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UNIVERSIDAD AUTÓNOMA METROPOLITANAIZTAPALAPA
__________________________________________________________________DIVISIÓN DE CIENCIAS BIOLÓGICAS Y DE LA SALUD
DEPARTAMENTO DE CIENCIAS BIOLÓGICAS Y DE LA SALUDLICENCIATURA EN BIOLOGÍA EXPERIMENTAL
“DETERMINACIÓN DE LA CURVA TEMPORAL DELEFECTO ANTIOXIDANTE DE LA QUERCETINA EN UN
MODELO DE LESIÓN TRAUMÁTICA DE MEDÚLA ESPINAL”
PRESENTA:JULIO CÉSAR CÁRDENAS PÉREZ.
Asesores:Dra. Hermelinda Salgado Ceballos.
M.en B.E. Mina Konigsberg Fainstein.
México, D. F. Junio del 2004
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RESUMEN
Objetivo: Evaluar a diferentes tiempos la capacidad de la quercetina para
disminuir el proceso de lipoperoxidación (LP) en un modelo animal de lesión
traumática de médula espinal (LTME) y comparar su efecto con el de antioxidantes
como la superóxido dismutasa (SOD) y la catalasa (CAT).
Material y métodos: Se estudiaron 108 ratas Long-Evans, adultas, divididas en 6
grupos: Ratas sham; Ratas con LTME sin tratamiento; Ratas con LTME y
vehículo; Ratas con LTME SDO+CAT; Ratas con LTME y quercetina; Ratas con
LTME y quercetina+SDO+CAT. La LTME se realizó con el equipo de cirugía
estereotáxica NYU impactor. Los tratamientos se administraron como dósis única
5 minutos después de la LTME a razón de 1.2 y 2.5mg/ml/Kg de peso corporal
para SDO y CAT respectivamente y la quercetina a 0.5 y 1.0 mg/ml/Kg de peso
corporal. Los animales fueron sacrificados por decapitación 1, 2 y 24 horas
después de la LTME. Se obtuvo la médula espinal y se analizó por
espectofotometría el proceso de LP mediante la concentración de bases de Schiff.
Resultados: Se estudiaron 6 animales por grupo para cada tiempo,
encontrandose que una sola dósis intraperitoneal de quercetina tiende a disminuir
la LP 1 hora y 24 horas después de la LTME, pero no a 2 horas. La administración
combinada de quercetina con SDO y CAT produce mejores resultados.
Conclusiones: La quercetina disminuye la LP después de una LTME, pero deben
administrarse varias dósis para obtener una neuroprotección óptima y duradera.
La combinación de quercetina/SDO+CAT tiene mejor efecto sobre la LP que
cuando se administran por separado.
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INTRODUCCION
La lesión traumática de la médula espinal (LTME) es un problema de salud pública
que pone en riesgo la vida de los pacientes en fase aguda y en los que sobreviven
puede producir incapacidad a largo plazo con pérdida permanente del control
voluntario en la locomoción y el soporte corporal, además de generar una gran
variedad de disfunciones sensitivas y autonómicas con devastadoras
repercusiones personales, económicas y sociales (Whiteneck et. al., 1992; Dituno,
1994 y Fehlings, 2001).
De acuerdo a la intensidad con la que se produce el daño, la LTME ocasiona
alteraciones estructurales y funcionales que oscilan desde el bloqueo transitorio de
la conducción de los impulsos nerviosos, hasta la pérdida total de las funciones
motora y sensitiva por debajo del sitio dañado, traduciéndose en paraplejia si solo
afecta miembros inferiores o en tetraplejia si afecta miembros inferiores y
superiores (Tator y Fehlings, 1991).
A nivel mundial la LTME presenta una incidencia anual que oscila entre 12 y 40
casos por millón (Whiteneck et al., 1992; Dixon et al., 1993; Dituno y Formal, 1994;
Tator, 1995 y Fehlings, 2001), reportándose específicamente para nuestro país, en
el único estudio que existe hasta la fecha, una incidencia anual para la zona
metropolitana de 12 casos por millón (Ibarra et al., 1990).
