manual cultivos. final
Post on 23-Oct-2015
271 Views
Preview:
TRANSCRIPT
UNIVERSIDAD NACIONAL
FACULTAD DE CIENCIAS DE LA TIERRA Y EL MAR
ESCUELA DE CIENCIAS AGRARIAS
LABORATORIO DE NEMATOLOGÍA
“NEMATODOS FITOPARÁSITOS
ASOCIADOS A CULTIVOS AGRÍCOLAS DE COSTA RICA”
PROYECTO # 23756
M.Sc ALEJANDRO ESQUIVEL HERNÁNDEZ
Lic. WALTER PERAZA PADILLA
AVANCE 85 %
2010
_____________________________________________________________________________
Nematodos Fitoparásitos Asociados a Cultivos Agrícolas de Costa Rica. 2
INDICE
INTRODUCCIÓN ............................................................................................................. 4
JUSTIFICACION .............................................................................................................. 4
RECOLECCION DE MUESTRAS DE SUELO ................................................................. 5
MANEJO Y CUIDADO DE LAS MUESTRAS ................................................................... 8
METODOS DE EXTRACCIÓN ......................................................................................... 9
EMBUDO DE BAERMAN ........................................................................................... 10
TÉCNICA DE CENTRIFUGACIÓN-FLOTACIÓN ....................................................... 13
EXTRACCIÓN DE NEMATODOS DE MATERIAL VEGETAL ........................................ 18
FIJACIÓN DE ESPECIMENES ...................................................................................... 19
MONTAJE DE ESPECIMENES EN LÁMINAS COBB .................................................... 22
CARACTERISTICAS GENERALES DE LOS NEMATODOS ......................................... 27
HABITOS ALIMENTICIOS DE LOS NEMATODOS ....................................................... 28
SÍNTOMAS ..................................................................................................................... 29
ANALISIS DE MUESTRAS E INTERPRETACION ........................................................ 30
LABORATORIO DE NEMATOLOGIA ......................................................................... 32
FORMULARIO PARA INGRESO DE MUESTRAS DE LABORATORIO ........................ 32
INFORMACIÓN DE CAMPO ......................................................................................... 32
RECOLECCION DE DATOS .......................................................................................... 35
CULTIVOS MUESTREADOS ......................................................................................... 36
FRUTALES ................................................................................................................. 36
HORTALIZAS ................................................................ ¡Error! Marcador no definido.
TUBÉRCULOS .............................................................. ¡Error! Marcador no definido.
ORNAMENTALES ......................................................... ¡Error! Marcador no definido.
PASTOS ........................................................................ ¡Error! Marcador no definido.
PALMAS ..................................................................................................................... 38
GRANOS BÁSICOS ...................................................... ¡Error! Marcador no definido.
CULTIVOS TRADICIONALES ....................................... ¡Error! Marcador no definido.
ZONAS MUESTREADAS (MAPA DE DISTRIBUCCIÓN) . ¡Error! Marcador no definido.
COLECCION DE REFERENCIA .................................................................................... 39
PRINCIPALES NEMATODOS ASOCIADOS A CULTIVOS AGRÍCOLAS
DE COSTA RICA ........................................................................................................... 39
_____________________________________________________________________________
Nematodos Fitoparásitos Asociados a Cultivos Agrícolas de Costa Rica. 3
Peltamigratus .............................................................................................................. 54
Aphelenchus ............................................................................................................... 40
Aphelenchoides .......................................................................................................... 41
Criconemoides ............................................................................................................ 43
Discocriconemella ....................................................................................................... 45
Ditylenchus sp. ........................................................................................................... 49
Meloidogyne exigua .................................................................................................... 69
Aphelenchoides ritzemabosi ....................................................................................... 69
Aphelenchoides besseyi ............................................................................................. 69
Criconemella spp. ....................................................................................................... 69
Hirschmaniella oryzae ................................................................................................ 70
Meloidogyne arenaria ................................................................................................. 70
Meloidogyne exigua .................................................................................................... 70
Meloidogyne incógnita ................................................................................................ 70
Meloidogyne salassi ................................................................................................... 70
Pratylenchus zeae ...................................................................................................... 70
Aphelenchus sp. ......................................................................................................... 70
Aphelenchoides ritzemabosi ....................................................................................... 70
Helicotylenchus spp. ................................................................................................... 70
Meloidogyne incognita ................................................................................................ 70
Xiphinema spp. ........................................................................................................... 70
Xiphinema spp. ........................................................................................................... 71
Meloidogyne arabicida ................................................................................................ 71
Longidorus spp. .......................................................................................................... 71
Meloidogyne incognita ................................................................................................ 71
Pratylenchus zeae ...................................................................................................... 71
_____________________________________________________________________________
Nematodos Fitoparásitos Asociados a Cultivos Agrícolas de Costa Rica. 4
INTRODUCCIÓN
os nematodos son organismos en forma de gusano que se encuentran prácticamente
en todos los hábitat de la Tierra. Comprenden uno de los grupos más ricos en especies
del reino animal y, en términos de abundancia, constituyen uno de los grupos más
numerosos, pues pueden encontrarse hasta 20.000.000 de individuos por metro
cuadrado de suelo. Los nematodos tienen gran impacto en la economía mundial, ya que
son parásitos de cultivos agrícolas que proveen a la humanidad de alimento, fibra,
madera, así como de plantas de uso ornamental. Además son parásitos de
vertebrados, siendo responsanbles de enfermedades importantes en el ser humano y en
animales domésticos. Los nematodos que parasitan insectos tienen hoy día un enorme
potencial como agentes de control biológico de plagas insectiles.
Otros nematodos, llamados de vida libre, contribuyen a la sostenibilidad de la biosfera
manteniendo la fertilidad de los suelos a través del reciclaje de nutrientes. Se ha
demostrado que las comunidades de nematodos responden en forma diferencial a las
alteraciones del ambiente, razón por la cuál hoy día, se ha puesto enorme interés en el
estudio de los nematodos de vida, como bioindicadores del estado de salud de los
suelos y sedimentos acuáticos.
JUSTIFICACION
ctualmente se han descrito unas 25.000 especies de nematodos de las cuáles unas
4000 especies son fitófagas (nematodos que se alimentan del citoplasma de las células
vegetales). La importancia económica de muchas especies aún se desconoce, sin
embargo, un estudio reciente a nivel mundial, reveló que las pérdidas atribuibles a
nematodos fitoparásitos está en el orden de $ 100 billones anuales, lo que equivale
aproximadamente entre un 12 a un 15 % de pérdida del total de la producción. Sin
embargo, otros autores argumentan que el impacto económico de los nematodos es
probablemente mucho mayor, debido a que los síntomas que causan en las plantas no
son específicos y en muchos casos pasan desapercibidos o asignados erróneamente a
otros patógenos o condiciones inadecuadas del suelo.
L
A
_____________________________________________________________________________
Nematodos Fitoparásitos Asociados a Cultivos Agrícolas de Costa Rica. 5
Costa Rica no cuenta con datos de pérdidas agrícolas debido a los nematodos, sin
embargo, su importancia como agentes patógenos se deduce parcialmente de la
importación anual de nematicidas, que super las 4700 toneladas de ingrediente activo
en el periodo 2000 -2004 (Ramírez, 2006) para combatir problemas de nematodos en
banano, café, ornamentales, hortalizas y otros. En Costa Rica aunque sabemos la
existencia e importancia económica de algunos nematodos fitoparásitos vg Radopholus
similis en banano, Rhadinaphelenchus cocophilus en palma aceitera y Meloidogyne sp,
Pratylenchus sp en café y ornamentales entre otros, ciertamente carecemos de
información sobre la diversidad de especies fitoparásitas asociadas a la mayoría de
cultivos de importancia agrícola. Según Luc, Sikora & Bridge (1991) un primer paso en
países, en dónde aún se carece de mucha información, es la determinación de los
géneros y especies que ocurren en los cultivos, además de poder establecer su
patogenicidad. El objetivo del presente manual es poner a disposición de estudiantes de
agronomía, profesionales y productores, información general de los nematodos que
ocurren con frecuencia en los cultivos, de tal manera que constituya un elemento de
capacitación, y ayude a la toma oportuna de decisiones, para un manejo adecuado de
problemas nematológicos.
RECOLECCION DE MUESTRAS DE SUELO
as muestras de suelo para análisis de nematodos pueden ser recolectadas con
varios tipos de herramientas. Sin embargo, el barreno Oakfield (tubo de metálico de 2.2
cm de diámetro interno por 30 centímetros de profundidad) es la herramienta
recomendada, ya que la cantidad de suelo que remueve en cada punto de muestreo es
de tamaño uniforme, lo que es sumamente importante cuando se realizan muestreos
con carácter cuantitativo. No obstante, cuando las características del terreno o
disponibilidad de equipo no lo permiten, se puede utilizar un palín o pala de mano,
procurando hasta dónde sea posible, remover cantidades equivalentes de suelo en cada
punto de muestreo (figura 1).
L
_____________________________________________________________________________
Nematodos Fitoparásitos Asociados a Cultivos Agrícolas de Costa Rica. 6
Figura 1. Muestreo en suelo desnudo con barreno tipo Oakfiled (A); muestreo con palín
de jardinería en la zona de crecimiento radical (B). El uso de un recipiente de volumen
conocido permite tomar unidades de muestreo uniforme en cada uno de los puntos de
muestreo seleccionados.
La precisión del muestreo aumenta conforme se incrementa el número de muestras; en
el caso de áreas muy grandes es recomendable dividir el terreno en áreas pequeñas y
muestrearlas individualmente. La distribución espacial de los nematodos en el campo es
típicamente agregada, por lo que no es recomendable la recolección de una muestra
aislada en el campo para el análisis nematológico. Se requiere que el muestreo brinde el
nivel requerido de información al menor costo posible, lo cual se logra mediante un
muestreo sistemático, tomando una muestra compuesta de 20 a 50 sub-unidades
(barrenazos) por hectárea (figura.2). El número de barrenazos (submuestras) dependerá
del conocimiento previo que se tenga del patrón de distribución espacial del nematodo
de interés.
A B
_____________________________________________________________________________
Nematodos Fitoparásitos Asociados a Cultivos Agrícolas de Costa Rica. 7
Figura 2. Muestreo sistemático en zig – zag. Las estrellas representan el sitio de
recolección de la muestra. Para
una de hectárea de terreno lo recomendable es la recolección de 20-30 sub unidades de
muestreo (barrenazos).
La mayor densidad de nematodos fitoparásitos se ubica en la zona de crecimiento
radical (rizosfera) de las plantas, por lo que es recomendable tomar las muestras de
suelo entre los 5 y 30 cm de profundidad. En campos agrícolas, el perfil de suelo entre
los 0 y 5 cm de profundidad, esta sujeto a variaciones diarias de temperatura y
humedad, factores que influyen directamente en la densidad de nematodos fitoparásitos.
Si el muestreo se lleva a cabo en presencia del cultivo, es recomendable incluir
muestras de raíz para su respectivo análisis. Otro aspecto importante a considerar al
momento del muestreo, es la humedad del suelo ya que la sobrevivencia de los
nematodos decrece considerablemente en suelos secos o saturados.
Una vez recolectada la muestra, se debe agregar una etiqueta con toda la información
pertinente (número de identificación, localidad, cultivo, fecha de recolección y colector).
_____________________________________________________________________________
Nematodos Fitoparásitos Asociados a Cultivos Agrícolas de Costa Rica. 8
La etiqueta debe colocarse preferiblemente fuera de la bolsa (figura 3), o en su defecto
adentro de la bolsa, pero protegida en una bolsa plástica más pequeña con la finalidad
de evitar que la etiqueta se deteriore por la humedad. Es recomendable anotar la
información con lápiz o con marcador especial, dado que los lapiceros y marcadores
corrientes, la tinta se corre con la humedad y podría hacer ilegible la información.
Figura 3. Muestra de suelo, mostrando una etiqueta de cartulina con la información
básica requerida en el laboratorio.
MANEJO Y CUIDADO DE LAS MUESTRAS
l manejo y cuidado de la muestra entre la recolección y el proceso de
extracción, es un aspecto que no se debe descuidar. El período de almacenamiento
debe ser en lo posible muy corto, sin embargo, cuando se esta en sitios alejados y la
muestra no puede ser enviada en forma inmediata al laboratorio, los dos parámetros
más importantes que se deben cuidar durante el almacenamiento y transporte son la
temperatura y la humedad.
Para evitar el secado y mantener la humedad, es recomendable empacar las
muestras (suelo o raíces) en bolsas plásticas bien cerradas; nunca exponiéndolas
directamente al sol o en contacto con equipos que generen temperaturas elevadas. Lo
E
_____________________________________________________________________________
Nematodos Fitoparásitos Asociados a Cultivos Agrícolas de Costa Rica. 9
más recomendable es almacenarlas en cajas o contenedores térmicos (figura 4).
Algunos estudios han demostrado que el uso de cajas de estereofón o hieleras, permite
recuperar hasta 3 veces más especimenes, en relación a muestras almacenadas en
contenedores no aislados. Muestras vegetales (raíces, tallos, bulbos, etc) se pueden
almacenar por unos días en el refrigerador a una temperatura entre 5 – 7 grados Celsius
Un manejo inapropiado durante el transporte, almacenamiento y extracción,
puede ocasionar un alto porcentaje de mortalidad, dando como resultado datos
equivocados en relación a las densidades de población, lo que puede incidir
directamente en un manejo oportuno del problema.
Figura 4. Almacenamiento y envío de muestras al laboratorio en un contenedor de
aislamiento térmico (hielera).
METODOS DE EXTRACCIÓN
ay varios métodos de extracción de nematodos usados en forma rutinaria en los
laboratorios de nematologia. La selección del método de extracción depende de varios
factores: objetivo del estudio, eficiencia deseada, equipo disponible y condición de la
muestra entre otros. Hay que tener presente que ningún método de extracción
disponible hoy día, es capaz de remover el 100 % de los nematodos presentes en la
muestra, por lo que hay elegir aquel con las menores deficiencias. Con la finalidad de
H
_____________________________________________________________________________
Nematodos Fitoparásitos Asociados a Cultivos Agrícolas de Costa Rica. 10
determinar las poblaciones de nematodos en un cultivo dado, es de suma importancia
contar con un laboratorio de referencia, donde se utilice una técnica estándar de
extracción. Cuando se envían muestras cruzadas a distintos laboratorios, se debe tener
presente, que los métodos de extracción pueden variar y como consecuencia el
resultado final.
Hay dos procesos básicos mediante los cuales los nematodos pueden ser removidos
del suelo o del material vegetal. Uno de ellos depende de la movilidad de los
nematodos para su extracción, mientras que el otro es capaz de extraer formas inactivas
y estados no móviles, mediante una corriente de agua ascendente, o por medio de una
solución de gravedad específica superior a los fluidos del nematodo. Todas las técnicas
de extracción están basadas en estos procesos o combinación de ambos, lo importante
es elegir el método adecuado de acuerdo con los objetivos del estudio. Algunas técnicas
de extracción utilizadas en algunos laboratorios son las siguientes: embudo de
Baerman, técnica de cribado y centrifugación en solución azucarada, método de cribado
y decantación de Cobb, elutriador de Oostenbrink, aparato de Fenwick para extracción
de quistes, etc.
A continuación se describe y discute dos métodos de extracción muy utilizados
rutinariamente en los laboratorios de nematología: embudo de Baerman y la técnica de
cribado y centrifugación en solución azucarada.
EMBUDO DE BAERMAN
n buen ejemplo, en donde se requiere que los nematodos se muevan a través de la
muestra para su extracción, es el embudo de Baermann. Existen varias modificaciones
del método original, en donde básicamente han sido reemplazados algunos
componentes por otros más eficientes.
Los requerimientos básicos de esta técnica consisten en un embudo de vidrio o
de plástico de tamaño mediano. En su parte inferior se le ajusta una manguera de hule
suave, que se cierra mediante una pinza de presión tipo mohr. El embudo se coloca en
un soporte y se llena con agua potable. Posteriormente, pequeñas cantidades de suelo
U
_____________________________________________________________________________
Nematodos Fitoparásitos Asociados a Cultivos Agrícolas de Costa Rica. 11
(50 – 100 cc), material vegetal u otro tipo de materia orgánica, son colocadas dentro de
una bolsa de tela porosa o papel, la cual se sumerge suavemente en el agua del
embudo. Una de las variantes que se puede implementar consiste en colocar a pocos
milímetros del borde superior del embudo, un cedazo o malla de alambre cuya función
es soportar la muestra, la que es vertida sobre tela o papel, cuya consistencia, textura y
porosidad puede variar (figura 5).
Figura 5. Embudo de Baerman mostrando sus principales componentes.
La técnica del embudo de Baermann modificado según Christie y Perry, (figura 6)
consiste en suspender el suelo en un determinado volumen de agua, y después de un
corto período de reposo, la suspensión se vierte sobre un juego superpuesto de cribas
de 100 y 400 mallas. El suelo retenido en la criba más fina, se transfiere a un cilindro
con fondo de tela, que posteriormente se coloca en el embudo. Después de 24 a 48
horas, todas las formas activas de nematodos han pasado a través de la tela o papel y
pueden ser recogidas en un pequeño volumen de agua al retirar la pinza mohr de la
manguera.
_____________________________________________________________________________
Nematodos Fitoparásitos Asociados a Cultivos Agrícolas de Costa Rica. 12
Figura 6. Método de extracción de nematodos mediante la técnica de embudo de
Baerman modificado.
Entre las ventajas de este método están el bajo costo y lo portabilidad del equipo,
mientras que dentro de las desventajas se pueden citar la dependencia del método de la
movilidad de los nematodos, que difiere entre especies y estados del ciclo de vida, la
cual además puede ser afectada desde que la muestra es tomada en el campo.
La carencia de oxígeno, especialmente en la base del embudo donde los
nematodos son colectados y el problema de que estos se alojan en las paredes
inclinadas del mismo, son otras desventajas del método. Sin embargo, estos
inconvenientes pueden ser superados, sustituyendo el embudo por una palangana
pequeña y colocando la muestra en el papel toalla o tela dentro de un cilindro de PVC
de 17 cm de diámetro con fondo de malla. Es importante sujetar al fondo del cilindro de
PVC un par de alambres, la separación de unos milímetros del fondo de la palangana,
1. Submuestra de
100 cc de suelo. 2. Dos lavados, permitiendo 30 s de suspensión.
3. Tamizado a través de dos tamices de 100
y 400 mallas
4. Suelo a un cilindro de “PVC” con un fondo de tela.
5. El cilindro se coloca en el embudo de Baermann procurando que el papel
haga contacto con el agua
_____________________________________________________________________________
Nematodos Fitoparásitos Asociados a Cultivos Agrícolas de Costa Rica. 13
favorece el paso de los nematodos a través del papel filtro. La palangana debe de
contener un volumen de agua suficiente que haga contacto con la muestra colocada en
el papel filtro (figura 7). Todas las formas activas de nematodos son recuperadas
después de 18 a 24 horas. La eficiencia del método depende entre otras cosas, de la
movilidad de los nematodos y el tipo papel filtro o tela utilizada.
Figura 7. A) Cilindro de PVC con fondo de malla y dos alambres, palangana plástica,
papel filtro, B) Bandeja ensamblada y C) Bandeja ensamblada con muestra de suelo.
TÉCNICA DE CENTRIFUGACIÓN-FLOTACIÓN
a técnica fue introducida por Caveness y Jensen (1955), quienes mezclaron y
centrifugaron pequeñas muestras de suelo (<4ml) con agua. Posteriormente mediante
una segunda centrifugación en solución de azúcar, los nematodos eran recuperados del
suelo. El principio de la técnica, es la recuperación de los nematodos por flotación,
mediante soluciones de gravedad especifica superior a los fluidos del nematodo. Por el
bajo costo, en la mayoría de laboratorios se utiliza soluciones preparadas con azúcar de
caña, sin embargo, soluciones de sulfato de magnesio y sulfato de zinc también pueden
ser utilizadas. Cuando se trata de suelos arcillosos, es recomendable agregar a la
muestra algún tipo de detergente (metafosfato de sodio, carbonato de sodio) que ayude
a la dispersión de las partículas de arcilla y favorezca la extracción de los nematodos.
De lo contrario muchos nematodos pueden quedar atrapados en los agregados del
suelo.
L
B C A
_____________________________________________________________________________
Nematodos Fitoparásitos Asociados a Cultivos Agrícolas de Costa Rica. 14
El estrés osmótico ocasionado por estas soluciones puede matar o distorsionar los
nematodos, por lo tanto es necesario enjuagarlos con suficiente agua para ayudar a la
recuperación. Actualmente la técnica, es utilizada rutinariamente en muchos
laboratorios, debido especialmente a que es efectiva para extraer huevos, estados
inmóviles, formas inactivas y nematodos muertos. Además es un método rápido, que
permite procesar y leer gran cantidad de muestras en pocas horas. Ligeras
modificaciones se pueden encontrar en la literatura, en relación al arreglo de los
tamices, número de lavados, tiempo y velocidad de centrifugación, y gravedad
específica de la solución extractora.
