universidad tÉcnica de...

1

UNIVERSIDAD TÉCNICA DE MACHALA

FACULTAD DE CIENCIAS AGROPECUARIAS

ESCUELA DE INGENIERÍA ACUÍCOLA

TRABAJO DE TITULACIÓN

EFECTO DE LA SALINIDAD EN LA TASA DE REDUCCIÓN

DE AMONIO APLICANDO ZEOLITAS COMERCIALES

VIVIANA MARÍA AGUILAR AÑAZCO

2014

2



ESCUELA DE INGENIERIA ACUÍCOLA

TESIS SOMENTIDA A CONSIDERACIÓN DEL H. CONSEJO DIRECTIVO DE LA

FACULTAD DE CIENCIAS AGROPECUARIAS COMO REQUISITO PREVIO PARA

OPTAR AL GRADO DE:

INGENIERA ACUACULTORA

EFECTO DE LA SALINIDAD EN LA TASA DE REDUCCIÓN

DE AMONIO APLICANDO ZEOLITAS COMERCIALES

Viviana María Aguilar Añazco

2014

3

Esta tesis ha sido aceptada en la forma presente por el tribunal de grado nominado por el

Honorable Consejo Directivo de la Facultad de Ciencias Agropecuarias de la Universidad

Técnica de Machala, como requisito parcial para obtener el título de:

INGENIERA ACUACULTORA

_____________________________________________________

Roberto A. Santacruz Reyes, Ph.D. Director

_____________________________________________________

Dr. Patricio Reyes Nieto, Miembro

_____________________________________________________

Dino Mauricio Yánez Morocho MBA. Miembro

ii

4

Viviana María Aguilar Añazco

La responsabilidad del contenido del presente

trabajo de investigación es única y exclusiva

de su autora.

iii

5

DEDICATORIA

La dedico a ti Dios ya que de una u otra forma me llenas de fuerzas, tranquilidad y

determinación para seguir adelante cumpliendo mis metas propuestas.

También la dedico con todo el amor y cariño a Mi Regalo Más Grande (Mi Familia), a mis

padres por ser mi fuente de inspiración y mi apoyo; a mi Señora bonita (María P. Añazco

Gallardo), que con sus palabras y miradas me impulsa a seguir día a día y a no rendirme, a mi

Pa mi negro bello (José E. Aguilar Ramírez) por su cariño, por sus consejos y los valores que

nos brindan día a día; por tratar de hacernos personas de bien y fuerza, por ser simplemente

nuestros padres y amigos incondicionales. A mis hermanos, mi Calota (Mercy C. Aguilar

Añazco), mi negra (Amanda I. Aguilar Añazco) y a mi gordo bello, el niño de mis ojos

(Daniel J. Aguilar Añazco) por sus cuidados, cariño y apoyo incondicional.

iv

6

AGRADECIMIENTO

A mi familia por ser el pilar de mi vida, también muy agradecida a la Universidad Técnica de

Machala y a mis profesores por ir formándonos profesionalmente y por los conocimientos

compartidos durante estos 5 años de estudios dentro de esta institución.

Agradezco especialmente a mi director y miembros de Tesis al Dr. Roberto A. Santacruz

Reyes, Ph.D., al Dr. Patricio Reyes, Silvio Granda Velepucha M Sc. por la ayuda y por

permitir ser parte de mi trabajo de investigación.

Al Ing. Guillermo Baños C., al Dr. Walter Paredes S., al Biólogo Antonio Freire L. y al Dr.

Patricio Rentería por la amistad y ayuda brindada, forma una parte muy especial dentro de

este trabajo. Y como no agradecerle ni olvidar a don Maquitas que con su ayuda nos salvaba

de algunos ceros

A mis compañeros de aulas por las peleas, sus locuras, por las risas, los consejos y las

experiencias vividas gracias por formar parte de mi vida siempre los recordare con mucho

cariño ya que me llenaron de tanta alegría y conocimientos gracias por su amistad, Majo

Astudillo (Goda), Julio Fajardo (Lalito), Byron Romero (Bambo), Sergio Samaniego

(Nayito), Joel Novillo, Nancy Heras, Marco Pineda y a mis demás compañeros.

Agradecida eternamente con Alimentsa, la empresa que me permitió realizar mi trabajo de

investigación en sus instalaciones, también a su personal y compañeros de trabajo que de una

u otra forma fueron parte de mi investigación a Yanina Corella, María Elena Pineda, Miguel

Aguilar, Alexandra Vilela, Fernando Sanmartín, Byron Velásquez y todos los demás gracias

por su apoyo y amistad.

Y como no agradecer a mis amig@s por el apoyo y por entenderme, por las fuerzas que me

daban para seguir adelante a ustedes Sayda Hidalgo, Alexandra Garzón, Jacky Orosco, Marco

Villegas y Brenda Ojeda que a pesar de estar lejos me incentivaste para seguir, Gracias.

Hay momentos en la vida que son especiales por si solos;

Compartirlos con las personas que quieres los convierte en inolvidables. Anónimo.

v

7



ACTA DE CESIÓN DE DERECHOS DE TESIS DE GRADO Y TRABAJOS DE

TITULACIÓN

Consigno con el presente escrito la cesión de los Derechos de Tesis de grado/ Trabajo de Titulación,

de conformidad con las siguientes cláusulas:

PRIMERA

Por sus propios derechos y en calidad de Director de Tesis el… Roberto A. Santacruz Reyes, Ph.D.,

tesista… Srta. Viviana María Aguilar Añazco, por sus propios derechos, en calidad de Autor de Tesis.

SEGUNDA

El/la tesista Srta. Viviana María Aguilar Añazco, realizó la Tesis Titulada: “Efecto de la salinidad en

la tasa de reducción de amonio aplicando zeolitas comerciales”, para optar por el título de Ingeniera

Acuacultora, en la Facultad de Ciencias Agropecuarias de la Universidad Técnica de Machala, bajo la

dirección del Docente Roberto A. Santacruz Reyes, Ph.D... Es política de la Universidad que la Tesis

de Grado se aplique y materialice en beneficio de la colectividad.

Los comparecientes…Roberto A. Santacruz Reyes, Ph.D… Como Director de Tesis y la tesista…

Srta. Viviana María Aguilar Añazco, como autor/a de la misma, por medio del presente instrumento,

tienen a bien ceder en forma gratuita sus derechos en la Tesis de Grado titulada “Efecto de la salinidad

en la tasa de reducción de amonio aplicando zeolitas comerciales”, a favor de la Facultad de Ciencias

Agropecuarias de la Universidad Técnica de Machala y conceden autorización para que la Universidad

pueda utilizar esta Tesis en su favor y/o de la colectividad, sin reserva alguna.

APROBACIÓN.

Las partes declaran que reconocen expresamente todo lo estipulado en la presente Cesión de Derechos.

Para constancia suscriben la presente Cesión de Derechos en la ciudad de Machala …...…..... día.. del

mes de….……….…..del año 2014

Roberto A. Santacruz Reyes, Ph.D., Srta. Viviana María Aguilar Añazco

DIRECTOR DE TESIS AUTORA

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DERECHOS DE AUTOR

Autorizo a la Facultad de Ciencias Agropecuarias de la Universidad Técnica de Machala, para

que haga de esta tesis o parte de ella un documento disponible para su lectura, consulta y

procesos de investigación, según las normas de la Institución.

Cedo los derechos en línea patrimoniales de mi tesis, con fines de difusión pública, además

apruebo la reproducción de esta tesis, dentro de las regulaciones de la Universidad, siempre y

cuando esta reproducción no suponga una ganancia económica y se realice respetando mis

derechos de autor.

----------------------------------

AUTOR/A

vii

9

ÍNDICE

TEMA PÁGINA

1. Introducción…………………--….…………… …… ….….16

2. Revisión de Literatura…… ………………………… .…… .…...18

2.1 Calidad de agua en la producción acuícola…… .…..18

2.1.1 Factores que afectan la calidad del agua…… ………… 19

2.1.1.1 Factores físicos… ..….….…………… ………… .…..19

2.1.1.2 Factores químicos… ………..….………………….…… ..…20

2.1.1.3 Apariencia del agua….………………… …........ ..............21

2.1.2 Rangos de calidad de agua para la producción acuícola….. …..21

2.2 Nitrógeno ..……...… .….… ……………… ……………....23

2.2.1 Ciclo del nitrógeno…… .…..………… ……………….…….24

2.2.2 Amoniaco (NH3)……….………… ….…..……………….….25

2.2.2.1 Efectos del NH3 en peces……… .....…… … …..…26

2.2.2.2 Efectos del NH3 en crustáceos……....… ……………........….28

2.2.3 Formas de controlar amonio en sistemas acuícolas.… ..………. 28

2.2.3.1 Bacterias…….…… ……………..……….………….….…..29

2.2.3.1.1 Nitrificación.…… … ………… … ……. ......…31

2.2.3.2 Productos orgánicos… . .… ……………………....….32

2.2.3.2.1 Extracto de Yucca schidigera......... ... ...........................33

2.2.3.3 Productos químicos ….… …….………………………........…33

2.2.3.3.1 Formalina 34

2.2.3.4 Zeolitas… … ….……………………………………….….34

viii

10

2.2.3.4.1 Forma de acción……. … ………...................….34

2.2.3.4.2 Composición química……… …………..…...35

2.2.3.4.3 Aplicación en acuicultura……..… ……………….37

2.2.3.4.4 Efectos benéficos en aguas para cultivos acuícolas 37

3. Materiales y Métodos.............. ................................... .... ....…39

3.1 Materiales.…… …… ………………………….................…39

3.1.1 Lugar de realización …… …… --- ………..…… …39

3.1.1.1 Ubicación geográfica… ..………………...…..……….39

3.1.2 Materiales a utilizar …… …… …..………………………..40

3.1.3 Variables a medir… … …… …..……………………...…41

3.2 Métodos…… …… … ……………………..………………………..42

3.2.1 Metodología de laboratorio… … ……..………………..……42

3.2.1.1 Recolección de la Muestra …… ……………… …..……..42

3.2.1.2 Tratamiento del agua 42

3.2.1.3 Metodología de trabajo 42

3.2.2 Diseño experimental.. ……… ………………………..…43

3.2.3 Análisis estadístico……… ……………………………...……43

4. Resultados 44

5. Discusión .. .……… ………..69

6. Conclusiones…… …………… ……....73

7. Resumen …… …………………… … …...74

8. Abstract 75

9. Bibliografía 76

10. Anexos 81

ix

11

ÍNDICE DE FIGURAS

FIGURA PÁGINA

1. Factores que afectan la calidad de agua (Chang-Gómez, 2009) 19

2. Ciclo del nitrógeno, estanques y peces (Saubot, 2002). 24 3. La marcha de un filtro biólogico hasta desarrollar su máxima capacidad

(Timmons, 2002). 31

4. Ubicación Geográfica del lugar del experimento 39

5. Tratamientos de zeolita A, B y C (0,01g) a salinidad 6ppt y concentración de

TAN 0,3ppm. 44


TAN 0,3ppm. 45


TAN 0,3ppm. 45


TAN 0,6ppm. 46


TAN 0,6ppm. 46

10. Tratamientos de zeolita A, B y C (0,06g) a salinidad 6ppt y concentración

de TAN 0,6ppm. 47


de TAN 1,0ppm. 48


de TAN 1,0ppm. 48


de TAN 1,0ppm. 49


de TAN 0,3ppm. 50


x

12

de TAN 0,3ppm. 50


de TAN 0,3ppm. 51


de TAN 0,6ppm. 52


de TAN 0,6ppm. 52


de TAN 0,6ppm. 53


de TAN 1,0ppm. 54


de TAN 1,0ppm. 54


de TAN 1,0ppm. 55


de TAN 0,3ppm. 56


de TAN 0,3ppm. 56


de TAN 0,3ppm. 57


de TAN 0,6ppm. 58


de TAN 0,6ppm. 58


de TAN 0,6ppm. 59


de TAN 1,0ppm. 60


de TAN 1,0ppm. 60


de TAN 1,0ppm. 61

xi

13

ÍNDICE DE TABLAS

TABLA PÁGINA

1. Rangos de concentración para substancias inorgánicas disueltas en agua

de estanques de cultivo (C. Boyd). 22

2. Parámetros de la calidad del agua con sus valores estándar (Mayer, 2012). 23

3. Parámetros del efecto de amoniaco en peces (Wuhrman y Woker). 27

4. Clasificación de algunas zeolitas (de particular interés en nuestro caso serán las

faujasitas y las pentasil). 36

5. Efecto de las variables para TAN Final. 61

6. Efecto de las variables para TAN Final. 62

7. Comparación Duncan para concentración de Zeolita (TAN final). 62

8. Comparación Duncan para tiempo de TAN final. 63

9. Comparación duncan para concentración inicial de amonio. 63

10. Efectos de las variables en la concentración de TAN para Zeolita A. 63

11. Efecto de las variables para Zeolita A. 64

12. Efectos de las variables en la concentración de TAN para Zeolita B. 64

13. Efecto de las variables para Zeolita B. 65

14. Efectos de las variables en las concentraciones de TAN para Zeolita C. 65

15. Efecto de las variables para Zeolita C. 66

16. Efecto de las variables en la concentración de TAN para salinidad 6ppt. 66



19. Porcentaje de reducción de TAN en las 24h. 68

20. Comparación duncan para concentración de zeolita A. 86

21. Comparación duncan para tiempo de zeolita A. 86

22. Comparación duncan para TAN inicial para zeolita A. 86

23. Comparación duncan para concentración de zeolita B. 87

xii

14

24. Comparación duncan para tiempo de zeolita B. 87

25. Comparación duncan para amonio inicial de zeolita B. 87

26. Comparación duncan para concentración de zeolita C. 87

27. Comparación duncan para tiempo de zeolita C. 88

28. Comparación duncan para amonio inicial de zeolita C. 88

29. Efecto de las variables para salinidad 6ppt. 88



32. Comparación duncan para concentración de zeolita para salinidad 6ppt. 89



35. Comparación duncan para tiempo en salinidad 6ppt. 90



38. Comparación duncan para amonio inicial de salinidad 6ppt. 91



41. Concentración de 0,3ppm de amonio a salinidad 6ppt. 91









50. Parámetros del tratamiento de ZA, ZB, ZC a salinidad 6ppt con

Concentraciones de amonio de 0,3ppm; tomados cada 3 horas. 96


concentraciones de amonio de 0,6ppm; tomados cada 3 horas 99


concentraciones de amonio de1,0 ppm; tomados cada 3 horas 102

xiii

15


concentraciones de amonio de 0,3 ppm; tomados cada 3 horas 105











xiv

16

1. INTRODUCCIÓN

En la actualidad la demanda de productos acuícolas y pesqueros se incrementa cada vez más

por el aumento de población en el mundo, estos insumos (peces, crustáceos, moluscos) son

una importante fuente de proteína animal. Tal es así que, la acuacultura en el 2011 llegó a

producir un total de 63,6 millones de toneladas (FAO, 2011).

Sin embargo la acuacultura no se encuentra libre de problemas; se enfrenta a diferentes

situaciones como son: financieras, nutricionales, climáticas, patológicas y otras.

Ecuador como otros países de Latinoamericamérica, es uno de los productores de camarón y

peces (tilapia principalmente), siendo un país privilegiado por su ubicación geográfica y

clima, pudiendo operar cultivos durante todo el año en condiciones controladas y sostenibles;

pero al igual que en otras partes del mundo se presentan problemas en los cultivos, siendo

estos causados por parámetros biológicos y químicos por los cuales se ven amenazadas las

explotaciones.

La producción en acuacultura para que sea exitosa es necesario tener en cuenta una serie de

factores como son: la calidad de agua, cantidad y calidad de alimento y los parámetros

abióticos que son básicos para el buen desarrollo de la especie en cultivo.

En lo que respecta a calidad de agua en los sistemas de cultivo, se debe tener en cuenta y bajo

control a ciertos metabolitos tóxicos que perjudican la salud de los organismos cultivados,

tales como el amonio (NH4) y amoniaco (NH3) los cuales producen desequilibrio de los gases

y sustancias presentes en el agua, por lo tanto este último se debe mantener bajo los 0,05 ppm.

La presencia de NH4/NH3 se incrementa luego de la alimentación (metabolismo de las

proteínas y su subsecuente proceso de excreción) y cuando el alimento no es consumido por la

especie que se está cultivando. La descomposición de este alimento produce la presencia de

NH4/NH3, que según las concentraciones en que se presente, puede ser muy nocivo para el

camarón, pudiendo provocar poco desarrollo y/o mortalidad.

En el mercado existen varios productos para minimizar o remover este metabolito tóxico,

como por ejemplo: bacterias (bajo el proceso de nitrificación), formalina, extracto de un

17

vegetal (Yucca shidigera), y minerales (zeolitas). Las zeolitas han sido utilizadas

tradicionalmente por los acuicultores como reductores del NH4/NH3 presente en los estanques

de cultivo, las cuales se ofertan en diferentes formas de presentación y calidad, aun cuando su

eficacia en la reducción de TAN es ambigua cuando es expuesta a niveles de salinidad

elevados.

Por lo tanto, la presente investigación tiene como objetivo general el efecto de la capacidad

reductora y la tasa de remoción de amonio en base a zeolitas de uso comercial considerando

diferente salinidades.

Tomando en cuenta el párrafo precedente, la presente investigación plantea los siguientes

objetivos específicos:

1. Determinar la tasa de reducción de amonio aplicando zeolitas comerciales a diferentes

salinidades.

2. Evaluar la dosis adecuada de zeolita y su eficacia para la reducción de amonio en

diferentes salinidades.

18

2. REVISIÓN DE LITERATURA

2.1 CALIDAD DE AGUA EN LA PRODUCCIÓN ACUÍCOLA

Según Egna y Boyd (1997), la calidad de agua se define como los varios químicos disueltos

en el agua, así como la temperatura y otros factores físicos que son atributos del agua, se

combinan en conjunto para formar lo que se denomina “calidad del agua”. La calidad del agua

depende de la ubicación de la granja acuícola frente a las zonas de descarga urbana, agrícola e

industriales, también de la capacidad de bombeo versus la densidad de animales/ha y también

depende de la calidad del alimento, tipo y dosis de fertilización orgánica e inorgánica, lectura

e interpretación oportuna de parámetros físicos-bioquímicos. Con lo que, son un conjunto de

factores los que al final repercuten en la eutrofización del agua, lo que es decisivo para el

manejo.

