CONSEJO NACIONAL DE CIENCIA Y TECNOLOGÍA -CONCYT-

SECRETARIA NACIONAL DE CIENCIA Y TECNOLOGÍA -SENACYT-

FONDO NACIONAL DE CIENCIA Y TECNOLOGÍA -FONACYT-

INSTITUTO DE CIENCIA Y TECNOLOGÍA AGRÍCOLA –ICTA-

INFORME FINAL

Caracterización y evaluación morfológica, rejuvenecimiento,

incremento y documentación de germoplasma de Capsicum

de Guatemala

PROYECTO FODECYT No. 018-2010

Max Myrol Rubelsy González Salán, Ph.D.

Investigador Principal

GUATEMALA, OCTUBRE de 2012

i

AGRADECIMIENTOS:

La realización de este trabajo, ha sido posible gracias al apoyo financiero dentro del Fondo

Nacional de Ciencia y Tecnología –FONACYT-, otorgado por la Secretaría Nacional de

Ciencia y Tecnología –SENACYT- y el Consejo Nacional de Ciencia y Tecnología –

CONCYT-

ii

OTROS AGRADECIMIENTOS

A Dios, creador de todas las cosas y a Jesucristo, su hijo, redentor y guía espiritual de nuestra

existencia profana.

A nuestras familias, por el apoyo cotidiano que nos brindan en la realización de nuestras

actividades como investigadores agrícolas.

A el Instituto de Ciencia y Tecnología Agrícolas –ICTA-, su Gerencia, Administración, Dirección

Técnica y a su personal técnico y operativo, quienes con el aporte del personal científico del

subprograma de Hortalizas, hicieron posible el desarrollo de las actividades planificadas de

carácter técnico de campo, de laboratorio, de invernadero y de gabinete en el proyecto, en tres

centros de Innovación: ICTA- CIOR-ZACAPA, El Oasis, Estanzuela, Zacapa; ICTA-CIAL-

Chimaltenango, ICTA, La Alameda, Chimaltenango y ICTA-CINOR-San Jerónimo, San

Jerónimo, Baja Verapaz.

Al personal de campo del proyecto en sus tres fases, quienes pusieron todo su empeño porque se

alcanzaran y lograran los objetivos específicos del proyecto.

A los agricultores que siembran chile para consumo familiar, como condimento y sin fines de

lucro. Fueron ellos quienes hicieron posible y permitieron que estudiantes universitarios del país

realizarán recolectas de materiales criollos desde huertos tropicales, patios caseros y condiciones

silvestres.

A los amantes y fanáticos de chile, quienes con sus inquietudes están a la búsqueda continua de

más información sobre el género Capsicum.

Y a usted estimado lector, por interesarse en la lectura del presente informe.

iii

PRESENTACIÓN

El Instituto de Ciencia y Tecnología Agrícolas –ICTA - y el Fondo Nacional de Ciencia y

Tecnología – FODECYT- a través de la Secretaria Nacional de Ciencia y Tecnología –

SENACYT- hacen entrega a la comunidad científica y a la sociedad civil Guatemalteca, del

Informe del proyecto “Caracterización y evaluación morfológica, rejuvenecimiento, incremento y

Documentación de germoplasma de Capsicum de Guatemala”. Dicho proyecto fue financiado por

el Fondo Nacional de Ciencia y Tecnología –FONACYT- del Sistema Nacional de Ciencia y

Tecnología –SINCYT-

El estudio hace referencia al género Capsicum, al que pertenecen botánicamente todos los chiles

conocidos en Guatemala. La investigación tuvo el propósito de regenerar una colección activa de

chiles que tenía más de cuatro años de conservación en el banco de germoplasma de ICTA. Una

vez regenerada la colección, es posible constituir una colección a mediano plazo de conservación

para minimizar en lo posible la pérdida de genes del género que hoy por hoy constituyen la

materia prima para el fitomejoramiento de la especie en el futuro.

Adicionalmente, el estudio persiguió caracterizar morfológicamente los diferentes morfotipos de

chile presentes en la colección activa. Un catálogo fotográfico del fruto de los diferentes tipos de

chile fue generado y complementa la información digital generada. Esta información debe

compartirse con la sociedad científica del mundo y por ello debe colocarse en las redes sociales y

en los portales de ICTA y SENACYT. Su difusión y divulgación atraerá a potenciales fuentes

financieras de Cooperación Técnica bilateral o multilateral.

La información registrada en el presente estudio, contribuye al enriquecimiento de la cadena de

conocimiento que sobre el género Capsicum se ha generado en Guatemala. El Investigador

Principal y sus Investigadores Asociados, esperan que el lector obtenga los mejores provechos por

el análisis, la interpretación y utilización de dicha información.

iv

CONTENIDO

Página

RESUMEN.……………….…………………………………………………………… 1

SUMMARY………………………………………………………………………….... 2

PARTE I

I.1. INTRODUCCIÓN………………………………………………………............... 3

I.2. PLANTEAMIENTO DEL PROBLEMA

I.2.1. Antecedentes en Guatemala…………..…………………………………… 5

1.2.1.1. Diversidad morfológica del género Capsicum …………………… 5

1.2.1.2. Utilización reciente del germoplasma de Capsicum en Guatemala. 6

I.2.2. Justificación del trabajo de investigación …..…………………………….. . 6

1.2.2.1. Potencial del germoplasma de Capsicum en Guatemala………… . 6

I.3. OBJETIVOS E HIPOTESIS

I.3.1. Objetivos

I.3.1.1. General.……………………………………………………………. 8

I.3.1.2. Específicos.………………………………………………………... 8

I.3.2. Hipótesis…………………………………………………………………… 8

1.4. METODOLOGÌA

I.4. 1. La colección activa de germoplasma de Capsicum……………………… 10

1.4.2 Localización de las Fases de Ejecución del proyecto…………………..… 10

I..4.2.1. FASE I. Centro de Innovación de Oriente –CIOR-ZACAPA, ICTA,

Finca El Oasis, Estanzuela, Zacapa, 2010-2011………………………... 10

I.4.2.2. FASE II. Centro de Innovación del Altiplano- Chimaltenango

–CIAL-CHIMALTENANGO, ICTA, La Alameda, Chimaltenango,

2011……………………………………………………………………. 16

I.4.2.3 FASE III. Centro de Innovación del Norte –CINOR-, ICTA,

San Jerónimo, Baja Verapaz, 2011…….………………………………... 21

PARTE II

II. MARCO TEÓRICO…………………………………………………………… 25

II.1. El Género Capsicum …………………………………………………………… 25

II.2. Origen y distribución geográfica del género Capsicum………………….. 25

II.3. Clasificación taxonómica ..……………………………………………….. 26

II.4. Especies biológicas y morfológicas………………………………………. 28

II.5. Especies domesticadas……………………………………………………. 28

II.6. Especies silvestres………………………………………………………… 29

II.7. Domesticación de especies de Capsicum…………………………………. 29

II.8. Importancia de la caracterización y evaluación de germoplasma………… 32

II.9. Caracterización y evaluación morfo agronómica de Capsicum.………….. 32

II.10. Los recursos fitogenéticos de Guatemala………………………………. 34

II.11. Caracterización agro morfológica del género Capsicum en Guatemala… 38

v

PARTE III

III. RESULTADOS

III.1. Discusión de resultados…..………………………………………………. 39

III.1.1. Descriptores ambientales de los sitios de rejuvenecimiento, incremento,

y caracterización morfológica de la colección activa de germoplasma

de Capsicum……………………………………………………………. 39

III.1.2. Integración de los resultados obtenidos de acuerdo con los objetivos

Específicos de la investigación………………………………………… 54

III.1.3. Los datos de pasaporte, de caracterización y evaluación morfológica

De las accesiones de Capsicum cosechadas…………………………… 66

PARTE IV

IV.1. CONCLUSIONES………………………………………………………………. 68

IV.2. RECOMENDACIONES………………………………………………………… 71

IV.3 REFERENCIAS BIBLIOGRAFICAS…………………………………………... 73

IV.4. ANEXOS

ANEXO 1: Datos de pasaporte de las accesiones de chile……………………… 79

ANEXO 2: Caracterización y evaluación morfológica de las accesiones de chile. . 98

PARTE V

V.1. INFORME FINANCIERO……………………………………………………….. 196

vi

INDICE DE CUADROS

Página

1. Insecticidas, época y dosis de aplicación por aspersión en El Oasis, Estanzuela

Zacapa……………………………………………………………………………… 11

2. Fungicidas, época y dosis de aplicación por aspersión en El Oasis, Estanzuela,

Zacapa……………………………………………………………………………. 12

3. Nutrición de los chiles en El Oasis, Estanzuela, Zacapa…………………………… 12

4. Principales características de las especies domesticadas de Capsicum……………….. 29

5. Principales características de las especies silvestres de Capsicum..………………… 29

6. Descriptores de rejuvenecimiento y del sitio de caracterización, FASE I en

ICTA, Finca El Oasis, Estanzuela, Zacapa…………………………………………... 32

7. Número de semillas germinadas de 100 sembradas por accesión de

Capsicum, Fase I, ICTA, Finca El Oasis, Estanzuela, Zacapa……………………….. 43

8. Número de plantas establecidas ocho días después del trasplante para cada,

Accesión de Capsicum (10C), Fase I, ICTA, El Oasis, Estanzuela, Zacapa……….… 45

9. Descriptores del rejuvenecimiento y del sitio de Caracterización,

FASE II en CTA, Finca La Alameda, Chimaltenango……………………………….. 48

10. Descriptores del rejuvenecimiento y del sitio de Caracterización,

FASE III en ICTA, Finca San Jerónimo, San Jerónimo, Baja Verapaz…………..….. 52

11. Número de semillas germinadas de 100 sembradas por accesión, de

Capsicum (11C), Fase III, ICTA, San Jerónimo, Baja Verapaz……………………. … 42

12. Número de plantas establecidas ocho días después del trasplante para cada,

Accesión de Capsicum (11C). Fase III, ICTA, San Jerónimo, Baja Verapaz………. … 54

13. Accesiones de chile sembradas, germinadas y establecidas en campo en

FASES I, II y III y otros datos……………….……………………………………… 55

14. Peso en gramos y % de germinación de las accesiones de Capsicum rejuvenecidas

en las FASES I y II y su destino de conservación…………………………………... 57

15. Accesiones de Capsicum (ID = 10c) que deberían pasar a formar parte de

la colección a mediano plazo de ICTA………….………….………………………. . 53

16. Datos de pasaporte de las accesiones de la colección activa de Capsicum

Que se sembraron y cosecharon en el ICTA, El Oasis, Estanzuela, Zacapa,

Fase I, 2010-2011………………….………………………………………………… 66

17. Datos de pasaporte de las accesiones de la colección activa de Capsicum

Que se sembraron y cosecharon en el ICTA, La Alameda, Chimaltenango

Fase II, 2011..……………………..…………………………………………………. 97

18. Caracterización y evaluación morfológica de las accesiones de chile en ICTA,

El Oasis, Estanzuela, Zacapa. Fase I, 2010-2011………….……………………….. . 98

19. Caracterización y evaluación morfológica de las accesiones de chile en ICTA,

La Alameda, Chimaltenango, Fase II, 2011………………………………………… 173

20. Caracterización y evaluación morfológica parcial de las accesiones de chile

En ICTA, San Jerónimo, Baja Verapaz……………………………………………… 184

vii

INDICE DE FOTOGRAFÍAS

Página

1. Diversidad morfológica en el género Capsicum…………………………….. 4

2. Vista parcial del sitio experimental en ICTA-CIOR, El Oasis, Estanzuela,

Zacapa………………………………………………………………………. 9

3. Registrando datos de descriptores de plántula………………………………. 12

4. Vista parcial de invernadero en Amadeo Export S.A……………………… 12

5. Preparación de terreno en ICTA, El Oasis, Estanzuela, Zacapa…………… 13

6. Trasplante y colocación de cobertores anti polinizadores…………………… 14

7. Estructura protegida……………………………………………………...... 16

8. Lavado de sustrato volcánico………………….……………………………. 17

9. Manguera para riego y drenaje……………………………………………… 17

10. Proceso de fertiriego y drenaje de excedentes de solución nutritiva…… ... 18

11. Diversidad de Capsicum pubescens Ruíz & Pavón ………………………… 19

12. C. pubescens Ruiz & Pavón listos para cosecha de frutos………………… 20

13. Frutos de C. pubescens Ruiz & Pavón recién cosechados………………… 20

14. Extracción de semillas del fruto y proceso de secado de las mismas…….. 21

15. Surqueo y creación de camas con colocación de

manguera de riego a 1.8 m………………………………………………….. 22

16. Emplasticado del suelo …………………………..…………………………. 22

17. Terreno listo para trasplante………………………………………………… 22

18. Semillero de accesiones de chile en ICTA, San Jerónimo…………………… 23

19. Plántulas para trasplante y vista del campo definitivo ya plantado…………… 23

20. Campo plantado y protegido con cobertores anti polinizadores…………….. 24

1

RESUMEN

Cuatrocientos noventa y seis (496) accesiones del germoplasma de Capsicum de Guatemala,

fueron sembradas de acuerdo a la altura sobre el nivel del mar en que fueron colectadas en tres

localidades, a saber: Finca El Oasis, Estanzuela, Zacapa (0-500 msnm), Finca San Jerónimo, San

Jerónimo, Baja Verapaz (>500 hasta 1500 msnm) y Finca La Alameda, Chimaltenango (> 1500

hasta < 2500 m), Estas siembras de accesiones de Capsicum tuvieron por objetivos: 1)rejuvenecer

el poder de germinación de semillas, 2) incrementar en cantidad semillas rejuvenecidas, 3)

caracterizar y evaluar morfológicamente las accesiones y 4) documentar la información sobre

pasaporte y caracterización morfológica. Esto permitió la creación de una colección nacional de

germoplasma de Capsicum que permite su rescate y conservación a mediano plazo en el banco de

germoplasma de ICTA y su utilización en el futuro cercano en procesos de mejora genética. Al

mismo tiempo la investigación, permitió generar información que documenta digitalmente el

género Capsicum. Las accesiones incrementaron su cantidad de semilla en más de 7 gramos cada

una. Ahora las accesiones de chile se almacenaron con un poder de germinación superior al 70%,

y están totalmente caracterizadas según descriptor oficial del género en el banco de Germoplasma

de ICTA. La documentación de cada accesión, conservada a mediano plazo está colgada en la

página WEB de ICTA y quiere colgar en el GRIN GLOBAL. Existe semilla disponible para

intercambiar y conservar a largo plazo en bancos mundiales de semilla y para generar futuros

procesos de mejora genética localmente.

Palabras claves

Capsicum spp, rejuvenecimiento de semilla, incremento de semilla, caracterización morfológica,

colección activa, conservación a mediano plazo.

2

SUMMARY

Four hundred ninety-six (496) Capsicum germplasm accessions from Guatemala, were seeded at

three locations, namely: Finca El Oasis, Estanzuela, Zacapa (0-500 m ), Finca San Jerónimo, San

Jerónimo, Baja Verapaz (> 500-1500 m) and Finca La Alameda, Chimaltenango (> 1500 to

<2500 m), These Capsicum planting accessions had the following objectives: 1) to rejuvenate the

germination power of the seed, 2) to increase the rejuvenated seed number, 3) to characterize and

to evaluate morphologically the accessions and 4) to document the information on passport and

characterization. This allowed the creation of a national collection of Capsicum germplasm,

allowing its rescue and medium term conservation in ICTA´s genebank and its utilization in

breeding program at the near future. While this research allowed to generate digital information

about the Capsicum genus, each accession increased its amount of seed over 7 grams and now the

chile accessions are stored with a germination power greater than 70%. Moreover, each accession

is fully and completely characterized with the official descriptor for the genus. The documentation

of each accession is hung on the website of ICTA and wants to be hanged on the GRIN GLOBAL

from USA. There is seed available to share and for preserving at long-term in global seed banks

and to generate future genetic improvement processes locally.

Key words:

Capsicum spp, regeneration, seed increase, morphological characterization, active collection,

medium term preservation.

3

PARTE I

I.1. INTRODUCCIÓN

El género Capsicum, que incluye entre 20 a 30 especies, tiene su centro de origen en las regiones

tropicales y subtropicales de América. Al menos cinco de sus especies son cultivadas a nivel

mundial. Sin embargo, la mayor producción de chiles está dada por Capsicum annuum L. En esta

especie, pero también en las otras especies domesticadas, se generaron los chiles dulces y los chile

picantes (Bosland, 1992).

En Guatemala existen tres especies domesticadas del género. Estas especies son: a) Capsicum

chinense, cuyo cultivar "Habanero" produce uno de los chiles más picantes que se conocen. Esta

especie es endémica en el Peten, b) Capsicum frutescens, cuyo cultivar "Tabasco" es famoso por

ser la materia prima para preparar la salsa del mismo nombre, c) Capsicum pubescens, cuyo

cultivar "Chile de caballo” es muy apreciado por su sabor y picor en el altiplano del país. En

Guatemala también se reportan tres especies silvestres. Estas son: Capsicum annuum var

aviculare, Capsicum lanceolatum y Capsicum ciliatum (Azurdia & González, 1986).

Después del descubrimiento de América todas las especies, principalmente Capsicum annuum L,

fueron dispersadas en distintas regiones del mundo y rápidamente se constituyeron en la principal

"especia" o condimento de comidas típicas de muchos países. Aunque su cultivo es generalmente

reducido en superficie en muchos países, este se encuentra ampliamente extendido alrededor del

mundo (Greenleaf, 1986, Pickersgill, 1997).

El fruto de las especies es una baya con características muy variables. El peso de los frutos fluctúa

entre unos pocos gramos hasta medio kilo. Se encuentran formas redondas, acorazonadas,

aguzadas, cilíndricas, cónicas, rectangulares y hasta cuadradas. Hay frutos inmaduros de color

blanco, verde, café y hasta negro. En maduro predominan los frutos de color rojo, pero también

los hay de color marfil, amarillo, anaranjado, café, lila o morado y negro. En la placenta se

disponen numerosas semillas pequeñas, planas y de color crema a pardo. Las semillas del C.

pubescens son de color negro, únicas en el genero (Bosland, 1992).

Existen grandes cantidades, más que suficientes, de formas y colores en los chiles cultivados

alrededor del mundo (Bosland, 1992; Dewitt 1996; Greenleaf, 1986, MacNeish, 1964 y

Pickersgill, 1997) y los usos para estos chiles son tan diversos como los tipos de frutos en el

género Capsicum (Bosland, 1993; Bosland, 1994; Cichewicz, 1996, Muhyi, 1995 y Scoville,

1912). Primariamente, los frutos son consumidos como vegetales frescos o como especia al ser

deshidratados. Por volumen, los productos de chile rojo, pungentes y no pungentes, representan

una de las más importantes especias commodite en el mundo. Ellas como especia adicionan

sabor, aroma y color a los alimentos mientras que proveen vitaminas, antioxidantes y minerales.

En muchos hogares, los chiles proveen la única vía necesaria para estimular la ingesta de dietas

blandas. El rango de productos alimenticios que contienen chile o sus constituyentes químicos es

amplio e incluye los alimentos étnicos, carnes, aderezos, mayonesa, lácteos, bebidas, caramelos,

galletas, repostería, panadería y pastelería, salsas y pastas. Los extractos de chile también son

utilizados en productos farmacéuticos y cosméticos. En adición a su uso como alimento,

condimento y medicina el chile también es usado como ornamento.

Existe una tremenda variación fenotípica en formas de fruta, tamaños, colores, así como en los

habito de la planta entre los cultivares de chile. Una forma práctica de clasificar esta enorme

diversidad es agrupar los chiles por tipo de fruto dentro de las especies (Azurdia, 1986). El

sistema de clasificación hortícola para chiles (Bosland, 1992) está basado, en el agrupamiento de

4

los cultivares por sus características hortícolamente similares, tales como la forma, el tamaño, el

color, la textura, el sabor y la pungencia del fruto. Esta clasificación es útil porque ésta hace

ordenar una ilimitada diversidad de cultivares. Aunque primariamente se elaboró para clasificar

cultivares de Capsicum annuum L., este sistema puede utilizarse también para las otras cuatro

especies cultivadas. Capsicum annuum L. es la especie más cultivada, diversa y conocida del

mundo. Dentro de esta especie, el tamaño del fruto puede variar desde 0.5 a más de 10 cms de

ancho. Algunos frutos tienen textura lisa y otros son rugosos. Los frutos pueden ser alargados,

ovalados, cónicos, acampanados, redondos o cuadrados. El color de los frutos inmaduros puede

variar. Los hay en tonos blancos, verdes claros, verdes oscuros, amarillentos, cafés, púrpuras y

negros. Mientras que el color del fruto maduro puede ser, amarillo, anaranjado, purpura, café,

negro y en su mayoría rojo. Pero también hay morfotipos de chile con frutos maduros, negros,

blanco y aún de color verde oscuro. Este sistema de identificación, es el método más comúnmente

utilizado hoy día. Por ejemplo, el muy bien conocido ´Cal Wonder´ es clasificado como

Capsicum annuum, bell pepper, cv.´Cal Wonder´. Este método capacita a quienes se relacionan

con chiles a comunicarse acerca de los chiles de una manera inteligente por abajo del nivel de

especies.

Sin embargo, la clasificación hortícola aunque tiene amplia aplicación en cultivares mejorados, no

es aplicable a cultivares criollos, ni mucho menos a cultivares silvestres. Si aunado a esto, se

incorpora la necesidad de conocer mejor el germoplasma del género Capsicum de origen

guatemalteco y su potencial de uso en programas de fitomejoramiento del género, se hace

prioritaria la caracterización y evaluación morfológica de los morfotipos disponibles. De igual

forma, dados los embates del cambio climático y cuyos efectos son evidentes en las respuestas de

los cultivos a cambios de temperatura, condiciones de humedad y al aparecimiento de nuevos

brotes de insectos y enfermedades más dañinos y virulentas, la evaluación pre fitomejoramiento

del germoplasma de Capsicum de Guatemala se hace urgente y emergente para adaptar las

especies del género a nuevos sistemas de producción.

En Guatemala el género Capsicum tiene amplia adaptación, existen cultivares que se adaptan a

condiciones a nivel del mar, a otros que prefieren alturas de los 2,000 metros sobre el nivel del

mar. En este rango de altura, la precipitación y la temperatura también varían y por ello, la

caracterización y evaluación morfológica se desarrolla en localidades que representen estos

factores ambientales lo mejor posible.

Como verdura fresca la composición nutritiva puede ser muy variable según el cultivar. En el

estado de verdura verde fresca, se destaca el alto contenido de ácido ascórbico, valor que es

superior al de muchos cítricos. Otros tipos de chile picante presentan valores 10 veces más altos de

Vitamina A que los chiles dulces. El picor es la característica organoléptica más relevante del

género. En la placenta de los frutos de chile, se ubican unas glándulas ricas en capsacinoides. El

capsacinode que más prevalece es la capsicina Lo picante de un fruto es variable según el cultivar,

el ambiente y el estrés de producción y el método de estimación. El resultado de la pungencia se

expresa en unidades Scoville (uS), en honor del inventor del método (Scoville, 1912)

Finalmente toda la información generada en la caracterización y evaluación morfológica debe

sistematizarse y hacerse disponible a los científicos en medios que permitan su intercambio y que

faciliten o al menos propicien el acceso regulado al germoplasma de interés.

5

I.2. PLANTEAMIENTO DEL PROBLEMA

Las recolecciones sistematizadas de Capsicum en Guatemala se reportan en el informe Búsqueda y

recolección de algunos cultivos nativos de Guatemala (Azurdia, 1986) y tesis de grado de

ingeniero agrónomo de la Facultad de Agronomía de la Universidad de San Carlos y en el informe

Recolección de germoplasma de chile tipo habanero (Capsicum chínense Jacq.) en el

departamento del Peten, AGROCYT 03-2002. Mientras que la caracterización agro morfológica y

bromatológica de la mayoría de las colectas está contenida en tesis de grado y en el informe

Caracterización de algunos cultivos nativos de Guatemala (Azurdia, 1995). Sin embargo, por la

falta de condiciones apropiadas de almacenamiento para semillas antes del 2000, los duplicados

nacionales de Capsicum de las recolecciones de los años 80 perdieron su viabilidad y poder de

germinación. Afortunadamente, copia de las accesiones, duplicados, se enviaron al banco de

Germoplasma del CATIE y están en resguardo en el mismo. El CATIE también compartió copias

de las accesiones de Capsicum con el banco de germoplasma del Centro Internacional de

Vegetales de Taiwán (AVRDC, por sus siglas en Ingles).

