EL PEQUEÑO GRAN

ZOOPLANCTON

“El papel del infinitamente pequeño,

en la naturaleza es infinitamente

grande” (Louis Pasteur)

CURSO TAXONOMIA Y ECOLOGIA DEL

ZOOPLANCTON

IX CONGRESO NACIONAL DE LIMNOLOGIA

ROTÍFEROS

CLADOCEROS

COPEPODOS

EL ZOOPLANCTON

PROTOZOOS

DIPTEROS

Chaoborus

“PULGAS” Y OTROS SERES QUE RESPIRAN Y

COMEN CON LAS PATASCLASIFICACION

Dumont & Negrea 2002

Clase: Branchiopoda

Orden: Anostraca

Ordenes: Ctenopoda,

Anomopoda, Onychopoda

(«Cladócera»)

Ordenes: Laevicaudata,

Spinicaudata y Cyclestherida

(Conchostraca)

BRANCHIOPODA

Con o sin caparazón

Telson con ramas caudales

Filópodos

(Osmoreg / intercambio gas)

Maxílulas y maxilas reducidas

Corazón dorsal

Preepipodos

Epipodos

Exópodos

Orden: Anostraca

Concha cefálica - no caparazón

Ojos compuestos pedunculados

Ojo naupliar medio

Torax 11 segmentado

Abdomen 8 segmentado

Telson

Suspensívoros

DUENDECILLOS

SALADITOS O MUY NUTRITIVOS

Conchostraca

Caparazón cubriendo todo

Ojos compuestos sésiles

Ojo simple medial anterior

Tórax 10 - 32 segmentado

Telson con cercópodos

Alimento: Materia orgánica

NO ME CONFUNDAS CON UNA ALMEJA

PULGAS QUE NO PICAN

«Cladócera»

Caparazón plegado no cubre todo

Ojos compuestos sésiles fusionados

Tórax con algunos apéndices (4-6)

Postabdomen con ganchos

Cámara incubadora

Alimento: Filtradores de Materia

orgánica – Fitoplancton y detritus

COPEPODA Phylum

Arthropoda

Subphylum

Crustacea

Clase

Maxillopoda

Subclase

Copepoda

Infraclase

Neocopepoda

Orden

Calanoida

Cyclopoida

Harpacticoida11500 especies, 2500 aguas

epicontinentales y 69 en Colombia(Gaviria & Aranguren, en revisión)

Calanoida Harpacticoida Cyclopoida

Cyclopoida

CalanoidaCyclopoida

REPRODUCCION Y DESARROLLO

N1 N5N4N3N2 N6

C1C2C3C4C5C6

fecundación

sedimentos

diapausa

C5 C5

huevo

normal

huevo de

resistencia

dormancia

N1

Ciclo de vida de

copepodos

Calanoida y

Cyclopoda de

vida libre

(Paggi, 2009)

Alimentación

Especies herbívoras que se alimentan de gran variedad de

algas, desde diatomeas unicelulares hasta algas verdes

filamentosas.

Especies carnívoras y omnívoras, las cuales se alimentan de

microcrustáceos, larvas de dípteros, detritus y otros

microorganismos

Los Calanoida son esencialmente filtradores de fitoplancton

Los Cyclopoida son denominados macrófagos raptoriales,

algunos se alimentan de otros animales, que pueden ser otros

microcrustáceos y otros son omnívoros.

UNAS CHICAS LINDAS CON CUCOS

TRANSPARENTES

FHYLUM: ROTIFERA Cuvier, 1817

CARACTERÍSTICAS BÁSICAS

Corona de cilios en la zona cefálica

Presencia de Mastax: Faringe mandibular compuesta de un complejo muscular y siete piezas

(Trofi: mucopolisacaridos ácidos y quitina)

Epidermis cincitial con cutícula en su interior - Eutélicos (50 µm – 2 mm)

