anÁlisis de riesgo de plagas (arp) para la...
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ANÁLISIS DE RIESGO DE PLAGAS (ARP) PARA LA IMPORTACIÓN DE MATERIAL PROPAGATIVO (TROZOS Y/O VÁSTAGOS) DE CAÑA DE AZÚCAR (SACCHARUM OFFICINARUM) ORIGINARIOS Y PROCEDENTES DE LA REPÚBLICA DE COSTA
RICA, PARA EVALUACIÓN EN CAMPO.
Sistema Nacional de Vigilancia Epidemiológica Fitosanitaria
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Etapa I. Identificación de plagas cuarentenarias potenciales. A. Metodología.
Inicialmente se integro una lista lo más completa posible mediante la búsqueda en diferentes fuentes informativas que refieren directa ò indirectamente a la República de Costa Rica, de donde se pretenden importar los Trozos (Vastagos) de Caña de Azúcar. La lista inicial (Cuadro 1) se integro por 124 organismos considerados como plagas, enfermedades y malezas asociadas a la especie a importar, Saccharum officinarum.
Se ordenaron las diferentes plagas de acuerdo al tipo de organismo (insectos, ácaros, hongos, nematodos, bacterias, virus, malezas, etc.), reportadas en distintas fuentes informativas para el cultivo y lugar de origen referido.
Posteriormente se revisó cada una de las plagas para ubicar la familia a la que pertenecen, así como para determinar su presencia y/o ausencia en México, así como su situación reglamentaria en el país, lo anterior para establecer su estatus cuarentenario en apego a los lineamientos nacionales e internacionales para la elaboración del ARP.
Para identificar su presencia y/o ausencia tanto en la República de Costa Rica, así como en México, se utilizaron las siguientes Bases de Datos:
Etapa Il. Bases de Datos.
CABI. 2007. Crop Protection Compendium. Global Module. CAB International. United Kingdom.
Data Base European and Mediterranean Quarantines Pest Data Sheet. UK (PQR)
Global Plant Quarantine Information System. Versión 2.1. Food and Agriculture Organization of the United Nations (FAO).
Evaluación del Riesgo de Plagas
El proceso para la evaluación del riesgo de plagas puede dividirse en tres pasos relacionados entre sí:
- categorización de las plagas
- evaluación de las probabilidades de introducción y dispersión
- evaluación de las consecuencias económicas potenciales (incluidas los impactos ambientales).
Con las fuentes de información anteriormente referidas se requisito la matriz de análisis de datos “Cuadro 1” para identificar y determinar las posibles plagas potenciales de importancia cuarentenaria, de acuerdo a los criterios geográficos y regulatorios.
Posteriormente se analizó el “Cuadro 2” si alguna de estas plagas está asociada al producto a importar “Trozos (Vástagos) de Caña de Azúcar” para siembra experimental (Evaluación) y su importancia económica.
Analisis de cuadro 1 y 2 Primero: Derivado del análisis de la matriz de datos (Cuadro 1), para identificar y determinar las posibles plagas potenciales de importancia cuarentenaria para México asociadas a la especie Saccharum officinarum originarias de la República de Costa Rica, de acuerdo a los criterios geográficos y regulatorios, se hacen las siguientes consideraciones:
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De los 124 organismos considerados en el cuadro 1, se han determinado 19 asociadas a la especie Saccharum officinarum para siembra experimental (Evaluación), no presentes en México o si presentes se encuentran bajo alguna regulación oficial.
De los 19 organismos antes referidos se documento su posible asociación al producto a importar “Trozos (Vastagos)”, así como su impacto económico a fin de cumplir con la definición de plaga cuarentenaria, identificando 4 potenciales plagas de importancia cuarentenaria, para las cuales se elaboró una ficha técnica para cada plaga. De estos 4 organismos, es un insecto: Metamasius hemipterus serceus, un hongo: Ligniera vascularum y 2 bacterias: Erwina chrysanthemi y Erwinia chrsanhemi pv. zeae, los que se enumeran a continuación
Insecto:
1. Metamasius hemipterus sericeus
Hongo:
1. Ligniera vascularum
Bacterias:
1. Erwinia chrysanthemi 2. Erwinia chrysanthemi pv. Zeae
Cuadro 1. Plagas asociadas al cultivo de Caña de Azúcar (Saccharum officinarum) presentes en Costa Rica y su situación fitosanitaria en México
No. Tipo de plaga
Identidad de la plaga Presencia o ausencia en el
origen-Costa Rica Presencia o ausencia en el área
de ARP- México
Nombre científico
Ubicación taxónomica Orden:Familia
CPC
EPPO
FAO
Otras fuentes
Inf. del país de origen
CPC
EPPO
FAO
Otras fuentes
SR PAM y/o
REG.
1 Bacteria Acidovorax avenae subsp. avenae, Pseudomonas rubrilineans
Burkholderiales: Comamonadaceae
P ND
ND
A-1 P ND
ND
7,8
2 Bacteria Erwinia carotovora subsp. Atroseptica
Enterobacteriales: Enterobacteriaceae
P ND
ND
P ND
ND
46, 49
3 Bacteria Erwinia chrysanthemi
Enterobacteriales: Enterobacteriaceae
P ND
A A ND
A 7,8,11 NOM-07, NOM-12
4 Bacteria Erwinia chrysanthemi pv. zeae
Enterobacteriales: Enterobacteriaceae
P ND
ND
A ND
ND
29 H.R
Sistema Nacional de Vigilancia Epidemiológica Fitosanitaria
4
Info
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No. Tipo de plaga
Identidad de la plaga Presencia o ausencia en el
origen-Costa Rica Presencia o ausencia en el área
de ARP- México
Nombre científico
Ubicación taxónomica Orden:Familia
CPC
EPPO
FAO
Otras fuentes
Inf. del país de origen
CPC
EPPO
FAO
Otras fuentes
SR PAM y/o
REG.
5 Bacteria Leifsonia xyli subsp. xyli
Actinomycetales: Microbacteriaceae
A ND
ND
A-1 P ND
ND
67,68
6 Bacteria Pantoea agglomerans
Enterobacteriales: Enterobacteriaceae
P ND
ND
P ND
ND
27, 28
7 Bacteria Xanthomonas albilineans
Xanthomonadales: Xanthomonadaceae
A ND
A A-1 P ND
P 3, 9, 10
8 Hongo Aspergillus niger Hongo anomorfico A ND
ND
A ND
ND
7,8,15
9 Hongo Bipolaris sacchari Hongo anomorfico P ND
ND
A-1 P ND
ND
8, 62, 66
10 Hongo Ceratocystis paradoxa
Microascales: Ceratocystiaceae
P ND
ND
A-1 P ND
ND
14, 63
11 Hongo Cercospora koepkei Pseudocercospora miscanthi
Hypocreales: Nectriaceae
A ND
ND
A-1 A ND
ND
12 Hongo Cercospora longipes Hypocreales: Nectriaceae
A ND
ND
A-1 A ND
ND
8
13 Hongo Chalara elegans Hongo anomorfico P ND
ND
A ND
ND
4, 14, 23
14 Hongo Cochliobolus sativus
Pleosporales: Pleosporaceae
P ND
ND
P ND
ND
7,8,14,16
15 Hongo Corticium rolfsii Polyporales: Corticiaceae
P ND
ND
P ND
ND
8,9,22 H.R.
