fÓrmula - nutrabiotics.info

DESINTOXICACIÓN METABÓLICA

Desintoxicación Metabólica

FÓRMULA: Precursores, Sustratos, Cofactores, y Antioxidantes que Soportan los Procesos de Desintoxicación

SOPORTAR LA LIMPIEZA DEL ORGANISMO Hoy los contaminantes están omnipresentes en nuestro ambiente – en lo que tocamos, comemos, bebemos y respiramos. La exposición crónica a solo trazas de estas sustancias ha sido asociado a numerosos efectos fisiológicos indeseables. En cir-cunstancias normales, nuestro organismo está bien equipado para eliminar las sustancias contaminan-tes y protegerse de los efectos perjudiciales que causan. Sin embargo, ocurre frecuentemente que el volumen de exposición sobrecarga estos proce-sos naturales y genera una acumulación de ciertas toxinas en los tejidos. Dietas típicamente deficien-tes en nutrientes y el alto consumo de alimentos falsos (procesados) agravan la problemática.

Los procesos naturales de limpieza del cuerpo involucran principalmente el hígado, el sistema biliar, el tubo digestivo, los pulmones, los riñones y la piel. Las sustancias potencialmente peligrosas o indeseadas que son polares (más hidrosolubles) son fácilmente eliminadas por las heces, orina y sudor, pero las que son no polares (más liposolu-bles) deben ser neutralizadas y transformadas en sustancias polares antes de poder ser transpor-tadas y eliminadas. Las limitaciones inherentes de desintoxicación del individuo, la sobrecarga de toxinas ambientales y la deficiencia de nutrientes que alimentan los procesos de desintoxicación pueden impedir este proceso de transformación y eliminación de toxinas liposolubles. La malabsor-ción, la inflamación crónica, la disfunción mitocon-drial, las dificultades circulatorias, los desequilibrios endocrinos y los trastornos emocionales son otros desequilibrios que pueden dificultar los procesos de desintoxicación.

Dentro del manejo integral de los desequilibrios clínicos que presentan muchos pacientes necesita-mos herramientas para llevar a cabo un programa completo de desintoxicación – surge la necesidad de una fórmula basada en evidencias del funcio-namiento de la fisiología humana para soportar los senderos naturales de desintoxicación, lograr objetivos terapéuticos específicos y promover la salud en general.

DESARROLLO DE LA FÓRMULA PARA EL SOPORTE DE LA DESINTOXICACIÓNPara crear una fórmula que soporte los procesos de desintoxicación se requiere de una revisión de los estudios y los textos que nos permiten conocer los procesos de biotransformación y eliminación del organismo. Con una aplicación clínica de estos conocimientos llegamos a una fórmula exacta y funcional. Para elucidar el funcionamiento de la fórmula, revisaremos los procesos fisiológicos de desintoxicación hepática y sus sistemas enzimáticos, especificando el rol de cada uno de los componentes de la fórmula dentro de estos sistemas de biotransformación.

NOTA: Los compuestos incluidos en la fórmula están en negrilla e itálica en el

texto para facilitar el entendimiento.

LOS SISTEMAS ENZIMÁTICOS DE DESINTOXICACIÓN Y LAS VÍAS DE ELIMINACIÓNDesde el inicio de la revolución industrial, mien-tras que la exposición de la sociedad a sustan-cias tóxicas presentes en el aire, el agua, alimen-tos, cosméticos y productos farmacéuticos ha incrementado continuamente, se ha evidenciado que la habilidad del individuo para desintoxicar los xenobióticos (toxinas exógenas extrañas para el sistema biológico) y toxinas endógenas es de importancia fundamental en la consideración de

VERSIÓN 10/16

su salud general. A pesar de que muchos xeno-bióticos sean sustancias amenazantes nuevas para el organismo, los cuerpos sanos suelen ser capaces de manejar estas exposiciones tóxicas mediante complejos sistemas enzimá-ticos de desintoxicación. Sin embargo, ocurren disfunciones fisiológicas cuando estos sistemas están sobrecargados o desequilibrados. Varios estudios han empezado a demostrar que muchas disfunciones y enfermedades crónicas pueden resultar de las dificultades que presenta el orga-nismo en la desintoxicación de xenobióticos y toxinas endógenas.1

La evolución de nuestro entendimiento de los mecanismos bioquímicos involucrados en la regulación y el soporte nutricional de los siste-mas de desintoxicación nos permite:

• Evaluar la capacidad de eliminación adecuada de las toxinas a las cuales el cuerpo está expuesto;

• Aclarar las interconexiones que existen entre la exposición a toxinas específicas y disfunciones fisiológicas;

• Desarrollar programas de desintoxicación terapéuticos y seguros;

• Reevaluar al paciente después de un programa de desintoxicación para determinar la efectividad del programa aplicado.

MATERIA PRIMA DESECHOS METABÓLICOS EXCRECIONES• AGUA• PROTEÍNAS• LÍPIDOS• GLÚCIDOS• VITAMINAS• MINERALES• FIBRA• BACTERIAS• FITONUTRIENTES

TOXINAS NATURALES: hormonas, neuro-transmisores, eicosanoides, citoquinas, amonio, intermediarios metabólicos, toxi-nas microbianas, ácidos orgánicos, etc.

• DROGAS.• XENOBIÓTICOS:

Metales pesados, Solventes, Preservantes, Pesticidas, Plastificantes, Teflón, Pinturas, Combustibles Petroquímicos, etc

• HECES• ORINA• MOCO• SUDOR• VAPOR

Tabla 1. Sistemas enzimáticos de desintoxicación y las vías de eliminación: materia prima, desechos metabólicos y excreciones.

CONDICIONES ASOCIADAS AL DETERIORO DE LOS PROCESOS DE DESINTOXICACIÓN O A LA PRESENCIA DE TOXINAS ESPECÍFICAS EN EL ORGANISMO

• Aterosclerosis2

• Autismo3

• Cáncer4,5

• Coagulopatía6

• Deficiencia cognitiva7

• Desórdenes neurodegenerativos8

• Diabetes gestacional9• Diabetes tipo II10,11

• Enfermedad cardiovascular11 • Enfermedad de Alzheimer12

• Enfermedad de Parkinson13

• Estancamiento biliar6

• Fibromialgia15

• Hepatopatía alcohólica14

• Hipersensibilidades a sustancias químicas varias15

• Hipertensión arterial2• Inflamación sistémica16

• Obesidad17

• Permeabilidad intestinal18

• Resistencia a la insulina19

• Síndrome de fatiga crónica15

• Síndrome de Gilbert20

• Síndrome metabólico21

• Esteatohepatitis22,23

• Lupus eritematoso sistémico24

• Artritis reumatoide24

• Pancreatitis25

• Osteoporosis26

• Hipotiroidismo27


SÍNTOMAS CLÁSICOS DE TOXICIDAD CRÓNICA28

1. Fatiga2. Trastornos del sueño3. Trastornos gastrointestinales4. Cefaleas5. Síntomas relacionados a

hipersensibilidades6. Confusión7. Ansiedad

DEFINICIÓN GENERAL DE LOS PROCESOS DE BIOTRANSFORMACIÓNLa biotransformación de sustancias tóxicas en metabolitos no-tóxicos ocurre primeramente en el hígado y secundariamente en la mucosa intestinal. Otros tejidos actúan en las biotransformaciones, pero en menor grado. La fase I y la fase II de desintoxicación transforman progresivamente las sustancias tóxicas en sustancias más hidrosolubles y por ende, más fáciles de excretar.

