I
UNIVERSIDAD DE GUAYAQUIL
FACULTAD DE MEDICINA VETERINARIA Y ZOOTECNIA
TRABAJO DE TITULACIÓN
PREVIO A LA OBTENCIÓN DEL TÍTULO DE:
MÉDICO VETERINARIO ZOOTECNISTA
TÍTULO
“ESTUDIO RETROSPECTIVO DE LA PREVALENCIA DE
GALLIBACTERIUM ANATIS EN POLLOS DE ENGORDE RECIBIDOS EN UN
LABORATORIO DE DIAGNÓSTICO UBICADO EN EL CANTÓN ISIDRO
AYORA.”
AUTOR:
BRIONES MONTIEL OSCAR DANIEL
TUTOR ACADÉMICO:
DRA. GEORGIA MENDOZA CASTAÑEDA MSc.
GUAYAQUIL, MARZO 2018
II
UNIVERSIDAD DE GUAYAQUIL
FACULTAD DE MEDICINA VETERINARIA Y ZOOTECNIA
TRABAJO DE TITULACIÓN
PREVIO A LA OBTENCIÓN DEL TÍTULO DE:
MÉDICO VETERINARIO ZOOTECNISTA
TÍTULO
“ESTUDIO RETROSPECTIVO DE LA PREVALENCIA DE
GALLIBACTERIUM ANATIS EN POLLOS DE ENGORDE RECIBIDOS EN UN
LABORATORIO DE DIAGNÓSTICO UBICADO EN EL CANTÓN ISIDRO
AYORA.”
AUTOR:
BRIONES MONTIEL OSCAR DANIEL
TUTOR ACADÉMICO:
DRA. GEORGIA MENDOZA CASTAÑEDA MSc.
GUAYAQUIL, MARZO 2018
III
FACULTAD DE MEDICINA VETERINARIA Y ZOOTECNIA ESCUELA/CARRERA DE MEDICINA VETERINARIA Y ZOOTECNIA
UNIDAD DE TITULACIÓN
REPOSITORIO NACIONAL EN CIENCIA Y TECNOLOGÍA
FICHA DE REGISTRO DE TESIS/TRABAJO DE GRADUACIÓN
TÍTULO Y SUBTÍTULO:
ESTUDIO RETROSPECTIVO DE LA PREVALENCIA DE
GALLIBACTERIUM ANATIS EN POLLOS DE ENGORDE
RECIBIDOS EN UN LABORATORIO DE DIAGNÓSTICO
UBICADO EN EL CANTÓN ISIDRO AYORA
AUTOR(ES)
(apellidos/nombres):
BRIONES MONTIEL OSCAR DANIEL
REVISOR(ES)/TUTOR(ES) (apellidos/nombres):
DRA. GEORGIA ELENA MENDOZA CASTAÑEDA MSc DR. PABLO TORRES LASSO MSc
INSTITUCIÓN: UNIVERSIDAD DE GUAYAQUIL
UNIDAD/FACULTAD: MEDICINA VETERINARIA Y ZOOTECNIA
GRADO OBTENIDO: MÉDICO VETERINARIO ZOOTECNISTA
FECHA DE
PUBLICACIÓN: 13/03/2018
No. DE PÁGINAS:
45
ÁREAS TEMÁTICAS: SALUD ANIMAL, PATOLOGÍA Y TRAUMATOLOGÍA
PALABRAS CLAVES/ KEYWORDS:
PREVALENCIA, GALLIBACTERIUM, ANTIBOGRAMA,
SENSIBILIDAD, RESISTENCIA
RESUMEN/ABSTRACT:
El estudio se lo realizo en un laboratorio de diagnóstico ubicado en el cantón Isidro Ayora
provincia del Guayas con el objetivo de determinar la prevalencia de Gallibacterium anatis en
pollos de engorde con y sin sintomatología respiratoria recibidos en el laboratorio desde junio
hasta noviembre del 2016. En este periodo de tiempo se recibió 194 muestras de las cuales se les
realizo cultivo bacteriológico y de acuerdo al resultado sus pruebas bioquímicas
correspondientes. Los resultados obtenidos del 100% de las muestras analizadas fue el 9% de
prevalencia del cual el 17,64% fue de aves con sintomatología respiratoria evidente y el 82,36%
fue de aves sin ningún tipo de signo clínico de enfermedad. La sensibilidad antimicrobiana por
estos aislados fue el 100% presento sensibilidad a Colistina, Norfloxacina, Levofloxacina, entre
el 55 y 90% de estos presentaron sensibilidad a Cicprofloxacina, Ceftiofur, Enrofloxacina,
Fosfomicina, Gentamicina, El 67.7 y el 100% de los aislamientos fueron resistentes a
Amoxicilina, Doxiciclina, Florfenicol, Oxitetraciclina, Sulfatrimetroprim.
ADJUNTO PDF: X SI NO
CONTACTO CON AUTOR/ES:
Teléfono:0981523929 E-mail:obriones.@gmail.
CONTACTO CON LA INSTITUCIÓN:
UNIVERSIDAD DE GUAYAQUIL FACULTAD DE
MEDICINA VETERINARIA Y ZOOTECNIA
Teléfono: 042119498
E-mail: [email protected]
IV
UNIVERSIDAD DE GUAYAQUIL
FACULTAD DE MEDICINA VETERINARIA Y ZOOTECNIA
UNIDAD DE TITULACIÓN
TRABAJO DE TITULACIÓN
PREVIO A LA OBTENCIÓN DEL TÍTULO DE:
MÉDICO VETERINARIO ZOOTECNISTA
Los miembros del tribunal de sustentación designados por la comisión interna de la
facultad de medicina veterinaria y zootecnia, damos por aprobada la presente
investigación con la nota de ___________ equivalente a __________
TRIBUNAL
_____________________________ _________________________
Dra. Guadalupe García Moncayo Dr. Pablo Torres Lasso MSc
DECANA / DELEGADA TUTOR REVISOR
_________________________________
Dr. Pedro Cedeño Reyes MSc
DOCENTE DEL ÁREA DE ESTUDIO
V
FACULTAD DE MEDICINA VETERINARIA Y ZOOTECNIA
ESCUELA/CARRERA DE MEDICINA VETERINARIA Y ZOOTECNIA
UNIDAD DE TITULACIÓN
Guayaquil, 9 de febrero del 2018
Dr. Wilfrido López Salcedo
Director de la Carrera Medicina Veterinaria
Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia
Universidad de Guayaquil
CERTIFICADO DEL TUTOR ACADÉMICO
De mis consideraciones:
Envío a Ud. el Informe correspondiente a la REVISIÓN FINAL del Trabajo de
Titulación “Estudio retrospectivo de la prevalencia de Gallibacterium anatis en pollos
de engorde recibidos en un laboratorio de diagnóstico ubicado en el cantón Isidro
Ayora”. Del estudiante OSCAR DANIEL BRIONES MONTIEL CON CI: 0925420382. Las
gestiones realizadas me permiten indicar que el trabajo fue revisado considerando todos los
parámetros establecidos en las normativas vigentes, en el cumplimento de los siguientes aspectos:
Cumplimiento de requisitos de forma:
El título tiene un máximo de palabras.
