manual de laboratorio de farmacología básica

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Universidad Autónoma de Baja California Facultad de Medicina y Psicología Código L2-ML-002 Revisión 2 ML Manual de Laboratorio de Farmacología Básica Página 1 de 31 GC-FR-012 Rev. 3 Manual de Laboratorio de Farmacología Básica Clave de la materia: 12667 Plan de estudios 2010-1 Laboratorio 2 Autor: QFB. René Francisco Bassó Quevedo Elaboró Revisó Autorizó QFB. René Francisco Bassó Quevedo MC Christian Rodríguez Arroyo Dr. Alfredo Renán González Ramírez

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Practicas de la materia de Farmacología Básica para estudiantes de Medicina

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GC-FR-012 Rev. 3

Manual de Laboratorio de Farmacología Básica

Clave de la materia: 12667

Plan de estudios 2010-1

Laboratorio 2

Autor: QFB. René Francisco Bassó Quevedo

Elaboró Revisó Autorizó

QFB. René Francisco Bassó Quevedo MC Christian Rodríguez Arroyo Dr. Alfredo Renán González Ramírez

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INDICE

I. INTRODUCCIÓN ....................................................................................................................... 3

II. COMPETENCIA GENERAL DE LA ASIGNATURA ................................................................... 3

III. REGLAMENTO DE LABORATORIO ....................................................................................... 3

IV. PROGRAMACION DE PRÁCTICAS .............................................................................................. 4

1. Sesión No. 1: Encuadre y Manejo de Residuos Peligrosos Biológico-Infecciosos (R.P.B.I.) en el Laboratorio. ........................................................................................................................................................ 4

1. Sesión No. 2: Problemas Relacionados con los Medicamentos ............................................................ 11

1. Sesión No. 3: Formas farmacéuticas ....................................................................................................... 12

1. Sesión No. 4: Vías de administración de los medicamentos ................................................................. 13

1. Sesión No. 5: La receta médica ............................................................................................................... 15

1. Sesión No. 6: Absorción de fármacos ...................................................................................................... 16

1. Sesión No. 7 y 8: Distribución de Fármacos ............................................................................................. 18

1. Sesión No. 9 y 10: Biotransformación ..................................................................................................... 21

1. Sesión No. 11 y 12: Eliminación de fármacos .......................................................................................... 23

1. Sesión No. 13: Variabilidad Biológica ..................................................................................................... 26

1. Sesión No. 14 y 15: Educación Farmacéutica ........................................................................................ 28

1. Sesión No. 16: Bloqueadores de la placa neuromuscular ....................................................................... 29

V. ANEXOS .................................................................................................................................... 30

VI. TABLA DE CAMBIOS ................................................................................................................ 31

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I. INTRODUCCIÓN La educación de un medico está conformada por una variada gama de ciencias que, por sí mismas cada una podría ser la base una carrera profesional, tal es el caso de la farmacología. El cumulo de conocimientos que esta ciencia abarca, hace difícil que durante el curso de la educación profesional del futuro medico sean dominados por este, sin embargo, nuestro compromiso como docentes es brindarles las herramientas básicas para que seleccionen el medicamento adecuado, después de haber hecho el diagnostico preciso. Estas bases incluyen los principios de farmacocinética y farmacodinamia que comparten los principios activos, así como las generalidades de los principales grupos terapéuticos.

Haciendo eco del proverbio chino: "Oigo y olvido. Veo y recuerdo. Hago y entiendo.”, hemos diseñado el presente Manual de Prácticas de Laboratorio de Farmacología Básica de tal manera que el estudiante de la carrera de medicina, tenga la oportunidad de realizar actividades practicas que apoyen la parte teórica de la materia, esto es, mediante experimentos sencillos, actividades de investigación y diversas tareas, el estudiante con la guía del profesor, podrá “hacer” prácticas de laboratorio que demuestren lo aprendido en clase.

En el manual se pueden identificar tres partes, en la primera se encuentran practicas relacionadas con los temas más generales en farmacología, vías de administración, formas farmacéuticas y elaboración de la receta médica, entre otras; mención aparte debe hacerse a la práctica número uno, la cual se comparte de común acuerdo con los profesores de los diferentes laboratorios en todos los manuales de prácticas, es la que corresponde al Manejo de los Residuos Peligrosos Biológico-Infecciosos (RPBI), la razón principal es reforzar de manera continua las buenas prácticas del manejo de todos aquellos elementos que se generan durante la realización de las practicas, mismas actividades que se deberán realizar durante su ejercicio profesional.

La segunda parte corresponde a los temas de farmacocinética, en este bloque se incluyen practicas que demuestran el tránsito de los fármacos a través del paciente, por ultimo un par de prácticas ayudan al alumno a comprender el mecanismo de acción por medio del cual se ejerce el efecto farmacológico de los medicamentos.

Esperamos sinceramente que este material cumpla con el cometido de lograr en que el alumno desarrolle las competencias planteadas al inicio de cada sesión y de la materia en lo general. Así mismo le solicitamos amablemente nos haga llegar cualquier comentario o sugerencia que pueda mejorar ediciones futuras de este manual.

II. COMPETENCIA GENERAL DE LA ASIGNATURA Comprender y demostrar los fundamentos teórico-prácticos de la absorción, distribución, metabolismo, eliminación, mecanismo de acción, efectos deseables y no deseables de los fármacos, así como su origen, características fisicoquímica, clasificación y usos terapéuticos, con el fin de prescribir racionalmente los medicamentos, a través de realizar esquemas, cálculos farmacéuticos y prácticas de laboratorio, con responsabilidad y conciencia social.

III. REGLAMENTO DE LABORATORIO Para el logro de las competencias de Farmacología Básica, es necesario que el usuario respete el reglamento general de los laboratorios que puede consultar en la página electrónica de la Facultad.

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IV. PROGRAMACION DE PRÁCTICAS

1. Sesión No. 1: Encuadre y Manejo de Residuos Peligrosos Biológico-Infecciosos (R.P.B.I.)

en el Laboratorio.

2. Competencia a desarrollar en la sesión Aplicar las medidas de bioseguridad más importantes en el laboratorio de y realizar la identificación, manejo, envasado

y recolección de los residuos peligrosos biológico infecciosos (R.P.B.I.) en forma adecuada y segura, de acuerdo a la

NOM-087-SEMARNAT--SSA1-2002, seleccionando apropiadamente el contenedor para la deposición de residuos

evitando contaminación y promoviendo el manejo correcto de los RPBI y que identifique los organismos

gubernamentales involucrados en el manejo de RPBI para que en su práctica médica pueda realizar una buena

disposición de los residuos.

3. Mecanismos de evaluación y evidencia de desempeño. Identificar y disponer los residuos peligrosos biológico-infecciosos (RPBI)

4. Fundamento teórico e información de apoyo. En la realización de las prácticas del Laboratorio de Farmacología Básica, se generan R.P.B.I. por lo que es importante

conocer y aplicar las Normas Oficiales Mexicanas en especial la NOM-087-SEMARNAT-SSA1-2002 y la guía de

cumplimiento de la Norma Oficial Mexicana.

Es importante considerar minimizar la generación de RPBI identificando correctamente a manera de y segregar

los materiales que NO los contengan, por ejemplo: papel de envoltura de: gasa estéril, jeringa, protector de las

agujas, etc. En el desarrollo de las actividades del laboratorio se deberá separar adecuadamente los materiales que

son reciclables, depositándolos en los recipientes destinados para su posterior tratamiento y recuperación (Ejemplo:

tubos de ensayo, matraces, etc.).

En el manejo de R.P.B.I. se deberán utilizar los implementos de protección personal para el su manejo e

identificar los sitios designados en el laboratorio para depositarlos. El depósito y envasado de RPBI se realizara de

acuerdo a la siguiente tabla, observando que los recipientes solo se llenarán hasta las ¾ partes de su capacidad. Los

depósitos se etiquetaran con la leyenda PELIGRO: RESIDUO PELIGROSO (SÓLIDO O LIQUIDO) BIOLOGICO

INFECCIOSO.

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TABLA No. 1: IDENTIFICACION Y CLASIFICACION DE LOS R.P.B.I.

Denominación Estado físico Envasado Descripción

Sangre

Liquido

Envase Rojo Hermético

La sangre y sus componentes, sólo en su forma líquida, así como sus derivados no comerciales, incluyendo las células progenitoras, hematopoyéticas y las fracciones celulares o acelulares de la sangre resultante (hemoderivados), Suero y plasma tubo de vidrio.