El manejo apropiado de la calidad del agua de estanques juega una función importante para el

éxito de las operaciones acuícolas. Cada parámetro de calidad del agua puede afectar

directamente la sanidad animal. La exposición de camarones y peces a niveles no apropiados

de oxígeno disuelto, amonio no ionizado, nitrito o ácido sulfhídrico conlleva a estrés y

enfermedades. No obstante, en el ambiente complejo y dinámico de los estanques acuícolas,

los parámetros de calidad del agua también se influencian entre sí (Mayer, E. 2012).

La utilización de nuevas tecnologías en el tratamiento de aguas tiene como ventajas: un

monitoreo y control constante de las variables físico-químicas y sanitarias del agua, la

reutilización del agua, producciones de altas densidades, y como desventajas: el alto costo y

necesidad de mano de obra calificada (Galli-Merino, O. 2007).

19

2.1.1 FACTORES QUE AFECTAN LA CALIDAD DE AGUA

Figura 1. Factores que afectan la calidad de agua (Chang-Gómez, 2009).

2.1.1.1 Factores físicos.- Hay factores no controlables como precipitación, pesticidas, vientos,

pero hay otros que se pueden controlar como el sitio, buen diseño y construcción de los

estanques con fines acuícola, considerando las condiciones climatológicas y geológicas del

sector (Chang, 2009).

Tiempo es el cambio a corto plazo de las condiciones atmosféricas.

Clima es el cambio a largo plazo de las condiciones atmosféricas.

El fenómeno de El Niño influye en factores como la temperatura del aire, radiación solar,

cobertura de nubes, velocidad del viento, precipitación, presión atmosférica, evaporación y

la corriente fría del Perú.

Radiación solar.- es la cantidad de luz recibida. La altura es importante, al subir desciende

la temperatura.

Precipitación.- varía de lugar en lugar, y en períodos pequeños de tiempo. Sitios cálidos

tienen más lluvias que sitios fríos.

CALIDAD

DE AGUA

Nutrientes

Aguas residuales

domésticas e

industriales

Desechos sólidos:

domésticos,

industriales,

hospitalarios, etc.

Hidrocarburos

Metales pesados

Radioactividad

Pesticidas y

plaguicidas

Productos inorgánicos

Movilización

20

Evaporación.- relacionada con precipitación y temperatura del aire, radiación solar,

humedad relativa del aire y velocidad del viento.

Luz.- intensidades mayores presentes al medio día, baja en la mañana. Tiene relación con

la nubosidad, turbidez del agua.

Temperatura del agua.- varía en pequeños rangos durante el día debido a la elevada

capacidad calorífica de la misma. El crecimiento es resultado de procesos bioquímicos.

Roulan (1986) señala que muchas especies pueden vivir en un amplio rango de

temperatura:

- Organismos tropicales y subtropicales no crecen bien en rangos < a 26 - 28C.

- Alta muerte en rangos de 10 - 15C.

- Organismos cálidos crecen bien en rango de 20 - 28C.

- Organismos fríos tienen una alta mortalidad en temperaturas mayores a> 25C.

La temperatura en los estanques no varía mucho. Si la temperatura varía en más de 4C puede

haber shock termal y hasta la muerte (Chang, 2009).

2.1.1.2 Factores químicos:

Fotosíntesis: es la producción de O2, y está afectada por intensidad de luz, turbidez,

presencia de nutrientes, etc.

Consumo de O2: decrece relativamente a medida que la temperatura va incrementándose.

Una temperatura letal es alcanzable decreciendo totalmente el consumo de O2.

Turbidez: es la decreciente habilidad del agua para transmitir la luz. La turbidez y el color

puede resultar de:

- Partículas: arcillas, sedimentos por escurrimiento,

- Materia orgánica: que es materia vegetal en descomposición,

- Plancton: por presencia de fertilizantes.

- Color aparente: es producto de suspensiones no naturales que interfieren con la calidad

del agua. Se la puede hacer con disco Secchi y para ello hay rangos: < 0,20 m agua

demasiada turbia (lodosa). Si es por fitoplancton,( elevada concentración de algas), con

una baja en el nivel de O2. Si es por turbidez, baja la producción:

0,20 – 0,30 m rango intermedio (inicio de problemas)

0,30 – 0,45 m si es por fitoplancton, rango óptimo

21

0,45 – 0,60 m fitoplancton escaso

> 0,60 m agua demasiado clara, productividad inadecuada hay el peligro de

crecimiento de malezas acuáticas.

- Color verdadero: es el color causado por materia suspendida a nivel coloidal, propio de

esa agua (Chang, 2009).

2.1.1.3 Apariencia del agua: La apariencia es muy importante y puede haber natas

producidas por algas y el color de la nata da el color al agua: rojo, amarillo, verde, negro son

producidas por el plancton (dinoflagelados) y no dan problemas (Chang, 2009).

También pueden presentarse burbujas en el fondo que son gases como: metano, butano, CO2.

Si hay muchas, hay presencia de organismos descomponedores en el fondo. En estanques

claros (de especies bioacuáticas) con elevada turbidez hay algas bénticas, cuando se forman

burbujas en el fondo van arrastrando sedimento y algas y no son buenas para la calidad de

agua.

Color.- Si hay mucho humus en dilución, el agua se torna color café o té; si son partículas del

suelo el color depende del tipo del suelo que posea. Si el color es café producido por humus

con lecturas menores de 0,20 m de disco Secchi, la calidad del agua no es mala pero produce

reducción en la entrada de luz y muerte de organismos bénticos.

El fitoplancton da color café, café-verdoso, café-amarillento, amarillo, verde. Colores

indeseables son azul o azul-verdoso, el hierro da coloración amarillenta (Chang, 2009).

2.1.2 RANGOS DE CALIDAD DE AGUA PARA LA PRODUCCIÓN ACUÍCOLA

El manejo apropiado de la calidad del agua de estanques juega una función importante para el

éxito de las operaciones acuícolas (Tabla, 1). Cada parámetro de calidad del agua puede

afectar directamente la sanidad animal. La exposición de camarones y peces a niveles no

apropiados de oxígeno disuelto, amonio no ionizado, nitrito o ácido sulfhídrico conlleva a

estrés y enfermedades. No obstante, en el ambiente complejo y dinámico de los estanques

acuícolas, los parámetros de calidad del agua también se influencian entre sí (Mayer, 2012).

22

Tabla 1. Rangos de concentración para substancias inorgánicas disueltas en agua de

estanques de cultivo (C. Boyd).

Elementos Forma en agua Concentración objetivo

Oxígeno Oxígeno molecular (O2) 5 – 15 mg/L

Hidrógeno H+[-log(H+)=pH]

pH 7 – 9

Nitrógeno

Nitrógeno molecular (N2)

Amonio ionizado (NH4+)

Amonio no ionizado (NH3)

Nitrato (NO3-)

Nitrito (NO2)

Saturación o menor

0.2 – 2mg/L

<0.1 mg/L

0.2 – 10 mg/L

<0.23 mg/L

Sulfuro

Sulfato (SO42-)

Sulfuro de hidrógeno (H2S)

500 – 3,000 mg/L

No detectable

Carbono Dióxido de carbono (CO2) 1 - 10 mg/L

Calcio Ion de Calcio (Ca2+) 100 – 500 mg/L

Magnesio Ion de magnesio (Mg2+) 100 – 1,500 mg/L

Sodio Sodio (Na+) 2,000 – 11,000 mg/L

Potasio Ion de Potasio (K+) 100 – 400 mg/L

Bicarbonato Bicarbonato (HCO3-) 75 – 300 mg/L

Carbonato Carbonato ionizado (CO32-) 0 – 20mg/L

Cloro Ion Cloro (Cl-) 2,000 – 20,000mg/L

Fósforo Ion Fosfato (HPO42-), H2PO4

-) 0.005 – 0.2mg/L

Silicio Silicato(H2SiO3, HSiO3-)

2 - 20mg/L

Hierro1

Hierro ferroso (Fe2+)

Hierro férrico (Fe3+)

Hierro total

0 mg/L

Trazas

0.05 – 0.5 mg/L

Manganeso1

Ion Manganeso (Mn2+)

Dióxido de manganeso (MnO2)

Manganeso total

0 mg/L

Trazas

0.05 – 0.2 mg/L

Zinc1

Ion Zinc (Zn2+)

Zinc total

<0.01 mg/L

0.01 – 0.05 mg/L

Cobre1

Ion Cobre (Cu2+)

Cobre total

<0.005 mg/L

0.005 – 0.01 mg/L

Boro1 Borato (H3BO3H2BO3-) 0.05 – 1 mg/L

Molibdeno1 Molibdato (MoO3) Trazas

Salinidad Total de todosiones 5,000 – 35,000 mg/L

Fuente: Consideraciones sobre la calidad del agua y del suelo en cultivos de camarón (C.

Boyd).

1Los rangos aceptables para estas substancias no son bien conocidos. Los valores mostrados como

concentraciones deseadas son en realidad las concentraciones usuales de los seis metales trazas en

aguas superficiales de los estanques.

23

Niveles desbalanceados de temperatura y pH pueden incrementar la toxicidad del amonio no

ionizado. Por esto, mantener niveles balanceados de los parámetros de la calidad del agua es

fundamental para la salud y crecimiento de organismos de cultivo. Se recomienda monitorear

y evaluar los parámetros de calidad del agua regularmente (Tabla 2).

Tabla 2: Parámetros de la calidad del agua con sus valores estándar.

Parámetro Valores Estándar

Oxígeno Disuelto > 4,00 mg/L

Temperatura Dependiente de la especie

pH 7,50 – 8,50

Salinidad

Agua Dulce: < 0,50ppt

Agua Salobre: 0,50 – 30 ppt

Agua Salada: 30 - 40 ppt

Optimo: 15 – 25 ppt

Dióxido de Carbono (CO2) < 10 ppm

Amonio (NH4+ / NH4-N) 0 – 0,50 ppm

Nitrito (NO2-) < 1 ppm

Dureza 40 – 400 ppm

Alcalinidad 50 – 300 ppm

DBO < 50 mg/L

Fuente: Control de la calidad del agua de estanques para mejorar la producción

de camarones y peces (Mayer, 2012).

2.2 NITRÓGENO (N2)

La disponibilidad de N2 es importante como aporte a la productividad primaria en los

estanques de peces y crustáceos, y varios metabolitos nitrogenados (productos de excreción),

así como los fertilizantes químicos, tales como el NH3 (amoníaco) son tóxicos para ambos. El

rol del N2 en la productividad de las aguas continúa siendo debatido por los investigadores,

debido a que originalmente se consideró al fósforo como el nutriente limitante en las aguas

dulces. El N2 es aparentemente limitante en algunas aguas del trópico, que incluyen las aguas

de los estanques de cultivo (Boyd, 1997).

El nitrógeno inorgánico en los estanques, se encuentra bajo la forma principal de nitratos,

nitritos, amoníaco y amonio. La suma de ellos es denominada “nitrógeno inorgánico disuelto”

o “nitrógeno total inorgánico”. Estos productos se convierten a través del ciclo natural del

nitrógeno, y la presencia o abundancia de sus diferentes formas son afectadas por el pH del

24

agua, su concentración de Oxígeno Disuelto (OD) y los organismos que producen o consumen

ciertas formas de nitrógeno. Además, el agua, los fertilizantes y los alimentos ofrecidos,

constituyen fuentes adicionales de nitrógeno, sumado a la fijación de éste por el fitoplancton y

las bacterias.

Cuando se considera al nitrógeno como un nutriente, las células algales lo incorporan en

forma de nitrato, aunque también el amonio (NH4) puede ser utilizado por el fitoplancton. Las

aguas de los estanques parecieran ser más altas en nitrógeno proveniente del amonio, que en

nitratos /nitritos (Boyd, 1997).

2.2.1 CICLO DEL NITRÓGENO

El ciclo del nitrógeno (Figura 2), es el proceso biológico de la transformación de ciertos

elementos que, de no interrumpirse, mantendrá de manera correcta el estado del agua. En

pocas palabras es la oxidación del amoníaco (NH3) a nitritos (NO2) y luego de nitratos (NO3)

a través de diferentes bacterias nitrificantes benéficas (Saubot, 2002).

Figura 2: Ciclo del nitrógeno, estanques y peces (Saubot, 2002).

25

En síntesis:

El ciclo del nitrógeno está presente en todo estanque y lago.

Los peces es lo último que se introduce en un lago o estanque.

El tiempo en que se madura un estanque o lago depende de su volumen, pero son al

menos ocho semanas. Más tiempo cuanto mayor sea el volumen de agua (pero también

serán menores las fluctuaciones químicas).

Si se quiere tener plantas, es convenientes colocarlas apenas se comienza la maduración

del estanque.

Si no se quiere tener plantas, los filtros cobran mucha importancia para lograr tener el

agua cristalina apta para peces (Saubot, 2002).

2.2.2 AMONIACO (NH3)

El amoníaco proviene de la excreción de los animales acuáticoscomo el producto final del

metabolismo de las proteínas (Walshy Wright, 1995), y la mineralización de nitrógeno

orgánico en las heces, alimentos no consumidos y otras materias orgánicas (Avnimelech y

Ritvo, 2003).

El amoníaco se convierte a nitrito, el cual es tóxico para los animales acuáticos (Lewis y

Morris, 1986). Por lo tanto, el nivel de amoníaco se debe mantener a un mínimo en entornos

de la acuicultura (Santacruz-Reyes, y Chien, 2009; 2010; 2012).

Amoníaco

El amoníaco es un compuesto nitrogenado, gaseoso, incoloro y alcalino. Es más liviano que el

aire y su olor es muy reconocible y particular. Se caracteriza por su alta solubilidad en agua,

reaccionando con ella, por lo que se forman dos iones, uno de amonio (NH4) y otro de

oxidrilo (OH-). Podemos concluir esta explicación exponiendo que la solución de amoníaco

en el agua presenta una parte en forma de amoníaco libre no ionizado y otra de amoníaco sí

ionizado (Boyd, 1990).

El amoníaco no ionizado existe por sí mismo, mientras que el ionizado solo puede existir

como parte de un compuesto, como el hidróxido de amonio o el cloruro de amonio.

26

El amonio es producido principalmente por la excreción directa de los camarones así como la

descomposición del material orgánico que contiene nitrógeno bajo condiciones aeróbicas (en

la presencia de oxígeno) y anaeróbicas (en la ausencia de oxígeno), los cuales son

descompuestos principalmente por bacterias (Boyd, 1990).

Con el aumento de la alimentación, aumenta la acumulación de amoniaco total (NH4). El

amoniaco no ionizado (NH3) es la forma de amoniaco liberado hacia el medio ambiente. Al

aumentar el pH (desde 7,5 a 8,5) y la temperatura (desde 25-35 oC) se incrementa la forma de

amoniaco no-ionizado, el cual es más tóxico para los camarones.

Cuando el amoniaco es liberado hacia el ambiente acuático y se acumula en concentraciones

grandes, puede crear problemas de estrés en los camarones. Generalmente, los resultados son

crecimientos y eficiencia de alimentación pobres y ocurren efectos adversos bajo exposiciones

prolongadas de 0,10mg/L (valores tan bajos como 0,09 mg/L provocan crecimientos lentos en

M. rosenbergi; mientras que 0,45 mg/L causan un 50% de reducción del crecimiento en

camarones peneidos). Los camarones pueden tolerar mayores rangos de amoniaco (0,60 –

2,00mg/L) por periodos cortos de exposición, pero éstos camarones expuestos son más

susceptibles a las enfermedades tanto en sistemas semi-intensivos como intensivos (Boyd,

1990).

2.2.2.1 Efectos del amoniaco (NH3) en peces: Las proporciones de amoníaco libre y de ión

dependen del pH y de la temperatura del agua. Cuando estos factores aumentan, también lo

hace la proporción de amoníaco libre, que es tóxico para los peces. El ión amoníaco es tóxico,

ya que no puede penetrar en los tejidos de los peces.

Entre los efectos adversos del amoníaco libre podemos destacar los siguientes:

Inhibición del crecimiento

Disminución de la fecundidad

Disminución de las defensas frente a las enfermedades

Irritación del sistema nervioso, con espasmos

Pérdida de color en las aletas

Destrucción branquial

http://www.idoneos.com/index.php/concepts/amoniaco-libre

http://www.idoneos.com/index.php/concepts/ion-amonio

27

La tolerancia de los peces a los efectos adversos dependerá de:

Tipo y tamaño del pez

Estado de salud general

Escasez de oxígeno

Exceso de anhídrido carbónico

Equilibrio electroquímico

Tabla 3. Parámetros del efecto de amoniaco en peces

pH % Amoníaco

libre

% Ión

amonio

6 0 100

7 1 99

8 4 96

9 25 75

10 78 22

11 96 4

Fuente: Tabla de Wuhrman y Woker,

Se sabe que 0,20 mg de amoníaco libre por litro traen como consecuencia un aumento de la

frecuencia respiratoria de los peces (Boyd, 1990).

El anhídrido carbónico reduce la toxicidad del amoníaco libre hasta concentraciones de 15 a

60 partes por millón, aunque pasando estos valores la toxicidad aumenta notablemente. Antes

de realizarse un cambio de agua que altere el pH, debe conocerse el valor de amoníaco

ionizado.

Cuando el pH es menor a siete la nitrificación se detiene, por lo que el amoníaco no puede ser

oxidado por las bacterias. Por ejemplo, una concentración de amoníaco de 10 partes por

millón tiene un efecto altamente letal en un acuario cuyo pH sea de valor nueve (alcalino);

mientras que la misma concentración será inocua en un acuario cuyo pH sea de valor seis

(ácido) (Boyd, 1990).

28

2.2.2.2 Efectos del amoniaco (NH3) en crustáceos: Como en otros organismos acuáticos

(peces y otros crustáceos), el amoniaco puede provocar cambios histológicos como lesiones

en las branquias y otros órganos, crecimiento lento. Generalmente, cualquier cantidad medible

de amoniaco afectará el crecimiento y los resultados adversos sobre el crecimiento pueden

provenir de lo siguiente (Boyd, 1990):

Absorción lenta o reducida de oxígeno causada por daño a las branquias;

Demanda de energía adicional causada por el uso de vías alternativas de

desintoxicación;

Perturbaciones en la regulación osmótica y

Daños físicos en varios tejidos.

