bioremediación microbianas en aguas residuales domesticas

UNIVERSIDAD NACIONAL

“SANTIAGO ANTÚNEZ DE MAYOLO”

FACULTAD DE CIENCIAS DEL AMBIENTE

ESCUELA ACADÉMICA PROFESIONAL DE INGENIERÍA AMBIENTAL

Tema: Biorremediación Microbiana en Aguas Residuales

Domesticas

Docente: POLO SALAZAR Rosario A.

Asignatura: Microbiología Ambiental

Presentado por: LAZARTE MONTESINOS Ruth

OROPEZA RAMOS Teresa Lidia

TORRE ALBERTO Lizbeth Melina

HUARAZ- PERÚ2015

2

Biorremediación Microbiana en Aguas ResidualesMicrobiología Ambiental

ÍNDICE

ÍNDICE.......................................................................................................................2

INTRODUCCIÓN......................................................................................................3

I. OBJETIVOS.......................................................................................................4

1.1. OBJETIVO GENERAL..................................................................................4

1.2. OBJETIVO ESPECÍFICOS............................................................................4

II. HIPÓTESIS.........................................................................................................4

III. ANTECEDENTES Y JUSTIFICACIÓN...........................................................4

IV. MARCO TEÓRICO............................................................................................5

4.1. Biorremediación..................................................................................................5

4.2. Tipos de Biorremediación...................................................................................5

a. Degradación enzimática..................................................................................5

b. Remediación microbiana.................................................................................5

c. Fito remediación..............................................................................................6

4.3. Agua Residual.....................................................................................................6

4.3.1. Aguas Residuales domésticas..........................................................................6

4.4. Microorganismos Eficaces (EM)........................................................................6

V. MATERIALES Y MÉTODOS.........................................................................7

5.1 MATERIALES.....................................................................................................7

5.2 MÉTODOS...........................................................................................................8

VI. RESULTADOS E INTERPRETACIÓN..........................................................9

VII. DISCUSIÓN DE RESULTADOS..................................................................14

CONCLUSIONES....................................................................................................16

RECOMENDACIONES..........................................................................................17

BIBLIOGRAFÍA......................................................................................................18

ANEXOS..................................................................................................................19

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INTRODUCCIÓN

Las aguas residuales domésticas (ARD), son aquellas que se obtienen luego de que el agua es usada en actividades como limpieza general, preparación de alimentos y sanitarios entre otros. Las aguas residuales contienen gran cantidad de materia orgánica (proteínas, carbohidratos y lípidos) e inorgánica (sales nutritivas de nitrógeno y fósforo, entre otros) que modifican las características fisicoquímicas del agua, generando un ambiente propicio para la proliferación de organismos en ella.1

La limpieza de las aguas residuales implica operaciones de sedimentación y filtración, el proceso de tratamiento es de mucha importancia, por eso hay que entender los mecanismos de los microorganismos, quienes son los que realizan la parte básica de este proceso.

La tecnología del producto EM ha sido reportada como una alternativa para el tratamiento de aguas contaminadas. El EM incrementa las densidades de microorganismos que pueden utilizar los compuestos presentes en el agua como fuente carbono y energía para su metabolismo y crecimiento, reduciendo sus concentraciones.

En este proyecto de investigación se busca aplicar la tecnología del EM, conjuntamente con los microoganismos presentes en las raíces de las plantas flotantes, en este caso los berros (Nasturtium officinale) y las lentejas de agua (Lemna minor), y los microorganismos presentes en las propias aguas residuales, con el fin de disminuir los agentes patógenos que se encuentran en las ARD, siendo los principales, los coliformes y también algunos iones como el Fe, Ni, Cu, P, PO4

3, posteriormente se hará una comparación con los límites máximos permisibles para el agua tratada para ser empleada en el riego de plantas ornamentales.

1 http://javeriana.edu.co/biblos/tesis/ciencias/tesis204.pdf

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I. OBJETIVOS

I.1. OBJETIVO GENERAL

- El objetivo del presente trabajo es aplicar los Microorganismos Eficaces y los microorganismos que se encuentran en las plantas para el tratamiento de aguas residuales domésticas.

