determinación de grupo abo/rh, anticuerpos irregulares y pruebas

[DETERMINACIÓN DE GRUPO ABO/RH, ANTICUERPOS IRREGULARES Y PRUEBAS DE COMPATIBILIDAD]

2015

COD CM/UMT/002 Versión nº1 Característica: APTr 1.2

Aprobado por : Dirección Médica Mayo 2014

Elaborado por: Tecnólogo Médico Encargado de Unidad de Medicina Transfusional. Mayo 2014

Próxima Revisión : 2019

Revisado por : Comité Calidad Mayo 2014

N° de Páginas : 06

[DETERMINACION DE GRUPO ABO/RH, DETECCIÓN DE ANTICUERPOS IRREGULARES Y PRUEBAS DE COMPATIBILIDAD]

COD: CM/UMT/002 Versión: nº1 Elaboración: 2015 Vigencia: 2018 Páginas: 2 de 14

CLÍNICA MAYOR

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ÍNDICE.

1. INTRODUCCIÓN.

2. OBJETIVO.

3. ALCANCE.

4. DOCUMENTACIÓN DE REFERENCIA.

5. RESPONSABLE DE LA EJECUCIÓN.

6. DEFINICIONES.

7. DESARROLLO.

8. DISTRIBUCIÓN.

9. RESPONSABILIDAD DEL ENCARGADO.

10. INDICADOR.

11. ANEXOS.



CLÍNICA MAYOR

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1. INTRODUCCIÓN.

La transfusión de componentes sanguíneos al igual que cualquier otro procedimiento

médico no está exenta de riesgos, por lo cual la realización de exámenes pretransfusionales

nos permite entregar una mayor seguridad a los pacientes.

2. OBJETIVO.

Establecer que para toda solicitud de Transfusión de Hemocomponentes, existe la

realización de exámenes pretransfusionales en la Unidad de Medicina Transfusional (UMT)

para garantizar la seguridad de los pacientes.

3. ALCANCE.

Este documento debe ser aplicado en la UMT, para todas las órdenes de solicitud de

exámenes ya sean de pacientes hospitalizados que ingresan a pabellón o pacientes

hospitalizados a quienes se les solicite transfusión de componentes sanguíneos.

4. DOCUMENTACIÓN DE REFERENCIA.

Política Nacional de Servicios de Sangre, MINSAL, diciembre 2008.

CIRC 4C/26, recomendaciones para el uso de transfusión de sangre o de sus

componentes, MINSAL, 11 de abril 2000.

5. RESPONSABLE DE LA EJECUCIÓN.

El responsable de la realización de las actividades descritas en este documento es el

Tecnólogo Médico de la UMT de la Clínica Mayor.

6. DEFINICIONES.

Pruebas pretransfusionales: Exámenes de inmunohematología que se deben

realizar a los receptores de componentes sanguíneos que permitan asegurar una

compatibilidad entre donantes y receptores. Las pruebas deben asegurar la

compatibilidad de todos los anticuerpos con significancia clínica.

Pruebas de Compatibilidad (PC): Examen inmunohematológico que permite

conocer si existe compatibilidad serológica entre la sangre del donante y del receptor,

teniendo como finalidad asegurar al paciente los mayores beneficios de la transfusión.



CLÍNICA MAYOR

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7. DESARROLLO.

a. La UMT de la Clínica Mayor cuenta con atención de personal especializado y realiza Pruebas pretransfusionales que incluyen: Tipificación Sanguínea de Grupo ABO /Rh, Detección de Anticuerpos irregulares y Pruebas de Compatibilidad (PC) las 24 horas del día.

b. Es de suma importancia dejar establecido que la muestra para realizar las Pruebas pretransfusionales debe corresponder a sangre venosa con anticoagulante EDTA y no debe estar hemolizada ya que la hemólisis interfiere en el procedimiento, además debe estar correctamente rotulada, con el nombre y los dos apellidos del paciente.

c. Si la muestra o la Solicitud de examen recibida viniera mal etiquetada o la muestra sin etiquetar, la UMT se reserva el derecho de conservarla y eliminarla. En este caso se solicitará nueva muestra o nueva Solicitud de examen, según corresponda.

d. En pacientes adultos, lactantes mayores de 6 meses y pediátricos se realiza Tipificación sanguínea de grupo ABO/Rh y Detección de Anticuerpos Irregulares. En recién nacidos (RN) la Tipificación sanguínea incluye el grupo ABO/Rh y el Test de Coombs Directo.

e. Cuando la Solicitud de transfusión es por Glóbulos Rojos se le realizan los siguientes exámenes: Tipificación sanguínea de grupo ABO/Rh, Detección de Anticuerpos Irregulares y Pruebas de Compatibilidad (PC).