Sólido y líquidos en recipientes con tapa

Bolsa roja

Coágulo, suero y plasma en tubo de plástico con tapadera.

Cultivos y cepas de agentes infecciosos

Solidó

Bolsa roja

Cultivos en caja y placas de Microescan

Solidó

Recipiente hermético

Cultivos en Tubos de vidrio

Sólidos

Bolsa roja

Guantes contaminados, medios de transporte, asas de plástico.

Liquido

Recipiente hermético

Colorantes y líquido de enjuague de tinciones.

Patológicos

Sólido/liquido

Bolsa Amarilla / Envase

amarillo

Biopsias, órganos, animales, tejidos.

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El temporal de depósito se encuentra previamente señalado en el Laboratorio con el símbolo universal que lo identifica y todos los recipientes que contiene RPBI deben ser colocados en estos sitios. El personal responsable del manejo de los RPBI de los laboratorios son los auxiliares de laboratorio y llevan el registro de su generación y transporte al área temporal de la Facultad, también es responsable de la recolección, y transporte al almacén general, almacenamiento y entrega a la empresa tratadora, registro y elaboración de bitácoras y reportes, disposición y tratamiento interno y externo y capacitación y monitoreo de acuerdo a la norma NOM-087-SEMARNAT-SSA1-2002.

Los lugares que ofrecen atención medica y los centros de investigación y área de docencia, son considerados como establecimientos generadores de materiales contaminados con agentes biológicos infecciosos, estos desechos se denominan Residuos peligrosos biológicos infecciosos RPBI, su manejo y disposición inadecuados representa peligro para la salud del personal que trabaja y acude a estos sitios.

Ejemplos de áreas temporales (RPBI) previamente señaladas en el laboratorio

Generalidades de los RPBI ¿Qué factores se requieren para que los residuos sean considerados como RPBI?

Para que un residuo sea considerado RPBI debe contener agentes biológicos infecciosos que de acuerdo a la norma se definen como “cualquier microorganismo capaz de producir enfermedades”.

Residuos no anatómicos

Sólido

Bolsa Roja

Gasas, hisopos, papel, guantes, algodón que se encuentre empapado de sangre u otro contaminante, Tiras reactivas, asas de plástico, placas de reacción, cubetas de plástico para el espectro, jeringas, pipetas transfer de plástico, abatelenguas

Residuos punzocortantes

Sólido

Envase rojo hermético para punzocortantes

Lancetas, agujas, agujas de bolsa de sangría, capilares de hematocrito, aplicadores, tubos rotos, portaobjetos y cubreobjetos, puntillas, jeringas de insulina.

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¿Cómo se clasifican los RPBI y en qué áreas se pueden generar?

Tabla No. 2: ÁREAS DONDE SE PUEDEN GENERAR LOS RPBI Y SU CLASIFICACION

CLASIFICACIÓN ÁREAS DONDE SE PUEDEN GENERAR

LA SANGRE La sangre y sus componentes, sólo en su forma líquida, así como sus derivados no comerciales, incluyendo las células progenitoras, hematopoyéticas y las fracciones celulares o acelulares de la sangre resultante (hemoderivados). No se considera como RPBI a la sangre seca.

● Laboratorios Clínicos ● Banco de Sangre ● Quirófanos ● Urgencias ● Bioterios ● Centro de investigación

LOS CULTIVOS Y CEPAS DE AGENTES BIOLÓGICOINFECCIOSOS: Los cultivos generados en los procedimientos de diagnóstico e investigación, así como los generados en la producción y control de agentes biológicoinfecciosos. Utensilios desechables transferir, inocular y mezclar cultivos de agentes biológicoinfecciosos.

● Laboratorios de Microbiología ● Centro de investigación y diagnostico

PATOLÓGICOS: Los tejidos, órganos y partes que se extirpan o remueven durante las necropsias, la cirugía o algún otro tipo de intervención quirúrgica y que no se encuentren en formol. Son líquidos patológicos los fluidos corporales No se consideran RPBI la orina y el excremento, sin embargo, cuando estos provengan de pacientes con enfermedades infectocontagiosas graves deben ser desinfectadas con hipoclorito de sodio o formol antes de ser desechadas. Muestras biológicas para análisis químico, microbiológico, citológico e histológico. No se consideran RPBI aquellos tejidos, órganos y partes del cuerpo que se encuentren en formol (líquido sinovial, pericárdico, pleural, cefalorraquídeo, peritoneal y pulmonar). Los cadáveres y partes de animales que fueron inoculados con agentes entero- patógenos en centros de investigación y bioterios.

● Laboratorios de patología ● Laboratorios Clínicos ● Quirófanos ● Salas de labor ● Área de hospitalización para pacientes con sospecha de alguna enfermedad infecciosa ● Salas de necropsia ● Centro de investigación ● Bioterios

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Únicamente se consideran RPBI los cadáveres de animales o partes de ellos que fueron inoculados con agentes patógenos.

NO ANATOMICOS: Recipientes desechables que contengan sangre líquida. Materiales de curación empapados, saturados o goteando sangre o fluidos corporales. Los sellos de agua desechables, serán considerados como RPBI no anatómico. Materiales desechables que contengan secreciones pulmonares de pacientes sospechosos de tuberculosis o sospecha/diagnóstico fiebres hemorrágicas o enfermedades infecciosas, según sea determinado por la SSA mediante memorándum interno o el Boletín Epidemiológico. Materiales desechables usados para el cultivo de agentes infecciosos. Materiales absorbentes utilizados en las jaulas de animales que hayan sido expuestos a agentes patógenos.

● Laboratorios Clínicos ● Banco de sangre ● Quirófanos ● Urgencias

OBJETOS PUNZOCORTANTES: Los que han estado en contacto con humanos o animales o sus muestras biológicas durante el diagnóstico y tratamiento, únicamente tubos capilares, agujas de jeringas desechables, navajas, lancetas, agujas hipodérmicas, agujas de sutura, agujas de acupuntura y para tatuaje, bisturís y estiletes de catéter. Excepto material de vidrio roto, utilizado en el laboratorio, ya que éste se deberá desinfectar o esterilizar para ser dispuesto como basura Municipal.

● Área de atención a pacientes ● Hospitalización ● unidades de manejo ambulatorio ● Laboratorios Clínicos ● Banco de sangre ● Quirófanos ● Urgencias ● Toma de muestras ● Laboratorios de patología ● Bioterios

Organismos gubernamentales involucrados en el manejo de RPBI Antecedentes

El Plan Nacional de Desarrollo 2001-2006 establece como uno de sus objetivos rectores lograr un desarrollo social y humano en

armonía con la naturaleza; para llevar a cabo lo anterior se plantea como una de sus estrategias detener y revertir la

contaminación del agua, aire y suelo. Otro de sus objetivos rectores es promover el desarrollo económico regional y equilibrado,

a través de la estrategia para garantizar la sustentabilidad ecológica del desarrollo económico en todas las regiones del país, en

donde la protección y restauración del hábitat natural de las diferentes zonas se mantendrán como propósitos no discutibles en

los procesos de desarrollo económico.

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El 17 de febrero de 2003 fue publicada en el Diario Oficial de la Federación(DOF), la Norma Oficial Mexicana NOM-087-

SEMARNAT-SSA1-2002, Protección ambiental-Salud ambiental-Residuos peligrosos biológico-infecciosos-Clasificación y

especificaciones de manejo; cuyo objetivo es establecer la clasificación de estos residuos, así como las especificaciones para su

manejo, misma que es de observancia obligatoria para los establecimientos que generen dichos residuos y los prestadores de

servicios que tengan relación directa con los mismos.

En la NOM-087-SEMARNAT-SSA1-2002 establece que la SEMARNAT, a través de la Procuraduría Federal de Protección

al Ambiente y la Secretaría de Salud, a través de la Comisión Federal para la Protección Contra Riesgos Sanitarios, en el ámbito de

sus respectivas atribuciones y competencias, vigilarán el cumplimiento de la citada Norma Oficial Mexicana de conformidad con

las Bases de Colaboración que celebren entre “SALUD” y “LA SEMARNAT”, mismas que se publicarán en el DOF.