Cuando el amoniaco es liberado hacia el ambiente acuático y se acumula en concentraciones

grandes, puede crear problemas de estrés en los camarones. Generalmente, los resultados son

crecimientos y eficiencia de alimentación pobres y ocurren efectos adversos bajo exposiciones

prolongadas de 0,10 mg/L (valores tan bajos como 0,09 mg/L provocan crecimientos lentos

en M. rosenbergi; mientras que 0,45 mg/L causan un 50% de reducción del crecimiento en

camarones peneidos). Los camarones pueden tolerar mayores rangos de amoniaco (0,6 – 2,0

mg/L) por periodos cortos de exposición, pero éstos camarones expuestos son más

susceptibles a las enfermedades tanto en sistemas semi-intensivos como intensivos (Boyd,

1990).

2.2.3 FORMAS DE CONTROLAR AMONIO EN SISTEMAS ACUÍCOLAS

La concentración del amoníaco como tal puede afectar directamente la tasa de nitrificación,

en general la capacidad del biofiltro para oxidar nitrógeno aumenta proporcionalmente con el

aumento de la concentración del amoníaco en un rango limitado de concentraciones. Se

asume que la relación proporcional existe en el rango de o hasta al menos 3 ppm. La

proporcionalidad en algún punto decrecerá y eventualmente el incremento de la concentración

del nitrógeno amoniacal total (TAN) no agregara nitrificación adicional, este fenómeno se

muestra en la figura 3 (Ebeling, 2000). Es posible controlar las variables como TAN, el

amoniaco y la concentración de nitrito, manteniendo una adecuada calidad del agua para la

trucha arco iris (Figueroa et al., 2007).

29

La descomposición de estos compuestos nitrogenados es especialmente importante en

sistemas de recirculación de acuicultura debido a la toxicidad del amoníaco, nitrito y en algún

grado el nitrato (Wheaton, 1985). El proceso de la remoción de nitrógeno amoniacal en un

filtro biológico se denomina nitrificación, y consiste en la sucesiva oxidación del amoníaco

primero a nitrito y finalmente a nitrato. También existe un proceso de reducción anaeróbica de

nitrato a nitrógeno molecular gaseoso denominado desnitrificación.

La filtración biológica puede ser una medida efectiva para controlar el amoniaco; en

comparación con el recambio del agua para controlar sus niveles. Existen dos tipos de

bacterias las que colectivamente ejecutan la nitrificación. Estas son generalmente catalogadas

como bacterias quimioautótrofas, ya que obtienen la energía de la oxidación de compuestos

inorgánicos a diferencias de las bacterias heterótrofas que obtienen energía oxidando

compuestos orgánicos (Hagopian,Riley, 1998).

Las bacterias de oxidación del amoniaco obtienen su energía oxidando amoniaco no ionizado

a nitrito como: Nitrosomonas, Nitrosococcus, Nitrosospira, NitrosolobusyNitrosovibrio. Las

bacterias de oxidación del nitrito al nitrato son: Nitrobacter, Nitrococcus, Nitrospira y

Nitrospina(Galli-Merino, 2007).

Gran cantidad de amoniaco atrapado en el sedimento del estanque puede ser removido durante

la preparación de este, al secar y arar el suelo exponiéndolo al aire. Esto favorece la

nitrificación, desnitrificación y amonificación (Boyd, 1990).

Otra manera de remover el amoniaco durante el proceso de engorde, es bajando un porcentaje

del nivel de agua del estanque (10-30%) y luego llenar para reemplazar el volumen

desalojado. Este procedimiento es más apropiado que el flujo continuo de entrada y salida de

agua.

2.2.3.1 Bacterias: Las bacterias nitrificantes son principalmente autotróficas obligadas, que

consumen dióxido de carbono, y aeróbicas obligadas, que requieren oxígeno para

desarrollarse. Las bacterias heterotróficas crecen significativamente más rápido que las

bacterias nitrificantes y prevalecen por sobre estas compitiendo por espacio y oxígeno en los

biofiltros cuando las concentraciones de materia orgánica disuelta y particulada son altas. Por

30

ese motivo, es imperativo que la fuente de agua para los biofiltros sea mantenida tan limpia

como sea posible con la mínima concentración de sólidos totales.

La nitrificación es un proceso de dos etapas, donde primero el amoniaco se oxida a nitrito y

luego el nitrito se oxida a nitrato. Los dos pasos de la reacción normalmente se llevan a cabo

secuencialmente, ya que el primer paso tiene una tasa de reacción cinética más alta que el

segundo paso, el proceso es normalmente controlado por la oxidación del amoniaco y como

resultado no existe una apreciable acumulación de nitrito(Galli-Merino, 2007).

Equilibrio Ácido / Base:

NH3 + H2O NH4+ + OH-

Nitrosomonas

NH4+ + 1,5 O2 NO2

-+ 2 H+ + 84 Kcal/mol amoníaco

Nitrobacter

NO2-+ 0,5 O2 NO3

- + 17,8 Kcal/mol nitrito

Total

NH4++ 2 O2 NO3

- + 2 H+ + H2O + Energía

31

La puesta en marcha típica de un biofiltro hasta desarrollar su capacidad máxima se muestra

en la figura 3.

Figura 3. La marcha de un filtro biólogico hasta desarrollar su máxima

capacidad (Timmons, 2002).

2.2.3.1.1 Nitrificación: Las principales fuentes de amoniaco son la excreción y el flujo de

sedimentos, derivado de la mineralización de la materia orgánica y la difusión molecular de la

reducción de sedimentos. La nitrificación es el método más práctico para la eliminación de

amoníaco a partir de sistemas cerrados en acuicultura y se logra comúnmente por el ajuste de

arena y grava (bio-filtros) a través del cual el agua se permite circular. Los oxidantes del

amoníaco se colocan en cinco géneros: Nitrosomona,Nitrosovibrio, Nitrosococcus,

Nitrolobus y Nitrospira. La nitrificación no sólo produce nitrato, sino también altera el pH

hacia el intervalo ácido, facilitando la disponibilidad de materiales solubles. En la gran

mayoría de los estanques de acuicultura se acumulan nitrato, ya que no contienen un filtro de

desnitrificación. Filtros desnitrificantes ayudan a convertir el nitrato a nitrógeno. Se crea una

región anaeróbica donde las bacterias anaerobias pueden crecer y reducir el nitrato a gas

nitrógeno. El nitrato puede seguir varios caminos bioquímicos después de la producción de la

nitrificación (Chanu, Mandal, 1991).

32

La nitrificación es la oxidación secuencial de dos pasos, de amoníaco a nitrato. La oxidación

de amoníaco es mediada por Nitrosomonas y la oxidación de nitrito está mediada por

Nitrobacter. Losorganismos son quimioautotróficos, barras móviles gram-negativas con

tiempos de generación más largos (20 a 40 h). Las reacciones proceden de la siguiente

manera:

NH4+ + 1 ½ O2 NO2

- + 2H+ + H2O

y

NO2- + ½ O2 NO3

-

Por lo tanto, se requieren dos moles de oxígeno por cada mol de NH4 oxidado.Estos

organismos obtienen energía de la oxidación de NH4 y NO2. ( Focht y Verstraete, 1977) .

La nitrificación se ve afectada por la concentración de oxígeno disuelto, temperatura,

concentración de sustrato, pH, cantidades de bacterias nitrificantes, y la disponibilidad de

superficies. Muchos de estos factores están relacionados entre sí y su efecto sobre la

nitrificación es complejo ya que requieren:

Oxígeno para obtener energía a partir de la reducción N, Kmde oxígeno desde 0,3

hasta 0,9 mg /L (Painter 1970).

pH ligeramente alcalino (7 a 8,5) para un crecimiento óptimo, a pH ≥ 8,5 Nitrobacter

puede ser inhibida y hay mas Nitrosomonas, lo que resulta en una acumulación de

nitrito (Fenchel y Blackburn, 1979).

2.2.3.2 Productos orgánicos: Al aplicar abonos orgánicos que tengan una tasa C:N = 10-15:1

promueven fuentes de carbono orgánico para favorecer el desarrollo de bentos (bacterias,

fitoplancton y zooplancton) y/o fertilizantes inorgánicos. Cuando existe bentos, existirá

materia orgánica disponible donde se fijarán y desarrollan (Nitrosomonas y Nitrobacter)

desde el inicio de la etapa de engorde, que transformarán el nitrógeno amoniacal procedente

de los desechos nitrogenados (amonio excretado por los camarones, heces, organismos

muertos, etc.) en nutrientes (nitratos) disponibles para otros organismos acuáticos

(especialmente las diatomeas) (Boyd, 1990).

33

Gran cantidad de amoniaco atrapado en el sedimento del estanque puede ser removido

durante la preparación de este, al secar y arar el suelo exponiéndolo al aire. Esto favorece la

nitrificación, desnitrificación y amonificación.

2.2.3.2.1 Extracto de Yuccaschidigera: El extracto vegetal de esta planta nativa del sudoeste

de EE.UU. y México ha generado interés en las industrias de ganado y aves de corral (Headon

y Walsh 1993). Su extracto se ha utilizado para controlar la acumulación de amoníaco en

instalaciones de confinamiento y para reducir la concentración de amoníaco en los

excrementos de animales (Wallace, Arthaud y Newbold1994; Killeen, Connolly, Walsh,

Duffy, Headon y Power 1998; Hristov, McAllister, van Herk, Cheng, Newbold y Cheeke

1999). Aunque el extracto de yuca puede ser potencialmente utilizado en la acuicultura para

los mismos fines (controlar amoniaco) como en la cría de ganado, pocos estudios se han

realizado sobre el extracto.

Esta planta también fue utilizada como aditivo en piensos para mejorar el metabolismo de las

proteínas y reducir la excreción de amonio (Tidwell, Webster, Clark y Yancey1992, Francis

2001; Kelly y Kohler 2003, El-Saidy y Gaber2004; Gaber 2006). Este extracto también se

utilizó para reducir el amoniaco en aguas de cultivo en acuicultura (Tidwell et al.1992;

Sarkar1999a, b) Tidwell et al. (1992) informaron que 96 h después de la adición de este

extracto en acuarios de 30 L que contiene 2 mg/L de nitrógeno amoniacal total (TAN), se

informó que los niveles de TAN bajaron de un 58 - 60% que el control al final del ensayo.

Estudios realizados demostraron la eficacia y potencial de Y. Schidigera (Yupe) para la

reducción de amoniaco en agua de mar. La eficacia para la reducción de amoníaco, de origen

natural y de seguridad hacen de Yupe un compuesto potencialmente adecuado para la gestión

de la calidad del agua en la maricultura; por consiguiente, Yupe es como una solución natural,

segura y eficaz para la reducción de amoníaco en agua de mar y cultivos de maricultura

(Santacruz-Reyes, y Chien, 2009; 2010; 2012).

2.2.3.3 Productos químicos: La remoción de amoniaco también se puede lograr mediante la

aplicación de ciertos productos químicos como la formalina y zeolitas, los cuales tienen alta

capacidad para absorber amoniaco (Boyd, 1990).

34

2.2.3.3.1 Formalina: Las altas concentraciones de amoníaco en los estanques de acuicultura

pueden provocar malos crecimientos y supervivencia en los peces y camarones (Colt y

Tchobanoglous, 1976,1978; Colt y Armstrong, 1981; Tucker y Robinson, 1990).Muchas

especies de peces y productores de camarón deben vigilar las concentraciones de nitrógeno

amoniacal total (TAN) en estanques, y cuando las concentraciones exceden 2 o 3 mg/L,

diversas técnicas reductoras de concentraciones de TAN puede ser implementadas. La zeolita

natural y sintéticas son los medios de intercambio de iones que eliminan el amoniaco del agua

(Marcado y Bills, 1982), pero no hay pruebas de que las zeolitas puede reducir eficazmente

las concentraciones de amoníaco en los estanques.

Sin embargo, los tratamientos de la zeolita en estanques de camarón para el control de

amoniaco es una práctica habitual en el Sudeste de Asia (Boyd, 1990). La formalina también

se aplica a veces en los estanques de camarón en el Sudeste de Asia para la eliminación de

amoniaco, pero su eficacia no se ha estudiado. Los granjeros también aplican suspensiones

bacterianas in vivo en estanques para mejorar la calidad del agua. Los vendedores de las

suspensiones bacterianas afirman que eliminan el amoníaco, a través de la oxidación

bacteriana de nitrato (nitrificación), pero los estudios anteriores no han demostrado los

beneficios del aumento de bacterias en estanques (Boyd et al, 1984. Tucker y Lloyd, 1985).

La formalina de 5-10 mg/L puede reducir 50% del TAN en laboratorios y estanques de cultivo

y concentraciones de ≥ 15 mg/L demostraron que el tratamiento con formalina de estanques

podría matar el fitoplancton y causa el agotamiento del DO (Chiayvareessajja y Boyd, 1993).

2.2.3.4 Zeolitas: Las zeolitas son aluminosilicatos hidratados originados por fenómenos

geológicos de transformación como resultado de una reacción con aguas alcalinas de cenizas

volcánicas depositadas en lagos y mares someros (Rodríguez, 2002).

2.2.3.4.1 Formas de acción: Las zeolitas muestran una estructura de poros y canales,

semejante a un panal de abejas. Los poros son tan pequeños que sólo un gramo del producto

tiene un área equivalente de 40 metros cuadrados. Además, por las características eléctricas de

los átomos, tiene una alta capacidad de intercambio catiónico, lo que le permite absorber y

adsorber diversos tipos de iones y moléculas, entre ellos agua, que liberará cuando sea

35

necesario. Las zeolitas son capaces de absorber hasta 30% de su peso seco en gases, tales

como nitrógeno y amonio, más de 70% en el agua, y hasta 90% de ciertos hidrocarburos. Las

propiedades físicas y químicas las han hecho útiles en muchas aplicaciones en agricultura,

pecuaria, tratamiento de aguas, retención de olores, separación de gases, entre otras muchas

aplicaciones (Rodríguez, 2002).

2.2.3.4.2 Composición química:

Na56Al56Si136O384 * wH2O

En donde wH2O sólo significa un número variable de moléculas de agua (H2O). Esta

fórmula quiere decir que, en promedio, a 56 átomos de sodio y 56 átomos de aluminio le

corresponden 136 de silicio y 384 de oxígeno (Leffond, 1975).

Las aplicaciones de las zeolitas naturales hacen uso de uno o más de sus propiedades

químicas, que generalmente incluyen el intercambio de iones, adsorción o deshidratación

y rehidratación. Estas propiedades están en función de la estructura de cada especie, y su

estructura y composición catiónica (Leffond, 1975).

Las zeolitas son aluminosilicatos hidratados cristalinos en forma de estructuras atómicas

tridimensionales, caracterizadas por la habilidad de retener y liberar agua e intercambiar

ciertos átomos constituyentes, sin cambiar su estructura atómica (Tabla 4).

Posee estructura tetraédrica de sílice (SiO4) en la cual los oxígenos de cada tetraedro se

comparten con los tetraedros adyacentes. Si cada tetraedro de la estructura contiene sílice

como átomo central, la estructura general es eléctricamente neutra. Alguna sílice tetravalente

es reemplazada por aluminio trivalente, dando lugar a deficiencia de carga positiva. La carga

es balanceada con átomos monovalentes y bivalentes, tales como sodio (Na+), potasio (K+),

calcio (Ca2+) y magnesio (Mg2+) en cualquier lugar de la estructura. La fórmula empírica de

una zeolita es del tipo: M2/nO.Al2O3.xSiO2. yH2O (Rodríguez, 2002).

36

Tabla 4. Clasificación de algunas zeolitas (de particular interés en nuestro caso serán

las faujasitas y las pentasil).

Volumen de

poro *

Grupo de las analcimas

Analcimas Na16(Al16Si32O96) 16H2O 0.18

Wairakita Ca8(Al16Si32O96) 16H2O 0.18

Leucita K16(Al16Si32O96) 0

Grupos de las natrolitas

Natrolita Na16(Al16Si24O80) 16H2O 0.21

Edingtonita Ba2(Al4Si6O20) 6H2O 0.35

Thomsonita Na4 Ca8 (Al20Si20O80) 24H2O 0.32

Grupo de las filipsitas

Filipsita (K,Na)5 (Al5Si11O32) 10H2O 0.30

Garronita NaCa2.5 (Al6Si10O32) 14H2O 0.41

Gismondina Ca4(Al8Si8O32) 16H2O 0.47

Grupo de las heulanditas

Heulandita Ca4(Al8Si28O72) 24H2O 0.35

Clinoptilolita Na6(Al6Si30O72) 24H2O 0.34

Estilbita Na2 Ca4 (Al10Si26O72) 32H2O 0.38

Grupo de las mordenitas

Mordenita Na8(Al8Si40O96) 24H2O 0.26

Ferrierita Na1.5 Mg2 (Al5.5Si30.5O72) 18H2O 0.24

Epistilbita Ca3(Al6Si18O48) 16H2O 0.34

Grupos de las chabasitas

Chabasita Ca2(Al4Si8O24) 13H2O 0.48

Erionita (Ca, Mg, Na, K) 4.5 (Al,Si27O72) 27H2O 0.36

Zeolita L K6 Na3 (Al9Si27O72) 21H2O 0.28

Grupo de las faujasitas

Faujasitas (X, Y) Na12Ca12Mg11(Al59Si133O354) 26H2O 0.53

Zeolita A Na12(Al12Si12O48) 27H2O 0.47

Zeolita ZK-5 Na30(Al30Si66O192) 98H2O 0.45

Grupo de las laumontitas

Laumontitas Ca4(Al8Si16O48) 16H2O 0.35

Yugawaralita Ca4(Al8Si20O56) 16H2O 0.30

Grupo de las pentasil

Zeolita ZSM-5 Nan(AlnSi96-nO192) 16H2O 0.32 Zeolita ZSM-11

*Cm3 de agua/cm3 de cristal

Fuente: La Ciencia para Todos. Qué es una Zeolita.

