54.472

58,574 149

RINKO FONDO (136m)

11/11/2018 EF2 1 11:30 54,4687 58,5697

RINKO SUP

11/11/2018 Ef2 2 12:55 54 28,2740 58 35,4400 142,9

ROSETA+SBE AGUA

11/11/2018 EF2 2 13:00

ROSETA+SBE FONDO (130m)

11/11/2018 EF2 2 13:11 54 28,0380 58 35,1000 142,3

ROSETA+SBE SUP

11/11/2018 EF2 3 13:30 54 28,0380 58 35,0000

DROPCAM DROPCAM AGUA

11/11/2018 EF2 4 13:45 54 27,5600 58 34,5100 141,3

Red Fitoplancton 1 20m

11/11/2018 EF2 5 13:56 54 27,4860 58 34,4 143,5


11/11/2018 EF2 6 14:04 54 27,4000 58 34,3 141,6


11/11/2018 EF2 7 14:10


11/11/2018 EF2 8 14:17 54 27,2670 58 34,134 141,6


11/11/2018 EF2 10 14:41 54 27,0720 58 33,78 141,6

Red Minibongo 1 AGUA

11/11/2018 EF2 10 14:43 54 27,0500 58 33,76 140,4

Red Minibongo 1 FONDO (20m)

11/11/2018 EF2 10 14:46 54 27,0400 58 33,72 141,3

Red Minibongo 1 SUP


81


(GMT)



(m) Án

gulo


11/11/2018 EF2 11 14:51 54 27,01 58 33,64 142,9


11/11/2018 EF2 11 15:03 54 26,93 58 33,42 141 150 50 Red Minibongo 2 FONDO (100m)

11/11/2018 EF2 11 15:22 54 26,83 58 33,15 141,3

Red Minibongo 2 SUP

11/11/2018 EF2 12 15:27 54 26,82 58 33,07 141


11/11/2018 EF2 12 15:35 54 26,7940 58 32,943 141,6 150

Red Minibongo 3 FONDO (100m); Velocidad 15´50"

11/11/2018 EF2 12 15:52 54 27,7460 58 32,695 140,7

Red Minibongo 3 SUP

11/11/2018 EF2 13 16:07 54 26,7160 58 32,455 1409,7

RINKO AGUA

11/11/2018 EF2 13 16:11 54 26,7030 58 32,377 141

RINKO FONDO

11/11/2018 EF2 13 16,16 54 26,7000 58 32,296 139,1

RINKO SUP

11/11/2018 EF2 14 17:49 54 28,4710 58 35,559 143,5


11/11/2018 EF2 14 17:52 54 28,4760 58 35,49 143,5


11/11/2018 EF2 14 17:58 54 28,4920 58 35,353 142,6


11/11/2018 EF2 15 18:05 54 28,5000 58 35,19 142,3

ROSETA+SBE+RINKO AGUA

11/11/2018 EF2 15 18:13 54 28,5310 58 34,992 142,9

ROSETA+SBE+RINKO FONDO

11/11/2018 EF2 15 18:23 54 28,5730 58 34,741 142,9

ROSETA+SBE+RINKO SUP

11/11/2018 EF2 16 21:16 54 28:894 58 35.572 143

SBE+RINKO AGUA

11/11/2018 EF2 16 21:26 54 28:832 58 35,25 142,6

SBE+RINKO FONDO

11/11/2018 EF2 16 21:29 54 28:804 58 35,011 142

SBE+RINKO SUP

12/11/2018 EF2 17 00:37 54 28,2490 58 34,7810 143,5

SBE+RINKO AGUA

12/11/2018 EF2 17 00:42 54 28,2450 58 34,7700 142,6

SBE+RINKO FONDO

12/11/2918 EF2 17 00:47 54 28,2090 58 34,6760 142

SBE+RINKO SUP

12/11/2018 EF2 18 01:31 54 28,7470 58 36,1940 142


12/11/2018 EF2 18 01:40 54 28,7070 58 36,0350 143

ROSETA+SBE+RINKO FONDO (136m)


82


(GMT)



(m) Án

gulo


12/11/2018 EF2 18 01:50 54 28,6720 58 35,9050 143,5


12/11/2018 EF2 19 02:05 54 28,6250 58 35,6650 143,2


12/11/2018 EF2 19 02:08 54 28,6140 58 35,6010 143,6


12/11/2018 EF2 19 02:15 54 28,5990 58 35,4830 146,2


12/11/2018 EF2 20 05:11 54 28,8450 58 34,9250 142

SBE+RINKO+ADCP AGUA

12/11/2018 EF2 20 05:21 54 28,9860 58 34,7100 142

SBE+RINKO+ADCP FONDO (130m)

12/11/2018 EF2 20 05:26 54 29,0540 58 34,6000 142

SBE+RINKO+ADCP SUP

12/11/2018 EF2 21 05:42 54 29,2770 58 34,2770 145


12/11/2018 EF2 21


12/11/2018 EF2 21 05:45 54 29,3240 58 34,1700 142

Red Minibongo 1 SUP

12/11/2018 EF2 22 05:51 54 29,4130 58 34,0320 142


12/11/2018 EF2 22 05:57 54 29,5050 58 33,9010 142,8 140


12/11/2018 EF2 22 06:03 54 29,7090 58 33,5190 142,6

Red Minibongo 2 SUP

12/11/2018 EF2 23 10:54 54 28,6550 58 35,6170 143

SBE+RINKO+ADCP AGUA

12/11/2018 EF2 23 11:00 54 28,6780 58 35,1360 142


12/11/2018 EF2 23 11:06 54 28,6750 58 34,9620 142,5

SBE+RINKO+ADCP SUP

12/11/2018 EF2 24 11:26 54 28,6800 58 34,3040 145,5

SBE+RINKO+ADCP AGUA

12/11/2018 EF2 24 11:34 54 28,6700 58 33,9400 142


12/11/2018 EF2 24 11:50 54 28,6500 58 33,6000 142,5

SBE+RINKO+ADCP SUP

12/11/2018 EF2 25 12:05 54 28,6500 58 33,1400 145


12/11/2018 EF2 26 12:10 54 28,6500 58 33,0600 142,5


12/11/2018 EF2 27 12:17 54 28,6500 58 32,8700 143


12/11/2018 EF2 28 14:38 54 28,5500 58 35,3740 145,1

SBE+RINKO+ADCP AGUA

12/11/2018 EF2 28 14:48 54 28,5520 58 35,2270 143,8



83


(GMT)



