universidad tÉcnica de machala facultad de...

UNIVERSIDAD TÉCNICA DE MACHALA FACULTAD DE CIENCIAS AGROPECUARIAS

ESCUELA DE INGENIERÍA AGRONÓMICA

TRABAJO DE TITULACIÓN

EVALUACIÓN DEL ENRAIZAMIENTO A PARTIR DE LA

APLICACIÓN DE UN BIORREGULADOR DE

CRECIMIENTO EN YEMAS DE BANANO (Musa sp) CON LA

VARIEDAD William

AUTOR

JUAN ALBERTO QUICHIMBO OCHOA

2014

ii

Esta tesis ha sido aceptada en la forma presente por el tribunal de Grado designado por el

Honorable Consejo Directivo de la Facultad de Ciencias Agropecuarias, como requisito

parcial para optar al grado de

INGENIERO AGRÓNOMO

Ing. Agr. Abrahan Cervantes Alava, Mg. Sc., Director

Ing. Agr. Alexander Moreno Herrera Mg. Sc., Miembro

Ing. Agr. Iván Villacrés Mieles, Mg. Sc., Miembro

iii

La responsabilidad de esta investigación,

resultados y conclusiones del presente trabajo,

pertenecen exclusivamente a su autor.

Juan Alberto Quichimbo Ochoa

iv

UNIVERSIDAD TÉCNICA DE MACHALA

FACULTAD DE CIENCIAS AGROPECUARIAS

ACTA DE CESIÓN DE DERECHOS DE TESIS DE GRADO Y

TRABAJOS DE TITULACIÓN

Consigno con el presente escrito la cesión de los Derechos de Tesis de Grado/Trabajo de

Titulación de conformidad con las siguientes cláusulas:

PRIMERA:

Por sus propios derechos y en calidad de director de Tesis el Ing. Agr. Abrahan Rodolfo

Cervantes Alava y el tesista Juan Alberto Quichimbo Ochoa, por sus propios derechos, en

calidad de Autor de Tesis.

SEGUNDA:

El tesista Juan Alberto Quichimbo Ochoa, realizó la Tesis Titulada “EVALUACÓN DEL

ENRAIZAMIENTO A PARTIR DE LA APLICACIÓN DE UN BIORREGULADOR DE

CRECIMIENTO EN YEMAS DE BANANO (Musa sp) CON LA VARIEDAD William”,

para optar el título de Ingeniero Agrónomo en la Facultad de Ciencias Agropecuarias de la

Universidad Técnica de Machala bajo la dirección del Docente Ing. Agr. Abrahan Rodolfo

Cervantes Alava. Es política de la Universidad que la Tesis de Grado se aplique y materialice

en beneficio de la colectividad.

Los comparecientes Ing. Agr. Abrahan Rodolfo Cervantes Alava como Director de Tesis y el

tesista Juan Alberto Quichimbo Ochoa, como autor de la misma, por medio de la presente

instrumento, tienen a bien ceder en forma gratuita sus derechos en la Tesis de Grado titulada

“EVALUACÓN DEL ENRAIZAMIENTO A PARTIR DE LA APLICACIÓN DE UN

BIORREGULADOR DE CRECIMIENTO EN YEMAS DE BANANO (Musa sp) CON LA

VARIEDAD William”, a favor de la Facultad de Ciencias Agropecuarias de la Universidad

Técnica de Machala y conceden autorización para que la Universidad pueda utilizar esta Tesis

en su favor y/o de la colectividad, sin reserva alguna.

APROBACIÓN

Las partes declaran que reconocen expresamente todo lo estipulado en la presente Cesión de

Derechos.

Para constancia suscriben la presente Cesión de Derechos en la Ciudad de Machala a los

…………………………………………………… del año 2014.

Ing. Agr. Abrahan Cervantes Alava, Mg. Sc. Juan Alberto Quichimbo Ochoa

DIRECTOR DE TESIS AUTOR

v

AGRADECIMIENTO

A mis padres que han sido los propulsores para lograr mi meta de ser un profesional en la

Ingeniería Agronómica.

A mí querida esposa por su ayuda y su apoyo incondicional en todo el trayecto de mi vida

profesional hasta conseguir mis objetivos.

A mis hermanas que me han brindado todo lo que estuvo a su alcance con el fin de que fuese

un profesional.

A mi Jefe Ing. Enrique López que me ha brindado todo lo que estuvo a su alcance con el fin

de culminar mis estudios.

Expreso mi gratitud al Ing. Abrahan Cervantes A., por el tiempo dedicado y la contribución

de sus enseñanzas que hizo posible la elaboración de mi tesis.

Al Ing. Alexander Moreno y al Ing. Iván Villacres por impartir sus conocimientos que han

sido muy valiosos para mi carrera.

Al Ing. Geovanny Jaramillo y Ing. Santiago Enríquez por el apoyo brindado en mi trabajo de

investigación.

Siempre gradecido al personal que labora en la Facultad de Ciencias Agropecuarias.

El autor

vi

DEDICATORIA

Primero a Dios sobre todo, A mi padre Julio C. Quichimbo Nugra, a mi madre Jovita Ochoa

Benavides quienes han hecho de mí una persona de bien, a valorar todas aquellas

oportunidades que se me presentan en la vida y me enseñaron que el estudio es la mejor

herencia que me podrían dar.

A mi esposa Nube Magali Tigre Fajardo que siempre me apoya en todo momento con amor y

dedicación.

A mis hermanas Blanca, Jessica y Rosa, que siempre buscan mi por venir, a mis sobrinos y

sobrinas queridos, que ven en mi un ejemplo a seguir.

Juan Q.

vii

ÍNDICE DE CONTENIDO

Tema Página

1. Introducción 1

2. Revisión de literatura 3

3. Materiales y métodos 11

3.1 Materiales 11

3.1.1 Ubicación del ensayo 11

3.1.2 Ubicación geográfica 11

3.1.3 Condiciones de clima y suelo 11

3.1.4 Materiales utilizados 12

3.1.5 Tratamientos 12

3.1.6 Variables evaluadas 12

3.1.7 Medición de las variables 12

3.1.7.1 Porcentaje de enraizamiento a los 30, 45 y 60 días 12

3.1.7.2 Numero de yemas estimuladas por cepa 13

3.1.7.3 Altura de yemas a los 30 y 45 días 13

3.1.7.4 Número de hojas a los 30 y 45 días 13

3.1.7.5 Porcentaje de raíces funcionales a los 60 días 13

3.1.7.6 Largo de las raíces a los 60 días 13

3.1.7.7 Peso de las raíces a los 60 días 13

3.2 Metodología 14

3.2.1 Diseño experimental 14

3.2.1.1 Modelo matemático 15

3.2.1.2 Hipótesis 15

3.2.1.3 Análisis de varianza 15

3.2.1.4 Análisis estadístico 16

3.2.1.5 Especificaciones del diseño 16

4. Resultados 17

viii

4.1 Porcentaje de enraizamiento 17

4.2 Número de yemas adventicias por los tratamientos y la fertilización orgánica 18

4.3 Alturas de yemas estimuladas a los 30, 45 y 60 días 19

4.4 Número de hojas por plántula a los 60 días 21

4.5 Porcentaje de raíces vivas a los 60 días 22

4.6 Peso de las raíces a los 60 días 24

4.7 Volumen de las raíces a los 60 días 26

5. Discusión 27

6. Conclusiones 28

7. Resumen 29

8. Summary 31

9. Bibliografía 33

Apéndice 35

ix

ÍNDICE DE CUADROS

Cuadro Página

1. Productos utilizados en la Evaluación del enraizamiento a partir

de la aplicación de un biorregulador de crecimiento en yemas de

banano (Musa sp) con la variedad William, 2014.

10

2. Boceto del Análisis de varianza (Andeva) para en la

Evaluación del enraizamiento a partir de la aplicación de un

biorregulador de crecimiento en yemas de banano (Musa sp) con

la variedad William, 2014.

