4.3 ambiente biológico 4.3.1 generalidades - … · a la trama trófica, almacenadora de energía,...

EMPRESA DE GENERACIÓN ELECTRICA CCOLLPANI S.A.C.Proyecto Central Hidroeléctrica CcollpaniEstudio de Impacto Ambiental Detallado

LAHMEYER AGUA Y ENERGÍA S.A.

4.3 Ambiente Biológico

4.3.1 Generalidades

La evaluación de línea de base biológica ornitológica consiste en el análisis de datos de lapresencia de los organismos vivos existentes obtenido durante la evaluación en la zona deestudio. Para la obtención de datos de la evaluación de campo en la zona donde sedesarrollará el proyecto para la instalación de la Central Hidroeléctrica Ccollpani, el área deestudio se dividió en estaciones de evaluación que a su vez se subdividió en puntos demonitoreo distribuidos de la manera más equidistante posible.

La creación de una línea de base biológica del área de estudio, permitirá establecerunidades de control o estaciones de monitoreo biológico (muestreo de determinadasvariables ecológicas y biológicas a lo largo del tiempo) que posibilitará, posteriormente,comparar los resultados obtenidos en el presente estudio, con la dinámica que seestablecerá en las diferentes etapas del proyecto hidroeléctrico, lo que a su vez permitiráconocer la tendencia en la que evolucione el ecosistema o especies evaluadas, informaciónclave para el entendimiento de la dinámica de estas comunidades y/o poblaciones (Galindo1997).

Los resultados de la presente evaluación biológica constituyen un conocimiento de ladiversidad biológica existente en una parte de los distritos de Machupicchu y Santa Teresa,pertenecientes a las provincias de Urubamba y La Convención respectivamente, en la regiónCusco, que permitirá tomar decisiones adecuadas, respecto de los mecanismos que setengan que establecer, para conservar y proteger el patrimonio genético del País.

4.3.2 Ecología

4.3.2.1 Generalidades

La zonificación de las formaciones ecológicas dentro del ámbito de estudio, tienen comoobjeto mostrar espacios con características similares, entre los que se destacan losparámetros: la temperatura, precipitación, evapotranspiración, y la composición florística quese desarrollan en dichos espacios.

Al respecto, la Oficina Nacional de Evaluación de Recursos Naturales (ONERN) hapublicado el Mapa Ecológico del Perú y su Guía Explicativa en 1976, el cual ha sidoreimpreso por el Instituto Nacional de Recursos Naturales (INRENA) en 1994. Asimismo, laONERN desarrolló Mapas de Escurrimiento Superficial basados en las formacionesecológicas o zonas de vida. En base a estas informaciones y con la verificación de campo,se han hechos reajustes, determinando con bastante precisión un Mapa que refleja lasZonas de Vida o Formaciones Ecológicas del ámbito de estudio.

4.3.2.2 Zonas de Vida

De acuerdo al Sistema de Clasificación propuesto por el Dr. Leslie Holdridge, se haidentificado a una (01) Zona de Vida, llamadas también Formaciones Ecológicas, en elCuadro Nº 01-LBB se presentan las características climáticas de las formacionesecológicas, tal como se muestra el Mapa Ecológico (Plano MA-12).



Cuadro Nº 01-LBBCaracterísticas Climáticas de las Zonas de Vida

Símbolo Zonas de VidaAltitud(msnm)

T(ºC)

P(mm)

ETP(mm)

bh – S Bosque Húmedo – Subtropical 1200 – 2000 18 – 24 1000 – 2000 1060 – 1414

T = Temperatura; P = Precipitación; ETP = Evapotranspiración Potencial.Fuente: Mapa Ecológico del Perú y Guía Explicativa. Instituto Nacional de Recursos Naturales (INRENA). 1,994.Elaboración: Lahmeyer Agua y Energía S.A., Agosto del 2,015.

El Sistema propuesto emplea tres parámetros fundamentales, la temperatura

(biotemperatura), precipitación y la evapotranspiración potencial. Adicionalmente también se

emplea la "Relación Evapotranspiración Potencial", que indica las veces que es mayor o

menor la precipitación comparada con la evapotranspiración potencial; con este valor se

ubica a la Formación Ecológica dentro de una "Provincia de Humedad".

A continuación se realiza una descripción de la zona de vida identificada:

a) bosque húmedo - Subtropical (bh-S)

Altitudinalmente se distribuye entre los 1200 y 2000 m.s.n.m. Geográficamente se distribuye

principalmente como una franja a ambas márgenes del valle del río Urubamba.

La biotemperatura media anual máxima es de 24.9 °C y la media anual mínima es de 17.2

°C. El promedio máximo de precipitación total por año es de 1968 mm y el promedio mínimo

es 936 mm. El promedio de evapotranspiración potencial total por año varía entre 0.5 y 1.0

veces la precipitación, se ubica en la provincia de humedad: Húmedo.

Muestra un relieve que varía entre ondulado y empinado. Está constituido por suelos

profundos, de textura media a pesada y ácidos. Donde hay influencia de materiales

calcáreos o calizos, aparecen suelos un tanto más fértiles y de ph elevado. Entre los grupos

edafogénicos se encuentran los Acrisoles órticos, Luvisoles y Cambisoles (eútricos y

dístricos) es decir fértiles e infértiles, Gleysoles y Fluvisoles, estos últimos de interés

agrícola por sus características de alta productividad.

Las especies forestales que caracterizan la cuenca media del río Urubamba son: "tornillo"

(Cedrelinga catenaeformis), "moenas" (Lauraceas). "Cedro de altura (Cedrela sp.)" y

muchas especies de los géneros Ficus, Inga, Brosimun, Croton, Sapium, Tabebuia,

Erythrina, Cecropia, Chorisia, Calycophyllum, Matisia, Hura, Guazuma y palmeras

principalmente de los géneros Geonoma, Ceroxylon, estan en los pisos altitudinales

superiores y en los inferiores Socratea, Scheelea y Astrocaryum.



Ciertas áreas de esta zona de vida, especialmente las zonas menos empinadas, tienen

características climáticas y edáficas para sustentar una actividad agrícola, siempre y cuando

esta se enmarque dentro de un programa de manejo de los recursos suelo y cobertura

vegetal, principalmente se pueden implementar cultivos permanentes. Las demás zonas por

el tipo de cobertura vegetal presentan condiciones favorables para la actividad forestal, pero

como en el anterior caso, esta debe estar sujeta a estrictos planes de manejo forestal, para

garantizar la sostenibilidad de la actividad y conservación del recurso. Sin embargo, gran

parte de esta zona de vida por presentarse en zonas de elevada pendiente y gran

pluviosidad, determinan que estas deben ser consideradas como zonas de protección.

Actualmente en esta zona de vida, se desarrolla una intensa actividad agrícola,

principalmente se cultiva café, té, coca, maíz, yuca, plátano, papaya y cítricos,

especialmente en los sectores de Santa Teresa, valles de los ríos Sacsara y Santa Teresa.

En la actualidad existen áreas que han cambiado o intensificado su uso, por la ocupación

desordenada por parte de los colonos que migran de las regiones andinas, los cuales

causan un mayor deterioro de los recursos naturales y de las condiciones ambientales de

esta zona.

4.3.3 Flora

La vegetación es el grupo taxonómico que se ve directamente afectada por los impactos

ambientales, y como consecuencia de ello, se produce la desestabilización de los suelos,

pérdida de cobertura, la migración de las especies de la fauna silvestre, e incluso su

extinción.

Una comunidad vegetal está constituida por un conjunto variable de especies con mayor o

menor grado de interrelación y con abundancia variable, desde comunes hasta raras. Esta

caracterizada genéticamente por las especies que intervienen en su formación, por las que

ayuda a su conservación y por las que determinan su descomposición (Braun-Blanquet,

1,979).

La vegetación es el producto de una larga historia de evolución, resultante de la acción de

factores ambientales sobre el conjunto interactuante de las especies que cohabitan en un

espacio continuo. Refleja el clima, la naturaleza del suelo, la disponibilidad de agua y de

nutrientes así como los factores antrópicos y bióticos.

El conocimiento de la vegetación es necesario para innumerables actividades de

investigación por su importancia como subsistema fundamental del sistema ecológico:

captadora y transformadora de energía solar, puerta de entrada de la energía y de la materia

a la trama trófica, almacenadora de energía, proveedora de refugio de la fauna, agente

antierosivo del suelo, agente regulador del clima local, agente reductor de la contaminación

atmosférica, fuente de materia prima para el hombre, y fuente de bienestar espiritual y

cultural, por su valor estético, recreativo y educativo (Matteucci y Colma, 1,984).



Flora es el total de especies de plantas identificadas taxonómicamente para un determinado

lugar, es el listado de las plantas de un lugar. Estructura vegetacional es el agregado

cuantitativo de sistemas funcionales. Es decir, la ocupación espacial de los componentes de

una masa vegetal, sobre una porción cualquiera del territorio geográfico.

4.3.3.2 Metodología

4.3.3.2.1. Método de Campo

El área de estudio se encuentra dentro de las provincias de Urubamba y La Convención,

Región Cusco; forma parte de los distritos de Machupicchu y Santa Teresa; zona

transicional entre selva y región altoandina. El presente estudio abarca el ámbito del

proyecto para la Central Hidroeléctrica Collpani.

Forma y delimitación de las parcelas de evaluación

Para caracterizar la estructura y la densidad poblacional de árboles se establecieron

parcelas Whittaker. La parcela Whittaker consiste en una parcela rectangular de 50 m x 20

m con un área total de 0.1 ha (1000 m2). El muestreo de la vegetación se realizó a diferentes

escalas dentro de una parcela Whittaker, para lo cual se delimitaron las subparcelas, donde

se evaluaron los diferentes estratos de la vegetación. El diagrama de la parcela modificada

de Whittaker es como sigue:

Figura N° 01-LBB

Diseño de la Parcela Multiescala 0.1 ha o Whittaker Modificado



Se compone de una parcela de 50 m de largo por 20 m de ancho, la misma que, a su vez,

incluye tres tipos de subparcelas:

Diez subparcelas (2 m x 0.5 m), en donde se evaluaron las hierbas y plántulas

menores a 40 cm de alto.

Dos subparcelas (5 m x 2 m), en donde se evaluaron los árboles y arbustos con DAP

≥ 1 cm.

Una subparcela central (20 m x 5 m), en la cual se evaluaron todos los árboles con

DAP ≥ 5 cm.

En la parcela principal (50 m x 20 m), se evaluaron todos los árboles con DAP ≥ 10

cm, excluyendo los que ya fueron contados en las subparcelas.

Características fenologías de las especies:

Diámetro del árbol

Se midió con una cinta diométrica el DAP (diámetro a la altura del pecho), a todos los

individuos arbóreos con un diámetro mayor o igual a 10 cm.; medidos a 1.30 m. de

altura siempre en dirección a la pendiente. Para el tratamiento de estos datos se

clasificaron en Clases siendo estos Clase I (10 a 15 cm), Clase II (15 a 20 cm), Clase

III (20 a 25 cm), Clase IV (20 a 25 cm), Clase V (30 a más).

Altura del árbol

Para obtener la altura de los árboles; se realizó la estimación directa, cabe resaltar

que cuando se estima la altura no se alcanza mucha precisión, pudiendo obtener un

error aproximado de hasta 1 m. Para el tratamiento de estos datos también se

categorizaron por Clases de la siguiente manera Clase I (0 a 5 m), Clase II (5 a 10

m), Clase III (10 a 15 m), Clase IV (15 a 20 m).

Colecta de muestras botánicas

Con el fin de establecer la composición florística general del lugar de evaluación, se hicieron

colecciones generales de plantas con flores y/o frutos de algunas especies recogidas de la

zona de estudio. Estas colecciones de plantas se realizaron todo el tiempo en el trabajo de

campo, en especial durante los recorridos de reconocimiento y al finalizar los muestreos. La

importancia de efectuar esta acción radica en que gran parte del material colectado en las

parcelas es estéril y algunas veces puede ser encontrado en estado fértil cuando se hacen

colecciones generales. Esto facilita enormemente la determinación posterior de las

colecciones.

Generalmente, por espécimen se colectaron 3 muestras botánicas estériles y 4 muestras de

especies que estaban en estadio fértil, a estas muestras se les asigno un código. Las

muestras fueron procesadas con las normas clásicas de herborización, que consisten en el

prensado, alcoholizado (alcohol al 70%) y secado.



Determinación del material botánico

Para el reconocimiento de la flora existente en la zona de estudio, tanto en la época húmeda

como en la época seca, se efectuaron dos salidas de campo, del 22 al 28 de abril del 2014

(húmeda) y del 22 al 29 de octubre del 2014 (seca), donde se realizó la identificación en

campo de aquellas especies reconocibles, las especies existentes que no pudieron ser

adecuadamente reconocidas, conformaron las colecciones botánicas que fueron

determinadas por comparación, con las muestras existentes en los herbarios de la

Universidad Nacional Antonio Abad del Cusco.

Para la presentación del listado florístico de las especies se siguió el sistema de clasificación

propuesto por Cronquist (1,979). La lista esta organizada alfabéticamente por familias y

dentro de cada familia por géneros y especies.

4.3.3.2.2 Equipos, Materiales y Métodos

a) Equipos

Prensa botánica.

Tijera podadora.

Tijera telescópica.

Libreta de campo.

Lápiz.

Fichas de campo.

Bolsas de plástico.

Cinta masking tape.

Papel periódico.

Alcohol de 70º.

GPS.

Cámara fotográfica.

Estereoscopios de espejos Marca WILD.

b) Materiales

Imagen satelital MSS / LANDSAT (bandas 4, 5 y 7), a escala 1:250,000. 1,984.

Fotos aéreas a escala promedio de 1:60,000 de 1,960.

Carta fotogramétrica a escala de 1:100,000 del cuadrángulo de Machpicchu.

Se revisó la siguiente fuente bibliográfica.

El Mundo Vegetal de los Andes Peruanos (Weberbauer 1,945).

Mapa Ecológico del Perú (INRENA, 1,994).

Mapa Forestal y de Pastos del Perú (INRENA, 1,993).

Catalogue of Flowering Plants and Gymnosperms of Peru. Monographs in Systematic

Botany from the Missouri Botanical Garden. M.B.G. Endemismos en Peru. Brako, L.

and J. Zaruchi. 1,993.

Fitosociología. Bases para el Estudio de las Comunidades Vegetales. Ediciones H.

Blume. Madrid – España. Braun Blanquet. 1,979.



Ecología. Estudio de la Distribución y la Abundancia. Segunda Edición. Edit. Harper

& Row, Publishers. México. Krebs, CH. J. 1,985.

El libro rojo de las plantas endémicas del Perú. Rev. Per. biol. Número especial

13(2): 42s - 45s. Ed. León, B. et al. 2,006.j UNMSM. Facultad de Ciencias Biológicas.

Vocabulario de los Nombres Vulgares de la Flora Peruana y Catálogo de los

Géneros. Editorial Salesiana. Lima-Perú. Soukup, J. 1,986.

c) Métodos

Métodos de Gabinete para el Análisis de Datos

Determinación taxonómica

La identificación y clasificación sistemática de las especies de flora existentes en la zona deestudio se ha realizado utilizando bases de datos de los herbarios de la UniversidadNacional San Antonio Abad del Cusco, así como las del Field Museum, Missouri BotanicalGarden y de bibliografía referencial respecto de la zona de estudio.

Estructura Vegetacional

Los organismos y poblaciones de especies no existen solos en la naturaleza, sino queforman siempre un ensamble de poblaciones que viven juntas en una misma área. Lacomunidad posee un conjunto de atributos que no residen en cada una de las especies quela componen y que revisten significado solo con referencia al nivel de integracióncomunitario (Krebs, 1,985). Estos atributos se pueden reconocer también comocaracterísticas y son la diversidad, la estructura y formas de crecimiento, el predominio, laabundancia relativa, la estructura trófica y la cobertura vegetal.

Riqueza y Abundancia de Especies

La riqueza y abundancia de especies son los componentes de la diversidad biológica quenos permite evaluar la estructura de la comunidad concibiéndola como la suma de suspartes El término riqueza hace referencia al número de las especies que integran lacomunidad, en tanto que el término abundancia se refiere al número de individuos porespecie que se encuentran en la comunidad.

Diversidad de Especies

La diversidad se usa como un índice de salud de los ecosistemas, aplicada en conservaciónestá sostenida por la idea que las comunidades ricas en especies son mejores que laspobres en especies, y en la supervisión ambiental, los efectos de la polución ambiental sereflejarán en una reducción de la diversidad o en un cambio de forma de la distribución deabundancia de especies.