Procedimiento
1. Tomar una submuestra de suelo (100 gr) homogeneizado para la extracción de
nematodos. Se deben eliminar las raíces, piedras y cualquier otro desecho ( 8a).
2. Colocar la muestra en una cubeta y lavarla directamente bajo un chorro de agua a
presión, la cantidad de agua agregada no debe superar la mitad de la misma (8b y
8c)
3. La suspensión resultante se agita bien con una paleta de medera u otro utensilio y
se deja reposar alrededor de 30 – 45 segundos
4. Posteriormente se procede a decantar la solución sobre un juego de tamices
superpuesto de 100 y 400 mallas. La operación se puede repetir una vez más con
el suelo remanente en la cubeta (8 d y 8e)
5. Con la ayuda de un frasco lavador (pizeta) los residuos retenidos en la criba de 400
mallas se transfieren a tubos de centrifuga de 50 ml, con el cuidado de que éstos
una vez colocados en la centrifuga queden balanceados (8f).
6. Se procede a centrifugar de 3 a 4 minutos alrededor de 3000 r.p.m. Se decanta
cuidadosamente el sobrenadante y se agrega una solución de azúcar la que se
prepara pesando 484 gr. de azúcar de caña y aforando posteriormente con agua
corriente a un litro (8g, 8h, 8i).
7. Se resuspende nuevamente el suelo y se centrifuga a la misma velocidad por 3
minutos (8j)
_____________________________________________________________________________
Nematodos Fitoparásitos Asociados a Cultivos Agrícolas de Costa Rica. 15
8. El sobrenadante que contiene los nematodos es vertido sobre una criba de 400
mallas, y el exceso de azúcar adherida a los nematodos, es removido lavando con
suficiente agua. (8k, 8l). Por último, los nematodos recuperados, se transfieren a un
plato de conteo o siracuza para su examen (8m). Por medio de esta técnica se
pueden recuperar prácticamente todos los tipos de nematodos del suelo, y el
proceso entero puede realizarse en menos de 10 minutos.
a. Una vez homogenizada y cuarteada la submuestra se procede
a pesar 100 cc de suelo. b. La submuestra de 100 cc de suelo es colocada en un balde.
c. Se adiciona agua hasta llenar unos ¾ del balde con el objetivo de suspender la submuestra de suelo.
Deja en reposo de 30-45 s.
d. La suspensión es pasada a través de un juego de tamices supersupestos de 100 y 400
mallas respectivamente.
e. El movimiento constante del tamiz permite un mejor paso de la
suspensión de suelo.
f. Recoger en un tubo de ensayo los residuos retenidos en el tamiz de 400 mallas
_____________________________________________________________________________
Nematodos Fitoparásitos Asociados a Cultivos Agrícolas de Costa Rica. 17
Fig. 8. Extracción de nematodos por el método de tamizado y centrifugación azucarada.
g. Centrifugar durante 3 minutos a 3000 rpm.
h. Descartar el sobrenadante. i. Adicionar solución extractora a base de azúcar con una densidad específica de 1.18.
j. Centrifugar nuevamente 3 minutos a 3000 rpm.
k. Los nematodos son recuperados en un tamiz pequeño de 400 mallas.
l. Eliminar el exceso de azúcar por
lavado.
m. Finalmente, los nematodos recuperados se transfieren a una cajita de conteo.
EXTRACCIÓN DE NEMATODOS DE MATERIAL VEGETAL
lgunas de las técnicas ya discutidas pueden ser utilizadas para la extracción de
nematodos de material vegetal. Así por ejemplo, el empleo del embudo de Baermann o
el método de centrifugación-flotación son recomendables para la extracción de
nematodos endoparásitos migratorios.
El examen directo en el estereoscopio a baja magnificación, es otra técnica que
se emplea para pequeñas cantidades de material vegetal. La técnica es muy sencilla, y
consiste primero en lavar las raíces suavemente de todo resto de suelo. Posteriormente,
las raíces son trasladadas a placas petri, siracuzas o vidrios reloj, a los que previamente
se les ha adicionado una pequeña cantidad de agua. Con la ayuda de agujas de
disección, el material se va rasgando cuidadosamente para liberar a los nematodos. Los
nematodos liberados flotan y pueden ser recolectados con una microaguja o una
micropipeta. Al igual que con el suelo, previo al análisis, las raíces deben mantenerse a
una temperatura y humedad adecuada y examinarse tan pronto como sea posible.
La maceración de tejidos con ayuda de una licuadora es otra técnica adecuada
para la obtención de nematodos endoparásitos. Se toman aproximadamente 10 gr. de
raíces, se cortan en trozos de 2 a 3 cm de longitud y se colocan dentro de una
licuadora. Se agrega cierta cantidad de agua y dependiendo de la dureza del material,
se licua a máxima velocidad de 20 a 60 seg. La suspensión resultante se vierte sobre un
juego de cribas de 100 y 400 mallas. Los nematodos junto con los desechos vegetales
retenidos en la criba más fina, son trasladados al embudo de Baermann, en donde se
logra la separación final. Una vez macerado el tejido en la licuadora, otra opción es
extraer los nematodos con la técnica de centrifugación en solución azucarada, similar a
lo explicado para las muestras de suelo.
En la figura 9, se ilustran otras técnicas utilizadas en la extracción de nematodos.
El elutriador de Oostenbrink y el método de cribado y decantación de Cobb, se basan en
la velocidad de asentamiento de las partículas de suelo suspendidas en agua, respecto
a la de los nematodos.
A
_____________________________________________________________________________
Nematodos Fitoparásitos Asociados a Cultivos Agrícolas de Costa Rica. 19
Figura 9. Elutriador de Oostenbrink para la extracción de nematodos de suelo.
Equipo ubicado en el laboratorio
de nematología de la Escuela de Ciencias Agrarias de la Universidad Nacional.
FIJACIÓN DE ESPECIMENES
epediendo de los objetivos de la investigación, en ocasiones es necesario preservar
los nematodos en algún fijador para estudios posteriores. Los fijadores los podemos
dividir en dos grupos de acuerdo a su reacción con las proteínas solubres: 1) Fijadores
coagulantes como el etanol al 96 % y 2) Fijadores no coagulantes como la formalina y el
ácido acético glacial . El etanol tiene alto poder deshidrante y moderada penetración,
coagula muchas proteínas, pero no nucleoproteínas, tiene la desventaja que endureze y
encoge los tejidos tratados. El ácido acético tiene olor penetrante, es misible en agua y
etanol y precipita nucleoproteínas. Es utilizado en la preparación de fijadores
D
_____________________________________________________________________________
Nematodos Fitoparásitos Asociados a Cultivos Agrícolas de Costa Rica. 20
compuestos, por su capacidad de contrarestar el encogimiento producido por otros
reactivos. La formalina es un gas soluble en agua con alta capacidad de penetración y
preservación de proteínas, lípidos y glicógeno. Los mejores resultados de fijación, se
obtienen concentrando los nematodos en una pequeña cantidad de agua (2 ml) y
aplicandoles formalina caliente (80 a 90º C) al 4 %. Este procedimiento permite matar y
fijar los nematodos en un solo paso, además los nematodos se mantienen en buen
estado de conservación por tiempo indefinido. La formalina es muy utilizada en los
laboratorios de nematología, sin embargo, su manejo requiere de cierta precaución, ya
que se ha demostrado que es dañino para el ser humano. La figura 10, muestra paso a
paso el proceso de fijación de nematodos, el procedimiento ilustra el protocolo seguido
en el laboratorio de nematología de la Escuela de Ciencias Agrarias.
_____________________________________________________________________________
Nematodos Fitoparásitos Asociados a Cultivos Agrícolas de Costa Rica. 21
Cuadro 1. Algunos fijadores de mayor uso en nematología y su forma de
preparación
Fijador Reactivo Volumen Observaciones
TAF Trietanolamina
Formalina 40%
Agua destilada
2 ml
7 ml
91 ml
El fijador se mantiene
estable por largo tiempo y
los nematodos conservan
excelente aparaciencia para
estudios taxonómicos
FA 4:1 Formalina 4 %
Ácido acético glacial
Agua destilada
10 ml
1 ml
89 ml
Es un fijador que preserva
muy bien las estructuras de
los nematodos, sin
embargo, algunas de ellas
pueden decolarse con el
tiempo.
Formalina -Glycerol Formalina 4 %
Glycerol
Agua destilada
10 ml
1 ml
89 ml
Excelente fijador por su
capacidad de penetración y
preservación. Los
nematodos pueden
almacenarse por periodos
indefinidos de tiempo. Los
gases son dañinos para la
salud, requierendo capilla de
gases y equipo de
protección para su manejo.
Fig. 10. Proceso de fijación de nematodos con formalina caliente al 4 %. Por la toxicidad de la formalina es recomendable
realizar la fijación en una capilla de gases y con el equipo de protección requerido
2. La suspensión de nematodos se transfiere a un embudo de precipitación
3. Concentración de los nematodos en un pequeño volumen de agua. Se puede utilizar una bomba de vacío para acelerar el proceso.
4. Agregar formalina al 4% a una temperatura aproximada de 80 a 90 ºC.
1. Como primer paso, los nematodos recuperados se transfieren a un plato de conteo para su respectiva cuantificación.
5. Una fría la formalina, los nematodos fijados se pueden almacenar indefinidamente en viales con tapa hasta
su utilización.
MONTAJE DE ESPECIMENES
l estudio detallado de los nematodos requiere la preparación de láminas temporales,
semipermanentes o permanentes que faciliten la observación de las características más
relevantes de los especimenes.
Ciertas estructuras y órganos internos se obsevan mucho mejor en nematodos
vivos que en especimenes fijados, no obstante, la observación de las características se
torna difícil si el nematodo esta en movimiento. Una forma rápida que permite
resultados de alta calidad es la preparación de montajes temporales, sin embargo, las
observaciones deben hacerse en un periodo de tiempo muy corto, debido a la poca
estabilidad de estas preparaciones. La técnica consiste en trasnsferir el nematodo con
una microaguja a una gota de agua colocada previamente en un portaobjetos. Hay que
asegurarse de colocar el nematodo en el fondo y en el centro de la gota. Si el nematodo
es muy activo y presenta mucha movilidad, lo recomendable es pasar la preparación
suavemente por la flama del mechero de alcohol para inmovilizar, matar y relajar el
nematodo. Posteriomente se coloca el cubreobjetos para la observación al microscopio.
Las preparaciones se pueden sellar con esmalte transparente de uñas para una mayor
durabilidad de la lámina.
En ocasiones resulta conveniente la preparación de montajes
semipermanentes. Son muy útiles, cuando por la naturaleza de la investigación, es
necesario preservar los montajes de especímenes por más tiempo, que permite al
investigador realizar las mediciones, fotografías y dibujos de los nematodos
recolectados. Las preparaciones semipermanentes son especialmente útiles para la
enseñanza de la anatomía y morfología de los nematodos, ya que permite al profesor
hacer las preparaciones con cierta antelación. La técnica es similar a la explicada
anteriormente, la diferencia consiste en transferir el nematodo a una gota de lactofenol
azul o formalina como preservante, en lugar de agua. Posteriormente se coloca el
cubreobjetos y la preparación se puede sellar con parafina, esmalte de uñas o glycel. La
estabilidad y durabilidad de estas preparaciones puede ser de diás, semanas, meses o
E
_____________________________________________________________________________
Nematodos Fitoparásitos Asociados a Cultivos Agrícolas de Costa Rica. 24
incluso algunos años, no obstante, conforme pasa el tiempo ciertas estructuras tienden
a desvanerse y los montajes pierden la calidad deseada.
Los montajes permanentes son recomendados para mantener los especimenes en
colecciones de referencia en museos, universidades e institutos de investigación. Hay
que recordar que toda especie (animal o vegetal) descrita en la literatura y considerada
como válida, debe tener al menos un voucher de respaldo en alguna colección que
valide su existencia. La preparación de un montaje permante requiere de un
procemiento un poco más largo que describimos a continuación.
MÉTODO MODIFICADO DE SEINHORST
ste método ha sido utilizado por el laboratorio de nematología de la Escuela de
Ciencias Agrarias desde 1996. Los nematodos que se mantienen en la colección,
algunos de ellos con más de 10 años de almacenamiento, permancen en perfecto
estado. El método fue introducido por el Dr Seinhorst en 1959, algunas variantes se han
introducido al protocolo original, siendo lo correcto denominarlo “Método modificado
rápido de Seinhorst” . En resumen, el objetivo del procedimiento que se describe a
continuación, es transferir mediante un proceso lento los nematodos preservados en
formalina o cualquier otro fijador a glicerina pura. La densidad de la glicerina impide el
crecimiento de hongos o bacterias que puean deteriror al nematodo y los mantiene en
buenas condiciones por tiempo indefinido, siempre y cuando cada portaobjetos se
hayan sellado adecuadamente.
1. El primer paso es fijar los especimenes con formalina caliente al 4 %. También se
pueden utilizar otros fijadores como el TAF o el FA 4:1. Es recomendable
mantener los nematodos en viales bien cerrados al menos 2 semanas en el
fijador.
2. Mediante un proceso lento, el paso que sigue es remover la formalina del vial y
reemplazarla por una solución (S1) contituida por 20 % de etanol, 1 % de
glicerina pura anhydra y 79 % de agua destilada. Una técnica empleada para
remover la formalina, consiste en dejar los viales con nematodos en reposo por al
menos 1-2 horas, permitiendo que los nematodos se precipiten al fondo del vial.
E
_____________________________________________________________________________
Nematodos Fitoparásitos Asociados a Cultivos Agrícolas de Costa Rica. 25
Posteriomente con vacío se remueve ¾ partes de la formalina cuidando de no
perder los nematodos, agregando posteriormente S1. Los nematodos deben
permanecer en esta solución de 24 a 48 horas. El proceso se repite una vez mas,
de tal forma que se disminuya los residuos de formalina presentes, iniciando
simultánemamete la infiltración lenta de glicerina.
3. Al día siguiente se remueve nuevamente ¾ partes de la solución S1 y los viales
sin tapa se transfieren a un desecador o recipiente hermético que contenga en el
fondo alcohol al 95 %. Los viales no deben tener contacto directo con el alcohol,
por lo que es necesario colocar una plataforma o soporte adentro del desecador.
4. El desecador se coloca en una incubadora calibrada a 40 ºC durante 3 días. El
objetivo es aumentar la concentración de alcohol lentamente en los viales.
5. Trancurrido el tiempo indicado, el desecador se retira de la incubadora y el
contenido de los viales se transfiere a cajas petri de 5 cm. Cuando se manejan
varias muestras simultáneamente, es muy importante etiquetar cada vial y cada
caja petri con una pequeña colilla de papel.
6. Agregar a las cajas petri, solución (S2) constituida por 7 % de glicerina pura
anhydra y 93 % de etanol. Las cajas se mantienen destapadas a temperatura
ambiente y cuando se ha evaporado el 50 % de la solución, se procede agregar
solución (S3) con un porcentaje de glicerina pura anhydra del 30 % y 70 % de
etanol.
7. Dejar las cajas abiertas a temperatura ambiente para favorecer la evaporación
del alcohol. Cualquier remante de alcohol se puede eliminar colocando las cajas
petri en la incubadora a 40 ºC por un par de horas. Las cajas con los nematodos
en glicerina pura se deben guardar tapadas en un desecador con silica gel.
8. Los nematodos estan listos para hacer montajes permanentes en portaobjetos
convencionales o en laminillas de Cobb, mediante la técnica de anillo de parafina.
Cada lámina permanente debe de contener información básica necesaria para
su adecuado almacenamiento: número de recolecta, lugar de recolección, cultivo,
cantidad y sexo de los especimenes.
_____________________________________________________________________________
Nematodos Fitoparásitos Asociados a Cultivos Agrícolas de Costa Rica. 26
Fig.11. Reactivos (S1,S2 y S3), desecador e incubadora requeridos para el proceso de
infiltración de los nematodos en glicerina pura por el método rápido de Seinhorst.
1. En un mechero, se calienta un tubo de cobre
con mango de madera
3. Inmediatamente el tubo caliente con paraplast se coloca en el
portaobjetos.
2. Un vez caliente el tubo se coloca en paraplast o parafina
4. Lamilnilla de Cobb con anillo de
parafina terminado.
5. Nematodos en glicerina, se pescan con ayuda de una microaguja. .
6. El nematodo es transferido a una gotita de glicerina pura previamente colocada en el centro del anillo de parafina. Se coloca el cubrertaobjetos.
_____________________________________________________________________________
Nematodos Fitoparásitos Asociados a Cultivos Agrícolas de Costa Rica. 27
Figura 12. Ilustra la preparación de montajes permanentes mediante la técnica de anillo
de parafina. Los nematodos son montados en laminillas de Cobb o en su defecto en
portaobjetos de vidrio.
CARACTERISTICAS GENERALES DE LOS NEMATODOS
os nematodos comparten las siguientes características: vermiformes (forma de
gusano), son redondos en sección transversal, presentan simetría bilateral (cuerpo en
dos mitades idénticas), los nematodos fitoparásitos y de vida libre son hialinos
(transparentes), el cuerpo no es segmentado. Tienen seudoceloma (presencia de un
espacio lleno de líquido entre el tubo digestivo y la pared del cuerpo) y son tripoblastos
(presencia de ectodermo, mesodermo y endodermo). Algunas especies muestran un
dimorfismo sexual muy marcado (machos y hembras con formas diferentes) en dónde
las hembras adultas sufren de atrofia muscular, adquieren forma de pera, redonda o
ariñonada lo que les impide el movimiento. Una de las características que identifica a
un nematodo fitoparásito es la presencia de un estilete en la parte anterior del cuerpo
(cabeza), la cual es una estructura protráctil (que puede extenderse hacia afuera) y
hueca a manera de aguja hipodérmica que le permite al nematodo penetrar la raíz, así
como perforar las células vegetales y extraer sus nutrimentos. Los nematodos
fitoparásitos son de pequeño tamaño, oscilando entre los 250 micras los más pequeños
(Ej: Paratylenchus sp) a los 5 mm los de mayor tamaño (Ej : Longidorus sp) y de 15 a
30 micras de ancho. La pared del cuerpo de los nematodos está constituida por una
cutícula externa, una hipodermis y una capa de músculos somáticos. La cavidad interna
es un seudoceloma que está llena de un fluido viscoso en donde se encuentran el
L
7. En un plantilla caliente a 40 ºC se coloca la lámina hasta que el anillo de parafina se funda.
8. Montaje permanente terminado
_____________________________________________________________________________
Nematodos Fitoparásitos Asociados a Cultivos Agrícolas de Costa Rica. 28
sistema digestivo, reproductor, excretor y nervioso. El movimiento del fluido
seudocelomático dentro de la cavidad corporal, lleva a cabo las funciones de
respiración y circulación. En la figura 11 a, 11 b y 11 c se ilustra algunas características
de los nematodos.
Figura 13. Algunas de las características de los nematodos. A) Estilete, B) región genital
de la hembra (vulva) y C) región genital del macho (espícula).
HABITOS ALIMENTICIOS DE LOS NEMATODOS
os nematodos que se alimentan de las plantas son parásitos obligados. Esto significa
que requieren de un hospedero susceptible con raíces sanas para que puedan llevar a
cabo las funciones de alimentación, reproducción y crecimiento. La población tiende a
decrecer en la medida que el sistema radical se deteriora. De acuerdo a la forma como
los nematodos se alimentan de sus hospederos se pueden clasificar en tres grupos: a)
nematodos ectoparásitos, b) nematodos semiendoparásitos y c) nematodos
endoparásitos. Los nematodos ectoparásitos no penetran al interior de los tejidos de la
planta, obtienen su alimento perforando las células vegetales con el estilete, que es una
estructura ubicada en la parte anterior del cuerpo y funciona a manera de aguja
hipodérmica. En general los nematodos ectoparásitos tienen estiletes largos y la
profundidad a la que pueden alimentarse depende de la longitud del mismo (Ejemplos:
Hemicycliophora sp y Criconemella sp). Los nematodos semi-endoparásitos se
caracterizan por que sólo introducen la parte anterior de su cuerpo en la raíz, la sección
posterior se mantiene en el suelo (Ejemplos: Rotylenchulus sp y Tylenchulus sp). Los
nematodos endoparásitos penetran totalmente la raíz, se alimentan, crecen, maduran y
depositan los huevos dentro de la raíz o unidos a ésta. Estos nematodos se dividen en
dos grupos: endoparásitos migratorios y endoparásitos sedentarios. Los primeros se
L
A C B
_____________________________________________________________________________
Nematodos Fitoparásitos Asociados a Cultivos Agrícolas de Costa Rica. 29
introducen por completo dentro de la raíz, se desplazan a través del tejido
alimentándose conforme se movilizan (Ejemplos: Pratylenchus sp y Radopholus similis)
mientras que en el segundo grupo, los nematodos tienen un sitio fijo de alimentación,
pierden la movilidad y adquieren forma periforme o globosa (Ejemplos: Meloidogyne sp
y Heterodera sp). En la figura 14 se ilustra los hábitos alimenticios de varios nematodos
fitoparásitos.