I.2. OBJETIVO ESPECÍFICOS

- Verificar la efectividad de los microorganismos del EM y de las plantas para el tratamiento de agua residuales.

- Verificar si el agua tratada es apta para el riego de plantas ornamentales.

II. HIPÓTESIS

Los microorganismos presentes en el EM y en las plantas tienen la capacidad de degradar materia orgánica de aguas residuales.

III. ANTECEDENTES Y JUSTIFICACIÓN

En Latinoamérica, muchas corrientes son receptoras de descargas directas de residuos domésticos e industriales. Se sabe que las aguas residuales albergan microorganismos que causan enfermedades (patógenos), incluyendo virus, protozoos y bacteria. Los organismos patogénicos pueden originarse en los individuos infectados o en animales domésticos o salvajes, de los cuales pueden o no presentar señales de enfermedad. La diarrea y la gastroenteritis se encuentran entre las tres principales causas de muerte en el mundo y en la región latinoamericana. El agua no segura para beber y la contaminación a través del desecho inadecuado de aguas negras son responsables por la gran mayoría de estas muertes. De acuerdo a la Organización Mundial de la Salud, sólo en Brasil, 20 niños mueren cada día debido a la falta de sistemas de aguas negras. Este es un problema que está directamente relacionado con la presencia de enfermedades infecciosas tales como el cólera, hepatitis, disentería, gastroenteritis y muchas otras.Las aguas residuales consisten de dos componentes, un efluente líquido y un constituyente sólido, conocido como lodo. Típicamente existen dos formas generales de tratar las aguas residuales. Una de ellas consiste en dejar que las aguas residuales se asienten en el fondo de los estanques, permitiendo que el material sólido se deposite en el fondo. Después se trata la corriente superior de residuos con sustancias químicas para reducir el número de contaminantes dañinos presentes. El segundo método más común consiste en utilizar la población bacteriana para degradar la materia orgánica. Este método, conocido como tratamiento de lodos activados,

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requiere el abastecimiento de oxígeno a los microbios de las aguas residuales para realzar su metabolismo.

La importancia del siguiente trabajo es la aplicación de una alternativa asequible para el tratamiento de aguas residuales domesticas mediante los Microorganismos eficaces (EM®) y los microorganismos presentes en algunos tipos de plantas que tienen estas capacidades, además es un proyecto a bajo costo de inversión, operación y mantenimiento.

IV. MARCO TEÓRICO

IV.1. Biorremediación

La biorremediación es una tecnología emergente que utiliza organismos vivos (plantas, algas, hongos y bacterias) para absorber, degradar o transformar los contaminantes y retirarlos, inactivarlos o atenuar su efecto en suelo, agua y aire.2

IV.2. Tipos de Biorremediación

Los procesos mediante los cuales funciona la biorremediacion se pueden dividir en tres grupos:

a. Degradación enzimáticaEste tipo de degradación consiste en el empleo de enzimas en el sitio contaminado con el fin de degradar las sustancias nocivas. Estas enzimas se obtienen en cantidades industriales por bacterias que las producen naturalmente, o por bacterias modificadas genéticamente que son comercializadas por las empresas biotecnológicas.

b. Remediación microbianaEn este tipo de remediación se usan microorganismos directamente en el foco de la contaminación. Los microorganismos utilizados en biorremediación pueden ser los ya existentes (autóctonos) en el sitio contaminado o pueden provenir de otros ecosistemas, en cuyo caso deben ser agregados o inoculados.La descontaminación se produce debido a la capacidad natural que tienen ciertos organismos de transformar moléculas orgánicas en sustancias más pequeñas, que resultan menos tóxicas. De esta forma, los microorganismos que pueden degradar compuestos tóxicos para el ambiente y convertirlos en compuestos inocuos o menos tóxicos, se aprovechan en el proceso de biorremediación. De esta forma, reducen la polución de los sistemas acuáticos y terrestres.Existen, por ejemplo, bacterias y hongos que pueden degradar con relativa facilidad petróleo y sus derivados, benceno, tolueno, acetona, pesticidas, herbicidas, éteres, alcoholes simples, entre otros.