Hoy día el Instituto de Ciencia y Tecnología Agrícolas –ICTA- posee un banco de germoplasma

que permite la conservación de semillas ortodoxas por un periodo máximo de siete años. Se

cuenta con una temperatura controlada de 4º C y con una humedad relativa dentro del banco de

6% lo que permite conservar colecciones de Capsicum a mediano plazo. Sin embargo, ahora la

limitante es la falta de recursos para poder realizar de nuevo las recolecciones del germoplasma.

Por iniciativa propia y con el apoyo de estudiantes de la Universidad Rural y Universidad Rafael

Landivar, el investigador principal de este estudio, se dio a la tarea de orientar y captar desde el

2003 al 2009, la recolecta de genotipos de chiles desde huertos tropicales, caseros o familiares;

desde campos de agricultores de bajos recursos y poca tecnología agrícola y/o desde ambientes

silvestres. A finales del 2009 se lograron concentrar en una colección activa aproximadamente

325 accesiones de C. annuum, 30 accesiones de C. chínense, 17 accesiones de C. frutescens, 45

accesiones de C. pubescens y unas 50 accesiones de Capsicum no determinados

taxonómicamente. Esta colección activa, obviamente poseía accesiones con poca semilla que

URGENTEMENTE requerían de su multiplicación y rejuvenecimiento (Bosland, 1993; Dainello,

1986; y Erwin, 1937). Este proceso permitió simultáneamente la caracterización agro morfológica

de las accesiones y facilitó que en el futuro se tenga la disponibilidad de semilla para estudios

moleculares de diversidad genética y permitirá realizar evaluaciones de pre mejoramiento para la

búsqueda de genes que provean resistencia o tolerancia a condiciones bióticas y abióticas

influenciadas por el cambio climático.

I.2.1. Antecedentes en Guatemala.

I.2.1.1. Diversidad morfológica del género Capsicum:

Al analizar la variabilidad morfológica de Capsicum se constata que es posible encontrar

diferentes formas, tamaños y colores de fruta. También existen diferentes estructuras de planta,

diferentes grados de precocidad a floración y fructificación, diferentes grados de pubescencia en

tallos y hojas, diferentes grados de susceptibilidad a plagas y enfermedades (Bosland, 1991;

Greenleaf, 1986 y Tanksley, 1988), diferentes grados de pungencia, etc. Toda esta variabilidad

morfológica, hace que las poblaciones de Capsicum sean materia prima idónea para el desarrollo

de nuevos cultivares mejorados (IBPGR, 1983). Un ejemplo de esa diversidad se muestra en la

composición fotográfica siguiente.

6

Fotografía No. 1. Diversidad morfológica en el género Capsicum.

Fuente: NMSU, EUA 1994

I.2.1.2. Utilización reciente del germoplasma de Capsicum en Guatemala:

Con accesiones de la colección activa de Capsicum en ICTA, se desarrollaron recientemente tres

investigaciones aplicadas: a) Búsqueda de resistencia genética a Phytophthora capsici Leonian en

germoplasma de Capsicum de Guatemala, Desarrollo tecnológico del cultivo de Paprika en

Guatemala y Respuesta a las podas de formación del cultivar ´Cajamarca´ (C. chínense Jacq) con

propósitos ornamentales. Los resultados obtenidos tienen potencial promisorio. Otras

instituciones nacionales han realizado y están en el proceso de investigación aplicada en el

género para usos diversos de la población guatemalteca.

I.2.2. Justificación del trabajo de investigación

I.2.2.1. Potencial del germoplasma de Capsicum en Guatemala:

Desafortunadamente las especies cultivadas de Capsicum de Guatemala, no aparecen entre las

especies de importancia económica para la diversificación de la agricultura, mucho menos para

promover la agroindustria nacional. A nivel mundial, cada día se sabe más de los beneficios que

ofrece el género Capsicum en la industria de alimentos, la farmacología y la medicina humana (13

y 22) su consumo como hortaliza fresca entre los vegetarianos se ha incrementado, especialmente

por proveer antioxidantes a la dieta. La industria de alimentos, así como las empresas de

cosméticos, aprecian mucho el pigmento natural de Capsicum. En consecuencia, divulgar y

promover la potencialidad del género en su transformación y procesos agroindustriales es

importante para la industrialización del país. Como ya se mencionó, el género tiene diversos usos

que permiten el desarrollo de innovaciones tecnológicas productivas y agroindustriales que lo

hacen muy competitivo en el mercado nacional e internacional (Dainello, 1986 y Pickersgill,

7

1997). Lamentablemente, el potencial económico del género en nuestro país es desconocido. Así

por ejemplo, se puede mencionar que el potencial agroindustrial del género está en 1) la extracción

de pigmentos, 2) la extracción de capsicina pura, 3) la producción de páprika y 3) la obtención de

oleorresina. Adicional a lo anterior, el género Capsicum puede generar divisas al fomentarse las

empresas de producción comercial de semillas de chile mejoradas para el mundo. No menos

importante es el nicho de producción de plantas de Capsicum con propósitos ornamentales.

Finalmente, los efectos del cambio climático sobre la agricultura potencializan a los recursos

fitogenéticos del país. En particular recursos fitogenéticos de Capsicum por ser Guatemala un

centro secundario de diversidad de C. annuum L. Nuevos cultivares de chile con características

que permitan la adaptación del género a condiciones de estrés biótico y abiótico resultantes de la

variación climática se requerirán. La materia prima para lograrlos será la disponibilidad de

germoplasma debidamente evaluado y documentado.

8

I.3. OBJETIVOS E HIPOTESIS

I.3.1. Objetivos

I.3.1.1. General

Crear una colección nacional del germoplasma de Capsicum spp, a partir de una

colección activa, generada en los últimos siete años, por esfuerzo personal y con la

colaboración de estudiantes de la Universidad Rural y Universidad Rafael Landivar de

Guatemala, para su conservación a mediano plazo (6-7 años) y utilización en procesos de

mejoramiento genético bajo condiciones ambientales propias del país.

I.3.1.2. Específicos

I.3.1.2.1. Sembrar y evaluar las accesiones de la colección activa de germoplasma de

Capsicum para su REJUVENECIMIENTO (Manteniendo su diversidad genética y

recuperación de vigor y poder de germinación en la progenie)

I.3.1.2.2. Evaluar y caracterizar morfológicamente las accesiones de la colección activa

del germoplasma de Capsicum de Guatemala.

I.3.1.2.3. Sembrar y evaluar las accesiones de la colección activa de germoplasma de

Capsicum para su INCREMENTO en cantidad de semilla y así crear la colección de

mediano plazo de germoplasma de Capsicum de Guatemala (21).

I.3.1.2.4. Aprovechar el REJUVENECIMIENTO y el INCREMENTO de la colección

activa de germoplasma de Capsicum para su caracterización morfológica utilizando para

el efecto el descriptor oficial del IBPGR para el género (Azurdia, 1986 e IBPGR, 1995).

I.3.1.2.5. Rescate y conservación a mediano plazo en el banco de germoplasma.

I.3.1.2.6. Incrementar las accesiones al final del proceso en 100 gramos cada una y que

tengan un poder de germinación superior al 85%.

I.3.1.2.7. Generar la base de datos, documentación de la colección de mediano plazo de

germoplasma de Capsicum de Guatemala.

I.3.1.2.8. Divulgar a las autoridades, actores sociales e instituciones en el campo de su

competencia la información obtenida de la investigación.

I.3.2. Hipótesis.

Aunque la propuesta consideró la observación, la medición y el registro de lo observado,

la misma no constituyó una investigación experimental agrícola con la intención de

probar alguna hipótesis experimental. La misma, tuvo el enfoque de investigación

descriptiva en lo que respecta a la caracterización morfológica del germoplasma de

Capsicum y el propósito de rescatar y conservar una colección activa de germoplasma de

9

Capsicum que necesita de incremento de su semilla, de la recuperación de su vigor y de

su poder de germinación.

Los objetivos alcanzaron sus metas parcialmente, al lograr incrementar cada accesión su

cantidad de semilla y contar ahora con porcentajes de germinación de 70 hasta 100 % y la

caracterización morfológica del 80 % de las accesiones establecidas.

Fotografía 2. Vista parcial del sitio experimental en ICTA-CIOR, El Oasis,

Estanzuela, Zacapa.

Fuente: FODECYT 018-2010

10

I.4. METODOLOGÍA

I.4.1. La colección activa de germoplasma de Capsicum:

La colección activa de germoplasma de Capsicum, se constituyó con recolecciones

personales del investigador principal y la colaboración de estudiantes de la carrera de

Ingeniería Ambiental de la Facultad de Ciencias Naturales de la Universidad Rural de

Guatemala y de estudiantes de la carrera de Ingeniería Agrícola de Cultivos del Trópico

de la Facultad de Ciencias Ambientales y Agrícolas, sede Escuintla de la Universidad

Rafael Landivar de Guatemala. La misma se inició a conjuntar en el año 2003 y continuó

hasta finales del 2009. La estrategia para la obtención de una muestra de Capsicum que

llegó a constituirse en la colección activa fue: El origen de la muestra tenía que ser

exclusivamente de poblaciones de Capsicum en huertos tropicales familiares, en jardines

familiares o en ambientes silvestres.

El número final de accesiones de la colección activa de germoplasma de Capsicum que se

consideró en el rejuvenecimiento e incremento se resume a continuación:

Capsicum annuum L 354

Capsicum chínense Jacq. 30

Capsicum frutescens L 17

Capsicum pubescens 45

Capsicum spp 50

TOTAL DE ACCESIONES 496

I.4.2. Localización de las Fases de Ejecución del Proyecto:

Para la realización de la presente investigación, tres sitios experimentales fueron

seleccionados. Todos y cada uno de ellos pertenecen a estaciones experimentales de

Centros de Innovación Tecnológica del ICTA. Los sitios estaban localizados en: Fase I:

CIOR-Zacapa, Finca El Oasis, en Estanzuela, Zacapa; Fase II: CIAL-Chimaltenango,

Finca La Alameda, en La Alameda, Chimaltenango y Fase III: CINOR-San Jerónimo,

Finca San Jerónimo, en San Jerónimo, Baja Verapaz. El proceso técnico metodológico

utilizado en cada fase se presenta a continuación:

I.4.2.1. FASE 1: Centro de Innovación de Oriente, CIOR-Zacapa, ICTA. Finca El

Oasis, Estanzuela, Zacapa, 2010-2011.

El investigador asociado encargado de las actividades técnicas durante la Fase I, fue el

Ing. Agr. Héctor Hugo Ruano Solís, hruanosol@hotmail.com.

Localidad: La Finca El Oasis, está ubicada en las coordenadas geográficas: Latitud

Norte: 14º 57´51´´, Longitud Oeste: 89º 35´ 04´´ a una altitud de 210 metros sobre el nivel

del mar.

11

Época de realización: Desde Octubre del 2010 hasta Junio del 2011.

Accesiones: Se establecieron doscientos treinta y dos (232) accesiones en campo

definitivo de la colección activa de germoplasma de Capsicum de Guatemala para

altimetrías desde 0 a 500 metros sobre el nivel del mar.

Diseño Experimental: Debido a la naturaleza del proyecto no se implementó un diseño

experimental porque no se requería.

Distancias de trasplante: 1.80 m entre surcos, 0.20 m entre plantas. Parcela de 10

metros de largo conteniendo 50 plantas por accesión.

Área bruta de la parcela. 10m x 1.80 = 18 m2.

Variables de respuesta que se registraron: 1). Los descriptores ambientales del sitio y

2) Descriptores morfológicos Descriptores de Capsicum, IBPGR, 1987).

Análisis de la información

Adicional a lo requerido en los descriptores del género, la cantidad de semilla y su

porcentaje de germinación fue entregada al Banco de Germoplasma de ICTA por cada

accesión o morfotipo.

Manejo del cultivo

Elaboración y manejo de los semilleros.

La semilla de cada accesión o morfotipo evaluado en la presente investigación fue tratada

de la siguiente manera. Cien semillas de cada accesión fueron colocadas en tela organdí,

la cual fue sellada con bandas de hule. Etiquetas de papel bond liso de 120 gramos

fueron usadas para identificar cada accesión. La identificación se hizo con lápiz No.2.

Cada bolsita de organdí formada, contenía su respectiva etiqueta. Las bolsitas de organdí

conteniendo la semilla y su etiqueta respectiva, fueron inmersas en una solución de

hipoclorito de sodio por 5 minutos. Luego el exceso de hipoclorito de sodio fue

eliminado con dos enjuagues de agua destilada. Seguidamente, la semilla se puso a secar

en un área cálida, pero sin contacto directo con la luz solar. Se procedió a la siembra de

dos semillas por celda de cada accesión, cuando ésta estaba seca y las bandejas con

sustrato a base de Peat Moss preparadas.

Los semilleros de las accesiones de chile de la Fase I, se establecieron, en la Empresa

Amadeo Export, S.A. en Estanzuela, Zacapa. Las plántulas se trasplantaron al campo

definitivo 60 días después de su siembra. Se proveyó un control efectivo de las plagas y

enfermedades en el invernadero y al mismo tiempo se le dio el manejo comercial

estándar de la empresa a las accesiones. Se produjo una plántula sana y vigorosa.

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Fotografía No. 3 Registrando datos de descriptores de plántula

Fuente: FODECYT 018-2010

Fotografía No.4 Vista parcial de invernadero en Amadeo Export S.A.

Fuente: FODECYT 018-2010

Preparación del terreno definitivo:

El sitio experimental fue chapeado para eliminar vegetación que interfiriera con la

preparación mecanizada del campo. Seguidamente, el suelo se preparó haciendo un paso

de arado de discos y dos pasos de rastra cruzados. Se surqueó el terreno a 1.8 m,

levantándose camellones de 0.3 m. Para el efecto se utilizó un tractor con implementos

especiales que simultáneamente surqueó, colocó la manguera de riego por goteo al

centro del camellón y colocó el acolchado plástico (polietileno) sobre los camellones. El

área de terreno que se preparó fue de 0.63 Ha.

13

Fotografía No.5. Preparación de terreno en ICTA, El Oasis, Estanzuela, Zacapa

Fuente: FODECYT 018-2010

Riego pre y post trasplante:

Previo al trasplante de las accesiones de chile, se revisó el sistema de riego, se hicieron

varias reparaciones a la tubería y se dio servicio de mantenimiento a las llaves de paso y

a los conectores para optimizar el agua. Se realizó un riego de 12 horas de pre siembra

un día antes del trasplante y posteriormente a este, se irrigó cada cinco días por 8 horas

para mantener la capacidad de campo del terreno necesaria para el normal desarrollo y

productividad de cada una de las accesiones de chile plantadas.

Trasplante:

Para realizar esta actividad fue necesario previamente trazar las parcelas, ahoyar el

plástico a 0.2 m y recoger las tapitas de plástico del ahoyado. El trasplante de las

doscientas treinta y dos entradas de Capsicum de Guatemala, se llevó a cabo el veintitrés

de Noviembre de 2010, cuarenta y cinco días (45) después de la siembra del semillero.

De acuerdo con la cantidad de plántulas disponibles, se establecieron un máximo de

cincuenta (50) plántulas por entrada. Simultáneamente al trasplante, se colocaron por

entrada, seis tutores de bambú formando una V invertida y posteriormente y a medida

que se avanzaba con el trasplante, se fueron colocando mallas cobertores de polietileno a

cada entrada. Esto se hizo para evitar la presencia de insectos vectores de virus y en

consecuencia prevenir el daño que ocasionan los virus en fases tempranas de desarrollo y

crecimiento de los chiles. Porque fue imposible obtener más, sesenta cajas de malla anti

vectores de polietileno (50 mesh) se utilizaron en las accesiones más precoces para evitar

el ingreso de insectos polinizadores que indujeran cruzamientos indeseables en la entrada

y de esta manera garantizar la autofecundación.

14

Fotografía No. 6. Trasplante y colocación de cobertores anti polinizadores

Fuente: FODECYT 018-2010.

Control de plagas.

Insectos del Follaje:

El control de plagas que se realizó fue principalmente para plagas del follaje de los

órdenes Ortóptera, Homóptera y Lepidóptera. En los meses de Enero y Febrero del año

2011 se rebasaron los umbrales de daño económico del Anthonomus eugenie, del

complejo de gusanos Spodoptera y de Helicoverpha zea. Las aspersiones de insecticidas

que se hicieron procuraron una buena cobertura sobre el follaje de la planta. Los

productos, la época de aplicación y las dosis empleadas se reportan el cuadro No.

Cuadro1. Insecticidas, época y dosis de aplicación por aspersión en El Oasis,

Estanzuela, Zacapa.

Ingrediente activo Época de Aplicación Dosis

Fenil-Pirazol-fipromil 52 días después del trasplante 2 L/Ha

Deltamethrin,

Triazophos

12, 25, 40, días después del

trasplante.

2.5 L/Ha.

Cloronicotinilo,

Thiacloprid,

Betacifluthon

8, 20, 35, 60, días después del

trasplante.

1 L/Ha.

Fuente: FODECYT 018-2010

Enfermedades.

Debido a la prevalencia inusual de humedades relativas altas en el sitio experimental la

aplicación de fungicidas químicos preventivos fue necesaria para evitar el daño por Tizón

Tardío (Phytophthora infestans) y Tizón temprano (Alternaría solani). En el cuadro se

reportan los ingredientes activos, la época de aplicación y la dosis empleada en las

aspersiones.

15

Cuadro 2. Fungicidas, época y dosis de aplicación por aspersión en El Oasis,

Estanzuela, Zacapa.

PRODUCTO CUANDO SE APLICÓ DÓSIS

Mancozeb A los 8, 25, 40 días después del

trasplante.

2.5 kg/ha

Metallic copper A los 15, 30, 60 días después del

trasplante.

2.0 Kg/Ha.

Trifloxystrobin +

Tebuconazole

Cuando se presentaron los primeros

síntomas de las enfermedades.

0.25 kg/ha

Fuente: FODECYT 018-2010

Control de malezas

Esta actividad contempló dos métodos: la manual y el químico. El control químico

consistió en la aplicación del herbicida Glifosato, en una dosis de 2 litros por Ha, doce

días antes del trasplante de las accesiones de chile. El producto se dirigió a las calles no

cubiertas con plástico y donde se desarrollaba el crecimiento de malezas de hoja angosta

y ancha y donde el Cyperus spp, crecía agresivamente. Este control químico se repitió a

los 15 y 60 días después del trasplante utilizando pantallas que protegían a las plantas de

chile del contacto con el herbicida.

Por su lado, el control manual de malezas, se concentró sobre las hileras de chile y el área

que estaba cubierta con plástico. Se realizaron cuatro limpias manuales a cada una de las

accesiones, esto durante la fase de crecimiento vegetativo, por debajo y dentro de las

mallas cobertores, para evitar que las malezas compitieran por nutrientes, luz y espacio

con las plantas de chile.

Nutrición vegetal

En el plan de fertilización de esta Fase I, se utilizaron dos métodos de aplicación de

nutrientes: a) Ahoyado al suelo y b) por aspersiones al área foliar de los chiles. En el

Cuadro se aprecia el producto, su razón por superficie y la época de aplicación.

Cuadro 3. Nutrición de los chiles en El Oasis, Estanzuela, Zacapa

PRODUCTO Cantidad por área CUANDO SE APLICO

15-15-15 de fórmula

química.

272 Kg / Ha 10 días después del

trasplante se ahoyó a 15 cm

del pie de la planta de chile,

se colocó el fertilizante y se

cubrió con tierra.

N,P,K y elementos

menores: Ca, B y S

(Bayfolan Forte)

2 L / Ha 20, 35 y 50 y70 días

después del trasplante, con

buena cobertura del follaje

en la aspersión.

Fuente: FODECYT 018-2010

16

I.4.2.2. FASE II. Centro de Innovación del Altiplano-Chimaltenango, -CIAL-

Chimaltenango, ICTA, La Alameda, Chimaltenango, 2011.

El investigador asociado encargado de las actividades técnicas durante la Fase II, fue el

Ing. Agr. Luis Américo Márquez, luamarquez@hotmail.com

Estructura protegida disponible: área

protegida de 10 x 20 metros.

Columnas y tijeras de madera: pared

de bloque de un metro de altura.

Paredes con malla anti vectores de 1.6

mm, techo plástico con protección UV

de 1 mil de grosor. Puerta de entrada

doble con pediluvio. Área de

preparación y almacenaje de

soluciones nutritivas. Esta estructura

contó con un sistema de hidroponía

que incluyó: macetas plásticas de

Fuente: FODECYT 018-2010

27.94 cm de diámetro sin drenaje; sustrato de piedra volcánica de hasta 0.5 cm de

diámetro y mangueras de riego/ drenaje de 2.54 cm de diámetro Las macetas estaban

montadas en tablas de maderas clavadas en columnas de 10 x 10 cm de ancho y a 0.9 m

de altura sobre el suelo. El área contó con agua para riego de las plantas.

Siembra de almacigo: Esta actividad se realizó a finales del mes de febrero cuando ya no

existían riesgos de heladas en el sitio de la experiencia. Las semillas de chile se

sembraron en bandejas plásticas de 244 celdas que se colocaron en un invernadero de

germinación. De la colección activa de Capsicum se seleccionaron 32 morfotipos de C.

pubescens Ruiz & Pavón para esta fase II. De los 32 morfotipos, 29 germinaron y

solamente a 23 de ellos se les registró la información requerida por el descriptor. Esto

debido a que estos morfotipos tuvieron más de 10 plantas para estimar y registrar el

descriptor correspondiente. La toma de datos se inició en la etapa fenológica de plántula

y continuó a lo largo de la fase vegetativa y reproductiva de los morfotipos: descriptores

de planta, de floración, de fruto y de semilla.

Fotografía No. 7. Estructura protegida

17

Fotografía No. 8. Lavado del sustrato volcánico.

Fuente: FODECYT 018-2010

Preparación de la estructura hidropónica: se inició con el lavado del sustrato a utilizar

(roca volcánica). Se usó abundante cantidad de agua para eliminar adecuadamente

residuos de tierra, raíces y otros residuos que pudieran estar presentes en el sustrato. Ya

lavado el sustrato se colocó en macetas No.4 con dimensiones de 19.05 cm en la base,

27.94 cm en la parte superior y 8.63 cm de alto. La capacidad de la maceta fue de 8.4

litros. Individualmente se colocó la manguera de 2.54 cm que sirvió para el riego y

drenaje de las plantas de chile.

Fotografía No. 9. Manguera para fertiriego y drenaje.

Listo el contenedor con el sustrato, se procedió a

su desinfección Esta se realizó con una solución

ácida a pH = 3, durante 24 horas. Lugo se procedió

a drenar esta solución y se preparó otra a pH 5.5.

Ésta se dejó en los contenedores con el sustrato por

24 horas. Luego se drenó y se colocó agua a pH = 7

por otras 24 horas. Enseguida ésta agua se drenó.

Con esto se limpiaron impurezas y sales que aún

hubiesen quedado en el sustrato. Para acidificar el

agua se utilizó ácido sulfúrico 2N. Limpio y

desinfectado el sustrato, se procedió a trasplantar

las plántulas de chile de caballo cuando estas

Fuente: FODECYT 018-2010

tenían entre cuatro y seis hojas verdaderas, colocándolas al centro del contenedor. Con

una pequeña pala de jardinero se hizo a un lado el sustrato y se colocó la plántula: Luego

se regresó el sustrato y se acomodó de tal forma que la plántula quedó completamente

erecta.

El riego y la fertilización de las plántulas: estos se realizaron simultáneamente. Para

esto, se preparó la solución nutritiva en toneles de 200 litros de capacidad. Previo a diluir

18

los fertilizantes, se ajustó el pH del agua a 5.5. Al diluir un fertilizante se volvió a

verificar el pH de la solución, si varió, se volvió a ajustar la solución a un de pH 5.5.

Esto se realizó para cada uno de los fertilizantes a colocar como nutrientes. Al final se

ajustó el pH de la solución a 6.5. El pH se midió con un potenciómetro portátil, el ajuste

de éste se realizó con ácido sulfúrico 1N. Al finalizar la preparación de la solución

nutritiva, se realizó la medición de la conductividad eléctrica. Esto para verificar que la

presión osmótica de la solución no estuviese por arriba de la aceptada por el cultivo. De

preferencia y de acuerdo al cultivo, ésta estuvo entre 2 – 3 micro ohmios Para la

determinación se utilizó un conductímetro portátil.

