bloque 3. macroinvertebrados 4 protocols

DIAGNOSIS DE ESTADO ECOLÓGICO

PROTOCOLOS para el USO DE MACROINVERTEBRADOS

RIBERA

HIDROMORFOLOGÍA

MACROINVERTEBRAD OS

Macroinvertebrados

� Indicadores de condiciones ambientales:

� Viven asociados al substrato de los cursos fluviales

� fisicoquímicas: temperatura, nutrientes, O 2, Conductividad

� hidromorfológicas: caudal, substrato

� Miden > 1 mm

� Muestreo con salabre modelo estándar EN 27828:1994� 0,5 mm de abertura de poro

� Muestreo con salabre� 0,25 mm de abertura de poro

Criterios de definición de un buen método de biocontrolcon macroinvertebrados

(Bonada et al., 2006)

Muestreadores de organismos bentónicos en ríos

Surber

D-net

Muestreador de Hess

MUESTREO

Carter & Resh, JNABS, 2001

Protocolos� Pretenden estandarizar los resultados, hacerlos

comparables y fácilmente comprensibles para la administración

� Tienen su origen en EUA, actualmente mucho interés en Europa para hacer comparativos los resultados entre diferentes estados y sistemas

La elección del método de muestreo depende de � El objetivo del proyecto o estudio� Disponibilidad de muestreador� Coste� Familiaridad con el método

Muestreos de comunidades

4 Protocolos de evaluación biológica con macroinvertebrados

� Protocolo A.B.I (Andes) – Derivado protocolo Guadalmed

� Protocolo EPA (USA) � Protocolo AQEM (Europa)� Protocolo IRS (Invertebres Reseau de Surveillance)

RBP`s (Protocolos ràpidos de evaluación biológica)

GUADALMED project

154 sampling sites

7 Samplingperiods during1999 and 2000

12 catchments

Limné

tica

vol. 2

1(3-

4)

Protocolo GuadalmedSe deben seguir los siguientes pasos:1. Seleccionar la estación de muestreo. 2. Identificación del punto de muestreo (nombre, códi go, fecha,

hora)3. Toma de muestras3.1. Fisico-química del agua (protocolo 1)3.2. Caudal (protocolo 1)3.3. Hábitat (protocolo 2)3.4. Macroinvertebrados (protocolo 3)3.5. Vegetación de ribera (protocolo 4)

– Redes de 300 micras (unas de mango corto y otrasde mango largo)*– Pinzas entomológicas y/o aspirador entomológico– Bateas blancas de plástico (mínimo 30 x 20 cm)– Cuentahilos o lupa (ayuda identificación organismos )– Viales de plástico herméticos– Alcohol de 96º– Formol 40 %

Estaciones de referencia:– Bolsas de plástico o botes grandes para la muestra demacroinvertebrados de las estaciones de referencia

Protocolo Guadalmed: MacroinvertebradosMaterial

Seleccionar el área de observaciónEl tramo de río evaluado deberá tener una longitud aproximada de 100 m.

Se realizará un recorrido visual a lo largo del tramo a muestrear y se identificarán los diferentes hábitats para macroinvertebrados presentes:(zonas lóticas o leníticas, con macrófitos o no, con raíces o con diferentes tipos de sustratos: arena, limo, etc.)

Protocolo Guadalmed: Macroinvertebrados

Características generales-Multihàbitat integrado-Red de mano de 300 µµµµm

antes de introducirse en el agua es importante localizar animales esquivos que viven en lasuperficie como Gyrinidae, Gerridae o Hydrometridae,

Se muestrearán todos los hábitats presentes con una red de mano de 300 µm* de luz de malla y una boca de entrada de unos 30 cm de diámetro.

El muestreo se realizará colocando la mallaa contracorriente y removiendo el sustrato aguas arribade la manga con la mano o el pie, realizando unmovimiento zigzagueante con la red para que todo elmaterial removido entre a través de ésta.Las piedras deben limpiarse bien dentro de la red o enuna batea por ambas caras, así como troncos, raíces,masas de algas, etc.