En el marco de la desintoxicación, el objetivo de las biotransformaciones es la bioinactivación de sustancias tóxicas, para que el efecto tóxico de estas mismas sea reducido. Sin embargo, en ciertos casos las biotransformaciones que ocurren en la fase I generan productos intermediarios que son más tóxicos que sus precursores. Llamamos este tipo de transformación: bioactivación. Aunque algunas toxinas solo requieren pasar por la fase I antes de poder ser eliminadas, la mayoría son preparadas por la fase I para luego ser conjugadas por la fase II y eliminadas. El entendimiento de este proceso tiene un valor clínico fundamental; un programa de desintoxicación prescrito debe ASEGURAR una mayor capacidad de la fase II que de la fase I para evitar, a todo costo, la acumulación de intermediarios metabólicos más reactivos que pueden interferir a mayor grado con enzimas, ADN, transportadores, mensajeros, lípidos, etc.

Por ejemplo, la fase I oxida el pesticida organofos-fato paratión en paraoxon, una neurotoxina mucho más potente que su precursor; esto consiste en una bioactivación. Luego, el paraoxon debe someterse a una hidrolización para que su efecto sobre la acetilcolinesterasa sea neutralizado; esto consiste en una bioinactivación.

Antes de recetar un programa de desintoxicación a un paciente debemos conocer los procesos de biotransformación y asegurarnos de una mayor activación de la fase II que de la fase I.

EXPOSICIÓN Y SOLUBILIDADLa exposición a xenobióticos y subproductos tóxi-cos del metabolismo es inevitable. La liposolubili-dad (no polaridad) de tales sustancias facilita su absorción y dificulta su eliminación. La facilidad con la cuál un xenobiótico puede ser eliminado es determinado principalmente por la capacidad del hígado o de otro tejido de biotransformarlo en una sustancia hidrosoluble (más polar). Los xenobióticos altamente lipófilos suelen penetrar rápidamente los adipocitos y acumularse en los tejidos grasosos. Es el caso de las sustancias que son más resistentes a las biotransformacio-nes, como los bifenilos policlorados, utilizados como fluidos hidráulicos y dieléctricos (aislantes líquidos) principalmente.

Altamentelipofílicosestables

Acumulaciónen tejido adiposo

Lipofílicos

Más polar

Polar

Hidrofílico Hidrofílico

Hidrofílico

MOVILIZACIÓNEXTRACELULAR

EXCRECIÓN BILIAR SUERO

MocoVaporSudorOrinaHeces

EXPOSICIÓN A XENOBIÓTICOS, BIOTRANSFORMACIÓN Y EXCRECIÓN

FASE I(Bioactivación o bioinactivación)

FASE II(Bioinactivación)

XENOBIÓTICOS

Figura 1. Exposición a xenobióticos, biotransformación y excreción.

VERSIÓN 10/16

Figura 2. Senderos de biotransformación hepática y cofactores.

Nutrientes U

sados• Ribo�avina-5-fosfato (B2)• Niacina (B3)• Piridoxal-5-fosfato (B6)• L-5 M

etiltetrahidrofolato (B9)• M

etilcobalamina (B12)

• Hierro• Am

inoácidos rami�cados

• Flavonoides• Colina• Indol-3-carbinol• Curcum

ina• Quercetina

Reacciones • Glucuronidación • Sulfatación • M

etilación • Conjugación de glutatión • Conjugación de am

inoácidos • Acetilación

• Betacaroteno• Ácido ascórbico (Vit C)• Tocoferoles m

ixtos (Vit E)• Selenio• Cobre• Zinc• M

anganeso• Curcum

ina• Quercetina• Carnosol• Ácido carnósico• Rosm

anol• Ácido ursólico

Protección Antioxidante

Derivados de Plantas y N

utrientes

Cofactores principales

• Ácido Glutámico

• L-Cisteína • Sulfato de sodio • L-M

etionina • Taurina • L-Glutam

ina • Glicina

Otros cofactores usados

• Vitamina A

• Vitamina E

• Magnesio

• Selenio • Zinc • Cobre • M

anganeso • M

olibdeno • Tiam

ina (B1) • Niacina (B3) • Piridoxal-5-fosfato (B6) • L-5 M

etiltetrahidrofolato (B9)

Reacciones

• Oxidación • Reducción • Hidrólisis • Hidratación • Deshalogenación

(no-polar . . . liposoluble)

(polar . . . hidrosoluble)

(más-polar . . . m

enosliposoluble)

Derivados parala Excreción

FASE I

(Enzimas del Citocrom

a P450)FA

SE II(Senderos de conjugación)

Bilis

Daño tisular

secundario

RadicalesLibres

Electró�los reactivos interm

ediarios

TOXINASM

etabolitosInterm

ediarios

Endotoxinas• Productos �nales del metabolismo• Endotoxinas bacterianas• Hormonas• Neurotransmisores• Otros mensajeros

Exotoxinas• Drogas (con o sin prescripción, recreacionales)• Químicos agrícolas• Aditivos en la comida• Contaminantes caseros• Toxinas microbianas• Otros contaminantes

Suero

Riñones

Orina

Heces

Sudor

Vapor

Pulmones

Piel

Superóxido dismutasa

CatalasaG

lutatión peroxidasa

• Metilcobalam

ina (B12) • Pantotenato • Ácido ascórbico • Ácido alfalipoico • Indol-3-carbinol • Curcum

ina • Quercetina • Carnosol • Ácido carnósico • Ribo�avina-5-fosfato (B2)

Polvode diente de león


Anteriormente, se suponía que mientras un xeno-biótico está en un nivel sin efecto adverso obser-vado (NOAEL) no debería generar problemas, pero la realidad es diferente porque cuando varios xenobióticos estan juntos en el organismo actúan en concierto, potencializando sus efectos tóxicos y/o carcinógenos.29 Esto quiere decir que no existen concentraciones de xenobióticos seguras o sin efectos adversos.

REACCIONES DE LA FASE ILa fase I de desintoxicación hepática es por lo general la primera línea de defensa enzimática del organismo contra sustancias extrañas. En la fase I, reacciones de oxidación, reducción y/o hidrólisis exponen o adicionan un grupo funcional, común-mente un hidroxilo (-OH), un carboxilo (-COOH), y/o un grupo amino (-NH2). La estructura de la sustancia tóxica determina cual o cuales de estas reacciones se llevan a cabo. Son responsables de iniciar las transformaciones del proceso de desin-toxicación de xenobióticos como petroquímicos, muchas drogas y ciertas sustancias endógenas como hormonas, ácidos biliares, ácidos grasos, eicosanoides, neurotransmisores y otros productos finales del metabolismo que causan efectos tóxicos cuando se acumulan en el organismo. La acumula-ción de tales sustancias ha sido relacionada con el

desarrollo de numerosas condiciones, enfermeda-des y desórdenes incluyendo cáncer, disfunciones cardiovasculares, disfunciones endocrinas, etc.30

En la mayoría de los casos, la exposición o adición de un grupo funcional por la fase I permite que la sustancia pueda ahora ser conjugada por las reac-ciones de la fase II.