Para realizar el riego en sí, se conectó el sistema de riego y drenaje al contenedor. El

sistema de riego y drenaje consistió en una cubeta de 10 L de capacidad con un tubo de

poliducto de 25 cm perforado en los primeros 20 cm. Éste fue introducido al contenedor

lateralmente. Fue forrado con tela de “Tul” para evitar que las raíces de las plantas de

chile al fondo del contenedor sin drenaje invadieran el tubo y obstruyeran el paso del

agua de riego. Luego de conectar la cubeta al este tubo de poliducto se elevó la cubeta

con la solución nutritiva. Se esperó a que el agua fluyera hasta la parte superior del

sustrato en el contenedor. Luego se bajó al piso la cubeta y por diferencia de altura la

solución regresó a la cubeta. Con la humedad que queda en el sustrato, la planta estuvo

hidratada por 24 - 48 horas, dependiendo de la etapa fenológica en la que se encontraba.

Normalmente el fertiriego se realizó cada dos días tres veces por semana durante todo el

ciclo de producción.

Para saber cuándo había que cambiar de solución nutritiva, se midió la conductividad

eléctrica (C.E) de la misma. Cuando ésta estaba llegando a un 25% de la C.E. original, se

preparó una nueva solución nutritiva. Los fertilizantes utilizados como fuentes para los

elementos mayores, N, P, K, Ca, Mg y S fueron hidrosolubles: CaNO3, MAP, Multi-K,

MgSO4, y MgNO3. Los elementos menores, Fe, Cu, Zn y Mo se adicionaron con un

fertilizante foliar (Bayfolan™) a razón de 1 cc por litro de agua.

Fotografía No. 10. Proceso de fertiriego y drenaje de excedentes de solución nutritiva

Fuente: FODECYT 018-2010

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Control de plagas y enfermedades:

Para el control de plagas y enfermedades en el módulo hidropónico, se requirió realizar

dos monitores de plagas y enfermedades por semana dentro de la estructura protegida. Al

detectarse la presencia de las mismas, se utilizó el producto adecuado, ya sea insecticida,

fungicida o acaricida de acuerdo a las indicaciones del fabricante en la etiqueta. Con los

muestreos constantes se pudo minimizar el uso de pesticidas, ya que el problema fue

detectado a tiempo que permitió realizar prácticas culturales o aplicaciones preventivas

para controlar la plaga o enfermedad. La plaga que en un momento se detectó y controló

a tiempo fue la de los trips. Problemas de enfermedades fungosas o bacterianas no fueron

detectados en el módulo hidropónico.

Manejo de problemas fisiológicos:

Estos problemas son muy comunes en los cultivos bajo cubierta. Si no se tiene un buen

control de la temperatura y humedad relativa estos son problemas potencialmente

riesgosos. Para la reducción de riesgo, se debe manejar adecuadamente la conductividad

eléctrica de la solución nutritiva y no forzar a la planta con su nutrición. En este estudio

se presentó el problema. El primer síntoma fue la presencia de meristemos apicales

flácidos en las horas de mayor temperatura. Posteriormente aparecieron deficiencias de

calcio en la base apical del fruto. Aunado a esto, un exceso de humedad relativa arriba

del 65 % fue adecuado para el aparecimiento de frutos acuosos. Una poda de hoja para

mejorar la ventilación entre plantas fue necesaria para controlar el problema. Por otro

lado, humedades relativas abajo del 50%, producen una deshidratación paulatina de las

plantas. Por eso las plantas siempre, se mantuvieron a capacidad de campo en el sustrato.

En plena maduración de fruto una deficiencia de agua pudo provocar rajaduras en los

mismos dañando su apariencia. Por esto también se tuvo mucho cuidado en la

disponibilidad de agua en este estado fenológico. Finalmente, se tuvo cuidado de que las

temperaturas máximas no superarán los 35 grados ni bajarán de los 12 grados mínimo, ya

que provocarían problemas de polinización y por ende deformación y pérdida de calidad.

Fotografía No. 11. Diversidad de Capsicum pubescens Ruiz & Pavón

Fuente: FODECYT 018-2010

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Cosecha y extracción, secado de semilla:

La cosecha se realizó cuando el fruto llegó a su completa madurez fisiológica e incluso

cuando empezó a deshidratarse. El fruto tuvo buena consistencia y se arrancó fácilmente

de la planta. La cosecha se hizo manual depositando los frutos de cada morfotipo en

canastas plásticas de 37.46 cm X 32.38 cm X 55.25 cm. Estas canastas se trasladaron a un

área protegida con ambiente seco (40% HR) y temperatura alta (35º C) en donde cada

fruto fue cortado en tiras para facilitar la separación de la semilla de la placenta. Por lo

carnoso del fruto, se separó la semilla de la placenta en el menor tiempo posible y ésta

fue colocada sobre papel periódico para su rápido secado. Una vez seca la semilla se

colocó en bolsas de papel kraft, se identificaron y se enviaron al Banco de Germoplasma

para su proceso de ingreso al mismo. Acá se le realizaron pruebas de germinación y se

estimó el peso de semilla producida previo a su almacenamiento para conservación a

mediano plazo.

Fotografía No. 12. C. pubescens Ruiz & Pavón listos para cosecha de frutos

Fuente: FODECYT 018-2010

Fotografía No. 13. Frutos de C. pubescens Ruiz & Pavón recién cosechados

Fuente: FODECYT 018-2010

21

Fotografía No. 14. Extracción de semillas del fruto y proceso de secado de las mismas.

Fuente: FODECYT 018-2010

I.4.2.3. FASE III. Centro de Innovación del Norte –CINOR- , ICTA, San Jerónimo,

Baja Verapaz.

El investigador asociado encargado de las actividades técnicas durante la Fase III, fue el

Técnico en Horticultura Eduardo Alfredo Landaverri, uradevernal@hotmail.com.

El área de estudio lo constituyó el Centro Experimental ICTA San Jerónimo, localizado

en el municipio de San Jerónimo departamento de Baja Verapaz, ubicado entre 930 a

1,000 msnm y 15° 05’ latitud norte y 90° 17’ longitud oeste.

En este sitio experimental predomina el clima templado con una temperatura media anual

de 22° centígrados y precipitación media anual DE 1,296 ml. (INSIVUMEH 2,010).

El trabajo de campo se inició en el mes de mayo de 2011. La preparación del suelo

consistió en un paso de arado de discos, dos pasos de rastra y el respectivo surqueado a

0.9 m entre sí. Luego fueron formadas camas de 1.80 m entre sí. Previo al trasplante

definitivo a campo abierto, se realizó la colocación del fertilizante químico base. Para el

efecto se utilizó la fórmula química: 15 N, 15 PO2,15 K con una dosis de 545 Kg por

hectárea. Las camas de 0.3 m de alto fueron cubiertas con cobertura de polietileno gris

negro de 0,7 mil de grosor. Esta cobertura fue perforada a 0.4 m para realizar el trasplante

de las plántulas de chile.

22

Fotografía No. 15. Surqueo y creación de camas con colocación de manguera de riego

a 1.8 m entre hileras.

Fuente: FODECYT 018-2010 Fuente: FODECYT 018-2010

Fotografía No.16. Emplasticado del suelo. Fotografía No. 17. Terreno listo para

el trasplante.

Fuente: FODECYT 018-2010 Fuente: FODECYT 018-2010.

En San Jerónimo, Baja Verapaz, se sembraron al almacigo 191 morfotipos de chiles

procedentes de la colección activa de Chiles de ICTA. Su origen altitudinal los ubica en

un rango de 500 a 1,500 msnm.

Almacigo o semillero:

Bandejas plásticas de 244 celdas fueron llenadas con el sustrato. De cada morfotipo de

chile fueron sembradas 100 semillas y en su momento oportuno se dejaron 50 plántulas

para el trasplante. La siembra de los 191 morfotipos fue realizada entre el 24 y 29 de

junio de 2011. Las plántulas de los morfotipos de chile fueron cultivadas en una

estructura protegida, casa malla. Durante su cultivo, fueron entonces regadas y

fitosanitariamente cuidadas. A los 20 días de la siembra se procedió a tomar y a registrar

la información sobre el porcentaje de germinación de cada uno de los morfotipos. Esta

información permitió establecer aquellos morfotipos que debían ser trasplantados a

campo definitivo para su incremento, rejuvenecimiento y caracterización morfológica.

23

Fotografía No. 18. Semillero de accesiones de chile en ICTA, San Jerónimo, BV.

Fuente: FODECYT 018 2010

Trasplante:

Las plántulas fueron trasplantadas a campo definitivo entre el 5 y el 12 de Agosto cuando

estas tenían 45 días de edad. La unidad experimental para cada morfotipo consistió de

50 plantas de 10 m de longitud por 1.8 m de ancho. El total de morfotipos trasplantados

alcanzó la cifra de 154, en virtud que 37 de estos no germinaron por problemas de

viabilidad y poder de germinación de la semilla. Las plantas en campo definitivo, fueron

inmediatamente protegidas con cajas de malla de polietileno. Esto evitaría el arribo de

insectos vectores de virus y al mismo tiempo permitiría la utilización de autografía para

el incremento y rejuvenecimiento de los morfotipos de chile.

Una vez emergidas las plántulas de chile en el almacigo ubicado en casa malla, se inició

la toma y el registro de datos requeridos para la caracterización morfológica de los

morfotipos de chile. Esta toma y registro de datos se continuó hasta cuando se decidió

abandonar el estudio por causas extremas del clima en la región de tal manera que se

tomó y registró datos solo sobre la planta y la floración. (IPGRI- AVRDC-CATIE 1995).

Fotografía No. 19. Plántulas de chile y vista del campo definitivo ya plantado

Fuente: FODECYT 018-2010 Fuente: FODECYT 018-2010

24

Manejo cultural en campo definitivo:

Durante el mes de septiembre 2011, fue necesario realizar un control mecánico de

malezas tanto sobre la hilera del cultivo, como entre las calles de las hileras de cultivo. Se

realizaron aplicaciones de fertilizantes hidrosolubles vía goteo. Para el control de plagas

se realizaron aplicaciones de los insecticidas Movento™, Rienda™, Evisect 50 SP™ y

Monarca™ en forma alterna semanal. Las enfermedades fueron prevenidas con

aplicaciones preventivas de los fungicidas Dithane™ y Antracol™. En todos los casos de

aplicación de pesticidas se siguieron las recomendaciones de los fabricantes expresadas n

la etiqueta del producto. Durante la fase de floración de los morfotipos, se confirmó la

especie botánica a la que cada uno de ellos pertenece.

Fotografía No. 20. Campo plantado y protegido con cobertores anti polinizadores.

Fuente: FODECYT 018-2010

25

PARTE II.

MARCO TEÓRICO

II.1. El Género Capsicum

Las especies de Capsicum son, casi sin excepción, plurianuales. La planta, de tallo

leñoso, forma normalmente un arbusto de hasta 15 dm de altura, algunas variedades

alcanzan tamaños superiores. Las flores son blancas o verdosas en la mayoría de las

variedades, salvo en el C. pubescens (Smith y Heiser 1957 y Yaqub y Smith, 1971), en

que tienen un color violáceo.

El fruto -técnicamente una baya- varía en coloración y tamaño de acuerdo a la variedad;

puede ser cúbico, cónico o esférico. De interior hueco, el fruto está dividido en dos o

cuatro costillas verticales que portan las semillas, de color amarillo pálido -salvo en C.

pubescens, que las presenta negras- (Smith y Heiser, 1957 y Yaqub y Smith, 1971). Sin

embargo, la mayor cantidad de semillas se aloja en la parte superior, junto al tallo. La

carnosidad del pimiento también varía según la especie. Cuando el fruto madura

fisiológicamente sus colores abarcan, según la especie, desde el blanco y el amarillo hasta

el morado intenso, pasando por el naranja, el rojo brillante y el lavanda. El color verde es

señal de inmadurez fisiológica, pero muchas especies de Capsicum se consumen también

en este estado fresco.

La forma de propagación es mediante semillas que se mantienen viables hasta por tres

años si se conservan en un ambiente adecuado. El fruto es una baya con varias celdas las

cuales están ligeramente unidas entre sí pues los tabiques que las separan no están

interconectados.

El género Capsicum está muy distribuido a nivel mundial y se encuentra en gran

diversidad de formas, tamaños, colores, sabores, olores y niveles de picor o pungencia

Bosland, 1992; Scoville, 1912 y Tanksley, 1984). Los tipos menos picantes que son los

que se utilizan para industrializar y a nivel casero, por lo general están compuestos en un

gran porcentaje por agua, en promedio un 74,3%. El contenido de proteína es de 2,3%, y

el de carbohidratos de 15,8%; otros de los componentes son vitaminas y minerales y

sustancias antioxidantes. Los parámetros para evaluar la calidad del chile picante son el

picor, el color y la cantidad de vitamina C.

II.2. Origen y distribución geográfica del género Capsicum:

Barbara Pickersgill, etnobotánica (Pickersgill, 1997), cree que los primeros morfotipos de

chile se originaron en el pasado remoto geológico en un área bordeada por las montañas

del Sur de Brasil hacia el Este, por Bolivia al Oeste y por Paraguay y el Norte de

Argentina hacia el Sur. Esta localidad es llamada “área nuclear” y tiene la más alta

concentración de especies silvestres de chile en el mundo. En esta área nuclear y

solamente aquí, crecen representativos de todas las mayores especies domesticadas del

género.

26

Los chiles eran desconocidos en Europa, Asia y África antes de que Cristóbal Colón

llegara a América (Bosland, 1992 y Dewitt y Bosland, 1996)). Colón pudo no ser el

primer europeo en América, pero a él se le da el crédito de haberlo introducido en Europa

y subsecuentemente al África y Asia. En sus viajes, él encontró una planta cuyo fruto

mimetizaba la pungencia de la pimienta negra, Piper nigrum (L). Colón erróneamente

nombró a la especie Capsicum “pimienta”. La planta no fue la pimienta negra, sino una

planta desconocida que más tarde se clasificó como Capsicum. Capsicum no está

relacionado al género Piper. En1493, Peter Martyr (De Witt y Bosland, 1996) escribió

que Colón trajo a casa “pimienta más pungente que aquella del Cáucaso”.

La nueva pimienta se dispersó rápidamente a lo largo de las rutas de especias entre

Europa y África, India, China y Japón. La nueva especie, a diferencia de la mayoría de

plantas introducidas desde el hemisferio occidental, fue incorporada instantáneamente a

las cocinas nacionales.

La relación de los seres humanos con el género Capsicum comenzó hace 10.000 o 12.000

años, cuando las primeras personas habitaron el hemisferio occidental. El género

Capsicum se asocia con poderes místicos y espirituales para nuestros ancestros. Su

domesticación no fue un evento aislado. Existen cinco especies diferentes domesticadas,

por lo que se infiere que Capsicum fue domesticado probablemente por lo menos cinco

veces independientemente (Bosland, 1996).

II.3. Clasificación taxonómica

División : Spermatofita

Clase : Dicotiledoneae

Orden : Solanales

Familia : Solanaceae

Genero : Capsicum

Especies domesticadas : Capsicum annuum

C. chinense

C. baccatum

C. frutescens

C. pubescens

El género Capsicum comprende especies originarias del Nuevo Mundo. No existe aún un

diagnóstico definitivo del género. Debouck y Libreros (1993) revisaron la información

existente sobre el número de especies y reconocen entre 10 y 25, considerando 11

especies dudosas de pertenecer al género. Basados en el color de la flor (blanca y

morada) se distinguen dos grupos de especies (IBPGR, 1983). El grupo de flor morada

reúne las especies Capsicum eximium, C. cardenassi y C. pubescens. El grupo de flor

blanca lo conforman dos subgrupos, el primero constituido por C. baccatum con sus dos

variedades botánicas C. baccatum var. baccatum y C. baccatum var.pendulum

(Eshbaugh, 1977), y el segundo conformado por C. annuum, C. frutescens y C. chinense.

Se presentan diferencias morfológicas entre los dos grupos, lo cual dificulta el

27

cruzamiento entre ellos (Eshbaugh, 1977; Gil Ortega, 1990). La especie C. chacoense, de

flor blanca, parece ser el nexo entre los dos grupos (Jensen et al., 1979).

A continuación, se presenta una reseña histórica del número de especies que han sido

clasificadas dentro del género Capsicum por diferentes investigadores desde 1699 hasta

1957.

AÑO: 1699

AUTOR: Morrison

TRABAJO: “Plantarum Historiae Universales Oxoniensis”

CLASIFICACIÓN: 33 variantes para ajíes

AÑO: 1700

AUTOR: Tournefort

CLASIFICACIÓN: Da al género el nombre Capsicum, y lista 27 especies.

AÑO: 1753

AUTOR: Linnaeus

TRABAJO: “Species Plantarum”

CLASIFICACION: Reduce Capsicum a dos especies, C. annuum y C. frutescens.

AÑO: 1767

AUTOR: Linnaeus

CLASIFICACION: Adiciona dos especies más, C. baccatum y C. grossum.

AÑO: 1790

AUTOR: Ruiz y Pavón

CLASIFICACION: Describen la especie Capsicum pubescens

AÑO: 1798

AUTOR: Willdenow

CLASIFICACION: Describe la especie C. pendulum

AÑO: 1852

AUTOR: Dunal

CLASIFICACION: Describe 50 especies en el género y lista otras 11 posibles

AÑO: 1898

AUTOR: Irish

CLASIFICACION: Reconoce solo dos especies, C. annuum y C. frutescens.

AÑO: 1923

AUTOR: L. H. Bailey

CLASIFICACION: Solo una especie, C. frutescens

28

AÑO: 1953

AUTOR: Heiser y Smith

CLASIFICACION: Recategorizaron el género dentro de cuatro especies, C. annuum,

C. frutescens, C. baccatum y C. pubescens.

AÑO: 1957

AUTOR: Smith y Heiser

CLASIFICACION: Determinaron a C. chinense como especie única, provocando la

actual lista de cinco especies domesticadas.

En la actualidad, el género Capsicum consta de por lo menos 25 especies silvestres y

cinco especies domesticadas. Pero esto es solo un estimativo. Se cree que pudieran

descubrirse y nombrarse nuevas especies en el futuro (Bosland, 1996).

II.4. Especies biológicas y morfológicas

Los científicos definen las especies de dos maneras, las biológicas y las morfológicas.

Cada una se basa en un conjunto diferente de criterios para establecer el concepto de

especie. Un taxónomo, para establecer una especie morfológica, examina los rasgos

florales y observa similitudes y diferencias en las estructuras florales. Una especie

biológica se define como una población o serie de poblaciones dentro de la cual ocurre

libre flujo de genes bajo condiciones naturales. Esto significa que las dos poblaciones de

plantas deben poder producir progenie fértil en las subsecuentes generaciones. Si hay

intercambio genético libre entre dos poblaciones, se consideraría que ellas son de la

misma especie. Capsicum posee una multitud de formas de frutas, colores y tamaños. Sin

conocimiento genético, los primeros taxonomistas nombraron las especies basados

principalmente en la morfología de los frutos, o sea, según el concepto de especie

morfológica (Bosland, 1996).

Saccardo y La Gioria (1982, citado por Bosland, 1996), encontraron apareamiento

anormal de cromosomas en el cruce de una accesión de Colombia con otras de México y

Nuevo México (USA). La fertilidad reducida en la progenie fue causada por varias

translocaciones que habían ocurrido entre la población colombiana y las otras dos

poblaciones. El aislamiento geográfico ha permitido a las poblaciones de C. annuum

iniciar un proceso de diferenciación que posiblemente podría llevar a dos especies

diferentes.

II.5. Especies domesticadas

Con base en las características morfológicas se distinguen cinco especies domesticadas:

C. annuum L.; C. frutescens L.; C. baccatum var. Pendulum Wild.; C. chinense Jacq. y C.

pubescens R y P. A continuación en el Cuadro 4 se pueden observar las principales

características de las cinco especies domesticadas.

29

II.6. Especies silvestres

Las especies silvestres tienen importancia como posibles donantes de genes de interés, se

destacan C. chacoense A.T. Hunz, C. galapagoense A. T. Hunz, C. praetermissum H & S,

C. cardenassi H & S, C. eximium A. T. Hunz y C. tovarii Nom. Nud. Sus principales

características se describen en el Cuadro 5.

Cuadro 4. Principales características de las especies domesticadas de Capsicum.

Característica C. annuum C. frutescens C. chinense C. baccatum C. pubescens

Flores Solitarias Solitarias Dos o más por nudo Solitarias Solitarias e inclinadas

Pedicelos Declinados Erectos Erectos o declinados Erectos o declinados Erectos

Corola Blanco lechoso, Verdosa-blanca Verdosa-blanca Blanca o verdosa Morada

Ocasionalmente Ocasionalmente blanca

Púrpura blanca o morada

Manchas NO NO NO SI NO

Cáliz No tiene constricción No tiene constricción Tiene constricción Tiene constricción No tiene constricción

anular anular anular anular

Venas Prolongadas en No No Prolongadas en Prolongadas en

dientes cortos prolongadas en prolongadas en dientes dientes

dientes dientes prominentes

Pulpa Blanda Blanda Firme Firme Firme

Semillas Amarillas Amarillas Amarillas Amarillas Oscuras

No.

Cromosómico 2n=24 2n=24 2n=24 2n=24 2n=24

Un par de Un par de Un par de Un par de

cromosomas cromosomas cromosomas cromosomas

acrocéntricos acrocéntricos acrocéntricos acrocéntricos

Nombres Jalapeño Tabasco Habanero Escabeche Caballo

Comunes Serrano Diente de perro Panka Ají Siete caldos

Pimiento Pimiento de

Bell Cheiro

Chamborote

Cobanero

Fuente: Galmarini, 1992; USDA, 1994; IBPGR, 1983.

Cuadro 5 Principales características de las especies silvestres de Capsicum.

Característica C. chacoense C. galapagoense C. praetermissum C. cardenassi C. eximium C. tovari

Flores solitarias solitarias 2 a 5 por nudo Acampanuladas más de dos por púrpuras, con manchas amarillas

Con manchas nudo con manchas

amarillas amarillas

Pedicelo Erecto

Corola Blanca y mancha

Amarilla en la base

Cáliz Presenta constricción Tiene dientes No tiene dientes

Fruto Blando

Semillas Amarillas y rugosas

Distribución Norte argentino Galápagos Sur de Brasil Bolivia Norte argentino Región andina de Perú

Zonas adyacentes

a Bolivia y

Paraguay

Fuente: Galmarini, 1992; Hunziker, 1950.

II.7. Domesticación de especies de Capsicum.

Las especies silvestres del género Capsicum se distribuyen a través de la cadena

montañosa de los Andes suramericanos y en las costas montañosas y proximidades bajas

de las regiones del sur, sudeste y nordeste brasileño. La distribución es continua desde

Venezuela, Colombia, Ecuador, Perú, Bolivia, Brasil, Paraguay y Norte de Argentina

30

(Heiser & Smith, 1958). La distribución de especies silvestres ocurre en ambientes

ecológicos distintos. Por ejemplo, Eshbaugh (1983) cita un ambiente de áreas

semidesérticas para C. eximium, asociado a vegetación espinosa y de ambiente seco en el

sudeste de Bolivia. Hunziker (1950) reporta para C. chacoense var. tomentosum un

ambiente de bosque en Paraguay y Argentina. Heiser y Smith (1958) presentan un

ambiente seco para C. cardenasii en Bolivia. D´arcy & Eshbaugh (1974) citan ambientes

secos con elevaciones de 500 a 2000 metros para C. ciliatum y para C. tovarii, zonas

xerofíticas.

La actual distribución del género Capsicum hace difícil determinar la región de origen

para un determinado taxón y probablemente no se logre determinar un área precisa. Sin

embargo, se sabe que Río de Janeiro (Brasil) es uno de los principales centros de

diversidad, con mayor número de especies (García, 2006). A partir de la distribución

geográfica del género es posible elaborar mapas de patrones de diversidad, con una o más

áreas de concentración de especies, por esto denominados “centros de diversidad

genética”. Esto se puede relacionar a un nivel elevado de endemismo como es el caso de

Brasil, o estar distribuido en grandes áreas. Por ejemplo, C. ciliatum se distribuye de

Costa Rica hasta Perú, haciendo parte de tres centros de diversidad (Venezuela,

Colombia y Ecuador). C. baccatum var. baccatum integra los centros de Perú, Bolivia y

Argentina (García, 2006).