16

3. Porcentajes de enraizamiento para en la Evaluación del

enraizamiento a partir de la aplicación de un biorregulador de

crecimiento en yemas de banano (Musa sp) con la variedad

William, 2014.

17

4. Análisis de varianza para en la Evaluación del enraizamiento a

partir de la aplicación de un biorregulador de crecimiento en

yemas de banano (Musa sp) con la variedad William, 2014.

18

5. Prueba de Duncan con P la segragacion de los tratamientos

para en la Evaluación del enraizamiento a partir de la aplicación

de un biorregulador de crecimiento en yemas de banano (Musa sp)

con la variedad William, 2014.

18

6. Yemas estimuladas en tres evaluaciones para en la Evaluación

del enraizamiento a partir de la aplicación de un biorregulador de


William, 2014.

19

x

7. Análisis de varianza para el número de yemas estimuladas para

en la Evaluación del enraizamiento a partir de la aplicación de un



19

8. Altura de las yemas estimuladas a los 30, 45 y 60 días para en

la Evaluación del enraizamiento a partir de la aplicación de un



21

9. Análisis de varianza para altura de las yemas estimuladas con

Kelpak para en la Evaluación del enraizamiento a partir de la

aplicación de un biorregulador de crecimiento en yemas de


21

10. Número de hojas por planta en tres evaluaciones integradas en

el análisis para en la Evaluación del enraizamiento a partir de la

aplicación de un biorregulador de crecimiento en yemas de


22

11. Análisis de varianza para el número de hojas por planta para en

la Evaluación del enraizamiento a partir de la aplicación de un



22

12. Raíces vivas a los 60 días para en la Evaluación del



William, 2014.

24

13. Análisis de varianza para raíces vivas en los tratamientos para



24

xi


14. Prueba de Duncan con P para en la Evaluación del



William, 2014.

24

15. Peso de las raíces a los 60 días para en la Evaluación del



William, 2014.

25

16. Análisis de varianza para el peso de las raíces a los 60 días para




26

17. Prueba de Duncan con una P para en la Evaluación del



William, 2014.

26

18. Volumen de las raíces a los 60 días para en la Evaluación del



William, 2014.

27

19. Análisis de varianza para el volumen de las raíces a los 60 días

para en la Evaluación del enraizamiento a partir de la aplicación

de un biorregulador de crecimiento en yemas de banano (Musa sp)


27

xii

ÍNDICE DE FIGURAS

Figura Página

1. Pasos a seguir para iniciar el tratamiento de riego al plantar 5

2. Porcentaje de enraizamiento promediados para tres evaluaciones. 18

3. Número de yemas estimuladas con Kelpak 20

4. Altura de las yemas estimuladas con Kelpak. 21

4. Número de hojas por planta a los 60 días 23

5. Promedios del porcentaje de raíces vivas 25

6. Peso de las raíces a los 60 días. 26

7. Volumen de las raíces a los 60 días 28

xiii

ÍNDICE DE FOTOS

Foto Página

1. Preparación de las camas con el sustrato para la investigación. 36

2. Siembra de las cepas de banano con el número de yemas indicadas por

tratamiento. 36

3. Vista del sistema radicular en la plántula de banano. 37

4. Desarrollo vegetativo de las plántulas de banano. 37

5. Primera toma de datos a los 30 días. 38

6. Altura de las plántulas a los 60 días. 38

7. Distribución del sistema radicular. 39

8. Peso del sistema radicular 39

INTRODUCCIÓN

En el Ecuador existen grandes extensiones de terreno dedicadas a la producción de banano

que a través de diferentes técnicas logran obtener niveles de producción altos que justifican el

costo de la inversión de los productores, en la compra de plantas para la siembra de

renovación de plantaciones viejas, resiembras y/o expansión de nuevas áreas, debido a que

las musáceas son incapaces de producir semillas viables que aseguren la perpetuación de la

especie por la vía sexual, la única vía es a través de la reproducción asexual con el uso de

retoños o hijos.

La obtención del material de siembra por métodos convencionales (tradicionales), depende de

la capacidad que tienen estas plantas para producir los retoños, de las condiciones

ambientales, manejo agronómico, entre otros, lo cual delimitara tanto la cantidad y tiempo

necesario para su producción. Por cuanto, se considera como un proceso muy lento que

requiere de la aplicación de artificios como sustancias naturales o procesadas (fitohormonas),

o bien de actividades inherentes al desarrollo de las plantas (aporque, eliminación de la yema

apical, entre otras) que estimulen la brotación, acortando el periodo de producción de la

yemas.

La selección del material de propagación es el primer paso para iniciar la siembra comercial

de estos cultivo, y la mayor parte de los productores bananeros de la provincia de El Oro y del

Ecuador en general, usualmente utilizan cepas de la William provenientes del deshije. Esta

forma tradicional de propagación (a través de cormos) se caracteriza por ser lo más práctico y

sencillo a nivel de campo, permitiendo que el valor de la semilla sea accesible por los

productores. Sin embargo, las condiciones en las cuales se encuentran los sistemas de

producción, caracterizados por presentar problemas de fertilización, estrés hídrico, ausencia

de control de plagas y enfermedades, entre otras, condicionan la calidad y cantidad de semilla

a producir (baja eficiencia en la velocidad de propagación, y alto potencial de diseminación de

plagas y enfermedades).

2

Durante mucho tiempo se han utilizado productos químicos para mantener la productividad

del suelo cultivable; el abuso en la utilización de este tipo de productos ha provocado un

deterioro paulatino de sus propiedades físicas, químicas y biológicas de las plantas.

Debido a la necesidad de obtener una mayor productividad en los cultivos resulta

imprescindible la utilización de complementos nutritivos que enriquezcan el suelo; una

alternativa sostenible y natural para hacerlo es la aplicación de fertilizantes-reguladores de

crecimiento, los cuáles son productos que al ser aplicados permiten que el suelo recupere sus

nutrientes y la fertilidad al mismo tiempo que evitan la erosión con una mayor absorción de

agua.

Con el método de la técnica del enraizamiento a partir de la aplicación de un biorregulador de

crecimiento en yemas de banano se buscará disminuir los costos de inversión por la compra

de cepas, por lo tanto se plantean los siguientes objetivos:

1.- Establecer cuál es el mejor método de propagación por división de cepas agámica en

banano de la variedad Williams entre los tratamientos.

2.- Determinar el cual es el mejor sustrato para obtener el mejor porcentaje de plantas

propagadas para la siembra o trasplante definitivo

3

2. REVISIÓN DE LITERATURA

2.1 ENRAIZAMIENTO

Enraizador el cuál es una combinación balanceada de auxinas enraizadoras, vitaminas, ácidos

húmicos, ácidos fúlvicos y el elemento fósforo, los cuales producen una actividad intensa y

rápida en función de generar activisas y elasticidad a nivel de los primordios de raíces y haces

vasculares, actuando de la siguiente manera:

Promueve una rápida acción de preparación de los primordios que serán convertidos en

raíces.

Produce una rápida compensación de los niveles hormonales para dar soporte a los

procesos que generan la formación, desarrollo y crecimiento de las raíces.

Genera un engrosamiento de tallos (Xilema y Floema).

Produce un abundante sistema radicular fuerte y fibroso.

Favorece una óptima condición nutricional.

Para la producción de semillas mediante la técnica acelerada es necesaria la utilización de

estimulantes para incrementar los rebrotes de los cormelos y para eso es mejor el ácido

húmico el cual sirve tanto para el rebrote como para el enraizamiento. Importancia del ácido

húmico. Incrementa rendimiento de cosecha, incrementa permeabilidad de las membranas

incrementa la absorción de nutrientes aumenta crecimiento de organismos del suelo, estimula

procesos bioquímicos en las plantas estimula el desarrollo de las raíces, aumenta la utilización

de fosfato, tiene capacidad alta de cambio de base, estimula crecimiento.1

1 www.biofix.com

4

El ácido húmico de produce mediante la utilización de lombrihumus e hidróxido de potasio o

sodio.