En algunos casos, el compuesto puede ser elimina-do después de haber sido sometido a las reaccio-nes de la fase I. 31

El sistema de la fase I es un grupo de cientos de enzimas que tienen afinidad por diferentes sustratos. Aunque existen varios tipos de enzimas implicadas en la fase I, el más común es la super-familia del citocromo P450, que consiste en 57 isoenzimas. Las enzimas del CIP450 en mamíferos se encuentran principalmente adyacentes a la membrana celular, en el retículo endoplásmico y en las mitocondrias de la mayoría de las células. La mayor abundancia de estas enzimas está en el hígado, aunque ocurre una actividad significativa del CIP450 en la pared intestinal, riñones, pulmo-nes y cerebro.

Cuando las enzimas del citocromo P450 utilizan oxígeno y el cofactor NADH (la forma activa de ácido nicotínico), añaden un grupo hidroxilo para oxidar el compuesto.

SUSTRATOS DE ENZIMAS DEL CITOCROMO P450

TIPO DE CIP450 SUSTRATOS

CIP1A1Estrona, Vegetales de brassicas que contengan Diindolilmetano(DIM) o Indol 3 Carbinol (I3C)

CIP1A2 Teofilina, cafeína, fenacetina, acetaminofén.

Familia CIP2CFenitoína, ibuprofeno, naproxeno, medicamentos oxicam, S-warfarina, Diazepam, hexobarbitona, imipramina, omeprazol.

CIP2D6

Cardiología: Alprenolol, bopindolol, carvedilol, metroprolol, propranolol.

Psiquiatría: Amitriptilina, clomipramina, desipramina, nortriptilina

Otros: Codeína, dextrometorfano, etilmorfina, 4-metoxianfetamina

CIP2E1 Acetaminofén, cafeína, alcohol, clorzoxazona, enflurano.

CIP3ALidocaína, eritromicina, ciclosporina, ketoconazol, testosterona, estradiol, cortisona, etc. (aproximadamente 60% de los medicamentos)

Tabla 2. Sustratos de enzimas de citocromo CIP450.

VERSIÓN 10/16

Como consecuencia de este paso en el proceso de desintoxicación, se producen moléculas reactivas que suelen ser más tóxicas que sus precursores. Si estos intermediarios reactivos no son sometidos a las reacciones de la fase II, pueden alterar funciones fisiológicas o causar daño a proteínas, ARN y ADN dentro de las células. Varios estudios han demostrado una asociación entre la inducción de la fase I y/o la disminución de las actividades de la fase II y un incremento en el riesgo de enfer-medades como el cáncer32 y la enfermedad de Parkinson.33

Las otras reacciones de la fase I que adicionan o exponen grupos funcionales en xenobióticos y toxi-nas endógenas funcionan de una manera similar. La orquesta de reacciones de la fase I requiere de los siguientes nutrientes para su funcionamiento: ribo-flavina-5-fosfato (vitamina B2 activada), ácido nicotínico (vitamina B3), pantotenato (vitamina B5), piridoxal-5-fosfato (vitamina B6 activada), L-5 metiltetrahidrofolato (vitamina B9 activa-da), metilcobalamina (vitamina B12 activada), aminoácidos ramificados (leucina, isoleucina y valina contenidos en la proteína de arroz integral orgánico34), glicina, flavonoides, glutatión, fosfo-lípidos, hierro y cobre.35 La colina en esta fórmula puede ser utilizada por el organismo para formar fosfolípidos.

REACCIONES DE LA FASE IILa fase II de desintoxicación somete las sustancias a conjugaciones (p.e., reacciones enzimáticas que neutralizan y hidrofilizan las toxinas mediante la adición de un grupo altamente polar), de manera que puedan ser disueltas en agua y eliminadas con más facilidad. Las principales actividades de la fase II de desintoxicación incluyen las siguientes reacciones:

A. Glucuronidación: transferencia del grupo glucuronil del ácido glucurónico al grupo funcional del tóxico vía reacciones enzimáticas; es la reacción predominante de la fase II.

a. Fuentes del ácido glucurónico: el organismo produce ácido glucurónico a partir de la glucosa; también lo obtiene de alimentos como la alcachofa.

b. El magnesio actúa como cofactor en las reacciones de glucuronidación.

c. La excreción de glucurato puede ser medida y es un indicador de la demanda hepática de desintoxicación.

d. El tabaquismo, los ayunos prolongados y la alimentación rica en fructosa inhiben la glucuronidación.

e. La B-glucuronidasa es una enzima que puede deshacer el proceso de glucuronidación y causar una recirculación del compuesto original. Los probióticos ayudan a limitar el crecimiento de bacterias que la pueden producir a nivel intestinal, mientras que la vitamina A y el betacaroteno ayudan a disminuir sus niveles en el plasma36.

B. Sulfatación: transferencia de sulfato activado de 3’-fosfoadenosina-5’- fosfosulfato (PAPS) al grupo funcional del tóxico vía reacciones enzimáticas.

a. El PAPS se forma por medio de reacciones enzimáticas que requieren de dos cofactores: molibdeno y magnesio.

ACTIVACIÓN DEL SULFUROCisteína

SO3

Mo

Mg

ATP

ATP

PAPS

Ascorbato-2-sulfato

Mielina •Detoxi�cación •

Colágeno •Discos •

Cartílagos •Discos •

Piel •

Ácido ascórbico

PP ADP

SO4

Figura 3. Activación del sulfuro.


b. El organismo utiliza el sulfuro proveniente de fuentes inorgánicas como el sulfato de sodio y fuentes orgánicas como L-cisteína, L-metionina y taurina.

c. El sulfuro se usa también para la síntesis de metalotioneínas, ácido alfa-lipoico, coenzima A, biotina, insulina, heparina, colágeno y cartílago; una deficiencia de sulfuro generada por una exposición elevada a toxinas que requieren sulfatación puede generar muchas disfunciones.

d. La vitamina A, la vitamina E y el selenio favorecen las enzimas implicadas en la sulfatación.37

C. Conjugación de Glutatión: un proceso enzimático por el cuál el intermediario reactivo se conjuga con glutatión y se convierte en ácido mercaptúrico.

a. El organismo sintetiza glutatión a partir de ácido glutámico, glicina y L-cisteína. Los cofactores implicados en la síntesis y el reciclaje del glutatión son: riboflavina, ácido nicotínico, selenio, manganeso, zinc y cobre.

b. Indol-3-carbinol (extracto de brócoli), romero, curcumina, y ácido alfalipóico facilitan la conjugación de glutatión.

c. El alcohol inhibe la conjugación de glutatión.

D. Conjugación de aminoácidos: un proceso enzimático por el cuál el intermediario reactivo se une a un acil-CoA tioéster y luego se conjuga con glicina, taurina, glutamina o arginina.

a. Las enzimas de la conjugación de aminoácidos residen en la mitocondria; la disponibilidad de glicina y taurina es muy importante para evitar la acumulación de acil-CoA tioesteres de xenobióticos que pueden engendran disfunción mitocondrial.38

E. Acetilación: un proceso enzimático que resulta en la acetilación del intermediario reactivo.

a. El acetil-CoA es producido mediante la glicólisis o la oxidación de ácidos grasos.

b. Pantotenato, vitamina C, tiamina, riboflavina-5-fosfato, magnesio y ácido alfalipóico son los principales nutrientes que inducen la acetilación.

c. Es una reacción más utilizada por el organismo para regular la transcripción de genes y funciones de receptores nucleares que para la conjugación de toxinas, probablemente debido a que no mejora la solubilidad en agua de los sustratos.

d. La acetilación es una conjugación más reversible que las demás reacciones de la fase II.