16 Hongo Cochliobolus lunatus, (asexual Curvularia lunata)
Pleosporales: Pleosporaceae
A ND
ND
A-1 P ND
ND
7,8
17 Hongo Cytospora sacchari
Diaporthales: Valsaceae ND
ND
ND
A-1 ND
ND
ND
8, 77
18 Hongo Dimeriella sacchari
Dothideomycetidae: Paradiopsidaceae
A ND
ND
A-1 A ND
ND
19 Hongo Drechslera sacchari, Bipolaris sacchari
Pleosporales: Pleosporaceae
P ND
ND
A-1 P ND
ND
8, 62, 66
20 Hongo Fusarium monilforme
Ascomycetes: Hypocreales
P ND
A A-1 P ND
A 8, 70
21 Hongo Gibberella fujikuroi, Fusarium moniliforme
Hypocreales: Nectriaceae P ND
A P ND
A 7,8,9,14,18
H.R
22 Hongo Gloeocercospora sorghi
Ascomycetes: Glomerellaceae
A ND
ND
A-1 P ND
ND
7, 8, 62
23 Hongo Glomerella tucumanensis, Physalospora tucumanensis
Ascomycetes: Glomerellaceae
P ND
ND
A-1 A ND
ND
8, 14
24 Hongo Lasiodiplodia theobromae
Hongo anomorfico P ND
ND
P ND
ND
8,12, 34
25 Hongo Leptosphaeria sacchari Phyllosticta sorghina
Ascomycetes: Magnaporthaceae
A ND
ND
A-1 A ND
ND
8, 14
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No. Tipo de plaga
Identidad de la plaga Presencia o ausencia en el
origen-Costa Rica Presencia o ausencia en el área
de ARP- México
Nombre científico
Ubicación taxónomica Orden:Familia
CPC
EPPO
FAO
Otras fuentes
Inf. del país de origen
CPC
EPPO
FAO
Otras fuentes
SR PAM y/o
REG.
26 Hongo Ligniera vasculorum Plasmodiophora vasculorum
Plasmidiophorales: Plasmodiohoraceae
A A A A-1 A A A
27 Hongo Macrophoma sacchari
Acarosporaceae: Lecanorales
ND
ND
ND
A-1 ND
ND
ND
28 Hongo Marasmius sacchari
Agaricales: Marasmiaceae
A ND
ND
A-1 A ND
ND
8, 71
29 Hongo Nigrospora sacchari
Hongo anomorfico A ND
ND
A-1 A ND
ND
30 Hongo Phyllosticta sacchari Leptosphaeria sacchari
Pleosporales: Leptosphaeriaceae
A ND
ND
A-1 A ND
ND
8, 14
31 Hongo Puccinia melanocephala
Uredinales: Pucciniaceae P P A A-1 P P P 61, 69
32 Hongo Puccinia kuehnii Uredinales: Pucciniaceae A ND
A A-1 A ND
A
33 Hongo Pythium debaryanum
Oomycetes: Saprolegniales
P ND
ND
P ND
ND
7, 14
34 Hongo Rhizoctonia solani
Ceratobasidiales: Ceratobasidiaceae
P ND
ND
A-1 P ND
ND
14,42
35 Hongo Sclerotium rolfsii Poliporales: Corticiaceae P ND
ND
A-1 P ND
ND
4, 42 H. R
36 Hongo Sclerotinia sclerotiorum
Helotiales: Sclerotiniaceae
P ND
ND
P ND
ND
7, 9, 10, 14
37 Hongo Ustilago scitaminea
Ustilaginales:Ustilaginaceae
P ND
P A-1 P ND
P 7, 8, 14
38 Insecto Acromyrmex octospinosus
Hymenoptera: Formicidae P ND
ND
A ND
ND
83, 84
39 Insecto Aphis gossypii Hemiptera: Aphididae P ND
ND
P ND
ND
1,2,3
40 Insecto Aphis spiraecola Hemiptera: Aphididae P ND
ND
P ND
ND
1,2,6
41 Insecto Araecerus fasciculatus
Coleoptera: Anthribidae P ND
ND
P ND
ND
1,2,3
42 Insecto Aspidiotus destructor
Hemiptera: Diaspididae P ND
ND
P ND
ND
72, 73
43 Insecto Atta cephalotes Hymenoptera: Formicidae P ND
ND
P ND
ND
87, 88
44 Insecto Diatraea lineolata Lepidoptera: Crambidae P ND
ND
P ND
ND
80, 81
45 Insecto Diatraea saccharalis
Lepidoptera: Crambidae P A A P P P 1,2,3,24
46 Insecto Dysmicoccus brevipes
Hemiptera: Pseudococcidae
P ND
ND
P ND
ND
1, 20, 21
47 Insecto Elasmopalpus lignosellus
Lepidoptera: Pyralidae P ND
ND
P ND
ND
1, 2, 3, 39
48 Insecto Ferrisia virgata Hemiptera: Pseudococcidae
P ND
ND
P ND
ND
1,3
Sistema Nacional de Vigilancia Epidemiológica Fitosanitaria
6
Info
rme 2
00
9
No. Tipo de plaga
Identidad de la plaga Presencia o ausencia en el
origen-Costa Rica Presencia o ausencia en el área
de ARP- México
Nombre científico
Ubicación taxónomica Orden:Familia
CPC
EPPO
FAO
Otras fuentes
Inf. del país de origen
CPC
EPPO
FAO
Otras fuentes
SR PAM y/o
REG.
49 Insecto Hyperomyzus lactucae
Hemiptera: Aphididae P ND
ND
P ND
ND
85, 86
50 Insecto Metamasius hemipterus sericeu
Coleoptera: Curculionidae
P P ND
P P ND
36
51 Insecto Mocis latipes Lepidoptera: Noctuidae P ND
ND
P ND
ND
89, 90
52 Insecto Mythimna unipuncta
Lepidoptera: Noctuidae P ND
ND
P ND
ND
1, 6, 16
53 Insecto Myzus persicae Hemiptera: Aphididae P ND
ND
P ND
ND
2, 3, 49
54 Insecto Orthezia insignis Hemiptera: Ortheziidae P ND
ND
P ND
ND
55 Insecto Peregrinus maidis
Hemiptera: Delphacidae P ND
ND
P ND
ND
1, 60
56 Insecto Phyllophaga spp. Coleoptera: Scarabaeidae
P ND
ND
P ND
ND
1,2,24
57 Insecto Planococcus citri Hemiptera: Pseudococcidae
P ND
ND
P ND
ND
6, 47 NOM-009
58 Insecto Podischnus agenor
Coleoptera: Scarabaeidae
P ND
ND
A ND
ND
54, 55
59 Insecto Rhynchophorus palmarum
Coleoptera: Curculionidae
P P P P P P 1, 3, 6
60 Insecto Saccharicoccus sacchari
Hemiptera: Pseudococcidae
P ND
ND
P ND
ND
1, 3
61 Insecto Selenaspidus articulatus
Hemiptera: Diaspididae P ND
ND
P ND
ND
1, 3
62 Insecto Spodoptera frugiperda
Lepidoptera: Noctuidae P P ND
P P ND
1, 2, 3
63 Insecto Xyleborus volvulus
Coleoptera: Scolytidae P ND
ND
P ND
ND
91, 92
64 Maleza Acanthospermum hispidum
Asterales: Asteraceae P ND
ND
A ND
ND
NOM-43
65 Maleza Ageratum conyzoides
Asterales: Asteraceae P ND
ND
P ND
ND
5, 75
66 Maleza Bidens pilosa Asterales: Asteraceae P ND
ND
P ND
ND
5, 24
67 Maleza Borreria latifolia Gentianales: Rubiaceae P P P P P P 5, 33, 44
68 Maleza Cenchrus echinatus
Cyperales: Poaceae P ND
ND
P ND
ND
5, 32, 33
69 Maleza Chromolaena odorata
Asterales: Asteraceae P ND
ND
P ND
ND
5, 79
70 Maleza Commelina diffusa
Commelinales: Commelinaceae
P ND
ND
P ND
ND
5, 30
71 Maleza Conyza canadensis
Asterales: Asteraceae P ND
ND
P ND
ND
5, 30
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No. Tipo de plaga
Identidad de la plaga Presencia o ausencia en el
origen-Costa Rica Presencia o ausencia en el área
de ARP- México
Nombre científico
Ubicación taxónomica Orden:Familia
CPC
EPPO
FAO
Otras fuentes
Inf. del país de origen
CPC
EPPO
FAO
Otras fuentes
SR PAM y/o
REG.