Que “LA COFEPRIS” es un Órgano Desconcentrado de la Secretaría de Salud, con autonomía técnica, administrativa y

operativa, el cual tiene a su cargo, entre otros, proponer e instrumentar la política nacional de protección contra riesgos

sanitarios en materia de sustancias tóxicas o peligrosas para la salud, identificar, analizar, evaluar, regular, controlar, fomentar y

difundir las condiciones y requisitos para la prevención y manejo de los riesgos sanitarios, ejercer las acciones de control,

regulación y fomento sanitario correspondientes, para prevenir y reducir los riesgos sanitarios derivados de la exposición de la

población a factores químicos, físicos y biológicos, así como de prevención y control de los efectos nocivos de los factores

ambientales en la salud del hombre, salud ocupacional y saneamiento básico, conforme al artículo 17 bis fracción I de la Ley

General de Salud y el artículo 2o. apartado C, fracción X y el artículo 3o. fracciones V y X del Reglamento de la Comisión Federal

para la Protección contra Riesgos Sanitarios.

5. Equipo, Instrumental, Material e insumos. a) Recipientes y bolsas especiales para depósito de R.P.B.I. b) Jeringas, tubos, gasas, asas de inoculación, caja petri, etc.

6. Metodología de la sesión. Identifique el área de depósito de los R.P.B.I. en el Laboratorio. Identifique, separe y envase los materiales de acuerdo a las tablas 1 y 2

7. Bibliografía.

a) Exposure to Blood, What Healthcare Personnel Need to Know. Disease Control and Prevention National

Center for Infectious Diseases Divison of Healthcare Quality Promotion and Division of Viral Hepatitis. Junio del 2003.

http://www.cdc.gov/ncidod/dhqp/pdf/bbp/Exp_to_Blood.pdf

b) NORMA Oficial Mexicana NOM-087-ECOL-SSA1-2002, Protección ambiental – Salud ambiental - Residuos

peligrosos biológico-infecciosos - Clasificación y especificaciones de manejo. Secretaría de Medio Ambiente y

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Recursos Naturales [en línea]. [Fecha de acceso 20 de enero de 2003].

http://www.salud.gob.mx/unidades/cdi/nom/087ecolssa.html

c) La guía de cumplimiento de la Norma Oficial Mexicana NOM-087. Colaboración entre la Secretaría de Medio

Ambiente y Recursos Naturales, la Procuraduría Federal de Protección al Ambiente, la Secretaría de Salud, y la

Comisión Federal para la Protección contra Riesgos Sanitarios. [Fecha de acceso martes 14 de abril del 2009].

http://www.cofepris.gob.mx/work/sites/cfp/resources/LocalContent/1909/5/GuiaNOM087.pdf

d) Norma Oficial Mexicana NOM-003-SSA2-1993, Para la disposición de sangre humana y sus componentes con

fines terapéuticos. Secretaría de Salud. [Fecha de acceso 18 de julio de 1994].

http://www.salud.gob.mx/unidades/cdi/nom/003ssa23.html

e) Norma Oficial Mexicana NOM-010-SSA2-1993, Para la prevención y control de la infección por Virus de la

Inmunodeficiencia Humana. Secretaría de Salud. [Fecha de acceso 18 de julio de 1994].

http://www.salud.gob.mx/unidades/cdi/nom/010ssa23.html

f) Norma Oficial Mexicana NOM-013-SSA2-1994, Para la prevención y control de las enfermedades bucales.

Secretaría de Salud. [Fecha de acceso 11 de enero de 1999].

g) http://www.salud.gob.mx/unidades/cdi/nom/m013ssa24.html

h) NORMA Oficial Mexicana NOM-036-SSA2-2002, Prevención y control de enfermedades. Aplicación de vacunas,

toxoides, sueros, antitoxinas e inmunoglobulinas en el humano. Secretaría de Salud. [Fecha de acceso 17 de julio de

2003]. http://www.salud.gob.mx/unidades/cdi/nom/036ssa202.html

i) OMS. Manual de Bioseguridad en Laboratorios de Microbiología y Biomedicina. CDC. 4a. Edición. OMS-CD, 2006.

j) UABC. Reglamento Interno de la Facultad de Medicina y Psicología. FMP. 2010.

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1. Sesión No. 2: Problemas Relacionados con los Medicamentos

2. Competencia a desarrollar en la sesión Juzgar la importancia de la presentación de problemas relacionados con los medicamentos en la comunidad, a través del análisis de experiencias en la comunidad, desarrollando empatía por las personas carentes de información sobre el uso correcto de sus medicamentos.

3. Mecanismos de evaluación y Evidencia de desempeño.

Entregar por alumno 10 encuestas contestadas. Elaborar un análisis estadístico con los resultados de las encuestas e identificar los problemas relacionados con los medicamentos (PRM). Realizar una propuesta para resolver uno de los PRM.

4. Fundamento teórico e información de apoyo.

El médico generalmente es la primera persona que habla de régimen terapéutico con el paciente. Algunos estudios han mostrado que los pacientes no recuerdan más que de 20% a 40% de lo que les dicen los médicos acerca del tratamiento medicamentoso. A menudo el paciente esta preocupado sobre su diagnóstico y la gravedad de su enfermedad; por tanto, la ansiedad asociada con la visita inicial puede impedir que el paciente “reciba” y comprenda los detalles del tratamiento prescrito. El médico tiene esta oportunidad inicial de tranquilizar al paciente y animarlo o motivarlo a interesarse de forma activa en el manejo de su tratamiento. La educación del paciente se asocia con un grado de modificación de su conducta. Se debe ser capaz de motivar al paciente a aprender y tomar parte activa en su régimen terapéutico. Históricamente, los profesionales de la salud han trabajado principalmente con diagnósticos y prescripciones, pero demasiado a menudo han ignorado la educación del paciente para asegurar la adhesión a los regímenes prescritos. Se ha publicado que existe incumplimiento del 30% a 50% de los pacientes que reciben medicamentos. La causa de dicho incumplimiento con los medicamentos puede ir desde una falta de educación sobre los regímenes terapéuticos hasta restricciones financieras que imposibilitan la adquisición de los medicamentos. Otros estudios han demostrado que la asesoría oral y/o escrita en el momento del inicio del tratamiento ha dado como resultado un significativo aumento del cumplimiento de los pacientes. También se ha demostrado la importancia de la asesoria y educación continuada de un paciente más allá del encuentro inicial.

5. Equipo, Instrumental, Material e insumos.

Encuestas presentada por el profesor. Material didáctico y de oficina.

6. Metodología de la sesión.

Al inicio del semestre recibirán 10 encuestas por persona para realizarla en la comunidad. Analizar los resultados de las encuestas realizadas por los integrantes de cada equipo. Compartir la información con el resto del grupo.

7. Bibliografía.

a) Magaly Rdz de Bittner, y Nora Girón Aguilar; Atención farmacéutica al paciente ambulatorio; OMS/OPS; 1997. b) Max D. Ray; Técnicas básicas para el ejercicio de la farmacia clínica; 1ra.Edición, ASHP; 2000.

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1. Sesión No. 3: Formas farmacéuticas 2. Competencia a desarrollar en la sesión

Reconocer las ventajas y desventajas de las formas farmacéuticas, para seleccionar la más adecuada de acuerdo a las necesidades del paciente, protegiéndolo al minimizar los riesgos de su administración.

3. Mecanismos de evaluación y Evidencia de desempeño.

Realizar una monografía en formato audiovisual sobre una forma farmacéutica (individual). Realizar una maqueta con formas farmacéuticas y su correcta administración (grupo). Identificar los sistemas de medidas usados en la administración de medicamentos.

4. Fundamento teórico e información de apoyo.

Se denominan preparados farmacéuticos, formas medicamentosas, formas farmacéuticas o de dosificación, o simplemente

preparados a los productos elaborados a partir de las drogas para poder ser administradas al organismo. Estos preparados pueden tener una o varias drogas y son confeccionadas por el farmacéutico o la industria farmacéutica. Existen en estado sólido, semisólido, líquido y gaseoso, soluciones, suspensiones, emulsiones o dispersiones coloidales. En general las drogas y preparados poseen tres nombres principales: a) nombre químico b) nombre genérico c) nombre registrado.

5. Equipo, Instrumental, Material e insumos. Medicamentos de diferentes formas farmacéuticas (los trae el alumno). Pueden ser reales, fotos, dibujos, etc. Instrumentos para administrar medicamentos. (los trae el alumno)

6. Metodología de la sesión.

A. Investigar sobre una forma farmacéutica los siguientes aspectos: Descripción, Elaboración, Ventajas/Desventajas, Modo de administración

B. Realizar una presentación audiovisual breve con la información adquirida C. Elaborar por sección una maqueta con la información presentada

7. Bibliografía.

a) Carmen D. Luis, María A. Camacho y col; Elaboración de preparados farmacéuticos y para farmacéuticos, 1ra Edición; McGraw Hill España, 2001.

b) Alfonso Genaro; Remington Farmacia; 19na Edición; Editorial Medica Panamericana; Argentina, 1998.

