acuacultura orgánica

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Roberto A. Santacruz Reyes, Ph.D.

Diciembre 16, 2014Machala – El Oro

ECUADOR

NORMAS ECOLÓGICAS EN ACUACULTURA Y CALIDAD DE AGUA

NORMAS ECOLÓGICAS EN ACUACULTURA Y CALIDAD DE AGUA

Sentar bases teóricas y prácticas para el conocimiento de las normas ecológicas y el manejo de los parámetros de calidad de agua en acuacultura.

Objetivo General:Objetivo General:

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Normas ecológicas en acuacultura Introducción Normativa Impacto Otras formas de “acuacultura ecológica”

Parámetros de calidad de agua Introducción Importancia de la calidad de agua en el cultivo Principales parámetros de calidad de agua y como estos

afectan los resultados productivos en una finca Oxígeno disuelto Temperatura pH Amonio Nitritos

Temario:Temario:

Normas ecológicas en acuaculturaNormas ecológicas en acuacultura

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¿Impacto? Mercado restringido “Royaltie” mínimo al productor Valor “extra” en el producto

Especialmente a consumidor final

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¿Otras formas de “acuacultura ecológica”?

ACUAPONÍA



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ACUACULTURAMULTITRÓFICAINTEGRADA

• Físicos

Temperatura

Oxígeno disuelto

Transparencia

Salinidad del agua

• Químicos

pH

Alcalinidad

Amoniaco (NH3)

Nitritos y Nitratos

Propiedades fisico-químicas del agua que pueden afectar el desarrollo y bienestar del cultivo.

Calidad del agua:Calidad del agua:

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Variables Biológicas

Variables Químicas

VariablesFísicas

Calidad de Agua

Variables que influencian la calidad de agua en el cultivo de camarón de mar

M

A

N

E

J

O

M

A

N

E

J

O

Importancia de la calidad de agua en el cultivo

Principales parámetros de calidad de agua y como estos afectan los resultados

productivos en una finca

Principales parámetros de calidad de agua y como estos afectan los resultados

productivos en una finca

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Oxígeno disuelto Oxígeno disuelto

• La capacidad de un cuerpo de agua de mantener gas en solución varía indirectamente en relación a tres factores:

• La temperatura del agua• La elevación del lugar (m.s.n.m.)• La salinidad del agua

A mayor temperatura menos oxígeno en solución

La temperatura y el oxigeno en solución

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Noche Noche NocheDía Día

Saturación del oxígeno (%)

0

100

200Fotosíntesis

Respiración

Fotosíntesis

Respiración

Oscilación diurna y nocturna del oxígeno disuelto en estanques de cultivo debido a la fotosíntesis y respiración

¿Cómo la disponibilidad de Oxígeno Disuelto en el agua afecta las variables

de campo?

¿Cómo la disponibilidad de Oxígeno Disuelto en el agua afecta las variables

de campo?

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10

2.031.92

1.741.65

2.5

y = 0.2048x + 1.3608

R2 = 0.8854

1.0

1.2

1.4

1.6

1.8

2.0

2.2

2.4

2.6

2.8

10 a 20 (N=10) 20-40 (N=66) 40-60 (N=73) 60-80 (N=45) >80 (N=9)

Frecuencia de oxigenos < 3mg/lt

FC

RCamaronera en Nicaragua (15-35 camarones/m²). Comparación de concentraciones bajas de oxígeno y el FCA: Periodo 2005 a 2008

2.21

1.841.841.72

47%51%

54%

40%

0%

10%

20%

30%

40%

50%

60%

25-35% (n=8) 36-45% (n=16) 46-55% (n=8) >56% (n=5)

% de dias con oxigeno <3.0 mg/L por las mañanas

So

bre

viv

en

cia

(%

)

0.0

0.5

1.0

1.5

2.0

2.5

FC

R

FCA % S/V

Camaronera en Honduras (15-20 camarones/m²). Comparación de concentraciones bajas de oxígeno y el FCA: 1er ciclo 2008

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Efecto del oxigeno disuelto en el conteo total de hemocitos de L. vannamei(Jiang et al., 2005).

Población de hemocitos▼30-45%

Población de hemocitos▼30-45%

7.5 mg/L

5.5 mg/L

3.5 mg/L

2.0 mg/L

Oxigenodisuelto

Horas de muestro

Co

nte

o T

ota

l d

e h

em

ocit

os

(×1

07

cell

s/m

l)

Efecto de la temperatura en el comportamiento alimenticio del Camarón Blanco

(Litopenaeus vannamei)

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• Camarones son organismos poiquilotérmicos (“sangre fría”)

• La temperatura de su cuerpo es el resultado de la temperatura ambiental

Temperatura del agua:Temperatura del agua:

• ¿Cómo afecta el comportamiento una temperatura debajo de 25 ºC? O por arriba de 32 ºC?

Todo residuo sólido fue sifoneado y se alimentó de acuerdo al porcentaje del peso corporal del camarón.

EXPERIMENTO: Temperatura vs. alimentación

• Intestino vacío antes del experimento• Camarón de 12.0 gr se alimentó al 1% del peso corporal 3 veces al día.