La memoria escrita se ajusta a la estructura establecida.
El documento se ajusta a las normas de escritura científica seleccionadas por la
Facultad.
La investigación es pertinente con la línea y sublíneas de investigación de la carrera.
Los soportes teóricos son de máximo años.
La propuesta presentada es pertinente.
Cumplimiento con el Reglamento de Régimen Académico:
El trabajo es el resultado de una investigación.
El estudiante demuestra conocimiento profesional integral.
El trabajo presenta una propuesta en el área de conocimiento.
El nivel de argumentación es coherente con el campo de conocimiento.
Adicionalmente, se indica que fue revisado, el certificado de porcentaje de similitud, la valoración
del tutor, así como de las páginas preliminares solicitadas, lo cual indica el que el trabajo de
investigación cumple con los requisitos exigidos.
Una vez concluida esta revisión, considero que el estudiante OSCAR DANIEL BRIONES
MONTIEL está apto para continuar el proceso de titulación. Particular que comunicamos a usted
para los fines pertinente.
Atentamente.
___________________________________
Dra. Georgia Mendoza Castañeda MSc.
C.I. 0908989767
VI
UNIVERSIDAD DE GUAYAQUIL
FACULTAD DE MEDICINA VETERINARIA Y ZOOTECNIA
UNIDAD DE TITULACIÓN
CERTIFICADO PORCENTAJE DE SIMILITUD
Habiendo sido nombrado Dra. Georgia Mendoza, Mg. Sc. TUTOR DEL TRABAJO DE
TITULACÓN, certifico que el trabajo de titulación ha sido elaborado por Briones Montiel Oscar
Daniel, con CC 0925420382, con mi respectiva supervisión como requisito parcial para la
obtención del título de Médico Veterinario y Zootecnista.
Se informa que el trabajo de titulación ESTUDIO RETROSPECTIVO DE LA PREVALENCIA DE
GALLIBACTERIUM ANATIS EN POLLOS DE ENGORDE RECIBIDOS EN UN LABORATORIO DE
DIAGNÓSTICO UBICADO EN EL CANTÓN ISIDRO AYORA, ha sido orientado durante todo el
periodo de la ejecución en el programa antiplagio URKUND, quedando 5% de coincidencia.
Dr. Georgia Mendoza, MSc.
DOCENTE TUTOR
C.I. 0908989767
Guayaquil, enero del 2018
VII
UNIVERSIDAD DE GUAYAQUIL
FACULTAD DE MEDICINA VETERINARIA Y ZOOTECNIA
UNIDAD DE TITULACIÓN
Guayaquil, 26 de febrero del 2018
CERTIFICACIÓN DEL TUTOR REVISOR
Habiendo sido nombrado PABLO GUILLERMO TORRES LASSO MSc, tutor del
trabajo de titulación ESTUDIO RETROSPECTIVO DE LA PREVALENCIA DE
GALLIBACTERIUM ANATIS EN POLLOS DE ENGORDE RECIBIDOS EN UN
LABORATORIO DE DIAGNÓSTICO UBICADO EN EL CANTÓN ISIDRO
AYORA certifico que el presente trabajo de titulación, elaborado por OSCAR DANIEL
BRIONES MONTIEL, con C.I. No. 0925420382, con mi respectiva supervisión como
requerimiento parcial para la obtención del título de MEDICO VETERINARIO Y
ZOOTECNISTA, en la Carrera/Facultad de MEDICINA VETERINARIA Y
ZOOTECNIA, ha sido REVISADO Y APROBADO en todas sus partes, encontrándose
apto para su sustentación.
…………………………………
….
Dr. Pablo Torres Lasso MSc C.I. 170647999-3
Docente Tutor
Revisor
VIII
UNIVERSIDAD DE GUAYAQUIL
FACULTAD DE MEDICINA VETERINARIA Y ZOOTECNIA
UNIDAD DE TITULACIÓN
LICENCIA GRATUITA INTRANSFERIBLE Y NO EXCLUSIVA PARA EL
USO NO COMERCIAL DE LA OBRA CON FINES NO CADÉMICOS
Yo, OSCAR DANIEL BRIONES MONTIEL con C.I. No.0925420382, certifico que los
contenidos desarrollados en este trabajo de titulación, cuyo título es “ESTUDIO
RETROSPECTIVO DE LA PREVALENCIA DE GALLIBACTERIUM ANATIS EN
POLLOS DE ENGORDE RECIBIDOS EN UN LABORATORIO DE DIAGNÓSTICO
UBICADO EN EL CANTÓN ISIDRO AYORA”. Propiedad y responsabilidad Y SEGÚN
EL Art. 114 del CÓDIGO ORGÁNICO DE LA ECONOMÍA SOCIAL DE LOS
CONOCIMIENTOS, CREATIVIDAD E INNOVACIÓN*, autorizo el uso de una licencia
gratuita intransferible y no exclusiva para el uso no comercial de la presente obra con fines no
académicos, en favor de la Universidad de Guayaquil, para que haga uso del mismo, como fuera
pertinente.
OSCAR BRIONES MONTIEL
0925420382
*CÓDIGO ORGÁNICO DE LA ECONOMÍA SOCIAL DE LOS CONOCIMIENTOS, CREATIVIDAD E
INNOVACIÓN (Registro Oficial n. 899 - Dic./2016) Artículo 114.- De los titulares de derechos de obras creadas
en las instituciones de educación superior y centros educativos.- En el caso de las obras creadas en centros
educativos, universidades, escuelas politécnicas, institutos superiores técnicos, tecnológicos, pedagógicos, de
artes y los conservatorios superiores, e institutos públicos de investigación como resultado de su actividad
académica o de investigación tales como trabajos de titulación, proyectos de investigación o innovación, artículos
académicos, u otros análogos, sin perjuicio de que pueda existir relación de dependencia, la titularidad de los
derechos patrimoniales corresponderá a los autores. Sin embargo, el establecimiento tendrá una licencia gratuita,
intransferible y no exclusiva para el uso no comercial de la obra con fines académicos.
IX
DEDICATORIA
Dedico este proyecto de tesis a Dios, porque ha estado conmigo en cada
paso que doy, cuidándome y proporcionándome fortaleza para continuar mi
carrera.