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1. Sesión No. 4: Vías de administración de los medicamentos

2. Competencia a desarrollar en la sesión Reconocer las ventajas y desventajas de las vías de administración parenterales, para seleccionar la más adecuada de acuerdo a las necesidades del paciente, demostrando un compromiso de servicio para no dañar física y emocionalmente al paciente.

3. Mecanismos de evaluación y Evidencia de desempeño.

Realizar un álbum gráfico (fotos, imágenes o dibujos) con la secuencia de pasos para cada vía de administración Disponer los RPBI generados de manera adecuada evidenciándolo con fotos del evento y etiquetas.

4. Fundamento teórico e información de apoyo. Las vías de administración son diferentes según el caso, la edad, sexo, enfermedad del paciente etc. Las razones pueden ser múltiples y van desde una simple imposibilidad para administrar por determinada vía debido a solubilidad, distribución, biotransformación y excreción, que pueden provocar daño, que inclusive puede llegar a ser fatal a nuestro paciente o animal de experimentación. La farmacológica experimental utiliza animales de laboratorio y la aplicación de drogas por diversas vías de administración a los mismos. Es conveniente por lo tanto que el alumno se familiarice con dichas vías, por lo que a continuación se hará una evaluación de cada una de ellas. El conocimiento de estos factores determina en todos los casos la vía de administración que permite los resultados mejores. Teniendo en cuenta el concepto anterior, se llega a a la conclusión de que: NO SE PUEDE, NI SE DEBE UTILIZAR CUALQUIER VIA DE ADMINISTRACION.

5. Equipo, Instrumental, Material e insumos. 30 jeringas de 1 mL (Insulina) 1 jeringa de 10 mL 5 bolsas de solución de cloruro de sodio 0.9% estéril de 100 mL (solución fisiológica) 5 equipos de venoclisis estéril

5 catéteres No. 22 5 catéteres No. 24 Torundas de algodón con alcohol Venditas adhesivas redondas (curitas) 2 tripies para soluciones

6. Metodología de la sesión.

I.-VIA SUBCUTÁNEA:

a) Cargar una jeringa de insulina con 0.5 - 1 mL de solución fisiológica b) Limpiar el área del antebrazo a la altura del músculo deltoides c) Inyectar en la solución con la jeringa en ángulo recto

II.- VIA TRANSDERMICA

a) Cargar una jeringa de insulina con 0.5 mL de solución fisiológica b) Limpiar el área dorsal del brazo c) Inyectar la solución con la jeringa en ángulo menor a 10° de tal manera que la aguja apenas atraviese la epidermis d) Retirar la jeringa al momento de formarse una ¨burbuja¨ sobre la piel

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III.- VIA INTRAVENOSA:

a) Unir el sistema de venoclisis con la bolsa de solución fisiológica b) Limpiar el área a puncionar c) Puncionar la vena con un catéter estéril y verificar la permeabilidad de la vena d) Unir el sistema de venoclisis al catéter y fijarlo de manera segura e) Abrir la llave para permitir el flujo de la solución f) Al finalizar la administración del contenido de la bolsa cerrar la llave y retirar el catéter

IV.- VIA INTRAMUSCULAR

a) Cargar una jeringa de 10 mL con 5 mL de solución fisiológica b) Limpiar el área del cuadrante superior externo del glúteo del paciente c) Inyectar en la solución con la jeringa en ángulo recto

7. Bibliografía.

a) Bertram G. Katzung; Farmacología Básica y Clínica, 11ma Edición, Mcgraw Hill 2010 b) Joel G. Harman y Lee E. Limberd, Bases Farmacológicas de la Terapéutica, 9na Edición,

Mcgraw Hill-Interamericana, México, 2007 c) Medical Pharmacology . Andres Goth 6 ed. 11 ed. 1996

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1. Sesión No. 5: La receta médica 2. Competencia a desarrollar en la sesión

Utilizar los conceptos clínicos y legales necesarios para elaborar una prescripción responsable de medicamentos, valorando las condiciones socioculturales de los pacientes para una adecuada comunicación de la información necesaria para el apego terapéutico.

3. Mecanismos de evaluación y Evidencia de desempeño.

Elaborar en forma completa y correcta una receta médica. Identificar las clasificaciones de medicamentos según la legislación Mexicana

4. Fundamento teórico e información de apoyo.

La farmacografía estudia las normas que se siguen en la prescripción de los medicamentos, en la forma en que se administra y la incompatibilidad que puede presentarse durante su empleo. Una prescripción o receta es: Una orden escrita, por un medico al farmacéutico. Además del nombre del paciente y del médico, la prescripción debe contener el nombre o nombres de las drogas administradas y sus cantidades, instrucciones para el boticario e indicaciones para el paciente. El arte de recetar por escrito ha ido declinando en la medicina moderna, a consecuencia de diversos hechos. La mayor parte de farmacéuticos y el papel del boticario casi siempre consiste en estrictamente en venderlo. También se ha abandonado la práctica de escribir recetas largas y complicadas que contenían muchos ingredientes activos, coadyuvantes, excipientes y vehículos, en favor del uso de compuestos puros únicos. Incluso cuando interesan combinaciones de diversos ingredientes activos, las compañías farmacéuticas suelen tener disponibles varias formas de combinaciones adecuadas. Puede decirse que esta práctica priva al medico de la oportunidad de ajustar los diversos componentes de una mezcla a las necesidades individuales del paciente. La costumbre de prescribir producto de patente también tiene otros inconvenientes. El médico puede estar tan acostumbrado a prescribir una mezcla de fármacos con un nombre patentado, que quizá no este muy seguro de cuales sean los componentes individuales de ellos, alguno de los cuales puede resultar innecesario, incluso indeseable en casos determinados.

5. Equipo, Instrumental, Material e insumos. Material de oficina

6. Metodología de la sesión.

A. Investigar la clasificación de los medicamentos según la Ley General de Salud. i. Origen / Naturaleza ii. Preparación iii. Venta

B. Investigar las características y requisitos que deben tener las recetas según la Ley General de Salud y la práctica médica. i. Estándar ii. Controlados iii. Especial

C. Elaborar una receta médica.

7. Bibliografía.

a) Nicandro Mendoza Patiño; Farmacología Médica; 1ra Edición; Ed. Panamericana, México, 2008. b) Ley General de Salud. Estados Unidos Mexicanos, 2010, http://www.diputados.gob.mx/LeyesBiblio/pdf/142.pdf c) Suplemento para farmacia, Farmacopea de los Estados Unidos Mexicanos. 9na edición, Secretaria de Salud, México 2010

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1. Sesión No. 6: Absorción de fármacos 2. Competencia a desarrollar en la sesión

Describir los mecanismos de transporte a través de membranas biológicas, para comprender el proceso de absorción de fármacos “in Vitro”, trabajando en equipo y de manera ordenada.

3. Mecanismos de evaluación y Evidencia de desempeño.

Elaborar una tabla con los resultados obtenidos. Elaborar una gráfica con los datos de la tabla (tiempo vs. concentración). Disponer los RPBI generados de manera adecuada evidenciándolo con fotos del evento y etiquetas.

4. Fundamento teórico e información de apoyo. El sistema gastrointestinal se encarga de transportar el bolo alimenticio mediante el evento llamado peristaltismo que es la contracción del la parte donde el bolo alimenticio hace contacto y con relajación distal para que se avance el bolo alimenticio. Esto hace posible que toda sustancia que se encuentre en el intestino sea transportada a la circulación sanguínea. La motilidad intestinal está regulada por el sistema nervioso parasimpático por el décimo par craneal el neumogástrico por medio de su neurotransmisor la acetilcolina también interviene sustancias controladas por el sistema humoral entérico. En esta práctica se van a comprobar el transporte de fármacos utilizando para ello como modelo la absorción de glucosa en diferentes porciones del intestino glucosa.