PEQUEÑO PERO COMPLEJO

A LA HORA DE COMER

QUE LINDOS DIENTES

TIENES

HEMBRAS MUY PROLIFERAS

Rotíferos Cladóceros Copépodos

Talla (mm) 0.1 0.3 – 3 0.5 – 5

Reproducción Partenogénesis

(Anfigonia)

Partenogénesis

(Anfigonia)

Anfigonia

Desarrollo Directo Directo Indirecto

Formas de

resistencia

Huevos durables

Anabiosis

Huevos durables

efipios

Huevos durables

diapausa

Generación (días) 1.25 – 7 5.5 – 24 7 – 32

Estrategias evolutivas R Transición R – K K

Métodos de

Alimentación

Sedimentadores

Raptoriales

Filtradores Macrófagos

Raptoriales

Alimento (um) 1 – 20 1 – 50 5 – 100

Tipo de alimento Algas, Detritos

Bacterias, Rotíferos

Protozoos

Algas

Bacterias

Algas

Rotíferos

Ciliados

Tasa de filtración Muy baja Alta Baja

Depredación por

Invertebrados

Alta Moderada Moderada (ad)

Alta (juv)

Depredación por

Vertebrados

Muy baja Alta Moderada

¿QUÉ EXPLICA LA DIVERSIFICACIÓN DE LOS ROTIFEROS?

CLASIFICACIÓN Y RIQUEZA

• Número de especies: 2034

• Clase Pararotatoria Sudzuki, 1964

Orden Seisonacea Wesenberg-Lund, 1899

• Clase: Eurotatoria De Ridder, 1957

Subclase Bdelloidea Hudson, 1884

Subclase Monogononta Plate, 1889

(Segers 2007)(htt.://fada.biodiversity.be)

Clase Pararotatoria: Orden Seisonacea

(3 spp.)

Marinos, comensales de crustáceos.

Cuerpo grande y alargado, corona reducida. – Trofi fulcrado

Con machos y hembras similares (con dos gónadas)

(Seison)

Clase: Eurotatoria: Subclase Bdelloidea

(461 spp.)

Rotíferos con dos ovarios

Cuerpo con tendencia a forma telescópica (retractil)

Trofi ramado: adaptado para triturar

Clase: Eurotatoria: Subclase Monogononta

(1.570 spp.)

Rotíferos con un solo ovario.

Mastax adaptado a múltiples estratégias tróficas.

Ordenes:

Collothecaceae Harring, 1913

Flosculariaceae Harring, 1913

Ploima Hudson and Gosse, 1886

Orden: Collothecaceae Harring, 1913

La mayoría sésiles

Boca en el fondo de una concavidad

Extremo anterior redeado por brazos o haces de setas

Collotheca, Stephanocerus

Trofi Uncinado - Vista frontalScala = 10 µm

f, fulcrum; m, manubrium; r, ramus; u, uncus

Orden: Flosculariaceae Harring, 1913

Sésiles , muchos tubícolas

Algunos de vida libre sin dedos en el pie

Corona con doble anillo de cilios

Conochilus, Filinia, Testudinella, Floscularia, Hexarthra,Trochosphaera

Vista frontal

Escala = 10 µm

H. Segers (2004)

Flosculariaceae

Trochosphaeridae Harring, 1913Campo apical: cúpula sin órganos sensoriales, trophy maleorramado con pseudoalulas

corona simple +/circular interrumpida dorsalmente, sin pie (Nogrady & Segers, 2002)

Filinia Bory de St. Vincent, 1824 (15 spp.)Filinia terminalis (Plate, 1886)

Seta caudal inmóvil y apical

Fórmula dental: 14-15/16-17 (izq/der)

Filinia novaezealandiae Shiel & Sanoamuang, 1993

Inserción de seta caudal móvil - final del cuerpo: 10 µm

Fórmula dental 18-19/19-20 (izq/der)

Filinia longiseta (Ehrenberg, 1834)

Inserción de seta caudal móvil - final del cuerpo: al menos 40 µm

Fórmula dental: 18-19/20-21 (izq/der)

Filinia saltator (Gosse, 1886)