Aproximadamente, el 80% de las personas con LTME son del sexo masculino
(Bracken et al., 1992 y Fehlings, 2001) y al momento de la lesión alrededor del
75% se encuentra entre los 15 y los 35 años de edad (Eisenberg y Tierney, 1985;
Tator y Fehlings, 1991 y Fehlings, 2001), ubicándose entre las principales causas
de esta patología a los accidentes de tránsito en vehículos motorizados, los
accidentes en la práctica deportiva, los accidentes en el trabajo y en actividades
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de recreación, la violencia y las caídas (Tator y Fehlings, 1991; Tator, 1995 y
Fehlings, 2001).
A pesar de los avances en los cuidados médicos e incluso en los centros de
atención especializados, la mortalidad en individuos con LTME se reporta entre 6 y
17% (DeVivo et al., 1990; Burney et al., 1993) y la frecuencia del suicidio entre los
pacientes parapléjicos rebasa 10 veces la reportada en poblaciones similares pero
sin este tipo de lesión (Rish et al., 1997).
Por todo lo anterior, la LTME representa un gasto económico elevado que
comprende el ocasionado por el tratamiento inicial y el del manejo para reintegrar
socialmente a los pacientes, incluyendo las terapias de rehabilitación, los aparatos
ortopédicos, las sillas de ruedas y las adaptaciones especiales requeridas
(Stripling, 1990 y Fehlings, 2001).
Fisiopatología de la Lesión Traumática de Médula Espinal.El principal problema en una LTME radica en su complejidad, ya que su
fisiopatología involucra tanto al daño mecánico primario como, a los mecanismos
secundarios de lesión. Lo relevante es que la mayor parte de la destrucción del
substrato anatómico necesario para la recuperación neurológica, y el déficit
funcional total, son el resultado de los mecanismos secundarios de lesión más que
del daño mecánico primario (Young y Flamm, 1982; Stokes et al., 1983; Iizuka et
al., 1986; y Fehlings, 2001).
Entre los mecanismos secundarios de lesión se considera a la isquemia como uno
de los más relevantes, ya que suele estar seguido por una fase de reperfusión
tisular la cual puede incrementar el daño en la médula espinal al promover el flujo
de especies reactivas de oxigeno (ERO) y otros productos tóxicos que
desencadenan numerosos procesos autodestructivos y producen déficit funcional
permanente (Tator y Fehlings, 1991; Lu et al., 2000 y Fehlings, 2001).
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La acidosis resultante de la isquemia, interfiere con la función enzimática normal
(Ganong, 1980), proporciona un medio ambiente favorable para la formación de
ERO (Hogg, 1998) y la subsecuente lipoperoxidación (LP), que se ve
incrementada por la presencia de hierro (Thomas et al., 1985; Gutteridge, 1986).
Especies reactivas de oxigeno (ERO)Las ERO presentan una alta reactividad y son capaces de reaccionar con una
amplia gama de estructuras celulares. Se conoce que sus blancos fundamentales
son los ácidos grasos insaturados de las membranas fosfolipídicas, proteínas y
ácidos nucleicos. Estas especies, altamente reactivas, una vez formadas dan lugar
a una serie de reacciones en cadena que pueden dañar todas las moléculas de
importancia biológica ya sea por una alteración directa de la estructura y función,
por la aceleración de la proteólisis endógena selectiva o por el incremento de la
función enzimática (Zorrilla A., et.al. ,1999).
Como se señalo anteriormente, la LP es uno de los mecanismos de la
degeneración neuronal secundaria postraumática (Demopoulos et. al.,1980), pues
si ésta es suficientemente severa, lisa las membranas a través de la formación de
ERO en los fosfolípidos estructurales de la mielina, en los de las membranas de
las células gliales y en los de las neuronas, lo cual genera la disolución del tejido
nervioso debido a que los lípidos de las membranas son especialmente ricos en
colesterol y ácidos grasos poli-insaturados, quienes son blanco predilecto de los
compuestos activos de oxigeno y de peróxido de hidrógeno (Hall y Wolf,1986; Hall
et. al.,1992). La formación de ERO en el sitio de lesión también es resultado de la
respiración mitocondrial en la etapa de isquemia-reperfusión, de la conversión
irreversible de la deshidrogenasa de xantina a oxidasa de xantina, la auto-
oxidación de las catecolaminas, la activación de la cascada del ácido araquidónico
y de neutrófilos, los cuales dañan las membranas de los lisosomas dando por
resultado la liberación de enzimas hidrolíticas (Hammond B., 1985).