5. Equipo, Instrumental, Material e insumos.

1 Rata 1 Espectrofotómetro 1 Equipo de disección, 1 Caja de celdas 1 Mesa de disección 3 Gradillas 1 Baño de órganos 30 Tubos de ensaye de 12 x 100 2 Soporte universal con accesorios 2 Micropipetas de 10 µL 1 Sutura 1 Caja de puntillas 1 Lt. Solución de Ringer de mamífero 2 Pipetas mohr de 5 mL 1 Frasco de pentobarbital o éter 1 Kit de reactivo de glucosa 1 Jeringa de 1 mL 1 Ampolleta de cloruro de potasio 1 Jeringa de 10 mL 2 Termómetros 1 Frasco glucosa al 50 % 4 Pipetas transfer grandes 1 Bolsa amarilla para RPBI 4 vasos de precipitados de 250 y 500 mL 1 Parrilla eléctrica

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6. Metodología de la sesión. a) Integrar el baño para órganos a 37°C y preparar el soporte y los accesorios. b) Caliente la solución Ringer a 37°C. c) Anestesiar a la rata con éter etílico inhalado o pentobarbital intraperitoneal (dosis: a 1 ml por 2,5 Kg. de peso). d) Incidir la línea media abdominal por planos hasta llegar a cavidad abdominal. e) Corte dos segmentos de intestino delgado de aproximadamente 10 cm y proceda a lavar ambos con solución Ringar a 37 °C. Posteriormente invierta uno de ellos. f) Sacrifique a la rata con cloruro de potasio y disponga el espécimen correctamente. g) En cada porción de intestino anudar un extremo con sutura o hilo quirúrgico, de tal manera que se forme un ¨saco¨; donde colocara 5 mL de glucosa al 50 %, por ultimo anude el otro extremo de cada porción de intestino. h) Colóquelos en compartimientos separados en el baño para órgano con solución Ringer i) Mantener el sistema a 37 °C, durante dos horas. j) Tomar por duplicado muestras de la solución que irriga al “saco de intestino” cada 20 minutos durante dos horas. k) Cuantificar la concentración de glucosa en cada muestra con la metodología indicada por el instructor. l) Disponga los RPBI generados de manera adecuada. m) Registre los resultados en la tabla anexa n) Realice una grafica Tiempo (X) contra Concentración (Y) con los resultados (una grafica para cada intestino)

Tabla de resultados, se debe llenar durante la sesión Intestino Normal Intestino Invertido

M u e s t r a Tiempo Abs 1 A b s 2 Abs promedio Concentración Abs 1 A b s 2 Abs promedio Concentración

7. Bibliografía.

a) Bertram G. Katzung; Farmacología Básica y Clínica, 11ma Edición, Mcgraw Hill 2010 b) Joel G. Harman y Lee E. Limberd, Bases Farmacológicas de la Terapéutica, 9na Edición,

Mcgraw Hill-Interamericana, México, 2007

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1. Sesión No. 7 y 8: Distribución de Fármacos

2. Competencia a desarrollar en la sesión Demostrar el proceso de distribución de fármacos en tejidos y fluidos biológicos mediante la cuantificación de sulfatiazol sódico en diferentes órganos de la rata, por medio de una técnica colorimétrica.

3. Mecanismos de evaluación y Evidencia de desempeño.

Elaborar una tabla con los resultados obtenidos. Disponer los RPBI generados de manera adecuada evidenciándolo con fotos del evento y etiquetas.

4. Fundamento teórico e información de apoyo.

La distribución es un efecto farmacocinético (sistema ADBE), y es un proceso por medio del cual el fármaco que ya se

encuentra en la sangre pasa a todos los órganos y líquidos del organismo. Los perfiles de distribución de los fármacos reflejan ciertos factores fisiológicos y propiedades fisicoquímicas de los agentes. Así puede distinguirse que la distribución está determinada por el gasto cardíaco y el flujo sanguíneo regional de cada órgano (cantidad de sangre que llega a circulación). Órganos como hígado, riñón, corazón y encéfalo, tendrían mayor cantidad de fármaco, que otros menos perfundidos como músculo esquelético y la piel. Conjuntamente con la forma de distribución del flujo sanguíneo, existen factores que determinan que determinan la velocidad de difusión de los fármacos en los tejidos. La unión del fármaco a proteínas del plasma como la albúmina, favorece la formación de complejos fármaco-albúmina que por su tamaño molecular no se distribuyen fácilmente y la velocidad de paso a los diferentes órganos será lenta. Otro factor, importante es el coeficiente de partición; si un fármaco tiene un coeficiente de partición alto, puede quedar "atrapado" en el tejido adiposo y así disminuir su concentración en otros órganos y en la sangre. Un parámetro valioso para estudiar la distribución es el dato hipotético que se conoce como "el volumen de distribución aparente", el cual se refiere como el volumen de líquido que se requeriría para contener todo el fármaco presente en el organismo con la misma concentración que en sangre o en plasma: Vd = Cantidad de fármaco en el organismo Concentración Plasmática

5. Equipo, Instrumental, Material e insumos.

6 Ratas 1 Espectrofotómetro 1 Equipo de disección, 1 Caja de celdas 1 Mesa de disección 3 Gradillas 30 Tubos de ensaye de 12 x 100 1 Sutura 1 Caja de puntillas 1 Lt. Solución de Ringer de mamífero 1 Frasco de pentobarbital o éter 4 Pipetas transfer grandes 1 Jeringa de 1 mL 1 Ampolleta con cloruro de potasio 1 Jeringa de 10 mL 2 Termómetros 1 Bolsa amarilla para RPBI 4 vasos de precipitados de 250 y 500 mL 1 Parrilla eléctrica 1 Balanza 2 canulas para rata

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6. Metodología de la sesión. 1. Cada equipo empleará una rata de 200-250 g de peso, mantenidas en iguales condiciones ambientales, con acceso libre de

agua y alimento. 2. Pesar y marcar cada uno de los animales. 3. Administrar 200 mg/Kg de sulfatiazol sódico a cada una de las ratas, una por vía oral, vía intraperitoneal e intravenosa 4. Permitir la deambulacion libre el tiempo que indique el instructor (10 min, 20, 30, 40, 50 o 60 min.) 5. Transcurrido el tiempo correspondiente a cada rata, se sacrifica al animal y se obtiene 1 g de cada uno de los órganos que

se indican (hígado, riñón cerebro, musculo, corazón y sangre). 6. Colocar las muestras en un portaobjetos limpio y seco, desmenuzar con ayuda de un bisturí y procesar la muestra como se

te indica en la tabla No. 1

TABLA No.1 TÉCNICA MODIFICADA DE BRATTON Y MARSHALL.

MUESTRA TÉCNICA DE EXTRACCIÓN Y ACIDIFICACIÓN

FACTOR DE DILUCIÓN

TÉCNICA PARA DESARROLLAR COLOR

CORAZÓN CEREBRO HÍGADO RIÑÓN MUSCULO SANGRE

1.-Desmenuce un gramo de la muestra y paselo a un tubo. 2.-Agregue 10 ml de NaOH 0.1 N 3.-Homogenizar en vortex 4.-Déjelo reposar 15 min. 5.- Tome 2 ml del sobrenadante 6.-Agregue 2 ml de ácido- tricloroacético 15 % y agitar por 30 seg 7.-Añada 6 ml de H2O destilada y agite por 30 seg 8.- Centrifugue 5 minutos a 3,000rpm 9.- Tomar 5 ml del sobrenadante y pasarlo a un tubo limpio para procesar el color.

10 1.-A 5 ml del filtrado agregar 1 mL de HCl 4N, 1 ml de nitrito de sodio 0.1% agitar en vortex y deje reposar 3 min. 2.-Agregar 1 ml de sulfamato de amonio 0.5% agitar por 3 min en vortex. 3.-Agregar 1 ml de alfa-naftiletilendiamina 0.1 % y deje reposar 10 min en la obscuridad. 4.-Leer a 545 nm *Blanco: 4 ml de agua destilada y 1 ml de ácido tricloroacético. Y tratar con la misma técnica de color.

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TABLA No.2 CONCENTRACIÓN DE SALFATIAZOL

MUESTRA PESO DE LA MUESTRA

ABSORCIÓN mg/5ML FACTOR DE DILUCIÓN

mg/ml

HÍGADO

RIÑÓN

CEREBRO

CORAZÓN

MUCULO

SANGRE

TABLA No.3 CONCENTRACIÓN DE SULFATIAZOL EN TEJIDOS DE RATA A DIFERENTES TIEMPOS (mg/ml)

MUESTRA

MINUTOS 15 20 25 25 35 40

HÍGADO

RIÑÓN

CEREBRO

MUSCULO

CORAZÓN

SANGRE

7. Bibliografía.

a) Joel G. Harman y Lee E. Limberd, Bases Farmacológicas de la Terapéutica, 9na Edición, Mcgraw Hill-Interamericana, México, 2007

a) Bertram G. Katzung; Farmacología Básica y Clínica, 11ma Edición, Mcgraw Hill 2010

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1. Sesión No. 9 y 10: Biotransformación

2. Competencia a desarrollar en la sesión Identificar los procesos de inducción e inhibición enzimática, para comprender la influencia que tienen unas substancias sobre otras, mediante un experimento “ïn vivo”, demostrando disciplina y respeto por los animales.