2 http://biorremedia.com.mx/Biorremediacion/Biorremediacion_Definicion.html

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c. Fito remediaciónLa Fitorremediación es un procedimiento que utiliza especies vegetales para contener, eliminar o neutralizar compuestos orgánicos, elementos traza o elementos radiactivos que pueden ser tóxicos en aguas o suelos. La fitorremediación pretende devolver esos suelos o aguas contaminadas a sus condiciones originales. La fitorremediación incluye cualquier proceso biológico, físico o químico que, mediado por plantas, ayude a la absorción, secuestro y degradación de los contaminantes, ya sea por las plantas mismas o por los microorganismos que se desarrollan en la rizósfera.

IV.3. Agua Residual3

El agua residual es aquella que ha sufrido una alteración en sus características físicas, químicas o biológicas por la introducción de contaminantes como residuos sólidos, biológicos, químicos, municipales, industriales, agrícolas, etc., afectando así los ecosistemas acuáticos y su entorno (Novotny, 2003; Sánchez, 2003). Las aguas residuales provienen del sistema de abastecimiento de una población, por esta razón son líquidos de composición variada que pueden clasificarse según su origen en aguas residuales domésticas e industriales.

IV.3.1.Aguas Residuales domésticasLas aguas residuales domésticas son aquellas provenientes de las actividades domésticas cotidianas, son principalmente combinación de heces humanas y animales, orina y agua gris. Estas, presentan un alto contenido de materia orgánica, compuestos químicos domésticos como detergentes y compuestos clorados y microorganismos patógenos y no patógenos.

IV.4. Microorganismos Eficaces (EM)4

Es una tecnología desarrollada por el Doctor Teruo Higa en la década de los ochenta en Okinagua, Japón. EM es un cultivo mixto de organismos no modificados genéticamente, con diversos tipos de metabolismo, que al encontrarse juntos presentan relaciones sinergistas. Los microorganismos del EM poseen varias características útiles en los procesos de biorremediación, entre las cuales se encuentran la fermentación de materia orgánica sin la liberación de malos olores y su capacidad de convertir los desechos tóxicos (H2S) en sustancias no tóxicas (SO4) (García, 2006).El EM ha sido empleado para el tratamiento de Aguas Residuales, debido a los microorganismos que contiene, estos secretan ácidos orgánicos, enzimas, antioxidantes y quelantes metálicos, creando un ambiente antioxidante que ayude al proceso de separación sólido/ líquido (Higa y Chinen, 1998).



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Los microorganismos de EM, son: Bacterias lácticas: Lactobacillus casei. Bacterias fotosintéticas: Rhodopseudomonas palustris (del orden de los

Rhizobiales). Levadura: Saccharomyces cerevisiae. Otros: microorganismos beneficiosos que existen de forma natural en el

medio ambiente pueden prosperar en la mezcla.

V. MATERIALES Y MÉTODOS

5.1 MATERIALESCuadro 1: materiales, equipos, medio de cultivo y kits

MUESTRA Agua residual domestica

MATERIAL BIOLÓGICO

Planta: Nasturtium officinale (berros), Lemna minor (lentejas de agua)

Microorganismos: Microorganismos Eficientes (EM)

MATERIAL DE VIDRIO

Pipetas

Tubos de ensayo

Matraces

EmbudosVasos de precipitado

MATERIAL DE PLÁSTICO

BateasProbetasPiscetas

Frascos de muestreo2 baldes (capacidad de 15L y de 8L)

Gradillas

EQUIPOS

AutoclaveIncubadora

Balanza granatoriaMechero de BunsenEquipos de filtraciónMechero de Bunsen

Espectrofotómetro

EQUIPOS DE PROTECCIÓNGuantes

GuardapolvoMascarillas

MEDIO DE CULTIVO Caldo Lauril

KITS Cu, Fe, Ni, P

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5.2 MÉTODOS ORIGEN DEL AGUA RESIDUAL DOMESTICA (ARD)

El ARD se obtuvo de la urbanización San José de Auqui que tiene su desembocadura en el Rio Auqui que se encuentra aproximadamente a 15m del puente de piedra. Para el muestreo se utilizó un balde de capacidad 15L que luego va hacer depositado en uno de 8L en el cual se dejó 5 días para la sedimentación.