Usualmente seta caudal ausente – o muy pequeña < long del cuerpo

Fórmula dental: 15-16/15-16 (izq/der)

Filinia opoliensis (Zacharias, 1898)

(Seta posterior con una pequeña seta o espina adicional)

Filinia pejleri Hutchinson, 1964

Cuerpo en forma de huso, setas laterales asimétricas

seta caudal rígida (continuidad del cuerpo)

Fórmula dental: 16-17/17-19 (izq/der)

pseudoalula

Flosculariaceae

Trochosphaeridae Harring, 1913

Trochosphaera Semper, 1872 (2 spp.)Cuerpo esférico, campo apical fuertemente curvado, vitelario elongado con numerosos núcleos

Trochosphaera aequatorialis Semper, 1872 Trochosphaera solstitialis Thorpe, 1893

Horaella Donner, 1949 (2 spp.) Cuerpo con forma de saco, campo apical menos conspicuo , sin apéndices

Horaella thomassoni Koste, 1973 Horaella brehmi Donner, 1949

Conochilidae Harring, 1913Conochilus Ehrenberg, 1834 (6 spp.)

Conochilus (Conochiloides) coenobasis (Skorikov, 1914): Base con = longitud de antenas ventrales

Conochilus (Conochiloides) dossuarius Hudson, 1885: AV fusionadas basalmente un tercio (NC)

Conochilus (Conochiloides) natans (Seligo, 1900): AV separadas, pie en vaina gelatinosa (NC)

Conochilus (Conochilus) hippocrepis (Schrank, 1803) (Colonial)

Conochilus (Conochilus) unicornis Rousselet, 1892 (Colonial)

Flosculariaceae

Flosculariaceae

Flosculariidae Ehrenberg, 1838Beauchampia crucigera (Dutrochet, 1812)

Floscularia Cuvier, 1798 (10 spp.)

Lacinularia Schweigger, 1820 (8 spp.)

Limnias Schrank, 1803 (6 spp.)

Octotrocha Thorpe, 1893 (1 sp.)

Ptygura Ehrenberg, 1832 (25 spp.)

Sinantherina Bory de St. Vincent, 1826 (6 spp.)

Hexarthridae Bartos, 1959Hexarthra Schmarda, 1854 (13 spp.)

Hexarthra intermedia (Wiszniewski, 1929)

El labio inferior poco desarrollado, brazo ventral con un par de

ganchos (espinas) fuertes y 8 filamentos. Unci con 5 dientes .

Hexarthra mira (Hudson, 1871)

Labio inferior muy desarrollado, brazo ventral con tres pares

de ganchos (espinas) fuertes y 8 filamentos en 4 inserciones .

Unci con 6 dientes a cada lado.

Flosculariaceae

Testudinellidae Harring, 1913Pompholyx Gosse, 1851 (3 spp.)

Pompholyx complanata Gosse, 1851

Cuerpo muy deprimido, lorica casi circular con una protuberancia puntiaguda en

la mitad de la placa dorsal

Pompholyx sulcata Hudson, 1885

Lorica con forma de huevo; dividido en cuatro lóbulos en sección transversal:

El borde frontal elevado a una proyección dorsal en forma de lóbulo, dos

elevaciones laterales y ventralmente un seno poco profundo

Flosculariaceae

Flosculariaceae

Testudinellidae Harring, 1913Testudinella Bory de St. Vincent, 1826 (43 spp.)

Cuerpo m

Testudinella emarginula (Stenroos, 1898)

Testudinella mucronata (Gosse, 1886)

Testudinella patina (Hermann, 1783):

Testudinella dendradena de Beauchamp, 1955

Testudinella ohlei Koste, 1972:

Testudinella tridentata Smirnov, 1931:

Orden: Ploima Hudson and Gosse, 1886

Rotíferos nadadores

Cuerpo con o sin lórica a menudo corto y aveces en forma de saco

Orden: Ploima Hudson and Gosse, 1886 : Asplanchnidae Eckstein, 1883

Asplanchna Gosse, 1850 (9 spp.): A. sieboldii (Leydig, 1854), A. girodi de Guerne, 1888

Trophy incudado: depredadores

Sin Pie

Apertura

urogenital

Orden: Ploima Hudson and Gosse, 1886 : Asplanchnidae Eckstein, 1883

Asplanchnopus Guerne, 1888 (4 spp.)