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Los radicales superóxido(O2°-), el peroxido de hidrógeno (H2O2) y los radicales
hidroxilo(°OH) son ERO implicadas en el daño de la medula espinal, la mielina y la
muerte de los oligodendrocitos después de una LTME (Watson y Ginsberg, 1987;
Farooqui y Horrocks,1998). La susceptibilidad del sistema nervioso central al
daño inducido por las ERO no sólo está dada porque sus lípidos de membrana
son especialmente ricos en colesterol y ácidos grasos poli-insaturados, sino
también, porque el SNC es pobre en la actividad de catalasa (CAT) y de glutatión
peroxidasa y tiene una cantidad moderada de superóxido dismutasa (SOD),
antioxidantes naturales que en otras partes del organismo son eficaces
neutralizando el proceso de LP (Cohen,1994). Además, el SNC es rico en hierro y
éste es el principal inductor de la producción de ERO en el sistema (Anderson et.
al.,1985; Hall et. al.,1994).
AntioxidantesTodos los seres vivos que utilizan el oxigeno para obtener energía, liberan ERO, lo
cual es incompatible con la vida a menos que existan mecanismos celulares de
defensa que los neutralice. A estas defensas se les denomina antioxidantes,
dentro de los antioxidantes endógenos se encuentran 3 enzimas que son
fundamentales en esta actividad; la CAT, la SOD y la glutation peroxidasa (Gilgun-
Sheki Y.,et. al.;2001).
La CAT es una hemoproteína tetramérica que presenta hierro en su núcleo, esta
localizada en los peroxisomas, con una doble actividad (dismutasa y peroxidasa)
la cual cataliza la reacción de reducción del peroxido de hidrógeno.
H2O2 + H2O2 ----------- 2H2O + O2 Actuando como dismutasa
H2O2 + RH2 ---------- 2H2O + R Actuando como peroxidasa
La catalasa ha sido utilizada a tratar procesos en los cuales el H2O2 ha sido
involucrado como agente deletéreo en lesiones inflamatorias (Till, et.al.,1982).
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La SOD fue la primer enzima que se conoció que actuaba sobre una ERO. De esta
enzima se conocen tres diferentes tipos: la citoplasmática, mitocondrial y una de tipo
extracelular. El tamaño y características de esta enzima evita que se transporten a
través de las membranas celulares, por lo que en la actualidad se han desarrollado
compuestos miméticos que tienen una actividad similar y además, si pueden atravesar
las membranas celulares.
La SOD mimética es una molécula con la capacidad de atravesar a las membranas
celulares, tiene la misma función que la SOD, dismutando el anión superóxido (O2°-) y
formando peroxido de hidrógeno (H2O2) y oxigeno molecular (O2).
O2°- + O2°- ------------- H2O2 + O2
Estudios realizados en hepatocitos de ratas indican que el 20% de O2°- que se forma
en la mitocondria puede pasar al citosol, mientras que el 80% restante puede ser
neutralizado por la SOD mitocondrial, dejando ver la importancia de esta enzima
evitando el estrés oxidativo. La SOD ha mostrado efecto protector en diferentes
patologías como son, procesos inflamatorios (Frank.,1983), en tejidos sometidos a
isquemia (Mc Cord.,1985), e incuso en LTME (Santoscoy, et. al.,2002).
En fecha reciente se han investigado compuestos externos con propiedades
antioxidantes buscando una mejor protección de la integridad y de la función
nerviosa en algunos modelos experimentales de lesión por ERO en el sistema
nervioso central, destacando entre dichos compuestos los flavonoides (Gilgun-
Sherki Y., et . al.,2001).
Actualmente se sabe que los flavonoides poseen numerosos efectos
farmacodinámicos en el organismo animal, de los cuales sobresale su potente
actividad antioxidante, ya que participa en numerosos procesos de oxido
reducción catalizando las reacciones debido a que tienen la particularidad de
perder fácilmente sus electrones. La utilidad terapéutica de la capacidad
antioxidante de los flavonoides se ha convertido en uno de los campos de mayor
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interés en el estudio de compuestos vegetales medicinales (Chen, et. al.,2001;
Kim, et. al.,2001; Bastianetto, 2002).
