facultad de medicina - universidad de las américas · 2017-09-27 · facultad de medicina facultad...

Facultad de Medicina

Facultad de Ciencias de la Salud| Guía para Prácticas de Laboratorio 1

FCS103 - BIOLOGÍA CELULAR



GUIA #: 1

SESION #: 1

MEDICINA



Presentación

La presente Guía para Prácticas de Laboratorio ha sido desarrollada para que los

estudiantes de la asignatura de Biología Celular dispongan de la información

necesaria para la realización de las prácticas correspondientes de acuerdo a los

temas, objetivos y resultados de aprendizaje definidos. En este documento se

incluye el proceso en el laboratorio de experimentación e investigación, con los

respectivos recursos y resultados esperados, para que el estudiante pueda

desarrollar su práctica-taller y la elaboración de sus respectivos informes o

cualquier otra evidencia de aprendizaje, que serán evaluadas con las rúbricas que

constan en los anexos.



La Guía presenta una secuencia donde se especifica cada sesión de prácticas en

laboratorio con su respectivo proceso didáctico y formativo.

ASIGNATURA: BIOLOGÍA CELULAR

SIGLA: FCS103

PARALELO: PERIODO:

Fecha: XXXXX

PRÁCTICA

No: 1

SESIONES: 1 TEMA: Fundamentos del trabajo en el

laboratorio: Niveles y normas de

Bioseguridad

1.- OBJETIVO

Aplicar las normas de bioseguridad durante la realización de las prácticas de laboratorio



2.- RESULTADOS DE APRENDIZAJE ESPERADOS

La realización de la práctica contribuye a la adquisición de los resultados de aprendizaje de la materia:

1: Relacionar adecuadamente los conceptos bioquímicos básicos en el funcionamiento

celular utilizando ejemplos y figuras

2: Explicar con destreza el mundo celular desde el punto de vista de las diferentes formas existentes 3: Reconocer científicamente la importancia de los virus, bacterias y priones y su

repercusión en enfermedades

4: Identificar con exactitud los temas básicos de herencia y funcionamiento celular, con una apreciación de cómo influyen en estados de salud y de enfermedad

5: Organizar las fases del ciclo de vida y muerte de las células , su importancia en el desarrollo y fisiología normal 6: Sintetizar conceptos de biología celular básica para entender enfermedades complejas

3.- NUMERO DE PARTICIPANTES 3.- NUMERO DE PARTICIPANTES

3.- NUMERO DE PARTICIPANTES



3.- NUMERO DE PARTICIPANTES El número de alumnos es de máximo 18.

Calculado para todo el grupo

4.- MATERIALES/RECURSOS Y EQUIPOS

Materiales

- 3 Contenedores para material corto punzante

- 2 Basureros para desechos biológicos y comunes

Recursos

- 1 Video sobre niveles de bioseguridad

- 1 Artículo sobre niveles de bioseguridad en los laboratorios de Biomedicina

Equipos

- 1 Extintor de incendios

5.- ACTIVIDAD FORMATIVA



Prerrequisitos (Antes de comenzar este ejercicio, deberás dominar lo siguiente:)

- Niveles y normas de bioseguridad en los laboratorios de Biomedicina

Descripción de la actividad:

Durante la práctica los estudiantes ubicarán las instalaciones del laboratorio docente para determinar el nivel de bioseguridad que se debe aplicar, llenarán las actividades en la guía de laboratorio indicadas por el docente y realizarán un mapa conceptual o mental sobre los niveles de Bioseguridad, detallando el tipo de muestras que se puede analizar en cada uno, la vestimenta más adecuada para trabajar en el laboratorio y las características físicas de los laboratorios según el nivel de bioseguridad.

6.- REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS

Henderson, D. (1995). Outbreak. Película. Disponible en: http://www.youtube.com/watch?v=Bv7D_b9_-ng

Nelson, A. (2013). Niveles de Bioseguridad en Laboratorios. Focus on Field Epidemiology. Center for Public Health Preparedness. University of North Carolina. Vol 5. N°1.

http://www.youtube.com/watch?v=Bv7D_b9_-ng

http://www.youtube.com/watch?v=Bv7D_b9_-ng



7.- MECANISMO DE EVALUACIÓN Y ANEXOS

Actividad #1:

● Lea individualmente las normas de bioseguridad

Normas de Bioseguridad en el Laboratorio

Las siguientes normas están establecidas para proteger tu salud y disminuir los riesgos de

contaminación de los materiales y productos del laboratorio, para evitar accidentes que

pongan en riesgo su integridad y la de personas ajenas al trabajo del laboratorio, así como

al funcionamiento de los equipos del laboratorio.

Atuendo

● Usar mandil y guantes para realizar cualquier actividad dentro del laboratorio ● Llevar zapatos cerrados y evitar el uso de ropa que deje la piel al descubierto y

fuera de la protección del mandil ● No abandonar el laboratorio con el mandil puesto y no usarlo de saco o suéter

para salir a la calle y otros espacios públicos ● Trabajar siempre con el cabello recogido



Comportamiento

● No correr dentro del laboratorio ● No comer, fumar o tomar bebidas, masticar chicles y golosinas ● No maquillarse, ni cepillar el cabello ● No emplear ningún equipo de laboratorio (refrigeradores, horno microondas) para

almacenar o preparar alimentos ● No almacenar material biológico vivo ● No se permite la entrada de mascotas ● Cualquier accidente (material roto, derrame de sustancias, cortes, quemaduras)

debe ser informado inmediatamente al docente responsable de los laboratorios ● Los usuarios no podrán invitar a otras personas a que desarrollen sus propios

proyectos o prácticas sin previa autorización del docente responsable del laboratorio

Materiales, Reactivos y Equipos

● Dejar todo lo que se use en su sitio ● No sacar ningún material, reactivo o equipo del laboratorio ● Verificar que se cuente con todas los materiales y reactivos antes de comenzar

cualquier experimento ● Los usuarios no podrán tomar temporal o permanentemente los materiales o

reactivos de otros usuarios, sin previo aviso



● Etiquetar todos los frascos en los que se deposite cualquier sustancia. El etiquetado debe incluir: Nombre de la sustancia, Nombre de quien depositó la sustancia y fecha

● Antes de destapar cualquier frasco se debe leer su etiquetado ● No dejar destapados frascos que contengan sustancias químicas, tubos, puntas y

cualquier otro material estéril, o material potencialmente tóxico ● Cuando se destape un frasco la tapa debe ser colocada sobre la mesa boca arriba

para evitar contaminación del área de trabajo ● No oler directamente el contenido de ningún frasco ● No degustar el contenido de ningún frasco ● No utilizar recipientes vacíos de sustancias tóxicas, inflamables o irritantes de

mucosas y piel para almacenar otras sustancias químicas o material biológico ● No manipular sustancias tóxicas, irritantes, inflamables, cancerígenas o

mutagénicas fuera de las áreas destinadas para estos usos ● Todo el material y reactivos se almacenarán estrictamente en los espacios

destinados para ello ● Los tubos eppendorf deben almacenarse en las cajas destinadas para este fin para

evitar pérdidas y caídas ● El material de vidrio roto debe ser depositado inmediatamente en el contenedor y

área destinada para este fin ● Todo el equipo y material de vidrio utilizado debe entregarse perfectamente limpio



● Desechar los residuos tóxicos (tanto sustancias como materiales) únicamente en las áreas destinadas para ello. Preguntar antes de desechar soluciones por la alcantarilla

● No operar equipos cuyo manejo esté autorizado únicamente al docente responsable del laboratorio

● Solicitar asesoría para el manejo adecuado de los equipos ● En caso de que un equipo se haya descompuesto debido al mal uso y manejo, el

usuario deberá informar inmediatamente al responsable del laboratorio

Áreas individuales de trabajo

● Mantener limpias y ordenadas las áreas que ocuparon durante su trabajo ● Limpiar el espacio personal de trabajo antes y después de haber terminado

los experimentos

Áreas comunes

● Mantener cerradas las puertas del laboratorio ● Mantener en funcionamiento óptimo llaves de agua y extintores ● Mantener libres de obstáculos las salidas normales y de emergencia ● Permitir el libre paso entre las mesas de trabajo y las salidas del laboratorio



● Ante una situación de urgencia mantener la calma y abandonar tranquilamente el laboratorio, sin correr, empujar o gritar

Los usuarios que infrinjan alguna de las normas descritas serán amonestados a criterio del

docente responsable del laboratorio.