Procedimiento para producir un litro de ácido húmico se necesita lo siguientes insumos.

Un litro de agua.

100ml de hidróxido de potasio o sodio.

200 gramos de lombrihumus.

Se hace una mezcla y se mueve por un periodo de 4 a 6 horas.

Una vez que ya está listo las dosis de aplicación son:

Al 10% para enraizamiento de plantas y al 1% para crecimiento y desarrollo.

La aplicación es foliar y se debe de aplicar en horas de la mañana o de la tarde.

En el caso de la producción de cormelos en musáceas es muy efectico la aplicación con una

frecuencia de 10 días aunque se obtienen buenos resultados cada 15 días.

Para plantas que están en el vivero también es necesario la utilización de fertilizantes para

garantizar un buen crecimiento y desarrollo en las plántulas en la misma concentración y a

frecuencias de 5 dias, de tal manera que se garantice o mantengan nutrientes disponibles para

su nutrición

2.2 BIOREGULADOR

Basf, (2003) indica que Kelpak la aplicación de bioreguladores naturales de crecimiento en un

vivero de una plantación de banano ubicada en Sullana (Perú), realizó ensayos sobre

aplicación de biorregulador natural de crecimiento en un hijuelo “Cebollín” de banano

orgánico con peso de aproximadamente medio kilo, al mismo que realizó una aplicación de

Kelpak al 2% mediante riego al plantar con 0,5 L solución por planta 10 cc.

5

Figura 1. Pasos a seguir para iniciar el tratamiento de riego al plantar

En Costa de Marfil la misma empresa realizó otro ensayo en un vivero, en el cual sembró

plantas in vitro hasta 20 cm, luego fueron trasplantados a bolsa en vivero hasta la altura para

campo aquí se realizaron aplicaciones foliares de Kelpak al 0,5% semanales por 6 semanas en

el vivero, con lo cual se obtuvo un acortamiento del tiempo en vivero de 2 semanas.

Suquilanda (1996) indica que la fertilización orgánica suministra los aportes minerales

complementarios y necesarios para que el suelo sea capaz, por medio de los fenómenos

físicos-químicos, de proporcionar a las plantas una alimentación suficiente y equilibrada,

ayuda a la microflora y microfauna, dejándole a estos la preparación de sustancias nutritivas

en forma altamente biológica y más provechosa para las plantas.

Producto bioestimulante y enraizante, cuya formulación induce primero el enraizamiento y

posteriormente al desarrollo radicular y de masa foliar, estimulando la división celular.

La presencia de aminoácidos y polisacáridos entre sus componentes, favorece la absorción de

nutrientes (macro y microelementos) que contiene, con lo que consigue un mayor desarrollo

de la planta en general. Ayudar a los cultivos a superar cualquier situación de estrés y

fitotoxicidad además de apoyar a la planta en momentos de gran actividad vegetativa2.

Cultivos frutales y banano:

Vía foliar: 250 - 300 cc/100 Lt

Vía suelo: 3 - 4 Lt/Ha

2 http://www.atlanticaagricola.com, consultado el 12 de diciembre del 2013.

http://www.atlanticaagricola.com/

6

Solución hormonal y nutritiva activadora del desarrollo radicular y vegetativo de plántulas.

Extracto de origen vegetal (fuentes de Citocinina, Giberelina, Auxinas).

Compensadores (Glutamíco, Pantoténico, Niacina, Tiamina, Vitaminas).

Acondicionadores Orgánicos

COMPOSICIÓN:

Aminoácidos libres 7 % p/p

Polisacáridos 3 % p/p

Nitrógeno (N) total 4 % p/p

Nitrógeno (N) orgánico 2,1 % p/p

Nitrógeno (N) nítrico 0,9 % p/p

Nitrógeno (N) amoniacal 1 % p/p

Pentóxido de fósforo (P2O5) soluble en agua 4 % p/p

Óxido de potasio (K2O) soluble en agua 3 % p/p

Hierro (Fe) soluble en agua 0,4 % p/p

Manganeso(Mn) soluble en agua 0,1 % p/p

Boro (B) soluble en agua 0,1 % p/p

Zinc (Zn) soluble en agua 0,085 % p/p

Cobre (Cu) soluble en agua 0,02 % p/p

Molibdeno (Mo) soluble en agua 0,01 % p/p

Fuente: http://www.atlanticaagricola.com

Basf, (2003) recomienda que el uso de kelpak, luego de actividades de Forqueo (Aireación) o

junto a la aplicación de Nematicida aplicar KELPAK al 1,5% con 150 a 200 cc/planta (200 a

300 L agua/ha = 4 L Kelpak/ha), idealmente 2 veces por año.

Basf, (2003) Kelpak realizó evaluaciones del producto aplicado sobre el suelo en banano esta

vez en la provincia del Guayas, sector Payo; aquí se utilizó tratamientos:

T1. 2L/ha Junio en 200 L/agua /ha

7

T2. 4L/ha Diciembre en 300 L/agua/ha

2.3 PRODUCCIÓN DE CORMOS POR PLANTAS.

La producción de rebrote se realizó en tres cosechas distribuidas de la siguiente manera:

Primera cosecha. A los 30 días después de la siembra.

Segunda cosecha. A los 15 días después del primer corte.

Tercera cosecha. A los 15 días después del segundo corte.

Existe una mayor producción de hijos cuando se aplican abonos orgánicos como estimulante

para la producción de rebrotes en las cepas, en el caso de la aplicación de lombrihumus hay

una producción de 12 hijos por cepa y en el tecrahumic 15 hijos todos en tres cortes o

cosechas.

Sin embargo a medida que se va realizando cortes se va disminuyendo, el tercer corte en

relación al segundo hay una disminución porcentual del tercer corte o cosecha con respecto a

la cosecha uno y dos.

Según los resultados obtenidos la técnica de reproducción acelerada de yemas, proporciona

mayor rapidez en la cantidad de semilla obtenida del cormo inicial entre 4 y 6 yemas en 30

días, en comparación con los sistemas tradicionales (rebrote) que las plantas madres tardan de

5 a 6 meses (específicamente en el período de floración) para que rebroten de 2 a 4 hijos.

De manera general el comportamiento entre los diferentes fertilizantes fue el siguiente.

Estadísticamente, no existen diferencias significativas entre las clases de cormos al 5% y al

1%, lo que significa que independientemente del diámetro de la cepa se producen una

cantidad de hijos similares.3

3 http://www.eiag.edu.ni/Pwebs/Carreras/

8

2.4 CRECIMIENTO Y DESARROLLO DE LOS HIJOS PRODUCIDOS

CON LA TÉCNICA DE REPRODUCCIÓN ACELERADA.

2.4.1 ALTURA.

La altura fue referida por el desarrollo de las plántulas en el vivero, donde se obtuvo como

resultado, que las estimuladas con el tratamiento lombrihumus obtuvieron un mejor resultado

en altura en el corte 2, debido a que el lombrihumus es un abono de efecto tardío, por tal

razón es que una vez utilizado el abono empieza a disminuir en el corte tres, esto es porque

hay una relación directa entre el tamaño en que se corta el rebrote y su desarrollo en el vivero.

A diferencia con el Tacrehumic que tiene un efecto de incremento a medida que la aplicación

es más cerca del corte, puesto que su efecto es instantáneo, mientras que en el que es sin

estimulante hay una homogeneidad en la altura de las plántulas

Para obtener plántulas vigorosas y con una altura adecuada para llegar al lugar definitivo de la

plantación es necesaria la implementación de estimulantes o fertilizantes que garanticen la

calidad de mismas, en esta investigación en promedio hay una diferencia de 5 a 6 centímetros

entre los que se les aplicó estimulante y el que se realizó de manera tradicional o testigo.