De las especies nativas por lo menos cinco fueron domesticadas independientemente en

diferentes regiones de México, América Central y Sur América; son cosechadas y

utilizadas por el hombre, estas son: C. pubescens, C. baccatum, C. annuum, C. chinense y

C. frutescens (IBPGR, 1983). Según Pickersgill, 1980, las tres especies C. annuum, C.

chinense y C. frutescens se consideran como un cultigrupo en vía de diferenciación.

Aunque pueden unirse brechas entre los acervos genéticos a través de la hibridación

artificial, esto raramente sucede en la naturaleza (Bosland, 1996). Algunas de las especies

dentro del género pueden ser agrupadas dentro de Complejos. Es posible el intercambio

genético dentro de un Complejo, aunque con algunas dificultades. Cada Complejo está

compuesto por las especies domesticadas y sus silvestres relacionados. Cada uno puede

verse como un acervo genético primario de diversidad. El Complejo pubescens consiste

en C. pubescens, C. eximium y C. cardenasii, mientras el Complejo baccatum está

compuesto por C. baccatum, C. praetermissum y C. tovarii. El Complejo annuum

consiste en C. annuum, C. frutescens, C. chinense, C.chacoense y C. galapagoense

(Bosland, 1996).

Según Pickersgill (1983, 1986), las plantas se dividen en tres categorías según el grado de

domesticación: Plantas domesticadas: Son aquellas en las cuales el hombre seleccionó

determinadas alteraciones genéticas, de modo que no son capaces de sobrevivir en

condiciones naturales, con una absoluta dependencia del hombre para su sobrevivencia.

Plantas semi-domesticadas: Son las encontradas en ambientes alterados por el hombre,

pero no presentan diferencias morfológicas significativas con relación a las poblaciones

silvestres donde se originaron. Presentan un grado bajo de dependencia con el hombre.

31

Plantas silvestres: Son las que normalmente no se presentan en ambientes antrópicos no

existe ningún grado de relación de dependencia con el hombre. Para Capsicum, todas las

especies silvestres tienen frutos pequeños, verdes, pungentes, que pueden ser ovales,

esféricos, cónicos u oblongos, crecen en forma erecta o decidua a madurez. Las semillas

son prevalentemente diseminadas por los pájaros atraídos por el color brillante de los

frutos. En contraste, las cultivadas presentan menor cantidad de frutos de mayor tamaño,

pendientes y persistentes y con variedad de colores: amarillo, naranja, violeta, marrón,

verde (García, 2006).

La mayoría de los trabajos arqueológicos relacionados a Capsicum fueron realizados

junto a las civilizaciones Maya y Azteca (México y Centro América) e Inca (Costa

Andina de América del Sur). Pickersgill (1969) en excavaciones en Perú, relata la

presencia de frutos y semillas de 2800 a 1800 a. c. y discute sobre evidencias de

domesticación (cálices fuertemente unidos a los frutos). Así mismo hace referencia a los

resultados de las excavaciones de Kaplan y Mac. Neish en 1960 y Mac. Neish en 1964,

donde fueron identificados ejemplares de Capsicum en sitios arqueológicos de América

Central y del Sur de 700 a. c., sugieren que estas plantas ya venían siendo utilizadas por

el hombre.

A pesar de que Capsicum no presentan suficiente calidad nutritiva para la alimentación

humana (carbohidratos y proteínas), su amplio uso se puede haber originado en el interés

que pudo haber causado la gran cantidad de frutos y colores del género. También pudo

haber sido el sabor y el aroma que es tan importante en Capsicum, como el color y la

forma. (Bosland, 1996).

El uso de los pimientos por parte de los primitivos de las Américas fue registrado en

algunos relatos de viajes de cronistas que participaron en los primeros viajes al nuevo

Mundo; así Pickersgill (1969) cita autores relacionados a expediciones en América como

Oviedo y Valdés en 1547, Acosta en 1590, Garcilazo de la Vega en 1609, Cobo en 1953,

entre otros. De acuerdo con estos relatos los pimientos americanos eran usadas en

alimentación tanto en forma de frutos como de hojas, en ritos religiosos, medicina y

como instrumento monetario de los Incas (García, 2006). Los datos arqueológicos, el

desconocimiento de los europeos de los pimientos americanos, los relatos del uso por

parte de los nativos del Nuevo Mundo, así como el conocimiento de la distribución de

especies no domesticadas son prueba suficiente del origen americano del género (García,

2006).

Eshbaugh (1983) sugiere tres rutas distintas de introducción del género Capsicum al

Viejo Mundo, a través de los primeros exploradores, de jardines botánicos que sirvieron

de instrumentos para introducción a las colonias de Inglaterra, Holanda y Francia, y de la

ruta de comercio de esclavos. Mc. Leod. et al. (1982), basados en análisis isoenzimáticos,

información geográfica de las especies domesticadas, concluyeron que la mayoría de las

especies se originaron en la región centro–sur de Bolivia, con posterior migración para

los Andes o regiones bajas de la Amazonía.

32

Se han postulados varias hipótesis para explicar la evolución del género. El origen mono

filético de las especies domesticadas a partir del ancestral común C. frutescens,

Davenport (1970); cuatro o cinco progenitores silvestres, que dieron origen cada uno a

una especie domesticada (Heiser citado por Mc. Leod, 1983); tres líneas independientes

de evolución, que llevaron a la domesticación de C. pubescens, C. baccatum y el

complejo annuum. Este complejo se originó a partir de una ancestral común en las

regiones bajas de la Amazonía, mientras C. baccatum, en las regiones bajas de Bolivia.

Recientemente y con base en análisis electroforético se propone a Colombia como

posible centro de origen para el complejo annuum con posterior migración hacia Centro

América y Sur América (Pickersgill, 1986).

II.8. Importancia de la caracterización y evaluación de germoplasma

En los bancos de germoplasma de los países de América del sur, Centroamérica y el

Caribe se encuentran aproximadamente 660.000 accesiones pertenecientes a un rango

amplio de géneros y especies de plantas las cuales están solo parcialmente documentadas.

En los últimos años se han realizado esfuerzos importantes en el registro y

almacenamiento de los datos de pasaporte y la caracterización de estas accesiones, así

como el intercambio de la información relacionada (Franco, 2003). Los recursos

fitogenéticos se conservan para utilizarlos, y ello sólo es posible si se conocen sus

características y posibles usos. La información que nos permite conocer el germoplasma y

determinar su utilidad proviene de tomar y analizar un conjunto de datos sobre el

germoplasma, en diversas etapas de la conservación pero principalmente durante la

caracterización y evaluación.

La caracterización y la evaluación son actividades complementarias que consisten en

describir los atributos cualitativos y cuantitativos de las accesiones de una misma especie

para diferenciarlas, determinar su utilidad, estructura, variabilidad genética y relaciones

entre ellas, y localizar genes que estimulen su uso en la producción o el mejoramiento de

cultivos. Las dos actividades requieren exactitud, cuidado y constancia e incluyen un

componente importante de registro de datos. Existen diferentes enfoques de la

caracterización en función del tipo de caracteres utilizados. A grandes rasgos los

principales grupos de caracteres utilizables en caracterización vegetal, permiten dividir

la caracterización en las siguientes clases: morfológica, fisiológica, citológica,

bioquímica y molecular (Gonzáles y Pita, 2001).

II.9. Caracterización y evaluación morfo agronómica de Capsicum.

El género Capsicum presenta alrededor de 20 a 25 especies silvestres (Heiser, 1985), y

algunas se pueden cruzar con las domesticadas. Se encontró dentro de éstas algunos genes

que permiten su adaptación a condiciones y ambientes difíciles. Con este grupo de

especies se ha realizado un intenso trabajo de manejo de germoplasma como lo

demuestra el hecho de la existencia de un número de colecciones de tamaño considerable

que según reportes del IBPGR sumaron 25 en 1983. En 1999, el IPGRI reportó 143

instituciones, con un total de 58.817 accesiones de Capsicum. En América Latina se

destacan las colecciones del Centro de Agricultura Tropical de Investigación y Enseñanza

33

(CATIE), de Costa Rica; la del Departamento de Fitotecnia de la Universidad de Vicosa

(Brasil); la de la sección de Recursos Genéticos del Centro de Investigaciones Agrícolas

de El Bajío (México), la de la Universidad Agraria de la Molina en Perú (Galmarini,

1992) y la de la Universidad Nacional de Colombia con 720 accesiones. Actualmente, el

AVRDC (Asian Vegetable Research and Development Center) en Taiwán cuenta con una

colección mundial de germoplasma de Capsicum de 6.844 accesiones de 95 países,

representando ocho especies. El AVRDC duplica, en contenido de accesiones, las

colecciones del CATIE (Costa Rica) y el USDA (Estados Unidos) juntos. Un total de

2.722 accesiones han sido caracterizadas por el AVRDC y otras han sido caracterizadas

por el Laboratorio Nacional de los Recursos Genéticos de las Plantas (NPGRL) en

Filipinas y por la Universidad de Kasetsart en Bangkok, Tailandia. La caracterización fue

basada en los descriptores propuestos por el IPGRI (Berke y Engle, 1997). En 1989, el

AVRDC creó el International Chilli Pepper Nursery (ICPN), que luego recibió el nombre

de International Network for Tropical Hot Pepper (INTHOPE). En la actualidad sus

políticas están centradas en el libre cambio del germoplasma de Capsicum, que se

extiende desde Asia hasta los países del trópico; así como de la información contenida en

el Centro de Documentación del Banco de Germoplasma (Berke y Engle, 1997).

Aproximadamente más de 1000 accesiones de Capsicum han sido también reportadas en

Costa Rica, Alemania, México y Estados Unidos. Pequeñas colecciones se encuentran en

otros lugares diferentes a los grandes Centros Mundiales de Germoplasma de Capsicum

(Berke y Engle, 1997). Dos grandes colecciones han sido reportadas en México. La más

grande es la del Instituto Nacional de Investigaciones Forestales y Agropecuarias

(INIFAP) en Celaya, Guanajuato, con 3590 accesiones. Una segunda colección se

encuentra en el Banco de Germoplasma de la Ciudad de México, con 1.500 accesiones

(Berke and Engle, 1997). Una colección de pimientos y ajíes (Capsicum) se inició en los

80 en el ICA Palmira. En 1983 se contaba con 135 materiales, en su mayoría colectados

en Colombia. Este banco de germoplasma fue homologado por el IBPGR, habiéndose

iniciado desde entonces intercambio de materiales con el extranjero, así como la

descripción del mismo (Garcia, 2006).

Los aumentos de germoplasma así como la caracterización y evaluación de los mismos en

un programa de recursos genéticos son básicos para su posterior utilización en un

programa de mejoramiento (Pickersgill, 1969). La caracterización consta del registro de

atributos de alta heredabilidad que se expresan en todos los ambientes (Williams, 1982) y

la evaluación comprende datos que se toman para una serie de caracteres que pueden ser

afectados por el ambiente, como también de aspectos específicos, incluyendo reacción

a enfermedades, plagas, sequía, etc. (Ford – Lloyd y Jackson, 1986). El registro de

información se realiza a través de la lista de descriptores, de los cuales comprenden cada

una de las variables a observarse con una calificación categorizante, que busca

estandarizar y uniformizar la descripción sistemática por cultivo y facilitar el intercambio

de información entre centros nacionales e internacionales (Engels, 1985).

II.10. Los recursos fitogenéticos de Guatemala.

34

A continuación se presenta un extracto de la recopilación histórica inédita y sin

publicación sobre los recursos fitogenéticos de Guatemala, que desarrolló el investigador

principal del FODECYT 18-2010 durante el año 1994, cuando se propuso la creación de

una Unidad de Recursos Fito genéticos en ICTA (González, 1994).

Los recursos fitogenéticos, los genes de cualquier especie son recursos naturales

limitados y perecederos. Estos son fuente de producción agro-pastoril-medicinal-

industrial- ornamental y forestal en un país. Estos son también la materia prima para los

fitomejoradores Los recursos fitogenéticos de cualquier especie poseen genes útiles

conocidos o desconocidos; genes resistentes a plagas y enfermedades por ejemplo, que

pueden ser incorporados a nuevas y más productivas variedades de plantas.

Mesoamérica es un área geográfica que comprende la mayor parte del sur de México

hasta la parte norte del territorio costarricense. Mesoamérica es reconocida

mundialmente por sus grandes culturas indígenas. También esta región del mundo es

reconocida por haber sido aquí donde la domesticación de plantas dio origen a la

agricultura en el continente.

Guatemala como parte de Mesoamérica es centro de origen, de diversidad y variabilidad

genética de muchas especies vegetales de importancia económica mundial, maíces,

frijoles, chiles, bledos, cucúrbitas entre otros muchos. Es bien reconocido que en

Guatemala la variabilidad genética de los cultivos mencionados es extremadamente alta.

Más importante aún, es que en Guatemala es posible encontrar parientes silvestres y

especies relacionadas a las especies de cultivos.

Guatemala es y ha sido fuente de germoplasma para el desarrollo de cultivares mejorados

transnacionales. Muchas variedades de maíz, frijol, chiles, tomates, güicoyes, ayotes,

aguacates, cacaos, zinnias, flor de pascua, por mencionar tan solo unos cuantos cultivos,

poseen una base genética guatemalteca y tienen hoy día amplia distribución a nivel

mundial.

En el territorio guatemalteco, según CATIE (CATIE, 1976), es posible encontrar 50 de un

total de 104 especies de plantas originarias de Mesoamérica de importancia económica

para el hombre. Aquí se pueden mencionar plantas forestales, plantas medicinales,

plantas par fibra natural, frutales tropicales, plantas forrajeras, plantas ornamentales,

plantas alimenticias tradicionales y no tradicionales. Sin embargo, de muchísimas

especies vegetales de Guatemala aún no se sabe nada acerca de su potencial de uso. El

potencial de uso y utilización de estas especies vegetales “desconocidas” está siendo

hipotecado por la destrucción irreversible de sus ecosistemas naturales.

Toda la diversidad fitogenética de Guatemala, conocida o desconocida su utilización, está

enfrentando el desafío de los cambios tecnológicos y los efectos del cambio climático.

Una alta erosión genética en las especies vegetales nativas de Guatemala provee el

inminente proceso de su extinción. El avance de la frontera agrícola, el uso

indiscriminado de pesticidas en la agricultura tecnificada, la introducción de cultivares

35

multinacionales que desplazan cultivares nativos y criollas, concatenado con la

colonización urbana mal planificada y la indiscriminada destrucción de bosques naturales

del país aceleran dramáticamente el proceso de erosión genética de los recursos

fitogenéticos del país.

Es por esta situación tan agravante, que los científicos guatemaltecos, estén cada día más

conscientes y preocupados en salvaguardar, preservar y utilizar los recursos fitogenéticos,

patrimonio natural del pueblo guatemalteco. Esta ardua tarea persigue contribuir al

desarrollo económico sostenible al pueblo de Guatemala. Por eso, si no se toman desde

ya las medidas correctivas y las decisiones oportunas al respecto, el futuro de las

generaciones venideras del país estará hipotecándose.

Para 1994, el Instituto de Ciencia y Tecnología Agrícolas –ICTA-, no contaba con la

unidad institucional que realizara investigación en recursos fitogenéticos. Es más no se

contaba con un banco de germoplasma. Esto representó que la actividad en recursos

fitogenéticos en Guatemala anterior a 1994, no haya evolucionado favorablemente. El

ICTA en colaboración con la Facultad de Agronomía de la Universidad de San Carlos y

otras instituciones intentó desarrollar actividades en recursos fitogenéticos con el apoyo

de IBPGR del grupo consultivo y la FAO, pero fue evidente que la falta de un banco de

germoplasma en el país fue el punto débil de los esfuerzos hechos.

La construcción de un banco de germoplasma a mediano plazo en el país se dio en el

2000. Esto ocurrió como consecuencia de los efectos que tuvo el Huracán Mitch sobre la

variabilidad genética de cultivos importantes en la dieta básica del guatemalteco, maíz y

frijol. Contar con un banco de germoplasma, fue un primer paso muy importante en la

conservación y salvaguarda de germoplasma ortodoxo nacional. Este banco impulsará y

promoverá la participación activa de otras instituciones públicas y no públicas en el

desarrollo de los recursos fitogenéticos del país.

Los trabajos de exploración y recolección de recursos fitogenéticos en Guatemala han

sido comunes desde principios del siglo XX. Para tener idea de los trabajos realizados

hasta 1994, el investigador principal del FODECYT 18-2010, continua con la reseña

histórica que documentó para ICTA en 1994.

En el cultivo de maíz (González ,1994) reporta que en 1940-41, McBryde, de la

Universidad Estatal de Ohio, EUA, recolectó 318 mazorcas de 38 sitios en 13

departamentos de la república. Los ejemplares fueron enviados al Museo Botánico de la

Universidad de Harward, EUA. En 1952-53, el ingeniero agrónomo Alejandro Fuentes,

investigador del entonces Instituto Agropecuario Nacional (IAN), patrocinado por la

Academia Nacional de Ciencias de los Estados Unidos de América, recolectó 1154

materiales de maíz que contribuyeron con el trabajo que generó la clasificación de razas

de maíz. Los morfotipos fueron depositados en el banco del Instituto Nacional de

Investigaciones Agropecuarias de México (INIA) y posteriormente fueron trasladadas a lo

que hoy día es el banco de germoplasma de maíz en el Centro de Investigación y

Mejoramiento de Maíz y Trigo –CIMMYT- Un duplicado nacional se guardó en Labor

36

Ovalle, Olintepeque, Quetzaltenango. Hoy día dicho duplicado no existe más (González,

1994).

En 1950, Leheau y Shieber, según González (González, 1994) recolectaron 86 genotipos

de frijol. En ICTA no se cuenta con semilla ni con la información de pasaporte de los

genotipos colectados. Una de las recolecciones más recientes de frijol, fue conducida por

Debouk y Soto en 1985. Ellos colectaron 60 materiales cultivados y 40 materiales

silvestres. Un duplicado de lo colectado fue dejado en el banco activo del cultivo de frijol

de ICTA y otro duplicado fue enviado al banco de germoplasma del Centro Internacional

de Agricultura Tropical –CIAT- en Colombia. El banco activo del cultivo de frijol de

ICTA en Jutiapa, a la fecha ha colapsado.

Bukasov en 1930 (León, 1981), colectó 10 materiales de tomate en el área de Amatitlán,

Chimaltenango y la Capital. No hay información disponible sobre las colecciones

hechas. La producción comercial de tomate en Guatemala depende de cultivares

mejorados transnacionales. Sin embargo, en ciertos mercados del interior del país,

ocasionalmente es posible aún observar frutos de cultivares criollos y de parientes

silvestres de tomate. Es por lo tanto, aún posible rescatar variabilidad genética de tomate

en Guatemala.

Bukasov en 1948 (León, 1981), colecto papas silvestres en Guatemala, pero no se cuenta

con la información de pasaporte de ellas. Dardón en la década del 70, recolectó

germoplasma de papa en Guatemala para el Centro Internacional de Papa –CIP- en Perú.

Tampoco hay datos de pasaporte de los materiales colectados. En 1985, Ruano y Estrada

recolectaron 25 genotipos de para del altiplano occidental de Guatemala para el CIP. No

se dejaron duplicados ni la información de campo de los genotipos. En las décadas 80,

90 y del 2010 se realizaron introducciones de clones de papa desde el CIP hacia

Guatemala y nuevas misiones de exploración fueron conducidas. La información de estas

últimas se encuentran en la biblioteca central de ICTA.

Las frutas tropicales de Guatemala, también han sido objeto de recolecciones (González,

1994). Las primeras colectas las realizó Wilson Popenoe en 1928-30 para aguacate y

cacao. En 1985, Cervando Rivera colectó cacao silvestre para el IBPGR. Otros países

que han realizado expediciones recientes de colección de frutas son Israel y Japón.

En 1981 se aprobó el proyecto de Recolección de Recursos Fito genéticos de Guatemala.

Conjuntamente el ICTA, la FAUSAC y el Consejo Internacional de Recursos Fito

genéticos de FAO, implementaron el proyecto. Por cuatro años consecutivos se

recolectaron semillas y material vegetativo de multiplicación de los géneros: Amaranthus,

Capsicum, Cucurbita, Iponoea, Manihot y otros. El proyecto colectó: 93 accesiones de

bledo, 208 de chile, 66 de hierbamora, 19 de chipilín, 172 de yuca, 132 de camote, 29 de

malanga, 18 de quequexque y otras. El banco de germoplasma base del proyecto se

constituyó en la Unidad de Recursos Fito genéticos del Centro Agronómico Tropical de

Investigación y Enseñanza –CATIE- en Costa Rica. Al CATIE se enviaron todas las

accesiones de semilla ortodoxa recolectada por el proyecto. Jardines clonales fueron

37

establecidos en la Finca Bulbuyá, San Miguel Panaan, Suchitepequez de la FAUSAC y

en la Finca El OASIS, de ICTA en Estanzuela, Zacapa. A la fecha de hoy estos jardines

clonales ya no existen por la falta de los recursos económicos necesarios para su

mantenimiento y manejo agronómico (González, 1994).

En ICTA, La Alameda, Chimaltenango, se estableció (González, 1994) un cuarto de

almacenamiento al que se le colocó un sistema de deshumidificadores y un sistema

móvil de estanterías de madera. La semilla se colocaba en envases plásticos de cierre

hermético. El almacén no contaba con control de temperatura ambiente. Bajo estas

condiciones, semillas de Amaranthus, Capsicum, Cucurbita, Solanum, Crotalarias y otras

fueron guardadas. Para el año 2000, la semilla que se mantenía en este cuarto de

almacenamiento había perdido su vigor y su poder de germinación y se declararon como

perdidas.

El proyecto durante su ejecución, intercambió germoplasma de semillas y materiales

vegetativos con varios países interesados en el germoplasma. Semillas de tomate, bledos

y tubérculos del camote fueron enviados a los EUA. Semillas de Capsicum, Cucurbita y

Lycopersicon fueron enviados al CATIE, AVDRC, a las Filipinas y al Brasil. Tejidos de

cultivo de yuca al CIAT, entre otros. El informe final de este proyecto fue publicado

como “Búsqueda, Conservación y Caracterización de Algunos Cultivos de Guatemala en

1986 y se encuentra disponible en las bibliotecas de ICTA y de la FAUSAC (González.

1994).

Con el germoplasma disponible del proyecto de recolección (1982-84), se ejecutó una

segunda fase de Caracterización y Evaluación Preliminar de algunos cultivos nativos de

Guatemala. Aproximadamente 35 tesis de grado académico en la FAUSAC fueron

publicadas con el apoyo de este nuevo proyecto con el IBPGR. En la descripción de las

accesiones se utilizó el descriptor oficial del IBPGR para cada especie. O bien se generó

el descriptor correspondiente cuando no existía alguno oficial. El informe final del

proyecto “Caracterización de Recursos Fito Genéticos de Guatemala” fue editado por el

Dr. César Azúrdia y publicado en 1989 (González, 1994). Copias físicas del mismo

pueden obtenerse en ICTA y en la FAUSAC. En 1991, la FAUSAC con fondos de la

Dirección General de Investigaciones de la USAC –DIGI-, desarrolló el proyecto

“Desarrollo de Prácticas Agronómicas para el cultivo de Hortalizas nativas de

Guatemala” (Fernando Rodríguez, 1996).

Desafortunadamente, el esfuerzo hecho en colectar y conservar germoplasma nativo de

Guatemala en la década de los 80, se tradujo ya para el año 1994 en la pérdida irreparable

del germoplasma colectado. Pocos fueron los cultivares desarrollados a partir del mismo.

Sobreviven hoy día, los cultivares de yuca, ‘ICTA, IZABAL’ y de camote, ‘ICTA, SAN

ANTONIO’.

38

II.11. Caracterización agro morfológica del género Capsicum en Guatemala.

Durante la ejecución del proyecto “Búsqueda, Conservación y Caracterización de algunos

cultivos nativos de Guatemala (Azurdia y González, 1986), se colectaron 208 accesiones

del género Capsicum. Con estas accesiones se implementaron al menos cuatro

evaluaciones de caracterización agromorfológica y bromatológica de Capsicum spp. En

todas las evaluaciones se buscó establecer la variabilidad genética dentro de las

accesiones bajo estudio. Dendogramas fueron generados con la información colectada

utilizando los descriptores oficiales del género (IBPGR, 1986) y los mismos permitieron

confirmar botánicamente las especies de Capsicum que estaban presentes en el país. La

caracterización del germoplasma de Capsicum en ese entonces no permitió el incremento

ni el rejuvenecimiento de la semilla de las accesiones y poco, sino nada se hizo en

esfuerzos por usar el germoplasma en procesos de mejora genética localmente. A esa

fecha, la conservación de semillas ortodoxas era en envases plásticos herméticos bajo

condiciones de ambiente en almacenes que únicamente contaban con deshumificadores.