A mis padres quienes han sido el mejor ejemplo de superación y lucha. A
mis hermanos, esposa e hijos quienes son las personas fundamentales que
me dieron el ánimo y el apoyo para seguir con este proyecto de tesis el cual
espero que sirva como una guía de estudio, para que sigan proyectándose hacia
un futuro.
Oscar Daniel Briones Montiel.
X
AGRADECIMIENTO
Quisiera hacer extensiva mi gratitud al Padre Creador, que me dio el don de
la fortaleza, la sabiduría y la comprensión para poder elaborar este proyecto de
titulación.
A mis padres, que con sus esfuerzos, me apoyaron en mis etapas de estudios
y llevar a su final esta carrera.
A mis hermanos por su apoyo moral y económico que me dieron durante mi
carrera.
A mi esposa e hijas por sus esfuerzos y sacrificios hechos para que yo pueda
terminar mi carrera
A mis compañeros de labores
A la Dra. María de Lourdes Salazar Manzaba, Decana de la Facultad de
Medicina Veterinaria y Zootecnia, por la acertada dirección de la misma.
A la Dra. Georgia Mendoza Castañeda, Mg. Sc., por su valiosa orientación
sobre este proyecto y un agradecimiento muy especial por su enseñanza en
conocimiento sobre mi tema cumplido.
Oscar Daniel Briones Montiel.
XI
ÍNDICE DE CONTENIDO
I. INTRODUCCIÓN ......................................................................................... 1
1.1 Problema ......................................................................................................... 2
1.2. Justificación ...................................................................................................... 2
1.3 Objetivos ............................................................................................................ 2
1.3.1 Objetivo general ............................................................................................. 2
1.3.2 Objetivos específicos ...................................................................................... 3
1.4. Variables ........................................................................................................... 3
1.4.1 Variables intervinientes ................................................................................. 3
II. MARCO TEÓRICO ................................................................................ 4
2.1 Descripción de Gallibacterium anatis ........................................................... 4
2.2 Clasificación taxonómica de Gallibacterium anatis ....................................... 4
2.3 Historia de Gallibacterium anatis ................................................................... 5
2.4 Importancia ..................................................................................................... 5
2.5 Diagnostico ..................................................................................................... 6
2.6 Transmisión .................................................................................................... 6
2.7 Patogénesis de Gallibacterium anatis ............................................................. 6
2.8 Cápsula compuesta por polisacáridos ............................................................. 7
2.9 Síntomas y signos ........................................................................................... 8
2.10 Distribución en el mundo Gallibacterium anatis ....................................... 12
III. MATERIALES Y MÉTODOS ............................................................... 13
3.1 Características del área de estudio ............................................................... 13
XII
Ubicación Geográfica y Política. ........................................................................... 13
3.1 Materiales...................................................................................................... 14
Materiales de oficina.............................................................................................. 14
3.2 Metodología del trabajo ................................................................................ 14
3.3 Estadística aplicada ....................................................................................... 14
IV. RESULTADOS .................................................................................... 15
4.1 Prevalencia de Gallibacterium anatis en muestras de pollos recibidos en el
laboratorio de diagnóstico aviar. ................................................................................ 15
4.2 Prevalencia de Gallibacterium anatis en pollos con y sin signos
respiratorios. ................................................................................................................ 16
4.3 Aislamiento de Gallibacterium anatis por tipo de órgano. .......................... 17
4.4 Resistencia y sensibilidad de Gallibacterium anatis a diferentes tipos de
antibióticos. ................................................................................................................. 19
V. DISCUSIÓN ......................................................................................... 21
VI. CONCLUSIÓNES ................................................................................ 22
VII. RECOMENDACIONES ........................................................................ 23
VIII. BIBLIOGRAFÍA ............................................................................... 24
IX. ANEXOS .............................................................................................. 27
XIII
ÍNDICE DE TABLAS
Tabla 1 Datos generales de 194 muestras analizadas con sus respectivos resultados 15
Tabla 2 Datos de muestras con y sin síntomas respiratorios. ..................................... 16
Tabla 3 Datos de aislamientos por órganos ................................................................ 18
Tabla 4 Sensibilidad y resistencia de Gallibacterium anatis a distintos tipos de
antibióticos ................................................................................................................. 19
XIV
INDICE DE FIGURAS
Fig. 1Representación gráfica del resultado final en porcentaje .................................. 15
Fig. 2 Representación gráfica de la prevalencia en muestras de pollos con signos de
problemas respiratorios. ............................................................................................. 17
Fig. 3 Representación gráfica en porcentaje de aislamientos por tejidos ................... 18
Fig. 4 Representación gráfica de la sensibilidad y resistencia de Gallibacterium anatis
a distintos tipos de antibióticos. ................................................................................. 20
XV
UNIVERSIDAD DE GUAYAQUIL
FACULTAD DE MEDICINA VETERINARIA Y ZOOTECNIA UNIDAD DE TITULACIÓN
“ESTUDIO RETROSPECTIVO DE LA PREVALENCIA DE GALLIBACTERIUM
ANATIS EN POLLOS DE ENGORDE RECIBIDOS EN UN LABORATORIO DE
DIAGNÓSTICO UBICADO EN EL CANTÓN ISIDRO AYORA”
Autor: Oscar Daniel Briones Montiel
Tutor: Dra. Georgia Elena Mendoza Castañeda MSc.
RESUMEN
El estudio se lo realizó en un laboratorio de diagnóstico ubicado en el cantón Isidro
Ayora provincia del Guayas con el objetivo de determinar la prevalencia de
Gallibacterium anatis en pollos de engorde con y sin sintomatología respiratoria
recibidos en el laboratorio desde junio hasta noviembre del 2016. En este periodo de
tiempo se recibió 194 muestras de las cuales se les realizó cultivo bacteriológico y de
acuerdo al resultado sus pruebas bioquímicas correspondientes, los resultados obtenidos
del 100% de las muestras analizadas fue el 9% de prevalencia de G. anatis del cual el
17,64% fue de aves con sintomatología respiratoria evidente y el 82,36% fue de aves sin
ningún tipo de signo clínico de enfermedad, el 100% de estos aislados presentó
sensibilidad antimicrobiana a Colistina, Norfloxacina, Levofloxacina, entre el 55 y 90%
de estos presentaron sensibilidad a Cicprofloxacina, Ceftiofur, Enrofloxacina,
Fosfomicina, Gentamicina, El 67.7 y el 100% de los aislamientos fueron resistentes a
Amoxicilina, Doxiciclina, Florfenicol, Oxitetraciclina, Sulfatrimetroprim.