3. Mecanismos de evaluación y Evidencia de desempeño. Elaborar las graficas correspondientes al registro de resultados. Disponer los RPBI generados de manera adecuada evidenciándolo con fotos del evento y etiquetas.

4. Fundamento teórico e información de apoyo. La farmacocinética es el estudio en vivo de la absorción, distribución, metabolismo o biotransformación y de la eliminación de un medicamento. Para producir su efecto terapéutico, el medicamento debe alcanzar su lugar de acción en una cantidad adecuada y en un tiempo determinado. Como consecuencia el efecto farmacológico depende del comportamiento del principio activo en el organismo en igual medida que la cantidad administrada. Por lo tanto es de suma importancia tomar en cuenta todos los procesos farmacocinéticas que sufre el fármaco, ya que si estos se ven afectados traerán consecuencias en el resultado que se espera del efecto, ejemplo: si el metabolismo se induce o inhibe, la eliminación se ve afectada, por lo tanto esto puede ocasionar un acumulamiento del fármaco en el cuerpo y llevar a la aparición de reacciones adversas o en el peor de los casos a intoxicaciones.

5. Equipo, Instrumental, Material e insumos. 1 Bolsa amarilla para RPBI 20 Torundas 15 Jeringas de 1 mL 3 Bebedero para ratones con agua 3 Contenedores para ratón con aserrín

2 Bascula para roedores 10 mL Pentobarbital 100 mL Cloroformo o Éter 30 Ratones Comida para ratones

6. Metodología de la sesión.

I.- Pre-tratamiento (días 1 al 7) a) Asignar 10 ratones a cada equipo (Tres). b) Aplicar las substancias correspondientes a cada ratón por 7 días, de acuerdo a la Tabla 1 c) Cada equipo deberá cuidar, limpiar, dar agua y comida a sus respectivos ratones.

Tabla 1

GRUPO PENTOBARBITAL CLOROFORMO o ETER

A dosis (d) = 10 mg/kg/día vía intraperitoneal durante 7 días

--

B --

1 inhalación cada 12 horas en campana hasta perder reflejos (no dormir), durante 7 días

C (CONTROL) -- --

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II.- Fase experimental (día 8) a) Administrar a todos los ratones una dosis (d) de 50 mg de pentobarbital por cada kg de peso, por vía intraperitoneal. b) Medir y registrar el tiempo que tarda cada ratón en dormirse. c) Medir y registrar el tiempo que tarda cada ratón en despertar (dormido). d) Disponer los RPBI generados de manera adecuada evidenciándolo con fotos del evento y etiquetas. Cálculos ANESTESISCO Pentobarbital sódico……..…0.063 g. Dosis = (peso X d) / 1000 g Volumen = (Dosis X 1 mL) / 63 mg Vehículo c.b.p……………...……1 mL. Tabla de resultados (una por grupo de ratones)

Sujeto (# y Grupo)

Peso (g) Dosis (mg) Volumen (mL)

Tiempo para iniciar el efecto (min)

Duración del efecto (min)

1

2

3

4

5

6

7

8

9

10

III.- Resultados

a) Elaborar una grafica con los datos de la tabla de resultados b) Deducir cuál grupo de ratones presenta inducción enzimática y cuál inhibición enzimática

7. Bibliografía. a) Joel G. Harman y Lee E. Limberd, Bases Farmacológicas de la Terapéutica, 9na Edición,

Mcgraw Hill-Interamericana, México, 2007 b) Bertram G. Katzung; Farmacología Básica y Clínica, 11ma Edición, Mcgraw Hill 2010

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1. Sesión No. 11 y 12: Eliminación de fármacos 2. Competencia a desarrollar en la sesión

Determinar la influencia del pH urinario en la excreción de fármacos, mediante la cuantificación un metabolito excretado en orina, trabajando en equipo, con orden y disciplina.

3. Mecanismos de evaluación y Evidencia de desempeño.

Calcula la cantidad total de salicilato en cada una de las muestras de orina. Determinar la cantidad total de salicilato eliminado durante el periodo de muestreo. Comparar los resultados de los tres equipos de trabajo y elabora tus conclusiones. Disponer los RPBI generados de manera adecuada evidenciándolo con fotos del evento y etiquetas.

4. Fundamento teórico e información de apoyo.

El riñón es el órgano de excreción de principios activos y de metabolitos. Pera esto, ejecuta tres funciones: filtración glomerular, secreción tubular y reabsorción tubular. Filtración glomerular: el paso del fármaco del plasma al filtrado glomerular se efectúa a través de la pared del glomérulo por filtración debido a un gradiente de presión. Solamente pueden atravesar esta membrana las moléculas que poseen un tamaño lo suficientemente reducido: las macromoléculas, como la albúmina, las globulinas y otras proteínas plasmáticas no pueden atravesarla, ni mucho menos el fármaco que se encuentre unido a ellas. La velocidad de filtración es función del flujo sanguíneo renal, por lo que en casos de insuficiencia cardiaca se producirá un descenso de la excreción renal de los fármacos. Se trata de un proceso pasivo que no requiere gasto de energía. Secreción tubular: proceso que sigue un mecanismo de transporte activo, que se efectúa en el túbulo proximal, por el que algunos fármacos presentes en la sangre pasan a la luz tubular. Se trata de un proceso saturable, existiendo, por lo tanto, mecanismo de competencia por un mismo sistema de transporte activo. Reabsorción tubular: proceso por el que el fármaco que a llegado a la luz tubular, ya sea por filtración glomerular o por secreción tubular, es reabsorbido a nivel tubular y pasa de nuevo a la sangre. Este proceso se efectúa por difusión pasiva, por lo que influyen notablemente la liposolubilidad, el grado de ionización y el peso molecular del fármaco a reabsorber. Conviene recordar que el pH de la orina puede modificar el grado de ionización de numerosos fármacos y, por tanto, su mayor o menor facilidad para poder ser reabsorbidos y pasar a la sangre o, de forma alternativa, ser excretados en la orina. A la vista de todo lo anterior, se puede afirmar que la velocidad de excreción renal de un fármaco es igual a la velocidad de filtración más la secreción, menos la velocidad de reabsorción.

5. Equipo, Instrumental, Material e insumos.

Material Equipo/Instrumental Insumos 1 matraz volumétrico de 100 ml 1 matraz volumétrico de 50 ml 1 matraz volumétrico de 25 ml 3 pipetas volumétricas de 1 ml 1 pipeta graduada de 5 ml 6 vasos de plástico 3 gradillas 12 tubo de ensaye de 13x120 mm

1 Balanza analítica 1 Espectrofotómetro 3 Agitador vortex

Salicilato de sodio Nitrato férrico - Nonahidratado Cloruro mercúrico Ácido clorhídrico 1N Agua destilada 2 aspirinas de 500 mg por alumno

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Soluciones Reactivo para desarrollar color: Pesar con exactitud y por separado 4 g de nitrato férrico nonahidratado y 4 g de cloruro mercúrico, colocarlos en un matraz volumétrico de 100 mL. Adicionar un poco de agua destilada para disolver, añadir 12 mL de una solución 1 N de ácido clorhídrico y diluir hasta el aforo con agua destilada. Solución patrón de referencia de salicilato de sodio de 100 mcg/mL: Pesar con exactitud 50 mg de salicilato de sodio y depositarlos en un matraz volumétrico de 50 mL, disolver totalmente en 20 mL de orina libre de medicamentos (diluida 1:1 con agua) y llevar hasta el aforo con la misma orina. De esta solución tomar con exactitud una alícuota de 2.5 mL y depositar en un matraz volumétrico de 25 mL, llevar al aforo con agua destilada.

6. Metodología de la sesión.

Método analítico para cuantificar salicilatos en orina. En un tubo de ensaye colocar 1 mL de muestra de orina y adicionar 5 mL del reactivo para desarrollar color, agitar la muestra en vortex durante 1 min. Para obtener una solución transparente; decantar la solución a un nuevo tubo de ensaye y determinar absorbancia a una longitud de onda de 540 nm, ajustando a cero con un blanco de orina preparado a las mismas condiciones que la muestra. De igual manera proceder con 5 mL de la solución patrón de referencia de salicilato de sodio a 100 mcg/mL. I.- Organización

a) El grupo se dividirá en tres equipos. i. Equipo No.1. Estudiará la excreción de aspirina en un pH urinario alcalino.

ii. Equipo No.2: Estudiará la excreción de aspirina en un pH urinario ácido. iii. Equipo No.3: Estudiará la excreción de aspirina en un pH normal.

b) Cada equipo nombrará dos voluntarios, quienes se tomarán aspirina vía oral y procederán de acuerdo al protocolo experimental.