No existía el control de temperatura.

La caracterización morfológica, conducida en varias localidades del país (Azurdia, et al,

1995) mostró la alta variabilidad existente en el germoplasma guatemalteco, pues ningún

carácter observado o medido con el descriptor respectivo resultó constante. Dentro de los

caracteres estudiados, sobresale que el 62% de los materiales cultivados presentan

pedicelo erecto o intermedio, lo que a la par del 83% de estos mismos materiales que

tienen el estigma exserto puede permitir polinización cruzada que ayuda a producir

mayor variabilidad genética. Otro elemento es la posición de los frutos. Mientras que los

materiales cultivados presentan frutos declinados, los materiales silvestres los presentan

erectos.

El contenido nutricional entre cultivares mejorados y silvestres de Capsicum varia

(Molina et al, 1997). Los chiles silvestres presentan mayor contenido de kilocalorías y

fibra cruda y menor contenido de carotenos y ácido ascórbico que chiles mejorados.

Las tesis de grado, de los ingenieros agrónomos que se graduaron con la realización de

los estudios de caracterización morfológica de Capsicum se pueden consultar en los

centros de documentación de la Facultad de Agronomía de la Universidad de San Carlos

de Guatemala, del Instituto de Ciencia y Tecnología Agrícolas –ICTA- y del Colegio de

Ingenieros Agrónomos de Guatemala. Una síntesis de los trabajos realizados puede

obtenerse en “Caracterización de algunos cultivos nativos de Guatemala” (Azurdia et al,

1995).

39

PARTE III.

RESULTADOS

III.1. Discusión de resultados

Para facilidad de entendimiento de esta sección, se presentan los resultados más

relevantes por cada localidad o Fase de estudio y posteriormente se globalizan los

resultados en base a los objetivos específicos de la investigación.

III.1.1. Descriptores ambientales de los sitios de rejuvenecimiento, incremento y

caracterización morfológica de la colección activa de germoplasma de Capsicum:

A cada investigador asociado se le entregó electrónicamente la base de datos que había

que generar en el estudio. A todos se les explicó y dio la inducción necesaria para su

generación. Y aunque se les dio el seguimiento técnico respectivo, fue imposible que

todos generaran la misma información. Esto se aprecia al presentar por Fase, la

información más relevante de cada localidad.

III.1.1.a. Centro de Innovación de Oriente –CIOR-, ICTA, Finca El Oasis,

Estanzuela, Zacapa.

a.1. Topografía:

Esto se refiere a los perfiles en materia de elevación de la superficie del terreno a escala

macro. La referencia es FAO (1990):

3. Poco ondulado: 3 – 05.9 %

a.2. Forma del terreno de mayor nivel (Características fisiográficas generales)

Se refiere a la forma de la superficie de la tierra en la zona en la cual se encuentra el sitio

de rejuvenecimiento, incremento y caracterización del germoplasma de Capsicum:

1. Planicie

a.3. Elementos del suelo y posición

La descripción geomorfológica de los alrededores inmediatos de los sitios de

rejuvenecimiento, incremento y caracterización del germoplasma de Capsicum: Adaptado

de FAO, 1990 (Ver fig. 1. En el descriptor oficial para Capsicum (Capsicum spa.)

IBPGR, AVRDC y CATIE, 1995.

4. Valle

a.4. Pendiente (grados o porcentaje)

Pendiente estimada del sitio: 2-3 %

a.5. Forma de la pendiente

Se refiere a la forma general de la pendiente en ambas direcciones, vertical y horizontal

(FAO, 1990)

1. Recta

a.6. Aspecto de la pendiente

40

La dirección en la que está orientada la pendiente donde se recolecta la información.

Describa la dirección con símbolos N, S, E, O (Por ejemplo: una pendiente orientada a

dirección sudoeste tiene un aspecto SO):

NS.

a.7. Agricultura de cultivos (FAO, 1990)

a.7.1. Cultivos anuales

6. Cultivo bajo riego

a.7.2. Cultivos perennes

2. Cultivos con riego

a.8. Vegetación general en los alrededores y en los sitios (FAO, 1990)

4. Monte (Estrato continuo de árboles, generalmente no se tocan las copas de los

árboles, puede haber estratos de vegetación secundaria)

a.9. Material parental del suelo, FAO 1990:

9. No consolidados (no especificados)

a.10. Tipo de roca:

21. Arcilla calcárea.

a.11. Pedregosidad/ rocosidad/capa dura/ cementación

1. Insuficiente para afectar la labranza

a.12. Drenaje del suelo (Adaptado FAO, 1990:

2. Moderadamente drenado

a.13. Profundidad de la capa freática, FAO, 1990:

5. > 150 cm.

a.14. Calidad del agua freática (FAO, 1990):

2. Salobre

a.15. Humedad del suelo:

5. Ligeramente húmedo.

a.16. Color de la matriz del suelo, según FAO, 1990:

7. Marrón rojizo.

a.17. Contenido de la materia orgánica en el suelo:

5. Medio (como en zonas recientemente cultivadas pero aún no muy agotadas)

a.18. Erosión del suelo:

3. Baja.

41

a.19. Fragmentos de roca > 2 mm de acuerdo con su abundancia, FAO, 1990:

1. 0- 2 %

a.20. Clase de textura del suelo, FAO 1990:

3. Franco arcilloso.

a. 21. Clase según el tamaño de la partícula del suelo, FAO 1990:

1. Arcilla < 2µm

a.22. Clasificación Taxonómica del suelo:

Serie Chicaj, según Simmons, Tirano y Pinto, 1970.

a.23. Disponibilidad de agua:

2. Irrigado

a.24. Fertilidad del suelo basada en la vegetación existente:

5. Moderada.

a.25. Clima del sitio. Se debe registrar tan cerca del sitio como sea posible. El clima de

Zacapa es cálido seco.

1. Temperatura (o C). Temperaturas diurnas: media anual: 28.26º C, Máxima media

Anual: 34.18º C, mínima media anual 20.96º C, media anual del periodo entre el

trasplante y última cosecha: 33.1ºC, 22ºC y 28.6ºC,

respectivamente.

2. Lluvias: 600 mm promedio anual en cinco años (2006-2009).

3. Vientos: 5.7 Km/h, promedio anual en seis años (2006-2010).

a) Frecuencia de huracanes: No existen

4. Humedad relativa diurna (%) del período entre el trasplante y última cosecha:

Máxima 90 % y Mínima 32 %.

a.25. Descripción de las parcelas de rejuvenecimiento, incremento y caracterización por

accesión.

a.25.1. Distancia entre hileras: 1.8 m

a.25.2. Distancia entre plantas sobre la hilera: 0.20 m

a.25.3. Número de plantas por accesión: 50

a.25.4. Dimensiones de la parcela: 10 m de longitud x 1.8 m = 18m2

a.25.5. Número de accesiones a rejuvenecer e incrementar: 273

a.25.6. Distancia de separación entre accesiones sobre la hilera: 0.5 m

a.25.7. Número de plantas caracterizadas por accesión: 10

42

Cuadro 6. Descriptores de rejuvenecimiento y del sitio de caracterización, FASE I,

en ICTA, Finca El Oasis, Estanzuela, Zacapa.

DESCRIPTORES DE

REJUVENECIMIENTO

Número de parcela en el campo

abierto

10C007 al 10C280

Ubicación ICTA-CIOR

Colaborador Hugo Ruano

Riego. Indicar la cantidad, la

frecuencia y el método de aplicación

7.2 L cada tercer día vía goteo

Número de plantas establecidas por

hectárea

27,777

Número de plantas usadas como

fuente de semilla para cada

rejuvenecimiento

20-50

DESCRIPTORES DEL SITIO DE

CARACTERIZACIÓN

País donde se hizo la caracterización Guatemala

Sitio (Instituto de Investigación) ICTA, Finca El Oasis, Estanzuela, Zacapa.

Latitud 14º57´51"

Longitud 89º35´04"

Elevación (m) 210 msnm

Nombre de la granja o instituto ICTA Finca El Oasis, Estanzuela, Zacapa.

Nombre y dirección del evaluador Ing. Héctor Hugo Ruano Solís, ICTA, Oasis,

Estanzuela, Zacapa, Tel: 59629528, 55140360

Fecha de siembra (DDMMAAAA) 02/10/2010

Fecha de Siembra Almacigo 02/10/2011

Modalidad de siembra 1. En Invernadero

Fecha de trasplante 23/11/2010

Fecha de primera cosecha 15/03/2011

Fecha de última cosecha 15/04/2011

Fuente: FODECYT 018-2010

43

Cuadro 7. Número de semillas germinadas de 100 sembradas por accesión de

Capsicum (10C), Fase I, ICTA, Finca El Oasis, Estanzuela, Zacapa.

Accesión

No.

PlantasAccesión

No.

PlantasAccesión

No.

PlantasAccesión

No.

PlantasAccesión

No.

PlantasAccesión

No.

Plantas

10C07 80 10C48 14 10C111 32 10C153 44 10C195 69 10C242 32

10C08 95 10C49 93 10C112 41 10C154 24 10C196 26 10C243 40

10C09 71 10C50 70 10C113 13 10C155 7 10C197 69 10C245 18

10C11 89 10C51 28 10C114 26 10C156 14 10C198 41 10C246 78

10C12 85 10C52 28 10C115 94 10C157 81 10C199 90 10C247 75

10C13 73 10C54 18 10C116 64 10C158 96 10C201 67 10C248 92

10C14 85 10C55 5 10C117 84 10C159 20 10C203 40 10C249 44

10C15 96 10C56 30 10C118 98 10C160 14 10C204 34 10C250 93

10C16 54 10C58 70 10C119 29 10C161 17 10C205 83 10C251 87

10C17 10 10C59 66 10C120 16 10C162 39 10C206 71 10C252 95

10C19 91 10C60 46 10C121 5 10C163 38 10C207 55 10C253 40

10C20 89 10C61 14 10C122 13 10C164 23 10C208 87 10C254 85

10C21 59 10C64 57 10C123 85 10C165 37 10C209 45 10C255 77

10C22 94 10C65 60 10C124 51 10C166 26 10C210 92 10C256 59

10C23 82 10C66 12 10C125 60 10C167 42 10C211 89 10C257 69

10C24 74 10C68 10 10C128 87 10C169 74 10C212 82 10C258 67

10C25 69 10C71 5 10C129 52 10C170 71 10C213 84 10C259 94

10C26 98 10C72 85 10C130 74 10C171 42 10C214 53 10C260 82

10C27 93 10C76 13 10C132 23 10C172 40 10C215 78 10C261 91

10C28 40 10C78 90 10C133 48 10C173 46 10C216 62 10C262 79

10C29 97 10C79 82 10C134 79 10C174 21 10C217 18 10C264 79

10C30 97 10C80 27 10C135 14 10C175 33 10C218 86 10C265 90

10C31 98 10C81 38 10C136 92 10C176 22 10C219 61 10C266 94

10C32 74 10C82 30 10C137 94 10C179 8 10C220 80 10C267 79

10C33 88 10C86 5 10C138 70 10C180 6 10C221 72 10C268 40

10C34 96 10C89 42 10C139 67 10C181 64 10C222 88 10C270 60

10C35 96 10C91 30 10C140 31 10C182 81 10C223 69 10C271 32

10C36 95 10C92 45 10C141 12 10C183 55 10C224 85 10C272 93

10C37 99 10C94 29 10C142 7 10C184 29 10C225 56 10C273 72

10C38 97 10C95 55 10C143 43 10C185 25 10C226 66 10C274 35

10C39 94 10C96 89 10C144 28 10C186 35 10C228 57 10C275 86

10C40 39 10C97 26 10C145 46 10C187 26 10C230 36 10C276 99

10C41 60 10C98 47 10C146 72 10C188 24 10C232 86 10C277 80

10C42 99 10C101 93 10C147 14 10C189 5 10C233 24 10C278 35

10C43 92 10C103 79 10C148 17 10C190 66 10C234 62 10C279 36

10C44 85 10C105 82 10C149 70 10C191 34 10C235 45 10C280 91

10C45 49 10C107 36 10C150 72 10C192 86 10C238 57

10C46 49 10C109 18 10C151 56 10C193 76 10C239 33

10C47 89 10C110 25 10C152 5 10C194 40 10C240 33

Fuente FODECYT

018-2010

44

Cuadro 8. Número de plantas establecidas ocho días después del trasplante para cada

accesión de Capsicum (10C), Fase I, ICTA, El Oasis, Estanzuela, Zacapa.

Accesión

No.

PlantasAccesión

No.

PlantasAccesión

No.

PlantasAccesión

No.

PlantasAccesión

No.

PlantasAccesión

No.

Plantas

10C07 50 10C48 14 10C111 32 10C153 44 10C195 50 10C242 32

10C08 50 10C49 50 10C112 41 10C154 24 10C196 26 10C243 40

10C09 50 10C50 50 10C113 13 10C155 7 10C197 50 10C245 18

10C11 50 10C51 28 10C114 26 10C156 14 10C198 41 10C246 50

10C12 50 10C52 28 10C115 50 10C157 50 10C199 50 10C247 50

10C13 50 10C54 18 10C116 50 10C158 50 10C201 50 10C248 50

10C14 50 10C55 5 10C117 50 10C159 20 10C203 40 10C249 44

10C15 50 10C56 30 10C118 50 10C160 14 10C204 34 10C250 50

10C16 50 10C58 50 10C119 29 10C161 17 10C205 50 10C251 50

10C17 10 10C59 50 10C120 16 10C162 39 10C206 50 10C252 50

10C19 50 10C60 46 10C121 5 10C163 38 10C207 50 10C253 40

10C20 50 10C61 14 10C122 13 10C164 23 10C208 50 10C254 50

10C21 50 10C64 50 10C123 50 10C165 37 10C209 45 10C255 50

10C22 50 10C65 50 10C124 50 10C166 26 10C210 50 10C256 50

10C23 50 10C66 12 10C125 50 10C167 42 10C211 50 10C257 50

10C24 50 10C68 10 10C128 50 10C169 50 10C212 50 10C258 50

10C25 50 10C71 5 10C129 50 10C170 50 10C213 50 10C259 50

10C26 50 10C72 50 10C130 50 10C171 42 10C214 50 10C260 50

10C27 50 10C76 13 10C132 23 10C172 40 10C215 50 10C261 50

10C28 40 10C78 50 10C133 48 10C173 46 10C216 50 10C262 50

10C29 50 10C79 50 10C134 50 10C174 21 10C217 18 10C264 50

10C30 50 10C80 27 10C135 14 10C175 33 10C218 50 10C265 50

10C31 50 10C81 38 10C136 50 10C176 22 10C219 50 10C266 50

10C32 50 10C82 30 10C137 50 10C179 8 10C220 50 10C267 50

10C33 50 10C86 5 10C138 50 10C180 6 10C221 50 10C268 40

10C34 50 10C89 43 10C139 50 10C181 50 10C222 50 10C270 50

10C35 50 10C91 30 10C140 31 10C182 50 10C223 50 10C271 32

10C36 50 10C92 45 10C141 12 10C183 50 10C224 50 10C272 50

10C37 50 10C94 29 10C142 7 10C184 29 10C225 50 10C273 50

10C38 50 10C95 50 10C143 43 10C185 25 10C226 50 10C274 35

10C39 50 10C96 50 10C144 28 10C186 35 10C228 50 10C275 50

10C40 39 10C97 26 10C145 46 10C187 26 10C230 36 10C276 50

10C41 50 10C98 47 10C146 50 10C188 24 10C232 50 10C277 50

10C42 50 10C101 50 10C147 14 10C189 5 10C233 24 10C278 35

10C43 50 10C103 50 10C148 17 10C190 50 10C234 50 10C279 36

10C44 50 10C105 50 10C149 50 10C191 34 10C235 45 10C280 50

10C45 49 10C107 36 10C150 50 10C192 50 10C238 50

10C46 49 10C109 18 10C151 50 10C193 50 10C239 33

10C47 50 10C110 25 10C152 5 10C194 40 10C240 33

Fuente FODECYT

018-2010

45

III.1.1.b. Centro de Innovación del Altiplano-Chimaltenango –CIAL-Chimaltenango,

ICTA, La Alameda, Chimaltenango

b.1. Topografía:

Esto se refiere a los perfiles en materia de elevación de la superficie del terreno a escala

macro. La referencia es FAO (1990):

2. Casi plano: 0.6 –2.9 %

b.2. Forma del terreno de mayor nivel (Características fisiográficas generales)

Se refiere a la forma de la superficie de la tierra en la zona en la cual se encuentra el sitio

de rejuvenecimiento, incremento y caracterización del germoplasma de Capsicum:

1. Planicie

b.3. Elementos del suelo y posición

La descripción geomorfológica de los alrededores inmediatos de los sitios de

rejuvenecimiento, incremento y caracterización del germoplasma de Capsicum: Adaptado

de FAO, 1990 (Ver fig. 1. En el descriptor oficial para Capsicum (Capsicum spp.)

IBPGR, AVRDC y CATIE, 1995.

4. Valle

b.4. Pendiente (grados o porcentaje)

Pendiente estimada del sitio: 1-3 %

b.5. Forma de la pendiente

Se refiere a la forma general de la pendiente en ambas direcciones, vertical y horizontal

(FAO, 1990)

1. Recta

b.6. Aspecto de la pendiente

La dirección en la que está orientada la pendiente donde se recolecta la información.

Describa la dirección con símbolos N, S, E, O (Por ejemplo: una pendiente orientada a

dirección sudoeste tiene un aspecto SO):

NO.

b.7. Agricultura de cultivos (FAO, 1990) b

7.1. Cultivos anuales

2. Sistema de Cultivo con barbecho

b..8. Vegetación general en los alrededores y en los sitios (FAO, 1990)

3. Bosque en la parte Sur Este (Estrato continuo de árboles. Traslape de copas de

los árboles).

b.9. Material parental del suelo, FAO 1990:

16: Intemperizado in situ.

b.10. Pedregosidad/ rocosidad/capa dura/ cementación

46

1. Insuficiente para afectar la labranza

b.11. Drenaje del suelo (Adaptado FAO, 1990:

7. Bien drenado

b.12. Profundidad de la capa freática, FAO, 1990:

5: > 150 cm.

b.13. Calidad del agua freática (FAO, 1990):

3. Fresca.

b.14. Humedad del suelo:

7: Húmedo

b.15. Color de la matriz del suelo, según FAO, 1990:

13. Grisáceo.

b.16. Contenido de la materia orgánica en el suelo:

3: Baja.

b.17. Erosión del suelo:

3: Baja.

b.18. Fragmentos de roca > 2 mm de acuerdo con su abundancia, FAO, 1990:

1: 0-2 %.

b.19. Clase de textura del suelo, FAO 1990:

9: Suelo franco areno arcilloso.

b. 20. Clase según el tamaño de la partícula del suelo, FAO 1990:

4: Arena muy fina, 64-125µm

b.21. Disponibilidad de agua:

1: Lluvioso.

b.22. Fertilidad del suelo basada en la vegetación existente:

5: Moderamente drenado.

b.23. Clima del sitio. Se debe registrar tan cerca del sitio como sea posible. El clima de

Chimaltenango es de templado a frio semihúmedo.

1. Temperatura (o C). Temperatura máxima media anual: 18.76º C, Temperatura mínima

media anual 12.1º C, Temperatura Máxima absoluta 26.68º C, Temperatura Mínima

absoluta 2.68º C.

2. Lluvias: 1103 mm promedio anual en cinco años (2006-2010).

47

3. Vientos: 5.4 Km/h, promedio anual en cinco años (2006-2010).

a) Frecuencia de huracanes: No existen

b.24 Descripción de las parcelas de rejuvenecimiento, incremento y caracterización por

accesión o morfotipo en casa malla, estructura protegida y sistema hidropónico con

sustrato de piedra volcánica.

b.24.1. Distancia entre hileras de plantas: 1.0 m

b.24.2. Distancia entre plantas sobre la hilera: 0.20 m

b.24.3. Número de plantas por morfotipo: al menos 20.

b.24.4. Dimensiones de la parcela: 4 m de longitud x 1 m = 4 m2

b.24.5. Número de morfotipos a rejuvenecer: 32

b.24.7. Número de plantas caracterizadas por accesión: al menos 10

Cuadro 9. Descriptores para el rejuvenecimiento y del sitio de Caracterización, FASE

II en ICTA, Finca La Alameda, Chimaltenango.

DESCRIPTORES DE

REJUVENECIMIENTO

Número de parcela en módulo hidropónico 11C01 al 11C32

Ubicación ICTA-CIAL CHIMALTENANGO

Colaborador Luis Américo Márquez

Riego. Indicar la cantidad, la frecuencia y el

método de aplicación

7.2 L cada tercer día vía hidropónica

Número de plantas usadas como fuente de semilla

para cada rejuvenecimiento

10-20

DESCRIPTORES DEL SITIO DE

CARACTERIZACIÓN

País donde se hizo la caracterización Guatemala

Sitio (Instituto de Investigación) ICTA, Finca La Alameda, Chimaltenango

Latitud N 14 39 38

Longitud O 90 49 10

Elevación (m) 1,800 msnm

Nombre de la granja o instituto ICTA, Finca La Alameda, Chimaltenango.

Nombre y dirección del evaluador Ing. Luis Américo Márquez, ICTA, La Alameda,

Chimaltenango Tel: 4324 7087

Fecha de Siembra Almacigo 03/03/2011

Modalidad de siembra 1. En invernadero

Fecha de trasplante 18/04/2011

Fecha de primera cosecha 30/06/2011

Fecha de última cosecha 15/02/2012

Fuente: FODECYT 018-2010

48

III.1.1.c. Centro de Innovación del Norte –CINOR-, ICTA, San Jerónimo, Baja

Verapaz.

c.1. Topografía:

Esto se refiere a los perfiles en materia de elevación de la superficie del terreno a escala

macro. La referencia es FAO (1990):

3. Poco ondulado: 3 – 05.9 %

c.2. Forma del terreno de mayor nivel (Características fisiográficas generales)

Se refiere a la forma de la superficie de la tierra en la zona en la cual se encuentra el sitio

de rejuvenecimiento, incremento y caracterización del germoplasma de Capsicum:

1. Planicie

c.3. Elementos del suelo y posición

La descripción geomorfológica de los alrededores inmediatos de los sitios de

rejuvenecimiento, incremento y caracterización del germoplasma de Capsicum: Adaptado

de FAO, 1990 (Ver fig. 1. En el descriptor oficial para Capsicum (Capsicum spa.)

IBPGR, AVRDC y CATIE, 1995.

4. Valle

c.4. Pendiente (grados o porcentaje)

Pendiente estimada del sitio: 2-3 %

c.5. Forma de la pendiente

Se refiere a la forma general de la pendiente en ambas direcciones, vertical y horizontal

(FAO, 1990)

1. Recta

c.6. Aspecto de la pendiente

La dirección en la que está orientada la pendiente donde se recolecta la información.

Describa la dirección con símbolos N, S, E, O (Por ejemplo: una pendiente orientada a

dirección sudoeste tiene un aspecto SO):

NS.

c.7. Agricultura de cultivos (FAO, 1990)

c.7.1. Cultivos anuales

6. Cultivo bajo riego

c.7.2. Cultivos perennes

2. Cultivos bajo riego

c.8. Vegetación general en los alrededores y en los sitios (FAO, 1990)

4. Monte (Estrato continuo de árboles, generalmente no se tocan las copas de los

árboles, puede haber estratos de vegetación secundaria)

c.9. Material parental del suelo, FAO 1990:

49

9. No consolidados (No especificados)

c.10. Tipo de roca:

39. Desconocido.

c.11. Pedregosidad/ rocosidad/capa dura/ cementación

1. Insuficiente para afectar la labranza

c.12. Drenaje del suelo (Adaptado FAO, 1990:

2. Moderadamente drenado

c.13. Profundidad de la capa freática, FAO, 1990:

5. > 150 cm

c.15. Calidad del agua freática (FAO, 1990):

2. Salobre

c.16. Humedad del suelo:

5. Ligeramente húmedo.

c.17. Color de la matriz del suelo, según FAO, 1990:

8. Marrón amarillento.

c.18. Contenido de la materia orgánica en el suelo:

5. Medio.

c.19. Erosión del suelo:

3. Baja.

c.20. Fragmentos de roca > 2 mm de acuerdo con su abundancia, FAO, 1990:

2. 2.1- 5%

c.21. Clase de textura del suelo, FAO 1990:

10. Suelo franco arenoso

c. 22. Clase según el tamaño de la partícula del suelo, FAO 1990:

6. Arena mediana: 201-630µm

c.23. Disponibilidad de agua:

2. Irrigado

c.24. Fertilidad del suelo basada en la vegetación existente:

3. Baja.

50

c.25. Clima del sitio. Se debe registrar tan cerca del sitio como sea posible. El clima de

San Jerónimo es cálido semi seco.

