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CADENA EPIDEMIOLOGICA DE LA RABIA
AGENTE
CAUSAL RESERVORIO
VIAS DE
TRANSMISIÒN PUERTA DE
SALIDA
PUERTA DE
ENTREDA SUSCEPTIBLE ENFERMO
VIRUS
RABICO
ANIMAL
DOMESTICO
Y SALVAJE
BOCA DEL
ANIMAL,
SALIVA
A TRAVES DE
LA SALIVA,
ARAÑAZO,
LAMIDA
HERIDA HOMBRE
ANIMAL
PARA EVITAR QUE ENFERMEN DE RABIA SE DEBE:
INTERUMPIR LA CADENA DE TRANSMISION EN RABIA:
Y PARA , ESTO SE DEBE VACUNAR AL PERRO Y GATO CONTRA LA RABIA CADA AÑO.
CLASIFICACIÓN DE CASOS DE
RABIA HUMANA • SOSPECHOSO: Caso que es compatible con
la descripción clínica.
• PROBABLE: Caso sospechoso con
antecedente de contacto con un animal
presuntamente rabioso.
• CONFIRMADO: caso probable que es
confirmado por laboratorio.
• CASO SOSPECHOSO DE RABIA HUMANA:
Todo paciente que presente cuadro clínico compatible con
Encefalitis Rábica, con o sin Antecedente de exposición por el
virus rábico.
• Tres mil años antes de Jesucristo ya se encuentra el origen de la palabra "rabia" en la lengua sánscrita, donde "Rabhas" significa "agredir”. en Babilonia se mencionan sanciones a los dueños de “perros locos”
REVISIÓN HISTÓRICA
REVISIÓN HISTÓRICA (cont.)
La Rabia en las américas fue reportada por Fray José Gil Ramirez en Méjico en 1709.
En el Perú hizo su aparición en 1803 y en el año 1804 hizo su aparición en Ica causando la muerte de 42 personas (Hipólito Unánue). Se encargó de esta lucha primero a las autoridades edilicias y a partir de 1952 al Ministerio de Salud.
El registro sistemático se inicia en 1938, cuando el Dr. Telémaco Battistini, instituye el método rápido de Sellers para la confirmación histopatológica.
Revisión histórica (cont.)
• En 1906 el Dr Manuel Tamayo produjo la
primera vacuna antirrábica (tipo Pasteur).
• Los primeros vacunados fueron los
topiqueros R. Godoy y M. Velasco del antiguo
Hospital Guadalupe mordidos en la mano
por Cristóbal de Ayala, victima de la rabia.
Taxonomía • Orden mononegavirales,familia : Rhabdovoridae, género :
Lyssavirus
Genotipos:
1. CVS y mayor parte de virus aislados.
2. Cepa prototipo murciélago de lagos (Nigeria, 1956).
3. Cepa Mokola, gato (Zimbabwe, 1981).
4. Cepa Duvenhage 1 y 2 hombre y murciélago (SudAfrica, 1971 y 1981).
5. Cepa murciélagos europeos (Polonia, Francia 1985-89).
6. Cepa murciélagos europeos (Finlandia, Holanda, 1986).
7. Cepa de murciélagos australianos (1996).
Patogenia
• Ingreso del virus por mordedura (vía subcutánea o intramuscular.
• Propagación centrípeta:
•Multiplicación en miocitos
•Propagación por axoplasma de nervios periféricos.
• Propagación centrífuga:
•Glándulas salivales
•Glándulas suprarenales, riñones, vejiga, ovarios, testículos, glándulas sebáceas, células germinativas de bulbos pilosos, córnea, orina, leche, etc.
• Viremia no tiene importancia.
Cuadro clínico
• Período prodrómico:
– Duración de 2 a 10 días.
– Malestar general, dolor de cabeza, escalofríos,
pirexia, fotofobia, anorexia, nauseas, dolor de
garganta, dolor muscular, tos, dolor o irritación
alrededor de herida.
Cuadro clínico
• Fase excitativa
– Incremento de sensibilidad a estímulos (visuales, táctiles y auditivos) pero disminución al dolor local.
– Incremento del tono muscular, reflejos, pulso, lagrimeo, sudoración y salivación.
– Hidrofobia presente en 17 al 80%.
– Ansiedad, agitación, parálisis, episodios de delirio, espasmos y convulsiones.
– Fase de excitación dura de 2 a 7 días.
Cuadro clínico
• Fase paralítica
– Ocurre en 20% desde el principio.
– Dolor y rigidez de nuca, pirexia, sudoración,
estreñimiento, anorexia y salivación.
– Parálisis progresiva: piernas, brazos y tronco.
– Hidrofobia es rara, pacientes lúcidos durante
progresión de enfermedad, luego apatía,
estupor, delirio y coma.
Período de incubación
• Por lo general: Es de 3 a 8 semanas.
•Han existido casos desde 9 días hasta 7
años.