2.4.2 Diámetro.

El diámetro de las plántulas el cual está referido por el grosor que fueron adquiriendo en la

etapa de vivero, los cuales mostraron un rango de 2cm a 3cm, siendo el lombrihumus el que

presento mayores resultados.

Que el estimulante de lombrihumus presentó los el mayor diámetro, sin embargo disminuye

en el corte 3, a diferencia de Tacrehumic el cual presenta un aumento del diámetro a medida

que se le hacen más cortes, esto se debe a que los abonos de suelo son más tardíos para su

disponibilidad, puesto que deben de estar en solución, es por eso que sus efectos se ven hasta

el corte 2 , a diferencia del Tacrehumic que es un fertilizante líquido, altamente soluble en

agua y su reacción es instantánea y efectiva, además este fertilizante se adapta para

aplicaciones cuando los cultivos ya están desarrollados.

9

Esto demuestra que el estimulante líquido que es un ácido húmico es más efectivo, puesto que

va incrementando a medida que las frecuencias se disminuyen, logrando plantas más

vigorosas, lo que implicará una mayor sobrevivencia a la hora del transplante en el lugar

definitivo disminuyendo la resiembra.

2.5 INDUCCIÓN DE BROTACIÓN DE YEMAS

Esta metodología consiste en la eliminación de la dominancia apical, por lo que se considera

la técnica más sencilla y de fácil adopción por el productor para la producción masiva de

cormos. Con el rompimiento de la dominancia apical se logra producir en promedio 5–10

cormos por punto de siembra4.

Tradicionalmente los cormos o semillas se obtienen de plantaciones comerciales destinadas a

la producción de fruta; esta actividad debe realizarse con prudencia porque el arranque

continuo de cormos en áreas de producción reduce considerablemente los rendimientos. Sin

embargo, sí los productores necesitan abastecerse de cormos provenientes de sus propias

plantaciones comerciales, se recomienda seleccionar plantas madres que tengan características

especiales de conformidad con su genotipo, especialmente un racimo bien conformado y de

buen tamaño, buen porte y que estén libres de daños de plagas y enfermedades (FHIA 2009).

El potencial productivo de yemas vegetativas de las musáceas es alto, equivale al número de

hojas (38 a 42) que emiten las plantas durante su ciclo productivo. Sin embargo, se aprovecha

un máximo de 5 a 10 yemas por planta, representando un 25% del potencial productivo de

yemas. Con el propósito de aprovechar más eficientemente el referido potencial, se han

desarrollado diferentes metodologías que se aplican a las musáceas para inducir la brotación

de yemas y/o acelerar su proceso de desarrollo (FHIA 2009).

La planta de plátano se propaga tradicionalmente en forma asexual o vegetativa. Este método

ofrece la ventaja de que se dispone de ella en todo momento. Se puede decir que cualquier

cormo con su punto de crecimiento no diferenciado, se puede emplear como material de

siembra (Belalcázar 1991).

4 http://www.fhia.org.hn/dowloads/proteccion_veg

http://www.fhia.org.hn/dowloads/proteccion_veg

10

Durante manejo de la variedad williams su desarrollo la plantación recibe todos los cuidados

que la técnica moderna exige, tanto e n las labores de mantenimiento como en las de

protección de la fruta que han resultado de la investigación para lograr un manejo integrado

del cultivo.5

Entre estas actividades se cuentan:

Deshije consiste en la eliminación de retoños o hijos que no son productivos. El concepto

básico es mantener únicamente una secuencia entre la madre, el hijo y un nieto, seleccionando

sólo las mejores plantas para la producción.

La aplicación en el Banano Aspersión Aplicar 4 L/ha de hormovir enraizador en 200 L de

agua aplicando a la base del tallo 1 L de esta solución (al inicio de las lluvias)6.

5 http://www.gquirola.com/html/productos/banano/produccion.html

6 http://www.quimia.com.mx/descargas, consultado el 2 de diciembre del 2013

http://www.quimia.com.mx/descargas

11

3. MATERIALES Y MÉTODOS

3.1 MATERIALES

3.1.1 UBICACIÓN DEL ENSAYO

El presente trabajo de investigación se llevó a cabo en la granja experimental Santa Inés de la

Facultad de Ciencias Agropecuarias de la Universidad Técnica de Machala, ubicada a 5,5 km

de la vía Machala – Pasaje; perteneciente a la parroquia El Cambio, cantón Machala,

provincia de El Oro

3.1.2 UBICACIÓN GEOGRÁFICA

La Granja experimental Santa Inés se encuentra en las siguientes coordenadas geográficas:

Longitud: 79o

54´ W

Latitud: 03o 16´ S

Altitud: 8 m snm

Expresadas en Utm:

Longitud: 9638864 N

Latitud: 622212 E

Altitud: 8 m snm

3.1.3 CONDICIONES DE CLIMA Y SUELO

La zona del ensayo según los registros del INAMHI posee una temperatura media de 24º C,

una precipitación media anual de 630 mm, horas luz promedio de cinco horas dependiendo de

la época, una humedad relativa del 90 %, los suelos son de textura arcillo - limoso, y con un

pH neutro de 7. De acuerdo a la zona de vida natural de Holdridge la región correspondiente a

un Bosque Húmedo – Tropical (bh – T).

12

3.1.4 MATERIALES UTILIZADOS

Cepas de banano, sustrato, cajas de cristal y herramientas.

3.1.5 TRATAMIENTOS

Los tratamientos son como lo indican en el cuadro 1.

Cuadro 1. Productos utilizados en la Evaluación del enraizamiento a partir de la aplicación de

un biorregulador de crecimiento en yemas de banano (Musa sp) con la variedad William,

2014.

Código Tratamientos Dosis

T1 1 cepa + 3 yemas + Kelpak 10 cc

T2 ½ cepa + 1 yema + Kelpak 10 cc

T3 ½ cepa + 2 yemas + Kelpak 10 cc

T4 Hijo de agua + 3 yemas + Kelpak 10 cc

T5 Testigo (cepa con 3 yemas) --

3.1.6 VARIABLES EVALUADAS

Las variables en estudio para el presente trabajo de investigación fueron las siguientes:

1. Porcentaje de enraizamiento a los 30, 45 y 60 días

2. Numero de yemas estimuladas por cepa

3. Altura de yemas a los 30 y 45 días

4. Número de hojas a los 30 y 45 días

5. Porcentaje de raíces funcionales a los 60 días

6. Largo de las raíces a los 60 días

7. Peso de las raíces a los 60 días

13

3.1.7 MEDICIÓN DE LAS VARIABLES

3.1.7.1 Porcentaje de enraizamiento a los 30, 45 y 60 días.

Para determinar el porcentaje de enraizamiento de las yemas, a los 30, 45 y 60 días después

de la siembra se procedió a contar el total de raíces visibles a través del cristal de la caja en

cada uno de los tratamientos, utilizando una simple regla de tres.

Porcentaje de enraizamiento =100

..min.......... adasgerraicesdeTotalvisiblesraicesTotal

3.1.7.2 Número de yemas estimuladas por cepas

Este dato se tomó sacando una cepa al azar y se procedió a contar el número de yemas ya

estimuladas por cada tratamiento a los 60 días después de la siembra.

3.1.7.3 Altura de yemas a los 30 y 45 días

Para la toma de este dato se utilizó un flexometro y se procedió a medir desde la base del

suelo hasta el inicio de la hoja candela y su resultado se expresó en centímetros.

3.1.7.4 Número de hojas a los 30 y 45 días.

Para determinar el número de hojas de las plantas germinadas se contó el número de hojas

promedio por tratamiento.

3.1.7.5 Porcentaje de raíces funcionales a los 60 días

Para la toma de este dato se escogió tres yemas al azar se contó el número total de raíces y

luego se contaron el número de raíces funcionales y se procedió a hacer un regla de tres para

sacar el porcentaje.

14

3.1.7.6 Largo de las raíces a los 60 días

Se tomó este dato con las mismas tres yemas sacadas al azar antes mencionada y con la ayuda

de una cinta métrica se procedió a medir el largo de las raíces funcionales.