La quercetina (Fig 1) es un flavonoide natural que se encuentra presente en todas
las plantas. Se trata de un compuesto polifenólico, que tiene actividad
antioxidante, cardiovascular, antiinflamatoria, antitumoral, inmunológica,
antibacteriana y antiviral (Hirono, 1987; Pietta, 2000; Russo, et al., 2000; árka
Ozgová, et. al.,2003). Entre las muchas propiedades descritas para la quercetina
resalta su capacidad antioxidante al reducir la LP en la célula nerviosa in vitro e
inhibiendo la activación de la caspasa-3, promotora de la muerte celular por vía
apoptótica (Bisland, 2002 Spencer, et. al.,2003), por lo que la quercetina bien
podría ser utilizado como un agente neuroprotector en LTME.
Figura 1. Estructura bioquímica de la quercetina
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OBJETIVO GENERAL
Evaluar a diferentes tiempos la capacidad de la quercetina para disminuir el
proceso de lipoperoxidación (LP) en un modelo animal de lesión traumática de
médula espinal (LTME) de intensidad moderada y comparar su efecto con el de
antioxidantes como la superóxido dismutasa (SOD) y la catalasa (CAT).
Objetivos particulares
1. Evaluar si se obtiene un mejor efecto al utilizar la quercetina purificada o
cuando se emplea en forma de extracto.
2. Evaluar con que dosis de quercetina se obtiene mejores resultados sobre el
proceso de LP, si con 50 ó con 100 µmol/Kg de quercetina administrada a
diferentes tiempos (1,2 y 24h).
3. Determinar la curva temporal del efecto antioxidante de la quercetina
después de una LTME tomando como puntos de corte 1,2 y 24 horas
después de su administración.
4. Comparar la capacidad antioxidante de la quercetina con el de la SOD y el
de la CAT al inhibir el proceso de LP en un modelo de LTME.
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MATERIAL Y MÉTODO
Los estudios piloto se realizaron en 35 ratas de la cepa Long-Evans, hembras,
adultas (12 a 14 semanas de edad) con peso de entre 200 y 300 g, divididas en
7 grupos:
Grupo 1. Ratas sanas a las que se les realizó la misma maniobra quirúrgica que a
los demás grupos pero no se les produjo la LTME y no se les administro
tratamiento alguno (Sham)
Grupo 2. Ratas con LTME y sin tratamiento.
Grupo 3. Ratas con LTME y administración de vehículo (Polietilenglicol).
Grupo 4. Ratas con LTME y quercetina (0.5 mg/ml/kg de peso corporal)
Grupo 5. Ratas con LTME y quercetina pura (1.0 mg/ml/kg de peso corporal)
Grupo 6. Ratas con LTME y extracto de quercetina (0.5 mg/ml/kg de peso
corporal)
Grupo 7. Ratas con LTME y extracto de quercetina a razón de 1.0 mg/ml/kg de
peso corporal
El estudio experimental propiamente dicho, se realizó en 108 ratas de la cepa
Long-Evans, hembras, adultas (12 a 14 semanas de edad) con peso de entre
200 y 300 g, las cuales se dividieron en 6 grupos, constituidos por 6 ratas cada
uno.
Grupo 1. Ratas sanas a las que se les realizó la misma maniobra quirúrgica que a
los demás grupos pero no se les produjo la LTME y no se les administro
tratamiento alguno (Sham)
Grupo 2. Ratas con LTME y sin tratamiento.
Grupo 3. Ratas con LTME y administración de vehículo (Polietilenglicol).
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Grupo 4. Ratas con LTME y administración de SOD + CAT.
Grupo 5. Ratas con LTME y administración de quercetina
Grupo 6. Ratas con LTME y administración de quercetina+SOD+CAT.
Todos los procedimientos quirúrgicos y experimentales se realizaron con apego a
las normas de la Ley General de Salud (1990) y de acuerdo a las
recomendaciones del capítulo referente al manejo de animales en proyectos de
investigación y ciencia, así como de la norma oficial mexicana para animales de
laboratorio (Aluja., 2002).
Criterios de inclusión.Se incluyeron todas las ratas con las características referidas previamente y que al
ser sometidas a la LTME presentaron un hematoma en la zona central de la
médula espinal.