Incudado

Eike F. Wilts

Harringia De Beauchamp, 1912 (2 spp.)

Ventral view

D. Fontaneto & G. Melone

Apertura

urogenitalPie Ano Pie

Intestino

Trophy: maleado

Anuraeopsis Lauterborn, 1900 (5 spp.): Anuraeopsis fissa Gosse, 1851 Anuraeopsis navicula navicula Rousselet, 1911

Kellicottia Ahlstrom, 1938 (2 spp.)Kellicottia bostoniensis (Rousselet, 1908), Kellicottia longispina (Kellicott, 1879):

Orden: Ploima Hudson and Gosse, 1886 : Brachionidae Ehrenberg, 1838

Brachionus Pallas, 1766 (55 spp.)

B. quadridentatus Hermann, 1783

B. angularis Gosse, 1851

Brachionus calyciflorus Pallas, 1766

Brachionus havanaensis Rousselet, 1911

Brachionus urceolaris Müller, 1773

Brachionus caudatus Barrois & Daday, 1894

Brachionus falcatus Zacharias, 1898

Brachionus dolabratus Harring, 1914

Orden: Ploima Hudson and Gosse, 1886 : Brachionidae Ehrenberg, 1838

Maleado

Keratella Bory de St. Vincent, 1822 (45 spp.)

Keratella americana Carlin, 1943

Keratella cochlearis (Gosse, 1851)

Keratella quadrata (Müller, 1786)

Keratella tropica (Apstein, 1907)

Orden: Ploima Hudson and Gosse, 1886 : Brachionidae Ehrenberg, 1838

Orden: Ploima Hudson and Gosse, 1886 : Brachionidae Ehrenberg, 1838

Notholca Gosse, 1886 (40 spp.)

Notholca acuminata (Ehrenberg, 1832) Notholca foliacea (Ehrenberg, 1838)

Orden: Ploima Hudson and Gosse, 1886 : Brachionidae Ehrenberg, 1838

Plationus Segers, Murugan and Dumont, 1993 (3 spp.)

Plationus patulus (Müller, 1786)

Platyias Harring, 1913 (3 spp.)

Platyias quadricornis (Ehrenberg, 1832) Platyias leloupi Gillard, 1967

Dicranophorus Nitzsch, 1827 (50 spp.)

Dicranophorus epicharis Harring & Myers

Dicranophoroides claviger (Hauer, 1965)

Encentrum Ehrenberg, 1838 (100 spp.)

Encentrum felis (Müller, 1773)

Orden: Ploima Hudson and Gosse, 1886 : Dicranophoridae Harring,1913Trophy Forcipado

Orden: Ploima Hudson and Gosse, 1886 : Epiphanidae Harring, 1913

Epiphanes Ehrenberg, 1832 (6 spp.): Cuerpo transparente, blando, no loricados. Pie muy variable, dedos

cortos con glándula pedia grande.

Epiphanes clavulata (Ehrenberg, 1832) Epiphanes brachionus (Ehrenberg, 1837)

Epiphanes macroura (Barrois & Daday, 1894) Epiphanes senta (Müller, 1773)

Epiphanes sentaEpiphanes sentaEpiphanes senta

Euchlanidae Ehrenberg, 1838

Beauchampiella Remane, 1929 (1 sp.)

Beauchampiella eudactylota (Gosse, 1886):

Dipleuchlanis De Beauchamp, 1910 (3 spp.)

Dipleuchlanis propatula (Gosse, 1886):

Euchlanidae Ehrenberg, 1838

Euchlanis Ehrenberg, 1832 (24 spp.)