Actividad # 2:

Forme grupos de 5 personas. Conversen y relacionen las normas de Bioseguridad en el

laboratorio leídas anteriormente que deberían tomar en cuenta dentro de un hospital.

Anote 5 normas que serían comunes a ambos lugares y 2 normas que serían aplicables a

un hospital y que no estén dentro de la lista de normas de laboratorio.

Normas comunes al laboratorio y a un hospital:

_________________________________________________________________________

_________________________________________________________________________

_________________________________________________________________________



_________________________________________________________________________

Normas para un hospital que no consten dentro de esta guía:

_________________________________________________________________________

_________________________________________________________________________

_________________________________________________________________________

_________________________________________________________________________

Actividad # 3:

Lea el documento adjunto y realice un mapa conceptual o mapa mental que incluya las ideas principales respecto a los niveles de bioseguridad:

Nelson A. and FOCUS Workgroup (s.f.). Niveles de bioseguridad en el Laboratorio. Focus on Field Epidemiology. North Carolina Center for Public Health Preparedness—The North Carolina Institute for Public Health, 5(1): 1-6. Recuperado el 7 de marzo de 2014 de http://cphp.sph.unc.edu/focus/vol5/issue1/5-1BiosafetyLevels_espanol.pdf



Actividad #4: RELACIONE

Después de haber leído el documento de la actividad # 3 regrese a la Actividad 1 y marque

con las siglas CP a las normas de bioseguridad que correspondan a la contención primaria

y con las siglas CS a las normas de bioseguridad que correspondan a contención

secundaria.

PRACTICA____________________ PARALELO________

CATEGORIA 4 Excelente 3 Bueno 2 Regular 1 por mejorar NOTA



Cuestionario

El cuestionario está completo y correctamente contestado.

El cuestionario está incompleto, pero las preguntas contestadas están correctas.

El cuestionario está incompleto, y las respuestas contestadas son incorrectas.

No hay cuestionario.

Referencias Bibliográficas

Varias fuentes de antecedentes de renombre son usados y citados correctamente. El material es traducido en las propias palabras de los estudiantes.

Unas pocas fuentes de antecedentes de renombre son usadas y citadas correctamente. El material es traducido por los estudiantes en sus propias palabras.

Unas pocas fuentes de antecedentes son usadas y citadas correctamente, pero algunas fuentes no son de renombre. El material es traducido por los estudiantes en sus propias palabras.

El material es directamente copiado en lugar de ponerlo en palabras propias y/o las fuentes de antecedentes están citadas incorrectamente.





Introducción

El reporte representa un preciso y minucioso entendimiento de los conceptos científicos esenciales en el laboratorio.

El reporte representa un preciso entendimiento de la mayoría de los conceptos científicos esenciales en el laboratorio.

El reporte ilustra un entendimiento limitado de los conceptos científicos esenciales en el laboratorio.

El reporte representa un entendimiento incorrecto de los conceptos científicos esenciales en el laboratorio.



Objetivos

Especifica claramente los objetivos de la práctica

Especifica solamente algunos de los objetivos

Los objetivos no son claros

No especifica los objetivos de la práctica

Metodología

Los procedimientos están enlistados con pasos claros. Cada paso está enumerado y es una oración completa.

Los procedimientos están enlistados en un orden lógico, pero los pasos no están enumerados y/o no son oraciones completas.

Los procedimientos están enlistados, pero no están en un orden lógico o son difíciles de seguir.

Los procedimientos no enlistan en forma precisa todos los pasos del experimento.

Resultados

Una representación profesional y precisa de los datos en tablas y/o gráficas. Las gráficas y las tablas están etiquetadas y tituladas.

Una representación precisa de los datos en tablas y/o gráficas. Las gráficas y tablas están etiquetadas y tituladas.

Una representación precisa de los datos en forma escrita.

Los datos no son demostrados o no son precisos.



Conclusión

La conclusión incluye los descubrimientos que apoyan la hipótesis, posibles fuentes de error y lo que se aprendió del experimento.

La conclusión incluye los descubrimientos que apoyan la hipótesis y lo que se aprendió del experimento.

La conclusión incluye lo que fue aprendido del experimento.

No hay conclusión incluida en el informe.

Cuestionario





Apariencia/Organización

El reporte de laboratorio está mecanografiado y usa títulos y subtítulos para organizar visualmente el material.

El reporte de laboratorio está escrito a mano con esmero y usa títulos para organizar visualmente el material.

El reporte de laboratorio está escrito o mecanografiado con esmero, pero el formato no ayuda a organizar visualmente el material.

El reporte de laboratorio está escrito a mano y se ve descuidado y con tachones, múltiples borrones y/o desgarres y pliegues.


Varias fuentes de antecedentes de renombre son usados y

Unas pocas fuentes de antecedentes de

Unas pocas fuentes de antecedentes son

El material es directamente copiado en lugar de



citados correctamente. El material es traducido en las propias palabras de los estudiantes.

renombre son usadas y citadas correctamente. El material es traducido por los estudiantes en sus propias palabras.

usadas y citadas correctamente, pero algunas fuentes no son de renombre. El material es traducido por los estudiantes en sus propias palabras.

ponerlo en palabras propias y/o las fuentes de antecedentes están citadas incorrectamente.



GUIA #: 2

SESION #: 1

MEDICINA



Presentación















SIGLA: FCS103

PARALELO: PERIODO:

Fecha: XXXXX

PRÁCTICA

No: 2

SESIONES: 1 TEMA: Instrumentación en los laboratorios:

Uso y manejo de materiales y equipos de

laboratorio

1.- OBJETIVO

Seleccionar y manipular de manera correcta los materiales y equipos de laboratorio según



el procedimiento que se vaya a realizar

2.- RESULTADOS DE APRENDIZAJE ESPERADOS

La realización de la práctica contribuye:







NUMERO DE PARTICIPANTES 3.- NUMERO DE PARTICIPANTES






Calculado para todo los 18 alumnos

Materiales

- 6 Pipetas Pasteur de vidrio y de plástico - 6 Pipetas graduadas: 3 de 10 ml de capacidad y 3 de 5 ml de capacidad - 3 Micropipetas de 100-1000 ul de capacidad - 1 caja con 96 puntas de hasta 1ml de capacidad - 3 Vasos de precipitación de 250 ml - 1 Probetas de 100 ml - 1 Matraz Erlenmeyer de 250 ml - 1 Matraz aforado de 200 ml - 3 Tubos de ensayo - 3 Pisetas



- 3 Pera de goma - 3 Chupones de goma - 3 Pipeteadores - 1 Agitador magnético - 1 Mortero con pistilo - 1 Cajas petri - 1 Portaobjetos - 1 Cubreobjetos - 1 Gradillas - 1 Pinzas - 1 Varilla de vidrio - 1 Espátula - 1 Crisol - 1 Embudo - 1 trozo de papel para limpieza de lentes de 5 x 5 cm - 1 Hoja de bisturí - 1 Mango para bisturí

Equipos

- 1 Microscopio - 1 Centrífuga - 1 Balanza de precisión - 1 Baño maría



- 1 Incubadora - 1 Plancha térmica (hot plate) - 1 Cámara de flujo



- Normas de Bioseguridad en el laboratorio


Se explicará el uso y manejo de los materiales y equipos de laboratorio y luego cada estudiante podrá manipular algunos de los materiales como pipetas y micropipetas para la absorción de líquidos.


Nelson A. and FOCUS Workgroup (s.f.). Niveles de bioseguridad en el Laboratorio. Focus on Field Epidemiology. North Carolina Center for Public Health Preparedness—The North Carolina Institute for Public Health, 5(1): 1-6. Recuperado el 7 de marzo de 2014 de http://cphp.sph.unc.edu/focus/vol5/issue1/5-1BiosafetyLevels_espanol.pdf




Actividad # 1: IDENTIFIQUE

De forma individual, identifique cada uno de los materiales y equipos de laboratorio que

se mencionan en la lista a continuación:

Material de laboratorio

Nombre Presentación Usos

Pipetas

Pueden ser graduadas o de simple

aforo

Instrumento

volumétrico para

pequeñas cantidades

de líquidos con

precisión en el rango

de los mililitros (ml).