72 Maleza Cynodon dactylon
Cyperales: Poaceae P ND
ND
P ND
ND
5, 24
73 Maleza Cyperus compressus
Cyperales: Cyperaceae P ND
ND
A ND
ND
5, 78
74 Maleza Cyperus rotundus Cyperales: Cyperaceae P ND
ND
P ND
ND
5, 15
75 Maleza Dactyloctenium aegyptium
Cyperales: Poaceae P ND
ND
A ND
ND
5, 76
76 Maleza Datura stramonium
Solanales: Solanaceae P ND
ND
P ND
ND
5, 79
77 Maleza Echinochloa colona
Cyperales: Poaceae P ND
ND
P ND
ND
5, 24
78 Maleza Echinochloa crus-galli
Cyperales: Poaceae P ND
ND
P ND
ND
5,16
79 Maleza Eleusine indica Cyperales: Poaceae P ND
ND
P ND
ND
5, 15
80 Maleza Emilia sonchifolia Asterales: Asteraceae P ND
ND
P ND
ND
5, 79
81 Maleza Euphorbia heterophylla
Euphorbiales: Euphorbiaceae
P ND
ND
P ND
ND
5, 43
82 Maleza Heliotropium indicum
Boraginales: Boraginaceae
P ND
ND
P ND
ND
5. 30
83 Maleza Ipomoea triloba Solanales: Convolvulaceae
P P ND
P À ND
5, 33, 37
84 Maleza Kyllinga brevifolia, Cyperus brevifolius
Monocotyledonae: Cyperaceae
P ND
ND
A ND
ND
5, 48
85 Maleza Lantana camara Lamiales: Verbenaceae P ND
ND
A ND
ND
5, 17
86 Maleza Leersia hexandra Cyperales: Poaceae P ND
ND
P ND
ND
5, 76
87 Maleza Mimosa diplotricha
Fabales: Fabaceae P ND
ND
P ND
ND
5, 50, 52
88 Maleza Mimosa pudica Fabales: Fabaceae P ND
ND
P ND
ND
5, 79
89 Maleza Momordica charantia
Violales: Cucurbitaceae P ND
ND
P ND
ND
5, 78
90 Maleza Oxalis corniculata Geraniales: Oxalidaceae P ND
ND
A ND
ND
5, 79
91 Maleza Panicum maximum
Cyperales: Poaceae P ND
ND
P ND
ND
5, 33, 43
92 Maleza Parthenium hysterophorus
Asterales: Asteraceae P ND
A P ND
P 5, 78
93 Maleza Passiflora foetida Violales: Passifloraceae P ND
ND
P ND
ND
5, 45, 78
94 Maleza Pennisetum clandestinum
Cyperales: Poaceae P P P A A A 5, 79
Sistema Nacional de Vigilancia Epidemiológica Fitosanitaria
8
Info
rme 2
00
9
No. Tipo de plaga
Identidad de la plaga Presencia o ausencia en el
origen-Costa Rica Presencia o ausencia en el área
de ARP- México
Nombre científico
Ubicación taxónomica Orden:Familia
CPC
EPPO
FAO
Otras fuentes
Inf. del país de origen
CPC
EPPO
FAO
Otras fuentes
SR PAM y/o
REG.
95 Maleza Poa annua Cyperales: Poaceae P ND
ND
P ND
ND
5, 79
96 Maleza Portulaca oleracea
Caryophyllales: Portulacaceae
P ND
ND
P ND
ND
5, 78
97 Maleza Rottboellia cochinchinensis
Cyperales: Poaceae P ND
ND
A ND
ND
NOM-43
98 Maleza Rumex crispus Polygonales: Polygonaceae
P ND
ND
P ND
ND
5, 79
99 Maleza Setaria parviflora Cyperales: Poaceae P ND
ND
P ND
ND
5, 79
100 Maleza Setaria pumila, S. glauca, S. lutescens
Cyperales: Poaceae P ND
ND
P ND
ND
5, 76
101 Maleza Solanum nigrum Solanales: Solanaceae P ND
ND
P ND
ND
5, 33, 53
102 Maleza Trianthema portulacastrum
Caryophyllales: Aizoaceae
P ND
ND
P ND
ND
5, 33, 79
103 Maleza Tribulus terrestris Geraniales: Zygophyllaceae
P ND
ND
P ND
ND
5, 79
104 Maleza Tridax procumbens
Asterales: Asteraceae P ND
P P ND
P 5, 79
105 Maleza Urochloa plantaginea
Cyperales: Poaceae P ND
ND
P ND
ND
5, 19
106 Nematodo Belonolaimus longicaudatus
Belonolaimidae P ND
ND
P ND
ND
8, 57
107 Nematodo Criconemella sp. Criconematidae P ND
ND
P ND
ND
8, 57
108 Nematodo Helicotylenchus dihystera
Hoplolaimidae P ND
ND
P ND
ND
8,13
109 Nematodo Helicotylenchus multicinctus
Hoplolaimidae P ND
ND
P ND
ND
13, 51
110 Nematodo Hemicriconemoides mangferae
Criconematidae P ND
ND
P ND
ND
111 Nematodo Hirschmanniella oryzae
Pratylenchidae P P A A A A 8 NOM-013
112 Nematodo Longidorus sp. Longidoridae P ND
ND
P ND
ND
25, 26
113 Nematodo Meloidogyne arenaria
Meloidogynidae P ND
ND
P ND
ND
13, 56, 57
H.R.
114 Nematodo Meloidogyne exigua
Meloidogynidae P P P A A A 58 NOM-012
115 Nematodo Meloidogyne javanica
Meloidogynidae P ND
ND
P ND
ND
13, 35 NOM-012
116 Nematodo Pratylenchus brachyurus
Pratylenchidae P ND
ND
P ND
ND
13, 38
Producto 3
9
No
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rodu
cto
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is d
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n A
gro
eco
lógic
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No. Tipo de plaga
Identidad de la plaga Presencia o ausencia en el
origen-Costa Rica Presencia o ausencia en el área
de ARP- México
Nombre científico
Ubicación taxónomica Orden:Familia
CPC
EPPO
FAO
Otras fuentes
Inf. del país de origen
CPC
EPPO
FAO
Otras fuentes
SR PAM y/o
REG.
117 Nematodo Pratylenchus zeae
Pratylenchidae P ND
ND
A ND
ND
118 Nematodo Pratylenchus penetrans
Pratylenchidae P P ND
P P ND
13, 24 H.R.
119 Nematodo Radopholus similis
Pratylenchidae P P P P P A 8, 52, 53
H.R.