Puede medirse registrándose el número de especies por hábitat estudiado, referido comoriqueza de especies. Y describiendo su abundancia relativa o usando una medida quecombine los dos. La diversidad se compone de dos elementos: la variación (Nº de especies)y la abundancia relativa de especies (Nº de individuos por especie), se expresa a través deíndices (Magurran, 1,987):



El Índice de Shannon y Wiener (Ĥ) o de la diversidad de Shannon, considera que losindividuos se muestran al azar a partir de una población “indefinidamente grande”, seexpresa en contenido de información de la muestra (bits/ind).

H’ = Σ(Pi) log2(Pi)

Donde:

Pi = a la probabilidad de importancia de cada especiePi = ni/N, ni = valor de importancia de cada especieN = es el total de valores de importancia

La diversidad se interpreta en una escala de valores de 0 a 5 bits/ind, que va de no diverso amuy diverso (Magurran, 1,987).

El Índice de Diversidad de Simpson o de la probabilidad de seleccionar aleatoriamente dosorganismos de especies diferentes. Concede mayor significación a las especies másabundantes. La gama de valores va de 0 ó diversidad baja, hasta un máximo de 1 - 1/S, enque S es el número de especies. Este índice varía inversamente con la heterogeneidad (detal forma que si los valores del índice decrecen, la diversidad decrece y viceversa).

Para mayor claridad es deseable que valores altos (o bajos) del índice de probabilidadcorrespondan con valores altos (o bajos) de diversidad.

La expresión del Índice de Dominancia o de Simpson es:

D = Σ(ni/N)²

Donde:

ni = número de organismos iN = número total de organismos de todas las especies

El Índice de Margalef, o índice de biodiversidad de Margalef, es una medida utilizada enecología para estimar la biodiversidad de una comunidad con base a la distribuciónnumérica de los individuos de las diferentes especies en función del número de individuosexistentes en la muestra analizada.

La expresión del Índice de Margalef es:

I = (S - 1)/ln N

Donde:

I = Biodiversidad,S = número de especies presentes,N = número total de individuos encontrados (pertenecientes a todas las especies).Ln = Logaritmo neperiano de N.



4.3.3.3 Caracterización de la Zona de Estudio

El proyecto Central Hidroeléctrica Ccollpani, se ubica cercano al río Vilcanota, con la

finalidad de determinar la flora existente en la zona de estudio se han ubicado tres

transectos permanentes de evaluación, los cuales se encuentran asociados a las principales

actividades que se desarrollaran dentro del proyecto hidroeléctrico.

Transecto MF - 01.

Estación de muestreo ubicada en las inmediaciones donde se proyecta la instalación de la

bocatoma. El área de estudio se encuentra a los 1528 m. de elevación y con 35% de

pendiente, se encuentra situada entre el borde del Río Vilcanota y por la parte superior por

la trocha carrozable, por lo general presenta un suelo arenoso y el 70% del total del área se

encuentra constituido de rocas de diferente tamaño. En el área de estudio se observa

parches o manchones naturales de vegetación sucesional. Por su forma alargada

característica, se puede inferir que son producto de los derrumbes y deslizamientos en los

terrenos de pendiente muy pronunciada originados, ya sea de forma natural o por la

construcción del camino o por el establecimiento de campos de cultivo.

En estos parches, el típico bosque es reemplazado por grupo de especies dispersas que

conforman un estrato sucesional bajo y ralo, relativamente pobre en especies,

predominando especies frutícolas que constituyen plantaciones productivas.

Debido a la topografía del área y a la frecuencia con la que se dan estos fenómenos,

también es frecuente encontrar áreas de deslizamientos recientes, carentes de vegetación o

recién colonizadas por especies pioneras.

Las especies más característica del área de estudio son: Cortaderia sp, Melinis minutiflora,

Crotalaria sp, Calceolaria crenatiflora, característico de lugares alterados y húmedos. En la

parte superior a la zona de estudio, se encuentran grandes extensiones de cultivos de

frutales caracterizados por la especie del género, Musa paradisiaca entre la más importante.

Cabe mencionar que cerca del lugar de evaluación se observó algunos bulbos de orquídeas

que tal vez llegaron a ese lugar por diferentes causas ya que estos se presentan más en

bosques nublados.

Transecto MF - 02.

Estación de muestreo ubicada en las inmediaciones donde se proyecta las obras de

captación para el represamiento de las aguas que servirán para la central hidroeléctrica. El

área de estudio se encuentra a 1612 m de elevación y con un 40% de pendiente, se

encuentra situados al borde del Río Vilcanota y por la parte superior con la trocha carrozable

de Ccollpani-Mesada. Presenta un suelo arenoso con presencia de un 60% de rocas de

gran tamaño por medio del punto de evaluación pasa un pequeño río de gran caudal que

alimenta al río Vilcanota.



El área se caracteriza por la presencia de diferentes formaciones vegetales con superficies

pequeñas, entre las que destaca una vegetación colonizadora o pionera (arbustiva-

herbácea), de vida corta, que se localiza sobre las playas, en las orillas de los ríos. A

continuación de esta vegetación se halla un bosque joven con árboles de estrato mediano,

el cual se caracteriza por ser un tipo de vegetación en proceso de transición a bosque.

Esta vegetación presenta limitaciones para la explotación debido a la inestabilidad del

terreno donde se presenta, en algunos sectores de estos parches vegetativos se han

establecido pequeñas parcelas de cultivos en limpio y de corto periodo.

Una de las familias predominantes para el área de estudio es la familia, Póaceae seguida

por las familias Asteraceae y Betulaceae. La vegetación para este punto de evaluación, es

densa y medianamente alta que alcanza a alturas entre 4 a 7 m de altura. Las especies

características son: Crotalaria sp. y Baccharis sp. típicas de lugares perturbados. Al lado y

en la parte superior de la zona de estudio se encuentra cultivos de frutales entre las que se

encuentran la especie de Citrus aurantifolia, Musa paradisiaca y otros.

Transecto - 03 MF

Estación de muestreo ubicada en las inmediaciones donde se proyecta la instalación de la

bocatoma La zona de estudio se encuentra a una altitud de 1401 m de elevación, con una

pendiente 30%, se encuentra encima del río Vilcanota presenta el 35% de piedras y suelo

de color oscuro.

La zona se caracteriza por la presencia de tierras que permiten el desarrollo de una

agricultura con cultivos del tipo tropicales y subtropicales, que se han establecido mediante

una agricultura de baja tecnología “migratoria y en ladera”, bajo el sistema de corte y quema,

sobre las terrazas y laderas, en donde se han cultivado productos para su comercialización

y autoconsumo.

La vegetación característica está compuesta por árboles que alcanzan los 10 m de altura.

Las especies más representativas son: Coffea arabica, Musa paradisiaca y Acacia

macrantha aff. Debido al tipo de clima y topográfica este lugar es adecuado para cultivos

frutales.

4.3.3.4 Evaluación de la Flora Presente en la Zona de Estudio

Con la finalidad de conocer la distribución espacial de la flora presente en la zona de estudio

se han establecido estaciones de muestreo, ubicadas en puntos cercanos al área de

influencia directa del Proyecto de la Central Hidroeléctrica de Ccollpani. La ubicación de las

estaciones de muestreo (transectos) se presenta en el Cuadro Nº 02-LBB.

4.3.3.5 Especies Identificadas en el Ámbito de Estudio

En el Cuadro Nº 03-LBB se presenta el listado general de las especies de flora listadas con

nombre científico de cada especie, la familia y el orden al que pertenecen, identificadas en el

trabajo de campo de las dos épocas de evaluación.



Cuadro Nº 02 LBBUbicación de las Estaciones de Muestreo de Flora Silvestre

Coordenadas UTM*Estaciones de Muestreo

Este Norte

761,421 8’547,475

761,421 8’547,495

761,371 8’547,495MF-1

761,371 8’547,475

761,828 8’546,551

761,812 8’546,563

761,784 8’546,522MF-2

761,800 8’546,510

761,617 8’547,464

761,635 8’547,473

761,614 8’547,518MF-3

761,596 8’547,510

* Zona 19 y Datum WGS84.Elaboración: Blgo Alvaro Torres Enriquez / Lahmeyer Agua y Energía S.A..

Cuadro Nº 03-LBBListado de Flora Silvestre Presentes en el Área de Estudio

Orden Familia Nombre Científico Nombre local

Conyza spCyanthillium Cinereum aff Rabo de bueyTessaria integrifolia_aff Pájaro boboBidens pilosa aff Amor secoTagetes sp. Mula yacatay

Asterales Asteraceae

Baccharis sp. ChilcaSapindales Anacardinaceae Schinus molle MolleLamiales Calceolariaceae Calceolaria crenatiflora Mayu zapatillaBrassicales Caricaceae Carica papaya PapayaMalphigiales Erythtoxylaceae Erithroxilum coca coca

Albizia sp. AlbiziaCrotalaria sp.Mimosa revoluta

Fabaceae

Acacia macracantha aff Wilca

Fabales

Betulaceae Alnus acuminata AlisoLaurales Lauraceae Percea americana PaltaMyrtales Melastomataceae Tibouchina sp.Zingiberales Musaceae Musa paradisiaca PlátanoAspargales Orchidaceae Epidendrum secundum (amarillo)

Melinis minutiflora. Pasto gorduraPoales Poaceae

Cortadeira sp. PintocPiperales Piperaceae Piper sp.

Gentianales Rubiaceae Coffea arabica CaféSolanales Solanaceae Nicotiana sp. Mote moteRosales Urticaceae Cecropia sp. Ttorox

Citrus aurantifolia LimaSapindales Rutaceae

Citrus sp. MandarinaElaboración: Blgo Alvaro Torres Enriquez / Lahmeyer Agua y Energía S.A.,.



Composición Florística:

Se han identificado, un total de, 27 especies de plantas, entre silvestres y domesticas que

corresponden a 27 géneros, 17 familias, distribuidas en 16 Órdenes que pertenecen a la

División Angyosperma. 7 especies son consideradas con valor comercial, incluyendo dentro

de ellas a la coca. De este total, el Orden con mayor representación florística es Fabales con

dos familias y cinco especies, siendo la familia Asteraceae la que presenta mayor número

de especies reportadas.

La Identificación Taxonómica se ha realizado siguiendo el Sistema de Clasificación de

Cronquist (Jones and Lushinger, 1,979), y actualizado con la Base de Datos del Herbario del

Missouri Botanical Garden y del Field Museum de EEUU.

4.3.3.6 Distribución de Flora por Unidades de Muestreo

En el Cuadro Nº 05–LBB se listan el total de especies de flora, así como el correspondiente

número de individuos que se han identificado en las dos épocas de evaluación, de acuerdo

a su ubicación dentro de las estaciones de muestreo permanente que se han establecido en

la zona de estudio.

Cuadro Nº 05-LBBDistribución de Especies de Flora Según Unidad de Muestreo y Temporada

Estaciones de Muestreo

MF-01 MF-02 MF-03Especies

H S H S H S

Conyza sp 10 10

Cyanthillium CInereum aff 10 10

Tessaria integrifolia_aff 14 10 11 40

Bidens pilosa aff 5 5

Tagetes sp. 5 27

Baccharis sp. 112 125

Schinus molle 3

Alnus acuminata 10 10

Calceolaria crenatiflora 39

Carica papaya 3 3

Erithroxilum coca 14 9

Albizia sp. 10

Crotalaria sp. 45 30

Mimosa revoluta 10 38

Acacia macracantha aff 11 11

Percea americana 4

Tibouchina sp. 2 6 7 5 1

Musa paradisiaca 126 120

Epidendrum secundum (amarillo) 4

Melinis minutiflora. 140 200

Cortadeira sp. 167 260 162 162

Piper sp. 5 10

Coffea arabica 38 33




MF-01 MF-02 MF-03Especies

H S H S H S

Nicotiana sp. 7

Cecropia sp. 4 4

Citrus aurantifolia 7 7

Citrus sp. 2 2

9 11 11 7 8 9

Total Especies 11 11 9

H = Época húmeda; S = Época secaElaboración: Blgo. Alvaro Torres Enriquez / Lahmeyer Agua y Energía S.A.

El Gráfico N° 01-LBB se puede apreciar la distribución de especies por estación y época

de muestreo, percibiéndose que las zonas de estudio presentan casi una misma diversidad,

en ambas estaciones de muestreo. Nota aparte constituye la estación MF-03 la que si bien

presenta menor diversidad de especies se debe principalmente porque corresponde a una

zona de cultivos frutales permanentes, con especies de flora asociadas.

Gráfico N°01-LBBNúmero Total de especies en Estaciones de Muestreo

El Gráfico N° 02-LBB permite apreciar que son tres especies las que presentan el mayor

número de individuos en la zona de estudio, siendo estas Cortadeira sp. Melinis multiflora,

Baccharis sp. Debiendo dar especial atención a Musa paradisiaca dado a que es una

especie de importancia económica.



Gráfico N° 02-LBBNúmero Total de Individuos por Especie

A continuación, se presenta el análisis de los resultados de la evaluación de la vegetación

presente en la zona de estudio.

En la estación de muestreo MF-01 se han registrado un total de 11 especies, distribuidas

en seis familias y seis órdenes taxonómicos, de las cuales 09 se registraron en la época

húmeda y 11 en la época seca, Gráfico N° 03-LBB.

Gráfico N° 03–LBBTotal de Especies en MF-01



El Gráfico N° 04-LBB muestra la distribución de las especies según época de muestreo,en donde se puede apreciar que Melinis multiflora, junto con Cortadeira sp. son lasespecies con mayor número de individuos presentes en ambas evaluaciones de campo.

Gráfico N° 04-LBBNúmero Total de Individuos por Especie Estación MF-01

En la estación de muestreo MF - 02 se han registrado 11 especies, distribuidas en nuevefamilias y ocho órdenes taxonómicos, de las cuales 11 en la época húmeda y 07 en laépoca seca Gráfico N° 05-LBB.




El Gráfico N° 06-LBB, muestra la distribución de las especies según época demuestreo, en donde se puede apreciar que la mayor densidad poblacional corresponde aCortadeira sp., junto con Baccharis sp., que son las especies con mayor número deindividuos presentes en ambas evaluaciones.

Gráfico N° 06-LBBNúmero Total de Individuos por Especie Estación MF–02

En la estación de muestreo MF-03 se registraron 09 especies, distribuidas en ochofamilias e igual número de órdenes taxonómicos, con 09 especies en la época húmeda y09 en la época seca. Gráfico N° 07-LBB.




El Gráfico N° 08–LBB, muestra la distribución de las especies según época de

muestreo, en donde se puede apreciar que Musa paradisiaca, junto con Coffea arábica

son las especies con mayor número de individuos presentes en ambas estaciones.

Gráfico N° 08-LBBNúmero Total de Individuos por Especie Estación MF-03

Índices de Diversidad

En el Cuadro N° 06–LBB, se muestran los resultados de los índices de diversidad aplicados

a la evaluación de la flora presente en las dos épocas de muestreo. Como se puede

apreciar, los valores de los índices de diversidad son muy bajos, debido a la poca riqueza de

especies encontrada en la zona de estudio.

Cuadro N° 06-LBBÍndices de Diversidad Biológica

Nº deEspecies (S)

Nº deIndividuos (N)

H’ 1-D IEstación deMuestreo

H S H S H S H S H S

MF-01 9 11 614 406 1.55 1.454 0.7032 0.6908 1.558 1.334

MF-02 11 7 385 334 1.461 1.33 0.7 0.6333 1.176 1.554

MF-03 8 9 190 210 1.248 1.334 0.5632 0.5977 1.525 1.496

I = Índice de Margalef H’ = Índice de Shannon y Wiener 1-D = Índice de SimpsonH = Época húmeda; S = Época secaElaboración: Blgo Alvaro Torres Enriquez / Lahmeyer Agua y Energía S.A.



4.3.4 Fauna Silvestre

4.3.4.1 Aspectos Generales

La vegetación, como base de la cadena trófica energética, permite que los organismos de

vida libre aprovechen en forma eficiente la energía almacenada en sus hojas, raíces, frutos,

flores y otras partes de la estructura vegetal.

Normalmente se utiliza el nombre de fauna silvestre para referirse a los vertebrados que

habitan los ambientes naturales. Esta fauna puede ser amplia distribución o de distribución

restringida, cuando se presenta la segunda condición se considera como especies

endémicas, es decir pertenecen y están distribuidas en un ambiente natural específico.