(m) Án

gulo


12/11/2018 EF2 28 14:54 54 28,5490 58 35,1240 143,2

SBE+RINKO+ADCP SUP

12/11/2018 E18b 29 23:20 55 4,5810 58 39,0210 2548

SBE+RINKO+ADCP AGUA

12/11/2018 E18b 29 23:35 55 4,5350 58 38,5420 2548


12/11/2018 E18b 29 23:46 55 4,5500 58 38,2200 2548

SBE+RINKO+ADCP SUP

13/11/2018 E18b 30 00:37 55 4,5860 58 36,6080 2548

ROSETA+SBE AGUA

13/11/2018 E18b 30 01:20 55 4,7650 58 35,0370 2450

ROSETA+SBE FONDO

13/11/2018 E18b 30 02:11 55 5,0000 58 33,0000

ROSETA+SBE SUP

13/11/2018 E18b 31 00:57 55 4,6490 58 35,9030 2548


13/11/2018 E18b 32 02:44 55 5,2500 58 32,2630 2450


13/11/2018 E16 33 11:07 54 52,7600 59 36,8000 993

SBE+RINKO AGUA

13/11/2018 E16 33 11:22 54 52,7220 59 36,3300 952

SBE+RINKO FONDO (260m)

13/11/2018 E16 33 11:32 54 52,7150 59 36,0160

SBE+RINKO SUP

13/11/2018 E16 34 11:54 54 52,7500 59 35,6300 975

ROSETA+SBE AGUA

13/11/2018 E16 34 12:21 54 52,7300 59 34,6400 1061


13/11/2018 E16 34 12:55 54 52,6900 59 33,5300 997

ROSETA+SBE SUP

13/11/2018 E16 35 13:52 54 52,6600 59 37,0000 946

SBE+RINKO AGUA

13/11/2018 E16 35 14:16 54 52,5400 59 36,1300 945


13/11/2018 E16 35 14:27 54 52,4900 59 35,7310 945

SBE+RINKO SUP

13/11/2018 E16 37 14:43 54 52,3320 59 35,1430 980


13/11/2018 E16 38 14:48 54 52,2840 59 34,9960 989


13/11/2018 E16 39 14:54 54 52,2120 59 34,7950 987


13/11/2018 E16 40 14:56 54 52,1830 59 34,7280 987


13/11/2018 E16 41 14:59 54 52,1410 59 34,6350 978


13/11/2018 E21 42 19:37 54 30,8610 59 25,0690 134

SBE+RINKO AGUA


84


(GMT)



(m) Án

gulo


13/11/2018 E21 42 19:48 54 30,9830 59 24,6300 131

SBE+RINKO FONDO

13/11/2018 E21 42 19:55 54 31,0580 59 24,3280 130,7

SBE+RINKO SUP

13/11/2018 E21 43 20:18 54 31,3280 59 23,4360 131,2

ROSETA+SBE+ADCP AGUA

13/11/2018 E21 43 20:27 54 31,4100 59 23,0500 134

ROSETA+SBE+ADCP FONDO (120m)

13/11/2018 E21 43 20:36 54 31,5000 59 22,7180 133,5

ROSETA+SBE+ADCP SUP

13/11/2018 E21 44 21:24 54 31,9720 59 20,7200 132,7


13/11/2018 E21 45 21:31 54 32,0320 59 20,4210 133,5


13/11/2018 E21 46 21:38 54 32,0860 59 20,1090 132,1


13/11/2018 E21 47 21:42 54 32,1170 59 19,9480 133,3


13/11/2018 E21 48 21:58 54 32,2380 59 19,2950 131,8


14/11/2018 E24 49 05:32 54 19,6500 60 11,1520 101

RINKO AGUA

14/11/2018 E24 49 05:39

RINKO FONDO (90m)

14/11/2018 E24 49 05:45 54 19,8050 60 11,2420 101

RINKO SUP

14/11/2018 E24 50 06:05 54 20,0180 60 11,3350 102


14/11/2018 E24 50 06:09


14/11/2018 E24 50 06:15 54 20,1930 60 11,3780 100

ROSETA+SBE+ADCP SUP

14/11/2018 E24 51 06:50 54 20,7660 60 11,4240 100


14/11/2018 E24 52 06:53 54 20,1820 60 11,4210 100


14/11/2018 E24 53 06:56 54 20,8790 60 11,3940 100


14/11/2018 E24 54 07:00 54 20,9460 60 11,3810 101


14/11/2018 E24 54 07:03 54


14/11/2018 E24 54 07:05 54 20,9920 60 11,3780 102

Red Minibongo 1 SUP

14/11/2018 E24 55 07:11 54 21,1700 60 11,3640 100


14/11/2018 E24 55



85


(GMT)



(m) Án

gulo


14/11/2018 E24 55 07:19 54 21,2850 60 11,3330 100

Red Minibongo 2 SUP

14/11/2018 E24 56 09:45 54 19,4780 60 9,2300 100

RINKO AGUA

14/11/2018 E24 56 09:49 54 19,6310 60 9,1270 99

RINKO FONDO (90m)

14/11/2018 E24 56 09:53 54 16,3610 60 9,0250 98

RINKO SUP

14/11/2018 E24 57 10:06 54 19,3610 60 8,6400 99

SBE+ADCP AGUA

14/11/2018 E24 57 10:08 54 19,8910 60 8,5540 99

SBE+ADCP FONDO (80m)