NUNCA PIPETEAR CON



LA BOCA

Pera

Sirve para succionar

líquidos con las pipetas



Micropipeta

Instrumento

volumétrico para


de líquidos con

precisión en el rango

de microlitros (µl)

Chupón de goma

Sirve para succionar

líquidos con las pipetas

Pasteur

Pipetas Pasteur

Plástico o vidrio

Sirve para tomar

pequeños volúmenes



de líquidos que no

requieren ser medidos

Probetas

De 5ml. a 2L.

Instrumento

volumétrico para

medir volúmenes más

grandes de lo que se

mediría con las pipetas



Vaso de precipitación (o de

precipitados)

Diversos volúmenes

Su función es la de

contener líquidos. SU

GRADUACIÓN NO ES

EXACTA

ErlenMeyer (o matraz)

Diversos volúmenes

Se usa en lugar del

vaso de precipitación

para líquidos que van a

ser agitados y/o

calentados. Su forma

evita pérdidas de la

solución por la

agitación o

evaporación y su

cuello permite usar

tapones. Ejm: medios

de Microbiología. SU

GRADUACIÓN NO ES



EXACTA

Balón (o balón de

destilación)

Aforados y no aforados

Contiene líquidos que

requieren de

calentamiento

uniforme (contando

con soporte universal,

aro, nuez y mechero)

Matraz aforado

De 10 ml. a 2L.

Recipiente volumétrico

de mucha exactitud. Se

parece a un balón,

pero su fondo es plano

y su cuello largo está

aforado. Sirve para

preparar soluciones de

concentración



conocida

Varilla de vidrio

Instrumento que sirve

para revolver

soluciones

Agitador magnético

Vienen en juegos de diversos tamaños

Imán especializado

para funcionar en

conjunto con una

planca térmica (hot

plate) de agitación.



Mezclar sustancias de

forma automática

Cajas Petri

Pueden ser plásticas o de vidrio y

tienen diversas presentaciones

Contiene elementos

para observación o

medios: Sólidos en el

caso de bacterias y

líquidos en

aplicaciones de

cultivos más complejos

Tubos de ensayo

Contiene volúmenes

pequeños: caldos de

cultivo, reacciones de

volúmenes pequeños



(ml)

Tubos cónicos (o Falcon)

Tubos de plástico con

el fondo en forma de

cono. Contienen

volúmenes pequeños

(ml.)

Tubos eppendorf

Tubos de plástico que

contienen volúmenes

pequeños en

microlitros (µl)



Embudo

Utensilio cónico que

sirve para trasvasar



Gradilla

Dependiendo de su

tamaño, sirve para

colocar tubos (de

ensayo, cónicos,

Eppendorf)

Pinzas

Utensilio de sostén

para material peligroso

o caliente

Portaobjetos y

Cubreobjetos

Placa de vidrio que

contiene diferentes

tipos de extensiones

para ser observadas al



microscopio. El

cubreobjetos es una

placa de vidrio más

delgada que el

portaobjetos que sirve

para cubrir o extender

el contenido del

portaobjetos

Mortero

Recipiente en el que se

muele o pulveriza

material sólido

Pistilo

Instrumento que se

utiliza para triturar

material sólido en el



mortero

Crisol

Recipiente de

porcelana que

contiene material

destinado a ser

calcinado

Espátula

Utensilio que sirve

para traspasar


de sólidos



Mechero de alcohol

Instrumento con el

cual se obtiene una

llama de fuego a base

de alcohol

Mechero de Bunsen

Instrumento con el

cual se obtiene una

llama de fuego a base

de gas



Piseta

Recipiente que

contiene líquidos, en

especial agua destilada

destinada a usos

comunes en el

laboratorio

TOME EN CUENTA QUE:

● El material de vidrio graduado es más exacto que el material graduado de plástico ● Para aforar una sustancia correctamente, se debe procurar tener la línea de aforo

a la altura de los ojos ● El alcohol con el que funciona el mechero de alcohol es el industrial o el etílico

absoluto ● Las preparaciones que elabore en el material de vidrio debe ser guardada en

frascos aparte. Evite subutilizar el material volumétrico



Equipos de Laboratorio

Nombre Presentación Utilidad

Microscopio

Observar estructuras

que no se diferencian a

simple vista



Baño María

Equipo que sirve para

calentar lenta y

uniformemente a una

sustancia líquida o

sólida

Centrífuga

Máquina que acelera

procesos de

sedimentación en base

a la densidad de los

componentes de las

sustancias y a la fuerza

centrífuga conferida por

la máquina



Plancha térmica (Hot plate)

Máquina en forma de

plancha que sirve para

calentar y/o agitar

Incubadora

Máquina que sirve para

simular condiciones

(temperatura y gases)

en las cuales se

desarrollarían células o

sus componentes.

Pruebas de

envejecimiento, secado

de material



Cámara de flujo

Maquinaria que

mediante un flujo de

aire crea un ambiente

estéril

Autoclave


esterilizar material del

laboratorio a base de

temperatura y presión

Balanzas


pesar sustancias



TOME EN CUENTA QUE:

● Exactitud y precisión no es lo mismo. Un equipo puede medir “exactamente” lo mismo siempre sin ser “preciso” por problemas de calibración

● Equipos como la balanza analítica y la centrífuga se pueden descalibrar cuando se mueven del sitio en el que se encuentran o cuando se deja abierta la puerta de estos equipos



● Los tubos que se coloquen dentro de la centrífuga deben estar balanceados, es decir que deben contener el mismo volumen y deber estar dispuestos uno frente a otro siempre en pares

Actividad # 2: INVESTIGUE

1. ¿De dónde viene el nombre “Baño María”?. Escriba un resumen de su historia.

2. ¿Explique qué representan los siguientes símbolos?

SIMBOLO SIGNIFICADO





Cuestionario







Unas pocas fuentes de antecedentes de renombre son usadas y citadas correctamente. El material es

Unas pocas fuentes de antecedentes son usadas y citadas correctamente, pero algunas fuentes no son de

El material es directamente copiado en lugar de ponerlo en palabras propias y/o las fuentes de antecedentes están



traducido por los estudiantes en sus propias palabras.

renombre. El material es traducido por los estudiantes en sus propias palabras.

citadas incorrectamente.



GUIA #: 3

SESION #: 1

MEDICINA



Presentación















SIGLA: FCS103

PARALELO: PERIODO:

Fecha: XXXXX

PRÁCTICA

No: 3

SESIONES: 1 TEMA: Instrumentación en los laboratorios:

Uso y manejo del microscopio óptico

compuesto

1.- OBJETIVO



Identificar las partes principales de un microscopio óptico compuesto y aplicar las reglas para el uso correcto del microscopio

2.- RESULTADOS DE APRENDIZAJE DE LA ASIGNATURA














Calculado para 18 estudiantes

Materiales

- 36 Pipetas Pasteur de vidrio (para todo el grupo) - 36 Chupones de goma (para todo el grupo) - 10 Caja Petri - 18 Portaobjetos - 18 Cubreobjetos - 10 Pinzas de metal (para todo el grupo) - 18 trozo de papel para limpieza de lentes de 5 x 5 cm - 18 Hojas de bisturí (para todo el grupo) - 10Mangos para bisturí (para todo el grupo)



Reactivos

- 2 ml de Azul de metileno al 1% - 2 ml de Aceite de inmersión - 100 ml de Agua destilada