La fauna silvestre, al igual que la flora, son el resultado de constantes procesos evolutivos

de adecuación a las condiciones que se presentan en el ambiente, tales como altitud, clima,

tipo de alimento, etc. El hombre también ha intervenido en los procesos evolutivos de

algunas especies, mediante la domesticación de especies de fauna que sirven

principalmente para su alimentación, abrigo y apoyo en actividades de trabajo.

La fauna silvestre puede ser utilizada como indicadora de la calidad del ecosistema, por

ejemplo, los herbívoros son fundamentales para mantener la estructura y distribución

espacial de las comunidades vegetales, mientras que los carnívoros mantienen en equilibrio

los flujos de energía que se establecen en las cadenas tróficas del ecosistema.

La avifauna es también considerada como un indicador de la calidad del ecosistema pues

este grupo ha sido clave en el desarrollo de las ciencias biológicas por su importancia en la

estructura de los ecosistemas, la diversidad de sus formas, su complicada e interesante

conducta, el misterio de sus migraciones y, sobre todo, por la facilidad de ser observadas y

fundamentalmente, por el, hecho que mantienen una estrecha relación con las condiciones

del hábitat, ya que muchas son sensibles a cambios ambientales mínimos (Navarro et al

1,993).

Se recorrió la zona de estudio, para identificar a las especies de fauna silvestre existentes.

Se consideran en la evaluación las taxa relacionadas a mamíferos, aves y reptiles.

4.3.4.2 Metodología

La zona de estudio, correspondiente al Proyecto Central Hidroeléctrica Ccollpani, fue

visitada en dos temporadas: del 22 al 28 de abril (época húmeda), y del 22 al 29 de octubre

(época seca), con la finalidad de identificar a las especies de fauna silvestre existentes así

como su variabilidad en el tiempo. Se consideraron en la evaluación las taxa relacionadas a

mamíferos, aves, reptiles y anfibios, siendo necesario resaltar que se ha considerado al

grupo de las aves para efectuar la evaluación del ecosistema debido a que es el grupo mejor

representado.

En la medida que cada grupo de animales, responde a determinadas características

conductuales, se hace necesario establecer procedimientos metodológicos adecuados a

cada taxa. A continuación se describen las metodologías utilizadas.



a) Para la identificación de Aves:

Se han utilizado dos procedimientos metodológicos para la identificación de aves: mediante

la observación directa y mediante la captura, siendo el segundo método, el utilizado en las

zonas arbóreas y de vegetación ribereña, en la medida que en estas zonas la vegetación

era densa y dificultaba la observación de las aves.

Mediante Observación Directa

Con el apoyo de binoculares y guías de campo (Aves del Perú por Schulenberg et, al., y

Aves de Machupicchu por Barry Walker et. al,) se efectuó el reconocimiento de las aves

mediante la observación directa.

Conteo por Puntos

Este método fue reutilizado en todos los sectores respetando cada una de las distancias

establecidas en evaluaciones de inventarios biológicos. Las zonas de monitoreo fueron

evaluadas mediante el método de conteo por puntos no limitado por distancia (Bibby et al.

1992). Cada punto tenía una duración de 15 minutos. Estos se llevaron a cabo entre las 8:00

y 12:00 a.m. por ser estas horas de la mañana las mejores para avistar aves. En cada punto

de conteo se registró el nombre de la especie, el número de individuos observados, la

posición geográfica (GPS), y el tipo de vegetación presente. Con los datos obtenidos se

obtuvo información sobre la abundancia, índice de diversidad y riqueza de la avifauna en los

diferentes hábitats muestreados.

Mediante captura de individuos:

En la medida que la vegetación presente en la zona de estudio no permitía tener una

visibilidad apropiada para observar a las aves, las cuales, por su tamaño pequeño, se

ocultaban dentro del follaje, fue necesario utilizar redes denominadas de neblina, tipo de

trampa especial para capturar aves sin dañarlas.

Se colocaron redes de niebla (09 x 2.8 m., 10mm. cocada). Estas fueron utilizadas de forma

continua durante sólo por horas para poder capturar todas las aves posibles. El esfuerzo de

muestreo realizado por las redes se midió en horas/red, que es la medida cuantitativa de la

exposición de una red de 12 m. durante una hora. Todos los individuos que cayeron en las

redes fueron fotografiados y liberados en el lugar

La red de neblina fue georeferenciada en las siguientes coordenadas UTM que se presentan

en el Cuadro Nº.07–LBB.

Las aves colectadas fueron registradas y comparadas con las guías de campo y se procedió

a tomar fotos para posteriormente proceder a su liberación.



Cuadro Nº 07-LBBUbicación de la Red de Neblina

Coordenadas UTM*Estaciones de Redes deNeblina Este Norte

761,408 8’547,478Red-1

761,422 8’547,477

761,414 8’547,323Red-2

761,428 8’547,322

761,822 8’546,486Red-3

761,820 8’546,478

761,718 8’546,556Red-4

761,718 8’546,552


Registro de datos

Para obtener información respecto de la abundancia y diversidad de aves presentes en la

zona de estudio, se utilizó el método de Censo por Transecto, el cual consiste en determinar

un transecto de longitud determinada, que para el presente estudio, se definió en una

longitud de 500 metros, recorrido que se efectuó en un tiempo de cuarenta minutos

aproximadamente.

En cada censo se tomaron los siguientes datos: código del transecto, día, hora de inicio,

hora de término, se enlistaron las especies y el número de individuos identificados por

observación y/o canto. Los censos se llevaron acabo en las primeras horas de la mañana

(entre las 06:00 y las 08:30) horas de mayor actividad aviar. La ubicación de los transectos

para observación de aves se presenta en el Cuadro N° 08-LBB.

Cuadro Nº 08-LBBUbicación de Transectos para Observación de Aves

Coordenadas UTM*

Inicio FinalEstaciones deAvistamientos

Este Norte Este Norte

Av-01 761,849 8’546,466 761,799 8’546,503

Av-02 761,403 8’547,339 761,348 8’547,613

Av-03 761,586 8’547,403 761,528 8’547,681




b) Para la identificación de Mamíferos:

Mamíferos menores

Agrupa generalmente a diferentes taxones de mamíferos no voladores que poseen un pesoaproximado menor a 1kg, en su etapa adulta (Barnett y Dutton 1995). Incluye a los roedores,marsupiales y lagomorfos (Pacheco et al. 2009). Por su conducta evasiva y hábitosnocturnos, su tamaño pequeño y coloración opaca o porque permanecen ocultos en refugiossubterráneos o arborícolas, se requiere su captura o su determinación post-campo,utilizando trampas y cebos (de ser el caso), para su identificación (Voss y Emmons).

Transectos de trampeo - Evaluación de mamíferos menores no voladores:

El muestreo de mamíferos menores no voladores se tomó de Pacheco et al. (2007) y

consistió en la colocación de trampas ubicadas en transectos lineales. Cada transecto

consiste de estaciones, separadas aprox. 10 m entre sí. En dichas estaciones se ubicaron

las trampas “Tomahawk”, que son de captura viva. Estas trampas son usualmente cebadas

y esencias. Ver Cuadro Nº 08-LBB.

Cuadro N° 08-LBBTipo de cebos utilizados para captura de pequeños mamíferos terrestres

Mamíferos Tipo de cebos

Roedores

Ratas y ratonesMantequilla de maní, granos, cereales, avena,alpiste y frutos de la zona

Marsupiales

Marsupiales pequeñosMantequilla de maní, sardina enlatada, carnefresca o enlatada, frutas de la zona.

Elaboración: Blgo Alvaro Torres Enriquez / Lahmeyer Agua y Energía S.A..

Cebos: Debido a la variedad de costumbres y dietas que tienen los mamíferos, el tipo de

cebo “ideal” para una especie en un lugar determinado puede no serlo para otras. Las

mesclas utilizadas usualmente atraen numerosas especies de pequeños mamíferos, pero

también atraen hormigas por lo que tienen que ser renovadas diariamente. (Tomahawk,

1992).

Esencias: son compuestos olores fuertes y penetrantes que tratan de atraer animales

silvestres. Estas pueden ser aceites de origen animal o vegetal, extractos de ciertas

glándulas o plantas. Orina de la especie o material orgánico fermentado descompuesto, los

cuales dan buenos resultados. (Day et al 1987).

El cebo utilizado fue una mezcla estándar de mantequilla de maní, avena, miel, esencia de

vainilla, granos, pasas y sardina enlatada. Las trampas se dejaron operativas durante la

noche y fueron revisadas en la mañana del día siguiente. Los individuos capturados se

midieron y fotografiaron para luego ser liberados.



Se establecieron transectos según hábitat, para la identificación de mamíferos pequeños, la

ubicación de los transectos se presenta en el Cuadro Nº 09-LBB.

Cuadro Nº 09-LBBUbicación de Transectos para Registro de Mamíferos Menores

Coordenadas UTM*Estaciones de Muestreo

Este Norte

761,802 8’546,510761,821 8’546,503761,839 8’546,549

MM-01

761,820 8’546,557761,441 8’547,223761,448 8’547,242761,400 8’547,258

MM-02

761,394 8’547,239761,626 8’547,481761,624 8’547,501761,574 8’547,494

MM-03

761,577 8’547,474* Zona 19 y Datum WGS84.Elaboración: Blgo Alvaro Torres Enriquez / Lahmeyer Agua y Energía S.A..

Valor de Esfuerzo de Muestreo

En cuanto a los valores del esfuerzo de muestreo para mamíferos pequeños terrestres se

expresa como el número total de trampas por tipo (de captura viva y/o de golpe, o pitlall) que

permanecen operativas durante cada noche de muestreo (Medina et al. 2012, Pacheco et al.

2011). El esfuerzo se expresa en trampas noche (TN) porque las trampas permanecen

activas de un día para otro. Ejemplo: si se colocan 120 trampas Víctor y 120 trampas

Sherman por noche, permaneciendo estas en el mismo lugar durante 5 noches

consecutivas, el esfuerzo de captura realizado será de 240 x 5 = 1200 trampas noche 01200

TN. Si se colocan 10 trampas de hoyo o pitlall por durante 5 noches, el esfuerzo de captura

será 10 x 5= 50 baldes noche o 50 BN.

Chiropteros

Conocidos comúnmente como murciélagos, son el único grupo de mamíferos capaces de

volar y de hábitos nocturnos. Son el segundo orden más numeroso, después de los

roedores, se encuentran prácticamente en todos los continentes. Debido a sus hábitos

alimentarios, principalmente frugívoros desempeñan un papel ecológico vital, como

polinizadores y dispersadores de semillas, razón por la cual muchas plantas tropicales

dependen por completo de los murciélagos. Para poder identificar a las especies de este

importante grupo taxonómico, se tiene que recurrir a métodos de captura.

Redes de neblina:

Entre los métodos de registro más conocidos se tiene el empleo de redes de niebla, redes

de mano o mariposeras y trampas arpa (Jones et al. 1996, Kunz et al. 2009), las cuales son

efectivas para las especies que habitan dentro de bosques. Las redes de neblina son

comúnmente utilizadas para captura de murciélagos en vuelo por su efectividad.



Algunas ventajas de utilizarlas es que son ligeras, son compactas y fáciles de transportar y

desplegar en el campo, la desventaja es que se deben de mover de un lugar a otro y

desenredar a los individuos colectados, es por eso que no se debe de instalar en refugios

con gran número de especímenes.

Esta metodología se utiliza para capturar murciélagos. Identificarlos debidamente, anillarlos

y algunas veces para piel de estudio. Consistió en colocar 02 y 03 redes de neblina (12 m y

6 m de largo x 2,6 m de alto) al nivel de los 1 m –1.5 m del suelo. Las redes permanecieron

abiertas desde las 18:00 horas hasta las 10:00 horas, este horario fue establecido

considerando que la mayor frecuencia de captura ocurre en las primeras horas de la noche.

Las redes fueron revisadas periódicamente cada ½ hora aproximadamente. Los individuos

capturados fueron identificados hasta el nivel de especie y liberados.

Para la identificación de murciélagos se utilizaron claves taxonómicas establecidas por

Albuja, 1,999; Simmons & Voss, 1,998; para roedores y marsupiales se revisó los trabajos

de Carleton & Musser, 1,989; Patton et al., 2000; Voss et al., 2,004. A cada uno de los

especímenes capturados se le identifico y luego fueron, fotografiados y liberados. También

se consideró la metodología descrita en Pacheco et al. (2007). En el Cuadro N° 10-LBB se

muestra la ubicación de las redes de neblina instaladas en la zona de estudios.

Cuadro N° 10-LBBUbicación de la Red de Neblina para Captura de Quiropteros

Coordenadas UTM*Estaciones de Redes deNeblina Este Norte

761,408 8’547,478Red-1

761,422 8’547,477

761,414 8’547,323Red-2

761,428 8’547,322

761,822 8’546,486Red-3

761,820 8’546,478

761,718 8’546,556Red-4

761,718 8’546,552* Zona 19 y Datum WGS84.Elaboración: Blgo Alvaro Torres Enriquez / Lahmeyer Agua y Energía S.A..

Esfuerzo de captura:

El esfuerzo de muestreo para murciélagos, debe ser medido por el número de redes

operativas por noche (RN) de inventario, considerando redes estándares de 12 m de largo x

2.5 m ancho (Pacheco et al. 2007, Medina et al. 2012) y 6 m en espacios reducidos (p. ej.

quebradas, entradas a cuevas, etc.). Ejemplo: si 10 redes se abren en el mismo lugar por

cinco noches, el esfuerzo se debe medir como 10 redes x 5 = 50 redes-noche o 50 RN.



Mamíferos Mayores

Existen diversos métodos para inventariar la presencia, distribución y abundancia de estegrupo de mamíferos, desarrollados tanto para hábitats abiertos donde se pueden observarfácilmente como en hábitat cerrados como los bosques (Voss y Emmons 1996).

i. Directos

Avistamientos: Implica la visualización directa de los ejemplares, en un grado tal que permitauna determinación correcta de la especie.

ii. Indirectos

Información Secundaria:

El conocimiento de la fauna silvestre existente en una zona, no necesariamente se revelapor la observación efectuada por el investigador, sino que se basa también, en lainformación y conocimiento de la misma que tienen las personas que viven dentro de lazona de estudio.

Rastros y fotografías

Los registros de mamíferos medianos y grandes se realizan usualmente a través de huellas,heces, refugios, huesos, pelos, rasguños, madrigueras y otros (Wilson et al. 1996, Krebs etal. 2008), puesto que gran parte de este grupo de mamíferos son animales terrestres decomportamiento tímido, presentes en baja densidad y por lo general se desplazan de formasolitaria o en grupos reducidos (Tellería 1986), Entre los métodos más frecuentes de registroindirecto se encuentran las trampas de pelo y/o trampas de huellas y las trampas cámara.

Entrevistas

Las entrevistas son realizadas a los pobladores locales de manera informal sin estructuraespecifica, que no involucren el uso de cuestionarios, cartillas o libretas que puedandesorientar o confundir al entrevistado, Primero, se debe pedir a los pobladores locales quedescriban a las especies presentes en el área de la forma más detallada posible y luegocontrastar la Información con láminas, procurando obtener detalles morfológicos yecológicos que ayuden a la determinación taxonómica de la especie. La presencia de laespecie debe estar respaldada por el hábitat y la altitud adecuada, es decir debería seresperada en la zona. Sin embargo, en lo posible se debe tratar de conseguir restos de losanimales cazados o utilizados por la comunidad local con el fin de respaldar la Informaciónobtenida durante las entrevistas.

c) Para la identificación de Reptiles

La metodología utilizada para identificar reptiles y anfibios es mediante Observación Directaen Transectos, (VES- Visual Encounter Survey) Heyer et al. (1,994). El método consiste enestablecer un transecto de evacuación con tres observadores; separados por una distanciade 10 metros, los que se desplazan en línea recta una longitud de 100 metros. Cadaobservador tiene una banda de observación de cinco metros a cada lado. El desplazamientode los observadores se efectúa con andar pausado, para evitar alterar a los reptiles. Eltransecto cubre un área total de 3,000 metros cuadrados, Los observadores caminan enparalelo registrando las especies de reptiles y el número de individuos observados dentro desu banda de observación.



Las horas que se determinaron para la evaluación de reptiles fue entre las 8:00 y las 12:00

hrs. momento en que estos animales, por ser heterotermos, se ubican en lugares donde

puedan calentarse con los rayos solares, por lo que son fácilmente observables, mientras

que la observación de anfibios fue principalmente noctura entre las 18:00 y las 21:00 hrs..