APLICACIÓN DE MICROORGANISMOS EFICIENTES (EM)Antes de la aplicación del EM, se tuvo que diluir la chancaca en 2L de agua la cual luego fueron depositados en dos envases para agregar el EM y se dejó por 15 días para la fermentación que posteriormente fueron depositadas en dos tinas.

APLICACIÓN DEL MÉTODO DE HUMEDALESConsiste en el uso de plantas flotantes (Lentejas de agua y Berros) para la purificación del agua residual doméstica. Estas plantas fueron primero adaptadas para luego sembrarlas en dos tinas junto con el EM; este proceso lo realizamos tres veces ya que las plantas murieron por falta de oxígeno.

PREPARACIÓN DEL CALDO LAURILPara la muestra original se pesó 4.81gr de Caldo Lauril y para la muestra de salida se pesó 11.53gr. Luego fueron vertidos en un matraz y posteriormente se agregó 135mL y 324mLde agua destilada respectivamente. Luego se depositó 9mL de este caldo en tubos con campana invertida para luego ser llevados a la autoclave.

SIEMBRA DEL ARD MEDIANTE DILUCIONESPara la muestra original se hizo 6 diluciones en la cual no se sembró la dilución 10−1y de cada dilución se sembró 1mL en tres tubos de Caldo Lauril, posteriormente fueron llevados a la incubadora por 24h. Para la muestra de la salida se hizo tres diluciones por cada muestra (4 muestras) en la cual se sembró 1mL de cada dilución en tres tubos de Caldo Lauril, posteriormente fueron llevados a la incubadora.Luego se analizó la cantidad de coliformes en el agua residual.

IONES TOTALESDe la muestra original y de las 4 muestras de salida se sacó 5ml y se depositó en tubos de ensayo diferentes para analizar la cantidad de Cu, Fe, Ni, P, PO4

3 (ver anexo 1, 2, 3, 15, 16, 17, 18 y 20).

VI. RESULTADOS E INTERPRETACIÓN

6.1 Determinación de Coliformes Totales

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Tabla N° 1.Resultados de las diluciones de la muestra inicial

Diluciones Resultados(NMP Coliformes

/100 ml)10-2 10-3 10-4 10-5 10-6

Muestra de Agua Residual

3 3 3 0 0 23 x 105

Tabla N°2. Resultados de las diluciones de salida de las Muestras 1, 2, 3 y 4.

Diluciones Resultados( NMP Coliformes

/100 ml)10-1 10-2 10-3

Muestra 1Tina Azul

3 3 3 2400 x 102

Muestra 2Tina Verde

3 3 2 1100 x 102

Muestra 3Tina Azul

3 3 2 1100 x 102

Muestra 4Tina Verde

3 3 2 1100 x 102

Tabla N° 3. Comparación de resultados de la muestra inicial y las muestras de salida.

Fecha 16/12/2014 06/01/2015Muestra Inicial M1 M2 M3 M4

Resultados(NMP

Coliformes /100 ml)

23 x 105 2400 x 102 1100 x 102 1100 x 102 1100 x 102

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MUESTRA 1 MUESTRA 2 MUESTRA 3 MUESTRA 40

500000

1000000

1500000

2000000

2500000

240000110000 110000 110000

2300000 2300000 2300000 2300000

Determinación de Coliformes

M1Muestra Inicial

Muestras

NM

P Co

lifor

mes

/100

ml

Gráfica 1. Comparación de Coliformes en la muestra inicial y las muestras finales.

Interpretación:

En la entrada se observa que hay una cantidad de 23 x 105 NMP Coliformes /100 ml.

En la Muestra 1, se observó una cantidad de ≥2400 x 102 NMP Coliformes /100 ml.

En las Muestras 2, 3 y 4 se observó una cantidad de 1100 x 102 NMP Coliformes /100 ml.

6.2 Determinación de iones por Espectrofotometría UV

a. Para el Hierro (Fe): LMD: 0.01- 1.00 mg/l

Tabla N°4. Concentración del Hierro en la muestra inicial y las muestras finales.

