COLEGIO LIBRE DE ESTUDIOS UNIVERSITARIOS CAMPUS OAXACA.

Escuela de criminología, criminalística y técnicas periciales.

PRINCIPIOS BÁSICOS DE QUÍMICA.

Tema de programa: QUIMICA BIOLOGICA.

Practica de laboratorio No. 5.

IDENTIFICACION DE CANNABIS.

Grado: 3º Grupo: “H” Practica No. 6. Alumno: Osvaldo González Mendoza. Profesor: Q.B. Raúl Adrián Martínez

Fuentes. Fecha de realización de la práctica: 27-Nov-2004. Horario: 7 – 9 Horas.

OAXACA CLEU 04 de diciembre del 2004.

Objetivo de la práctica. El alumno aprenderá las reacciones químicas calorimétricas en la identificación de los principios químicos del cannabis sativa L. (marihuana); así como sus características botánicas. Identificar grupos activos a través de técnicas calorimétricas si es o no esté tipo de vegetal.

Meta a cumplirse Que se desarrolle la práctica sin contratiempos, que el alumno cuente con los conocimientos químicos para la identificación de drogas consideradas como de abuso y enmarcadas en el cuadro de los alucinógenos.

Material utilizado

• Bata blanca de algodón de manga larga • Hojas o cuaderno de apuntes. • Guantes de latex. • Tubos de ensayo de 13 x 100. • Gradilla. • Portaobjetos. • Cubreobjetos. • Cápsula de porcelana. • Pipeta graduada. • Aplicadores de madera. • Microscopio. • Frascos goteros de vidrio

Reactivos.

Ácido clorhídrico. Hidróxido de potasio. Acetaldehído. Orto-dianizidina. Agua destilada. Metanol. Etanol. Vegetal de muestra.

Marco teórico

Cannabis sativa; es el nombre de la planta. La marihuana se obtiene triturando las hojas, las ramas y las flores, y el hachís es la resina concentrada Semillas.- carecen de principio activo. El ingrediente psicoactivo de la marihuana, el tetrahidrocannabinol (THC), se concentra en el centro de las flores.

Desarrollo de la práctica

1.-Observación macroscópica. Semillas.

• Color: verde pálido al gris verdoso. • Tamaño:2 a 3 ml de longitud. • Forma: ovoide • Pared: lisa • Venacion: primaria. • Cotiledones: 2 • Endostermo: blanco y fresco.

Hojas

• Alternas y opuestas, largamente descoladas, digitadas de 3 a 7 foliolos en ocasiones de hasta 11, con bordes acerados.

Tallos. • Alcanzan de 1 a 3 metros de altura, pubescentes y ásperos,

delgados, surcados longitudinalmente con bracteas estipuladas.

Fluorescencias

• planta femenina bractéola simple que encierra cada flor, el ovario esta rodeado en su parte inferior por el peritoneo, lo dos estigmas pardo rojizos son visibles.

Raíz.

• Fibrosa.

2.-Características microscópicas: Cuenta con pelos glandulares de 130 a 250 micras de longitud con tallo multicelular y cabeza que contiene de 8 a 16 células, así como pelos en forma cónica curvados unicelulares que suelen presentar sistolitos de carbonato de calcio. De estos pelos se segrega la resina, que contiene los principios activos.

En los bractéolas se localizan los cristales de oxido de calcio.

3.-Observación microscópica

• En una cápsula de porcelana con mortero colocamos parte del vegetal y lo molemos perfectamente.

• En un portaobjetos colocamos residuos del vegetal macerado.

• Observamos al microscopio.

• Identificamos los tricomas.

• Agregamos 2 gotas de agua y se humedece el vegetal.

• Se coloca un cubreobjetos.

• Una vez observado en el microscopio se agregan unas gotas a un lado del cubreobjetos de ácido clorhídrico.

• Se observa una efervescencia debido a la liberación del bióxido

de carbono que se produce por la reacción del carbonato de calcio con el ácido clorhídrico. Las burbujas que se observan son el resultado de la efervescencia.

• El microscopio se observa en 40x

4.-Reacción Duguenois levin.

• se realiza en un tubo de ensaye se coloca parte del vegetal macerado

• se le adiciona 1 ml del reactivo de Duquenois Levin (20

gotas)

• Se agita de 2 a 3 minutos, después de haberlo agitado lo decantamos a otro tubo de ensaye, la parte liquida mayor cantidad que el vegetal.

• Se agrega deslizado por las paredes 0.5 ml de ácido clorhídrico concentrado (20 gotas)

• Coloración azul violeta intenso en el fondo del tubo si la

reacción es positiva para la identificación de cannabiloides.

5.-Reacción de Orto Dianisidina (azul rápido) • Se coloca en un tubo de ensayo 50 ml del vegetal

• Se le adiciona 1 ml de metanol (20 gotas)

• Se agita de 2 a 3 minutos y después se decanta la parte

liquida a otro tubo de ensaye.

• Se le agrega 0.5 ml del reactivo de orto Dianizidina (10 gotas)

• Se observa una coloración roja en menos de 5minutos si la

reacción es positiva.

6.-Reacción de Bean • Extracción con etanol • Se le agrega 1 ml de etanol • Se agita de 2 a 3 minutos para la extracción de los principios

activos. • En una placa oradada se lo coloca el líquido. • Se pone 0.2 ml de la extracción alcohólica en una oradada. • Se deja volatilizar a temperatura ambiente. • Se agrega de 2 a 3 gotas del reactivo de Bean. • Si la reacción es positiva se observara una coloración azul

violeta.

CONCLUSIONES. La reacción de Bean no se pudo realizar debido a que no contamos con el material. Aprendimos varias características microscópicas y microscópicas de la cannabis sativa. Aprendimos técnicas calorimétricas para poder identificas el ingrediente psicoactivo. Créditos: Catedrático: Q. B. Raúl Adrián Martínez Fuentes Alumno: Osvaldo González Mendoza