Figura 14. Ampliación de un pelo radical mostrando los distintos hábitos alimenticios de
los nematodos fitoparásitos. A) nematodo ectoparásito, B) nematodo endoparásito
migratorio, C) nematodo endoparásito sedentario y D) nematodo semiendoparásito
SÍNTOMAS
os nematodos fitoparásitos, al alimentarse de las raíces de las plantas, pueden causar
daños destructivos de las células por acción mecánica o enzimática, daños adaptativos
por modificación de las células del hospedero y daños neoplásticos que inducen a
crecimiento de nuevo tejido. La planta se ve afectada cuando los nematodos se
encuentran en altas densidades, provocando un deterioro paulatino del sistema radical,
L
A
B
C D
_____________________________________________________________________________
Nematodos Fitoparásitos Asociados a Cultivos Agrícolas de Costa Rica. 30
el cuál se manifiesta en la parte aérea de la planta de distintas maneras: pobre
crecimiento, marchitez generalizada, baja producción, clorosis, defoliación, caída
prematura de flores y frutos. A nivel de raíces es posible observar raíces cortas y
engrosadas, necrosis, ramificación anormal y agallas o nódulos radicales (figuras 15 a
y 15 b). Los síntomas varían de acuerdo al tipo de nematodo presente y susceptibilidad
del cultivo, sin embargo, a nivel de campo los síntomas causados por nematodos son
difíciles de distinguir, ya que fácilmente se pueden confundir con síntomas causados por
otros patógenos de suelo o factores abióticos. En este sentido, es indispensable tomar
muestras de suelo y raíz de las plantas afectadas y enviarlas a un laboratorio
competente para su respectivo análisis. El diagnóstico debe ser comprobado en el
laboratorio y fundamentarse en el tipo de nematodo y densidad poblacional detectada
en el suelo como en las raíces. Los síntomas producidos por especies que afectan la
parte aérea de la planta como tallos y hojas (figura 15 c), son más específicos y
generalmente están asociados con la presencia de una sola especie de nematodo, lo
que contrasta con lo que sucede en el suelo, en dónde varios géneros y especies
pueden simultáneamente parasitar la misma planta hospedera.
Figura 15. Agallas radicales causadas por Meloidogyne sp (A); necrosis de rizoma
causado por Pratylenchus sp (B); Manchas necróticas foliares en frijol causadas por
Aphelenchoides besseyi.
ANALISIS DE MUESTRAS E INTERPRETACION
n principio, ningún productor o empresa debería implementar el control de nematodos
en un determinado cultivo, si desconoce que nematodos están presentes y en que
E
A B C
A B C
_____________________________________________________________________________
Nematodos Fitoparásitos Asociados a Cultivos Agrícolas de Costa Rica. 31
densidad poblacional. La presencia de nematodos en el suelo, no significa
necesariamente que se esta ante un problema fitosanitario. El combate o manejo de
nematodos, implica la recolección de muestras en el campo, el análisis de las mismas
en un laboratorio especializado, la interpretación de los resultados y la implementación
de una estrategia adecuada de manejo. El decision final debe estar en función de los
nematodos detectados en la muestra, la densidad poblacional y la susceptibilidad del
cultivo
Cuando el muestreo se realiza en forma inadecuada, los resultados pueden conducir a
una estimación errónea de la población, por lo tanto, la implementación de un plan
adecuado de muestreo acorde a los objetivos del estudio es absolutamente necesario.
Cuando hay desconocimiento por parte del personal de campo sobre la forma de
realizar un muestreo de nematodos, lo recomendable es solicitar la asesoría respectiva.
Otro factor a considerar, es el método de extracción empleado en el laboratorio y el
peso de muestra utilizado. Ningún método de extracción es 100 % eficiente, por lo que
los datos pueden variar de acuerdo al protocolo de extracción utilizado en cada
laboratorio. Esto adquiere especial relevancia cuando el productor o empresa envía
muestras a distintos laboratorios para obtener información cruzada, lo que es totalmente
válido, siempre y cuando ambos laboratorios empleen los mismos protocolos de
extracción que permita al interesado llegar a conclusiones válidas.
A continuación se presenta el formato de recibo de muestras y el tipo de informe que
emite el laboratorio de nematología de la Escuela de Ciencias Agrarias de la
Universidad Nacional. La información anexa a la muestra es vital para el personal del
laboratorio y contribuye substancialmente a la interpretación de los resultados. El
informe que recibe el usuario incluye: datos de identificación de la muestra, método de
extracción utilizado, cuadro de resultados (identificación y densidad poblacional de los
nematodos detectados) y comentarios generales. Este formato puede variar de acuerdo
a los protocolos de cada laboratorio.
_____________________________________________________________________________
Nematodos Fitoparásitos Asociados a Cultivos Agrícolas de Costa Rica. 32
UNIVERSIDAD NACIONAL
LABORATORIO DE NEMATOLOGIA
ESCUELA DE CIENCIAS AGRARIAS
FORMULARIO PARA INGRESO DE MUESTRAS DE LABORATORIO
Nombre del productor o empresa________________________Teléfono_________ Procedencia de la muestra (localidad)______________________ Fecha de muestreo___________ Fecha de ingreso de la muestra ___________ Cultivo_________________ Edad aproximada del cultivo_______________ Muestra: Suelo Raíz Tipo de muestreo: Síntomas (aspecto general del cultivo): _____________________________ __________________________________________________________________
INFORMACIÓN DE CAMPO Cultivo actual ________________ Cultivos previos _________________________ Patrón de distribución del problema: plantas aisladas___ en parches_________ en hileras________ distribución uniforme__________ ¿Cuánto tiempo hace que empezó el daño?____________________________ ¿Agroquímicos aplicados? Si No _________________________ Frecuencia de aplicación____________________________________________
_____________________________________________________________________________
Nematodos Fitoparásitos Asociados a Cultivos Agrícolas de Costa Rica. 33
Heredia, 31 de enero del 2007
1. DATOS GENERALES
Productor o empresa: Finca Experimental Santa Lucía. Escuela de Ciencias Agrarias, Universidad Nacional. Tel: 2237 15 75 Fecha del muestreo: 30 de enero de 2007 Fecha de ingreso de la muestra: 30 de enero de 2007 Fecha de procesamiento: 30 de enero de 2007 Cultivo: Chile Edad: Cosecha Muestra: Suelo y Raíz. Localidad: Finca Experimental Santa Lucía. Barva, Heredia. 2. MÉTODO DE EXTRACCIÓN
Técnica de centrifugación en solución azucarada (Jenkins, 1964), utilizando dos
lavados, 30 segundos de suspensión, un juego de tamices superpuesto de 100 y 400 mallas y una solución extractora de sacarosa de 1.18 de gravedad específica. Cada muestra fue homogenizada antes del análisis nematológico. Los nematodos fueron contados e identificados en un microscopio invertido a 200 X. Los resultados están referidos a una submuestra de 100 gramos de suelo y 10 gramos de raíz respectivamente.
ANÁLISIS NEMATOLÓGICO ESCUELA DE CIENCIAS AGRARIAS
UNIVERSIDAD NACIONAL Apartado Postal 86-3000 Heredia, Costa Rica
Tel: (506) 2277-3299
_____________________________________________________________________________
Nematodos Fitoparásitos Asociados a Cultivos Agrícolas de Costa Rica. 34
RESULTADOS Cuadro 1. Número de nematodos fitoparásitos y de vida libre detectados en 100 gr de suelo y 10 gr. de peso fresco de raíz.
3. OBSERVACIONES
La densidad de juveniles de Meloidogyne sp (J2) detectada tanto en suelo como en raíz es considerada de importancia económica. El impacto en la sanidad y rendimiento puede ser mayor en siembras posteriores de cultivos susceptibles al nematodo. Se recomienda mantener un plan de muestreo, un registro del historial de la parcela e implementar un plan de manejo para mitigar el efecto de los nematodos. El uso de cualquier producto químico, requiere seguir estrictamente las recomendaciones del fabricante y la asesoría de un profesional en agronomía, con la finalidad de obtener los mejores resultados y minimizar los efectos negativos en el ambiente
Atentamente,
__________________. Alejandro Esquivel H. Nematólogo Laboratorio de Nematología Universidad Nacional
Chile
Nematodos detectados 100 gr suelo
10 gr raíz
Meloidogyne sp (J2) 225 816
Meloidogyne sp (machos) - 2
Trichodorus sp 1 -
Nematodos de Vida Libre 111 39
_____________________________________________________________________________
Nematodos Fitoparásitos Asociados a Cultivos Agrícolas de Costa Rica. 35
RECOLECCION DE DATOS
a información sobre los nematodos fitoparásitos que se presenta en este manual, es el
resultado de varios años de investigación, dónde el personal del laboratorio de
nematología de la Escuela de Ciencias Agrarias de la UNA, programó visitas a distintos
agroecosistemas y el muestreo de suelo y raíz de distintos cultivos. El plan de muestreo,
consistió en delimitar un área de aproximadamente 400 m2, colectándose un muestra
compuesta de suelo y raíz de cinco puntos al azar en la base de la planta hospedera. En
cada punto de muestreo se registraron las coordenadas geográficas mediante una
unidad portátil de posicionamiento global, así como la información de campo respectiva.
En el laboratorio, cada muestra fue homogenizada y cuarteada procesándose una
submuestra de 100 gramos de suelo y 10 gramos de raíz respectivamente.
Figura 15. Ilustra algunas de las etapas de la recolecta, procesamiento e identificación
de nematodos por parte del personal del laboratorio de nematología de la Escuela de
Ciencias Agrarias. Recolección de muestras (A); unidad portátil de posicionamiento
global (B); preparación de alícuotas para conteo de nematodos (C); identificación (D).
También se logró recolectar información importante sobre los nematodos
asociados a los cultivos a través del programa de venta de servicios que ofrece el
laboratorio de nematología de la Escuela de Ciencias Agrarias. Muestras de suelo y raíz
procedentes de distintas regiones del país y de distintos cultivos se procesaron y la
información obtenida se incorporó a la base de datos sobre los nematodos fitoparásitos
asociados a los cultivos agrícolas de Costa Rica. Finalmente, se complementa el listado
con la información recolectada por el laboratorio de nematología del Ministerio de
L
A B
C C
D
_____________________________________________________________________________
Nematodos Fitoparásitos Asociados a Cultivos Agrícolas de Costa Rica. 36
Agricultura, disponible en la siguiente dirección electrónica
(http://www.protecnet.go.cr/plagas/listanematodos.htm).
CULTIVOS MUESTREADOS
La propuesta original del proyecto era el estudio de los nematodos fitoparásitos
asociados a treinta cultivos agrícolas de Costa Rica, sin embargo, durante la ejecución
del proyecto se logró ampliar la información a más de setenta cultivos. Siendo Costa
Rica un país de vocación agrícola, es claro, que la información de este manual no
incluye todos los cultivos y ni todas las zonas agroecológicas del país. No obstante,
agrega información valiosa de cultivos, en donde los nematodos han sido poco
estudiados. A continuación se enlistan los cultivos analizados durante la ejecución del
proyecto. Las fotografías es con fines ilustrativos.
FRUTALES
Aguacate, banano, cacao, cas, durazno, guanábana, guayaba, higo, mamón chino,
mango, maracuyá, marañón, melón, mora, naranja, naranjilla, níspero, noni, papaya,
pejibaye, piña, tomate de palo.
_____________________________________________________________________________
Nematodos Fitoparásitos Asociados a Cultivos Agrícolas de Costa Rica. 37
HORTALIZAS
Arracache, brócoli, cebolla, cebollin, chile, chayote, culantro, rábano, remolacha,
repollo, papa, tomate, tomate orgánico, zanahoria, vainica, lechuga.
TUBÉRCULOS
Ñame, ñampi, tiquisque, yuca
ORNAMENTALES
Aglaonema, croton, cúrcuma, dracena, fatsia, helecho hoja de cuero, lirio, liriope,
palmera ornamental, rosa, schefflera, sebrina, spathoglotis, pothos, aralia.
_____________________________________________________________________________
Nematodos Fitoparásitos Asociados a Cultivos Agrícolas de Costa Rica. 38
GRANOS BÁSICOS
Arroz, frijol, maíz
CULTIVOS TRADICIONALES
Café, caña de azúcar, banano, plátano
PALMAS
Palma aceitera, palmito, cocotero
_____________________________________________________________________________
Nematodos Fitoparásitos Asociados a Cultivos Agrícolas de Costa Rica. 39
PASTOS
Braquipara, estrella, kikuyo, san agustín, tif-eagle, aztec grass
COLECCION DE REFERENCIA
l laboratorio de nematología ha creado una colección de nematodos de referencia,
actualmente con más de 21.000 especímenes debidamente montados en laminillas de
Cobb, identificados al nivel taxonómico posible y la información en una base de datos.
Esta colección es única en Latino América y reconocida a nivel internacional. Mencionar
nemas fitoparasitos montados
PRINCIPALES NEMATODOS ASOCIADOS A CULTIVOS AGRÍCOLAS
DE COSTA RICA
n esta sección se incluyen los nematodos fitoparásitos detectados en el laboratorio de
nematología de la Escuela de Ciencias Agrarias. Actualmente se han descrito
aproximadamente unas 2200 especies de nematodos fitoparásitos a nivel mundial, no
obstante, la falta de experiencia taxónomica de nuestro país y el escaso personal
entrenado a nivel nacional, constituye una limitante en la identificación de nematodos a
nivel de especie. Actualmente algunos laboratorios están incursionado en nuevas
tecnologías como lo son las técnicas moleculares para la identificación de especies. A
pesar de lo anterior, se espera que la información brindada en este manual constituya
una guía útil para productores y profesionales dedicados a la agricultura. El listado a
E
E
_____________________________________________________________________________
Nematodos Fitoparásitos Asociados a Cultivos Agrícolas de Costa Rica. 40
continuación brinda los géneros de nematodos fitoparásitos detectados, la familia
taxonómica a la que pertenece y el o los cultivos en dónde se ha encontrado asociado.
Los lectores interesados en la descripción taxonómica, pueden consultar algunos de los
textos que se indican en el apartado de bibliografía recomendada
CLASISFICACIÓN
En los últimos años se han propuesto varios sistemas de clasificación para el filo
Nematoda, entre que podemos mencionar los siguientes: Andrássy 1976, Lorenzen
1981, Maggenti 1983, Inglis 1983. Recientemente de Ley y Blaxter (2004) proponen
un sistema de clasificación que combina datos de taxonomía tradicional con datos
moleculares (secuencia de subunidades de ADNr) y es la que se presenta a
continuación:
ORDEN APHELENCHIDA
Familia Aphelenchidae
Aphelenchus Bastian, 1865
Aphelenchus sp es un género ampliamente distribuido en regiones templadas y
tropicales. Se encuenta en todos los tipos de suelos y en material vegetal en
descomposición. Típicamente es un nematodo micófago y existen pocos registros de su
patogenicidad en plantas superiores. Aphelenchus avenae, es la única especie que se
ha encontrado en asocio a hojas y al cortex de algunas raíces, demostrando algunos
autores su importancia económica cuando se inocula en grandes cantidades.
Aphelenchus sp es frecuente encontrarlo en material vegetal en descomposición donde
se presume se alimenta de las hifas de los hongos. Lo hemos detectado en bajas
poblaciones en una gran variedad de cultivos pero se desconoce el potencial de este
nematodo como patógeno. Los análisis realizados en el laboratorio han permitido
detectarlo en: AGLAONEMA (Aglaonema commutatum), AGUACATE (Persea
americana), ARROZ (Oryza sativa), AZTEC GRASS (pasto ornamental), BANANO
(Musa acuminata x Musa balbisiana AAA), BROCOLÍ (Brassica oleracea), CAFÉ
_____________________________________________________________________________
Nematodos Fitoparásitos Asociados a Cultivos Agrícolas de Costa Rica. 41
(Coffea arabica), CAS (Psidium friendrischsthalianum),CEBOLLA (Allium cepa),
CEBOLLIN (Allium fistulosum ), COCOTERO (Cocos nucifera), CROTON (Codiaeum
variegatum), CURCUMA (Curcuma longa), CHAYOTE (Sechium edule), CHILE
(Capsicum annum), DRACAENA (Cordiline australis),DURAZNO (Prunus persica),
FRIJOL COMÚN (Phaseolus vulgaris), GUAYABA (Psidium guajava), HIGO (Ficus
carica), LECHUGA (Lactuca sativa), LIRIO ORNAMENTAL (Lillium sp), MARACUYÁ
(Passiflora edulis), MARAÑÓN (Anacardium occidentale), MELON (Cucumis melo),
MORA (Rubus frutticosus), NARANJA (Citrus sinensis), NÍSPERO ( ), NONI (Morinda
citrifolia), ÑAME (Dioscorea alata), ÑAMPI (Colocasia esculenta), PALMA ACEITERA
(Elaeis guineensis), PALMERA – ORNAMENTAL, PAPA (Solanum tuberosum),
PAPAYA (Carica papaya), PEJIBAYE ( ), PIÑA (Ananas comosus), PLÁTANO
(M. acuminata x M. balbisiana AAB), POTHOS (Scindapsus aureus), REMOLACHA
(Beta vulgaris), REPOLLO (Brassica oleracea) ROSA (Rosa sp), SCHEFFLERA
(Brassaia arboricola), SPATHAGLOTIS – ORNAMENTAL ( ), TIQUISQUE (Xanthosoma
saggitifolium), TOMATE y TOMATE ORGANICO (Lycopersicon esculentum), YUCA
(Manihot esculenta), VAINICA ( ), VAINILLA ( ), ZANAHORIA (Daucus carota).
Familia Aphelenchoididae.
Aphelenchoides Fisher, 1894
Aphelenchoides sp, de amplia distribución mundial. La mayoría de las especies son de
vida libre y se encuentran en diversos sustratos (suelo, material vegetal en
descomposición, etc) donde probablemente se alimentan de hifas (micetófagos). Solo
una pocas especies son de importancia económica: Aphelenchoides fragarie, A.
ritzemabossi , A. arachidis y A. besseyi. En Costa Rica, esta última especie es de
_____________________________________________________________________________
Nematodos Fitoparásitos Asociados a Cultivos Agrícolas de Costa Rica. 42
gran importancia económica, ya que es el agente causal de la falsa mancha angular en
frijol, también es reponsable de la enfermedad llamada punta blanca en arroz, y
recientemente junto con el laboratorio de fitopatología de la ECA, se ha encontrado en
asocio a daños foliares en orquídeas (datos sin publicar). Otros cultivos en donde
hemos detectado al género son: AGUACATE (Persea americana), ARALIA (Polyscias
sp), ARROZ (Oryza sativa), AZTEC GRASS (pasto ornamental), BANANO (Musa
acuminata x Musa balbisiana AAA), CACAO (Theobroma cacao), CAFÉ (Coffea
arabica) CAS (Psidium friendrischsthalianum), CEBOLLA (Allium cepa), CEBOLLIN
(Allium fistulosu ), COCOTERO (Cocos nucifera) CROTON (Codiaeum variegatum),
CURCUMA (Curcuma longa), CHILE (Capsicum annum), DRACAENA (Cordiline
australis), DURAZNO (Prunus persica), FRIJOL COMÚN (Phaseolus vulgaris),
GUANÁBANA (Annona muricata), GUAYABA (Psidium guajava), HELECHO HOJA DE
CUERO (Rumohra adiantiformis), HIGO (Ficus carica), LECHUGA (Lactuca sativa),
MAÍZ (Zea mays), MAMON CHINO ( ), MANGO (Mangifera indica), MARACUYÁ
(Passiflora edulis), MARAÑÓN (Anacardium occidentale), MELON (Cucumis melo),
MORA (Rubus frutticosus), NARANJA (Citrus sinensis), NARANJILLA (Solanum
quitoense), NÍSPERO ( ), NONI (Morinda citrifolia), ÑAME (Dioscorea alata), PALMERA
ORNAMENTAL, PAPA (Solanum tuberosum), PAPAYA (Carica papaya), PASTO
KIKUYO (Pennisetum clandestinum ), PEJIBAYE ( ) PIÑA (Ananas comosus),
PLÁTANO (M. acuminata x M. balbisiana AAB), POTHOS (Scindapsus aureus),
REMOLACHA (Beta vulgaris), ROSA (Rosa sp), SCHEFFLERA ( Brassaia arboricola),
SPATHAGLOTIS ( ), TIQUISQUE (Xanthosoma saggitifolium), TOMATE y TOMATE
ORGANICO (Lycopersicon esculentum), TIQUISQUE (Xanthosoma saggitifolium),
VAINICA (), VAINILLA(), ZANAHORIA (Daucus carota)
_____________________________________________________________________________
Nematodos Fitoparásitos Asociados a Cultivos Agrícolas de Costa Rica. 43
Rhadinaphelenchus cocophilus (Cobb, 1919) J.B.Goodey,1960
Nematodo endoparásito migratorio que afecta principalmente tallos de palma aceitera y
coco., pero también se ha informado la presencia del nematodo en el cortex de palmas
de coco. El nematodo es transmitido de planta a planta por un coleóptero vector
(Rhynchophorus palmarun) que lo puede llevar externamente (ectoforesis) o
internamente (endoforesis). En este último caso, la palma es infectada cuando el insecto
oviposita. Las palmas afectadas por el nematodo pueden morir en muy pocos meses. La
infección por el nematodo, causa un anillo rojo característico en el tallo de las plantas
afectadas. Síntomas externos como clorosis y necrosis de hojas bajeras, así como
enanismo se pueden presentan tanto en plantas jóvenes como en aquellas de más 15 a
20 años. La enfermedad del anillo rojo como se le conoce comúmente, se ha detectado
en America Central, el Caribe y Sur América. Algunos textos recientes refieren al
nematodo al género Bursaphelenchus. Principales cultivos en donde se ha detectado el
nematodo: COCOTERO (Cocos nucifera), PALMA ACEITERA (Elaeis guineensis)
_____________________________________________________________________________
Nematodos Fitoparásitos Asociados a Cultivos Agrícolas de Costa Rica. 44
ORDEN TYLENCHIDA
Familia Criconematidae
Criconemoides Taylor, 1936
Criconemoides sp es un nematodo ectoparásito de árboles, cultivos perennes y
enredaderas. También es frecuente encontrarlo asociado a gramíneas. La mayoría de
especies son partenogénicas, los machos no se alimentan. La patogenicidad solo se ha
demostrado en unas pocas especies, siendo las de mayor importancia C. axestis, C.