Protocolo Guadalmed: MacroinvertebradosMuestreo de los hábitats

2 + 1 (2)

2 + 1 (2)

Habitats Dominantes

Habitats Marginales

Se proponen dos protocolos de identificación:

Protocolo Guadalmed: MacroinvertebradosIdentificación de los taxones

3.1 “Estaciones de no referencia”. Protocolo I.

En el campo se toma una batea blanca de plástico y se llena de agua. El contenido de las redadas se deposita en la batea asegurándose de que no queda ningún individuo adherido a la red.

Se capturan los diferentes taxones con ayuda de unas pinzas finas o un aspirador entomológico y se van identificando a medida que se localizan en la batea.

Los taxones que son dudas y que quedan sin identificar se introducen en un vial con alcohol de 70º.

El material revisado de la batea es devuelto al río.

Se proponen dos protocolos de identificación:

Protocolo Guadalmed: MacroinvertebradosIdentificación de los taxones

3.2.“Estaciones de referencia”. Protocolo II.Se procede igual que en el caso anterior pero de cada taxón nos aseguramos capturar al menos de 1-3 individuos, que se introducen en un vial con alcohol de 70º.

Todo el material sobrante después de las redadas se introduce en un bote de boca ancha o en una bolsa hermética de plástico y se fija con Formol al 4 %.

En el laboratorio se submuestrea separando 200 individuos al azar (Bonada et al., 2002) y se revisa la muestra por si algún taxón escaso o críptico no se hubiera detectado en el submuestreo y además hubieseescapado al muestreo de campo.

Se suman los animales separados en campo y los separados en laboratorio = un dato semicuantitativo (abundancias relativas de los distintos taxones)

Protocolos EPA (Environmental Protection Agency, USA)

� Elaborados por la EPA como consecuencia de la necesidad de coordinar los diferentes métodos usados en los estados americanos

� Existen para todos los grupos de organismos. (Barbour et al. ; web de la EPA)

� Vamos a sintetizar el referido a los macroinvertebrados.

Características generales:

� multihabitat

� Red D estandard, 500 micras,

Método:

1 – Se delimita una zona de 100 metros lineales del río

2 – Rellenar la hoja de campo estándard con información fisico-química y con los datos del lugar.

3 – Dibujar un mapa del lugar con los detalles de interés y los lugares donde se tomaron los macroinvertebrados

4 – Realizar un estudio del porcentaje de importancia de cada uno de los habitats presentes en el río (rápidos, zonas de arena, zonas lentas, zonas con macrófitas etc..).

Protocolos EPA: Macroinvertebrados

Se toman 11 muestras de “kick”, que consiste en remover el sustrato 0,09 m2 (1 ft2) delante de la red durante 30 s. Las muestras se distribuyen proporcionalmente entre los habitats encontrados en el río.

Se unen todas las muestras en una de sola. Se van lavando (cada 3 kicks) para evitar que la red se colmate. Se quitan los cantos gruesos y los residuos de material vegetal grande.

Se transfiere la muestra a un bote y se fija con etanol al 95%. Se identifica (etiqueta) convenientemente.

Se documenta la presencia de fauna y flora en la zona que no sean macroinvertebrados para información complementaria

Se anota el tipo de sustrato y de flujo de cada muestra

Protocolos EPA: Muestreo de Macroinvertebrados

2 + 1 (2)

2 + 1 (2)

Habitats Dominantes

Habitats Marginales

� Lavar la muestra en un tamiz de 500 micras, hidratar bien los animales si están fijados con alcohol.

� Después de lavar distribuir la muestra en una bandeja marcada con cuadrículas de 6 x 6 cm. Separar los organismos muy grandes visibles en la bandeja que después incluiremos en las cuentas finales.

� Separar 200 individuos, si hay muchos mas en la muestra se saca una submuestra escogida al azar.

� Guardar los individuos en viales si no se va a proceder a su clasificación. Identificar con etiquetas.


Procesado de las muestras

� Los individuos deben identificarse al mas detallado nivel taxonómico posible (depende de la métrica a utilizar).