Muestreo Muestra Inicial

M1 M2 M3 M4

Resultados(mg/l)

0.79 2 0.60 2 2.1

M1 M2 M3 M40

0.5

1

1.5

2

2.5

2

0.6

22.1

0.79 0.79 0.79 0.79

Concentración de Hierro

Muestra SalidaMuestra Inicial

Muestras

mg/

l

11


Gráfica 2. Concentración de Hierro en las muestras iniciales y finales.

b. Para el Cobre (Cu): LMD: 0.05- 2.00 mg/l

Tabla N° 5. Concentración del Cobre en la muestra inicial y las muestras finales.

Muestreo Muestra Inicial M1 M2 M3 M4

Resultados(mg/l) 0.14 3.05 2.08 0.74 0.45

M1 M2 M3 M40

0.5

1

1.5

2

2.5

3

3.53.05

2.08

0.740.45

0.14 0.14 0.14 0.14

Concentración de Cobre


Muestras

mg/

l

Gráfica 3. Concentración de Cobre en las muestras iniciales y finales.

c. Para el Niquel (Ni): LMD: 0.02- 2.00 mg/l

Tabla N° 6. Concentración del Níquel en la muestra inicial y las muestras finales.

Muestreo Muestra M1 M2 M3 M4

M1 M2 M3 M40

0.5

1

1.5

2

2.5

2

0.6

22.1

0.79 0.79 0.79 0.79

Concentración de Hierro


Muestras

mg/

l

12


InicialResultados(mg/l)

0.12 2.09 2.05 2.03 2

d. Para el Fósforo (P): LMD: 0.02- 1.00 mg/

Tabla N° 7. Concentración del Fósforo en la muestra inicial y las muestras finales.


M1 M2 M3 M4

Resultados(mg/l)

0.23 1,04 0.84 0.35 0.16

Gráfica 5. Concentración de Fósforo en las muestras iniciales y finales.

Gráfica 4. Concentración de Níquel en las muestras iniciales y finales.

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e. Para el Fosfato (PO43−¿¿): LMD: 0.06- 3.00 mg/

Tabla N° 8. Concentración del Fosfato en la muestra inicial y las muestras finales.


M1 M2 M3 M4

Resultados(mg/l)

0.48 3.21 2.52 1.07 0.48

VII.DISCUSIÓN DE RESULTADOS

Gráfica 6. Concentración de Fosfato en las muestras iniciales y finales.

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- Los análisis biológicos realizados a la muestra inicial (ARD) nos indicó una alta concentración de coliformes siendo esta 23 x 105 NMP coliformes/100ml (tabla1), a comparación de los resultados de las muestras finales (ARD tratada) donde se obtuvo una concentración mínima de 1100 x 102 NMP Coliformes /100 ml, lo cual es un indicador de una disminución de concentración de coliformes totales, sin embargo al comparar este resultado con los Criterios de calidad admisibles para aguas de uso agrícola (anexo 27, tabla 9) estos resultados sobrepasan los Límites Máximos Permisibles ( LMPs).

- Los análisis fisicoquímicos que se realizaron a las diferentes muestras fueron para Cu, Fe, Ni, P,PO4

3−¿¿.La concentración de Fe en la muestra inicial fue 0.79mg/l, mientras que los resultados de salida para la M1, M3, M4 sobrepasan los límites máximos de detección (ver tabla 4). En cambio en la M2 hay una disminución de la concentración de Fe; 0.60mg/l. comparando este resultado con el anexo 27 se observó que este parámetro cumple con los LMPs.

La concentración de Cu en la muestra inicial fue 0.14mg/l, mientras que los resultados de salida para todos los muestreos (M1, M2, M3, M4) sobrepasan los límites máximos de detección (ver tabla 5), comparando este resultado con el anexo 27 se observó que este parámetro no cumple con los LMPs.

La concentración de Ni en la muestra inicial fue 0.12mg/l, mientras que los resultados de salida para todos los muestreos (M1, M2, M3, M4) sobrepasan los límites máximos de detección (ver tabla 6). Comparando este resultado con el anexo 27 se observó que este parámetro no cumple con los LMPs.

La concentración de P en la muestra inicial fue 0.23mg/l, mientras que los resultados de salida para los muestreos M1, M2, M3 hay un aumento respecto a la muestra inicial en cambio en la M4 la concentración de P disminuye.