Se establecieron transectos para el registro de reptiles y anfibios, los que estuvieron

relacionados con actividades a ejecutar por el proyecto, la ubicación de los transectos se

presenta en el Cuadro Nº 11-LBB.

Cuadro Nº 11-LBBUbicación de Transectos para Observación de Herpetofauna

Coordenadas UTM *

Inicio FinalEstación deMonitoreo

Este Norte Este Norte

H-01 761,854 8’546,465 761,754 8’546,517

H-02 761,658 8’546,553 761,737 8’546,601

H-03 761,268 8’547,276 761,458 8’547,285

H-04 761,330 8’547,580 761,427 8’547,575* Zona 19 y Datum WGS84.Elaboración: Blgo Alvaro Torres Enriquez / Lahmeyer Agua y Energía S.A..

4.3.4.3 Equipos, Materiales y Equipos

a) Equipos:

Binoculares 7 x 30.

Trampas Sherman, Víctor de Golpe.

Redes de pesca de diferente luz de cocada.

Redes de Neblina.

Redes para captura de saurios.

Formol al 10%.

Pinzas.

Bisturí.

Algodón.

Gasa.

Libreta de campo.

b) Materiales:

Guias de campo para identificar:

Reptiles y Anfibios: Publicaciones relacionadas con: Sistemática de la distribución deanfibios y reptiles Amazónicos.



Aves: Aves del Departamento de Lima M. Koepcke. Birds of the High Andes, J.Fjeldsa.

Mamíferos: Mamíferos del Perú, M. Pacheco. Walker’s Mammals of the World, R.M.Nowak.

Se utilizó el siguiente material bibliográfico:

Aves:

Koepcke, M. 1,964. Las Aves del Departamento de Lima. Gráfica Morson. Lima.Perú.

Shulember et, al. 2,007. Birds of Peru. Princenton University Press, New Jersey, USA

Mamíferos:

Nowak, R.M. 1,999. Walker’s Mammals of the World. Sixth Edition. Vol. 2. The JohnsHopkins University Press. Baltimore and London. USA.

Pacheco. V., et. Al. 1,995 Lista Anotada de los Mamíferos Peruanos. OcasionalPapers in Conservation Biology.

Pacheco. V., 2,000. Mamíferos del Perú, en Cevallos, G. y J. A. Simonetti (eds.).2,002. Diversidad y Conservación de los Mamíferos Neotropicales. CONABIO-UNAM. México, D.F.

Reptiles:

Ariadne Angulo, Ignacio De la Riva, Karl-Heinz Jungfer 2004. Rhinella poeppigii. TheIUCN Red List of Threatened Species. Version 2014.3.

Carrillo, N., Icochea J, 1,996 Lista Taxonómica Preliminar de los Reptiles Vivientesdel Perú. Publicaciones del Museo de Historia Natural UNSM Serie Zoología.

Duellman, W. E., and A. W. Salas. 1991. Annotated checklist of the amphibians andreptiles of Cuzco Amazonico, Peru Occas. Papers Mus. Of Natur. Hist., Univ. ofKansas, Lawrence (143): 13 pp.

Rodríguez, O., Cordoba, J. Icochea, J 1,993 Lista Preliminar de los Anfibios del Perú.Publicaciones del Museo de Historia Natural UNSM Serie Zoología.

Amphibian Web, Frost Database, Reptilian Database, Museo de Historia Natural deCusco (MHNC).

4.3.4.4 Caracterización de la Zona de Estudio para Evaluación de Fauna

La fauna silvestre se caracteriza por desarrollar sus actividades biológicas sobre espacios,

caracterizados por determinada condición altitudinal, climática y tipo de vegetación, que le

permite obtener su alimento, garantice refugio y posibilite su reproducción, denominados

ambientes naturales o hábitats.



El proyecto Central Hidroeléctrica Ccollpani, se ubica adyacente al cauce del río Vilcanota,para evaluar la fauna existente en la zona de estudio se han ubicado tres estaciones demuestreo permanentes de evaluación integral de fauna, los cuales se encuentran asociadosa las principales actividades que se desarrollarán dentro del mencionado proyectohidroeléctrico, a continuación se presenta una caracterización general de cada una de lasestaciones de muestreo.

Estación de Muestreo 01

En esta área se observa la unión de los ríos Santa Teresa y Sacsara que desembocan al ríoVilcanota, en áreas aledañas a esta zona se tiene previsto la construcción e instalación delabocatoma de la central hidroeléctrica Predomina la vegetación de especies conspicuastípicas de áreas con muy poca pendiente, existe vegetación arbustiva y matorral, presenciade pedregosidad, cultivos de frutales en la parte baja y alta circundantes a la zona deestudio.


EL área de estudio se encuentra cerca al rio Vilcanota, se estima que en el área aledaña aesta ubicación se ejecutarán las obras de captación y represamiento de agua para la centralhidroeléctrica. Por sus inmediaciones pasa un riachuelo con considerable caudal, seobserva bastante pedregoso y en el entorno escasa vegetación arbustiva y arbórea, siendoasí que en la parte circundante al riachuelo existe vegetación arbustiva y matorrales mixtos


Esta unidad se encuentra en la comunidad de Mesada, el área presenta poca pendiente yexiste vegetación arbórea y arbustiva que son en su mayoría especies frutales, como lapalta, naranja, lima, café, etc. Con escasa vegetación herbácea.

4.3.4.5 Especies de Fauna Identificada en el Ámbito de Estudio

En el Cuadro Nº 12-LBB se presenta una relación de fauna identificadas en la evaluaciónefectuada a la zona de estudio, la cual se ha registrado, tomando como referencia lospuntos utilizados para la caracterización florística. La fauna se presenta listada por sunombre científico, la familia y el grupo taxonómico a la que pertenece, el nombre común conel cual es reconocido por los lugareños o citado en las guías de campo, así como sucondición respecto a su presencia en la zona de estudio.

Cuadro Nº 12-LBBListado de Fauna Silvestre Identificada en el Área de Estudio

Estaciones de MuestreoNombre Científico Nombre Común

01 02 03

Clase AMPHIBIAFamilia BufonidaeRhinella poeppigii Sapo V,C,FFamilia HylidaeScinax ruber V,CaCLASE REPTILIAFamilia Teiidae

Amaeiva amaeiva V,C,F V,F




01 02 03

Familia ColubridaeClelia clelia VCLASE MAMMALIAFamilia Didelphidae

Didelphis albiventris Zarigüeya oreja blanca A E,R A,RDidelphis marsupialis Carachupa A E RFamilia ProcyonidaeNasua nasua Coatí EFamilia MustelidaeLontra longicaudis Mayupuma E E,REira barabara Ucatí E,RFamilia Cricetidae

Akodon torques Jucuchas C,ECalomys surellus Ratón de campo E A,EFamilia ChinchillidaeLagidium peruanum Vizcacha R R EFamilia DasyprotcidaeDasyprocta Variegata Sihuayro E R,E R,EFamilia CuniculidaeCuniculus paca Samani EFamilia Phyllostomidae (Chiroptera)Artibeus anderseni Murciélago frugívoro C CArtibeus phaeotis Murciélago C CCarollia brevicauda Murciélago frutero CCarollia castanea Murciélago CDesmodus rotundus Murciélago Vampiro C CGlossophaga soricina Murciélago Vampiro CPhyllostomus hastatus Murcielago C CPlatyrrhinus nigellus Murcielago CSturnira lilium Murciélago carreteras amarillas C C CSturnira ludovici Murciélago frutero CSturnira oporaphilum Murcielago C CSturnira tildae Murciélago C CFamilia Vespertilionidae (Chiroptera)

Myotis sp Murciélago C CCLASE AVESFamilia CracidaeOrtalis guttata Chachalaca jaspeada AFamilia ThreskiornithidaePlegadis ridwayi Ibis de puna AFamilia AnatidaeMerganetta armata Pato de los torrentes AFamilia CathartidaeCathartes aura Galinazo de cabeza roja A A AFamilia FalconidaeButeo magnirrostris Aguilucho caminero AFalco sparverious Cernicalo A A AFamilia Psittacidae

Aratinga mitrata Cotorra mitrada A A AFamilia Columbidae

Leptotila verreauxi Paloma de puntas blancas A A,C AFamilia Cuculidae

Crotophaga ani Gallapatero de pico liso A A AFamilia Caprimulgidae

Caprimulgus longirostris Chotacabra de ala bandera A AFamilia Trochilidae

Amazilia chionogaster Colibri de vientre blanco A A A




01 02 03

Metallura tyriantina Colibri tirio A A APterophanes cyanopteru Ala zafiro grande AColibri coruscans oreja-violeta de vientre azul A AFamilia Furnaridae

Synallaxis azarae Cola espina de azara AFamilia Hirundinidae

Orochelidon murina Golondrina de vientre blanco A A APygochelidon cyanoleuca Golondrina azul y blanca A A AStelgidopteryx ruficollis golondrina ala rasposa sureña AFamilia Tyrannidae

Tyrannus melancolicus Tirano tropical A A AMyiozetetes similis Mosquero social A ASerpophaga cinerea Moscareta de los torrentes A A ASayornis nigricans Mosquero de agua A APhyllomyias cinereiceps Moscareta de cabeza ceniza AEuphonia xanthogaster Eufonia de vientre naranja APachyramphus polychopterus Cabezon de la blanca ATodirostron cinereum Espatulilla comun A A,CaElaenia parvirostris NB Fio fio de pico chico A AFamilia Troglodytidae

Troglodytes aedon Cucarachero comun CaHenicorhina leucophrys Cucarachero montes de pecho gris AFamilia VireonidaeVireo olivaceous Vireo de ojo rojo AFamilia ThraupidaeDacnis lineata Dacnis de cara negra AConirostrum cinereum Pico de cono cinereo ACoryphospingus cucullatus pinzon de cresta roja AThraupis episcopus Tangara azulejo A,C A ATangara viridicollis Tangara plateado ATangara cyanicollis Tangara de cuello azul ATangara xanthocephala Tangara de corona azafran ARamphocelus carbo Tangara de pico plateado A A ARamphocelus nigrogularis Tangara carmesi enmascarado AVolatinia jacarina Semillerito negro azulado A,CSaltator maximus Saltador de garganta anteada A AFamilia EmberizidaeZonotrichia capensis Gorrion de collar rufo A A,Ca ASporophila luctousa Espiguero negro y blanco AFamilia Fringillidae

Phrygillus plebejus Fringilo de pecho cenizo AEuphonia laniirostris Eufonia de pico grueso ASporagra olivaceus Jilguero olivaceo A A ASporagra magellanica Jilguero encapuchado AFamilia CardinalidaePheucticus chrysogaster Pico grueso de vientre dorado APiranga flava Piranga vermeja AFamilia Parulidae

Setophaga pitiayumi Parula tropical AMyioborus melanocephalus Candelita de anteojos AMyoborus miniatus Candelita de garganta plomiza A AFamilia Icteridae

Psarocolius decumanus Oropendola crestada ALeyenda: A: Avistamiento, E: Entrevista, R: Rastro, C: Captura, Ca: CantoElaboración: Blgo Alvaro Torres Enríquez / Lahmeyer Agua y Energía S.A..



Registro de Especies

La información registrada en campo y la información obtenida por consultas a la población

local, señala que en la zona de estudio se han identificado 94 especies de organismos de

fauna silvestre ubicados sistemáticamente en 75 géneros, 42 familias y 5 Phyllums,

distribuidas de la siguiente manera:

Anfibios: dos familias, dos géneros, dos especies.

Reptiles: dos familias, dos géneros, dos especies.

Mamíferos: nueve familias, diecisiete géneros, veintitrés especies.

Aves: veintiún familias, cuarenta y cinco géneros y cuarenta y nueves especies.

4.3.4.6 Evaluación de Fauna por Taxa

a) Evaluación Herpetológica

La evaluación para registro de anfibios y reptiles lagartijas se efectuó en las dos salidas de

campo (época húmeda y época seca). Los resultados de la evaluación efectuada, en el

Cuadro Nº 13-LBB señala que los registros de anfibios y reptiles fueron más efectivos en la

temporada seca respecto de la húmeda, principalmente por las condiciones ambientales que

se presentaron, vale decir, en la temporada húmeda, los días de evaluación, presentaron

cielo cubierto con nubes y por ende menor temperatura ambiental, lo que afecta el normal

desenvolvimiento de este grupo de organismos, que por ser heterotermos, requieren de la

radiación solar y fuerte sensación térmica para realizar eficientemente sus funciones

biológicas.

Cuadro Nº 13-LBBObservación de Reptiles según Estación de Muestreo


HERP-01 HERP-02 HERP-03Clase Orden Familia Especie

H S H S H S

Bufinidae Rhinella poeppigii 1 1Anfibia Anura

Hylidae Scinax ruber 5

Sauria Teiidae Ameiva ameiva 1 1Reptilia

Squamata Colubridae Clelia clelia 1

Total 1 1 1 7

H = Época húmeda; S = Época secaElaboración: Blgo Alvaro Torres Enriquez / Lahmeyer Agua y Energía S.A..

Se han identificado cuatro especies distribuidas en cuatro familias y tres órdenes, siendo la

especie Scinaxis ruber la que presenta mayor número de individuos. Asimismo, la estación

de muestreo HERP-02 es la que presenta el mayor número de individuos observados, lo que

ocurrió en la época seca. En la estación de muestreo HERP-03 no se reportó ningún registro

en ambas temporadas de evaluación. Gráfico N° 09-LBB.




Respecto del análisis de diversidad, Cuadro Nº 14-LBB debido a los bajos resultados

obtenidos en las dos salidas de campo, los resultados señalan una muy baja diversidad de

especies La escasa generación de data obtenida en las salidas de campo es poco

significativa para la adecuada aplicación de los índices.

Gráfico N° 09-LBBDistribución de Especies Herpetológicas por Estación de Muestreo

Cuadro Nº 14-LBBÍndices de Diversidad Biológica

Epoca deMuestreo

Estación deMuestreo

N° deEspecies (S)

N° deIndividuos (N)

I H´ 1-D J´

HERP-1 1 1 -- 0.00 -- --Húmeda

HERP-2 3 7 1.03 0.34 0.45 0.31

HERP-1 1 1 -- 0.00 -- --Seca

HERP-2 1 1 -- 0.00 -- --

I = Índice de Margalef H’ = Índice de Shannon y Wiener 1-D = Índice de Simpson J’ = Índice de EquitabilityElaboración: Blgo Alvaro Torres Enriquez / Lahmeyer Agua y Energía S.A.

b) Evaluación de la Mastofauna

Mamíferos Menores

La evaluación realizada para el registro de mamíferos menores se efectuó en las dos salidasde campo (época húmeda y época seca). Las especies capturadas, luego de su evaluaciónfenotípica, fueron liberadas, en lugares cercanos al lugar de captura. La informaciónbibliográfica relacionada con este grupo de mamíferos señala que no existe Informaciónespecífica respecto de trabajos de investigación realizados en la zona de estudio, solo se haubicado información general para la vertiente oriental de la región sur del Perú.



Los resultados de la captura, se muestran en el Cuadro N° 15-LBB y Gráfico N° 10-LBB,indican que se capturaron tres especimenes de mamíferos menores en las dos temporadasde evaluación, los cuales perteneces a dos especies de la familia Cricetidae (roedores). Losresultados indican que la mayor captura se produjo en la Estación de Muestreo MM-03 enlas que se capturaron dos individuos uno en cada época de evaluación, y la segundaespecie fue capturada en la Estación de Muestreo MM-01 en la temporada húmeda, laEstación de Muestreo MM-02 no reporta capturas.

Cuadro Nº 15–LBBRegistro de Especies de Mamíferos Menores según Estación de Muestreo


MM-02 MM-01 MM-03Orden Familia EspecieNombre

localH S H S H S

Akodon torques Jucuchas 1RODENTIA CRICETIDAE

Calomys surellus Ratón 1 1

TOTAL 1 1 1

H = Época húmeda; S = Época secaElaboración: Blgo Alvaro Torres Enriquez / Lahmeyer Agua y Energía S.A.

Gráfico N° 10-LBBNúmero de especies de Mamíferos Menores por Estación de Muestreo


Al aplicar los índices de diversidad y dominancia, los valores resultantes son muy bajos,

incluso con resultados con valor cero tanto para la diversidad como para la dominancia, y

ello está en relación a que la cantidad de datos son insuficientes para una adecuada

aplicación de las formulas, por tanto, no se presentan dichos resultados.