3.1.7.7 Peso de las raíces a los 60 días

Se procedió con las mismas raíces funcionales anteriores para pesarlas previamente lavadas y

escurridas para su peso exacto.

3.2 METODOLOGÍA

1) Selección del material: se utilizó 1 cepa de banano sana y vigorosa; tipo “cebollín” y que

tuvo desde una a tres “yemas” cada uno y por tratamiento, este material se escogió de una

misma finca y con el mismo peso por cepa (variedad Williams).

2) Limpieza y lavado: a las cepas seleccionadas se les removió los restos de tierra con

abundante agua, y con un cuchillo se eliminaron las raíces, partes del cormo que se

encontraron afectadas por daños causados por plagas o microorganismos y la porción aérea

(hojas y parte de pseudotallo), dejando sólo una porción que permita sujetarlo con la mano.

3) Desinfección: se preparó una solución de agua y cloro a razón de 5 ml por litro de agua, en

la cual se sumergió los cormos durante 10 minutos para su desinfección. De igual manera, las

herramientas utilizadas para realizar los cortes fueron desinfectadas con cloro antes de usarlo

en el próximo corte. Cabe destacar que este proceso de desinfección es la más práctica y

económica en el campo, y la misma es considerada como parcial, pudiéndose utilizar otros

productos químicos de amplio espectro, pero que incrementarían los costos operacionales y el

cuidado extremo en su manipulación.

15

4) Siembra: las cepas limpias y desinfectadas previo a la siembra fueron sumergidas en una

solución de Kelpak durante 10 minutos para luego ser sembradas en las cajas de cristal

previamente preparadas con su sustrato y a los 30 días en la que se empezaron a evaluar las

variables. En esta etapa se suministró riego, evitando la saturación y condiciones de estrés

hídrico. Se estima que las plantas estarán aptas para la siembra en campo en un periodo

mínimo de 60 días.

3.2.1 DISEÑO EXPERIMENTAL

El diseño experimental fue el completamente randomizado con cinco tratamientos y dos

repeticiones:

3.2.1.1 Modelo matemático

El modelo matemático del diseño experimental fue el completamente randomizado, tuvo

representado por la siguiente ecuación lineal:

Yij = u + + ti + Eij

Dónde:

Yij = Representa la unidad experimental

u = Promedio general del ensayo

ti = Efecto d Kelpak y material vegetativo del Hibrido Willams

Eij = Error experimental

3.2.1.2 Hipótesis:

Hipótesis nula (Ho).

La aplicación de Kelpak al momento de la siembra no ayudara a tener un buen volumen y

masa radicular y mejor crecimiento de la planta que se destinara para renovación de

plantaciones.

16

Hipótesis alternativa (Ha).

A la espera que al menos uno de los tratamientos cumplirá con la espectativo de esta

investigación.

3.2.1.3 Análisis de varianza

En el cuadro 2 se presenta el análisis de la varianza.

Cuadro 2. Boceto del Análisis de varianza (Andeva) para en la Evaluación del enraizamiento

a partir de la aplicación de un biorregulador de crecimiento en yemas de banano (Musa sp)


Fuentes de variación g.l CME

Tratamientos 4 σ2

+∑ti/2/ni

Error Experimental 5

3.2.1.4 Análisis estadístico

Para separar las medidas de los tratamientos, se aplicaron la prueba de rangos múltiples de

Duncan.

3.2.1.5 Especificaciones del diseño

Si el error experimental se mantiene dentro de las especificación es técnicas (CV < 10%), los

promedios de tratamiento se compararon mediante una prueba de Duncan con un nivel de

significación de 1%.

Especificaciones del diseño:

Número de tratamientos = 5

Número de plantas por tratamientos = 9

17

Total de plantas en ensayo = 45

Número de repeticiones = 2

18

4. RESULTADOS

4.1 PORCENTAJE DE ENRAIZAMIENTO

Las cepas de banano del clon Williams, previamente procesadas y desinfectadas con una

solución de hipoclorito de sodio y sembradas en el sustrato de suelo enriquecido con humus,

luego sumergidas en una solución de Kelpak 10 ml/cepa, inicio el proceso de activación del

tejidos meristemáticos que forman las raíces, y el área foliar de planta (pseudotallo y hojas).

En el cuadro 1 se presenta la estimación del enraizamiento de los “cepas” en los tres periodos

de evaluación y el promedio por tratamiento. El mayor promedio con 56.4% del material

vegetativo con raíces activas correspondió al tratamiento T2. . Media cepa - 1 yemas - Kelpak

10ml. Mientras el menor promedio se registró en el testigo T6. Cepas con tres yemas. Dentro

de este intervalo de variación el cuadrado medio de tratamientos (Cuadro 3), fue altamente

significativo, evidenciando que la tecnología implementada supera al testigo tradicional. De

acuerdo con la prueba de Duncan con P , los promedios de los tratamientos estudiados

si difieren significativamente con respecto al testigo absoluto.

Para el ensayo en un promedio general de enraizamiento fue 44.94% con un coeficiente de

variación del 10.34%.

Cuadro 3. Porcentajes de enraizamiento para en la Evaluación del enraizamiento a partir de la

aplicación de un biorregulador de crecimiento en yemas de banano (Musa sp) con la variedad

William, 2014.

Tratamientos 30 30 45 45 60 60 Promedio

T1. Una cepa - 3 yemas - Kelpak 10 ml 55.75 45.75 57 54.83 60.25 55.25 54.81 ab

T2. Media cepa - 1 yemas - Kelpak 10ml 51.25 58.05 53.67 60.67 53.75 61.0 56.40 a

T3. Media cepa - 2 yemas - Kelpak 10 ml 51.45 53.25 55.67 54.33 56.25 51.0 53.66 ab

T4. Hijo de agua - 3 yemas - Kelpak 10ml 42.5 50.5 47.17 43.67 47.5 45.25 46.10 c

T5 Testigo cepa con 3 yemas 14.05 10.75 15.0 12.33 15.75 14.5 13.73 d

Total 215 218.3 228.5 225.83 233.5 227 44.94

Total fechas 433.30 454.33 460.50 1348.13

19

Cuadro 4. Análisis de varianza para en la Evaluación del enraizamiento a partir de la


William, 2014.

Análisis de varianza GL S.C CM FC F0.05 F0.01

Tratamientos 4 7679.85 1920 182.04** 2.203 4.264

Periodos de evacuación 2 40.676 20.34 1.9284

Error experimental 23 242.575 10.55

Total 29 7963.101 C.V(%) 10.34%

Cuadro 5. Prueba de Duncan con P la segragacion de los tratamientos para en la

Evaluación del enraizamiento a partir de la aplicación de un biorregulador de crecimiento en


Promedios 2 3 4 5

Amplitudes de Duncan 2.93 3.08 3.17 3.24

Error estándar del promedio 1.3258

Rangos de Duncan P 3.88 4.08 4.20 4.30

Figura 2. Porcentaje de enraizamiento promediados para tres evaluaciones.

4.2 NÚMERO DE YEMAS ADVENTICIAS ESTIMULADAS POR LOS

TRATAMIENTOS Y LA FERTILIZACIÓN ORGÁNICA

54,81 56,40

53,66

46,10

13,73

0,00

10,00

20,00

30,00

40,00

50,00

60,00

T1 T2 T3 T4 T5

20

En el cuadro 4 se presenta los valores que corresponden al número yemas actividades por la

acción de los tratamientos, específicamente de Kelpak. Según estos resultados el cuadrado

medio de tratamientos fue inferior que los valores tabulares de F0.05 y 0.01, en vista de lo

cual se infiere que este evento agronómico fue independiente de los tratamientos aplicados,

Cuadro 5 El mayor promedio de yemas estimuladas fue de 2.5 para el tratamiento T1. Una

cepa con 3 yemas+ Kelpak, luego siguen los tratamientos T4, T3, T5 o testigo y T2. Media

cepa + 1 yemas+ Kelpak. (Figura 3).