37

2.2.3.4.3 Aplicaciones en acuicultura: Por sus propiedades, las zeolitas presentan beneficios

en varias aplicaciones y usos finales en la acuacultura. Su alta capacidad de intercambio

catiónico les permite ser un excelente medio para la remoción del amonio tóxico a través del

intercambio iónico como un filtro físico-químico, o para la eliminación de bacterias como

sustrato en un filtro biológico. Las zeolitas se usan en la remoción de gases perjudiciales en

filtros de acuarios y estanques (Rodríguez, 2002).

Una vez usado y cargadas con amonio, las zeolitas se convierten en un excelente enmendador

de suelos que se puede emplear en jardines y cultivos, permitiendo que las plantas dispongan

de un suministro de nitrógeno (del amonio) por períodos prolongados, y actúa como un

mecanismo de lenta liberación de nutrientes en el suelo, haciendo más efectiva la acción de

los fertilizantes.

Una aplicación novedosa involucra la adición de zeolitas y sulfato ferroso a las excretas de los

pollos. La mezcla es secada y usada como fertilizante orgánico inodoro. Este también es

usado como un alimento rico en proteínas para peces, aves y otros animales domésticos. La

mezcla contiene 4,5% N, 4,5% P2O5, 2.5% K2O, y 22% de proteína utilizable, y ha sustituido

exitosamente hasta un 20% de las raciones normales de cerdos, aves y peces comestibles

(Rodríguez, 2002).

Las propiedades físicas y químicas de las zeolitas nos permiten varias maneras de tratar los

desechos animales, incluyendo:

Reducción de mal olor y contaminación.

La creación de ambientes más saludables en criaderos confinados.

Control de la viscosidad y retención de nutrientes en el estiércol.

Purificación del gas metano producido como resultado de la digestión anaeróbica

(descomposición) del excremento.

2.2.3.4.4 Efectos benéficos en aguas para cultivos acuícolas: El uso de zeolita en

acuicultura se inicia para eliminar el amonio. Más tarde, se comenzó a saber que estos

productos ejercen una influencia sobre la transformación de nitratos en nitritos, y a través de

esta vía comienza el estudio de su intervención en los procesos biológicos. A partir de estos

estudios, se encuentra que la cantidad de amonio y el tipo de baterías producidas en la

descomposición del pienso para peces depende del tipo de productos zeolítico añadido al

38

agua. Entre los procesos biológicos influidos por los productos de naturaleza zeolítica (PNZ)

está el cultivo de microalgas marinas y los copépodos. Por otro lado se han demostrado las

propiedades fungicidas y microbiológicas de zeolitas conteniendo iones de metales pesados,

entre los que se encuentran el Zn2+.

La actividad del amplio espectro microbicida de zeolita zíncica (ZZ) ha hecho posible el

desarrollo de métodos de purificación de aguas de bebida para el consumo humano. La dosis

de zeolita utilizadas en el tratamiento de aguas de mar para la producción de microalgas

marinas están entre 5 y 100 mg/L, sin embargo las recomendaciones son de 10 a 20 mg/L

(López et al, 1999).

39

3. MATERIALES Y MÉTODOS.

3.1 MATERIALES

3.1.1 LUGAR DE REALIZACIÓN

La investigación se realizó en el Laboratorio “Alimentsa S.A.”, ubicada en estero Huayla y

Octava Norte, en Puerto Bolívar que pertenece al cantón Machala, provincia El Oro, Ecuador.

3.1.1.1 Ubicación geográfica: El sitio en donde se realizó la investigación se encuentra

ubicado en las siguientes coordenadas geográficas;

Longitud: 79° 59' 00" W; - 79.983333 Puerto Bolívar

Latitud: 31° 16' 00" S; - 3.266667 Puerto Bolívar

Figura 4. Ubicación Geográfica del lugar del experimento. (Punto Naranja)

40

3.1.2 MATERIALES A UTILIZAR:

Materiales de laboratorio.

Equipos:

Termómetro

Potenciómetro

Refractómetro

Balanza de precisión.

Espectrofotómetro - Hach DR 2800

Botella des-ionizadora

Materiales de Vidrio:

Vasos de precipitación de 250 ml(9)

Fiolas de 125ml(39)

pipetas volumétricas de 10ml(2)

pipetas normales de 10 ml(3)

Probeta de 100 ml(3)

Celdas de 25 ml(2)

Otros:

Pera

Manga filtro de 5 micras

Guantes.

Papel toalla

Mandil

Mascarilla

tanques de 60litros de capacidad(3)

botella de 2 litros(9)

Recipientes varios

41

Sustancias y Reactivos

Solución oxidante

Nitroprusiato de sodio

Solución fenol

Agua destilada

Sal

Cloruro de amonio

Zeolitas ( A – B – C )

Materiales de oficina

Computadora.

Software para estadística SAS –SigmaPlot versión 12.

Impresora.

Calculadora.

Resma de papel A4.

Libreta de apuntes.

Esferos.

Etiquetas.

Marcador.

Muestras para análisis:

Agua a:

6

10 ppt de Salinidad

15

3.1.3 VARIABLES A MEDIR.

Las variables a medir son las siguientes:

pH.

Temperatura.

Salinidad.

Nitrógeno Amoniacal Total (TAN)

42

3.2 MÉTODOS

3.2.1 METODOLOGÍA DE LABORATORIO.

La metodología se basó en el análisis de catalizadores que aceleran el ciclo de nitrificación sin

alterar el sistema de cultivo.

3.2.1.1 Recolección de la muestra: Las muestras de agua fueron recolectadas en una

camaronera ubicada en el km 15 vía Balosa, en tres estanques en producción, con salinidades

de 6, 10 y 15 ppt (Anexo 3).

3.2.1.2 Tratamientos del agua: Una vez recolectada el agua se procedió a fíltralas con una

manga de cinco micras para eliminar partículas grandes; una vez filtradas las muestras se las

coloco en tres tanques de 60 litros de capacidad (6, 10 y 15 ppt) y luego se dejó envejecer el

agua durante un mes para disminuir los nutrientes acumulados antes de procesarla. (Anexo 4).

3.2.1.3 Metodología de trabajo: En la presente investigación se utilizaron fiolas de 125ml,

donde se colocó agua a diferentes salinidades (6, 10, 15 ppt) y a diferentes concentraciones de

NH4 (0 – 0,3 – 0,6 – 1,0 ppm) en los cuales se probaron tres diferentes zeolitas comerciales

(A, B, C) con pesos de 0,01 – 0,03 – 0,06g cada tratamiento se realizó en 1 L de agua de un

estanque en producción. Se realizó tres repeticiones de cada procedimiento, una vez listas las

fiolas con las muestras de agua se procedió a la preparación de reactivos correspondientes

para el análisis de NH4, aplicando el método de determinación de amonio (Método del Fenol-

Anexo 1.).

Una vez realizada la mezcla se dejó reposar por 30mín, antes de la lectura en el

espectrofotómetro con su nanómetro correspondiente de 640. Las lecturas se realizaron cada 3

horas por 24 horas para cada tratamiento, las lecturas se las realizó en el Hach Dr. 2800.

Después de la toma de datos se procedió a realizar una curva donde nos permite determinar la

cantidad de remoción de NH4 que tienen las diferentes zeolitas comerciales en las distintas

salinidades; y en que salinidad funciona mejor. Al igual cada tres horas se tomó los

parámetros: pH y temperatura (Anexo 5-12).

43

3.2.2 DISEÑO EXPERIMENTAL

El ensayo se realizó con el propósito de determinar la eficiencia de las zeolitas comerciales

como captador de amonio bajo diferentes salinidades. Cada tratamiento se realizó con tres

repeticiones.

Otra de las variables son las tres zeolitas, tres salinidades y tres concentraciones de amonio

todos los ensayos son por triplicado, y se incluyó un control o testigo igualmente por

triplicado.

Durante el ensayo se realizó mediciones secuenciales de nitrógeno amoniacal total (TAN)

cada tres horas por un periodo de 24 horas continuas, con el objetivo de determinar la

capacidad de captación o remoción de amonio de las diferentes zeolitas comerciales utilizadas

en esta investigación.

Como complemento, en cada tiempo de exposición se midieron los siguientes parámetros:

temperatura y pH (Anexo 8).

3.2.3 ANÀLISIS ESTADÍSTICO

El análisis estadístico incluye la estadística descriptiva y un análisis de varianza (anova) de 3

y 4 vías para definir la influencia de las variables propuestas en esta investigación. Diferencia

estadística entre tratamientos se define cuando P≤ 0.05 para lo cual se utilizó la prueba de

Duncan para su posterior clasificación.

Para el análisis de los datos se empleó los paquetes estadísticos: Software para estadística

SigmaPlot versión 12 y Statistical Analysis Software (SAS)

44

4. RESULTADOS

4.1 EFECTO DE LA ZEOLITA, SALINIDAD Y CONCENTRACIÓN

INICIAL DE AMONIO EN LA REDUCCIÓN DE TAN.

4.1.1 CONCENTRACIÓN DE 0,3 ppm DE AMONIO A SALINIDAD 6 ppt:

En la reducción de amonio por zeolitas a salinidad 6ppt, se observa que a medida que

incrementa la cantidad de zeolita y el transcurso de las horas bajan las concentraciones de

amonio en todos los tratamientos realizados, sin embargo es notorio que en las figuras 5-6-7 a

partir de las 12h la reducción se estabiliza, alcanzando aparentemente un punto de saturación;

así teniendo una reducción de aproximadamente un 74% de la concentración inicial, para

luego llegar a un punto en que se estabiliza la concentración hasta la última lectura de 24h.

Sin embargo es notorio que el tratamiento de Zeolita A (línea roja) es menor el consumo de

amonio excepto en la figura 5; que se mantiene a nivel con el tratamiento ZC; luego tenemos

el tratamiento ZB (línea verde) es el que mayor reducción manifestó en la investigación; en

tratamiento ZC (línea lila) la reducción se mantiene entre ambos tratamientos mencionados

anteriormente. También se observa en la figura 7 que el inicio del tratamiento ZC (línea lila)

en el muestreo de 3h la concentración aumenta a diferencia de los otros tratamientos.

Figura 5. Tratamientos de zeolita A, B y C (0,01g) a salinidad 6ppt y

concentración de TAN 0,3ppm.

45






En la concentración de 0,6ppm de amonio a salinidad 6ppt, se observa que hay una

reducción de amonio a medida que incrementa las cantidades de zeolitas y en el transcurso de

las horas; también se observa que en el muestreo de 6-9h la reducción se detiene y vuelve a

elevarse hasta el muestreo de 12h, para luego volver a descender a un aparente punto de

saturación.

46

Sin embargo se observa que existe una reducción del 50% hasta los muestreos de 6 - 9h y

luego elevarse aproximadamente un 35% hasta el muestreo de 18h y volver a descender las

concentraciones. Es notorio que el tratamiento de Zeolita A (línea roja) es menor el consumo

de amonio excepto en la figura 8; observamos que la reducción es mayor a diferencia de los

otros dos tratamientos; luego tenemos el tratamiento ZB (línea verde) la reducción se

mantiene entre el tratamiento ZA – ZC.

Figura 8. Tratamientos de zeolita A, B y C (0,01g) a salinidad 6ppt

y concentración de TAN 0,6ppm.

Figura 9. Tratamientos de zeolita A, B y C (0,03g) a salinidad 6ppt

y concentración de TAN 0,6ppm.

47

Figura 10. Tratamientos de zeolita A, B y C (0,06g) a salinidad

6ppt y concentración de TAN 0,6ppm.


En esta concentración de 1ppm de amonio a salinidad 6ppt, se observa que hay una


las horas se observa en la figura 1 un desequilibrio de reducción y aumento en el transcurso

de los muestreos a diferencias de la Fig. 12 - 13. También observamos la diferencia de las

otras concentraciones de amonio en esta que es mayor su concentración solo se reduce un

40% hasta el muestreo de 6h, para luego mantenerse aparentemente en un punto de

saturación.

Sin embargo es notorio que el tratamiento de Zeolita A (línea roja) es menor el consumo de

amonio excepto en la figura 11; se observa una mayor reducción del tratamiento; luego

tenemos el tratamiento ZB (línea verde) la reducción de este se mantiene entre el tratamiento

ZA - ZC, en cuanto al tratamiento ZC (línea lila) fue la de mayor reducción en esta

concentración de amonio a diferencia de la Fig. 11 que no reduce al igual que las figuras 12 –

13.

48





49




En esta concentración de 0,3ppm de amonio a salinidad 10ppt, se observa que hay una


las horas; sin embargo se observa que en el muestreo de 3h la concentración tiende a subir

nuevamente para que en el muestreo de 9h vuelva a descender hasta en el muestreo de 15h y

se mantiene en un aparente punto de saturación. En las figuras 14-15-16 observamos que

existe una reducción de 67% hasta el muestreo de 3h, para luego elevarse aproximadamente

un 50% de la reducción obtenida hasta ese muestreo y luego volver a descender en el

muestreo de 9h.

Sin embargo es notorio que el tratamiento de Zeolita A (línea roja) en las figuras 14-15-16, es

menor la reducción de amonio; luego tenemos el tratamiento ZB (línea verde) la reducción de

este se mantiene entre los tratamientos ZA – ZC.

50





51




En la reducción de 0,6ppm de amonio por zeolitas a salinidad 10ppt, se observa que a medida

que incrementa la cantidad de zeolita y en el transcurso de las horas bajan las concentraciones

de amonio, sin embargo es notorio que hasta el muestreo de 3h descienden las

concentraciones y vuelven a incrementar en el muestreo de 3h para nuevamente descender;

pero en la figura 17; en el muestreo de 21h del tratamiento ZB 0,01 se observa un incremento

de concentración para luego volver a descender en el último muestreo.

En los tratamientos observamos una reducción del 50% hasta el muestreo de 3h para luego

elevarse nuevamente las concentraciones desde el muestreo antes expuesto, aproximadamente

un 40% para luego seguir la reducción a un 67%.

Sin embargo se observa que el tratamiento de Zeolita A (línea roja) y ZB (línea verde) la

reducción es aproximada, excepto en la Fig. 17que a partir del muestreo de 9h llega a un

punto donde se mantiene hasta el último muestreo, en el tratamiento de ZB (línea verde) es

notorio que a partir del muestreo de 18h se tiende a elevar para luego volver a la reducción en

el muestreo de 21h; en cuanto al tratamiento ZC (línea lila) se observa que la reducción fue

mayor a diferencia de los dos tratamientos anteriormente expuestos.

52





53




En la reducción de 1ppm de amonio por zeolitas a salinidad 10ppt, se observa que a medida

que incrementa la cantidad de zeolita y en el transcurso de las horas bajan las concentraciones

de amonio, excepto en la figura 21,en que las concentraciones a partir del muestreo de 6h se

mantiene aparentemente en un punto de saturación. También se observa que existe

aproximadamente un 57% de reducción de amonio en la Fig. 20 - 22 y en la figura 21 un 44%

en el que el tratamiento tiene un peso de zeolita de 0,03g.

Sin embargo es notorio que el tratamiento ZA (línea roja) es menor la reducción de amonio a

diferencia de los otros tratamientos; y tenemos el tratamiento ZB-ZC (línea verde-lila) en

ambos tratamientos observamos una reducción aproximada, pero al igual se observa en Fig.

20 que el tratamiento ZC (línea Lila) en el muestreo de 3h existe un aumento de

concentración para luego en los siguientes muestreos continuar con la reducción al igual que

en los otros tratamientos.

54





55




Al observar la reducción de 0,3ppm amonio (Fig. 23-24-25) por las diferentes zeolitas y

concentraciones de las mismas, es notorio que a medida que hay un incremento de zeolita y

tiempo, disminuyen las concentraciones de amonio en una proporción directa a la cantidad de

zeolita aplicada. Lo anteriormente expuesto no se cumple a cabalidad en la Fig23, sin

embargo una reducción de amonio también es observada. En cuanto a los tiempos de acción, a

partir de las 12h del experimento se observa que se redujo aproximadamente el 90% del

amonio presente en la muestra.

En la reducción de amonio por zeolitas a salinidad 15ppt, se observa que a medida que

incrementa la cantidad de zeolita y aumentan las horas bajan las concentraciones de amonio,

excepto en la figura 23 que las concentraciones a partir del muestreo de 12h se mantiene en un

aparente punto de saturación; y en la Fig. 24-25 a partir del muestreo de 15h aparentemente

las concentraciones se mantienen.

En cuanto a los tratamientos de ZA-ZB-ZC en las Fig. 24-25 observamos un comportamiento

similar en los 3 tratamientos a diferencia de la Fig. 5 en la que observamos que el tratamiento

56

ZA (línea roja) es la que menor reducción manifestó a diferencia del tratamiento ZC (línea

lila) que fue la que mayor reducción de amonio obtuvo.





57




En la reducción de 0,6 ppm de amonio por zeolitas a salinidad 15ppt, se observa en la figura

1 existe una mayor reducción de amonio en el tratamiento de ZB a diferencia de las otras

figuras, sin embargo se observa que en el muestreo de 15h el consumo de amonio

aparentemente se empieza a estabilizar y la reducción es mínima hasta el último muestreo. Es

notorio que en los tratamientos (Fig. 26-27-28) existe una reducción de amonio de

aproximadamente un 67% hasta el muestreo de 15h para luego entrar en un punto de posible

saturación hasta el último muestreo.

Observamos que en la Fig. 26-28 el tratamiento de ZA (línea roja) es el que menor reducción

manifestó a diferencia de la Fig. 27 de peso 0,06g observamos un comportamiento diferente

en el que los tratamientos se aproximan en sus reducciones. Al Igual en la Fig. 26-28 se

observa que el tratamiento ZB (línea verde) manifestó aparentemente mayor reducción a

diferencia de los otros tratamientos.

58





59




En la reducción de 1,0 ppm de amonio por zeolitas a salinidad 15ppt, se observa que a medida

que incrementa la cantidad de zeolita y en el transcurso de las horas las concentraciones de

amonio se mantienen por igual en todas las figuras. Sin embargo es notorio que a partir del

muestreo de 15h las concentraciones de amonio se mantienen en un posible punto de

saturación. Así reduciendo hasta el muestreo de 15h aproximadamente un 40 % de

concentración.