F. Metilación: un proceso enzimático por el cuál se añade un grupo metilo al intermediario reactivo de manera que pueda luego ser conjugado, generalmente vía glucuronidación o sulfatación.

a. Muchas sustancias endógenas (hormonas y neurotransmisores) y toxinas son hidroxilados por la fase I, luego metilados y conjugados por la fase II.

b. El proceso de la metilación resulta en la producción de homocisteína, un metabolito tóxico que el organismo debe reciclar en metionina vía transmetilación o convertir en cisteína vía transulfuración. Fallar en soportar estas reacciones dentro de un programa de desintoxicación puede resultar en una elevación de la homocisteina y traer consecuencias iatrogénicas importantes.

c. El ciclo de la metilación y la transulfuración están al centro de la fase II porque soportan la metilación, sulfatación, conjugación de aminoácidos y conjugación de glutatión, y mantienen controlados los niveles de homocisteina. Los principales cofactores que

VERSIÓN 10/16

soportan el ciclo de la metilación y la transulfuración son: piridoxal-5-fosfato, L-5 metiltetrahidrofolato, metilcobalamina y magnesio.

d. El donante universal de grupos metilos es S-adenolylmetionina (SAMe). Este se forma a partir de la metiotina. La colina (trimetiletalonamonio) es un nutriente esencial que, a parte de entrar en la síntesis de fosfolípidos y ser precursor de la acetilcolina, aporta grupos metilos para la transmetilación y la formación de SAMe.39

e. La metilación juega también un papel fundamental en las reparaciones celulares y en el control epigenético.40

La conjugación hepática requiere de mucha mate-ria prima para biotransformar, desactivar y hidrofili-zar sus sustratos. El hecho de que mucha de esta materia prima sale del organismo ligada a las toxi-nas hace de la fase II un proceso extremadamente dependiente de la disponibilidad de nutrientes. Es muy funcional evaluar la desnutrición del paciente y adicionar a esto las demandas que pueden ser elevadas por su exposición repetida a ciertas drogas o xenobióticos, y así identificar sus deficiencias nutricionales más patogénicas.

Por ejemplo, un paciente con una alimentación pobre que consume acetaminofén a diario suele presentar o desarrollar una deficiencia importante de sulfuro y/o de glutatión. La tabla de senderos de conjugación permite conocer los sustratos de los diferentes senderos de conjugación y así poder identificar con más facilidad las exposiciones a toxinas como causantes de condiciones clínicas, por ejemplo, si un paciente presenta una elevación de una hormona o neurotransmisor, podemos sos-pechar una falta de eliminación de este compuesto y asociar esta situación con la deficiencia o la saturación de un sedero de conjugación. (Ver tabla 3: Senderos de Conjugación en la siguiente página)

FASE III: EL SISTEMA ANTIPUERTOLa actividad antipuerto (fase III de desintoxicación) es una bomba que saca las drogas y los xenobióti-cos de la célula para darle a la célula otra oportuni-dad de procesarlos antes de que lleguen a mayores profundidades del citosol, donde pueden causar más daño (gran parte de las enzimas de desin-toxicación se encuentran cerca de la membrana celular). Este sistema se encuentra principalmente en las células del hígado, pero está presente tam-bién en los riñones, páncreas, intestinos, cerebro y testículos. Como en el caso de las reacciones de biotransformación, la actividad de la fase III depen-de de la disponibilidad de ATP.41 La desintoxicación es un proceso que depende en gran parte de la función mitocondrial. La disponibilidad de nutrien-tes y antioxidantes que requiere la mitocondria es fundamental para soportar los procesos de desintoxicación.

IMPLICACIONES CLÍNICASLas moléculas biotransformadas por la fase I se combinan en la fase II con un compuesto hidrofí-lico, creando nuevas sustancias suficientemente polares para ser excretadas rápidamente. Estas reacciones de conjugación implican muchas sus-tancias que actúan como sustratos y cofactores, lo que hace de la desintoxicación un proceso muy dispendioso, nutricionalmente hablando.

Fase III: Sistema Antipuerto

AntipuertoLuz

Intestinal

Venaporta

hacia elhígado

Estómago

Heces = Toxina activa= Toxina biotransformada

ATPEnterocito

CIP3A4

Figura 4. Fase III: Sistema Antipuerto.


SENDEROS DE CONJUGACIÓN USADOS PARA COMPUESTOS ESPECÍFICOS

MÉTODO XENOBIÓTICOS MEDICAMENTOS COMPUESTOS NATURALES

Glucuronidación

AnilinaCarbamatos

FenolesTiofenoles

ButanolN-hidroxi-2-naftilamina

SalicilatosAcetaminofén

MorfinaMeprobamato

BenzodiazepinasÁcido Clofíbrico

NaproxenoDigoxina

FenilbutazonaÁcido Valpróico

EsteroidesLorazepamCiramadolPropanololOxazepam

BilirrubinaEstrógenosMelatonina

Ácidos biliaresVitamina E

Vitamina AVitamina KVitamina DEsteroidesHormonas

Sulfatación

AnilinaPentaclorofenol

TerpenosAminas

HidroxilaminasFenoles

AcetaminofénMetildopaMinoxidil

MetaraminolFenilefrina

DHEAQuercetina

Ácidos biliaresSafrol

TiraminaTiroxina

TestosteronaCortisol

Catecolaminas

Melatonina

3-Hidroxicumarina

25 OH de vitamina D

Alcohol etílico

CCK

Cerebrósidos

Metilación

Paraquat

Beta-Carbulinas

Isoquinolinas

Mercurio

Plomo

ArsénicoTalio

EstañoPiridina

TiouraciloIsoetarinaRimeterol

DobutaminaButenafima

ElufedMorfina

LevorfanolNalorfina

HistaminaEpinefrinaDopamina

NorepinefrinaL-Dopa

ApomorfinaHidroxiestradiol

Conjugaciónde Glutatión

Estireno

Acroleína

Óxido de etileno

Benzopireno

Metil paratión

Clorobenceno

Antraceno

Metales tóxicos

Destilados de petróleo

Naftalina

AcetaminofénPenicilina

Ácido etacrínicoTetraciclína

Toxinas bacterianas

Aflatoxina

Peróxidos de lípidos

Alcohol etílico

Quercetina

N-Acetilcisteína

Prostaglandinas

Toxinas bacterianas

Bilirubina

Leucotrieno A4

Conjugación taurina

Ácido propiónico

Ácido caprílico

Ácidos biliares

Ácido esteárico

Ácido palmítico

Ácico mirístico

Ácido láurico

Ácido decanóico

Ácido butírico

Conjugaciónglicina

Ácido natilacéticoAminas alifáticas

SalicilatosÁcido nicotínicoClorfeniramina

Bromfeniramina

Ácidos biliares

Ácidos cinamícos

PABA

Ácidos orgánicos

Ácido benzóico

Ácido fenilacético

Acetilación2 Aminofluoreno

Anilina

ClonazepamDapsona

MezcalinaIsoniazida

Hidralazina

ProcainamidaBencidina

SulfonamidasPromizole

SerotoninaPABA

HistaminaTriptamina

CafeínaColina

TiraminaCoenzima A

Tabla 3. Senderos de conjugación usados para compuestos específicos.

VERSIÓN 10/16

Cuando la carga tóxica acumulada total es con-siderable y se aplica un programa diseñado para estimular los procesos de desintoxicación, el rea-provisionamiento de los nutrientes implicados es fundamental para soportar las biotransformacio-nes, y para evitar el decaimiento de las reservas orgánicas y los daños iatrogénicos asociados.