PALABRAS CLAVES: PREVALENCIA, GALLIBACTERIUM, ANTIBOGRAMA,
SENSIBILIDAD, RESISTENCIA
XVI
UNIVERSIDAD DE GUAYAQUIL
FACULTAD DE MEDICINA VETERINARIA Y ZOOTECNIA
UNIDAD DE TITULACIÓN
“RETROSPECTIVE STUDY OF THE PREVALENCE OF
GALLIBACTERIUM ANATIS IN BROILER CHICKENS RECEIVED IN A
DIAGNOSTIC LABORATORY LOCATED IN THE ISIDRO AYORA CANTON
"
Autor: Oscar Daniel Briones Montiel
Tutor: Dra. Georgia Elena Mendoza Castañeda MSc
SUMARY
The study was performed in a diagnostic laboratory located in the Isidro Ayora
Canton, Guayas province, with the objective of determining the prevalence of
Gallibacterium anatis in broiler chickens with and without respiratory symptoms received
at the laboratory from June until November of 2016. In this period of time 194 was
received samples of which underwent bacteriologic culture and as a result their
biochemical tests,the results of the 100% of the samples analyzed was the 9% prevalence
of Gallibacterium anatis which the 17.64% of birds with respiratory symptoms evident
and the 82.36% of birds without any clinical sign of disease, the antimicrobial sensitivity
by these isolates was 100% sensitivity to Colistin, norfloxacin, levofloxacin, between 55
and 90% of these showed sensitivity to Cicprofloxacina, ceftiofur, enrofloxacin,
fosfomycin, gentamicin, 67.7 and 100% of the isolates were resistant to amoxicillin,
doxycycline, Florfenicol, oxytetracycline, Sulfatrimetroprim.
KEYWORDS: PREVALENCE, GALLIBACTERIUM, ANTIBOGRAMA,
SENSITIVITY, RESISTANCE
1
I. INTRODUCCIÓN
Una de las principales causas de grandes pérdidas en la avicultura moderna, tanto
por aumento en la mortalidad como por costos en el tratamiento, son las enfermedades
del complejo respiratorio. Por tal motivo el diagnóstico y la medicación correcta y
oportuna son factores muy importantes para poder resolver el problema. (Barrientos B,
2011).
De acuerdo con Mendoza K (2014) “Los signos clínicos más comunes causados
por agentes infecciosos son; fluido óculo nasal, ojos con aspecto almendrado,
conjuntivitis, traqueítis, edema facial, o hipertrofia de senos infraorbitarios, los cuales
dificultan la identificación del agente patógeno responsable.
En la industria avícola el surgimiento de nuevas enfermedades, la reaparición de
enfermedades ya conocidas y la proliferación de bacterias que presentan multi resistencia
a los antibióticos, son situaciones familiares para los médicos de campo. Algunas de estas
enfermedades pudieron haberse presentado antes, pero no se reconocieron debido a su
baja prevalencia, signos y lesiones leves o a la falta de técnicas de diagnóstico.
“En otras situaciones, cambios genéticos en los microorganismos pudieron
volverlas más virulentas o patógenas; de manera similar los cambios genéticos en las aves
podrían haber alterado su susceptibilidad y resistencia a las enfermedades”. (Barrientos
B, 2011).
“Gallibacterium anatis es un cocobacilo, Gram positivo frecuentemente aislado
de muestras clínicas de aves con infecciones, este fue establecido recientemente como un
nuevo género dentro de la familia Pasteurellaceae por Pohl 1981”. (Christensen,
Bisgaard, Bojensen, Mutters, & Elmerdahl, 2003, págs. 275 - 287).
Este organismo, Gallibacterium anatis ha sido aislado de aves clínicamente
sanas, en las cuales se lo ha considerado como parte de la microbiota del tracto
respiratorio y de la parte baja del tracto genital, sin embargo también se lo ha aislado de
cultivos puros de aves enfermas afectadas con salpingitis, peritonitis, septicemia,
pericarditis, hepatitis y lesiones del tracto respiratorio alto, indicando que por lo menos
algunas cepas de Gallibacterium poseen un alto potencial patogénico. (Mejia, 2015)
2
1.1 Problema
La problemática es de tipo sanitario y económico, la presencia de Gallibacterium
anatis afecta los parámetros bioproductivos en pollos de engorde, Bojesen en el 2004
realizó un estudio experimental donde demostró que este patógeno causa daños severos
en los órganos de la cavidad abdominal, por lo que ha sido demostrado que
Gallibacterium anatis está implicado como causa primaria de enfermedades en aves y
también como complicación secundaria en las mismas afectadas por otros tipos de
microorganismos.
1.2. Justificación
Con el presente trabajo de investigación se pretende obtener datos sobre la
prevalencia de Gallibacterium anatis en forma clínica y subclínica en pollos de engorde,
también documentar ya que en el Ecuador no existen trabajos de investigación
documentados sobre este microorganismo y su afectación tanto económica como
sanitaria en granjas avícolas por lo que considero que este trabajo nos ayudará a
evidenciar su presencia lo que podría generar una alerta para que se implanten
mecanismos de control en los centros de producción avícola del país.
1.3 Objetivos
1.3.1 Objetivo general
Realizar un estudio retrospectivo de la prevalencia de Gallibacterium anatis en
muestras de pollos de engorde recibidos en un laboratorio de diagnóstico ubicado en el
cantón Isidro Ayora desde el mes de Junio a noviembre del 2016.
3
1.3.2 Objetivos específicos
Determinar la prevalencia de Gallibacterium anatis en muestras de pollos de
engorde recibidos en un laboratorio de diagnóstico.
Analizar la relación de la prevalencia de Gallibacterium anatis en muestras de
pollos con síntomas respiratorios y sin síntomas respiratorios.
Determinar el número de aislamientos de Gallibacterium anatis por tipo de
órgano cultivado durante el estudio.
Clasificar la resistencia y sensibilidad de Gallibacterium anatis frente a
diferentes tipos de antibióticos a través de antibiogramas realizados en
laboratorio.
1.4. Variables
1.4.1 Variables intervinientes
Prevalencia de Gallibacterium anatis.
Sensibilidad de Gallibacterium anatis a diferentes tipos de antibióticos
Presencia de síntomas respiratorios.
Tipos de órganos donde se aisló Gallibacterium anatis.
4
II. MARCO TEÓRICO
2.1 Descripción de Gallibacterium anatis
Gallibacterium anatis, microorganismo relativamente 'nuevo', es un cocobacilo,
gram negativo, inmóvil, encapsulado, no esporulado, pleomórfico, mesófilo y anaerobio
facultativo o microaerófilo, el cual crece satisfactoriamente en agar sangre de ovino al
5%, Gallibacterium anatis muestra tolerancia a las sales biliares presentes en el agar
MacConkey donde crece formando colonias rojas con morfología en “punta de alfiler”.