•Depende de la magnitud de la herida, sitio
de laceración y la distancia al cerebro,
cantidad y cepa de virus introducidos,
protección de la ropa, etc.
Reservorio
• A nivel internacional se han identificado cánidos
salvajes y domésticos: perros, zorros, coyotes,
lobos, chacales, zorrillos, mapaches, mangostas y
otros.
• En el Perú solamente el perro y el murciélago han
sido identificados como reservorios.
• En nuestro medio nunca se ha presentado por
mordeduras de ratas o ratones.
Modo de transmisión
• Exposición a mordedura o saliva infectada de
animales rabiosos.
– 6 casos por transplante de córnea.
– 1 por contacto humano
– 1 infante por leche materna de madre infectada.
– 1 por transmisión transplacentaria
– 2 por aerosoles en cuevas de murciélagos.
– 2 por accidentes de Laboratorio.
Modo de transmisión(cont.)
• La transmisión en perros y gatos es de 3 a 7 días antes de los signos clínicos y durante todo el curso de enfermedad.
• Solamente de 60 a 75% eliminan virus por saliva.
• De 20% a 40% de personas mordidas enferman.
• Todos los animales de sangre caliente son susceptibles.
PRUEBAS DE DIAGNÓSTICO
• Pruebas de rutina:
– Inmunofluorescencia directa:
•Duración de 2 horas.
•Alta sensibilidad y especificidad (+98%)
– Prueba confirmatoria: Prueba biológica de
inoculación en ratones: 21 días.
•Duración: 21 a 30 días.
•Alta especificidad y sensibilidad (+99%)
ENVIO DE MUESTRAS
•DIAGNOSTICO IN VIVO:
– Se confirma el diagnóstico solamente si la prueba resulta positiva.
– Biopsia de piel de nuca con folículo piloso de preferencia de la nuca + solución salina +frio.
– Saliva
– Suero y LCR.
•Diagnóstico post mortem:
– Cerebro y cerebelo en glicerina al 50% con agua destilada o suero fisiológico.
Prueba biológica
• Erizamiento
• Falta de coordinación
de miembros
• Parálisis
• Postración
• Muerte
Técnicas Moleculares
• La prueba de reacción
en cadena de la
polimerasa (PCR)
puede ser usada para
lograr una
confirmación rápida
del diagnóstico de
rabia.
CASOS DE RABIA CONFIRMADOS,
LRNZV, INS, 1980-2003
0
200
400
600
800
1000
1200
1400
1600
1800
2000
1980
1981
1982
1983
1984
1985
1986
1987
1988
1989
1990
1991
1992
1993
1994
1995
1996
1997
1998
1999
2000
2001
2002
2003
Humanos
Canes
Bovinos
Gatos
Otros
FUENTE: Laboratorio de Referencia Nacional de Rabia, CNSP, INS
PREVENCION
• ESQUEMAS:
– Pre exposición: personas en riesgo
•CRL (cerebro ratón lactante): 0, 7 y 21 días, vía
subcutánea, periumbilical.
•VERO: 0, 7 y 28 días, via intramuscular.
– Post exposición: CRL
•Esquema clásico: 14 dosis diarias + 2 (10 y 20).
•Esquema reducido: 7 diarias + 3 (10, 20 y 90).
PREVENCION
• Suero antirrábico (20-40 UI/kg. im):
– Caso de mordeduras graves: cara, cuello, cabeza o manos y heridas múltiples y profundas.
• Reacciones post vacunales:
El riesgo aumenta: personas alérgicas, # dosis.
- Locales: pápula eritematosa, prurito, dolor.
- Sistémicas: cefalea, fiebre, decaimiento, mareos y escalofríos.
- Neurológicas: neuritis periférica, polineuritis, encefalitis.
CONTROL
•RABIA URBANA:
– Vacunación canina
– Vigilancia activa de la rabia en animales.
– Observación clínica por 10 días de perros y
gatos mordedores.
– Envío de muestras de animales sospechosos al
laboratorio.
CONTROL
•RABIA SILVESTRE:
– Eliminación selectiva de murciélagos
hematófagos.
•Empleo de redes y anticoagulantes.
– Participación comunitaria.
– Vacunación antirrábica población animal.
– Vigilancia activa (envío de muestras al
laboratorio).
ESTUDIO DE CARACTERIZACION
ANTIGENICA DE RABIA, 1999-2001
1
2
3
5
VARIANTES
ANTIGENICAS
Primer caso de
rabia silvestre
transmitido a
canino
Fuente: Laboratorio de Referencia Nacional de Zoonosis Virales, CNSP, INS
Persona expuesta a Rabia recibe atención integral
Definición Operacional:
Intervención orientada al tratamiento de una persona
expuesta al riesgo de rabia atendido en un
establecimiento de salud por un médico, enfermera y/o
técnico de enfermería capacitado desde el nivel I-1, que
incluye:
Tratamiento local de la mordedura: - lavado con abundante agua y jabón (100% de pacientes),
- sutura de afrontamiento de ser necesaria,
- inmunización antitetánica de ser necesaria y
- antibioticoterapia (100% de pacientes).