� Etiquetar bien todos los viales y preparaciones.


Identificación

� Calcular las métricas necesarias para proceder a la calificación de la calidad del agua de acuerdo con las especificaciones para cada ecoregión.

� Se pueden usar métricas simples (índices biológicos) o agregación de métricas (que son diferentes según las ecoregiones).

Cálculo de índices-métricas

Protocolo AQEM

� Proyecto de investigación de la Comunidad Europea� Podría ser el protocolo “oficial” para los estudios de la

Directiva Marco del Agua� Inicialmente para macroinvertebrados, actualmente

está en desarrollo para diferentes grupos de organismos (programa STAR).

� Está muy bien explicado en la página web del proyecto y además tiene un software que permite calcular los índices y el estado ecológico

� Se basa en un conjunto de 10 protocolos para las diferentes fases de que consta la evaluación de la calidad (establecimiento de las clases ecológicas de calidad)

Protocolo AQEM

� 1 – Classificar el río problema en un tipo determinado, esto es básico pues el tipo influye en la época en que hay que muestrear, en algunos procedimientos de laboratorio y en el uso de diferentes métricas.

� 2 – Reunir las características básicas del lugar de estudio (protocolo del lugar de muestreo), referentes a morfología fluvial, hidrología, vegetación etc. Es imprescindible antes de muestrear el caracterizar con el protocolo específico los microhabitats y su abundancia relativa.

� 3 - Muestreo biológico . Consta de varios protocolos para realizar un muestreo multihábitat semi-cuantitativo . El muestreo se realiza de abajo a arriba del sentido de la corriente.

Protocolo AQEM: Muestreo biológico

� Se puede muestrear con Surber o con una red triangular o cuadrangular, siempre que se remueva bien el sustrato y se recojan todos los organismos.

� Malla de la red de 500 micras� Se toman 20 réplicas de superficie de 0,25 x 0,25 m., con lo que la

superficie total muestreada es de 1,25 m2. Todas las muestras se mezclan en una sola muestra final .

� Se lava la muestra cada 2 o 3 réplicas. Se quitan los cantos y los restos vegetales grandes. Se inspeccionan para quitar los animales sésiles

� Se transfiere la muestra a un bote y se fija con formol. Si se fija con etanol hay que mirar la muestra rápidamente. También se puede tomar la muestra viva pero hay que conservarla en una nevera y mirarla en 48 horas.

Características generales:multihabitatRed Surber, 500 micras,

Sustrato > 5%: Hábitats Dominantes = 20 surber proporcional al área de cada sustrato.

Sustrato < 5%: Hábitats Marginales = No se muestrean

Lista de masroinvertebrados con sus densidades por m etro cuadrado

Muestreo cuantitativo

Surber sampler

malla de 250 µµµµm o de 500 µµµµm

8

8

Habitats Dominantes

Habitats Marginales

2

2

Protocolo AQEM: Operaciones post-muestreo

� Filtrado de las muestras: Se separan las muestras en dos fracciones� Gruesa (>1 mm si es arena o >2 mm si son cantos)� Fina (0,5 -1mm)

� La muestra gruesa se separa completamente (en campo o laboratorio). Solo si el número de individuos es > 500 se puedenhacer submuestras.

� De la muestra fina se separan como máximo 500 individuos, si se sospecha que hay mas se va sub-muestreando hasta que el número aproximado que se tiene es este.

� Dependiendo del tipo de río no es necesario separar la muestra fina. � Separación de la muestra: Se separan los organismos en grupos por

clases taxonómicas.

Protocolo AQEM: Identificación

� El nivel taxonómico requerido es diferente según el método (métrica) que se utilice. AQEM es un método multimétrico y por ello utiliza diferentes métricas según el tipo de río.

� Según los países se usan diferentes niveles taxonómicos (especie, género o familia) o diferentes métricas, ello depende del tipo de río.

� Antes del cálculo de las métricas hay que hacer un ajuste taxonómico en el que se agregan las especies o grupos de taxa enunidades taxonómicas o bien se separan los taxa determinados a nivel de género (por ejemplo Baetis spp) en diferentes especies de acuerdo con la abundancia relativa de estas.