El promedio general del ensayo fu de 1.50 con un coeficiente de variación del 106 %.

Cuadro 6. Yemas estimuladas en tres evaluaciones para en la Evaluación del enraizamiento a

partir de la aplicación de un biorregulador de crecimiento en yemas de banano (Musa sp) con



T1. Una cepa - 3 yemas - kelpak 10 ml 2 2 2 3.00 3 3 2.5

T2. Media cepa -1 yema - Kelpak 10ml 0 1 1 0 1 1 0.7

T3.Media cepa - 2 yemas - Kelpak 10 ml 0 1 1 2 2 2 1.3

T4. Hijo de agua- 3 yemas - Kelpak 10ml 1 1 1 2 2 3 1.7

T5 Testigo cepa con 3 yemas 1 1 1 1 1 2 1.2

Total 4 6 6 8 9 11 1.50

Total fechas 10 14 20 44

Cuadro 7. Análisis de varianza para el número de yemas estimuladas para en la Evaluación

del enraizamiento a partir de la aplicación de un biorregulador de crecimiento en yemas de



Tratamientos 4 11.133 2.78 0.0081 ns 2.20 4.264

Periodos de evaluación 2 5.0667 2.53 0.0073


Total 29 7963.1 C.V(%) 106.%

21

Figura 3. Número de yemas estimuladas con Kelpak.

4.3 ALTURA DE LAS YEMAS ESTIMULADAS A LOS 30, 45 Y 60 DÍAS

La variable Altura de las yemas estimuladas registradas en tres fases de evaluación, 30, 45 y

60 días se presenta en el cuadro 6. La mayor altura de las yemas fue de 44 cm con; rango de

variación de 19 a 44 correspondiendo al tratamiento T1. Una cepa – 3 yemas + Kelpak,

bioestimulante formulado con fitohormonas derivados de algas marinas. En orden decreciente

siguen los tratamientos T3. Media cepa - 2 yemas - Kelpak; T4. Hijo de agua + 3 yemas +

Kelpak, T2. Media cepa – 1 yema – Kelpak y en último lugar el testigo absoluto con la

aplicación del bioestimulante ni la fertilización con ácidos húmicos de elaboración artesanal

(Humus+ hidróxido de potasio).

En el Anova (cuadro 8), la varianza de tratamientos no fue significativo, por lo tanto falta la

evidencia estadística para rechazar la hipótesis nula Ho. Diferencias significantes se obtuvo

entre fechas de evaluación, la cual carece de importancia agronómica

En la figura 3 se grafica los promedios de cada tratamiento para fines de comparación

empleando el test de Duncan, el mismo que se justificó considerando que el valor de F para

tratamientos resulto ser inferior a 1.0.

2,5

0,7

1,3

1,7

1,2

0,0

0,5

1,0

1,5

2,0

2,5

3,0

T1 T2 T3 T4 T5

22

Cuadro 8. Altura de las yemas estimuladas a los 30, 45 y 60 días para en la Evaluación del

enraizamiento a partir de la aplicación de un biorregulador de crecimiento en yemas de



T1. Una cepa - 3 yema - Kelpak 10 ml 19 20 25 28.00 40 44 29

T2. Media cepa - 1 yema - Kelpak 10ml 16 18 24 22 36 34 25

T3. Media cepa - 2 yemas - Kelpak 10 ml 17 15 26 24 37 39 26

T4. Hijo de agua - 3 yemas - Kelpak 10ml 16 18 23 26 35 38 26

T5. Testigo cepa con 3 yemas 14 15 19 21 25 30 21

Total 82 86 117 121 173 185

Total fechas 168 238 358 764

Cuadro 9. Análisis de varianza para altura de las yemas estimuladas con Kelpak para en la




Tratamientos 4 235.467 58.8667 0.23 ns 2.203 4.264

Periodos de evaluación 2 1846.67 923.333 3.61108 * 3.42 5,66


Total 29 7963.1

Figura 4. Altura de las yemas estimuladas con Kelpak.

23,5

17 16 17 14,5

26,5

23 24,5

20 20

42

35 38

36,5

27,5

0

5

10

15

20

25

30

35

40

45

T1 T2 T3 T4 T5

30 45 60

23

4.4 NÚMERO DE HOJAS POR PLÁNTULA A LOS 60 DÍAS

La variable número de hojas por planta a 30, 45 y 60 días se visualiza en el cuadro 8. El

mayor promedio 5.0 hojas/planta a los 60 días y un rango de variación de 2 a 5 hojas. Se

obtuvo en el tratamiento T2 Media cepa - 1 yema - Kelpak; En segundo lugar se ubica el

tratamiento T5. Testigo hijo de agua- 3 yemas con 4,16. El promedio más bajo le

correspondió al tratamiento T1 una Cepa - 3 yemas - Kelpak. En este intervalo se ubican los

tres tratamientos restantes. En este contexto en el análisis de varianza, el cuadrado medio de

tratamiento para el conjunto de datos de las tres evaluaciones con mayor número de grados de

libertad para el error ( = 23), no se obtuvo significancia estadística, indicando que los

tratamientos investigados no influyeron sobre esta variable agronómica. (Cuadro 10 y figura

5).

Cuadro 10. Número de hojas por planta en tres evaluaciones integradas en el análisis para en

la Evaluación del enraizamiento a partir de la aplicación de un biorregulador de crecimiento

en yemas de banano (Musa sp) con la variedad William, 2014.

TRATAMIENTOS 30 d 30 45 d 45 60 d 60 d promedio

T1. Una cepa - 3 yemas - Kelpak 10 ml 0.33 0.66 1.33 1.33 3.33 3.66 3.50

T2. Media cepa-1 yema- Kelpak 10ml 2 2 3 4 5 5.00 5.0

T3. Media cepa- 2 yemas-Kelpak 10 ml 1.66 1.00 2 1.5 4 3.50 3.75

T4. Hijo de agua- 3 yemas - Kelpak 10ml 0.66 0.66 1.66 2 3.66 4.33 4.0

T5. Testigo cepa con 3 yemas 1 0.33 2.33 2 4.33 4.00 4.16

Total 5.65 4.65 10.32 10.83 20.32 20.49 2.4

Cuadro 11. Análisis de varianza para el número de hojas por planta para en la Evaluación del

enraizamiento a partir de la aplicación de un biorregulador de crecimiento en yemas de



Tratamientos 4 10.07411 2.5185 1.24 ns 2.203 4.264


Total 29 60.83015

24

Figura 5. Número de hojas por planta a los 60 días

4. 5 PORCENTAJE DE RAÍCES VIVAS A LOS 60 DÍAS

La variable porcentaje de raíces vivas a los 60 días se presenta en el cuadro 10. Los mayores

promedios con 94.21 y 92.37% (cuadro 12) se registró en los tratamientos T1 y T2 con media

cepa con 1 y 2 yemas + Kelpak, derivado de algas marinas. En orden decreciente siguen los

tratamientos T1. Una cepa - 3 yemas – Kelpak con 88.92% raíces activas, T4. Hijo de agua -

3 yemas - Kelpak y en último lugar el testigo cepa- 3 yemas- sin bioestimulante.

En el Anova (cuadro 13), la varianza de tratamientos fue significativo al nivel de 1% por lo

tanto existe suficiente evidencia estadística para rechazar la hipótesis nula Ho: por lo tanto

al emplear la comparación entre de Duncan los promedios con los rangos se encontró que los

tratamientos con Kelpak fueron fue superiores que el testigo absoluto.

El promedio general del ensayo fue de 82.9 % con un coeficiente de variación del 13.58%

3,50

5,00

3,75 4,00 4,17

0,00

1,00

2,00

3,00

4,00

5,00

6,00

T1 T2 T3 T4 T5

25

Cuadro 12. Raíces vivas a los 60 días para en la Evaluación del enraizamiento a partir de la


William, 2014.