Además, es catalasa y oxidasa positivos, ureasa, indol y ornitina descarboxilasa negativo,
también reduce los nitratos a nitritos. (Valdillo, Piriz, & Yanes, 2002).
2.2 Clasificación taxonómica de Gallibacterium anatis
Orden: Pasteurellales
Familia. Pasteurellaceae
Género: Gallibacterium.
La familia Pasteurellaceae es muy diversa, presenta discusión en cuanto a su
clasificación taxonómica. Actualmente, la familia Pasteurellaceae comprende 13 géneros
según la “Formerly List of Bacterial names with Standing in Nomenclatura”, éstos son:
Actinobacillus, Aggregatibacter, Avibacterium, Bibersteinia, Gallibacterium,
Haemophilus, Histophilus, Lonepinella, Mannheimia, Nicoletella, Pasteurella,
Phocoenobacter y Volucribacter (Christensen, Bisgaard, Bojensen, Mutters, &
Elmerdahl, 2003).
Cuatro especies están contenidas en el género Gallibacterium:
Gallibacterium anatis
Gallibacterium melopsittaci
Gallibacterium trehalosifermentans
Gallibacterium salpingitidis
También se dice que “por filogenética se considera que el
Género Gallibacterium tiene solo tres genomospecies, es decir especies cuyo ADN tienen
al menos un 70% o más de relación” (Person & Bojesen, 2015, pág. 3).
5
2.3 Historia de Gallibacterium anatis
El género Gallibacterium, comprende una sola especie, Gallibacterium anatis y
dos genomospecies. Representa a bacterias previamente reportadas como Actinobacillus
salpingitidis, Pasteurella haemolytica aviar y Pasteurela anatis. Kjos-Hanssen (1950).
Kjos-Hanssen (1950) publicó el primer trabajo sobre esta bacteria, que
probablemente representa el organismo posteriormente nombrado como Gallibacterium;
él aisló Pasteurella hemolítica causante de una peritonitis y salpingitis.
Según Bojesen (2004) (Bojesen, Nielsen, Christensen, & Bisgaard , 2004) “varios
autores han publicado trabajos sobre lo que presumiblemente es Gallibacterium, pero con
otros nombres
En 1982, Bisgaard descubrió la existencia de un grupo taxonómico, denominado
Gallibacterium con características fenotípicas comunes a cepas clasificadas como Actino
bacilus salpingitidis y Pasteurella. haemolytica aviar.
La caracterización se realizó utilizando métodos fenotípicos, que nos permitieron
establecer una relación filogenética. Sin embargo, después del análisis de hibridación
ADN-ADN de cepas de A. salpingitidis y P. haemolytica aviar, evidenciaron un género
común confirmándose con el análisis de secuencias del ARNr 16 S, que Pasteurella
anatis y Actino bacilus. formaban un género (Christensen, Bisgaard, Bojensen, Mutters,
& Elmerdahl, 2003, págs. 275-287)
2.4 Importancia
Gallibacterium anatis se lo considera como un patógeno primario importante,
debido a que puede provocar una infección sistémica en las aves, además causa serios
daños en la ganancia de peso y en producción de huevos también ha sido aislado en aves
con síndrome de cabeza hinchada. (Mendoza R. K., 2015).
6
2.5 Diagnostico
Se puede realizar a través del aislamiento microbiológico del agente en agar
sangre (en donde produce hemólisis), además de su identificación y confirmación
mediante pruebas de oxidasa, catalasa, indol, ureasa y pruebas bioquímicas con varios
carbohidratos. Luego de su identificación se debe realizar el antibiograma para conocer
la susceptibilidad de la bacteria. (Mendoza R. K., 2015)
Para determinar el biovar de Gallibacterium anatis implicado, se tienen que
realizar pruebas bioquímicas con diferentes azúcares utilizando los carbohidratos
arabinosa xilosa, inositol, sorbitol, maltosa, trehalosa y dextrina de acuerdo a los
resultados que se obtengan con la fermentación de los azúcares, podremos conocer que
biovar tenemos presente. (Christensen, Bisgaard, Bojensen, Mutters, & Elmerdahl, 2003,
págs. 275-287)
2.6 Transmisión
Está comprobado que es vía directa horizontal, sin embargo hay un estudio donde
se aisló Gallibacterium anatis en la yema indicando también la posibilidad de transmisión
directa vertical. El nivel de bioseguridad es importante para la transmisión de la bacteria
ya que se ha demostrado que es mucho más prevalente en los sistemas de producción con
un bajo nivel de bioseguridad. (Person & Bojesen, 2015, pág. 3)
2.7 Patogénesis de Gallibacterium anatis
En favor de la hipótesis de que la bacteria por si sola puede desencadenar
un estado activo de infección, está la presencia de factores intrínsecos de la bacteria.
Gallibacterium anatis biovar hemolítica sintetiza una toxina denominada toxina
A (GtxA), la cual tiene propiedades hemolíticas (en los medios de cultivo que contienen
glóbulos rojos, generalmente de cordero). No está bien entendido hasta la fecha el papel
de esta toxina en la patogénesis de la infección; hay indicios de que está comprometida
en la evasión al sistema inmune. (Kristensen, Frees, & Bojesen, 2010).
Gallibacterium anatis posee fimbrias las cuales son estructuras filiformes que
crecen desde la superficie bacteriana y están comprometidas en la adhesión a las células
del huésped. Se cree que permiten la adhesión de la bacteria a las superficies mucosas
7
como la orofaringe para facilitar la colonización del tracto respiratorio superior del
huésped. (Mónica L. , y otros, 2012, págs. 505-510).
Gallibacterium anatis tiene vesículas de la membrana externa (OMV), son
estructuras con membrana de doble capa. Permiten a la bacteria "intercambio" o
interacción con el medio ambiente, estas OMV son producidas en forma natural por todas
las bacterias gram negativas mostrando una diversidad funcional, en estudios in vitro se
demostrado que Gallibacterium anatis segrega OMV pero que las condiciones, el tiempo
y los materiales utilizados en el crecimiento in vitro afectan la producción y composición
de esta proteína, a pesar de esto las funciones de las OMV de Gallibacterium no han sido
establecidas.
Según (Bager, Persson, Nesta, Soriani, & Serino, 2013) “Hay indicios de que
podrían actuar como un factor de virulencia importante en la adherencia a las membranas
de las células del hospedador y en su colonización”
2.8 Cápsula compuesta por polisacáridos
En general su importancia en las infecciones tienen que ver con la adhesión,
interacciones célula-célula y en la evasión a la respuesta inmune. La presencia de una fina
cápsula en Gallibacterium anatis ha sido observada por microscopía electrónica de
transmisión, (Bojesen & Kristensen , 2011).