Debido a que los xenobióticos biotransformados por la fase I son electrófilos generalmente más reactivos que sus precursores, estos intermediarios pueden ejercer efectos tóxicos aumentados en el hígado y/o sistémicos si no son inmediatamente conjugados por las enzimas de la fase II. Estos efectos tóxicos se generan mediante los siguientes mecanismos

A. El metabolito reactivo (radical libre) crea un enlace covalente con:

a. Proteínas (p.e., se altera la conformación y función de proteínas estructurales, receptores, bombas membranarias, proteínas de transporte y hormonas peptídicas).

b. Fosfolípidos membranarios (p.e., hace que el xenobiótico sea más liposoluble y pueda generar peroxidación de lípidos).

c. Ácidos nucleicos (p.e., el intermediario reactivo crea un enlace irreversible con el ADN e inicia la carcinogénesis).

B. Los productos y subproductos de la Fase I generan estrés oxidativo:

a. Los electrófilos reactivos (xenobióticos transformados) que salen de la fase I deben ser neutralizados por antioxidantes (superóxido dismutasa, catalasa y glutatión peroxidasa) cuando la fase II no los puede recibir. Esto disminuye las reservas de antioxidantes, genera estrés oxidativo y disfunción mitocondrial.

b. La facilitación del citocromo P450 producida por una exposición a toxinas aumentada y el desequilibrio entre las dos fases genera más producción de especies reactivas de oxígeno (superóxido, peróxido y hidroxilo) como subproductos de las oxidasas.

La fase I de desintoxicación requiere poco suporte nutricional para funcionar. De hecho, esto explica las consecuencias clínicas negativas que pueden causar los clásicos ayunos prolongados. En ayu-nas, muchas toxinas son liberadas del tejido como resultado del catabolismo, aumentando la actividad de la fase I. Para facilitar la excreción de xenobióti-cos y otras toxinas, debemos tener un proceso de desintoxicación equilibrado. Esto significa proteger las células de los subproductos e intermediarios que salen de la fase I con antioxidantes como vita-mina A, betacaroteno, ácido ascórbico, tocofe-roles mixtos, selenio, zinc manganeso, querce-tina, curcumina, extracto de rometo (carnosol, ácido carnósico, rosmanol y ácido ursolico),40

etc., y soportar la fase II con todos los nutrientes específicos que requiere.

Cuando los intermediarios reactivos producidos por la fase I son rápidamente conjugados por la fase II, se producen menos radicales libres y menos daño oxidativo en el proceso. Dado que los procesos enzimáticos de desintoxicación gastan grandes cantidades de ATP y que muchos cofactores utili-zados en la fase II se pierden en la excreción, es de importancia fundamental reponer y suplir los nutrientes que requieren los órganos de desintoxi-cación.43

EL PAPEL DEL INTESTINO EN LA DESINTOXICACIÓNEl tracto gastointestinal provee una primera barrera física contra la gran mayoría de los xenobióticos a los cuales estamos expuestos. Esta barrera depen-de mucho de la integridad de la pared intestinal, pero también del sistema antipuerto y del CIP3A4 encontrados en altas concentraciones en las micro-vellosidades.44 Un daño causado a la mucosa GI facilita la entrada de xenobióticos y endotoxinas a la circulación y aumenta la carga tóxica. Por esta razón se recomienda recuperar la selectividad de la barrera intestinal antes de iniciar un programa de desintoxicación metabólica.

La microflora intestinal puede producir compuestos que inducen o inhiben procesos de desintoxicación. Bacterias patogénicas y hongos pueden producir toxinas que aumentan la carga tóxica. Algunas bacterias remueven los grupos glucuronil de los xenobióticos y hormonas (los desconjugan), lo que genera un fenómeno llamado recirculación entero hepática. Esto significa que la molécula vuelve a su


forma original, entra nuevamente en la circulación y aumenta la carga tóxica.45

Los lipopolisacáridos, producidos por bacterias Gram-negativas y otras toxinas bacterianas suelen causar hiperpermeabilidad intestinal, inflamación, estrés oxidativo, etc. Cuando la capacidad de los macrófagos y del hígado se satura, llegan a ser liberados en circulación sistémica y a causar daños más extensivos. Esta condición se llama endotoxe-mia. Mejorar la capacidad fagocitaria y hepática es importante, pero también se debe manejar la disbiosis intestinal.46

Podemos incluir en nuestra estrategia de des-intoxicación el consumo de cepas bacterianas que producen enzimas digestivas, que pueden neutralizar toxinas microbianas como la aflatoxina y que ayudan a destruir microorganismos patogé-nicos. La sepa Bacillus subtilis cumple con estas funciones, y además resiste al calor y al pH gás-trico.47,48,49,50 El uso de otros probióticos y de una dieta rica en frutas y verduras, y libre de azúcares refinados es favorable para el desarrollo y el man-tenimiento de una flora sana y diversificada.

REGULACIÓN DE LOS PROCESOS DE DESINTOXICACIÓN

REGULACIÓN DE LA FASE ICiertos compuestos generan una inducción de enzi-mas de la fase I y/o de la fase II. Es especialmente pro-blemático cuando se induce específicamente ciertas enzimas de la fase I solamente, como lo hacen hidro-carbonos policíclicos, humo de cigarrillo y arilaminas de la carne cocinada al carbón. Tal desequilibrio suele resultar en una elevación importante de intermediarios metabólicos reactivos no deseables.51,52 Frenar cier-tas actividades de la fase I para que la fase II pueda procesar todos los intermediarios sin problema es muy beneficioso dentro de una estrategia de desintoxi-cación. La curcumina ayuda a lograr esto.53

Ciertas enzimas de la fase I producen efectos más dañinos que otras; puede ser favorable inducir ciertos citocromos más que otros. Por ejemplo, el indol-3-carbinol, un compuesto encontrado en vegetales brasicas (crucíferos) como el brócoli

induce la actividad de CIP1A1 y CIP1A2 lo que favorece la conversión de estradiol a 2-alfa-hidro-xiestrona (buen estrógeno), más que a 16-alfa-hidroxiestrona (estrógeno cancerígeno).54

Existen varias drogas y xenobióticos que inhiben específicamente una o más enzimas de CIP450, como es el caso de ciertos antiarrítmicos, antibió-ticos, antidepresivos y antifúngicos. Los antagonis-tas del receptor H2 tienen un efecto inhibidor sobre la fase I en su totalidad porque se ligan directa-mente al hierro del hemo del CIP450, lo que puede aumentar de mucho la carga tóxica. La niacina y la riboflavina son dos vitaminas que se utilizan para inducir el CIP450 de manera equilibrada.

SUSTANCIAS QUE PUEDEN INDUCIR ENZIMAS DEL CIP450

Medicamentos Alcohol, barbitúricos, sulfonamidas.

Dietarios Dietas ricas en proteína o brassica,grasas saturadas.

Hormonas Hormonas esteroides.

ComidasComidas asadas al carbón, naranjas, sassafrás, mandarinas.

Vitaminas Niacina, riboflavina.

XenobióticosTetracloruro de carbono, dioxina, gases de combustión, pesticidas organofosforados, gases de pinturas.

Tabla 4. Sustancias que pueden inducir enzimas del CIP450.

INDUCCIÓN DE LA FASE IIPor otro lado, los compuestos que inducen reac-ciones de la fase II son beneficiosos y pueden ser utilizados dentro de un programa de desintoxica-ción para evitar la acumulación de intermediarios metabólicos reactivos.