120 Nematodo Scutellonema brachyurus
Hoplolaimidae P ND
ND
A ND
ND
13 H.R.
121 Nematodo Trichodorus sp Trichodoridae P ND
ND
A ND
ND
41, 59 H.R
122 Nematodo Tylenchorhynchus annulatus
Dolichodoridae P ND
ND
A ND
ND
123 Virus Maize stripe virus Tenuivirus P P A A A A 64, 65
124 Virus Sugarcane Mosaic Virus
Potyviridae P ND
A P ND
A 60, 82
P= Presente A=Ausente ND= No Disponible SR= Situación Reglamentaria PAM o REG= Plaga Ausente de México o Regulada P DR= Presente con distribución restringida CPC= CABI. 2007. Crop Protection Compendium. CAB International (CABI). Wallingford, United Kingdom. FAO= FAO. 1994. Global Plant Quarantine Information System. Versión 2.1. Food and Agriculture Organization of the United Nations (FAO). EPPO= EPPO. 2007. Plant Quarantine information Retrieval System (PQR). Ver 4.6. European and Mediterranean Plant Protection Organization (EPPO). A-1. Ministerio de Agricultura y Ganadería de Costa Rica. 2008. LISTA DE ENFERMEDADES DE LOS CULTIVOS AGRÍCOLAS DE COSTA RICA. http://www.protecnet.go.cr/laboratorios/LISTA%20ENFERMEDADES%20ACTUALIZADA.htm
Literatura consultada en el Cuadro 1
1. García Martell C. 1981. Lista de Insectos y Ácaros Perjudiciales a los Cultivos en México. FITOFILO. Núm. 86. Secretaría de Agricultura y Recursos Hidráulicos. Dirección General de Sanidad Vegetal. México, D.F. 196 p.
2. Deloya L., J. C. y Valenzuela G. J. E. 1999. Catálogo de Insectos y Ácaros Plaga de los Cultivos Agrícolas de México. Sociedad Mexicana de Entomología, A. C. México.
3. MacGregor R. y Gutiérrez O. 1983. Guía de Insectos nocivos para la Agricultura en México. Ed. Alhambra Mexicana, S. A. Instituto de Biología. UNAM. México.
Sistema Nacional de Vigilancia Epidemiológica Fitosanitaria
10
Info
rme 2
00
9
4. Romero C., S. 1996. Plagas y enfermedades de ornamentales. Universidad Autónoma de Chapingo. Departamento de Parasitología Agrícola. Chapingo, Texcoco, Edo. Méx.
5. Villaseñor R., J. L. y Espinosa G., F. J. 1998. Catálogo de malezas de México. UNAM. CONACOFI. FCE. 449 pp.
6. Pacheco M., F. 1994. Plagas de los cultivos oleaginosos en México. SARH-INIFAP. Cd. Obregón, Sonora, México. 600 pp.
7. Hernández P., D.1998. Enfermedades de Maíz (Zea mays L.), Trigo (Triticum aestivum L.) y Cebada (Hordeum vulgare L.) presentes en México. Tesis de Licenciatura. Parasitología Agrícola. Chapingo, Edo. Méx. México.
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Norma Oficial Mexicana NOM-007-FITO-1995, Por la que se establecen los requisitos fitosanitarios y especificaciones para la importación de material vegetal propagativo.
Norma Oficial Mexicana NOM-008-FITO-1995, por la que se establecen los requisitos y especificaciones fitosanitarios para la importación de frutas y hortalizas frescas.
Norma Oficial Mexicana NOM-009-FITO-1995, Por la que se establecen los requisitos y especificaciones fitosanitarios para la importación de flor cortada y follaje fresco.
Norma Oficial Mexicana NOM-011-FITO-1995, Por la que se establece la cuarentena exterior para prevenir la introducción de plagas de los cítricos.
Norma Oficial Mexicana NOM-012-FITO-1996, por la que se establece la cuarentena exterior para prevenir la introducción de plagas de la papa.
Norma Oficial Mexicana NOM-014-FITO-1995, Por la que se establece la cuarentena exterior para prevenir la introducción de plagas del algodonero.
Norma Oficial Mexicana NOM-018-FITO-1995, Por la que se establece la cuarentena exterior para
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prevenir la introducción de plagas del maíz.
Norma Oficial Mexicana NOM-019-FITO-1995, Por la que se establece la cuarentena exterior para prevenir la introducción de plagas del café.
Norma Oficial Mexicana NOM-029-FITO-1995, Por la que se establece los requisitos fitosanitarios y especificaciones para la importación de semillas para siembra.
Norma Oficial Mexicana NOM-043-FITO-1999, Especificaciones para prevenir la introducción de malezas cuarentenarias a México.
Cuadro 2. Listado de plagas asociadas al cultivo de Caña de Azucar proveniente de Costa Rica, ausentes y/o reguladas en México, así como su daño económico.
No.
Plaga Asociación
con Vastagos
Sustento Hospederos asociados presentes en el área de
ARP
Daño Económico
1 Acanthospermum hispidum
No
Es una hierba anual erecta de hasta 90 cm. de altura. Las semillas de esta maleza pueden contaminar los granos al momento de la cosecha. Los aquenios miden 6 mm de largo y están cubiertos con numerosas y cortas espinas (CABI, 2007).
2
Cercospora koepkei Pseudocercospora miscanthi
No
El hongo se observó sobre hojas de Saccharum sp, variedades Diversa Agripaca 2, CP5659, PR980, PR62258 y V64-10 donde ocasiona manchas anfígenas, irregulares, de 1 a 5 mm, dispersas o coalescentes hasta formar lesiones alargadas de 1-1,5 cm x 1-3 mm, amarillentas, algunas veces con tono rojizo (Pons y Ordosgoitti, 1983).
3 Cercospora longipes
No
Se presentan como manchas alargadas de color pajizo a rojo pardo, aparecen principalmente desde el ápice hasta la mitad de la lámina foliar, donde se desarrollan los conidióforos de color marrón. En ocasiones pueden ocasionar la muerte prematura de la planta (Ramírez y Nass, 2005)
4 Erwinia chrysanthemi
Si
E. chrysanthemi puede afectar a cualquier órgano de la planta como: raíces, vástagos, hojas y órganos almacenados, dependiendo de la especie de la planta y de las condiciones ambientales. La bacteria afecta el tejido parenquimatoso y paquetes vasculares, induciendo una putrefacción suave y el marchitamiento de toda la planta y partes afectadas. (CABI, 2007).
Tomate (Lycopersicon esculentum), plátano (Musa spp.), tabaco (Nicotiana tabacum), arroz (Oryza sativa), petunia (Petunia hybrida), prímula (Primula spp.), hierba santa o manzanilla (Tanacetum parthenium). Otros hospedantes de forma secundaria o esporádica son: endivia o escarola (Cichorium endivia), achicoria (Cichorium intybus), papa (Solanum tuberosum) (CABI, 2007).
E. chrysanthemi causa pérdidas en crisantemos cultivados en invernadero, todas las plantas jóvenes pueden ser destruidas en las camas de propagación bajo condiciones ambientales favorables. Sin embargo, los daños en los crisantemos al aire libre suele estar restringida a un número limitado de tallos (CABI, 2007).
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No.
Plaga Asociación
con Vastagos
Sustento Hospederos asociados presentes en el área de
ARP
Daño Económico
5 Erwinia chrysanthemi pv. zeae
SI
Los tallos caídos y torcidos son una buena señal de que está presente la enfermedad. Uno a varios entrenudos se torna de color marrón oscuro, con textura suave y húmeda. Estos síntomas se pueden presentar sobre vastagos, yemas, brotes, tallos, etc. Tanto de manera interna como externa, síntomas visibles a ojo (CABI, 2007).