1. Temperatura (o C). Temperaturas media anual 21.36º C, Temperatura máxima 29.32º

C, Temperatura mínima15.16º C, Temperatura máxima absoluta 36.16º C, Temperatura

mínima absoluta 5.64º C.

2. Lluvias: 1258 mm promedio anual en seis años (2006-2010).

3. Vientos: 4.9 Km/h, promedio anual en seis años (2006-2010).

a) Frecuencia de huracanes: No existen

4. Humedad relativa diurna media anual 71.6 %

c.26 Descripción de las parcelas de rejuvenecimiento, incremento y caracterización por

accesión.

c.26.1. Distancia entre hileras: 1.8 m

c.26.2. Distancia entre plantas sobre la hilera: 0.20 m

c.26.3. Número de plantas por accesión: 50

c.26.4. Dimensiones de la parcela: 10 m de longitud x 1.8 m = 18m2

c.26.5. Número de accesiones o morfotipos a rejuvenecer e incrementar: 191

c.26.6. Distancia de separación entre morfotipos sobre la hilera: 0.5 m

c.26.7. Número de plantas caracterizadas por morfotipo: 10.

51

Cuadro 10. Descriptores del rejuvenecimiento y del sitio de Caracterización FASE III

en ICTA, Finca San Jerónimo, San Jerónimo, Baja Verapaz.

DESCRIPTORES DE

REJUVENECIMIENTO

Número de parcela en el campo

abierto

11C033 al 11C223

Ubicación ICTA-CINOR

Colaborador Eduardo Landaverri

Riego. Indicar la cantidad, la

frecuencia y el método de aplicación

Cada tercer día vía goteo

Número de plantas establecidas por

hectárea

27,777

Número de plantas usadas como

fuente de semilla para cada

rejuvenecimiento

20-50

DESCRIPTORES DEL SITIO DE

CARACTERIZACIÓN

País donde se hizo la caracterización Guatemala

Sitio (Instituto de Investigación) ICTA, Finca San Jerónimo, San Jerónimo, Baja

Verapaz.

Latitud N 15º 03´40”

Longitud O 90º 15´00”

Elevación (m) 1000 msnm

Nombre de la granja o instituto ICTA Finca San Jerónimo, San Jerónimo, Baja

Verapaz.

Nombre y dirección del evaluador Técnico Hortícola Eduardo Landaverri, ICTA,

Finca San Jerónimo, Baja Verapaz, Tel: 7940

2903

Fecha de Siembra Almacigo 24 y 29 de 06/2011

Modalidad de siembra 1. En invernadero o casa malla

Fecha de trasplante 5 y 2 de o8/ 2011

Fecha de primera cosecha NO SE COSECHÓ

Fecha de última cosecha NO SE COSECHÓ

Fuente: FODECYT 018-2010

52

Cuadro 11. Número de semillas germinadas de 100 sembradas por accesión de

Capsicum (11C), ICTA, San Jerónimo, Baja Verapaz

AccesiónNo.

SemillasAccesión

No.

SemillasAccesión

No.

SemillasAccesión

No.

SemillasAccesión

No.

Semillas

11C33 24 11C72 27 11C111 0 11C150 12 11C189 70

11C34 8 11C73 41 11C112 21 11C151 87 11C190 68

11C35 35 11C74 8 11C113 0 11C152 7 11C191 0

11C36 0 11C75 72 11C114 50 11C153 40 11C192 90

11C37 78 11C76 18 11C115 16 11C154 53 11C193 63

11C38 54 11C77 90 11C116 0 11C155 0 11C194 10

11C39 95 11C78 0 11C117 62 11C156 13 11C195 42

11C40 82 11C79 0 11C118 0 11C157 27 11C196 28

11C41 90 11C80 39 11C119 99 11C158 55 11C197 79

11C42 90 11C81 10 11C120 0 11C159 0 11C198 7

11C43 84 11C82 21 11C121 0 11C160 8 11C199 83

11C44 66 11C83 38 11C122 23 11C161 14 11C200 50

11C45 0 11C84 37 11C123 30 11C162 20 11C201 0

11C46 87 11C85 7 11C124 68 11C163 0 11C202 2

11C47 31 11C86 34 11C125 58 11C164 8 11C203 80

11C48 0 11C87 60 11C126 54 11C165 95 11C204 12

11C49 53 11C88 0 11C127 90 11C166 60 |11C205 53

11C50 0 11C89 36 11C128 66 11C167 77 11C206 27

11C51 30 11C90 74 11C129 60 11C168 55 11C207 0

11C52 0 11C91 72 11C130 28 11C169 0 11C208 0

11C53 0 11C92 44 11C131 73 11C170 59 11C209 24

11C54 0 11C93 0 11C132 42 11C171 75 11C210 0

11C55 99 11C94 0 11C133 43 11C172 79 11C211 13

11C56 76 11C95 16 11C134 90 11C173 89 11C212 50

11C57 22 11C96 61 11C135 67 11C174 75 11C213 0

11C58 34 11C97 82 11C136 51 11C175 76 11C214 6

11C59 71 11C98 20 11C137 4 11C176 64 11C215 21

11C60 12 11C99 64 11C138 55 11C177 0 11C216 9

11C61 86 11C100 59 11C139 90 11C178 52 11C217 37

11C62 23 11C101 24 11C140 69 11C179 81 11C218 11

11C63 25 11C102 31 11C141 24 11C180 92 11C219 30

11C64 33 11C103 5 11C142 57 11C181 21 11C220 64

11C65 23 11C104 0 11C143 63 11C182 48 11C221 21

11C66 46 11C105 0 11C144 73 11C183 55 11C222 100

11C67 58 11C106 0 11C145 28 11C184 50 11C223 61

11C68 46 11C107 0 11C146 84 11C185 50

11C69 20 11C108 0 11C147 0 11C186 65

11C70 52 11C109 0 11C148 69 11C187 84

11C71 75 11C110 25 11C149 0 11C188 22

Fuente FODECYT

18-2010

53

Cuadro 12. Número de plantas establecidas ocho días después del trasplante para cada

accesión de Capsicum (11C), Fase III, ICTA, San Jerónimo, Baja Verapaz

AccesiónNo.

PlantasAccesión

No.

PlantasAccesión

No.

PlantasAccesión

No.

PlantasAccesión

No.

Plantas

11C33 24 11C70 50 11C115 16 11C153 40 11C190 50

11C34 8 11C71 50 11C117 50 11C154 50 11C192 50

11C35 35 11C72 27 11C119 50 11C156 13 11C193 50

11C37 50 11C73 41 11C122 23 11C157 27 11C194 10

11C38 50 11C74 8 11C123 50 11C158 50 11C195 42

11C39 50 11C75 50 11C124 50 11C160 8 11C196 28

11C40 50 11C76 18 11C125 50 11C161 14 11C197 50

11C41 50 11C77 50 11C126 50 11C162 20 11C198 7

11C42 50 11C80 39 11C127 50 11C164 8 11C199 50

11C43 50 11C81 10 11C128 50 11C165 50 11C200 50

11C44 50 11C82 21 11C129 50 11C166 50 11C202 2

11C46 50 11C83 38 11C130 28 11C167 50 11C203 50

11C47 31 11C84 37 11C131 50 11C168 50 11C204 12

11C48 50 11C85 7 11C132 42 11C170 50 11C205 50

11C49 50 11C86 34 11C133 43 11C171 50 11C206 27

11C50 50 11C87 50 11C134 50 11C172 50 11C209 24

11C51 30 11C89 36 11C135 50 11C173 50 11C211 13

11C55 50 11C90 50 11C136 50 11C174 50 11C212 50

11C56 50 11C91 50 11C137 4 11C175 50 11C214 6

11C57 22 11C92 44 11C138 50 11C176 50 11C215 21

11C58 34 11C95 16 11C139 50 11C178 50 11C216 9

11C59 50 11C96 50 11C140 50 11C179 50 11C217 37

11C60 12 11C97 50 11C141 24 11C180 50 11C218 11

11C61 50 11C98 20 11C142 50 11C181 21 11C219 30

11C62 23 11C99 50 11C143 50 11C182 50 11C220 50

11C63 25 11C100 50 11C144 50 11C183 50 11C221 21

11C64 33 11C101 24 11C145 28 11C184 50 11C222 50

11C65 23 11C102 31 11C146 50 11C185 34 11C223 50

11C66 46 11C103 5 11C148 50 11C186 50

11C67 50 11C110 25 11C150 12 11C187 50

11C68 46 11C112 21 11C151 50 11C188 22

11C69 20 11C114 50 11C152 7 11C189 50 Fuente: FODECYT 018-2010

La mayoría de morfotipos de chiles se adaptan y establecen bien en condiciones de

estación cálida. Requieren de condiciones de crecimiento similares al tomate y la

berenjena. Se comportan bien en lugares libres de heladas para producir buena calidad

de frutos y altos rendimientos. Los chiles crecen pobremente en temperaturas que estén

en un rango de 5 -15º C. Para asegurar un buen establecimiento del cultivo y adecuados

rendimientos, la germinación de las semillas debe darse entre los 24 – 30º C. Los

rendimientos altos resultan cuando la temperatura diaria del día oscila entre los 18 – 32º

54

C. Generalmente, cuando las temperaturas diarias diurnas son inferiores a 15º C, el

crecimiento de las plantas se retarda ostensiblemente.

Por otro lado, como en la mayoría de los cultivos, el suelo ideal para producir chiles, es

uno que se describe como profundo, bien drenado, textura media franco areno arcilloso,

que conserve humedad y tenga algo de materia orgánica.

III.1.2. Integración de los resultados obtenidos de acuerdo con los objetivos

específicos de la investigación.

La presentación de los resultados generales se inicia con un resumen de lo acontecido con

los morfotipos o accesiones de chile que se sembraron en las diferentes localidades.

Cada localidad tuvo sus particularidades en el proceso. Pero, la localidad de San

Jerónimo, Fase III (May – Dic 2011), afrontó situaciones que se pueden atribuir a la

viabilidad y al vigor de la semilla de las accesiones, así como a problemas ajenos a la

buena voluntad del investigador asociado. En San Jerónimo las condiciones extremas del

clima obligaron a la suspensión del estudio. Acá la Depresión Tropical E 12, por exceso

de lluvia causó la inundación del sitio experimental por más de 72 horas y los vientos

huracanados causaron la caída de flores en antesis de la mayoría de las accesiones. La

Fase III fue imposible de volverse a repetir por la poca disponibilidad de recursos

remanentes. Prácticamente quedaba pendiente de la fase reproductiva de las accesiones:

la formación de frutos, su madurez fisiológica para cosecha, extracción de semilla, su

secado y envasado. El proceso de caracterización morfológica de estas accesiones ya no

era representativo de las mismas.

Cuadro 13. Accesiones de chile sembradas, germinadas y establecidas en FASES I, II y

III y otros datos.

Actividades Fase I,

Zacapa

Fase II,

Chimaltenango

Fase III, San

Jerónimo

Total

Accesiones sembradas en almacigo

o semillero

273 32 191 496

Accesiones que germinaron en

almacigo

224 29 154 407

Accesiones establecidas en campo

abierto o en hidroponía

224 29 153 406

Accesiones rejuvenecidas 224 29 0 253

Accesiones caracterizadas

morfológicamente

224 23 0 243

Accesiones con más de 100

gramos de semilla

52 22 0 74

Fuente: FODECYT 018-2010

Al revisar las metas de cada objetivo propuesto en el estudio se puede decir que el 51%

de las accesiones del germoplasma de Capsicum de la colección activa que se

establecieron en campo abierto o en hidroponía, fue REJUVENECIDO. Hoy se cuenta

55

con 253 accesiones rejuvenecidas, con porcentajes de germinación que oscilan entre un

22 a un 100 %, ideales para a) su conservación a mediano plazo en cámara fría a 5º C y

40 % de Humedad Relativa si tienen porcentajes de germinación superiores al 70% y b)

para su conservación como colección activa bajo las mismas condiciones del banco

(Porcentajes de germinación inferiores a 70%), pero ésta colección activa será muy útil si

inmediatamente se utiliza para realizar evaluaciones de pre mejoramiento orientadas a b-

1) rendimientos potenciales y características de calidad, b-2) Susceptibilidad al estrés

abiótico, b-3) Susceptibilidad al estrés biológico, b-4) Marcadores bioquímicos, b-5)

Marcadores moleculares entre otras investigaciones, b-6) Intercambio regulado de

germoplasma y b-7) nuevos incrementos y rejuvenecimiento de accesiones con menos de

10 gramos de semilla.

56

Cuadro 14. Peso en gramos y % de germinación de las accesiones de Capsicum (ID

= 10C) rejuvenecidas en las FASES I y II y su potencial destino de

conservación.

ID Peso

en g

% de

Germinación

Localidad de

ICTA

A colección de

mediano plazo

A

colección

activa

10C007 152.20 61 Zacapa X X

10C008 185.48 80 Zacapa X X

10C009 11.34 65 Zacapa X

10C011 5.92 . Zacapa X

10C012 7.26 . Zacapa X

10C013 5.85 . Zacapa X

10C014 5.89 . Zacapa X

10C015 16.07 75 Zacapa X

10C016 10.69 15 Zacapa X

10C017 11.32 73 Zacapa X

10C019 31.27 41 Zacapa X

10C020 64.30 . Zacapa X

10C021 10.92 96 Zacapa X

10C022 6.54 . Zacapa X

10C023 19.05 16 Zacapa X

10C024 6.43 . Zacapa X

10C025 6.22 77 Zacapa X

10C026 102.75 51 Zacapa X X

10C027 177.31 64 Zacapa X X

10C028 3.95 . Zacapa X

10C029 59.03 76 Zacapa X

10C030 154.48 60 Zacapa X X

10C031 85.12 63 Zacapa X

10C032 73.02 3 Zacapa X

10C033 248.06 60 Zacapa X X

10C034 291.12 0 Zacapa X X

10C035 14.45 81 Zacapa X

10C036 188.07 64 Zacapa X X

10C038 34.02 43 Zacapa X

10C039 127.48 77 Zacapa X X

10C040 268.68 87 Zacapa X X

10C041 14.05 0 Zacapa X

10C042 15.00 . Zacapa X

10C043 31.11 61 Zacapa X

10C044 44.00 79 Zacapa X

10C045 158.10 56 Zacapa X X

10C046 125.07 89 Zacapa X X

57

ID Peso

en g

% de

Germinación

Localidad de

ICTA

A colección de

mediano plazo

A

colección

activa

10C047 101.55 44 Zacapa X X

10C048 31.99 28 Zacapa X

10C049 101.92 64 Zacapa X X

10C050 346.17 83 Zacapa X X

10C051 35.11 53 Zacapa X

10C052 72.27 0 Zacapa X

10C054 14.12 39 Zacapa X

10C055 137.34 37 Zacapa X X

10C056 161.67 73 Zacapa X X

10C058 105.07 57 Zacapa X X

10C059 6.63 . Zacapa X

10C060 33.84 80 Zacapa X

10C061 36.13 67 Zacapa X

10C065 34.90 8 Zacapa X

10C066 14.39 91 Zacapa X

10C068 54.67 69 Zacapa X

10C071 40.06 59 Zacapa X

10C072 57.81 81 Zacapa X

10C076 120.67 89 Zacapa X X

10C078 55.02 83 Zacapa X

10C079 72.22 31 Zacapa X

10C080 46.06 76 Zacapa X

10C081 40.33 87 Zacapa X

10C082 310.23 77 Zacapa X X

10C086 25.72 79 Zacapa X

10C089 41.87 81 Zacapa X

10C091 62.76 80 Zacapa X

10C092 107.12 56 Zacapa X X

10C094 88.50 71 Zacapa X

10C095 44.02 61 Zacapa X

10C096 45.45 . Zacapa X

10C097 34.26 83 Zacapa X

10C098 359.17 93 Zacapa X X

10C101 80.37 89 Zacapa X

10C103 286.57 0 Zacapa X X

10C105 31.91 69 Zacapa X

10C107 420.79 85 Zacapa X X

10C109 159.63 56 Zacapa X X

10C110 42.25 52 Zacapa X

10C111 510.48 76 Zacapa X X

…Cuadro 14. Peso en gramos y % de germinación de las accesiones de Capsicum (ID= 10C) rejuvenecidas en las FASES I y II y su potencial destino de conservación.

58

ID Peso

en g

% de

Germinación

Localidad de

ICTA

A colección de

mediano plazo

A

colección

activa

10C112 397.33 67 Zacapa X X

10C113 96.27 72 Zacapa X

10C114 93.90 49 Zacapa X

10C115 91.72 . Zacapa X

10C116 13.60 67 Zacapa X

10C117 56.15 81 Zacapa X

10C118 30.96 19 Zacapa X

10C119 64.58 1 Zacapa X

10C120 64.59 49 Zacapa X

10C121 19.70 87 Zacapa X

10C122 126.52 97 Zacapa X X

10C123 142.27 67 Zacapa X X

10C124 72.17 81 Zacapa X

10C125 38.16 28 Zacapa X

10C128 28.84 77 Zacapa X

10C129 16.58 100 Zacapa X

10C130 63.25 61 Zacapa X

10C132 62.47 20 Zacapa X

10C133 49.45 67 Zacapa X

10C134 74.12 . Zacapa X

10C135 236.12 3 Zacapa X X

10C136 33.46 93 Zacapa X

10C137 45.56 100 Zacapa X

10C138 67.01 7 Zacapa X

10C139 649.84 96 Zacapa X X

10C141 38.24 3 Zacapa X

10C142 42.05 43 Zacapa X

10C144 63.04 100 Zacapa X

10C145 36.06 64 Zacapa X

10C146 12.67 87 Zacapa X

10C147 68.97 12 Zacapa X

10C148 38.95 . Zacapa X

10C149 38.47 59 Zacapa X

10C150 72.90 32 Zacapa X

10C151 33.44 92 Zacapa X

10C152 77.72 1 Zacapa X

10C153 23.62 100 Zacapa X

10C154 70.85 0 Zacapa X

10C155 100.80 8 Zacapa X

10C156 63.72 100 Zacapa X

…Cuadro 14. Peso en gramos y % de germinación de las accesiones de Capsicum (ID= 10C) rejuvenecidas en las FASES I y II y su potencial destino de conservación.

59

ID Peso

en g

% de

Germinación

Localidad de

ICTA

A colección de

mediano plazo

A

colección

activa

10C157 202.32 37 Zacapa X X

10C158 5.07 . Zacapa X

10C159 27.96 0 Zacapa X

10C160 57.08 61 Zacapa X

10C161 26.39 1 Zacapa X

10C162 74.58 48 Zacapa X

10C164 61.00 76 Zacapa X

10C165 27.80 45 Zacapa X

10C166 183.35 71 Zacapa X X

10C167 21.46 67 Zacapa X

10C169 189.23 92 Zacapa X X

10C170 404.75 85 Zacapa X X

10C171 44.92 0 Zacapa X

10C172 73.60 . Zacapa X

10C173 106.02 0 Zacapa X X

10C174 35.84 55 Zacapa X

10C175 8.91 11 Zacapa X

10C176 15.16 77 Zacapa X

10C179 27.94 95 Zacapa X

10C180 55.27 100 Zacapa X

10C181 40.93 83 Zacapa X

10C182 20.95 9 Zacapa X

10C183 15.64 15 Zacapa X

10C184 14.19 73 Zacapa X

10C185 5.67 . Zacapa X

10C186 105.76 89 Zacapa X X

10C187 31.12 32 Zacapa X

10C188 27.75 0 Zacapa X

10C189 4.09 . Zacapa X

10C190 32.07 12 Zacapa X

10C191 61.42 4 Zacapa X

10C192 252.32 69 Zacapa X X

10C194 57.52 . Zacapa X

10C195 54.37 17 Zacapa X

10C196 5.92 . Zacapa X

10C197 35.72 48 Zacapa X

10C198 28.52 76 Zacapa X

10C199 23.53 65 Zacapa X

10C201 67.53 57 Zacapa X

10C202 7.27 61 Zacapa X

…Cuadro 14. Peso en gramos y % de germinación de las accesiones de Capsicum (ID= 10C) rejuvenecidas en las FASES I y II y su potencial destino de conservación.

60

ID Peso

en g

% de

Germinación

Localidad de

ICTA

A colección de

mediano plazo

A

colección

activa

10C203 58.16 80 Zacapa X

10C204 13.42 71 Zacapa X

10C205 119.37 100 Zacapa X X

10C206 30.77 . Zacapa X

10C207 78.09 0 Zacapa X

10C208 109.38 1 Zacapa X X

10C209 61.62 67 Zacapa X

10C210 110.50 1 Zacapa X X

10C211 54.42 100 Zacapa X

10C212 114.78 81 Zacapa X X

10C213 12.57 61 Zacapa X

10C215 5.45 . Zacapa X

10C216 3.97 . Zacapa X

10C217 5.02 . Zacapa X

10C218 5.27 . Zacapa X

10C219 4.56 . Zacapa X

10C220 7.64 . Zacapa X

10C221 6.04 . Zacapa X

10C222 8.30 . Zacapa X

10C223 4.46 . Zacapa X

10C224 3.92 . Zacapa X

10C225 5.50 . Zacapa X

10C226 6.82 . Zacapa X

10C228 17.32 57 Zacapa X

10C230 310.32 77 Zacapa X X

10C232 110.84 71 Zacapa X X

10C233 71.12 27 Zacapa X

10C234 6.05 85 Zacapa X

10C235 124.93 87 Zacapa X X

10C238 29.62 . Zacapa X

10C239 113.07 3 Zacapa X X

10C240 12.71 . Zacapa X

10C242 35.32 5 Zacapa X

10C243 77.92 77 Zacapa X

10C245 22.47 79 Zacapa X

10C247 183.22 . Zacapa X X

10C249 83.92 92 Zacapa X

10C250 29.73 80 Zacapa X

10C251 99.14 1 Zacapa X

10C252 32.09 . Zacapa X

…Cuadro 14. Peso en gramos y % de germinación de las accesiones de Capsicum (ID= 10C) rejuvenecidas en las FASES I y II y su potencial destino de conservación.

61

ID Peso

en g

% de

Germinación

Localidad de

ICTA

A colección de

mediano plazo

A

colección

activa

10C253 268.03 0 Zacapa X X

10C254 62.67 . Zacapa X

10C255 1.27 . Zacapa X

10C256 81.87 83 Zacapa X

10C257 20.32 81 Zacapa X

10C258 39.08 87 Zacapa X

10C259 63.44 84 Zacapa X

10C260 43.76 0 Zacapa X

10C261 54.85 21 Zacapa X

10C262 87.02 65 Zacapa X

10C264 175.78 89 Zacapa X X

10C265 90.25 23 Zacapa X

10C267 88.32 3 Zacapa X

10C268 36.30 0 Zacapa X

10C270 60.71 76 Zacapa X

10C272 74.56 68 Zacapa X

10C273 23.09 100 Zacapa X

10C274 55.62 . Zacapa X

10C275 330.44 92 Zacapa X X

10C276 111.30 65 Zacapa X X

10C277 63.85 52 Zacapa X

10C278 67.97 100 Zacapa X

10C279 36.96 . Zacapa X

10C280 86.42 100 Zacapa X

11C01 90 86 Chimaltenango X

11C03 23.2 76 Chimaltenango X

11C04 6.2 80 Chimaltenango X

11C05

Rojo

148.7 74 Chimaltenango X X

11C05

Amarillo

16.7 . Chimaltenango X

11C06 52.2 86 Chimaltenango X

11C08 230.2 68 Chimaltenango X X

11C09

Rojo

221.7 82 Chimaltenango X X

11C09

Amarillo

21.7 . Chimaltenango X

11C10

Amarillo

262.7 90 Chimaltenango X X

11C10

Rojo

6.2 Chimaltenango X

…Cuadro 14. Peso en gramos y % de germinación de las accesiones de Capsicum (ID= 10C) rejuvenecidas en las FASES I y II y su potencial destino de conservación.