f. Cuando la Solicitud de transfusión es por Plasma fresco congelado (PFC), Plaquetas o Crioprecipitados (CPP) se le realizan los siguientes exámenes: Tipificación sanguínea de grupo ABO/Rh y Detección de Anticuerpos Irregulares.

g. En los casos de pacientes que hayan sido transfundidos, la vigencia de la muestra y los exámenes realizados, será de tres días, si se vuelve a solicitar una nueva transfusión pasado esos tres días, se deberá solicitar nueva muestra y volver a realizar los exámenes correspondientes.

h. Si al tipificar al paciente diese un Rh NEGATIVO, se debe realizar la Prueba del Du. i. Si la Detección de anticuerpos irregulares arrojase un resultado POSITIVO, se deberá

realizar:

Test de Coombs Directo (TCD)

Se solicitará nueva muestra del paciente para repetir los Anticuerpos irregulares.

Separar el plasma de la muestra, para ser enviado al Laboratorio de referencia (Centro de sangre Austral) para identificar el anticuerpo.

j. Todos los exámenes realizados se deben registrar en la hoja de Tipificación sanguínea Adulto (anexo 1), Tipificación sanguínea RN (anexo 2) y en la hoja de Pruebas de Compatibilidad (anexo 3) que se encuentra en la Planilla ubicada encima del mesón. Además, los resultados se deben ingresar a la Base de Datos de la UMT y dejar respaldo fotográfico de los resultados.

k. Control de Calidad Interno: Los días lunes, miércoles y viernes, se realiza control de calidad, para las técnicas realizadas.



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DETERMINACIÓN DE GRUPO ABO/RH CON PRUEBA INVERSA

1. MATERIALES

Centrífuga para tubos

Pipetas pasteur 1 ml.

Puntas amarillas para micropipetas.

Tarjeta Bio-Type para detección de grupo ABO/Rh con prueba inversa.

Biotype diluent II.

Glóbulos rojos comerciales A1 y B.

Micropipetas 10ul, 25ul y 50ul.

Centrífuga para tarjetas. 2. TOMA DE MUESTRA La muestra de sangre debe ser extraída en forma aséptica en tubo con EDTA. 3. PREPARACION DE LA MUESTRA

a. Determinación ABO y Rh Preparar una suspensión de GR al 1% en la solución II: en un tubo eppendorf, colocar 1 ml de solución II y 10ul de sedimento de GR.

b. Prueba Inversa Preparar una suspensión al 1% de glóbulos rojos A1 y B de la siguiente forma: en un tubo eppendorf, rotular como A y en otro B , colocar 1 ml de solución II y 6 gotas de los glóbulos rojos comerciales A1 y B según corresponda. 4. TÉCNICA

a. Identificar cada tarjeta con el nombre del paciente y colocar la fecha. Retirar el sello que recubre la tarjeta.

b. Preparar una suspensión de GR del paciente al 1%. c. Añadir 50ul de glóbulos rojos A1 y B suspendidos al 1% en los pocillos 5 y 6 ,

respectivamente. d. Añadir 50ul de plasma del paciente a los pocillos 5 y 6. e. Incubar a temperatura ambiente por 10 minutos. f. Añadir 50ul de la suspensión de glóbulos rojos del paciente a c/u de los pocillos del 1

al 4 (A, B, D, Ctl). g. Centrifugar por 5 minutos. h. Leer y anotar resultados.

5. INTERPRETACIÓN

Las muestras positivas se presentan como una línea roja en la superficie del reactivo, (4+) o dispersada a través del pocillo (1-3+). Las muestras negativas forman un botón compacto en el fondo del pocillo.



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PRUEBA DEL Du

1. MATERIALES

Centrífuga para tubos.



Tarjeta Bio-Type para Coombs.


Centrífuga para tarjetas.

Incubador 37° C. 2. TOMA DE LA MUESTRA La muestra de sangre debe ser extraída en forma aséptica en tubo con EDTA (la misma suspensión que se usó para el Rh) 3. TÉCNICA

a. Agregar 50ul de GR a un pocillo de tarjeta Bio-Type Liss Coombs. b. Agregar 25ul de suero comercial ultra D (IgM/IgG monoclonal). c. Incubar 15 minutos a 37° C. d. Centrifugar 5 minutos y leer.

4. INTERPRETACIÓN

Anti-D Du Interpretación

Negativo positivo Rh débil

Negativo negativo Rh negativo



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DETECCIÓN DE ANTICUERPOS IRREGULARES EN GEL

(TEST DE COOMBS INDIRECTO) 1. MATERIALES







Incubador 37° C. 2. TOMA DE LA MUESTRA La muestra de sangre debe ser extraída en forma aséptica en tubos con EDTA (la misma que para el Grupo y Rh) 3. TÉCNICA

a. Rotular 2 tubos eppendorf con I y II, colocar 1 ml de solución II y 6 gotas del Panel I y Panel II, respectivamente.

b. Identificar en la tarjeta los pocillos rotulados I y II con el nombre del paciente. c. Agregar 50ul con la suspensión al 1% de Panel I y II a cada pocillo. d. Agregar 25ul de plasma del paciente a cada pocillo. e. Incubar 15 minutos a 37° C. f. Centrifugar 5 minutos y leer.