Los principales hospedantes son el maíz (Zea mays), sorgo (Sorghum bicolor), piña (Ananas comosus), aráceas, ciclamen, zanahoria (Daucus carota), camote (Ipomoea batatas), tomate (Lycopersicon esculentum), plátano (Musa spp.), arroz (Oryza sativa), orquídea alevilla (Phalaenopsis spp.),, caña de azúcar (Saccharum officinarum), ETC.
Es una de las cuatro principales enfermedades del tallo de maíz en la India y se ha observado en la naturaleza hasta con un 80 a 85% de incidencia (CABI, 2007).
6 Hemicriconemoides mangiferae
No
Se mueve internamente por las raíces y se alimenta del contenido celular, afectando principalmente el cortex (CABI, 2007).
7 Hirschmanniella oryzae
No Es un nematodo endoparásito migratorio de la raíz (CABI, 2007).
8 Dimeriella sacchari
No
La enfermedad aparece en forma de pequeñas lesiones de color rojizo con un borde amarillento, las que coalecen cuando hay condiciones ambientales adecuadas, dañando bastante área foliar. Las lesiones son de .5 a 2 mm de largo, son de forma elíptica, redondeadas o irregulares, se presentan principalmente en el primero y segundo tercio foliar (Jorge et. al. S/F).
9
Ligniera vasculorum Plasmodiophora vasculorum
Si
Esta enfermedad es dispersada por dos vías principalmente, la primera es por movilización de vastagos de caña, como material propagativo para el establecimiento de nuevas plantaciones (CABI, 2007)
Saccharum , Saccharum officinarum (sugarcane)
Desde 1920 en Puerto Rico, no se reportan pérdidas ocasionadas por ste patógeno. A la fecha no hay registro de daños causados por esta enfermedad
10 Macrophoma sacchari
No se encontró reporte alguno sobre esta plaga o sus daños, por lo que no se considera de importancia económica, no cumpliendo con ello la definición de plaga cuarentenaria
11 Meloidogyne exigua
No
Es un ecoparasito de las raíces. Sólo se reporta su dispersión a través de rizomas, tubérculos y Suelo. (CABI, 2007).
12
Metamasius hemipterus sericeus, Sphenophorus sericeus
Si
Estos cucurculionides se alimentan de frutos y tallos en descomposición principalmente, sin embargo también se les ha encontrado atacando tallos verdes, haciendo pequeñas galerías (Coto y Sauders, 2004)
Infesta principalmente plátano (Musa spp.), y los híbridos interespecíficos de caña de azúcar (Saccharum spp.). También varias palmas ornamentales (CABI, 2007)
En la Florida infesta del 8 al 32% de os tallos. Las pérdidas estimadas en caña de azúcar en la Florida han alcanzado los $ 402.40 dl/ha, o casi 6 millones de dólares en toda la
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No.
Plaga Asociación
con Vastagos
Sustento Hospederos asociados presentes en el área de
ARP
Daño Económico
industria (Weissling y Giblin, 1998).
13 Nigrospora sacchari
No
ES conocido como un hongo del follaje, principalmente en banano, pero se le considera predominantemente como hongos saprofíticos y endofíticos. Las especies más comunes incluyen (en orden de predominancia) Nigrospora sacchari (Surridge, et. al. 2003).
14 Orthezia insignis No
Las colonias se establecen principalmente en las hojas donde se alimentas de la savia mediante la extracción de savia (Zurhilma, 2003). O. insignis secreta una mielecilla que en ocasiones atrae hormigas.(CABI, 2007). Esta plaga no es considerada como una plaga de importancia cuarentenaria por el CABI.
15 Pratylenchus zea
No
Causan lesiones en la raíz y son endoparásitos migratorios, que producen necrosis en las raíces, reduciendo como consecuencia la altura de las plantas y el número de hijos. http://www.infoagro.com/herbaceos/cereales/arroz.htm
16 Puccinia kuehnii No
La roya anaranjada es una enfermedad que históricamente ha causado pocos daños, rara vez causa pérdidas económicas. La diseminación de este patógeno es básicamente por esporas en el viento (hasta 2000 Km.) o bien por lluvia, únicos mecanismos de dispersión. O bien se reporta su dispersión por movilización de hojas con esporas (CABI, 2007).
17 Rottboellia cochinchinensis
No
Se reporta que las semillas de esta maleza pueden contaminar principalmente grano pequeño, como es el arroz, donde se reportan pérdidas importantes por la competencia de esta maleza (CABI, 2007).
18 Scutellonema brachyurus
No Se desarrolla en la rizosfera de las plantas (CABI, 2007).
19 Tylenchorhynchus annulatus
No Es un ectoparásito de la raíz (CABI, 2007).
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Literatura citada en el Cuadro 2
CPC= CABI. 2007. Crop Protection Compendium. CAB International (CABI). Wallingford, United
Kingdom.Coto D. y Saunders J. 2004. Insectos Plagas de Cultivos Perenes con Énfasis en Frutales en
América Central. Centro Agronómico Tropical de Investigación y Enseñanza (CATIE)
Ninoska Pons y Alfonso Ordosgoitti. 1983. Mycovellosiella koepkei (Krüger) Deighton SOBRE CAÑA DE
AZUCAR (Saccharum sp) EN VENEZUELA. FONAIAP Centro Nacional de Investigaciones Agropecuarias
Ramírez P. E. Y Nass H. 2005. Presencia de Patógenos Fúngicos en el Cultivo de Caña de Azúcar de
Venezuela (2002-2004). Estación Local Yaritagua. INIA Yaracuyi, Yaracuy, Venezuela. Vol 23. No 1-2.
(2005).
Jorge I. Victoria., Maria L. Guzma´n y Juan C. Angel. S/F. Enfermedades de la Caña de Azúcar en
Colombia. Centro de Investigación de la Caña de Azucar en Colombia CICAÑA
Surridge A.K.J., A. Viljoen and F.C.Wehner. 2003.Fungi associated with banana foliage in South Africa.
Pretoria University. Sudáfrrica
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Ficha Técnica
Nombre científico: Erwinia chrysanthemi
(Burkholder et al. 1953) Dye 1969.
Sinónimos: Pectobacterium chrysanthemi
Erwinia carotovora subsp. chrysanthemi
Pectobacterium carotovorum var. chrysanthemi
Nombre común: Tizón Bacteriano del Crisantemo
Marchitamiento bacteriano del clavel,
Podredumbre blanda del clavel,
A. Clasificación Taxonómica
A.1. Ubicación Taxonómica
Dominio: Bacteria
Phylum: Proteobacteria
Clase: Gammaproteobacteria
Orden: Enterobacteriales
Familia: Enterobacteriaceae
Género: Erwinia
Especie: E. chrysanthemi
(CABI, 2007).
A.2. Características Morfológicas
E. chrysanthemi pv. chrysanthemi es una
bacteria Gram-negativa, anaeróbica facultativa,
forma de varilla y tamaño de 1.05-3.85 x 0.46-
1.06 µ. Es móvil, con un número variable de
flagelos peritricosos (CABI, 2007).