La curcumina es uno de estos compuestos, pues facilita la metilación y excreción urinaria del arséni-co.55 También se ha observado que facilita la pro-ducción y la inducción de la glutatión S-transferasa (GST).56

El indol-3-carbinol (extracto del brócoli) induce enzimas de la fase II, GST, quinona reductasa y uridina difosfato glucuroniltransferasa.57,58

La quercetina y la vitamina A activan la glucuroni-dación.59

VERSIÓN 10/16

El carnosol y el ácido carnósico del extracto de la hoja de romero estimulan la GST y la quinona reductasa.60

ELIMINACIÓN DE METALES PESADOSLas metalotioneinas forman una familia de más de cuatro proteínas muy extrañas, compuestas en un 30% de cisteína. Estas son muy impor-tantes dentro del sistema de almacenamiento, transporte y desintoxicación de iones metálicos intracelulares. El papel principal de estas proteí-nas es el transporte y almacenamiento temporal de zinc y cobre, pero también forman enlaces con metales pesados (cadmio y mercurio prin-cipalmente) para transportarlos hasta el hígado, donde pueden ser metilados y conjugados por glutatión para su eliminación.61 El solo hecho de que las metalotioneinas ligan a varios metales pesados impide que estos puedan dañar otras biomoléculas o actuar como radicales libres.62 El zinc, consumido como suplemento, induce la expresión de los genes de la metalotioneinas, y por ende facilita la neutralización y el transporte de metales pesados.63

SOPORTE RENALEl uso de antioxidantes para proteger la función renal durante un programa de desintoxicación aumenta la seguridad y la eficacia del proceso. Se puede usar un diurético de origen vegetal en combinación con una hidratación abundante para facilitar la excreción de los compuestos por las vías urinarias. La lactona sesquiterpénica contenida en el polvo de raíz de diente de león actúa como diurético y ayuda en la excreción de toxinas hidrosolubles.

SOPORTE DE LAS VÍAS BILIARESPara mantener un buen flujo biliar, es importante tener un pH gástrico entre 1 y 2, y así estimular la producción adecuada de colecistoquinina.

Se puede hacer uso de un colerético como el polvo de raíz de diente de león para mejorar la producción y secreción de bilis.65 La síntesis de bilis requiere de colesterol, cobre, magnesio taurina, glicina, colina y fósforo.

SOPORTE DE LA FUNCIÓN INSULÍNICALa lipólisis dentro de un programa de desintoxi-cación ayuda a movilizar las toxinas liposolubles almacenadas dentro de adipocitos. Una disminu-ción de la insulina favorece la beta-oxidación de lípidos y por esta razón, mejora la sensibilidad del receptor insulínicos y la actividad de los transportadores de glucosa. Cromo, biotina, manganeso, zinc y vanadio son cofactores que participan en mejorar la función insulínica.66

EL VALOR DE UN PROGRAMA DE DESINTOXICACIÓN SUPLEMENTADO DENTRO DEL MANEJO DE CONDICIONES CRÓNICAS COMPLEJASEn un estudio sobre 106 pacientes padeciendo de enfermedades crónicas, 84 siguieron una dieta oligoantigénica limitada en calorías acom-pañado de un suplemento dietario diseñado para soportar los procesos de desintoxicación hepática (grupo experimental), mientras que 22 solo siguieron la dieta oligoantigénica limitada en calorías (grupo control). Según el Cuestionario de Evaluación Metabólica, los 84 pacientes del grupo experimental tuvieron una reducción de los síntomas del 52% sobre un período de 10 sema-nas, mientras que los 22 pacientes del grupo control solo tuvieron una reducción de los sínto-mas del 22%. La reducción de los síntomas en el grupo experimental ocurrió concomitantemente con una normalización de la actividad de las enzimas del CIP450 (fase I) en relación a la con-jugación de glicina (fase II), medidas antes y des-pués de la intervención. Se observó en el grupo experimental un incremento estadísticamente significativo de la relación sulfato/creatinina uri-nario después del tratamiento, lo que sugiere una mejoría en las reservas de nutrientes implicados en la sulfatación y una mejoría en el estatus de glutatión. Estos resultados demuestran que la suplementación de los procesos de desintoxi-cación genera efectos fisiológicos terapéuticos clínicamente significativos dentro de un manejo integral de enfermedades crónicas complejas.15


MEDICIÓN DE LOS RESULTADOSExisten exámenes de sangre, orina, cabello, uñas y heces que permiten determinar niveles de toxinas específicas y los daños que están cau-sando, y polimorfismos que afectan los procesos de desintoxicación, pero por su costo y disponibi-lidad inmediata, no se pueden siempre utilizar en la clínica diaria.

Dos marcadores que siempre se pueden pedir en los exámenes de laboratorio para orientar el pro-grama de desintoxicación y luego evaluar parte de su eficacia son: la gamma-glutamiltransferasa (GGT) y la homocisteína.

La GGT es una enzima que participa en el meta-bolismo del glutatión; su elevación por encima de 37.5 IU/L en mujeres o 50 IU/L en hombres indica una elevación del nivel de necesidad de glutatión, lo que sugiere una carga tóxica y/o oxidativa elevada.67

La homocisteína es un metabolito del ciclo de la metilación. Al soltar su grupo metilo por una reacción de transmetilación, la metionina se transforma en homocisteína. Como la mayoría de los sustratos de las metiltransferasas, la homo-cisteína es una molécula reactiva que, en can-tidades elevadas, es tóxica para el organismo, especialmente para el sistema cardiovascular, pues su elevación resulta en una disminución del óxido nítrico y disfunción endotelial. Medir la homocisteinemia en los pacientes es un acto diagnóstico sencillo, económico y muy valioso para la orientación de la estrategia terapéutica. Como regla general, se busca ubicar y mantener la homocisteinemia inferior a 8µmol/L. Niveles elevados de homocisteina plasmática indica un aumento del nivel de necesidad de metilación (lo que sugiere una carga tóxico) o una deficiencia de los nutrientes necesarios para el reciclaje de la homocisteína y la suplencia de grupos meti-los (metionina, colina, magnesio, piridoxal-5-fosfato metiltetrahidrofolato y metilcobala-mina).68

SINOPSIS DE LA FÓRMULAEste soporte nutricional está formulado espe-cialmente para el manejo de una carga tóxica aumentada y de disfunciones bioenergéticas (mitocondriales). Desarrollada para los pacien-tes que requieren de un soporte hepático adicional, esta fórmula ofrece aminoácidos, vitaminas activadas, minerales, extractos de plantas y probióticos que optimizan:

A. La actividad antipuerto, la fase I, la fase intermediaria y la fase II para que las toxinas endógenas, las drogas y los xenobióticos puedan ser biotransformados de manera segura y eficaz.

B. La secreción biliar y la filtración renal para favorecer la excreción de los compuestos transformados.

C. La producción de la gran cantidad de ATP requerida en todas las etapas de biotransformación y eliminación.

D. Los mecanismos de protección antioxidante que contrarrestan los efectos de los compuestos potencialmente peligrosos producidos normalmente por el proceso de desintoxicación.

E. El mantenimiento de una microflora intestinal saludable y balanceada, lo que disminuye la carga tóxica generada por endotoxemia y evita la recirculación de toxinas.

La fórmula se incorpora dentro de una base de proteína de arroz integral orgánico de bajo potencial alergénico, lo que suele ser beneficio-so en un paciente con una alta carga tóxica.