II.- Criterios de inclusión y/o exclusión.

a) Jóvenes sanos mayores de 18 años de edad. b) Sexo masculino o femenino. c) No padecer ningún tipo de enfermedad crónica. d) No estar enfermos al momento del experimento. e) No consumir bebidas alcohólicas, fármacos terapéutico, social o de abuso, durante al menos una semana antes y

durante el experimento, algún. f) Respetar el protocolo experimental, mismo que se le dará a leer y entenderá antes de iniciar el estudio. g) Firmar carta de consentimiento informado, antes de iniciar el estudio.

III.- Protocolo experimental:

a) El día del experimento cada voluntario vaciará completamente la vejiga a las 5:00 am. Llevar a cabo la micción en un vaso de precipitados. Tomar el pH de la orina, anotar el valor en la hoja de registro (ANEXO) y desechar la orina. b) Tomar dos tabletas de aspirina de 500 g con 200 mL de agua natural. Anotar en la hoja de registro la hora exacta de la toma del medicamento. c) A las 6:00 a.m. Tomar la siguiente solución, según corresponda:

i. Equipo No.1 (orina alcalina): tomar 40 mEq (4 g) de bicarbonato de sodio (NAHCO3), posteriormente tomar 12 mEq (1g), cada 4 horas (a las 10:00 am y 2:00 pm).

ii. Equipo No.2 (orina ácida): tomar 4 g de ác. ascórbico, posteriormente tomar 2 g cada 4 horas (10:00 am y 2:00 pm) iii. Equipo No.3 (control): tomar 200 mL de agua natural.

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d) A las 8:00 a.m. consumir un desayuno, el cual consistirá de 2 sándwiches; elaborados con una rebanada de jamón y una de queso, una rodaja de tomate y, lechuga y mayonesa al gusto. Además, una manzana de tamaño mediano. A la 1:00 pm consumir una comida al gusto. Incluir una bebida de té helado, de 300 ml. e) Asegurarse de tomar 200 mL de agua cada hora, las primeras 6 horas post-administración. Después de las 6 horas consumir agua al gusto. f) Durante el experimento no consumir ninguna otra clase de líquidos (bebidas carbonatadas, agua de frutas, agua con saborizantes, etc.). g) Colectar la orina durante 10 horas (ultima orina colectada a las 3:00 p.m.) post-administración del fármaco. Durante este periodo orinar según necesidades fisiológicas. h) Asegurarse cada vez de vaciar completamente la vejiga. Depositar la orina en un vaso de precipitado y medir el volumen total en una probeta graduada. Tomar el pH de la orina. Guardar una alícuota de 10 ml y desechar el resto. Anotar volumen de orina, pH urinario y la hora de micción en la hoja correspondiente. --- Cálculos de salicilato en las muestras de orina:

Concentración de la muestra =

Cantidad en la muestra = Concentración de la muestra X Volumen Cantidad Acumulada = Cantidad de la muestra + Cantidad de la muestra anterior

Influencia del pH Urinario en la Excreción de Fármacos

Hoja de Registro

Fecha: ______________ Nombre del Voluntario: _____________________________________ Edad: Peso: Sexo: M ( ) F ( ) Hora de toma del medicamento: _______ pH Urinario Basal: Equipo: 1.- Acida ( ) 2.- Alcalina ( ) 3.- Control ( )

Numero Muestra

Hora pH

Orina Volumen Excretado

Absorbancia Concentración Cantidad Cantidad Acumulada

1

2

3

4

5

6

7

8

9

10

7. Bibliografía.

a) Eugene L. Parrot y Wirold Saski; Experimental Pharmaceutics; 4ta Edicion, Burgess Puiblishing Company b) Michael Burton, et. al.; Applied Pharmacokinetics & Pharmacodinamics; 4ta Ed, Lippincott Williams & Wilkins, EUA; 2006

(Absorbancia de la muestra) (Concentración solución de referencia)

(Absorbancia solución patrón de referencia)

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1. Sesión No. 13: Variabilidad Biológica 2. Competencia a desarrollar en la sesión

Identificar variables biológicas que justifican la respuesta farmacológica, a través de un modelo experimental, con respeto hacia voluntarios del estudio, con la finalidad de integrar la información al juicio diagnóstico.

3. Mecanismos de evaluación y Evidencia de desempeño.

Registrar los datos completos del experimento Redactar un análisis de las causas de variación en la respuesta farmacológica Elaborar con la información del experimento, un documento con estilo de artículo científico Disponer los RPBI generados de manera adecuada evidenciándolo con fotos del evento y etiquetas

4. Fundamento teórico e información de apoyo.

La estadística es la ciencia que estudia las variaciones y tiene que ver con la colección, análisis, presentación e interpretación de información para evaluar hipótesis en termino de probabilidad, cuando la estadística se utiliza en medicina experimental, medicina clínica o medicina preventiva, se hace con el propósito de valorar y analizar numérica o cuantitativamente los fenómenos biológicos, fundamentalmente en tres casos: a) Distribución de las frecuencias de una magnitud relativamente constante en una especie, pero variable en un individuo a otro y en diversas condiciones. b) Establecer las diferencias y las relaciones entre dos o más fenómenos y descartar la influencia del azar en términos de probabilidades. c) Correlación de dos magnitudes variables que pueden depender o no, una de la otra. El análisis estadístico de los fenómenos físicos, químicos o biológicos es el único medio de estudiar con fruto las magnitudes sujetas a influencias del azar. No es válida una conclusión que esté basada en expresiones tales como” según nuestra experiencia", " en nuestra opinión", etc. La estadística se basa en la teoría de los conjuntos, que es fundamental en la estructura de las matemáticas, un conjunto tiene como sinónimos palabras como: NUESTRA CLASE, AGREGADO, COLECCION, TANTEO. Un conjunto está compuesto de " elementos" que a su vez lo caracterizan y esos elementos pueden ser cualquier cantidad. Es esencial que el conjunto sea definido, esto significa que dado un elemento u objeto se debe establecer con certeza si pertenece o no a un conjunto determinado. La medición de los fenómenos biológicos puede variar a causa de factores ingobernables o accidentales y los valores obtenidos serán diferentes se hace cada medida por separado, sin embargo cada valor se aproxima más o menos a un valor medio, por lo que de decirse que ese conjunto de valores se distribuye en torno a la media (X). Cuando mayor sea el número total de medidas, el valor de la media se acercara al valor verdadero del fenómeno de referencia y la distribución de esas medidas será simétrica porque las variaciones positivas o negativas se equilibran mutuamente. El valor verdadero lo es teóricamente en un conjunto infinitamente grande o universo, pero ante la imposibilidad de obtener ese conjunto o universo, podemos obtener un valor cercano al verdadero si estudiamos una parte de tal universo, o sea efectuar un número finito de medidas, experimentos u observaciones, que constituyen lo que se llama una "Muestra" colección de ensayo o tanteo. La diferencia entre el valor verdadero de un universo y la distribución de los valores en un universo se representa con una grafica que tiene la forma de una campana simétrica y que recibe el nombre de campana de gaus y se dice que la distribución de todos los valores es normal.

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5. Equipo, Instrumental, Material e insumos. Recipientes para recolectar la orina Tiras para medir pH Dos probetas de 100 mL Dos probetas de 10 mL Equipo para la cuantificación de NA, K,

Potenciómetro Osmómetro Densitómetro Medicamentos diuréticos

6. Metodología de la sesión. (dos sesiones) I.- Primera sesión a) Vaciar la vejiga y recolectar una muestra de orina a las 6:00 a.m. b) Tomar una dosis de diurético a las 6:10 a.m., con 100 mL de agua c) A las 8:00 a.m. consumir un desayuno, el cual consistirá de 2 sándwiches; elaborados con una rebanada de jamón y una de

queso, una rodaja de tomate y, lechuga y mayonesa al gusto. Además, una manzana de tamaño mediano. A la 1:00 pm consumir una comida al gusto. Incluir una bebida de té helado, de 200 mL.

d) Tomar 100 mL de agua cada dos horas durante 8 horas e) Recolectar muestras de orina según las necesidades fisiológicas. Anotar la hora exacta de la micción y el volumen de orina. f) Medir y registrar de cada muestra: pH, concentración de Na y K, osmolaridad y densidad g) Disponer los RPBI generados de manera adecuada evidenciándolo con fotos del evento y etiquetas II.- Segunda sesión a) Repetir (las mismas personas) todos los pasos de la primera sesión a excepción de la administración de los medicamentos.