Equipos

- 18 Microscopio óptico



Leer el documento adjunto sobre el uso y manejo del microscopio óptico


Observación de epidermis de cebolla en el microscopio

1. Cortar la cebolla por la mitad y separar una de las capas de la misma

2. Marcar con el bisturí o con las tijeras una cuadrícula de pequeño tamaño (1 cm de

lado) en la parte interna o cóncava de la capa



3. Separar el fragmento de epidermis con las pinzas y colocarlo en el centro del

portaobjetos

4. Colocar el porta en una caja de Petri, añadir 3-5 gotas de colorante (azul de

metileno) sobre la muestra y dejarlo actuar durante cinco minutos

5. Lavar con cuidado el exceso de colorante y secarlo con un poco de papel de filtro

6. Añadir una gota de agua a la muestra

7. Colocar el cubre apoyándolo por un lado y dejándolo caer para que no queden

burbujas

8. Observar la preparación al microscopio utilizando los lentes objetivos de 4x, 10x,

40x y 100x

9. Realizar un dibujo detallado de las células y rotular


Recuperado el 15 de abril de 2014

- http://www.docstoc.com/docs/119148874/PARTES-DE-UN-MICROSCOPIO-

%EF%BF%BDPTICO

- http://laboratorioembrio.es.tl/Manejo-del-Microscopio.htm

http://www.docstoc.com/docs/119148874/PARTES-DE-UN-MICROSCOPIO-%EF%BF%BDPTICO

http://www.docstoc.com/docs/119148874/PARTES-DE-UN-MICROSCOPIO-%EF%BF%BDPTICO




Cuestionario Medicina:

1. Investigar sobre el trasplante de células madre

2. Explicar cuál es la función del azul de metileno en el área de la salud

Cuestionario Odontología:

1. Investigar sobre el trasplante de células madre dentales

2. Explicar cuál es la función del azul de metileno en el área de la salud

Anexo:

Uso y Manejo del microscopio óptico compuesto

PARTES DE UN MICROSCOPIO ÓPTICO



Sistema óptico

OCULAR: Lente situada cerca del ojo del observador. Amplía la imagen del objetivo

OBJETIVO: Lente situada cerca de la preparación. Amplía la imagen de ésta

CONDENSADOR: Lente que concentra los rayos luminosos sobre la preparación

DIAFRAGMA: Regula la cantidad de luz que entra en el condensador



FOCO: Dirige los rayos luminosos hacia el condensador

Sistema mecánico

SOPORTE: Mantiene la parte óptica. Tiene dos partes: el pie o base y el brazo

PLATINA: Lugar donde se deposita la preparación

CABEZAL: Contiene los sistemas de lentes oculares. Puede ser monocular,

binocular, etc

REVÓLVER: Contiene los sistemas de lentes objetivos. Permite, al girar, cambiar los

objetivos

TORNILLOS DE ENFOQUE: Macrométrico (aproxima el enfoque) y micrométrico

(consigue el enfoque correcto)

MANEJO DEL MICROSCOPIO ÓPTICO

1. Colocar el objetivo de menor aumento en posición de empleo y bajar la platina

completamente. Si el microscopio se guardó correctamente en el uso anterior, ya



debería estar en esas condiciones

2. Colocar la preparación sobre la platina sujetándola con las pinzas metálicas

3. Comenzar la observación con el objetivo de 4x o colocar el de 10 aumentos (10x) si la

preparación es de bacterias

4. Para realizar el enfoque:

a. Acercar al máximo la lente del objetivo a la preparación, empleando el tornillo

macrométrico. Esto debe hacerse mirando directamente y no a través del ocular,

ya que se corre el riesgo de incrustar el objetivo en la preparación pudiéndose

dañar alguno de ellos o ambos

b. Mirando, ahora sí, a través de los oculares, ir separando lentamente el objetivo de

la preparación con el macrométrico y, cuando se observe algo nítida la muestra,

girar el micrométrico hasta obtener un enfoque fino

5. Pasar al siguiente objetivo. La imagen debería estar ya casi enfocada y suele ser

suficiente con mover un poco el micrométrico para lograr el enfoque fino. Si al



cambiar de objetivo se perdió por completo la imagen, es preferible volver a enfocar

con el objetivo anterior y repetir la operación desde el paso 3. El objetivo de 40x

enfoca a muy poca distancia de la preparación y por ello es fácil que ocurran dos tipos

de percances: incrustarlo en la preparación si se descuidan las precauciones anteriores

y mancharlo con aceite de inmersión si se observa una preparación que ya se enfocó

con el objetivo de inmersión

6. Empleo del objetivo de inmersión:

a. Bajar totalmente la platina

b. Subir totalmente el condensador para ver claramente el círculo de luz que nos

indica la zona que se va a visualizar y donde habrá que echar el aceite

c. Girar el revólver hacia el objetivo de inmersión dejándolo a medio camino entre

éste y el de 40x

d. Colocar una gota mínima de aceite de inmersión sobre el círculo de luz

e. Terminar de girar suavemente el revólver hasta la posición del objetivo de



inmersión

f. Mirando directamente al objetivo, subir la platina lentamente hasta que la lente

toque la gota de aceite. En ese momento se nota como si la gota ascendiera y se

adosara a la lente

g. Enfocar cuidadosamente con el micrométrico. La distancia de trabajo entre el

objetivo de inmersión y la preparación es mínima, aún menor que con el de 40x

por lo que el riesgo de accidente es muy grande

h. Una vez se haya puesto aceite de inmersión sobre la preparación, ya no se puede

volver a usar el objetivo 40x sobre esa zona, pues se mancharía de aceite. Por

tanto, si desea enfocar otro campo, hay que bajar la platina y repetir la operación

desde el paso 3

i. Una vez finalizada la observación de la preparación se baja la platina y se coloca el

objetivo de menor aumento girando el revólver. En este momento ya se puede

retirar la preparación de la platina. Nunca se debe retirar con el objetivo de



inmersión en posición de observación

j. Limpiar el objetivo de inmersión con cuidado empleando un papel especial para

óptica. Comprobar también que el objetivo 40x está perfectamente limpio

MANTENIMIENTO Y PRECAUCIONES

1. Al finalizar el trabajo, hay que dejar puesto el objetivo de menor aumento en posición de observación, asegurarse de que la parte mecánica de la platina no sobresale del borde de la misma y dejarlo cubierto con su funda

2. Cuando no se está utilizando el microscopio, hay que mantenerlo cubierto con su funda para evitar que se ensucien y dañen las lentes. Si no se va a usar de forma prolongada, se debe guardar en su caja dentro de un armario para protegerlo del polvo

3. Nunca hay que tocar las lentes con las manos. Si se ensucian, limpiarlas muy suavemente con un papel de filtro o, mejor, con un papel de óptica

4. No dejar el portaobjetos puesto sobre la platina si no se está utilizando el microscopio

5. Después de utilizar el objetivo de inmersión, hay que limpiar el aceite que queda en el objetivo con pañuelos especiales para óptica o con papel de filtro (menos recomendable). En cualquier caso se pasará el papel por la lente en un solo sentido y con suavidad. Si el aceite ha llegado a secarse y pegarse en el objetivo, hay que limpiarlo con una mezcla de



alcohol-acetona (7:3) o xilol. No hay que abusar de este tipo de limpieza, porque si se aplican estos disolventes en exceso se pueden dañar las lentes y su sujeción

6. No forzar nunca los tornillos giratorios del microscopio (macrométrico, micrométrico, platina, revólver y condensador)

7. El cambio de objetivo se hace girando el revólver y dirigiendo siempre la mirada a la preparación para prevenir el roce de la lente con la muestra. No cambiar nunca de objetivo agarrándolo por el tubo del mismo ni hacerlo mientras se está observando a través del ocular

8. Mantener seca y limpia la platina del microscopio. Si se derrama sobre ella algún líquido, secarlo con un paño. Si se mancha de aceite, limpiarla con un paño humedecido en xilol

9. Es conveniente limpiar y revisar siempre los microscopios al finalizar la sesión práctica y, al acabar el curso, encargar a un técnico un ajuste y revisión general de los mismos

La unidad básica de longitud que se utiliza con el microscopio de luz es el micrómetro,

aunque existen otras medidas que también pueden usarse:

1000 µm = 1mm

1000 nm = 1 µm



10000 Å = 1 µm

A medida que el poder de amplificación o la magnificación del microscopio aumenta el

espacio observado bajo el campo óptico disminuye



Cuestionario






Varias fuentes de antecedentes de renombre son usados y citados correctamente. El material es traducido en

Unas pocas fuentes de antecedentes de renombre son usadas y citadas

Unas pocas fuentes de antecedentes son usadas y citadas correctamente,

El material es directamente copiado en lugar de ponerlo en palabras propias y/o las



las propias palabras de los estudiantes.

correctamente. El material es traducido por los estudiantes en sus propias palabras.

pero algunas fuentes no son de renombre. El material es traducido por los estudiantes en sus propias palabras.

fuentes de antecedentes están citadas incorrectamente.