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Intestino lleno

Tiras de heces observadas

Duración (minutos)Temperatura (0C)

24 26 28 30 32 34

Aparición de alimento en el intestino

15 5 5 5 5 5

Intestino medio lleno 20-30 15-20 15 10-15 10-15 10

Intestino lleno totalmente

50-55 25-30 25-30 20-25 20-25 15-20

Inicio de excreción de heces

90-105 35-60 35-55 30-45 25-40 20-35

Comportamiento alimentación de L. vannameia diferentes temperaturas

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Duración (minutos)

Temperatura (0C)

24 26 28 30 32 34

Empieza averse intestino vacio

150-165 100-105 95-105 90-100 75-95 75-90

Intestino completamente vacio

225-240(4 horas)

210-220 180-200 180-190(3 horas)

140-150 135-140(2 horas)

Todo el alimento consumido

>120 >120 115-120 110 -120 75-105 60-72

Sobras de alimento después de 2 horas

35 -70% 27-60% 5-10% - - -

Comportamiento de alimentación de L. vannameia diferentes temperaturas

Intestino lleno a 24° CConsumo total en 4 horasSe debe alimentar cada 6 horas

Intestino lleno a 30° CConsumo total en 2 horasSe debe alimentar cada 3-4 horas

Comparación de intestinos llenosObservar el grosor del intestino

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Cuando la temperatura fluctúa entre 28° y 30° C, tenemos:

• Tiempo de digestión completa: 180 minutos ( 3 horas)

• Se debe dar una hora para que el animal recupere el apetito y consuman productividad natural.

• Deben pasar por lo menos 4 horas o más para la siguiente dosis.

¿MANEJO EN CAMPO?

0

10

20

30

40

50

60

70

80

20 25 30 35

Temperatura oC

So

bre

viv

en

cia

(%

)

0

1

2

3

4

5

6

7

8

Ta

sa

de

cre

cim

ien

to

(SG

R%

)

Sobrevivencia (35ppt) Sobrevivencia 50 (ppt)

SGR (35 ppt) SGR (50 ppt)

Crecimiento y sobrevivencia de L. vannamei en diferentes condiciones de temperatura y salinidad. Data (mean ± S.E.).

P< 0.05. (Ponce-Palafox et al., 1997).

TemperaturaTemperatura

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Effects of pH and salinity on survival, growth and osmoregulation in Penaeus monodon Fabricius

G. Allan y G. MaguireAquaculture, 170 (1992): 33-47

3.7(LC50)

5.9(Crecimiento 5% menos)

pH

pHpH

9,0

8,0

7,0

06:00 12:00 18:00 24:00 06:00

pH

Hora

Oscilaciones del pH en estanques de cultivo en función de la alcalinidad del agua (Boyd, 1995).

Baja alcalinidad (<20 mg/l)

alcalinidad moderada (50 - 120 mg/l)

H2CO3 H+ + CO3H-

donador de H+ receptor de OH- y H+

pHpH

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La concentración de CO2 influye en el pH del agua

CO2 + H2O H2CO3 H+ + HCO3- 2H+ + CO3

-

CO2 + H2O H2CO3

pH = ácido

06 12 18 24 06 12 18 24

8.0

8.5

9.0

7.5

9.5

pH

HCO3- + H2O CO2 + OH-

pH = básico

CO2

pHpH

0

10

20

30

40

50

60

70

80

24 48 72 96 120

Tiempo despues infeccion (horas)

Su

rviv

al (%

)

pH 6,5 pH 8,2 pH 10,1

b

a

b b

a

b

b

b

a

b b

a

bb

a

Sobrevivencia de L. vannamei en diferentes condiciones de pH después de infección con Vibrio alginolyticus. Data (mean ± S.E.). P<

0.05 (Li y Chen, 2008).

pHpH

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NH4+

Amonio ionizado

NH3

Amonio no ionizado

Ácido BásicoNeutro

pH

La proporción de NH3 y NH4+ varia dependiendo del pH y

temperatura del agua

Amonio Total = NH3 + NH4+

NH3 + H2O = NH4OH = NH4+ + OH-

Toxicidad aguda (LC50) de NH3-N y su relacion con la salinidad del agua en

L. vannamei (Lin & Chen, 2001).

NH3/NH4NH3/NH4

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Camarón estresadocon amonio (2.0 mg/L)

Camarón sin estrésde amonio (<0.3 mg/L)

Efecto del amonio-N en el sistema inmune de P. japonicus. Jiang et al. (2004).

NH3/NH4NH3/NH4

0

20

40

60

80

100

120

24 48 72 96 144

Tiempo despues infeccion (horas)

Su

rviv

al

(%)

0 mg/L 0.10 mg/L 0.40 mg/L 0.85 mg/L 1.60 mg/L

bb

ab b bab

bb

bb

b

b bb b

a a

bb

ba ab

aa

a

Sobrevivencia de L. vannamei en diferentes concentraciones de NH3

después de infección con Vibrio alginolyticus. Data (mean ± S.E.). P< 0.05. (Liu & Chen, 2004).

NH3/NH4NH3/NH4

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Nitrosomonas: NH3+ + CO2 + 1 ½O2 = NO2

- + H+ + H2O

Nitrobacter : NO2- + CO2 + ½O2 = NO3

-

Ácido BásicoNeutro

NH4+ NH3

Amonio ionizado Amonio no ionizado

pH

Nitrificación = NH3 → (Nitrito (NO2-)→ Nitrato (NO3

-)

35‰

25‰

15‰

Toxidez aguda (LC50) del Nitrito-N y su relacion con la salinidad del agua en L. vannamei (Lin & Chen, 2003).

Niveles de seguridad:15‰ (6.1 mg/L) 25‰ (15.2 mg/L) 35‰, (25.7 mg/L)

NO2NO2

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Gracias!

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