4. INTERPRETACIÓN

Las muestras positivas se presentan como una línea roja en la superficie del reactivo, (4+) o dispersada a través del pocillo (1-3+) Las muestras negativas forman un botón compacto en el fondo del pocillo.



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TEST DE COOMBS DIRECTO

1. MATERIALES







Incubador 37° C. 2. TOMA DE LA MUESTRA La muestra de sangre debe ser extraída en forma aséptica en tubo con EDTA (la misma que se usó para el Grupo ABO y Rh) 3. TÉCNICA

a. A la tarjeta Bio Type LISS-Coombs agregar 50ul de GR, previamente lavados en PBS y suspendidos al 1% en solución II.

b. Centrifugar 5 minutos y leer.

4. INTERPRETACIÓN Las muestras positivas se presentan como una línea roja en la superficie del reactivo, (4+) o dispersada a través del pocillo (1-3+) Las muestras negativas forman un botón compacto en el fondo del pocillo.



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PRUEBA DE COMPATIBILIDAD

1. MATERIALES







Incubador 37° C. 2. MUESTRA La muestra de sangre del paciente debe ser extraída en forma aséptica en tubo con EDTA (la misma que se usó para el Grupo ABO y Rh). Glóbulos rojos de la tubuladura de la unidad a compatibilizar, suspendidos al 1% en solución II. 3. TÉCNICA

a. Identificar cada pocillo de la tarjeta Bio Type LISS-Coombs con el número de la unidad de glóbulos rojos a compatibilizar y el nombre del paciente.

b. Agregar 50ul de GR al 1% a cada pocillo. c. Agregar 25ul de plasma del paciente (receptor). d. Incubar 15 minutos a 37° C. e. Centrifugar por 5 minutos y leer.

4. INTERPRETACIÓN

Las muestras positivas se presentan como una línea roja en la superficie del reactivo, (4+) o dispersada a través del pocillo (1-3+) Las muestras negativas forman un botón compacto en el fondo del pocillo.



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DETERMINACIÓN DE GRUPO ABO/RH DE RECIEN NACIDO

1. MATERIALES


Tarjeta Bio-Type para Recién Nacido.

Biotype diluent II.

Micropipetas 10ul, y 50ul.

Centrífuga para tarjetas. 2. TOMA DE MUESTRA La muestra de sangre debe ser extraída en forma aséptica en tubo con EDTA (tubo pediátrico). 3. PREPARACIÓN DE LA MUESTRA Preparar una suspensión de GR al 1% en la solución II: en un tubo eppendorf, colocar 1 ml de solución II y 10ul de GR. 4. TÉCNICA

a. Identificar cada tarjeta con el nombre del paciente. Retirar el sello que recubre la tarjeta.

b. Añadir 50ul de glóbulos rojos suspendidos al 1% a los pocillos 1 al 6. c. Centrifugar 5 minutos y leer.

5. INTERPRETACIÓN

Las muestras positivas se presentan como una línea roja en la superficie del reactivo, (4+) o dispersada a través del pocillo (1-3+). Las muestras negativas forman un botón compacto en el fondo del pocillo.



CLÍNICA MAYOR

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8. DISTRIBUCIÓN.

El presente documento se encontrará en la UMT y en la Unidad de Calidad.

9. RESPONSABILIDAD DEL ENCARGADO.

El responsable de velar por el estricto cumplimiento del documento es el Tecnólogo Médico

Supervisor de la UMT.

10. INDICADOR APTr 1.2

Indicador

% de transfusiones con determinación de

grupo ABO/Rh, anticuerpos irregulares según

protocolo

Formato del Indicador Nº de transfusiones en donde se determinó grupo

ABO/Rh, Anticuerpos Irregulares según protocolo

/Nº total de transfusiones realizadas en el mismo

periodo x 100

Criterios

Protocolo Determinación de grupo ABO/Rh,

Anticuerpos Irregulares y Pruebas de

Compatibilidad

Dimensión Seguridad

Justificación Seguridad del paciente

Fuente de información Solicitud de transfusión, orden de exámenes

Umbral 95%

Periodicidad Trimestral

Responsable del monitoreo Tecnólogo médico supervisor de UMT

Informa a trimestralmente a Comité de Calidad



CLÍNICA MAYOR

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Pauta de Supervisión



CLÍNICA MAYOR

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11.- ANEXOS

ANEXO 1

ANEXO 2



CLÍNICA MAYOR

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ANEXO 3

determinación de grupo abo/rh, anticuerpos irregulares y pruebas

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