Enfoque con los objetivos de 4x, 10x, y 40x

Logra enfocar con los lentes objetivos: 4x, 10x, 40x y 100x.

Logra enfocar solamente con tres de los cuatro lentes objetivos.

Logra enfocar solamente con dos lentes objetivos.

No logra enfocar con ningún lente objetivo.

Limpieza del microscopio al terminar la observación

Limpia el lente de 100x con el papel correcto, baja la intensidad de luz y la platina, y deja el microscopio en el lente de menor aumento.

Limpia el lente de 100x con el papel correcto, baja la intensidad de luz y la platina, pero no deja el microscopio en el lente de menor aumento.

Limpia el lente de 100x con el papel correcto, baja la intensidad de luz pero no baja la platina ni deja el microscopio en el lente de menor aumento.

Limpia el lente de 100x con el papel correcto, pero no baja la intensidad de luz ni la platina, ni deja el microscopio en el lente de menor aumento.



Partes del microscopio

Ubica todas las partes del microscopio, y conoce su función.

Ubica todas las partes del microscopio, pero no conoce la función de todas sus partes.

Ubica algunas partes del microscopio, y no conoce la función de todas.

No ubica todas las partes del microscopio, y no conoce la función de todas.



GUIA #: 4

SESION #: 1

MEDICINA



Presentación















SIGLA: FCS103

PARALELO: PERIODO:

Fecha: XXXXX

PRÁCTICA

No: 4

SESIONES: 1 TEMA: La célula y sus componentes:

Carbohidratos

1.- OBJETIVO

Determinar las propiedades de los carbohidratos y su función celular





Calculado para 18 estudiantes

Materiales

- 44 Tubos de ensayo - 44 Pipetas Pasteur de vidrio y de plástico - 4 Caja Bipetri de plástico - 8 Hojas de bisturí con mango - 16Micropipeta 100-1000ul - 4Vaso de precipitación de 250 ml - 4 Gradilla - 4Marcador para vidrio - 8 Pipetas graduadas de 5 ml - 8 Pipetas graduadas de 10 ml - 8Peras para pipetas graduadas - 8 Chupones para pipetas Pasteur - 10 Espátulas - 16 Recipientes para pesar



- 16Pinza para tubos de ensayo - 4 Puntas para micropetas de 100-1000 ul - 3 pares de guantes desechables - 3 Mascarillas

Reactivos

- 2.4 g de Sacarosa - 2.4 g de Glucosa - 2.4 g de Lactosa - 2.4 g de Almidón - 30 ml de Xilol (xileno) - 30 ml de Reactivo de Benedict - 3 ml Solución de Lugol - 8 ml de Agua destilada

Equipos

- 1 Plancha térmica (hot plate) - 1 Balanza de precisión


Prerrequisitos (Antes de comenzar este ejercicio, deberá dominar lo siguiente:)



- Leer sobre carbohidratos: composición, clasificación y función en la célula

- Normas y niveles de bioseguridad en los laboratorios

- Anexo de la práctica 2 sobre instrumentación en los laboratorios

- Preparación de soluciones químicas básicas


A. Solubilidad

1. Preparar en tubos de ensayo 2 ml. de disoluciones de sacarosa, glucosa, lactosa y

almidón al 15 %. Agitar vigorosamente cada disolución y dejarlas reposar por 30

segundos

2. Repetir el procedimiento anterior pero en lugar de agua añadir xilol (usar

mascarilla y guantes)

3. Registrar todas sus observaciones

4. Comprobar el carácter reductor de los glúcidos frente al reactivo de Benedict

Colocar 2 ml. de soluciones de sacarosa, glucosa, lactosa y almidón al 5% en tubos

de ensayo. (Preparar disoluciones a partir de las soluciones del PASO 1, con la

fórmula C1V1=C2V2, usar solamente los tubos con agua destilada)

5. Añadir 2 ml. de Reactivo de Benedict y calentar a Baño María



B. Prueba de Lugol

1. Sobre una caja Petri colocar un trozo de cebolla y un trozo de papa

2. Añadir dos gotas de solución de lugol sobre la cebolla y dos sobre la papa

3. Observar el cambio de coloración:

Un color amarillo o café es NEGATIVO

Un color azul o negro es POSITIVO

4. Registre sus observaciones


Campbell, N.A. y Reece, J.B. (2007). Biología. (7ª ed.). Madrid, España: Panamericana.


Se realizará un informe según el siguiente formato:

NOMBRE:



FECHA DE REALIZACIÓN DE LA PRÁCTICA:

TITULO DE LA PRÁCTICA

INTRODUCCIÓN TEÓRICA:

(Escribir una introducción corta sobre el tema a tratar en la práctica respectiva incluyendo

las citas bibliográficas respectivas, de preferencia actualizadas)

OBJETIVOS: (Poner objetivos de la práctica)

METODOLOGÍA:

(Describir el procedimiento llevado a cabo durante la práctica enumerando cada paso, no

es necesario realizar una lista de materiales ya que estos deberán incluirse en la



descripción de la metodología)

RESULTADOS:

(Pueden ser presentados en tablas, gráficos, y/o cualquier otro recurso que muestre de

manera organizada los datos obtenidos)

Nota: en el caso de utilizar tablas o gráficos añadir una explicación de los datos y rotular

adecuadamente.

CONCLUSIONES:

(En base a los resultados obtenidos teniendo como base los datos teóricos).

CUESTIONARIO:

(Preguntas que consten en la guía de laboratorio de cada práctica).



REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS:

Pueden ser de libros y/o publicaciones científicas. Al finalizar el informe se consignarán las

referencias completas por orden alfabético. También se les puede asignar un número y

hacer referencia a él en el texto, en este caso simplemente se ordenarán numéricamente

las referencias completas al final del informe.

En esta página web, aparece la siguiente pantalla, y en el recuadro señalado en rojo entran a las normas APA: http://blogs.udla.edu.ec/honestidad/

Cuestionario Medicina

1.¿Qué tipo de solvente es el agua?

2.¿Qué tipo de solvente es el xilol?

3.¿Explique qué es un azúcar reductor y cómo actúa?

4.¿Por qué son factores importantes el pH y los azúcares reductores en la diarrea infantil?

Cuestionario Odontología

1.¿Qué tipo de solvente es el agua?

https://mail.udla.edu.ec/OWA/redir.aspx?C=b6fac70c50da4fb0b021c7647932aeae&URL=http%3a%2f%2fblogs.udla.edu.ec%2fhonestidad%2f

https://mail.udla.edu.ec/OWA/redir.aspx?C=b6fac70c50da4fb0b021c7647932aeae&URL=http%3a%2f%2fblogs.udla.edu.ec%2fhonestidad%2f



2.¿Qué tipo de solvente es el xilol?

3.¿Explique qué es un azúcar reductor y cómo actúa?

4.¿Explique qué son los hidratos de carbono metabolizables y cúal es su relación con la

presencia de caries?



Introducción





Objetivos







Metodología





Resultados





Conclusión







Cuestionario












Unas pocas fuentes de antecedentes de renombre son usadas y citadas correctamente. El material es traducido por los estudiantes en sus propias

Unas pocas fuentes de antecedentes son usadas y citadas correctamente, pero algunas fuentes no son de renombre. El material es traducido por los




palabras. estudiantes en sus propias palabras.