14/11/2018 E24 57 10:11 54 19,9430 60 8,4690 101

SBE+ADCP SUP

14/11/2018 E24 58 12:29 54 19,3430 60 9,6820 102

RINKO AGUA

14/11/2018 E24 58 12:33 54 19,3600 60 9,7050 102

RINKO FONDO (80m)

14/11/2018 E24 58 12:37 54 19,3690 60 9,7250 101

RINKO SUP

14/11/2018 E24 59 13:06 54 19,3910 60 9,9200 102

SBE+ADCP AGUA

14/11/2018 E24 59 13:09 54 19,3940 60 9,9460 102

SBE+ADCP FONDO (94m)

14/11/2018 E24 59 13:17 54 19,4160 60 9,9940 102

SBE+ADCP SUP

14/11/2018 E24 60 13:33 54 19,3810 60 10,1200 100


14/11/2018 E24 61 13:38 54 19,3790 60 10,1510 102


14/11/2018 E24 62 13:43 54 19,3790 60 10,1840 102


14/11/2018 E24 63 15:14 54 19,0300 60 10,0300 102,2

RINKO AGUA

14/11/2018 E24 63 15:24 54 19,0400 60 9,9600 100

RINKO FONDO (90m)

14/11/2018 E24 63 15:28 54 19,0500 60 9,9000 100,7

RINKO SUP

14/11/2018 E24 64 15:45 54 19,1300 60 9,6400 102

SBE+ADCP AGUA

14/11/2018 E24 64 15:54 54 19,1700 60 9,5700 101

SBE+ADCP FONDO

14/11/2018 E24 64 15:56 54 19,1700 60 9,5500 101

SBE+ADCP SUP

14/11/2018 E24 65 18:23 54 19,6000 60 10,2040 100

RINKO+INFINITY AGUA

14/11/2018 E24 65 18:27 54 19,6790 60 10,1000 101

RINKO+INFINITY FONDO (80m)


86


(GMT)



(m) Án

gulo


14/11/2018 E24 65 18:34 54 19,7860 60 9,9510 100,5

RINKO+INFINITY SUP

14/11/2018 E24 66 19:00 54 20,2760 60 9,3820 98,5


14/11/2018 E24 66 19:04 54 20,3410 60 9,2960 99,5


14/11/2018 E24 66 19:12 54 20,4990 60 9,0630 98,7

ROSETA+SBE+ADCP SUP

14/11/2018 E24 67 19:44 54 21,1080 60 8,2290 99


14/11/2018 E24 68 19:49 54 21,2020 60 8,0640 101


14/11/2018 E24 69 19:55 54 21,2980 60 7,9060 99


14/11/2018 E24 70 19:59 54 21,3810 60 7,7750 100


14/11/2018 E24 71 20:06 54 21,5160 60 7,5470 100,5


14/11/2018 E24 72 20:12 54 21,6150 60 7,3460 97


14/11/2018 E24 72 20:13 54 21,6310 60 7,3130 97

15 Red Minibongo 1 FONDO (20m)

14/11/2018 E24 72 20:14 54 21,6530 60 7,2690 98

Red Minibongo 1 SUP. Se repite, error del flujometro

14/11/2018 E24 73 20:19 54 21,7420 60 7,1240 98

Red Minibongo 2 AGUA. Se cancela

14/11/2018 E24 74 20:24 54 21,8,44 60 6,9440 96


14/11/2018 E24 74 20:25 54 21,8560 60 6,9220 98


14/11/2018 E24 74 20:26 54 21,8670 60 6,8980 98

Red Minibongo 3 SUP. Se repite, se rompió el colector

14/11/2018 E24 75 20:33 54 22,0040 60 6,6260 97


14/11/2018 E24 75 20:34 54 22,0170 60 6,6010 95


14/11/2018 E24 75 20:35 54 22,0320 60 6,5600 97

Red Minibongo 4 SUP

14/11/2018 E24 76 20:39 54 22,0900 60 6,4100 99


14/11/2018 E24 76 20:43 54 22,1500 60 6,2700 96 90 30 Red Minibongo 5 FONDO (85m)

14/11/2018 E24 76 20:47 54 22,2500 60 6,1200 98,2

Red Minibongo 5 SUP

14/11/2018 E24 77 20:51 54 22,2800 60 5,9900 97 90 30 Red Minibongo 6 AGUA. Se repite, salió


87


(GMT)



(m) Án

gulo


enredada

14/11/2018 E24 77 20:57 54 22,3800 60 5,7500 96


14/11/2018 E24 77 21:01 54 22,4500 60 5,6100 97

Red Minibongo 6 SUP

14/11/2018 E24 78 21:05 54 22,5100 60 5,4800 97


14/11/2018 E24 78 21:09 54 22,5600 60 5,3400 97,5

Red Minibongo 7 FONDO

14/11/2018 E24 78 21:13 54 22,6200 60 5,1900 96

Red Minibongo 7 SUP

14/11/2018 E24 79 23:00 54 19,0500 60 9,3400 100

RINKO AGUA

14/11/2018 E24 79 23:06 54 19,0400 60 9,2500 100

RINKO FONDO (90m)

14/11/2018 E24 79 23:15 54 18,9800 60 8,8300 100

RINKO SUP

14/11/2018 E24 80 23:23 54 18,9400 60 8,5480 100


14/11/2018 E24 80 23:31 54 18,8900 60 8,2020 100

ROSETA+SBE+ADCP FONDO

14/11/2018 E24 80 23:33 54 18,8600 60 8,1010 100

ROSETA+SBE+ADCP SUP

14/11/2018 E24 81

54

60

RINKO AGUA

14/11/2018 E24 81

54

60

RINKO FONDO

14/11/2018 E24 81 03:06 54 18,7660 60 9,5290 103

RINKO SUP

15/11/2018 E24 82 03:08 54 18,6920 60 9,4520

ROSETA+SBE AGUA

15/11/2018 E24 82 03:15 54 18,6160 60 9,3450


15/11/2018 E24 82

ROSETA+SBE SUP. Se repite

15/11/2018 E28 83 17:17 54 25,6510 61 32,2200 143

RINKO AGUA

15/11/2018 E28 83 17:25 54 25,6810 61 32,0430 143

RINKO FONDO (130m)