En el caso de Gallibacterium anatis, su función en el proceso de infección no
está establecido. Las metaloproteasas que produce son enzimas que catalizan la
hidrólisis de uniones peptídicas en péptidos y proteínas, además parecen catalizar
muchas funciones esenciales de bacterias patógenas, también desempeñan muchas
funciones importantes en la virulencia incluida la colonización, adquisición de nutrientes
(Shin-ichi & Sumio, 2000, págs. 91-98).
Según (Garcia, y otros, 2005) “Gallibacterium anatis expresa metaloproteasas
capaces de degradar IgY de las aves por este motivo se sospecha que está comprometida
con la patogenicidad especifica de la especie lo cual sugiere evasión al sistema inmune”.
.
Según (Zepeda, y otros, 2010) otras metaloproteasas están codificadas en el
genoma, y comprometidas con la capacidad proteolítica de Gallibacterium anatis.
8
Además (Bojesen & Kristensen , 2011) nos indica que Gallibacterium anatis tiene
la capacidad de formar una biopelícula o biofilm que está constituido por bacterias en
crecimiento que se agrupan en una matriz polimérica, esto les permite adherirse a
superficies y tejidos vivos.
Estudios indican que “Se ha demostrado que la Gallibacterium anatis es capaz de
unirse a superficies inertes, lo cual es considerado como un primer paso hacia la
formación de la biopelícula” (Vaca, y otros, 2011).
Algunas cepas de Gallibacterium anatis pueden aglutinar glóbulos rojos de aves,
esto no es más que la expresión de hemaglutininas o adhesinas de la bacteria que son
capaces de unirse con receptores específicos de los glóbulos rojos. Esta es una propiedad
cuyas características patógenas no ha sido determinada como sí se ha hecho con otras
bacterias. (Johnson, y otros, 2013).
2.9 Síntomas y signos
En un estudio experimental realizado por (Bojesen, Nielsen, Christensen, & Bisgaard
, 2004) demostraron los siguientes.
Infección endovenosa. La infección indujo una depresión severa de los
pollos, que eran reacios a moverse. Además, varias aves desarrollaron bursa
preternalis agudamente inflamada, probablemente como resultado de períodos
antinaturalmente largos de descanso en sus senos. Tanto los pollos tratados con 5-
fluoracilo como los no tratados mostraron lesiones vasculares severas como resultado
de la septicemia inducida. La decoloración roja de la grasa y la exudación
serohemorrágica extensa en todas las cavidades del cuerpo fue aparente tan pronto
como 3 h después de la infección (pi). La histopatología del bazo demostró células
necróticas no identificables, líquido proteináceo, agregados eosinófilos y basófilos en
los elipsoides (Figura 1a).). Los agregados basófilos mostraron ser microcolonias de
Gallibacterium por la señal positiva obtenida con hibridación fluorescente in situ
(Figura 1b). Las lesiones hepáticas fueron menos evidentes y se incluyen agregados
basófilas ( Gallibacterium microcolonias) bordeados por los hepatocitos necróticos
en las aves tratadas. (Bojesen & Kristensen , 2011)
9
Un número de pollos del grupo tratado a las 12 horas. Pero sus pollos tratados
con 5-fluoracilo y tratados con solución salina exhibieron cambios vasculares
excesivos y múltiples focos necróticos. Los bazos y los hígados Sin embargo, los
cambios patológicos macroscópicos son más profundos en los pollos tratados con 5-
fluoracilo que en los tratados con solución salina. Las lesiones esplénicas en las aves
tratadas con solución salina fueron similares a las que se muestran en la Figura 1a. En
las aves tratadas con 5-fluoracilo, las lesiones esplénicas tenían áreas necróticas más
grandes que involucraban la vaina linfática periarterial, así como un pronunciado
edema en el órgano. Los cambios histológicos en el mundo fueron menos evidentes
que las lesiones esplénicas, aunque las colonias bacterianas limitadas por hepatocitos
necróticos se encontraron en los pollos tratados con 5-fluoracilo. (Bojesen, Nielsen,
Christensen, & Bisgaard , 2004)
A las 24 horas, los cambios macroscópicos fueron en su mayoría similares a
los observados después de 12 horas. Los cambios histopatológicos también se
observaron a las 12 h. Sin embargo, la formación de células gigantes multinucleadas
fue aparente alrededor de algunas de las lesiones elipsoides en el bazo. (Bojesen,
Nielsen, Christensen, & Bisgaard , 2004)
La severidad de las lesiones macroscópicas y microscópicas difirió
notablemente entre el grupo tratado con 5-fluoracilo y el grupo tratado con solución
salina, donde 11 de 15 (73%) murieron en el grupo Grupo tratado con 5-fluoracilo,
en comparación con 0/15 (0%) entre los pollos tratados con solución salina.
Infección intraperitoneal. Los pollos inoculados IP mostraron sólo lesiones
macroscópicas menores en 3 h pi Sin embargo, las bacterias ya había obtenido acceso
al sistema linfático en dos de las aves tratadas con 5-fluoracilo, como se muestra por
cultivos positivos obtenidos de los bazos. No se observaron lesiones histopatológicas
en este momento en el bazo ni en el tejido hepático de ninguna de las aves.
A las 12 horas, la peritonitis purulenta difusa y la perihepatitis fibrinosa fueron
aparentes en 4/5 de las aves tratadas con 5-fluoracilo, algunas de las cuales mostraban
signos de infección sistémica por cultivo bacteriano positivo tanto del hígado como
del bazo. Sin embargo, no se observa reacción histológica en esos órganos. Un pájaro
era culturalmente negativo en el hígado y el bazo; Sin embargo, ha sido posible
10
identificar agregados basófilos por aquellos que han sido confirmados por
Gallibacterium anatis. Los únicos cambios histológicos observados en esta condición
fueron trombosis en algunas de las venas centrales. (Bojesen, Nielsen, Christensen,
& Bisgaard , 2004)
En general, se han demostrado masas purulentas que contienen bacterias y
eritrocitos en la superficie serosa de las aves tratadas con 5-fluoracilo (Figura 1c).