� El cálculo se realiza con un software que el propio método proporciona. El tipo de río es muy importante. Las métricas se pueden escoger de acuerdo con el estresante específico.

� El método sugiere en función de los resultados posibles medidas de restauración

Protocolo IRS

(Invertebrés Reseau de Surveillance, França)

� Comparación IBGN� Macroinvertebrados� Red de vigilancia DMA (la básica)� Habitat = sustrato x velocidad� Uso del concepto de Referencia� ¿Considerar habitats marginales? (<5%)� IBGN favorece; AQEM excluye� IRS los compara� Poder calcular un índice multimétrico cuantitativo que

cumpla con la DMA (IBGN es cualitatiuvo y mantener la comparabilidad con los datos obtenidos hasta la fecha.

Protocolo IRS Caracterizar la estación de muestreo

� Definir la longitud del punto de muestreo.� Según el tipo de rio se hacen 2 o 3 secuencias

longitudinales. La Secuencia Longitudinal ( SL) se define com la longitud de un tramo que sea 6 veces la anchura del rio en caudal medi o (Lpb –lit en plein bord).

2 (o 1)Ríos muy grandes

3 SL (o 18 Lpb)Ríos muy pequeños

2 SLRíos pequeños

Protocolo IRS

Principios generales

� 12 muestras (Surber o Kick el segundosolo si no es posible usar el primero) combinadas

� 8 muestras en hábitats dominantes(superficie ocupada >5%)� Se anota la superfície aproximada de cada

sustrato dominante y se clasifica en tres clases. 1 => 50%; 2 =25-50%; 3= 5-25%.

� 4 muestras en hábitats marginales ( superfície ocupada < 5%, para mantenerinfo IBGN).

� Velocidades. Al mismo tiempo que se mira la superfície que ocupa el sustratose anotan las clases de velocidad en que se encuentra.

0 a 5Nula

6 a 25Lenta

26 a 75Media

> 76Rápida

(cm/seg)Clase de velocidad

Protocolo IRS Definición Sustratos

� Un sustrato es una asociación de elementos minerales (q ue pueden tener m.o.) o vegetalesque tienen características físicas homogéneas en una su perfície contigua de como mínimode 1m 2. Un sustrato es marginal si <5%. El orden de habitib ilidad es clave para determinar que sustratos se muestrean y en que orden.

DEFINICIÓN DEL SUBSTRATO HABITAB. PROTOCOLO

Briófitos (hepáticas, musgos….) 11 Sobre bloque, sobre piedras

Espermatofitos sumergidos (hidrófitos) 10 Incluye la capa superficial del sedimento

Materia orgánica particulada gruesa (literas) 9 Incluye la capa superficial del sedimento

Soportes leñosos 8 Vegetal solo

Sedimentos minerales grandes(piedras, guijarros)

(25 a 250 mm)

7 Incluye las diferentes clases

granulométricas de sedimentos

Bloques (> 250 mm) incluye la matriz de

elementos minerales gruesos (25 a 250 mm)

6 Incluye los sedimentos y la fauna

asociados (refugios bajo bloque)

Gravas gruesas (2 a 25 mm). 5 Incluye las diferentes clases

granulométricas de sedimentos

Esparmatofitas emergentes (helófitos) 4 Incluye la capa superficial del sedimento

Limos: sedimentos muy finos (<0,1 mm) con

restos orgánicos finos

3 Capa superficial del sedimento (<3cm)

Arenas y limos (<2mm) 2 Capa superficial del sedimento (<3cm)

Algas 1 Incluye los elementos minerales del

soporte

Superficies uniformes duras naturales y

artificiales (rocas, baldosas, margas y arcillas

compactas)

0 Raspado de superficie

Protocolo IRS Muestreo sustratos marginales

Bote 1:

� Se recogen 4 muestras de acuerdo a la tabla de sustrato s� Si hay mas de 4 sustratos, solo se recogen los 4 prim eros siguiendo el

orden de la tabla y en la clase de velocidad mas repres entativa de cada uno de ellos.