B. Rango de hospedantes
E. chrysanthemi pv. chrysanthemi es una de las
bacterias que más daño causan al follaje y flores
de plantas ornamentales, sus hospedantes son
de gran importancia económica; los principales
hospedantes son:
Crisantemo (Chrysanthemum coronarium, Ch.
frutescens, Ch. máximum, Ch. morifolium),
clavel (Dianthus caryophyllus), noche buena
(Euphorbia pulcherrima), begonia (Begonia
spp.), violeta africana (Saintpaulia ionantha),
dalia (Dahlia spp.) (Bautista et al, 2002); cebolla
(Allium cepa), Col (Brassica oleracea var.
capitata), chile (Capsicum annuum), taro o ñame
(Colocasia esculenta), Espuelas de caballero
(Consolida ambigua), cucurbitáceas, Lirio
leopardo (Dieffenbachia maculata), calankoe
(Kalanchoe blossfeldiana), lechuga (Lactuca
sativa), margarita (Leucanthemum vulgare),
tomate (Lycopersicon esculentum), plátano
(Musa spp.), tabaco (Nicotiana tabacum), arroz
(Oryza sativa), petunia (Petunia hybrida),
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prímula (Primula spp.), hierba santa o
manzanilla (Tanacetum parthenium). Otros
hospedantes de forma secundaria o esporádica
son: endivia o escarola (Cichorium endivia),
achicoria (Cichorium intybus), papa (Solanum
tuberosum) (CABI, 2007).
C. Distribución Geográfica
Este patógeno se encuentra distribuido en tres
continentes, donde su distribución es restringida
y vigilada. En Europa se reporta en: Austria,
Bélgica, Yugoslavia, Francia, Italia y Reino
Unido; en Asia: Bangladesh, China (Jilin) y
Japón (Honshu); en América se reporta en:
Canadá (Ontario), EUA (Connecticut, Florida,
Nueva York, Ohio y Pensilvania) y Brasil (CABI,
2007).
C.1. Distribución de hospederos en México
La distribución de hospederos en el territorio
nacional es amplia ya que se reportan muchos
de ellos en diversos estados a lo largo de todo el
territorio, dentro de los hospederos de mayor
importancia se reportan los siguientes en los
cuadros 1, 2 y 3.
Cuadro 1. Crisantemo (Chrysanthemum spp.):
con una superficie sembrada a nivel nacional de
2, 581. 75 has. y un valor de la producción de $
1, 359, 703. 27 (SIAP, 2008).
Estado
Superficie
sembrada
(ha)
Valor de
producción
($)
Participación
en Sup. Sem.
(%)
México 2, 308. 5 11, 412, 700 1, 265, 631. 85
Morelos 270. 5 447, 260 93, 686. 48
Cuadro 2. Melón (Cucumis melo): con una
superficie sembrada a nivel nacional de 24, 911.
68 has. y un valor de la producción de $ 1, 704,
397. 55 (SIAP, 2008).
Estado
Superficie
sembrada
(ha)
Valor de
producción
($)
Participación
en Sup. Sem.
(%)
Coahuila 4, 652 104, 507. 45 306, 030. 92
Guerrero 3,867 77, 218 129,666.3
Sonora 3,114 84,004.37 312,002.96
Cuadro 3. Nochebuena (Euphorbia
pulcherryma): con una superficie sembrada a
nivel nacional de 218. 52 has. y un valor de la
producción de $ 291, 279. 10 (SIAP, 2008).
Estado
Superficie
sembrada
(ha)
Valor de
producción
($)
Participación
en Sup. Sem.
(%)
Morelos 74. 6 4, 743, 500 83, 516. 40
Puebla 54. 7 1, 254, 700 52, 774. 50
Michoacán 48 2, 400, 000 43, 200
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D. Biología
Durante el desarrollo de la enfermedad son
esenciales las condiciones de alta temperatura y
humedad; generalmente se manifiesta debajo de
los 27 ºC y menos del 80% de humedad relativa.
Además, el patógeno es afectado por las
condiciones del hospedante, ya que el tejido
suculento es más fácilmente afectado; mientras
que las plantas menos suculentas son menos
susceptibles (Bautista et al, 2002).
Linares (2005) menciona que Erwinia
chrysanthemi es causante del tizón bacteriano y
que se presenta en condiciones de elevada
temperatura (de 27 a 32 ºC) y alta humedad
relativa. Se disemina de forma mecánica; por
medio de las manos y herramientas
principalmente.
E. Síntomas
El tizón bacteriano, causado por Erwinia
chrysanthemi, es una enfermedad relativamente
nueva (Romero, 1996). Los primeros síntomas
se caracterizan por la aparición de un color gris
en las hojas, al que le sigue el marchitamiento
durante los días de intensa iluminación. La
médula se vuelve gelatinosa y el tallo se aplasta
fácilmente o puede cuartearse. También
aparecen lesiones por hidrólisis del tejido
(Linares, 2005).
Bajo condiciones favorables, la pudrición avanza
hasta la base del tallo. Los tejidos internos son
completamente podridos y convertidos en una
masa gelatinosa. En algunos casos el tallo se
agrieta y a través de las grietas salen gotas de
un líquido café rojizo y pegajoso. La pudrición de
las raíces no es severa, aunque en algunos
casos, es extensa. El grado de daño que causa
el tizón depende de la variedad cultivada y de
las condiciones del medio ambiente.
En ornamentales frecuentemente se encuentran
plantas con una sola rama enferma, mientras las
otras permanecen aparentemente sanas y dan
flores de calidad satisfactoria. En otros casos, la
pudrición queda confinada a la parte superior del
tallo y de la base salen brotes nuevos que llegan
a producir flor. Cuando los esquejes son
infectados en su base se desarrolla una
pudrición de color café a negro. La médula, con
frecuencia es totalmente disuelta, en cuyo caso,
la base del tallo queda vacía. Los esquejes
infectados ocasionalmente enraízan, lo más
común es que se marchitan y mueren (Romero,
1996). El síntoma predominante es ocasionado
por la producción de enzimas pectinoliticas que
afectan gran cantidad de tejido en las plantas
(hojas, tallo y raíces) (Bautista et al, 2002).
F. Importancia económica
E. chrysanthemi causa pérdidas en crisantemos
cultivados en invernadero, todas las plantas
jóvenes pueden ser destruidas en las camas de
propagación bajo condiciones ambientales
favorables. Sin embargo, los daños en los
crisantemos al aire libre suele estar restringida a
un número limitado de tallos.
Aunque E. chrysanthemi ataca una amplia de la
identificación del agente patógeno, que puede
confundirse con otros del mismo género (Erwinia
spp.) (CABI, 2007). gama de plantas, la
importancia económica de este agente patógeno
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no está claro, esto es en parte, debido a la
incertidumbre
G. Control
Deben destruirse las plantas tan pronto como
aparezcan los síntomas (Linares, 2005).
Puesto que algunas plantas pueden estar
enfermas y no mostrar síntomas, existe la
posibilidad de diseminar la bacteria por medio
de material vegetativo. Entonces, para el control
lo más importante es el uso de esquejes sanos,
la esterilización del suelo, y si se van a obtener
esquejes o cosechar flores, los tallos deben
romperse y no cortar con navaja o tijeras. Y, si
para el enraizamiento de los esquejes se usa
enraizador, la suspensión que de éste se
prepare debe ser completada con un bactericida
efectivo, como estreptomicina. Por otro lado,
como el tizón bacteriano es muy sensible al
medio ambiente, mucho puede hacerse
regulando temperatura y humedad (Romero,
1996).
H. Literatura Consultada
CAB International, 2007. Crop Protection
Compendium. Wallingford, UK: CAB
International.
SIAP. 2008. Anuarios Estadístico de la
Producción Agrícola en México.
Secretaria de Agricultura, Ganadera,
Desarrollo Rural, Pesca y Alimentación.
Versión Electrónica.
Romero, S. C., 1996. Plagas y enfermedades de
ornamentales. UACH-SAGAR. pp. 244.
Sistema Nacional de Vigilancia Epidemiológica Fitosanitaria
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Ficha Técnica
Nombre científico: Erwinia chrysanthemi pv. zeae
(Sabet 1954) Victoria et al. 1975.