En cuanto a los tratamientos de ZA-ZB-ZC en las Fig. 30-31 observamos un comportamiento

similar en los 3 tratamientos a diferencia de la Fig. 29 en la que es notorio que el tratamiento

ZA (línea roja) es la que mayor reducción manifiesta hasta el muestreo de 21h en el que se

observa que para el ultimo muestreo de 24h vuelve a elevarse a diferencia de los otros

tratamientos que tienden a seguir reduciendo; en cuantos los tratamientos ZB-ZC (línea verde

- lila) tienen un comportamiento aproximado pero se observa que el tratamiento ZB (línea

verde) es la que menor reducción presento.

60





61



4.2 EFECTO DE LAS VARIABLES EN LA CONCENTRACIÓN DE

TAN FINAL.

En la tabla 4 se describe el análisis estadístico del efecto de las variables estudiadas en la

concentración de TAN final. Según lo describe la Tabla 5, el conjunto de variables estudiadas

afecta la reducción de TAN, y estadísticamente es altamente significativo (<0,0001).

Tabla 5. Efectos de las variables en la concentración de TAN Final.

Fuente DF Suma de

Cuadrados

Cuadrado

de Media F - Valor Pr > F

Modelo 19 184,2741550 9,6986397 216,02 <0,0001

Error 4354 195,4829756 0,0448973

Total Correcto 4373 379,7571306

Por otro lado, al considerar el efecto de cada factor independientemente (Tabla 6) en la

reducción de TAN, observamos que los factores que más afectan directamente a la

concentración de amonio son: la concentración de zeolita, el tiempo y el TAN Inicial.

62

Tabla6. Efecto de las variables para TAN Final.

Fuente DF Tipo I SS Cuadrado de

Media F-Valor Pr > F

Zeolita 2 0,0922116 0,0461058 1,03 0,3582

Concentración de Zeolita 3 44,4307359 14,8102453 329,87 <0, 0001

Tiempo 8 8,465836 1,0582295 23,57 < 0, 0001

Salinidad 2 0,4489558 0,2244779 5 0,0068

Repeticiones 2 0,0460563 0,0230282 0,51 0,5988

TAN Inicial 2 130,7903594 65,3951797 1456,55 <0, 0001

Sin embargo, hay que considerar que el testigo (agua más amonio, sin adición de zeolita)

también ingresa en el análisis estadístico, pero a pesar de no tener efecto directo en la

reducción de TAN, su interferencia en el resultado estadístico final es notoria.

Por ejemplo, en la Tabla 7 observamos el análisis comparativo de Duncan para el efecto de la

concentración de zeolitas en la reducción de TAN (se incluye el testigo, concentración de

zeolita 0), y en el agrupamiento se indica que la concentración de zeolitas empleadas no tuvo

mayor efecto al reducir las concentraciones de TAN.

Tabla 7. Comparación Duncan para concentración de Zeolita (TAN final).

Agrupamiento Media Números

de Datos

Concentración

Zeolita

A 0,61888 729 0

B 0,42241 729 0,01

B 0,41632 729 0,03

B 0,41339 729 0,06

De la misma forma, en la tabla 8 observamos, el análisis comparativo de duncan para la

variable tiempo, en donde existe diferencia significativa, ya que en el transcurso de las horas

se manifiesta la reducción en las concentraciones de TAN, siendo más notorio que la zeolita

actúa eficientemente reduciendo TAN en las 6 primeras horas, luego de lo cual se observa una

menor reducción en las siguientes horas de muestreo, llegando a la mínima concentración de

TAN a las 24h.

63

Tabla 8. Comparación Duncan para tiempo de TAN final.


de Datos Tiempo

A

0,61956 486 0

B

0,55477 486 3

C B

0,53642 486 6

C D

0,51787 486 9

E D

0,50412 486 12

E D F 0,49147 486 15

E

F 0,48638 486 18

E

F 0,48051 486 21

F 0,47203 486 24

De igual manera, se observa que la concentración inicial de amonio afecta significativamente

la reducción de TAN, tal como se muestra en la Tabla 9, en donde observamos cómo cada una

de las diferentes concentraciones de TAN responden diferentemente a las variables

estudiadas.

Tabla 9. Comparación Duncan para concentración inicial de amonio.


de Datos TAN Inicial

A 0,73732 729 1

B 0,61888 729 0

C 0,37111 729 0,6

D 0,14369 729 0,3

4.2.1 EFECTO DE LAS DIFERENTES ZEOLITAS EN LA REDUCCIÓN DE TAN

4.2.1.1 Zeolita A: La tabla 10 describe el análisis estadístico del efecto independiente de la

zeolita comercial A en la reducción de TAN. Según esta tabla, el conjunto de variables

(aislando el tipo de zeolita) afecta significativamente (< 0,0001) la reducción de TAN.

Tabla 10. Efectos de las variables en la concentración de TAN para Zeolita A.

Fuente DF Suma de

Cuadrados Media F - Valor Pr > F

Modelo 17 60,9555758 3,5856221 80,27 <0, 0001

Error 1440 64,3272525 0,0446717


64

En los resultados del efecto de zeolita A (tabla 11), consideramos los valores por separado y

observamos que existe diferencia significativa y que los factores afectan directamente a la

concentración de amonio, siendo los más destacados del efecto de las variables para zeolita A:

Concentración de Zeolita, el tiempo y el TAN Inicial, mientras que las demás variables como

salinidad, tipos de zeolitas y sus repeticiones no afectan el modelo o la reducción.

Tabla 11. Efecto de las variables para Zeolita A.




Tiempo 8 2,24990168 0,28123771 6,3 <0, 0001

Salinidad 2 0,15351911 0,07675956 1,72 0,1797

Repeticiones 2 0,01957308 0,00978654 0,22 0,8033

TAN Inicial 2 45,48031668 2,27401583 509,05 <0, 0001

Por otro lado en los análisis estadísticos para concentración de zeolita A, observamos en la

concentración que si existe diferencia significativa con respecto al control, pero también es

notorio que entre la reducción de las concentraciones los valores son aproximados (Tabla 20).

Al igual en Duncan para tiempo se observa que existe diferencia significativa, a medida que

transcurre el tiempo hay reducción en las concentraciones, sin embargo es notorio que en las

primeras horas existe la mayor reducción y a partir de la hora 6 la reducción se da en menor

concentración. (Tabla 21). Al igual observamos en el análisis estadístico para concentración

inicial de Zeolita A que si existe deferencia significativa, ya que es notorio que en los factores

de concentración inicial con la media de los tratamientos existe una reducción y es evidente el

que mayor reducción manifestó es la media de TAN 0,3ppm (Tabla 22).

4.2.1.2 Zeolita B: La tabla 12 describe el análisis estadístico del efecto independiente de la

zeolita comercial B en la reducción de TAN. Según esta tabla, el conjunto de variables

(aislando el tipo de zeolita) afecta significativamente (< 0,0001) la reducción de TAN.

Tabla 12. Efectos de las variables en la concentración de TAN para Zeolita B.

Fuente DF Suma de


Modelo 17 63,2009820 3,7177048 81,76 <0, 0001

Error 1440 65,4764709 0,0454698


65

Mientras tanto en la Tabla 13 del efecto de las variables independientemente observamos que

existe diferencia significativay los factores afectan directamente a la concentración de

amonio, siendo los más destacados: la concentración de zeolita, el tiempo y el TAN Inicial,

mientras que las demás variables como salinidad, tipos de zeolitas y sus repeticiones no

afectan el modelo o la reducción.

Tabla 13. Efecto de las variables para Zeolita B.




Tiempo 8 3,08594685 0,38574336 8,48 <0, 0001

Salinidad 2 0,18046500 0,09023250 1,98 0,1378

Repeticiones 2 0,01678642 0,00839321 0,18 0,8315

TAN Inicial 2 44,42366354 22,21183177 488,5 <0, 0001

En los resultados para concentraciones de Zeolita B, observamos que si existe diferencias

significativa entre los tratamientos y el control, pero también es notorio que los resultados son

aproximados a diferencia del control (Tabla 23). En la tabla 24 de ZB para tiempo se observa

que existe diferencia significativa ya que a medida que pasa el tiempo las concentraciones

desciende, sin embargo es notorio que dentro de las 6 primeras horas es la de mayor reducción

y a partir de las 6 horas hacia delante su reducción es en menor cantidad. En el análisis

comparativo de Duncan para concentración de TAN se observa que si existe diferencia

significativa ya que en todas las concentraciones afecta la reducción con respecto a TAN

Inicial (Tabla 25).

4.2.1.3 Zeolita C: Se describe en el análisis estadístico del efecto independiente de la zeolita

comercial C en la reducción de TAN. Según esta tabla 14, el conjunto de variables (aislando

el tipo de zeolita) afecta significativamente (< 0,0001) la reducción de TAN.

Tabla 14. Efectos de las variables en las concentraciones de TAN para Zeolita C.

Fuente DF Suma de


Modelo 17 60,5569693 3,5621747 78,74 <0, 0001

Error 1440 65,1476685 0,0452414


66

Por otro lado en el análisis estadístico de las variables independientes para el efecto de zeolita

C, observamos que existe diferencia significativay los factores afectan directamente a la

concentración de amonio, siendo los más destacados: la concentración de zeolita, el tiempo y

el TAN Inicial, mientras que las demás fuentes como salinidad, tipos de zeolitas y sus

repeticiones no afectan el modelo o a su reducción (Tabla 15).

Tabla 15. Efecto de las variables para Zeolita C.




Tiempo 8 3,24959243 0,40619905 8,98 <0, 0001

Salinidad 2 0,14028241 0,07014120 1,55 0,2125

Repeticiones 2 0,01205732 0,00602866 0,13 0,8753

TAN Inicial 2 41,01457070 20,50728535 453,29 <0, 0001

En los resultados de análisis comparativo de Duncan para Zeolita C, se observa en la tabla 26

de concentraciones de zeolita que si existe diferencia significativa entre las concentraciones y

el control pero al igual también es notorio que la diferencia entre los tratamientos son

aproximada la reducción, en los datos de Duncan para tiempo, se observa que a medida que

pasa el tiempo hay reducción así que existe diferencia significativa, sin embargo dentro de las

6 horas se observa una mayor reducción a diferencia del resto de tiempo que la reducción de

concentración es en menor proporción (tabla 27), en concentración inicia de TAN si existe

diferencia significativa ya que se observa la reducción a diferencia de la concentración del

testigo (Tabla 28).

4.2.2 EFECTO DE LAS DIFERENTES SALINIDADES EN LA REDUCCIÓN TAN

4.2.2.1 Salinidad 6 – 10 – 15 ppt: Las tablas 16, 17 y 18 describen el análisis estadístico del

efecto independiente de la las diferentes salinidades en la reducción de TAN. Según estas

tablas, el conjunto de variables afecta significativamente (< 0,0001) la reducción de TAN.

Tabla 16. Efecto de las variables en la concentración de TAN para salinidad 6ppt.

Fuente DF Suma de


Modelo 17 58,9661561 3,4685974 77,66 <0, 0001

Error 1440 64,3123718 0,0446614


67


Fuente DF Suma de


Modelo 17 65,7263721 3,5711487 78,24 <0, 0001

Error 1440 64,3123718 0,0456433



Fuente DF Suma de


Modelo 17 65,0597803 3,8270459 85,4 <0, 0001

Error 1440 64,5339668 0,0448153


Considerando el efecto de cada factor en las tablas 29, 30, 31, observamos que entre los

factores existe diferencia significativay los factores que afectan directamente a la

concentración de amonio, siendo los más destacados de la tabla: Las concentraciones de

zeolita, el tiempo y el TAN Inicial, mientras que las demás variables como tipos de zeolitas y

sus repeticiones no afectan el modelo o a su reducción.

En los resultados del análisis comparativo Duncan para salinidades, se observa en las tablas

32, 33 y 34 de concentraciones de zeolita que si existe diferencia significativa entre las

concentraciones y el control pero al igual también es notorio que la diferencia entre la

reducción de los tratamientos es aproximada, en los datos comparativos Duncan para tiempo,

se observa que a medida que pasa el tiempo hay reducción así que existe diferencia

significativa, sin embargo dentro de las 6 horas se observa una mayor reducción a diferencia

del resto de tiempo que a partir de las 6hla reducción de concentración es en menor

proporción (tabla 35, 36, 37), en concentración inicial de TAN si existe diferencia

significativa ya que se observa la reducción a diferencia de la concentración del testigo (Tabla

38, 39, 40).

4.3 PORCENTAJE DE REDUCCIÓN DE TAN A LAS 24h.

En la tabla 19 se observa el porcentaje de reducción de TAN una vez cumplido el tiempo total

de experimentación (24h), incluyendo el efecto de las variable analizadas: zeolitas

68

comerciales, diferentes concentraciones de zeolitas, diferentes salinidades y las diferentes

concentraciones iniciales de TAN.

La tabla de porcentajes resume el efecto de las diferentes variables en la reducción de TAN,

considerando la concentración inicial de TAN. Se observa que cuando el TAN estuvo a 0,3

ppm se registró la de mayor reducción de TAN, y en el caso de TAN a 1,0 ppm fue lo

contrario, es decir se observó la menor reducción de TAN. Adicionalmente, en la misma tabla

se observa que entre los tratamientos (zeolitas), mayor reducción fue cuantificada con el uso

de la zeolita A, a concentración de 0,06g, TAN 0,3 ppm y salinidad 15 ppt, llegando a una

reducción del 99% del TAN inicial.

Tabla 19. Porcentaje de reducción de TAN en las 24h.

Zeolita Z A

ConcentZeo/g 0,01 0,03 0,06

Salinidad/ ppt 6 10 15 6 10 15 6 10 15

TAN ppm

0,3 73 61 52 55 54 97 53 61 99

0,6 67 45 60 48 71 60 30 57 48

1,0 40 35 31 26 28 36 24 25 35

Zeolita Z B


Salinidad/ ppt 6 10 15 6 10 15 6 10 15

TAN ppm

0,3 60 63 62 76 57 97 73 64 98

0,6 58 35 77 53 64 60 60 63 71

1,0 34 46 32 24 49 39 24 54 37

Zeolita Z C


Salinidad/ ppt 6 10 15 6 10 15 6 10 15

TAN ppm

0,3 69 76 73 77 77 85 74 78 97

0,6 52 42 61 64 50 57 54 73 58

1,0 29 49 38 32 43 33 34 52 38

69

5. DISCUSIÓN

5.1 EFECTO DE LA ZEOLITA, SALINIDAD Y CONCENTRACIÓN

INICIAL DE AMONIO EN LA REDUCCIÓN DE TAN.

Las zeolitas son aluminosilicatos hidratados originados por fenómenos geológicos de

transformación como resultado de una reacción con aguas alcalinas de cenizas volcánicas

depositadas en lagos y mares someros (Rodríguez, 2002). Las zeolitas naturales y sintéticas

son conocidas porque eliminan el amoniaco del agua por medio del intercambio de iones

(Marcado y Bills, 1982), pero no hay pruebas contundentes de que las zeolitas puedan reducir

eficazmente TAN (amonio-amoníaco) en los estanques.

En la presente investigación, diferentes tipos de zeolita (A, B, C), a diferentes concentraciones

(0-0,6g) y bajo diferentes salinidades (0-15 ppt), fueron testeadas para medir su tasa de

reducción de amonio en diferentes concentraciones de TAN (0 – 1ppm). Según lo observado,

no hubo diferencia estadística en la tasa de reducción de TAN bajo el efecto de todas las

variables. Es decir, las zeolitas utilizadas en esta prueba respondieron de manera similar para

reducir amonio, por ejemplo aplicando zeolita a 0,06 g/L cuando TAN estuvo a 1 ppm, se

observó una reducción de TAN hasta 0,47 ppm al término de las 24h.

Por otro lado, según lo reportado por Sonnenholzner (2004), en una investigación utilizando

zeolita a concentraciones de hasta 15g, aplicadas en 250 ml de agua destilada, y con TAN de

50 ppm, se observó reducción de TAN en cada una de las concentraciones de zeolita aplicada.

En el caso cuando la zeolita utilizada fue de 1 g, se registró una reducción de TAN pasando de

50 ppm a 44 ppm al término de 24h. Únicamente se considera este valor de 1g de zeolita por

ser la concentración más cercana a la utilizada en la presente investigación.

De manera similar, Mitchell (2005) reportó que utilizando recipientes conteniendo 1 litro de

agua, con una concentración inicial de TAN de 25,2 ppm, los cuales fueron expuestos a 5

diferentes zeolitas durante 24h, se registró al final del experimento una reducción en la

concentración de TAN que varió entre 15,4 y 19,6 ppm.

70

En otra investigación realizada por Aguilar (2003), aplicando zeolitas a diferentes

concentraciones (10, 40 y 100 ppm) en acuarios de 216 L con agua de mar (35ppt), se reportó

que estas cantidades de zeolita no tuvieron influencia alguna sobre la concentración de TAN,

ya que los acuarios presentaron concentraciones similares de TAN en todos los tratamientos

(incluido el control), por lo que permanecieron invariables las cantidades de este ion.

Según Boyd (1996), se puede remover (reducir) TAN utilizando zeolitas, sin embargo se

requiere de grandes cantidades de la misma, llegando inclusive a necesitar alrededor de una

Ton/ha para reducir 1 ppm de TAN. Además, López (1998) indica que la captación de amonio

por las zeolitas es muy baja en aguas marinas, debido principalmente a la interferencia de los

iones de Na+ y K+ los cuales se encuentran en altas concentraciones, lo que los hace

preferentes en su retención frente al amonio, por lo que se requiere utilizar grandes dosis para

captar TAN, lo cual indicaría que puede haber selectividad de la zeolita para ciertos cationes.

Varios otros productos han sido utilizados para reducir TAN en agua. Por ejemplo,

Chiayvareesajja y Boyd (1993) demostraron que la formalina (37% de concentración) puede

reducir TAN cuando fue aplicada a estanques de cultivo de camarón a razón de 10 ppm,

observando una reducción de 2,1 ppm a 0,30 ppm de TAN en 10 días post/aplicación.

Por otro lado, Santacruz-Reyes y Chien (2009, 2010, 2012) demostraron que el extracto de

Yucca schidigera (YUPE) puede reducir TAN efectivamente. En la investigación de estos

autores, utilizaron YUPE a concentraciones de 0-108 ppm y TAN a concentraciones de 1-9

ppm, y por ejemplo, cuando utilizaron TAN a 9 ppm y YUPE a 108 ppm, la concentración de

TAN fue reducida hasta 5 ppm en 96h.