Mamíferos Mayores

La mayor referencia a mamíferos mayores proviene de información secundaria. El Cuadro

N° 16–LBB, permiten apreciar los datos obtenidos para este grupo de animales. Analizando

los resultados relacionados con mamíferos mayores podemos señalar que el orden mejor

representado corresponde al orden Rodentia con tres familias e igual número de especies,

seguido de los órdenes Didelphimorpia y Carnívora con dos familias y dos especies

respectivamente. La distribución de individuos en ambas estaciones es muy similar, siendo

que las especies Cuniculis paca, Eira barbara y Nasua nasua, solo son reportados solo en

una estación de muestreo.

Cuadro N° 16–LBBÍndices de Diversidad Biológica


MM-02 MM-01 MM-03Orden Familia Especie Nombre local

H S H S H S

Didelphis albiventrisZarigüeya de orejasblancas

1 1 1 2Didelphimorphia Didelphidae

Didelphis marsupialis Carachupa 1 1 1 1

Lontra longicaudis Mayupuma 1 1 2Mustelidae

Eira barbara Ucati 1 1Carnívora

Procyonidae Nasua nasua Coatí, Capizo 1 1

Chinchillidae Lagidium peruvianum Vizcacha 1 1 1 1

Dasyproctidae Dasyprocta variegata Sihuayro 2 2 1 1Rodentia

Cuniculidae Cuniculus paca Samani 2

TOTAL 6 3 4 3 5 7


Al realizar una comparación entre las estaciones de muestreo y las temporadas de

evaluación, Gráfico N°09-LBB, se pudo determinar que la estaciones de muestreo con

mayor riqueza de especies registradas son la MM-03 temporada seca y la MM-02,

temporada húmeda con cinco especies y siete y seis individuos respectivamente. La

estación MM–03, temporada seca, con siete especimenes pertenecientes a cinco especies,

continúa la estación de muestreo MM-02, temporada húmeda, es la que presenta menor

riqueza de especies con tres especies y tres individuos.

El Gráfico N° 10–LBB, permite apreciar que las estaciones de muestreo con mayor

diversidad de especies han sido MM–03, temporada seca con cinco especies,

pertenecientes a cuatro familias y tres órdenes y MM–02 con cinco especies, pertenecientes

a cuatro familias y tres ordenes



Gráfico N° 09–LBBNúmero de Especies por Estación de Muestreo

Gráfico N° 10–LBBTotal de Especies por Estación de Muestreo


Respecto de los índices de diversidad, Cuadro N° 17-LBB podemos señalar que el mayor

valor se presenta en las estaciones MM–02, temporada húmeda y MM–03, temporada seca.

Los demás índices coinciden con estas dos estaciones de muestreo, determinando que la

mayor riqueza biológica, para mamíferos mayores, se presentan en dichas zonas.



Cuadro N° 17–LBBÍndices de Diversidad Biológica


MM - 02 MM - 01 MM - 03Índices deDiversidad

H S H S H S

Riqueza 5 3 3 4 4 5

Abundancia 6 3 4 5 5 7

Dominance_D 0.2222 0.3333 0.375 0.28 0.28 0.2245

Shannon_H 1.561 1.099 1.04 1.332 1.332 1.55

Simpson_1-D 0.7778 0.6667 0.625 0.72 0.72 0.7755

Margalef 2.232 1.82 1.443 1.864 1.864 2.056

Equitability_J 0.9697 1 0.9464 0.961 0.961 0.963H = Época húmeda; S = Época secaElaboración: Blgo Alvaro Torres Enriquez / Lahmeyer Agua y Energía S.A.

Quirópteros

La mayor representación biológica de mamíferos esta expresada por la presencia de

quirópteros, mejor conocidos como murciélagos. La revisión de los resultados, Cuadro

N°18-LBB y Gráfico N° 11-LBB obtenidos en las dos temporadas de evaluación, nos

indican que, se ha identificado dos familias de quirópteros Phyllostopmidae y

Vespertilionidae, la primera con 12 especies y la segunda con tan solo una especie.

Cuadro N° 18-LBBRegistro de Especies de Quirópteros según Estación de Muestreo


MM-02 MM-01 MM-03Orden Familia Especie Nombre local

H S H S H S

Artibeus anderseni Murciélago Frugivoro 1 1 2 1 1

Artibeus phaeotis Murciélago 1 1 1 1

Carollia brevicauda Murciélago Frutero 3 1

Carollia castanea Murciélago 1

Desmodus rotundus Murciélago Vampiro 1 2

Glossophaga soricina Murciélago Vampiro 2

Phyllostomus hastatus Murciélago 1 2 2

Platyrrhinus nigellus Murciélago 1 1

Sturnira lilium Murciélago de carreteras amarillas 2 1 1 2

Sturnira ludovici Murciélago Frutero 1 1

Sturnira oporaphilum Murciélago 2 3 2

Phyllostomidae

Sturnira tildae Murciélago 2 1 1

CH

IRO

PTE

RA

Vespertilionidae Myotis sp Murciélago 1 1

Total 7 8 13 9 6 5H = Época húmeda; S = Época secaElaboración: Blgo Alvaro Torres Enriquez / Lahmeyer Agua y Energía S.A.

Se han registrado un total de 13 especies, Grafico N° 11-LBB de las cuales Sturnira

oporaphilum reporta el mayor número de especimenes, con siete individuos, seguido de

Artibeus anderseni Sturnira lilium con seis especimenes cada uno, Carolia castanea es la

única especie que registra un solo individuo.



Gráfico N° 11–LBBTotal de Especies

6

4 4

1

3

2

5

2

6

2

7

4

2

Artibeus anders

eni

Artibeus phaeotis

Carollia

brevic

auda

Carollia

cast

anea

Desmodus ro

tundus

Gloss

ophagaso

ricin

a

Phyllost

omus has

tatu

s

Platyr

rhin

us nigellu

s

Sturn

iralili

um

Sturn

iralu

dovici

Sturn

iraopora

philum

Sturn

iratil

dae

Myo

tissp

Las estaciones de muestreo, Gráfico N°12-LBB que ha presentado mayor número deespecies son MM-01, temporada húmeda con ocho especies, cinco géneros, representadosen una familia y en la temporada seca con trece especies, siete géneros y una familia, yMM-02, temporada seca con siete especies, cuatro géneros y una familia, la estación MM-03muestra la menor cantidad de especies registradas (cuatro) para ambas estaciones deevaluación.

Gráfico N° 12–LBBTotal de Especies por Estación de Muestreo

1

1

1

1

1

1

1

2

1

2

1

1

4

4

5

5

2

3

6

7

7

6

4

4

0 1 2 3 4 5 6 7 8

Húmeda

Seca

Húmeda

Seca

Húmeda

Seca

MM

02

MM

01

MM

03

ORDEN FAMILIA GENERO ESPECIE

Índices de diversidad

Al efectuar el análisis de la aplicación de los índices de diversidad para los resultados de laevaluación de Quirópteros, Cuadro N° 19-LBB se establece que la la estación de muestroMM–01 temporada húmeda presenta la mayor abundancia de especimenes con 13individuos para siete especies, seguido de MM–01, temporada seca con nueve individuosrepresentados en seis especies.



El mayor valor del índice de diversidad se encuentra en la estación de muestreo MM–02,temporada seca, siendo ésta estación la que presenta los mayores índices de diversidad enlas estaciones evaluadas en cada temporada de muestreo.

Cuadro N° 19–LBBÍndices de Diversidad Biológica de Quirópteros


MM - 02 MM - 01 MM - 03Índices deDiversidad

H S H S H S

Riqueza 6 7 7 6 4 4

Abundancia 7 8 13 9 6 5

Dominance_D 0.1837 0.1563 0.1716 0.16 0.2778 0.2222

Shannon_H 1.748 1.906 1.845 1.887 1.33 1.561

Simpson_1-D 0.8163 0.8438 0.8284 0.84 0.7222 0.7778

Margalef 2.569 2.885 2.339 2.606 1.674 2.232

Equitability_J 0.9755 0.9796 0.9479 0.9696 0.9591 0.9697H = Época húmeda; S = Época secaElaboración: Blgo Alvaro Torres Enriquez / Lahmeyer Agua y Energía S.A.

Evaluación de Avifauna

Tal como hemos referido en la parte de metodologías, la avifauna es la que mejor se

presenta para efectuar un análisis de la calidad del ecosistema existente en la zona de

estudio y esto se debe principalmente a que los individuos pertenecientes a esta taxa son

fácilmente observables.

En tal sentido la evaluación para registro de aves se efectuó en las dos salidas de campo

(época húmeda y época seca), y se utilizó para la identificación de las aves guías de campo

especializadas. Los registros generales se obtuvieron en las locaciones que se

establecieron para registro de la flora.

Como soporte a los resultados de campo se revisó información bibliográfica correspondiente

a la zona de estudio, sin embargo solo se pudo obtener información general para el País.

Los resultados de los censos efectuados en las estaciones de muestreo establecidos, se

presentan en el Cuadro Nº 20-LBB en donde se muestra el número de especies por época

y las estaciones de muestreo el número total de especies, número de familias y el total de

familias, registradas en las estaciones de muestreo. Dichos resultados permiten señalar que

las estación de muestreo que presenta mayor número total de especies y familias es AV–03,

mientras que las estaciones AV–01 y AV–02 presentan la misma cantidad total de especies,

ver Gráfico Nº 13-LBB lo cual es concordante pues muestra que las aves se distribuyen y

localizan en las zonas donde les ofrece mayores posibilidades alimenticias o mejor refugio

en sus procesos migratorios.



Cuadro Nº 20–LBB

Especies de Aves Registradas en Transectos


AV-01 AV-02 AV-03Especies

H S H S H S

Nº de Especies 25 16 16 16 38 13

Total especies 25 25 42

Nº de Familias 11 8 12 10 18 7

Total Familias 15 14 18


Gráfico N° 13-LBBNúmero de Especies y Familias de Aves por Estación de Muestreo

Se han registrado 53 especies de aves, siendo la especie que ha registrado mayor número

de individuos en el conteo total, tanto en las dos épocas de muestreo como en las diferentes

estaciones de muestreos, ha sido la Golondrina vientre blanco, Oreotrochilum murina, con

68 individuos, le sigue el Jilguero oliváceo, Sporophaga olivaceus con 32 individuos,

Tangara azuleja Thraupis spicopus con 31 especimenes, el Gallapatero de pico liso,

Crotophaga ani con 30 individuos y la Cotorra mitrada, Aratinga mitrata con 29 individuos.

Dos especies reportaron un solo registro, mientras que 10 especies reportaron dos

individuos, 6 especies tres registros y 4 especies reportaron 8 registros, lo que se muestra

en el Gráfico Nº 14-LBB.



El Gráfico N° 15-LBB muestra la distribución de las aves según estación de muestreo y

temporada de evaluación, en donde se puede apreciar que las estaciones de muestreo AV-

02 en la temporada Húmeda y AV–03 temporada Húmeda presenta tres especies que solo

han sido reportadas para estos puntos de evaluación, mientras que la mayor coincidencia

para especies de aves, vale decir donde se han registrado a la misma especie en dos

estaciones de muestreo, lo presentan AV-01 húmeda con Av-03 húmeda y AV-02 húmeda,

con AV-03 húmeda, con 13 especies que han sido observadas en ambas estaciones. Las

coincidencias más bajas, con cuatro especies, se han dado entre AV-01 temporada seca

con AV–02 temporada seca y AV–02 temporada húmeda con AV-03 temporada seca, lo que

permite señalar que no existe una especificidad de especies respecto de la zona de estudio

en cuanto a especies especialistas, lo que permite también señalar que en la temporada

húmeda hay mayor variedad de especies que se encuentran en el ambiente que provee

mayor posibilidad alimenticia como es AV–03 en la temporada húmeda, permitiendo que las

especies utilicen los otros ambientes para refugiarse e interactuar con la fuente de alimento.

Gráfico N° 14-LBBTotal Número de Individuos por Especie

Orochelidon murina

Pygochelidon cyanoleuca

TYRANNIDAE Tyrannus melancolicus

Myiozetetes similis

Serpophaga cinerea

Sayornis nigricans

Phyllomyias cinereiceps

Euphonia xanthogaster

Pachyramphus polychopterus

Todirostron cinereum

Elaenia parvirostris NB

VIREONIDAE Vireo olivaceous

Coryphospingus cucullatus

Dacnis lineata

Thraupis episcopus

Tangara viridicollis

Tangara cyanicollis

Tangara xanthocephala

Ramphocelus nigrogullaris

PASSERIFORMES

HIRUNDINIDAE

THRAUPIDAE



Gráfico Nº 15-LBBCoincidencia de Especies Registradas en las Estaciones de Muestreo

Especies AV-01 H

AV-01 H 02 AV-01 S

AV-01 S 04 03 AV-02 H

AV-02 H 08 06 03 AV-02 S

AV-02 S 07 04 05 02 AV-03 H

AV-03 H 13 11 13 11 03 AV-03 S

AV-03 S 05 06 04 05 08 02


Finalmente los resultados han sido analizados utilizando los índices de Diversidad deShannon – Wiener y de Dominancia de Simpson, los cuales son presentados en el CuadroNº 21-LBB.

Cuadro Nº 21–LBBÍndices de Diversidad de Aves


AV-01 AV-02 AV-03Índices deDiversidad

H S H S H S

Riqueza 16 16 16 14 38 13

Abundancia 107 72 90 54 237 36

Shannon_H 2.436 2.635 2.371 2.502 3.38 2.405

Simpson_1-D 0.896 0.919 0.8672 0.907 0.9583 0.898

Margalef 3.21 3.507 3.333 3.259 6.767 3.349


Los resultados de la aplicación del Índice de Diversidad, nos permite señalar que la

diversidad biológica para el grupo aves, dentro de la zona de estudio, es bastante

homogénea, siendo el valor más alto el observado para la estación Av–03 húmeda con 3.38

bits/ind, estación en donde se presenta la la mayor dominancia.

De acuerdo a estos resultados, podemos interpretar que existe un equilibrio en la

distribución de las especies de aves dentro de los hábitats evaluados mediante transectos

de observación, por lo que podemos concluir que existe una gran similitud ornitológica en los

ambientes naturales, evaluados.



4.3.5 Recursos Hidrobiológicos

4.3.5.1 Generalidades

En general todo cuerpo de agua permite el desarrollo de organismos unicelulares ypluricelulares que conforman la base de la cadena trófica de la vida que se desarrolla enestos ambientes. Estos organismos presentan determinadas adaptaciones a los diferentesambientes acuáticos.

La presencia y abundancia de determinadas especies permiten identificar la calidad delagua así como la calidad del ambiente acuático.

La composición del bentos en estos sistemas lénticos y lóticos, dependen principalmente dela velocidad de corriente, la consecuente granulometría del sedimento y su contenido demateria orgánica.

En diversos estudios el bentos es un buen reflejo de la calidad del agua debido a supermanencia relativamente larga en el sustrato y a la diferente sensibilidad de sus especies(Hawkes 1980). Es por ese motivo que se le emplea como indicador de contaminación,especialmente donde existe un amplio conocimiento de sus especies.

Para determinar la composición trófica de los ríos se realizaron muestreos escogiéndosepuntos de acuerdo a las características que presentan estos ambientes y de acuerdo a lasespecificaciones del Estudio de Impacto Ambiental del Proyecto Central HidroeléctricaCcollpani.

Se determinó la composición de la biodiversidad acuática, el plancton, los macroinvertebrados y variables ambientales, teniendo como resultado la presencia de ciertosorganismos que se detallan en los cuadros del análisis hidrobiológico.

4.3.5.2 Material y Equipos

Equipos de laboratorio para muestreo

Red manual de plancton de 45 micras de abertura de poro y boca de 15 cm dediámetro, para muestreo cualitativo y cuantitativo de plancton.

Muestreador Surber estándar para muestreo de Bentos.Espátula de raspado.pH meter digital portátilGPS digitalTermómetros ambiental y acuático

Envases para transporte de muestras

Frascos de 400 ml. con tapa hermética.Frascos viales con tapa de jebe.Goteros.Pipetas.

Reactivos

Formaldehído (proporcionado por el Laboratorio).



4.3.5.3 Metodología del Muestreo

Para el análisis del plancton se tomaron muestras de agua de los espejos de agua, paramuestra cualitativa con red manual de plancton en la zona litoral (solo en lagunas), paramuestra cuantitativa se tomaron 20 litros de agua y filtradas en red planctónica; el planctonconcentrado en las redes en ambos casos fue vertido en frascos de 400 ml. con tapahermética y fueron preservados con formol azucarado al 4% - 5% (Haney and Hall, 1973)luego fueron etiquetados y transportados al laboratorio, para su respectiva revisión eidentificación de los organismos.