Criterios de exclusiónSe excluyeron todas las ratas cuyo hematoma fue lateralizado con respecto a la
zona central de la médula espinal y las ratas que no completaron el tiempo de
evaluación propuesto.
Técnica anestésica:
Antes de cada procedimiento quirúrgico los animales se anestesiaron con una
mezcla de ketamina (clave 226, sector salud) e hidrocloruro de xilacina (Bayer) a
dosis de 77.5 y 12.5 mg/Kg de peso corporal respectivamente.
Lesión traumática de la médula espinal.
Bajo el efecto de la anestesia, previa asepsia y antisepsia, se realizó una incisión
media sagital en la piel de la región torácica baja y se disecaron los músculos
paravertebrales de las apófisis espinosas. Posteriormente, se separo el periostio
de las láminas vertebrales. Se extirparon tres apófisis espinosas de torácica 8 a 10
(T8-T10) para visualizar ampliamente las láminas correspondientes.
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Posteriormente se extirpó la lámina a nivel de T9, para exponer la porción dorsal
de la médula espinal sin lesionarla y manteniendo las meninges intactas los
animales programados para LTME, fueron colocados en un equipo de cirugía
estereotaxica (NYU impactor) donde se dejó caer una barra cilindrica de acero
inoxidable de una altura de 2.5cm (lesión de intensidad modera) sobre la médula
espinal expuesta. Se observó el sitio del impacto a través del microscopio
quirúrgico para corroborar la formación de un hematoma a nivel central. La fascia
muscular y la piel en la incisión quirúrgica se suturaron por planos con puntos
simples.
Administración de los tratamientos.Los tratamientos se administraron como dosis única 5 minutos después de la
LTME a razón de 1.2 y 2.5mg/ml/Kg de peso corporal para SDO y CAT
respectivamente y la quercetina a 0.5 y 1.0 mg/ml/Kg de peso corporal.
Obtención de la muestra.Para las determinaciones bioquímicas de Bases de Shift, una vez cumplido el
tiempo de estudio, los animales fueron decapitados y se extrajo la medula espinal
desde T8 hasta T10 y se retiraron las meninges. La muestra se colocó en solución
fisiológica para hacer el homogenizado correspondiente. Posteriormente se
congelaron las muestras con nitrógeno liquido hasta su utilización. Todo el
proceso se efectuó en aproximadamente 30 segundos para evitar la oxidación del
tejido.
Evaluación del proceso de lipoperoxidaciónLos tejidos fueron homogenizados en 3 ml de solución salina. Un ml del
homogenizado fue mezclado con 4 ml en una proporción 2:1 v/v de cloroformo-
metanol y agitado con un vortex por 1min. La mezcla fue colocada en hielo por 30
min para permitir la separación de dos fases. La fase superior fue desechada y los
2ml de la capa de cloroformo fueron aclarados agregando 0.2 ml de metanol. Esta
mezcla se uso para medir la fluorescencia en un espectrofotómetro luminiscente
Perkin-Elmer LS50B a 370 nm (excitación) y 430nm (emisión). La fluorescencia fue
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expresada como unidades de fluorescencia por gramo de tejido. Cada muestra de
tejido fue corrida por duplicado. Hacia el inicio de cada lectura, la sensibilidad del
espectrofotómetro fue probada usando una solución estándar de quinina (1mg/ml)
recién preparada, emitiendo una florescencia de aproximadamente 330 unidades.
ACTIVIDADES REALIZADAS
• Manejo y cuidado de animales de laboratorio
• Manejo de técnicas quirúrgicas en lesión traumática de medula espinal
• Realización de procedimientos bioquímicos, espectrofotométricos y de
cuantificación proteica.
• Revisión bibliográfica especializada en el tema
• Análisis de los resultados obtenidos en cada una de las etapas del desarrollo
experimental.
RESULTADOS
Para determinar si era mejor utilizar la quercetina purificada o la quercetina en
extracto (en conjunto con los demás componentes de la planta de donde se extrae
la quercetina), se realizó un estudio piloto formando 7 grupos. Las ratas de los 6
grupos experimentales fueron sometidas a LTME con el método previamente
descrito. Posteriormente a los animales de los grupos 4 y 6 se les administró la
quercetina pura (E1) y a los de los grupos 5 y 7 el extracto de quercetina (E2), las
dosis administradas fueron de 0.5 mg/ml/Kg de peso corporal para los animales de
los grupos 4 y 5 y de 1.0 mg/ml/Kg para los animales de los grupos 6 y 7.