Sinónimos: Erwinia carotovora
Erwinia carotovora f.sp. zeae
Erwinia maydis
Pectobacterium chrysanthemi pv. zeae
Nombre común: Pudrición Bacteriana del Tallo,
Pudrición Acuosa del Tallo.
A. Clasificación Taxonómica
A.1. Ubicación Taxonómica
Dominio: Bacteria
Phylum: Proteobacteria
Clase: Gammaproteobacteria
Orden: Enterobacteriales
Familia: Enterobacteriaceae
Género: Erwinia
Especie: E. chrysanthemi
pv. Zeae
Fuente:
(Sabet 1954) Victoria et al. 1975 (CABI, 2007).
A.2. Características Morfológicas
Erwinia chrysanthemi pv. zeae (Sabet) Victoria
et al. (Sin. E. carotovora f. sp. zeae Sabet)
causa podredumbre bacteriana del tallo. La
bacteria es en forma de un pequeño bastón de
entre 0.6 a 0.9 x 1.0 a 1.7 micras, de ancho y
largo, respectivamente. Es gram negativo,
anaerobio facultativo, oxidasa negativo, catalasa
positivo, arginina e hidrolasa negativo; es móvil
ya que presenta flagelos peritricos y una
capsula. En agar las colonias son de color
blanco grisáceo, saliente, brillante y liso, con
márgenes enteros. Después de entre 3 y 6 días
de crecimiento en agar papa-glucosa (pH 6.5),
las colonias tienen una forma característica
prominente, con márgenes ondulados a
coracoides (es decir, tienen una apariencia de
huevo frito). Se han notificado numerosos
serovares, lo cual revela la heterogeneidad del
organismo. El tipo de huéspedes es muy amplio
e incluye tanto monocotiledóneas como
dicotiledóneas (White, 2004).
B. Rango de hospedantes
Los hospedantes de este patógeno se
encuentran ampliamente distribuidos en todo el
país. Los principales hospedantes son el maíz
(Zea mays), sorgo (Sorghum bicolor), pasto de
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Sudán (Sorghum sudanense); no obstante,
también puede afectar a la piñuela o lengua de
suegra (Aechmea fasciata), cebolleta (Allium
fistulosum), piña (Ananas comosus), aráceas,
ciclamen, zanahoria (Daucus carota), dracena
de hoja fina (Dracaena marginata), noche buena
(Euphorbia pulcherrima), sisca (Imperata
cylindrica), camote (Ipomoea batatas), tomate
(Lycopersicon esculentum), plátano (Musa spp.),
arroz (Oryza sativa), pasto de Guinea (Panicum
maximum), pasto bahía (Paspalum spp.), pasto
elefante (Pennisetum purpureum), petunia
(Petunia hybrida), orquídea alevilla
(Phalaenopsis spp.), árbol del amor o filodendro
(Philodendron spp.), caña de azúcar
(Saccharum officinarum), violeta africana
(Saintpaulia ionantha), papa (Solanum
tuberosum), pasto alto (Urochloa mutica) (CABI,
2007).
C. Distribución Geográfica
Su distribución es amplia, ya que se encuentra
en cinco continentes. En Europa: Francia,
Alemania, Grecia, Italia, Países Bajos, Portugal,
Rusia, España, Suiza y Reino Unido; en Asia:
China (Jiangsu y Taiwán), India, Irán, Japón
(Hokkaido), Corea del Sur, Corea del Norte,
Malasia y Filipinas; en África: Comoras, Egipto,
Mauricio, Reunión, Sudáfrica, Sudán y
Zimbabwe; en América: Brasil, Colombia, Costa
Rica, Cuba, EUA (Arkansas, California, Florida,
Georgia, Illinois, Nueva York, Carolina del Norte,
Pennsylvania, Dakota del Sur y Wisconsin),
Guyana, Honduras, Jamaica, Panamá y Puerto
Rico; y en Oceanía: Australia (Nueva Gales del
Sur), Islas Cook y Nueva Zelanda (CABI, 2007).
C.1. Distribución de hospederos en México
La distribución de hospederos en el territorio
nacional es amplia ya que se reportan en
diversos estados a lo largo de todo el territorio,
dentro de los hospederos de mayor importancia
se reportan los siguientes en los cuadros 1, 2 y
3.
Cuadro 1. Crisantemo (Chrysanthemum spp.):
con una superficie sembrada a nivel nacional de
2, 581. 75 has. y un valor de la producción de $
1, 359, 703. 27 (SIAP, 2008).
Estado
Superficie
sembrada
(ha)
Valor de
producción
($)
Participación
en Sup. Sem.
(%)
México 2, 308. 5 11, 412, 700 1, 265, 631. 85
Morelos 270. 5 447, 260 93, 686. 48
Cuadro 2. Melón (Cucumis melo): con una
superficie sembrada a nivel nacional de 24, 911.
68 has. y un valor de la producción de $ 1, 704,
397. 55 (SIAP, 2008).
Estado
Superficie
sembrada
(ha)
Valor de
producción
($)
Participación
en Sup. Sem.
(%)
Coahuila 4, 652 104, 507. 45 306, 030. 92
Guerrero 3,867 77, 218 129,666.3
Sonora 3,114 84,004.37 312,002.96
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Cuadro 3. Noche buena (Euphorbia
pulcherryma): con una superficie sembrada a
nivel nacional de 218. 52 has. y un valor de la
producción de $ 291, 279. 10 (SIAP, 2008).
Estado
Superficie
sembrada
(ha)
Valor de
producción
($)
Participación
en Sup. Sem.
(%)
Morelos 74. 6 4, 743, 500 83, 516. 40
Puebla 54. 7 1, 254, 700 52, 774. 50
Michoacán 48 2, 400, 000 43, 200
D. Biología
Este patógeno se encuentra en climas cálidos y
húmedos (CIMMYT, 2004). Se presenta en
forma aislada en aéreas con alta cantidad de
lluvia y en terrenos sujetos a inundación, es
favorecida por altas temperaturas de entre los
30 y 35 ºC y pobre circulación del aire (SARH,
1992).
La bacteria pasa el invierno solo en el tejido del
tallo por encima de la superficie del suelo. Los
estomas, hidatodos o heridas en las hojas o
tallos son los lugares lógicos de entrada. No se
ha informado que esta bacteria sea transportada
por las semillas. Las larvas del taladrador del
maíz (Chilo partellus (Fig. 1)) han sido
implicadas en la transmisión de la bacteria
(White, 2004).
Figura 1. Asociación de Ch. partellus con
E. ch. pv. zeae en maíz.
La permanencia de plantas enfermas en el
campo contribuye a la diseminación rápida de la
enfermedad, por insectos y el salpique de agua
por lluvia o riego (EMM, 2010). Esta se propaga
rápidamente en la planta hospedante y la
destruye (CIMMYT, 2004). La infección es
favorecida por días muy calurosos,
generalmente después de una lluvia o un riego
(EMM, 2010).
E. Síntomas
Los síntomas primarios aparecen generalmente
a mediados de la estación, cuando las plantas
se encaman de repente (White, 2004). Los
síntomas se presentan en los nudos cercanos a
la línea del suelo y son caracterizados por una
pudrición blanda de dichos tejidos (Fig. 2), los
cuales adquieren una coloración café, las
plantas atacadas pueden mostrar marchitez y
debilitamiento (Fig. 3); los haces vasculares
permanecen intactos (SARH, 1992).
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Figura 2. Pudrición en tallo.