Para el análisis de los macro invertebrados bentónicos se tomaron muestras a manera AdLivitum del fondo de los diferentes cuerpos de aguas muestreadas con una draga Surberestándar de 20 x 20 cm de superficie de captura. El material muestreado fue vertido enfrascos de vidrio de 400 ml. con tapa hermética y fueron preservados con formol azucaradoal 4% - 5% (Haney and Hall, 1973) y luego fueron etiquetados y transportados al laboratorio,para su respectiva revisión e identificación de los organismos.

Para el análisis de Perifiton se tomaron muestras a manera Ad Livitum de las estructuras

sólidas (piedras, vegetación) del fondo de los diferentes cuerpos de aguas muestreados con

una espátula de raspado. El material muestreado fue vertido en frascos de vidrio de 400 ml.

con tapa hermética y fueron preservados con formol azucarado al 4% - 5% (Haney and Hall,

1973) y luego fueron etiquetados y transportados al laboratorio, para su respectiva revisión e

identificación de los organismos.

También se tomaron datos fisicoquímicos como: temperatura, color del agua, etc., así como

también se hicieron observaciones visuales de los diferentes cuerpos de aguas muestreados

y el área aledaña para determinar el tipo de ecosistema.

4.3.5.4 Metodología de Análisis Estadístico de las Muestras

Los datos obtenidos se procesaron con índices estadísticos para obtener valores

representativos de diversidad, y calidad de agua utilizando estos organismos como

bioindicadores y comparados en ambas épocas de muestreo. Como índices indicadores de

biodiversidad, y bioindicadores de calidad de agua se utilizaron:

a) Para biodiversidad: Abundancia Relativa, Índice de Diversidad de Shannon Wiener (H´,

Krebs 1985), y de Simpson (D´, Simpson 1949), Índice de Dispersión Biótica (IDB). El

índice de segregación de Pielou (1961) ( J).

b) Para calidad del Agua: Índice General Diatómico (IDG, Dell'Uomo 1982), Índice Biótico

de Polución (IBP), Índice Biological Monitoring Working Party (BMWP, Hellawell, 1978),

Índice Biológico Normalizado (IBGN, AFNOR, 1992), Macroinvertebrate Communiti Index

(MCI, QMCI Quinn & Hickey, 1990), Índice biológico EPT (Ephemeroptera, Plecoptera,

Trichoptera) (Carrera & Fierro 2001).

c) Para la fauna ictiológica se usaron los parámetros de Riqueza, Biomasa, Densidad, así

como el índice de Diversidad y Similitud.



d) Para evaluar el hábitat físico de un río se aplicó el protocolo SVAP (Stream VisualAssessment Protocol).

e) Para evaluar la calidad del ecosistema de ribera de ríos se aplico el índice QBR index ofriverside forest (MUNNÉ ET AL. 1998; 2003).

f) Para evaluar el hábitat de ribera del río se aplicó el índice de hábitat fluvial IHF fuepropuesto por PARDO ET AL. (2002).

El índice de Shannon o índice de Shannon-Wiener se usa en ecología u otras cienciassimilares para medir la biodiversidad. Este índice se representa normalmente como H’ y seexpresa con un número positivo, que en la mayoría de los ecosistemas naturales varía entre0 y No tiene límite superior o en todo caso lo da la base del logaritmo que se utilice. Lasmayores limitaciones de este índice es que no tiene en cuenta la distribución de las especiesen el espacio y No discrimina por abundancia.

Índice de diversidad de Simpson (también conocido como el índice de la diversidad de lasespecies o índice de dominancia) es uno de los parámetros que nos permiten medir lariqueza de organismos. En ecología, es también usado para cuantificar la biodiversidad deun hábitat. Toma un determinado número de especies presentes en el hábitat y suabundancia relativa. El índice de Simpson representa la probabilidad de que dos individuos,dentro de un hábitat, seleccionados al azar pertenezcan a la misma especie.

El índice de segregación J de Pielou (1961) describe la combinación o mezcla de dosespecies, esto es, el ordenamiento espacial de una especie respecto a la otra. J tomavalores de –1 a 1; -1 representa la máxima segregación negativa posible, 0 denota ausenciade segregación y 1 corresponde a la máxima segregación positiva posible (Pielou, 1977).Valores de J < 0 significan por tanto que existe asociación entre las especies; J > 0corresponde a una segregación, esto es, separación espacial de las especies.

El índice IDG se fundamenta en la sensibilidad (afinidad y tolerancia) de las Diatomeas a losnutrientes, a la sustancias orgánicas y el grado de mineralización del cuerpo de agua, con lareferencia particular a los cloruros de que pueden representar un factor poderoso depolución de las aguas interiores.

Los valores de IDG van en orden decreciente de los niveles de contaminación. El valor delíndice que obtenemos podrá variar entre 1 y 5, rango establecido para la clasificación de lacalidad de las aguas.

El índice IBP se fundamenta en determinar la calidad del agua por medio de grupostaxonómicos de fitoplancton presentes que son sensibles a determinadas condiciones delmedio acuático, Este índice permite detectar la contaminación del agua por medio delFitoplancton como indicador.

El índice BMWP (Biological Monitoring Wworking Party), es un Índice biológico británicomodificado y adaptado a las características geomorfológicas y climáticas de los ríos. Esteíndice da puntuación a 131 familias de macroinvertebrados que son utilizados comoindicadores, de acuerdo con la correspondiente sensibilidad a la contaminación. La suma delos valores de todas las familias identificadas da un valor final del índice que nos permiteclasificar los puntos de control en 5 clases, cada una de las cuales corresponde a un niveldiferente de calidad ecológica de las aguas.



El índice IBGN es un índice francés, (norma AFNOR, Diciembre 1992). Deriva del IBG

(Índice Biológico Normalizado), que es norma AFNOR experimental N T 90-350, de Octubre

1985. Este índice permite evaluar la calidad general del curso del agua mediante análisis de

la macrofauna béntica, la cual está considerada como indicador de la calidad general;

también se puede evaluar el efecto de una perturbación cuando es aplicado

comparativamente río arriba y río abajo de un vertido o de cualquier otra perturbación.

El índice MCI (Macroinvertebrate Community Index), una versión preliminar del MCI (el IHQI,

o el índice de calidad de Habitat invertebrado) estaba incluido en el informe biológico de

agua dulce de Taranaki ringplain (Taranaki Catchment Commission 1984), pero fue la

publicación Water y Soil Miscellaneous preparado temporalmente en 1984 en el centro de

calidad de agua (Hamilton) (1985 de Stark) que propuso el índice de la Comunidad de

Macroinvertebrados de Nueva Zelandia (MCI) y su variante cuantitativa (QMCI) para tasar el

enriquecimiento orgánico en ríos pedregosos. Una variante más redituable del QMCI

llamado el índice semi- cuantitativo de la Comunidad de Macroinvertebrados, o SQMCI que

fue desarrollado en 1998 (Stark 1998). El SQMCI usa una escala de cinco puntos de código

de abundancias (i.e.. Infrecuente, común, abundante, muy abundante, sumamente

abundante).

Para la fauna ictiológica se usaron los parámetros de Riqueza, así como el índice de

Diversidad.

El Índice biológico EPT (Ephemeroptera, Plecoptera, Trichoptera). Este análisis de EPT se

realiza mediante la utilización de estos tres grupos de macroinvertebrados que son

indicadores de la calidad de agua, debido a que son más sensibles a la contaminación. El

valor obtenido se lleva a una tabla de calificaciones de calidad de agua que va de muy

buena a mala calidad. (Carrera & Fierro 2001).

El protocolo SVAP (Stream Visual Assessment Protocol) evalúa el hábitat físico de un río

mediante la asignación de puntajes entre 1 a 10. Para esta evaluación se usan 15

parámetros que en ciertos casos puede excluir uno o más de éstos, cuando no se aplica a

un sitio. El proceso consiste en calificar estos 15 parámetros aplicando altos puntajes (9,6 a

10) para ríos o quebradas que tienen condiciones sanas, y bajos puntajes (2,2 a 1) para ríos

o quebradas en mal estado (Mafla et al. 2005).

Siendo los 15 criterios o parámetros que se evalúan:

1) Apariencia del agua

2) Sedimentos

3) Zona ribereña (ancho y calidad)

4) Sombra

5) Pozas

6) Condición del cauce

7) Alteración hidrológica (desbordes)

8) Refugio (hábitat) para peces

9) Refugio (hábitat) para macro-invertebrados

10) Estabilidad de las orillas

11) Barrera al movimiento de peces



12) Presión de pesca

13) Presencia de desechos sólidos

14) Presencia de estiércol

15) Aumento de nutrientes de origen orgánico

El índice QBR propuesto por Munné et al. (1998; 2003), (Índice de Calidad del Bosque de

Ribera) que en cuatro bloques recoge distintos componentes y atributos de las riberas: -

cubierta vegetal, -estructura de la vegetación, - naturalidad y complejidad del bosque

ribereño y – grado de alteración del canal fluvial. Los valores del índice se distribuyen en

cinco rangos de calidad (>95: estado natural; 90-75: calidad buena; 7055: calidad aceptable;

30-50: calidad mala; < 25: calidad pésima).

El índice de hábitat fluvial IHF fue propuesto por PARDO ET AL. (2002) y su puntuación final

varía entre 0 (mínima calidad) y 100 (máxima calidad). Se establecieron tres rangos de

calidad de acuerdo con las indicaciones de la Directiva Marco del Agua a los que

corresponde tres colores diferentes para su representación gráfica. El índice se distribuye en

tres rangos (71 – 100 nivel de calidad muy buena, 51 – 70 de calidad buena y < 50 no llega

a buena calidad). Para la fauna ictiológica se usaron los parámetros de Riqueza, así como el

índice de Diversidad y Similitud.

4.3.5.5 Ubicación de los Puntos de Muestreo

Durante la etapa de trabajo de campo se han tomado un conjunto de muestras puntuales o

al azar ubicadas estratégicamente para poder evaluar en forma integral las condiciones de

la calidad del agua. Se han considerado seis (06) puntos de muestreo que se ubican en el

Cuadro Nº 01-RH.

Cuadro Nº 01-RHUbicación de los Puntos de Muestreo de Aguas

Coordenadas UTMCódigo Lugar

E (m) N (m)

Altitud(msnm)

Zona Datum

MRHC-1 Río Vilcanota 761,868 8’546.490 1501 18 WGS84




MRHC-5 Río Sacsara (Salcantay) 761,148 8’546.921 1478 18 WGS84

Elaboración: Blgo Juan Carlos Ascencio Mora / Lahmeyer Agua y Energía S.A., Marzo del 2,015.

4.3.5.6 Descripción de los Puntos de Muestreo

En la etapa de trabajo de campo se han tomado observaciones de las características del

ecosistema en cada punto muestreado, las que se describen en el Cuadro Nº 02-RH,

indicando la fecha del muestreo.



Cuadro Nº 02-RHDescripción de los Puntos de Muestreo de Aguas

Fecha y HoraCódigo Lugar

H SDescripción

MRHC-1Río

Vilcanota26/04/201407:00 hrs.

22/10/201409:05 hrs.

En la época húmeda presenta un agua muy turbia, corriente de aguamuy rápida, fondo con rocas y cantos rodados, sin vegetaciónsumergida, la temperatura del agua es 21,1 °C y la temperaturaambiental es de 21,1 °C, pH = 7,30En la época seca presenta una agua muy clara, corriente de agualenta, fondo con rocas, cantos rodados y limo, sin vegetaciónsumergida, la temperatura del agua es 19,9 °C y la temperaturaambiental es de 22,3 °C, pH = 7,44

MRHC-2Río


22/10/201411:30 hrs.

En la época húmeda presenta un agua turbia, corriente de agua muyrápida, con rocas, lecho con arena fina, rocas dispersas y cantosrodados, sin vegetación sumergida. la temperatura del agua es 20.1°C y la temperatura ambiental es 20,3°C, pH = 7.22En la época seca presenta una agua muy clara, corriente de agualenta, con rocas, lecho con arena fina, rocas dispersas y cantosrodados, sin vegetación sumergida. la temperatura del agua es 24.1°C y la temperatura ambiental es 25,1°C, pH = 7.24

MRHC-3Río

Vilcanota26/04/201411,50 hrs.

22/10/201413,45 hrs.

En la época húmeda presenta un agua turbia, corriente de agua muyrápida, con lecho con rocas, arena gruesa y cantos rodados, sinvegetación sumergida. la temperatura del agua es 21,4 °C y latemperatura ambiental es 21,8°C, pH = 7.23En la época seca presenta una agua turbia, corriente de agua rápida,con lecho con rocas, arena gruesa y cantos rodados, sin vegetaciónsumergida. la temperatura del agua es 24,8 °C y la temperaturaambiental es 28,0°C, pH = 7.23

MRHC-4Río


22/10/201412:45 hrs.

En la época húmeda presenta un agua turbia, corriente de agua muyrápida, con algunas Rocas, lecho de arena fina, sin vegetaciónsumergida. la temperatura del agua es 20 °C y la temperaturaambiental es 0,1°C, pH = 7.20En la época seca presenta una agua muy clara, corriente de aguarápida, con algunas Rocas, lecho de arena fina, sin vegetaciónsumergida. la temperatura del agua es 25,5 °C y la temperaturaambiental es 31,6°C, pH = 7.17

MRHC-5Río Sacsara(Salcantay)

26/04/201408:15 hrs.

22/10/201410:50 hrs.

En la época húmeda presenta un agua clara, corriente de aguarápida, con lecho con cantos rodados, arena fina, sin vegetaciónsumergida. la temperatura del agua es 20,3 °C y la temperaturaambiental es 20.1°C, pH = 7,20En la época seca presenta un agua clara, corriente de agua rápida,con lecho con cantos rodados, arena fina, sin vegetación sumergida.la temperatura del agua es 20,9 °C y la temperatura ambiental es22.2°C, pH = 7,16

S: Época Seca H: Época HúmedaElaboración: Blgo Juan Carlos Ascencio Mora / Lahmeyer Agua y Energía S.A., Marzo del 2,015.

4.3.5.7 Resultados

a) Comunidad Fitoplanctonica

La riqueza de especies en los puntos muestreados en ambas épocas se aprecia que es

baja, siendo en la época seca con mas riqueza que en la época húmeda, como se muestra

en el Cuadro Nº 03-RH y Gráfico Nº 01-RH.



Con respecto al índice de Shannon y Wiener en los puntos muestreados se aprecia que en

la época húmeda la diversidad es media en cambio en época seca es baja, pero

considerando el ecosistema del área de influencia con respecto a esta comunidad es baja,

ver Cuadro Nº 03-RH y Gráfico Nº 02-RH.

Con respecto al índice de Simpson en los puntos muestreados del área de influencia es

baja, por lo que considerando como una medida de concentración de especies dominantes

nos indica que es muy escaso el grado de dominancia de algunas especies en la

comunidad, ver Cuadro Nº 03-RH y Gráfico Nº 02-RH.

Cuadro Nº 03-RHÍndices comparativos para el Fitoplancton en ambas épocas

Puntos de Muestreo

MRHC-1 MRHC-2 MRHC-3 MRHC-4 MRHC-5

H S H S H S H S H S

Riqueza = 23 28 15 29 21 24 18 33 13 15

H' = 2,34 0,32 2,07 0,36 3,09 0,4 2,79 0,76 2,90 0,13

D = 0,22 0,08 0,33 0,07 0,15 0,31 0,16 0,39 0,22 0,22

E = 1,17 0,20 1,03 0,23 1,55 0,26 1,39 0,48 1,45 0,08

M = 3,27 3,8 2,10 3,93 2,86 3,11 2,49 4,16 1,76 2,04

J = 0,75 0,1 0,76 0,11 1,02 0,13 0,96 0,22 1,13 0,05

H’ = Índice de Shannon y Weaner, D = Índice de Simpson, E = Equitatividad, M = Índice de Margalef, J = Índice de PielouH : Época Húmeda S : Época SecaElaboración: Blgo Juan Carlos Ascencio Mora / Lahmeyer Agua y Energía S.A., Marzo del 2,015.