GUIA #: 5

SESION #: 1

MEDICINA



Presentación















SIGLA: FCS103

PARALELO: PERIODO:

Fecha: XXXXX

PRÁCTICA

No: 5

SESIONES: 1 TEMA: La célula y sus componentes: Lípidos

1.- OBJETIVO

Determinar las propiedades de los lípidos a través de pruebas físicas y químicas





Cantidad para 18 estudiantes

Materiales

- 18 Tubos de ensayo - 10 Pipetas graduadas - 10 Peras para pipetas graduadas - 18 Tapones para tubos de ensayo - 18 Pipetas de plástico - 6 pares de Guantes desechables - 6 Mascarillas - 1 Marcador para vidrio

Reactivos

- 6 ml de agua destilada - 6 ml de Xilol - 6 ml de Etanol



- 10 ml de Sudán IV - 20 ml de aceite

Equipos

- 1 Plancha térmica (hot plate)



Estructura y función biológica de los lípidos


1. Solubilidad de los lípidos:

Colocar 2 ml de aceite en 3 tubos de ensayo y añadir en el uno 2ml. de agua, en el

segundo tubo 2 ml. de xilol y en el tercer tubo 2 ml. de etanol

2. Detección de lípidos:



Una vez formadas las dos fases, en los tres tubos del experimento anterior, dejar

caer tres gotas de Sudán III y agitar. Dejar reposar los tubos y anotar los resultados.

Explicar que sucedió




Se realizará un informe según el formato adjunto de la práctica No. 4.


1.¿Cuál es la densidad del agua, aceite, etanol y xilol?

2.¿Qué son las grasas saturadas y las insaturadas?

3.¿En qué consiste la prueba de perfil lipídico?




1.¿Cuál es la densidad del agua, aceite, etanol y xilol?

2.¿Cuál es la relación entre la placa bacteriana y la presencia de lípidos?

3.¿En qué consiste la prueba de perfil lipídico?



Introducción





Objetivos







Metodología





Resultados





Conclusión







Cuestionario












Unas pocas fuentes de antecedentes de renombre son usadas y citadas correctamente. El material es traducido por los estudiantes en sus propias

Unas pocas fuentes de antecedentes son usadas y citadas correctamente, pero algunas fuentes no son de renombre. El material es traducido por los




palabras. estudiantes en sus propias palabras.



GUIA #: 6

SESION #: 1

MEDICINA



Presentación















SIGLA: FCS103

PARALELO: PERIODO:

Fecha: XXXXX

PRÁCTICA

No: 6

SESIONES: 1 TEMA: La célula y sus componentes:

Proteínas

1.- OBJETIVO

Identificar el papel de las proteínas en el funcionamiento y estructura celular






Materiales

- 39 Tubos de ensayo con tapones - 30 Pipetas Pasteur - 15 Pipetas de plástico - 3 Vaso de precipitación de 50 ml - 3 Vaso de precipitación de 250 ml - 3 Gradilla - 4 Pipetas graduadas de 10 ml - 4 Pipetas graduadas de 5 ml - 4 Peras para pipetas graduadas - 30 Chupones para pipetas Pasteur - 3 Espátula - 3 Recipiente para pesar - 3 Pinza para tubos de ensayo - 3 Varilla de vidrio



- 3 Probeta de 100 ml - 9 pares de guantes desechables - 9 Mascarillas

Reactivos

- 390 ml de Agua destilada - 12 ml de Etanol absoluto - 6 ml de HCl 1M - 6 ml de NaCl 1M - 6ml de NaOH 1 M - 18 ml de NaOH 10% - 15 ml Sulfato de cobre 1%

Equipos

- 1 Plancha térmica - 1 Balanza de precisión



Estructura y función de las proteínas



Descripción de la actividad: Desnaturalización:

La desnaturalización hace que los enlaces que mantiene estable la conformación

globular de las proteínas se destruyan. Así las proteínas toman una conformación

filamentosa que les hace precipitar en forma de coágulos.

Albúmina y leche

1. Realizar un orificio pequeño en la cáscara de un huevo, separar con cuidado la

clara en un vaso de precipitación

2. Preparar una solución acuosa de albúmina, mezclando la clara por un tiempo corto

y añadir luego con 125 ml de agua destilada y 0,75 gr NaCl

3. En cinco tubos de ensayo realizar el siguiente procedimiento:

- 1er tubo: 2ml sol. Albúmina (exponer a altas temperaturas)

- 2do. tubo: 2ml sol. albúmina + 1ml HCl 1M

- 3er. tubo: 2ml sol. albúmina + 1ml NaCl 1M



- 4to. tubo: 2ml sol. albúmina + 1ml NaOH 1M

- 5to. tubo: 2ml sol. albúmina + 2ml etanol absoluto

Anotar sus observaciones

Repetir los pasos 1, 2, 3, 4 y 5 reemplazando la solución de albúmina con 2 ml de

LECHE en cada tubo

Reacción de BIURET

1. Colocar 3 ml de solución de ALBÚMINA en un tubo de ensayo limpio

2. Agregar 2 ml de una solución de hidróxido de sodio al 10%; mezclar suavemente y

luego añadir 2 gotas de solución de sulfato de cobre al 1%

3. Observar y anotar los resultados, tomando en cuenta que:

- Color violeta: POSITIVO para presencia de proteínas

- Color azul: NEGATIVO para presencia de proteínas

Nota: el grupo amino de las proteínas en presencia del reactivo de Biuret, hace que

el reactivo cambie de azul a violeta



Repetir los pasos 1 y 2 con 3 ml de LECHE en lugar de solución de albúmina y en otro

tubo repetir el procedimiento con AGUA destilada






1. En qué porcentaje se encuentran las proteínas en el organismo humano?

2. Describa en 5 líneas qué proteínas se encuentran en la sangre y cuál es su función

3. Qué síntomas principales se observan cuando hay un déficit de proteínas en el

organismo?



4. ¿Qué factores influyeron para que se produzca la desnaturalización de las

proteínas albúmina y leche?

5. ¿Qué tipo de enlaces son los más representativos de las proteínas?


1. En qué porcentaje se encuentran las proteínas en el organismo humano?

2. Qué proteínas principales se encuentran en la saliva y en la dentina. Explique la

función de esas proteínas para el organismo?

3. ¿Qué factores influyeron para que se produzca la desnaturalización de las

proteínas albúmina y leche?

4. ¿Qué tipo de enlaces son los más representativos de las proteínas?



Introducción


El reporte representa un preciso entendimiento de la mayoría de los conceptos

El reporte ilustra un entendimiento limitado de los conceptos científicos

El reporte representa un entendimiento incorrecto de los conceptos científicos



científicos esenciales en el laboratorio.

esenciales en el laboratorio.


Objetivos





Metodología





Resultados







Conclusión





Cuestionario

















GUIA #: 7

SESION #: 1

MEDICINA



Presentación















SIGLA: FCS103

PARALELO: PERIODO:

Fecha: XXXXX

PRÁCTICA

No: 7

SESIONES: 1 TEMA: La célula y sus componentes: Ácidos

nucleicos

1.- OBJETIVO

Extraer ADN mediante una técnica básica que se puede aplicar a muestras de varios tipos






Materiales

- 16 Pipetas Pasteur - 10 Pipetas de plástico - 3 Mango para bisturí - 6 Hojas de bisturí - 3 Vaso de precipitación de 50 ml - 6 Pipetas graduadas de 5 ml - 6 Pipetas graduadas de 10 ml - 6 Peras para pipetas graduadas - 16 Chupones para pipetas Pasteur - 3 Probeta de 50 ml - 3 Gradilla - 6 Espátulas - 6 Recipientes para pesar - 4 Tubos cónicos de 15 ml



- 6 pares de guantes desechables - 5 Morteros de porcelana y pistilo - 6 Cuchillos - 6 Cernideras

Reactivos

- 100 ml de Agua destilada - 5 g de NaCl - 30 ml de Etanol absoluto - 4 g de Bicarbonato sódico - 4 ml de detergente líquido