� Si solo hay 3 sustratos, la cuarta muestra se recoge de aquel que tienemas superficie y cambiando (si es posible) la clase de velocidad.

� Si solo hay dos sustratos se recogen dos muestras de ca da uno de ellos y cambiando (si es necesario) la clase de veloci dad.

� Si solo hay un sustrato se recogen 4 muestras del mismo cambiando la clase de velocidad. Si només n’hi ha 1 s’agafen tots del mateix, variant la classe de velocitat.

� Para cada sustrato se utiliza el mejor método posible de muestreo.

Protocolo IRS Muestreo sustratos dominantes

Bote 2:

� Se recogen 4 muestras de acuerdo a la tabla de sustrato s� Si hay mas de 4 sustratos, solo se recogen los 4 prim eros siguiendo el

orden de la tabla y en la clase de velocidad mas repres entativa de cada uno de ellos.

� Si hay 4 sustratos se recoge una muestra de ellos en la clase de velocidad mas representativa.

� Si solo hay 3 sustratos, la cuarta muestra se recoge de aquel que tienemas superficie y cambiando (si es posible) la clase de velocidad.

� Si solo hay dos sustratos se recogen dos muestras de ca da uno de ellos y cambiando (si es necesario) la clase de veloci dad.

� Si solo hay un sustrato se recogen 4 muestras del mismo cambiando la clase de velocidad. Si només n’hi ha 1 s’agafen tots del mateix, variant la classe de velocitat.


Protocolo IRS Muestreo sustratos dominantes

Bote 3:

� Se recogen 4 muestras de acuerdo con la superficie ocup ada independientemente de la tabla de sustratos� Si hay mas de 4 sustratos, se recogen los sustratos no muestreados en

el Bote 2 y en la clase de velocidad mas representativ a de cada uno de ellos.

� Si hay menos de 4 sustratos y ya han estado muestreadosanteriormente, se van tomando Surbers según la dominan cia de superficie y variando la clase de velocidad.


Protocolo IRS Al final deberíamos tener como mínimo:

� 4 muestras de los que ocupan >50% de la superfície� 2 muestras de los ocupan enter 25-50%� 1 muestra de cada uno de los que ocupan entre 5-25% su perfície� Les muestras de los botes 1, 2 y 3 pueden ponerse en v arios botes si hay

mucho material.� Lógicamente hay que etiquetarlo todo correctamente

De esta manera tenemos diferentes informaciones posibles:� B1 + B2: muestreo que sirve para el índice IBGN� B2 + B3: Hábitats dominantes (similar Aqem con menos

muestras)� B1: Habitats marginales� B1+B2+B3: Lista global, puede ser equivalente a protocol o

Guadalmed.

La ventaja de este protocolo es que permite comparar con m uestrashistóricas.

Protocol IRS

Principis generals

D’aquesta manera es poden fer llistes faunístiques que donen 4 informacions diferents:

� P1 + P2: mostreig adequat per obtenir l’índex IBGN� P2 + P3: Llista d’hàbitats dominants (seria +/- equiv alent al Aqem,

però amb menys mostres individuals)� P1: Llista dels hàbitats marginals� P1+P2+P3: llista global

Això permetria calcular diverses mètriques en el futur i fer comparacions amb els valors dels índexs que s’han ana t fent de forma històrica.

Sustrato > 5%: Hábitats Dominantes x 4 + 2 (4) = Bote 2Sustrato < 5%: Hábitats Marginales x 4 = Bote 1

A. Lista de Macroinvertebrados de Hábitats Marginales (Bote 1)

B. Lista de Macroinvertebrados de Hábitats Dominantes (Bote 2)

C. Lista Global de Macroinvertebrados (Bote 1+2)

Muestreo quantitativo

Surber sampler

malla de 250 µµµµm o de 500 µµµµm

Habitats Dominantes

Habitats Marginales

Protocol IRS Atención en el campo para los taxa

Límites de la determinación taxonómicaLos sustratos muy grandes (piedras, trocos) hay que qui tarlos para que no dañen

a los animales..� Los organismos muy grandes como efemerópteros o plecópte ros separarlos

en el campo para que no se dañen, ponerlos en viales individuales.� Animales muy grandes o que están protegidos por ley (cang rejos, camarones,

moluscos, odonatos) se identifican y se cuentan en ca mpo y luego se liberan.� Conservación puede ser congelados, formol o alcohol s egún los usos.