15/11/2018 E28 83 17:32 54 25,6570 61 31,8620 143

RINKO SUP

15/11/2018 E28 84 18:00 54 25,6350 61 31,1150 136


15/11/2018 E28 84 18:04 54 25,6400 61 31,0300 127


15/11/2018 E28 84 18:13 54 25,6670 61 30,7760 136

ROSETA+SBE+ADCP SUP


88


(GMT)



(m) Án

gulo


15/11/2018 E28 84 18:58 54 25,8180 61 29,6850 136


15/11/2018 E28 85 19:04 54 25,8390 61 29,5420 135

ROSETA+SBE+ADCP FONDO (120m) (capa +fria y +salina el fondo)

15/11/2018 E28 85 19:08 54 25,8610 61 29,4420 132

ROSETA+SBE+ADCP SUP

15/11/2018 E28 86 19:41 54 26,0360 61 28,6800 133


15/11/2018 E28 87 19:46 54 26,0690 61 28,5450 130


15/11/2018 E28 88 19:52 54 26,1110 61 28,3940 132


15/11/2018 E28 89 19:55 54 26,1400 61 28,3100 133


15/11/2018 E28 90 20:04 54 26,2230 61 28,0620 134


15/11/2018 E28 91 20:27 54 26,5100 61 27,3830 129


15/11/2018 E28 91 20:32 54 26,5770 61 27,2350 127


15/11/2018 E28 91 20:39 54 26,6780 61 26,6950 139 115 30 Red Minibongo 1 SUP

15/11/2018 E28 92 20:51 54 26,8040 61 26,6670 168

ROSETA+SBE+RINKO SUP (150m)

15/11/2018 E12 93 04:14 54 23,7050 62 14,0030 298

ROSETA+SBE+RINKO+ADCP AGUA

15/11/2018 E12 93 04:22 54


15/11/2018 E12 93 04:33 54 23,5170 62 13,8120 296

ROSETA+SBE+RINKO+ADCP SUP

15/11/2018 E12 94 05:00 54 23,4460 62 13,7300 300


15/11/2018 E12 94 05:10 54

ROSETA+SBE+RINKO+ADCP FONDO (285m)

15/11/2018 E12 94 05:20 54 23,4290 62 13,7520 300


15/11/2018 E12 95 05:58 54 23,3570 62 13,7330 298


15/11/2018 E12 96 06:06 54 23,3260 62 13,7060 297


15/11/2018 E12 97 06:15 54 23,3040 62 13,6660 297


15/11/2018 E12 98 06:18 54 23,2950 62 13,6470 297


15/11/2018 E12 99 06:27 54 23,2640 62 13,6130 297



89


(GMT)



(m) Án

gulo


17/11/2018 E5 100 17:19 55 0,6620 65 55,5600 501

DROPCAM 17/11/2018 E5 101 17:36 55 0,5910 65 55,0400 431

SBE+RINKO+ADCP AGUA

17/11/2018 E5 101 17:53 55 6,1100 65 54,7000 550


17/11/2018 E5 101 18:06 55 6,1800 65 54,4200 548

SBE+RINKO+ADCP SUP

17/11/2018 E5 102 18:28 55 5,1800 65 53,9600 331


17/11/2018 E5 102 18:36 55 5,6600 65 53,7800 276


17/11/2018 E5 102 18:47 55 5,7800 65 53,4600 277


17/11/2018 E5 103 20:26 55 5,9040 65 56,4860 423

SBE+RINKO+ADCP AGUA

17/11/2018 E5 103 20:39 55 5,8130 65 56,5150 379

SBE+RINKO+ADCP+AGUA DE FONDO FONDO (330m)

17/11/2018 E5 103 20:51 55 5,6640 65 56,1480 337

SBE+RINKO+ADCP SUP

17/11/2018 E5 104 21:02 55 5,5590 65 55,9120 300


17/11/2018 E5 105 21:07 55 5,5270 65 55,8310 297


17/11/2018 E5 106 21:13 55 5,4880 65 55,7360 291


17/11/2018 E5 107 21:16 55 5,4720 65 55,6910 286


17/11/2018 E5 108 21:21 55 5,4520 65 55,6020 281


17/11/2018 E5 109 21:28 55 5,4430 65 55,4980 279


17/11/2018 E5 109 21:30 55 5,4380 65 55,4570 278


17/11/2018 E5 109 21:33 55 5,4330 65 55,4140 277

Red Minibongo 1 SUP

17/11/2018 E5 110 21:37 55 5,4320 65 55,3260 271


17/11/2018 E5 110 21:42 55 5,4410 65 55,2270 268


17/11/2018 E5 110 21:47 55 5,4560 65 55,1390 269

Red Minibongo 2 SUP

17/11/2018 E5 111 21:50 55 5,4640 65 55,0830 268


17/11/2018 E5 111 21:55 55 5,4740 65 55,0340 269



90


(GMT)



(m) Án

gulo


17/11/2018 E5 111 22:00 55 5,4800 65 54,9910 272

Red Minibongo 3 SUP

18/11/2018 E5 112 00:00 55 6,3810 65 56,0810 590

SBE+RINKO AGUA

18/11/2018 E5 112 00:17 55 6,3850 65 55,8580 623


18/11/2018 E5 112 00:33 55 6,3680 65 55,7290 600

SBE+RINKO SUP

18/11/2018 E5 113 01:12 55 5,9660 65 55,5110 510


18/11/2018 E5 113 01:22 55 5,9580 65 55,4660 510


18/11/2018 E5 113 01:39 55 6,0300 65 55,4230 510

ROSETA+SBE+ADCP SUP

18/11/2018 E5 114

SBE+RINKO Cancelado

18/11/2018 E5 115 03:29 55 6,1140 65 55,1160

SBE+RINKO Cancelado

18/11/2018 E5 116 06:45 55 6,9450 65 59,0300 720


18/11/2018 E5 116 06:47

20 0 Red Minibongo 1 FONDO (20m)

