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INSTITUTO DE ESTUDIOS DE POSTGRADO Curso 2017/18

GUÍA DOCENTE

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INFORMACIÓN SOBRE TITULACIONESDE LA UNIVERSIDAD DE CÓRDOBA

uco.es/idep/masteresHIBRIDACIÓN INTERESPECÍFICA . PÁG. 1/4 Curso 2017/18

DENOMINACIÓN DE LA ASIGNATURA

Denominación: HIBRIDACIÓN INTERESPECÍFICA EN MEJORA VEGETAL

Código: 103521

Plan de estudios: MÁSTER UNIVERSITARIO EN PRODUCCIÓN, PROTECCIÓN Y MEJORA VEGETAL Curso: 1

Créditos ECTS: 4 Horas de trabajo presencial: 40

Porcentaje de presencialidad: 40% Horas de trabajo no presencial: 60

Plataforma virtual:

DATOS DEL PROFESORADO

Nombre: CABRERA CABALLERO, ADORACION

Centro: ETSIAM

Departamento: GENÉTICA

área: GENÉTICA

Ubicación del despacho: C5-Mendel

e-Mail: [email protected] Teléfono: 957 218510

REQUISITOS Y RECOMENDACIONES

Requisitos previos establecidos en el plan de estudios

Requisitos previos establecidos en el plan de estudios

Recomendaciones

Ninguna especificada.

OBJETIVOS

Utilizar las herramientas y tecnologías disponibles para conseguir la explotación de la variabilidad genética

presente en especies vegetales silvestres y cultivadas mediante hibridación interespecífica y su aplicación en los programas de Mejora Vegetal

COMPETENCIAS

CB1 Recabar e interpretar de forma crítica la información científica y técnica

CB10 Que los estudiantes posean las habilidades de aprendizaje que les permitan continuar estudiando de un modo que habrá de ser en gran

medida autodirigido o autónomo.

CB3 Realizar un analisis crítico, evaluación y síntesis de ideas nuevas y complejas

CB6 Poseer y comprender conocimientos que aporten una base u oportunidad de ser originales en el desarrollo y/o aplicación de ideas, a

menudo en un contexto de investigación

CB7 Que los estudiantes sepan aplicar los conocimientos adquiridos y su capacidad de resolución de problemas en entornos nuevos o poco

conocidos dentro de contextos más amplios (o multidisciplinares) relacionados con su área de estudio

CE2 Utilizar y desarrollar metodologías, técnicas y programas de uso específico en producción, protección y mejora de cultivos.

CG1 Que los estudiantes demuestren la capacidad de concebir, diseñar, y desarrollar un proyecto integral de investigación, con suficiente

solvencia técnica y seriedad académica.

CG3 Fomentar en los estudiantes las siguientes capacidades y habilidades: análisis y síntesis, organización y planificación, comunicación

oral y escrita, resolución de problemas, toma de decisiones, trabajo en equipo, razonamiento crítico, aprendizaje autónomo,

creatividad, capacidad de aplicar los conocimientos teóricos en la práctica, uso de Internet como medio de comunicación y como

fuente de información.

CT1 Saber manejar las fuentes de información científica y recursos útiles para el estudio y la investigación.

CT3 Habilidad para obtener información, diseñar experimentos e interpretar los resultados de comportamiento.


GUÍA DOCENTE




CONTENIDOS

1. Contenidos teóricos

Tema 1. Variaciones cromosómicas estructurales. Deleciones, duplicaciones, inversiones y translocaciones. Origen. Métodos de inducción.

Implicaciones evolutivas. Uso en mejora.

Tema 2. Variaciones cromosómicas numéricas. Poliploides: Autoploides y Aloploides. Origen, comportamiento meiótico y fertilidad. Diploidización.

Genética de los poliploides. Formación de especies aloploides. Efectos fenotípicos. Importancia evolutiva.

Tema 3. Híbridos interespecíficos. Especies afines como fuente de variabilidad genética para mejora. Barreras a la cruzabilidad. Identificación y

caracterización de híbridos interespecíficos. Uso en mejora: Introgresión y síntesis de nuevas especies. Homología y homoeología. Apareamiento

cromosómico en híbridos y aloploides. Series aneuploides: obtención de líneas de adición y sustitución cromosómica.

Tema 4. Haploides. Origen e inducción. Cultivo de anteras y microsporas. Eliminación cromosómica. Cruzamiento con mutantes inductores o polen

irradiado. Síntesis directa. Semigamia. Aloplasmia. Características e identificación. Uso en mejora.

Tema 5. Uso de la poliploidía en la mejora de especies cultivadas. Casos de estudio.

Tema 6. Métodos de análisis cromosómico. Bandeo cromosómico. Hibridación in situ fluorescente (FISH).

Microscopía confocal. Citometría de flujo.

Tema 7. Control del apareamiento meiótico. Utilización en la introgresión de genes. El gen Ph en trigo.