Protocol IRS Laboratorio

Límites de la determinacióntaxonòmica

� Balance entre inromación y tiempo de de trabajoDependerá de los índices que utilicemos. Tabla para IBGN.

� Utilizar las claves existentes .� Individuos mas pequeños solo

a familia. Distribuciónproporcional por géneros.

Taxons Niveau systématique Plecoptera Genre Ephemeroptera Genre Trichoptera (sauf Limnephilidae) Genre

Trichoptera Limnephilidae Sous-Famille Coleoptera (sauf Dytiscidae, Hydrophilidae et Curculionidae)

Genre

Coleoptera (Dytiscidae, Hydrophilidae) Sous-Famille Coleoptera Curculionidae Famille

Megaloptera Genre Heteroptera (sauf Corixinae) Famille

Heteroptera Corixinae Sous-Famille Planipennia Genre Odonata (sauf Coenagrionidae) Genre

Odonata Coenagrionidae Famille Lepidoptera Famille Hymenoptera Genre Diptera Famille (Hydr)acarina PRESENCE Crustacea (sauf Asellidae) Genre

Crustacea Asellidae Famille Bivalvia Genre Gastropoda (sauf Planorbidae) Genre

Gastropoda Planorbidae Famille Hirudinea et Branchiobdellida Famille Oligochaeta Classe Bryozoa PRESENCE Nematoda PRESENCE Gordiacea PRESENCE Turbellaria Famille Hydrozoa PRESENCE Porifera PRESENCE

Protocol IRS Triatge i quantificació (1)

� Primero lavar los individuos en un recipiente con malla de 0,5 mm� Submuestreo si hay muchos individuos.� Contaje de los individuos a nivle de familia en aumento x2 (puede ser en el

mismo recipiente).� Separara varios individuos de una misma família si es n ecesario determinarlos

a nivel genérico (no hace falta separar los quironómid os en este caso).� Gaurdar siempre 10 individuos mínimo de cada família au nque no se

identifiquen a género.� Para las família con varios géneros el número final d e individuos será

dependiente de si es una familia con bajo número de gén eros (1-3) para loquenecesitaremos un mínimo de 20 individuos o alto (>4), y en este caso se necesitan un mínimo de 40.

� Hay que mantener este protocolo para cada bote y cada un a de las submuestras..

Protocol IRS Elproblema del tiempo

� Aunque la mayoría de la información se aporta en el prime r ¼ de hora, aproximadamente se llega al 80% de los tax a en una media hora para los sustratos minerales y en una hora para los demás .

� Una indicación del tiempo a dedicar se da en la tabla ad junta

EL TIEMPO TOTAL DE SEPARACIÓN Y CLASIFICACIÓN NO DE BE SER INFERIOR A UNA HORA NI SUPERIOR A 12.

Substrats minéraux 4 3 2 1 0 Nombre de prélèvements unitaires

Autres substrats 0 1 2 3 4

minimum 1 1,5 2 2,5 3 Durée de tri en heures maximum 2 2,5 3 3,5 4

¿Que método es mejor?

(Colombia)

Cuantos individuos contar?