Otra manera práctica de remover el amoniaco durante el proceso de cultivo, es bajar el nivel

de agua (recambio de agua) en los estanques de producción a un 10-30% del nivel operativo

(Boyd, 1990), para luego reemplazar el volumen desalojado. Según lo reportado, este proceso

es factible cuando se utiliza el método de flujo de agua continuo. La misma investigación

indica que otra forma de remoción de amoniaco es mediante una fertilización alta, que

conduzcan a mantener una relación C:N de 10-15:1 para favorecer a la mayor cantidad de

algas fotosintéticamente activas, que se desarrollan en el bentos y que van a remover

amoniaco durante el ciclo de cultivo.

71

Adicionalmente, existen reportes como el de Ramos (2010), Sphigel y Neori (1996), Jones et.

al. (2001, 2002) y Marinho-Soriano (2002), en los cuales se ha demostrado la absorción de

amonio con la utilización de macroalgas (Ulva fasciata), reportando resultados eficientes,

como por ejemplo, partiendo de una concentración de amonio inicial de 1,21 ppm se pudo

reducir esta concentración a 0,61 ppm.

5.2 PORCENTAJE DE REDUCCIÓN DE TAN A LAS 24h.

En la investigación realizada por Sonnenholzner (2004), utilizando zeolita a diferentes

concentraciones (0 – 15 g) aplicadas en 250 ml de agua destilada, y con TAN de 50 ppm, se

reportó que la tasa de reducción de amonio fue directamente proporcional a la cantidad de

zeolita aplicada. Por ejemplo, aplicando 1 g de zeolita, se observó una reducción en la

concentración de TAN de 12 % a las 24h del experimento.

En la presente investigación, se evaluó la eficacia de la zeolita en la tasa de reducción de

amonio bajo: a) el efecto de diferentes salinidades, b) diferentes tipos de zeolita, c) diferentes

concentraciones de zeolitas, y d) diferentes concentraciones de TAN (0-1 ppm) dentro de 24h.

Según lo observado, estas variables no influyen estadísticamente en la reducción de TAN. Los

resultados del porcentaje de reducción de amonio indican que existe reducción teniendo en

consideración su concentración inicial; por ejemplo aplicando zeolita a 0,01 g/L con

concentración de TAN a 0,6 ppm y salinidad de 10 ppt, se encontró una reducción de 42%

(0,252 ppm) del TAN presente en el transcurso de 24h.

Por otro lado, hay estudios con diferentes productos que reportan eficazmente la reducción de

amonio. Por ejemplo, Tidwell (1992) quien utilizó el extracto de Yucca schidigera

aplicándolo en acuarios con 30 L de agua de cultivos acuícolas, a los que se les adicionó 2

ppm de TAN, reportando que los niveles de TAN bajaron un 58-60% con respecto al control

en un trascurso de 96h. Además Santacruz-Reyes y Chien (2009, 2010, 2012) quienes

igualmente utilizaron el extracto de Y. schidigera (YUPE) informaron que al utilizar TAN a 1

ppm y YUPE a 108 ppm, la concentración de TAN fue reducida hasta 98 % en 24h.

Chiayvareesajja y Boyd (1993) demostraron que el uso de formalina en laboratorios y

estanques de cultivo puede reducir la concentración de amonio hasta en un 50% aplicando

Comentado [L1]: corroborar informacion de papers de YUPE y transcribir

72

formalina en dosis de 5-10 ppm. Sin embargo, concentraciones de formalina ≥ 15 ppm han

demostrado que podría matar fitoplancton y por ende causar el agotamiento del oxígeno

disuelto (producto final del proceso de la fotosíntesis).

En la naturaleza, el método biológico para la remoción de amonio es por medio de las algas,

las cuales utilizan este nutriente como alimento, removiendo así un porcentaje importante de

amonio. Por ejemplo, en la investigación de Deboer (1981), Lobban y Harrison (1997) y

Chopin et al. (2001), en la cual utilizaron macroalgas (Ulva fasciata), reportaron que se puede

remover amonio, y que la reducción en la concentración de TAN liberado en sistemas

intensivos de cultivo de peces fue de entre un 49,6-90% cuando se compara con el estanque

control.

73

6. CONCLUSIONES

1. La tasa de reducción de TAN observada varió en razón del tipo de zeolita utilizada y

de la salinidad a la que fue expuesta. Por ejemplo, considerando el tiempo total de

reacción (24h), cuando se utilizó la zeolita A en diferentes concentraciones de TAN

(0,3-0,6-1,0 ppm) y salinidad (6-10-15 ppt), esta redujo entre 29,3 – 34,8 % del TAN

presente. Por otro lado y considerando los mismos factores, la zeolita B redujo entre

30,3 – 37,4 % y, por último la zeolita C redujo el TAN presente entre 32,0 - 37,1 %.

Se observó que la tasa de reducción de TAN varió entre 4% y 7% cuando la salinidad

estuvo en 6 ppt y 15 ppt, respectivamente.

2. Los resultados de esta investigación muestran que la tasa de reducción de TAN es

indistinta de la concentración de zeolita aplicada, pero es inversamente proporcional a

la salinidad con la que se está trabajando. Evaluando las diferentes dosis utilizadas de

zeolitas (0,01-0,03-0,06 g) podemos concluir que las zeolitas A, B y C aunque

estadísticamente no mostraron diferencia alguna, numéricamente presentaron una

ligera diferencia, sobresaliendo la zeolita C. En términos generales, se podría utilizar

la menor dosis de cualquiera de las zeolitas utilizadas para economizar durante el ciclo

de cultivo.

74

7. RESUMEN

Ecuador es el primer productor de camarón en Latinoamérica, pudiendo operar cultivos

durante todo el año en condiciones controladas y sostenibles. Los parámetros de calidad de

agua son esenciales para el manejo del cultivo, especialmente tener bajo control a ciertos

metabolitos tóxicos que perjudican los cultivos, tales como el amonio/amoniaco (NH4/NH3),

el cual puede ser muy nocivo para el camarón, pudiendo provocar poco desarrollo y/o

mortalidad, siendo recomendable mantener una concentración de NH3 menor de 0,05 ppm.

En el mercado existen varios productos para reducir o remover amonio, como por ejemplo:

bacterias (bajo el proceso de nitrificación), formalina, extracto de Yucca shidigera, y

minerales (zeolitas). Las zeolitas han sido utilizadas tradicionalmente por los acuicultores

como reductores del NH4/NH3 presente en los estanques de cultivo, las cuales se ofertan en

diferentes formas de presentación y calidad, aun cuando su eficacia en la reducción de TAN

es ambigua cuando es expuesta a niveles de salinidad elevados.

La presente investigación evaluó el efecto de tres zeolitas comerciales (A, B, C) a diferentes

pesos (0,01 – 0,03 – 0,06 g) en la reducción de amonio (0 – 0,3 – 0,6 – 1,0 ppm), bajo el

efecto de diferentes salinidades (6, 10, 15 ppt). Cada tratamiento fue por triplicado, utilizando

fiolas de 125 ml. Se aplicó el método del fenol para la determinación de amonio. Las lecturas

de la concentración de TAN se realizaron cada 3 horas, durante 24 horas.

Los resultados indican que la tasa de reducción de TAN varió en razón del tipo de zeolita

utilizada y de la salinidad a la que fue expuesta, observándose una reducción de TAN entre

29,3 – 34,8 %, 30,3 – 37,4 % y 32,0 - 37,1 % para la zeolita A, B y C, respectivamente. Se

observa que el aumento de salinidad (de 6 ppt a 15 ppt) influye directamente entre 4-7% en la

reducción de amonio.

Adicionalmente, la tasa de reducción de TAN es indistinta de la concentración de zeolita

aplicada, pero es inversamente proporcional a la salinidad utilizada durante la parte

experimental, por lo que se puede concluir que las zeolitas utilizadas en la presente

investigación (A, B y C) respondieron de la misma manera, y por lo tanto se podría utilizar la

menor dosis en campo, y así economizar durante el ciclo de cultivo.

PALABRAS CLAVES: tasa de reducción, salinidad, TAN, zeolita

75

8. ABSTRACT

Ecuador is the first shrimp producer in Latin America, being able to produce shrimps all year

round under controlled and sustainable conditions. Water quality parameters are essential for

the culture management, especially keeping under control certain toxic metabolites that may

harm the culture animals, such as ammonium/ammonia (NH4/NH3), which can be very

harmful to the shrimp and can cause poor growth or even mortality, reason why it is advisable

to maintain a NH3 concentration lower than 0.05 ppm.

In the market there are various products to reduce or remove ammonium, such as: bacteria

(under the nitrification process), formalin, Yucca schidigera extract, and minerals (zeolites).

Zeolites have been used traditionally by farmers in order to reduce the NH4/NH3 present in the

ponds, which are found in different presentations and quality, although its effectiveness in

reducing TAN is ambiguous when exposed to high salinity levels.

This research evaluated the effect of three commercial zeolites (A, B, C) at different weights

(0.01 - 0.03-0.06 g) in reducing ammonia (0 - 0.3 – 0.6 - 1.0 ppm), under the effect of

different salinities (6, 10, 15 ppt). Each treatment was in triplicate using 125 ml vials. Phenol

method for the determination of ammonia was used. The TAN concentration was measured

every 3 hours, for 24 hours.

The results showed that the rate of TAN reduction varied based on the type of zeolite used

and the salinity at which it was exposed, showing a TAN reduction ranging from 29.3 to 34.8

%, 30.3 to 37.4 % and from 32.0 to 37.1 % for the zeolite A, B and C, respectively. It was

noted that an increase in salinity (6 ppt to 15 ppt) directly affected in a 4-7% in the TAN

reduction observed.

Additionally, the TAN reduction rate is not related to the amount of zeolite applied, but it was

inversely proportional to the salinity being used. Taking into account the preceding paragraph

it can be concluded that the zeolites used in the present study (A, B and C) responded in the

same way, and therefore could be used at the lowest dose in the field, and thus reducing

expenses during the growing season.

KEYWORDS: reduction rate, salinity, zeolite, TAN

76

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(http://www.readperiodicals.com/201007/2115186971.html#ixzz3FoQSvZxL).

MARINHO-SORIANO, E., C. MORALES & W.S.C. MOREIRA. 2002. Cultivation of

Gracilaria (Rhodophyta) in shrimp pond effluents in Brazil. Aquacult. Res., 33: 1081-

1086. (Consulta 19 de septiembre del 2013). (

http://www.readperiodicals.com/201007/2115186971.html#ixzz3FoQSvZxL).

TIDWELL J.H., WEBSTER C.D., CLARK J.A. & YANCEY D.H. (1992) Effects of Yucca

shidigera extract on water quality and fish growth in recirculating-water aquaculture

systems. The Progressive Fish-Culturist 54,196-201. (Tomado Roberto A Santacruz-

Reyes & Yew-Hu Chien, 2010). (Consulta 19 de septiembre del 2013).



81

10. ANEXOS

Anexo 1. Método de fenol, aplicado

en el análisis de amonio.

Anexo 2. Estanque en producción

Análisis de Amonio

Método del Fenol

Consiste en:

25 ml de muestra de agua filtrada

1 ml de solución fenol

1 ml de Nitro-prusiato de sodio

2,5 ml de solución oxidante

Se deja reposar en un lugar

oscuro por 2 horas (toma una

coloración azulada).

82

Anexo 3. Recolección de muestras de agua en camaronera vía Balosa

(Estanque en producción).

Anexo 4. Muestras de agua filtrada y reposadas a diferentes salinidades

(Tanque Verde 6ppt – Rojo 10ppt – Azul 15ppt),

83

Anexo 5. Potenciómetro

Anexo 6. Espectrofotómetro (HACH DR 2800)

Anexo 7. Materias para la investigación (Balanza, Probeta,

Balón, Agua destilada, botella des-ionizadora,

bolso de 5 micras, pipetas, vaso de

precipitación, fiolas, entre otros).

84

Anexo 8. Toma de parámetros (Salinidad y pH).

Anexo 9. Cloruro de Amonio y tipo de Zeolitas a Utilizar (ZA – ZB – ZC).

Anexo 10. Botellas con sus respectivas muestras de agua y sus fiolas

con sus repeticiones.

85

Anexo 11. Pesaje de las zeolitas

Anexo 12. Colocación de reactivos.

Anexo 13. Muestras luego de esperar los 30 minutos antes de leer.

86

Anexo 14. Lectura de datos.

10.1 TABLAS:

Tabla 20. Comparación Duncan para concentración de zeolita A.

Agrupamiento Media Números de

Datos

Concentración

Zeolita

A 0,61888 243 0

B 0,44315 243 0,06

B 0,42759 243 0,01

B 0,41970 243 0,03

Tabla 21. Comparación Duncan para tiempo de zeolita A.


Datos Tiempo

A 0,61956 162 0

B 0,54965 162 3

C B 0,53665 162 6

C B 0,52494 162 9

C B 0,5173 162 12

C

0,49796 162 15

C

0,49542 162 18

C

0,49343 162 21

C 0,48570 162 24

Tabla 22. Comparación Duncan para TAN inicial para zeolita A.


Datos TAN Inicial

A 0,75953 243 1

B 0,61888 243 0

C 0,37597 243 0,6

D 0,15495 243 0,3

87

Tabla 23. Comparación Duncan para concentración de zeolita B.


Datos

Concentración

Zeolita

A 0,61888 243 0

B 0,41909 243 0,01

B 0,41834 243 0,03

B 0,40162 243 0,06

Tabla 24. Comparación Duncan para tiempo de zeolita B.


de Datos Tiempo

A

0,61956 162 0

B

0,55354 162 3

C B

0,54067 162 6

C B D 0,51977 162 9

C E D 0,4959 162 12

E D 0,48756 162 15

E D 0,48355 162 18

E D 0,47724 162 21

E 0,46575 162 24

Tabla 25. Comparación Duncan para amonio inicial de zeolita B.


Datos TAN Inicial

A 0,73732 243 1

B 0,61888 243 0

C 0,36270 243 0,6

D 0,13900 243 0,3

Tabla 26. Comparación Duncan para concentración de zeolita C.


Datos

Concentración

Zeolita

A 0,61888 243 0

B 0,42056 243 0,01

B 0,41090 243 0,03

B 0,39541 243 0,06

88

Tabla 27. Comparación Duncan para tiempo de zeolita C.


Datos Tiempo

A 0,61956 162 0

B 0,56112 162 3

C B 0,53193 162 6

C D 0,50891 162 9

C D 0,49915 162 12

C D 0,49144 162 15

D 0,47763 162 18

D 0,47086 162 21

D 0,46465 162 24

Tabla 28. Comparación Duncan para amonio inicial de zeolita C.


Datos TAN Inicial

A 0,73732 243 1

B 0,61888 243 0

C 0,37467 243 0,6

D 0,13712 243 0,3

Tabla 29. Efecto de las variables para salinidad 6ppt.



Zeolita 2 0,01934028 0,00967014 0,22 0,8053

Concentración de Zeolita 3 13,01767727 4,33922576 97,16 < . 0001

Tiempo 8 2,49049430 0,31131179 6,97 < . 0001

Repeticiones 2 0,02873979 0,01436990 0,32 0,7249

TAN Inicial 2 43,40990447 21,70495223 485,99 < . 0001




Zeolita 2 0,08173098 0,04086549 0,9 0,4087


Tiempo 8 2,66430945 0,33303868 7,3 < . 0001

Repeticiones 2 0,01219294 0,00609647 0,13 0,875

TAN Inicial 2 42,46484629 21,23242315 465,18 < . 0001

89




Zeolita 2 0,01645104 0,00822552 0,18 0,8323


Tiempo 8 3,90095070 0,48761884 10,88 < . 0001

Repeticiones 2 0,00850935 0,00425467 0,09 0,9094

TAN Inicial 2 44,95371991 22,47685995 501,54 < . 0001

Tabla 32. Comparación Duncan para concentración de zeolita para salinidad 6ppt.


Datos

Concentración

Zeolita

A 0,62583 243 0

B 0,44367 243 0,03

B 0,44252 243 0,06

B 0,42545 243 0,01



Datos

Concentración

Zeolita

A 0,61868 243 0

B 0,42547 243 0,01

B 0,41051 243 0,03

B 0,40296 243 0,06



Datos

Concentración

Zeolita

A 0,61212 243 0

B 0,41631 243 0,01

B 0,39477 243 0,03

B 0,39470 243 0,06

90

Tabla 35. Comparación Duncan para tiempo en salinidad 6ppt.


Datos Tiempo

A 0,61956 162 0

B 0,57391 162 3

B 0,53185 162 6

C B 0,52765 162 9

C

0,52362 162 12

C

0,5156 162 15

C

0,49906 162 18

C

0,49307 162 21

C

0,49181 162 24



Datos Tiempo

A 0,62022 162 0

B 0,53429 162 3

B 0,52755 162 6

B 0,52606 162 9

C B 0,50372 162 12

C B 0,49278 162 15

C B 0,48974 162 18

C B 0,48170 162 21

C 0,46641 162 24



Datos Tiempo

A 0,61133 162 0

B 0,56434 162 3

B 0,54312 162 6

C B 0,51047 162 9

C D 0,48501 162 12

E D 0,4673 162 15

E D 0,46676 162 18

E

0,45787 162 21

E 0,45702 162 24

91

Tabla 38. Comparación Duncan para amonio inicial de salinidad 6ppt.


Datos TAN Inicial

A 0,75419 243 1

B 0,62583 243 0

C 0,39691 243 0,6

D 0,16054 243 0,3



Datos TAN Inicial

A 0,72941 243 1

B 0,61868 243 0

C 0,36558 243 0,6

D 0,14395 243 0,3



Datos TAN Inicial

A 0,72837 243 1

B 0,61212 243 0

C 0,35084 243 0,6

D 0,12657 243 0,3

Tabla 41.Concentración de 0,3ppm de amonio a salinidad 6ppt.