Euchlanis dilatata Ehrenberg, 1832

Euchlanis incisa Carlin, 1939

Euchlanis semicarinata Segers, 1993

Euchlanis triquetra Ehrenberg, 1838

Gastropodidae Harring, 1913(Trophy virgado)

Ascomorpha Perty, 1850 (9 spp.)

Ascomorpha ovalis (Bergendal, 1892)

Gastropus Imhof, 1888 (3 spp.)

Gastropus hyptopus (Ehrenberg, 1838)

Gastropus stylifer (Imhof, 1891):

Gastropus minor (Rousselet, 1892):

Ituridae Sudzuki, 1964

Itura Harring and Myers, 1928 (6 spp.)

Itura aurita (Ehrenberg, 1830)

Lecanidae Remane, 1933

Lecane Nitzsch, 1827 (170 spp.)

Lecane luna

L. quadridentata

Lepadellidae Harring, 1913

Colurella Bory de St. Vincent, 1824 (20 spp.)

C. uncinata

Lepadella Bory de St. Vincent, 1826

L. ovalis

Paracolurella Myers, 1936 (2 spp.)

Paracolurella aemula

Paracolurella logima

Squatinella Bory de St. Vincent, 1826 (6 spp.)

Squatinella bifurca (Bolton, 1884)

Squatinella lamellaris mutica (Ehrenberg, 1832)

Mytilinidae Harring, 1913

Lophocharis Ehrenberg, 1838 (6 spp.)Lophocharis salpina

Mytilina Bory de St. Vincent, 1826 (11 spp.)

Mytilina acanthophora

Mytilina bicarinata (Perty, 1850) Original

Mytilina macrocera (Jennings, 1894)

Mytilina mucronata (M ller, 1773

Mytilina ventralis (Ehrenberg, 1832)

Notommatidae Hudson and Gosse, 1886

Monommata Bartsch, 1870 (ca 18 spp.)

Monommata longiseta Notommata aurita

Resticula Harring and Myers, 1924 (7 spp.) Pleurotrocha Ehrenberg, 1830 (6 spp.)

Proalidae Harring and Myers, 1924

Proales Gosse, 1886 (42 spp.): Proales fallaciosa

Scaridiidae Manfredi, 1927

Scaridium Ehrenberg, 1830 (7 spp.): Scaridium longicaudum(Trophy Virgado)

Synchaetidae Hudson and Gosse, 1886(Tropy virgado)

Pseudoploesoma Myers, 1938 (2 spp.) Ploesoma Herrick, 1885 (7 spp.)

Synchaetidae Hudson and Gosse, 1886(Trophy virgado)

Synchaeta Ehrenberg, 1832 (38 spp.)

Synchaeta jollyae Shiel & Koste, 1993 Synchaeta pectinata Ehrenberg, 1832

Synchaeta stylata Wierzejski, 1893:

Synchaetidae Hudson and Gosse, 1886

Polyarthra Ehrenberg, 1834 (ca 10 spp.)

Polyarthra major Burckhardt, 1900 Polyarthra remata (Skorikov, 1896)Vitelario: 8 – 12 núcleos Vitelario: 4 núcleos

Ancho/largo ap.: 1/5 Ancho/largo ap.: 1/10

Polyarthra dolichoptera Idelson, 1925(Ap. Ventral - Vitelario: 8 núcleos - Ancho/largo ap.: </= 1/5)

Polyarthra vulgaris Idelson, 1925

Trichocercidae Harring, 1913

Trichocerca Lamarck, 1801 (75 spp.): Trichocerca cylindrica (Imhof, 1891), Trichocerca

capucina (Wierzejski & Zacharias, 1893), Trichocerca longiseta (Schrank, 1802),

Trichocerca bicristata (Gosse, 1887), Trichocerca pusilla (Jennings, 1903))

Trichotriidae Harring, 1913

Macrochaetus Perty, 1850 (11 spp.)

Tricotaría Bory de St. Vincent, 1827 (7 spp.)