SEPARACIÓN SECUENCIAL

50 100 150 200 250 300 >300

Total

nº Familias 15 15 15 18 19 19 19

BMWP´ 68 68 68 79 80 80 80

Lenítico

nº Familias 12 12 13 16 17 17 17

BMWP´ 52 52 62 71 79 79 79

Lótico

nº Familias 7 7 7 7 7 8 8

BMWP´ 39 39 39 39 39 91 91

Tabla resumen de los valores BMWP’ y FBILL para los distintos grupos

CAMPO CAMPO +LABORATORIO

BMWP’ FBILL BMWP’ FBILLGrupo I 122 10 122 10Grupo II 127 10 131 10Grupo III 170 10 201 10Grupo IV 139 10 166 10

Rio Argos, Murcia. Individuos y calidad del agua (Bonada et al, 2002, proyecto Guadalmed)

Metodología GUADALMED

y = 4,4971Ln(x) - 1,8338

R2 = 0,9741

-7

-2

3

8

13

18

23

0 25 50 75 100 125 150 175 200

Número Individuos

Tax

a

Surber Multihabitat

y = 4,0804Ln(x) - 2,4885

R2 = 0,845

-7

-2

3

8

13

18

23

0 25 50 75 100 125 150 175 200

Número Individuos

Tax

a

Surber Reófilos

y = 3,9062Ln(x) - 2,8756

R2 = 0,9172

-7

-2

3

8

13

18

23

0 25 50 75 100 125 150 175 200

Número Individuos

Tax

a

3- Minutos Kicking

y = 2,8838Ln(x) - 1,449

R2 = 0,8937

-7

-2

3

8

13

18

23

0 25 50 75 100 125 150 175 200

Número Individuos

Tax

a

RIO PEU-PEU CHILE

Totales Familias

29

23

1918

0

5

10

15

20

25

30

MetodologiaGUADALMED

Surber Multihabitat Surber Reofilos Tres Minutos Kicking

Metodo de Muestreo

Núm

ero

de ta

xa

RIO PEU-PEU CHILE

Abundancias relativas(Orden)

0%

10%20%

30%

40%50%

60%

70%

80%90%

100%

GRUPO 1 GRUPO 2 GRUPO 3 GRUPO 4

ARACNIDA COLEOPTERA CRUSTACEA DIPTERAEPHEM EROPTERA HEEROPTERA LEPIDOPTERA M EGALOPTERAM OLLUSCA ODONATA ANNELIDA TRICHOPTERA

Ephemeroptera

Trichoptera

Diptera

RIO PEU-PEU CHILE

Abundancia: Puede ser también útil

Taxa mas abundantes (>1%)Grupo1

0,005,00

10,0015,0020,0025,00

30,0035,00

Lept

ophl

ebiid

ae

Chi

rono

mid

ae

Hyd

rops

ychi

dae

Lept

ocer

idae

Elm

idae

Chi

linid

ae

Aeg

lidae

Lim

neph

ilidae

Sia

lidae

Olig

ocha

eta

Hyd

ropt

ilidae

Hya

lellid

ae

Bae

tidae

(abu

ndan

cia

rela

tiva)

0,00

10,00

20,00

30,00

40,00

50,00

60,00

70,00

Lept

ophl

ebiid

ae

Chi

rono

mid

ae

Hyd

rops

ychi

dae

Olig

ocha

eta

Oni

scig

astr

idae

Gom

phid

ae

Hiru

dini

dae

Sph

aerid

ae

Aeg

lidae

Hel

icop

hida

e

Chi

linid

ae

Hyd

robi

osid

ae

Lept

ocer

idae

(abu

ndan

cia

rela

tiva)

Taxa mas abundantes (>1%)Grupo 2

0,00

10,00

20,00

30,00

40,00

50,00

Lept

ophl

ebiid

ae

Chi

rono

mid

ae

Lept

ocer

idae

Hyd

rops

ychi

dae

Olig

ocha

eta

Cor

ydal

idae

Pse

phen

idae

Aca

ri

Aeg

lidae

Bae

tidae

Elm

idae

Em

pidi

dae

Ser

icos

tom

atid

ae

Sia

lidae


0,00

10,00

20,00

30,00

40,00

50,00

60,00

Lept

ophl

ebiid

ae

Hyd

rops

ychi

dae

Cor

ydal

idae

Bae

tidae

Chi

rono

mid

ae

Lept

ocer

idae

Pse

phen

idae


RIO PEU-PEU CHILE

Los taxa dominantes también ayudan

bloque 3. macroinvertebrados 4 protocols

Technology