TAN 0,3 ppt - Salinidad 6 Zeolita A , B , C peso 0,01 - 0,03 - 0,06 g T 1 2 3 4 5 6 7 8 9

Testig Promedio Promedio Promedio Promedio Promedio Promedio Promedio Promedio Promedio

Testigo TAN 0,3

% 6 ZA 0,01

TAN 0,3 % 6

ZA 0,03

TAN 0,3 % 6

ZA 0,06

TAN 0,3 % 6

ZB 0,01

TAN 0,3 % 6

ZB 0,03

TAN 0,3 % 6

ZB 0,06

TAN 0,3 % 6

ZC 0,01

TAN 0,3 % 6

ZC 0,03

TAN 0,3 % 6

ZC 0,06

0,300 0,300 0,300 0,300 0,300 0,300 0,300 0,300 0,300 0,300

0,299 0,231 0,224 0,280 0,247 0,267 0,247 0,260 0,239 0,329

0,296 0,157 0,235 0,246 0,200 0,242 0,180 0,254 0,171 0,208

0,295 0,138 0,122 0,158 0,131 0,151 0,131 0,160 0,164 0,177

0,296 0,131 0,139 0,190 0,077 0,082 0,069 0,123 0,119 0,152

0,297 0,083 0,104 0,155 0,071 0,082 0,091 0,111 0,119 0,102

0,296 0,113 0,111 0,145 0,078 0,071 0,097 0,083 0,112 0,089

0,297 0,108 0,119 0,155 0,098 0,065 0,110 0,116 0,122 0,089

0,295 0,099 0,134 0,141 0,119 0,072 0,079 0,091 0,069 0,076

92

Tabla 42. Concentración de 0,6ppm de amonio a salinidad 6ppt.



Testigo TAN 0,6

% 6 ZA 0,01

TAN 0,6 % 6

ZA 0,03

TAN 0,6 % 6

ZA 0,06

TAN 0,6 % 6

ZB 0,01

TAN 0,6 % 6

ZB 0,03

TAN 0,6 % 6

ZB 0,06

TAN 0,6 % 6

ZC 0,01

TAN 0,6 % 6

ZC 0,03

TAN 0,6 % 6

ZC 0,06

0,600 0,600 0,600 0,600 0,600 0,600 0,600 0,600 0,600 0,600

0,594 0,481 0,472 0,558 0,478 0,517 0,499 0,498 0,469 0,479

0,593 0,326 0,371 0,364 0,369 0,378 0,367 0,382 0,377 0,324

0,592 0,323 0,388 0,329 0,422 0,411 0,358 0,404 0,248 0,300

0,590 0,415 0,430 0,474 0,450 0,478 0,508 0,461 0,507 0,490

0,592 0,359 0,404 0,443 0,385 0,371 0,398 0,436 0,476 0,564

0,590 0,237 0,327 0,413 0,312 0,304 0,310 0,340 0,242 0,374

0,591 0,221 0,335 0,394 0,280 0,284 0,257 0,266 0,199 0,308

0,591 0,197 0,310 0,417 0,251 0,278 0,237 0,286 0,211 0,272




Testigo TAN 1 -

% 6 ZA 0,01

TAN 1 - % 6

ZA 0,03

TAN 1 - % 6

ZA 0,06

TAN 1 - % 6

ZB 0,01

TAN 1 - % 6

ZB 0,03

TAN 1 - % 6

ZB 0,06

TAN 1 - % 6

ZC 0,01

TAN 1 - % 6

ZC 0,03

TAN 1 - % 6

ZC 0,06

1,000 1,000 1,000 1,000 1,000 1,000 1,000 1,000 1,000 1,000

0,988 0,749 0,892 0,797 0,822 0,930 0,775 0,682 0,832 0,802

0,989 0,762 0,810 0,751 0,762 0,718 0,641 0,800 0,747 0,679

0,987 0,741 0,734 0,732 0,794 0,731 0,673 0,709 0,698 0,642

0,989 0,744 0,743 0,664 0,669 0,735 0,660 0,618 0,651 0,623

0,991 0,727 0,807 0,735 0,766 0,857 0,741 0,772 0,731 0,677

0,986 0,698 0,756 0,768 0,651 0,733 0,697 0,623 0,733 0,677

0,987 0,608 0,792 0,765 0,629 0,740 0,727 0,671 0,633 0,651

0,991 0,595 0,740 0,757 0,660 0,755 0,754 0,706 0,675 0,683

93




Testigo TAN 0,3

% 10 ZA 0,01

TAN 0,3 % 10

ZA 0,03

TAN 0,3 % 10

ZA 0,06

TAN 0,3 % 10

ZB 0,01

TAN 0,3 % 10

ZB 0,03

TAN 0,3 % 10

ZB 0,06

TAN 0,3 % 10

ZC 0,01

TAN 0,3 % 10

ZC 0,03

TAN 0,3 % 10

ZC 0,06

0,300 0,300 0,300 0,300 0,300 0,300 0,300 0,300 0,300 0,300

0,286 0,098 0,077 0,146 0,119 0,154 0,116 0,145 0,164 0,092

0,288 0,162 0,210 0,192 0,212 0,192 0,166 0,198 0,162 0,167

0,285 0,172 0,213 0,207 0,134 0,194 0,164 0,215 0,175 0,171

0,288 0,137 0,163 0,159 0,138 0,136 0,103 0,125 0,112 0,098

0,287 0,093 0,084 0,073 0,047 0,058 0,061 0,073 0,058 0,055

0,287 0,109 0,121 0,132 0,121 0,117 0,132 0,075 0,101 0,089

0,287 0,117 0,129 0,124 0,127 0,110 0,109 0,073 0,112 0,073

0,288 0,117 0,138 0,117 0,110 0,129 0,107 0,071 0,069 0,065




Testigo TAN 0,6

% 10 ZA 0,01

TAN 0,6 % 10

ZA 0,03

TAN 0,6 % 10

ZA 0,06

TAN 0,6 % 10

ZB 0,01

TAN 0,6 % 10

ZB 0,03

TAN 0,6 % 10

ZB 0,06

TAN 0,6 % 10

ZC 0,01

TAN 0,6 % 10

ZC 0,03

TAN 0,6 % 10

ZC 0,06

0,600 0,600 0,600 0,600 0,600 0,600 0,600 0,600 0,600 0,600

0,588 0,273 0,224 0,359 0,276 0,404 0,298 0,373 0,342 0,431

0,586 0,385 0,432 0,405 0,443 0,442 0,417 0,417 0,393 0,378

0,585 0,413 0,383 0,388 0,430 0,396 0,400 0,416 0,399 0,310

0,587 0,448 0,357 0,354 0,345 0,276 0,365 0,309 0,319 0,284

0,592 0,373 0,286 0,247 0,395 0,245 0,301 0,357 0,372 0,286

0,589 0,356 0,313 0,314 0,426 0,325 0,301 0,347 0,286 0,267

0,587 0,348 0,291 0,318 0,545 0,281 0,320 0,314 0,244 0,194

0,590 0,329 0,174 0,257 0,389 0,211 0,219 0,347 0,298 0,160

94




Testigo TAN 1 -

% 10 ZA 0,01

TAN 1 - % 10

ZA 0,03

TAN 1 - % 10

ZA 0,06

TAN 1 - % 10

ZB 0,01

TAN 1 - % 10

ZB 0,03

TAN 1 - % 10

ZB 0,06

TAN 1 - % 10

ZC 0,01

TAN 1 - % 10

ZC 0,03

TAN 1 - % 10

ZC 0,06

1,000 1,000 1,000 1,000 1,000 1,000 1,000 1,000 1,000 1,000

0,987 0,731 0,818 1,012 0,753 0,795 0,743 1,124 0,818 0,776

0,979 0,759 0,636 0,789 0,786 0,746 0,849 0,795 0,728 0,709

0,976 0,828 0,672 0,844 0,764 0,797 0,753 0,677 0,786 0,569

0,980 0,785 0,797 0,775 0,585 0,658 0,676 0,595 0,691 0,721

0,979 0,855 0,661 0,787 0,666 0,758 0,676 0,650 0,695 0,513

0,978 0,776 0,700 0,766 0,579 0,732 0,664 0,657 0,586 0,533

0,983 0,707 0,708 0,643 0,446 0,625 0,557 0,631 0,605 0,538

0,981 0,647 0,712 0,742 0,538 0,510 0,452 0,507 0,561 0,479




Testigo TAN 0,3

% 15 ZA 0,01

TAN 0,3 % 15

ZA 0,03

TAN 0,3 % 15

ZA 0,06

TAN 0,3 % 15

ZB 0,01

TAN 0,3 % 15

ZB 0,03

TAN 0,3 % 15

ZB 0,06

TAN 0,3 % 15

ZC 0,01

TAN 0,3 % 15

ZC 0,03

TAN 0,3 % 15

ZC 0,06

0,300 0,300 0,300 0,300 0,300 0,300 0,300 0,300 0,300 0,300

0,278 0,241 0,259 0,239 0,239 0,228 0,255 0,215 0,191 0,243

0,284 0,265 0,261 0,217 0,245 0,195 0,199 0,208 0,183 0,156

0,283 0,222 0,159 0,165 0,176 0,116 0,180 0,123 0,118 0,171

0,287 0,128 0,029 0,041 0,122 0,028 0,048 0,091 0,032 0,038

0,281 0,153 0,008 0,010 0,103 0,002 0,015 0,070 0,011 0,026

0,285 0,178 0,015 0,009 0,108 0,000 0,009 0,079 0,017 0,021

0,284 0,174 0,000 0,004 0,098 0,002 0,022 0,077 0,022 0,018

0,279 0,142 0,009 0,001 0,113 0,008 0,004 0,079 0,043 0,008

95




Testigo TAN 0,6

% 15 ZA 0,01

TAN 0,6 % 15

ZA 0,03

TAN 0,6 % 15

ZA 0,06

TAN 0,6 % 15

ZB 0,01

TAN 0,6 % 15

ZB 0,03

TAN 0,6 % 15

ZB 0,06

TAN 0,6 % 15

ZC 0,01

TAN 0,6 % 15

ZC 0,03

TAN 0,6 % 15

ZC 0,06

0,600 0,600 0,600 0,600 0,600 0,600 0,600 0,600 0,600 0,600

0,578 0,462 0,356 0,502 0,475 0,437 0,475 0,471 0,511 0,521

0,581 0,397 0,342 0,453 0,392 0,439 0,436 0,455 0,460 0,492

0,585 0,327 0,342 0,391 0,316 0,356 0,266 0,328 0,404 0,394

0,585 0,318 0,316 0,314 0,254 0,283 0,241 0,313 0,370 0,348

0,575 0,303 0,237 0,360 0,182 0,247 0,234 0,271 0,292 0,298

0,583 0,349 0,240 0,364 0,165 0,260 0,187 0,263 0,299 0,292

0,583 0,348 0,295 0,361 0,151 0,233 0,178 0,255 0,285 0,245

0,577 0,235 0,240 0,308 0,134 0,242 0,170 0,234 0,258 0,250




Testigo TAN 1 -

% 15 ZA 0,01

TAN 1 - % 15

ZA 0,03

TAN 1 - % 15

ZA 0,06

TAN 1 - % 15

ZB 0,01

TAN 1 - % 15

ZB 0,03

TAN 1 - % 15

ZB 0,06

TAN 1 - % 15

ZC 0,01

TAN 1 - % 15

ZC 0,03

TAN 1 - % 15

ZC 0,06 1,000 1,000 1,000 1,000 1,000 1,000 1,000 1,000 1,000 1,000

0,978 0,809 0,788 0,874 0,917 0,874 0,821 0,898 0,866 0,801

0,969 0,759 0,789 0,809 0,833 0,838 0,814 0,732 0,772 0,683

0,973 0,838 0,737 0,695 0,775 0,668 0,695 0,711 0,721 0,607

0,976 0,709 0,738 0,703 0,723 0,682 0,655 0,706 0,660 0,666

0,975 0,546 0,583 0,563 0,597 0,646 0,625 0,640 0,595 0,580

0,973 0,608 0,627 0,645 0,722 0,672 0,621 0,640 0,662 0,601

0,969 0,602 0,605 0,654 0,756 0,691 0,612 0,670 0,651 0,649

0,972 0,690 0,635 0,642 0,678 0,602 0,621 0,616 0,664 0,615

96

Tabla 50. Parámetros del tratamiento de ZA, ZB, ZC a salinidad 6ppt

con concentraciones de amonio de 0,3ppm; tomados cada 3

horas.

Horas pH T

TAN 0,3 ppm

Salinidad 6 ppt

Fecha: 18/01/2014

Zeolita: "A"

Peso: 0,01g

pH inical: 8,45

T°inical: 21,8

11am 8,46 22,0

2pm 8,46 22,3

5pm 8,47 22,4

8pm 8,50 22,7

11pm 8,50 22,8

2am 8,53 22,7

5am 8,56 22,0

8am 8,60 22,6

Hora

pH T

TAN 0,3 ppm

Salinidad 6 ppt

Fecha: 18/01/2014

Zeolita: "A"

Peso: 0,03g

pH inical: 8,45

T°inical: 21,8

11am 8,46 21,9

2pm 8,46 22,0

5pm 8,51 22,2

8pm 8,54 22,6

11pm 8,53 22,8

2am 8,52 22,7

5am 8,50 21,8

8am 8,57 22,4

Hora

pH T

TAN 0,3 ppm

Salinidad 6 ppt

Fecha: 18/01/2014

Zeolita: "A"

Peso: 0,06g

pH inical: 8,45

T°inical: 21,8

11am 8,48 21,9

2pm 8,43 22

5pm 8,46 22,2

8pm 8,52 22,6

11pm 8,52 22,8

2am 8,51 22,5

5am 8,52 21,7

8am 8,55 22,2

97

Hora

pH T

TAN 0,3 ppm

Salinidad 6 ppt Fecha: 18/01/2014

Zeolita: "B" Peso: 0,01g

pH inical: 8,45 T°inical: 21,8

11am 8,47 21,8

2pm 8,42 21,4

5pm 8,45 21,2

8pm 8,49 22

11pm 8,50 22,2

2am 8,49 22,6

5am 8,48 21,6

8am 8,56 22,6

Hora

pH T

TAN 0,3 ppm




11am 8,44 21,8

2pm 8,41 21,3

5pm 8,45 21,5

8pm 8,49 21,9

11pm 8,50 22,1

2am 8,51 22,6

5am 8,52 21,4

8am 8,52 22,4

Hora

pH T

TAN 0,3 ppm




11am 8,41 21,8

2pm 8,46 21,4

5pm 8,44 21,6

8pm 8,50 22

11pm 8,50 22,2

2am 8,51 22,4

5am 8,51 21,5

8am 8,52 22,3

Hora

pH T

TAN 0,3 ppm


Zeolita: "C" Peso: 0,01g


11am 8,41 21,9

2pm 8,46 21,5

5pm 8,44 21,8

8pm 8,50 21,9

11pm 8,50 22,2

2am 8,51 22,3

5am 8,51 21,8

8am 8,52 22,1

98

Hora

pH T

TAN 0,3 ppm




11am 8,38 21,9

2pm 8,35 21,3

5pm 8,38 21,4

8pm 8,48 22,2

11pm 8,50 22,2

2am 8,49 22,3

5am 8,47 21,6

8am 8,49 22,1

Hora

pH T

TAN 0,3 ppm




11am 8,35 22,8

2pm 8,34 21,2

5pm 8,37 21,4

8pm 8,42 22,8

11pm 8,45 22,1

2am 8,46 22,1

5am 8,45 21,6

8am 8,46 22

Hora

pH T

TAN 0,3 ppm

Salinidad 6 ppt Fecha: 18/01/2014 Zeolita: Testigo

Peso: Testigo pH inical: 8,45 T°inical: 21,8

11am 8,18 21,8

2pm 8,21 21,4

5pm 8,16 21,7

8pm 8,29 21,2

11pm 8,21 21,4

2am 8,26 22

5am 8,31 21,8

8am 8,22 22,3

99


con concentraciones de amonio de 0,6ppm; tomados cada 3

horas.

Hora

pH T

TAN 0,6 ppm


Zeolita: "A" Peso: 0,01g


11am 8,33 22,4

2pm 8,33 22,6

5pm 8,30 19,9

8pm 8,24 21,3

11pm 8,14 21,2

2am 8,08 21,9

5am 8,07 21,9

8am 8,16 22,1

Hora

pH T

TAN 0,6 ppm




11am 8,32 22,3

2pm 8,31 22,6

5pm 8,29 19,8

8pm 8,24 21,1

11pm 8,15 21,4

2am 8,11 21,8

5am 8,11 21,9

8am 8,21 22

Hora

pH T

TAN 0,6 ppm




11am 8,31 22,2

2pm 8,30 22,6

5pm 8,28 19,8

8pm 8,25 21,1

11pm 8,22 21,3

2am 8,20 21,7

5am 8,19 21,9

8am 8,28 22

100

Hora

pH T

TAN 0,6 ppm




11am 8,31 22,3

2pm 8,30 22,6

5pm 8,28 19,9

8pm 8,22 21,1

11pm 8,18 21,4

2am 8,11 21,7

5am 8,09 21,8

8am 8,21 22

Hora

pH T

TAN 0,6 ppm




11am 8,30 22,2

2pm 8,30 22,5

5pm 8,28 19,9

8pm 8,23 20,3

11pm 8,12 21,4

2am 8,07 21,7

5am 8,08 21,8

8am 8,21 22

Hora

pH T

TAN 0,6 ppm




11am 8,30 22,2

2pm 8,29 22,5

5pm 8,28 19,9

8pm 8,22 20,2

11pm 8,11 21,3

2am 8,06 21,6

5am 8,07 21,8

8am 8,22 22

Hora

pH T

TAN 0,6 ppm




11am 8,29 22,5

2pm 8,28 22,5

5pm 8,25 19,9

8pm 8,21 21

11pm 8,10 21,2

2am 8,04 21,6

5am 8,01 21,8

8am 8,17 21,9

101

Hora

pH T

TAN 0,6 ppt

Salinidad 6 ppm Fecha: 25/01/2014



11am 8,28 22,1

2pm 8,27 22,4

5pm 8,26 19,8

8pm 8,22 20,8

11pm 8,10 21,2

2am 7,97 21,6

5am 7,96 21,8

8am 8,13 21,8

Hora

pH T

TAN 0,6 ppm




11am 8,26 22,1

2pm 8,26 22,4

5pm 8,24 19,8

8pm 8,20 20,8

11pm 8,12 21,1

2am 8,07 21,3

5am 8,05 21,5

8am 8,18 21,8

Hora

pH T

TAN 0,6 ppm


Zeolita: TESTIGO Peso: TESTIGO pH inical: 8,08 T°inical: 23,2

11am 8,24 22,1

2pm 8,25 22,3

5pm 8,22 19,5

8pm 8,20 20,8

11pm 8,07 21,1

2am 7,91 21,7

5am 7,85 21,7

8am 7,98 21,8

102


con concentraciones de amonio de1,0ppm; tomados cada 3

horas.