Tabla de resultados, llenar una por persona por sesión

Numero Muestra

Hora pH

Orina Volumen Excretado

Osmolaridad Densidad Sodio Potasio

1

2

3

4

5

6

7

8

9

10

7. Bibliografía.

a) Bertram G. Katzung; Farmacología Básica y Clínica, 11ma Edición, Mcgraw Hill 2010 b) Joel G. Harman y Lee E. Limberd, Bases Farmacológicas de la Terapéutica, 9na Edición,

Mcgraw Hill-Interamericana, México, 2007

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1. Sesión No. 14 y 15: Educación Farmacéutica 2. Competencia a desarrollar en la sesión

Elaborar material didáctico para educar al paciente sobre el uso correcto de los medicamentos, respetando sus creencias, cultura y necesidades, con el fin de lograr el mejor apego terapéutico posible.

3. Mecanismos de evaluación y Evidencia de desempeño.

Elaborar material didáctico de apoyo a la propuesta de la Práctica # 2. Presentar en formato audiovisual el material desarrollado. Presentar el proyecto ante la comunidad (opcional).

4. Fundamento teórico e información de apoyo.

El médico generalmente es la primera persona que habla de régimen terapéutico con el paciente. Algunos estudios han mostrado que los pacientes no recuerdan más que de 20% a 40% de lo que les dicen los médicos acerca del tratamiento medicamentoso. A menudo el paciente está preocupado sobre su diagnóstico y la gravedad de su enfermedad; por tanto, la ansiedad asociada con la visita inicial puede impedir que el paciente “reciba” y comprenda los detalles del tratamiento prescrito. El médico tiene esta oportunidad inicial de tranquilizar al paciente y animarlo o motivarlo a interesarse de forma activa en el manejo de su tratamiento. La educación del paciente se asocia con un grado de modificación de su conducta. Se debe ser capaz de motivar al paciente a aprender y tomar parte activa en su régimen terapéutico. Históricamente, los profesionales de la salud han trabajado principalmente con diagnósticos y prescripciones, pero demasiado a menudo han ignorado la educación del paciente para asegurar la adhesión a los regímenes prescritos. Se ha publicado que existe incumplimiento del 30% a 50% de los pacientes que reciben medicamentos. La causa de dicho incumplimiento con los medicamentos puede ir desde una falta de educación sobre los regímenes terapéuticos hasta restricciones financieras que imposibilitan la adquisición de los medicamentos. Otros estudios han demostrado que la asesoría oral y/o escrita en el momento del inicio del tratamiento ha dado como resultado un significativo aumento del cumplimiento de los pacientes. También se ha demostrado la importancia del asesoramiento y educación continuada de un paciente más allá del encuentro inicial.

5. Equipo, Instrumental, Material e insumos. Encuestas presentada por el profesor. Material didáctico y de oficina.

6. Metodología de la sesión.

Al inicio del semestre recibirán 10 encuestas por persona para realizarla en la comunidad. Analizar los resultados de las encuestas realizadas por los integrantes de cada equipo. Seleccionar un problema con relación al uso de los medicamentos Elaborar un instrumento didáctico que ayude a resolver el problema seleccionado Elaborar una presentación con los resultados y propuestas

7. Bibliografía.

a) Magaly Rdz de Bittner, y Nora Girón Aguilar; Atención farmacéutica al paciente ambulatorio; OMS/OPS; 1997. b) Max D. Ray; Técnicas básicas para el ejercicio de la farmacia clínica; 1ra.Edición, ASHP; 2000.

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1. Sesión No. 16: Bloqueadores de la placa neuromuscular

2. Competencia a desarrollar en la sesión Identificar las manifestaciones clínicas de los bloqueadores neuromusculares, para diferenciar el mecanismo de acción de los bloqueadores despolarizantes y no despolarizantes, demostrando disciplina y respeto por los animales.

3. Mecanismos de evaluación y Evidencia de desempeño. Describir los signos clínicos del efecto de los fármacos Disponer los RPBI generados de manera adecuada evidenciándolo con fotos del evento y etiquetas

4. Fundamento teórico e información de apoyo. Los fármacos anticolinergicos se unen a los receptores de acetilcolina pero no desencadenan los efectos intracelulares usuales que son mediados por la unión fármaco-receptor, es decir son antagonistas de los colino receptores. Existen tres grupos de fármacos con estas características (a) Agentes antimuscarinicos, (b) Bloqueadores ganglionares y (c) Bloqueadores neuromusculares. Estos últimos interfieren con la transmisión de impulsos eferentes en el músculo esquelético, es decir, bloquean la transmisión entre las terminaciones nerviosas motoras y los receptores nicotínicos en la placa neuromuscular del músculo esquelético. Estos fármacos son estructuralmente análogos de la acetilcolina y pueden ser del tipo Despolarízate o bien No Despolarízate. Los bloqueadores neuromusculares son clínicamente útiles durante la cirugía para producir la una relajación muscular completa, sin los efectos depresivos de la anestesia profunda. De acuerdo a su mecanismo de acción los fármacos bloqueadores de la placa neuromuscular se dividen en despolarizantes y no despolarizantes. Los despolarizantes se unen a los receptores de nicotina y actúan de manera similar a la acetilcolina para despolarizar la unión. A diferencia de la acetilcolina los agentes despolarizantes permanecen unidos al receptor por más tiempo, provocando un estimulo constante al receptor. Por otra parte los agentes no despolarizantes se unen a los receptores nicotínicos previniendo la unión de acetilcolina al receptor. Esto a su vez provoca la despolarización de la célula muscular inhibiendo así la contracción muscular.

5. Equipo, Instrumental, Material e insumos. Una solución de Tubocurarina 10 mg/mL Dos jeringas de 1 mL Una solución de Succinilcolina 10 mg mL Dos pollos

6. Metodología de la sesión. a) Inyectar por vía intraperitoneal 0.2 mL de la solución correspondiente según la lista anexa

i. Pollo 1: Tubocurarina (2 mg) ii. Pollo 2: Succinilcolina (2 mg)

b) Observar el estado normal de los animales y el que resulta tras administrar el fármaco; anotar los resultados en la tabla.

TUBOCURARINA SCUCCINILCOLINA

OPISTÓTONOS

PARÁLISIS FLÁCIDA

Como alternativa deseable se utilizara un video con la parte experimental pregrabada

7. Bibliografía. a) Practicas de farmacología, M.J. del Rio, Laudo Pardos y A. Velazco Martin, 1ra edición, Univ. de Valladolid, España, 1995 b) Bertram G. Katzung; Farmacología Básica y Clínica, 11ma Edición, Mcgraw Hill 2010

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V. ANEXOS

Anexo No. 1

REQUISITOS DE… SESIÓN

MATERIAL 1 4 6 7/8 9/10 11/12 13 16

Bolsa de solución parenteral X X

Catéteres X

Celdas para espectrofotómetro X X X

Equipo de venoclisis X

Jeringas de 1 mL X X X X X X

Jeringas de 5 mL y 10 mL X X X X

Lancetas X

Matraz volumétrico X

Papel filtro

Pipetas graduadas X X X

Pipetas Pasteur (transfer) X X X

Probeta X X

Recipiente para RPBI X X X X X

Suturas X X

Torniquete, torundas con alcohol y venditas adhesivas X X

Tubos de ensaye y gradilla X X X X X

Vaso de precipitados de plástico o vidrio X X X X

INSTRUMENTAL 1 4 6 7/8 9/10 11/12 13 16

Contenedor para roedores con tapa y bebederos X X X

Equipo de disección X X

Mesa de disección X X

Micropipetas y puntillas X X

Soporte universal con accesorios X

Termómetros X

EQUIPO 1 4 6 7/8 9/10 11/12 13 16

Agitador vortex X

Analizador de electrolitos X

Balanza analítica X X

Baño de órganos X

Bascula para roedores X X

Densitómetro X

Espectrofotómetro X X X

Osmómetro X

Parrilla eléctrica X X

Potenciómetro X

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VI. TABLA DE CAMBIOS

Tabla de Cambios

Revisión Fecha Descripción

0 05/ene/11 Alta

1 20/dic/11 Se incluye una práctica y se reorganiza el orden de las sesiones

2 18/jun/12 Se reorganiza el orden de las sesiones y se actualiza el anexo 1