onoensis, C. sphaerocephalus y C. xenoplax. Según el código de nomenclatura
zoológica (ICZN), Criconemoides es el género valido, no obstante algunos autores
erróneamente lo identifican como Criconemella. Siddiqi (2000), Criconemoides es
sinónimo de Criconemella y lo considera un subgénero de Criconemoides. En los
análisis de laboratorio lo hemos detectado en los siguientes cultivos: AGUACATE
(Persea americana), AGLAONEMA (Aglaonema commutatum), ARRACACHE
(Arracacia xanthorribiza), ARROZ (Oryza sativa), BANANO (Musa acuminata x
Musa balbisiana AAA), CACAO (Theobroma cacao), CAFÉ (Coffea arabica), CAÑA
DE AZÚCAR (Saccharum officinarum), CEBOLLA (Allium cepa), CROTON
(Codiaeum variegatum), CULANTRO (Coriandrum sativum), CURCUMA (Curcuma
longa), CHAYOTE (Sechium edule), CHILE (Capsicum annum), FRIJOL COMÚN
(Phaseolus vulgaris), GUANÁBANA (Annona muricata), HELECHO HOJA DE
CUERO (Rumohra diantiformis), HIGO (Ficus carica), LECHUGA (Lactuca sativa),
MAÍZ (Zea mays ), MANGO (Mangifera indica), MARACUYÁ (Passiflora edulis),
MARAÑÓN (Anacardium occidentale), MORA (Rubus frutticosus), NARANJA (Citrus
sinensis), NARANJILLA (Solanum quitoense), NONI ( ), ÑAMPI (Colocasia
esculenta), PAPA (Solanum tuberosum), PAPAYA (Carica papaya), PASTO
BRANQUIPARA ( ), PASTO ESTRELLA (Cynodon nlemfuensis), PASTO KIKUYO
(Pennisetum clandestinum), PASTO TIF-EAGLE ( ), PASTO SAN AGUSTÍN
(Stenotaphorum secundatum), PEJIBAYE (Bactris gasipaes), PIÑA (Ananas
comosus), PLÁTANO (M. acuminata x M. balbisiana AAB), REMOLACHA ( Beta
vulgaris), REPOLLO (Brassica oleracea var. capitana), ROSA (Rosa sp), TOMATE
(Lycopersicon esculentum), TIQUISQUE (Xanthosoma saggitifolium), VAINILLA,
ZANAHORIA (Daucus carota)
_____________________________________________________________________________
Nematodos Fitoparásitos Asociados a Cultivos Agrícolas de Costa Rica. 45
Hemicriconemoides Chitwood & Birchfield, 1957
La biología de Hemicriconemoides es similar a la de Criconemoides sp. Es un nematodo
ectoparásito de amplia distribución geográfica y se ha encontrado asociado a una gran
variedad de cultivos. Las principales especies que menciona la literatura son: H.
cocophilus y H. mangifera. Es un nematodo que presenta fuerte dimorfismo sexual, no
obstante, su identificación se puede confundir fácilmente con Hemicycliophora. El
tamaño ligeramente más pequeño y los nódulos basales del estilete con procesos
anteriores similar a un ancla ayudan a diferenciar a este género. Hasta el momento lo
hemos detectado en CAFÉ (Coffea arabica), PASTO ESTRELLA (Cynodon
nlemfuensis) y PASTO KIKUYO (Pennisetum clandestinum)
Discocriconemella De Grisse& Loof, 1965
Es un género muy fácil de distinguir. Cuerpo de pequeño tamanó y una postura arqueda
o C abierta. Una característica distintiva es la anulación cefálica a manera de un gran
disco aplanado. En Costa Rica es frecuente encontrarlo en muestras de suelo
provenientes de áreas protegidas, sin embargo, entre los cultivos en los que hemos
detectado el género están: CACAO (Theobroma cacao), CAFÉ (Coffea arabica) y
CURCUMA (Curcuma longa)
_____________________________________________________________________________
Nematodos Fitoparásitos Asociados a Cultivos Agrícolas de Costa Rica. 46
Criconema Hofmänner & Menzel 1914 (Mehta & Raski, 1971)
Es un nematodo muy interesante con un disco labial prominente y aplanado, estile largo
y cutícula ornamentada con apariencia de flecos. Es un género que solo lo hemos
encontrado en una muestra de MAÍZ (Zea mays) prodedente de una parcela de San
Isidro de Heredia.
Ogma Southern, 1914
De amplia distribución geográfica, encontrándose asociado en gran variedad de
muestras procedentes de areas protegidas y de zonas agrícolas. Es un nematodo
ectoparásito que se alimenta de las raíces de las plantas, no obstante, no se tiene
informes sobre la importancia económica de este nematodo en cultivos tropicales.
Cultivos como: ARALIA – ORNAMENTAL (Polyscias spp), CROTON (Codiaeum
variegatum), HELECHO HOJA DE CUERO (Rumohra adiantiformis), MORA (Rubus
frutticosus) y NARANJILLA (Solanum quitoense), son cultivos en donde hemos
detectado al nematodo.
_____________________________________________________________________________
Nematodos Fitoparásitos Asociados a Cultivos Agrícolas de Costa Rica. 47
Hemicycliophora de Man, 1921
Es un nematodo ectoparásito que se encuentra asociado a una amplia variedad de
cultivos vg árboles frutales y forestales, cultivos perennes, plantas silvestres y
enredaderas. También es frecuente encontrarlo asociado a gramíneas. La mayoría de
especies son partenogénicas, los machos tienen un aparatro digestivo atrofiado por lo
que no se alimentan. Las principales especies detectadas en zonas tropicales y
subtropicales son las siguientes: H. arenaria, H.parvana y H. typica. Es un nematodo
que presenta características similares a Hemicriconeloides sp. Diversos muestreos
realizados por el laboratorio de nematología , ha permitido detectar el género en los
siguientes cultivos: AGUACATE (Persea americana - Lauraceae), CACAO (Theobroma
cacao - Sterculiaceae) CEBOLLA (Allium cepa - Liliaceae), CROTON (Codiaeum
variegatum - Euphorbiaceae) CHAYOTE (Sechium edule - Cucurbitaceae), CHILE
(Capsicum annum - Solanaceae) HELECHO HOJA DE CUERO ( Rumohra
adiantiformis – Polypodiacea), HIGO (Ficus carica - Moraceae) NARANJILLA (
Solanum quitoense - Solanaceae), PAPA (Solanum tuberosum - Solanaceae), PASTO
ESTRELLA ( Cynodon nlemfuensis - Poaceae), PASTO KIKUYO (Pennisetum
clandestinum - Poaceae) PASTO TIF-EAGLE ( ), TOMATE (Lycopersicon esculentum -
Solanaceae), ZANAHORIA (Daucus carota - Apiaceae)
_____________________________________________________________________________
Nematodos Fitoparásitos Asociados a Cultivos Agrícolas de Costa Rica. 48
Familia: Tylenchulidae
Tylenchulus Cobb, 1913
Las hembras jóvenes son migratorias, penetran la raíz hasta alcanzar el córtex, donde
establecen sitios permanentes de alimentación. El nematodo se alimenta de un
complejo sistema de células nodriza que se forman alrededor de su cabeza, y que
sirven de desaguadero permanente de nutrientes. Posteriormente, el deterioro de la raíz
favorece la invasión de otros microorganismos. La tasa de multiplicación del nematodo
se ve favorecida por suelos franco arenosos. Las hembras adultas son
semiendoparasitas, depositan entre 75 y 100 huevos en una matrix gelatinosa, que
requieren de alta humedad en el suelo para su eclosión. Los machos se desarrollan
pocos días después de la eclosión y presentan la característica de no alimentarse. Otro
factor muy importante relacionado con la infección, es la presencia de heridas en las
raíces. Las larvas son atraídas a las micro y macroheridas, por lo tanto las heridas
mecánicas deben ser evitadas. También la nutrición del árbol influye en los niveles de
población. T. semipenetrans es un patógeno de gran importancia en el agroecosistema
de cítricos a nivel mundial. Causa la enfermedad conocida como “declinamiento lento”
y según el nivel de infección, los síntomas pueden ser desde imperceptibles hasta muy
severos. Las plantas afectadas por el nematodo pueden mostrar poco desarrollo,
producción de frutos de menor tamaño, hojas más pequeñas y cloróticas,
marchitamiento generalizado y destrucción de las raíces absorbentes. Las raíces
pueden mostrar un aspecto sucio, debido a que las partículas de suelo se adhieren a la
matriz gelatinosa donde la hembra deposita los huevos. Esta ampliamente distribuido en
todas las zonas productoras de cítricos de Costa Rica. NARANJA (Citrus sinensis)
_____________________________________________________________________________
Nematodos Fitoparásitos Asociados a Cultivos Agrícolas de Costa Rica. 49
Familia Anguinidae
Ditylenchus Filipjev, 1936
Muchas especies son micófagas, siendo usual encontrarlo en muestras con alto
contenido orgánico. Algunas especies son parasitas de plantas superiores, donde se
alimentan ectoparásiticamente de tallos, hojas y bulbos. Usulamente causan
marchitamiento y deformación del tejido afectado. Las principales especies fitoparásitas
son D.angustus, D.dipsaci y D.africaunus. Solo D. dipsaci se han encontrado en zonas
tropicales altas afectando cultivos como ajo y cebolla. Otros cultivos en donde hemos
detectado el género estan: CHILE (Capsicum annum), HIGO (Ficus carica) LECHUGA
(Lactuca sativa) LIRIO (Lillium spp) PIÑA (Ananas comosus) SPATHAGLOTIS ( )
TOMATE (Lycopersicon esculentum) VAINICA ( )
Familia Telotylenchidae
Quinisulcius Siddiqi, 1971
Es un nematodo que se ha encontrado infectando maíz y sorgo en algunas regiones
tropicales, no obstante su importancia económica no ha sido bien determinada. En
nuestro laboratorio solo hemos detectado en el cultivo de REPOLLO (Brassica oleracea
var. capitana) en la finca experimental Santa Lucía de la Escuela de Ciencias Agrarias
de la Universidad Nacional.
_____________________________________________________________________________
Nematodos Fitoparásitos Asociados a Cultivos Agrícolas de Costa Rica. 50
Tylenchorhynchus Cobb, 1913.
Es un nematodo de amplia distribución geográfica. Se alimenta de una gran variedad
de cultivos, donde puede comportarse como ectoparasito, semi-ectoparásito o
endoparasito migratorio. No obstante, no es un nematodo considerado de gran
importancia económica. En nuestro país lo hemos encontrado en altas densidades en
ARROZ de secano (Oryza sativa - Poaceae), asi como en : ARALIA – ORNAMENTAL
(Polyscias spp. - Araliaceae), BANANO (Musa acuminata x Musa balbisiana AAA -
Musaceae), CACAO (Theobroma cacao - Sterculiaceae), CAFÉ (Coffea arabica -
Rubiaceae), CAÑA DE AZÚCAR (Saccharum officinarum - Poaceae), CROTON
(Codiaeum variegatum - Euphorbiaceae), FRIJOL COMÚN ( Phaseolus vulgaris -
Papilionaceae), MAÍZ (Zea mays - Poaceae), PALMA ACEITERA (Elaeis guineensis -
Araceae),
PALMITO ( = PEJIBAYE) (Bactris gasipaes - Araceae), PAPA (Solanum tuberosum -
Solanaceae)
_____________________________________________________________________________
Nematodos Fitoparásitos Asociados a Cultivos Agrícolas de Costa Rica. 51
Familia Dolichodoridae
Dolichodorus Cobb, 1914
Algunas publicaciones informan sobre la importancia económica del nematodo en
cultivos como tomate, apio, maíz, frijol y pimienta. En nuestro país, se ha informado
como posible patógeno del cultivo de cação, no obstante, aún se requiere de mayores
datos para establecer su patogenicidad. Además de los cultivos mencionados, lo hemos
detectado en PALMITO (= PEJIBAYE) (Bactris gasipaes - Araceae).
Familia Ecphyadophoridae Sharbilovich, 1959
La familia incluye géneros como Ecphyadophoroides Corbett, 1964 y Ecphyaphora de
Man, 1921. No es claro si son nematodos ectoparásitos de pelos radicales de plantas
superiores o micófagos. La característica distintiva de estos nematodos su longitud y
delgado tamaño, aunado a su cuerpo transparente los hace difícil de detectar bajo el luz
blanca del estereoscópio. No es considerado un nematodo de importancia económica,
sin embargo Ecphyadophoroides en cultivos ornamentales como CROTON (Codiaeum
variegatum) HELECHO HOJA DE CUERO (Rumohra adiantiformis) SPATHAGLOTIS
( )
Familia Paratylenchidae
Paratylenchus Micoletzky, 1922.
Es un género con amplia distribución geográfica encontrado en una gran variedad de
hospederos y tipos de suelo. Es un nematodo ectoparásito que se alimenta de las
células epidermales de las raíces. Se ha determinado que altas poblaciones causa una
reducción significativa del crecimiento radical, acompañado de necrosis, aún cuando en
algunos hospederos los síntomas no son evidentes. De acuerdo a Siddiqi, 2000,
Paratylenchus presenta dos subgéneros (Paratylenchus y Gracilaucus) que pueden
clasificarse y separarse fácilmente según la longitud del estile. Este nematodo lo hemos
detectado en los siguientes cultivos AGUACATE (Persea americana), ARALIA –
_____________________________________________________________________________
Nematodos Fitoparásitos Asociados a Cultivos Agrícolas de Costa Rica. 52
ORNAMENTAL (Polyscias spp.) CACAO (Theobroma cacao), CAFÉ (Coffea arabica),
CAÑA DE AZÚCAR (Saccharum officinarum), CEBOLLA (Allium cepa -), CROTON
(Codiaeum variegatum),CHILE (Capsicum annum), MANGO (Mangifera indica -
)MARAÑÓN ( Anacardium occidentale), MORA (Rubus frutticosus)NARANJA (Citrus
sinensis), PALMITO ( = PEJIBAYE ) (Bactris gasipaes) PAPA (Solanum tuberosum),
PAPAYA (Carica papaya), PASTO SAN AGUSTÍN (Stenotaphorum secundatum),
PLÁTANO ( M. acuminata x M. balbisiana AAB), REMOLACHA (Beta vulgaris), ROSA
(Rosa sp.)SCHEFFLERA (Brassaia arboricola ), TIQUISQUE (Xanthosoma
saggitifolium)
TIQUISQUE (Xanthosoma saggitifolium -) , ZANAHORIA (Daucus carota)
Familia Hoplolaimidae
Scutellonema Andráasy,1958
Nematodo endoparásito migratorio de amplia distribución tropical y subtropical. Se
alimenta de raíces y tubérculos, aunque varias especies son polífagas. Se pueden
encontrar poblaciones anfimicticas y partenogénicas. Se identifica fácilemnete por los
enormes fasmidios (escutelos) ubicados cerca de la región anal. En Costa Rica S.
bradys se han encontrado causando serios daños en tuberculos de ñame. Otros
cultivos en donde lo hemos detectado son: AGLAONEMA sp (Aglaonema
commutatum -), CROTON (Codiaeum variegatum), LECHUGA (Lactuca sativa),
SCHEFFLERA (Brassaia arboricola )
_____________________________________________________________________________
Nematodos Fitoparásitos Asociados a Cultivos Agrícolas de Costa Rica. 53
Hoplolaimus Daday, 1905
Las especies de Hoplolaimus tienen un amplio rango de hospederos. Se ha encontrado
en asocio a pastos, cereales, soya, maíz, caña de azúcar y distintos tipos de árboles. Se
pueden comportar como ectoparásito o endoparásito, alimentándose principalmente de
la células del cortex causando lesiones necróticas extensivas. Se identifica fácilmente
por su estilete robusto con nódulos basales en forma de tulipán y la presencia de
escutelos, uno anterior y otro posterior a la vulva. Las principales especies son : H.
columbus, H. indicus, H.pararobustus y H. seinhorsti. Distintas muestras procesadas en
nuestro laboratorio ha permitido detectarlo en CACAO (Theobroma cacao), CAFÉ
(Coffea arabica), PAPAYA (Carica papaya)
_____________________________________________________________________________
Nematodos Fitoparásitos Asociados a Cultivos Agrícolas de Costa Rica. 54
Peltamigratus Sher, 1964
Presenta una biología similar a otros hoplolaimidos como Scutellonema y Aorolaimus.
Se ha detectado en diferentes latitudes y distintos cultivos. La posición de los escutelos
es una característica de importancia para identificar el género. El laboratorio de
nematologia de la ECA sólo lo ha detectado hasta el momento en el cultivo de CACAO
(Theobroma cacao).
Helicotylenchus Steiner, 1945
De amplia distribución geográfica encontrándose tanto en regiones tropicales como
subtropicales. Es un nematodo polífago que se comporta como ectoparásito,
semiendoparásito o endoparásito. Todos los estados del ciclo de vida se pueden
encontrar en el rizocortex, pero la migración a través de los tejidos aún no ha sido
confirmada. Al alimentarse produce pequeñas lesiones que se tornan necróticas cuando
son invadidas por organismos secundarios. Las especies de mayor importancia son: H.
multicinctus, H. dihystera, H. erythrinae, H.mucronatus, H. pseudorobustus. En Costa
Rica hemos detectado altas densidades de H. stylocercus en plantaciones de banano
(variedad ) en la zona de río frío. Helicotylenchus spp nematodo es un nematodo muy
frecuente y prácticamente aparece en todo tipo de muestra. Los hemos detectado en los
siguientes cultivos: AGLAONEMA sp (Aglaonema commutatum), AGUACATE (Persea
americana), ARALIA – ORNAMENTAL (Polyscias spp), ARRACACHE (Arracacia
xanthorribiza), ARROZ (Oryza sativa), BANANO (Musa acuminata x Musa balbisiana
AAA ), BROCOLÍ (Brassica oleracea var. italica), CACAO (Theobroma cacao), CAFÉ
(Coffea arabica ) CAÑA DE AZÚCAR (Saccharum officinarum ), CAS (Psidium
_____________________________________________________________________________
Nematodos Fitoparásitos Asociados a Cultivos Agrícolas de Costa Rica. 55
friendrischsthalianum), CEBOLLA (Allium cepa), CEBOLLIN ( ), COCOTERO
(Cocos nucifera), CROTON (Codiaeum variegatum ), CULANTRO (Coriandrum
sativum), CHAYOTE (Sechium edule), CHILE (Capsicum annum), DRACAENA
(Cordiline australis), FATSIA – ORNAMENTAL ( ), FRIJOL COMÚN (Phaseolus
vulgaris) GUANÁBANA (Annona muricata ), GUAYABA (Psidium guajava ),
HELECHO HOJA DE CUERO (Rumohra adiantiformis), LECHUGA (Lactuca sativa )
LIRIO ( ORNAMENTAL (Lillium spp), LIRIOPE (), MAÍZ (Zea mays) MAMON CHINO (
), MANGO (Mangifera indica), MARACUYÁ (Passiflora edulis), MARAÑÓN
(Anacardium occidentale ), MORA (Rubus frutticosus), NARANJA (Citrus sinensis),
NARANJILLA (Solanum quitoense), NÍSPERO ( ), NONI ( ), ÑAME
(Dioscorea alata), ÑAMPI (Colocasia esculenta), PAPAYA (Carica papaya), PALMA
ACEITERA (Elaeis guineensis ), PALMITO ( = PEJIBAYE ) (Bactris gasipaes ), PAPA
(Solanum tuberosum), PASTO BRANQUIPARA ( ), PASTO ESTRELLA (Cynodon
nlemfuensis ), PASTO KIKUYO (Pennisetum clandestinum), PASTO SAN AGUSTÍN
(Stenotaphorum secundatum), PASTO TIF-EAGLE ( ), PEJIBAYE ( ), PIÑA
(Ananas comosus), POTHOS – ORNAMENTAL (Scindapsus aureus), RABANO ( ),
REMOLACHA (Beta vulgaris ), REPOLLO (Brassica oleracea var. capitana), ROSA
(Rosa sp), SCHEFFLERA (Brassaia arboricola), SPATHAGLOTIS – ORNAMENTAL (
), TIQUISQUE (Xanthosoma saggitifolium), TOMATE (Lycopersicon esculentum),
TOMATE ORGANICO (Lycopersicon esculentum ), TOMATE DE PALO
(Cyphomandra betacea), TIQUISQUE (Xanthosoma saggitifolium), YUCA (Manihot
esculenta), VAINICA ( ), VAINILLA () ZANAHORIA (Daucus carota)
_____________________________________________________________________________
Nematodos Fitoparásitos Asociados a Cultivos Agrícolas de Costa Rica. 56
Rotylenchus Filipjev,1936
De amplia distribución geográfica, no obstante, es un nematodo que se encuentra
principalmente en regiones templadas y frías a nivel mundial. Es un nematodo
migratorio y se comporta como ectoparásito o semiendoparásito, alimentándose tanto a
lo largo del sistema radical como de la región apical. Con los datos hasta ahora
obtenidos en nuestro laboratorio, no podemos afirmar su importancia relativa en los
cultivos analizados, nunca lo hemos detectado en altas densidades. Es un nematodo
que cuando esta inactivo o se mata con calor adquiere forma espiral, lo que indica que
análisis de laboratorio poco cuidadosos, podría fácilmente confundirse con
Helicotylenchus. Una de las diferencias entre ambos géneros, es el traslape esófago
intestinal al que se le debe poner atención para la separación de ambos géneros. Lo
hemos detectado en los siguientes cultivos: AGLAONEMA (Aglaonema commutatum),
AGUACATE (Persea americana) ARROZ (Oryza sativa), BANANO (Musa acuminata
x Musa balbisiana AAA) CACAO (Theobroma cacao), COCOTERO (Cocos nucifera)
CROTON (Codiaeum variegatum), CURCUMA (Curcuma longa) CAÑA DE AZÚCAR
(Saccharum officinarum), GUAYABA (Psidium guajava).