(Segers, 2008)

PANA

NT

AT

OL

AUPAC

ANT

Algunas causas de la problemática actual de la Taxonomía de Rotíferos

1.- Partenogénesis facultativa u obligada

2.-Tiempo generacional corto y alta tasa de mutaciones

3.-Insuficiencia de caracteres morfológicos

4. Alta variabilidad

Giri & José de Paggi 2006

Análisis con morfometría geométrica

Las especies crípticas, o sibling especies

El caso de Brachionus plicatilis

Cariología (número de cromosomas, ,forma, bandeo de cromosomas)

La diferencia en el número de cromosomas en morfotipos de Brachionus plicatilis

junto con otros elementos permitió separar 2 especies. (Rumengan et al. 1993)

Electroforesis ( se analizan las proteínas como alozimas e isozimas)

La ventaja de la electroforesis es que permite ver las hibridaciones

cosa que no se ve con el ADN mitocondrial.

Hibridación del ADN mitocondrial

Las relaciones filogenéticas de la familia Asplanchnidae se determinaron usando

Datos morfológicos y moleculares( regiones nuclearesITS and V4 y mitochondrial

cox1) Esto mostro qe la familia es un grupo monofilético que comprende 3

géneros, no 4 como se supuso. Walsh et al., 2005.

OTRAS TECNICAS USADAS EN TAXONOMIA

Análisis de secuencias de DNA en dos genes mitocondriales, 16S rDNA

y cytochrome oxidase I (COI).

A nivel de K.cochlearis Derry et al.,2003

Un fragmento de aproximadamente 640 pares de bases de ADN mitocondrial,

que codifica para la Citocromo Oxidasa 1 (CO1) de la cadena respiratoria, es

distinto y único en cada especie animal de nuestro planeta y es, precisamente

conocido como CO1 o códigos de barras (barcotes, en ingles).

Cabe señalar que los códigos de barras que se colocan en lo artículos están

basados en 10 numerales consecutivos combinados en 17 posiciones posibles lo

cual da 100 millones de posibilidades .

Los códigos de barras de la vida estarían basados en 4 nucleótidos pero en

cadenas muy largas de ADN; no obstante solo 15 posiciones de ADN dan la

posibilidad de 1000 millones de combinaciones.

Paul Hebert propuso que

Elías-Gutiérrez

DEPREDADORES

DEPREDADORES

MesocyclopsAlevinosChaoborus

VARIACIONES MORFOLOGICAS

(CICLOMORFOSIS)

Cambios temporales, ciclicos, estacionales en una población.

1. Euciclomorfosis: Factores físicos o alimentación

2. Quimiomorfosis: Excreciones de depredadores

3. Sucesión Clonal: Un genotipo – Varios fenotipos

Varios genotipos interfértiles

4. Peudociclomorfosis: Varios genotipos aislados

Euciclomorfosis: Alimento

Asplanchna sieboldi

500 µm

science.kennesaw.edu

www.microscopy-uk.org.uk

Quimiomorfosis y Sucesión Clonal

Keratella cochlearis(Tropocyclops prasinus y Asplanchna)

K. c. hispida

K. c. robusta K.c. tecta

K. c. faluta

Keratella cochlearis(Tropocyclops prasinus Mesocyclops y Asplanchna)

Otros ejemplos de ciclomorfosis

Inducida por depredadores

• K. slacki : A. brightwelli, A. girodi

• K. Tropica: Alevinos

• Brachionus calyciflorus: Asplanchna

Inducida por eclosión de huevos

de resistencia

• Polyarthra (ápteros)

MIGRACIONES

TIPOS

•Nocturna o directa: Noche Día

•Crepuscular: Atardecer Amanecer

•Inversa: Día Noche

Metabolismo:

Mejor muerto que con

hambre

Mejor con hambre que

muerto

FACTORES

Luz

Temperatura

Termoclina

Alimento

Señales Químicas (CO2 – Chaoborus )