Hora

pH T

TAN 1 ppm




11am 8,17 22,7

2pm 8,19 22,8

5pm 8,21 22,3

8pm 8,23 22,9

11pm 8,27 23,3

2am 8,30 22,9

5am 8,30 23,6

8am 8,36 23,8

Hora

pH T

TAN 1 ppm




11am 8,25 22,6

2pm 8,22 22,7

5pm 8,23 22,3

8pm 8,25 22,8

11pm 8,28 23,3

2am 8,29 22,9

5am 8,30 23,7

8am 8,36 23,8

Hora

pH T

TAN 1 ppm




11am 8,23 22,7

2pm 8,21 22,7

5pm 8,22 22,4

8pm 8,23 22,8

11pm 8,27 23,4

2am 8,27 22,8

5am 8,28 23,7

8am 8,35 23,8

103

Hora

pH T

TAN 1 ppm




11am 8,24 22,3

2pm 8,24 22,6

5pm 8,23 22,4

8pm 8,24 22,9

11pm 8,28 23,3

2am 8,29 22,8

5am 8,31 23,6

8am 8,38 23,7

Hora pH

T

TAN 1 ppm




11am 8,24 22,1

2pm 8,23 22,3

5pm 8,23 22,5

8pm 8,26 22,9

11pm 8,29 23,1

2am 8,28 22,8

5am 8,32 23,6

8am 8,39 23,5

Hora

pH T

TAN 1 ppm




11am 8,24 22,1

2pm 8,22 22,5

5pm 8,22 22,5

8pm 8,23 22,8

11pm 8,26 23,1

2am 8,28 22,6

5am 8,29 23,6

8am 8,38 23,5

Hora

pH T

TAN 1 ppm




11am 8,22 22,3

2pm 8,21 22,2

5pm 8,22 22,3

8pm 8,24 22,9

11pm 8,26 23,1

2am 8,27 22,7

5am 8,28 23,5

8am 8,38 23,1

104

Hora

pH T

TAN 1 ppm




11am 8,22 22,2

2pm 8,21 22,6

5pm 8,21 22,5

8pm 8,22 23

11pm 8,25 23,2

2am 8,25 22,7

5am 8,28 23,5

8am 8,37 23,6

Hora

pH T

TAN 1 ppm




11am 8,21 22,3

2pm 8,20 22,5

5pm 8,21 22,1

8pm 8,21 22,9

11pm 8,24 23,2

2am 8,25 22,9

5am 8,27 23,3

8am 8,36 23,7

Hora

pH T

TAN 1 ppm



11am 8,20 21,7

2pm 8,18 22

5pm 8,17 23,1

8pm 8,17 23,5

11pm 8,20 23,1

2am 8,21 22,8

5am 8,23 23,3

8am 8,31 23,2

105


con concentraciones de amonio de 0,3 ppm; tomados cada 3

horas.

Hora

pH T

TAN 0,3 ppm




11am 8,43 21,9

2pm 8,36 22,8

5pm 8,34 22,8

8pm 8,38 22,8

11pm 8,38 22,9

2am 8,37 22,4

5am 8,36 22,7

8am 8,38 22,8

Hora

pH T

TAN 0,3 ppm




11am 8,43 21,7

2pm 8,35 22,6

5pm 8,32 22,7

8pm 8,36 22,3

11pm 8,33 22,8

2am 8,32 22,4

5am 8,33 22,7

8am 8,34 22,7

Hora

pH T

TAN 0,3 ppm




11am 8,44 21,6

2pm 8,35 22,6

5pm 8,30 22,3

8pm 8,35 22,8

11pm 8,32 22,6

2am 8,32 22,2

5am 8,31 22,6

8am 8,33 22,7

106

Hora

pH T

TAN 0,3 ppm




11am 8,44 21,5

2pm 8,35 22,4

5pm 8,31 22,2

8pm 8,34 22,4

11pm 8,32 22,3

2am 8,33 22,3

5am 8,34 22,4

8am 8,36 22,7

Hora

pH T

TAN 0,3 ppm




11am 8,44 21,4

2pm 8,35 22,3

5pm 8,29 22,2

8pm 8,33 22,4

11pm 8,32 22,4

2am 8,32 22,4

5am 8,34 22,4

8am 8,34 22,6

Hora

pH T

TAN 0,3 ppm




11am 8,43 21,4

2pm 8,34 22,1

5pm 8,28 22,9

8pm 8,29 22,3

11pm 8,30 22,2

2am 8,31 22,3

5am 8,33 22,3

8am 8,34 22,5

Hora

pH T

TAN 0,3 ppm




11am 8,44 21,4

2pm 8,34 22,1

5pm 8,25 22,8

8pm 8,28 22,2

11pm 8,27 22,2

2am 8,29 22,3

5am 8,30 22,2

8am 8,32 22,6

107

Hora

pH T

TAN 0,3 ppm




11am 8,45 21,2

2pm 8,34 22,1

5pm 8,24 22,8

8pm 8,26 22,2

11pm 8,26 22,1

2am 8,27 22,5

5am 8,28 22

8am 8,28 22,5

Hora

pH T

TAN 0,3 ppm




11am 8,44 21,1

2pm 8,34 22,2

5pm 8,21 22,8

8pm 8,23 22,2

11pm 8,23 22,1

2am 8,24 22,3

5am 8,24 22

8am 8,26 22,5

Hora

pH T

TAN 0,3 ppm



11am 8,40 21,6

2pm 8,31 22,2

5pm 8,15 22,1

8pm 8,13 22,3

11pm 8,20 22,1

2am 8,22 22,3

5am 8,25 22,5

8am 8,27 22,6

108



horas.

Hora

pH T

TAN 0,6 ppm




11am 8,53 22,6

2pm 8,45 21,4

5pm 8,44 22,2

8pm 8,45 22,3

11pm 8,49 22,3

2am 8,45 21,3

5am 8,44 20,1

8am 8,47 22,5

Hora

pH T

TAN 0,6 ppm




11am 8,53 22,4

2pm 8,45 21,3

5pm 8,42 22

8pm 8,41 21,1

11pm 8,46 22,1

2am 8,42 22,1

5am 8,41 21,8

8am 8,43 22,3

Hora

pH T

TAN 0,6 ppm




11am 8,53 22,2

2pm 8,45 21,1

5pm 8,42 21,8

8pm 8,41 22

11pm 8,46 22,1

2am 8,43 22,2

5am 8,40 21,8

8am 8,44 22,4

}

109

Hora

pH T

TAN 0,6 ppm




11am 8,53 21,9

2pm 8,43 20,8

5pm 8,39 22

8pm 8,39 22

11pm 8,45 22,1

2am 8,39 22,6

5am 8,38 21,9

8am 8,42 22,4

Hora

pH T

TAN 0,6 ppm




11am 8,53 22,1

2pm 8,44 20,6

5pm 8,40 21,1

8pm 8,37 21,7

11pm 8,41 21,9

2am 8,40 22,6

5am 8,38 21,7

8am 8,43 22,3

Hora

pH T

TAN 0,6 ppm




11am 8,52 22

2pm 8,43 20,6

5pm 8,39 21,4

8pm 8,38 21,6

11pm 8,42 21,7

2am 8,40 22,5

5am 8,38 21,6

8am 8,42 22,3

Hora

pH T

TAN 0,6 ppm




11am 8,51 21,8

2pm 8,42 20,5

5pm 8,36 21,5

8pm 8,35 21,7

11pm 8,38 22

2am 8,36 22,1

5am 8,35 21,7

8am 8,40 22,2

110

Hora

pH T

TAN 0,6 ppm




11am 8,51 21,7

2pm 8,41 20,3

5pm 8,36 21,5

8pm 8,35 21,8

11pm 8,36 22

2am 8,35 21,9

5am 8,35 21,7

8am 8,39 22,3

Hora

pH T

TAN 0,6 ppm




11am 8,51 21,7

2pm 8,42 20,2

5pm 8,36 21,1

8pm 8,34 21,3

11pm 8,33 21,8

2am 8,34 21,9

5am 8,35 21,7

8am 8,39 22,3

Hora

pH T

TAN 0,6 ppm



11am 8,49 21,4

2pm 8,36 19,7

5pm 8,33 21,4

8pm 8,35 21,3

11pm 8,36 21,6

2am 8,36 22,1

5am 8,35 21,8

8am 8,39 21,5

111



horas.

Hora

pH T

TAN 1 ppm




11am 8,53 21,8

2pm 8,42 20,8

5pm 8,40 21,8

8pm 8,40 22

11pm 8,46 22,1

2am 8,43 21,8

5am 8,40 21,9

8am 8,43 22,4

Hora

pH T

TAN 1 ppm




11am 8,53 21,5

2pm 8,42 20,3

5pm 8,38 21,2

8pm 8,36 21,6

11pm 8,40 21,7

2am 8,39 21,8

5am 8,36 21,7

8am 8,40 22,3

Hora

pH T

TAN 1 ppm




11am 8,52 21,6

2pm 8,41 20,4

5pm 8,38 21,4

8pm 8,38 21,6

11pm 8,41 21,7

2am 8,43 21,8

5am 8,57 21,8

8am 8,42 22,3

112

Hora

pH T

TAN 1 ppm




11am 8,51 21,7

2pm 8,42 20,4

5pm 8,32 21,4

8pm 8,37 21,5

11pm 8,39 21,8

2am 8,38 21,4

5am 8,37 21,7

8am 8,42 22,5

Hora

pH T

TAN 1 ppm




11am 8,51 21,6

2pm 8,41 20,3

5pm 8,36 21,5

8pm 8,35 21,6

11pm 8,38 21,9

2am 8,38 21,3

5am 8,38 21,7

8am 8,42 22,3

Hora

pH T

TAN 1 ppm




11am 8,51 21,5

2pm 8,41 20,2

5pm 8,35 21,3

8pm 8,35 21,4

11pm 8,36 21,6

2am 8,36 21

5am 8,37 21,7

8am 8,41 22,3

Hora

pH T

TAN 1 ppm




11am 8,50 21,5

2pm 8,40 20

5pm 8,33 21,1

8pm 8,33 21,4

11pm 8,34 21,8

2am 8,34 21,3

5am 8,34 21,7

8am 8,40 22,3

113

Hora

pH T

TAN 1 ppm



11am 8,49 21,6

2pm 8,38 20,1

5pm 8,31 21,1

8pm 8,29 21,5

11pm 8,31 22,1

2am 8,30 22,3

5am 8,28 21,8

8am 8,32 22,4



horas.

Hora

pH T

TAN 0,3 ppm




11am 8,50 22,3

2pm 8,42 21,1

5pm 8,44 21

8pm 8,41 21,6

11pm 8,46 22,4

2am 8,48 22,6

5am 8,49 23

8am 8,48 22,4

Hora

pH T

TAN 0,3 ppm




11am 8,50 22,1

2pm 8,41 20,9

5pm 8,43 21,2

8pm 8,40 21,6

11pm 8,45 22,3

2am 8,46 22,4

5am 8,47 22,9

8am 8,46 22,4

114

Hora

pH T

TAN 0,3 ppm




11am 8,50 22,2

2pm 8,41 20,9

5pm 8,42 21,3

8pm 8,37 21,5

11pm 8,43 22,4

2am 8,45 22,4

5am 8,47 22,8

8am 8,48 22,3

Hora

pH T

TAN 0,3 ppm




11am 8,50 22,4

2pm 8,40 21,1

5pm 8,41 21,6

8pm 8,35 21,6

11pm 8,43 22,4

2am 8,45 22,3

5am 8,47 22,9

8am 8,47 22,5

Hora

pH T

TAN 0,3 ppm




11am 8,49 22,4

2pm 8,39 21,1

5pm 8,39 21,8

8pm 8,34 21,9

11pm 8,44 22,3

2am 8,45 22,3

5am 8,47 22,9

8am 8,46 22,4

Hora

pH T

TAN 0,3 ppm




11am 8,48 22,3

2pm 8,37 21,1

5pm 8,37 21,9

8pm 8,30 21,8

11pm 8,40 22,4

2am 8,42 22,2

5am 8,44 22,9

8am 8,43 22,4

115

Hora pH T

TAN 0,3 ppm




11am 8,40 22,3

2pm 8,33 20,9

5pm 8,26 21,9

8pm 8,25 21,8

11pm 8,33 22,9

2am 8,43 22,4

5am 8,43 22,4

8am 8,42 22,4

Hora pH T

TAN 0,3 ppm



11am 8,47 22,2

2pm 8,32 21,1

5pm 8,28 22,1

8pm 8,23 21,9

11pm 8,36 22,6

2am 8,39 22,1

5am 8,41 22,2

8am 8,42 22,6


con concentraciones de amonio de 0,6 ppm; tomados cada 3 h.

Hora pH T

TAN 0,6 ppm




11am 8,51 22,9

2pm 8,43 21,8

5pm 8,47 21,8

8pm 8,45 21,9

11pm 8,50 22,7

2am 8,51 22,5

5am 8,52 23,1

8am 8,53 22,5

Hora pH T

TAN 0,6 ppm




11am 8,51 22,5

2pm 8,42 21,3

5pm 8,45 21

8pm 8,42 21,9

11pm 8,47 22,4

2am 8,48 22,4

5am 8,49 23

8am 8,49 22,4

116

Hora

pH T

TAN 0,6 ppm




11am 8,50 22,1

2pm 8,41 20,9

5pm 8,44 21

8pm 8,41 21,8

11pm 8,47 22,5

2am 8,48 22,1

5am 8,50 23

8am 8,46 22,4

Hora

pH T

TAN 0,6 ppm




11am 8,51 22,1

2pm 8,42 20,7

5pm 8,42 21,4

8pm 8,38 21,2

11pm 8,43 22,8

2am 8,45 22,2

5am 8,47 22,8

8am 8,47 22,3

Hora

pH T

TAN 0,6 ppm




11am 8,51 22,4

2pm 8,41 20,8

5pm 8,42 21,4

8pm 8,38 21,3

11pm 8,45 22,9

2am 8,47 22,1

5am 8,48 22,8

8am 8,48 22,5

Hora

pH T

TAN 0,6 ppm




11am 8,51 22,1

2pm 8,40 20,8

5pm 8,40 21,4

8pm 8,35 21,3

11pm 8,44 22,8

2am 8,46 22

5am 8,48 22,8

8am 8,47 22,5

117

Hora

pH T

TAN 0,6 ppm




11am 8,51 22,1

2pm 8,39 21

5pm 8,39 21,5

8pm 8,34 21,5

11pm 8,43 22,9

2am 8,45 22

5am 8,48 22,9

8am 8,47 22,4

Hora

pH T

TAN 0,6 ppm




11am 8,49 22,2

2pm 8,38 21

5pm 8,36 21,8

8pm 8,31 21,6

11pm 8,43 22,9

2am 8,45 22

5am 8,48 22,9

8am 8,48 22,4

Hora

pH T

TAN 0,6 ppm




11am 7,93 22,2

2pm 7,83 21

5pm 7,80 21,9

8pm 7,85 21,6

11pm 7,97 23

2am 8,08 21,9

5am 8,08 22,6

8am 8,16 22,4

Hora

pH T

TAN 0,6 ppm



11am 8,30 22,1

2pm 8,04 21,1

5pm 8,06 21,7

8pm 8,00 21,4

11pm 8,14 22,3

2am 8,19 22

5am 8,22 22,2

8am 8,28 22,6

118



horas.

Hora pH T

TAN 1 ppm




11am 8,44 22

2pm 8,42 22,3

5pm 8,46 22,8

8pm 8,48 22,9

11pm 8,49 22,9

2am 8,50 21,7

5am 8,50 22,2

8am 8,53 22,8

Hora pH T

TAN 1 ppm




11am 8,43 22

2pm 8,43 22,1

5pm 8,45 22,2

8pm 8,47 22,6

11pm 8,48 22,4

2am 8,49 21,6

5am 8,50 21,9

8am 8,54 8,54

Hora pH T

TAN 1 ppm




11am 8,42 21,9

2pm 8,42 21,9

5pm 8,43 22,1

8pm 8,47 22,5

11pm 8,48 22,8

2am 8,47 21,6

5am 8,48 21,7

8am 8,52 22,3

Hora pH T

TAN 1 ppm




11am 8,40 21,6

2pm 8,39 21,1

5pm 8,41 22

8pm 8,49 22

11pm 8,49 22,5

2am 8,52 21,4

5am 8,53 21,4

8am 8,49 22,1

119

Hora pH T

TAN 1 ppm




11am 8,39 21,7

2pm 8,38 21,4

5pm 8,41 21,8

8pm 8,44 21,3

11pm 8,47 22,2

2am 8,47 21,4

5am 8,47 21,5

8am 8,53 22,4

Hora pH T

TAN 1 ppm




11am 8,38 21,6

2pm 8,39 21,6

5pm 8,39 21,2

8pm 8,45 22,2

11pm 8,46 22,2

2am 8,47 21,6

5am 8,47 21,5

8am 8,48 22,8

Hora pH T

TAN 1 ppm




11am 8,36 21,8

2pm 8,37 21,6

5pm 8,36 21,8

8pm 8,44 22,2

11pm 8,45 22,4

2am 8,45 21,5

5am 8,46 21,8

8am 8,48 22,2

Hora pH T

TAN 1 ppm




11am 8,35 22,3

2pm 8,36 21,6

5pm 8,33 21,8

8pm 8,44 22,1

11pm 8,48 22,4

2am 8,47 21,5

5am 8,45 21,7

8am 8,46 22,2

120

Hora pH T

TAN 1 ppm




11am 8,36 22

2pm 8,33 21,3

5pm 8,33 21,8

8pm 8,42 22

11pm 8,45 22,3

2am 8,46 21,6

5am 8,46 21,4

8am 8,51 22,2

Hora pH T

TAN 1 ppm



11am 8,34 22,1

2pm 8,30 21,5

5pm 8,29 22

8pm 8,42 21,7

11pm 8,44 21,7

2am 8,42 21,2

5am 8,41 21,9

8am 8,43 22,3

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