62

ID Peso

en g

% de

Germinación

Localidad de

ICTA

A colección de

mediano plazo

A

colección

activa

11C11 181.2 86 Chimaltenango X X

11C12

Rojo

14.7 . Chimaltenango X

11C12

Amarillo

28.2 96 Chimaltenango X

11C13 74.2 86 Chimaltenango X

11C14 475.2 78 Chimaltenango X X

11C16

Amarillo

154.7 74 Chimaltenango X X

11C16

Rojo

61.7 . Chimaltenango X

11C17 269.2 72 Chimaltenango X X

11C18

Rojo

152.2 . Chimaltenango X X

11C18

Amarillo

203.2 84 Chimaltenango X X

11C19 336.2 84 Chimaltenango X X

11C20 322.2 88 Chimaltenango X X

11C21 390.2 88 Chimaltenango X X

11C22

Rojo

183.7 92 Chimaltenango X X

11C22

Amarillo

58.2 . Chimaltenango X

11C23 332.7 78 Chimaltenango X X

11C24

Rojo

198.2 90 Chimaltenango X X

11C24

Amarillo

194.7 . Chimaltenango X X

11C25 19.7 90 Chimaltenango X

11C26 229.2 78 Chimaltenango X X

11C27 390.2 76 Chimaltenango X X

11C28 385.7 74 Chimaltenango X X

11C29 328.2 80 Chimaltenango X X

11C30 220.2 90 Chimaltenango X X

11C31 372.2 22 Chimaltenango X X

11C32 191.7 74 Chimaltenango X X

Fuente: FODECYT 018-2010.

A las accesiones de chile con menos de 7 gramos de semilla, que se produjeron de ICTA,

Zacapa, intencionalmente no se les determinó su % de germinación. Estas accesiones y 7

gramos de cada una del resto de las accesiones de chile de la Fase I fueron enviadas a la

…Cuadro 14. Peso en gramos y % de germinación de las accesiones de Capsicum (ID= 10C) rejuvenecidas en las FASES I y II y su potencial destino de conservación.

63

Unidad de Recursos Fitogenéticos del Departamento de Agricultura de los Estados

Unidos de América –USDA- para su conservación a largo plazo. A cambio, el USDA

proporcionó al ICTA, el software GRIN-GLOBAL para la documentación de la

información generada en el género Capsicum. Con este software ICTA podrá poner al

alcance de la comunidad científica mundial la información que sobre los géneros de

especies vegetales como Zea, Phaseolus, Lycopersicom y otros, ha generado en los

últimos años.

La mayoría de morfotipos de chile se consideran autógamos. Sin embargo, las tasas de

polinización abierta se han estimado entre 2 y 90 % en diferentes especies de Capsicum.

Por esto, algunos técnicos consideran que el chile es una especie de polinización cruzada

facultativa. La polinización cruzada en chiles está asociada a insectos polinizadores y no

al viento o a la lluvia. En el proceso de regeneración de semilla por autogamia, se

garantiza la conservación de la pureza genética de la variabilidad existente en las

accesiones. Aunque se corre el riesgo que aquellas, accesiones de polinización cruzada,

no produzcan suficiente semilla. Este efecto de la polinización, fue claramente observada

en la Fase I. Las accesiones de mayor producción de semillas son materiales más

domesticados y por ende autógamos. Mientras que las accesiones que produjeron menos

semilla son materiales menos domesticados y por ende alógamos.

El germoplasma de Capsicum de la colección activa se incrementó en por lo menos 5

gramos de semilla por accesión. Esto permitirá crear la colección de germoplasma de

Capsicum de mediano plazo de Guatemala. Es de importante hacer la salvedad de que el

porcentaje de germinación requerido por las normas internacionales de los Bancos de

Germoplasma no se alcanzó en todos los morfotipos de chile.

Cuadro 15. Accesiones de Capsicum (ID =10C) que deberían pasar a formar parte de

la colección a mediano plazo de ICTA

No. ID Peso en g % de Germinación

1 10C008 185.48 80

2 10C015 16.07 75

3 10C017 11.32 73

4 10C021 10.92 96

5 10C025 6.22 77

6 10C029 59.03 76

7 10C035 14.45 81

8 10C039 127.48 77

9 10C040 268.68 87

10 10C044 44.00 88

11 10C046 125.07 89

12 10C050 346.17 83

13 10C056 161.67 73

14 10C060 33.84 80

64

No. ID Peso en g % de Germinación

15 10C066 14.39 91

16 10C072 57.81 81

17 10C076 120.67 89

18 10C078 55.02 83

19 10C080 46.06 76

20 10C081 40-33 87

21 10C082 310.23 77

22 10C086 24.72 79

23 10C089 41.87 81

24 10C091 62.76 80

25 10C094 88.50 71

26 10C097 34.26 83

27 10C098 359.17 93

28 10C101 80.37 89

29 10C107 420.79 85

30 10C111 510.48 76

31 10C113 96.27 72

32 10C117 56.15 81

33 10C121 19.70 87

34 10C122 126.52 97

35 10C124 72.17 81

36 10C128 28.84 77

37 10C129 16.58 100

38 10C136 33.46 93

39 10C137 45.56 100

40 10C139 649.84 96

41 10C144 64.04 100

42 10C146 12.67 87

43 10C151 33.44 92

44 10C153 23.62 100

45 10C156 63.72 100

46 10C164 61.00 76

47 10C166 183.35 69

48 10C169 189.23 92

49 10C170 404.75 85

50 10C176 15.16 77

51 10C179 27.94 95

52 10C180 55.27 100

53 10C181 40.93 83

54 10C184 14.19 73

55 10C186 105.76 89

56 10C198 28.52 76

…Cuadro 15. Accesiones de Capsicum (ID =10C) que

deberían pasar a formar parte de la colección a mediano

plazo de ICTA.

65

No. ID Peso en g % de Germinación

57 10C203 58.16 80

58 10C204 13.42 71

59 10C0205 119.37 100

60 10C211 54.42 100

61 10C0212 114.78 81

62 10C0230 310.32 77

63 10C0232 110.84 71

64 10C0235 124.93 87

65 10C243 77.92 77

66 10C245 22.47 79

67 10C249 83.92 92

68 10C250 29.73 80

69 10C256 81.87 83

70 10C257 20.32 81

71 10C258 39.08 87

72 10C259 63.44 84

73 10C264 175.78 89

74 10C270 60.71 76

75 10C273 23.09 100

76 10C0275 330.44 92

77 10C278 67.97 100

78 10C280 86.42 100

79 11C05 Rojo 148.7 74

80 11C08 230.2 68

81 11C09 Rojo 221.7 82

82 11C10 Amarillo 262.7 90

83 11C11 181.2 86

84 11C14 475.2 78

85 11C16 Amarillo 154.7 74

86 11C17 269.2 72

87 11C18 Rojo 152.2 86

88 11C18 Amarillo 203.2 84

89 11C19 336.2 84

90 11C20 322.2 88

91 11C21 390.2 88

92 11C22 Rojo 183.7 92

93 11C23 332.7 78

94 11C24 Rojo 198.2 90

95 11C24 Amarillo 194.7 89

96 11C26 229.2 78

97 11C27 390.2 76

98 11C28 385.7 74

…Cuadro 15. Accesiones de Capsicum (ID =10C) que

deberían pasar a formar parte de la colección a mediano

plazo de ICTA.

66

No. ID Peso en g % de Germinación

99 11C29 328.2 80

100 11C30 220.2 90

101 11C32 191.7 74

Fuente: FODECYT 018-2010

Accesiones con más de 5 gramos de semilla y con 70 % de poder de germinación deben

conformar la colección a mediano plazo. Lo ideal para almacenamiento a largo plazo es

de 85 % de germinación. Pero, ICTA no debe darse el lujo de botar esta semilla antes de

siete años. A los siete años debería realizarse un nuevo rejuvenecimiento e incremento

de esta semilla.

El 98 % de las accesiones del germoplasma de Capsicum de la colección activa que

fueron rejuvenecidas en el 2010 y el 2011, fueron caracterizadas morfológicamente. En

consecuencia se cuenta con la información base para documentar digitalmente la

colección de germoplasma de Capsicum de mediano plazo de Guatemala. Esta

información es fundamental para el intercambio de información y de germoplasma

regulado a nivel mundial. La documentación sobre Capsicum de Guatemala se colgó en

la página WEB de ICTA: www.icta.gob.gt y se recomienda colgarla también en el GRIN-

GLOBAL de los Estados Unidos de América. Este software fue obtenido para ICTA por

el Investigador Principal del proyecto desde el USDA y se recomienda instalarlo en una

computadora de escritorio para atender no solo este germoplasma de Capsicum, sino

también puede atender otros géneros de importancia agrícola para Guatemala, como Zea,

Phaseolus y otros.

III.1.1.3. Los datos de pasaporte, de caracterización y evaluación morfológica de las

accesiones de Capsicum cosechadas:

Los datos de pasaporte que se presentan en este informe en el ANEXO 1, pertenecen a las

accesiones de Capsicum que lograron incrementarse y rejuvenecerse en las FASES I y II.

La FASE III no logró cosecharse por pérdida completa de los materiales a causa de la

Tormenta Tropical 12E. La información sobre los datos de pasaporte de las accesiones de

Capsicum referidas se presenta en los cuadros 16 y 17, FASE I y FASE II,

respectivamente.

Para la caracterización y evaluación morfológica se utilizó el descriptor oficial del género

Capsicum del IBPGR. Diez plantas de cada accesión fueron observadas, medidas y

registradas para tal propósito. Los resultados de la caracterización y evaluación

morfológica de los materiales de Capsicum establecidos en las Fase I, II y III se reportan

en el ANEXO 2 en los cuadros 18, 19 y 20, FASE I, FASE II y FASE III,

respectivamente.

El rejuvenecimiento e incremento de semilla de las accesiones de Capsicum de

Guatemala acá realizado, permitirá el intercambio de germoplasma y documentación con

otros países interesados en el género. Pero, esto hace imperativo la implementación de

un sistema multilateral de acceso y distribución de beneficios en el marco del Tratado

…Cuadro 15. Accesiones de Capsicum (ID =10C) que

deberían pasar a formar parte de la colección a mediano

plazo de ICTA.

67

Internacional sobre los Recursos Fitogenéticos para la Alimentación y la Agricultura –

TIRD- . Sin embargo, Guatemala, a través del Ministerio de Agricultura, Ganadería y

Alimentación –MAGA-, punto focal del TIRFA, debe aún desarrollar e implementar el

sistema multilateral de acceso y distribución de beneficios de sus recursos fitogenéticos.

La información generada en el género Capsicum por esta investigación puede utilizarse

para una prueba piloto del referido sistema.

El germoplasma de Capsicum de Guatemala puede ser utilizado para la alimentación, la

farmacéutica, la industrialización y el ornato de hoy y del futuro. La semilla e

información generada en la presente investigación permitirá a ICTA-Guatemala,

conservar a mediano plazo la diversidad genética del género regenerada y podrá ubicar en

la Reserva Mundial de Semillas de Svalbard del Reino de Noruega, en el CATIE, Costa

Rica, o en el Asian Vegetable Research and Development Center –AVDRC- de China

Taiwán, una réplica de esta diversidad genética de Capsicum.

68

PARTE IV

IV.1. CONCLUSIONES

1. ICTA crea una colección nacional de Capsicum con 253 accesiones y la conserva

en su Banco de germoplasma por un mediano plazo (6-7) años. Conservar a mediano

plazo las semillas de las accesiones de chile no garantiza su perpetuidad, ni su

salvaguarda. Esto es un paliativo que maximiza en las condiciones de Guatemala, la

expresión de que, estamos conservando nuestros recursos fitogenéticos en riesgo de

extinción.

2. Únicamente se logró rejuvenecer e incrementar 253 accesiones de chile (62 % del

total sembrado). La regeneración de germoplasma de chile no es una tarea fácil. Existe

una tremenda variabilidad genética en vigor, poder de germinación y dormancia en las

semillas; en velocidad de establecimiento, desarrollo y crecimiento de las plantas y en

períodos fenológicos entre y dentro de los morfotipos de acuerdo con las condiciones

agroclimáticas donde se producen. En Zacapa se rejuvenecieron e incrementaron 224 y

en Chimaltenango 29 accesiones. En San Jerónimo se establecieron en campo definitivo

153 accesiones que desafortunadamente se perdieron por efectos de inundación y fuertes

vientos de la Depresión Tropical 12 E. (Véanse los cuadros: 13, 14 y 15)

3. Un total de 243 accesiones de chile fueron completamente caracterizadas y

evaluadas morfológicamente. En Zacapa 214 y en Chimaltenango 23 accesiones de chile,

respectivamente (Cuadros 18, 19 y 20). Esta información complementa lo ya registrado

en la década de los 80´s del siglo XX. Adicional a esta información numérica, también se

cuenta con un catálogo fotográfico de frutos de las accesiones rejuvenecidas e

incrementadas.

4. Las 253 accesiones de chile que fueron rejuvenecidas, al mismo tiempo,

incrementaron su cantidad de semilla. Su rejuvenecimiento evidenció que en Guatemala

existe germoplasma altamente domesticado en C. annuum y en C. pubescens, pero no en

todos los cultivares de C. chinense y C. frutescens. La única accesión de C. baccatum

que fue identificada entre el germoplasma de chiles de Guatemala, respondió muy bien al

aislamiento contra insectos polinizadores, por lo que se considera que es un cultivar

mejorado, recientemente introducido al país.

5. En la caracterización y evaluación morfológica de las accesiones de Capsicum que

lograron establecerse en campo en Zacapa o en condiciones de hidroponía en

Chimaltenango, se utilizó el descriptor oficial del género desarrollado por el IBPGR. A la

fecha, existe información adicional sobre caracterizaciones morfológicas realizadas en la

década de los 80´s del siglo XX. ICTA tiene en su posesión el programa informático y

computarizable: GRIN-GLOBAL. Este permite y facilita el intercambio de información y

de germoplasma de plantas para la agricultura y la alimentación a nivel mundial.

6. Se rescataron 253 accesiones de chile de Guatemala y se conservan bajo

condiciones apropiadas en el Banco de Germoplasma de ICTA.

69

7. Contar con 100 gramos de semilla de cada accesión de chile y accesiones con un

porcentaje de germinación superior al 85 % fue imposible. Sin embargo, en un gramo de

semillas de chile, hay en promedio cien semillas, la cual con una germinación del 50%,

permiten la regeneración de toda una accesión (Véanse cuadros: 13,14 y 15). Las 253

accesiones de chile rejuvenecidas tienen más de 7 gramos y más del 75 % de poder de

germinación.

8. Se generó la base de datos correspondiente a la documentación sobre pasaporte,

caracterización y evaluación morfológica para las 243 accesiones de Capsicum

rejuvenecidas e incrementadas en este estudio. Véanse los cuadros 16, 17, 18,19 y 20.

9. Se realizaron varias actividades de socialización de las actividades en proceso y de

los resultados obtenidos en la investigación. En Zacapa estudiantes de la EANOR

hicieron visitas al sitio experimental. Un día de campo se implementó para productores

de la región. En Chimaltenango, estudiantes de la Universidad Rafael Landivar sede

Escuintla y agricultores de Chimaltenango visitaron el módulo hidropónico donde se

desarrolló el estudio. Los investigadores asociados hicieron presentación de resultados

oficiales en el ICTA durante el 2010 y 2011. El investigador principal preparó un manual

fotográfico de la mayoría de las accesiones de chile que fueron documentadas.

OTRAS CONCLUSIONES:

10. El tratamiento de la semilla de chiles con hipoclorito de sodio al 10% por cinco

minutos, desinfectó la testa de las semillas de fitopatógenos de manera satisfactoria. A la

vez, este tratamiento mejoró la germinación de semillas que tenían más de cuatro años de

conservarse en la colección activa bajo condiciones del banco de germoplasma de ICTA.

11. Se apreció en el proceso de germinación de las accesiones de chile, que estas tenían

diferentes grados de vigor y por ende diferentes porcentajes de poder de germinación.

Existió un gradiente de germinación entre las accesiones. Algunas germinaron en

término de ocho días, pero otros requirieron hasta 20 días.

12. El uso de mallas, cajas o cobertores sobre las plantas de chile, evidenció que el

género Capsicum de Guatemala, tiene especies autógamas y alógamas como lo reporta la

literatura.. La especie C. annuum expresó claramente la autogamia. La mayoría de las

accesiones de esta especie fueron muy productivas bajo los cobertores. Mientras que, las

accesiones de C. chinense evidenciaron diferente grado de polinización cruzada. Las

accesiones más domesticadas tuvieron menos efectos por cruzas que aquellas accesiones

más silvestres. En Capsicum pubescens se esperaba que las accesiones fueran alógamas.

Sin embargo, sorprendentemente la mayoría, sino todas las accesiones evaluadas en un

sistema hidropónico y en condiciones protegidas, produjeron abundante semilla en estas

condiciones. El uso de polinización manual dirigida acá no fue requerido como se creía.

70

13. Se estableció que dentro del germoplasma de Chile evaluado, existen morfotipos

precoces, intermedios y tardíos. O sea materiales que para cosecha comercial requieren

de 90 a 120 días de ciclo fenológico.

71

IV.2. RECOMENDACIONES

1. La colección Nacional de Capsicum a mediano plazo debe conservarse en las

condiciones óptimas del banco de germoplasma de ICTA. La semilla de cada accesión de

chile debe monitorease anualmente por porcentaje de germinación.

2. Realizar un inventario de la colección activa de Capsicum de ICTA. Las 153

accesiones de chile pérdidas en San Jerónimo, Baja Verapaz en 2011, se recomienda que

a la brevedad posible, se incrementen.

3. La información existente desde los 80´s del siglo XX a la fecha, sobre

caracterización morfológica de Chiles, puede registrarse sistemáticamente. Se

recomienda la integración de esa información a una sola base de datos, ya sea en

DBgermo o en GRIN-GLOBAL.

4. Se recomienda el rejuvenecimiento e incremento del remanente de accesiones de

chile de la colección activa del ICTA y en particular las accesiones que se perdieron en

San Jerónimo, Baja Verapaz.

5. ICTA debe instalar el programa GRIN-GLOBAL del Departamento de Agricultura

de los Estados Unidos de América en alguno de sus servidores informáticos. O bien debe

utilizar el programa DBGermo del INTA, Argentina para documentar digitalmente toda la

información generada en este estudio de chiles

6. La mejor salvaguarda y conservación que puede tener el germoplasma de chile de

Guatemala, es su utilización en agricultura y alimentación humana. Por ello, ICTA debe

promover la evaluación de pre mejoramiento a condiciones de estrés biótico y abiótico y

poner a disponibilidad de la sociedad científica mundial sus resultados.

7. Con las semillas de accesiones de chile que tienen bajos porcentajes de

germinación, se recomienda realizar pruebas comparativas de germinación entre: a)

semillas tratadas con hipoclorito de sodio al 10%, por cinco minutos y b) semillas no

tratadas. Registrar las mediciones que se observen. Las diferencias en vigor y porcentaje

de germinación pueden atribuirse a efectos de dormancia en las semillas. Más

investigación sobre aspectos técnico-fisiológicos de la semilla de chile se hace necesaria

en Guatemala. También, es recomendable e importante que en un programa de

fitomejoramiento de chile a nivel nacional, se conozca perfectamente el modo de

reproducción de los materiales a utilizar, en particular de los parentales involucrados en

hibridaciones.

8. ICTA debe promover, utilizar, socializar y divulgar la información generada en

esta investigación, en las redes Facebook y Twiter para que investigadores de Capsicum

en el mundo entero tengan acceso a la documentación del género para su utilización en

el mejoramiento genético y por ende se promueva la cooperación técnica internacional

con la institución.

72

9. ICTA debe promover también el resguardo del germoplasma de chile a largo

plazo. Duplicados de la colección nacional a mediano plazo, deben enviarse por lo menos

a la Reserva Mundial de Semillas de Svalbard del Reino de Noruega, al CATIE en Costa

Rica, y /o al AVRDC en China Taiwán.

10. ICTA debe participar proactivamente en todas las iniciativas que sobre recursos

fitogenéticos para la agricultura y la alimentación se implementen en el país. Siendo la

única institución pública con un banco de germoplasma de mediano plazo para semillas

ortodoxas, deberá jugar el papel estratégico que le corresponde.

.

10. Todo el excedente de semilla de cada accesión de chile que logre almacenarse en

una colección de mediano plazo en el Banco de Germoplasma del ICTA, debe

mantenerse integrando también, la colección activa de chile que la originó. Esta semilla

puede ser utilizada nacionalmente para fines demostrativos de diversidad genética a nivel

de campo, investigaciones sobre el género y en especial en programas de

fitomejoramiento local.

73

IV.3. REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS

Azurdia, C. y González, M.M. (1986) Informe final del proyecto de recolección de

algunos cultivos nativos de Guatemala. Guatemala. Consejo Internacional de

Recursos Fitogenéticos (CIRF). Facultad de Agronomía, Universidad de San

Carlos de Guatemala (FAUSAC) e Instituto de Ciencia y Tecnología Agrícolas

(ICTA). pp. 19-56.

_______, C., González, M. M., M. Sapón, M., Canil, B., Ávila, J y Tojín, J. (1995) Chile

(Capsicum). En: Azurdia, C. (ed). Caracterización de algunos cultivos nativos de

Guatemala. Guatemala. International Board for Plant Genetic Resources

(IBPGR), Facultad de Agronomía, Universidad de San Carlos de Guatemala

(FAUSAC). pp. 75-101.

Berke, T.; Engle, I. (1997) Current status of major Capsicum germplasm collections

Word Wide. Capsicum and eggplant Newsletter, 16:76-79.

Bosland, P.W. and Lindsey, D.I. (1991) A seedling screen for Phytophthora root rot of

pepper, Capsicum annuum. Plant Disease 75 (10), 1048.

________. (1992) Chiles a diverse crop. Hort Technology 2(1). 6-10.

________. (1993). An effective plant field-cage to increase the production of

genetically pure chile (Capsicum spp) seed. Hort Science 28(10) 1053.

________, Iglesias, J. and González, M.M. (1993) ¨NuMex Joe E. Parker¨ Chile.

HortScience 28, 347-348.

________, Iglesias, J. and González, M.M. (1994) ¨NuMex Centennial and ´NuMex

Twilight¨ ornamental chiles, HortScience 29, 1090.

________, (1996) Capsicums: Innovative uses of ancient crop. En Janick J. (Ed) Progress

in new crops. ASHS Press, Arlington. V.A. p 479-487

CATIE (1976). Inventario de plantas nativas de Mesoamérica. Centro Agronómico

Tropical de Investigación y Enseñanza, CATIE, Turrialba, Costa Rica, 30 Pag.

Cichewicz, R.H. and Thorpe, P.A. (1996). The antimicrobial properties of chile peppers

(Capsicum species) and their uses in Mayan Medicine. Journal of

Ethnofarmacology 52, 61-70.

Davenport, W. A. (1970) Progress report on the domestication of Capsicum (chili

peppers). Proc. Assoc. Amer. Geogr. 2:46-47.

74

D’Arcy y Eshbaugh, W. H. (1974) New Word peppers (Capsicum: Solanaceae)

North of Colombia: a resume. Baileya 19: 93-105.

Dainello, F.J. and Helneman, R.R. (1986) Plant arrangements and seedling

establishment techniques for long green chile pepper production. Texas

agriculture Experimental Station Progress Report 4369.

Debouck, D. y Libreros, D. (1993) Salsa picante o Una Breve Memoria del Ají

(Capsicum) en Colombia. En Memorias V Seminario sobre Recursos Vegetales

Promisorios. Palmira. Tomo I. 18p.

De León, Jorge. (1981) Las plantas cultivadas de México, Guatemala y Colombia.

Versión en español de la traducción inglesa de M. H.Byleveld. Centro

Agronómico Tropical de Investigación y Enseñanza, CATIE, Turrialba, Costa

Rica, 168 pag.

DeWitt, D. and Bosland, P.W. (1996) Peppers of the World. Ten Speed Press.

Berkeley. California.

Franco, T. L. e Hidalgo, R. (eds.) (2003) Análisis Estadístico de Datos de

Caracterización Morfológica de Recursos Fitogenéticos. Boletín técnico no. 8,

Instituto Internacional de Recursos Fitogenéticos (IPGRI), Cali, Colombia. 89 P.