Todos los componentes de la fórmula se incor-poran en su forma más biodisponible. Se usan minerales en formas de citratos, cloruros, sulfa-tos, fosfatos y quelados. Las vitaminas B2, B6, B9 y B12 se suministran en sus formas activas para ayudar a superar los obstáculos genera-das por polimorfismos de nucleótidos simples que dificultan la activación de los compuestos sintéticos generalmente utilizados. Se incorpo-ran tocoferoles mixtos para suplir las diferentes formas de vitamina E.

VERSIÓN 10/16

EL USO DE ESTA FÓRMULA DENTRO DE UNA ESTRATEGIA TERAPÉUTICA FUNCIONAL Se recomienda preparar el terreno biológico del paciente antes de iniciar un programa de des-intoxicación funcional. En nuestra TABLA POR ETAPAS Y DISFUNCIONES sugerimos manejar las disfunciones de desintoxicación desde la excreción hacia arriba. Por eso en la etapa I reco-mendamos manejar la deshidratación, el estre-ñimiento, la malabsorción, la disbiosis intestinal, la permeabilidad intestinal y la insuficiencia biliar. La presencia de una o más de estas disfunciones fisiológicas juega en contra del programa de desintoxicación.

Una vez el terreno biológico del paciente está listo para soportar una fuerte inducción de los procesos de desintoxicación, se usa la fórmula en una dosis que el paciente puede tolerar sin dificultades. Al completar un mes de tratamiento, el paciente puede doblar la dosis y seguir en su tratamiento durante 15 a 30 días más, depen-diendo de la carga tóxica acumulada, su exposi-ción a toxinas en tiempo presente, su adherencia a las recomendaciones de estilo de vida, etc. Se puede utilizar esta fórmula en concomitancia con hidroterapia, saunoterapia, ayunos cortos (máximo 48 horas), dietas de restricción calórica, drenaje linfático, terapias de quelación y otras terapias.

Especialmente para los pacientes expuestos a pesticidas, metales pesados, productos químicos y otras formas de contaminantes, se recomienda realizar 2 programas de desintoxicación metabó-lica al año, tal como descrito arriba.

CONTRAINDICACIONESa. Insuficiencia renal severa.

b. Hipersensibilidad a alguno de los componentes de la fórmula.

c. Uso concomitante con clozapina en pacientes esquizofrénicos (debido al contenido en glicina).

REFERENCIAS1. Weisburger JH1 et al. Prevention of cancer and other chronic diseases

worldwide based on sound mechanisms. Biofactors. 2000;12(1-4):73-81.

2. Pelclova, D. et al. 2006. Adverse health effects in humans ex- posed to 2,3,7,8 tetrachlorodibenzo-p-dioxin (TCDD). Rev. Environ. Health. 21: 119–138.

3. Wakefield AJ, et al. Review article: the concept of entero-colonic encephalopathy, autism and opioid receptor ligands. Aliment Pharmacol Ther. 2002 Apr;16(4):663-74.

4. Mohrenweiser HW1 et al. Genetic variation and exposure related risk estimation: will toxicology enter a new era? DNA repair and cancer as a paradigm. Toxicol Pathol. 2004 Mar-Apr;32 Suppl 1:136-45.

5. Chacko P1 et al. Role of xenobiotic metabolizing gene polymorphisms in breast cancer susceptibility and treatment outcome. Mutat Res. 2005 Mar 7;581(1-2):153-63. Epub 2005 Jan 18.

6. Zeuzem S. Gut-liver axis. Int J Colorectal Dis. 2000 Apr;15(2):59-82.7. Mullen KD. Benzodiazepine compounds and hepatic encephalopathy.

N Engl J Med. 1991 Aug 15;325(7):509-11.8. Klivenyi, P. et al. 2005. Effects of mitochondrial toxins on the brain

amino acid concentrations. Neurochem. Res. 30: 1421–1427.9. Saldana, T.M. et al. 2007. Pesticide exposure and self- reported gesta-

tional diabetes mellitus in the Agricultural Health Study. Diabetes Care 30: 529–534.

10. Navas-Acien, A. et al. 2008. Arsenic exposure and prevalence of type 2 diabetes in US adults. JAMA 300: 814–822.

11. Lang, I.A. et al. 2008. Association of urinary bisphenol A concentration with medical disorders and laboratory ab- normalities in adults. JAMA 300: 1303–1310.

12. Heafield MT, et al. Plasma cysteine and sulphate levels in patients with motor neurone, Parkinson’s and Alzheimer’s disease. Neurosci Lett. 1990 Mar 2;110(1-2):216-20.

13. Steventon GB1 et al. Xenobiotic metabolism in Parkinson’s disease. Neurology. 1989 Jul;39(7):883-7.

14. Berkow R, et al, editors. Liver disease due to alcohol. In: The Merck Manual of Diagnosis and Therapy, 14th Edition. Rathway, NJ: Merck Sharp & Dohme Research Laboratories; 1982. P.846-49.

15. Bland JS et al. A Medical Food-Supplemented Detoxification Program in the Management of Chronic Health Problems. Altern Ther Health Med. 1995 Nov 1;1(5):62-71.

16. Marubayashi S. Effect of Monoclonal Antibodies to Adhesion Molecules, Nitric Oxide Synthase Inhibitors, Methylprednisolone and Lazaroid on Endotoxin-Induced Liver Cell Injury. Yoshikawa T (ed): Oxidative Stress and Digestive Diseases. Basel, Karger, 2001, pp 119-135

17. Pelletier, C., J.P. Despres & A. Tremblay. 2002. Plasma organochlorine concentrations in endurance athletes and obese individuals. Med. Sci. Sports Exerc. 34: 1971–1975.

18. O’Dwyer ST, et al. A single dose of endotoxin increases intestinal per-meability in healthy humans. Arch Surg. 1988 Dec;123(12):1459-64.

19. Wand, H. et al. 2007. Metabolic syndrome, cardiovascular disease and type 2 diabetes mellitus after initiation of antiretroviral therapy in HIV infection. AIDS 21: 2445– 2453.

20. De Morais SM, et al. Decreased glucuronidation and increased bioacti-vation of acetaminophen in Gilbert’s syndrome. Gastroenterology. 1992 Feb;102(2):577-86.

21. Ben-Jonathan, N., E.R. Hugo & T.D. Brandebourg. 2009. Effects of bis-phenol A on adipokine release from human adipose tissue: implications for the metabolic syndrome. Mol. Cell Endocrinol. 304: 49–54.

22. Yang SQ, et al. Obesity increases sensitivity to endotoxin liver injury: implications for the pathogenesis of steatohepatitis. Proc Natl Acad Sci U S A. 1997 Mar 18;94(6):2557-62.

23. Robertson G, et al. Nonalcoholic steatosis and steatohepatitis. II. Cytochrome P-450 enzymes and oxidative stress. Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol. 2001 Nov;281(5):G1135-9.

24. McKinnon RA, et al. Possible role of cytochromes P450 in lupus erythematosus and related disorders. Lupus. 1994 Dec;3(6):473-8.

25. Braganza JM, et al. Occupational chemicals and pancreatitis: a link? Int J Pancreatol. 1986 May;1(1):9-19.


26. Chang LW, Magos L, Suzuki T. Toxicology of metals. Boca Raton: Lewis Publishers; 1996.

27. Kester MH, et al. Potent inhibition of estrogen sulfotransferase by hydroxylated metabolites of polyhalogenated aromatic hydrocarbons reveals alternative mechanism for estrogenic activity of endocrine disrupters. J Clin Endocrinol Metab. 2002 Mar;87(3):1142-50.