La concentración de PO43−¿¿ en la muestra inicial fue 0.48mg/l, mientras que los

resultados de salida para los muestreos M1, M2, M3 hay un aumento respecto a la muestra inicial en cambio en la M4 la concentración de PO4

3−¿¿ se mantiene constante.Tanto para los parámetros de P y PO4

3−¿¿ no se encontraron los LMPs correspondientes, sin embargo podemos asegurar que en la M4 hubo una disminución de materia orgánica ya que este es un componente de este, cumpliéndose así nuestra hipótesis.Como se aprecia en la mayoría de los resultados, los valores obtenidos sobrepasan LMPs, esto se podría deber a la falta de un sistema de aireación continua que ocasionaba la muerte de las plantas y la generación de malos

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olores, provocando así que el sistema no funcione correctamente, además la ubicación del sistema no favorece a un óptimo funcionamiento del sistema, debido a que está expuesto a ciertas condiciones ambientales como: la radiación solar, las corrientes de aire, etc. Otro factor que no favoreció al sistema fue la presencia de nematodos en las raíces de las plantas originando su muerte, debido a que estas inhiben el desarrollo de los microorganismos evitando que cumplan su funcionamiento y disminuyendo la concentración de oxígeno.

-

CONCLUSIONES

- Se aplicó los Microorganismos Eficaces y los microorganismos que se

encuentran en las plantas para el tratamiento de aguas residuales domésticas.

- Se verificó que el EM y las plantas son efectivos para el tratamiento de agua

residual domesticas ya que hubo una disminución de la concentración de

coliformes en la muestra.

- El agua tratada no es apta para el riego de plantas, ya que el tiempo de

funcionamiento del sistema fue demasiado corto y también los resultados

obtenidos sobrepasan los LMPs.

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RECOMENDACIONES

- Ubicar el sistema en un ambiente aislado para evitar los malos olores y la

contaminación por la propagación de vectores.

- Tener un sistema de aireación continua.

- Sacar los nematodos de las raíces de las plantas para así evitar que estas

disminuyan el oxígeno del agua residual e inhibir el funcionamiento de los

microorganismos ocasionando la muerte de las plantas.

- Usar los equipos de bioseguridad en el trabajo de campo y en el laboratorio para

evitar contaminarnos con los agentes patógenos. Si en caso no se usó los equipos

de bioseguridad se debe de desinfectar con alcohol yodado.

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BIBLIOGRAFÍA

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Sebiot. 2004. Biotecnología y Medio Ambiente. Formato PDF. (En

Línea). Consultado 11/10/2014. Disponible en: www.genes.org

Scribd; López, R. 2011. Biorremediación. Formato Doc. (En Línea).

Consultado 11/10/2014. Disponible en: http://es.scribd.com

Biotecnología. S/F. Organismos que limpian el ambiente. Formato PDF.

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http://www.porquebiotecnologia.com

Brook, T. D., & Madigan, M. T. (1993). Microbiología . México:

Pkentice Hall Hispanoamericana S.A.

Pelczar, M., Reid, R., & Chan, E. (1981). Microbiología. España: Mc

Graw Hill.

Stanier, R., Ingraham, J., Wheelis, H., & Painter, P. (1996).

Microbiología. Barcelona: Reverté S.A.

http://www.genes.org/

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Linkografía

o https://agua.org.mx/h2o/images/stories/BibliotecaG/docs/tecnologias_y_man ejo_del_agua/tratamiento%20de%20aguas%20residuales%20en%20la.pdf

ANEXOSMEDIOS DE CULTIVO

A) Base para detectar Coliformes:1 litro de agua purificada, mezcle bien, dispénselo en tubo que contenga viales de fermentación invertidos. Autoclave a 121°C durante 15min. Enfría el caldo tan pronto como sea posible. Analice muestras para verificar su funcionamiento usando cultivos de control típico y estable.Composición:

Triptosa peptona 20gr Lactosa 5gr Fosfato di potásico 2,75gr Fosfato mono potasico 2,75gr Lauril fosfato de sodio 0,1gr pH final (6,8 ± 0,2) Higroscópico

Anexo N° 01: Lauril Triptosa.

https://agua.org.mx/h2o/images/stories/BibliotecaG/docs/tecnologias_y_man%20%20ejo_del_agua/tratamiento%20de%20aguas%20residuales%20en%20la.pdf



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NÍQUEL: (método 49) 5ML de muestra 5ML de agua destilada 2 gotas de Ni-1 y mezclar por un minuto 2 gotas de Ni-2 y mezclar 2 gotas de Ni-3 y mezclar por 5min.