Rotylenchulus Linford & Oliveira, 1940
De distribución tropical y subtropical. Las hembras maduras depositan alrededor de
unos 50 huevos en una matrix gelatina, al eclosionar, los juveniles mudan a hembras
inmaduras que se comportan como el estado infectivo con capacidad de buscar el
hospedero y ubicarse en un punto fijo de alimentación. Es un nematodo semi-
emdoparásito lo que significa que solo la parte anterior del cuerpo permanece embebida
en el tejido radical, mientras que la posterior permanece en el suelo y se torna obesa.
Los machos mantienen su forma verfiforme pero no se aliementan. Es un nematodo de
gran importancia económica y quizás la especie de mayor importancia económica es R.
reniformis. Nuestro laboratorio ha detectado el género en los siguientes cultivos:
AGLAONEMA (Aglaonema commutatum), AGUACATE (Persea americana), ARROZ
_____________________________________________________________________________
Nematodos Fitoparásitos Asociados a Cultivos Agrícolas de Costa Rica. 57
(Oryza sativa), BANANO (Musa acuminata x Musa balbisiana AAA), CACAO
(Theobroma cacao), COCOTERO (Cocos nucifera), CROTON (Codiaeum
variegatum), CURCUMA (Curcuma longa), GUAYABA (Psidium guajava), MANGO
(Mangifera indica), MARAÑÓN (Anacardium occidentale), NARANJA (Citrus
sinensis), NARANJILLA (Solanum quitoense), ÑAMPI (Colocasia esculenta),
PALMERA – ORNAMENTAL, PAPAYA (Carica papaya), SCHEFFLERA (Brassaia
arboricola), TIQUISQUE (Xanthosoma saggitifolium), YUCA (Manihot esculenta)
Familia Heteroderidae
Globodera Skarbilovich, 1959 (Behrens, 1975)
Nematado endopararásito de gran importancia económica. Se encuentra principalmente
distribuido en templadas o frías de regiones tropicales. Las hembras maduras de forma
globosa, retienen en su interior gran cantidad de huevos. La cuticula de la hembra se
oscure y endurece formando un quiste que protege a los huevos de condiciones
adversas del ambiente. Se tienen informes de quistes cuyos huevos se han mantenido
viables por más de 20 años. Los huevos eclosionan en respuesta a exudados radicales
de las plantas hospederas, aunque otros factores pueden estar involucrados. Los
juveniles (J2) que emergen de los huevos son los estados infectivos que invaden la
planta hospedera induciendo sitios alimenticios formados por células nodriza. No hay
formación de agallas y los juveniles mudan tres veces para convertirse en adultos. En
Costa Rica se ha detectado en el cultivo de papa en las zonas altas de Cartago y
Zarcero. Tambien tiene informes de la presencia de G. rostochiensis en el mismo
cultivo. La forma, color del quiste y el número de estrías entre la vulva y el ano, son
esenciales para diferenciar las especies. PAPA (Solanum tuberosum ). Heterodera sp
presenta una biología similar al nematodo anterior y los juveniles los hemos detectado
en los siguientes cultivos: MORA (Rubus frutticosus), CEBOLLA (Allium cepa),
CEBOLLIN ( ), CHILE (Capsicum annum), PASTO KIKUYO (Pennisetum
clandestinum) ZANAHORIA (Daucus carota)
_____________________________________________________________________________
Nematodos Fitoparásitos Asociados a Cultivos Agrícolas de Costa Rica. 58
Familia Meloidogynidae
Meloidogyne Goeldi, 1892
Este género incluye los nematodos formadores de nódulos, y pertenecen a un grupo
relativamente pequeño, pero de mucha importancia como patógenos obligados de
plantas. Tienen una distribución mundial y parasitan prácticamente todo tipo de planta
vascular. Típicamente se reproducen y se alimentan dentro del tejido radical e inducen
la formación de agallas pequeñas a grandes. Otros nematodos como Nacobbus
aberrans (falso nematodo agallador) y Subanguina radicicola, también causan agallas
radicales confundibles con las de Meloidogyne.
El habito parasítico (endoparásito) y la forma de alimentación del nematodo, alteran la
fisiología normal de la planta, y causan una reducción y calidad del cultivo, motivo por lo
que estos nematodos tienen enorme importancia económica. Para una identificación
confiable, lo mejor es integrar caracteres morfológicos, isoenzimas, información
molecular, junto información relacionada con el modo de reproducción, número de
cromosomas, plantas hospederas y distribución. Entre las especies de mayor
importancia económica podemos mencionar: M. exigua, M. incognita, M. hapla, M.
javanica, M. arenaria, M.graminicola, M. mayaguensis. En Costa Rica se ha
determinado a M.salasi como un patógeno de gran importancia en el cultivo del arroz. El
género lo hemos detectado en los siguientes cultivos: ARROZ (Oryza sativa), BANANO
(Musa acuminata x Musa balbisiana AAA), BROCOLÍ (Brassica oleracea var.
italica),CACAO (Theobroma cacao), CAFÉ (Coffea arabica), CAÑA DE AZÚCAR
(Saccharum officinarum), CEBOLLA (Allium cepa), COCOTERO (Cocos nucifera),
CROTON (Codiaeum variegatum), CULANTRO (Coriandrum sativum), CURCUMA
_____________________________________________________________________________
Nematodos Fitoparásitos Asociados a Cultivos Agrícolas de Costa Rica. 59
(Curcuma longa), CHAYOTE (Sechium edule), CHILE (Capsicum annum), DURAZNO
(Prunus persica), GUANÁBANA (Annona muricata), GUAYABA (Psidium guajava),
HELECHO HOJA DE CUERO ( Rumohra adiantiformis), HIGO (Ficus carica), LECHUGA
(Lactuca sativa) , LIRIO – ORNAMENTAL (Lillium spp.), LIRIOPE. – ORNAMENTAL,
MAÍZ (Zea mays), MANGO (Mangifera indica), MARAÑÓN (Anacardium occidentale),
MELON (Cucumis melo), NARANJA (Citrus sinensis), NARANJILLA (Solanum
quitoense), NÍSPERO ( ) , NONI ( ), ÑAME (Dioscorea alata), ÑAMPI (Colocasia
esculenta), PALMITO ( = PEJIBAYE ) (Bactris gasipaes), PAPA (Solanum tuberosum),
PAPAYA (Carica papaya) PASTO ESTRELLA ( Cynodon nlemfuensis), PASTO
KIKUYO (Pennisetum clandestinum), PASTO SAN AGUSTÍN (Stenotaphorum
secundatum), PASTO TIF-EAGLE ( ), PIÑA (Ananas comosus) PLÁTANO (M.
acuminata x M. balbisiana AAB), POTHOS – ORNAMENTAL (Scindapsus aureus),
REMOLACHA (Beta vulgaris), REPOLLO (Brassica oleracea var. capitana), ROSA
(Rosa sp), SCHEFFLERA (Brassaia arboricola), SPATHAGLOTIS – ORNAMENTAL ( ),
TIQUISQUE (Xanthosoma saggitifolium), TOMATE (Lycopersicon esculentum),
TOMATE ORGANICO ( Lycopersicon esculentum), TOMATE DE PALO (Cyphomandra
betacea), YUCA (Manihot esculenta), ZANAHORIA (Daucus carota).
Familia Pratylenchidae
Pratylenchus Filipjev, 1936
Nematodo endoparásito migratorio, lo que significa que las mayores densidades
poblacionales se localizan dentro del sistema radical. Tanto adultos como juveniles, se
alimentan de las células del rizocortex, donde se forman cavidades denominadas
“nidos” que contienen colonias de nematodos en todos los estados del ciclo de vida. La
_____________________________________________________________________________
Nematodos Fitoparásitos Asociados a Cultivos Agrícolas de Costa Rica. 60
decoloración pronunciada de los tejidos afectados en uno de los síntomas provocados
por estos nematodos. Otro tipo de sítomas es la formación de pequeñas estrías de
color café rojizo que pueden coaslescen y formar áreas necróticas extensivas. Plantas
afectadas por este nematodo, pueden mostrar algunos de los siguientes síntomas:
clorosis, marchitez generalizada, poco desarrollo y poca producción. Usualmente las
plantas nos respoden adecuadamente a la aplicación de fertilizantes, por el daño
presente en el sistema radical. En zonas tropicales,el ciclo de vida se completa en 3 o 4
semanas y los nematodos pueden sobrevivir en ausencia de un hospedero por varios
meses. Es un nematodo de mucha importancia económica, ya que la mayoría de las
especies son polífagas. Las especies de mayor importancia en zonas tropicales y
subtropicales son: P. brachyurus, P.goodeyi, P.penetrans y P. zeae. En Costa Rica, P.
gutierrezi, es una nueva especie que fue encontrada en asocio al cultivo del café. La
lista a continuación, muestra los cultivos en donde hemos detectado el género.
AGLAONEMA sp (Aglaonema commutatum), AGUACATE (Persea americana) ARALIA
– ORNAMENTAL (Polyscias spp), ARROZ (Oryza sativa) BANANO (Musa acuminata
x Musa balbisiana AAA),
CACAO (Theobroma cacao), CAFÉ (Coffea arabica), CAÑA DE AZÚCAR ( Saccharum
officinarum)
CAS (Psidium friendrischsthalianum), CEBOLLA ( Allium cepa), CROTON (Codiaeum
variegatum), CULANTRO (Coriandrum sativum), CHILE (Capsicum annum) FRIJOL
COMÚN ( Phaseolus vulgaris), GUANÁBANA (Annona muricata) GUAYABA (Psidium
guajava), HELECHO HOJA DE CUERO (Rumohra adiantiformis), LIRIO sp. –
ORNAMENTAL (Lillium spp ), MAÍZ (Zea mays ), MAMON CHINO ( ), MANGO
(Mangifera indica), MARAÑÓN (Anacardium occidentale), MELON (Cucumis melo)
MORA (Rubus frutticosus), NARANJA (Citrus sinensis), NARANJILLA (Solanum
quitoense), NONI ( ), ÑAME (Dioscorea alata), PALMITO ( = PEJIBAYE)
(Bactris gasipaes), PAPA (Solanum tuberosum), PAPAYA (Carica papaya), PASTO
BRANQUIPARA ( ), PASTO KIKUYO (Pennisetum clandestinum), PASTO SAN
AGUSTÍN (Stenotaphorum secundatum), PLÁTANO (M. acuminata x M. balbisiana
AAB), POTHOS – ORNAMENTAL (Scindapsus aureus), REMOLACHA (Beta vulgaris),
_____________________________________________________________________________
Nematodos Fitoparásitos Asociados a Cultivos Agrícolas de Costa Rica. 61
REPOLLO Brassica oleracea var. capitana), ROSA (Rosa spp), SCHEFFLERA
(Brassaia arboricola), SEBRINA – ORNAMENTAL ( ), TIQUISQUE (Xanthosoma
saggitifolium), TOMATE (Lycopersicon esculentum), TIQUISQUE (Xanthosoma
saggitifolium) YUCA ( Manihot esculenta), ZANAHORIA (Daucus carota), PIÑA
(Ananas comosus)
Radopholus Thorne, 1949
Es un nematodo endoparásito de raíces, cormos y tuberculos. Al igual que Pratylenchus,
tanto juveniles como adultos se alimentan de las células del rizocortex. En tejido
severamente afectado puede formar cavidades y decoloración pronunciada, además de
áreas de color café rojizo que coaslencen y forman áreas necróticas extensivas. La
invasión de microorganismos secundarios potencia el daño causado por estos
nematodos. Radopholus presenta gran dimorfismo sexual, los machos muestran una
estructura cefálica alta, poco exclerotizada y un sistema digestivo degenerado que no
les permite alimentarse. La principal especie es R. similis que causa pérdidas
económicas importantes en el cultivo de banano y plátano. Usualmente los análisis de
raíz evidencian poblaciones de más de 10.000 nematodos por 100 gramos de peso
fresco de raíz. El daño en las plantaciones se evidencia por el volcamiento de plantas,
producto de un sistema radical deteriorado. La mayoría de especies son originarias de
Australasia, no obstante, Radopholus similis se encuentra ampliamente distribuido en
todas áreas tropicales productoras de banano, como consecuencia del uso de material
propagativo contaminado. El laboratorio ha detectado poblaciones considerables de este
nematodo en los siguientes cultivos:
BANANO (Musa acuminata x Musa balbisiana AAA), PLÁTANO (M. acuminata x M.
balbisiana AAB -), POTHOS – ORNAMENTAL (Scindapsus aureus)
_____________________________________________________________________________
Nematodos Fitoparásitos Asociados a Cultivos Agrícolas de Costa Rica. 62
Hirschmanniella Luc & Goodey, 1963
De amplia distribución mundial, asociado principalmente a ambientes acuáticos (agua
dulce y salobres). Algunas de las especies de mayor relevancia, H.oryzae y
H.spinicaudata se encuentran en cultivos de arroz inundado. Su alimentan
principalmente de raíces, pero también han sido detectados en plantas que forman
rizomas o plantas que se propagan a través de cormos. Al igual que otras especies de
regiones tropicales, su ciclo de vida se completa en pocas semanas. En nuestro
laboratorio, este nematodo lo hemos detectado solo en muestras de suelo procedentes
de arrozales inundados de la región de Guanacaste
ARROZ (Oryza sativa - Poaceae)
_____________________________________________________________________________
Nematodos Fitoparásitos Asociados a Cultivos Agrícolas de Costa Rica. 63
Familua Tylenchidae
Tylenchus Bastian, 1865
Es un nematodo que se encuentra frecuentemente en suelos agrícolas y asociado a las
raíces de muchos tipos de plantas. También es frecuente encontrarlo en muestras de
suelo de zonas boscosas. Practicamente la mayoría de libros de fitonematología
describen al nematodo, sin embargo, no es considerado de importancia económica.
Estos nematodos se alimentan principalmente de algas, lichenes, hongos y musgos.
Algunos géneros relacionados como Lelenchus, Filenchus, Aglenchus podrían ser
confundidos con este género. Tylenchus lo hemos detectado en una variedad de
cultivos, pero en ningún caso en altas densidades poblacionales que nos sugiera un
efecto negativo en el cultivo.
AGLAONEMA sp (Aglaonema commutatum), AGUACATE (Persea americana),
ARALIA – ORNAMENTAL (Polyscias spp), ARRACACHE (Arracacia xanthorribiza),
ARROZ (Oryza sativa), BANANO (Musa acuminata x Musa balbisiana AAA), CACAO
(Theobroma cacao), CAFÉ (Coffea arabica), CAÑA DE AZÚCAR (Saccharum
officinarum), CEBOLLA (Allium cepa), CEBOLLIN ( ) , COCOTERO (Cocos nucifera),
CROTON (Codiaeum variegatum), CURCUMA (Curcuma longa) , CHILE (Capsicum
annum )
DRACAENA (Cordiline australis), DURAZNO (Prunus persica), FATSIA –
ORNAMENTAL ( ), GUANÁBANA (Annona muricata), GUAYABA (Psidium guajava),
_____________________________________________________________________________
Nematodos Fitoparásitos Asociados a Cultivos Agrícolas de Costa Rica. 64
HELECHO HOJA DE CUERO (Rumohra adiantiformis), LECHUGA (Lactuca sativa),
LIRIO sp. – ORNAMENTAL (Lillium spp.), MAMON CHINO ( ), MANGO (Mangifera
indica)
MARACUYÁ (Passiflora edulis), MORA (Rubus frutticosus)NARANJA (Citrus sinensis),
NARANJILLA (Solanum quitoense) ÑAME (Dioscorea alata) , ÑAMPI (Colocasia
esculenta), PAPAYA ( ), PALMA ACEITERA (Elaeis guineensis), PALMERA –
ORNAMENTAL PALMITO ( = PEJIBAYE) (Bactris gasipaes ), PAPA (Solanum
tuberosum), PASTO KIKUYO (Pennisetum clandestinum), PASTO SAN AGUSTÍN
(Stenotaphorum secundatum) , PASTO TIF-EAGLE ( ), PEJIBAYE ( ), PIÑA
(Ananas comosus -), PLÁTANO (M. acuminata x M. balbisiana AAB), POTHOS –
ORNAMENTAL (Scindapsus aureus ) , REMOLACHA (Beta vulgaris), ROSA (Rosa sp),
SCHEFFLERA (Brassaia arboricola), SEBRINA ( ) SPATHAGLOTIS – ORNAMENTAL,
TOMATE (Lycopersicon esculentum), TOMATE DE PALO (Cyphomandra betacea),
YUCA (Manihot esculenta), VAINICA ( ), ZANAHORIA (Daucus carota)
Psilenchus de Man, 1921
De amplia distribución geográfica. Se ha encontrado en asocio a una gran variedad de
raíces de plantas, no obstante, el hábito alimenticio es práticamente desconocido. Es
frecuente en muestras de suelo provenientes tanto de áreas cultivadas como prístinas.
Su morfología es parecida a la Tylenchus, sin embargo la cola filiforme y clavada es una
quizás una de las características utilizadas para separar ambos géneros. Los hemos
detectado en los siguientes cultivos, sin embargo, no si tiene información sobre su
importancia económica.
DRACAENA (Cordiline australis), PLÁTANO (M. acuminata x M. balbisiana AAB),
POTHOS – ORNAMENTAL (Scindapsus aureus), LECHUGA (Lactuca sativa), MORA
(Rubus frutticosus - Rosaceae), NARANJILLA (Solanum quitoense), ÑAMPI (Colocasia
esculenta), SEBRINA – ORNAMENTAL ( )
_____________________________________________________________________________
Nematodos Fitoparásitos Asociados a Cultivos Agrícolas de Costa Rica. 65
ORDEN DORYLAIMIDA
Familia Longidoridae
Xiphinema Cobb, 1913 . ; Longidorus Micoletzky, 1922
Los nematodos pertenecientes a esta familia, son ectoparásitos migratorios de ciclo de
vida largo similar a de otros dorylaimidos. Se alimentan de una gran variedad de
plantas, donde el punto específico de alimentanción es cerca de la punta de las raíces.