28. Liang, HK. Clinical evaluation of the poisoned patient and toxic syndro-mes. Clin Chem. 1996;42(8B): 1350-1355

29. Nissanka Rajapakse. Combining xenoestrogens at levels below indivi-dual no-observed-effect concentrations dramatically enhances steroid hormone action. Environ Health Perspect. 2002 Sep; 110(9): 917–921.

30. Aguiar M1, et al. Regulation of cytochrome P450 by posttranslational modification. Drug Metab Rev. 2005;37(2):379-404.

31. Timbrell. Principles of biochemical toxicology. 4th Ed. London: Taylor & Francis; 2008.

32. Norppa H1, et al. Cytogenetic biomarkers and genetic polymorphisms. Toxicol Lett. 2004 Apr 1;149(1-3):309-34.

33. Le Couteur DG1, et al. Age-environment and gene-environment interactions in the pathogenesis of Parkinson’s disease. Rev Environ Health. 2002 Jan-Mar;17(1):51-64.

34. Douglas S. Kalman. Amino Acid Composition of an Organic Brown Rice Protein Concentrate and Isolate Compared to Soy and Whey Concentrates and Isolates. Foods 2014, 3, 394-402; doi:10.3390/foods3030394

35. Hodgson, E. A Textbook of Modern Toxicology. 4th Ed. ISBN: 978-0-470-46206-5; 2010

36. Lampe JW. Serum B-glucuronidase activity is inversely assoc. with plant-food intakes in humans J Nutr 2002; 132: 1341-44

37. Mustacich DJ. Alpha-tocopherol modulates genes involved in hepatic xenobiotic pathways in mice. J Nutr Biochem. 2009 Jun;20(6):469-76.

38. Knights KM1, et al. Amino acid conjugation: contribution to the meta-bolism and toxicity of xenobiotic carboxylic acids. Expert Opin Drug Metab Toxicol. 2007 Apr;3(2):159-68.

39. Melissa B., et al. (2014) “Methyl nutrients, DNA methylation, and cardiovascular disease”, Molecular Nutrition & Food Research 2014, 58, 172–182.

40. Robertson KD, Jones PA. DNA methylation: past, present and future directions. Carcinogenesis.2000;21(3):461-467.

41. Chin KV, et al. Function and regulation of the human multidrug resistan-ce gene. Adv Cancer Res. 1993;60:157-80.

42. Lo AH, et al. Carnosol, an antioxidant in rosemary, suppresses inducible nitric oxide synthase through down-regulating nuclear factor-kappaB in mouse macrophages. Carcinogenesis. 2002 Jun;23(6):983-91.

43. Grant DM1, et al. Detoxification pathways in the liver. J Inherit Metab Dis. 1991;14(4):421-30.

44. McKinnon RA, et al. Localization of cytochromes P450 in human tis-sues: implications for chemical toxicity. Pathology. 1996 May;28(2):148-55.

45. Goldin BR. The metabolism of the intestinal microflora and its rela- tionship to dietary fat, colon and breast cancer. Prog Clin Biol Res. 1986;222:655-685.

46. Callery MP. A biologic basis for limited Kupffer cell reactivity to portal-derived endotoxin. Surgery. 1991 Aug;110(2):221-30.

47. Nguyen Ngoc Hai. Effect of Bacillus subtilis on aflatoxin. Global Journal on Advances Pure and Applied Sciences, Vol 1 (2013).

48. European Bioinformatics Institute. (2009). Bacteria Genomes – Bacillus subtilus.

49. Setlow, P. “Spores of Bacillus subtilis:Their Resistance to and Killing by Radiation, Heat, and Chemicals”. Journal of Applied Microbiology. 2006 September; 101(3), 514-525.

50. Hong, H.A., et al. (2008) The Safety of Bacillus subtilis and Bacillus indicus as food probiotics. Journal of Applied Microbiology 105: 510-520.

51. Kall MA1, Clausen J. Dietary effect on mixed function P450 1A2 activity assayed by estimation of caffeine metabolism in man. Hum Exp Toxicol. 1995 Oct;14(10):801-7.

52. Guengerich FP. Effects of nutritive factors on metabolic processes involving bioactivation and detoxication of chemicals. Annu Rev Nutr. 1984;4:207-31.

53. Laurie P. Volak. Curcuminoids inhibit multiple human cytochromes P450 (CIP), UDP-glucuronosyltransferase (UGT), and sulfotransferase (SULT) enzymes, while piperine is a relatively selective CIP3A4 inhibi-tor. Drug Metab Dispos. 2008 Aug; 36(8): 1594–1605.

54. Michnovicz JJ. Increased estrogen 2-hydroxylation in obese women using oral indol-3-carbinol. Int J Obes Relat Metab Disord 1998;22:227-9.

55. Gao S. Curcumin attenuates arsenic-induced hepatic injuries and oxi-dative stress in experimental mice through activation of Nrf2 pathway, promotion of arsenic methylation and urinary excretion. Food Chem Toxicol. 2013 Sep; Epub 2013 Jul 18.

56. Leu TH. The molecular mechanisms for the antitumorigenic effect of curcumin. Curr Med Chem Anticancer Agents. 2002 May;2(3):357-70.

57. Nho CW, Jeffery E. The synergistic upregulation of phase II detoxifi-cation enzymes by glucosinolate breakdown products in cruciferous vegetables. Toxicol Appl Pharmacol. 2001;174(2):146-152.

58. Balk JL. Indol-3-carbinol for cancer prevention. Altern Med Alert 2000; 3:105-7.

59. Margaret O. James. Effects of Food Natural Products on the Biotransformation of PCBs. Environ Toxicol Pharmacol. 2008 Mar; 25(2): 211–217.

60. Sotelo-Félix JI. Evaluation of the effectiveness of Rosmarinus officina-lis (Lamiaceae) in the alleviation of carbon tetrachloride-induced acute hepatotoxicity in the rat. J Ethnopharmacol. 2002 Jul;81(2):145-54.

61. Vallee B. The function of metallothionein. Neurochem Int. 1995;27:23-33.

62. Aschner M. Metallothioneins in brain--the role in physiology and patho-logy. Toxicol Appl Pharmacol. 1997 Feb;142(2):229-42.

63. Sullivan VK. Metallothionein expression is increased in monocytes and erythrocytes of young men during zinc supplementation. J Nutr. 1998 Apr;128(4):707-13.

64. Mascolo N, Autore G, Capasso F, and et al. Biological screening of Italian medicinal plants for anti-inflammatory activity. Phytotherapy Res 1987;1(1):28-31.

65. Bohm K. Studies on the choleretic action of some drugs. Azneim-Forsh 1959;9:376-378.

66. Chen, G., et al. Chromium activates glucose transporter 4 trafficking and enhances insulin-stimulated glucose transport in 3T3-L1 adi-pocytes via a cholesterol-dependent mechanism. Mol.Endocrinol. 2006;20(4):857-870.

67. Siest G, et al. (1992). Gamma-glutamyltransferase: nucleotide sequence of the human pancreatic cDNA. Evidence for a ubiquitous gamma-glutamyltransferase polypeptide in human tissues”. Biochem. Pharmacol. 43 (12): 2527–2533

68. Miller AL, Kelly GS. Homocysteine metabolism: nutritional modulation and impact on health and disease. Altern Med Rev 1997;2:234-254.

VERSIÓN 10/16

fÓrmula - nutrabiotics.info

Documents