Equipos

- 1 Balanza - 1 Centrífuga para tubos de 15 ml



Estructura y funcionamiento del ADN




Extracción de ADN

1. Preparar un tampón o buffer de reacción con los siguientes ingredientes:

- 30 ml de agua destilada

- 0,38 g de NaCl

- 1,25 g de bicarbonato sódico

- 1,25 ml de detergente líquido

2. Cortar la muestra (tomate de árbol y cebolla) en pedazos pequeños y macerar con

un poco de agua destilada fría en un mortero

3. Colocar en un tubo limpio 4 ml de la muestra triturada y añadir 10 ml del tampón

frío y agitar fuertemente durante 2 minutos

4. Centrifugar los tubos durante 5 minutos a baja velocidad

5. Retirar 5 ml del sobrenadante y colocar en otro tubo limpio

6. Añadir 10 ml de etanol absoluto frío

Nota: Al añadir el etanol hacerlo despacio y por las paredes del tubo que debe

estar inclinado

7. Introducir una pipeta pasteur hasta debajo de la separación entre el alcohol y el

tampón y agitar suavemente de adelante hacia atrás durante un minuto

8. Observar los fragmentos de ADN







1. Describa 5 ejemplos de tejidos del cuerpo humano de los cuales se pueda extraer ADN para su estudio molecular

2. Consulte qué función tiene la proteinasa K en el proceso de extracción de ADN 3. Escriba 2 ejemplos de enfermedades que se puedan diagnosticar con el estudio

del ADN 4. Anote 2 instituciones en la ciudad de Quito en las cuales se realicen estudios de

ADN y especifique que tipos de análisis se realizan




1. Describa 5 ejemplos de tejidos del cuerpo humano de los cuales se pueda extraer ADN para su estudio molecular

2. Consulte qué función tiene la proteinasa K en el proceso de extracción de ADN 3. Explique detalladamente cómo se extrae ADN de algunas piezas dentales y cuál

es su utilidad. 4. Anote 2 instituciones en la ciudad de Quito en las cuales se realicen estudios de

ADN y especifique que tipos de análisis se realizan PRACTICA____________________ PARALELO________


Cuestionario






Varias fuentes de antecedentes de renombre son usados y citados correctamente. El material es traducido en las propias palabras de

Unas pocas fuentes de antecedentes de renombre son usadas y citadas correctamente. El

Unas pocas fuentes de antecedentes son usadas y citadas correctamente, pero algunas

El material es directamente copiado en lugar de ponerlo en palabras propias y/o las fuentes de



los estudiantes. material es traducido por los estudiantes en sus propias palabras.

fuentes no son de renombre. El material es traducido por los estudiantes en sus propias palabras.

antecedentes están citadas incorrectamente.



GUIA #: 8

SESION #: 1

MEDICINA



Presentación















SIGLA: FCS103

PARALELO: PERIODO:

Fecha: XXXXX

PRÁCTICA

No: 8

SESIONES: 1 TEMA: Funcionamiento celular: Acción

enzimática

1.- OBJETIVO

Identificar la acción de las enzimas en el funcionamiento celular






Materiales

- 30 Tubos de ensayo - 15 Pipetas de plástico con medida - 6 Cajas Petri de plástico - 3 Mango para bisturí - 9 Hojas de bisturí - 3 Vaso de precipitación de 50 ml - 3 Vaso de precipitación de 150 ml - 3 Gradilla - 1 Marcador para vidrio - 6 Pipetas graduadas de 5 ml - 6 Peras para pipetas graduadas - 3 Espátula - 3 Recipiente para pesar - 3 Pinza para tubos de ensayo



- 9 pares de guantes desechables - 9 Cuchillos

Reactivos

- 300 ml de Agua destilada - 3 g de Almidón de papa - 3 ml de Solución de Lugol - 45 ml de Agua oxigenada

Equipos

- 1 Balanza de precisión - 1 Plancha térmica (hot plate)



Estructura y funcionamiento de las enzimas


a. Reconocimiento de la catalasa



La reacción de la catalasa sobre el H2O2, es la siguiente:

1. Colocar en tres tubos de ensayo distintos: 3 trozos pequeños de hígado de pollo, 3 trozos de corazón de pollo y 3 trozos de papa

2. Añadir 5 mililitros de agua oxigenada en cada tubo 3. Observar que reacción se produce

b. Desnaturalización de la catalasa.

1. Colocar en dos tubos de ensayo distintos: 3 trozos pequeños de hígado de pollo y 3 de corazón de pollo

2. Añadir agua para hervir la muestra durante unos 4 minutos 3. Retirar el agua sobrante 4. Añadir 3 ml de agua oxigenada 5. Observar el resultado



c. Hidrólisis del almidón

La enzima amilasa o ptialina, presente en la saliva, actúa sobre el polisacárido

almidón, hidrolizando el enlace O-glicosídico, por lo que el almidón se terminará

por transformar en unidades de glucosa

1. Marcar tres tubos de ensayo con el número 1, 2 y 3 2. Añadir a los tres tubos 3 mililitros de una solución diluida de almidón al 1% 3. Añadir al tubo 2 y 3 una pequeña cantidad de saliva 4. Al tubo 1 y 2 añadir 2 gotas de lugol y observar los resultados 5. Al tubo 3 CALENTAR en baño maría durante 4 minutos y LUEGO añadir 2 gotas

de lugol 6. Observar y anotar los resultados








1. ¿Qué son los peroxisomas y cuál es su función?

2. Explique cuáles son las causas, síntomas y tratamiento del Síndrome

cerebrohepatorrenal de Zellweger

3. Explique la causa y los síntomas de la enfermedad genética adrenoleucodistrofia

ligada al cromosoma X (ADL) y cómo intervienen los peroxisomas


1. ¿Qué son los peroxisomas y cuál es su función?

2. ¿Qué función cumple la catalasa en el organismo del ser humano y cuál es la

función del agua oxigenada sobre las heridas?

3. Explique qué importancia tiene la α-amilasa salival para el organismo humano





Introducción





Objetivos





Metodología


Los procedimientos están enlistados en un orden lógico, pero los pasos no están enumerados y/o no son oraciones





completas.

Resultados





Conclusión





Cuestionario







GUIA #: 9

SESION #: 2

MEDICINA



Presentación















SIGLA: FCS103

PARALELO: PERIODO:

Fecha: XXXXX

PRÁCTICA

No: 9

SESIONES: 2 TEMA: Funcionamiento celular: Transporte

celular

1.- OBJETIVO

Entender el funcionamiento y propiedades de la membrana celular






Materiales

- 10 Pipetas de plástico con medida - 10 Pipetas Pasteur de vidrio - 3 Caja tripetri - 3 Pisetas - 9 Lancetas - 1 torundas de algodón con alcohol - 9 Curitas - 9 Chupones para pipetas Pasteur - 9 Portaobjetos - 9 Cubreobjetos - 3 trozo de papel para limpieza de lentes de 5 x 5 cm - 6 pares de guantes desechables - 1 Marcador para vidrio



Reactivos

- 10 ml de agua destilada - 3 ml de NaCl 0,9 % - 3 ml de NaCl 10 % - 0.5 ml de aceite de inmersión - 10 ml de alcohol antiséptico

Equipos

- 3 Microscopios



Transporte celular, estructura y funcionamiento de la membrana celular


Procedimiento A:

PROCEDIMIENTO A REALIZAR ANTES DE LA PRÁCTICA



Los integrantes de cada mesa de trabajo deben dividirse el trabajo de la siguiente manera:

1. Colocar seis huevos de codorniz en jugo de limón durante 4 horas

aproximadamente, hasta que toda la cáscara se desintegre

Nota: los huevos deben estar completamente sumergidos en el jugo de limón

Si luego de 4 o 5 horas máximo no se ha desintegrado toda la cáscara raspar con

mucho cuidado la cáscara sobrante para liberar al huevo de la misma en su

totalidad

Una vez que los huevos se han liberado de toda la cáscara, sacar del jugo de limón

2. Anotar la forma y tamaño de los huevos

3. Luego sumergir a los huevos durante TODA LA NOCHE en los siguientes líquidos

(un huevo por cada líquido diferente):

- coca cola

- vinagre

- agua con sal

- miel

- gelatina con sabor disuelta en un poco de agua

- agua con azúcar



NOTA 1: NO SUMERGIR AL MISMO HUEVO EN TODOS LOS LÍQUIDOS SOLAMENTE

EN UNO DE ELLOS.

NOTA 2: Este paso lo tienen que realizar la noche anterior a la práctica

correspondiente a cada grupo

PROCEDIMIENTO A REALIZAR DURANTE LA PRÁCTICA

4. Observar y anotar el tamaño y la forma del huevo

5. Abrir el huevo y colocarlo en una caja petri. Anotar sus observaciones

6. Realizar un cuadro comparativo explicando que sucedió en cada uno de los seis

huevos

Procedimiento B:

1. Obtener sangre de la yema del dedo utilizando una lanceta estéril

2. Colocar una gota de sangre en tres cajas petri: la primera con 1 ml de NaCl al 0,9%,

la segunda con 1 ml de NaCl al 10% y la tercera con 1 gota de agua destilada. Otra



opción es colocar en una caja tripetri una gota de sangre en cada división y seguir

el procedimiento descrito anteriormente.