2. Contenidos prácticos

1. Realización de preparaciones cromosómicas mitóticas y meióticas. Conteos cromosómicos.

2. Realización de cruzamientos.

3. Visitas a campos de ensayo.

METODOLOGÍA

Actividades presenciales

Actividad Total

Actividades de evaluación 5

Laboratorio 8

Lección magistral 15

Seminario 12

Total horas: 40


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Actividades no presenciales

Actividad Total

Búsqueda de información 20

Consultas bibliográficas 20

Estudio 20

Total horas: 60

MATERIAL DE TRABAJO PARA EL ALUMNO

Cuaderno de Prácticas

Aclaraciones:

Manual de la asignatura - http://www3.uco.es

EVALUACIÓN

Instrumentos Porcentaje

Asistencia (lista de

control) 10%

Exámenes 40%

Exposiciones 40%

Informes/memorias de

prácticas 10%

Periodo de validez de las calificaciones parciales: la duración del curso académico

BIBLIOGRAFÍA

1. Bibliografía básica:

Adams KL,Wendel JF: Polyploidy and genome evolution in plants. Current Opinion in Plant Biology 2005,

8:135-141

Adams KL, Wendel JF: Novel patterns of gene expression in polyploid plants. Trends in Genetics 2005, 21(10):539-543.

Baack EJ, Rieseberg LH: A genomic view of introgression and hybrid speciation. Current Opinion in Genetics and Development 2007, 17(6):513-518.

Benavente E, Cifuentes M, Dusautoir JC, David J: The use of cytogenetic tools for studies in the crop-to-wild gene transfer scenario. Cytogenetic and

Genome Research 2008, 120(3-4):384-395.

Benavente E, Cabrera A: Contribución de la citogenética a la utilización de la variabilidad extraespecífica. Mejora genética y recursos fitogenéticos:

Nuevos avances en la conservación y utilización de los recursos fitogenéticos.

JM Carrillo, MJ Díez, M Pérez de la Vega, F. Nuez (ed.) SEG, SECH, 2010: 735-770.

Bennett MD: Plant genome values: How much do we know? PNAS 1998, 95: 2011-2016.

Bennett MD: Perspectives on polyploidy in plants; ancient and neo. Biological Journal of the Linnean Society 2004, 82: 411-423


GUÍA DOCENTE




Ceoloni et al : Targeted exploitation of gene pools of alien Triticeae species for sustainable and multi-facted improvement of the durum wheat crop. Crop and Pasture

Science 2014, 65: 96-111

Comai L: The advantages and disadvantages of being polyploidy. Nature 2005, 6: 836-846

Feldman M and Sears ER: Los recursos genéticos del trigo silvestre. Investigación y Ciencia 1981. 54: 50-61

Gill et al: Alien introgressions represent a rich source of genes for crop improvement. PNAS 2011, 108:7657-7658

Gottlieb LD: Plant polyploidy: gene expression and genetic redundancy. Heredity 2003, 91: 91-92

Griffiths S, et al: Molecular characterisation of Ph1 as a major chromosome pairing locus in hexaploid wheat.Nature 2006, 439:749-752.

Gupta PK et al: Wheat genomics: Present Status and Future Prospects. International Journal of Plant Genomics 2008 Article ID 896451, 36 pages

doi:10.1155/2008/896451

Hajjar R and Hodgkin T: The use wild relatives in crop improvement: A survey of developments over the last 20 years. Euphytica 2007, 156: 1-13

Jahuar et al: Haploidy in cultivated wheats: induction and utility in basic and applied research. Crop Science 2009, 49: 737-755

Jenczewski E, Alix K: From Diploids to Allopolyploids: The Emergence of Efficient Pairing Control Genes in Plants. Critical Reviews in Plant Sciences 2004, 23: 21-45.

Jenczewski E, Ronfort J, Chèvre AM: Crop-to-wild gene flow, introgression and possible fitness effects of

transgenes. Environmental biosafety research 2003, 2: 9-24.

Le S and Grible SM: Characterising chromosome rearrangements: recent technical advances in molecular

cytogenetics. Heredity 2012, 108: 75-85

Repellin A, Båga M, Jauhar PP, Chibbar RN: Genetic enrichment of cereal crops via alien gene transfer: New challenges. Plant Cell, Tissue and Organ Culture 2001,

64(2-3):159-183.

Silva GS, Souza MM: Genomic in situ hybridization in plants. Genetics and Molecular Research 2013,

12(3):2953-2965.

Stebbins GL: Chromosomal Evolution in Higher Plants. 1971, Reading, Massachusetts: Addison-Wesley.

Washburn JD, Birchler JA: Polyploids as a "model system" for the study of heterosis. Plant Reproduction 2014, 27(1):1-5.

Wendel JF: Genome evolution in polyploids. Plant Molecular Biology 2000, 42: 222-249.

Younis A, Hwang YJ, Lim KB: Exploitation of induced 2n-gametes for plant breeding. Plant Cell Reports 2014, 33(2):215-223.

2. Bibliografía complementaria:

Ninguna

Las estrategias metodológicas y el sistema de evaluación contempladas en esta Guía Docente serán adaptadasde acuerdo a las necesidades presentadas por estudiantes con discapacidad y necesidades educativas especialesen los casos que se requieran.

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