Según la susceptibilidad de la planta hospedera, algunos de los síntomas que se
pueden observar a nivel radical son: raíces ganchudas, agallas terminales, poco
desarrollo de raíces laterales y necrosis en los puntos de alimentación. Ambos
nematodos son relativamente grandes (2 – 12 mm). Tienen un estilete hueco (60-250
um) que usan para alimentarse profundamente en las puntas de las raíces. Una de las
características de estos nematodos, es la capacidad de algunas especies de transmitir
virus a las plantas. De las 350 especies identificadas, solo 17: Longidorus [7 sp],
Xiphinema [9 sp] y Paralongidorus [1 sp] tienen la capacidad de transmitir 13 de los 38
Nepovirus conocidos. En nuestra experiencia, las poblaciones de ambos nematodos en
campos agrícolas costarricenss son usualmente bajas. En zonas forestales Xiphinema
es un nematodo que parece con mucha frecuencia en las muestras. No obstante, en
otras latitudes, Xiphinema es un nematodo de gran importancia ya que transmite entre
otros virus el TRSV (virus del anillado del tabaco) y el ToRSV (virus del anillado del
tomate) que afecta plantas como cucurbitáceas, tabaco, ciruela y uva. Xiphimena lo
hemos detectado en los siguientes cultivos:
AGLAONEMA (Aglaonema commutatum), AGUACATE (Persea americana) ARROZ
(Oryza sativa), BANANO (Musa acuminata x Musa balbisiana AAA), CACAO
(Theobroma cacao), CAFÉ (Coffea arabica -), CAÑA DE AZÚCAR ( Saccharum
officinarum), CAS (Psidium friendrischsthalianum), CEBOLLA (Allium cepa),
CEBOLLIN ( ), CROTON (Codiaeum variegatum), CHAYOTE (Sechium edule) ,
GUAYABA (Psidium guajava), MAÍZ (Zea mays) MANGO (Mangifera indica),
MARAÑÓN ( Anacardium occidentale)
MORA (Rubus frutticosus), NARANJA (Citrus sinensis), NÍSPERO ( ), PALMITO ( =
PEJIBAYE) (Bactris gasipaes), PAPA (Solanum tuberosum), PASTO ESTRELLA
_____________________________________________________________________________
Nematodos Fitoparásitos Asociados a Cultivos Agrícolas de Costa Rica. 66
(Cynodon nlemfuensis, PASTO KIKUYO (Pennisetum clandestinum), PIÑA (Ananas
comosus), PLÁTANO (M. acuminata x M. balbisiana AAB), REMOLACHA (Beta
vulgaris), REPOLLO (Brassica oleracea var. capitana), TOMATE (Lycopersicon
esculentum)
Longidorus lo hemos detectado en los siguientes cultivos :
ARROZ (Oryza sativa), CAÑA DE AZÚCAR (Saccharum officinarum) GUAYABA
(Psidium guajava), MAÍZ (Zea mays - Poacea), NARANJA (Citrus sinensis - Rutaceae),
PALMITO ( = PEJIBAYE ) ( Bactris asipaes), PIÑA
(Ananas comosus), PLÁTANO (M. acuminata x M.
balbisiana AAB)
_____________________________________________________________________________
Nematodos Fitoparásitos Asociados a Cultivos Agrícolas de Costa Rica. 67
ORDEN TRIPLONCHIDA
Familia Trichodoridae
Paratrichodorus Siddiqi, 1974; Trichodorus Cobb, 1913
Al igual que los longidoridos, son nematodos ectoparásitos asociados principalmente a
cultivos perennes y plantas leñosas. Los trichodoridos se alimentan de los pelos
radicales, específicamente de las células epidermales adyacentes a la zona de
crecimiento de la raíz, cuyo efecto es una reducción del crecimiento radical, formación
de raíces laterales cortas y engrosadas. Se ha encontrado que los trichodoridos son
más frecuentes en suelos livianos o arenosos. Altas densidades se encuentran
usualmente a profundidades mayores a 30 cm. Son nematodos que también tienen la
capacidad de transmitir virus a la plantas. Se ha determinado que 13 de las 70 especies
identificadas (Paratrichodorus 9 sp y Trichodorus 4 sp) tienen la capacidad de transmitir
los 3 tobravirus conocidos. Dos virus de gran importancia son el PepRSV (virus del
anillado de la pimienta) y el TRS (virus del tabaco), que afectan tanto plantas cultivadas
como plantas silvestres. En los muestreos realizados por el laboratorio de nematología
de la ECA, los hemos detectado en bajas densidades en los siguientes cultivos:
Paratrichodorus sp: ARROZ (Oryza sativa), CAÑA DE AZÚCAR (Saccharum
officinarum) REPOLLO (Brassica oleracea var. capitana), ROSA (Rosa sp), TOMATE
(Lycopersicon esculentum) CULANTRO (Coriandrum sativum), HELECHO HOJA DE
CUERO (Rumohra adiantiformis)
Trichodorus sp: AGUACATE (Persea americana), ARALIA – ORNAMENTAL (Polyscias
spp), ARROZ (Oryza sativa), BANANO (Musa acuminata x Musa balbisiana AAA),
BROCOLÍ (Brassica oleracea var. italica), CACAO (Theobroma cacao), CAFÉ (Coffea
arabica), CAÑA DE AZÚCAR (Saccharum officinarum) CEBOLLA (Allium cepa),
CEBOLLIN ( ), CHAYOTE (Sechium edule), CHILE (Capsicum annum), FRIJOL
COMÚN (Phaseolus vulgaris), GUANÁBANA (Annona muricata), GUAYABA (Psidium
guajava), HELECHO HOJA DE CUERO (Rumohra adiantiformis), LECHUGA (Lactuca
sativa), MAÍZ (Zea mays), MORA (Rubus frutticosus), NARANJA (Citrus sinensis),
PAPA (Solanum tuberosum), PLÁTANO (M. acuminata x M. balbisiana AAB),
_____________________________________________________________________________
Nematodos Fitoparásitos Asociados a Cultivos Agrícolas de Costa Rica. 68
REMOLACHA ( Beta vulgaris), REPOLLO (Brassica oleracea var. capitana), ROSA
(Rosa sp), TOMATE (Lycopersicon esculentum), ZANAHORIA (Daucus carota )
J2
PRINCIPALES NEMATODOS
ASOCIADOS A LOS CULTIVOS DE
COSTA RICA
AGLAONEMA sp (Aglaonema
commutatum - Araceae)
Aphelenchus sp
Criconemella spp
Helicotylenchus sp
Meloidogyne sp
Meloidogyne exigua
Meloidogyne incognita
Pratylenchus spp.
Tylenchus sp
Rotylenchulus spp.
Scutellonema spp.
Xiphinema sp
AGUACATE (Persea americana -
Lauraceae)
Aphelenchus sp
Aphelenchoides sp.
Criconematidae
Criconemella spp.
Helicotylenchus spp.
Hemicycliophora spp.
Meloidogyne spp.
Paratylenchus spp.
Pratylenchus spp.
Rotylenchulus spp.
Trichodorus sp
Tylenchus sp
Xiphinema sp.
ARALIA – ORNAMENTAL (Polyscias
spp. - Araliaceae )
Aphelenchoides sp.
Criconemella spp.
Helicotylenchus sp.
Meloidogyne sp.
Ogma sp.
Pratylenchus sp.
Paratylenchus sp.
Trichodorus sp.
Tylenchus sp.
Tylenchorhynchus sp
ARRACACHE ( Arracacia xanthorribiza
Bancr.- Mirtaceae) No estaba
reportado en el manual
Criconemoides sp.
Helicotylenchus sp.
Aphelenchoides sp.
Aphelenchus sp.
Tylenchus sp
ARROZ (Oryza sativa - Poaceae )
Aphelenchus sp.
Aphelenchoides ritzemabosi
Aphelenchoides sp.
Aphelenchoides besseyi
Criconemella spp.
Criconemoides sp.
Helicotylenchus spp.
_____________________________________________________________________________
Nematodos Fitoparásitos Asociados a Cultivos Agrícolas de Costa Rica. 70
Hirschmaniella oryzae
Longidorus spp.
Meloidogyne arenaria
Meloidogyne exigua
Meloidogyne incógnita
Meloidogyne salassi
Paratrichodorus spp.
Plectus sp.
Pratylenchus sp.
Pratylenchus zeae
Rotylenchulus spp.
Seinura sp
Tylenchidae
Tylenchus sp.
Trichodorus spp.
Tylenchorhynchus spp.
Xiphinema spp.
AZTEC GRASS – ORNAMENTAL
Aphelenchus sp.
Aphelenchoides ritzemabosi
BANANO ( Musa acuminata x Musa
balbisiana AAA - Musaceae )
Aphelenchoides sp.
Aphelenchus sp.
Criconemella spp.
Criconemiodes sp.
Helicotylenchus spp.
Helicotylenchus stylocercus
Meloidogyne sp
Meloidogyne incognita
Meloidogyne javanica
Pratylenchus spp.
Pratylenchus coffeae
Radopholus similis
Rotylenchulus spp.
Trichodorus spp.
Tylenchorhynchus spp.
Tylenchus sp
Xiphinema spp.
BROCOLÍ (Brassica oleracea var. italica
- Brassicaceae)
Aphelenchus sp
Helicotylenchus sp
Meloidogyne sp
Trichodorus sp
CACAO (Theobroma cacao -
Sterculiaceae)
Aorolaimus sp.
Aphelenchoides sp
Criconematidae
Criconemoides sp
Criconemella spp.
Criconemoides sp.
Desmoscolex sp.
Discocriconemella sp.
Gracilacus sp.
Helicotylenchus spp.
Hemicycliophora spp.
Hoplolaimidae
_____________________________________________________________________________
Nematodos Fitoparásitos Asociados a Cultivos Agrícolas de Costa Rica. 71
Hoplolaimus sp.
Meloidogyne spp.
Paratylenchus spp.
Pratylenchus spp.
Rotylenchulus spp.
Trichodorus spp.
Tylenchorhynchus spp.
Tylenchus sp.
Xiphinema spp.
CAFÉ ( Coffea arabica - Rubiaceae)
Aphelenchoides sp.
Aphelenchus sp.
Aphelenchoides bicaudatus
Criconemoides sp.
Helicotylenchus spp.
Hemicriconemoides sp
Hoplolaimus sp
Discocriconemella sp.
Meloidogyne sp.
Meloidogyne arabicida
Meloidogyne exigua
Meloidogyne incognita
Pratylenchus sp.
Pratylenchus coffeae
Pratylenchus gutierrezi
Trichodorus sp
Tylenchorhynchus spp.
Tylenchidae
Tylenchus sp.
Xiphinema spp.
CAÑA DE AZÚCAR ( Saccharum
officinarum - Poaceae )
Criconemella spp.
Criconemoides sp.
Helicotylenchus spp.
Longidorus spp.
Meloidogyne incognita
Meloidogyne spp.
Paratrichodorus spp.
Paratylenchus spp.
Plectus sp.
Pratylenchus zeae
Pratylenchus spp.
Rotylenchus spp.
Trichodorus spp.
Tylenchorhynchus spp.
Tyelenchus sp.
Xiphinema spp.
CAS ( Psidium friendrischsthalianum -
Myrtaceae ) NO ESTABA EN EL
MANUAL
Aphelenchus sp.
Aphelenchoides sp.
Helicotylenchus sp.
Pratylenchus sp
Xiphinema sp.
CEBOLLA ( Allium cepa - Liliaceae )
Aphelenchoides sp.
Aphelenchus sp.
Criconematidae
_____________________________________________________________________________
Nematodos Fitoparásitos Asociados a Cultivos Agrícolas de Costa Rica. 72
Criconemella spp.
Criconemoides sp.
Helicotylenchus spp.
Hemicycliophora spp.
Heterodera
Meloidogyne hapla
Meloidogyne incognita
Paratylenchus spp.
Pratylenchus spp.
Trichodorus spp.
Tylenchus sp.
Xiphinema sp.
CEBOLLIN ( ) NO ESTABA EN EL
MANUAL
Aphelenchoides sp
Aphelenchus sp.
Helicotylenchus sp.
Heterodera sp
Trichodorus sp
Tylenchus sp
Xiphinema sp.
COCOTERO ( Cocos nucifera -
Arecaceae)
Aphelenchus sp.
Aphelenchoides sp. Aphelenchoides
bicaudatus Bursaphelenchus cocophilus
( = Rhadinaphelenchus cocophilus )
Helicotylenchus sp.
Meloidogyne spp.
Rotylenchulus spp.
Tylenchus sp.
CROTON (Codiaeum variegatum -
Euphorbiaceae )
Aphelenchoides sp.
Aphelenchus sp.
Criconemoides sp.
Ecphyadophoridae
Helicotylenchus spp.
Hemicycliophora
Meloidogyne javanica
Meloidogyne spp.
Ogma sp.
Paratylenchus spp.
Pratylenchus spp.
Rotylenchulus spp.
Scutellonema sp.
Tylenchorhynchus spp.
Tylenchus sp.
Telotylenchidae sp.
Xiphinema sp.
CULANTRO ( Coriandrum sativum -
Apiaceae )
Criconemella spp.
Helicotylenchus spp.
Meloidogyne incognita
Paratrichodorus spp.
Pratylenchus spp.
CURCUMA (Curcuma longa)
_____________________________________________________________________________
Nematodos Fitoparásitos Asociados a Cultivos Agrícolas de Costa Rica. 73
Aphelenchus sp.
Aphelenchoides sp.
Criconemoides sp.
Discocriconemella sp.
Helicotylenchus sp.
Meloidogyne sp.
Rotylenchulus sp.
Tylenchus sp.
CHAYOTE ( Sechium edule -
Cucurbitaceae )
Aphelenchus sp.
Criconemella sp
Helicotylenchus sp.
Hemicycliophora sp
Meloidogyne sp.
Meloidogyne incognita
Trichodorus sp
Tylenchus sp.
Xiphinema sp.
CHILE (Capsicum annum - Solanaceae )
Aphelenchoides sp.
Aphelenchus sp.
Criconemoides sp.
Criconemella spp.
Helicotylenchus spp.
Hemicycliophora spp.
Heterodera sp.
Ditylenchus sp.
Meloidogyne incognita
Meloidogyne spp.
Paratylenchus spp.
Pratylenchus spp.
Trichodorus spp.
Tylenchus sp.
Coslenchus
DRACAENA no esta en el manual
Aphelenchoides sp
Aphelenchus sp
Helicotylenchus sp
Psilenchus sp
Tylenchus sp
Tylenchidae
DURAZNO ( ) No estaba en el manual
Aphelenchus sp.
Aphelenchoides sp.
Meloidogyne sp.
Tylenchus sp
FATSIA – ORNAMENTAL ( ) NO ESTA
EN EL MANUAL DEL MAG
Criconematidae
Helicotylenchus sp
Tylenchus sp
FRIJOL COMÚN ( Phaseolus vulgaris -
Papilionaceae)
_____________________________________________________________________________
Nematodos Fitoparásitos Asociados a Cultivos Agrícolas de Costa Rica. 74
Aphelenchus sp.
Aphelenchoides besseyi
Criconemella spp.
Criconemoides sp.
Helicotylenchus spp.
Meloidogyne incognita
Pratylenchus spp.
Trichodorus spp.
Tylenchorhynchus spp.
GUANÁBANA (Annona muricata -
Annonaceae)
Aphelenchoides sp
Criconemoides sp
Criconemella sp
Helicotylenchus sp
Meloidogyne sp
Pratylenchus sp
Tylenchus sp
Trichodorus sp
GUAYABA ( Psidium guajava -
Myrtaceae)
Aphelenchoides sp.
Aphelenchus sp.
Criconemella spp.
Helicotylenchus spp.
Longidorus spp.
Meloidogyne spp.
Pratylenchus spp.
Rotylenchulus reniformis
Trichodorus spp.
Tylenchus sp.
Xiphinema sp
HELECHO HOJA DE CUERO (
Rumohra adiantiformis - Polypodiaceae)
Aphelenchoides sp.
Criconematidae
Criconemella spp.
Ecphyadophoridae
Helicotylenchus spp.
Hemicycliophora sp.
Meloidogyne spp
Ogma sp.
Pratylenchus sp.
Pratylenchus penetrans
Paratrichodorus spp.
Seinura sp
Trichodorus sp.
Telotylenchidae
Tylenchus sp.
HIGO (Ficus carica - Moraceae)
Aphelenchoides sp
Aphelenchus sp
Criconemella sp
Hemicycliophora
Ditylenchus sp
Meloidogyne incognita
Trichodorus sp
Tylenchus sp
LECHUGA ( Lactuca sativa - Asteraceae
)
_____________________________________________________________________________
Nematodos Fitoparásitos Asociados a Cultivos Agrícolas de Costa Rica. 75
Aphelenchoides s
Aphelenchus sp.
Criconemoides sp.
Criconemella spp.
Ditylenchus sp
Helicotylenchus spp.
Meloidogyne sp.
Meloidogyne hapla
Meloidogyne incognita
Psilenchus sp.
Scutellonema spp.
Trichodorus spp.
Tylenchus sp.
LIRIO sp. – ORNAMENTAL (Lillium spp.
- Liliceae)
Aphelenchus sp
Ditylenchus sp
Helicotylenchus sp
Meloidogyne sp
Pratylenchus sp
Tylenchus sp
LIRIOPE sp. – ORNAMENTAL NO
ESTABA EN EL MANUAL DEL MAG
Helicotylenchus sp.
Meloidogyne sp.
MAÍZ ( Zea mays - Poaceae )
Aphelenchoides sp.
Criconemoides sp
Criconemella spp.
Helicotylenchus spp.
Longidorus spp.
Meloidogyne incognita
Meloidogyne spp.
Pratylenchus spp.
Trichodorus spp.
Tylenchorhynchus spp.
Xiphinema spp.
MAMON CHINO ( ) NO ESTABA EN EL
MANUAL
Aphelenchoides sp.
Helicotylenchus sp.
Pratylenchus sp
Tylenchus sp
MANGO (Mangifera indica -
Anacardiaceae )
Aphelenchoides sp.
Criconemella spp.
Helicotylenchus spp.
Meloidogyne spp.
Paratylenchus spp.
Pratylenchus spp.
Rotylenchulus sp.
Rotylenchulus reniformis
Tylenchus sp
Tylencholaimidae
Xiphinema spp.
_____________________________________________________________________________
Nematodos Fitoparásitos Asociados a Cultivos Agrícolas de Costa Rica. 76
MARACUYÁ (Passiflora edulis -
Passifloraceae)
Aphelenchus sp
Aphelenchoides sp
Criconemella spp.
Helicotylenchus spp.
Meloidogyne sp.
Tylenchus sp
MARAÑÓN ( Anacardium occidentale -
Anacardiaceae )
Aphelenchus sp.
Aphelenchoides sp.
Criconemella spp.
Criconemoides sp.
Helicotylenchus spp.
Meloidogyne incognita
Meloidogyne spp.
Paratylenchulus sp
Paratylenchus spp.
Pratylenchus spp.
Rotylenchulus sp.
Rotylenchulus reniformis
Tylenchulus semipenetrans
Xiphinema spp.
MELON (Cucumis melo -
Cucurbitaceae)
Aphelenchus sp
Aphelenchoides sp
Criconematidae
Meloidogyne sp
Meloidogyne javanica
Meloidogyne incognita
Pratylenchus sp
MORA (Rubus frutticosus - Rosaceae )
Aphelenchoides sp.
Aphelenchus sp.
Criconematidae
Criconemoides sp.
Helicotylenchus spp.
Hemicycliophora sp.
Heterodera sp.
Meloidogyne spp.
Ogma sp.
Paratylenchus sp
Pratylenchoides sp.
Pratylenchus spp.
Psilenchus sp.
Trichodorus sp.
Tylenchus sp.
Xiphinema sp.
NARANJA (Citrus sinensis - Rutaceae)
Aphelenchus sp.
Aphelenchoides sp.
Criconematidae
Criconemella spp.
Helicotylenchus spp.
Longidorus spp.
Meloidogyne spp.
Paratylenchus spp.
Pratylenchus spp.
_____________________________________________________________________________
Nematodos Fitoparásitos Asociados a Cultivos Agrícolas de Costa Rica. 77
Rotylenchulus spp.
Tylenchus sp.
Trichodorus spp.
Tylenchulus semipenetrans
Xiphinema spp.
NARANJILLA ( Solanum quitoense -
Solanaceae )
Aphelenchoides sp.
Aphelenchus sp.
Criconematidae
Criconemoides sp.
Criconemella spp.
Helicotylenchus sp.
Hemicycliophora sp.
Meloidogyne spp.
Ogma sp.
Pratylenchus spp.
Psilenchus sp.
Rotylenchulus sp.
Tylenchus sp.
Tylenchidae
Tylenchulus semipenetrans
NÍSPERO ( )No esta en el manual
Aphelenchus sp.
Aphelenchoides sp.
Helicotylenchus sp.
Meloidogyne sp.
Xiphinema sp.
Tylenchida
NONI ( ) No esta en el manual
Aphelenchus sp
Aphelenchoides sp
Aphelenchoides bicaudatus
Criconemoides sp
Criconematidae
Helicotylenchus sp.
Meloidogyne sp.
Pratylenchus sp
Seinura sp
Tylenchus sp
ÑAME (Dioscorea alata -
Dioscoreaceae)
Aphelenchoides sp.
Aphelenchus sp.
Helicotylenchus sp.
Meloidogyne sp.
Meloidogyne javanica
Meloidogyne incognita
Pratylenchus sp
Tylenchus sp
ÑAMPI (Colocasia esculenta - Araceae)
Aphelenchus sp.
Criconemoides sp.
Helicotylenchus sp.
Meloidogyne sp.
Psilenchus sp.
Rotylenchulus sp.
Tylenchus sp.
_____________________________________________________________________________
Nematodos Fitoparásitos Asociados a Cultivos Agrícolas de Costa Rica. 78
PAPAYA ( ) NO ESTA EN EL MANUAL
DEL MAG
Aphelenchoides sp
Aphelenchus sp
Helicotylenchus sp
Tylenchus sp
Rotylenchulus sp
PALMA ACEITERA (Elaeis guineensis
- Araceae )
Aphelenchus sp.