Además, las micro colonias y las células individuales de Gallibacterium han sido
demostradas intracapsularmente y subcapularmente en el universo por hibridación
fluorescente in situ (Figura 1d). A las 24 en punto, ninguna de las aves tenía
antecedentes positivos de clamidia o ninguno de los pollos tratados con 5-fluoracilo
tenía peritonitis purulenta difusa. No se observan cambios histopatológicos en bazos
de animales tratados. (Bojesen, Nielsen, Christensen, & Bisgaard , 2004)
11
Fuente (In vivo studies of Gallibacterium anatis infection in chickens., 2004)
Figura 1ALíquido proteináceo,
agregados eosinófilos y basófilos en los
elipsoides
Figura 1B Microcolonias de
Gallibacterium por la señal positiva obtenida
con hibridación fluorescente in situ (FISH)
Figura 1C Masas purulentas que
contienen bacterias y eritrocitos en la
superficie serosa de las aves tratadas con 5-
fluoracilo (5-FU)
Figura 1D Microcolonias demostradas
intracapsularmente y subcapsularmente en
el universo por hibridación fluorescente in
situ (FISH)
12
Gallibacterium anatis es una bacteria que está comprometida en forma particular
en las infecciones de tejido subcutáneo de cabeza, de senos infraorbitarios y de huesos de
cráneo en lo que se conoce como "Síndrome de cabeza hinchada", afección muy común
en los pollos de engorde y de mucha menor frecuencia en ponedoras comerciales y aún
de menor frecuencia en reproductoras en cualquiera de sus etapas de crecimiento y
producción. (Mejia, 2015).
Según el Dr. Bernardo Mejía en su blogs de patología aviar menciona que
Gallibacterium anatis es una de las bacterias que se aísla con más frecuencia de los tejidos
comprometidos en los casos de cabeza hinchada junto con Avibacterium paragallinarum,
Escherichia coli y Ornithobacterium rhinotracheale.
2.10 Distribución en el mundo Gallibacterium anatis
Cepas de Gallibacterium anatis, se han reportado en países de Europa, África, Asia
y América. En la mayoría de los casos, esta bacteria fue aislada de aves comerciales; sin
embargo, también se ha reportado su presencia en aves domésticas y silvestres tales como
pavos, gansos, patos, faisanes, perdices, garzas, etc. (Christensen et al., 2003; Bojesen et
al., 2003; Bisgaard et al., 2005).
13
III. MATERIALES Y MÉTODOS
3.1 Características del área de estudio
La investigación se realizó en un laboratorio de diagnóstico del cantón Isidro
Ayora de la Provincia del Guayas, República del Ecuador, a 56 km. de Guayaquil, este
cantón está asentado a 84 m.s.n.m., su temperatura promedio es de 25°C. El clima es
cálido, característico de bosque muy seco.
Limita al norte con el cantón Santa Lucía; al sur con el cantón Guayaquil; y la
provincia de Santa Elena, al este con los cantones Lomas de Sargentillo, Nobol y
Guayaquil; y, al oeste con el cantón Pedro Carbo
Ubicación Geográfica y Política.
Provincia: Guayas
Cantón: Isidro Ayora
Población: 10.870 habitantes
Densidad: 22,27 hab/km²
Extensión: 49.455,49 has
Límites: Al Norte: con el cantón Santa Lucia, al Sur: con el cantón Guayaquil
al Este: con los cantones Lomas de Sargentillo y Nobol, al Oeste: con el cantón
Pedro Carbo
Rango altitudinal: 84 Mts. S.N.M
14
3.1 Materiales
Materiales de oficina
Marcador
Reportes de análisis de laboratorio.
Laptop
Impresora
Hojas
Folletos
Esferos
Calculadora
3.2 Metodología del trabajo
Se trata de una investigación no experimental, descriptiva y retrospectiva. Para el
aislamiento de Gallibacterium anatis se utilizó la misma metodología de que utilizo
Bojesen el es estudio de infección de en vivo de Gallibaterium anatis en pollos. El
proceso de recolección de información se obtuvo revisando, y analizando los reportes del
laboratorio de las muestras de pollos de engorde recibidas en el periodo de junio a
noviembre del 2016 identificando casos positivos a Gallibacterium anatis.
3.3 Estadística aplicada
Los datos de esta investigación fueron analizados utilizando estadística descriptiva.
Los variables cualitativas se resumieron utilizando proporciones
Las variables cuantitativas se resumieron con medidas de tendencia central
La asociación entre variables se estimó a través de la prueba de chi-cuadrado.
15
IV. RESULTADOS
4.1 Prevalencia de Gallibacterium anatis en muestras de pollos recibidos
en el laboratorio de diagnóstico aviar.
Desde junio hasta noviembre del 2016 se analizaron 194 muestras de pollos de
engorde con edades desde 17 hasta 41 días teniendo como resultado el 8% de prevalencia
de Gallibacterium anatis en muestras de pollos recibidos en el laboratorio de diagnóstico
ubicado en el cantón Isidro Ayora (Tabla 1. Figura 1)
N°de muestras %
Positivas 16 8%
Negativas 178 92%
Total 194 100%
Tabla 1 Datos generales de 194 muestras analizadas con sus respectivos resultados
Fuente: Briones, 2017
Grafico. 1Representación gráfica del resultado final en porcentaje
Fuente: Briones, 2017
8%
92%
RESULTADO TOTAL OBTENIDO EN PORCENTAJE DE LAS 194 MUESTRAS
ANALIZADAS.
POSITIVAS NEGATIVAS
16
4.2 Prevalencia de Gallibacterium anatis en pollos con y sin signos
respiratorios.
El 7.24% (14) de las muestras analizadas evidenciaron signos de problemas
respiratorios y el 92.76% (180) no presento signos de problemas respiratorios, la
prevalencia de las muestras positivas de aves con signos respiratorios fue del 21,42 %
mientras que de las muestras que no se evidencio signos respiratorios fue del 7,2%.
Según los resultados obtenidos en este trabajo por análisis de CHI 2 no hay
relación estadística entre los signos respiratorios y la presencia de Gallibacterium anatis
en las muestras analizadas. (chi2 =3.5 valor p = 0.063)
Aunque a través de la estadística descriptiva podemos evidenciar una mayor
prevalencia en muestras de animales con síntomas respiratorios al realizar el análisis
analítico por medio de la prueba chi 2 nos arrojó como resultado que no hay relación
estadística entre los aislamientos positivo de muestras de aves con y sin signos
respiratorios
Total de
muestras Positivas Porcentaje (+) Negativas % (-)
Muestras con
signos
respiratorios 14 3 21,42% 11 78,58%
Muestras sin
signos
respiratorios 180 13 7,2% 167 92,78%
Tabla 2 Datos de muestras con y sin síntomas respiratorios.
Fuente: Briones, 2017
17
Fuente: Briones, 2017
4.3 Aislamiento de Gallibacterium anatis por tipo de órgano.
El mayor aislamiento de Gallibacterium anatis se obtuvo en el tejido de senos
nasales con un 34,5% y tráquea con un 48,3%, sin embargo cabe resaltar que siempre
que se aisló en senos nasales también se lo hizo en la tráquea, en sacos aéreos se aisló el
13%.