Varía no solo de especie a especie, sino dentro de la

misma especie de acuerdo con la fase de desarrollo y sexo

del organismo

POSICION DEL ZOOPLANCTON DENTRO DEL FLUJO DE ENERGIA

EN ECOSISTEMAS ACUATICOS

Alim

ento

Excre

tas

Cadaveres y excretas

Zooplancton Planctívoros Piscívoros

Bacterias

Algas

MZP

Respiración

Alimento

Nuevos

nutrientes

Cadavere

s y

excre

tas

Carbón

Atmosférico

Alim

e nto

Exu

dad

os

Nutrien

tes reciclados

Energía

Microalgas

DEPREDACION

POR

INVERTEBRADOS

PECES

PLANCTIVOROS

MACROZOOPLANCTON

FITOPLANCTON

NO COMIBLE

FOSFORO

NITROGENO

CLADOCEROS

PEQUEÑOS

FITOPLANCTON

COMIBLENANOFITOPLANCTON

ROTIFEROS

PECES

PISCIVOROS

Consumo

Competencia

POSICION DEL ZOOPLANCTON DENTRO DEL FLUJO DE ENERGIA

EN ECOSISTEMAS ACUATICOS

Esquema general de las interacciones biológicas que implican al

zooplancton (las flechas con mayor grosor indican un mayor efecto

relativo).Tomado de Conde-Porcula et al. (2004)

IMPACTO DE LOS DEPREDADORES EN LAS COMUNIDADES

ZOOPLANCTONICAS

Efecto de la composición y abundancia de peces sobre

la estructura de talla del zooplancton (Dobson, 1974)

INFLUENCIA DE FACTORES

ABIOTICOS

MATERIAL EN SUSPENSION

Reconocer diferencias de tamaño

Menor interacción por competencia y depredación

Aumento o disminución de recurso asociado

(Bacterias – ciliados)

VARIABLES FISICAS

Lago el Tigre. Río Paraná. (José de Paggi, 1993)

VELOCIDAD DE LA CORRIENTE

Mayor velocidad : Menor densidad

(Ríos y planos inundables)

Mayor velocidad : Menor riqueza (Entre ríos)

Mayor velocidad: Mayor riqueza

(Arrastre y conectividad en zonas inundables)

Temperatura y el régimen de precipitaciones

FACTORES QUE DETERMINAN EL DESARROLLO

Turbidez, concentración de gases, disponibilidad y

diversidad de alimento

Cuando la temperatura comienza a elevarse, ocurre un

crecimiento en las poblaciones de cladóceros.

El desarrollo de poblaciones fitoplanctónicas contribuye al

aumento de la población de cladóceros y rotíferos

FACTORES QUE DETERMINAN LA TASA DE

FILTRACION E INGESTION

Tamaño de animal: cuanto mas grande sea un individuo de una

especie, mayor será la tasa de filtración.

Tamaño de la partícula: la tasa de filtración se reduce con el

aumento del tamaño de las partículas.

Calidad del alimento: los alimentos con mayor valor nutricional son

mejor aprovechados, por ejemplo, las algas vivas son más

aprovechadas que el detritus.

Temperatura: con una elevación de la temperatura la tasa de

filtración aumenta, pero por encima de un valor óptimo la tasa de

filtración de verá reducida.

METODOS DE COLECTA

RED DE PLANCTON

TRAMPA SCHINDLER PATALAS

PERISTALTIC

PUMPS

ESTIMACIÓN DE

DENSIDADES

Sedgewick Rafter

counting cellsBogorov Counting

Chamber

ESTIMATIVOS ECOLOGICOS

Tipo de TrofiGrupo funcional

PrincipalAlimento principal

Porcentaje

promedio

Maleado Detritívoro Microalgas, bacterias, protozoos 49,86

Maleorramado Detritívoro Microalgas, bacterias, protozoos 10,11

Virgado Planctívoro Algas de pequeño tamaño 39,99

Incudado Depredador Rotíferos, protozoos 0,04

Tabla 3. Abundancia promedio de los tipos de trofi para los muestros de Mayo a Julio

0123456789

101112131415161718

Marzo Abril Mayo Junio Julio

Riq

ue

za

(S

)

Embalse Zona Media Cerca de la Presa Confluencia

Figura 1. Variación de la riqueza de rotíferos entre Marzo y

Julio. Para los dos primeros meses no se realizó muestreo en

la confluencia.