Figura 3. Plantas marchitas.
Las plantas infectadas son de color oscuro,
tienen un aspecto acuoso en la base del tallo, se
acaman y mueren poco después de la floración,
la descomposición bacteriana produce un olor
característico desagradable (CIMMYT, 2004).
Los cogollos se vuelven amarillos (Fig. 4), los
cuales pueden ser fácilmente desprendidos del
tallo; el tejido de la base del cogollo es blando,
de color crema (EMM, 2010).
Figura 4. Cogollo amarillento.
En plantas adultas de maíz, la hoja adyacente a
la mazorca se presenta seca y erecta, el tallo
muestra síntomas de pudrición suave. Las
mazorcas de plantas infectadas presentan
pudrición acuosa del olote y los granos toman
color blanco perla, son acuosos y con mal olor
(EMM, 2010).
Durante periodos de rápido crecimiento
vegetativo aparece una podredumbre de la parte
superior de las plantas de maíz que son regadas
por aspersión con agua de rio, lago o estancada.
Las puntas de las hojas más altas se marchitan,
y aparece una pudrición blanda viscosa en la
base del verticilo. La pudrición se extiende
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rápidamente hacia abajo hasta que las plantas
colapsan.
Los síntomas pueden ser similares a los de la
podredumbre del tallo por Pythium (White,
2004).
F. Importancia económica
La podredumbre bacteriana del tallo ha sido
notificada en todo el mundo (White, 2004), es
causada por Erwinia chrysanthemi pv. Zeae
(Sabet, 1954) Victoria 1975, es un problema
difícil y la enfermedad más destructiva del maíz
en el exterior de Shivaliks al noroeste de los
Himalayas; en el sur de muchos países de Asia
Oriental la enfermedad causa importantes
pérdidas de producción (Kalia, (consulta) 2010).
Es una de las cuatro principales enfermedades
del tallo de maíz en la India y se ha observado
en la naturaleza hasta con un 80 a 85% de
incidencia (thind y Payak, 1985; CABI, 2007).
En los países tropicales y subtropicales, es una
enfermedad grave de maíz, particularmente en
condiciones de alta temperatura y humedad
(Reifschneider y Lopes, 1982; Saxena y Lal,
1984; Sah, 1991; CABI, 2007). En las regiones
templadas, como los EUA, la enfermedad es
sólo problema cuando el riego es por aspersión
(Kelman et al., 1957; Hartman y Kelman, 1973;
Otta y Wood, 1977; Lopes et al., 1986; CABI,
2007).
Durante el verano de 1985, en Puerto Rico se
observó de la parte superior del tallo y hojas de
sorgo una pudrición blanda con mal olor; el
probable agente causal fue E. chrysanthemi pv.
zeae (Hepperly y Ramos-Dávila, 1987; CABI,
2007).
G. Control
G.1. Cultural
Se recomienda arar en otoño, para incorporar al
suelo los residuos (White, 2004).
Evitar la acumulación excesiva de agua en el
terreno (Almodóvar, 2008).
Prevención de las altas tasas de fertilizantes
nitrogenados e incrementar las dosis de fósforo
y potasio, ya que esto disminuyen la incidencia
(Saxena y Lal, 1981; CABI, 2007).
G.2. Genético
Las variedades resistentes son necesarias como
la solución más aceptable para evitar
importantes pérdidas en el rendimiento (Kalia,
(consulta) 2010).
Las diferencias en la susceptibilidad se han
detectado entre líneas de maíz en la India
después de la inoculación artificial. La
resistencia ha sido identificada en los híbridos
que tienen cantidades más altas de fenoles
totales presentes (Lal et al., 1970; thind y Payak,
1978; CABI, 2007).
G.3. Químico
La cloración del agua de riego reduce la
infección por E. chrysanthemi pv. zeae
(Thompson, 1965; Lal et al., 1970; CABI, 2007).
El hipoclorito de calcio es eficaz cuando se
aplica al suelo (thind y Soni, 1983; CABI, 2007).
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El Hidróxido de calcio (Lal y Saxena, 1978;
CABI, 2007) y estreptomicina (thind et al., 1984;
CABI, 2007) son eficientes controladores de este
patógeno..
H. Literatura Consultada
Almodóvar, W., 2008. Enfermedades del maíz.
Clínica al día. Universidad de Puerto
Rico. Consulta marzo de 2010 en:
http://academic.uprm.edu/walmodovar/H
TMLobj-256/Enfermed_Maiz.pdf
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bl&ots=SXEmw-
QSQy&sig=Cgp02aoDhi0MiWnyUF9uV7
_fPGw&hl=es&ei=mReoS9rfE4mwsgP0z
OX5Dw&sa=X&oi=book_result&ct=result
&resnum=6&ved=0CCAQ6AEwBTgU#v
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%20pv.%20zeae&f=fa
Sistema Nacional de Vigilancia Epidemiológica Fitosanitaria
30
Info
rme 2
00
9
Etapa lll.
Manejo del Riesgo para la importación de material propagativo (Trozos y/o vástagos) de caña de
azúcar (Saccharum officinarum) originarios y procedentes de la República de Costa Rica, para
evaluación en campo.
Como resultado del Análisis de los cuadros 1 y 2 fueron identificadas 4 plagas con potencial
cuarentenario, las cuales representan un riesgo fitosanitario para México. Por lo que se proponen las
siguientes medidas de manejo.
1 El Certificado Fitosanitario Internacional debe especificar que el material propagativo (Trozos y/o
Vastagos) son originarios y procedentes de la República de Costa Rica
2 El Certificado Fitosanitario Internacional debe señalar que el material propagativo (Trozos y/o
Vastagos) se encuentra libre del Hongo: Ligniera vascularum. De las Bacterias: Erwinia
chrysantemi, Erwinia chrysantemi pv. zeae, del Insecto: Metamasius hemipterus sericeus
3 Los empaques utilizados deberán ser nuevos y limpios
4 El cargamento deberá estar libre de partículas de suelo o cualquier residuo vegetal.
5 Los vástagos serán sometidos a un tratamiento con agua caliente por 20 minutos a 50 °C, con el
fin de eliminar las plagas que pudieran estar presentes (Flores, 1994).
6 Aplicar Carboxin (20 %) + Captan (20 %) 3 gr/L de agua y Clorpirifos a una dosis de 2 g de i. a.
/L. La aplicación de los tratamientos deberá ser anotada en el apartado correspondiente del CFI.
7 La semilla vegetativa de caña de azúcar deberá estar empacada en envases nuevos que
garanticen la exclusión de insectos y ácaros.
8 En el punto de ingreso se verificará que se cumplió con los puntos anteriores, además se
realizara una toma de muestra para inspección visual y en caso de no detectar algún agente
extraño, síntoma o signo de alguna plaga, el embarque se liberara.
9 En caso de detectar algún síntoma o signo de una potencial plaga de importancia
cuarentenaria, se tomará una muestra y será enviada a un laboratorio aprobado por la
Dirección General de Sanidad Vegetal.
10 La semilla vegetativa de caña de azúcar será liberada con acta de guarda cuarentena
custodia y responsabilidad a fin de asegurar que todo el material experimental sea
transportado a las Estaciones de Investigación de la Cámara Nacional de las Industrias
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31
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Azucarera y Alcoholera ubicadas en Tizimín, Yucatán y/o Tapachula. Chiapas, México en
espera del diagnóstico de la DGSV.
11 El jefe de Programa de Sanidad Vegetal de la entidad donde se siembre la semilla para
evaluación, verificará que el producto y volumen importado se encuentra en los campos y
laboratorios del importador
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