TRATAMIENTOS 60 días 60 días TOTAL PROMEDIO

T1. Una cepa - 3 yemas - Kelpak 10 ml 87.84 90 177.84 88.92 a

T2. Media cepa - 1 yema - Kelpak 10ml 94.88 93.55 188.43 94.215 a

T3. Media cepa - 2 yemas - Kelpak 10 ml 92.76 91.98 184.74 92.37 a

T4. Hijo de agua- 3 yemas -Kelpak 10ml 82.6 75.3 157.9 78.95 a

T5. Testigo cepa con 3 yemas 42.85 77.59 120.44 60.22 b

Total replicas 338.42 82.9%

Cuadro 13. Análisis de varianza para raíces vivas en los tratamientos para en la Evaluación



ANALISIS DE VARIANZA GL S.C CM FC F0.05 F0.01

Tratamientos 4 51995.63 12999 102.58** 5.1 11.39


Total 9 52629.23 5847.7

Cuadro 14. Prueba de Duncan con P para en la Evaluación del enraizamiento a partir

de la aplicación de un biorregulador de crecimiento en yemas de banano (Musa sp) con la

variedad William, 2014.

Promedios 2 3 4 5


Sx 5.6285

Rangos de Duncan 20.48774 21.05059 21.332 21.557155

26

Figura 6. Promedios del porcentaje de raíces vivas.

4.6 PESO DE LAS RAÍCES A LOS 60 DÍAS

La variable peso de las raíce a los 60 días se presenta en el cuadro 13. Y el análisis de

varianza y comparación entre promedios en los cuadros 15 y 16 respectivamente; según estos

resultados, Los tratamientos T1, T2 y T3 son similares estadísticamente, ya que la diferencia

entre los promedios no supera los rangos de Duncan. Los pesos promedios de las raíces están

dentro del rango de 107.25 a 115.50 gramos formando el grupo superior, en segundo lugar

aparece el tratamiento T4 con 107.25 gramos de raíces, superando a los tratamientos T4. Hijo

de agua - 3 yemas – Kelpak y al testigo absoluto. (Cuadro 17).

El promedio general del ensayo fue de 92,10 gramos, con un coeficiente de variación de

7.25%.

Cuadro 15. Peso de las raíces a los 60 días para en la Evaluación del enraizamiento a partir de

la aplicación de un biorregulador de crecimiento en yemas de banano (Musa sp) con la

variedad William, 2014.

Tratamientos R1 R2 Total Media

T1. Una cepa - 3 yema - kelpak 10 ml 120.50 110.5 231.00 115.50 a

T2. Media cepa - 1 yema- Kelpak 10ml 107.50 122.00 229.5 114.75 a

T3. Media cepa - 2 yemas - Kelpak 10 ml 112.50 102.00 214.5 107.25 ab

T4. Hijo de agua - 3 yemas - Kelpak 10 ml 95.00 90.5 185.5 92.75 c

T5. Testigo cepa con 3 yemas 31.50 29 60.5 30.25 d

Total 921.00 92.10

88,92 94,215 92,37

78,95

60,22

0

10

20

30

40

50

60

70

80

90

100

T1 T2 T3 T4 T5

27

Cuadro 16. Análisis de varianza para el peso de las raíces a los 60 días para en la Evaluación




Tratamientos 4 10231.9 2558 57** 5.1 11.39


Total 9 10455.4

Cuadro 17. Prueba de Duncan con una P para en la Evaluación del enraizamiento a



Promedios 2 3 4 5


Sx 3.34290293

Rangos de Duncan 12.1681667 12.502457 12.7 13

Figura 7. Peso de las raíces a los 60 días.

4.7 VOLUMEN DE LAS RAÍCES A LOS 60 DÍAS

El volumen de las raíces estimadas en cm3 a los 60 días se presenta en el cuadro 13. Y el

Análisis de varianza y comparación entre promedios en los cuadros 14 y 15 respectivamente;

según estos resultados, Los tratamientos T1, T2 y T3 son similares estadísticamente, ya que la

88,92 94,215 92,37

78,95

30,21

0

10

20

30

40

50

60

70

80

90

100

T1. T2. T3. T4. T5

28

diferencia entre los promedios no supera los rangos de Duncan. Los pesos promedios de las

raíces están dentro del rango de 48 a 58 gramos/planta los cuales fueron similares en base al

Tést de Duncan.

En el análisis de varianza el cuadrado medio de tratamientos fue altamente significativo, por

lo tanto, la Hipótesis nula se puede rechazar y aceptar que el bioestimulante Kelpak, aplicado

en dosis de 10 ml/planta produjo un efecto potenciador de la biomasa radicular.

El promedio general del ensayo fue de 43,8 gramos con un coeficiente de variación del 5.86%

Cuadro 18. Volumen de las raíces a los 60 días para en la Evaluación del enraizamiento a



Tratamientos R1 R2 TOTAL MEDIA

T1. Una cepa - 3 yema - Kelpak 10 ml 50.00 46.00 96.00 48.00

T2. Media cepa - 1 yema - Kelpak 10ml 55.00 61.00 116 58.00

T3. Media cepa - 2 yemas - Kelpak 10 ml 51.00 54.00 105 52.50

T4. Hijo de agua - 3 yemas - Kelpak 10ml 37.00 36.00 73 36.50

T5. Testigo cepa con 3 yemas 25.00 23.00 48 24.00

Total 438.00 43.80

Cuadro 19. Análisis de varianza para el volumen de las raíces a los 60 días para en la




Tratamientos 4 1481 370 56** 5.1 11.39

Error experimental 5 33 6.6

Total 9 1514

29

Figura 8. Volumen de las raíces a los 60 días.

48,00

58,00

52,50

36,50

24,00

0,00

10,00

20,00

30,00

40,00

50,00

60,00

70,00

T1 T2 T3 T4 T5

30

5. DISCUSIÓN

El tratamiento de cepas de banano de la variedad Williams siguiendo un protocolo semejando

al empleando en la selección de cepas para la obtención del Meristemo principal para la

propagación in vitro, y la siembra de unidades llenas de un de un sustrato enriquecido con

humus y la inmersión de del material vegetativo en una solución de un bioestimulante

Kelpak 2% de la Basf, (2003), se ,logro efectos significantes a nivel del análisis de varianza

potenciando el crecimiento radicular en peso, longitud según evaluaciones realizadas a los 60

días de su aplicación. El proceso de fertilización orgánica con humus previamente macerado

en hidróxido de potasio complemento la acción del Kelpak, bioestimulante que aporto

nitrógeno, fósforo, potasio, carhidratos, proteínas y aminoácidos 2478 mg/l, vitaminas,

auxinas y cito quininas (Lara 2009). Los resultados alcanzados también son coincidentes con

los reportados por EDIFA, al aplicar este producto al 2% en un cebollín de banano orgánico

con peso aproximado de medio kilo

La tecnología probada demuestra que es una herramienta nueva, a la tradicional forma de

obtenerlos cormos de las plantaciones comerciales cuando requieren de realizar nuevas

(FHIA; 2009) el mejor aprovechamiento del poder productivo de yemas.

La aplicación en el Banano Aspersión Aplicar 4 lts/ha de hormovir enraizador en 200 lts de

agua aplicando a la base del tallo 1 lt de esta solución (al inicio de las lluvias)7.

7 http://www.quimia.com.mx/descargas, consultado el 25 de Noviembre del 2013

http://www.quimia.com.mx/descargas

31

6. CONCLUSIONES

La novísima tecnología de potenciar la producción de yemas a la cepas de banano de

la variedad Willams la cual se maneja un sustrato enriquecido con humus, humus

macerado con hidróxido de potasio más el Bioestimulante Kelpak de la Basf.

La estimulación para la formación de yemas a partir de “una cepas con tres yemas +el

bioestimulante 10 ml (T2) y T3. “Media cepa con dos yemas + Kelpak” produjo los

mejores resultados en el análisis de las variables relativas a la altura de las yemas, y

desarrollo del sistema radicular en peso y volumen a los 60 días.