18/11/2018 E5 116 06:50

Red Minibongo 1 SUP

18/11/2018 E5 117 06:56 55 6,9990 65 58,8600 805


18/11/2018 E5 117 06:58


18/11/2018 E5 117 07:01 55 7,0880 65 58,5420

Red Minibongo 2 SUP

18/11/2018 E5 118 08:07 55 6,2780 65 53,5300 480


18/11/2018 E5 118

ROSETA+SBE+RINKO+ADCP FONDO (330)

18/11/2018 E5 118 08:36 55 6,6410 65 52,0520 315


18/11/2018 E5 119 12:02 55 6,0610 65 54,9590 480


18/11/2018 E5 119 12:19 55 5,8640 65 54,9590 440


18/11/2018 E5 119 12:40 55 5,4840 65 53,7680 270


18/11/2018 E5 120 15:36 55 6,1300 65 54,1100 541

SBE+RINKO+ADCP Se repite

18/11/2018 E5 121 17:44 55 6,8020 65 56,7830 712


18/11/2018 E5 121 18:05

680



91


(GMT)



(m) Án

gulo


18/11/2018 E5 121 18:24 55 6,7320 65 53,8240 585


18/11/2018 E5 122 18:32 55 6,7400 65 53,0300 445


18/11/2018 E5 123 18:37 55 6,7400 65 52,9300 420


18/11/2018 E5 124 18:43 55 6,7500 65 52,3900 340


18/11/2018 E4 125 22:39 55 5,3610 66 33,7750 71

SBE+RINKO+ADCP AGUA

18/11/2018 E4 125 22:43 55 5,2770 66 33,6000 71


18/11/2018 E4 125 22:45 55 5,2390 66 33,6000 71

SBE+RINKO+ADCP SUP

18/11/2018 E4 126 23:03 55 5,5730 66 32,9990 74


18/11/2018 E4 126 23:09 55 5,6660 66 32,7400 74


18/11/2018 E4 126 23:14 55 5,7490 66 32,4900 74


18/11/2018 E4 127 23:27 55 5,9310 66 31,9000 70


18/11/2018 E4 128 23:32 55 5,9940 66 31,5780 68,5


18/11/2018 E4 129 23:38 55 6,0400 66 31,2270 69,5


18/11/2018 E4 130 23:42 55 6,0610 66 31,0410 69,5


18/11/2018 E4 131 23:48 55 6,1000 66 30,7240 71


18/11/2018 E4 132 23:56 55 6,1570 66 30,3280 71


18/11/2018 E4 132 23:58 55 6,1610 66 30,1910 71,5 20 0 Red Minibongo 1 FONDO (20m)

19/11/2018 E4 132 00:00 55 6,1610 66 30,0910 71

Red Minibongo 1 SUP

19/11/2018 E4 133 00:05 55 6,1560 66 29,8460 72



19/11/2018 E4 133 00:12 55 6,1360 66 29,4640 72,2

Red Minibongo 2 SUP

19/11/2018 E3 134 15:28 54 59,3250 66 49,2490 81

SBE+RINKO+ADCP AGUA

19/11/2018 E3 134 15:35 54 50,3820 66 49,1050 82

SBE+RINKO+ADCP FONDO

19/11/2018 E3 134 15:37 54 59,4220 66 49,0230 80,7

SBE+RINKO+ADCP SUP


92


(GMT)



(m) Án

gulo


19/11/2018 E3 135 15:55 54 59,6840 66 48,3370 96

ROSETA+SBE AGUA

19/11/2018 E3 135 16:00 54 59,7930 66 48,1740 96


19/11/2018 E3 135 16:06 54 59,9240 66 48,0730 96

ROSETA+SBE SUP

19/11/2018 E3 136 16:15 55 0,1570 66 47,7770 90


19/11/2018 E3 137 16:22 55 0,2410 66 47,6050 85


19/11/2018 E3 138 16:28 55 0,3310 66 47,3830 82


19/11/2018 E3 139 16:32 55 0,3750 66 47,2670 111


19/11/2018 E3 140 16:37 55 0,4690 66 47,1160 117


19/11/2018 E3 141 16:43 55 0,5050 66 47,0460 117


19/11/2018 E3 141 16:44

117


19/11/2018 E3 141 16:44 55 0,5110 66 47,0160 117

Red Minibongo 1 SUP. Se repite, salió enredada

19/11/2018 E3 142 16:47 55 0,5250 66 46,9130 117

Red Minibongo 1 bis AGUA

19/11/2018 E3 142 16:49

Red Minibongo 1 bis FONDO (20m)

19/11/2018 E3 142 16:50 55 0,5290 66 46,8770 117

Red Minibongo 1 bis SUP

19/11/2018 E3 143 16:54 55 0,5470 66 46,8100 118



19/11/2018 E3 143 17:03 55 0,6170 66 46,7940 119

Red Minibongo 2 SUP

20/11/2018 E5 144 10:05 55 6,0590 66 1,5590

RECUPERACION DE DROPCAM Liberada la noche anterior

21/11/2018 E30 145 03:44 54 8,9880 61 43,1730 215

SBE+RINKO AGUA

21/11/2018 E30 145 03:51

215


21/11/2018 E30 145 03:59 54 9,0840 61 42,6660 216

SBE+RINKO SUP

21/11/2018 E30 146 04:24 54 9,2640 61 41,7140 210


21/11/2018 E30 146 04:30

210



93


(GMT)