FOSFORO (método 71) Y FOSFATO (método 73) 5ML de muestra 5ML de agua destilada 5 gotas del reactivo P1-A Una cucharadita del reactivo P2-A y mezclarlo por 5 min.

HIERRO (método 32) 5ML de muestra 5ML de agua destilada. 3 gotas de hierro Fe-1. Mezclar por 3 min.

COBRE (método 41) 5ML de muestra. 5ML de agua destilada 1 cucharadita de Cu-1ª. 3 gotas de Cu-2ª. Y mezclar por 5min

Anexo N° 01: Lauril Triptosa.

Anexo N° 04: Almacenando la muestra biológica, Berros, por 15 días.

Anexo N° 02: kits, usados para la detección de metales y aniones.

Anexo N° 03: Muestra biológica, Berros (Nasturtium officinale).

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Anexo N° 10: tubos de ensayo con el caldo lauril + ARD.

Anexo N° 11: siembra por diluciones, de las 4 muestras finales.

Anexo N° 05: pesando el Lauril triptosa Anexo N° 06: Vertiendo 4,81 gr del lauril

triptosa al matraz Erlenmeyer

Anexo N° 08: realizando las diluciones cerca al mechero.

Anexo N° 07: mezclando uniformemente el lauril triptosa.

21


Anexo N° 14: llevando a incubar las 4

muestras sembradas

Anexo N° 13: las cuatro muestras, producto de la biorremediación.

Anexo N° 18: resultado del

test PO4 + ARD

Anexo N° 17: resultado del test Ni + ARD

Anexo N° 19: Equipo espectrofotométrico, utilizado para medir la concentración de metales. .

22


Anexo N° 23: tubería de desagüe del barrio san Jose

de Auqui

Anexo N° 22: sistema utilizado en el proyecto de investigación

Anexo N° 21: vaciando el ARD al balde del sistema

Anexo N° 21: Muestra de Agua Residual domiciliaria

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24


ANEXO 27. TABLA DE CRITERIOS DE CALIDAD ADMISIBLES PARA AGUAS DE USO AGRÍCOLA

PARÁMETROSEXPRESADO

COMOUNIDAD

LÍMITE MÁXIMO PERMISIBLE

Aluminio Al mg/l 5,0

Arsénico (total) As mg/l 0,1

Bario Ba mg/l 1,0

Berilio Be mg/l 0,1

Boro (total) B mg/l 1,0

Cadmio Cd mg/l 0,01

Carbamatos totales

Concentración total de

carbamatos

mg/l 0,1

Cianuro (total) CN- mg/l 0,2

Cobalto Co mg/l 0,05

Cobre Cu mg/l 2,0

Cromo hexavalente

Cr+6 mg/l 0,1

Fluor F mg/l 1,0

Hierro Fe mg/l 5,0

Litio Li mg/l 2,5

Materia flotante VISIBLE AUSENCIA

Manganeso Mn mg/l 0,2

Molibdeno Mo mg/l 0,01

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COMOUNIDAD


Mercurio (total) Hg mg/l 0,001

Níquel Ni mg/l 0,2

Organofosforados (totales)

Concentración de

organofosforados totales.

mg/l 0,1

Organoclorados (totales)

Concentración de

organoclorados totales.

mg/l 0,2

Plata Ag mg/l 0,05

Potencial de hidrógeno

pH 6-9

Plomo Pb mg/l 0,05

Selenio Se mg/l 0,02


COMOUNIDAD


Sólidos disueltos totales

mg/l 3 000,0

Transparencia de las aguas medidas con el disco secchi.

mínimo 2,0 m

Vanadio V mg/l 0,1

Aceites y grasa Sustancias solubles en

hexano

mg/l 0,3

Coniformes Totales

nmp/100 ml 1 000

Huevos de parásitos

Huevos por litro

CERO

Zinc Zn mg/l 2,0

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Fuente: Norma de Calidad Ambiental y de Descarga de Efluentes: recurso agua

bioremediación microbianas en aguas residuales domesticas

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