0

1

2

3

4

5

6

7

8

9

Polya

rthra

sp.

Kerat

ella a

mer

ican

a

Brach

ionu

s ha

vane

nsis

Brach

ionu

s do

labr

atus

Hex

arth

ra sp.

cf. S

inan

terin

a

Kerat

ella tr

opica

Filinia lo

ngiset

a

0

20

40

60

80

100

120

Promedio (Ind/L) Frecuencia (%)

De

ns

ida

d P

rom

ed

io

Fre

cu

en

cia

Figura 3. Especies con mayor densidad promedio y frecuencia superior al

75% de los muestreos.

0,08 0,03

0

5

10

15

20

25

30

35

40

45

50

Marzo Abril Mayo Junio Julio

Den

sid

ad

(In

d/L

)

Embalse Zona Media Cerca de la Presa Confluencia

Figura 1. Variación de la densidad promedio total de rotíferos entre Marzo y

Julio. Para los dos primeros meses no se realizó muestreo en la confluencia,

los valores de este sitio se colocan en números por ser demasiado bajos.

Figura 1. Rotíferos Oligosaprobicos. 1. Anuraeopsis

fissa , 3. Ascomorpha ecaudis , 10. Cocochilus unicornis ,

11. Gastropus stylifer , 21 Trichocerca tigris .

Figura 2. Rotíferos Beta - Mesosaprobicos.

1.Asplanchna priodonta priodonta , 2. Brachionus angularis

5. Brachionus quadridentatus , 7. Brachionus urceolaris , 8.

Euchlanis dilatata , 9. Hexarthra mira , 10. Keratella

cochlearis , 17. Sinchaeta pectinata , 18. Testudinella patina

Figura 3. Rotíferos Alfa - Mesosaprobicos. 1.Asplanchna

brightwelli , 2. Brachionus angularis angularis 3. Brachionus

urceolaris , 4, Brachionus calyciflorus , 7. Filinia longiseta ,

15. Epiphanes senta.

Sládecek (1983)

ROTIFEROS COMO INDICADORES DE CALIDAD DEL AGUA

TIENES PREGUNTAS????

ALGUNAS FUENTES DE INFORMACIÓN VISUAL Y TAXONÓMICA

http://www.microscopies.com/DOSSIERS/Magazine/Articles/WD-

CLE%20BDELLOIDEA/BD%20ARTICLE%203.htm

Cultivo de rotíferos: http://www.fao.org/docrep/field/003/AB473S/AB473S03.htm

Fotos de trofi: http://users.unimi.it/melone/trophi/start.html

Segers H., 2004. Rotifera Monogononta. In: Yule C.M. & Yong H.S. (eds.),

Freshwater invertebrates of the Malaysia Region. Academy of Sciences, Malaysia,

in press.

Filinia: ttp://www.nies.go.jp/chiiki1/protoz/morpho/rotifera/r-filini.htm#Filinia

novaezealandiae

Conochilus: http://www.nies.go.jp/chiiki1/protoz/morpho/rotifera/r-con-es.htm

Fotos de rotiferos:

http://www.plingfactory.de/Science/GruKlaOeko/Teichleben/Rotatoria/TL5RotMonGnes1.h

tml

http://www.plingfactory.de/Science/GruKlaOeko/Teichleben/Rotatoria/TL5RotMonPloi1.ht

ml

http://rotifer.acnatsci.org/rotifer.ph

Brachionidae: http://rotifer.acnatsci.org/rotifer.php/familyBrachionidae

Keratella: http://www.nies.go.jp/chiiki1/protoz/morpho/rotifera/r-kerat1.htm

Platyias : http://www.nies.go.jp/chiiki1/protoz/morpho/rotifera/r-platyi.htm

Euchlanis:

http://www.google.com.co/imgres?imgurl=http://rotifer.acnatsci.org/rotifer_images/Euc_dil

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