Bursaphelenchus cocophilus (=
Radinaphelenchus cocophilus)
Helicotylenchus sp.
Tylenchus sp
Tylenchorhynchus spp.
PALMERA – ORNAMENTAL no esta
en el manual del mag
Aphelenchoides sp
Aphelenchus sp
Tylenchus sp
Rotylenchulus sp
PALMITO ( = PEJIBAYE ) ( Bactris
gasipaes - Araceae )
Criconemoides sp
Criconemella spp.
Dolichodorus spp.
Gracilacus sp.
Helicotylenchus spp.
Longidorus spp.
Meloidogyne spp.
Paratylenchus spp.
Pratylenchus spp.
Tylenchorhynchus spp.
Tylenchulus spp
Tylenchus sp
Xiphinema spp.
PAPA (Solanum tuberosum -
Solanaceae)
Aphelenchus sp.
Aphelenchoides sp.
Criconemella spp.
Helicotylenchus spp.
Hemicycliophora spp.
Meloidogyne spp.
Paratylenchus spp.
Pratylenchus spp.
Tylenchus sp
Tylenchorhynchus spp.
Trichodorus spp.
Xiphinema sp.
PAPAYA ( Carica papaya - Caricaceae
Aphelenchus sp.
Aphelenchoides sp.
Criconemoides sp
Criconemella spp.
Helicotylenchus spp.
Hoplolaimus sp
Meloidogyne sp
_____________________________________________________________________________
Nematodos Fitoparásitos Asociados a Cultivos Agrícolas de Costa Rica. 79
Meloidogyne arenaria
Meloidogyne javanica
Meloidogyne incognita
Paratylenchus spp.
Pratylenchoides sp A
Pratylenchus spp.
Rotylenchulus sp.
Rotylenchulus reniformis
Tylenchus sp
PASTO BRANQUIPARA ( ) NO ESTA
EN EL MANUAL
Criconematidae
Criconemoides sp
Helicotyelnchus sp
Pratylenchus sp
Macroposthonia sp
PASTO ESTRELLA (Cynodon
nlemfuensis - Poaceae)
Criconemoides sp.
Criconematidae
Criconemella sp
Helicotylenchus sp.
Macroposthonia sp.
Pratylenchus sp.
PASTO ESTRELLA ( Cynodon
nlemfuensis - Poaceae)
Criconematidae
Criconemella spp.
Criconemoides sp.
Helicotylenchus spp.
Hemicycliophora sp.
Hemicriconemoides sp
Meloidogyne sp
Tylenchus sp
Xiphinema sp.
PASTO KIKUYO (Pennisetum
clandestinum - Poaceae)
Aphelenchoides sp.
Criconematidae
Criconemella spp.
Criconemoides sp.
Helicotylenchus sp
Hemicycliophora spp.
Hemicriconemoides sp
Heterodera sp.
Hexatylina sp.
Meloidogyne hapla
Meloidogyne spp.
Pratylenchus sp.
Trichodorus spp.
Tylenchus sp.
Tylenchidae
Xiphinema spp.
PASTO SAN AGUSTÍN (Stenotaphorum
secundatum - Cyperaceae)
Criconemella spp.
Helicotylenchus spp.
Meloidogyne sp
Paratylenchus sp
Pratylenchus sp
_____________________________________________________________________________
Nematodos Fitoparásitos Asociados a Cultivos Agrícolas de Costa Rica. 80
Tylenchus sp
PASTO TIF-EAGLE ( ) No està en el
manual
Criconemoides sp
Helicotylenchus sp
Hemicycliophora sp
Meloidogyne sp
Tylenchus sp
PEJIBAYE ( ) NO ESTA EN EL
MANUAL
Aphelenchoides sp.
Aphelenchus sp
Criconemoides sp
Helicotylenchus sp.
Tylenchus sp
PIÑA ( Ananas comosus -
Bromeliaceae )
Aphelenchoides sp.
Aphelenchus sp.
Belondiridae
Criconemoides sp
Criconematidae
Ditylenchus sp.
Helicotylenchus spp.
Helicotylenchus multicintus
Longidorus sp.
Meloidogyne incognita
Meloidogyne javanica
Meloidogyne spp.
Pratylenchus sp.
Pratylenchus brachyurus
Pratylenchus spp.
Tylenchus sp.
Xiphinema sp
PLÁTANO ( M. acuminata x M.
balbisiana AAB - Musaceae)
Aphelenchoides sp
Aphelenchus sp
Criconematidae
Criconemoides sp.
Criconemellas spp.
Longidorus spp.
Helicotylenchus sp.
Meloidogyne sp.
Meloidogyne javanica
Meloidogyne incognita
Paratylenchus spp.
Psilenchus sp.
Pratylenchus sp.
Pratylenchus coffeae
Radopholus similis
Tylenchus sp .
Trichodorus spp.
Xiphinema spp.
PLATANO CON PALMITO Este no
esta en el manual
Aphelenchoides sp. A
_____________________________________________________________________________
Nematodos Fitoparásitos Asociados a Cultivos Agrícolas de Costa Rica. 81
Aphelenchus sp A
Criconematidae
Helicotylenchus sp.
Meloidogyne sp.
Radopholus similis
Tylenchus sp
POTHOS – ORNAMENTAL
(Scindapsus aureus - Araceae)
Aphelenchus sp.
Aphelenchoides sp.
Helicotylenchus sp.
Meloidogyne sp.
Pratylenchus sp
Psilenchus sp.
Radopholus similes
Tylenchus sp.
RABANO ( ) SE AGREGO AL
MANUAL
Helicotylenchus sp
REMOLACHA ( Beta vulgaris -
Chenopodiaceae)
Aphelenchoides sp.
Aphelenchus sp
Aphelenchus sp.
Criconemella spp.
Helicotylenchus spp.
Meloidogyne sp.
Meloidogyne hapla
Paratylenchus spp.
Pratylenchus spp.
Trichodorus sp.
Tylenchus sp .
Xiphinema sp.
REPOLLO ( Brassica oleracea var.
capitana - Brassicaceae )
Aphelenchus sp.
Criconemoides sp
Criconemella spp.
Helicotylenchus spp.
Laimaphelenchus sp.
Dolichodoridae
Meloidogyne hapla
Meloidogyne incógnita
Paratrichodorus porosus
Pratylenchus spp.
Trichodorus spp.
Tylenchidae
Xiphinema spp.
Quinisulciuos
ROSA ( Rosa spp. - Rosaceae )
Aphelenchoides sp.
Aphelenchus sp.
Criconemella spp.
Hemicycliophora spp.
Helicotylenchus spp.
Meloidogyne sp
Meloidogyne hapla
Paratrichodorus spp.
Paratylenchus spp.
_____________________________________________________________________________
Nematodos Fitoparásitos Asociados a Cultivos Agrícolas de Costa Rica. 82
Pratylenchus spp.
Trichodorus spp.
Tylenchus sp
SCHEFFLERA ( Brassaia arboricola -
Araliaceae )
Aphelenchoides sp.
Aphelenchus sp
Helicotylenchus spp.
Meloidogyne spp.
Paratylenchus spp.
Pratylenchus spp.
Rotylenchulus spp.
Tylenchus sp
Scutellonema sp
SEBRINA – ORNAMENTAL ( ) NO
ESTA EN EL MANUAL DEL MAG
Pratylenchus sp
Psilenchus sp
Tylenchus sp
SPATHAGLOTIS – ORNAMENTAL ( )
NO ESTA EN EL MANUAL
Aphelenchoides sp. .
Aphelenchus sp..
Helicotylenchus spp.
Ditylenchus sp.
Ecphyadophoridae sp..
Meloidogyne sp.
Tylenchus sp.
TIQUISQUE (Xanthosoma saggitifolium -
Araceae)
Aphelenchus sp.
Aphelenchoides sp.
Criconemella spp.
Helicotylenchus spp.
Meloidogyne spp.
Paratylenchus spp.
Pratylenchus spp.
Rotylenchulus spp.
TOMATE ( Lycopersicon esculentum -
Solanaceae)
Aphelenchoides sp.
Aphelenchus sp.
Criconemoides sp
Criconematidae
Criconemella spp.
Ditylenchus sp.
Helicotylenchus spp.
Hemicycliophora spp.
Meloidogyne sp.
Meloidogyne hapla
Meloidogyne incognita
Meloidogyne javanica
Paratrichodorus sp.
Pratylenchus spp.
Trichodorus spp.
Tylenchus sp.
Xiphinema sp.
_____________________________________________________________________________
Nematodos Fitoparásitos Asociados a Cultivos Agrícolas de Costa Rica. 83
TOMATE ORGANICO ( Lycopersicon
esculentum - Solanaceae) (SE
AGREGO)
Aphelenchoides sp.
Aphelenchus sp.
Helicotylenchus sp.
Meloidogyne sp.
TOMATE DE PALO ( Cyphomandra
betacea - Solanaceae) Se agregó
Helicotylenchus sp
Meloidogyne sp
Tylenchus sp
TIQUISQUE (Xanthosoma saggitifolium -
Araceae )
Aphelenchus sp.
Aphelenchoides sp
Criconemella sp
Criconemoides sp.
Helicotylenchus sp.
Paratylenchus spp.
Pratylenchus spp.
Rotylenchulus spp
YUCA ( Manihot esculenta –
Euphorbiaceae)
Aphelenchus sp.
Criconematidae
Helicotylenchus spp.
Meloidogyne spp.
Pratylenchus spp.
Tylenchus sp.
Rotylenchus sp
VAINICA ( )
Aphelenchoides sp.
Aphelenchoides besseyi
Aphelenchus sp.
Ditylenchus sp
Helicotylenchus sp.
Pratylenchus sp
Seinura sp.
Tylenchus sp.
VAINILLA
Aphelenchoides sp.
Aphelenchus sp.
Belondiridae
Helicotylenchus sp.
Malenchus sp.
Trichodorus sp
Tylenchus sp
ZANAHORIA ( Daucus carota -
Apiaceae)
Aphelenchus sp.
Aphelenchoides sp.
Criconemoides sp.
Criconemella spp.
Helicotylenchus spp.
Hemicycliophora sp.
Heterodera sp.
Meloidogyne sp.
_____________________________________________________________________________
Nematodos Fitoparásitos Asociados a Cultivos Agrícolas de Costa Rica. 84
Meloidogyne hapla
Meloidogyne javanica
Meloidogyne incognita
Paratylenchus spp.
Pratylenchus spp.
Trichodorus spp.
Tylenchus sp.
_____________________________________________________________________________
Nematodos Fitoparásitos Asociados a Cultivos Agrícolas de Costa Rica. 85
MANEJO INTEGRADO DE NEMATODOS FITOPARÁSITOS
(Requiere revisión y adaptación)
Aspectos Generales
Antes de hablar específicamente de manejo de nematodos, es necesario mencionar
algo sobre la planta hospedera y su entorno ya que ambos factores inciden directa o
indirectamente en las poblaciones de nematodos.
¿Que es el suelo?
La respuesta puede variar de acuerdo a la óptica profesional. Probablemente la
respuesta sería muy distinta si se la hacemos a un ingeniero civil, un geólogo, un
agrónomo o un ecólogo. El suelo constituye un ambiente dinámico en constante cambio,
no sólo desde el punto de vista químico, sino desde el punto de vista biológico. Dado a
la complejidad de interacciones que se presentan, está ampliamente aceptado
considerar al suelo como un “ecosistema”.
Desde el punto de vista físico, el suelo es un sistema de tres fases:
Fase sólida (arena, limo y arcilla). Las arcillas son las que tiene el mayor efecto
sobre la actividad biológica del suelo. Tienen mayor superficie de intercambio,
retienen el agua y diversos compuestos. Las fracciones más gruesas, facilitan la
difusión de agua y gases que afectan directamente la parte abiótica del suelo.
Fase acuosa. Donde se están disueltos compuestos orgánicos e inorgánicos. La
mayoría de estos compuestos esenciales para el desarrollo de las plantas, como
también los compuestos que son emanados de las raíces de las plantas, pueden
influir negativamente o positivamente en los microorganismos del suelo.
Fase gaseosa. La cual difiere en composición de la atmósfera que nos rodea.
Sumamente importante para las plantas como para la mayoría de los
microorganismos que son aeróbicos.
_____________________________________________________________________________
Nematodos Fitoparásitos Asociados a Cultivos Agrícolas de Costa Rica. 86
Desde el punto de vista biológico, si consideramos el suelo como un ecosistema,
se deben de dar una serie de procesos ecológicos que le permitan al sistema ser
auto sostenible. En este sentido tiene que darse un flujo energético y reciclaje de
nutrientes a través de la interacción de organismos productores (plantas
convierten el dióxido de carbono atmosférico en azúcares como fuente de
energía), consumidores (primarios, secundarios y terciarios) y
descomponedores.
Es un ambiente dinámico, dónde la relación entre nematodos – planta – suelo es
de naturaleza química.
Entre los elementos bióticos del ecosistema del suelo, los nematodos forman parte de
la mesofauna (ácaros, collembolas, nematodos) natural del suelo, esto quiere decir que
están presentes en todos tipo de suelo y no exclusivamente en suelos agrícolas. Un
metro cuadrado de suelo puede contener millones de individuos pertenecientes a
distintos grupos taxonómicos. Solo los insectos superan a los nematodos en diversidad
de especies en el reino animal.
Actualmente se han descrito y estudiado unas 25.000 especies, sin embargo, a criterio
de los expertos, aún se desconoce el 97 % de las especies existentes en el mundo. El
termino “nematodo” en la mayoría de los casos lo asociamos con agentes patógenos de
plantas y animales. No obstante, solo una pequeña fracción establece una relación
parásita con las plantas, alimentándose básicamente del citoplasma de las células
vegetales Los nematodos fitoparásitos tienen un efecto negativo en la producción
agrícola ya afectan la capacidad de la planta de obtener el agua y los nutrientes del
suelo, afectando la calidad y tamaño de frutos y tubérculos. La mayoría de los
nematodos no son parásitos ni plagas y por el contrario cumplen una función importante
en el ecosistema. Desde el punto de vista ecológico los podemos ubicar en 8 grupos
funcionales o grupos alimenticios:
_____________________________________________________________________________
Nematodos Fitoparásitos Asociados a Cultivos Agrícolas de Costa Rica. 87
Fitófagos: Se alimentan de líquidos de plantas vasculares mediante el estilete o
odontoestilete. Abertura < 1 um. No todos producen daño evidente a las plantas.
Ectoparásitos, Semiendoparásitos, encoparásitos (migratorios y sedentarios).
Micófagos: Los nematodos incluidos en esta categoría, penetran las hifas de los
hongos con su estilete. La abertura del lumen es 0.2 um, la cásula cefálica es
usualmente débil, no hay nódulos y en algunos el bulbo medio esta muy desarrollado.
Bacteriófagos: Incluye especies que se alimentan de cualquier fuente de organismos
procariotes. El aparato bucal o estoma puede ser muy reducido o bien muy amplio.
Algunos presentan crecimientos cefálicos.
Ingestores de substrato: Se ha reportado solo en algunos nematodos de suelo y en
algunos marinos. Se refiere a la ingesta activa de la fuente de alimento, pero en algunos
casos es pasiva o accicedntal cuando el nematodo se aliementa de bacterias o por
depredación.
Depredadores: Algunos nematodos se alimentan de otros invertebrados (nematodos,
rotíferos, etc). Los depredadores se pueden dividir en dos grupos: ingestores y los
perforadores. Los primeros provistos de una gran cavidad bucal y un diente móvil y los
segundos provistos de un estilete para perforar la presa y succionar su contenido.
Alimentadores de células eucarióticas unicelulares: Se tiene reportes de varios
nematodos que se alimentan de esporas de hongos, diatomeas y otras algas.
Estados infectivos de animales: Se incluyen, dado varios estados en su ciclo de vida
permanecen en el suelo y contribuyen en los procesos ecológicos.
Omnívoros: Los que utilizan varias fuentes de alimento. Esta aparentemente restringido
a los Dorylaimidos.
_____________________________________________________________________________
Nematodos Fitoparásitos Asociados a Cultivos Agrícolas de Costa Rica. 88
Desde el descubrimiento del primer nematicida, el combate químico se convirtió en el
primer aliado de los agricultores para el combate de nematodos. De unas pocas
parcelas experimentales que fueron tratadas con nematicidas en 1928 en los E.U, en
1985 unas 800.000 hectáreas y millones de metros cuadrados en invernaderos y
viveros fueron tratadas con nematicidas. La efectividad y el bajo costo de algunos
nematicidas estimuló la aplicación rutinaria de estos productos, provocando un cambio
en los métodos tradicionales utilizados para el control de nematodos. Parecía posible la
erradicación de los nematodos de ciertos cultivos.
RIEZGOS AMBIENTALES Y DE SALUD CAUSADOS POR LOS NEMATICIDAS.
Residuos de nematicidas en productos comestibles
Toxicidad aguda a mamíferos
Toxicidad en aves
Afectan a un gran número de organismos de suelo, incluyendo bacterias
nitrificantes,
Esterilidad masculina (reduce el # de espermatozoides)
Algunos asociados con cáncer
Contaminación de pozos de agua potable
Contaminación de aguas superficiales
Responsables de mortalidad de organismos acuáticos.
Degradación de la capa de ozono (79.000 toneladas anuales de Bromuro de
metilo).
Como resultado de un mayor nivel de conciencia de los efectos negativos de los
plaguicidas en el ambiente y la salud humana, hay gran interés en la búsqueda de
alternativas no químicas para el manejo de plagas y enfermedades. Esta tendencia ha
sido particularmente aparente en el campo de la nematología, considerando que en la
última década muchos nematicidas han sido eliminados del mercado y para otros ya se
ha escrito su orbituario.
PROBLEMAS DEL CONTROL QUÍMICO
_____________________________________________________________________________
Nematodos Fitoparásitos Asociados a Cultivos Agrícolas de Costa Rica. 89
Difícil la búsqueda de nuevas moléculas con acción nematicida
Costo económico y regulaciones ambientales
Algunas características de los nematodos (cutícula, huevos, quistes) que limitan
la acción de los nematicidas químicos.
Microorganismos que degradan o inactivan los nematicidas.
Suelo es la principal barrera.
Hoy día es urgente la búsqueda de medios no químicos ambientalmente seguros para el
control de nematodos. No obstante, la falta de alternativas efectivas hace a la
agricultura comercial muy dependiente de los productos químicos para el control de
plagas y enfermedades.
El manejo integrado de nematodos no es un concepto nuevo, se ha adaptado de un
concepto más amplio “ Manejo Integrado de Plagas”. Desde la década de los 70 se
hablaba de las bases o principos del MIP y es en la década de los 80 que toma mayor
fuerza. El concepto del manejo es la estabilización de las poblaciones a niveles
aceptables (poblaciones por debajo del nivel de daño económico). El MIN incluye la
implementación de dos o más prácticas de combate que tengan efecto en la reducción
de una o más especies de nematodos. Se ha demostrado que el MIN tiene significado
en programas a largo plazo y las soluciones a corto plazo mediante medidas aisladas
son totalmente inadecuadas. El MIN requiere investigación, desarrollo y transferencia de
tecnología, lo que implica la acción conjunta de varias instituciones y trabajo
multidiciplinario.
ANÁLISIS DEL PROBLEMA
Antes de implementar cualquier medida de combate de nematodos, el primer paso es
determinar la presencia de nematodos potencialmente dañinos al cultivo. Los daños
causados por nematodos son usualmente difíciles de detectar a nivel de campo, dado
que los síntomas de la planta hospedera no son específicos. Se sospecha de problemas
_____________________________________________________________________________
Nematodos Fitoparásitos Asociados a Cultivos Agrícolas de Costa Rica. 90
de nematodos cuando observamos síntomas tales como: pobre crecimiento, poco
desarrollo del sistema radical, bajo rendimiento, plantas cloróticas, marchitamiento,
necrosis de raices, ramificación excesiva de raíces, agallas radicales.
El análisis requiere:
Un muestreo de suelo partes vegetales adecuado (patrones de distribución
espacial)
Análisis de laboratorio que relacionen tipo de nematodo y densidad
poblacional (conocimiento taxonómico adecuado = a nivel de especie)
El diseño e implementación del MIN se fundamenta en tres principios:
Exclusión
Reducción de las poblaciones
Tolerancia
EXCLUSIÓN
Las pérdidas en cultivos causadas por nematodos pueden ser evitadas previniendo la
introducción de nematodos específicos o problemas de nematodos dentro de áreas
donde la especie o el problema no existe. El punto focal de la exclusión es la especie de
nematodo. La exclusión es la primera medida a implementar para prevenir la
diseminación y establecimiento de los nematodos a nuevas áreas. La diseminación está
asociada usualmente con el movimiento de suelo, material vegetal, maquinaria,
contenedores, animales (hombre), agua y viento. Cultivos de cobertura, rompevientos y
manejo de agua, limitan la diseminación aérea. El establecimiento esta relacionado con
condiciones ambientales adecuadas para el nematodo y un hospedero susceptible.