El 3,4 % fue aislado en articulación tibiotarsiana este correspondió a muestras de
aves con signos respiratorios y con problemas locomotores.
El mayor porcentaje de los aislamientos se los obtuvo del tracto respiratorio
superior de las aves esto se debe a que es la principal via de entrada de Gallibacterium
anatis y donde empieza su replicación. (figura4)
21,42%
7,2%
78,58%
92,78%
0%
20%
40%
60%
80%
100%
MUESTRAS CON SIGNOS RESPIRATORIOS MUESTRAS SIN SIGNOS RESPIRATORIOS
Po
rcen
taje
% AISLAMIENTOS SEGÚN SIGNOS RESPIRATORIOS
PORCENTAJE (+) PORCENTAJE (-)
Grafico. 2 Representación gráfica de la prevalencia en muestras de pollos con signos de problemas respiratorios.
18
Porcentajes de aislamientos
Frecuencia
% de
aislamientos
% de casos
(n=16)
Ais
lam
ien
tos p
or
tipo
s d
e
órg
an
os
Senos Nasales 10 34,5% 62,5%
Tráquea 14 48,3% 87,5%
Sacos aéreos 4 13,8% 25,0%
Articulación tibio
tarsiana 1 3,4% 6,3%
Total 29 100,0% 181,3%
Tabla 3 Datos de aislamientos por órganos
Fuente: Briones, 2017
Grafico. 3 Representación gráfica en porcentaje de aislamientos por tejidos
Fuente: Briones, 2017
35%
48%
14%
3%
PORCENTAJE DE AISLAMIENTOS POR ORGANOS
Senos Nasales Tráquea Sacos aereos Articulación tibio tarsiana
19
4.4 Resistencia y sensibilidad de Gallibacterium anatis a diferentes tipos
de antibióticos.
Todos los aislamientos positivos a Gallibacterium anatis fueron testados a través
de antibiogramas para determinar su sensibilidad y resistencia. Los resultados fueron los
siguientes.
El 100% presento sensibilidad a colistina, norfloxacina y levofloxacina , el 88.9%
a gentamicina, el 77,8 % a ciprofloxacina, el 66.7% a Ceftiofur y enrrofloxacina y el 55.6
% sensible a Fosfomicina.
El 100% de los aislados presento resistencia a oxitetraciclina, 88,9 % a florfenicol
y el 66,7 a amoxicilina, doxiciclina y trimethoprim/sulfamethoxazole.
Antibióticos
Porcentaje de
aislamientos
sensibles
Porcentaje de
aislamientos
resistentes
Porcentaje de
aislamientos con
sensibilidad intermedia
Amoxicilina - 25 ug 11,1 66,7 22,2
Ciprofloxacina - 5 ug 77,8 0,0 22,2
Colistina-10 ug 100,0 0,0 0,0
Ceftiofur 66,7 0,0 33,3
Doxiciclina - 30 ug 22,2 66,7 11,1
Enrofloxacina - 5 ug 66,7 11,1 22,2
Fosfomicina - 200 ug 55,6 22,2 22,2
Florfenicol'30 ug 11,1 88,9 0,0
Gentamicina - 10 ug 88,9 0,0 11,1
Norfloxacina - 10 ug 100,0 0,0 0,0
Oxitetraciclina - 30 ug 0,0 100,0 0,0
Trimethoprim/sulfamet
hoxazole
1.25 ug / 23.75 ug
33,3 66,7 0,0
Levofloxacina 100,0 0,0 0,0
Tabla 4 Sensibilidad y resistencia de Gallibacterium anatis a distintos tipos de antibióticos
Fuente: Briones, 2017
20
Grafico. 4 Representación gráfica de la sensibilidad y resistencia de Gallibacterium anatis a distintos tipos de
antibióticos.
Fuente: Briones, 2017
21
V. DISCUSIÓN
En este estudio al igual que casos reportados por el Dr. Bernardo Mejia en el
suroccidente colombiano es muy común el aislamiento de esta bacteria en pollos de
engorde, lo cual demuestra que esta bacteria esta jugano un papel importante en parte
sanitaria de la produciones avícolas de Ecuador y Colombia.
En cuanto a la resistencia antimicrobiana en el estudio de (Mendoza K. , 2014)
realizado en Perú el 100% de las cepas aisladas presentaron resistencia antimicrobiana,
en el presente estudio el 100% de los aislados no presento resistencia a cuatro
antimicrobianos (colistina, norfloxacina, levofloxacina y penicilina.) pero en cuanto a
las sulfamidas el resultado fue del 67 % de resistencia esto es similar a lo reportado por
Mendoza K. en Perú en el 2014.
22
VI. CONCLUSIÓNES
En estudio retrospectivo realizado en un laboratorio de diagnóstico aviar se obtuvo
el siguiente resultado.
De 194 muestras analizadas en 16 se aisló Gallibacterium anatis dando una
prevalencia del 8%.
Se determinó que el 90% de los aislamientos fue en las vías respiratorias
superiores. esto se debe a que es la principal vía de entrada de Gallibacterium
anatis y donde empieza su replicación
En este estudio no se evidencio una relación estadística la prevalencia de este
microorganismo en aves sin y con sintomatología respiratoria.
Se determinó que la sensibilidad antimicrobiana de 16 aislamientos de
Gallibacterium anatis fue de 100% a Colistina, Norfloxacina, Levofloxacina.
entre el 55 y 90% Cicprofloxacina, Ceftiofur, Enrofloxacina, Fosfomicina,
Gentamicina, y el 67.7 y el 100% de los aislamientos fueron resistentes a
Amoxicilina, Doxiciclina, Florfenicol, Oxixtetraciclina, Sulfatrimetroprim.
A pesar de que en el Ecuador no hay estudios publicados sobre este
microorganismo vemos que esta presente y empieza ser un problema ya que
se evidencia resistencia a varios antibióticos.
23
VII. RECOMENDACIONES
Este microorganismo debe ser incluido en los análisis microbiológicos y
antibiogramas debido a que según estos resultados se evidencia resistencia para
varios antimicrobianos, lo cual es un problema muy grave para la industria
avícola en el Ecuador.
Mantener y respetar las normas de bioseguridad en las explotaciones avícolas.
No uso indiscriminado de antibióticos en las explotaciones pecuarias.
24
VIII. BIBLIOGRAFÍA
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27
IX. ANEXOS
Base de datos de galpones analizados
28
Base de datos de galpones analizados
29
Base de datos de galpones analizados
30
Reportes de antibiogramas