Gráfico Nº 01-RHComparativo de la Riqueza de especies de fitoplancton en ambas épocas

0

5

10

15

20

25

30

35

Hum Sec Hum Sec Hum Sec Hum Sec Hum Sec


23

28

15

29

21

24

18

33

13

15

Nº

de

esp

eci

es

Puntos de Muestreo

Riqueza



Según el índice de Margalef en los puntos correspondientes al río Vilcanota tienen una

diversidad media en ambas épocas observándose que en época seca es de mayor valor; en

cambio en el punto MRHC-05 correspondiente al río aportante Santa Teresa la diversidad es

baja, observándose que en época seca es de mayor valor, como se muestra en el Cuadro

Nº 03-RH y Gráfico Nº 02-RH.

Según el índice de segregación de Pielou en los puntos muestreados en época húmeda

según los valores hay mas segregación de las especies, esto es, mayor separación espacial

de las especies con respecto a la época Seca que es menor por lo que están acercándose a

la inexistencia de segregación, ver Cuadro Nº 03-RH y Gráfico Nº 02-RH.

Gráfico Nº 02-RHÍndices de diversidades para la comunidad fitoplanctónica en ambas épocas

0,00

0,50

1,00

1,50

2,00

2,50

3,00

3,50



2,34

0,32

2,07

0,36

3,09

0,4

2,79

0,76

2,90

0,13

Un

idad

es

Puntos de Muestreo

Índice de Shanon y weanner

0,00

0,05

0,10

0,15

0,20

0,25

0,30

0,35

0,40



0,22

0,08

0,33

0,07

0,15

0,31

0,16

0,39

0,22 0,22

Un

idad

es

Puntos de Muestreo

Índice de Simpson

0,00

0,50

1,00

1,50

2,00

2,50

3,00

3,50

4,00

4,50



3,27

3,8

2,10

3,93

2,863,11

2,49

4,16

1,762,04

Un

idad

es

Puntos de Muestreo

Índice de Margalef

0,00

0,20

0,40

0,60

0,80

1,00

1,20



0,75

0,1

0,76

0,11

1,02

0,13

0,96

0,22

1,13

0,05

Un

idad

es

Puntos de Muestreo

Índice de Pielou

El índice de Dispersión Biótica en las áreas muestreadas es de un promedio bajo que oscila

entre 13% y 20%, que quiere decir que ese porcentaje de especies están representados en

todas las especies con respecto al 100% del total de todas las especies en todas las áreas

del río en el ámbito del área de influencia muestreada, como se puede apreciar en el Cuadro

Nº 04-RH y Gráfico Nº 03-RH.



Cuadro Nº 04-RHÍndices para calidad de agua por medio del Fitoplancton

Puntos de Muestreo


H S H S H S H S H S

IBP = 95,24 82,14 100 89,66 95,24 95,65 94,44 93,75 100 85,71IDB = 14 15 18 15 15 17 17 13 19 20IDG = 3,6 3,5 3,77 3,73 3,42 3,94 3,37 3,51 3,99 3,88

IBP = Índice Biológico de Polución, IDB = Índice de Dispersión Biótica, IDG = Índice General DiatómicoH : Época Húmeda S : Época Seca

Valor Color

IBP = 0 a 8

IBP = 8 a 20

IBP = 20 a 60

IBP = 60 a 100

Valor Color

IDG> 4.5

4 <IDG< 4.5

3.5 <idg< 4

3 <IDG< 3.5

2 <IDG< 3

1 <IDG< 2

IDG = 0

Polución muy fuerte

La población es considerada como inexistente (polución

tóxica). Por debajo de 10 indiv. Por mm3

Agua frecuentemente contaminada

Significado

Indice General Diató,ico

Calidad Biológica Optima

Calidad normal. Polución debil

Polución moderada. Eutrofización

Polución media. Eutrofización acentuada

Desaparición de especies sensibles. Polución fuerte

Agua contaminada

Indice Biológico de PoluciónValores de Contaminación según OMS

Significado

Agua pura

Agua ligeramente contaminada


Gráfico Nº 03-RHÍndice de Dispersión Biótica para la comunidad de fitoplancton en ambas épocas

0

2

4

6

8

10

12

14

16

18

20



14

15

18

15 15

17 17

13

19

20

%d

eID

B

Puntos de Muestreo



El índice Biológico de Polución es alto en todos los puntos de muestreo por encima del 92%,

no existiendo variaciones significativas en cada época, lo que indica la mala calidad por la

gran alteración de las aguas, esto posiblemente sea provocado por las poblaciones cerca a

los ríos en la cual los desechos sean arrojados al río al no existir drenajes adecuados ni

plantas de tratamiento de aguas, así también por las mineras, remoción de tierras por las

canteras, ver Cuadro Nº 04-RH y Gráfico Nº 04-RH.

Gráfico Nº 04-RHÍndices para la determinación de calidad de agua por medio del Fitoplancton en ambas épocas

0

10

20

30

40

50

60

70

80

90

100



95,24

82,14

100

89,66

95,24 95,65 94,44 93,75

100

85,71

%d

eIB

P

Puntos de Muestreo

Índice Biótico de Polución

3

3,1

3,2

3,3

3,4

3,5

3,6

3,7

3,8

3,9

4



3,6

3,5

3,773,73

3,42

3,94

3,37

3,51

3,99

3,88

Un

ida

de

s

Puntos de Muestreo

Índice de General Diatómico

Valor Color

IBP = 0 a 8

IBP = 8 a 20

IBP = 20 a 60

IBP = 60 a 100 Agua frecuentemente contaminada

Agua contaminada

Indice Biológico de Polución

Valores de Contaminación según OMS

Significado

Agua pura

Agua ligeramente contaminada

Valor Color

IDG> 4.5

4 <IDG< 4.5

3.5 <idg< 4

3 <IDG< 3.5

2 <IDG< 3

1 <IDG< 2

IDG = 0

Polución muy fuerte

La población es considerada como inexistente (polución

tóxica). Por debajo de 10 indiv. Por mm3

Significado

Indice General Diatómico

Calidad Biológica Optima

Calidad normal. Polución debil

Polución moderada. Eutrofización

Polución media. Eutrofización acentuada

Desaparición de especies sensibles. Polución fuerte

Según el índice de IDG en época húmeda se aprecia que los valores indican que existe

eutrofización con polución moderada, en cambio en la época Seca los valores indican que

existe una eutrofización acentuada con polución media, como se puede apreciar en el

Cuadro Nº 04-RH y Gráfico Nº 04-RH.

b) Comunidad Zooplanctónica y Macroinvertebrados acuáticos

La Riqueza de especies en los puntos muestreados en la época húmeda es pobre con

respecto a la época seca que posee mejores valores, con diferencia en el punto MRHC-02

en que en época seca la riqueza es 0 en comparación con los otros puntos , como muestra

en el Cuadro Nº 05-RH y en el Gráfico Nº 05-RH.

Con respecto al índice de Shannon y Wiener en los puntos muestreados se aprecia que es

baja, pobre en diversidad en ambas épocas, ver Cuadro Nº 05-RH y Gráfico Nº 06-RH.



Cuadro Nº 05-RHÍndices comparativos para el Zooplancton y macroinvertebrados acuáticos en ambas épocas

Puntos de Muestreo


H S H S H S H S H S

Riqueza = 2 5,5 1 0 1 3,92 1 3,07 0 4,26

H = 0,32 0,1 0 0 0 0,24 0 0,71 0 0,32

D = 0 0,33 0 0 0 0,29 0 0,12 0 0,07

E = 0,46 0,03 0 0 0 0,08 0 0,22 0 0,10

M = 0,91 1,66 0 0 0 2,37 0 4,63 0 5,14

J = 0,46 0,06 0 0 0 0,18 0 0,63 0 0,22


Gráfico Nº 05-RHComparativo de la Riqueza de especies del zooplancton y los macroinvertebrados acuáticos en ambas épocas

0

1

2

3

4

5

6



2

5,5

1

0

1

3,92

1

3,07

0

4,26

Nº

de

esp

eci

es

Puntos de Muestreo

Con respecto al índice de Simpson en los puntos muestreados del área de influencia es

también baja, por lo que considerando como una medida de concentración de especies

dominantes nos indica que es muy escaso el grado de dominancia de algunas especies en

la comunidad, por lo que en algunos puntos y épocas es nula, como se muestra en el

Cuadro Nº 05-RH y en el Gráfico Nº 06-RH.



Gráfico Nº 06-RHÍndices de diversidades para las comunidades de zooplancton y macroinvertebrados acuáticos en ambas épocas

0

0,1

0,2

0,3

0,4

0,5

0,6

0,7

0,8



0,32

0,1

0 0 0

0,24

0

0,71

0

0,32

Un

idad

es

Puntos de Muestreo

Índice de Shanon y Weanner

0

0,05

0,1

0,15

0,2

0,25

0,3

0,35



0

0,33

0 0 0

0,29

0

0,12

0

0,07

Un

idad

es

Puntos de Muestreo

Índice de Simpson

0

1

2

3

4

5

6



0,91

1,66

0 0 0

2,37

0

4,63

0

5,14

Un

idad

es

Puntos de Muestreo

Índice de Margalef

0

0,1

0,2

0,3

0,4

0,5

0,6

0,7



0,46

0,06

0 0 0

0,18

0

0,63

0

0,22Un

idad

es

Puntos de Muestreo

ïndice de Pielou

Según el índice de Margalef en los puntos muestreados en época húmeda es muy baja la

diversidad, en algunos puntos es nula; en cambio en la época seca se aprecia que solo dos

puntos poseen diversidad media y el punto que corresponde al rio Lucuma su diversidad es

poco alta, los demás puntos son muy bajos los valores y en un caso ser de valor 0, como se

muestra en el Cuadro Nº 05-RH y en el Gráfico Nº 06-RH.

Según el índice de segregación de Pielou en la mayoría de los puntos muestreados en

época húmeda según los valores que es 0 indican que no existe segregación de las

especies, exceptuando en el punto MRHC-01 que presenta un valor mayor a 0 lo que si

presenta segregación de especies, esto es, mayor separación espacial de las especies; en

cambio en la época seca en la mayoría de los puntos presenta segregación de especies

exceptuando el punto MRHC-02 que tiene un valor de 0 que significa la inexistencia de

segregación, como se muestra en el Cuadro Nº 05-RH y en el Gráfico Nº 06-RH.

El índice de Dispersión Biótica en las áreas muestreadas también es de un promedio bajo

que oscila entre 6% y 25%, que quiere decir que ese porcentaje de especies están

representados en todas las especies con respecto al 100% del total de todas las especies

en todas las áreas del río en el ámbito del área de influencia muestreada, como se muestra




Cuadro Nº 06-RHÍndice de Dispersión Biótica para el Zooplancton y macroinvertebrados acuáticos

Puntos de Muestreo


H S H S H S H S H S

IBD = 6,25 21 18,75 25 18,75 19 18,75 13 25 15

IDB = Índice de Dispersión Biótica H : Época Húmeda S : Época SecaElaboración: Blgo Juan Carlos Ascencio Mora / Lahmeyer Agua y Energía S.A., Marzo del 2,015.

Con respecto a ser indicadores las especies zoo planctónicas y macroinvertebrados

acuáticos con respecto a la calidad de agua se puede apreciar que los diferentes índices

aplicados nos indican que el agua posee una calidad mala y que está fuertemente alterada

en ambas épocas, ver Cuadro Nº 07-RH y Gráficos Nº 08-RH y Nº 09-RH.

Gráfico Nº 07-RHÍndice de Dispersión Biótica para las comunidades de zooplancton y

macroinvertebrados acuáticos en ambas épocas

0

5

10

15

20

25



6,25

21

18,75

25

18,75 19 18,75

13

25

15

%d

eID

B

Puntos de Muestreo



Cuadro Nº 07-RHÍndices para calidad de agua por medio del Zooplancton y macroinvertebrados acuáticos

Puntos de Muestreo


H S H S H S H S H S

BMWP = 11 2,6 1 0 4 14,2 11 15,5 0 29,6

I.B.G.N. = 9 1 1 1 5 10 8 10 1 20

MCI = 2 2,4 3 0 2 3,1 0 3,63 0 3,45

QMCI = 1,33 1,2 3 0 2 2,66 0 1,86 0 1,78

SQMCI = 0,67 0,6 3 0 2 0,89 0 1,21 0 1,15

index EPT = 2 0 1 0 1 0 1 1 0 1

H : Época Húmeda S : Época Seca

Calidad Valor Color

>150

101 - 120

Pasable 61 - 100

Dudoso 36 - 60

Crítico 16 - 35

Muy Crítico < 15

Calidad del

AguaMCI QMCI SQMCI Color

Excelente > 114 > 5,99

Buena 100 - 119 5,00 - 5,90

Mala 50 - 99 4,00 - 4,99

Pésima < 80 < 4,00

Valor Calidad Color Color

<25 Malo 75 - 100% Muy buena

26-50 Mediocre 50 - 74% Buena

51-100 Bueno 25 - 49% Regular

101-150 Muy Bueno 0 - 24% Mala

>150 Excepcional

Grado de Polución del Agua

Agua Clara

Posible pequeña Polución

Aguas contaminadas (el sistema se altero)

BMWP

Significado

BuenoAguas muy limpias (cristalino)

No se contaminó o sensiblemente el sistems no se altero

Evidencias de efectos de polución apacibles

Aguas muy contaminadas (el sistema muy alterado)

Aguas fuertemente contaminadas (el sistema esta

fuertemente alterado)

Posible Moderada Polución

Posible Severa Polución

Indice de EPT

Calidad del Agua

IBGN




Gráfico Nº 08-RHÍndices para la determinación de calidad de agua por medio de

zooplancton y macroinvertebrados en ambas épocas

0

5

10

15

20

25

30



11

2,61

0

4

14,2

11

15,5

0

29,6

Un

ida

de

s

Puntos de Muestreo

Índice de BMWP

0

2

4

6

8

10

12

14

16

18

20



9

1 1 1

5

10

8

10

1

20

Un

ida

de

s

Puntos de Muestreo

Índice de I.B.G.N.

Calidad Valor Color

>150

101 - 120

Pasable 61 - 100

Dudoso 36 - 60

Crítico 16 - 35

Muy Crítico < 15

Aguas muy limpias (cristalino)

No se contaminó o sensiblemente el sistems no se

altero






Bueno

Significado

BMWP

Valor Calidad Color

<25 Malo

26-50 Mediocre

51-100 Bueno

101-150 Muy Bueno

>150 Excepcional

IBGN

Gráfico Nº 09-RHÍndices para la determinación de calidad de agua por medio de

zooplancton y macroinvertebrados en ambas épocas

0

0,5

1

1,5

2

2,5

3

3,5

4



Un

ida

de

s

Puntos de Muestreo

ïndices MCI, QMCI, SQMCI

MCI = QMCI = SQMCI =

0

0,2

0,4

0,6

0,8

1

1,2

1,4

1,6

1,8

2



2

0

1

0

1

0

1 1

0

1

Un

ida

de

s

Puntos de Muestreo

ïndice de EPT

Calidad del Agua MCI QMCI SQMCI Color


Buena 100 - 119 5,00 - 5,90

Mala 50 - 99 4,00 - 4,99

Pésima < 80 < 4,00





Agua Clara Color

75 - 100% Muy buena

50 - 74% Buena

25 - 49% Regular

0 - 24% Mala

Indice de EPT

Calidad del Agua

c) Comunidad de Macroinvertebrados Bentónicos

La Riqueza de especies en los puntos muestreados en ambas épocas es muy bajo, por lo

que no son muy representativas para una riqueza moderada, ver Cuadro Nº 08-RH y Gráfico

Nº 10-RH.



Cuadro Nº 08-RHÍndices comparativos para los macroinvertebrados bentónicos en ambas épocas

Puntos de Muestreo


H S H S H S H S H S

Riqueza = 2 0 4 0 0 0,32 0 0,43 1 0,43

H' = 0,03 0 1,08 0 0 1,8 0 0,7 0 0,7

D = 0 0 0,32 0 0 0,35 0 1 0 1

E = 0 0 0 0 0 0,90 0 0,35 0 0,35

M = 3,32 0 1,87 0 0 0,72 0 0 0 0

J = 0,05 0 0,78 0 0 1,6 0 0,83 0 0,83

H’ = Índice de Shannon y Weaner, D = Índice de Simpson, E = Equitatividad, M = Índice de Margalef,J = Índice de Pielou H : Época Húmeda S : Época SecaElaboración: Blgo Juan Carlos Ascencio Mora / Lahmeyer Agua y Energía S.A., Marzo del 2,015.


baja, pobre en diversidad en ambas épocas, lo que indica que con respecto a esta

comunidad de especies macroinvertebrados bentónicos es pobre en diversidad debido a

condiciones del ecosistema en cada punto, ver Cuadro Nº 08-RH y Gráfico Nº 11-RH.