La exclusión incluye:
Cuarentenas (local, nacional o internacional): prevenir o disminuir la
introducción y diseminación de nematodos. Items a cuarentena: material
vegetal, suelo, agua, maquinaria, contenedores y vehículos.
Material vegetal certificado
_____________________________________________________________________________
Nematodos Fitoparásitos Asociados a Cultivos Agrícolas de Costa Rica. 91
Suelo y medios de cultivo libre de nematodos
Procedimientos de erradicación.
REDUCCIÓN DE POBLACIONES
Los daños en los cultivos causados por nematodos fitoparásitos pueden ser atenuados
mediante procedimientos diseñados para disminuir la densidad poblacional de
nematodos a niveles aceptables (estabilizar las densidades de población por debajo del
nivel de daño. El punto focal es la reducción de la población dado que la erradicación es
prácticamente imposible. Eliminar poblaciones de nematodos establecidas no es factible
en la mayoría de los casos. La reducción de poblaciones puede llevarse a cabo
mediante distintas estrategias:
Prácticas culturales: Barbecho, época de siembra, destrucción de residuos
de cosecha, enmiendas orgánicas, abonos verdes, nutrición y cuidados del
cultivo, rotación de cultivos.
Métodos físicos: Desinfección de suelo (agua caliente, vapor, aire caliente,
calor seco), desecación, solarización (efecto del color del mulch), fuerzas
mecánicas (abrasión en suelos de textura arenosos), inundación, desinfección
de material vegetal mediante calor, microondas, electrocución, hielo seco
como crionematicida, radiación (Rayos ultravioleta, Rayos X y otras
radiaciones ionizantes), ultrasonido, lavado del material vegetal.
Métodos biológicos: hongos nematófagos, hongos endoparásitos, hongos
parásitos de hembras, huevos y quistes, mico rizas, bacterias, virus,
nematodos depredadores, otros microorganismos de suelo, plantas trampa,
plantas antagónicas.
Métodos químicos: nematicidas fumigantes y no fumigantes. Aplicaciones al
suelo, follaje, tratamiento de semillas, inmersión de semillas, remojo de partes
vegetales (raíces, cormos, etc)
_____________________________________________________________________________
Nematodos Fitoparásitos Asociados a Cultivos Agrícolas de Costa Rica. 92
TOLERANCIA
Las pérdidas en los cultivos causados por nematodos fitoparásitos pueden ser
reducidos mediante la manipulación del hospedero en relación a su ambiente. En
otras palabras procedimientos que protejan o aumenten la tolerancia de la planta al
ataque de nematodos. En este caso, el punto focal es la planta hospedera.
Tolerancia incluye:
Variedades resistentes
Prácticas culturales (optimizar la humedad y nutrientes disponibles, atenuar el
estrés físico (altas y bajas temperaturas) y biológico (insectos, enfermedades).
Micorrizas (actúan en la planta y no directamente en los nematodos)
CONSIDERACIONES ECONÓMICAS
Es importante primero definir el significado de “control” en el caso de los
nematodos fitoparásitos. Para nematodos parásitos de animales y especialmente del
hombre, control significa erradicación del hospedero, sin embargo, la erradicación de
nematodos fitoparásitos solo es posible bajo ciertas condiciones ya que implica
remover el suelo, lo cuál no es práctica en la mayoría de las circunstancias. Además
que no es una garantía absoluta, ya que los nematodos podrían nuevamente
recolonizar un suelo nuevo.
En términos prácticos, control de nematodos debe entenderse como manejo de
nematodos, que significa, reducir las poblaciones a densidades aceptables.
“Aceptable” tiene una connotación netamente económica, y esta en relación al
retorno económico que se obtiene (rendimiento del cultivo) una vez aplicada la
medida de control. Hay cultivos que por su alto valor económico, permiten la
implementación de medidas de control costosas en relación con otros cultivos.
_____________________________________________________________________________
Nematodos Fitoparásitos Asociados a Cultivos Agrícolas de Costa Rica. 93
Hoy día se habla del Manejo Integrado de Nematodos (MIN), el cuál consiste en
la implementación de dos, tres o más prácticas de combate orientadas a mantener
las densidades de nematodos a niveles tan bajos como sea posible. El manejo de
nematodos podemos incluir:
Combate químico
Combate cultural
Combate biológico
Combate por resistencia
Combate físico
COMBATE QUÍMICO
Nematicidas
Por mucho tiempo, el combate químico, era el tema de mayor relevancia en
muchas de las publicaciones sobre control de nematodos. Hoy día, los nematicidas
químicos no tienen un futuro muy optimista y en muchos casos se ha escrito su
orbituario.
Los nematicidas químicos han sido utilizados por décadas en forma rutinaria, sin
cuestionarse la necesidad o no de hacerlo. Inicialmente los primeros nematicidas
utilizados fueron productos de desecho.
El primer nematicida fue Hidrocarburo halogenado = era un producto de desecho
de procesos industriales.
En Hawai para combate de nematodos en piña, se utilizó desechos de
Cloropicrina (gas lacrimógeno) como nematicida fumigante.
La Compañía Shell acumuló grandes cantidades de Glycerol, producto de
manufacturación de guerra. A finales de los 40, los agricultores de Hawai
utilizaron con gran éxito una mezcla clorinada de este producto bautizada comom
DD ( 1,2 dicloropropano, 1,3 dicloropropeno).
_____________________________________________________________________________
Nematodos Fitoparásitos Asociados a Cultivos Agrícolas de Costa Rica. 94
Estos productos tenían actividad biocida y eliminaban no solamente los
nematodos si no también toda la biota del suelo. Entre los efectos negativos
podemos citar:
Efecto fitotóxico = solo se podía aplicar en suelo desnudo
Eliminación de organismos de suelo, provocó caídas del nitrógeno
disponible para los siguiente cultivo
Detección de residuos peligrosos en el suelo y en el agua. Además de
detección de residuos en plantas (comestibles) que ponían en riesgo la
salud humana.
Hoy día el uso de estos productos es “prohibido” o su uso es muy restringido.
La producción de insecticidas fue responsable de la segunda generación de
nematicidas . Estos productos tienen la ventaja que no son fitotóxicos. Tiene
efecto neurotóxico alterando algunas funciones de los nematodos como:
movimiento, orientación, alimentación y reproducción. El objetivo de estos
productos es proteger la planta y no necesariamente erradicar los nematodos.
Desafortunadamente, la alta toxicidad en mamíferos, los nematicidas con acción
sistémica están siendo prohibidos o de uso restringido. Esto ha tenido serias
consecuencias en productores de papa Europeos en dónde no hay alternativas
para el control de algunos nematodos.
La producción de nuevos nematicidas químicos deben de cumplir con estrictas
normas de seguridad ambiental y de salud humana (toxicología) lo que hace
remoto la producción de nuevos productos. Sin embargo, investigaciones
novedosas abren nuevas fronteras para el control de nematodos.
COMBATE CULTURAL
_____________________________________________________________________________
Nematodos Fitoparásitos Asociados a Cultivos Agrícolas de Costa Rica. 95
Prácticas culturales :
Uso de material libre de nematodos
Nutrición y cuidados del cultivo
Barbecho
Inundación
Época de siembra
Medidas sanitarias
Rotación de cultivos
Enmiendas orgánicas
Rotación de cultivos
En una de las medidas de control más sencilla, la cuál es conocida y aplicada hace
varios siglos, aunque inicialmente los productores tenían conocimiento de problemas
fitosanitarios, si hablaban de suelo enfermo o cansado. La rotación de cultivos (siembra
de cultivo (s) en una secuencia determinada) ha demostrado ser una práctica muy
efectiva en la reducción de las poblaciones de nematodos en el suelo y esta siendo
nuevamente redescubierta y retomada como una alternativa para reducir las
poblaciones de nematodos. La rotación de cultivos es efectiva contra especies de
nematodos que tienen un reducido ámbito de hospederos. Nematodos polífagos son
más difíciles de controlar, debido a lo difícil de encontrar una planta no hospedera y que
sea rentable para el agricultor. La rotación para que sea efectiva, debe ser
implementada con cultivos resistentes o no hospederos entre los cultivos susceptibles.
Las poblaciones de nematodos se incrementan rápidamente en presencia del cultivo
susceptible y bajan muy lentamente en ausencia del hospedero. Se ha demostrado que
la rotación es efectiva cuando el cultivo susceptible se siembra en ciclos de 4 años o
más ( depende de nematodo y planta hospedera). Sin embargo, en la agricultura
intensiva no resulta práctico ni rentable.
Otra limitación de la rotación es la posibilidad de incrementar una población de
nematodos que antes de la rotación no constituía un problema. Esto sucede con
especies polífagas y un caso típico en zonas tropicales son los nematodos formadores
_____________________________________________________________________________
Nematodos Fitoparásitos Asociados a Cultivos Agrícolas de Costa Rica. 96
de nódulos. En este mismo sentido, para que la rotación sea efectiva, es importante el
control de malezas, ya que muchas de estas plantas son excelentes hospederas de
nematodos.
Enmiendas y abonos verdes
Un buen número de plantas contienen o producen sustancias que son tóxicas a los
nematodos v.g Marigold ( Tagetes spp), higuerilla = castor bean (Ricinus coomunis),
sesamo ( Sesamun indicum), el neem (Azadirachta indica), etc. Si los nematodos
invaden el sistema radical de estas plantas, no tienen mucha posibilidad de sobrevivir.
El beneficio de estas plantas, es usarlas como abonos verdes obteniéndose un efecto
doble:
1. Liberación de sustancias tóxicas a nematodos dañinos
2. La materia orgánica favorece una alta diversidad y densidad de microflora
y microfauna del suelo, entre ellos organismos antagónicos.
Un método barato y que ha demostrado ser muy efectivo, es la incorporación al suelo de
las tortas de aceite “ oil cakes”. Son el residuo en la producción de aceites de semillas
(algodón, sesamo, mostaza, aceite de palma, etc). La degradación microbiana de estos
productos, produce amonio en cantidades suficientes dañino a los fitonematodos sin
producir efectos negativos en la demás biota del suelo o la planta.
Efectos similares se han obtenido al incorporar compuestos a base de quitina (desechos
de la industria = caparazones de crustácesos). Además de la liberación de amonio, se
incrementa la actividad quitinolítica del suelo, teniendo un efecto deletéreo en los
huevos de nematodos que están formados de quitina.
_____________________________________________________________________________
Nematodos Fitoparásitos Asociados a Cultivos Agrícolas de Costa Rica. 97
La adición de otros compuestos orgánicos ha demostrado ser efectivo contra
nematodos: ( incremento de antagónica, liberación de compuestos tóxicos, aumento de
temperatura y aumento vigor de la planta).
COMBATE POR RESISTENCIA
Cultivos resistentes
El uso de cultivares resistentes parece ser el método más realista para el control de
nematodos fitoparásitos. Así por ejemplo en algunos países Europeos, el 80 % de las
variedades registradas de papa son parcial o totalmente resistentes a uno o más
patotivos del nematodo enquistador Globodera rostochiensis y G. Pallida.
En nematología la resistencia se define como la habilidad de la planta a limitar la
reproducción del nematodo, sin embargo la resistencia es contrarrestada por la
virulencia, la cuál es la habilidad de ciertos genotipos de algunas especies de
nematodos de reproducirse en algunos cultivares de plantas.
Dos tipos básicos de resistencia se pueden distinguir:
1. Natural ( basada en genes presentes en la planta)
2. Artificial (basa en genes disponibles en diversas plantas o de otro
tipo de organismos)= ingeniería genética.
En la resistencia natural podemos distinguir entre resistencia pasiva y resistencia activa.
La Pasiva o Pre-infeccional es un carácter inherente de la planta y es independiente del
ataque de los nematodos. Se fundamenta en diversos factores: ausencia de atrayentes,
carencia de nutrientes esenciales para el nematodo, presencia de repelentes o tóxicas
al nematodo.
_____________________________________________________________________________
Nematodos Fitoparásitos Asociados a Cultivos Agrícolas de Costa Rica. 98
La resistencia activa o post-infeccional, tiene que ver con la habilidad inherente de la
planta a reaccionar al ataque de los nematodos mediante un mecanismo fisiológico de
defensa, que se dispara por las secreciones glandulares de nematodo. El mecanismos
más importante, es la reacción de hipersensibilidad de la planta. Las células vegetales
que entran en contacto con las secreciones del nematodo, rápidamente se necrosan y
envuelven al nematodo forzándolo a salir o muere por inanición.
En la resistencia artificial se han hecho avances en los últimos años y es un campo muy
prometedor en la fitonematología. Entre los estudios que se le prestado más atención,
podemos mencionar:
1. Anti-feeding genes = El objetivo fundamental es la destrucción de los sitios
de alimentación. Estos genes son particular interés para el control de
nematodos sedentarios que inducen la formación de células gigantes en la
planta hospedera. Se conocen algunas enzimas (proteasas, lipasas,
DNAsas, que actún como citotoxinas y tienen la capacidad de destruir
componentes básicos de células vivientes.
2. Anti–nematode genes = producción de sustancias que son tóxicas,
inhibitorias o dañinas a los nematodos. Tienen un efecto menos específico
de acción y actúan sobre un espectro amplio de nematodos. Se han
identificado algunos productos de genes como lectinas o inhibidores de
enzimas que juegan un papel importante en la reacción de defensa de la
planta. Parece que las lectinas bloquean órganos sentitivos de los
nematodos, aunque el mecanismo aún no esta claramente entendido.
En ambos casos se requiere la liberación de plantas genéticamente manipuladas
(TRANSGENICAS) y aún existe gran controversia en este sentido, dada a que se
carece de datos e información del efecto que puede tener el paso de sustancias a través
de la cadena alimenticia.
_____________________________________________________________________________
Nematodos Fitoparásitos Asociados a Cultivos Agrícolas de Costa Rica. 99
CONTROL BIOLÓGICO
Los nematodos tienen una gran cantidad de enemigos naturales ( hongos, bacterias,
protozoarios, nematodos, anélidos, artrópodos y virus. Estos organismos son parte
natural de la microflora y microfauna del suelo y son abundantes en la mayoría de los
suelos. Sin embargo, el intento por desarrollar su uso como una tecnología efectiva ha
fallado. La excepción ha sido la bacteria Pausteria penetrans que ya se produce
masivamente y está disponible comercialmente.
Uno de los problemas con esta bacteria y con hongos antagonistas es la variabilidad en
virulencia. Una cepa puede ser altamente virulenta contra algunas poblaciones pero
avirulenta contra otras poblaciones de la misma especie de nematodo.
Los organismos de suelo están usualmente en un equilibrio dinámico y la adición de
grandes cantidades de un solo organismo, activa el sistema de amortiguamiento
biológico del suelo, lo que trae como consecuencia una rápida reducción o total
eliminación del organismo introducido. Parece que hay poca posibilidad en un futuro
próximo, que un solo agente introducido en forma masiva pueda tener éxito en la
protección de plantas.
Una posibilidad más realista es favorecer la totalidad de organismos antagónicos a
nematodos, favoreciendo la actividad microbiológica del suelo mediante la adición de
materia orgánica.
_____________________________________________________________________________
Nematodos Fitoparásitos Asociados a Cultivos Agrícolas de Costa Rica. 100
COMBATE FÍSICO
Tratamientos por calor
Los nematodos no sobreviven a temperaturas por encima de 50 oC, por lo tanto la
aplicación de calor es sumamente efectiva para matar nematodos. El calor puede ser
aplicado de diversas formas.
1. Resistencias eléctricas o tuberías con vapor de agua (invernaderos, potes,
camas )
2. Solarización (malezas, nematodos otros patógenos de suelo)
3. Microondas (calentamiento de la parte superficial del suelo)
4. Desecación
5. Inmersión de partes de plantas (raíces, bulbos, cormos, semillas) en agua
caliente. Temperatura y tiempo de exposición se debe controlar
cuidadosamente para evita daño al tejido vegetal. = Tiene la ventaja es
una práctica amigable al medio pero muy costosa su implementación.
BIBLIOGRAFIA RECOMENDADA
ALVARADO , M. ; LOPEZ, R. 1981. Extracción de nematodos fitoparásitos asociados al
arroz, CV.CR.1113, mediante modificaciones de las técnicas de centrifugación-flotación
y embudo de Baermann modificado. Agronomía Costarricense 5( 1-2 ):7-13.
ALVARADO, M. ; LOPEZ, R. 1985. Extracción de algunos nematodos fitoparásitos
mediante
modificaciones de las técnicas de centrifugación-flotación y embudo de Baermann
modificado. Agronomía Costarricense 9 ( 2 ) : 175-180.
ALVES , L.M., BERGERSON , G.B. 1966. A quick destaining prodedure for showing
contrast between
nematodes and root tissue. Plant Disease Reporter. 51 : 511.
_____________________________________________________________________________
Nematodos Fitoparásitos Asociados a Cultivos Agrícolas de Costa Rica. 101
BARKER, K.R. ; NUSBAUM, C.J. ; NELSON, L.A. 1969. Seasonal population dynamics
of selected plant-parasitic nematodes as measured by three extraction procedures.
Journal of Nematology 1( 3 ) : 232- 239.
BARKER, K.R. ; NUSBAUM, C.J. ; NELSON, L.A. 1969 . Effects of storage temperature
and
extraction procedure on recovery of plant parasitic nematodes from field soils. Journal of
Nematology 1 ( 3 ) : 240-247.
BARKER, K. R. ; CAMBELL , C.L. 1981. Sampling nematode populations. In plant
parasitic nematodes, VOl. III , ed. ; B.M. Zuckerman and R.A. Rohde. Academic Press ,
New York, pp. 451-473.
BYRD Jr., D.W. ; NUSBAUM, C.J. ; BARKER , K.R. 1966. A rapid flotation-sieving
technique for extracting nematodes from soil. Plant Disease Reporter. 50 ( 12 ) : 954-
956.
BYRD Jr., D.W. ; KIRKPATRICK, T. ; BARKER ,K.R.1983. An improved technique for
clearing an staining plant tissues for detection of nematodes. Journal of Nematology 15 (
1) : 142-143.
CAVENESS , F.E. ; JENSEN, H.J. 1955. Modification of centrifugal- flotation technique
for the isolation
and concentration of nematodes and their eggs from soil and plant tissue. Proc.
Helm. Soc.Wash. 22 ( 2 ) : 87-89.
CHRISTIE, J.R. ; PERRY, V.G. 1951. Removing nematodes from soil. Proc. Helm.
Soc.Wash.
18 : 106-108.
_____________________________________________________________________________
Nematodos Fitoparásitos Asociados a Cultivos Agrícolas de Costa Rica. 102
GOODELL, P.B. 1982. Soil sampling and processing for detection and quantification of
nematode populations for ecological studies. In nematodes in soil ecosystems. D.W.
Freckman ( ed ). pp 178-198.
JENKINS , W.R. 1964. A rapid centrifugal- flotation technique for separating nematodes
from soil. Plant Disease Reporter. 48 ( 9 ) : 692.
HOOPER, D. J. 1986. Extraction of free-living stages from soil .In laboratory methods
for work with plant and soil nematodes Sixth edition. Ed. J.F. Southey. London.
pp 5-30.
HUSSEY , R.S. 1971. A tecnic for obtaining quantities of living Meloidogyne females.
Journal of Nematology. 3 ( 1 ) : 99-100.
McSORLEY , R. 1987. Extraction of nematodes and sampling methods. In principles
and practice of nematode control in crops..R:H: Brown y B.R.Kerry ( eds ). Academic
Press. pp 13-41.
THISTLETHWAYTE, B. ; RIEDEL , R.M. 1969. Expressing sucrose concentration in
solutions used for extracting nematodes. Journal of Nematology. 1 : 387-388
VIGLIERCHIO, D.R. ; SCHMITT, R.V. 1983. On the methodology of nematode
extraction from field samples : Baermann funnel modifications. Journal of
Nematology. 15 ( 3 ) : 438-443.
VIGLIERCHIO, D.R. ; SCHMITT, R.V. 1983. On the methodology of nematode
extraction from field samples : Comparison of methods for soil extraction. Journal of
Nematology. 15
( 3 ) : 450-453.
_____________________________________________________________________________
Nematodos Fitoparásitos Asociados a Cultivos Agrícolas de Costa Rica. 103
VIGLIERCHIO, D.R. ; YAMASHITA, T.T. 1983. On the methodology of nematode
extraction from field samples : Density flotation techniques. Journal of Nematology. 15
( 3 ) : 444-449.
SOUTHEY, J.F. 1986. Laboratory Methods for work with plant and soil nematodes.
Ministry of Agriculture, Fisheries and Food. London 202 p.
YOUNG , T.W. 1954. An incubation method for collecting migratory endo-parasitic
nematodes. Plant Disease Reporter. 38 ( 11 ) : 794-795.
Anexos
INFILTRACIÓN EN GLICERINA PURA
SOLUCIÓN mL %
S1
Etanol 96% 200 20
Glicerina pura 10 1
Agua destilada 790 79
S2
Etanol 96% 7 7
Glicerina pura 930 93
S3
Etanol 96% 700 70
Glicerina pura 300 30
_____________________________________________________________________________
Nematodos Fitoparásitos Asociados a Cultivos Agrícolas de Costa Rica. 104
top related