Erwin, A.T. (1937) Anthesis and pollination of the Capsicum. American Society for

Horticultural Science Proceedings 28, 309.

Eshbaugh, W. H. (1977) A Numerical Taxonomic and Cytogenetic Study of the Genus

Capsicum. Indiana University. 112 p. (Tesis Ph. D.).

___________ (1983) The genus Capsicum (Solanaceae) in Africa. Bothalia, 143 (3-

4): 845-848.

Ford-Lloyd, B., Jackson, M. (1986) Plant genetic resources: an introduction to their

conservation and use. Bristol, UK. p.152.

Garcia, M. A.; Baena, D.; Vallejo, F. (2006). Estudio de la diversidad genética de las

accesiones de Capsicum spp. del banco de germoplasma de la Universidad

Nacional de Colombia – Sede Palmira. Tesis doctoral. Universidad Nacional de

Colombia – Sede Palmira. p 102.

Galmarini, C.(1992) Los recursos genéticos del género Capsicum y su utilización en

Argentina. Actas del curso taller en tecnología de Producción de Semillas

hortícolas para pequeños agricultores. FAO- INTA, Santiago (Chile). p. 1-9.

75

Gil Ortega, R. (1990) Resistencia a Phytophthora capsici León. En Pimiento.Tesis

Doctoral. INIA (España) – Madrid. 369 p.

Gonzales, F. y Pita, J. M. (2001) Conservación y caracterización de recursos

fitogenéticos. Madrid: I.N.E.A. 279 p.

González, M. y Bosland, P. (1991). Germoplasma de Capsicum en las Américas En:

Diversity. Vol. 7, Nos. 1 & 2. p 57 – 59.

González, M. M. R. (1994) Disciplina de Recursos Fitogenéticos de ICTA, Una

Reseña histórica. Documento inédito.

Greenleaf, W.H. (1986) Pepper Breeding. In: Bassett. M.J. (ed) Breeding Vegetable

Crops. AVI Publishing Co. Westport, Connecticut, pp. 67-127.

Heiser, C. B. (1985) Of plant and people. Univ. Oklahoma, Press-Norman,

Oklahoma. USA. 273 p. 15.

Heiser, C.B. y Smith, P.G. (1958) New especies of Capsicum from South América.

Brittonia, 10(4): 194 – 201.

Hunziker, A. T. (1950) Estudios sobre solanaceae. I. Sinopsis de las especies silvestres

de Capsicum de Argentina y Paraguay. Darwiniana, 9 (2):225-247.

IBPGR (1983) Genetic Resources of Capsicum; A Global Plan of Action.

International Board for Plant Genetic Resources, Rome.

IBPGR, AVRDC and CATIE (1995) Descriptors for Capsicum (Capsicum spp).

International Plant Genetic Resources Institute, Rome, Italy, the Asian Vegetable

Research and Development Center, Taipei, Taiwan, and the Centro Agronómico

Tropical de Investigación y Enseñanza, Turrialba, Costa Rica.

Jensen, R. J., Mc.leod, M.J. Eshbaugh, W. H. y Guttman, S.I. (1979) Numeral

Taxonomic Analyses of Allozymic Variation in Capsicum (Solanaceae) Taxon

28 (4): 315 – 327.

MacNeish, R.S. (1964) Ancient Mesoamerican civilization, Science 143, 531-537.

Mc. Leod, M. D., Guttman, S.I. Y Eshbaugh, W. H. 1982. Early evolution of chile

peppers (Capsicum). Econ. Bot. 36 (4):361-368.

Molina, A., Curley, L.M y Bressani, R. (1997) Redescubriendo el valor nutricional

de las hojas de chaya (Cnidoscolus aconitifolius). En: Ciencia en Acción, 3.

Instituto de Investigaciones, Universidad del Valle de Guatemala.

76

Muhyi, R. and Bosland, P.W. (1995) Evaluation of Capsicum germplasm for sources of

resistance to Rhizoctonia solani. HortScience 30, 341-342.

Pickersgill, B. (1969). The archeological record of chili peppers (Capsicum sp.) and the

sequence of plant domestication in Peru. Amer. Antiquity, 34 (1): 54-61.

___________. (1980) Some aspects of interspecific hybridation in Capsicum. IV

Eucarpia meeting, Capsicum Working group 1980, Wageningen, 1-5 p.

___________. (1983) Dispersal and distribution in crop plants. Souderbd.

Naturwiss. Ver Hamburg, 7:285-301.

___________. (1984) Migration of chili peppers, Capsicum spp., in the Americas.

In: Stones. D. (ed.), Pre Columbian Plant Migration, Peppers of the Peabody

Museum of Archeology and Ethnology. Vol 76, Handward University press,

Cambridge, M.A. 106 -123 p.

___________. (1986) Domestication and its Taxonomic consequences. Acta

Horticulturae, 182: 319-327.

__________. (1997) Genetic Resources and breeding of Capsicum spp. Euphytica 96,

129-133.

Rodríguez, F. (1996). La Facultad de Agronomía y los Recursos Fitogenéticos del País.

En: Lecturas en Recursos Fitogenéticos, pp: 21-22. ED. César Azurdia. Instituto

de Investigaciones Agronómicas, Facultad de Agronomía, Universidad de San

Carlos de Guatemala. 135 p.

Scoville, W.I. (1912) Note on Capsicum. Journal of the American Pharmaceutical

Association 1, 453.

Smith, P.G. and Heiser, C.B. (1957) Taxonomy of Capsicum sinense Jacq. And the

geographic distribution of the cultivated Capsicum species. Bulletin of Torrey

Botanical Club 84, 413-420.

Tanksley, S.D. (1984) High rates of cross-pollination in chile pepper. HortScience 19,

580-582.

_______, Bernatzky, R., Lapitan, N.I., and Prince, J.P. (1988) Conservation of gene

repertoire but not gene order in pepper and tomato. Proceedings of the National

Academy of Sciences 85, 6419-6423.

USDA, 1994. PCGRIN, Germplasm Resources Information Network, Data Query

System for the P.C. Department of Agriculture, Agricultural Research Service.

ARS-108, 85 p.

77

Votava, E.J. and Bosland, P.W. (1996). Use of ladybugs to control aphis in

Capsicum field isolation cages, HortScience 31(7), 1237.

Williams, J. T. (1982) Genetic conservation of wild plants. Nature and Resources. 18:14-

15.

Yaqub, C.M. and Smith. P.G. (1971). Nature and inheritance of self-incompatibility In

Capsicum pubescens and C. cardenasii. Hilgardia 40, 459-470.

78

1V.4. ANEXOS

79

IV.4. ANEXOS

IV.4.1. ANEXO I, DATOS DE PASAPORTE DE ACCESIONES DE CHILE

Cuadro 16. Datos de pasaporte de las accesiones de la colección activa de Capsicum

que se sembraron y cosecharon en el ICTA, El Oasis, Estanzuela, Zacapa,

Fase I, 2010-2011.

80

…Continuación:

Cuadro16. Datos de pasaporte de las accesiones de la colección activa de Capsicum

que se sembraron y cosecharon en el ICTA, El Oasis, Estanzuela, Zacapa,

Fase I, 2010-2011.

81

…Continuacion:

Cuadro16. Datos de pasaporte de las accesiones de la colección activa de Capsicum

que se sembraron y cosecharon en el ICTA, El Oasis, Estanzuela, Zacapa.

Fase I, 2010-2011.

82

…Continuación:

Cuadro16. Datos de pasaporte de las accesiones de la colección activa de Capsicum

que se sembraron y cosecharon en el ICTA, El Oasis, Estanzuela, Zacapa.

Fase I, 2010-2011.

83

…Continuación:

Cuadro16. Datos de pasaporte de las accesiones de la colección activa de Capsicum

que se sembraron y cosecharon en el ICTA, El Oasis, Estanzuela, Zacapa.

Fase I, 2010-2011.

84

…Continuación:

Cuadro16. Datos de pasaporte de las accesiones de la colección activa de Capsicum

que se sembraron y cosecharon en el ICTA, El Oasis, Estanzuela, Zacapa.

Fase I, 2010-2011.

85

…Continuación:

Cuadro16. Datos de pasaporte de las accesiones de la colección activa de Capsicum

que se sembraron y cosecharon en el ICTA, El Oasis, Estanzuela, Zacapa.

Fase I, 2010-2011.

86

…Continuación:

Cuadro16. Datos de pasaporte de las accesiones de la colección activa de Capsicum que

se sembraron y cosecharon en el ICTA, El Oasis, Estanzuela, Zacapa. Fase I

2010-2011.

87

…Continuación:

Cuadro16. Datos de pasaporte de las accesiones de la colección activa de Capsicum

que se sembraron y cosecharon en el ICTA, El Oasis, Estanzuela, Zacapa.

Fase I, 2010-2011.

88

…Continuación:

Cuadro16. Datos de pasaporte de las accesiones de la colección activa de Capsicum

que se sembraron y cosecharon en el ICTA, El Oasis, Estanzuela, Zacapa.

Fase I, 2010-2011.

…Continuación:

Cuadro16. Datos de pasaporte de las accesiones de la colección activa de Capsicum

que se sembraron y cosecharon en el ICTA, El Oasis, Estanzuela, Zacapa.

Fase I, 2010-2011.

89

90

…Continuacion:

Cuadro16. Datos de pasaporte de las accesiones de la colección activa de Capsicum

que se sembraron y cosecharon en el ICTA, El Oasis, Estanzuela, Zacapa.

Fase I, 2010-2011.

91

…Continuación:

Cuadro16. Datos de pasaporte de las accesiones de la colección activa de Capsicum

que se sembraron y cosecharon en el ICTA, El Oasis, Estanzuela, Zacapa.

Fase I, 2010-2011.

92

…Continuación:

Cuadro16. Datos de pasaporte de las accesiones de la colección activa de Capsicum

que se sembraron y cosecharon en el ICTA, El Oasis, Estanzuela, Zacapa.

Fase I, 2010-2011.

93

…Continuación:

Cuadro16. Datos de pasaporte de las accesiones de la colección activa de Capsicum

que se sembraron y cosecharon en el ICTA, El Oasis, Estanzuela, Zacapa,

Fase I, 2010-2011.

94

…Continuación:

Cuadro16. Datos de pasaporte de las accesiones de la colección activa de Capsicum

que se sembraron y cosecharon en el ICTA, El Oasis, Estanzuela, Zacapa.

Fase I, 2010-2011.

95

…Continuación:

Cuadro16. Datos de pasaporte de las accesiones de la colección activa de Capsicum

que se sembraron y cosecharon en el ICTA, El Oasis, Estanzuela, Zacapa,

Fase I, 2010-2011.

96

…Continuación:

Cuadro16. Datos de pasaporte de las accesiones de la colección activa de Capsicum

que se sembraron y cosecharon en el ICTA, El Oasis, Estanzuela, Zacapa.

Fase I, 2010-2011.

97

Cuadro17. Datos de pasaporte de las accesiones de la colección activa de Capsicum

que se sembraron y cosecharon en el ICTA, La Alameda, Chimaltenango.

Fase II, 2011.

98

IV.4.2. ANEXO 2, CARACTERIZACIÓN Y EVALUACIÓN MORFOLÓGICA DE

LAS ACCESIONES DE CHILE.

Cuadro18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en ICTA,

El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.

99

…Continuación:

Cuadro18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en ICTA,

El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.

100

…Continuación:

Cuadro18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en ICTA,

El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.

101

…Continuación:

Cuadro18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en ICTA,

El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.

102

…Continuación:

Cuadro18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en ICTA,

El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.

103

…Continuación:

Cuadro18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en ICTA,

El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.

104

…Continuación:

Cuadro18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en ICTA,

El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.

105

…Continuación:

Cuadro18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en ICTA,

El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.

106

…Continuación:

Cuadro18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en ICTA,

El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.

c

107

…Continuación:

Cuadro18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en ICTA,

El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.

108

…Continuación:

Cuadro18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en ICTA,

El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.

109

…Continuación:

Cuadro18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en ICTA,

El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.

110

…Continuación:

Cuadro18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en ICTA,

El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.

111

…Continuación:

Cuadro18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en ICTA,

El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.

112

…Continuación:

Cuadro18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en ICTA,

El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.

113

…Continuación:

Cuadro18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en ICTA,

El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.

114

…Continuación:

Cuadro18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en ICTA,

El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.

115

…Continuación:

Cuadro18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en ICTA,

El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.

116

…Continuación:

Cuadro18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en ICTA,

El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.

117

…Continuación:

Cuadro18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en ICTA,

El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.

118

…Continuación:

Cuadro18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en ICTA,

El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.

119

…Continuación:

Cuadro18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en ICTA,

El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.

120

…Continuación:

Cuadro18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en ICTA,

El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.

121

…Continuación:

Cuadro18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en ICTA,

El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.

122

…Continuación:

Cuadro18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en ICTA,

El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.

123

…Continuación:

Cuadro18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en ICTA,

El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.

124

…Continuación:

Cuadro18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en ICTA,

El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.

125

…Continuación:

Cuadro18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en ICTA,

El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.

126

…Continuación:

Cuadro18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en ICTA,

El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.

127

…Continuación:

Cuadro18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en ICTA,

El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.

128

…Continuación:

Cuadro18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en ICTA,

El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.

129

…Continuación:

Cuadro18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en ICTA,

El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.

130

…Continuación:

Cuadro18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en ICTA,

El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.

131

…Continuación:

Cuadro18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en ICTA,

El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.

132

…Continuación:

Cuadro18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en ICTA,

El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.

133

…Continuación:

Cuadro18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en ICTA,

El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.

134

…Continuación:

Cuadro18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en ICTA,

El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.

135

…Continuación:

Cuadro18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en ICTA,

El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.

136

…Continuación:

Cuadro18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en ICTA,

El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.

137

…Continuación:

Cuadro18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en ICTA,

El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.

138

…Continuación:

Cuadro18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en ICTA,

El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.

139

…Continuación:

Cuadro18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en ICTA,

El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.

140

…Continuación:

Cuadro18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en ICTA,

El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.

141

…Continuación:

Cuadro18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en ICTA,

El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.

142

…Continuación:

Cuadro 18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en ICTA,

El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.

143

…Continuación:

Cuadro 18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en ICTA,

El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.

144

…Continuación:

Cuadro 18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en

ICTA, El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.

145

…Continuación:

Cuadro 18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en

ICTA, El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.

146

…Continuación:

Cuadro 18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en

ICTA, El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.

147

…Continuación:

Cuadro 18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en

ICTA, El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.

148

…Continuación:

Cuadro 18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en

ICTA, El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.

149

…Continuación:

Cuadro 18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en

ICTA, El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.

150

…Continuación:

Cuadro 18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en

ICTA, El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.

151

…Continuación:

Cuadro 18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en

ICTA, El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.

152

…Continuación:

Cuadro 18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en

ICTA, El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.

153

…Continuación:

Cuadro 18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en

ICTA, El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.

154

…Continuación:

Cuadro 18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en

ICTA, El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.

155

…Continuación:

Cuadro18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en

ICTA, El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.

156

…Continuación:

Cuadro 18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en

ICTA, El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.

157

…Continuación:

Cuadro18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en

ICTA, El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.

158

…Continuación:

Cuadro18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en

ICTA, El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.

159

…Continuación:

Cuadro 18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en

ICTA, El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.

160

…Continuación:

Cuadro 18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en

ICTA, El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.

161

…Continuación:

Cuadro 18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en

ICTA, El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.

162

…Continuación:

Cuadro 18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en

ICTA, El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.

163

…Continuación:

Cuadro 18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en

ICTA, El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.

164

…Continuación:

Cuadro 18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en

ICTA, El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.

165

…Continuación:

Cuadro 18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en

ICTA, El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.

166

…Continuación:

Cuadro 18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en

ICTA, El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.

167

…Continuación:

Cuadro 18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en

ICTA, El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.

168

…Continuación:

Cuadro 18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en

ICTA, El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.

169

…Continuación:

Cuadro 18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en

ICTA, El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.

170

…Continuación:

Cuadro 18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en

ICTA, El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.

171

…Continuación:

Cuadro 18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en

ICTA, El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.

172

…Continuación:

Cuadro 18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en

ICTA, El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.

173

…Continuación:

Cuadro16. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en

ICTA, El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.

174

Cuadro 19. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en

ICTA, La Alameda, Chimaltenango, Fase II, 2011.

175

… Continuación:

Cuadro 19. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en

ICTA, La Alameda, Chimaltenango, Fase II, 2011.

176

… Continuación:

Cuadro 19. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en

ICTA, La Alameda, Chimaltenango, Fase II, 2011.

177

… Continuación:

Cuadro 19. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en

ICTA, La Alameda, Chimaltenango, Fase II, 2011.

178

… Continuación:

Cuadro 19. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en

ICTA, La Alameda, Chimaltenango, Fase II, 2011.

179

… Continuación:

Cuadro 19. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en

ICTA, La Alameda, Chimaltenango, Fase II, 2011.

180

… Continuación:

Cuadro 19. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en

ICTA, La Alameda, Chimaltenango, Fase II, 2011.

181

… Continuación:

Cuadro 19. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en

ICTA, La Alameda, Chimaltenango, Fase II, 2011.

182

… Continuación:

Cuadro 19. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en

ICTA, La Alameda, Chimaltenango, Fase II, 2011.

183

… Continuación:

Cuadro 19. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en

ICTA, La Alameda, Chimaltenango, Fase II, 2011.

184

Cuadro 20. Caracterización y evaluación morfológica parcial de las accesiones de chile

en ICTA, Finca San Jerónimo, San Jerónimo, Baja Verapaz, Fase III, 2011.

185

…Continuación:

Cuadro 20. Caracterización y evaluación morfológica parcial de accesiones de chile en

ICTA, Finca San Jerónimo, San Jerónimo, Baja Verapaz, Fase III, 2011.

186

…Continuación:

Cuadro 20. Caracterización y evaluación morfológica parcial de accesiones de chile en

ICTA, Finca San Jerónimo, San Jerónimo, Baja Verapaz, Fase III, 2011.

187

…Continuación:

Cuadro 20 Caracterización y evaluación morfológica parcial de accesiones de chile en

ICTA, Finca San Jerónimo, San Jerónimo, Baja Verapaz, Fase III, 2011.

188

…Continuación:

Cuadro 20. Caracterización y evaluación morfológica parcial de accesiones de chile en

ICTA, Finca San Jerónimo, San Jerónimo, Baja Verapaz, Fase III, 2011.

189

…Continuación:

Cuadro 20. Caracterización y evaluación morfológica parcial de accesiones de chile en

ICTA, Finca San Jerónimo, San Jerónimo, Baja Verapaz, Fase III, 2011.

190

…Continuación:

Cuadro 20. Caracterización y evaluación morfológica parcial de accesiones de chile en

ICTA, Finca San Jerónimo, San Jerónimo, Baja Verapaz, Fase III, 2011.

191

…Continuación:

Cuadro 20. Caracterización y evaluación morfológica parcial de accesiones de chile en

ICTA, Finca San Jerónimo, San Jerónimo, Baja Verapaz, Fase III, 2011.

192

…Continuación:

Cuadro 20. Caracterización y evaluación morfológica parcial de accesiones de chile en

ICTA, Finca San Jerónimo, San Jerónimo, Baja Verapaz, Fase III, 2011.

193

…Continuación:

Cuadro 20. Caracterización y evaluación morfológica parcial de accesiones de chile en

ICTA, Finca San Jerónimo, San Jerónimo, Baja Verapaz, Fase III, 2011.

194

…Continuación:

Cuadro 20. Caracterización y evaluación morfológica parcial de accesiones de chile en

ICTA, Finca San Jerónimo, San Jerónimo, Baja Verapaz, Fase III, 2011.

195

…Continuación:

Cuadro 20. Caracterización y evaluación morfológica parcial de accesiones de chile en

ICTA, Finca San Jerónimo, San Jerónimo, Baja Verapaz, Fase III, 2011.

196

PARTE V

V.1. INFORME FINANCIERO

AD-R-0013

Nombre del Proyecto:

Numero del Proyecto: 018-2010

Investigador Principal y/o Responsable del Proyecto: DR. MAX MYROL RUBELSY GONZÁLEZ SALÁNMonto Autorizado: Q266,750.00 01/07/2010

Plazo en meses 24 meses

Fecha de Inicio y Finalización: 01/07/2010 al 30/06/2012

Menos (-) Mas (+)

0 Servicios personales

35 Retribuciones a destajo Q 43,500.00 Q 17,050.00 Q 60,550.00 Q -

1 Servicios no personales

181

Estudios, investigaciones y proyectos de factibilidad

(Evaluación Externa de Impacto) 8,000.00Q Q 8,000.00

121 Divulgación e información 1,000.00Q Q 1,000.00

122 Impresión, encuadernación y reproducción 3,500.00Q 2,998.00Q 6,398.00Q Q 100.00

133 Viáticos en el interior 20,160.00Q 15,920.00Q 4,240.00Q Q -

185 Servicios de capacitación 5,000.00Q 5,000.00Q Q -

2 MATERIALES Y SUMINISTROS

214

Productos agroforestales, madera, corcho y sus

manufacturas 2,000.00Q 357.30Q 1,642.70Q Q -

231 Hilados y telas 56.40Q 200.00Q 143.60Q Q -

241 Papel de escritorio 500.00Q 1,700.45Q 1,971.50Q 753.35Q Q 17.70

243 Productos de papel o cartón 4,000.00Q 4,548.25Q 8,548.25Q Q -

244 Productos de artes gráficas 0.19Q 56.00Q 55.81Q Q -

254 Artículos de caucho 1,000.00Q 1,000.00Q Q -

259 Otros productos de cuero y caucho 1,000.00Q 1,000.00Q Q -

262 Combustibles y Lubricantes 29,000.00Q 6,210.04Q 35,210.04Q Q -

263 Abonos y fertilizantes 4,000.00Q 8,386.00Q 12,386.00Q Q -

264 Insecticidas, fumigantes y similares 4,000.00Q 1,545.00Q 5,545.00Q Q -

267 Tintes, pinturas y colorantes 1,000.00Q 2,150.00Q 2,101.50Q Q 1,048.50

268 Productos plásticos, nylon, vinil y pvc 50,000.00Q 15,000.00Q 323.22Q 35,323.22Q Q -

269 Otros productos químicos y conexos 1,040.00Q 1,049.00Q 1,900.00Q 1,633.80Q Q 257.20

271 Productos de arcilla 300.00Q 325.00Q 625.00Q Q -

272 Productos de vidrio 1,320.00Q 10,500.00Q 9,180.00Q Q -

283 Productos de metal 15,000.00Q 14,745.00Q 255.00Q Q -

286 Herramientas menores 3,000.00Q 1,745.22Q 83.59Q 1,026.70Q Q 311.67

291 Útiles de oficina 500.00Q 685.42Q 1,151.74Q Q 33.68

295

Útiles menores, médico-quirúrgicos y de

laboratorio 1,000.00Q 1,000.00Q Q -

298 Accesorios y repuestos en general 500.00Q 500.00Q Q -

299 Otros materiales y suministros 375.00Q 375.00Q Q -

3

PROPIEDAD, PLANTA, EQUIPO E

INTANGIBLES

321 Maquinaria y equipo de producción 45,000.00Q 45,000.00Q Q -

324 Equipo educacional, cultural y recreativo 287.00Q 6,000.00Q 5,713.00Q Q -

323 Equipo médico-sanitario y de laboratorio 15,115.00Q 45,755.00Q 30,640.00Q Q -

329 Otras maquinarias y equipos 3,186.46Q 10,420.00Q 7,233.54Q Q -

GASTOS DE ADMÓN. (10%) 24,250.00Q 24,250.00Q -Q

266,750.00Q 122,982.02Q 122,982.02Q 255,981.25Q 10,768.75Q

MONTO AUTORIZADO 266,750.00Q Disponibilidad 10,768.75Q

(-) EJECUTADO 255,981.25Q

SUBTOTAL 10,768.75Q

(-) CAJA CHICA

TOTAL POR EJECUTAR 10,768.75Q

Ejecutado Pendiente de

Ejecutar

FICHA DE EJECUCIÓN PRESUPUESTARIA

LINEA:

FODECYT

"Caracterización y evaluación morfológica, rejuvenecimiento, incremento y documentación de

Germoplasma de Capsicum en Guatemala"

Orden de Inicio (y/o Fecha primer pago):

Grupo Renglon Nombre del Gasto Asignacion

Presupuestaria

TRANSFERENCIA