Al realizar los estudios bioquímico 24 hrs después de la LTME, se observó que los
animales de los grupos 4, 5 y 6 que recibieron tratamiento tanto con quercetina
pura como con el extracto disminuyeron el proceso de LP, especialmente el grupo
que recibió quercetina pura a razón de 1.0 mg/ml/Kg. No obstante lo anterior, los
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animales del grupo 7 a los que se le administró el extracto de quercetina a razón de
1.0 mg/ml/kg de peso corporal, presentaron un incremento en la LP (fig. 1).
Con base en lo anterior se decidió trabajar con la quercetina pura administrada a
razón de 1.0 mg/ml/kg de peso corporal durante el desarrollo de la fase
experimental del presente trabajo, precediéndose entonces a realizar la
determinación de la curva temporal del efecto antioxidante de la quercetina en un
modelo de LTME. El proceso de LP se evaluó en la médula espinal de los
animales 1, 2 y 24 horas después de la LTME observándose que el mejor efecto
logrado con el tratamiento de una sola dósis de quercetina vía intraperitoneal se
logró en las primeras horas y después este efecto protector disminuyó (fig. 2).
Figura 1. Se muestran los niveles de lipoperoxidación en cada uno de los gruposestudiados expresándolos como promedios + la desviación estándar. Sham=animales conla maniobra quirúrgica sin la lesión y sin tratamiento alguno; LTME=lesión traumática demédula espinal; PEG=polietilenglicol (vehiculo); E1-50=quercetina pura a razón de 0.5mg/ml/kg de peso corporal; E2-50 extracto de quercetina a razón de 0.5 mg/ml/kg de pesocorporal; E1-100=quercetina pura razón de 1.0 mg/ml/kg de peso corporal; E2-100extracto de quercetina a razón de 1.0 mg/ml/kg de peso corporal
Lipoperoxidación
Sham LTME PEG E1-50 E2-50 E1-100 E2-1000.0
0.5
1.0
1.5
2.0
2.5
3.0
3.5
Grupos
Unid
ades
de
fluor
esce
ncia
/mg
depr
oteí
na
15
Figura 2. En la gráfica se muestra el comportamiento del proceso de lipoperoxidación enlas ratas con lesión traumática de médula espinal (LTME) y como la quercetina (E1) lodisminuye, principalmente 1 y 24 horas después de la lesión. Los datos se presentancomo promedios + la desviación estándar.
Lipoperoxidación
0.0
0.5
1.0
1.5
2.0
2.5
3.0
3.5LTMEE1
1 hora 2 horas 24 horas
Uni
dade
s de
flu
ore
scen
cia/
mg
depr
ote
ína
Lipoperoxidación
Sham LTME PEG ANT E1 COM0.0
0.5
1.0
1.5
2.0
2.5
3.0
Grupos
Unid
ades
de
fluor
esce
ncia
/mg
depr
oteí
na
16
Fig 3. En la gráfica se muestra que tanto los antioxidantes (Ant) como la quercetina (E1)disminuyen la lipoperoxidación pero que esto es mas marcado cuando se utilizancombinados (Com). Los resultados se presentan como promedios + la desviaciónestandar.
CONCLUSIONES
• La quercetina purificada (E1) resulto ser la mas efectiva en la disminución
de la lipoperoxidación después de una lesión traumática de médula espinal,
comparada con la quercetina en extracto (E2).
• La quercetina disminuye la lipoperoxidación después de una lesión
traumática de médula espinal, pero deben administrarse varias dosis para
obtener una neuroprotección óptima y duradera.
• La administración por separado de la mezcla de antioxidantes (SOD+CAT)
y quercetina (E1), disminuyen la lipoperoxidación después de una lesión
traumática de médula espinal.
• La combinación de quercetina / SDO+CAT tiene mejor efecto sobre la
lipoperoxidación que cuando se administran por separado.
• La quercetina (E1) tiende a disminuir la lipoperoxidación a 1 hora y 24 horas
después de una lesión traumática de médula espinal, pero no a 2 horas.
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