El testigo tradicional fue superado por los diferentes tratamientos experimentales; sin

existir diferencias relevantes entre emplear la cepa entera o dividida en dos partes.

32

7. RESUMEN

Con el método de la técnica del enraizamiento a partir de la aplicación de un bioestimulante

de crecimiento en yemas de banano se buscó disminuir los costos de inversión por la compra

de cormos fue el centro de la presente investigación, para lo cual se planteó los siguientes

objetivos: 1.- Establecer cuál es el mejor método de propagación por división de cepas

agámica en banano de la variedad Williams entre los tratamientos y 2.- Determinar el cual es

el mejor sustrato para obtener el mejor porcentaje de plantas propagadas para la siembra o

trasplante definitivo

La investigación de lo realizó en la granja experimental Santa Inés de la Facultad de Ciencias

Agropecuarias de la Universidad Técnica de Machala. La zona del ensayo según los registros

del INAMHI posee una temperatura media de 24º C, una precipitación media anual de 630

mm, horas luz promedio de cinco horas dependiendo de la época, una humedad relativa del 90

%, los suelos son de textura arcillo - limoso, y con un pH neutro de 7. De acuerdo a la zona de

vida natural de Holdridge la región correspondiente a un Bosque Húmedo – Tropical (bh – T).

Se empleo Cepas de banano de hibrido Willams, sustrato de siembra, cajas de cristal y

herramientas. Los tratamientos fueron T1. 1cepa-3 yemas+ kelpak; T2 ½ cepa con 1 yema+

Kelpak; T3. ½ cepa + 2 yemas + Kelpak 10 cc; T4 Hijo de agua + 3 yemas + Kelpak y

Testigo (cepa con 3 yemas) .Las variables en estudio para el presente trabajo de

investigación fueron las siguientes:Porcentaje de enraizamiento a los 30, 45 y 60 días,

Numero de yemas estimuladas por cepa, Altura de yemas a los 30 y 45 días, Número de hojas

a los 30 y 45 días, Porcentaje de raíces funcionales a los 60 días, Largo de las raíces a los 60

días y Peso de las raíces a los 60 días. La metodología incluyó, Selección del material: se

utilizó 1 cepa de banano sana y vigorosa; tipo “cebollín” y que tengan desde una a tres

“yemas” cada uno y por tratamiento; a las cepas seleccionadas se les removió los restos de

tierra con abundante agua, y con un cuchillo se eliminan las raíces, partes del cormo que se

encuentren afectadas por daños causados por plagas o microorganismos y la porción aérea,

dejando sólo una porción que permita sujetarlo con la mano. Desinfección: se preparó una

solución de agua y cloro a razón de 5 ml por litro de agua, en la cual se sumergieron los

cormos durante 10 minutos para su desinfección..Siembra: las cepas limpias y desinfectadas

previo a la siembra se sumergieron en una solución de Kelpak durante 10 minutos para luego

33

ser sembradas en las cajas de cristal previamente preparadas con su sustrato y a los 30 días se

empezaran a evaluar las variables. El diseño experimental empleado fue, Completamente al

azar con cinco tratamientos y dos repeticiones:

La novísima tecnología de potenciar la producción de yemas a la cepas de banano de la

variedad Willams la cual se maneja un sustrato enriquecido con humus, humus macerado con

hidróxido de potasio más el Bioestimulante Kelpak de la Basf. La estimulación para la

formación de yemas a partir de “una cepas con tres yemas + el bioestimulante 10 ml (T2) y

T3. “Media cepa con dos yemas + Kelpak” produjo los mejores resultados en el análisis de las

variables relativas a la altura de las yemas, y desarrollo del sistema radicular en peso y

volumen a los 60 días. El testigo tradicional fue superado por los diferentes tratamientos

experimentales; sin existir diferencias relevantes entre emplear la cepa entera o dividida en

dos partes.

Palabras claves: Yemas y Cepas de banano, Semillero de Vidrio, Sustrato de Tierra y tamo

de arroz, Williams, Biorregulador, Machala, El Oro.

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8. SUMMARY

With the method of the technique to take starting root from the application of a bioestimulante

of yolks in banana tree seed was looked for to diminish the investment costs for the stump

purchase it was the center of the present investigation, for which thought about the following

objectives: 1.- o settle down the best propagation method is for division of seeds agamic in

banana tree of the variety Williams among the treatments and 2.- To determine which the best

substrate to obtain the best percentage of plants spread for the seedtime or definitive

transplant.

The investigation was carried out in the experimental farm Santa Inés of the Facultad of

Agricultural Sciences of the Technical University of Machala. The area of the test according

to the registrations of INAMHI possesses a half temperature of 24º C, a half annual

precipitation of 630 mm, hours light average of five hours depending on the time, a relative

humidity of 90%, the floors are of texture arcillo - oozy, and with a neuter pH of 7. According

to the area of natural life of Holdridge the region corresponding to a Humid Forest. Tropical

(bh. T). The uses Stumps of banana tree of hybrid Willams, planting substrate, glass boxes

and tools. The treatments were T1. 1 stump - 3 yolks + kelpak; T2 ½ stump with 1 yolks +

Kelpak; T3. ½ stump + 2 yolks + Kelpak 10 cc; T4 Son of water + 3 yolks + Kelpak and

Witness (stump with 3 yolks).The variables in study for the present research work were the to

take the following root: Percentage to the 30, 45 and 60 days, I Number of yolks stimulated

by stump, Height of yolks to the 30 and 45 days, Number of leaves to the 30 and 45 days,

Percentage of functional roots to the 60 days, Long of the roots to the 60 days and Weight of

the roots to the 60 days. The methodology included, Selection of the material: 1 healthy and

vigorous banana tree stump was used; type "green onion" and that they have from one to three

"yolks" each one and for treatment; to the selected stumps they were removed the earth

remains with abundant water, and with a knife the roots are eliminated, parts of the stump that

are affected by damages caused by plagues or microorganisms and the air portion, only

leaving a portion that allows to hold it with the hand. Disinfection: got a ready solution of

water and chlorine to reason of 5 ml for liter of water, in which submerged the stumps during

10 minutes for their disinfection. Seedtime: the clean and disinfected previous stumps to the

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Seedtime dove in a solution of Kelpak during 10 minutes for then to be sowed in the

previously prepared glass boxes with their substrate and to the 30 days you began to evaluate

the variables. The experimental design employee was, Totally at random with five treatments

and two repetitions:

The novísima technology of developing the production of yolks to the stumps of banana tree

of the variety Willams which a sustrato is managed enriched with humus, humus macerated

with hidróxido of potassium more Bioestimulante Kelpak of Basf. The stimulation for the

formation of yolks starting from "a stumps with three yolks + the bioestimulante 10 ml (T2)

and T3. "Half stump with two yolks + Kelpak" produced the best results in the analysis from

the relative variables to the height of the yolks, and I develop of the system radicular in

weight and volume to the 60 days. The traditional witness was overcome by the experimental

different treatments; without existing outstanding differences among using the whole stump or

divided in two parts.

Key words: Yolks and banana tree Stumps, Nursery of Glass, Substrate of Earth and fuzz of

rice, Williams, Biorregulador, Machala, The Gold.

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9. BIBILIOGRAFIA

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APÉNDICE

39

Foto 1.- Preparación de las camas con el sustrato para la investigación.

Foto2.- Siembra de las cepas de banano con el número de yemas indicadas por

tratamiento.

40

Foto 3.- Vista del sistema radicular en la plántula

de banano.

Foto 4.- Desarrollo vegetativo de las plántulas de

banano.

41

Foto 5.- Primera toma de datos a los 30 días.

Foto 6.- Altura de las plántulas a los 60 días.

42

Foto 7.- Distribución del sistema radicular.

Foto 8.- Peso del sistema radicular

universidad tÉcnica de machala facultad de...

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