(m) Án

gulo


21/11/2018 E30 146 04:41 54 9,2840 61 41,1860 208


21/11/2018 E30 147 04:58 54 9,3060 61 40,5780 201

Red Fitoplancton 1 20m. Se repite, salió enredada

21/11/2018 E30 148 05:05 54 9,3020 61 40,7370 198

Red Fitoplancton 1 bis 20m

21/11/2018 E30 149 05:12 54 9,2900 61 40,1310 196


21/11/2018 E30 150 05:19 54 9,2570 61 39,8880 195


21/11/2018 E30 151 05:22 54 9,2480 61 39,8080 194


21/11/2018 E30 152 05:27 54 9,2220 61 39,6490 192


21/11/2018 E30 153 05:36 54 9,1780 61 39,3510 188



21/11/2018 E30 153 05:47 54 9,1260 61 39,0440 189

Red Minibongo 1 SUP

21/11/2018 F1 154 08:15 54 11,4070 61 23,0840 151

DROPCAM Se recuperó a las 13:30 (GMT)

21/11/2018 F1 155 14:47 54 8,8510 61 12,1780 139

SBE+RINKO+ADCP AGUA

21/11/2018 F1 155 14:52


21/11/2018 F1 155 14:57 54 8,9620 61 12,2330 140

SBE+RINKO+ADCP SUP

21/11/2018 F1 156 15:20 54 9,1940 61 12,0810 144


21/11/2018 F1 156 15:24 54 9,2320 61 12,0890 144,8


21/11/2018 F1 156 15:32 54 9,3170 61 11,9680 145


21/11/2018 F1 157 15:44 54 9,4320 61 11,6570 142


21/11/2018 F1 158 15:48 54 9,4740 61 11,5770 142


21/11/2018 F1 159 15:54 54 9,5370 61 11,5160 146


21/11/2018 F1 160 15:57 54 9,5460 61 11,5110 145


21/11/2018 F1 161 16:03 54 9,6230 61 11,5020 143


21/11/2018 F1 162 16:12 54 9,6900 61 11,2520 145


21/11/2018 F1 162 16:14 54 9,7030 61 11,1850 142



94


(GMT)



(m) Án

gulo


21/11/2018 F1 162 16:18 54 9,7160 61 11,1180 143

Red Minibongo 1 SUP

21/11/2018 F1 163 16:21 54 9,7330 61 11,0720 144


21/11/2018 F1 163 16:26 54 9,7630 61 11,0350 143 115 25-30 Red Minibongo 2 FONDO (100m)

21/11/2018 F1 163 16:32 54 9,8230 61 11,0080 145

Red Minibongo 2 SUP

21/11/2018 F1 164 16:37 54 9,8630 61 10,9420 144


21/11/2018 F1 164 16:43 54 9,8480 61 10,7850 145 115 25-30 Red Minibongo 3 FONDO (100m)

21/11/2018 F1 164 16:49 54 9,8340 61 10,6660 145

Red Minibongo 3 SUP

21/11/2018 F1 165 18:52 54 8,9720 61 13,2510 144 SBE+RINKO+CALIBRACIÓN

FLUORÓMETRO FONDEO

AGUA

21/11/2018 F1 165 19:15 54 9,0750 61 13,2610 144

FONDO (90m)

21/11/2018 F1 165 19:37 54 8,9760 61 13,1760 141

SUP

21/11/2018 F1 166 19:57 54 8,7660 61 13,0250 134

SBE+RINKO+ADCP AGUA

21/11/2018 F1 166


21/11/2018 F1 166

SBE+RINKO+ADCP SUP

21/11/2018 F1 167 23:35 54 8,5670 61 14,5880 143

SBE+RINKO AGUA

21/11/2018 F1 167 23:40 54 8,6060 61 14,5810 142


21/11/2018 F1 167 23:45 54 8,6470 61 14,5990 143

SBE+RINKO SUP

22/11/2018 F1 168 00:10 54 8,8410 61 14,8680 144


22/11/2018 F1 168 00:15 54 8,8800 61 14,9030 144


22/11/2018 F1 168 00:22 54 8,9530 61 14,9580 143


22/11/2018 F1 169 00:43 54 9,2410 61 15,0660 143


22/11/2018 F1 170 00:47 54 9,3040 61 15,0870 145


22/11/2018 F1 171 00:52 54 9,4020 61 15,1060 144


22/11/2018 F1 172 03:12 54 8,9300 61 14,5790 140

SBE+RINKO AGUA


95


(GMT)



(m) Án

gulo


22/11/2018 F1 172 03:19 54 9,0950 61 14,3980 140


22/11/2018 F1 172 03:23 54 9,1610 61 14,2790 140

SBE+RINKO SUP

22/11/2018 F1 173 03:36 54 9,3300 61 13,9310 140

SBE+RINKO+ADCP AGUA

22/11/2018 F1 173 03:42 54

61

SBE+RINKO+ADCP FONDO (50m) (x 5 minutos)

22/11/2018 F1 173 03:49 54 9,5090 61 13,5690 141

SBE+RINKO+ADCP SUP (x ADCP, no prendido 1° lance)