3. Luego de 2 minutos tome una gota de cada medio y coloque en tres portaobjetos

4. Coloque un cubreobjetos

5. Observe en el microscopio

6. Anotar y graficar los resultados


Campbell, N.A. y Reece, J.B. (2007) Biología. (7ª ed.). Madrid, España: Panamericana.






1. Explique en qué consiste el transporte activo, la difusión pasiva o simple y la

difusión facilitada en las células

2. Qué es diálisis. Explique una aplicación médica de este proceso

3. Explique que provoca la disminución de la turgencia cutánea en humanos


1. Explique en qué consiste el transporte activo, la difusión pasiva o simple y la

difusión facilitada en las células

2. Investigue sobre las manifestaciones orales que se observan en pacientes con

Insuficiencia Renal Crónica

3. Explique que provoca la disminución de la turgencia cutánea en humanos



Introducción

El reporte representa un preciso y minucioso entendimiento de los conceptos científicos esenciales en el

El reporte representa un preciso entendimiento de la mayoría de los conceptos

El reporte ilustra un entendimiento limitado de los conceptos científicos

El reporte representa un entendimiento incorrecto de los conceptos científicos



laboratorio. científicos esenciales en el laboratorio.



Objetivos





Metodología





Resultados







Conclusión





Cuestionario

















GUIA #: 10

SESION #: 1

MEDICINA



Presentación















SIGLA: FCS103

PARALELO: PERIODO:

Fecha: XXXXX

PRÁCTICA

No: 10

SESIONES: 1 TEMA: Clasificación de los seres vivos:

Organismos procariotes y eucariotes

1.- OBJETIVO



Diferenciar la estructura y características de organismos procariotes y eucariotes
















Materiales

- 18 Portaobjetos - 18 Cubreobjetos - 18 Pipeta de plástico - 18 Palillo de dientes - 18 Pipeta Pasteur - 10 Caja Petri - 10 trozo de papel para limpieza de lentes de 5 x 5 cm - 4 trozos de papel filtro de 2 x 5 cm

Reactivos

- 4 ml de azul de metileno 1%



- 4 ml de metanol - 0.5 ml de aceite de inmersión - 200 ml de agua destilada

Equipos

- 1 Plancha térmica (hot plate) - 1 Microscopio



- Estructura celular - Clasificación de los seres vivos - Uso y manejo del microscopio


BACTERIAS DEL YOGUR:

El yogur es un producto lácteo producido por la fermentación natural de la leche. A escala

industrial se realiza la fermentación añadiendo a la leche dosis del 3-4% de una asociación



de dos cepas bacterianas: el Streptococcus termophilus, poco productor de ácido,y el

Lactobacillus bulgaricus, muy acidificante. Por tanto, se observará dos tipos de

morfologías bacterianas: cocos y bacilos; y un tipo de agrupación: estreptococos (cocos en

cadenas)

1. Realizar un frotis en un portaobjetos disolviendo una mínima porción de yogur en una gota de agua destilada

2. Fijar con dos gotas de metanol para eliminar parte de la grasa. Esperar tres minutos

3. Teñir con 1 gota del colorante azul de metileno al 1% durante 2 minutos 4. Colocar con cuidado un cubreobjetos y secar el exceso con un pedazo de papel

absorbente 5. Observar en el lente de 10X y luego en el de 100X con aceite de inmersión 6. Graficar lo observado

BACTERIAS DEL SARRO DENTAL:

El sarro dental es un depósito consistente y adherente localizado sobre el esmalte de los

dientes. Está constituido principalmente por restos proteicos, sales minerales y bacterias

junto con sus productos metabólicos. La flora bacteriana de la cavidad bucal es muy

variable dependiendo de las condiciones que se den en el momento de hacer la

preparación.



1. Con un palillo de dientes tomar una pequeña porción de sarro dental y disolverla en una gota de agua sobre un portaobjetos

2. Dejar secar y fijar con calor 3. Teñir con una gota de azul de metileno al 1% durante 2 minutos 4. Lavar el exceso de colorante y secar 5. Colocar sobre la preparación un cubreobjetos y observar en el lente de 10X y luego

en el de 100X con aceite de inmersión 6. Graficar lo observado

MICROORGANISMOS DEL AGUA:

1. Colocar una gota de agua estancada sobre un portaobjetos 2. Cubrir con un cubreobjetos y observar al microscopio 3. Observar en el microscopio con diferentes aumentos 4. Dibujar los organismos unicelulares que se observen

NOTA:



Al finalizar la práctica:

1. Limpiar bien los lentes del microscopio con el papel adecuado, especialmente el lente de 100X

2. Dejar en el lente de menor aumento, envolver bien el alambre y colocar el cobertor para proteger al microscopio




Cuestionario Medicina y Odontología

1. Escriba la clasificación actual de los seres vivos especificando los reinos y un ejemplo de cada uno.



2. Realice un cuadro comparativo de las principales características de procariotas y eucariotas.



Resultados





Cuestionario







GUIA #: 11

SESION #: 2

MEDICINA



Presentación















SIGLA: FCS103

PARALELO: PERIODO:

Fecha: XXXXX

PRÁCTICA

No: 11

SESIONES: 2 TEMA: División celular

1.- OBJETIVO

Estructurar las etapas del ciclo celular






Materiales

- 9 Portaobjetos - 9 Cubreobjetos - 9 Pipeta de plástico - 9 Caja Petri - 9 pares de tijeras - 9 Vidrio de reloj - 9 Pinza delgada - 9 par de guantes desechables - 9 Mascarilla - 5 trozo de papel para limpieza de lentes de 5 x 5 cm - 5 trozo de papel filtro de 2 x 5 cm

Reactivos

- 0.5 ml de aceite de inmersión - 1 ml de Orceína acética tipo A - 1 ml de Orceína acética tipo B



Equipos

- 1 Plancha térmica (hot plate) - 1 Microscopio -



- Estructura celular - Fases del ciclo celular


Procedimiento:

1. Llenar un vaso de precipitados con agua y colocar un bulbo de cebolla sujeto con

dos o tres palillos de manera que la parte inferior quede inmersa en el agua. Al

cabo de 3-4 días aparecerán numerosas raicillas en crecimiento de unos 3 o 4 cm

de longitud

2. Cortar con las tijeras unos 2-3 mm del extremo de las raicillas y depositarlo en un

vidrio de reloj en el que se han vertido 5 gotas de orceína A



3. Calentar suavemente el vidrio de reloj a la llama del mechero (pasar por la llama

unas 5 o 6 veces), evitando la ebullición, hasta la emisión de vapores tenues.

Mover continuamente en círculo

4. Una vez que se enfríe, con las pinzas tomar uno de los ápices o extremos de las

raicillas y colocarla sobre un portaobjetos, añadir una gota de orceína B y dejar

actuar durante 1 minuto

5. Colocar el cubreobjetos con mucho cuidado sobre la raíz. Con el mango de una

aguja enmangada (o lápiz con borrador) dar unos golpecitos sobre el cubre sin

romperlo de modo que la raíz quede extendida

6. Sobre la preparación colocar unas tiras de papel de filtro. Poner el dedo pulgar

sobre el papel de filtro en la zona del cubreobjetos y hacer una suave presión,

evitando que el cubre resbale. Si la preparación está bien asentada no hay peligro

de rotura por mucha presión que se realice

7. Observar al microscopio en el lente de 10x y 100x con aceite de inmersión.

8. Realizar un gráfico de las fases observadas en el lente de 100x

Tomado y modificado de Cortés (2010).

Nota:

La persona que va a manipular la Orceína A y B debe utilizar guantes y mascarilla






Cuestionario Medicina y Odontología

1. Realice un cuadro comparativo (semejanzas y diferencias) entre los procesos de

mitosis y meiosis.



Resultados







Cuestionario










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