Gráfico Nº 10-RHComparativo de la Riqueza de especies de macroinvertebrados bentónicos en ambas épocas

0

0,5

1

1,5

2

2,5

3

3,5

4



2

0

4

0 0

0,32

0

0,43

1

0,43

Nº

de

esp

eci

es

Puntos de Muestreo



Gráfico Nº 11-RHÍndices de diversidades para la comunidad de macroinvertebrados bentónicos en ambas épocas

0

0,2

0,4

0,6

0,8

1

1,2

1,4

1,6

1,8



0,03 0

1,08

0 0

1,8

0

0,7

0

0,7

Un

idad

es

Puntos de Muestreo

Índice de Shanon y Weanner

0

0,1

0,2

0,3

0,4

0,5

0,6

0,7

0,8

0,9

1



0 0

0,32

0 0

0,35

0

1

0

1

Un

idad

es

Puntos de Muestreo

Índice de Simpson

0

0,5

1

1,5

2

2,5

3

3,5



3,32

0

1,87

0 0

0,72

0 0 0 0

Un

idad

es

Puntos de Muestreo

Índice de Margalef

0

0,2

0,4

0,6

0,8

1

1,2

1,4

1,6



0,050

0,78

0 0

1,6

0

0,83

0

0,83

Un

ida

de

s

Puntos de Muestreo

Índice de Pielou

Con respecto al índice de Simpson en los puntos muestreados del área de influencia en

época húmeda es baja, por lo que considerando como una medida de concentración de

especies dominantes nos indica que es muy escaso el grado de dominancia de algunas

especies en la comunidad, por lo que en algunos puntos y épocas es nula; en época seca se

aprecia que solo los puntos MRHC-03, MRHC_04 y MRHC-05 presentan moderada

diversidad a alta diversidad en los últimos dos puntos, los demás es nula su diversidad, ver

Cuadro Nº 08-RH y Gráfico Nº 11-RH.

Según el índice de Margalef en los puntos muestreados en época húmeda solo el punto

MRHC-01 es de moderada diversidad los demás puntos es muy baja la diversidad y en

algunos puntos es nula; en cambio en la época seca se aprecia que los puntos poseen

diversidad muy bajos los valores y en unos casos son de valor, ver Cuadro Nº 08-RH y

Gráfico Nº 11-RH.

Según el índice de segregación de Pielou en los dos puntos MRHC-01 y MRHC-02

muestreados en época húmeda presentan segregación de especies, en los demás puntos

se aprecia que los valores es 0 lo que indican que no existe segregación de las especies; en

cambio en época seca los puntos MRHC-03, MRHC-04 y MRHC-05 presentan segregación

de especies esto es, mayor separación espacial de las especies pero en los demás puntos

tienen un valor de 0 que significa la inexistencia de segregación, ver Cuadro Nº 08-RH y

Gráfico Nº 11-RH.



El índice de Dispersión Biótica en las áreas muestreadas también es de un promedio bajo

que oscila entre 5% y 25%, que quiere decir que ese porcentaje de especies están

representados en todas las especies con respecto al 100% del total de todas las especies

en todas las áreas del río en el ámbito del área de influencia muestreada, como se muestra


Cuadro Nº 09-RHÍndice de Dispersión Biótica para el Zooplancton y macroinvertebrados acuáticos

Puntos de Muestreo


H S H S H S H S H S

IDB = 15 25 5 25 25 6 25 19 20 19

IDB = Índice de Dispersión Biótica H : Época Húmeda S : Época SecaElaboración: Blgo Juan Carlos Ascencio Mora / Lahmeyer Agua y Energía S.A., Marzo del 2,015.

Con respecto a ser indicadores las especies macroinvertebrados bentónicos con respecto a

la calidad de agua se puede apreciar que los diferentes índices aplicados nos indican que el

agua posee una calidad mediocre a mala esto es que está fuertemente alterada el agua en

ambas épocas, ver Cuadro Nº 10-RH y Gráficos Nº 13-RH y Nº 14-RH.

Gráfico Nº 12-RHÍndice de Dispersión Biótica para la comunidad de macroinvertebrados acuáticos en ambas épocas

0

5

10

15

20

25



15

25

5

25 25

6

25

1920

19

%d

eID

B

Puntos de Muestreo



Cuadro Nº 10-RHÍndices para calidad de agua por medio de macroinvertebrados bentónicos

Puntos de Muestreo


H S H S H S H S H S

BMWP = 11 0 24 0 0 8,9 0 3,9 11 6,6

I.B.G.N. = 6 1 18 1 1 192 1 63 8 65

MCI = 2 0 2,5 0 0 2,57 0 1,95 0 3,1

QMCI = 1 0 0,93 0 0 2,79 0 3,6 0 0,02

SQMCI = 1 0 0,33 0 0 1,24 0 2,88 0 0,02

index EPT = 2 0 4 0 0 0 0 0 1 1

H : Época Húmeda S : Época Seca

Calidad Valor Color

>150

101 - 120

Pasable 61 - 100

Dudoso 36 - 60

Crítico 16 - 35

Muy Crítico < 15

Calidad del

AguaMCI QMCI SQMCI Color


Buena 100 - 119 5,00 - 5,90

Mala 50 - 99 4,00 - 4,99

Pésima < 80 < 4,00

Valor Calidad Color Color

<25 Malo 75 - 100% Muy buena

26-50 Mediocre 50 - 74% Buena

51-100 Bueno 25 - 49% Regular

101-150 Muy Bueno 0 - 24% Mala

>150 Excepcional


Agua Clara



BMWP

Significado

BuenoAguas muy limpias (cristalino)

No se contaminó o sensiblemente el sistems no se altero







Indice de EPT

Calidad del Agua

IBGN


Gráfico Nº 13-RHÍndices para la determinación de calidad de agua por medio

de macroinvertebrados bentónicos en ambas épocas

0

5

10

15

20

25



11

0

24

0 0

8,9

0

3,9

11

6,6

Un

idad

es

Puntos de Muestreo

Índice de BMWP

0

20

40

60

80

100

120

140

160

180

200



6 1

18

1 1

192

1

63

8

65Un

idad

es

Puntos de Muestreo

Índice de Simpson

Calidad Valor Color

>150

101 - 120

Pasable 61 - 100

Dudoso 36 - 60

Crítico 16 - 35

Muy Crítico < 15

Aguas muy limpias (cristalino)

No se contaminó o sensiblemente el sistems no se

altero






Bueno

Significado

BMWP

Valor Calidad Color

<25 Malo

26-50 Mediocre

51-100 Bueno

101-150 Muy Bueno

>150 Excepcional

IBGN



Gráfico Nº 14-RHÍndices para la determinación de calidad de agua por medio

de macroinvertebrados bentónicos en ambas épocas

0

0,5

1

1,5

2

2,5

3

3,5

4



Un

idad

es

Puntos de Muestreo

Índices de MCI, QMCI, SQMCI

MCI = QMCI = SQMCI =

0

0,5

1

1,5

2

2,5

3

3,5

4



2

0

4

0 0 0 0 0

1 1

Un

idad

es

Puntos de Muestreo

Índice de EPT

Calidad del Agua MCI QMCI SQMCI Color


Buena 100 - 119 5,00 - 5,90

Mala 50 - 99 4,00 - 4,99

Pésima < 80 < 4,00





Agua Clara Color

75 - 100% Muy buena

50 - 74% Buena

25 - 49% Regular

0 - 24% Mala

Indice de EPT

Calidad del Agua

d) Comunidad de Ictiofauna

La Riqueza de especies en los puntos muestreados en ambas épocas es bajo, sin embargoen época seca es un poco mayor la riqueza, ver Cuadro Nº 11-RH y Gráfico Nº 15-RH.

Cuadro Nº 11-RHÍndices comparativos para la ictiofauna en ambas épocas

Puntos de Muestreo


H S H S H S H S H S

Riqueza = 3,15 3 1,35 3 1,58 2 1,51 3 0 3

H' = 0,09 0,78 0,63 0,4 0,41 0,25 0,39 0,26 0 0,28

D = 0 0,44 0,13 0,33 0,11 0,4 0,18 0,32 0 0,24

E = 0,04 0 0,24 0 0,16 0 0,15 0 0 0

M = 4,19 1,8 4,49 2,1 4,19 1,29 3 2,21 0 2,37

J = 0,08 0,71 2,1 0,36 0,89 0,36 0,95 0,23 0 0,26




Gráfico Nº 15-RHComparativo de la Riqueza de especies de la comunidad de ictiofauna en ambas épocas

0

0,5

1

1,5

2

2,5

3

3,5



3,153

1,35

3

1,58

2

1,51

3

0

3

Nº

de

esp

eci

es

Puntos de Muestreo


baja, pobre en diversidad en ambas épocas, lo que indica que con respecto a esta

comunidad de especies ícticas es pobre en diversidad debido a condiciones del ecosistema

en cada punto, como se muestra en el Cuadro Nº 11-RH y Gráfico Nº 16-RH.

Gráfico Nº 16-RHÍndices de diversidades para la comunidad de ictiofauna en ambas épocas

0

0,1

0,2

0,3

0,4

0,5

0,6

0,7

0,8



0,09

0,78

0,63

0,4 0,41

0,25

0,39

0,26

0

0,28

Un

idad

es

Puntos de Muestreo

ïndice de Shanon y Weanner

0

0,05

0,1

0,15

0,2

0,25

0,3

0,35

0,4

0,45



0

0,44

0,13

0,33

0,11

0,4

0,18

0,32

0

0,24

Un

idad

es

Puntos de Muestreo

Índice de Simpson

0

1

2

3

4

5



4,19

1,8

4,49

2,1

4,19

1,29

3

2,21

0

2,37

Un

ida

de

s

TPuntos de Muestreo

Índice de Margalef

0

0,5

1

1,5

2

2,5



0,08

0,71

2,1

0,36

0,89

0,36

0,95

0,23

0

0,26

Un

ida

de

s

Puntos de Muestreo

Índice de Pielou



Con respecto al índice de Simpson en los puntos muestreados del área de influencia enépoca húmeda es muy baja, por lo que considerando como una medida de concentración deespecies dominantes nos indica que es muy escaso el grado de dominancia de algunasespecies en la comunidad, por lo que en algunos puntos es nula; en época seca se apreciaque los valores de los puntos presentan moderada diversidad, como se puede observar enel Cuadro Nº 11-RH y Gráfico Nº 16-RH.

Según el índice de Margalef en los puntos muestreados en época húmeda solo el puntoMRHC-05 es nula diversidad los demás puntos es de moderada diversidad; en cambio en laépoca seca se aprecia que los puntos poseen diversidad son muy bajos los valores, comose puede observar en el Cuadro Nº 11-RH y Gráfico Nº 16-RH.

Según el índice de segregación de Pielou en la mayoría de los puntos muestreados enépoca húmeda presentan segregación de especies, esto es, mayor separación espacial delas especies, en cambio en el punto MRHC-05 el valor es 0 lo que indican que no existesegregación de las especies; en cambio en época seca todos los puntos presentansegregación de especies, esto es, mayor separación espacial de las especies, como sepuede observar en el Cuadro Nº 11-RH y Gráfico Nº 16-RH.

El índice de Dispersión Biótica en las áreas muestreadas también es de un promedio bajoque oscila entre 0% y 25%, que quiere decir que ese porcentaje de especies estánrepresentados en todas las especies con respecto al 100% del total de todas las especiesen todas las áreas del río en el ámbito del área de influencia muestreada, como se puedever en el Cuadro Nº 12-RH y en el Gráfico Nº 17-RH.

Cuadro Nº 12-RHÍndice de Dispersión Biótica para la ictiofauna

Puntos de MuestreoMRHC-01 MRHC-02 MRHC-03 MRHC-04 MRHC-05H S H S H S H S H S

IDB = 13 0 0 0 4 8 8 0 25 0IDB = Índice de Dispersión Biótica H : Época Húmeda S : Época SecaElaboración: Blgo Juan Carlos Ascencio Mora / Lahmeyer Agua y Energía S.A., Marzo del 2,015.

Gráfico Nº 17-RHÍndice de Dispersión Biótica para la comunidad de ictiofauna en ambas épocas

0

5

10

15

20

25



13

0 0 0

4

8 8

0

25

0

%d

eID

B

Puntos de Muestreo



4.3.6 Especies en Peligro de Extinción

a) Flora Silvestre

De acuerdo al Decreto Supremo Nº 043-2006-AG, donde se menciona la categorización de

777 especies, esta clasificación de especies amenazadas de flora silvestre en el Perú ha

sido el resultado de un proceso abierto y participativo a nivel nacional, que tiene como base

los criterios y categorías de la Unión Mundial para la Conservación (UICN) que es el

inventario más completo del estado de conservación de especies plantas a nivel mundial. De

la revisión efectuada al listado de flora identificada en la zona de estudio se ha encontrado

que dos especies Alnus acuminata y Epidendrum secundum se encuentran consideradas

como en situación vulnerable y una especie Acacia Macracantha se encuentra en condición

de Amenazada

En el Cuadro Nº 01-EPE se presenta la lista de especies amenazadas de flora silvestre.

Cuadro Nº 01-EPECategorización de Especies Amenazadas de Flora Silvestre

Categoría de Amenaza

EspeciePeligro Crítico

(CR)Peligro(EN)

Vulnerable(VU)

Amenazada(NT)

Acacia macracantha X

Alnus acuminata X

Epidendrum secundum X

Elaboración: Blgo Alvaro Torres Enriquez / Lahmeyer Agua y Energía S.A.

b) Fauna Silvestre

De acuerdo al Decreto Supremo Nº 004-2014-MINAGRI, donde se menciona la prohibición

de la caza, captura, tenencia, transporte y/o exportación con fines comerciales de especies

de fauna silvestre no autorizados por el Ministerio de Agricultura. Esta clasificación de

especies amenazadas de fauna silvestre en el Perú ha sido el resultado de un proceso

abierto y participativo a nivel nacional, que tiene como base los criterios y categorías de la

Unión Mundial para la Conservación (UICN) que es el inventario más completo del estado

de conservación de especies de animales a nivel mundial.

De acuerdo a la revisión efectuada se debe indicar que las especies de fauna identificadas

en la zona de estudio, no se encuentran dentro de los listados de la norma arriba

mencionada.



c) Especies según CITES

La Convención sobre el Comercio Internacional de Especies Amenazadas de Fauna y Flora

Silvestres (CITES), es uno de los acuerdos multilaterales más antiguos, está entre los

acuerdos de conservación de más larga existencia y a la fecha cuenta con 160 países

miembros. CITES regula el comercio de una gran variedad de especies, todas tienen un

elemento común: la decisión de la comunidad internacional de cooperar para asegurar que

su comercio no resulte perjudicial para la supervivencia de la especie.

CITES, tiene tres Apéndices que son la esencia de su funcionamiento y designan a las

especies que están bajo su protección:

Apéndice I, las especies que están amenazadas de extinción y su comercio internacional se

encuentra prohibido, aunque existen exoneraciones y/o disposiciones específicas para el

comercio de especimenes criados en cautiverio o propagados artificialmente.

Apéndice II, las especies no se encuentran necesariamente amenazadas de extinción, pero

podrían estarlo, si es que no se ejerce una estricta regulación y vigilancia. Contribuye

también a asegurar que el comercio de estas especies sea sostenible antes de que su

comercio sea sancionado por la Autoridad Administrativa de exportación.

La Autoridad Científica del país signatario, debe determinar si su comercio no es perjudicial

para la supervivencia de la especie. En este Apéndice están la mayoría de especies de las

listas.

Apéndice III, las especies son las que las jurisdicciones nacionales desean proteger y para

lo cual requieren la colaboración de otras partes de CITES para la vigilancia de su comercio,

por ejemplo, la inclusión de la caoba en 1998 demuestra que el Apéndice III puede ser muy

útil en términos de la vigilancia del comercio siempre que las partes cumplan con sus

disposiciones.

Efectuada la revisión del listado de especies de fauna identificadas en la zona de estudio se

ha determinado que Lontra longicauidis se encuentra del listado de conservación CITES I,

asimismo debemos mencionar que CITES considera en el estado de conservación CITES II

a la familia Trochillidae, por lo que, todos los picaflores identificados cuentan con este

estatus de conservación.

4.3 ambiente biológico 4.3.1 generalidades - … · a la trama trófica, almacenadora de energía,...

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