22/11/2018 F1 174 03:55 54 9,8000 61 13,3000 144


22/11/2018 F1 174 03:56 54

61


22/11/2018 F1 174 03:57 54

61

Red Minibongo 1 SUP

22/11/2018 F1 175 04:01 54 9,7000 61 13,1000 144


22/11/2018 F1 175 04:08 54

61


22/11/2018 F1 175 04:14 54

61

Red Minibongo 2 SUP

22/11/2018 E34 176 9:48 53 46,4760 61 50,0750 360

DROPCAM 22/11/2018 E34 177 9:54 53 46,4010 61 50,1180 340

SBE+RINKO+ADCP AGUA

22/11/2018 E34 177 10:04 53 46,2630 61 50,2410 337


22/11/2018 E34 177 10:12 53 46,1740 61 50,3030 330

SBE+RINKO+ADCP SUP

22/11/2018 E34 178 10:30 53 45,9910 61 50,3650 350


22/11/2018 E34 178 10:39 53

61

385


22/11/2018 E34 178 10:52 53 45,6850 61 50,3560 470


22/11/2018 E34 179 11:19 53 45,3580 61 50,3940 568


22/11/2018 E34 180 11:24 53 45,2860 61 50,4150 568


22/11/2018 E34 181 11:29 53 45,2270 61 50,4230 604


22/11/2018 E34 182 11:33 53 45,1750 61 50,4320 640


22/11/2018 E34 183 11:39 53 45,1160 61 50,4170 718



96


(GMT)



(m) Án

gulo


22/11/2018 E34 184 13:44 53 46,4560 61 50,1900 400

SBE+RINKO+ADCP AGUA

22/11/2018 E34 184

53


22/11/2018 E34 184

53

SBE+RINKO+ADCP SUP

22/11/2018 E34 185 16:47 53 46,7690 61 49,6130 420

SBE+RINKO+ADCP AGUA

22/11/2018 E34 185 17:01 53 46,9800 61 49,4150 425


22/11/2018 E34 185 17:13 53 47,0940 61 49,4560 427

SBE+RINKO+ADCP SUP

22/11/2018 E34 186 17:34 53 47,2830 61 49,6120 450


22/11/2018 E34 186 17:48 53 47,4190 61 49,8900 450


22/11/2018 E34 186 18:10 53 57,5200 61 50,0900 450


22/11/2018 E34 187 18:26 53 47,6900 61 50,1600 403


22/11/2018 E34 188 18:29 53 47,7100 61 50,2600 403


22/11/2018 E34 189 18:36 53 47,7200 61 50,3800 403


22/11/2018 E34 190 18:43 53 47,7200 61 50,5400 406



22/11/2018 E34 190 18:49 53 47,7000 61 50,6600 406

Red Minibongo 1 SUP

22/11/2018 E34 191 18:54 53 47,6900 61 50,7500 409



22/11/2018 E34 191 19:07 53 47,7500 61 50,6100 409

Red Minibongo 2 SUP

22/11/2018 E34 192 19:12 53 47,8100 61 50,5300 400



22/11/2018 E34 192 19:28 53 47,9600 61 50,3200 400

Red Minibongo 3 SUP. Se repite

22/11/2018 E34 193 19:32 53 48,0000 61 50,2900 403


22/11/2018 E34 193 19:38 53 48,0500 61 50,2300 403


22/11/2018 E34 193 19:45 53 48,1100 61 50,1400 403



97


(GMT)



(m) Án

gulo


22/11/2018 E34 194 20:45 53 46,5760 61 50,1070 394

SBE+RINKO+ADCP AGUA

22/11/2018 E34 194 21:02 53 46,4920 61 50,0820 394


22/11/2018 E34 194 21:12 53 46,3920 61 50,0950 370

SBE+RINKO+ADCP SUP

22/11/2018 E34 195 22:57 53 46,8360 61 50,2500 444

SBE+RINKO+ADCP AGUA

22/11/2018 E34 195 23:14 53 47,0050 61 50,1150 435


22/11/2018 E34 195 23:29 53 47,1530 61 49,9950 448

SBE+RINKO+ADCP SUP

22/11/2018 E34 196 23:36 53 47,2100 61 49,9250 457


22/11/2018 E34 197 23:39 53 47,2370 61 49,9140 457


22/11/2018 E34 198 23:45 53 47,2870 61 49,8550 460


22/11/2018 E34 199 23:58 53 47,4400 61 49,8105 435


23/11/2018 E34 199 0:12 53 47,5620 61 49,6280 425


23/11/2018 E34 199 0:28 53 47,7520 61 49,4180 425


23/11/2018 E34 200 0:44 53 48,0510 61 49,3430 425


23/11/2018 E34 200 0:45 53 48,0600 61 49,3440 425


23/11/2018 E34 200 0:46 53 48,0840 61 49,3450 383

Red Minibongo 1 SUP. Se repite, salió enredada

23/11/2018 E34 201 0:48 53 48,1330 61 49,3370 383


23/11/2018 E34 201 0:50 53 48,1660 61 49,3260 383


23/11/2018 E34 201 0:52 53 48,1970 61 49,3150 383


23/11/2018 E34 202 0:54 53 48,2120 61 49,3030 380



23/11/2018 E34 202 1:06 53 48,5020 61 49,2010 380

Red Minibongo 2 SUP

23/11/2018

203 02:30 55 5,4050 66 9,3990 67

DROPCAM Se recuperó a las 7:30 (hora local)

24/11/2018 E01 204 18:08 54 53,3340 66 47,2280 210

SBE+RINKO+ADCP AGUA


98


(GMT)