Otros …..(Tres visitas domiciliaria de seguimiento de vacunación ), etc
TRAMIENTO DE CASOS DE ENFERMEDADES ZOONOTICAS
(43984) - UM: PERSONA TRATADA
Persona expuesta a Rabia recibe
atención integral (4398401)
CRITERIOS DE PROGRAMACIÓN
• 100% de casos de personas mordidas o
en contacto con animal rabioso.
Considerar como referencia el número
de casos de los tres últimos años.
• 100 % de personas o contactos de
comunidades indígenas o de áreas de
riesgo de rabia silvestre de los últimos
tres años.
• 100% de personas en riesgo
ocupacional de los últimos tres años
I.I I.2 I.3 I.4 II.I II.2 III
.1
III.2 AISPED DISA R
E
D
INS OTRO
X X X X X X X X X X X
RABIA HUMANA SILVESTRE DEPARTAMENTOS
AFECTADOS PERÚ 1975-2011*
12 departamentos afectados
50% territorio peruano
Ecuador
Colombia
Brasil
Loreto
Amazonas
San Martín
Huánuco
Pasco
Ucayali
Madre de Dios
Cusco
PunoApurimac
Ayacucho
“Plan de Vacunación Antirrábica de
Pre-exposición con Vacuna de Cultivo
Celular en comunidades en Riesgo de
Rabia de la Región Amazonas - 2011”
Junin
DIRESA AMAZONAS DISTRITON° de
localid/CCNNPOB. PROG. Pob. In.Vac. 3era dosis
Red de Salud Bagua Imaza 38 10382 2361 2305
Rio Santiago 61 6047 4965 4965
Cenepa 29 5428 1645 1645
Nieva 140 8525 6271 5071
TOTAL 268 30382 15242 13986
Red de Salud Condorcanqui
VACUNACIÓN PRE EXPOSICIÓN - DIRESA AMAZONAS 2011 PERÚ
TAMIZAJE Y DIAGNÓSTICO DE CASOS DE ENFERMEDADES ZOONÓTICAS
(43984) UM : Diagnóstico realizado
Diagnostico confirmatorio de Rabia (4398402)
Definición Operacional: Es el conjunto de procedimientos
realizados para confirmar el diagnostico de rabia en
un establecimiento de salud desde el nivel I-1 a III-2,
laboratorio de Referencia Regional y Nacional,
Criterios de programación
• El 100% de muestras obtenidas de personas con
sospecha de rabia deben ser remitidas al laboratorio
para el diagnóstico respectivo. Tomar como referencia
el promedio de muestras de los últimos cinco años.
• El 100% de muestras obtenidas de animales con
sospecha de rabia deben ser remitidas al laboratorio
para el diagnóstico respectivo. Tomar como referencia
el promedio de muestras de los últimos cinco años.
• Para efectos de vigilancia de rabia urbana remitir
muestras tomando como referencia el 0.2 % de la
población canina estimada anualmente.
• El 100% de muestras recepcionadas en los
laboratorios para el diagnóstico de rabia deben tener
un diagnóstico confirmatorio.
AÑOS:2006 -2009
RABIA CANINA PERÚ 1992-2009
Únicamente el Departamentos de Puno desde el 2006 y Madre de Dios,
desde el 2009 continúan registrando casos de rabia canina, situación que se
mantiene en el 2011
“88% de la superficie del país se mantienen en
“0”casos de rabia canina”
RED DE LABORATORIO DE DIAGNÓSTICO DE RABIA
INS-PERÚ
TTuummbbeess
CCaajjaammaarrccaa
AAmmaazzoonnaass PPiiuurraa
LLaammbbaayyeeqquuee
LLaa LLiibbeerrttaadd
AAnnccaasshh
JJuunníínn
LLiimmaa
HHuuaannccaavveelliiccaa
AAyyaaccuucchhoo
AArreeqquuiippaa
TTaaccnnaa
MMaaddrree ddee DDiiooss
SSaann
MMaarrttíínn
UUccaayyaallii
LLoorreettoo
CCuussccoo
AAppuurríímmaacc
PPuunnoo LAB. REFERENCIA
REGIONAL
INSTITUTO NACIONAL DE
SALUD
Descentralización de las
actividades de diagnóstico de
rabia, dentro del ámbito de la
Red Nacional de Laboratorios de
Referencia en Salud Pública que
fue oficializada el 2 de abril de
1996 mediante Resolución
Ministerial 236-96-SA-DM,
Fuente: INS-MINSA
CÓDIGOS CIE-10:
A82, Rabia
A82.0, Rabia selvática
A82.1, Rabia urbana
A82.9 Rabia, sin otra especificación
W53 Mordedura de rata
W54. Mordedura o ataque de perro
W55. Mordedura o ataque de otros mamíferos