(m) Án

gulo


24/11/2018 E01 204 18:16 54 53,4000 67 46,9410 210


24/11/2018 E01 204 18:26 54 53,3950 67 46,7240 210

SBE+RINKO+ADCP SUP

24/11/2018 E01 205 18:40 54 53,4590 67 46,2970 175


24/11/2018 E01 206 18:46 54 53,4910 67 46,1710 170


24/11/2018 E01 207 18:54 54 53,5750 67 45,9440 197


24/11/2018 E01 208 18:57 54 53,5970 67 45,8240 197


24/11/2018 E01 209 19:02 54 53,5940 67 45,6070 180


24/11/2018 E01 210 19:10 54 53,6220 67 45,3860 182


24/11/2018 E01 210 19:14 54 53,6550 67 45,2680 184


24/11/2018 E01 210 19:19 54 53,6880 67 45,1680 186

Red Minibongo 1 SUP

24/11/2018 E01 211 19:24 54 53,7310 67 45,0950 208



24/11/2018 E01 211 19:27 54 53,7360 67 44,9070 206

Red Minibongo 2 SUP

24/11/2018 E00 212 21:50 54 50,8940 68 5,9270 147

SBE+RINKO+ADCP AGUA

24/11/2018 E00 212 21:56 54 50,9390 68 5,7540 147


24/11/2018 E00 212 22:02 54 50,0000

SBE+RINKO+ADCP SUP

24/11/2018 E00 213 22:15 54 51,0270 68 5,4610 150


24/11/2018 E00 214 22:19 54 51,0600 68 5,4150 150


24/11/2018 E00 215 22:23 54 51,0900 68 5,3120 148


24/11/2018 E00 216 22:27 54 51,1090 68 5,2620 149


24/11/2018 E00 217 22:32 54 51,1380 68 5,1760 150


24/11/2018 E00 218 22:56 54 50,8660 68 5,9330 146



24/11/2018 E00 218 23:07 54 50,9740 68 5,7670 146

Red Minibongo 1 SUP


99


(GMT)



(m) Án

gulo


24/11/2018 E00 219 23:11 54 51,0060 68 5,6900 146



24/11/2018 E00 219 23:14 54 51,0100 68 5,6230 146,7

Red Minibongo 2 SUP


100

ANEXO III. Agradecimientos

En nombre de la coordinación de la campaña, queremos agradecer a la gestión del Área Marina Protegida Namuncurá – Banco Burdwood, al CONICET, a la UNIHDO y a la Armada Argentina por el apoyo financiero y logístico para poder llevar a cabo esta campaña. Hacemos extensivo el agradecimiento al personal del Centro Austral de Investigaciones Científicas (CADIC) que de alguna u otra manera colaboró en la planificación, ejecución y logística de la misma, en especial a Gustavo Ferreyra, Luciana Riccialdelli, Mariano Diez, Olga Florentín, Mariano Sánchez, Marcela Riggio, Natalia Farfan y Silvia Pincol. Agradecimientos y valoraciones particulares de los participantes

Guido Bertola En primer lugar queremos expresar nuestra gratitud al Lic. Alejandro Martínez por la invalorable ayuda en cada uno de los muestreos realizados para concretar este proyecto. Agradecemos también a la tripulación de la Armada Argentina del Buque Oceanográfico Austral por las tareas realizadas a bordo y por su entera predisposición para la concreción de esta campaña. Un profundo agradecimiento a la Dra. Natalia Dellabianca por su fuerte compromiso y dedicación como Jefa Científica y a la Dra. Clara Iachetti, por su trabajo incansable a bordo.

Andrea Malits Agradezco a la Jefa Científica Natalia Dellabianca, a la Coordinadora Científica Irene R. Schloss y al Coordinador GT Banco Burdwood Gustavo A. Lovrich su buena disposición en la preparación de la campaña y durante la misma, a la tripulación del BO Austral por su constante apoyo y a los compañeros científicos que ayudaron en las tareas de muestreo.

Maite Latorre-Clara Iachetti Las prestaciones del Buque fueron muy buenas, en términos de espacio, estabilidad y equipamiento para el desarrollo de las actividades previstas. La convivencia en el barco y el trabajo en equipo fueron muy amenos y se logró un intercambio valioso entre distintos grupos de investigación para abordar los objetivos de dicha campaña. Por último, es oportuno agradecer a la Jefa Científica Natalia Dellabianca por su arduo trabajo para que todos pudiéramos cumplir nuestros objetivos, fomentando el trabajo en equipo y asegurando las condiciones óptimas para que la convivencia entre científicos y la tripulación sea exitosa.

Jacobo Martin Quiero agradecer a todos los participantes, tripulación, oficiales y personal científico por su apoyo. En particular a Gonzalo Bravo por su ayuda determinante en las tareas a bordo y preparativos en tierra y al Capitán Leopoldo Acuña, Jefe de Operaciones y Teniente Lucas Salcedo, Jefe de Gabinetes, así como todos los oficiales y personal de CTD/cubierta, por su importante apoyo en las maniobras y puesta a punto del instrumental. Gracias al Dr. Gustavo Lovrich, coordinador de las investigaciones en el AMP N/BB por hacer todo esto posible.

Daniel Bruno-Claudia Boy Queremos agradecer enormemente a Alex Martínez, Guido Bértola y Natalia Dellabianca por la colecta de las muestras a bordo.

Natalia Dellabianca Quiero agradecer muy especialmente al Comandante Capitán de Fragata Juan Ignacio Schillaci, al Segundo Comandante CF Sergio Ciminari, al Jefe de Operaciones Capitán de Corbeta Leopoldo Acuña y a toda la tripulación del ARA Austral por la gran predisposición que tuvieron


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para que pudiéramos realizar la mayor cantidad de actividades posibles y principalmente por preocuparse en generar un excelente clima de convivencia a bordo. En particular me gustaría destacar el compromiso que tuvieron Leopoldo, los tenientes Lucas Acosta Salcedo y Bruno Canela y todo el personal de cubierta para que se concretaran los objetivos planteados en la campaña, trabajando junto a la tripulación científica como un verdadero equipo. Un profundo agradecimiento a Irene Schloss y Gustavo Lovrich, coordinadores científicos de la campaña y del grupo de trabajo del AMP N-BB, respectivamente, por todas las horas invertidas en planificar y coordinar esta campaña, por el fuerte compromiso para que la misma se realice de la mejor manera posible y por la confianza depositada. Gracias, muchas gracias a Clara Iachetti, por su gran ayuda en la logística previa a la campaña, por su dedicación durante la ejecución de la misma y por el apoyo invaluable en la co-coordinación a bordo. Finalmente, quiero expresar toda mi gratitud al grupo de científicos a bordo por su enorme entrega, por trabajar como equipo, por ayudarse y cuidarse entre todos, y por hacer tangible que la unión hace la fuerza.

¨campaña amp namuncurá banco burdwood: comprendiendo la

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